JP2020509752A - 網膜疾患のためのリボスイッチ調節遺伝子治療 - Google Patents

網膜疾患のためのリボスイッチ調節遺伝子治療 Download PDF

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Abstract

本発明は、対象内のトランスジーンの発現を制御するための改変リボスイッチを含むコンストラクトを提供する。疾患(特に眼疾患)を治療する方法も企図される。【選択図】図1

Description

関連出願の相互参照
本出願は、2017年3月10日に出願された米国仮出願第62/469,705号の優先権を主張し、その内容全体が参照により組み込まれる。
連邦政府による資金提供を受けた研究に関する声明
N/A
加齢黄斑変性症(AMD)と緑内障は、世界的に視力喪失の主な原因である。AMDは、50歳以上の人によく見られる眼疾患である。AMDでは、黄斑、即ち、網膜の中心付近の数百万の光感知細胞、及びシャープ、中心視野、並びに正面の物体を見る能力に必要な眼の部分で構成される小領域に損傷がある。黄斑の損傷は、ドルーゼンと呼ばれる沈着物の形成、場合によっては網膜における異常な血管の成長によって引き起こされる。
緑内障は、眼の視神経が損傷して視力喪失や失明をもたらす疾患のグループである。緑内障の特徴は、体液(房水)の蓄積に関連した眼圧の増加である。一部の患者は疾患が遺伝的である。他の患者では、眼の炎症が緑内障に関与すると考えられている。
AMDも緑内障も予防することができない。症状や視力低下のない早期AMDの治療法はない。進行AMDは生物製剤で治療される。緑内障はしばしばプロスタグランジン点眼薬で治療される。現在の治療は侵襲的で高価であり、患者とクリニックに負担がかかり、毎月の点眼(AMD)又は毎日の点眼投与が必要である。
眼の遺伝子治療は、遺伝性網膜疾患の患者の生活の質を大幅に改善する可能性がある。いくつかの要因により、眼は遺伝子置換療法の理想的な器官になる。眼はアクセスしやすく、区画化された特権的な部位である。これは、免疫学的に、炎症性免疫応答を誘発することなく、眼が外来蛋白質/抗原の導入に耐え得ることを意味する。臨床試験では、対照コントロールを活用できる。このため、眼疾患の遺伝子治療が開発されている。
これに関し、組換えアデノ随伴ウィルス(rAAV)ベクターは、網膜疾患の遺伝子治療を媒介するための有望なツールとして登場した。ベクター送達後の遺伝子発現レベルを効果的にコントロールすることは、潜在的な遺伝子治療の成功にとって最も重要であり、治療用トランスジーンのコントロールされない過剰発現は、毒性を引き起こし得る。従来、誘導性プロモーターシステムが採用されてきた。残念ながら、AAVのコーディング容量が限られ、且つそのようなシステムを効果的に機能させるために必要な制御エレメントのサイズが大きいため、従来のプロモーターを含めることは実現可能ではない。
リボスイッチは代替可能な選択肢である。リボスイッチは、小さな標的分子に結合し且つ標的とする、mRNA分子の特異的な制御コンポーネントであり、それにより、リボスイッチを含むmRNAの蛋白質産物の発現をシス様式で制御する。従って、リボスイッチを含むmRNAは、その標的分子の濃度に応じて、自身の活性の制御に直接関与している。いくつかのリボスイッチは「自己標的」であり、それは自身の発現を制御できることを意味する。このスイッチには、相互に排他的な2つの二次構造の1つに適合できるRNAエレメントが含まれる。これらの構造の1つは遺伝子発現が「オン」になるシグナルであり、もう1つの立体構造は遺伝子を「オフ」にする。
しかしながら、遺伝子発現をオン又はオフにするために「スイッチを切り替える」には、しばしば毒性濃度のリガンドが必要である。従って、本研究の目標は、これらの制御デバイスの効率、改善された制御パラメーター、及び臨床適用性を改善することである。本発明の主題は、眼の遺伝子治療で使用するための網膜における遺伝子発現をオン又はオフにすることができるリボスイッチである。
本発明は、遺伝子サイレンシングの二重機構により機能する改変リボスイッチを使用してトランスジーンの発現を制御するコンストラクト、キット、及び方法を提供することにより、前述の欠点を克服する。本発明は、遺伝子サイレンシングのための二重機構により、従来のリボスイッチに比べて独特で改善されたデザインを提供し、それによりトランスジーンの発現のより良いコントロールを可能にする。本明細書では、リガンドの存在下で遺伝子発現の増加を媒介するオン型スイッチである自己標的リガンド不活性化マイクロRNA(SLIM)スイッチを含む、新規改変リボスイッチについてより詳細に説明する。AMDを治療するための本技術を使用した組成物、及び方法を本明細書で提供する。具体的には、トランスジーン(例えば、VEGF阻害剤)の発現を断続的に切り替えるために、このSLIMスイッチを使用できる。SLIMスイッチのさらなる実施形態では、緑内障の治療に使用できる。この技術の組成物、及び使用方法は、緑内障の治療を企図しており、患者の眼のプロスタグランジンの発現を断続的にオフにするか、減少させるために有益であろう。
本発明の前述並びに他の態様及び利点は、以下で詳述される。説明の際には、本明細書の一部を形成する添付図面を参照し、例示として、本発明の好ましい実施形態が示される。そのような実施形態は必ずしも本発明の全範囲を表すものではなく、従って、本発明の範囲を解釈するためには特許請求の範囲及び本明細書が参照される。
本特許又は出願には、カラーで作成された少なくとも1つの図面が含まれている。カラー図面を含む本特許又は特許出願公開のコピーは、請求及び必要な料金の支払いに応じて、国際事務局(the Office)によって提供される。
図1は、オフスイッチとオンスイッチのリボスイッチを示す概略図である。 図2Aは、pri−miRNAとアプタマーを使用したSLIMスイッチ(例えば、スイッチャブルmiRNA)の開発を表す概略図である。 図2Bは、リガンドを使用した場合と使用しない場合のSLIMスイッチのデザインと機能を示す概略図である。 図2Cは、改変スイッチ(smiRNA)及び標的miRNA配列(miRT)を有する、アフリベルセプト(VEGF阻害剤)をコードするrAAVベクターを表す概略図である。 図3Aは、SLIMスイッチのデザインに使用できるオン型アプタマーの概略図である。 図3Bは、SLIMスイッチのデザインに使用できるオン型アプタマーの概略図である。 図4は、Theo−SLIMコンストラクトのコンポーネントを示す。 図5は、アフリベルセプト(VEGF阻害剤)、Theo−SLIM、及び3つのmiRNA標的サイトを含む例示的なコンストラクトの配列である。 図6Aは、感染から4週間後のマウスの網膜におけるGFP発現を示す蛍光イメージングである。C57BL6/Jマウスに1.0x1010ベクターゲノム(vg)のrAAV2.smCBA−hGFP−3x−L2Bulgeを硝子体内注射した。図6Bは、10mg/kgのテオフィリン(活性化リガンド)で強制経口投与2時間後のGFPの蛍光イメージングである。 図7は、SLIMスイッチの使用時の応答案であり(恒常的にトランスジーンオフ)、リガンドの毎月の投与がトランスジーン(例えば、アフリベルセプト)の発現レベルの急上昇をもたらすことを示している。 図8Aは、各リボスイッチの最適コピー数を決定するための試験プロトコルの概略図である。 図8Bは、各リボスイッチのダイナミックレンジを評価するための試験プロトコルの概略図である。 図9Aは、L2Bulge18tcリボスイッチコンストラクトのmRNAの概略図である。 図9Bは、L2Bulge18tcリボスイッチの異なるコピー数での、トランスジーン(GFP)の発現レベルの結果を示す棒グラフである。 図9Cは、L2Bulge18tcリボスイッチの3つのコピーを含むコンストラクトのダイナミックレンジを示す折れ線グラフである。 図9Dは、0〜100μMのテトラサイクリンで処理した細胞の蛍光イメージングである。 図10Aは、K19リボスイッチを含むコンストラクトのmRNAの概略図である。 図10Bは、K19リボスイッチの異なるコピー数での、トランスジーンの発現レベルの結果を示す棒グラフである。 図10Cは、K19リボスイッチの最適コピー数のダイナミックレンジを示す折れ線グラフである。 図10Dは、図10AのK19リボスイッチコンストラクトで形質導入された0〜100μMのテトラサイクリンで処理された細胞の蛍光イメージングである。 図11Aは、L2Bulge9リボスイッチを含むコンストラクトのmRNAを示す。 図11Bは、L2Bulge9リボスイッチの異なるコピー数での、トランスジーンの発現レベルの結果を示す棒グラフである。 図11Cは、L2Bulge9リボスイッチの最適コピー数のダイナミックレンジを示す折れ線グラフである。 図11Dは、図11AのL2Bulge9リボスイッチコンストラクトで形質導入された0〜100μMのテオフィリンで処理された細胞の蛍光イメージングである。 図12Aは、テトラサイクリンSLIMスイッチ(オン型スイッチ)を含むコンストラクトのmRNAを示す。 図12Bは、図12Aのtet−SLIMスイッチのダイナミックレンジを示す。 図12Cは、図12Aのtet−SLIMスイッチコンストラクトで形質導入された0〜100μMのテトラサイクリンで処理された細胞の蛍光イメージングである。 図13Aは、テオフィリンSLIMスイッチ(オン型スイッチ)を含むコンストラクトのmRNAを示す。 図13Bは、図13Aのtheo−SLIMスイッチのダイナミックレンジを示す。 図13Cは、図13Aのtheo−SLIMスイッチコンストラクトで形質導入された0〜100μMのテオフィリンで処理された細胞の蛍光イメージングである。 図14A〜14Lは、CNV病変の代表的なフルオレセインアンジオグラフィーイメージである。CNV病変からの漏出は、レーザー損傷の7日後に評価した。(A−C)rAAV2[MAX].smCBA−Eylea、(D−F)rAAV2[MAX].smCBA−Eylea−1x−TC45+標準飼料、(G−I)rAAV2[MAX].smCBA−Eylea−1x−TC45+テトラサイクリン飼料、又はPBSのいずれかを注射したマウスのフルオレセイン注射の5分後に撮影した代表的なFAイメージである(n=グループあたり16〜20病変)。レーザー損傷の部位を示す赤い矢印の付いたグループごとの3匹のマウスの画像である。 図15A〜15Bは、眼内のアイリーア濃度がCNV病変の重症度と強く相関していることを示している。(A)盲検化された3人の科学者が別々に分類分けした病変の分布である(グループあたりN=16〜20病変、p<0.0001、カイ2乗検定)。(B)ELISAでアッセイした非複合体アイリーアの眼内レベル(グループあたりN=5眼)。 図16は、組換えVEGF阻害剤cDNA(配列番号18)の配列、及びSLIMアイリーアを含む完全なAAVベクター(配列番号19)の例である。 図16−2は、図16−1の続きである。 図17A〜17Cは、6S−フォリン酸応答性SLIM(A)(配列番号21)、テオフィリン応答性SLIM(B)(配列番号26)、及びテトラサイクリン応答性SLIM(C)(配列番号31)の概略図である。 図18は、6−S−フォリン酸応答性miRNAスイッチ(アイリーアCDS標的)(配列番号21〜25)、テオフィリン応答性miRNAスイッチ(アイリーアCDS標的)(配列番号26〜30)、テトラサイクリン応答性miRNAスイッチ(アイリーアCDSターゲット)(配列番号31〜35)、及びAMDを治療するためにSLIMスイッチと併用できる可溶性fms様チロシンキナーゼ1(sFLT1)VEGF阻害剤cDNA(配列番号36)の例である。 図18−2は、図18−1の続きである。 図18−3は、図18−1、18−2の続きである。 図19は、配列番号37〜41を含む6S−フォリン酸応答性miRNA SLIMスイッチ(sFLT1−CDS標的)、配列番号42〜46を含むテオフィリン応答性miRNA SLIMスイッチ(sFLT1−CDS標的)、及び配列番号47〜51を含むテトラサイクリン応答性miRNAスイッチ(sFLT1−CDS標的)の配列の例を示す。 図19−2は、図19−1の続きである。 図20は、PGF2α生合成経路の酵素を示す。 図21は、プロスタグランジンエンドペルオキシドシンターゼ2(PTGS2)及びPTGFRを含むベクター(例えば、AAVベクター)のベクターコンストラクトを示す。 図22は、SLIMリボスイッチを有するAAVでの処理、及びリガンドテトラサイクリンの投与後のマウスの眼圧(IOP)のベースラインからの変化を示すグラフである。 図23は、コドン最適化PTGS2配列(配列番号52)、コドン最適化PTGFR(配列番号53)、PTGS2−P2−PTGFR配列(配列番号54)、及びPDG2alpha生合成のための完全なAAV発現カセット(配列番号58)を含む、本発明で使用するための配列の例である。本発明の実施時に使用できる追加のリボスイッチも含む(配列番号64〜67)。 図23−2は、図23−1の続きである。 図23−3は、図23−1、23−2の続きである。 図23−4は、図23−1、23−2、23−3の続きである。 図23−5は、図23−1、23−2、23−3、23−4の続きである。
本明細書の開示は、疾患、特に眼疾患、より具体的にはAMD及び緑内障の治療に使用するための改変リボスイッチ(例えば、改変miRNAスイッチ)及びその改変リボスイッチを含むシステムを提供する。本発明は、制御ツールとして新規改変マイクロRNA(リボスイッチ)を使用し、眼の遺伝子発現を制御するための新規システムを提供することを目的とする。そのような遺伝的コンストラクト、及びそれを利用するキット又は方法は、遺伝子発現のコントロール(例えば、特定の化合物(例えば、眼のプロスタグランジン)の制御に関与する組換え蛋白質又はトランスジーンの生産)に有用であり得る。
そのようなRNAベースのシステム(リボスイッチ)は、誘導性プロモーターシステムより優れた3つの明確な利点を提供する。第1に、小さな遺伝的フットプリント(〜100bp)を有するため、大量のコーディングキャパシティを犠牲にすることなく、rAAVベクターゲノム内に簡単に組み込むことができる。第2に、そのデバイスはシスで作用し、機能に蛋白質補因子が必要ないため、免疫応答の可能性を制限する。最後に、リボスイッチのアプタマードメインは、蛋白質、小分子薬、又はイオンを含む、ほとんどの任意の活性化リガンドに応答するようにデザインできる。
この技術の一実施形態は、緑内障患者の眼圧を制御するために、眼におけるプロスタグランジンF2α合成に関与するトランスジーンの発現を調節することである。第二の実施形態は、脈絡膜血管新生(CNV)を防止するために、眼における抗VEGF組換え融合蛋白質、具体的にはアフリベルセプト(アイリーア)の発現を調節することである。
この技術のいくつかの実施形態は、トランスジーンの発現を制御するために目的のトランスジーンのスイッチオン又はオフのいずれかを可能にするリガンドコントロール遺伝子制御エレメントである改変リボスイッチを含むコンストラクトを使用する。リボスイッチが機能するメカニズムは、限定されず、十分な濃度のリガンドが存在する場合にリボザイムとして機能し、それ自体を切断する能力、リボソーム結合部位にアクセスできず、翻訳の発生を防ぐようにmRNAを折り畳む能力、及び/又はpre−mRNA分子のスプライシングに影響を与える能力を含む。改変リボスイッチ及びそのようなリボスイッチを含むコンストラクト又はカセットを含む実施形態が本明細書で企図される。
マイクロRNAは、遺伝子発現の制御において重要な役割を果たすノンコーディングRNAのクラスである。転写後レベルで作用するmicroRNA(miRNA)遺伝子は、RNAポリメラーゼIIによって大きな一次転写物(pri−mRNA)として転写され、RNase III酵素Droshaを含む蛋白質複合体によりプロセシングされ、microRNA前駆体(pre−microRNA)を形成する。本発明において、pri−microRNAは、遺伝子発現をサイレンシングするためのサイレンシングRNAとして作用することができるpre−mRNAにプロセシングされるようにデザインされている。
リボスイッチは2つの部分、アプタマー及び発現プラットフォームに分けられる。アプタマーは、標的小分子リガンドが結合する「センサー」である。発現プラットフォームは、アプタマーセンサーの変化に応じて構造変化を起こす。アプタマードメインの結合は、発現プラットフォーム内で立体構造の変化を引き起し、この立体構造の変化は、遺伝子をオン又はオフにすることにより遺伝子発現を制御する。これは図1に示されている。アプタマーは青色、発現プラットフォームじゃ赤、リガンドは緑で示されている。しばしば、「スイッチを切り替える」には有毒な濃度のリガンドが必要である。しかし、本発明は、非毒性レベルのリガンドを使用する眼遺伝子治療で使用するために、網膜における遺伝子発現をオン又はオフにすることができる改変リボスイッチを提供する。
多くの例示的なリボスイッチ、具体的には、自己標的リガンド不活性化マイクロRNA(SLIM)の実施形態が本明細書に記載されている。自己標的リガンド不活性化マイクロRNA(SLIM)は、リガンドの存在下で遺伝子発現の増加を媒介するオン型スイッチである(例えば、図2A及び2Bを参照)。AMD及び緑内障を治療するためにこの技術を使用する組成物、及び方法が本明細書で提供される。具体的には、このSLIMシステムは、VEGF阻害剤の発現を断続的に切り替えるために使用できる。この技術の組成物及び使用方法には、緑内障の治療が企図され、患者の眼におけるプロスタグランジンの発現を断続的に停止又は低下させるために有益であることが企図される。両方について、以下で詳しく説明する。
SLIM:遺伝子発現を改変するためのオン型改変リボスイッチ
本発明の一実施形態は、目的のトランスジーンの発現を制御するために発現コンストラクトに組み込むことができるオン型リボスイッチである自己標的リガンド不活性化マイクロRNA(SLIM)スイッチを提供する。SLIMスイッチ(図2A及びBのsmiRNA)では、pri−miRNAの基底領域を、標的リガンドに結合できるアプタマーに置き換える必要がある。この配列は、発現コンストラクトの3’又は5’非翻訳領域のいずれかにクローニングされる。リガンドの結合は、アプタマーとpri−miRNAの立体構造を変化させ、Droshaによるpri−miRNAの非切断をもたらす。標的miRNA配列は、3’又は5’非翻訳領域のいずれかにクローニングされ、第2レベルの制御を可能にする。ここで、pri−miRNAは、リガンドの非存在下で切断されると、miRNAにプロセシングされ、miRNAは標的miRNA配列に結合して転写を防ぐことができる。SLIMスイッチが発現コンストラクトに組み込まれると、リガンドが存在しない場合はトランスジーンの発現がオフになり、リガンドがアプタマーに結合するとオンになる。
SLIMスイッチは、転写後レベルで遺伝子発現を制御することにより機能を切り替える。活性化リガンドが存在しない条件では、pri−miRNAは新生転写物からDroshaによって切断される。このmiRNAはプロセシングされ、相補的な標的サイトの結合を通じて、遺伝子サイレンシングの第2のメカニズムとして機能する。活性化リガンドが存在すると、遺伝子発現は変化せず、遺伝子が発現する。
一実施形態では、トランスジーンの発現を制御するための外来核酸コンストラクトが提供される。コンストラクトは、(a)トランスジーン、(b)トランスジーンの非翻訳領域内にあるsmiRNAスイッチ(SLIMスイッチ)、及び(c)pri−miRNAの少なくとも一部に相補的な少なくとも1つのmiRNA標的配列をコードする。ここで、smiRNAスイッチは、リガンドに結合することができるアプタマードメイン及びpri−miRNA配列を含む。miRNAスイッチは、(1)mRNAの切断の制御(ポリAテール又は5’キャップのいずれかを除去し、RNAを不安定にする)と(2)smiRNAからのpri−miRNAの切断の制御の両方によって、トランスジーンの発現を制御する。ここで、切断されたpri−miRNAの少なくとも一部がプロセシングされ、少なくとも1つのmiRNA標的配列に結合し、トランスジーンの発現をサイレンシングする。
上述のように、リガンドの非存在下では、pri−miRNAは転写物から切断され、少なくとも1つのmiRNA標的配列に結合し、トランスジーンをサイレンシングする。これは図2Bに示されている。いくつかの実施形態では、上記(c)のpri−miRNAの少なくとも一部に相補的な少なくとも1つのmiRNA標的配列は、トランスジーンに含まれる(図2Bの下図に示すように)。言い換えれば、SLIMスイッチは、トランスジーン自体に対して生成することができる。
好ましい実施形態では、異種自己標的リガンド不活性化マイクロRNA(SLIM)スイッチは、(a)目的の標的遺伝子、(b)トランスジーンの非翻訳領域内に位置する少なくとも1つのsmiRNAスイッチを含む。ここで、smiRNAスイッチは、リガンドに結合できるアプタマードメイン及びpri−miRNAを含む。ここで、smiRNAスイッチは、(1)トランスジーンのmRNAの切断の制御、及び(b)smiRNAからのpri−miRNAの切断の制御の両方によって、トランスジーンの発現を制御する。ここで、切断されたpri−miRNAの少なくとも一部は、トランスジーンの一部(言い換えれば、トランスジーンの一部はmiRNA標的配列として機能する)に結合し、トランスジーンの発現をサイレンシングする。適切なリボスイッチは、図18及び19に記載されており、各リボスイッチが標的とするアイリーアトランスジーン又はFlt1トランスジーンの一部を含む(例えば、アイリーア標的1(配列番号70)内に見られるアイリーアの一部を標的とするアイリーア標的1のためのSLIMスイッチ(例えば、配列番号21又は26又は31)、アイリーア標的2(配列番号71)を標的とするアイリーア標的2のためのSLIMスイッチ(例えば、配列番号22又は27又は32)等(例えば、アイリーア標的3を標的とするアイリーア標的3のためのSLIMスイッチ、アイリーア標的4を標的とするアイリーア標的4のためのSLIMスイッチ、アイリーア標的5を標的とするアイリーア標的5のためのSLIMスイッチ、Flt1標的1を標的とするFlt1標的1のためのSLIMスイッチ等)。本明細書に記載の方法で使用するために、外来発現コンストラクト内で1つ以上のSLIMスイッチを組み合わせることができる(例えば、アイリーア又はSflt1の標的1、標的2、標的3、標的4、及び標的5のためのSLIMスイッチは、図18−19に見られるSLIMの標的に対するコンストラクトの任意の組み合わせ(例えば、SLIM 1及び2、SLIM 1及び3、SLIM 1及び4、SLIM 1及び5、SLIM 2及び3、SLIM 2及び4、SLIM 2及び5、SLIM 3及び4、SLIM 3及び5、SLIM 4及び5、SLIM 1、2及び3、SLIM 1、2及び4、SLIM 1、2及び5、SLIM 1、3及び4、SLIM 1、3及び5、SLIM 1、4及び5、SLIM 2、3及び4、SLIM 2、3及び5、SLIM 2、4及び5、SLIM 3、4及び5、SLIM 1、2、3及び4、SLIM 1、2、3及び5、SLIM 2、3、4及び5及びSLIM 1、2、3、4及び5)で組み合わせることができる)。
一実施形態では、トランスジーンのmRNAを調節することによりトランスジーンの発現を制御するための外来核酸コンストラクトが提供される。上記核酸は以下をコードする。(a)目的の標的遺伝子、(b)トランスジーンの非翻訳領域内にある少なくとも1つのsmiRNAスイッチ。ここで、smiRNAスイッチは、リガンドに結合できるアプタマードメイン及びpri−miRNAを含む。ここで、smiRNAスイッチは、(1)トランスジーンのmRNAの切断の制御、及び(2)smiRNAからのpri−miRNAの切断の制御の両方によって、トランスジーンの発現を制御する。ここで、切断されたpri−miRNAの少なくとも一部は、トランスジーンの一部に(miRNA標的配列として)結合し、トランスジーンの発現をサイレンシングする。好ましい実施形態では、外来核酸コンストラクトはAAVウィルスベクターである。
いくつかの実施形態では、アイリーア又はsFlt1に対して生成されたSLIMスイッチは、図18及び19に記載されている配列に示され、AMDの治療に使用される。
一実施形態では、外来核酸コンストラクトは、SLIMスイッチ、トランスジーン、及び少なくとも1つの標的miRNA配列をコードする。そのようなSLIMスイッチのデザインが図2Aに示される。一例では、適切なSLIMスイッチ(smiRNA)は、アプタマードメインとpri−miRNAをコードする。適切なアプタマードメインは、当技術分野で公知のオン型リボスイッチのアプタマードメインから選択され、特に、例えば、L2Bulge18tc(限定されないが、例えば、配列番号12)、K19(例えば、配列番号15)、L2Bulge9(例えば、配列番号11)を含むが、これらに限定されない。適切なアプタマードメインは図3に示され、以下に記載されている。
適切なSLIMスイッチは、限定されないが、図3(smiRNA)に示される我々が開発したTheo−SLIM(配列番号1)、及び本明細書に記載のTet−SLIM(配列番号17)を含む。これらのSLIMスイッチは、ヒトゲノム内の遺伝子と交差反応しないように設計されているため、オフターゲット効果を引き起こさない。
追加のSLIMスイッチが図18〜23に示されている。
核酸に対して使用される「外来」という用語は、原核生物の宿主細胞にとって外因(通常、自然界では見られない)である、又は原核生物の宿主細胞では通常見られない組換え核酸である。いくつかの実施形態において、外来核酸配列は、多くの異なる供給源又は生物に由来する配列を含む異種配列である。外来という用語はまた、コンストラクトが使用される種とは異なる種からの配列を含むコンストラクトを包含する。例えば、本発明のrAAVコンストラクトは、内因性AAV配列だけでなく、ヒト又はAAVウィルスに固有ではない他の供給源からの外来配列を含む。
本明細書で提供される核酸コンストラクトは、天然に存在しない配列を含む合成人工コンストラクトである。
用語「トランスジーン」及び「目的の標的遺伝子」は、本発明のコンストラクトの使用により所望の細胞で発現される外来遺伝子を指すために言い換え可能なものとして使用される。
さらに、適切なアプタマーを様々なリガンドに対してデザインし、アプタマーをpri−miRNA配列に連結することによりSLIMスイッチに組み込むことができる(例えば、図2A参照)。
いくつかの実施形態では、コンストラクトは、トランスジーン及びSLIMスイッチを含む。実施形態のいくつかでは、トランスジーンはSLIMスイッチのmiRNA標的配列として機能する。他の実施形態では、コンストラクトは、SLIMスイッチをさらに含み、少なくとも1つの標的miRNA配列、好ましくは3’又は5’UTRに約1〜4個の標的miRNA配列も含む。例えば、図2B(上図)は、そのようなコンストラクトの適切なデザインを示している。適切なリガンドは以下でさらに議論され、具体的には、例えば、テトラサイクリン、テオフィリン及びグアニンなどの、血液網膜関門を通過できるリガンドが含まれる。
いくつかの実施形態では、コンストラクトは、少なくとも1つの標的miRNA配列、あるいは少なくとも2つ、あるいは少なくとも3つ、あるいは少なくとも4つの標的miRNA配列を含む。追加される標的miRNA配列の数は、使用されるベクター(例えば、rAAVベクターの使用)に依存してもよく、標的miRNAの適切な数は、例えば、1〜5を含む。rAAVベクターのサイズには制限があるため、標的サイトを追加すると、使用可能なコーディング配列が制限され得る。従って、トランスジーンのサイズと配列に応じて、追加される標的miRNA配列の数も変わり得る。
一実施形態では、smiRNAが配列番号1である場合、標的miRNA配列は配列番号10(GAGAGAATCTTCTTTCTGTCTATAAAA)にコードされる。適切な一実施形態では、コンストラクトは、例えば、配列番号2に見られるように、少なくとも3つの標的miRNA配列を含む。
一実施形態では、コンストラクトは、リガンドの投与によりトランスジーンの発現を誘導できる適切なトランスジーンを含む。例えば、以下により詳細に記載されるように、トランスジーンは、VEGF阻害剤、具体的にはAMDの治療のために眼で発現されるように誘導され得るVEGF阻害剤であり得る。具体的には、適切なVEGF阻害剤はアフリベルセプトであり、これは配列番号8に見られるcDNAによってコードされる。
別の実施形態では、アプタマードメイン及びpri−miRNAは配列番号1内にコードされる。一実施形態において、コンストラクトは、コンストラクト内に見出される他の配列、例えば、プロモーター、エンハンサー、WPREエレメント等を含む。当業者は、核酸コンストラクトからのトランスジーンの発現に必要な他の公知のエレメントを組み込むことができるだろう。
いくつかの実施形態では、コンストラクトは、特に、アデノ随伴ウィルス(rAAV)、レンチウィルス、アデノウィルス、プラスミド、単純ヘルペスウィルス、バキュロウィルス、バクテリオファージである。好ましくは、コンストラクトはアデノ随伴ウィルスである。アフリベルセプトのトランスジーン、Theo−SLIMスイッチ、及び3つのmiRNA標的配列を組み込んだ適切なrAAVコンストラクト(例えば、配列番号9又は配列番号19にコードされる配列)を図2に示す。
いくつかの実施形態では、SLIMスイッチは、pri−miRNAの基底領域がアプタマーで置換されることを必要とする。この配列は、発現カセットの3’又は5’非翻訳領域のいずれかにクローニングされる。さらに、成熟miRNAの配列に相補的なmiRNA標的サイトは、カセットの5’又は3’非翻訳領域のいずれかに1又は複数のコピーを含めることができる。
自己標的リガンド不活性化miRNA(SLIM)スイッチは、転写後レベルで遺伝子発現を制御することにより機能を切り替える。活性化リガンドが存在しない条件では、pri−miRNAは新生転写物からDroshaによって切断される。このmiRNAはプロセシングされ、相補的な標的サイトとの結合を通じて、遺伝子サイレンシングの第2のメカニズムとして機能する。活性化リガンドが提供されると、遺伝子発現は変化しない。
各リボスイッチの複数のコピーを、目的の遺伝子の3’非翻訳領域に含めることができる。各リボスイッチは表1に示すような最適なコピー数を有すると考えられる。さらに、いくつかの実施形態では、miRNA標的サイトの複数のコピーを3’又は5’非翻訳領域に含めることができる。合成リボスイッチはアプタマーと発現プラットフォームを含み、遺伝子発現を制御するための発現プラットフォーム活性の変化に依存する。miRNA標的サイトは、成熟miRNA/siRNAによって認識される治療カセット(コンストラクト)内の配列である。以下でさらに説明するように、miRNA標的サイトはトランスジーン内に含まれていてもよい。言い換えると、リボスイッチから切断されプロセシングされたsiRNAはトランスジーンに結合し、その発現を阻害する。
あるいは、SLIMスイッチは、AMDの治療のためのアイリーア及びsFlt1を有するトランスジーン自体に対して生成することができる。その配列は図16〜18、19及び23に示される。
一実施形態では、核酸コンストラクトは、目的の標的遺伝子、例えば、VEGF阻害剤(例えば、アイリーア(配列番号20)又はsFLT1(配列番号36))、及び標的遺伝子の非翻訳領域内に位置する少なくとも1つのmiRNA SLIMスイッチ(例えば、各VEGF阻害剤の配列番号21〜35又は配列番号37〜51から選択される少なくとも1つ)を含む。
いくつかの実施形態において、核酸コンストラクトは、アイリーア遺伝子を含むrAAVベクター(例えば、配列番号19)である。例えば、配列番号19は、SLIMスイッチを使用したアイリーアの発現のための完全なAAV発現ベクターを提供する。配列番号19内で、XはSLIM配列が挿入されてもよい位置を示す。挿入され得る適切なSLIM配列は、図18に示され得、限定されないが、6S−フォリン酸応答性SLIM(miRNA)スイッチ(例えば、配列番号21、22、23、24、及び25を含む)(リガンドの6S−フォリン酸で活性化する)、テオフィリン応答性SLIM(例えば、配列番号26、27、28、29、及び30)(リガンドのテオフィリンで活性化する)、又はテトラサイクリン応答性SLIM(例えば、配列番号31、32、33、34、及び35)(リガンドのテトラサイクリンで活性化する)を含む。いくつかの実施形態では、1〜5個のSLIM配列、あるいは1〜3個のSLIM配列がAAV発現ベクターに挿入される。例えば、配列番号19は、配列番号21の1〜5コピー、あるいは配列番号22の1〜5コピー、あるいは配列番号23の1〜5コピー、あるいは配列番号24の1〜5コピー、あるいは配列番号25の1〜5コピー、あるいは配列番号26の1〜5コピー、あるいは配列番号27の1〜5コピー、あるいは配列番号28の1〜5コピー、あるいは配列番号29の1〜5コピー、あるいは配列番号30の1〜5コピー、あるいは配列番号31の1〜5コピー、あるいは配列番号32の1〜5コピー、あるいは配列番号33の1〜5コピー、あるいは配列番号34の1〜5コピー、あるいは配列番号35の1〜5コピーを組み込んでもよい。
別の実施形態において、核酸コンストラクトは、目的の標的遺伝子、例えば、VEGF阻害剤sFLT1(配列番号36)、及び標的遺伝子の非翻訳領域内に位置する少なくとも1つのsmiRNA SLIMスイッチ(例えば、配列番号37〜51から選択された少なくとも1つ)を含む。
いくつかの実施形態において、核酸コンストラクトはsFLT1遺伝子(配列番号36)を含む。sFLT1は、ベクター(例えば、rAAVベクター)内に挿入されてもよく、SLIM配列が挿入されてもよい位置を示すXが隣接していてもよい。挿入され得る適切なSLIM配列は、図18に示され得、限定されないが、6S−フォリン酸応答性SLIM(miRNA)スイッチ(例えば、配列番号37、38、39、40、41を含む)(リガンドの6S−フォリン酸で活性化する)、テオフィリン応答性SLIM(例えば、配列番号42、43、44、45、46)(リガンドのテオフィリンで活性化する)、又はテトラサイクリン応答性SLIM(例えば、配列番号47、48、49、50、及び51)(リガンドのテトラサイクリンで活性化する)を含む。いくつかの実施形態では、1〜5個のSLIM配列、あるいは1〜3個のSLIM配列がコンストラクトに挿入される。例えば、配列番号36は、配列番号37の1〜5コピー、あるいは配列番号38の1〜5コピー、あるいは配列番号39の1〜5コピー、あるいは配列番号40の1〜5コピー、あるいは配列番号41の1〜5コピー、あるいは配列番号42の1〜5コピー、あるいは配列番号43の1〜5コピー、あるいは配列番号44の1〜5コピー、あるいは配列番号45の1〜5コピー、あるいは配列番号46の1〜5コピー、あるいは配列番号47の1〜5コピー、あるいは配列番号48の1〜5コピー、あるいは配列番号49の1〜5コピー、あるいは配列番号50の1〜5コピー、あるいは配列番号51の1〜5コピーをXに組み込んでもよい。SLIM配列の代替の組み合わせが考えられる(例えば、配列番号36、37、38、39、40、及び41から選択される1〜5個のSLIM配列から)。適切には、コンストラクト内で同じリガンドにより活性化されるSLIM配列(例えば、テトラサイクリンリガンドにより活性である1〜5個のSLIM配列)を使用することが好ましい。
図21に示される別の実施形態では、核酸コンストラクトはPTGS2(配列番号52)、及びPTGFR(配列番号53)を含む(配列番号54にPTGS2−P2A−PTGFRとして組み合わせて示されている)。適切な核酸コンストラクトは、図23に配列番号81として示される(PGF2alpha生合成制御遺伝子(PTGS2(配列番号60)、及び2つの合成リボスイッチTC40(配列番号59)、及びTC45(配列番号63)を含むPTGFR(配列番号62)を含むAAV発現ベクター)。そのようなコンストラクトの適切な使用は、緑内障の治療用である。
リガンド
使用される特定のリガンドは、特定のアプリケーションとSLIMスイッチに組み込まれているアプタマーに依存する。眼の疾患及び障害の治療には、血液網膜関門を通過できるリガンドが好ましい。血液網膜関門を通過できる適切なアプタマーには、限定されないが、例えば、テトラサイクリン、テオフィリン、グアニン、ガラクチトール、プロゲステロン、マンニトール、エストラジオール、ドーパミン、キニジン、尿素、ジゴキシン、ウラシル、ベラパミル、チオ尿素、モキシフロキサシン、チミン、レボフロキシン、コルチコステロン、アセタゾラミド、テストステロン、ドキシサイクリン、及びその組み合わせを含む。
好ましい実施形態では、リガンドは、テトラサイクリン、テオフィリン、及びグアニンからなる群から選択される。
リガンドの適切な投与経路は、当技術分野で知られており、経口投与、眼を介した投与(例えば、点眼)等が含まれる。
眼疾患の治療
本技術のコンストラクトは、眼疾患の治療のための遺伝子治療に特に有用である。眼は、いくつかの理由でこのタイプの遺伝子治療の特に良いターゲットである。眼は高度に特殊化された器官で、光刺激を電気シグナルに変換し、それらのシグナルを視覚野に中継するように進化した。光感覚と画像形成は、神経感覚網膜の最外層に位置する光受容細胞の活性化によって媒介される。このとき、角膜とレンズによって集束された入射光は、シグナルカスケードの活性化と電気インパルスの伝播をもたらす。その複雑さにもかかわらず、眼には多くの特徴があり、遺伝子治療にとって魅力的な器官である。即ち、比較的免疫特権があり、コンパートメントのサイズが小さく、視覚化と検査が簡単で、手術を受ける患者に最小限のリスクで簡単にアクセスできる。網膜(AMD)又は角膜(緑内障)は、遺伝子治療の主要な標的である。ベクター送達は、通常、治療粒子を含む液体懸濁液を、標的細胞に近接する解剖学的に制約された空間に注入することにより達成される。rAAV.SLIM.αVEGF又はrAAV.SLIM.sFLT1ベクターは、網膜神経節細胞やミュラーグリアを含む網膜内部の細胞を標的とする場合に最も有益であり得、そのため、硝子体内注射により投与され得る。rAAV.SLIM.PTGS2−P2−PTGFRベクターは、角膜内皮細胞を含む角膜及び前房の細胞を標的とする場合に最も有益であり得、そのため、前房内注射により投与され得る。眼遺伝子治療への応用のためにrAAVを使用した多数のrAAV臨床試験が成功裏に完了した。しかし、これまでの全ての試験では、光受容体を標的とするようにデザインされた網膜下送達アプローチが利用されてきた。現在、フェーズI/II臨床試験(NCT01494805)が、AMDの治療のために、VEGFの可溶性受容体である可溶性fms様チロシンキナーゼ−1(sFLT)のrAAVを介した過剰発現を利用して進行中である。この試験でのsFLTの発現は常時性であり、本明細書に記載の提案されたrAAV.SLIM.αVEGF及びrAAV.SLIM.sFLT1技術とは異なり、制御することはできない。緑内障の治療のためのrAAVベースの遺伝子治療の臨床試験は進行していない。
AMDの治療
本発明は、AMDの少なくとも1つの症状を阻害、軽減又は緩和することにより、加齢性黄斑変性症を治療する方法を提供する。AMDは、脈絡膜、網膜色素上皮、及び神経感覚網膜を含む眼内の複数の組織層が関与する疾患であり、2つの形態で発生する。ドライ型AMDは、網膜中心部の進行性の地図状萎縮を特徴とする非増殖性疾患である。患者の約10〜15%で疾患はウェット型に進行し、これは脈絡膜から網膜下空間への血管の異常な成長を特徴とする。脈絡膜血管新生(CNV)は、主にVEGFの眼内濃度の増加の結果として生じ、AMDの主要な視力を脅かす症状である。抗VEGF剤の投与は、CNVの発生率を有意に減少させることが知られており、現在のAMDのゴールドスタンダード治療法である。しかし、治療計画は侵襲的であり、精製組換え抗VEGF蛋白質の硝子体内注射を繰り返し(例えば、毎月又は隔月)行う必要がある。
提案されたrAAV.SLIM.αVEGF技術は、AMD患者におけるCNV形成の発生率を有意に減少させ、その結果視力喪失を防ぐように作用し得る。特に、SLIMテクノロジーを採用することで、活性化リガンドの投与による抗VEGF発現のコントロールをし得る。
本発明のrAAV.SLIM.αVEGFベクター技術は、AMD患者におけるCNV形成の発生率を有意に減少させ、その結果視力喪失を防ぐように作用し得る。特に、SLIMテクノロジーを採用することで、活性化リガンドの投与による抗VEGF発現のコントロールをし得る。
本発明は、本明細書に記載のVEGF阻害剤及びSLIMリボスイッチ(例えば、rAAV.SLIM.αVEGF又はrAAV.SLIM.sFLT1ベクターを含む)を含むコンストラクトを対象の眼に投与する工程、及びさらに治療有効量のリガンドを投与する工程を含む、AMDの少なくとも1つの症状を治療、軽減、緩和又は阻害する方法を提供する。SLIMリボスイッチは、本明細書でより詳細に説明されるように、どのリガンドを使用するかを決定することができる。適切には、治療は、AMDの1つ以上の症状の軽減、緩和又は阻害、例えば、CNVの進行の軽減又は阻害をもたらす。
一実施形態では、AMDの少なくとも1つの症状を治療、阻害、又は軽減する方法は、VEGF阻害剤をコードするトランスジーンに作動可能に接続された1つ以上のオン型リボスイッチを含むコンストラクトを投与する工程、及び治療有効量のリガンドを投与する工程を含む。適切なオン型リボスイッチは当技術分野で公知であり、限定されないが、例えば、L2Bulge18tc(配列番号12)、K19(配列番号15)、及びL2Bulge 9(配列番号11)を含む。さらに、コンストラクトは、コンストラクトに組み込み可能な最適なコピー数のオン型リボスイッチをコードしてもよい。リボスイッチの最適なコピー数は、表1に詳述されている。例えば、AMDの治療のためのコンストラクトは、1〜3個のL2Bulge18tcリボスイッチ、及びVEGF阻害剤を含んでいてもよい。
治療有効量のリガンドの投与によってトランスジーンの遺伝子発現を変化させるために、SLIMリボスイッチを本発明のコンストラクトに組み込むことができる。「治療有効量」は、細胞内のトランスジーン産物の発現レベルを変化させるリガンドの量又は投与量を意味する。当業者は、適切な応答を生じさせるために治療有効量を滴定及び決定し、治療されるべき所望の疾患の症状の軽減をもたらすことができる。治療的有効量はまた、対象に対して無毒性用量のリガンドのレベルを維持する。適切には、用量は、対象における発現の個別の要求に応じて、日毎、週毎、又は月毎で決められてもよい。
緑内障の治療
本発明は、眼疾患を治療するために眼内のトランスジーンを制御するために使用できる網膜モデルにおける初めての高機能遺伝子スイッチを提供する。上記のSLIMスイッチは、従来のリボスイッチよりも拡大したダイナミックレンジを有するポテンシャルを有し、高眼圧を含む緑内障の1つ以上の症状の治療、抑制、又は改善に使用できる。プロスタグランジン合成は、活性化リガンドを経口摂取することにより制御される。活性化リガンドの投与量は、リバウンドトノメーターを使用した患者の眼圧(IOP)の測定値によって決定される。
本明細書の開示は、SLIMスイッチ及び本明細書に記載のプロスタグランジン合成を制御する1つ以上の遺伝子を含むコンストラクトをコードするアデノ随伴ウィルスを使用する遺伝子治療を含む緑内障の治療方法を提供する。別の実施形態では、本明細書の開示は、プロスタグランジン合成を制御する1つ以上の遺伝子、及び少なくとも1つのオン型リボスイッチ(SLIM)を含むコンストラクトをコードするアデノ随伴ウィルスを投与する工程を含む、緑内障の治療方法を提供する。図21及び23は、そのような例の1つであり、プロスタグランジン合成の制御に必要な遺伝子をコードするAAVベクター、及び本発明での使用に適したSLIMリボスイッチを示す。
緑内障は、網膜神経節細胞の進行性喪失及び最終的な重度の視覚障害を導く眼圧(IOP)上昇によって代表される。IOPの増加は、眼の後房の毛様体による房水の生産と前房の小柱網を介したその排液との不均衡に起因する。緑内障は、小柱網を介したドレナージが完全(閉塞隅角)に又は部分的(開放隅角)にブロックされているかどうかに基づいて分類できる。開放隅角緑内障は最も一般的であり、通常、ゆっくり進行する視力喪失以外の症状を示さない。閉塞隅角緑内障は一般的な喪失であり、医学的に緊急事態であると考えられ、急性眼痛、頭痛、かすみ目、過度の流涙吐き気、及び嘔吐を示す。
その慢性的性質のため、提案されたrAAV.SLIM.PTGS2−P2−PTGFR(配列番号81)技術は、緑内障の治療に適切であろう。
一実施形態では、緑内障の少なくとも1つの症状を軽減、阻害又は改善する方法が提供される。この方法は、外来核酸コンストラクトを対象の眼に投与する工程を含む。一実施形態では、外来核酸コンストラクトは、プロスタグランジン2α合成を制御するトランスジーン、及び少なくとも1つのsmiRNAリボスイッチをコードする。別の実施形態では、外来核酸コンストラクトは、(i)プロスタグランジン合成を制御するトランスジーン(例えば、プロスタグランジンエンドペルオキシドシンターゼ2(PTGS2)、(ii)トランスジーンの非翻訳領域内に位置するsmiRNAスイッチであって、pri−miRNAに隣接する少なくとも2つのリボスイッチを含み、各リボスイッチは、発現プラットフォームに作動可能に連結されたアプタマーを含む、smiRNAスイッチ、(iii)pri−miRNAの少なくとも一部に相補的な少なくとも1つのmiRNA標的配列、をコードし、ここで、トランスジーンは対象の細胞に組み込まれ、トランスジーンを発現し、(b)眼内のトランスジーンの発現を制御し、緑内障の少なくとも1つの症状を軽減、抑制、又は改善するために、アプタマーに結合できるリガンドの治療有効量を投与する工程を含む。一実施形態では、症状は高眼圧である。
適切なリガンドは、本明細書に記載されるように、血液網膜関門を通過できるリガンドを含む。
適切には、プロスタグランジン2α合成を制御するトランスジーンは、限定されないが、特に、例えば、PTGS2(配列番号52)を含む。他の適切なトランスジーンは、当該分野で公知である。
キット
本明細書の開示はキットを提供する。キットは、本明細書に記載の方法での使用に適していてもよい。一態様では、キットは、本明細書に記載のコンストラクト(例えば、コンストラクトを含むSLIMスイッチ)を含むrAAVベクターを含むことができる。いくつかの態様では、キットは、本明細書に記載のVEGF阻害剤をコードするrAAVベクターを含むコンストラクトを含むことができる。他の態様では、キットは、本明細書に記載のプロスタグランジン合成の制御に関与する1つ以上の遺伝子をコードするrAAVベクターを含むコンストラクトを含むことができる。さらに、キットは、rAAVベクターの初期投与後に投与されるリガンドの1つ以上の投与を含んでもよい。投与のタイミングと適切な投与方法に関するインストラクションが提供され得る。
「対象」及び「患者」という用語は言い換え可能なものとして使用され、限定されないが、特定の治療のレシピエントになる、ヒト、非ヒト霊長類、げっ歯類等を含む任意の動物(例えば、哺乳動物)を指す。典型的には、用語「対象」及び「患者」は、本明細書ではヒトに関して言い換え可能なものとして使用される。
「治療する」又は「治療」という用語は、限定されないが、疾患又は障害に関連する1つ以上の徴候又は症状を軽減、阻害又は予防することを含む。例えば、緑内障の治療は、例えば、眼圧の低下を含む(例えば、治療される緑内障の症状は、高眼圧である)。
「有効量」又は「治療有効量」という用語は、有益な又は望ましい生物学的、及び/又は臨床的結果をもたらすのに十分な量を指す。
本明細書の開示の文脈内における「発現プラットフォーム」に関しては、核酸発現に関する効果を媒介する改変リボスイッチの一部が、発現プラットフォームとして知られている。好ましくは、発現プラットフォームは、リボスイッチのアプタマードメインに作動可能に連結され、好ましくは構造的に連結され、最も好ましくは核酸リンカーによって連結される。アプタマードメインが核酸配列によって発現プラットフォームにリンクしていることが最も好ましい。好ましくは、発現プラットフォームの一部のステム構成は、ステム構造の構成の変化が、核酸配列の発現を促進する第1の構成と核酸配列の発現を阻害する第2の構成との間での、発現プラットフォームの対応する構造の変化をもたらすように、リガンドの結合時に構成を変える。
「遺伝子コンストラクト」は、宿主細胞内での複製を可能にする核酸配列を含むことができる。限定されないが、例えば、外来DNAを細胞に運ぶプラスミド、コスミド、バクテリオファージ、又はウィルスを含む。遺伝子コンストラクトは、追加の選択マーカー遺伝子、及び当技術分野で知られている他の遺伝エレメントも含むことができる。遺伝子コンストラクトは、好ましくは細胞に形質導入、形質転換、又は感染させ、それにより細胞にベクターにコードされる核酸、及び/又は蛋白質を発現させることができる。
「作動可能に連結された」第1エレメントは、第1エレメントが第2エレメントと機能的な関係にあるときに、第2エレメントと作動可能に連結される。例えば、アプタマーのリガンドへの結合が発現プラットフォームの構造変化を引き起こし、発現プラットフォームの機能を変化させる場合、アプタマーは発現プラットフォームに作動可能に連結される。(例えば、発現プラットフォームがリボザイムである場合、アプタマーとリガンドの結合は、リボザイム活性を活性化できる)。典型的には、作動可能に連結されたDNA配列は連続しており、必要に応じて2つの蛋白質コード領域を結合するために、同じリーディングフレーム内にある。
本発明は、記載された特定の実施形態に限定されないことが理解される。また、本明細書で使用される用語は、特定の実施形態のみを説明するためのものであり、限定することを意図するものではないことも理解される。本発明の範囲は、特許請求の範囲によってのみ限定される。本明細書で使用される単数形「a」、「an」、及び「the」は、文脈がそうでないことを明確に指示しない限り、複数の実施形態を含む。
本発明の思想から逸脱することなく、既に説明したものに加えて多くの追加の変更が可能であることは、当業者に明らかである。本明細書の開示を解釈する際、全ての用語は文脈と一致するできるだけ最も広い方法で解釈されるべきである。「含む」という用語のバリエーションは、非排他的な方法でエレメント、コンポーネント、又は工程を指すと解釈されるべきであり、そのため、参照されるエレメント、コンポーネント、又は工程は、明示的に参照されない他のエレメント、コンポーネント、又は工程と組み合わせられてもよい。特定のエレメントを「含む」として参照される実施形態は、それらのエレメント「から本質的になる」、及び「からなる」としても考えられる。値の範囲が示されている箇所では、その開示は、明示的に記述されていない範囲の下限と上限の他の組み合わせを明確に意図している。例えば、1と10の間、又は2と9の間の値との記述は、1と9の間、又は2と10の間の値も想定している。2つの値の「間」と識別される範囲には、エンドポイント値を含む。例えば、1と10の間の値の記述には、1、及び10の値を含む。
「から本質的になる」及び「からなる」という用語は、MPEP及び関連するフェデラルサーキットの解釈に沿って解釈されるべきである。「から本質的になる」の移行句は、クレームの範囲を、クレームされた発明の「基本的、及び新規の特徴に実質的に影響を及ぼさない」特定の材料又は工程に限定する。「からなる」は、クレームで特定されていない任意のエレメント、工程、又は成分を除外する閉じた用語である。例えば、配列に関して、「からなる」は配列番号にリストされている配列に向けられ、また、配列番号をその一部として含み得るより大きな配列に向けられる。
方法に関して説明される本明細書の開示の態様は、本明細書の開示で議論される物の組成物又はキットの文脈で利用できる。同様に、物の組成物に関して説明される本明細書の開示の態様は、方法、及びキットの文脈で利用でき、キットに関して説明される本明細書の開示の態様は、方法、及び物の組成物の文脈で利用できる。
本発明は、1つ以上の好ましい実施形態の用語に関して説明される、そして明示的に述べられたものとは別に、多くの同等物、代替物、バリエーション、及び改変が可能であり、本発明の範囲内であることが理解される。
本発明は、以下の非限定的な実施例を考慮すればより十分に理解される。
実施例1:インビボで眼の遺伝子発現を制御する能力
この実施例は、6つのリボスイッチが細胞培養時、及びマウスの網膜に送達されたときにインビボでリガンドに応答することを示している。
6つの小さな(〜100bp)リボスイッチ(K19、Tc40x45、GuaM8HDV、L2Bulge18tc、L2Bulge9andTheo6HDV)は、細胞培養時、及びrAAV2ベクターを使用してマウスの網膜に送達されたときにインビボでリガンドに反応した。
最適なコピー数(最大ダイナミックレンジ)と活性化リガンドに対する用量反応性を決定するために、デュアルルシフェラーゼアッセイを使用して、リボスイッチをHEK293T細胞で評価した。リガンドはテトラサイクリンとテオフィリンを使用した。
細胞培養実験により、適切なリガンドの投与に応答して蛍光発光に有意な変化が見られた(p<0.01、ワンウェイANOVA、N=4全グループ)。
次に、最適なコピー数の各リボスイッチをrAAV GFPレポーターカセットにクローニングし、AAV2キャプシドにパッケージした。各GFP−リボスイッチカセットを、非誘導性mCherryレポーター遺伝子を保有するAAV2コントロールベクターと組み合わせて、C57Bl/6jマウスに硝子体内注射した。注射の4週間後、mCherry、及びGFP蛍光レベルを、カスタム「マルチライン」共焦点走査レーザー検眼鏡(cSLO)を使用してインビボで定量した。その後、マウスに1000mg/kgの用量の活性化リガンド(テトラサイクリン、テオフィリン)を投与し、強制経口投与の2時間後、及び24時間後に蛍光レベルを定量した。
インビボの結果は、各リボスイッチの活性化リガンドをマウスに投与すると、治療前レベルと比較して、強制経口投与後2時間でGFP蛍光に高度に有意な変化が生じることを示した(p<0.01、ペアードt検定、N=6)(図6A及び6B)。重要なことに、GFP蛍光は、活性化リガンドを投与した24時間後に治療前のレベルまで回復した。これは、眼の網膜において遺伝子を送達及び発現できることを示している。
実施例2:リボスイッチの最適コピー数とダイナミックレンジの評価
実施例2A:公知のリボスイッチのテスト
この実施例は、コンストラクトに使用できるリボスイッチの最適数と関連するダイナミックレンジを示す。両方のアッセイのプロトコルの概要を8A及び8Bに示す。最適なコピー数を決定するために、0〜4コピーの各リボスイッチを含むプラスミドを、リードアウト用の緑色蛍光蛋白質(GFP)のトランスジーンを使用して作製した。HEK293T細胞を12ウェルプレートに播種し、2日目に1μgの各プラスミドDNAをトランスフェクトした。3日目に、細胞を蛍光顕微鏡で観察し(励起467〜498nm)、プレートリーダーを使用して蛍光を定量した(488nm励起、520nm発光)。
ダイナミックレンジを決定するために、最適なコピー数のリボスイッチを含むホタルルシフェラーゼを含むコンストラクトを作製した。HEK293T細胞を1日目に播種し、2日目に1μgのプラスミドDNAをトランスフェクトした。細胞をリボスイッチに対応する0〜100μMのリガンドで処理し、プレートリーダーを使用して3日目に発光を定量した。結果を表2に示す。
図9Aに示されるように、オン型リボスイッチの1つとしてL2Bulge18tcリボスイッチを試験した。細胞を0μM、25μM、50μM、75μM、及び100μMのテトラサイクリン(リガンド)で処理し、蛍光顕微鏡の結果を図9Dに示した。蛍光を定量化した結果を図9Bに示す。この結果は、図3Cに示されるように、3つのコピーが最適なダイナミックレンジを提供することを示している。
K19リボスイッチも上記のように試験し(図10)、結果を図9B〜Dに示す。この結果は、1コピーが最適なコピー数であることを示している。
L2Bulge 9もテストされ(活性化リガンドテオフィリンを使用)、最適なコピー数は3であると決定された。
いくつかのオン型リボスイッチの結果を上記の表1にまとめている。
実施例2B:新規SLIMスイッチのテスト
図12A及び13Aにそれぞれ示されているように、実施例2Aに記載されている実験を、標的miRNA配列を含む新しくデザインされたTet−SLIM及びTheo−SLIMスイッチを使用して実施した。図12B及び13Bは両方のスイッチのダイナミックレンジを示し、一方、図12C及び13Cは、それぞれのリガンド0〜100μMで処理された細胞で見られた蛍光を示す。両方のSLIMリボスイッチは、当技術分野で知られている同様のリボスイッチよりも広いダイナミックレンジを有していた。
実施例3:抗VEGF化合物を含むSLIMを使用したマウス実験
アダルト(>2ヶ月齢)野生型(例えば、C57Bl/6j株)マウス(n=20)は、認可サプライヤー(例えば、ジャクソンラボラトリーズ)から購入され、標準条件でザ メディカル カレッジ オブ ウィスコンシンにグループ収容される。順化期間の後、各動物は両側硝子体内注射を受ける。一方の眼は、SLIM遺伝子スイッチ(ここでは、rAAV.SLIM.αVEGFと称す)のコントロール下で血管内皮増殖因子(VEGF)阻害剤(例えば、アフリベルセプト(アイリーア))の生合成に必要なcDNA配列をパッケージした精製組換えアデノ随伴ウィルス(rAAV)を含む2μl滅菌バッファー(HBSS+0.014%ツイーン20)が投与される。反対側の眼には、外科的介入の効果のコントロールのためにバッファーが注入される。rAAV.SLIM.αVEGFベクターを網膜の細胞に組み込むには4週間かかる。予備データに基づいて、神経節細胞とミュラーグリアが効果的に形質導入されると予想される。網膜及び脈絡膜血管のベースラインインテグリティを確立するために、共焦点走査レーザー検眼鏡を使用してフルオレセインアンジオグラフィー(FA)により両眼が撮像される。その後、動物はランダムに治療(活性化リガンド投与)又はコントロール(活性化リガンド非投与)グループのいずれかに割り当てられる。集中的な赤外線レーザービームでブルッフ膜に小孔を開けることにより、両眼に急性脈絡膜血管新生(CNV)が誘発される。CNV形成の程度は、FAによって7及び14日後に評価される。
コントロール群(リガンドなし=低レベルのαVEGF発現)の動物は、rAAV.SLIM.αVEGFを注入した眼において、反対側の緩衝液を注入した眼と似た程度のCNV形成を示すと予想される。対照的に、実験群(リガンドあり=高レベルのαVEGF発現)の動物は、rAAV.SLIM.αVEGFを注入した眼において、反対側の緩衝液注入眼と比較し、CNV形成の有意な減少を示すと予想される。これは、rAAVを介したVEGF阻害剤の過剰発現がCNV形成を防ぐために効果的な方法であること、及びVEGF阻害剤の発現レベルを活性化リガンドの補充により調節(即ち増加)でき、CNV形成の減少を導くことを示すのに役立つだろう。その後、生化学分析のための眼の収集を可能にするために全ての動物を安楽死させ、治療済み(リガンドあり)の眼及びコントロール(リガンドなし)の眼内のαVEGF蛋白質レベルの直接定量が可能となる。
実施例4:rAAV.SLIM. αVEGFベクターを使用したAMDの治療
AMDはゆっくりと進行する性質があるため、初期診断から重度の視覚障害の発症までの間に介入する治療可能時間域が存在する。診断後、患者は生理学的に適切なバッファーに懸濁したrAAV.SLIM.αVEGFベクターの硝子体内注射を1回受け得る。AMD患者の現在の治療パラダイムでは、毎月又は隔月の抗VEGF蛋白質の硝子体内注射を伴う。従って、rAAV.SLIM.αVEGFの単回投与は、侵襲性が大幅に低い代替治療法となり得る。現在、抗VEGF蛋白質の硝子体内注射は、外来患者処置として局所麻酔下で行われている。これは、rAAV.SLIM.αVEGFベクターの硝子体内投与にも当てはまると予想される。rAAV.SLAM.F2αベクターを網膜内層の細胞に組み込むには、4〜8週間かかり得る。この間、患者は従来の抗VEGF療法を受け続けることができる。SLIM技術はオン型スイッチであり、そのため抗VEGF蛋白質は、活性化リガンドが提供されるまで患者の眼で発現しない。患者の眼における抗VEGF蛋白質の発現レベルは、活性化リガンド(例えば、錠剤)の経口投与により制御される。SLIM技術は用量依存的であるため、患者/医師は眼内の抗VEGF発現レベルを正確に調節できる。この手順の一部として標的とされる網膜細胞は分裂しない。結果として、その細胞へのベクターの組み込み後、rAAV.SLIM.αVEGFベクターは患者の生涯を通じて持続すると予想される。従って、抗VEGF発現は、活性化リガンドの投与により患者の生涯を通じていつでも誘導され得、反復的な眼内注射の必要性をなくす。
実施例5:AMDを治療するためのAAVリボスイッチ
AMDを治療するための現在の治療方法論は、血管新生促進機能を阻害するための、VEGF−A蛋白質に対する可溶性受容体又は中和抗体の投与にフォーカスされている。アイリーア(アフリベルセプト)は、2011年にウェットAMDの治療のために食品医薬品局によって認可された組換え融合VEGFトラップであり、ウェットAMDの患者のCNVの治療に非常に効果的であることがわかっている。このアプローチはCNV形成の防止に大部分は成功したが、患者の生涯を通じて抗VEGF剤の毎月の高用量硝子体内注射を必要とし、実質的な金銭的及び経済的負担をもたらす。さらに、アイリーアとルセンティスの両方の複数年にわたる連続的なボーラス投与は、網膜及び脈絡膜の萎縮の速度を加速することが示されている。患者はまた、眼内炎や白内障の形成のような注射関連の合併症のリスクが高くなる。本実施例では、我々の研究室で開発されたいくつかの技術を組み合わせて、単回硝子体内投与後のウェットAMDを治療するための誘導性rAAVベースの遺伝子治療アプローチを構築する。
アイリーアのrAAVを介した過剰発現が、ブルッフ膜のレーザー損傷後のCNV形成を防止できるかどうかを評価した。テトラサイクリン応答性リボスイッチリボスイッチ(1xTC45)を発現カセットの3’−UTRに組み込むことにより、アイリーアの眼内濃度の調節が、観察されたCNV病変の重症度の変化を導くかどうかということに対処することもできた。この目的のために、年齢を合わせたC57BL/6Jマウスに、PBS(n=10)、1.0x1010vgのrAAV2/2[MAX].smCBA−Eylea(n=10)、又は1.0x1010vgのrAAV2/2[MAX].smCBA−Eylea−1x−TC45(n=20)のいずれかを片側注射した。注射直後に、rAAV2/2[MAX].smCBA−Eylea−1x−TC45を注射したマウスの半分(n=10)に、50mg/gテトラサイクリンを含む飼料を与えた。注射の6週間後、CNVの形成を、赤外線レーザーダイオードを使用してブルッフ膜を破ることによって開始した(方法を参照)。レーザー損傷の7日後、cSLOイメージングを使用したフルオレセインアンジオグラフィーにより、血管新生病変のサイズと漏出を評価した。アイリーアを遍在的に発現するマウスの大部分(smCBA−Eylea)は、レーザー損傷の部位で病変を発症しなかったか、もしくは5分経過後でも最小限のフルオレセインを漏出させる小さなグレード1又は2Aタイプの病変が発症した。(図14A〜C)。オフ型smCBA−Eylea−1x−TC45ベクターを注入し、通常の飼料を与えたマウスも、非誘導性アイリーアコンストラクトと比較して2B病変の数のわずかな増加が観察されたものの、主に軽微な病変のみを発症した(図14D−F)。TC45リボスイッチの活性化を介してアイリーア発現を低下させると、CNV病変の重症度が大幅に増加し(図14G〜I)、その程度はPBS偽注射マウス(図14L〜J)と類似した。
病変画像は、Krzystolikらのグレーディングシステムを使用し、盲検化された3人の科学者によって分類分けした(詳細は方法を参照)。重要なことに、グレードの分布は各治療群で有意に異なっていた。偽注射を受けたマウスは、臨床的に重大な「グレード2B」病変の発生率が最も高く、アイリーアを遍在的に過剰発現するマウス(smCBA−Eylea)は、「グレード2B」病変の発生率が最も低かった。
特に、TC45リボスイッチの活性化によるアイリー発現のダウンレギュレーションは、標準飼料を与えられたrAAV2[MAX].smCBA−Eylea−1x−TC45注入マウスと比較し、「グレード2B」病変の発生率を大幅に増加させた(図15A)。最後に、アイリーア特異的ELISA(イーグルバイオサイエンス)を使用し、各サンプルの非複合体アイリーアのレベルを決定した。予想されたように、非誘導コンストラクト(smCBA−Eylea)を注入された眼は、最高レベルの遊離アイリーア(438ng/mL)を含んでいた。さらに、調整可能なコンストラクトを含むベクターを注射した動物では、高レベルの遊離アイリーア(395ng/mL)が検出されたが、非誘導性コンストラクトを注射した動物よりもレベルは低かった。重要なことに、TC45リボスイッチのテトラサイクリンを介した活性化は、非複合体アイリーアの有意な1.75倍の減少をもたらした(p<0.05)(図15B)。遊離アイリーアのレベルは、臨床的に重大な病変の発生と強く相関していた。
実施例6:ヒトにおけるAMD治療のためのmiRNAを不活性化する自己標的リガンド
SLIMスイッチでは、pri−miRNAの基底領域をアプタマーに置き換える必要がある。この配列は、発現カセットの3’又は5’非翻訳領域のいずれかにクローニングされる。さらに、成熟miRNAの配列に相補的なmiRNA標的サイトは、カセットの5’又は3’非翻訳領域のいずれかに1又は複数のコピーを含めることができる。
自己標的リガンド不活性化miRNA(SLIM)は、転写後レベルで遺伝子発現を制御することにより機能を切り替える。活性化リガンドが存在しない条件では、pri−miRNAは新生転写物からDroshaによって切断される。このmiRNAはプロセシングされ、相補的な標的サイトの結合を通じて、遺伝子サイレンシングの第2のメカニズムとして機能する。活性化リガンドが提供されると、遺伝子発現は変化しない。
各リボスイッチ(SLIM)の複数のコピーを、目的の遺伝子の3’非翻訳領域に含めることができる。表2に示すように、各リボスイッチは最適なコピー数を有すると考えられる。さらに、miRNA標的サイトの複数のコピーを3’又は5’非翻訳領域に含めることができる。
AMDはゆっくりと進行する性質があるため、初期診断から重度の視覚障害の発症までの間に介入する治療可能時間域が存在する。診断後、患者は生理学的に適切なバッファーに懸濁したrAAV.SLIM.αVEGFベクターの硝子体内注射を1回受け得る。AMD患者の現在の治療パラダイムでは、毎月又は隔月の抗VEGF蛋白質の硝子体内注射を伴う。従って、rAAV.SLIM.αVEGFの単回投与は、侵襲性が大幅に低い代替治療法となり得る。現在、抗VEGF蛋白質の硝子体内注射は、外来患者処置として局所麻酔下で行われている。これは、rAAV.SLIM.αVEGFベクターの硝子体内投与にも当てはまると予想される。この間、患者は従来の抗VEGF療法を受け続けることができる。SLIM技術はオン型スイッチであり、そのため抗VEGF蛋白質は、活性化リガンドが提供されるまで患者の眼で発現しない。患者の眼における抗VEGF蛋白質の発現レベルは、活性化リガンド(例えば、錠剤)の経口投与により制御される。SLIM技術は用量依存的であるため、患者/医師は眼内の抗VEGF発現レベルを正確に調節できる。この手順の一部として標的とされる網膜細胞は分裂しない。結果として、その細胞へのベクターの組み込み後、rAAV.SLIM.αVEGFベクターは患者の生涯を通じて持続すると予想される。従って、抗VEGF発現は、活性化リガンドの投与により患者の生涯を通じていつでも誘導され得、反復的な眼内注射の必要性をなくす。
リボスイッチを含むベクターによる緑内障の治療
原発性開放隅角緑内障(POAG)は、世界的に不可逆的な失明の2番目に多い原因であり、網膜神経節細胞の進行性喪失と視神経の萎縮によって特徴付けられ、視野障害につながる。POAGの主要なリスクは、房水の流出の減少に起因する眼圧の上昇(IOP)である。緑内障のゴールドスタンダードの臨床治療は、局所薬物投与と後期疾患の手術の組み合わせによりIOPを低下させることである。残念ながら、緑内障の大部分は無症候性(即ち、痛みを伴わない)であり、生涯にわたる毎日の治療計画を維持する必要があるため、薬物療法の患者のコンプライアンスは非常に低く(<20%)、早期に診断された患者でも重度の視力を脅かす合併症の発症につながる。
AAVリボスイッチ実験−緑内障を治療するためのモデル
プロスタグランジンアナログ(例えば、ラタノプロスト)は、角膜上皮全体に吸収され、房水に拡散する前に間質と角膜内皮を通過する際に活性型に加水分解されるエステル化プロドラッグとして臨床的に投与される。可溶性PGF2αアナログのPTGFRへの結合は、細胞外マトリックスのリモデリングとブドウ膜強膜房水流出の増加を促進する毛様体筋内のマトリックスメタロプロチナーゼ(MMP)産生のアップレギュレーションを引き起こす。天然のPGF2αは、多段階プロセスにより角膜に高レベルで存在するアラカドン酸から酵素的に誘導される。
角膜から前房へのPGF2αのデノボ生合成及び分泌は、現在のゴールドスタンダードの臨床治療アプローチを改善するIOPを低下させるための効果的な戦略となることは確かである。我々はPGF2α生合成の律速酵素であるプロスタグランジンエンドペルオキシドシンターゼ2(PTGS2)及びPTGFRの過剰発現により、3か月間でIOPが有意に減少することを示した。両方の酵素のcDNA配列(下記)を、リボスイッチを含まないか(非誘導性)、もしくは3’TC40及び5’TC45テトラサイクリン誘導性リボスイッチを組み込んだAAV発現コンストラクト(下記の完全配列)に組み込んだ。マウスに、PBS(N=10)、rAAV.smCBA−PTGFR.P2A.PTGFR(N=10、非誘導性)、又はrAAV.smCBA−TC40−PTGFR.P2A.PTGFR−TC45(誘導性)の前房内注射(intracamereal injections)を行った。IOPは、注射の前と後12週間にリバウンド眼圧測定によって測定された。その期間、誘導性マウスの半分にテトラサイクリンを含む飼料を与えた。飼料(PGF2alpha発現オフ)を与えられたマウスは、12週間にわたって眼圧の低下を示さなかった。通常の飼料(PGF2alpha発現オン)のマウスは、PGF2alphaが恒常的に発現している場合(スイッチなし)と同様に、IOPの高度に有意な減少を示した。
配列表ステートメント
本出願は、明細書全体及び添付の配列表ステートメントに配列表を含む。完全なリストとは見なされないが、以下にいくつかの配列を列挙する。
L2bulge9(テオフィリンオフスイッチ)(配列番号11)
CTCGAGGCGATCGCAAACAAACAAAGCTGTCACCGGATGTGCTTTCCGGTCTGATGAGTCCGTTGTCCAATACCAGCATCGTCTTGATGCCCTTGGCAGTGGATGGGGACGGAGGACGAAACAGCAAAAAGAAAAATAAAAATTTTTTTTTTAATTAATCTTGGGCCC
L2bulge18tc(テトラサイクリンオンスイッチ)(配列番号12)
CTCGAGGCGATCGCAAACAAACAAAGCTGTCACCGGATGTGCTTTCCGGTCTGATGAGTCCGTTGTCCAAAACATACCAGATTTCGATCTGGAGAGGTGAAGAATTCGACCACCTGGACGAGGACGGAGGACGAAACAGCAAAAAGAAAAATAAAAATTAATTAATCTTGGGCCC
Theo6HDV(テオフィリンオフスイッチ)(配列番号13)
ATGGCCGGCATGGTCCCAGCCTCCTCGCTGGCGCCGGCTGGGCAACCACATACCAGCCGAAAGGCCCTTGGCAGGTGGGCGAATGGGACGCACAAATCTCTCTAGCTTCCCAGAGAGAAGCGAGAGAAAAGTGGCTCTC
GuaM8HDV(グアニンオフスイッチ)(配列番号14)
ATGGCCGGCATGGTCCCAGCCTCCTCGCTGGCGCCGGCTGGGCAATGCTATAATCGCGTGGATATGGCACGCAAGTTTCTACCGGGCACCGTAAATGTCCGACTAGTAGCGAATGGGACGCACAAATCTCTCTAG
K19(テトラサイクリンオンスイッチ)(配列番号15)
CAAACAAACAAAGGCGCGTCCTGGATTCGTGGTAAAACATACCAGATTTCGATCTGGAGAGGTGAAGAATACGACCACCTGTAGTATCCAGCTGATGAGTCCCAAATAGGACGAAACGCGCTAAACAAACAAAC
TC40(テトラサイクリンオフスイッチ)(配列番号16)
CTGAGGTGCAGGTACATCCAGCTGACGAGTCCCAAATAGGACGAAAGGGAGAGGTGAAGAATACGACCACCTAGGCTCGAAAGAGCCTAAAACATACCTTTCCTGGATTCCACTGCTATCCAC
Tet−SLIM(配列番号17)
CTAGCACGGGTCCCTAAAACATACCGTGAGCGCGAAAGCGCCCCCATTTTGAGTTAGTGAAGCCACAGATGTAACTCAAAATGGGGGCGCTTTCCCGCCTACGGAGAGGTGAAGAATACGACCACCTAGAAGCTTATTGGTACATGATAACACCCCAAAATCGAAGCACTTCAAAAACACCCCAAAATCGAAGCACTTCAAAAACACCCCAAAATCGAAGCACTTCAAAAACACCCCAAAATCGAAGCACTTCAGTCTCAGGCATCGTACGATGTCGACCTGCAGG

Claims (53)

  1. トランスジーンのmRNAを調節することにより前記トランスジーンの発現を制御するための外来核酸コンストラクトであって、前記核酸は、
    (a)目的の標的遺伝子、
    (b)前記トランスジーンの非翻訳領域内に位置する少なくとも1つのsmiRNAスイッチであって、リガンドに結合できるアプタマードメイン及びpri−miRNAを含む、少なくとも1つのsmiRNAスイッチ、
    (c)前記pri−miRNAの少なくとも一部に相補的な少なくとも1つのmiRNA標的配列、
    をコードし、
    前記少なくとも1つのsmiRNAスイッチは、(1)前記トランスジーンのmRNAの切断の制御、及び(2)前記smiRNAからの前記pri−miRNAの切断の制御、の両方によって前記トランスジーンの発現を制御し、
    前記切断されたpri−miRNAの少なくとも一部は、少なくとも1つのmiRNA標的配列に結合し、前記トランスジーンの発現をサイレンシングする、
    コンストラクト。
  2. リガンドの非存在下で、前記pri−miRNAは転写物から切断され、前記少なくとも1つのmiRNA標的配列に結合し、
    前記pri−mRNAの一部の前記少なくとも1つのmiRNA標的配列への結合は、前記トランスジーンをサイレンシングする、請求項1に記載のコンストラクト。
  3. 前記リガンドの前記アプタマードメインへの結合は、前記smiRNAの構造を変化させ、前記構造変化は、前記pri−miRNAが前記転写物から切断される能力を阻害し、ここで前記トランスジーンは翻訳可能である、請求項1又は2に記載のコンストラクト。
  4. 前記smiRNAスイッチは、配列番号1の核酸配列によってコードされる、請求項1〜3のいずれか1項に記載のコンストラクト。
  5. 前記少なくとも1つのmiRNA標的配列は、核酸配列GAGAGAATCTTCTTTCTGTCTATAAAA(配列番号10)によってコードされる、請求項1〜4のいずれか1項に記載のコンストラクト。
  6. 前記コンストラクトは、3つのmiRNA標的配列をコードし、少なくとも3つのmiRNA標的配列は配列番号2によってコードされる、請求項1〜5のいずれか1項に記載のコンストラクト。
  7. 前記コンストラクトは、配列番号21〜35及び37〜51からなる群から選択される1つ以上のsmiRNAスイッチを含む、請求項1〜6のいずれか1項に記載のコンストラクト。
  8. 前記smiRNAは3’UTR内に位置し、前記少なくとも1つのmiRNA標的配列は5’UTR内に位置する、請求項1〜7のいずれか1項に記載のコンストラクト。
  9. 前記コンストラクトは、少なくとも2つのmiRNA標的配列を含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載のコンストラクト。
  10. 前記(c)のpri−miRNAの少なくとも一部に相補的な少なくとも1つのmiRNA標的配列は、切断されたpri−miRNAの少なくとも一部が結合する前記コンストラクト内の前記トランスジーンの一部である、請求項1〜9のいずれか1項に記載のコンストラクト。
  11. 前記トランスジーンは、VEGF阻害剤をコードする、請求項1〜10のいずれか1項に記載のコンストラクト。
  12. 前記VEGF阻害剤は、アフリベルセプトであり、配列番号8によりコードされる、請求項11に記載のコンストラクト。
  13. 前記VEGF阻害剤は、配列番号36によりコードされるsFLT1である、請求項11に記載のコンストラクト。
  14. 前記アプタマーは、血液網膜関門を通過できるリガンドに結合する、請求項1〜13のいずれか1項に記載のコンストラクト。
  15. 前記リガンドは、テトラサイクリン、テオフィリン、グアニン、ガラクチトール、プロゲステロン、マンニトール、エストラジオール、ドーパミン、キニジン、尿素、ジゴキシン、ウラシル、ベラパミル、チオ尿素、ミキシフラキサシン(mixiflaxacin)、チミン、レボフロキシン、コルチコステロン、アセタゾラミド、テストステロン、ドキシサイクリン、及びそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項14に記載のコンストラクト。
  16. 前記リガンドは、テトラサイクリン、テオフィリン、及びグアニンからなる群より選択される、請求項12又は13に記載のコンストラクト。
  17. 前記トランスジーンは、プロスタグランジン合成に関与する遺伝子を含む、請求項1に記載のコンストラクト。
  18. 前記トランスジーンは、配列番号52によりコードされるプロスタグランジンエンドペルオキシドシンターゼ2(PTGS2)を含む、請求項17に記載のコンストラクト。
  19. 配列番号53によりコードされるPTGFRをさらに含む、請求項18に記載のコンストラクト。
  20. 配列番号54をさらに含む、請求項17又は18に記載のコンストラクト。
  21. 前記コンストラクトは、アデノ随伴ウィルス(AAV)ベクターである、請求項1〜20のいずれか1項に記載のコンストラクト。
  22. 前記配列は、配列番号81である、請求項21記載のコンストラクト。
  23. それを必要とする対象において加齢黄斑変性の少なくとも1つの症状を軽減する方法であって、
    (a)下記(i)、(ii)をコードする外来核酸コンストラクトを対象の眼に投与する工程、及び
    (i)抗VEG阻害剤、
    (ii)非翻訳領域内にあるsmiRNAスイッチであって、リガンドに結合できるアプタマードメイン及びpri−miRNAを含むリボスイッチを含む、smiRNAスイッチ、
    (b)前記抗VEGF阻害剤の発現を制御し、加齢黄斑変性の少なくとも1つの症状を軽減するために、治療有効量の前記リガンドを対象に投与する工程、
    を含む、方法。
  24. 前記コンストラクトは、アデノ随伴ウィルスベクターである、請求項23に記載の方法。
  25. 前記トランスジーンは、アフリベルセプトである、請求項23又は24に記載の方法。
  26. 前記リガンドは、血液網膜関門を通過できる、請求項23〜25のいずれか1項に記載の方法。
  27. 前記リガンドは、テトラサイクリン、テオフィリン、グアニン、ガラクチトール、プロゲステロン、マンニトール、エストラジオール、ドーパミン、キニジン、尿素、ジゴキシン、ウラシル、ベラパミル、チオ尿素、ミキシフルキサシン(mixiflxacin)、チミン、レボフロキシン、コルチコステロン、アセタゾラミド、テストステロン、ドキシサイクリン、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項26に記載の方法。
  28. 前記コンストラクトは、配列番号21〜35及び37〜51からなる群より選択される1つ以上のSLIMを含む、請求項23〜27のいずれか1項に記載の方法。
  29. 前記コンストラクトは、前房内注射により眼へ投与される、請求項23〜28のいずれか1項に記載の方法。
  30. 前記リガンドは、経口投与又は点眼により投与される、請求項23〜29のいずれか1項に記載の方法。
  31. 前記外来核酸コンストラクトは、非翻訳領域内に1つ以上のmiRNA標的配列を含む、請求項23〜29のいずれか1項に記載の方法。
  32. それを必要とする対象において緑内障の少なくとも1つの症状を軽減する方法であって、
    (a)下記(i)、(ii)をコードする外来核酸コンストラクトを対象の眼に投与する工程、
    (i)プロスタグランジン2アルファ合成を制御するトランスジーン、
    (ii)前記トランスジーンの非翻訳領域内にあるsmiRNAスイッチであって、pri−miRNAに隣接する少なくとも2つのリボスイッチを含み、各リボスイッチは、発現プラットフォームに作動可能に連結されたアプタマーを含む、smiRNAスイッチ、
    ここで、前記トランスジーンは前記対象の細胞に組み込まれ、前記トランスジーンを発現する、及び
    (b)眼内のトランスジーンの発現を制御するために、アプタマーに結合できるリガンドの治療有効量を投与する工程、
    を含む、方法。
  33. 前記少なくとも1つの症状は、前記対象の眼内の眼圧の低下である、請求項32に記載の方法。
  34. 前記コンストラクトは、眼への前房内注射により投与される、請求項32又は33に記載の方法。
  35. 前記リガンドは、血液網膜関門を通過できる、請求項32〜34のいずれか1項に記載の方法。
  36. 前記リガンドは、テトラサイクリン、テオフィリン、グアニン、ガラクチトール、プロゲステロン、マンニトール、エストラジオール、ドーパミン、キニジン、尿素、ジゴキシン、ウラシル、ベラパミル、チオ尿素、ミキシフルキサシン、チミン、レボフロキシン、コルチコステロン、アセタゾラミド、テストステロン、ドキシサイクリン、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項35に記載の方法。
  37. 前記外来核酸コンストラクトは、(iii)pri−miRNAの少なくとも一部に相補的な少なくとも1つのmiRNA標的配列をさらに含む、請求項31〜36のいずれか1項に記載の方法。
  38. 前記smiRNAスイッチは、TC40(配列番号59)、TC45(配列番号63)、又は両方のsmiRNAスイッチの組み合わせを含む、請求項32〜37のいずれか1項に記載の方法。
  39. トランスジーンのmRNAを調節することにより前記トランスジーンの発現を制御するための外来核酸コンストラクトであって、前記核酸は、
    (a)目的の標的遺伝子、
    (b)前記トランスジーンの非翻訳領域内に位置するsmiRNAスイッチであって、リガンドに結合できるアプタマードメイン及びpri−miRNAを含む、smiRNAスイッチ、
    を含み、
    前記smiRNAスイッチは、(1)前記トランスジーンのmRNAの切断の制御、及び(2)前記smiRNAからのpri−miRNAの切断の制御の両方によって、トランスジーンの発現を制御し、
    前記切断されたpri−miRNAの少なくとも一部は、miRNA標的配列としてトランスジーンの一部に結合し、前記トランスジーンの発現をサイレンシングする、
    コンストラクト。
  40. リガンドの非存在下で、pri−miRNAは転写物から切断され、前記miRNA標的配列に結合し、
    pri−mRNAの一部の少なくとも1つのmiRNA標的配列への結合は、前記トランスジーンをサイレンシングする、請求項39に記載のコンストラクト。
  41. 前記リガンドの前記アプタマードメインへの結合は、前記smiRNAの構造を変化させ、前記構造変化は、前記pri−miRNAが前記転写物から切断される能力を阻害し、ここで前記トランスジーンは翻訳可能である、請求項39又は40に記載のコンストラクト。
  42. 前記smiRNAスイッチは、配列番号21〜35及び37〜51からなる群より選択される核酸配列によりコードされる、請求項39〜41のいずれか1項に記載のコンストラクト。
  43. smiRNAは3’UTR内に位置し、少なくとも1つのmiRNA標的配列は5’UTR内に位置する、請求項39〜42のいずれか1項に記載のコンストラクト。
  44. 前記コンストラクトは、少なくとも1つのmiRNA標的配列をさらに含む、請求項39〜43のいずれか1項に記載のコンストラクト。
  45. 前記トランスジーンは、VEGF阻害剤をコードする、請求項39〜44のいずれか1項に記載のコンストラクト。
  46. 前記VEGF阻害剤は、アフリベルセプトであり、配列番号8によりコードされる、請求項45に記載のコンストラクト。
  47. 前記VEGF阻害剤は、配列番号36によりコードされるsFLT1である、請求項45に記載のコンストラクト。
  48. 前記アプタマーは、血液網膜関門を通過できるリガンドに結合する、請求項39〜47のいずれか1項に記載のコンストラクト。
  49. 前記リガンドは、テトラサイクリン、テオフィリン、グアニン、ガラクチトール、プロゲステロン、マンニトール、エストラジオール、ドーパミン、キニジン、尿素、ジゴキシン、ウラシル、ベラパミル、チオ尿素、ミキシフラキサシン(mixiflaxacin)、チミン、レボフロキシン、コルチコステロン、アセタゾラミド、テストステロン、ドキシサイクリン、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項48に記載のコンストラクト。
  50. 前記リガンドは、テトラサイクリン、テオフィリン、及びグアニンからなる群から選択される、請求項49のコンストラクト。
  51. 前記トランスジーンは、プロスタグランジン合成に関与する遺伝子を含む、請求項39記載のコンストラクト。
  52. 前記トランスジーンは、配列番号52によりコードされるプロスタグランジンエンドペルオキシドシンターゼ2(PTGS2)、及び配列番号53によりコードされるPTGFRを含む、請求項51記載のコンストラクト。
  53. 前記コンストラクトは、アデノ随伴ウィルス(AAV)ベクターである、請求項39〜52のいずれか1項に記載のコンストラクト。
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