JP2022512731A - 第ix因子を発現するための組成物及び方法 - Google Patents
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Abstract
Description
特に明記しない限り、本明細書で使用される以下の用語及び句は、以下の意味を有することを意図する。
A.ガイドRNA(gRNA)を含む組成物
ゲノム遺伝子座、例えば、宿主細胞または宿主細胞集団のセーフハーバー部位内に第IX因子遺伝子を挿入及び発現するのに有用なガイドRNA組成物及び方法が本明細書に提供される。特に、本明細書に例示されるように、アルブミン遺伝子座(例えば、イントロン1)における外因性遺伝子の標的化及び挿入は、アルブミンの内因性プロモーターの使用を可能にし、外因性遺伝子のロバストな発現を促進する。本開示は、アルブミン遺伝子のイントロン1内の部位を特異的に標的とし、かつ第IX因子遺伝子の効率的な挿入及び発現を提供するガイドRNAの同定に部分的に基づく。実施例に示され、本明細書にさらに記載されるように、インデル形成活性により測定された高レベルの編集を媒介する同定されたgRNAの能力は、意外に、例えば、導入遺伝子の発現により測定された導入遺伝子の効率的な挿入を媒介するための同じgRNAの使用と必ずしも相関するものではない。すなわち、高レベルのインデル形成を達成することができるある特定のgRNAは、必ずしも効率的な挿入を媒介することができるわけではなく、逆に、低レベルのインデル形成を達成することが示されるいくつかのgRNAは、導入遺伝子の効率的な挿入及び発現を媒介し得る。
いくつかの実施形態では、gRNAは、化学修飾される。1つ以上の修飾ヌクレオシドまたはヌクレオチドを含むgRNAは、標準的なA、G、C、及びU残基の代わりに、またはそれらに加えて使用される1つ以上の非天然及び/または天然に存在する構成要素または配置の存在を記載するために、「修飾」gRNAまたは「化学修飾」gRNAと呼ばれる。いくつかの実施形態では、修飾gRNAは、非標準的なヌクレオシドまたはヌクレオチドを用いて合成され、本明細書では「修飾された」と呼ばれる。修飾ヌクレオシド及びヌクレオチドは、(i)ホスホジエステル骨格結合における改変、例えば、非架橋のリン酸酸素の1つもしくは両方、及び/または、架橋リン酸酸素の1つ以上の置き換え(例示的な骨格修飾)、(ii)リボース糖の成分、例えば、リボース糖の2’ヒドロキシルの改変、例えば、置き換え(例示的な糖修飾)、(iii)リン酸部分の「脱リン酸型」リンカーによる大規模な置き換え(例示的な骨格修飾)、(iv)非標準的な核酸塩基によるものを含め、天然に存在する核酸塩基の修飾または置き換え(例示的な塩基修飾)、(v)リボースリン酸骨格の置き換えまたは修飾(例示的な骨格修飾)、(vi)オリゴヌクレオチドの3’末端または5’末端の修飾、例えば、末端リン酸基の除去、修飾または置き換え、または部分、キャップ、またはリンカーのコンジュゲーション(そのような3’または5’のキャップ修飾は、糖及び/または骨格の修飾を含み得る)、ならびに(vii)糖の修飾または置き換え(例示的な糖修飾)の1つ以上を含み得る。
本明細書に記載の組成物及び方法は、本開示のガイドRNA及びRNAガイドDNA結合剤によって作成される切断部位に挿入される異種第IX因子遺伝子をコードする配列を含む核酸構築物の使用を含む。本明細書で使用される場合、そのような構築物は、時に、「ドナー構築物/テンプレート」と称される。いくつかの実施形態では、構築物は、DNA構築物である。ドナー構築物に対する様々な機能的/構造的修飾を設計及び作製する方法は、当該技術分野で既知である。いくつかの実施形態では、構築物は、ポリアデニル化テール配列、ポリアデニル化シグナル配列、スプライスアクセプター部位、または選択マーカーのうちのいずれか1つ以上を含み得る。いくつかの実施形態では、ポリアデニル化テール配列は、コード配列の3’末端で、例えば、「ポリ-A」ストレッチとしてコードされる。好適なポリアデニル化テール配列及び/またはポリアデニル化シグナル配列を設計する方法は、当該技術分野で周知である。例えば、UAUAAA(配列番号801)またはAU/GUAAA(配列番号802)などのバリアントが同定されているが、ポリアデニル化シグナル配列AAUAAA(配列番号800)は、哺乳動物系で一般的に使用される。例えば、NJ Proudfoot,Genes&Dev.25(17):1770-82,2011を参照されたい。
例えば、CRISPR/Cas系、亜鉛フィンガーヌクレアーゼ(ZFN)系、転写活性化因子様エフェクターヌクレアーゼ(TALEN)系を含む、様々な既知の遺伝子編集系が、本開示の実施において第IX因子の標的挿入に使用され得る。一般に、遺伝子編集系は、標的DNA配列において二本鎖切断(DSB)またはニック(例えば、一本鎖切断すなわちSSB)を誘導するために操作された切断系の使用を伴う。切断またはニッキングは、操作されたZFN、TALENなど特異的ヌクレアーゼの使用を通じて、または操作されたガイドRNAを有するCRISPR/Cas系を使用して、標的DNA配列の特異的切断またはニッキングを誘導することによって生じ得る。さらに、標的ヌクレアーゼは、ゲノム編集及び遺伝子療法における使用の可能性も有し得る、Argonaute系(例えば、「TtAgo」として知られるT.thermophilusから、Swarts et al(2014)Nature 507(7491):258-261を参照されたい)に基づいて開発されている。
本明細書に開示されるガイドRNA、RNAガイドDNA結合剤(例えば、Casヌクレアーゼ)、及び核酸構築物(例えば、双方向性構築物)は、当該技術分野で利用可能な様々な既知の好適な方法を使用して、宿主細胞もしくは宿主細胞集団または対象に、インビボまたはエクスビボで送達され得る。ガイドRNA、RNAガイドDNA結合剤、及び核酸構築物は、適切な場合に同じまたは異なる送達方法を使用して、個別にまたは任意の組み合わせで一緒に送達することができる。
本明細書に記載されるgRNA、ドナー構築物(例えば、第IX因子をコードする配列を含む双方向性構築物)、及びRNAガイドDNA結合剤は、インビボまたはインビトロで、第IX因子核酸を宿主細胞または宿主細胞集団に導入するのに有用である。いくつかの実施形態では、本明細書に記載されるgRNA、ドナー構築物(例えば、第IX因子をコードする配列を含む双方向性構築物)、及びRNAガイドDNA結合剤は、宿主細胞もしくは宿主細胞集団、またはそれを必要とする対象において第IX因子を発現するのに有用である。いくつかの実施形態では、本明細書に記載されるgRNA、ドナー構築物(例えば、第IX因子をコードする配列を含む双方向性構築物)、及びRNAガイドDNA結合剤は、血友病(例えば、血友病B)を治療することを必要とする対象においてそれを治療するのに有用である。本明細書に記載されるgRNA、ドナー構築物(例えば、第IX因子をコードする配列を含む双方向性構築物)、及びRNAガイドDNA結合剤のうちのいずれか1つ以上の投与は、第IX因子タンパク質レベル及び/または第IX因子活性レベル、例えば、循環、血清、または血漿レベルを増加させる。いくつかの実施形態では、治療の実効性は、血清または血漿第IX因子活性を測定することによって評価され得、対象の第IX因子の血漿レベル及び/または活性の増加は、治療の実効性を示す。いくつかの実施形態では、治療の実効性は、血清もしくは血漿第IX因子タンパク質及び/または活性レベルを測定することによって評価され得、対象の第IX因子の血漿レベル及び/または活性の増加は、治療の実効性を示す。いくつかの実施形態では、治療の実効性は、aPTTアッセイにおける凝固機能及び/またはTGA-EAアッセイにおけるトロンビン生成を評価することによって決定され得る。いくつかの実施形態では、治療の実効性は、第IX因子のレベルを評価することによって決定され得、例えば、循環第IX因子のレベルは、凝固及び/または免疫学的アッセイ、例えば、サンドイッチ免疫アッセイ、ELISA(例えば、実施例13を参照されたい)、MSD(例えば、実施例14を参照されたい)によって測定され得る。
ヒト第IX因子ヌクレオチド配列(配列番号706)NCBI参照番号NM_000133):
ヒト第IX因子ポリペプチド(配列番号701)
クローニング及びプラスミド調製
ITRに隣接する双方向性挿入構築物を合成し、商業的ベンダーによってpUC57-Kanにクローニングした。得られた構築物(P00147)を、他のベクターの親クローニングベクターとして使用した。他の挿入構築物(ITRを含まない)も商業的に合成し、pUC57にクローニングした。精製したプラスミドをBglII制限酵素(New England BioLabs、カタログ番号R0144S)で消化し、挿入構築物を親ベクターにクローニングした。プラスミドをStbl3(商標)Chemically Competent E.coli(Thermo Fisher、カタログ番号C737303)中で増殖させた。
HEK293細胞におけるトリプルトランスフェクションを使用して、AAV8及びAAV-DJ生成のための目的の構築物と共にゲノムをパッケージングし、得られたベクターを、イオジキサノール勾配超遠心分離法により溶解細胞及び培養培地の両方から精製した(例えば、Lock et al.,Hum Gene Ther.2010 Oct;21(10):1259-71を参照されたい)。目的の構築物を有するゲノムを含んだトリプルトランスフェクションで使用されるプラスミドは、実施例において「PXXXX」数で参照され、例えば、表9も参照されたい。単離したAAVを貯蔵緩衝液(0.001%Pluronic F68を含むPBS)中で透析した。ITR領域内に位置するプライマー/プローブを使用して、qPCRによってAAV力価を決定した。
N1-メチルプソイド-Uを含むキャップされたポリアデニル化Streptococcus pyogenes(「Spy」)Cas9 mRNAを、直鎖状化プラスミドDNAテンプレート及びT7 RNAポリメラーゼを使用してインビトロ転写によって生成した。一般に、T7プロモーター及び100ntポリ(A/T)領域を含むプラスミドDNAを、37℃でXbaIと共にインキュベートし、消化を完了させ、続いて、65℃でXbaIの熱不活性化を完了させることによって直鎖状化した。直鎖状化プラスミドを、酵素及び緩衝塩から精製した。Cas9修飾mRNAを生成するためのIVT反応物を、37℃で4時間、以下の条件でインキュベートした:50ng/μLの直鎖状化プラスミド、各2mMのGTP、ATP、CTP、及びN1-メチルシュードUTP(Trilink)、10mMのARCA(Trilink)、5U/μLのT7 RNAポリメラーゼ(NEB)、1U/μLのマウスRnase阻害剤(NEB)、0.004U/μLの無機E.coliピロホスファターゼ(NEB)、ならびに1倍反応緩衝液。TURBO Dnase(ThermoFisher)を、最終濃度が0.01U/μLになるように添加し、反応物をさらに30分間インキュベートしてDNAテンプレートを除去した。MegaClear Transcription Clean-upキットを使用し、製造者のプロトコル(ThermoFisher)に従って、Cas9 mRNAを精製した。あるいは、Cas9 mRNAをLiCl沈殿、酢酸アンモニウム沈殿、及び酢酸ナトリウム沈殿を使用して、またはLiCl沈殿法を使用して精製し、続いて、タンジェント流濾過によりさらなる精製を行った。転写物濃度を、260nmでの光吸光度を測定することによって決定し(Nanodrop)、転写物をBioanlayzer(Agilent)によるキャピラリー電気泳動によって分析した。
Cas9 mRNA及びgRNAを、3-((4,4-ビス(オクチルオキシ)ブタノイル)オキシ)-2-((((3-(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)メチル)プロピル(9Z,12Z)-オクタデカ-9,12-ジエノエート)とも呼ばれる、イオン性脂質((9Z,12Z)-3-((4,4-ビス(オクチルオキシ)ブタノイル)オキシ)-2-((((3-(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)メチル)プロピルオクタデカ-9,12-ジエノエート、コレステロール、DSPC、及びPEG2k-DMGを含む脂質製剤を利用して、細胞及び動物に送達した。
Hepa1-6細胞
Hepa1-6細胞を、96ウェルプレート中に10,000細胞/ウェルの密度で播種した。24時間後、細胞をLNP及びAAVで処理した。処理前に、培地をウェルから吸引した。LNPを、DMEM+10%FBS培地中で4ng/ulに希釈し、さらに、10%FBS(DMEM中)中で2ng/ulに希釈し、37℃で10分間(5%FBSの最終濃度で)インキュベートした。AAVの標的MOIは1e6であり、DMEM+10%FBS培地中で希釈した。2ng/ulで50μlの上記希釈LNPを細胞に添加し(合計100ngのRNAカーゴを送達する)、続いて、50μlのAAVを添加した。LNP及びAAVの処理は、数分間隔であった。細胞中の培地の総体積は100μlであった。処理後72時間及び処理後30日後、これらの処理した細胞からの上清を、以下に記載されるように、ヒトFIX ELISA分析のために収集した。
初代マウス肝細胞(PMH)、初代カニクイザル肝細胞(PCH)、及び初代ヒト肝細胞(PHH)を解凍し、追加物質(ThermoFisher)を含む肝細胞解凍培地に再懸濁させ、続いて、遠心分離した。上清を廃棄し、ペレット化細胞を肝細胞播種培地及びサプリメントパック(ThermoFisher)に再懸濁した。細胞を計数し、PHHについては33,000細胞/ウェル、PCHについては50,000細胞/ウェル、及びPMHについては15,000細胞/ウェルの密度でBio-coat collagen Iでコーティングした96ウェルプレート上に播種した。播種した細胞を、37℃及び5%CO2雰囲気での組織培養インキュベーター中で5時間放置し、接着させた。インキュベーション後、細胞を単層形成について調べ、肝細胞維持で3回洗浄し、37℃でインキュベートした。
細胞培地におけるNanoLuc検出を伴う実験では、1体積のNano-Glo(登録商標)ルシフェラーゼアッセイ基質を、50体積のNano-Glo(登録商標)ルシフェラーゼアッセイ緩衝液と組み合わせた。試料の1:10希釈(50μlの試薬+40μlの水+10μlの細胞培地)を使用して、0.5秒の積分時間でPromega Glomaxランナー上でアッセイを実行した。
マウスに、AAV、LNP、AAV及びLNPの両方、またはビヒクル(AAVビヒクルについてはPBS+0.001%Pluronic、LNPビヒクルについてはTSS)を、外側尾静脈を介して投与した。AAVを、本明細書に記載される量(ベクターゲノム/マウス、「vg/ms」)で、1匹あたり0.1mLの体積で投与した。LNPをTSS中で希釈し、本明細書に示される量で、約5μl/グラム体重で投与した。典型的には、マウスに、まずAAVを注射し、次いで、適用可能な場合、LNPを注射した。治療後の様々な時点で、以下にさらに説明されるように、ある特定の分析のために血清及び/または肝臓組織を収集した。
インビトロ研究では、細胞培地中に分泌される総ヒト第IX因子レベルを、製造者のプロトコルに従って、ヒト第IX因子ELISAキット(Abcam、カタログ番号ab188393)を使用して決定した。分泌hFIXレベルを、4パラメータロジスティックフィットを使用して標準曲線から定量化し、ng/mlの培地として表した。
ディープシーケンシングを利用して、遺伝子編集によって導入された挿入及び欠失(例えば、アルブミンのイントロン1内)の存在を同定した。標的部位の周りのPCRプライマーを設計し、目的のゲノム領域を増幅した。プライマー配列設計は、この分野で標準的に行われているように実施した。
BaseScope(ACDbio,Newark,CA)は、例えば、挿入導入遺伝子(hFIX)及び挿入部位からのコード配列(例えば、アルブミンのエクソン1)を含むハイブリッドmRNA転写産物において、エクソン接合部の特異的検出を提供することができる、特殊なRNA in situハイブリダイゼーション技術である。BaseScopeを使用して、ハイブリッドmRNAを発現する肝臓細胞のパーセンテージを測定した。
この実施例では、Hepa1-6細胞を培養し、Cas9 mRNA及びG000551を送達するLNPの存在下または不在下で、例えば、実施例1(n=3)に記載されるように、様々な形態のAAVを有する挿入テンプレート(例えば、一本鎖ゲノム(「ssAAV」)または自己相補性ゲノム(「scAAV」)のいずれかを有する)で処理した。AAV及びLNPを実施例1に記載されるように調製した。処理後、実施例1に記載されるように、培地をヒト第IX因子レベルについて収集した。
この実施例では、マウスを、実施例2でインビトロで試験されるのと同じプラスミド(P00123、P00204、及びP00147)に由来するAAVで処置した。投与物質を調製し、実施例1に記載されるように投与した。C57Bl/6マウスに、各々、3e11ベクターゲノム(vg/ms)、続いてG000551(「G551」)を含むLNPを4mg/kgの用量(総RNAカーゴ含有量に関して)で投与した(各群についてn=5)。投与後4週間で、動物を安楽死させ、それぞれ、編集及びhFIX発現のために、肝臓組織及び血清を収集した。
この実施例に記載される実験では、インビボで相同性アームをssAAVベクターに組み込む効果を調査した。
相同性アームを欠く双方向性構築物が他の配置を有するベクターを上回ることを実証したことにより、この実施例に記載される実験は、hFIXとアルブミンのエクソン1との間のハイブリッド転写産物を形成するために使用されるスプライスアクセプターを改変し、CRISPR/Cas9媒介性挿入を標的とするためのgRNAを改変する効果を調査した。これらの多様な双方向性構築物を、初代マウス肝細胞(PMH)におけるマウスアルブミンのイントロン1を標的とする20個の異なるgRNAを利用して、標的部位のパネルにわたって試験した。
この実施例で試験したssAAV及びLNPを調製し、実施例1に記載されるようにC57Bl/6マウスに送達して、インビボで標的部位にわたる双方向性構築物の性能を評価した。投与後4週間で、動物を安楽死させ、それぞれ、編集及びhFIX発現のために、肝臓組織及び血清を収集した。
この実施例では、双方向性hFIX構築物を含むssAAVの送達とLNPの送達との間のタイミングを、C57Bl/6マウスにおいて調査した。
この実施例では、ssAAVの投与後のLNPの反復投与の効果を調査した。
この実施例では、処置された動物における経時的なhFIX発現の耐久性を評価した。この目的のために、1年間の耐久性研究の一部として、投与後の処置された動物の血清においてhFIXを測定した。
この実施例では、hFIXの発現を調節するためのAAV及びLNPの両方の用量を変化させる効果をC57Bl/6マウスにおいて評価した。
この実施例では、双方向性構築物を含むssAAVベクターを、それぞれ、初代カニクイザル(PCH)及び初代ヒト肝細胞(PHH)におけるカニクイザル(「cyno」)及びヒトアルブミンのイントロン1を標的とするgRNAを利用して、標的部位のパネルにわたって試験した。
この実施例では、代替セーフハーバー遺伝子座における双方向性hFIX構築物を含むssAAVの挿入を評価した。代替セーフハーバー遺伝子座への挿入を試験するために、AAVを上述のように調製した。マウスに、3e11vg/マウスの用量でAAVを投与した後、直ちにCas9 mRNA及びガイドRNAと共に製剤化されたLNPを、0.3mg/kgの用量で投与した。投与後4週間で動物を屠殺し、肝臓及び血液試料を収集した。NGSにより、肝臓試料中の編集を決定した。血清中のヒトhFIXレベルをELISAによって決定した。NGS及びELISAデータは、代替セーフハーバー遺伝子座内のhFIXの効果的な挿入及び発現を示した。
この実施例では、様々なガイドを含むアデノ随伴ウイルス(AAV)及び/または脂質ナノ粒子(LNP)の投与によるカニクイザルにおけるヒト第IX因子遺伝子挿入及びhFIXタンパク質発現を評価するために、8週間の研究を行った。この研究は、上述のように調製されたLNP製剤及びAAV製剤で実施された。各LNP製剤は、2:1のmRNA:gRNAの重量比で、Cas9 mRNA及びガイドRNA(gRNA)を含んでいた。ssAAVは、P00147に由来した。
この実施例では、P00147に由来するssAAV及び/またはG009860を含む様々なガイド及び様々なLNP成分を含むCRISPR/Cas9脂質ナノ粒子(LNP)の投与後の、カニクイザルにおける第IX因子遺伝子挿入及びhFIXタンパク質発現を評価するための研究を行った。
生化学的方法(例えば、Cameron et al.,Nature Methods.6、600-606;2017を参照されたい)を使用して、アルブミンを標的とするCas9によって切断される潜在的なオフターゲットゲノム部位を決定した。この実験では、ヒトアルブミンを標的とする13個のsgRNAと、既知のオフターゲットプロファイルを有する2個の対照ガイドを、単離されたHEK293ゲノムDNAを使用してスクリーニングした。生化学アッセイにおいて16nMのガイド濃度を使用して検出される潜在的なオフターゲット部位の数を表27に示した。このアッセイは、試験したsgRNAについての潜在的なオフターゲット部位を特定した。
ヒトアルブミン遺伝子座へのhF9挿入のための効果的なガイドRNAを同定することを目的とした。この目的のために、マウスアルブミン遺伝子座が第1のイントロンを含む対応するヒトアルブミンゲノム配列で置き換えられたマウスを利用した(ALBhu/huマウス)。これにより、インビボでの成人肝臓の状況におけるヒトアルブミンの第1のイントロンを標的とするガイドRNAの挿入効率を試験することが可能になった。ALBhu/huマウスを使用して、合計11個のガイドRNAをスクリーニングするために、各々がヒトアルブミン遺伝子座の第1のイントロンを標的とする、2個の別々のマウス実験を設定した。全てのマウスを体重測定し、実験の0日目に尾静脈を介して注射した。1週目、3週目、4週目、及び6週目に尾部出血を介して血液を収集し、血漿を分離した。マウスを7週目に屠殺した。大静脈を介して血液を収集し、血漿を分離した。肝臓及び脾臓も解剖した。
次の研究のために、挿入hF9の機能性を、雄ALBms/hu×F9-/-マウスで試験した。Cas9 mRNA及び以下のガイドを含むLNPを、実施例1のように調製し、試験した:G009860(ヒトアルブミン遺伝子座の第1のイントロンを標的とする)、及びG000666(マウスアルブミン遺伝子座の第1のイントロンを標的とする)。G009860を0.3mg/kgに希釈し、G000666を1.0mg/kgに希釈し(平均重量31.2グラムを使用して)、その両方を、マウスあたり3E11ウイルスゲノムの用量で双方向性hF9挿入テンプレートでパッケージングしたAAV8と同時注射した。群あたり、5匹のALBms/hu×F9-/-雄マウス(16週齢)に注射した。同じコホートの5匹のマウスに、hF9に作動可能に連結されたCAGGプロモーターをパッケージングしたAAV8を注射し、これは、hF9のエピソーム発現をもたらす(マウスあたり3E11ウイルスゲノムで)。緩衝液のみまたは双方向性hF9挿入テンプレートでパッケージングしたAAV8のみを注射された群あたり1匹のマウスと、それぞれ、0.3mg/kg及び1.0mg/kgでLNP-G009860またはLNP-G000666のみを注射された群あたり2匹のマウスとを含む6匹の陰性対照動物が存在した。
Claims (143)
- 第IX因子核酸を細胞または細胞集団に導入する方法であって、
i)第IX因子タンパク質コード配列を含む核酸構築物と、
ii)RNAガイドDNA結合剤と、
iii)
a)配列番号2、8、13、19、28、29、31、32、及び33からなる群から選択される配列と少なくとも95%、90%、85%、80%、または75%同一である配列、
b)配列番号2、8、13、19、28、29、31、32、及び33からなる群から選択される配列の少なくとも17、18、19、または20個の連続ヌクレオチド、
c)配列番号34、40、45、51、60、61、63、64、65、66、72、77、83、92、93、95、96、及び97からなる群から選択される配列、
d)配列番号2~33からなる群から選択される配列と少なくとも95%、90%、85%、80%、または75%同一である配列、
e)配列番号2~33からなる群から選択される配列の少なくとも17、18、19、または20個の連続ヌクレオチド、
f)配列番号34~97からなる群から選択される配列、
g)配列番号98~119からなる群から選択される配列と少なくとも95%、90%、85%、80%、または75%同一である配列、
h)配列番号98~119からなる群から選択される配列の少なくとも17、18、19、または20個の連続ヌクレオチド、及び
i)配列番号120~163からなる群から選択される配列、ならびに
j)表2、表7、及び表8の配列番号からなる群から選択される配列、から選択される配列を含むガイドRNA(gRNA)と、を投与することを含み、
それにより、前記第IX因子核酸を前記細胞または前記細胞集団に導入する、前記方法。 - 細胞または細胞集団において第IX因子を発現する方法であって、
i)第IX因子タンパク質コード配列を含む核酸構築物と、
ii)RNAガイドDNA結合剤と、
iii)
a)配列番号2、8、13、19、28、29、31、32、及び33からなる群から選択される配列と少なくとも95%、90%、85%、80%、または75%同一である配列、
b)配列番号2、8、13、19、28、29、31、32、及び33からなる群から選択される配列の少なくとも17、18、19、または20個の連続ヌクレオチド、
c)配列番号34、40、45、51、60、61、63、64、65、66、72、77、83、92、93、95、96、及び97からなる群から選択される配列、
d)配列番号2~33からなる群から選択される配列と少なくとも95%、90%、85%、80%、または75%同一である配列、
e)配列番号2~33からなる群から選択される配列の少なくとも17、18、19、または20個の連続ヌクレオチド、
f)配列番号34~97からなる群から選択される配列、
g)配列番号98~119からなる群から選択される配列と少なくとも95%、90%、85%、80%、または75%同一である配列、
h)配列番号98~119からなる群から選択される配列の少なくとも17、18、19、または20個の連続ヌクレオチド、ならびに
i)配列番号120~163からなる群から選択される配列、
l)表2、表7、及び表8の配列番号からなる群から選択される配列、から選択される配列を含むガイドRNA(gRNA)と、を投与することを含み、
それにより、細胞または細胞集団において第IX因子を発現する、前記方法。 - 前記投与が、インビトロである、請求項1または2に記載の方法。
- 前記gRNAが、
a)配列番号2、8、13、19、28、29、31、32、33からなる群から選択される配列と少なくとも95%、90%、85%、80%、または75%同一である配列、
b)配列番号2、8、13、19、28、29、31、32、33からなる群から選択される配列の少なくとも17、18、19、または20個の連続ヌクレオチド、
c)配列番号34、40、45、51、60、61、63、64、65、66、72、77、83、92、93、95、96、及び97からなる群から選択される配列、
d)配列番号2~33からなる群から選択される配列と少なくとも95%、90%、85%、80%、または75%同一である配列、
e)配列番号2~33からなる群から選択される配列の少なくとも17、18、19、または20個の連続ヌクレオチド、及び
f)配列番号34~97からなる群から選択される配列、から選択される配列を含むガイド配列を含む、請求項1~3のいずれか1項に記載の方法。 - 前記核酸構築物が、核酸ベクター及び/または脂質ナノ粒子中で投与される、請求項1~4のいずれか1項に記載の方法。
- 前記RNAガイドDNA結合剤が、Cas9またはCas9をコードする核酸である、請求項1~5のいずれか1項に記載の方法。
- 前記RNAガイドDNA結合剤が、前記RNAガイドDNA結合剤をコードする核酸である、請求項1~6のいずれか1項に記載の方法。
- 前記RNAガイドDNA結合剤をコードする前記核酸が、mRNAである、請求項7に記載の方法。
- 前記mRNAが、修飾mRNAである、請求項8に記載の方法。
- 前記RNAガイドDNA結合剤、及び/またはgRNAが、核酸ベクター及び/または脂質ナノ粒子中で投与される、請求項1~9のいずれか1項に記載の方法。
- 前記核酸ベクターが、ウイルスベクターである、請求項5~10のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ウイルスベクターが、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクター、アデノウイルスベクター、レトロウイルスベクター、及びレンチウイルスベクターからなる群から選択される、請求項11に記載の方法。
- 前記AAVベクターが、AAV1、AAV3、AAV4、AAV5、AAV6、AAV8、AAV-DJ、及びAAV2/8からなる群から選択される、請求項12に記載の方法。
- 前記ウイルスベクターが、AAVベクターである、請求項13または14に記載の方法。
- 前記核酸構築物、RNAガイドDNA結合剤、及びgRNAが、任意の順序及び/または任意の組み合わせで逐次的に投与される、請求項1~14のいずれか1項に記載の方法。
- 前記核酸構築物、RNAガイドDNA結合剤、及びgRNAが、個々にまたは任意の組み合わせで、同時に投与される、請求項1~14のいずれか1項に記載の方法。
- 前記RNAガイドDNA結合剤、または組み合わせたRNAガイドDNA結合剤及びgRNAが、前記核酸構築物を投与する前に投与される、請求項1~16のいずれか1項に記載の方法。
- 前記核酸構築物が、前記gRNA及び/またはRNAガイドDNA結合剤を投与する前に投与される、請求項1~17のいずれか1項に記載の方法。
- 前記RNAガイドDNA結合剤が、Casヌクレアーゼである、請求項1~18のいずれか1項に記載の方法。
- 前記Casヌクレアーゼが、クラス2のCasヌクレアーゼである、請求項19に記載の方法。
- 前記Casヌクレアーゼが、Cas9である、請求項19または20に記載の方法。
- 前記Casヌクレアーゼが、S.pyogenes Cas9ヌクレアーゼである、請求項21に記載の方法。
- 前記Casヌクレアーゼが、部位特異的DNA結合活性を有する、請求項19~22のいずれか1項に記載の方法。
- 前記Casヌクレアーゼが、ニッカーゼである、請求項19~23のいずれか1項に記載の方法。
- 前記Casヌクレアーゼが、クリベースである、請求項19~23のいずれか1項に記載の方法。
- 前記Casヌクレアーゼが、ニッカーゼまたはクリベース活性を有しない、請求項19~23のいずれか1項に記載の方法。
- 前記核酸構築物が、双方向性核酸構築物である、請求項1~26のいずれか1項に記載の方法。
- 前記核酸構築物が、相同性非依存性ドナー構築物である、先行請求項のいずれかに記載の方法。
- 前記核酸構築物が、一本鎖または二本鎖である、請求項1~28のいずれか1項に記載の方法。
- 前記核酸構築物が、一本鎖DNAまたは二本鎖DNAである、請求項1~29のいずれか1項に記載の方法。
- 前記双方向性構築物が、前記第IX因子タンパク質の発現を促進するプロモーターを含まない、請求項1~30のいずれか1項に記載の方法。
- 前記細胞または細胞集団が、異種シグナルペプチドで第IX因子を発現する、請求項1~31のいずれか1項に記載の方法。
- 前記細胞または細胞集団が、アルブミンシグナルペプチドで第IX因子を発現する、請求項32に記載の方法。
- 前記細胞または細胞集団が、任意に異種ペプチドと組み合わせて、第IX因子シグナルペプチドで第IX因子を発現する、請求項1~33のいずれか1項に記載の方法。
- 前記細胞または細胞集団が、肝臓細胞であるか、または肝臓細胞を含む、請求項1~34のいずれか1項に記載の方法。
- 前記肝臓細胞が、肝細胞である、請求項35に記載の方法。
- 前記核酸が、野生型第IX因子タンパク質をコードする、請求項1~36のいずれか1項に記載の方法。
- 前記核酸が、変異体第IX因子タンパク質をコードする、請求項1~36のいずれか1項に記載の方法。
- 前記核酸が、変異R338Lを有する第IX因子タンパク質をコードする、請求項38に記載の方法。
- 第IX因子核酸を細胞または細胞集団に導入する方法であって、第IX因子タンパク質コード配列を含む双方向性核酸構築物を前記細胞または細胞集団に投与することを含み、それにより、前記細胞または細胞集団において第IX因子を発現する、前記方法。
- 細胞または細胞集団において第IX因子を発現する方法であって、第IX因子タンパク質コード配列を含む双方向性核酸構築物を前記細胞または細胞集団に投与することを含み、それにより、前記細胞または細胞集団において第IX因子を発現する、前記方法。
- 前記双方向性核酸構築物が、
a)第IX因子のコード配列を含む第1のセグメント、及び
b)第IX因子のコード配列の逆相補体を含む第2のセグメントを含み、
前記構築物が、前記第IX因子の発現を促進するプロモーターを含まない、請求項40または41に記載の方法。 - 前記双方向性核酸構築物が、前記第IX因子のコード配列の上流にスプライスアクセプターを含む、請求項27~42のいずれか1項に記載の方法。
- 例えば、RNAガイドDNA結合剤をコードする核酸として、RNAガイドDNA結合剤を投与することをさらに含む、請求項40~43のいずれか1項に記載の方法。
- gRNAを投与することをさらに含む、請求項40~44のいずれか1項に記載の方法。
- 前記双方向性核酸構築物が、核酸ベクター及び/または脂質ナノ粒子中で投与される、請求項40~45のいずれか1項に記載の方法。
- 前記RNAガイドDNA結合剤が、核酸ベクター及び/または脂質ナノ粒子中で投与される、請求項40~46のいずれか1項に記載の方法。
- 前記gRNAが、核酸ベクター及び/または脂質ナノ粒子中で投与される、請求項40~47のいずれか1項に記載の方法。
- 前記核酸ベクターが、ウイルスベクターである、請求項46~48のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ウイルスベクターが、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクター、アデノウイルスベクター、レトロウイルスベクター、及びレンチウイルスベクターからなる群から選択される、請求項49に記載の方法。
- 前記AAVベクターが、AAV1、AAV3、AAV4、AAV5、AAV6、AAV8、AAV-DJ、及びAAV2/8からなる群から選択される、請求項50に記載の方法。
- 前記ウイルスベクターが、AAVベクターである、請求項50または51に記載の方法。
- 前記双方向性核酸構築物、RNAガイドDNA結合剤、及びgRNAが、任意の順序及び/または任意の組み合わせで逐次的に投与される、請求項40~52のいずれか1項に記載の方法。
- 前記双方向性核酸構築物、RNAガイドDNA結合剤、及びgRNAが、任意の組み合わせで、同時に投与される、請求項40~52のいずれか1項に記載の方法。
- 前記RNAガイドDNA結合剤、または組み合わせたRNAガイドDNA結合剤及びgRNAが、前記双方向性核酸構築物を投与する前に投与される、請求項40~53のいずれか1項に記載の方法。
- 前記双方向性核酸構築物が、前記gRNA及び/またはRNAガイドDNA結合剤を投与する前に投与される、請求項40~53のいずれか1項に記載の方法。
- 前記双方向性核酸構築物、RNAガイドDNA結合剤、及びgRNAが、任意の組み合わせで、互いに1時間以内に投与される、請求項40~56のいずれか1項に記載の方法。
- 前記双方向性構築物が、前記第IX因子タンパク質の発現を促進するプロモーターを含まない、請求項40~57のいずれか1項に記載の方法。
- 前記双方向性構築物が、一本鎖または二本鎖である、請求項40~58のいずれか1項に記載の方法。
- 前記核酸構築物が、一本鎖DNAまたは二本鎖DNAである、請求項40~59のいずれか1項に記載の方法。
- 前記gRNAが、配列番号2~33からなる群から選択される配列の少なくとも17、18、19、もしくは20個の連続ヌクレオチド、または配列番号2~33からなる群から選択される配列と少なくとも95%、90%、85%、80%、もしくは75%同一である配列を含む、請求項40~60のいずれか1項に記載の方法。
- 第IX因子核酸を細胞または細胞集団に導入する方法であって、
i)第IX因子タンパク質コード配列を含む双方向性核酸構築物と、
ii)RNAガイドDNA結合剤と、
iii)セーフハーバー遺伝子座を標的とする配列を含むガイドRNA(gRNA)と、を投与することを含み、
それにより、前記第IX因子核酸を前記細胞または前記細胞集団に導入する、前記方法。 - 細胞または細胞集団において第IX因子を発現する方法であって、
i)第IX因子タンパク質コード配列を含む双方向性核酸構築物と、
ii)RNAガイドDNA結合剤と、
iii)前記細胞または細胞集団においてセーフハーバー遺伝子座を標的とする配列を含むガイドRNA(gRNA)と、を投与することを含み、
それにより、前記細胞または細胞集団において第IX因子を発現する、前記方法。 - 前記投与が、インビトロである、請求項62または63に記載の方法。
- 前記投与が、インビボである、請求項62または63に記載の方法。
- 前記gRNAが、配列番号2~33からなる群から選択される配列の少なくとも17、18、19、もしくは20個の連続ヌクレオチド、または配列番号2~33からなる群から選択される配列と少なくとも95%、90%、85%、80%、もしくは75%同一である配列を含む、請求項62~65のいずれか1項に記載の方法。
- 細胞において第IX因子を発現するのに使用するための組成物であって、
i)第IX因子タンパク質コード配列を含む核酸構築物と、
ii)RNAガイドDNA結合剤と、
iii)配列番号2~33からなる群から選択されるガイド配列、または配列番号2~33からなる群から選択される配列と少なくとも95%、90%、85%、80%、または75%同一である配列を含むガイドRNA(gRNA)と、を含む、前記組成物。 - 前記RNAガイドDNA結合剤が、RNAガイドDNA結合剤をコードする核酸である、請求項40~67のいずれか1項に記載の方法または組成物。
- 前記RNAガイドDNA結合剤が、Casヌクレアーゼである、請求項40~68のいずれか1項に記載の方法または組成物。
- 前記Casヌクレアーゼが、Casヌクレアーゼをコードする核酸である、請求項69に記載の方法または組成物。
- 前記RNAガイドDNA結合剤が、CasヌクレアーゼをコードするmRNAである、請求項40~69のいずれか1項に記載の方法または組成物。
- 前記mRNAが、修飾mRNAである、請求項71に記載の方法または組成物。
- 前記Casヌクレアーゼが、クラス2のCasヌクレアーゼである、請求項69~72のいずれか1項に記載の方法または組成物。
- 前記Casヌクレアーゼが、Cas9である、請求項69~73のいずれか1項に記載の方法または組成物。
- 前記Casヌクレアーゼが、S.pyogenesヌクレアーゼ、S.aureusヌクレアーゼ、C.jejuniヌクレアーゼ、S.thermophilusヌクレアーゼ、N.meningitidisヌクレアーゼ、及びそれらのバリアントからなる群から選択される、請求項69~74のいずれか1項に記載の方法または組成物。
- 前記Casヌクレアーゼが、S.pyogenes Cas9ヌクレアーゼまたはそのバリアントである、請求項75に記載の方法または組成物。
- 前記Casヌクレアーゼが、部位特異的DNA結合活性を有する、請求項69~76のいずれか1項に記載の方法または組成物。
- 前記Casヌクレアーゼが、ニッカーゼである、請求項69~77のいずれか1項に記載の方法または組成物。
- 前記Casヌクレアーゼが、クリベースである、請求項69~77のいずれか1項に記載の方法または組成物。
- 前記Casヌクレアーゼが、ニッカーゼまたはクリベース活性を有しない、請求項69~77のいずれか1項に記載の方法。
- 細胞または細胞集団において第IX因子を発現するのに使用するための組成物であって、第IX因子タンパク質コード配列を含む双方向性核酸構築物を含む、前記組成物。
- 先行請求項のいずれかに記載の方法によってまたは組成物を使用して作製された宿主細胞。
- 前記宿主細胞が、肝臓細胞である、請求項82に記載の宿主細胞。
- 前記宿主細胞が、非分裂細胞型である、請求項82または83に記載の宿主細胞。
- 前記宿主細胞が、前記双方向性構築物によってコードされる前記第IX因子ポリペプチドを発現する、請求項82~84のいずれか1項に記載の宿主細胞。
- 前記宿主細胞が、肝細胞である、請求項82~85のいずれか1項に記載の宿主細胞。
- 前記gRNAが、配列番号401を含む、先行請求項のいずれかに記載の方法、組成物、または宿主細胞。
- 第IX因子欠乏症を治療する方法であって、前記第IX因子欠乏症を有する個体に、
i)第IX因子タンパク質コード配列を含む双方向性核酸構築物と、
ii)RNAガイドDNA結合剤またはRNAガイドDNA結合剤をコードする配列と、
iii)セーフハーバー遺伝子座を標的とする配列を含むガイドRNA(gRNA)と、を投与することを含み、
それにより、前記個体において前記第IX因子タンパク質を発現する、前記方法。 - 治療有効量の前記第IX因子タンパク質を発現することを含む、請求項88に記載の方法。
- 前記個体において治療有効レベルの循環第IX因子凝固活性を達成することを含む、請求項88または89に記載の方法。
- 前記個体が、ヒトである、請求項88~90のいずれか1項に記載の方法。
- 正常の少なくとも約1%、例えば、正常の少なくとも約5%の循環FIX活性またはFIXタンパク質レベルを達成することをさらに含む、請求項88~91のいずれか1項に記載の方法。
- 前記循環FIX活性またはFIXタンパク質レベルが、正常の約150%未満である、請求項88~92のいずれか1項に記載の方法。
- 正常の少なくとも約1%~約150%の循環FIX活性またはFIXタンパク質レベルを達成することをさらに含む、請求項88~93のいずれか1項に記載の方法。
- 前記個体のベースラインFIX活性を上回る、正常FIX活性の少なくとも約1%のFIX活性の増加を達成することをさらに含む、請求項88~94のいずれか1項に記載の方法。
- 前記個体のベースラインFIX活性を上回る、正常FIX活性の少なくとも約50%のFIX活性の増加を達成することをさらに含む、請求項88~95のいずれか1項に記載の方法。
- 前記個体において、持続的かつ長期的な効果、例えば、少なくとも1ヶ月、2ヶ月、6ヶ月、1年、または2年の効果を達成することをさらに含む、請求項88~96のいずれか1項に記載の方法。
- 前記個体の循環アルブミンレベルが、前記双方向性核酸構築物の投与から少なくとも1ヶ月、2ヶ月、6ヶ月、または1年後に正常である、請求項88~97のいずれか1項に記載の方法。
- 前記個体の循環アルブミンレベルが、前記双方向性核酸構築物の投与から4週間後で維持される、請求項88~99のいずれか1項に記載の方法。
- 前記個体の循環アルブミンレベルが一時的に低下し、次いで、正常に戻る、請求項88~99のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ガイドRNAが、配列番号2~33からなる群から選択される配列の少なくとも17、18、19、または20個の連続ヌクレオチドを含む、請求項88~100のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ガイドRNAが、配列番号2~33からなる群から選択される配列と少なくとも95%、90%、85%、80%、または75%同一である配列を含む、請求項88~101のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ガイドRNAが、配列番号2~33からなる群から選択される配列を含む、請求項88~102のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ガイドRNAが、配列番号401または402を含む、先行請求項のいずれかに記載の方法、組成物、または宿主細胞。
- 前記第IX因子が、ヒト第IX因子である、先行請求項のいずれかに記載の方法、組成物、または宿主細胞。
- 前記第IX因子が、組換えヒト第IX因子である、先行請求項のいずれかに記載の方法、組成物、または宿主細胞。
- 前記第IX因子が、第IX因子の機能亢進型バリアントである、先行請求項のいずれかに記載の方法、組成物、または宿主細胞。
- 前記第IX因子が、R338で置換を含むヒト第IX因子バリアントである、先行請求項のいずれかに記載の方法、組成物、または宿主細胞。
- 個体における第IX因子欠乏症の治療のための、先行請求項のいずれかに記載の組成物または構築物の使用。
- 個体における血友病Bの治療のための、先行請求項のいずれかに記載の組成物または構築物の使用。
- 前記ガイドRNAが、配列番号2の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号3の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号4の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号5の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号6の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号7の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号8の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号9の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号10の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号11の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号12の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号13の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号14の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号15の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号16の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号17の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号18の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号19の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号20の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号21の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号22の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号23の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号24の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号25の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号26の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号27の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号28の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号29の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号30の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号31の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号32の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号33の核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
- 前記ガイドRNAが、配列番号2~5、10~17、21~27、及び29~33からなる群からの核酸配列を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法及び組成物。
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