JP2020000036A - 展伸性フィルムによるキノコ栽培方法 - Google Patents

Abstract

【課題】栽培室空間を効率良く活用でき、且つ、良好なキノコの発生が確保できるキノコの栽培方法を提供する。【解決手段】キノコの栽培方法は、一定量の培地が充填可能な容器本体２と、上面を被覆する酸素透過性を要しないが展伸性及び透光性を備えたフィルム体４と、その固着手段とを備えた栽培容器１を用いる。ａ）容器本体２と充填した培地との間に０．２〜１．０ｍｌ／ｃｍ３の空気が貯留可能な空間を形成した菌床３を形作った菌床形成工程と、b）菌床３表面に種菌を散布すると共にフィルム体４を固着させる種菌接種工程と、c）菌糸を菌床３に蔓延させた後フィルム体４に空気の流入を促す複数の孔を穿設する菌糸培養前期工程と、d）培地の隆起に展伸性のフィルム体４が追随して原基形成を促す菌糸培養後期工程と、e）フィルム体４を外した状態で子実体の成長を促す子実体生育工程と、f）子実体を採取する採取工程を含んで構成される。【選択図】図１

Description

本発明は、酸素透過性を要しないが展伸性及び透光性を備えたフィルム体を活用し、きのこの成長段階に合わせた雑菌の侵入阻止と空気の供給及び正常な原基形成を促すことができ、効率的で且つ経済性に富んだキノコ栽培方法を提供するものである。

キノコの栽培法には、大別して、培地を蓋の閉まった瓶に詰めて栽培する方法（瓶栽培）と、培地をポリエチレン製等の袋に入れて栽培する方法（袋栽培）が知られている。
瓶栽培にあっては、栽培室の棚に瓶を重ねて積むか又は棚の高さを短寸とすることができる等して、室内に密度を高めて効率良く収納することができるが、他方では、硬質のキャップで閉められるので、培地の隆起が押しつぶされてキノコの原基形成が阻害され、又、キャップを外す際にキャップ素材とキノコとが癒着し、キノコを損傷させてしまう等の発生上の欠点を有している。
一方、袋栽培にあっては、上部に原基形成及び子実体の成長を促す空間を設けることができ、良好な発生条件を備えるが、他方では、その袋の上部に配する発生用の空間が室内への収納を邪魔してしまい、収納密度に欠ける等の欠点を有している。

又、瓶栽培及び袋栽培のいずれにあっても、原基形成や子実体の生育等に必要とされる空気を取り入れるために、瓶体と蓋体との間に隙間を形成したり、不織布製の通気フィルターを装着したりしているが、どちらも発生面に対する空気供給量が不均一となりがちで、キノコの発生部位に偏りを生む一因となっている。

更に、キノコの原基形成には光の照射が必要とされるが、一般的には半透明の素材を用いているため素材通過後の照度は８３％程度に減少するものとなり、原基形成の遅れを招き、培養期間短縮の妨げとなっている。

尚、キノコ栽培培地に対する菌糸塊の生成に対する技術として特許文献１が存する。しかし、これは製造時又は保存時に菌糸塊が生成し難い栽培用培地に接種する方法に関するものであって、菌糸塊の生育を阻害しない本発明とは趣旨を異にするものである。

特開２００６−２８０３７１号公報

本発明は、上記実情に鑑みてなされたもので、酸素透過性を要しないが展伸性及び透光性を備えたフィルム体を活用することで、きのこの成長段階に合わせた雑菌の侵入阻止と空気の供給及び正常な原基形成を促すことができ、且つ、栽培室空間を効率的に活用した高い収納密度と良好なキノコの発生条件が確保することで、効率的で且つ経済性に富んだキノコ栽培方法を提供するものである。

上記課題を解決するために、請求項１記載の展伸性フィルムによるキノコの栽培方法は、保形性を備え上面に開口部を配して一定量の培地が充填可能な容器本体と、該容器本体の上面を被覆する酸素透過性を要しないが展伸性及び透光性を備えたフィルム体と、該フィルム体を容器本体に固定する固着手段とを備えた栽培容器を用い、ａ）該容器本体と充填した殺菌処理後の培地との間に、０．２〜１．０ｍｌ／ｃｍ^３の空気が貯留可能な空間を形成した菌床を形作った菌床形成工程と、b）該菌床表面に種菌を散布すると共に、容器本体をフィルム体で被覆して固着手段で密着固定させる種菌接種工程と、c）透光性の環境下で接種した菌糸を菌床に蔓延させた後、該フィルム体に空気の流入を促す複数の孔を穿設する菌糸培養前期工程と、d）菌糸蔓延によって原基形成が開始され且つ菌糸塊の形成により菌床が隆起する場合に、その隆起に展伸性のフィルム体が追随して菌糸体量の増加を妨害することなく原基形成を促す菌糸培養後期工程と、e）原基形成が完了したら、容器本体からフィルム体を外した状態で子実体の成長を促す子実体生育工程と、f）成熟した子実体を採取する採取工程と、から成ることを特徴とする。

請求項１記載の栽培方法にあっては、菌糸培養前期工程において容器内に雑菌の侵入を許すと菌糸の成長が阻害されてしまう危険があるところ、本発明にあっては、容器本体をフィルム体で被覆して密着固定させる手段を採るので、少しの雑菌の侵入も許さず、その弊害を皆無なものとすることができる。
一方、このフィルム体の被覆によって雑菌の侵入をできるが、その素材を酸素透過性を必要としないフィルム体で形成する本発明にあっては、もしこの酸素透過性のないイルムで容器本体を被覆すると、容器内への空気の流入が阻止され、そのままでは酸素不足により菌糸の蔓延が阻害される虞が生じる。しかし、本発明にあっては容器内に形成される菌床を、容器本体と充填した殺菌処理後の培地との間に０．２〜１．０ｍｌ／ｃｍ^３（培地体積当たりの空間容積）の空気が貯留可能な空間を形成したものとすることにより、栄養成長を旨とする菌糸の蔓延にとって必要最低限の酸素が供給され、支障のない菌糸蔓延を促すことができる。
このとき、フィルム体は、酸素透過性を必要としないが展伸性及び透光性を備えたフィルム体とすることができるから、比較的安価なフィルム体を使用でき、経済的に優れたものとなる。

次いで、その菌糸蔓延後に原基の形成が開始されると、ここには、透光性の下、より多くの酸素が必要とされるが、上記の如くフィルム体を酸素透過性のない素材で構成すると、酸素不足となる虞がある。
しかし、この菌糸の蔓延が進む段階に至ると、菌床には雑菌に対してある種の抵抗性が芽生え、雑菌に対する耐性が備えられるものとなるので、このタイミングを捉えて、菌床に菌糸が蔓延した後に、容器を覆うフィルム体に複数の孔を穿設すると、その孔から周囲の空気の容器内へ流入を促すことができる。すると、原基形成の開始とともに生殖成長へと変わった菌床に、十分な光投与の下、酸素の供給が始まり、同時に、空気流入に伴って雑菌侵入の虞が生じても、これに対する耐性の備えられた菌床は雑菌に抵抗性を発揮し、懸念される弊害を最小限に抑えることができる。結果、子実体の発生に向かっての原基形成を滞りなく進行させることができる。

つつがなく原基形成が促され成長が継続されると、菌床表面には菌糸塊が生まれ、菌床が隆起する場合が多いが、この隆起を放置すると、容器の蓋を固形性のもので覆った場合には、原基形成が妨害される虞がある。しかし、容器本体の上面を展伸性を備えたフィルム体で覆うので、菌床の隆起に追随してフィルム体を伸長させることができ、菌糸塊を抑えてしまい菌糸体量の増加を妨害するという弊を回避することができる。

菌糸が充分に増量され、菌床表面に褐色化が見られる等して原基形成が完了する段階となったら、フィルム体を容器本体から外して、発生室におき、子実体の生育を促すことができる。

充分な菌糸体の増量の下に原基形成が促され、且つ、適正な環境下で成長した子実体は適切な大きさと数を確保することができるものとなり、これを採取して優れたキノコを得ることができる。

その際、本発明に使用する栽培容器によれば、栽培室の棚に重ねて積むか又は棚の高さを短寸とすることができ、栽培室内に多くの数を設置して収納密度を高めることができ、高い収納密度と良好なキノコの発生条件の確保という双方の要求を両立させることができるものとなる。

請求項２記載の栽培法にあっては、菌床形成工程で菌床内に接種穴を形成するので、種菌接種工程において菌床表面に種菌を散布する際に、菌床奥部となる穴の底部付近にまで種菌を行き渡らせることができ、その後の菌糸蔓延、原基形成、子実体の生育等を経て、菌床全体を均一的に活用して効率的なものとし、且つ、短期の栽培を促すものとなる。

請求項３記載の栽培法にあっては、菌床形成工程にあって菌床を１２．５〜８００ｍｍ^３の木材チップで形成することで、チップの間隙に空気の貯留空間を確保でき、菌床の形成が簡潔で、且つ、均一的なものとなる。

請求項４の栽培法にあっては、フィルム体を平滑状としてキノコとの癒着性のないものとすることで、子実体の成長時期等にあってキノコに損傷を与える虞が解消される。

請求項５の栽培法にあっては、容器本体の上部に照明具を配することで、充分な光照射の下で原基形成を促すことができる。

本発明栽培容器を示す斜視図である。 本発明の各工程の流れを示すチャート図である。 本発明の各工程の模式的断面図である。 本発明栽培容器を用いて栽培する状態を示す断面図で、（Ａ）が重ね積みた場合、（Ｂ）が棚に載置した場合を示す。 本発明の別の態様を示す断面図である。 本発明の別の態様を示す断面図である。 本発明の別の態様を示す断面図である。 接種穴を平面からみた写真図である。 子実体が成熟した段階の写真図である。 従来の栽培容器を示す模式的斜視図で、（イ）が瓶栽培、（ロ）が袋栽培の場合を示す。

本発明に適用可能なキノコは、シイタケ、ナメコ、ブナシメジ、エノキタケ、エリンギ等の容器栽培の可能なキノコが対象となる。
菌床３を構成する培地には、広葉樹のオガコ、コーンコブ、綿実カス、針葉樹等が適用できる。

図１に示す如く、本発明栽培容器１には、保形性を備え一定量の培地が充填可能な容器本体２を用いる。
保形性とは、変形の虞ある袋体を除く意であり、図４に示す如く、脚２ａをつけた場合に積み重ね可能な硬質さを備えた素材を指し、例えば、ポリプロピレン等のプラスチックが挙げられる。
この容器１は、栽培容器として機能するもので、上記一定容積の培地を充填可能とすると共に、後述する接種、菌糸の蔓延、原基形成等に必要なよう上部に開口部を設けたものとする。

次いで、本発明にあっては、該容器本体２の上部を、酸素透過性を要しないが展伸性及び透光性を備えたフィルム体４で被覆する。
ここで、酸素透過性を要しないフィルム体とは、酸素透過性を備えるという特性を敢えて必要とすることなく、一般的に非通気性といわれるフィルムであっても使用可能であることを意味する。実質的には、非通気性の比較的安価なフィルムが使用可能であることの意である。
又、展伸性とは、後述する菌糸塊の発生による菌床３の隆起３ａに対して追随して延伸し得る性能をいう。隆起３ａはときに１．５ｃｍ程度となるが、通常１．０ｃｍ未満であり、この範囲に追随できる展伸性を備えたものとする。
透光性とは、上記と同様菌糸の蔓延及び原基の形成に必要な光を、自然光又は照明具６等から採光可能とする性能をいう。
この酸素透過性を要しないが展伸性及び透光性を備えたフィルム体４としては、塩化ビニール製フィルム、ポリエチレン製フィルム等を挙げることができる。
例えば、日立ラップ（日立化成(株)・商標名）を使用でき、該フィルムは、厚み約８μｍで、引張り試験において伸び率がＭＤ方向（フィルムの引き出し方向）に約２００％、ＴＤ方向（フィルムの幅方向）に約３００％を示している。耐熱性が測定方法（東京都消費生活条例の品質表示実施要領）に基づいて１３０℃の値を示し、透光度が光線透過率９８％以上の透明性のラップフィルム体である。

そして、前記フィルム体４には、これを容器本体２に固定する固着手段５を設ける。具体的には、一つ目に、容器本体２の上外縁部を平滑面に形成し、該外縁部にフィルム体を密着させた際、真空密着作用によりフィルム体４が容器本体２に固定される手段がある。二つ目に、容器本体２の上縁部にフィルム体４を被せ、そこをゴム紐又はテープ、糸紐等で縛着する手段がある。三つ目には、バネ体を介して上縁部付近を締め付け可能な器具等を挙げることができる。
いずれにあっても、上記フィルム体４に後述する菌糸塊による隆起作用が加わったとき、該フィルム体４が容器本体２から外れることなく、その密着性を保つ固着性があれば良い。

本発明にあっては、斯かる栽培容器１を用いて、図２に示す如く、菌床形成工程、種菌接種工程、菌糸培養前期工程、菌糸培養後期工程、子実体生育工程、採取工程を施すものとする。

殺菌処理した培地を容器本体２に充填するには２つの方法があり、一つは、培地全体を蒸気滅菌する。二つ目には、培地を容器本体２に充填し、一旦縁部にフィルム体４を装着した後に、殺菌処理する方法がある。具体的には、培地を充填した容器本体２の縁部をフィルム体４で覆い、１２０℃６０分間の蒸気殺菌をする。
いずれが良いかは個別に判断するが、比較的規模が大きな場合には、前者が好適であり、規模の小さな場合には後者が適したものとなる。

該殺菌した培地を充填して菌床３を形成すべき工程にあっては、容器本体２と充填した培地との間に、０．２〜１．０ｍｌ／ｃｍ^３（培地体積当たりの空間容積）の空気が貯留可能な空間を形成した菌床３を形成するものとする。
この０．２〜１．０ｍｌ／ｃｍ^３（培地体積当たりの空間容積）とした理由は、以下の如くである。
先ず、穴の総容積を（Ａ）、培地とフィルム体との間の上部空間の容積量を（Ｂ）、容器本体の体積を（Ｃ）、培地の体積を（Ｄ）としたとき、それぞれについて次の条件を設定した。
（ａ）条件：最小値の設定にあたって、サイズ直径２．５ｃｍ、深さ３ｃｍの穴を３５個穿設するとその総容積（Ａ）は５１５ｍｌとなり、培地とフィルム体との間に０．５ｃｍの間隔を保つとその上部空間容積（Ｂ）は１３５０ｍｌとなり、容器本体のサイズを縦６０ｃｍ、横４５ｃｍ、高さ５ｃｍ（内寸４ｃｍ）としたとき、体積（Ｃ）は１０８００ｃｍ^３となる。培地体積（Ｄ）は、容器体積から穴の総量と上部空間との和を差し引いた値となり、（Ｄ）＝（Ｃ）−（Ａ＋Ｂ）＝１０８００−（５１５＋１３５０）＝８９３５ｃｍ^３となる。
上記（Ａ）、（Ｂ）、（Ｃ）、（Ｄ）に基づいて、容器体積当たりに占める貯留空間容積の割合は空間総量／容器体積となる。この値を算出すると、空間総量／容器体積＝（Ａ＋Ｂ）／Ｄ＝（５１５＋１３５０）ｍｌ／８９３５ｃｍ^３＝０．２０８ｍｌ／ｃｍ^３ ≒０．２ｍｌ／ｃｍ^３となる。
従って、この場合の培地体積当たりの貯留空間容積は０．２ｍｌ／ｃｍ^３となる。
（ｂ）条件：次いで、最大値の設定にあたって、サイズ直径２．５ｃｍ、深さ１．６４ｃｍの穴を３５個穿設するとその総容積（Ａ）は２８１．６ｍｌとなり、培地とフィルム体との間に１．９ｃｍの間隔を保つとその上部空間容積（Ｂ）は５１３０ｍｌとなり、容器体のサイズを縦６０ｃｍ、横４５ｃｍ、高さ５ｃｍ（内寸４ｃｍ）としたとき、体積（Ｃ）は１０８００ｃｍ^３となる。培地体積（Ｄ）＝（Ｃ）−（Ａ＋Ｂ）＝１０８００−（２８１．６＋５１３０）＝５３８８．４ｃｍ^３となる。
（Ａ）、（Ｂ）、（Ｃ）、（Ｄ）に基づいて、容器体積当たりに占める貯留空間容積の割合を算出すると、空間総量／容器体積＝（Ａ＋Ｂ）／Ｄ＝（２８１．６＋５１３０）ｍｌ／５３８８．４ｃｍ^３＝１．００４ｍｌ／ｃｍ^３ ≒１．０ｍｌ／ｃｍ^３となる。
従って、この場合の培地体積当たりの貯留空間容積は１．０ｍｌ／ｃｍ^３となる。

上記条件（ａ）、（ｂ）に加え、比較対象区として、穴を形成せずに上部空間のみで０．１ｍｌ／ｃｍ^３としたもの（条件ｃ）と、逆に穴と上部空間を大きくとって１０．０ｍｌ／ｃｍ^３としたもの（条件ｄ）の４つ条件を設定した。
この４つのタイプについて、シイタケ子実体の発生試験を行った。
栽培条件：対象をシイタケとし、広葉樹オガコに栄養体としてフスマを１０ｗｔ％添加・混合し、加水して６２ｗｔ％の水分量に調整した。６５０×４５０×４０ｍｍ（内寸）の箱型ポリプロピレン製容器本体に培地を充填し、１２０℃・６０分間の蒸気殺菌を行い、培地冷却後に種菌を散布し、日立ラップで被覆した。培養温度２０℃、湿度ＲＨ８０〜９０％、培養期間６０日、照明を作業中は室内点灯、培地表面付近で２００〜３００Ｌｕｘ、０．５〜４時間／日とした。２０日目にフィルムに直径約１ｍｍの孔１００個をあけた。発芽処理は、温度１５℃湿度ＲＨ８０〜９０％の発生室へ移動後、フィルムを除去して浸水を２４時間行い、発芽処理後１０日目に収穫した。

その結果を示すと表１の通りであった。

上記表に基づけば、条件（ｃ）の０．１ｍｌ／ｃｍ^３の空間形成にあっては、しいたけ子実体の発生個数が培地１ｋｇ重当たり１．１個、重さ３９．６ｇと極めて低い発生個数となった。又、条件（ｄ）の１０．０ｍｌ／ｃｍ^３の空間形成にあっては、しいたけ子実体の発生個数が培地１ｋｇ重当たり１．５個、重さ３７．２ｇとなり、再び低い発生個数となることを示した。
これに対し、条件（ａ）の０．２ｍｌ／ｃｍ^３にあっては、しいたけ子実体の発生個数が培地１ｋｇ重当たり７．５個、重さ２１９．１ｇと多数の発生個数及び重量となり、同様に条件（ｂ）の１．０ｍｌ／ｃｍ^３においても、しいたけ子実体の発生個数が培地１ｋｇ重当たり１３．４個、重さ２０９．２ｇと多数の発生個数及び重量となり、ともに高い発生個数及び重量の良好な結果が得られた。
これらから、０．２〜１．０ｍｌ／ｃｍ^３（培地体積当たりの空間容積）の範囲において良好なしいたけ子実体の生育が得られることが実証された。
この結果、本発明における培地体積当たりの空間容積を０．２〜１．０ｍｌ／ｃｍ^３
と設定したものである。

この結果の理由を推察するに、先ず、０．２ｍｌ／ｃｍ^３未満となる条件（ｃ）では、菌糸蔓延に対する充分な酸素が得られず生育が不良となることがある程度予想されるが、逆に１．０ｍｌ／ｃｍ^３以上となる条件（ｄ）においても成長が満足に得られない結果となった。
これは、きのこの成長段階には栄養成長から生殖成長へと切り替わる段階があり、この段階において過剰な酸素が存在すると、却って切り換えに適切な刺激が与えられず、成長不良に繋がることが予想される。
これに対し、０．２〜１．０ｍｌ／ｃｍ^３の範囲となる条件（ａ）、（ｂ）にあっては、菌床に形成した空気の貯留空間から適切量の酸素が供給され、菌糸蔓延に必要な栄養が与えたれると共に栄養成長から生殖成長への切り換えが円滑に行われ、その後の原基形成や菌糸塊隆起等が円滑に行われ良好なきのこ成長へと繋がるものと考えられる。同時に、この貯留空間の形成は、培地と空間を境にして、比較的水分を保持した内側の培地と蒸散により水分の減じた外側の培地という性格の異なる２つの層が形成される場合があり、その水分の濃度落差が上記切り換えへの刺激となることも要因の一つになるものと推察される。

貯留空間の具体的形成手段として、下記の接種穴型、チップ間隙型、上部空間型、小容器型等の態様を挙げることができる。
＜接種穴型＞
接種穴型とは、図１に示す如くで、種菌を接種しようとしたとき、その種菌が菌床３の底部に向かって一定深さにまで達する窪みを形成しようとするもので、ここに窪み空間に貯留用の空気を貯留させると共に、種菌接種後から子実体の成熟に至るまでの菌糸蔓延、原基形成等の各工程が菌床３に対して均一で且つ効率的なものを使用しようとするものである。図８に平面から見た写真図を示した。
例えば、菌床上面面積１ｃｍ^２に対して直径２〜５ｃｍで深さ２．２９ｃｍ〜５．７３ｃｍの穴３ａ（ｏｒ窪み）とし、例えば、直径２．０ｃｍの穴３ａ（窪み）としたとき、４０ｃｍ^２に１個程度の割合に、複数個を穿設する。

＜チップ間隙型＞
チップ間隙型とは、図６に示す如くで、チップ形の木材等を培地とするタイプをいい、チップ形であることからそれらを充填したとき空隙を生じるもので、その大きさは寸法を厚み×長さ×幅で規定したとき、最小で０．５×５×５ｍｍ＝１２．５ｍｍ^３で、最大で２×２０×２０ｍｍ^３＝８００ｍｍ^３となるものが適合し、その結果１２．５〜８００ｍｍ^３の体積を備えるチップが適合範囲となる。
例えば、通常の小さいおが粉は０．５〜２ｍｍ角程度であるところを、厚さ０．５ｍ〜２ｍｍ、一辺の長さ５〜２０ｍｍ程度のサイズの大きめな木質チップを主体に配合する。より望ましくは、加水量（培地含水率）を減らして、菌床３の充填圧を低くするものとし、例えば杉、コーンコブ等の比重が小さく気相が多くなる基材とする。その際の木質チップ配合率は菌床容積の５０％以上が目安となる。

＜上部空間型＞
蓋との上部空間型とは、図５の如くで、容器本体２に被せた蓋体と培地の上部とで形成される空間を指し、この領域に０．２〜１．０ｍｌ／ｃｍ^３（培地体積当たりの空間容積）の貯留空間を形成することをいう。
例えば、縦６０ｃｍ、横４５ｃｍ、高さ５ｃｍ（内寸４ｃｍ）の容器本体に培地を厚さ（深さ）２．５ｃｍに充填し、容器本体の上端開口部をフィルム体で覆った形態とする。このとき、培地とフィルム体との距離は１．５ｃｍとなり、０．６ｍｌ／ｃｍ^３の貯留空間が形成される。

＜小容器型＞
小容器タイプ型とは、図７に示す如くで、比較的大きな容積を持つ容器本体２に対し、小さな容積の容器を用意し、これに培地を充填したものを容器本体２内に敷設し、容器本体と小容器との間に貯留空間を形成するものをいう。
例えば、酸素透過性を備えた素材の紙容器、又は側面に小孔をあけたプラスチック素材の容器を用い、これに培地を充填する。この小容器をより大きな容積をもつ容器本体内に並べ置き、容器本体の開口部をフィルム体４で覆って、密閉状態とする。
容器本体２のサイズを６０×４５×５（内寸４）ｃｍ（１０８００ｃｍ^３）とし、小容器のサイズを直径７．０ｃｍで高さ３．５ｃｍの円筒形とし、この小容器を４８個敷設すると、容器本体２と小容器との間に（１０８００−６４６２）ｃｍ^３／６４６２ｃｍ^３＝０．６７ｍｌ／ｃｍ^３（培地体積当たり）の貯留空間が形成される。

容器本体２に上記要件を満たす菌床３が形成されたら、菌床表面に栽培対象となるキノコの種菌を接種する接種工程を行う。
上記菌床形成工程で、フィルム体４を被せた場合には、該フィルム体４を外して接種する。
接種は、通常の種菌の接種と同様で、微粒子の種菌を水との懸濁液とし、噴霧状に降りかける等して行う（図３（ｂ）参照）。
そして、容器本体２をフィルム体４で被覆して固着手段５で密着固定する（図３（ｃ）参照）。
固着手段５は、上記の如く、容器本体２の上外縁部を平滑面に形成するか、ゴム紐又はテープ、糸紐等で縛着する等して、フィルム体４に後述する菌糸塊による隆起作用が加わったとき、該フィルム体４が容器本体２から外れることなく、その密着性を保つものとする。
該フィルム体４の固着は、容器本体２とフィルム体４との間にできる貯留空間への雑菌侵入によるコンタミネーションを防止する為のものである。
即ち、菌糸培養前期工程においては、雑菌の侵入を許すと、コンタミネーションが起こり、菌糸の成長が阻害されてしまう危険がある。
そこで本発明では、容器本体２をフィルム体４で被覆して密着固定させる手段を採り、少しの雑菌の侵入も許さない形態とする。隙間がすべて閉塞され、どんな微細な雑菌の侵入も防いで、その弊害を皆無なものとすることができる。

容器本体２をフィルム体４で被覆して密着固定させることは、従来菌床表面から散逸していた蒸気による水分の減少を防ぎ、菌床３に含まれていた水分を保持して、菌糸蔓延に必要な水分確保に役立つ。必要に応じて、必要な水分を密閉前の菌床３に含ませておくことも可能である。

接種が完了して、一定の培養期間の経過と共に透光性の環境下で接種した菌糸が菌床３に蔓延してゆくが、その菌糸の蔓延がほぼ終了に近づき、次の原基が形成される間にフィルム体４に複数の孔４ａを穿設する菌糸培養前期工程が実施される（図３（ｄ）参照）。
即ち、先ず、この菌糸の蔓延には、本来酸素が必要とされるが、本発明にあっては、上記の如く、雑菌の侵入を防ぐため容器本体２をフィルム体４で被覆して密着固定させ、且つ、その素材を酸素透過性を必要としないフィルム体４で被覆すると、容器内への空気の流入が阻止されることから、酸素が不足して、そのままでは菌糸の蔓延が阻害される虞がある。
しかし、本発明にあっては、容器本体２と充填した殺菌処理後の培地との間に０．２〜１．０ｍｌ／ｃｍ^３の空気が貯留可能な空間の形成された菌床３が設けられるので、蔓延過程にある菌糸は、その貯留空間Ｓから酸素を吸収し、栄養成長を旨とする菌糸の蔓延にとって必要最低限以上の酸素が供給され、支障のない菌糸蔓延が図られるものとなる。

さて、その菌糸の蔓延が終了に近づき、原基の形成される段階に至ったところの菌糸培養前期工程において、フィルム体４に複数の孔４ａを穿設する処理を施す。
即ち、上記の如く、菌糸が蔓延していく過程にあって通常では菌床３に雑菌の侵入が懸念されるところ、本発明の栽培容器１には、フィルム体４を容器本体２に密閉状に固定する固着手段５が施されているので、雑菌の侵入が防御され、雑菌汚染による菌糸伸長が阻害されることはない。
ところで、この菌糸の蔓延工程がつつがなく進行し、原基の形成が始まろうとする段階に至ると、その菌床３には菌糸蔓延が進むにつれて雑菌への抵抗性が育まれ、多少の雑菌の侵入に対しては一定の耐性が形成されるものとなる。一方で、菌糸の蔓延に終了とともに原基形成が開始されると、栄養成長から生殖成長へと成長段階が切り替わり、そこには、比較的多くの酸素が必要とされる。
そこで、本発明にあっては、この時期を狙って、フィルム体４に複数の孔４ａを穿設する処理を施すものとする。
この意味で、このフィルム体４に孔４ａを穿設すべき菌糸培養前期工程とは、原基形成が開始される初期段階を含む意である。更に詳しい穿設のタイミングは、きのこの品種によって異なるものとなるが、概ね培養開始から１４〜４０日の間で、実質的には２０〜３０日が最適となる。
このフィルム体４に複数の孔４ａを穿設するとは、容器本体２を覆ったフィルム体４に、直径０．５〜２．０ｍｍ程度の孔４ａを２〜７個／１００ｃｍ^２間隔程度で穿つことをいう。その手段は、レーザー光（ＬＢ）や穿孔針等の物理的手段等の別を問わない。
穿孔された孔４ａ周囲から空気の流入が図られ、原基形成に必要とされる酸素が充分に供給される体勢が整う。

さて、原基形成が開始されると、この原基形成にあっては、上記酸素供給に加えて、光の照射が必要となる。
その理由は、原基形成にあっては、キノコの成長が栄養成長から生殖成長へと切り替わる時期であり、この光の存在によって、刺激が与えられ、成長段階の切り替えの契機となるからである。
しかし、従来、一般的に半透明の素材を用いているため、素材通過後の照度は８３％程度に減少し、原基形成の遅れを招き、培養期間短縮の妨げとなっていた。
これに対し、本発明のフィルム体４は、透明体であり、優れた透光性を備えたもので、上記光照射の要求に応え得るものとなる。

この光照射の要求に対し、光源とするのは自然光でも良いが、必要に応じて人工照明を施す。
自然光を利用する場合には、容器本体２の上部に自然光が射し込み可能な隙間を確保し、人工照明の場合には、上部にＬＥＤ等の照明具６を配設する。

さて、原基形成が進むと、容器の表面に、図３（ｅ）に示す如く、菌床３が隆起３ａする現象が見られることがある。
その理由は、以下の如くに、推察される。
菌床３全体に菌糸が蔓延すると、菌糸は原基形成のための被膜を形成すると共に、菌床３内部の菌糸体量を増加させ、養分蓄積を充実させるため菌床３の上部の方から菌糸塊をつくることがある。つまり、原基を形成する菌糸体量を確保するのに必要な空間が菌床３内だけでは確保できず、形成された菌糸塊が菌床３を膨張させ、菌床表面を隆起３ａさせるものと考えられる。
従って、この菌糸塊の形成を抑制してしまうことは、菌糸体量の増加を阻害することになり、適正な原基形成を妨害する結果を招くことになる。
これに対し、本発明フィルム体４は上記の如く、優れた展伸性を示すものである。
従って、菌糸塊の形成により菌床３が隆起３ａする場合に、その隆起３ａに展伸性のフィルム体４が追随し、菌糸体量の増加を妨害することなく適正な原基形成を促すものとなる。
例えば、ポリ塩化ビニールフィルムとしたときは、充分な展伸性が得られる。

菌床表面の略全体が茶褐色を呈し始める等して原基形成が完了したら、容器本体２からフィルム体４を外した状態で子実体の成長を促す生育工程へと進む（図３（ｆ）参照）。
原基形成が終期に近づくと、菌床表面の略全体が褐色化する変化が見られ、これは原基形成が略完了した証左でもある。又、原基形成がほぼ終了し、子実体の発生初期に幼子実体が見られる時期となる。
そこで、この原基形成が終了し、又は、幼子実体の発生の見られる附近の時期を原基形成の完了時と捉え、この時期に、固着手段５を解いてフィルム体４を容器本体２から外し、子実体の生育を促すべく１５℃程度の発生室へと移動させる。
ここでフィルム体４を容器本体２から外すとは、フィルム体４が容器を密閉する状態を脱することをいい、フィルム体４を切って菌床３が露出する状態とすることも含む意である。
フィルム体４を外すとき、フィルム体４とキノコが癒着すると、キノコ発生を損傷させるものとなるが、本発明フィルム体表面を平坦状とすれば、キノコとの癒着性のないものとなる。
この工程は、基本的に通常の子実体の生育と変わらぬ環境であるが、上記菌糸体量の増加が妨害されず充分な原基形成が促された後での子実体の生育となり、適正で多くの子実体の生育が確認されている。

子実体が成熟したら、これを採取し、キノコ製品とする（図３（ｇ）参照）。

以上の如く、本発明によれば、その使用する栽培容器１により、例えば図４（Ａ）に示す如く、容器底部に自立用の脚２ａを適当長さに配すると、容器本体２を重ねて積むことができ、又、図４（Ｂ）に示す如く、棚に積む場合にも、棚の高さを短寸とすることができる。従って、栽培室内により多くの数の栽培容器１を設置することができ、室内に効率良く収納し、収納密度を高めることができる。
同時に、上記の如く、菌床３が隆起する場合に、菌床３の隆起３ａに追随して展伸性に富んだフィルム体４を伸長させることができ、菌糸塊を抑制してしまい菌糸体量の増加を阻害するという発生上の欠点を克服することができる。
従って、高い収納密度と良好なキノコの発生条件の確保という双方の要求を両立させることができるものとなる。

又、充分な酸素供給の確保とその菌床全体への偏りのない均一性から、キノコ発生部位を均質化することができ、且つ、透光性により充分な光が投与され、適正な原基形成が促されると共に栽培期間を短縮させ得ることも上記した通りである。

＜実施例＞
対象をシイタケとし、これに適した菌床３として、広葉樹オガコに栄養体としてフスマを菌床重量の１０ｗｔ％を添加・混合し、加水して６２ｗｔ％の水分量に調整した。
６００×４５０×５０ｍｍの箱型のポリプロピレン製の容器本体２に、直径２０〜３０ｍｍの接種穴を菌床底部１０ｍｍ近くにまで押しあけ、その数３５個を穿設した。
そこを８μｍ厚のポリ塩化ビニール製フィルム（商標：日立ラップ）で覆い、ゴム紐で縛着した。これを１２０℃で６０分間の蒸気殺菌を施した。
冷却後、フィルム体４を一旦外し、シイタケ種菌を接種し、再びフィルム体４を縛着した。
これを２０℃、ＲＨ６０〜８０％に管理した部屋で、６０日間培養した。照明は、作業中に室内照明灯を点灯し、菌床表面付近で２００〜３００ｌｕｘ、１日に０．５〜４時間の照射とした。
２０日目にフィルム体４に縫い針で１００個の孔４ａを穿った。

３０日目から菌床３の隆起３ａが始まり、高さが１０ｍｍ程度に至ったが、被覆したフィルム体４はこれに追随して伸長し、その後４５日目から菌床表面の褐色化が始まり、さらに原基形成が進行した。
培養完了した菌床３を１５℃、ＲＨ８０〜９０％に管理した発生室に移し、フィルム体４を除去し２４時間浸水した。その後１０日目にキノコ（シイタケ）を得た（図９参照）。

この時の初回発生のみのキノコ生重は、単位菌床重量あたり２０％〜２５％であり、培養期間と発生期間を合わせた栽培期間は７０日であった。
一般に用いられている３Ｋｇ菌床の場合は、１００日の培養期間と１２０日の発生期間を合わせた２２０日の栽培期間に収穫できるキノコ生重が７００〜１０００ｇであり、菌床重量の２３％〜３０％である。
今回のラップ利用栽培と既存の３ｋｇ袋栽培を比較すると、単位菌床重量あたりで比較した場合は同等の生重のキノコを、ラップ利用栽培においては既存袋栽培と比較して３０％以下の栽培期間で得られたことになる。

培養完了時点における害菌汚染はなく、フィルム体４のフィルターとしてのバクテリアバリア性も確認できた。
接種穴を形成することで、通気量が多くなり部分的に培地の腐朽と熟成が進み、水分のバランスが適切となった。

１・・ 栽培容器
２・・ 容器本体
２ａ・・脚
３・・ 菌床
３ａ・・接種穴
３ｂ・・隆起
４・・ フィルム体
４a・・ 孔
５・・ 固着手段
６・・ 照明具

Claims (5)

1. 保形性を備え上面に開口部を配して一定量の培地が充填可能な容器本体と、該容器本体の上面を被覆する酸素透過性を要しないが展伸性及び透光性を備えたフィルム体と、該フィルム体を容器本体に固定する固着手段とを備えた栽培容器を用い、
   ａ）該容器本体と充填した殺菌処理後の培地との間に、０．２〜１．０ｍｌ／ｃｍ^３
   の空気が貯留可能な空間を形成した菌床を形作った菌床形成工程と、
   b）該菌床表面に種菌を散布すると共に、容器本体をフィルム体で被覆して固着手段で密着固定させる種菌接種工程と、
   c）透光性の環境下で接種した菌糸を菌床に蔓延させた後、該フィルム体に空気の流入を促す複数の孔を穿設する菌糸培養前期工程と、
   d）菌糸蔓延によって原基形成が開始され且つ菌糸塊の形成により培地が隆起する場合に、その隆起に展伸性のフィルム体が追随して菌糸体量の増加を妨害することなく原基形成を促す菌糸培養後期工程と、
   e）原基形成が完了したら、容器本体からフィルム体を外した状態で子実体の成長を促す子実体生育工程と、
   f）成熟した子実体を採取する採取工程と、
   から成ることを特徴とする展伸性フィルムによるキノコの栽培方法。
2. 請求項１記載の菌床形成工程において、菌床内に接種穴を形成するものとしたことを特徴とする展伸性フィルムによるキノコの栽培方法。
3. 請求項１記載の菌床形成工程において、菌床を１２．５〜８００ｍｍ^３の木材チップで形成したことを特徴とする展伸性フィルムによるキノコの栽培方法。
4. 請求項１〜２記載のフィルム体を、キノコとの癒着性のない平滑状としたことを特徴とする展伸性フィルムによるキノコの栽培方法。
5. 請求項１〜３記載の容器本体の上部に照明具を配したことを特徴とする展伸性フィルムによるキノコの栽培方法。