JP2016537990A - 核酸プローブ及びゲノム断片検出方法 - Google Patents

核酸プローブ及びゲノム断片検出方法 Download PDF

Info

Publication number
JP2016537990A
JP2016537990A JP2016535002A JP2016535002A JP2016537990A JP 2016537990 A JP2016537990 A JP 2016537990A JP 2016535002 A JP2016535002 A JP 2016535002A JP 2016535002 A JP2016535002 A JP 2016535002A JP 2016537990 A JP2016537990 A JP 2016537990A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
sequence
target
probe
nucleic acid
oligonucleotide
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
JP2016535002A
Other languages
English (en)
Other versions
JP2016537990A5 (ja
JP6542771B2 (ja
Inventor
オスカー，フレドリク ダール，カール
オスカー，フレドリク ダール，カール
エリクソン，ジョン，ウロフ
Original Assignee
バナディス ダイアグノスティクス
バナディス ダイアグノスティクス
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by バナディス ダイアグノスティクス, バナディス ダイアグノスティクス filed Critical バナディス ダイアグノスティクス
Publication of JP2016537990A publication Critical patent/JP2016537990A/ja
Publication of JP2016537990A5 publication Critical patent/JP2016537990A5/ja
Application granted granted Critical
Publication of JP6542771B2 publication Critical patent/JP6542771B2/ja
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813—Hybridisation assays
    • C12Q1/6816—Hybridisation assays characterised by the detection means
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813—Hybridisation assays
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813—Hybridisation assays
    • C12Q1/6816—Hybridisation assays characterised by the detection means
    • C12Q1/682—Signal amplification
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813—Hybridisation assays
    • C12Q1/6832—Enhancement of hybridisation reaction
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813—Hybridisation assays
    • C12Q1/6834—Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
    • C12Q1/6853—Nucleic acid amplification reactions using modified primers or templates
    • C12Q1/6855—Ligating adaptors
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2521/00—Reaction characterised by the enzymatic activity
    • C12Q2521/50—Other enzymatic activities
    • C12Q2521/501—Ligase
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2525/00—Reactions involving modified oligonucleotides, nucleic acids, or nucleotides
    • C12Q2525/10—Modifications characterised by
    • C12Q2525/161—Modifications characterised by incorporating target specific and non-target specific sites
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2525/00—Reactions involving modified oligonucleotides, nucleic acids, or nucleotides
    • C12Q2525/10—Modifications characterised by
    • C12Q2525/191—Modifications characterised by incorporating an adaptor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2525/00—Reactions involving modified oligonucleotides, nucleic acids, or nucleotides
    • C12Q2525/30—Oligonucleotides characterised by their secondary structure
    • C12Q2525/301—Hairpin oligonucleotides
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2525/00—Reactions involving modified oligonucleotides, nucleic acids, or nucleotides
    • C12Q2525/30—Oligonucleotides characterised by their secondary structure
    • C12Q2525/307—Circular oligonucleotides
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2531/00—Reactions of nucleic acids characterised by
    • C12Q2531/10—Reactions of nucleic acids characterised by the purpose being amplify/increase the copy number of target nucleic acid
    • C12Q2531/125—Rolling circle
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2537/00—Reactions characterised by the reaction format or use of a specific feature
    • C12Q2537/10—Reactions characterised by the reaction format or use of a specific feature the purpose or use of
    • C12Q2537/143—Multiplexing, i.e. use of multiple primers or probes in a single reaction, usually for simultaneously analyse of multiple analysis

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

本発明は、特に核酸試料の処理方法に関する。いくつかの実施形態において、該方法は：ａ）標的断片を含む試料を核酸プローブにハイブリダイズし、該核酸プローブは：ｉ．第一のオリゴヌクレオチド分子の両末端に位置するヘッド配列及びテール配列；及びｉｉ．該ヘッド配列に相補的な上流フランキング配列、該標的断片に相補的な標的相補配列、及び該テール配列に相補的な下流フランキング配列をその順序で含むスプリント配列を含み、それにより、該標的断片の両末端が、第一のオリゴヌクレオチド分子中の該ヘッド配列及び該テール配列の末端に連結可能に隣接するハイブリダイゼーション産物を生成すること、及びｂ）上記標的断片の両末端を第一オリゴヌクレオチド分子の上記ヘッド配列及びテール配列の末端に連結することにより、上記標的断片並びに上記ヘッド配列及びテール配列を含む環状産物を生成することを含む方法。本発明はまた前記方法を実施するプローブ及びキットに関する。【選択図】図１

Description

相互参照
本出願は、２０１３年１２月２日に出願された英国特許出願第１３２１１９１．７号の利益を主張するものであり、該出願は参照により本明細書に組み込まれる。
本発明の開示は生物学的試料中の特異的核酸配列を検出するためのプローブ、特に多重特異的配列の同時多重検出方法に使用するプローブ、及び当該プローブを核酸断片の検出に使用する方法に関する。本発明の開示は特に下流解析における特異的染色体からのＤＮＡ断片ターゲティングに関する。
ヒト一倍体ゲノムは、２３本の染色体中に３０億の塩基対を有し、ヒト二倍体ゲノムは２３対の染色体中に６０億の塩基対を有する。現代のシークエンシング技術の迅速性及び簡便性により、試料中の個人の全ゲノムまたはＤＮＡ全量のハイスループットシークエンシングを用いて、多くの診断的課題に対するアプローチが可能である。しかしながら、多くのＤＮＡ診断用途では、検査対象の特定の障害に関連することが知られている一つまたは複数の領域に着目してゲノムのサブセットを検査すればよい。
解析前のゲノムの複雑さを低減する数多くの手技が記述されている。ゲノムの短い領域を一つだけ解析する必要がある場合、両サイドの既知の領域に対するプライマーを使って該領域の配列を直接ＰＣＲで増幅してもよい。しかし、ゲノム試料の多くの領域を増幅して解析することが望ましい場合、同一の反応混合物で複数の異なる増幅を同時に行うことで増幅アーチファクトが生じることがある。
ＷＯ２００３／０４４２１６（Ｐａｒａｌｌｅｌｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ，Ｉｎｃ．）及びＵＳ２００９０００４７０１Ａ１（Ｍａｌｅｋ Ｆａｈａｍ）では、共通のオリゴヌクレオチドプライマーが一本鎖核酸断片内部のサイトに連結された標的核酸の多重増幅方法が開示された。共通のプライミングサイトが複数の異なる標的配列にそれぞれ付加されることにより化学量論的増幅を可能にした。
ＷＯ２００５／１１１２３６（Ｏｌｉｎｋ ＡＢ）にも特異的標的配列の増幅によるヒトゲノム配列の特定方法が開示された。該方法は、ゲノム試料を少なくとも一つの規定される末端配列を有する断片に断片化することを含んでいた。該断片にプライマーペアモチーフをそれぞれ含むセレクターコンストラクトを接触させ、ライゲーション後に、選択された標的配列は、該セレクターに共通する該プライマーペアモチーフに特異的なプライマーペアを用いて同時に増幅された。ＷＯ２００５／１１１２３６に記載の上記セレクターコンストラクトは、短いオリゴヌクレオチドにハイブリダイズする長いオリゴヌクレオチドを有しており、各セレクターコンストラクトは、上記標的配列を含有する断片の規定される末端配列に相補的な一つのまたは二つの突出末端を有していた。前記セレクターを前記標的断片に接触させることにより、一つまたは複数のセレクターの突出末端間に該標的断片がハイブリダイゼーションされた。二つの突出末端を有するシングルセレクターの場合、このハイブリダイゼーションにより環状コンストラクトが生成した。一つの突出末端をそれぞれ有する一対のセレクターの場合、ハイブリダイゼーションにより直鎖状コンストラクトが生成した。該標的断片を含有する前記セレクターコンストラクトのライゲーション及びシークエンシングにより前記標的配列が決定された。該セレクターコンストラクトは、該標的配列（または一つの末端部分及び一つの内在性部分）を含有する前記断片の末端部分にのみハイブリダイズするため、上記方法では、各セレクター分子が異なる種類の様々な標的配列にハイブリダイズするように、ハイブリダイズしていない部分が異なる標的配列が選択された。その後、一致する標的の識別は前記コンストラクトの増幅及びシークエンシングにより決定された。ＷＯ２００５／１１１２３６では、上記セレクターを遺伝的変異性の解析方法またはＤＮＡコピー数測定方法に使用することが提案された。
ＧＢ２４９２０４２では、断片をセレクターオリゴヌクレオチド及び少なくとも一つのベクターオリゴヌクレオチドを含む部分的二本鎖プローブに接触させる、上記セレクター方法の改変法が開示された。前記セレクターオリゴヌクレオチドは、上記標的断片に特異的な二つの非隣接領域及び該ベクターオリゴヌクレオチドに対する少なくとも二つの結合部位を含む非標的特異的領域を含有していた。上記ベクターオリゴヌクレオチドは上記標的配列に相補的ではなく、上記セレクターオリゴヌクレオチド上のベクター結合部位に相補的なヌクレオチド配列を含んでいた。該ベクターオリゴヌクレオチドは検出／濃縮のためのエレメントも含有していた。上記方法では、プローブオリゴヌクレオチドの相補的部分が標的断片にハイブリダイズされ、ベクターオリゴヌクレオチド及び標的の連結により、プローブ−標的断片ハイブリッドが生成した後、検出された。
ＷＯ２０１１／００９９４１（Ｏｌｉｎｋ Ｇｅｎｏｍｉｃｓ ＡＢ）はセレクター技術の開発について、消化されたゲノムＤＮＡの断片の一つの末端とプローブのライゲーションを開示した。標的断片の二つの領域に結合され、単離される配列が既知の配列の二つの領域に境界されることが一般的な上述のセレクタープローブと比較して、ＷＯ２０１１／００９９４１に記載のプローブは、既知の配列領域がたった一つの場合に使用することが開示された。ＷＯ２０１１／００９９４１に記載のプローブのいくつかの実施形態には、固相に固定化するためのエレメントが含まれた。標的核酸断片のプローブへのライゲーションにより、標的断片が安定的に捕捉され、非連結断片を除去する高ストリンジェントな洗浄工程が使用可能となり、高い特異性が得られた。
パドロックプローブについても知られている。パドロックプローブは直鎖オリゴヌクレオチドであり、標的相補配列を両末端に有し、非標的相補配列をその間に有する。正しい標的ＤＮＡ配列にハイブリダイズされると、プローブの二つの末端はＤＮＡリガーゼによって頭−尾連結される。ライゲーションは、ライゲーション接合部におけるミスマッチにより阻害されるため、パドロックプローブのライゲーションの成功は、パドロックプローブにより非常に類似した標的配列を区別し、正確な標的を選択的にロック可能にする点で、標的配列に対する高特異的ハイブリダイゼーションに依存する。二本鎖ＤＮＡのらせん構造により、環状プローブ分子は標的ＤＮＡ鎖に連結される。
ローリングサークル増幅としても知られる、環状パドロックプローブのローリングサークル複製による増幅も知られていた。ローリングサークル複製はＵＳ５，８５４，０３３（Ｌｉｚａｒｄｉ）に開示された。ローリングサークル複製は、鎖置換型ＤＮＡポリメラーゼを使用した環状核酸分子の増幅であり、増幅された配列のタンデムリピートを含有する大きなＤＮＡ分子が得られる。上記ＤＮＡポリメラーゼは、所望時間進行する進行性ローリングサークルポリメライゼーション反応におけるプライマー伸長及び鎖置換を触媒する。それにより、標的配列のコピー数の倍化に各サイクルが限定されるＰＣＲ複製の単サイクル及び他の増幅手技よりも、はるかに高度な環状プローブ配列の増幅となる。鎖置換反応のカスケードを用いて追加的増幅が可能である。
Ｆｒｅｄｒｉｋｓｓｏｎら（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．３５（７）：ｅ４７ ２００７）は、所望のＰＣＲ産物の同種のプライマー末端配列に相補的な隣接配列を含有するコレクタープローブを使用した核酸の多重増幅方法である「Ｇｅｎｅ−Ｃｏｌｌｅｃｔｏｒ」について記述した。コレクタープローブがＰＣＲ産物に結合しＰＣＲ産物の末端が結合することによりＤＮＡ環が形成され、ローリングサークル増幅によりユニバーサル増幅が行われ標的配列のコンカテマーである最終産物が生成する。この方法により多重ＰＣＲ反応で正しいアンプリコンが選択的に検出される。これは正しいアンプリコンの末端配列が同種のプライマーペアであって、コレクタープローブにより環状化されている一方で、一つのペアの一つのプライマーと別のペアの一つのプライマーを結合するＰＣＲアーチファクトが環状化していないことによる。
本発明の開示は断片化ゲノムＤＮＡ等の核酸断片を解析する改良方法及びプローブを提供する。本発明のいくつかの実施形態は、標的一本鎖核酸断片の存在のために試料を試験する方法におけるプローブ及びその使用に関する。本発明のいくつかの実施形態は、
標的断片の相補体である標的相補配列及び該標的相補配列に隣接するフランキング配列を含有するターゲティングオリゴヌクレオチドと、
遊離５’または３’末端を有するオリゴヌクレオチド配列を含むプローブであって、
該標的断片及び該プローブとのハイブリダイゼーションにより、該断片を該オリゴヌクレオチド配列の遊離５’または３’末端へのライゲーションの鋳型とする、前記プローブに関する。
本発明のいくつかの実施形態はさらに、一本鎖核酸断片の長さ方向に沿ってハイブリダイズし該断片の各末端に連結するプローブに関する。このようなプローブは、該標的断片の各末端へのライゲーションのための遊離５’末端を有するオリゴヌクレオチド配列及び遊離３’末端を有するオリゴヌクレオチド配列を含む。そして、ライゲーション産物を検出することにより、上記規定される核酸断片の高特異的ターゲティング及び検出が可能となる。
本発明のいくつかの実施形態における方法では、本明細書に記載の通り、規定される配列を含む断片にＤＮＡを消化し、得られたＤＮＡ断片を一本鎖断片（標的）に変性し、標的をプローブと混合することが含まれる。標的をプローブにハイブリダイゼーションすることによりライゲーションの鋳型を生成し、標的を対応するプローブに特異的に結合して環状または直鎖状ライゲーション産物を生成する。ライゲーション産物はその後、例えばエキソヌクレアーゼまたは固相化学により濃縮されてもよく、必要に応じてローリングサークル増幅、ＰＣＲ、または他のＤＮＡ増幅方法により増幅してもよい。
本発明のいくつかの実施形態における重要な利点は、多数のＤＮＡ断片の同時解析である。多数のＤＮＡ断片は下流解析のために特異的に標的化及び選択してもよい。この点は、数千もの染色体特異的ＤＮＡ断片のカウントにより非常に正確な定量化が行われる母体血流中の無細胞胎児ＤＮＡの非侵襲的出生前遺伝学的検査（ＮＩＰＴ）に特に有用である。
一つの態様では、標的核酸の存在のために試料を試験する方法が提供される。本方法は、典型的には、規定される標的核酸断片を生成すること、該標的断片の長さ方向に沿ってハイブリダイズし連結可能な接合部を該断片の３’及び５’末端に付与するプローブと該試料を接触させること、該標的断片を前記３’及び５’末端で該プローブに連結すること、その後二つの連結（二重連結）事象により形成された新しい核酸分子を検出することを含む。
一つの態様において、標的核酸の存在のための試料試験方法であって、
（ｉ） 断片化した核酸の試料を供すること、
（ｉｉ） 前記標的断片が一本鎖となる変性条件を付与すること、
（ｉｉｉ） 前記標的断片よりも長い、内在性標的相補配列を含有するターゲティングオリゴヌクレオチドであって、該ターゲティングオリゴヌクレオチド及び該標的断片間のハイブリダイゼーションにより該ターゲティングオリゴヌクレオチドの上流及び下流フランキング配列間に位置する二本鎖配列が形成される、前記ターゲティングオリゴヌクレオチド、及び
遊離５’及び３’末端をそれぞれ有する、前記上流及び下流フランキング配列にそれぞれ相補的である、ヘッド配列及びテール配列を含む核酸プローブに、前記試料を接触させること、
（ｉｖ） 前記ヘッド配列及び前記テール配列が前記フランキング配列にハイブリダイズし、前記標的断片が、存在していれば、前記標的相補配列にハイブリダイズし、それにより該標的断片の末端が該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端と並んで配置されるアニーリング条件を付与すること、
（ｖ） 前記標的断片が存在する場合、前記標的断片の３’末端が前記ヘッド配列の５’末端に連結されて第一のライゲーション接合部を形成し、該標的断片の５’末端が前記テール配列の３’末端に連結されて第二のライゲーション接合部を形成し、該ヘッド配列及び該テール配列並びに該標的断片を含む核酸連続鎖を含む二重連結産物を生成するライゲーション条件を付与すること、及び
（ｖｉ） 前記二重連結産物が存在するかを検出すること、を含み
前記二重連結産物の検出が前記試料中の前記標的断片の存在を示す、前記方法が提供される。
ほとんどの他のＤＮＡ選択及び検出アプローチとは対照的に、本発明の方法は、核酸断片全体が予め規定または予め決定される場合、すなわち標的断片の配列が既知である場合に特に有用であり得る。本発明の方法を実施する場合において、前記標的断片は、核酸のランダムな断片化というよりも特異的断片化による産物であり、せん断または超音波処理といった物理的手段により生成してもよい。核酸の特異的断片化は制限酵素、ＰＣＲ、または他の断片末端の配列指向性決定により可能となる。
前記ターゲティングオリゴヌクレオチドは標的断片全体と接触し、正確な標的配列の特異的結合を確実にすることが望ましい。これはプローブが、結合する標的断片の長さ方向に沿ってではなく、断片の末端または両末端及び／または内在性領域にハイブリダイズするようにデザインされている従来のアプローチと対照的である。実際に、標的断片に限定される結合は、従来の多くのプローブにおける意図的な設計であり、配列の一部のみが既知の断片の標的化及び検出を可能にした。既知の配列断片の特異的ターゲティング（一つの集団の異なるアレルに起因するわずかな配列変異性の可能性によっては該当する）により、本発明のプローブ及び方法では、偽陽性結果のリスクが非常に低い所望の標的断片の正確な結合及び検出が可能となる。
さらに、前記標的断片の二重連結は、前記方法の高い特異性に寄与する。前記プローブは、核酸の一本鎖断片の各末端すなわち５’及び３’末端で標的配列に連結される。したがって、断片化によって特異的に生成した標的の両末端は、そのヘッド及びテール配列への配列特異的ライゲーションによって検出できる。ライゲーションの配列特異的な性質は、標的断片並びにヘッド及びテール配列と標的オリゴヌクレオチドとのハイブリダイゼーションのための要件や、塩基対ミスマッチによって阻害されるＤＮＡリガーゼの感度によって達成される。標的オリゴヌクレオチドに対する標的断片のハイブリダイゼーションは、結合の特異性に寄与するが、標的断片の５’及び３’末端におけるミスマッチに対する最も高い選択性を付与するライゲーション反応とは対照的に、前記ハイブリダイゼーションは標的中央部のミスマッチにより最も不安定化する。
前記標的オリゴヌクレオチドは、標的断片にヘッド及びテール配列をライゲーションする鋳型として作用する。ヘッド及びテール配列はフランキング配列にハイブリダイズし、該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端間のギャップが画定される。該ギャップにおいて標的断片が標的相補配列にハイブリダイズすることにより、該標的断片の末端が該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端と並んで配置される。好ましくは、前記プローブへの該標的断片及び該ヘッド及びテール配列のアニーリングにより、完全に一致した連結可能な接合部を生成する。二重連結産物はヘッド及びテール配列と標的フラグメントを含む核酸の連続鎖となる。
多数の可能な前記プローブの設計が考えられる。例えば、前記標的断片に対するライゲーションのための５’及び３’末端は、二つの別々の骨格オリゴヌクレオチド上のヘッド及びテール配列またはループを形成して５’末端及び３’末端の間に標的断片を配置する一つの骨格オリゴヌクレオチドの各末端におけるヘッド及びテール配列により付与される。
第一の場合（二つの別々の骨格オリゴヌクレオチド）、二つの骨格オリゴヌクレオチドへ標的断片をライゲーションすることによりヘッド及びテール配列間に該標的断片を含む直鎖状核酸を生成する。
第二の場合（一つのループ状骨格オリゴヌクレオチド）、標的断片のライゲーションによりヘッド及びテール配列間に標的配列を含む環状核酸を生成する。
さらに別の場合では、アニーリング条件下でターゲティングオリゴヌクレオチドがループ構造を形成するように、一方または両方のヘッド及びテール配列が該ターゲティングオリゴヌクレオチド上に付与されてもよい。そのような場合、二重連結産物は、設計に応じて直鎖状または環状核酸分子であってもよい。
生成物の検出は、核酸の連続鎖を形成するためのヘッド及びテール配列と標的断片間のライゲーションの成功に影響される。通常、二重連結産物は、シグナル生成のために両方のライゲーション事象を発生させるアプローチを用いて検出する。例えば、検出には両ライゲーション接合部全域の増幅（例えば、ＰＣＲによって、またはプローブ環状化の実施形態の場合はローリングサークル複製によって）や、連続核酸鎖を一方の末端で捕捉し他方の末端で検出することが含まれる。ライゲーションによる標的断片とプローブの共有結合により強い結合が形成されるため、ストリンジェントな洗浄を用いて、ヘッド及びテール配列とターゲティングオリゴヌクレオチドの相互ハイブリダイゼーションを阻害し、該ヘッド及びテール配列が共有結合していない非連結核酸を除去できる。
本発明の方法及びプローブのこれらの特徴により、標的断片の高特異的選択が可能になる。該方法を複数の標的断片の同時多重検出に適用する場合、標的核酸の非常に正確な検出及び定量化が可能となる。その高い特異性から、本発明の方法は、少量の試料の診断的用途及び／または異なる標的核酸の相対量のわずかな差の検出、例えば母体の血液試料由来の胎児染色体の異数性の診断または患者の正常組織試料中の微量な腫瘍ＤＮＡの存在の検出、または感染性因子由来の核酸断片の検出に特に適している。
標的断片の高度に特異的な認識により、偽陽性シグナルを生成せずに比較的高いプローブ濃度を採用できることから、反応収率及び効率が向上する。これは、低変異性が重要であり標的の存在数が低い診断的用途、例えば無細胞ＤＮＡの解析によるＮＩＰＴ、無細胞循環腫瘍ＤＮＡの検出、及び感染性因子由来のＤＮＡの検出等において非常に重要である。本発明の方法のいくつかの実施形態においては、血液中の無細胞ＤＮＡまたはホルマリン固定パラフィン包埋ＤＮＡのような断片化したＤＮＡの解析用途において重要である、短いＤＮＡ断片の高特異的解析が可能である。
図３及び図４を参照し、ここでは特に核酸試料を処理する方法について述べる。いくつかの実施形態において、該方法は：ａ）標的断片（「ＤＮＡ標的」）を含む試料（例えば、制限酵素により消化された試料）を核酸プローブにハイブリダイズすることを含み、該核酸プローブは：ｉ．第一のオリゴヌクレオチド分子の両末端に位置するヘッド配列及びテール配列；及びｉｉ．該ヘッド配列に相補的な上流フランキング配列、該標的断片に相補的な標的相補配列、及び該テール配列に相補的な下流フランキング配列をその順序で含むスプリント配列を含む（図３及び４に図示されるように、「スプリント配列」とはオリゴヌクレオチド中の配列を意味し、二つ以上の他のポリヌクレオチドにハイブリダイズされると「スプリント」として作用しそれらポリヌクレオチドを隣接するように配置して連結されるようにする配列である）。図３及び４に示すように、本方法で使用される前記スプリント配列（「ターゲティングオリゴヌクレオチド」と称する場合もある）は、前記ヘッド配列に相補的な上流フランキング配列、前記標的断片に相補的な標的相補配列、及び前記テール配列に相補的な下流フランキング配列を含有する。このハイブリダイゼーション工程では、第一オリゴヌクレオチド分子のヘッド及びテール配列の末端に標的断片の両末端が連結可能に隣接しているハイブリダイゼーション産物を生成する。連結可能に隣接する二つの配列という意味における「連結可能に隣接」という表現は、二つのオリゴヌクレオチド間に介在するヌクレオチドが存在しないためリガーゼにより互いに連結可能であることを意味する。前記方法の次の工程は：ｂ）上記標的断片の両末端を第一オリゴヌクレオチド分子の上記ヘッド及びテール配列の末端に連結することにより、上記標的断片並びに上記ヘッド及びテール配列を含む環状産物を生成することを含む。このライゲーション工程を図１に示す（図３及び４に示すように、前記方法は異なる様式で実施してもよく、第一工程で使用される核酸プローブは一つのまたは二つのオリゴヌクレオチドから構成できる）。
環状産物はローリングサークル増幅（ＲＣＡ）で増幅可能なため、検出に非常に有利である。ＲＣＡにより数百または数千コピーの環状産物が単分子中に生成し、それにより該環状産物を効率よく増幅し比較的簡単に、例えば該産物中のモチーフにハイブリダイズする標識オリゴヌクレオチドを使用して検出できる。
図１に示すように、本方法はさらに、核酸プローブ中の配列（例えば、ヘッド配列、テール配列、またはそれらの間の配列）にハイブリダイズするプライマーを用いたローリングサークル増幅によって環状産物を増幅することを含んでいてもよい。これらの実施形態では、本方法はさらに、生成したローリングサークル増幅産物の数を定量化し、それにより試料中の前記標的断片の量の推定値を求めることを含んでいてもよい。これらの実施形態では、それら産物を、環状産物中のいずれかの配列に相補的なプライマーを使用したローリングサークル増幅により増幅して複数のＲＣＡ産物、例えば単一の「クローン化」断片に対応する産物を生成してもよい。ローリングサークル増幅産物の数は、例えばＲＣＡ産物を支持体（スライド）の表面に広げ、該ＲＣＡ産物を標識化オリゴヌクレオチド（例えば、蛍光標識されたオリゴヌクレオチド）を使ってハイブリダイズし、該支持体の一領域における離散シグナル数を顕微鏡検査、例えば蛍光顕微鏡検査によってカウントすることにより推定可能である。ラベリングは、該産物を該支持体上に広げる前後に実施可能であり、各ＲＣＡ産物は数千コピーの同一配列を含有しているため、標識化オリゴヌクレオチドに対して存在する数千の結合部位によりシグナルを増加させる。多重増幅の実施形態（例えば、二つの異なる染色体に対応するＲＣＡ産物がカウントされる）では、１つの染色体に対応するＲＣＡ産物は１つのフルオロフォアで標識することができ、別の染色体に対応するＲＣＡ産物は異なるフルオロフォアで標識することができるため、異なるＲＣＡ産物を別々にカウントできる。
多くの用途（例えば、無細胞ＤＮＡの解析による非侵襲的出生前診断）で、特定の染色体（例えば、２１番染色体）に対応する断片の数をバイアスなく極めて正確に決定する必要があるので、個々のＲＣＡ産物からのシグナルを定量化する意義は大きい。代表的な解析方法では、ある配列が他の配列よりも非常に高い効率で増幅されるという点で非常にバイアスの高い手技としてもよく知られているＰＣＲが使用される。このためＰＣＲに基づく戦略は多くの診断的試みにおいて非現実的である。
図１に示すように他の実施形態では、前記標的断片をＰＣＲで増幅し定量化してもよい。明らかなように、該標的断片に付加されるフランキング配列及び／またＰＣＲプライマーは、例えば以下の用途において互換性がある：Ｉｌｌｕｍｉｎａの可逆的ターミネーター方法、Ｒｏｃｈｅのパイロシークエンシング法（４５４）、Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓのライゲーションによるシークエンシング（ＳＯＬｉＤプラットフォーム）、またはＬｉｆｅ ＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓのＩｏｎ Ｔｏｒｒｅｎｔプラットフォーム。これらの方法の実施例が以下の文献に記載されている：Ｍａｒｇｕｌｉｅｓら（Ｎａｔｕｒｅ ２００５ ４３７： ３７６−８０）；Ｒｏｎａｇｈｉら（Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ １９９６ ２４２： ８４−９）；Ｓｈｅｎｄｕｒｅ（Ｓｃｉｅｎｃｅ ２００５ ３０９： １７２８）；Ｉｍｅｌｆｏｒｔら（Ｂｒｉｅｆ Ｂｉｏｉｎｆｏｒｍ． ２００９ １０：６０９−１８）；Ｆｏｘ ら（Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ． ２００９；５５３：７９−１０８）；Ａｐｐｌｅｂｙら（Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ． ２００９；５１３：１９−３９）；及びＭｏｒｏｚｏｖａ（Ｇｅｎｏｍｉｃｓ． ２００８ ９２：２５５−６４）。これらの文献は参照により、方法及び該方法の特定の工程、該工程の全ての出発物質、試薬、及び最終産物について本開示に含まれる。これらの実施形態において、環状産物を増幅及び配列決定可能であり、試料中の断片の存在量を該断片に対応する読み出された配列の数をカウントすることにより推定可能である。
図３に示すように特定の実施形態では、前記スプリント配列は前記ヘッド及びテール配列と異なる分子、つまり「第二の」オリゴヌクレオチド分子に含まれていてもよい。このように、本方法の開始時に使用する核酸プローブは二つのオリゴヌクレオチド（図３に示す「骨格」オリゴヌクレオチド及び「ターゲティング」オリゴヌクレオチド）から構成されていてもよい。
図４に示すように他の実施形態では、前記スプリント配列は前記ヘッド及びテール配列と同じ分子、すなわち「第一の」オリゴヌクレオチド分子に含まれていてもよい。このように、本方法の開始時に使用する核酸プローブは、単一のオリゴヌクレオチドから構成されてもよい。
前記標的相補配列は核酸プローブ中の標的相補配列の長さに応じて任意の長さであってもよい。いくつかの実施形態では、標的相補的配列の長さは、１０〜１００、例えば１０〜５０または１０〜３０ヌクレオチドである。以下に述べるように、標的相補的配列は、標的断片に対して一つまたは複数のミスマッチ（例えば、１、２、３、４、５、６以上、１０以下またはそれ以上）を含有し、ある場合では、標的相補配列の逆相補鎖と標的断片との同一性が少なくとも８０％、少なくとも９０％、または少なくとも９５％であってもよい。
該フランキング配列は設計に応じて任意の長さであってもよい。いくつかの実施形態では、該フランキング配列の長さが１０〜４０ヌクレオチド、例えば、１０〜３０ヌクレオチドである。
いくつかの実施形態では、試料はゲノムＤＮＡ、例えば実質的に任意の生物からのゲノムＤＮＡの断片を含んでいてもよく、任意の生物は限定されないが、植物、動物（例えば、爬虫類、哺乳類、昆虫類、蠕虫類、魚等）、組織試料、細菌、真菌（例えば、酵母）、ファージ、ウイルス、死体組織、考古学的／古代試料等が挙げられる。特定の実施形態において、前記方法に使用されるゲノムＤＮＡは哺乳類由来でもよく、哺乳類としてヒトが挙げられる。例示的な実施形態では、ゲノム試料は、ヒト、マウス、ラット、またはサル細胞等の哺乳類細胞由来のゲノムＤＮＡを含んでもよい。該試料は、培養細胞または臨床試料の細胞、例えば組織診、掻爬物、洗浄液や法医学試料の細胞（すなわち、犯罪現場で採取された試料の細胞）から作製してもよい。特定の実施形態において、核酸試料は、細胞、組織、体液、糞便等の生体試料から得られる。対象となる体液は、限定されないが、血液、血清、血漿、唾液、粘液、痰、脳脊髄液、胸膜液、涙液、乳糜管液、リンパ液、喀痰、髄液、滑液、尿、羊水、精液が挙げられる。特定の実施形態において、試料は、ヒト等の対象から得られる。いくつかの実施形態では、分析試料は血液、例えば妊婦の血液から得られた無細胞ＤＮＡの試料であってもよい。特定の実施形態において、ゲノムＤＮＡは、例えば全ゲノム増幅方法を用いて、断片化の前に増幅してもよい。
前記スプリント配列が第二のオリゴヌクレオチド分子内にある実施形態（図３に示す）では、第二のオリゴヌクレオチドは、環状産物を濃縮するために使用される捕捉部分をさらに含んでいてもよい。これらの実施形態では、前記方法は：ｃ）捕捉部分を固相に結合することにより環状産物を固定化すること；及びｄ）該固相を洗浄して連結されていない核酸及び他の反応成分を除去することにより、該環状産物を濃縮することを含んでいてもよい。第二のオリゴヌクレオチドは、例えば、−ＬＣ−ビオチン、−ＬＣ−ＬＣ−ビオチン、−ＳＬＣ−ビオチンまたは−ＰＥＧｎ−ビオチン（ｎは３〜１２）といったリンカーの有無にかかわらず、ビオチン部分、例えばビオチンまたは、デスチオビオチン、オキシビオチン、２’−イミノビオチン、ジアミノビオチン、ビオチンスルホキシド、ビオシチン等のビオチン類似体を含有してもよく、環状産物はストレプトアビジンが結合した基質を使用して濃縮できる。ビオチンは少なくとも１０−８Ｍの親和性でストレプトアビジンに結合する。
非侵襲的な出生前検査の実施形態では、前記標的断片は、ヒト２１、１３、または１８番染色体由来でもよい。
いくつかの実施形態では、前記方法は前記試料を少なくとも５０（例えば、少なくとも１００、少なくとも２００、少なくとも５００、少なくとも１，０００、少なくとも２，０００、または少なくとも５，０００）セットの前記プローブでハイブリダイズすることを含み、前記プローブは、同一染色体（例えば、例えば、ヒト２１、１３、または１８番染色体）上の異なる断片を標的にし、該方法により該標的断片を含む複数の環状産物が得られる。生成した環状産物の数は、上述したように、例えばＲＣＡを使用して増幅したＲＣＡ産物の数をカウントすることにより定量できる。
いくつかの実施形態において、前記方法は前記核酸プローブのセットの第一のセット及び第二のセットと前記試料をハイブリダイズすることを含み、該プローブの第一及び第二セットは該試料中の第一の染色体及び第二の染色体をそれぞれ標的とし（つまり上述のように断片をハイブリタイズし連結することで環状産物を生成する）、ローリングサークル増幅（ＲＣＡ）により該環状産物を増幅し、第一の染色体に対応するＲＣＡ産物の数を第一の染色体に対応するＲＣＡ産物の数と比較し、それにより該試料中の染色体由来のＤＮＡの相対量の推定値を求める。
いくつかの実施形態において、前記方法は前記核酸プローブのセットの第一のセット及び第二のセットと前記試料をハイブリダイズすることを含み、該プローブの第一及び第二セットは該試料中の染色体の第一領域及び第二領域をそれぞれ標的とし（つまり上述のように断片をハイブリタイズし連結することで環状産物を生成する）、ローリングサークル増幅（ＲＣＡ）により該環状産物を増幅し、第一の染色体領域に対応するＲＣＡ産物の数を第二の染色体領域に対応するＲＣＡ産物の数と比較し、それにより該試料中の染色体領域由来のＤＮＡの相対量の推定値を求める。本実施形態は、例えば欠失または複製の識別に使用できる。
また本明細書は、核酸プローブを含む組成物を提供し、該核酸プローブは：ｉ．第一のオリゴヌクレオチド分子の対向する末端に位置するヘッド配列及びテール配列；ｉｉ．該ヘッド配列に相補的な上流フランキング配列、ヒトゲノム中の標的断片に相補的な標的相補配列、及び該テール配列に相補的な下流フランキング配列をその順序で含むスプリント配列を含み、前記プローブは、第一のオリゴヌクレオチド、該スプリント配列、及び該標的断片が互いにハイブリダイズする時に、該標的断片の両末端が、第一オリゴヌクレオチド分子中の該ヘッド配列及び該テール配列の末端と連結可能に隣接するように設計されている。特定の実施形態において、該組成物は、少なくとも５０（例えば、少なくとも１００、少なくとも２００、少なくとも５００、少なくとも１，０００、少なくとも２，０００、または少なくとも５，０００）の該核酸プローブの第一のセットを含んでいてもよく、該プローブの該標的相補配列は第一のヒト染色体（例えば、２１、１３、または１８番染色体）の異なる標的断片に相補的である。
特定の実施形態において、前記組成物は、少なくとも５０（例えば、少なくとも１００、少なくとも２００、少なくとも５００、少なくとも１，０００、少なくとも２，０００、または少なくとも５，０００）の前記核酸プローブの第二のセットを含んでいてもよく、該プローブの第二セットの標的相補配列は第二のヒト染色体の異なる標的断片に相補的である。いくつかの実施形態では、第一のヒト染色体は２１番染色体であってもよく、第二のヒト染色体は１３または１８番染色体であってもよい。いくつかの場合において、第二ヒト染色体は２１、１３、または１８番染色体ではない。
当業者は、以下に記載の図面は例示の目的のみに記載されていることを理解するであろう。これら図面は決して本発明の範囲を限定するものではない。
図１は、環状ＤＮＡ分子が形成されＲＣＡまたはＰＣＲによって増幅される本発明の方法の一実施形態を示す模式図である。 図２は、直鎖ライゲーション産物が形成され固相試薬で濃縮される本発明の方法の一実施形態を示す模式図である。 図３は、標的断片に結合した環状骨格オリゴヌクレオチドを含むプローブを示す図である。前記プローブは二つのバージョンＡ及びＢとして図示される。 図４は、結合した標的断片を有する環状の単一オリゴヌクレオチドプローブを示す図である。 図５は、結合した標的断片を有する、ターゲティングオリゴヌクレオチド及びループ状の骨格オリゴヌクレオチドから構成される環状ダブルループプローブを示す図である。 図６は、結合した標的断片を有する、ターゲティングオリゴヌクレオチド及び直鎖状骨格オリゴヌクレオチドから構成される直鎖状ループプローブを示す図である。 図７は、結合した標的断片を有する、二つの骨格オリゴヌクレオチドを含む直鎖状プローブを示す図である。 図８は、本明細書に記載される方法の特異性を示すゲルの画像である。 図９は、本明細書に記載される方法の精度を示すグラフである。 図１０のパネルＡは、スライド表面上の標識されたＲＣＡ産物の画像を示し、パネルＢは、異なる染色体由来の断片の比率を個々のＲＣＡ製品をカウントすることによって正確に決定できることを示す。
標的核酸断片
前記プローブによって結合される前記標的断片は、核酸の一本鎖断片である。いくつかの実施形態において、本発明の方法では配列が予め規定された標的断片を結合する。末端を含む断片全体の配列が既知であってもよい。予め規定された配列の既知の断片は、ランダムではなく特異的な核酸の断片化によって作成することができる。具体的な断片化方法には、制限酵素による消化、ＰＣＲ（例えば、多重ＰＣＲ）、及び他の断片末端の配列指向性決定方法が含まれ、他の酵素、リボザイム、またはそれらを組み合わせた手技が含まれる。
断片化方法の一つは、制限エンドヌクレアーゼまたは二つ以上の制限エンドヌクレアーゼの組み合わせによる消化である。よって、断片化された核酸の試料を制限酵素で消化することができ、標的断片は制限断片であってもよい。
様々な特異的核酸切断酵素が知られており、本発明では任意の適切な酵素を使用してもよく、特定の核酸配列内の予め規定された位置を切断する酵素、または特異的核酸認識配列の前後で切断するエンドヌクレアーゼ切断酵素、及びニッキング酵素が含まれる。リボザイム等の触媒核酸をＤＮＡ断片化に使用することもできる。これらの酵素により二本鎖核酸を切断して平滑末端または付着末端を作成してもよく、または一本鎖核酸を切断してもよい。様々な種類の制限酵素が知られており、Ｔｙｐｅ Ｉ、Ｔｙｐｅ ＩＩ、Ｔｙｐｅ ＩＩＩ、Ｔｙｐｅ ＩＶ及びＴｙｐｅ Ｖ酵素が含まれる。適切な酵素または酵素の組み合わせを前記方法の使用のために所望に応じて選択することができる。例えば、試料中の核酸（例えば１０ｎｇのＤＮＡ）を対応する互換性のある制限酵素バッファー中の制限酵素（例えば１Ｕ）で消化してもよい。この反応では、適切な条件下で（例えば３７℃で１時間）インキュベーションすることにより酵素を不活性化してもよい（例えば８０℃で２０分）。
前記断片化された核酸を提供する他の簡便な方法では、該核酸由来の特異的直鎖状配列の増幅にプライマーを使用する。多重ＰＣＲは、複数の特異的プライマー対で核酸を処理し複数の特定の断片を増幅することに使用できる。この場合、標的断片の末端は、プライマー対の配列に対応する。
多くの診断及びその他の用途では、前記試料は断片化された染色体（例えば、ヒト染色体または微生物の染色体）である。前記標的断片は、生物のゲノムの染色体に特異的なゲノム断片であってもよい。換言すれば、標的断片はゲノムの一つの染色体のみに認められ他の染色体に認められなくてもよい。一般に、前記方法は、標的断片が一つのヒト染色体に認められる、つまりその染色体以外のヒト染色体には認められない場合のヒトゲノムの分析に使用されるであろう。例えば、該断片は、２１番染色体に特異的であってもよい。
標的断片は染色体の一つの遺伝子座に特異的であってもよい。したがって、その染色体座に認められるが同一のゲノムの同じまたは他の染色体の他の遺伝子座に認められなくてもよい。例えば、該断片はヒト染色体の１つの遺伝子座に特異的であってもよい。
試料中のある核酸種はいくつかの変異性を包含してもよく、例えば、試料は母系ＤＮＡと胎児ＤＮＡを含有する母体血液から得られた核酸のような、異なる個体の染色体を含んでもよい。目的の核酸種は特定の染色体であってもよいが、胎児または母体起源かについてその染色体の全てのコピーを検出することが簡便である。よって、目的の種は、１つの染色体または染色体遺伝子座であってもよく、前記標的配列は、該染色体または遺伝子座の母体と胎児両方のコピーにおける該染色体または染色体遺伝子座に認められてもよい。
核酸の試料は、例えば患者由来の生物学的組織または体液試料として、任意の適切な方法で提供してもよい。試料は、血液試料、全血、血漿、血清、または組織のホルマリン固定パラフィン包埋試料といった組織試料であってもよく、血液もしくは組織から抽出された核酸試料であってもよい。
前記試料は核酸を含む任意の試料であってもよい。該試料に含まれる核酸はＤＮＡ及び／またはＲＮＡであってもよく、例えば全ゲノムＤＮＡ、生物個体由来のｃＤＮＡ、組織や細胞集団またはそれらの分画等の複合体であってもよい。この点において、例えば、核酸単離手技または細胞溶解手技による直接産物であってもよく、さらに何らかの方法で分画または精製されてもよく、例えば、ｃＤＮＡを生成するＲＮＡ等、何らかの方法で部分的にまたは全体的に分離または処理された核酸を含んでもよい。前記試料は、例えば微生物（例えば、細菌または真菌）、植物、または動物等の任意の真核生物または原核生物またはウイルス源由来であってもよい。好ましくは、該試料はヒトゲノムＤＮＡ等のヒト起源のものである。該試料は、検出される核酸が微生物、例えば、細菌、ウイルス、または真菌由来である動物の組織または血液試料であってもよい。非侵襲的出生前診断に関する方法では、該試料は妊婦の血液由来で胎児のＤＮＡを含む。他の例では、検出または定量される核酸は腫瘍関連ＤＮＡである。
通常、前記方法はインビトロ試料で実施される。したがって、該方法は一般的に人体や動物体におけるインビボでの診断や手術または治療を含まない。しかしながら、インビトロでの診断方法の結果を用いて患者に診断後の治療について知らせてもよい。
標的核酸の変性
前記プローブは、一本鎖断片及びターゲティングオリゴヌクレオチドの標的相補配列間のハイブリダイゼーションを介して一本鎖の標的核酸を認識及び結合する。よって、試料中の標的断片が一本鎖にされていない場合、相補的核酸鎖から一本鎖の標的断片を分離するための変性条件を付与する。
変性条件は、相補的配列から標的断片を分離するために十分に高い温度としてもよい。変性条件としては、９５℃で適当な時間、例えば１０分間、インキュベーションしてもよく、化学的変性を行ってもよい。
相補性
標的断片の存在のための試料検査方法は、核酸プローブと試料を接触させることを含んでいてもよく、該プローブは、
該標的断片の相補体である標的相補配列及び該標的相補配列に隣接するフランキング配列を含有するターゲティングオリゴヌクレオチド、及び
遊離５’末端または３’末端を有する、該フランキング配列に相補的なオリゴヌクレオチド配列を含む。
プローブの適切な濃度は、試料中の一つまたは複数の標的断片の濃度（または予想される濃度）に基づいて決定することができる。実施例に示すように、プローブは、プローブ当たり１０ｐＭの濃度で試料に添加できる。試料を複数のプローブ（例えばプローブのセット）と接触させる場合には、個々のプローブの濃度は１０ｐＭであってもよい。好ましくは、プローブは、検出または定量する対象の核酸種の予想される濃度を超えて使用される。過剰のプローブを使用すれば、確実に試料中に存在する標的配列の全てのコピーが認識される。これにより、検出感度が最大化する。定量化を伴う場合にも、ライゲーション産物またはプローブのセットからの累積シグナルの検出が試料中の標的配列の量に比例することが確実になる。
アニーリング条件下で、標的断片（存在する場合）が標的鎖の標的相補配列にハイブリダイズし、オリゴヌクレオチド配列はフランキング配列にハイブリダイズすることにより、オリゴヌクレオチド配列の遊離５’末端または３’末端が標的断片の３’末端または５’末端に並列する。よって、ターゲティングオリゴヌクレオチドは、オリゴヌクレオチド配列へのライゲーションのための標的断片の鋳型となる。二重連結事象において、標的断片の３’末端はヘッド配列の５’末端に連結され、標的断片の５’末端はテール配列の３’末端に連結されてもよい。
本発明のプローブでは、標的断片に対する特異性は、前記標的相補配列が前記標的断片の正確な相補体である場合に最大となり、それらの間のハイブリダイゼーションが完璧となる。しかし、これは全ての場合に必須ではなく、ミスマッチの度合いが低い場合も許容でき、例えば試料中に存在する正確な対立遺伝子の断片を検出することが望まれる対立遺伝子変異を示す断片の検出を可能にする。もしくは、多重プローブを変異体配列のために設計することができる。これにより異なる対立遺伝子または変異の検出及び識別が可能となる。本発明に係るプローブは、多数の異なるプローブが反応に含まれる多重方法において最も有利に使用される。そのような複数のプローブ内では、プローブの大半は標的断片に対し完全な相補性を持つが、いくつかのプローブが少ないミスマッチを持つ標的に結合するであろうことが想定される。
好ましくは、前記標的相補配列は前記標的断片に対し５個未満の塩基対ミスマッチを有する。該標的断片及び該標的相補配列間に、１個、２個、３個または４個の塩基対ミスマッチがあってもよい。該相補的配列がミスマッチ位置でループを形成するように、ミスマッチは、対応する塩基が一方の配列に存在しない位置にあってもよく、または非相補的ヌクレオチドが一方の配列に存在し他方の配列の対応する位置の塩基と対にならない位置でミスマッチが生じてもよい。ＡまたはＴとＣまたはＧといった間違った塩基対が形成される場合、二本鎖の塩基間で水素結合は起こらないが、そのミスマッチに隣接するヌクレオチド間での塩基対形成により、前記標的断片及び前記標的相補的配列間でハイブリダイゼーションは起こりうる。ミスマッチは、ゆらぎ塩基であってもよい。通常、ゆらぎ塩基は、標的断片における既知の遺伝的変異の位置と対になる標的相補配列中の位置に対応する。プローブは、ゆらぎ塩基位置に対する特異的な合成サイクル中に１つまたは複数のジデオキシヌクレオチドを添加することによって合成することができる。これは、従来のオリゴヌクレオチド合成に典型的である。もしくは、複数の別個のプローブを、各遺伝子変異体に１つずつ作製してもよい。これは、プローブのマイクロアレイによる合成に典型的である。ゆらぎ塩基は、異なるコドンが同一のアミノ酸をコードする場合のコドン間の単一ヌクレオチドの違いに相応し得る。
一般的に、より長い標的断片をハイブリダイズするために標的相補配列を長くすると、より短い標的相補配列と比較して高いミスマッチ数を許容できる。標的相補配列は、標的断片に対し、例えば最大で８塩基対に一つ、９塩基対に一つ、または１０塩基対に一つのミスマッチを有してもよい。いかなるミスマッチも、ライゲーションまたは制限酵素消化等の配列特異的標的断片化を阻害しないように、標的相補配列及び標的断片の内部領域に限定されるべきである。したがって、好ましくは、標的断片と標的相補配列と間の完全な相補性が、標的断片の各末端の６〜８個の末端ヌクレオチド、好ましくは１０個の末端ヌクレオチドに認められる。
一般に、標的断片と標的相補配列は同じ長さである。よって標的断片は全長にわたって標的相補的配列に結合している。標的オリゴヌクレオチドへの標的断片のハイブリダイゼーションは、標的分子の両末端または２つの隣接していない領域へ結合するプローブと対照的に、２つの核酸分子間の単一の結合事象を表す。
標的相補配列は、少なくとも１０ヌクレオチド、例えば、少なくとも１５ヌクレオチドの長さを有していてもよい。最大２０、２５、３０、３５、または４０ヌクレオチド長であってもよい。好ましくは１０〜２０ヌクレオチド、１０〜３０ヌクレオチド、及び１０〜４０ヌクレオチド範囲である。このような比較的短い標的相補配列は、それに応じた短い断片を結合するのに適している。ＤＮＡリガーゼは塩基対のミスマッチに感受性があり、優先的に完全にマッチした配列を連結するので、短い配列は二重連結反応の特異性に寄与する。ミスマッチが、二本鎖配列に結合したＤＮＡリガーゼのフットプリントに存在する場合、上記配列は連結されない可能性があるので、プルーフリーディング工程を追加する。これにより同一ではないが類似した配列の断片に優先して標的断片を検出するための高い特異性を確実にする。ＤＮＡリガーゼは、典型的には、ニックの両側に６〜８塩基のフットプリントを有するため、断片が２０塩基の場合、１２〜１６塩基がリガーゼ特異性によってカバーされる。
プローブハイブリダイゼーションは、特にハイブリダイズした配列の中央部においてミスマッチを区別するが、ライゲーションは標的断片の両末端においてミスマッチを区別すると考えられる。これにより高特異的に断片の検出が行われる。
標的オリゴヌクレオチドは、標的相補配列とフランキング配列を含むので、標的断片よりも長くなり、さらに１つまたは複数のカスタム配列を含んでいてもよい。カスタム配列は、プローブの他の領域または標的断片に相補的でない、言い換えると、アニーリング条件下でプローブの他の領域（カスタムシーケンス外）または標的断片にハイブリダイズしない。上流のフランキング領域は、標的オリゴヌクレオチド中の標的相補配列の上流または５’側にある。下流のフランキング領域は、標的オリゴヌクレオチド中の標的相補配列の下流または３’側にある。したがって、標的相補配列は、標的オリゴヌクレオチドの内側にあり、上流と下流のフランキング配列が隣接しているため、標的オリゴヌクレオチドの末端を含まない。
前記標的断片及び前記標的相補配列のハイブリダイゼーションにより産生される前記二本鎖配列は、前記標的及び前記プローブのハイブリッドであるためハイブリッド二本鎖配列と見なされる。典型的には該二本鎖配列は、該標的断片が二重らせんの一本鎖であり、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドが他方の鎖である、二重らせん構造を採用している。前記ハイブリッド二本鎖配列が、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記上流及び下流のフランキング配列に隣接した場合、前記ヘッド及びテール配列にハイブリダイズし二本鎖配列を生成する。これらは再び二本鎖核酸の正常な二重らせん構造をとることが典型的である。
前記上流及び下流のフランキング配列は、好ましくは互いに異なっており、異なる配列を有する。前記ヘッド配列が下流のフランキング配列ではなく上流のフランキング配列に相補的であり、前記テール配列が上流のフランキング配列ではなく下流のフランキング配列に相補的であることが好ましい。これにより確実に該ヘッド配列及び該テール配列がそれぞれ上流と下流のフランキング配列にハイブリダイズする。
通常、ヘッド配列は上流フランキング配列と同一の長さである。テール配列は下流フランキング配列と同一の長さである。
フランキング配列の正常な長さは１０〜４０ヌクレオチド、例えば１０〜２０または１０〜３０ヌクレオチドである。フランキング配列は、互いに同じ長さであってもよい。一方または両方のフランキング配列は、標的相補配列と同じ長さであってもよい。よって前記上流及び／または下流フランキング配列は、例えば、少なくとも１５ヌクレオチド、少なくとも１０ヌクレオチドの長さを有していてもよい。最大２０、２５、３０、３５または４０ヌクレオチド長であってもよい。
好ましくは、前記ヘッド配列は上流配列の相補体である。好ましくは、前記テール配列は下流配列の相補体である。ヘッド及びテール配列が標的断片のライゲーションのために正確に配置されるように、プローブの最適な結合に配列の完全一致が望ましい。必要に応じて、ヘッド配列及び上流フランキング配列間及び／またはテール配列及び下フランキング配列間に１個、２個、３個または４個の塩基対ミスマッチが存在してもよい。好ましくは、５個未満の塩基対ミスマッチが存在する。
通常、標的相補配列以外に、プローブは、標的断片または試料中に存在し得る他の核酸に相補的であってはならない。これにより標的以外の核酸に対するプローブの不要なハイブリダイゼーションを回避する。プローブがヒトゲノムＤＮＡの断片を結合する場合、標的相補配列以外の配列がヒトゲノムＤＮＡに相補的でなく、プローブが試料中の他の核酸ではなく標的断片のみにハイブリダイズするように、プローブを設計できる。
アニーリング及びライゲーション
前記標的断片は両端の高度に特異的な反応で連結される。標的断片は、典型的には、核酸の特異的断片化の生成物であるので、これらの端部は、通常特定の予め決定された配列を有すると考えられる。ライゲーション工程において、これらの端部は、それぞれヘッド及びテール配列に配列依存ライゲーションすることにより特異的に検出される。好ましくは、プローブと標的断片の結合により、２つの完全にマッチした連結可能な接合部が作られ、１つは標的断片の３’末端とヘッド配列の５’末端の間に、もう一つは標的断片の５’末端とテール配列の３’末端の間に作られる。
核酸の３’末端への５’末端のライゲーションは、両端が相補的な配列の隣接するヌクレオチドと塩基対形成する場合に生じる。隣接ヌクレオチドに対しそれぞれの末端ヌクレオチドが塩基対を形成すると、二つの端部の間にニックを含有する核酸鎖が形成される。両端のライゲーションはＤＮＡリガーゼによって触媒できる。通常、ライゲーション条件の付与はＤＮＡリガーゼ酵素及び反応条件を付与を含み、その条件下でＤＮＡリガーゼは２つの末端を連結することにより連続的な核酸鎖を形成してニックを閉じる。Ａｍｐｌｉｇａｓｅ（Ｅｐｉｃｅｎｔｒｅ社）等の多数のリガーゼ酵素が市販されており、適した条件は、１Ｕの酵素を追加し、リガーゼ緩衝液中で５５℃で１時間インキュベーションすることである。
フランキング配列間の標的相補的配列の位置により、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドは、前記ヘッド及びテール配列にライゲーションするための前記標的核酸の鋳型となる。標的断片の存在下でのアニーリング条件下で、該ヘッド及びテール配列はフランキング配列にハイブリダイズし、ヘッド配列の５’末端及びテール配列の３’末端のギャップを画定する。ギャップ内の標的相補配列に標的断片がハイブリダイズする。このように、標的オリゴヌクレオチドにヘッド及びテール配列並びに標的核酸のハイブリダイゼーションにより、ヘッド配列の５’末端に標的断片の３’末端を並列させ、テール配列の３’末端に標的断片の５’末端を並列させる。
並列な二つの末端の配置により、両端を連結するＤＮＡリガーゼのための基質が与えられる。前記ヘッド配列の５’末端及び前記標的断片の３’末端が前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの隣接ヌクレオチドにハイブリダイズし、前記テール配列の３’末端及び前記標的断片の５’末端が該ターゲティングオリゴヌクレオチドの隣接ヌクレオチドにハイブリダイズすることが好ましい。したがって、上流の隣接配列は、介在ヌクレオチドなしで標的相補配列に直接隣接していてもよい。同様に、下流の隣接配列は、介在ヌクレオチドなしで標的相補配列に直接隣接していてもよい。隣接した３’及び５’末端を、末端間のニックを封鎖しているＤＮＡリガーゼで直接連結し、連続核酸鎖を形成できる。
前記二重連結産物、つまり前記標的断片に前記ヘッド配列及び前記テール配列の両方を連結した生成物は核酸の連続鎖である。ニックまたはギャップを含んでいないため全てのヌクレオチドが共有結合しているという意味で連続鎖である。
前記ヘッド配列及び前記テール配列並びに前記標的断片を含む核酸の連続鎖が環状核酸となるように前記プローブを設計してもよい。用語「環状」は本明細書では遊離末端を持たない閉じたループである鎖のトポロジーを意味する。
標的断片の存在下でのアニーリング条件の下で、前記ヘッド配列及び前記テール配列は前記フランキング配列にハイブリダイズし、該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端の間のギャップを画定する。該標的断片はギャップ内の標的相補配列とハイブリダイズし、それによって標的断片の末端が該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端と並んで配置され、該標的断片並びに該ヘッド配列及び該テール配列を含む環状核酸を完成する。
環を形成する前記核酸分子は並列する末端を有する。該末端のライゲーションにより、少なくとも前記ヘッド配列及び前記テール配列並びに該標的断片を含む核酸の連続した環状鎖が生成する。
環状核酸を形成するプローブは、前記ヘッド及びテール配列が単一の核酸分子上に付与されたプローブを含む。例えば、前記標的オリゴヌクレオチドに加えて、前記プローブは、５’末端及び３’末端にそれぞれ該ヘッド及びテール配列を有する骨格オリゴヌクレオチドを備えていてもよく、該骨格オリゴヌクレオチドの該ヘッド及びテール配列はアニーリング条件下で、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドのフランキング配列にトランス結合する。該骨格オリゴヌクレオチドは、該ヘッド及びテール配列の間にカスタム配列を含んでいてもよい。図３は、このようなプローブの実施形態を示す図である。あるいは、前記骨格オリゴヌクレオチドのヘッド及びテール配列は、配列間にカスタム配列なしで隣接していてもよい。
他の例では、前記ヘッド及びテール配列は、アニーリング条件下で前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの末端で前記フランキング配列にシス結合してもよい。該ターゲティングオリゴヌクレオチドは、該ターゲティングオリゴヌクレオチド及び該ヘッド及び／またはテール配列の間にカスタム配列を含んでいてもよい。図４は、このようなプローブの一実施形態を示す。
環状核酸を形成するプローブには、前記ヘッド及びテール配列が異なる核酸分子上に付与されるプローブも含まれる。この場合、前記アニーリング条件で形成される該環状核酸は、少なくとも三つの核酸分子、すなわち前記標的断片並びに前記ヘッド及びテール配列を含むであろう。既に述べた通り、前記核酸分子の末端は全て並列に位置する。このような場合、連続した環状鎖の核酸を形成するためには三つ以上のライゲーション反応が必要となる。一例では、該テール配列が該ターゲティングオリゴヌクレオチドの３’末端であり、該プローブが５’末端に該ヘッド配列を有する骨格オリゴヌクレオチドを含む。アニーリング条件下では、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの該下流フランキング配列に該テール配列がシス結合し、該骨格オリゴヌクレオチドの該ヘッド配列が、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの該上流フランキング配列にトランス結合する。シス結合は、結合が同一の核酸分子で起こる、つまり核酸の一本鎖が、異なる領域が接合しハイブリダイズする三次元構造を形成することを意味する。トランス結合は、異なる核酸分子間で結合が起こることを意味する。必要に応じて、前記骨格オリゴヌクレオチドは、アニーリング条件下でヘアピン構造を形成する逆反復配列対を含み、それにより前記骨格オリゴヌクレオチドの３’末端を前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端に対し並列に配置する。両末端の間にはニックが存在する。このタイプのプローブを図５に示す。ライゲーションのための条件が付与される場合、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端が前記骨格オリゴヌクレオチドの３’末端に連結される。前記二重連結産物はターゲティングオリゴヌクレオチド、標的断片、及び骨格オリゴヌクレオチドを含む環状核酸である。もしくは、ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端及び骨格オリゴヌクレオチドの３’末端の間にギャップがある場合、図５に示すプローブはライゲーションによって環状化されず、ヘッド及びテール配列並びに該標的断片を含む核酸の連続鎖は直鎖状となる。
前記ヘッド配列が前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端に位置し、３’末端に前記テール配列を有する骨格オリゴヌクレオチドを前記プローブが含むように、該プローブを反対の向きに配置してもよい。この場合、前記アニーリング条件下において、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの上流フランキング配列に前記ヘッド配列がシス結合し、前記骨格オリゴヌクレオチドのテール配列が該ターゲティングオリゴヌクレオチドの下流フランキング配列にトランス結合する。再度、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの３’末端に並列するように該骨格オリゴヌクレオチドの５’末端を位置するために、アニーリング条件下においてヘアピン構造を形成する逆反復配列対を該骨格オリゴヌクレオチドが含んでもよい。前記二重連結産物がターゲティングオリゴヌクレオチド、標的断片、及び骨格オリゴヌクレオチドを含む環状核酸となるように、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの３’末端は、該骨格オリゴヌクレオチドの５’末端に連結される。もしくは、上述の通り、該骨格オリゴヌクレオチドの５’末端が該ターゲティングオリゴヌクレオチドの３’末端の近くに位置しつつ一つまたは複数のヌクレオチドのギャップによって分離されるようにアニーリングを行うことができる。そして、上記連結された産物は前記ヘッド及びテール配列並びに前記標的断片を含む連続した直鎖状核酸となる。
図５に示すようにアニーリング条件の下で前記骨格オリゴヌクレオチドがヘアピンループを形成するように、該骨格オリゴヌクレオチドは逆方向反復配列との間にカスタム配列を含んでもよい。
上述のように、前記ヘッド及びテール配列並びに前記標的断片を含む核酸の連続鎖が直鎖状核酸となるようにプローブを設計できる。標的断片の存在下でのアニーリング条件下で、前記ヘッド及びテール配列は、該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端の間のギャップを画定する前記フランキング配列にハイブリダイズする。ギャップにおいて前記標的断片が前記標的相補配列とハイブリダイズすることにより、前記ヘッド配列の５’末端及び前記テール配列の３’末端と並列するように該標的断片の両末端を配置し、該ヘッド配列及びテール配列を含む核酸の鎖を完成する。本鎖を形成する核酸分子は、並列する末端を有する。用語「並列」については色々な議論がある。連結される末端間にはニックが存在する。末端のライゲーションにより、少なくとも前記ヘッド及びテール配列並びに前記標的断片を含む核酸の連続鎖が生成する。
前記プローブは、前記テール配列を３’末端に有するターゲティングオリゴヌクレオチド及び前記ヘッド配列を５’末端に有する直鎖骨格オリゴヌクレオチドを含んでいてもよい。アニーリング条件下で、該テール配列は、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの下流フランキング配列にシス結合し、該骨格オリゴヌクレオチドの該ヘッド配列は、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの上流フランキング配列にトランス結合する。該ターゲティングオリゴヌクレオチドは、アニーリング条件下で該ターゲティングオリゴヌクレオチドがヘアピンループを形成するように、下流フランキング配列及びテール配列の間にカスタム配列を含んでもよい。アニーリング条件下で形成された該直鎖状核酸は、前記骨格オリゴヌクレオチド、前記標的断片、及び前記ターゲティングオリゴヌクレオチドを含む。図６にこの配置を図示する。
前記ヘッド配列が前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端に位置し、前記プローブが３’末端に前記テール配列を有する骨格オリゴヌクレオチドを含むように、前記プローブは同様に逆方向に配置してもよい。この場合、該ヘッド配列は、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの上流フランキング配列にシス結合し、該骨格オリゴヌクレオチドの該テール配列は、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの下流フランキング配列にトランス結合する。
ライゲーション産物として直鎖状核酸鎖を形成するプローブの別の形態は、別々の骨格オリゴヌクレオチド上に上記ヘッド及びテール配列を含むプローブである。このようなプローブは、遊離５’末端を有するヘッド配列を含む骨格オリゴヌクレオチド及び遊離３’末端を有するテール配列を含む骨格オリゴヌクレオチドを含んでもよく、アニーリング条件下では該ヘッド及びテール配列は、該ターゲティングオリゴヌクレオチドのフランキング配列にトランス結合する。一方または両方の骨格オリゴヌクレオチドはさらにカスタム配列を含んでもよい。図７はこのタイプのプローブを示す。
好ましくは、未連結型の前記プローブのオリゴヌクレオチドは直鎖状である。よって好ましくは、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドは直鎖核酸分子である。一つまたは複数の骨格オリゴヌクレオチドを含むプローブもまた好ましくは直鎖状である。これにより、前記プローブを環状化する実施形態におけるライゲーションの成功によってのみ環状ＤＮＡは形成されるため、連結及び未連結プローブを簡便に区別できる。直鎖核酸分子はローリングサークル複製では増幅されない。
検出
前記標的断片が存在する場合、前記プローブに連結する条件を付与した後、検出工程を実施しライゲーションが生じたか否かを判断する。これにより、該標的断片が試料中に存在していたか否かが示される。したがって生成物の検出は、核酸の連続鎖を形成するための前記ヘッド及びテール配列に対する該標的断片のライゲーションの成否による。一般に、検出工程は両方のライゲーション接合部の存在を必要とするシグナルの検出を含む。例えば、検出は、両方のライゲーション接合部全体の増幅（例えば、ＰＣＲによって、またはプローブ環状化の実施形態の場合はローリングサークル複製によって）または一方の末端で連続核酸鎖を捕捉し、もう一方の末端を検出することを含んでもよい。
必要に応じて、検出の前に二重連結産物の濃縮を含む方法でもよい。生成物は、増幅及び／または固相化学によって濃縮できる。直鎖状核酸産物を消化するためのエキソヌクレアーゼ（例えばλエキソヌクレアーゼ）で試料を処理することによって、環状核酸産物を選択的に濃縮できる。一般に、ライゲーション産物をエキソヌクレアーゼ分解から保護する場合、エキソヌクレアーゼ分解を用いてライゲーション産物を濃縮してもよい。エキソヌクレアーゼは、その後重合を伴う後続のステップ、例えばローリングサークル増幅の前に不活性化（熱によって）する必要がある。実施例１に示すように、１Ｕのエキソヌクレアーゼを、未反応のプローブ及び断片を除去するために添加してもよい。適切な条件は、対応するエキソヌクレアーゼ緩衝液中で３７℃で１時間インキュベーションした後、８０℃で２０分間、酵素を不活性化する。捕捉／検出方法が使用される場合、ライゲーション産物が捕捉部分を介して固相に捕捉されることによって濃縮される。実施例２に示すように、直鎖状の連結産物を含む溶液を、最終容量の２００ｍｌとしたＴｒｉｓ−ＨＣＩ（ｐＨ ７．５）、３．５ｍＭのＥＤＴＡ、及び０．０７％Ｔｗｅｅｎ−２０に含まれる１０ｍｌのＭ−２８０ストレプトアビジン被覆磁気ビーズ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）と混合し、室温で１５分間インキュベーションしてもよい。インキュベーション後、ビーズをリングマグネットを使って回収し上清を除去する。ライゲーション産物を濃縮する他の手段は、特にサイズ選択的連結産物を含む。
二重連結産物を検出する簡便な方法では増幅条件を付与し該増幅産物の存在について試験する。ＮＡＳＰＡ、ＬＡＭＰ、Ｔ７増幅、ＰＣＲ、または連続鎖が環状の場合はローリングサークル複製などいくつかの増幅アプローチが考えられる。二重連結産物を検出する工程は、核酸連続鎖の第一及び第二のライゲーション接合部全体を増幅する条件を付与すること及び増幅産物が存在するかを検出することを含む。ライゲーション産物はクローン増幅で増幅してもよい。適した増幅手技には、ローリングサークル増幅（以下参照）、ブリッジＰＣＲ（Ａｄｅｓｓｉ Ｃら， Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２０００ Ｏｃｔ １５；２８（２０）：Ｅ８７）、エマルジョンＰＣＲ （Ｄｒｅｓｓｍａｎらによるエマルジョン中でのデジタルＰＣＲ， Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ Ｕ Ｓ Ａ． ２００３ Ｊｕｌ ２２；１００（１５）：８８１７−２２． Ｅｐｕｂ ２００３ Ｊｕｌ １１）及びデジタルＰＣＲ（Ｖｏｇｅｌｓｔｅｉｎ ＆ Ｋｉｎｚｌｅｒ， Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ Ｕ Ｓ Ａ． １９９９ Ａｕｇ ３；９６（１６）：９２３６−４１）が含まれる。ゲル中での限定的なクローン増幅は、Ｍｉｔｒａ ＆ Ｃｈｕｒｃｈ， Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． １９９９ Ｄｅｃｅｍｂｅｒ １５； ２７（２４）： ｅ３４に開示された。
前記二重連結産物が環状核酸である場合、該産物を検出するための簡便な方法は、ローリングサークル複製条件を提供し、ローリングサークル複製産物が存在するかを検出することである。ローリングサークル複製産物は、増幅用の環状核酸を提供するための二重連結に依存する。ローリングサークル複製は、ＵＳ ５，８５４，０３３（Ｌｉｚａｒｄｉ）及びＦｉｒｅ ＆ Ｘｕ， Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ Ｕ Ｓ Ａ． １９９５ Ｍａｙ ９；９２（１０）：４６４１−５に開示された。ローリングサークル複製は、鎖置換型ＤＮＡポリメラーゼを使用した環状核酸分子の増幅であり、増幅された配列のタンデムリピートを含有する大きなＤＮＡ分子が得られる。上記ＤＮＡポリメラーゼは、所望時間進行する進行性ローリングサークルポリメライゼーション反応におけるプライマー伸長及び鎖置換を触媒する。それにより、標的配列のコピー数の倍化に各サイクルが限定されるＰＣＲ複製の単サイクル及び他の増幅手技よりも、はるかに高度な環状プローブ配列の増幅となる。鎖置換反応のカスケードを用いて追加的増幅が可能である。ローリングサークル複製は超分岐ハイパーローリングサークル複製でもよい。超分岐ＲＣＡは以下に開示された：Ｌｉｚａｒｄｉら， Ｎａｔ Ｇｅｎｅｔ． １９９８ Ｊｕｌ；１９（３）：２２５−３２。ローリングサークル複製条件は実施例に記載されており、例えば、３７℃１時間のインキュベーションでは、１Ｕのｐｈｉ２９ポリメラーゼ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ）を、対応するｐｈｉ２９緩衝液及びヌクレオチド（ｄＮＴＰ）に添加できる。
ローリングサークル複製に続いて、蛍光標識の検出、酵素連結検出系、抗体介在標識検出、及び放射性標識の検出といった従来の核酸検出系のいずれかを使用して、前記増幅されたプローブ配列を検出し定量できる。好ましくは、ローリングサークル増幅産物は、例えば、プローブのカスタム配列におけるモチーフのようなＲＣＡ産物中のモチーフに対する標識された検出オリゴヌクレオチドのハイブリダイゼーションによって検出される。増幅産物は、試料中に存在する標的配列の量に正比例するため、定量的な測定は試料中の標的配列の量を確実に表す。この方法の主な利点は、連結工程を対立遺伝子の識別のために操作可能であり、ＤＮＡ複製工程は等温であり、増幅反応が線形で高度加工性の酵素によって触媒されるため、シグナルが厳密に定量される。多重アッセイでは、ＤＮＡポリメラーゼ反応に使用したプライマーオリゴヌクレオチドは、全てのプローブについて同じであってもよい。
前記ヘッド及びテール配列が別々の核酸分子上にあるプローブでは、捕捉／検出方法を簡便に使用できる。前記二重連結産物は、非連結プローブに含まれない該ヘッド及びテール配列を単核酸分子（連続鎖）中に含有する。したがって、該二重連結産物は、該ヘッド配列を含有する核酸分子を捕捉し、洗浄により非連結プローブ核酸を除去し、捕捉した分画中に該テール配列の存在を検出することによって、特異的に検出される。もしくは、該二重連結産物は、該テール配列を含有する核酸分子を捕捉し、洗浄により非連結プローブ核酸を除去し、捕捉した分画中に該ヘッド配列の存在を検出することによって、検出してもよい。検出は連結されたプローブに特異的である。これは非連結プローブ中の該ヘッド及びテール配列は核酸間のハイブリダイゼーションのみで接続され洗浄によって分離されるが、連結プローブは連続核酸鎖中に該ヘッド及びテール配列を含有する、つまり共有結合を有するためである。
プローブは捕捉部分を担持するように修飾できる。捕捉部分は、ビーズなどの固体基質への付着を可能にする。適切な捕捉部分はビオチンで、ビオチンはストレプトアビジンと対になり、修飾されたプローブ核酸がストレプトアビジンでコーティングされた固体基質上に単離される。ここで、プローブがヘッドまたはテール配列を含有する骨格オリゴヌクレオチド及びヘッドまたはテール配列を含有する別の核酸（標的オリゴヌクレオチドまたは第二の骨格オリゴヌクレオチド）を含む場合、核酸分子のいずれかが捕捉部分を有していてもよく、例えばビオチン化されていてもよい。試料とプローブを結合する前に、捕捉部分を有するプローブを付与することが簡便であり得る。あるいは、捕捉部分をライゲーション工程の後に導入してもよい。
前記プローブ内の１つの核酸分子が捕捉部分を持つ場合、他の核酸分子が標識を担持していてもよい。核酸配列自体を標識として使用可能であり、例えば、特にヘッド配列（テールが捕捉される）またはテール配列（ヘッドが捕捉される）の存在を特異的に検出するか、または検出する核酸分子に特有のカスタム配列を検出できる。相補的オリゴヌクレオチドを検出に使用できる。あるいは核酸を蛍光団などの異種性の標識で標識してもよい。異種性の標識は核酸自体の一部ではない。使用可能な他の標識には、量子ドット、生物発光、チラミドシグナル増幅などのシグナル発生酵素カスケード、及び放射性部分が挙げられる。検出方法には、標識の存在を検出する、例えば蛍光検出、量子ドット検出、生物発光検出、酵素によって生成されたシグナルの検出、または放射能検出等が含まれてもよい。
一例として、二重連結産物が存在するかを検出するステップは、捕捉部分を介して基質上のプローブの骨格オリゴヌクレオチドを捕捉し、基質を洗浄して非連結プローブを除去して基質と捕捉された骨格オリゴヌクレオチドを含む捕捉分画を保持し、捕捉分画中の二重連結産物の存在について試験することを含む。二重連結産物が標識を担持する場合、捕捉分画内の標識の存在について試験することが含まれる。捕捉部分は、ストレプトアビジン基質への親和性を有するビオチン分子であり得る。他の適切な親和性タグは、例えば骨格オリゴヌクレオチドといったヒスチジン含有配列の精製に用いることができるコバルト、ニッケル、銅などの固定化金属イオンに対する親和性を有するポリヒスチジンタグを含む。捕捉部分は、このように、例えば、Ｈｉｓ−タグ配列といった捕捉される配列の一部であってもよく、または核酸自体の一部ではない異種性の部分であってもよい。
適切な固体基質は、磁石を使用した捕捉産物の濃縮を容易にする磁性ビーズ等のビーズである。基質は捕捉部分に対する結合部分で被覆してもよく、例えば、ストレプトアビジン被覆磁気ビーズをビオチン化プローブと一緒に使用できる。
本発明の方法のいくつかの実施形態の利点は、ある配列が他の配列よりも効率的に増幅することによりバイアスのある結果を生じさせる核酸配列決定やＰＣＲに依存しないことである。しかし必要に応じて、検出は、生成物を配列決定することによって連結断片の同一性を検証するステップを含んでもよい。本発明の利点の１つは、二重連結産物の実際の標的断片を組み込むことによって、該産物が配列決定され、プローブが正しいターゲットと反応したことを確認できるということである。これは、ＵＳ２０１３０１７２２１２（Ａｒｉｏｓａ）に記載されるような二重連結に基づく他のアプローチと比較して優れている。
多重化
複数の異なる標的核酸断片を並行して複数のプローブを用いて検出することができる。例えば、断片化された染色体の試料は、染色体の複数の断片を結合するためのプローブのセットと接触させることができ、セットの各プローブは染色体に特異的な異なる標的断片を結合する。これらプローブは、特異的に染色体に結合するプローブを同定するためのバーコードとして使用できる一般的なカスタム配列を共有してもよい。多重化には、多重標的化オリゴヌクレオチド及び一つの共通の骨格オリゴヌクレオチドだけでなく、各サブセットが別々の骨格オリゴヌクレオチドとハイブリダイズするターゲティングオリゴヌクレオチドのいくつかのセットを含めることができる。
複数のプローブは、シグナルの大きさが標的断片を認識するプローブの数に比例する検出可能なシグナルの付与に使用できる。複数のプローブからの個々のシグナルは、検出可能な単一の累積シグナルに変換され、多重プロービングにより個々のシグナルを増幅する。１０以上のプローブは、１０倍以上のシグナル増幅を生じさせる。生成されたシグナルは、標的認識の際に正しく反応したプローブに依存し、上記シグナルが得られる特異的な二重連結産物を生成するために配列特異的ハイブリダイゼーション及びライゲーションを使用する。
標的断片を認識する各プローブはライゲーション産物を生成し、各プローブのハイブリダイゼーションにより生成したライゲーション産物は個別に検出可能であるため、個々のシグナルが各プローブから得られる。しかし、本発明の優れた特徴は、個々のシグナルを個別に検出する必要はなく、その代わりに累積シグナルに統合し、累積的なシグナルを検出することにある。累積的なシグナルは、個々のシグナルの組み合わせであるため、検討対象の核酸種の存在または量を表すライゲーション産物の検出及び／または定量に使用できる。配列決定及びマイクロアレイを使用する従来の方法と比較して、本発明の方法の実施においては初期の段階でプローブシグナルを統合可能であり、個々のシグナルが領域全体の複数のプローブに対し生成され、分析においてシグナルが統合され領域を表す。個々のシグナルを別々にマッピングまたは調査しないため、シグナルを検出前に統合可能である。これにより簡素化された読み出しフォーマットを実現する。
個々のシグナルは、各標的断片へのプローブハイブリダイゼーションの結果生じる各二重連結産物から得られる。例えば、試料中の目的種の１０標的断片を認識する１０個の異なるプローブを含むセットの場合、ライゲーション接合部を含む１０のライゲーション産物が存在し、１０個のライゲーション産物からの個々のシグナルの組み合わせである累積シグナルが検出される。通常、試料中に各標的断片の複数のコピーが存在し試料は各プローブの複数のコピーと接触することになるので、本実施例では当然のことながら、分子プローブ、標的断片、及びライゲーション産物の実際の数は１０より高くてもよい。
多重化によるシグナル増幅方法は、例えば複合体としての核酸試料において、核酸種が主成分でないまたは微量成分である場合、試料中の目的の核酸種の検出に使用できる。多重化による増幅は信頼性の高い検出を可能にする。これは診断目的で、例えば患者試料等の試料中の微生物の核酸の検出に使用できる。試料の存在を検出及び同定するために、複数種の微生物の核酸に特異的なプローブで調べることができる。これは、細菌、ウイルス、真菌などの感染性疾患の病原体の検出に有用である。特定の核酸転写物を検出することができる。多重化による増幅は、核酸種を定量するために使用してもよい。目的の１つ以上の核酸種と１つ以上の基準核酸種といった二種以上の核酸を調べることにより、この方法では試料中の２つの種の相対量の定量化が行える。例えば、染色体コピー数の検出といった一つ以上の染色体遺伝子座の検出または定量に適用した場合、本方法は特に有用である。特定の値の適用では、癌及び先天的異数性の診断を含む、染色体異常を同定する方法として使用する。非侵襲的出生前診断のための使用（ＮＩＰＴ）を具体的に説明する。
試料中の核酸種は、本発明のプローブのセットと試料を接触させることによって検出可能であり、各プローブは検出される核酸種の異なる標的配列を特異的に認識する。標的配列は、核酸種の標的断片に対応する。本明細書に記載されるように、各プローブによってそれぞれの標的配列を認識することにより二重連結産物を生成する。累積的なシグナルは、この産物からのシグナルの組み合わせとして検出される。シグナルの検出は、試料中の核酸種の存在を示す。核酸種は、シグナルレベルを決定するための累積シグナルを定量化することによって定量化でき、該シグナルレベルは、試料中の核酸種の量に比例するので、試料中の核酸種の量を決定できる。第一の核酸種は、第一のプローブセット及び第二のプローブセットと試料を接触させることにより、第二のまたは基準の核酸種に対して定量化可能であり、第一のセットの各プローブは第１の核酸種の特徴的な標的配列を特異的に認識し、第二のセットの各プローブは第２のまたは基準の核酸種の特徴的な標的配列を特異的に認識する。第一及び第二の累積シグナルが検出され、第一の累積シグナルは標的配列を認識する第一のセットのプローブによって生成された産物からの個々のシグナルの組み合わせであり、第二の累積シグナルは標的配列を認識する第二のセットのプローブによって生成された産物からの個々のシグナルの組み合わせである。第一及び第二のシグナルを定量化し、試料中の第一及び第二の核酸種の量に比例する第一及び第二のシグナルレベルを決定する。試料中の第一及び第二の核酸種の相対量は、このように第一及び第二のシグナルレベルを比較することによって決定できる。
例えば、累積シグナルは、標的配列を認識するプローブのクローン増幅及び／または標識された産物を列挙したまとめとすることができる。それらの産物は、例えば、ローリングサークル増幅産物や蛍光シグナルを発する産物全てから発生した蛍光シグナル等である。複数の核酸種の相対量を定量化するため、異なるシグナルをそれぞれの種に使用する。例えば、一つのプローブセットの産物が、他のプローブセットの産物と比べて、異なる蛍光波長やスペクトルを発してもよい。
試料中の核酸種は、
検出する核酸種中の特徴的な標的配列を特異的に認識するプローブのセットに該試料を接触させること、
該核酸種中の該標的配列が一本鎖となる変性条件を付与すること、
該プローブがそれらの標的配列とハイブリダイズしてライゲーション産物を生成するアニーリング及びライゲーション条件を付与すること、及び
全てのライゲーション産物からの個々のシグナルの組み合わせである累積シグナルを検出することを含み、
前記シグナルの検出が前記試料中の核酸種の存在を示す方法により検出できる。
前記試料、標的核酸、方法の工程（例えば、変性、アニーリング、ライゲーション）及びプローブの詳細については本明細書に記載の通りである。該方法は、
（ｉ） 核酸種が標的断片に断片化されている試料を供すること、
（ｉｉ） 該標的断片が一本鎖となる変性条件を付与すること、
（ｉｉｉ） 検出する核酸種中の特徴的な標的配列を特異的に認識するプローブのセットに該試料を接触させること、ここで該標的配列は前記標的断片の配列であり、各プローブは、
前記標的断片よりも長い、内在性標的相補配列を含有するターゲティングオリゴヌクレオチドであって、該ターゲティングオリゴヌクレオチド及び該標的断片間のハイブリダイゼーションにより該ターゲティングオリゴヌクレオチドの上流及び下流フランキング配列間に位置する二本鎖配列が形成される、前記ターゲティングオリゴヌクレオチド、及び
遊離５’及び３’末端をそれぞれ有する、前記上流及び下流フランキング配列にそれぞれ相補的である、ヘッド配列及びテール配列を含む、
（ｉｖ） 前記ヘッド配列及び前記テール配列が前記フランキング配列にハイブリダイズし、前記標的断片が、存在していれば、前記標的相補配列にハイブリダイズし、それにより該標的断片の末端が該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端と並んで配置されるアニーリング条件を付与すること、
（ｖ） 前記標的断片が存在する場合、前記標的断片の３’末端が前記ヘッド配列の５’末端に連結されて第一のライゲーション接合部を形成し、該標的断片の５’末端が前記テール配列の３’末端に連結されて第二のライゲーション接合部を形成し、該ヘッド配列及び該テール配列並びに該標的断片を含む核酸連続鎖を含む二重連結産物を生成するライゲーション条件を付与すること、及び
（ｖｉ） 全ての上記産物からの個々のシグナルの組み合わせである累積シグナルを検出すること、
を含み、該累積シグナルの検出が前記試料中の核酸種の存在を示す、前記方法である。
前記核酸種は、
（ｉ） 該核酸種が標的断片に断片化されている試料を供すること、
（ｉｉ） 該標的断片が一本鎖となる変性条件を付与すること、
（ｉｉｉ） 定量する核酸種中の特徴的な標的配列を特異的に認識するプローブのセットに該試料を接触させること、ここで各プローブは、
前記標的断片よりも長い、内在性標的相補配列を含有するターゲティングオリゴヌクレオチドであって、該ターゲティングオリゴヌクレオチド及び該標的断片間のハイブリダイゼーションにより該ターゲティングオリゴヌクレオチドの上流及び下流フランキング配列間に位置する二本鎖配列が形成される、前記ターゲティングオリゴヌクレオチド、及び
遊離５’及び３’末端をそれぞれ有する、前記上流及び下流フランキング配列にそれぞれ相補的である、ヘッド配列及びテール配列を含み、
（ｉｖ） 前記ヘッド配列及び前記テール配列が前記フランキング配列にハイブリダイズし、前記標的断片が、存在していれば、前記標的相補配列にハイブリダイズし、それにより該標的断片の末端が該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端と並んで配置されるアニーリング条件を付与すること、
（ｖ） 前記標的断片が存在する場合、前記標的断片の３’末端が前記ヘッド配列の５’末端に連結されて第一のライゲーション接合部を形成し、該標的断片の５’末端が前記テール配列の３’末端に連結されて第二のライゲーション接合部を形成し、該ヘッド配列及び該テール配列並びに該標的断片を含む核酸連続鎖を含む二重連結産物を生成するライゲーション条件を付与すること、
（ｖｉ） 全ての上記産物からの個々のシグナルの組み合わせである累積シグナルを検出すること、及び
（ｖｉｉ） 該累積シグナルを定量化し、前記試料中の前記核酸種の量に比例することにより該試料中の該核酸種の量を決定するシグナルレベルを決定することを含む方法により定量できる。
前記方法を使用して試料中の第二の核酸種に対する第一の核酸種の相対量を定量してもよい。本方法は、
（ｉ） 該第一及び第二の核酸種が標的断片に断片化されている試料を供すること、
（ｉｉ） 該標的断片が一本鎖となる変性条件を付与すること、
（ｉｉｉ） 前記第一の核酸種中の特徴的な標的配列を特異的に認識する前記第一のプローブのセット及び前記第二の核酸種中の特徴的な標的配列を特異的に認識する前記第二のプローブのセットに該試料を接触させること、ここで各プローブは、
前記標的断片よりも長い、内在性標的相補配列を含有するターゲティングオリゴヌクレオチドであって、該ターゲティングオリゴヌクレオチド及び該標的断片間のハイブリダイゼーションにより該ターゲティングオリゴヌクレオチドの上流及び下流フランキング配列間に位置する二本鎖配列が形成される、前記ターゲティングオリゴヌクレオチド、及び
遊離５’及び３’末端をそれぞれ有する、前記上流及び下流フランキング配列にそれぞれ相補的である、ヘッド配列及びテール配列を含む、
（ｉｖ） 前記ヘッド配列及び前記テール配列が前記フランキング配列にハイブリダイズし、前記標的断片が、存在していれば、前記標的相補配列にハイブリダイズし、それにより該標的断片の末端が該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端と並んで配置されるアニーリング条件を付与すること、
（ｖ） 前記標的断片が存在する場合、前記標的断片の３’末端が前記ヘッド配列の５’末端に連結されて第一のライゲーション接合部を形成し、該標的断片の５’末端が前記テール配列の３’末端に連結されて第二のライゲーション接合部を形成し、該ヘッド配列及び該テール配列並びに該標的断片を含む核酸連続鎖を含む二重連結産物を生成するライゲーション条件を付与すること、
（ｖｉ） 前記第一のセットのプローブによって生成した前記ライゲーション産物からの個々のシグナルの組み合わせである累積シグナルを検出し定量化することにより前記試料中の前記第一の核酸種の量に比例する第一のシグナルレベルを決定すること、
（ｖｉｉ） 前記第二のセットのプローブによって生成した前記ライゲーション産物からの個々のシグナルの組み合わせである累積シグナルを検出し定量化することにより前記試料中の前記第二の核酸種の量に比例する第二のシグナルレベルを決定すること、及び
（ｖｉｉｉ） 前記第一及び第二のシグナルレベルを比較し、それにより前記試料の前記第一及び第二の核酸種の相対量を決定することを含む。
一般に、プローブの数は、検出または定量される各核酸種に対して少なくとも１０となるであろう。コースの数は、プローブの分子の絶対数ではなく、異なるプローブの数を指す。したがって、核酸は少なくとも１０個の異なる特定の標的配列を含有すると考えられ、累積シグナルは、少なくとも１０のユニークなプローブの個々のシグナルの組み合わせであり、この累積シグナルが一つの核酸種を表す。ハイレベルな多重化を用いて、対応するようにハイレベルのシグナル増幅を得られる。例えば、少なくとも１００、少なくとも１，０００、少なくとも１０，０００もしくはそれ以上の数のプローブを使用して、各核酸種を検出または定量してもよい。
前記方法は、断片化染色体の試料をプローブの複数セットと接触させて二つ以上の染色体の複数断片を結合することを含んでいてもよく、プローブのセットは、
第一の染色体に特異的な複数の標的断片を結合するための第一のプローブのセット、及び
第二の染色体に特異的な複数の標的断片を結合するための第二のプローブのセット、さらに必要に応じて、
一つまたは複数の染色体に特異的な複数の標的断片を結合するための一つまたは複数のプローブのセットを含む。
セット内のプローブは、各セットからのプローブを簡便に識別することができるように、そのセットに共通であり他のセットにおけるプローブのカスタム配列とは異なるカスタム配列を共有することができる。プローブの各セットは、少なくとも５００、６００、７００、８００、９００、または少なくとも１，０００以上の染色体に特異的な複数の標的断片を結合するための異なるプローブを含んでいてもよい。例えば、各２１、１３、及び１８番染色体に１，０００の異なる標的オリゴヌクレオチド、及び３つの異なる骨格オリゴヌクレオチド、及び染色体サブセットを一つずつ使用する方法でもよい。
各プローブのセットで二重連結産物を検出し、該産物のカスタム配列の相対量を検出することにより、試料中の２つ以上の染色体の相対量を決定することが可能である。
前記ターゲティングオリゴヌクレオチド並びに前記上流及び下流オリゴヌクレオチドが環を形成するプローブを使用して、特定の対立遺伝子及びまたは遺伝子座をコードするモチーフを、高度多重化によりカスタムシーケンスに組み込むことができる。
デジタル染色体分析及び非侵襲的出生前診断
本発明の方法のいくつかの実施形態では、標的ＤＮＡの正確な定量化が求められる分野で特に有利な点が挙げられる。これにはたくさんの核酸による診断技術が含まれる。そのような領域の一つとして、患者由来の生物学的試料（例えば血液）中の癌ＤＮＡの分析が挙げられる。他には、無細胞ＤＮＡの分析による非侵襲的出生前診断（ＮＩＰＴ）が挙げられる。
ＮＩＰＴの課題は、異常染色体異数性（染色体コピー数の差）の診断に必要な統計的信頼性を確立するために多数の特定のゲノム断片をカウントしなければならないことである。胎児ＤＮＡは母系ＤＮＡと混合され、妊婦の血流中の遺伝物質の４％〜３０％に相当するため、胎児ＤＮＡに染色体異数性の観察には非常に正確な測定を必要とする。
本明細書に記載のプローブは、母体血液試料中の遊離循環胎児ＤＮＡの分析に使用してもよい。１つの染色体の異なるフラグメントを対象にした複数のプローブ及び２つめの染色体の異なるフラグメントを対象にした複数のプローブを用いることにより、試料中の２つの染色体の相対数の不均衡を高い信頼度で決定できる。これにより、母体ＤＮＡの高いバックグラウンドがあっても、トリソミーなどの染色体異数性を胎児ＤＮＡから診断できる。
本明細書に記載のプローブは、例えばトリソミーなどの染色体異常の診断用に、妊婦の母体血液試料を検査し胎児の核酸を検出する目的、患者における腫瘍の存在の診断やモニタリング用に、腫瘍ＤＮＡの患者試料を検査する目的に使用可能である。他の用途には、細菌核酸の有無について物質の試料を検査することが含まれ、細菌核酸の検出は、細菌、ウイルス、または真菌等の感染性因子となり得る微生物による物質の感染を示す。該試料は患者からの組織または血液試料であってもよい。
より一般的には、本発明の方法は、数百または数千の異なるプローブを使用した数百または数千の特定の核酸断片の検出で高精度を達成し得ることから、幅広い診断用途に有利である。特定の疾患に関連する染色体や染色体遺伝子座から多数のＤＮＡフラグメントの検出することにより、試料中のわずかな違いも確実に検出できるように、対照染色体または遺伝子座に対する該染色体または遺伝子座の量を測定可能になる。
短い標的核酸を分析することにより、母体血液中の高度に断片化された無細胞ＤＮＡの大部分を高効率で解析することができる。これは、母体血液中の無細胞ＤＮＡの量は非常に少ないため重要である。
個体から得られた核酸試料中の第二の染色体または染色体遺伝子座に対する第一染色体または染色体座を定量化する方法は、
（ｉ） 該第一及び第二の染色体または染色体遺伝子座が標的断片に断片化されている試料を供すること、
（ｉｉ） 該標的断片が一本鎖となる変性条件を付与すること、
（ｉｉｉ） 前記第一の染色体の特徴的な標的配列を特異的に認識する前記第一のプローブのセット及び前記第二の染色体の特徴的な標的配列を特異的に認識する前記第二のプローブのセットに該試料を接触させること、ここで各プローブは、
前記標的断片よりも長い、内在性標的相補配列を含有するターゲティングオリゴヌクレオチドであって、該ターゲティングオリゴヌクレオチド及び該標的断片間のハイブリダイゼーションにより該ターゲティングオリゴヌクレオチドの上流及び下流フランキング配列間に位置する二本鎖配列が形成される、前記ターゲティングオリゴヌクレオチド、及び
遊離５’及び３’末端をそれぞれ有する、前記上流及び下流フランキング配列にそれぞれ相補的である、ヘッド配列及びテール配列を含む、
（ｉｖ） 前記ヘッド配列及び前記テール配列が前記フランキング配列にハイブリダイズし、前記標的断片が、存在していれば、前記標的相補配列にハイブリダイズし、それにより該標的断片の末端が該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端と並んで配置されるアニーリング条件を付与すること、
（ｖ） 前記標的断片が存在する場合、前記標的断片の３’末端が前記ヘッド配列の５’末端に連結されて第一のライゲーション接合部を形成し、該標的断片の５’末端が前記テール配列の３’末端に連結されて第二のライゲーション接合部を形成し、該ヘッド配列及び該テール配列並びに該標的断片を含む核酸連続鎖を含む二重連結産物を生成するライゲーション条件を付与すること、
（ｖｉ） 前記第一のセットのプローブによって生成した前記ライゲーション産物からの個々のシグナルの組み合わせである累積シグナルを検出し定量化することにより前記試料中の前記第一の染色体または染色体遺伝子座の量に比例する第一のシグナルレベルを決定すること、
（ｖｉｉ） 前記第二のセットのプローブによって生成した前記ライゲーション産物からの個々のシグナルの組み合わせである累積シグナルを検出し定量化することにより前記試料中の前記第二の染色体または染色体遺伝子座の量に比例する第二のシグナルレベルを決定すること、及び
（ｖｉｉｉ） 前記第一及び第二のシグナルレベルを比較し、それにより前記試料の前記第一及び第二の染色体または染色体遺伝子座の相対量を決定することを含んでもよい。
この方法は、胎児における異数性（例えばトリソミー）の診断に使用されてもよく、核酸試料は母体血液から得られた試料で母系ＤＮＡと混合された無細胞胎児ＤＮＡを含み、前記第一及び第二のシグナルレベルの不均等な比が異数性（例えばトリソミー）を示す。
プローブ
さらなる態様は、本発明の方法における使用に適したプローブを含む。プローブ及びその特徴は既に例示されている。さらに他の特徴及び実施例は本明細書に記載されている。
前記プローブ核酸は好ましくはＤＮＡであるが、他の天然もしくは非天然の核酸であってもよい。ＤＮＡの標準的な塩基は、Ａ、Ｔ、Ｃ及びＧであるが、プローブ核酸は必要に応じて非標準ヌクレオチドを含んでもよい。
一般に、本発明のプローブはターゲティングオリゴヌクレオチド並びにヘッド及びテール配列を含む。ヘッド及びテール配列は、ターゲティングオリゴヌクレオチドの一部であってもよく、どちらか一つまたは両方が異なる核酸分子上にあってもよい。必要に応じて、前記プローブは、ターゲティングオリゴヌクレオチド、ヘッド配列を含む骨格オリゴヌクレオチド、及びテール配列を含む骨格オリゴヌクレオチドを含む。よって、プローブは、非連結状態の１つ、２つまたは３つの核酸分子を含んでもよい。
前記ターゲティングオリゴヌクレオチドは、前記標的断片よりも長い、内在性標的相補配列を含有し、該ターゲティングオリゴヌクレオチド及び該標的断片間のハイブリダイゼーションにより該ターゲティングオリゴヌクレオチドの上流及び下流フランキング配列間に位置する二本鎖配列が形成される。前記ヘッド配列及びテール配列は遊離５’及び３’末端をそれぞれ有し、前記上流及び下流フランキング配列にそれぞれ相補的である。標的断片の存在下でのアニーリング条件の下で、前記ヘッド配列及び前記テール配列は前記フランキング配列にハイブリダイズし、該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端の間のギャップを画定する。該標的断片はギャップ内の標的相補配列とハイブリダイズし、それによって標的断片の末端が該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端と並んで配置される。
該プローブは、前記ギャップ中の標的断片のハイブリダイゼーションにより、前記標的断片並びに前記ヘッド及びテール配列を含む環状核酸が完成するように設計してもよい。
前記プローブの前記ヘッド及び／またはテール配列は、好ましくはプローブの他の領域や標的断片に相補的でないカスタム配列に結合されている。
前記プローブのいくつかの実施形態において、単一の核酸分子は、前記ヘッド及びテール配列を含む。
前記フランキング配列にトランス結合するように、前記ヘッド及びテール配列は前記ターゲティングオリゴヌクレオチドから分離してもよい。例えば、該ヘッド及びテール配列は骨格オリゴヌクレオチドの５’及び３’末端にそれぞれ位置してもよい。該骨格オリゴヌクレオチドの該ヘッド及びテール配列の間にカスタム配列を含むこともできる。そうしたプローブの実施例を図１及び図３に示す。もしくは、該骨格オリゴヌクレオチドの該ヘッド及びテール配列は、介在するヌクレオチド配列なしで隣接していてもよい。この場合、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの該フランキング配列は該骨格オリゴヌクレオチドの全長に沿ってハイブリダイズし環状化する。
前記プローブは、前記ヘッド配列を前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端に配置及び／または前記テール配列を該ターゲティングオリゴヌクレオチドの３’末端に配置するように設計してもよく、それにより前記ギャップにおける前記標的断片のハイブリダイゼーションによって該標的断片、該ヘッド及びテール配列、該標的相補配列、及び該フランキング配列を含む核酸鎖が形成されてもよい。該ヘッド及びテール配列は該ターゲティングオリゴヌクレオチドの末端に位置し、該フランキング配列にシス結合してもよい。そのようなプローブの実施例を図４に示す。このバージョンのプローブでは、該ヘッド及びテール配列並びに該標的相補配列が全て該標的断片と環状化する。カスタム配列は該オリゴヌクレオチドのループ中に配置できる。前記プローブ核酸は、比較的長いが、予め組み立てられる一つの分子にオリゴヌクレオチド構造を結合する利点を有し、異なるプローブ核酸分子のハイブリダイゼーションを必要としない。
プローブは、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドから分離した核酸分子である骨格オリゴヌクレオチドを用いて設計できる。前記テール配列は、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの３’末端に配置でき、前記ヘッド配列は、骨格オリゴヌクレオチドの５’末端に配置できる。もしくは該ヘッド配列は、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端に配置でき、該テール配列は、骨格オリゴヌクレオチドの３’末端に配置できる。カスタム配列は、例えば該ヘッドまたはテール配列と前記フランキング配列の間にループを形成するように、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドに導入することができる。このプローブアプローチを使用する利点は、検出配列をループに導入することができるとともに前記標的相補配列と関連付けられ、多重方法、特に高度多重検出スキームによる高い多重化のために有利となることである。前記骨格オリゴヌクレオチドは、さらにカスタム配列を含むことができる。二つのオリゴヌクレオチドのプローブを提供することにより、プローブ核酸分子は単一のオリゴヌクレオチドのバージョンよりも短くなっているが、同様の機能を維持する。
プローブの別の設計では、前記ヘッド及びテール配列が二つの骨格オリゴヌクレオチド上に配置される。したがって、プローブは以下を含む。
前記標的断片よりも長い、内在性標的相補配列を含有するターゲティングオリゴヌクレオチドであって、該ターゲティングオリゴヌクレオチド及び該標的断片間のハイブリダイゼーションにより該ターゲティングオリゴヌクレオチドの上流及び下流フランキング配列間に位置する二本鎖配列が形成される、前記ターゲティングオリゴヌクレオチド、
遊離５’末端を有するヘッド配列を含む骨格オリゴヌクレオチド、及び
遊離３’末端を有するテール配列を含む骨格オリゴヌクレオチド、
該ヘッド配列及び該テール配列は該上流及び下流フランキング配列にそれぞれ相補的である。
一つの骨格オリゴヌクレオチドは、他の骨格オリゴヌクレオチドが検出に使用され、異種性の標識を担持する場合には、捕捉部分を有していてもよい。一方または両方の骨格オリゴヌクレオチドは、さらにカスタム配列を含んでもよい。もしくはまたは追加的に、ターゲティングオリゴヌクレオチドはカスタム配列を含んでもよい。
標的断片の存在下でのアニーリング条件の下で、前記ヘッド配列及び前記テール配列は前記フランキング配列にハイブリダイズし、該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端の間のギャップを画定する。該標的断片はギャップ内の標的相補配列とハイブリダイズし、それによって標的断片の末端が該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端と並んで配置される。該ギャップ中の標的断片のハイブリダイゼーションにより、標的断片並びにヘッド及びテール配列を含む核酸鎖が完成する。この鎖は捕捉部分と標識を担持し、本明細書中に記載の捕捉／検出方法による検出が可能となる。
キット及びプローブのセット
本開示のさらなる態様は、一本鎖標的核酸断片を結合するための複数のプローブのセットであり、該プローブは複数の異なる標的断片を結合するための複数の異なる標的相補配列を有する。
プローブのセットは、ヒト染色体の複数の断片を結合するためのものであり、セット内の各プローブは、その染色体に特異的な異なる標的断片を結合するためのものであってよい。このようなプローブは全て、ターゲティングオリゴヌクレオチドまたは骨格オリゴヌクレオチドの一部として、共通のカスタム配列を含んでもよい。
プローブの複数のセットを二つ以上のヒト染色体の異なる断片を結合するために提供することができる。このセットは、
第一の染色体に特異的な複数の標的断片を結合するプローブの第一のセット、
第二の染色体に特異的な複数の標的断片を結合するプローブの第二のセット、及び必要に応じて、
一つまたは複数の染色体に特異的な複数の標的断片を結合するプローブの一つまたは複数のセットを含む。セット内のプローブはセットに共通であり他のセットにおけるプローブのカスタム配列とは異なる独自の配列を共有することができる。
また、１つ以上の容器中の溶液中のプローブのセットを含むキットを提供することができる。
用途
本明細書に記載のプローブ及びプローブとキットのセットは、標的核酸断片の存在のための試料の検査に使用してもよい。これらは、断片化核酸の試料の規定された標的断片の存在のインビトロでの同定に使用してもよい。
一つの態様では、標的一本鎖核酸断片の存在について試料を試験するプローブの使用を含み、
該プローブは、標的断片の一致する相補体である配列を含む標的オリゴヌクレオチド、該標的オリゴヌクレオチドの標的断片に隣接してハイブリダイズするヘッド及びテールオリゴヌクレオチド配列を含み、
前記標的断片と前記プローブとのハイブリダイゼーションは、該ヘッド及びテール配列に対するライゲーションの鋳型を生成する。
試料の試験方法におけるこのようなプローブ及びそれらの使用の実施例は、本明細書中により詳細に記載されている。用途には、トリソミーなどの染色体異常の診断時に胎児の核酸を検出するために妊婦からの母体血液試料を試験すること、患者の腫瘍の存在を診断またはモニタリングするための腫瘍ＤＮＡの患者試料を試験することが含まれる。他の用途は、微生物核酸の存在のための材料の試料を検査することを含み、該微生物核酸の検出が細菌、ウイルス、または真菌などの感染性因子でもよい微生物で材料を検査することを含む。試料は、患者からの組織または血液試料であってもよい。
以下の実施例は、特定の実施形態及び本発明の態様を実証しさらに例示するために提供されるものであり、本発明の範囲を限定的に解釈するものではない。
実施例１
図１に示す方法の実施に適したプロトコルを以下に示す。
１）１０ｎｇのＤＮＡを、対応する互換性のある制限酵素緩衝液中で１Ｕの制限酵素を用いて消化する。反応は、３７℃で１時間インキュベーションし８０℃で２０分間酵素不活性化を行う。２）ＤＮＡ断片を９５℃で１０分間処理し一本鎖フラグメントに変性させ、プローブ及びリガーゼと混合し環状化する。１ＵのＡｍｐｌｉｇａｓｅ（Ｅｐｉｃｅｎｔｒｅ社）とともに各１０ｐＭの濃度でプローブプールを添加し、リガーゼ緩衝液中で５５℃で１時間インキュベーションする。３）１Ｕのエキソヌクレアーゼを未反応のプローブ及び断片を除去するために添加する。ＩＵのλエキソヌクレアーゼ（Ｅｐｉｃｅｎｔｒｅ社）を対応するエキソヌクレアーゼ緩衝液に加え３７℃で１時間経過後、８０℃で２０分酵素を不活化する。４）残りの環状化物をＲＣＡによって増幅する。１Ｕのｐｈｉ２９ポリメラーゼ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ社）を対応するｐｈｉ２９緩衝液及びヌクレオチド（ｄＮＴＰ）に添加し３７℃で１時間処理する。
実施例２
図２に示す方法の実施に適したプロトコルを以下に示す。
１）１０ｎｇのＤＮＡを、対応する互換性のある制限酵素緩衝液中で１Ｕの制限酵素を用いて消化する。反応は、３７℃で１時間インキュベーションし８０℃で２０分間酵素不活性化を行う。２）ＤＮＡ断片を９５℃で１０分間処理し一本鎖フラグメントに変性させ、プローブ及びリガーゼと混合し直鎖状のライゲーション産物を形成する。１ＵのＡｍｐｌｉｇａｓｅ（Ｅｐｉｃｅｎｔｒｅ社）とともに各１０ｐＭの濃度でプローブプールを添加し、リガーゼ緩衝液中で５５℃で１時間インキュベーションする。３）該ライゲーション産物を磁気ストレプトアビジンビーズ上で捕捉する。未反応プローブ及び断片を除去するために、該溶液を１０ｍｌのＭ−２８０ストレプトアビジン被覆磁気ビーズ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）と最終容量２００ｍｌのＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）、３．５ｍＭ ＥＤＴＡ及び０．０７％Ｔｗｅｅｎ−２０中で混合し、室温で１５分間インキュベーションする。インキュベーション後、該ビーズをリングマグネットを使用して回収し上清を除去する。
実施例３
材料及び方法
サンプル調製：各被験者からの１０ｍｌの血液を無細胞ＤＮＡチューブ（Ｓｔｒｅｃｋ社、Ｏｍａｈａ、ＮＥ）に採取した。血漿を二重遠心分離プロトコルにより血液から単離した（１６００ｇで１０分間処理後１６０００ｇで１０分間処理、最初の回転後新しいチューブへ移動）。ｃｆＤＮＡは、Ｑｉａｇｅｎ ｃｃｆ 核酸キット（Ｑｉａｇｅｎ社、Ｈｉｌｄｅｎ、Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いて製造業者のプロトコルに従い単離した。得られたＤＮＡを５０μｌの緩衝液（Ｑｉａｇｅｎキットの一部）の中に溶出させた。
プローブ及び骨格デザイン：本明細書に記載の多重プローブ技術は、数千の染色体断片の特定と同時増幅を可能にする。２１、１８、及び１３番染色体のそれぞれから２５００〜５０００断片（標的）を捕捉するためにプローブを設計する。標的は均一なＡＴ／ＧＣ構成のゲノムに特有の配列を有するように選択され、既知の遺伝子多型や標的配列のＣＮＶを含まず、サイズは１８〜３５ｂｐである。各１３番及び１８番染色体からの２５００断片を標的化するプローブを２１番染色体からの５０００断片を標的化するプローブと一緒にプールしてシングルオリゴプローブプールを作成した。
プローブの配列例において、「Ｎ」は標的相補配列を表す：
ＡＴＧＴＧＡＣＣＣＴＴＣＣＧＴＣＴＧＴＴＧＡＧＴＴＡＧＧＣＣＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＴＣＧＴＧＣＣＴＴＧＴＣＡＴＴＣＧＧＧＡＧＣＡＣＴＡＡＣＴＧＣＴＧ（配列番号１）
前記プローブの末端に相補的なヘッド配列及びテール配列を有する前記骨格は、配列決定及びデジタルカウント両方の配列モチーフを含むよう設計された。結果の項に概説される実験に二つの骨格を使用した：１３番及び１８番染色体にターゲティングするプローブに相補的な配列：
（／５Ｐｈｏｓ／ＣＧＣＡＣＡＣＧＡＴＴＡＡＧＧＴＣＣＡＧＴＣＡＣＡＧＧＣＡＧＡＧＡＴＣＧＧＡＡＧＡＧＣＧＴＣＧＴＧＴＡＧＧＧＡＡＡＧＡＧＴＧＴＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＧＴＧＴＡＧＡＴＣＴＣＧＧＴＧＧＴＣＧＣＣＧＴＡＴＣＡＴＴＴＣＡＴＧＣＴＧＣＴＡＡＣＧＧＴＣＧＡＧＴＣＧＧＡＣＡＧＧＴＧＧＣＴＣＣＡＣＴＡＡＡＴＡＧＡＣＧＣＡ）；配列番号２、及び２１番染色体にターゲティングする骨格：
（／５Ｐｈｏｓ／ＧＧＣＣＴＡＡＣＴＣＡＡＣＡＧＡＣＧＧＡＡＧＧＧＴＣＡＣＡＴＡＧＡＴＣＧＧＡＡＧＡＧＣＧＴＣＧＴＧＴＡＧＧＧＡＡＡＧＡＧＴＧＴＮＮＮＮＮＮＮＮＮＮＧＴＧＴＡＧＡＴＣＴＣＧＧＴＧＧＴＣＧＣＣＧＴＡＴＣＡＴＴＴＣＡＴＧＣＴＧＣＴＡＡＣＧＧＴＣＧＡＧＣＡＧＴＴＡＧＴＧＣＴＣＣＣＧＡＡＴＧＡＣＡＡＧＧＣＡＣＧＡ；配列番号：３）。
生化学プローブプロトコル： ５０μｌの精製ｃｆＤＮＡを５ＵのＭｓｅＩ（ＮｅｗＥｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ社）で全容量５５μｌの１ｘＮＥＢ４バッファー（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ社）及び１ｘＢＳＡ中で３７℃で３０分間で消化し、６５℃で２０分間で熱不活性化した。消化されたＤＮＡをプローブ及び骨格とともにライゲーションミックスと混合した。５５μｌの消化されたＤＮＡをプローブ（１ｐＭ／プローブ）、骨格（各６０ｎＭ）、１ｘライゲーションバッファー（Ｅｐｉｃｅｎｔｒｅ）、１００ＵのＡｍｐｌｉｇａｓｅ（Ｅｐｉｃｅｎｔｒｅ）、１ｍＭ ＮＡＤ、及び５ｍＭ Ｍｇ２＋と全容量が７０μｌとなるように混合した。最初に、消化された断片を９５℃で５分間変性して一本鎖ＤＮＡとし、５５℃で１６時間ハイブリダイゼーション及びライゲーションを行った。ライゲーション混合物はその後エキソヌクレアーゼで処理し残留する直鎖ＤＮＡ分子を全て除去した。ライゲーション反応物を２０ＵのＥｘｏＩ（ＮＥＢ）、５ＵのＥｘｏＩＩＩ（ＮＥＢ）、１ｘＢＳＡと全容量が７５μｌとなるように混合して３７℃で６０分間処理し、その後６５℃で１０分間不活性化した。
解析：シークエンシング解析では、体外で処理した環状化物をＩｌｌｕｍｉｎａの配列決定手段に相補的なシークエンシングプライマーで増幅しＩｌｌｕｍｉｎａ Ｍｉｓｅｑシーケンサーに製造業社プロトコルに従って供した。
デジタル解析では、体外で処理した反応物をローリングサークル増幅反応（ＲＣＡ）に供し、環状化物の鎖状のコピーである分離したＤＮＡ目的物を生成した。３７．５μｌの体外で処理した環状化物を、４ｍＭ ＤＴＴ、３Ｕのｐｈｉ２９ポリメラーゼ（ＮＥＢ）、０．１μＭ プライマー、１ｍＭ ｄＮＴＰ ｍｉｘ（ＮＥＢ）及び１ｘＢＳＡと全容量が５０μｌとなるように混合し、３７℃で１時間インキュベーションし、６５℃で１０分間熱不活性化した。ＲＣＡ反応物はその後、前記骨格配列に相補的な蛍光標識したオリゴヌクレオチドで標識した。５０μｌのＲＣＡ産物を０．１％ Ｔｗｅｅｎ２０（Ｓｉｇｍａ）、５ｎＭの標識オリゴヌクレオチド、及び２ｘ ＳＳＣ（Ｓｉｇｍａ）と全容量が１００μｌとなるように混合した。標識ＲＣＡ産物を最終的にＰｏｌｙ−ｌｙｓｉｎｅ（Ｓｉｇｍａ）で被覆した顕微鏡スライド上に広げ、蛍光顕微鏡でカウントした。
結果
本明細書に記載のプローブ法をＩｌｌｕｍｉｎａの配列決定とデジタル計数システムで実証した。該プローブ法の性能を実証するために、２１トリソミーを有するＤＮＡ試料を、異なる濃度の正常血漿試料（３〜５ｍｌの血漿）から抽出したＤＮＡと混合した。次いで、該試料を用いて該プローブ法を実施し、配列決定により評価した。
図８に示すように、１００ｎｇの細胞株ＤＮＡを上記のプロトコルに供した。１３、１８、及び２１番染色体からの１０，０００個の対応する染色体断片を特異的に環状化するために、プローブをプール中で混合した。得られた１０，０００個の環状物を、Ｉｌｌｕｍｉｎａ対応ＰＣＲプライマーを用いて増幅し、配列決定前にゲル上で分析した。レーン１はＤＮＡラダーに対応し、レーン２は消化後のＤＮＡ試料に対応し、レーン３は１０，０００個の増幅断片を含むＰＣＲ産物に対応する。
図９に示す結果では、１２個の正常血漿試料を、異なる濃度でトリソミー２１のＤＮＡを有する試料と並行して分析した。ＤＮＡを抽出し、１０Ｋ−ｐｌｅｘプローブプロトコルを用いて処理し、最終的にＩｌｌｕｍｉｎａシーケンサーで配列決定した。９９％の特異性の信頼区間を用いて、陽性試料を９０％の感度で推定正規分布に基づいて検出する。
標識されたＤＮＡ目的物を標的断片に変換する原理を実証するために、２１トリソミーを有するＤＮＡの１０％を２０ｎｇの正常細胞株のＤＮＡに加えて、前記プローブ法を実施した。得られた標識ＲＣＡ産物をランダムに顕微鏡スライド上に堆積してカウントを行った。２１番染色体由来の断片を標的とするプローブを一色及びＣｈｒ由来の断片を用いて標識した。１３番及び１８番染色体由来の断片を基準色で標識した。これらの結果を図１０に示す。図１０のパネル（Ａ）は、標識し検出されたＲＣＡ産物の顕微鏡画像を示す。１３番染色体からの全ての断片を第一のフルオロフォアで標識し、基準染色体からの断片を第二のフルオロフォアで標識することにより、比測定を実現する。パネル（Ｂ）は１０Ｋ−ｐｌｅｘプローブプロトコルを用いて処理し、標識ＲＣＡ産物に変換された２０ｎｇのＤＮＡを示す。ＲＣＡ産物はトリソミー２１ＤＮＡが１０％添加された試料と並行して分析した。１２個の正常なＤＮＡ試料（試料番号１〜１２）を３個の陽性試料（試料番号１３〜１５）と並行して分析した。
さらなる説明
以下の項は本明細書の一部である。
１． 標的核酸断片の存在のための試料試験方法であって、
（ｉ） 断片化した核酸の試料を供すること、
（ｉｉ） 前記標的断片が一本鎖となる変性条件を付与すること、
（ｉｉｉ） 前記標的断片よりも長い、内在性標的相補配列を含有するターゲティングオリゴヌクレオチドであって、該ターゲティングオリゴヌクレオチド及び該標的断片間のハイブリダイゼーションにより該ターゲティングオリゴヌクレオチドの上流及び下流フランキング配列間に位置する二本鎖配列が形成される、前記ターゲティングオリゴヌクレオチド、及び遊離５’及び３’末端をそれぞれ有する、前記上流及び下流フランキング配列にそれぞれ相補的である、ヘッド配列及びテール配列を含む核酸プローブに、前記試料を接触させること、
（ｉｖ） 前記ヘッド配列及び前記テール配列が前記フランキング配列にハイブリダイズし、前記標的断片が、存在していれば、前記標的相補配列にハイブリダイズし、それにより該標的断片の末端が該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端と並んで配置されるアニーリング条件を付与すること、
（ｖ） 前記標的断片が存在する場合、前記標的断片の３’末端が前記ヘッド配列の５’末端に連結されて第一のライゲーション接合部を形成し、該標的断片の５’末端が前記テール配列の３’末端に連結されて第二のライゲーション接合部を形成し、該ヘッド配列及び該テール配列並びに該標的断片を含む核酸連続鎖を含む二重連結産物を生成するライゲーション条件を付与すること、及び
（ｖｉ） 前記二重連結産物が存在するかを検出すること、を含み
前記二重連結産物の検出が前記試料中の前記標的断片の存在を示す、前記方法。
２． 前記断片化核酸の試料が制限酵素消化物であり、前記標的断片が制限断片である、第１項に記載の方法。
３． 前記ヘッド配列の５’末端及び前記標的断片の３’末端が、隣接する前記ターゲティングオリゴヌクレオチドのヌクレオチドにハイブリダイズし、前記テール配列の３’末端及び該標的断片の５’末端が、隣接する該ターゲティングオリゴヌクレオチドのヌクレオチドにハイブリダイズする、第１または２項に記載の方法。
４． 前記二重連結産物を検出する工程が、前記核酸連続鎖の前記第一及び第二のライゲーション接合部全体を増幅するための条件を付与し、増幅産物が存在するかを検出することを含む、先行する項のいずれかに記載の方法。
５． 前記ヘッド配列及び前記テール配列並びに前記標的断片を含む前記核酸連続鎖が、環状核酸である、先行する項のいずれかに記載の方法。
６． 前記二重連結産物を検出する工程が、ローリングサークル複製のための条件を付与し、ローリングサークル複製産物が存在するかを検出することを含む、第５項に記載の方法。
７． 前記ローリングサークル複製が超分岐ローリングサークル複製である、第６項に記載の方法。
８． 前記プローブが前記ヘッド配列及び前記テール配列を一つの核酸分子上に含む、第５〜７項のいずれかに記載の方法。
９． 前記プローブが、前記ヘッド配列及び前記テール配列を有する骨格オリゴヌクレオチドを５’及び３’末端にそれぞれ含み、前記骨格オリゴヌクレオチドの該ヘッド配列及び該テール配列が、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記フランキング配列に、前記アニーリング条件でトランス結合する、第８項に記載の方法。
１０． 前記骨格オリゴヌクレオチドが、前記ヘッド配列及び前記テール配列間にカスタム配列を含み、該カスタム配列は、前記プローブの他の領域または前記標的断片に相補的でない、第９項に記載の方法。
１１． 前記骨格オリゴヌクレオチドの前記ヘッド配列及び前記テール配列が隣接している、第９項に記載の方法。
１２． 前記ヘッド配列及び前記テール配列は、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの両末端に位置し、前記アニーリング条件下で前記フランキング配列にシス結合する、第５〜８項のいずれかに記載の方法。
１３． 前記ターゲティングオリゴヌクレオチドが、前記ターゲティングオリゴヌクレオチド並びに前記ヘッド及び／またはテール配列の間にカスタム配列を含み、該カスタム配列は、前記プローブの他の領域または前記標的断片に相補的でない、第１２項に記載の方法。
１４． 前記テール配列は、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの３’末端に位置し、前記プローブが、前記ヘッド配列を５’末端に有する骨格オリゴヌクレオチドを含み、
前記アニーリング条件下で、該テール配列が、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記下流フランキング配列にシス結合し、該骨格オリゴヌクレオチドの該ヘッド配列が、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記上流フランキング配列にトランス結合する、第１〜７項のいずれかに記載の方法。
１５． 前記骨格オリゴヌクレオチドが一対の逆反復配列を含み、
前記アニーリング条件下で該逆反復配列がヘアピン構造を形成し、それにより前記骨格オリゴヌクレオチドの３’末端を前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端に並列するよう配置し、
前記ライゲーションのための条件下で、前記二重連結産物が該ターゲティングオリゴヌクレオチド、前記標的断片、及び該骨格オリゴヌクレオチドを含む環状核酸となるように、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端を該骨格オリゴヌクレオチドの３’末端に連結する、第１４項に記載の方法。
１６． 前記ヘッド配列が、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端に位置し、前記プローブが、３’末端に前記テール配列を有する骨格オリゴヌクレオチドを含んでおり、
前記アニーリング条件下で、該ヘッド配列が該ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記上流フランキング配列にシス結合し、前記骨格オリゴヌクレオチドの該テール配列が該ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記下流フランキング配列にトランス結合する、第１〜７項のいずれかに記載の方法。
１７． 前記骨格オリゴヌクレオチドが一対の逆反復配列を含み、
前記アニーリング条件下で前記逆反復配列がヘアピン構造を形成し、それにより該骨格オリゴヌクレオチドの５’末端が前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの３’末端に並列するよう配置し、
前記ライゲーションのための条件下で、前記二重連結産物が該ターゲティングオリゴヌクレオチド、前記標的断片、及び該骨格オリゴヌクレオチドを含む環状核酸となるように、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端を該骨格オリゴヌクレオチドの３’末端に連結する、第１６項に記載の方法。
１８． 前記アニーリング条件下で、前記骨格オリゴヌクレオチドがヘアピンループを形成するように、該骨格オリゴヌクレオチドが前記逆反復配列間にカスタム配列を含む、第１４〜１７項のいずれかに記載の方法。
１９． 前記ヘッド配列及び前記テール配列並びに前記標的断片を含む核酸の連続鎖が直鎖状核酸である、第１〜４項のいずれかに記載の方法。
２０． 前記テール配列は前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの３’末端に位置し、前記プローブが、前記ヘッド配列を５’末端に有する骨格オリゴヌクレオチドを含み，
前記アニーリング条件下で、該テール配列が該ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記下流フランキング配列にシス結合し、前記骨格オリゴヌクレオチドの該ヘッド配列が該ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記上流フランキング配列にトランス結合する、第１９項に記載の方法。
２１． 前記アニーリング条件下で、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドがヘアピンループを形成するように、該ターゲティングオリゴヌクレオチドが、前記下流フランキング配列及び前記テール配列の間にカスタム配列を含む、第１４、１５、または２０項のいずれかに記載の方法。
２２． 前記ヘッド配列が前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端に位置し、前記プローブが、前記テール配列を３’末端に有する骨格オリゴヌクレオチドを含み，
前記アニーリング条件下で、該ヘッド配列が該ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記上流フランキング配列にシス結合し、前記骨格オリゴヌクレオチドの該テール配列が該ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記下流フランキング配列にトランス結合する、第１９項に記載の方法。
２３． 前記アニーリング条件下で前記ターゲティングオリゴヌクレオチドがヘアピンループを形成するように、該ターゲティングオリゴヌクレオチドが前記ヘッド配列及び前記上流フランキング配列の間にカスタム配列を含む、第１６、１７、または２２項のいずれかに記載の方法。
２４． 前記骨格オリゴヌクレオチドが捕捉部分を担持する、第１４〜１８または２０〜２３項のいずれかに記載の方法。
２５． 前記プローブが、遊離５’末端を有するヘッド配列を含む骨格オリゴヌクレオチド及び遊離３’末端を有するテール配列を含む骨格オリゴヌクレオチドを含み、前記アニーリング条件下で、該ヘッド配列及び該テール配列が、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記フランキング配列にトランス結合する、第１９項に記載の方法。
２６． 一方または両方の骨格オリゴヌクレオチドがさらにカスタム配列を含み、該カスタム配列は、前記プローブの他の領域または前記標的断片に相補的でない、第２５項に記載の方法。
２７． 前記骨格オリゴヌクレオチドの一方が捕捉部分を担持する、第２５または２６項に記載の方法。
２８． 前記骨格オリゴヌクレオチドの他方が異種性の標識を担持する、第２７項に記載の方法。
２９． 前記標識がフルオロフォアである、第２８項に記載の方法。
３０． 前記二重連結産物が存在するかを検出する工程が、前記骨格オリゴヌクレオチドを基質上で前記捕捉部分を介して捕捉すること、該基質を洗浄して連結されていないプローブを除去するとともに該基質及び捕捉した骨格オリゴヌクレオチドを含む捕捉分画を保持すること、及び該捕捉分画中の該二重連結産物の存在について試験することを含む、第２４項または第２７〜２９項のいずれかに記載の方法。
３１． 前記二重連結産物が存在するかを検出する工程が、前記骨格オリゴヌクレオチドを基質上で前記捕捉部分を介して捕捉すること、該基質を洗浄して連結されていないプローブを除去するとともに該基質及び捕捉した骨格オリゴヌクレオチドを含む捕捉分画を保持すること、及び該捕捉分画中の前記標識の存在について試験することを含む、第２８または２９項に記載の方法。
３２． 前記捕捉部分がビオチンである、第２４項または第２７〜３１項のいずれかに記載の方法。
３３． 前記標的相補配列の長さが１０〜３０ヌクレオチドである、先行する項のいずれかに記載の方法。
３４． 前記標的相補配列が、前記標的断片に対して５個未満の塩基対ミスマッチを有する、先行する項のいずれかに記載の方法。
３５． 前記標的相補配列が該標的断片の正確な相補体である、第３４項に記載の方法。
３６． 各フランキング配列の長さが１０〜３０ヌクレオチドである、先行する項のいずれかに記載の方法。
３７． 前記上流及び下流フランキング配列が互いに異なる、先行する項のいずれかに記載の方法。
３８． 前記ヘッド配列が、前記上流フランキング配列に対して５個未満の塩基対ミスマッチを有し、前記テール配列が、前記下流フランキング配列に対して５個未満の塩基対ミスマッチを有する、先行する項のいずれかに記載の方法。
３９． 前記ヘッド配列が、前記上流フランキング配列の正確な相補体であり、前記テール配列が前記下流フランキング配列の正確な相補体である、第３８項に記載の方法。
４０． 前記ターゲティングオリゴヌクレオチドが直鎖状である先行する項のいずれかに記載の方法。
４１． 前記試料が断片化したヒト染色体の試料であり、前記標的断片が一つの染色体に特異的なヒトゲノム断片である、先行する項のいずれかに記載の方法。
４２． 前記標的断片が、ヒトゲノムの一つの遺伝子座に特異的である、第４１項に記載の方法。
４３． 前記プローブ核酸がＤＮＡである、先行する項のいずれかに記載の方法。
４４． 同時に複数の前記プローブを用いて、複数の異なる標的核酸断片を多重試験することを含む、先行する項のいずれかに記載の方法。
４５． 断片化染色体の試料を、染色体の複数の断片を結合するためのプローブのセットに接触させることを含む第４４項に記載の方法であって、該セットの各プローブは該染色体に特異的な異なる標的断片を結合するためのものである、前記方法。
４６． 前記プローブは共通のカスタム配列を有する、第４５項に記載の方法。
４７． 断片化染色体の試料を、二つ以上の染色体の複数の断片を結合するためのプローブの複数のセットに接触させることを含む第４４項に記載の方法であって、該プローブの複数のセットは、
第一の染色体に特異的な複数の標的断片を結合するための第一のプローブセット、及び
第二の染色体に特異的な複数の標的断片を結合するための第二のプローブセット、及び、必要に応じて、
一つまたは複数のさらなる染色体に特異的な複数の標的断片の結合のための一つまたは複数のさらなるプローブセットを含む、前記方法。
４８． 各プローブのセットは、前記染色体に特異的な複数の標的断片の結合のための少なくとも５００個の異なるプローブを含む、第４７項に記載の方法。
４９． 一つのセット中の前記プローブが共通のカスタム配列を有し、該カスタム配列はサブセットに共通し他のセットのプローブのカスタム配列とは異なる、第４７または４８項に記載の方法。
５０． 各プローブのセットに対し前記二重連結産物を検出し、該産物中の前記カスタム配列の相対量を検出することにより、前記試料中の前記複数の染色体の相対量を決定することを含む、第４９項に記載の方法。
５１． 前記一つまたは複数の染色体がヒト染色体である、第４５〜５０項のいずれかに記載の方法。
５２． 一本鎖標的核酸断片を結合するための核酸プローブであって、該プローブが、
前記標的断片よりも長い、内在性標的相補配列を含有するターゲティングオリゴヌクレオチドであって、該ターゲティングオリゴヌクレオチド及び該標的断片間のハイブリダイゼーションにより該ターゲティングオリゴヌクレオチドの上流及び下流フランキング配列間に位置する二本鎖配列が形成される、前記ターゲティングオリゴヌクレオチド、及び
遊離５’及び３’末端をそれぞれ有する、前記上流及び下流フランキング配列にそれぞれ相補的である、ヘッド配列及びテール配列を含み、
よって、上記標的断片存在下のアニーリング条件下で、該ヘッド配列及び該テール配列は上記フランキング配列にハイブリダイズして、該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端の間のギャップを画定し、該ギャップにおいて該標的断片は上記標的相補配列にハイブリダイズし、それにより該標的断片の末端が該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端と並んで配置され、
該ギャップにおける該標的断片のハイブリダイゼーションにより、該標的断片並びに該ヘッド配列及び該テール配列を含む環状核酸が完成する、前記核酸プローブ。
５３． 前記ヘッド／またはテール配列はカスタム配列に連結され、該カスタム配列は、前記プローブの他の領域または前記標的断片に相補的でない、第５２項に記載の核酸プローブ。
５４． 単一核酸分子が前記ヘッド配列及び前記テール配列を含む、第５２または５３項に記載の核酸プローブ。
５５． 前記ヘッド配列及び前記テール配列が前記ターゲティングオリゴヌクレオチドから分離して前記フランキング配列にトランス結合する、第５２または５３項に記載のプローブ。
５６． 前記ヘッド配列及び前記テール配列が、骨格オリゴヌクレオチドの５’及び３’末端にそれぞれ位置する、第５５項に記載のプローブ。
５７． 前記骨格オリゴヌクレオチドが、前記ヘッド配列及び前記テール配列の間にカスタム配列を含み、該カスタム配列は、前記プローブの他の領域または前記標的断片に相補的でない、第５６項に記載のプローブ。
５８． 前記骨格オリゴヌクレオチドの前記ヘッド配列及び前記テール配列が隣接している、第５６項に記載のプローブ。
５９． 一本鎖標的核酸断片を結合するための核酸プローブであって、該プローブが、
前記標的断片よりも長い、内在性標的相補配列を含有するターゲティングオリゴヌクレオチドであって、該ターゲティングオリゴヌクレオチド及び該標的断片間のハイブリダイゼーションにより該ターゲティングオリゴヌクレオチドの上流及び下流フランキング配列間に位置する二本鎖配列が形成される、前記ターゲティングオリゴヌクレオチド、及び
遊離５’及び３’末端をそれぞれ有する、前記上流及び下流フランキング配列にそれぞれ相補的である、ヘッド配列及びテール配列を含み、
よって、上記標的断片存在下のアニーリング条件下で、該ヘッド配列及び該テール配列は上記フランキング配列にハイブリダイズして、該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端の間のギャップを画定し、該ギャップにおいて該標的断片は上記標的相補配列にハイブリダイズし、それにより該標的断片の末端が該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端と並列するように配置され、
該ヘッド配列が、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端であり、及び／または該テール配列が該ターゲティングオリゴヌクレオチドの３’末端であり、よって該ギャップにおける該標的断片のハイブリダイゼーションにより、該標的断片、該ヘッド配列及び該テール配列、該標的相補配列及び該フランキング配列を含む核酸鎖が完成される、前記核酸プローブ。
６０． 前記ヘッド配列及び前記テール配列が前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの両末端に位置し前記フランキング配列にシス結合する、第５２または５９項に記載のプローブ。
６１． 前記テール配列が前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの３’末端であり、前記ヘッド配列が該ターゲティングオリゴヌクレオチドから分離した骨格オリゴヌクレオチドの５’末端である、第５２または５９項に記載のプローブ。
６２． 前記ヘッド配列が前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端であり、前記テール配列が該ターゲティングオリゴヌクレオチドから分離した骨格オリゴヌクレオチドの３’末端である、第５２または５９項に記載のプローブ。
６３． 前記骨格オリゴヌクレオチドがさらにカスタム配列を含み、該カスタム配列は、前記プローブの他の領域または前記標的断片に相補的でない、第６１または６２項に記載のプローブ。
６４． 一本鎖標的核酸断片を結合するための核酸プローブであって、該プローブが、
前記標的断片よりも長い、内在性標的相補配列を含有するターゲティングオリゴヌクレオチドであって、該ターゲティングオリゴヌクレオチド及び該標的断片間のハイブリダイゼーションにより該ターゲティングオリゴヌクレオチドの上流及び下流フランキング配列間に位置する二本鎖配列が形成される、前記ターゲティングオリゴヌクレオチド、
遊離５’末端を有するヘッド配列を含む骨格オリゴヌクレオチド、及び
遊離３’末端を有するテール配列を含む骨格オリゴヌクレオチド、を含み
上記ヘッド及びテールオリゴヌクレオチド配列がそれぞれ上記上流及び下流フランキング配列に相補的であり、
一方の骨格オリゴヌクレオチドが捕捉部分を担持し、他方の骨格オリゴヌクレオチドが異種性の標識を担持し、
よって、上記標的断片存在下のアニーリング条件下で、該ヘッド配列及び該テール配列は上記フランキング配列にハイブリダイズして、該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端の間のギャップを画定し、該ギャップにおいて該標的断片は上記標的相補配列にハイブリダイズし、それにより該標的断片の末端が該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端と並列するように配置され、
該ギャップにおける該標的断片のハイブリダイゼーションにより該標的断片並びに該ヘッド配列及び該テール配列を含む核酸鎖が完成し、該鎖が該捕捉部分及び該標識を担持する、前記核酸プローブ。
６５． 前記捕捉部分がビオチンである、第６４項に記載のプローブ。
６６． 前記標識がフルオロフォアである、第６４または６５項に記載のプローブ。
６７． 一方または両方の骨格オリゴヌクレオチドがさらにカスタム配列を含み、該カスタム配列は、前記プローブの他の領域または前記標的断片に相補的でない、第６４〜６６項のいずれかに記載のプローブ。
６８． 前記ターゲティングオリゴヌクレオチドがさらに前記プローブの他の領域または前記標的断片に相補的でないカスタム配列を含む、第５２〜６７項のいずれかに記載のプローブ。
６９． 前記標的相補配列の長さが１０〜３０ヌクレオチドである、先行する項のいずれかに記載のプローブ。
７０． 前記標的相補配列が前記標的断片に対して５個未満の塩基対ミスマッチを有する、先行する項のいずれかに記載のプローブ。
７１． 前記標的相補配列が前記標的断片の正確な相補体である、第７０項に記載のプローブ。
７２． 各フランキング配列の長さが１０〜３０ヌクレオチドである、第５２〜７１項のいずれかに記載のプローブ。
７３． 前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記上流及び下流フランキング配列が互いに異なる、第５２〜７２項のいずれかに記載のプローブ。
７４． 前記ヘッド配列が、前記上流フランキング配列に対して５個未満の塩基対ミスマッチを有し、前記テール配列が前記下流フランキング配列に対して５個未満の塩基対ミスマッチを有する、第５２〜７３項のいずれかに記載のプローブ。
７５． 前記ヘッド配列及び前記テール配列が前記フランキング配列の正確な相補体である、第７４項に記載のプローブ。
７６． 前記ターゲティングオリゴヌクレオチドが直鎖状である、第５２〜７５項のいずれかに記載のプローブ。
７７． 前記標的断片が制限エンドヌクレアーゼ断片である、第５２〜７６項のいずれかに記載のプローブ。
７８． 前記標的断片がヒトゲノム断片である、第５２〜７７項のいずれかに記載のプローブ。
７９． 前記標的断片が、一つの染色体に特異的なヒトゲノム断片である、第７８項に記載のプローブ。
８０． 前記標的断片が該ヒトゲノムの一つの遺伝子座に特異的である、第７９項に記載のプローブ。
８１． 前記プローブ核酸がＤＮＡである、第５２〜８０項のいずれかに記載のプローブ。
８２． 第５２〜８１項のいずれかに記載のプローブを複数含む、一本鎖標的核酸断片を結合するためのプローブのセットであって、該プローブが複数の異なる標的断片を結合するための複数の異なる標的相補配列を有する、前記プローブのセット。
８３． ヒト染色体の複数の断片を結合するための、第８２項に記載のプローブのセットであって、該セットの各プローブは、該染色体に特異的であって異なる標的断片を結合する、前記プローブのセット。
８４． 前記プローブが共通のカスタム配列を有する、第８３項に記載のプローブのセット。
８５． 二つ以上のヒト染色体の異なる断片を結合するためのプローブの複数のセットであって、
第一の染色体に特異的な複数の標的断片を結合するための、第一のプローブのセット、
第二の染色体に特異的な複数の標的断片を結合するための、第二のプローブのセット、及び、必要に応じて、
一つまたは複数のさらなる染色体に特異的な複数の標的断片を結合するためのプローブの一つまたは複数のさらなるセット、を含む前記プローブの複数のセット。
８６． 一つのセット中の前記プローブが共通のカスタム配列を有し、該カスタム配列は該セットに共通であるが他のセットのプローブのカスタム配列とは異なる、第８５項に記載のプローブの複数のセット。
８７． 一つまたは複数の容器内の溶液中の第８２〜８６項のいずれかに記載の一つまたは複数のプローブのセットを含むキット。
８８． 標的核酸断片の存在について試験するための、第５２〜８１項のいずれかに記載のプローブ、第８２〜８６項のいずれかに記載のプローブのセット、または第８７項に記載のキットの使用。
８９． 標的一本鎖核酸断片の存在について試料を試験するためのプローブの使用であって、該プローブは、該標的断片の正確な相補体である配列を含有するターゲティングオリゴヌクレオチド及び該ターゲティングオリゴヌクレオチド上で該標的断片に隣接してハイブリダイズするヘッド及びテールオリゴヌクレオチド配列を含み
該標的断片及び該プローブ間のハイブリダイゼーションにより、該ヘッド配列及び該テール配列へのライゲーションのための該標的断片の鋳型が形成される、前記プローブの使用。
９０． 前記プローブが第５２〜８１項のいずれかに規定される、第８９項に記載の使用。
一つの実施形態では、核酸試料の処理方法であって、ａ）標的断片を含む試料を核酸プローブにハイブリダイズし、該核酸プローブは：ｉ．第一のオリゴヌクレオチド分子の両末端に位置するヘッド配列及びテール配列；及びｉｉ．該ヘッド配列に相補的な上流フランキング配列、該標的断片に相補的な標的相補配列、及び該テール配列に相補的な下流フランキング配列をその順序で含むスプリント配列を含み、それにより、該標的断片の両末端が、第一のオリゴヌクレオチド分子中の該ヘッド配列及び該テール配列の末端に連結可能に隣接するハイブリダイゼーション産物を生成すること、及びｂ）上記標的断片の両末端を第一オリゴヌクレオチド分子の上記ヘッド配列及びテール配列の末端に連結することにより、上記標的断片並びに上記ヘッド配列及びテール配列を含む環状産物を生成することを含む方法を提供する。
任意の実施形態において、前記方法はさらに、前記第一のオリゴヌクレオチド分子または前記スプリント配列にハイブリダイズするプライマーを使用するローリングサークル増幅によって前記環状産物を増幅することを含んでもよい。これらの実施形態では、前記方法はさらに、産生されたローリングサークル増幅産物の数を定量することにより、前記試料中の前記標的断片の量の推定値を求めることを含んでもよい。
いくつかの実施形態では、前記スプリント配列は、前記第一のオリゴヌクレオチド分子に含まれてもよい。
いくつかの実施形態では、前記スプリント配列は、第二のオリゴヌクレオチド分子に含まれてもよい。
任意の実施形態では、前記標的相補配列の長さは１０〜３０ヌクレオチドであってもよい。
任意の実施形態では、前記標的相補配列は、前記標的断片にたいする一つまたは複数のミスマッチを含んでいてもよい。
任意の実施形態では、前記フランキング配列の長さは１０及び４０ヌクレオチドであってもよい。
任意の実施形態では、前記試料は、制限酵素で消化されてもよい。
任意の実施形態では、前記試料はゲノムＤＮＡ、例えばヒトゲノムＤＮＡを含んでいてもよい。これらの実施形態では、前記試料は血液から単離される無細胞ＤＮＡを含んでいてもよい。例えば、任意の実施形態では、前記試料は、妊婦の血流から単離される無細胞ＤＮＡを含んでもよい。
いくつかの実施形態では、前記スプリント配列は捕捉部分、例えばビオチン部分を含む第二のオリゴヌクレオチド分子に含まれていてもよい。これらの実施形態では、前記方法は：ｃ）該捕捉部分を固相に結合することにより前記環状産物を固定化すること；及びｄ）該固相を洗浄して連結されていない核酸及び他の反応成分を除去することにより、該環状産物を濃縮することを含んでいてもよい。
任意の実施形態では、前記標的断片は、２１、１３、または１８番染色体由来でもよい。
いくつかの実施形態では、前記方法は、前記試料を、少なくとも５０個の前記プローブのセットとハイブリダイズする工程であって、前記プローブは同一の染色体上の異なる断片を標的とし、該標的断片を含む複数の環状産物を生成することを含んでいてもよい。
これらの実施形態では、前記方法は、前記試料を前記プローブのセットである第一のセット及び第二のセットとハイブリダイズし、第一及び第二のセットは第一の染色体及び第二の染色体をそれぞれ標的とし、ローリングサークル増幅（ＲＣＡ）により前記環状産物を増幅し、第一の染色体に対応するＲＣＡ産物の数を第一の染色体に対応するＲＣＡ産物の数と比較することを含んでいてもよい。
これらの実施形態では、前記方法は、前記試料を前記プローブのセットである第一のセット及び第二のセットとハイブリダイズし、第一及び第二のセットは染色体の第一及び第二の領域をそれぞれ標的とし、ローリングサークル増幅（ＲＣＡ）により前記環状産物を増幅し、第一の領域に対応するＲＣＡ産物の数を第二の領域に対応するＲＣＡ産物の数と比較することを含んでいてもよい。
また本明細書では、上述の通り、核酸プローブを含む組成物を提供する。いくつかの実施形態では、該核酸プローブは：ｉ．第一のオリゴヌクレオチド分子の対向する末端に位置するヘッド配列及びテール配列；ｉｉ．該ヘッド配列に相補的な上流フランキング配列、ヒトゲノム中の標的断片に相補的な標的相補配列、及び該テール配列に相補的な下流フランキング配列をその順序で含むスプリント配列を含み、前記プローブは、第一のオリゴヌクレオチド、該スプリント配列、及び該標的断片が互いにハイブリダイズする時に、該標的断片の両末端が、第一オリゴヌクレオチド分子中の該ヘッド配列及び該テール配列の末端と連結可能に隣接するように設計されている。
任意の組成物の実施形態では、前記組成物は、少なくとも５０個の前記核酸プローブの第一のセットを含んでいてもよく、該プローブの前記標的相補配列は、第一のヒト染色体（例えばヒト２１、１３または１８番染色体）の異なる標的断片に相補的である。これらの実施形態では、該組成物は、必要に応じて少なくとも５０個の前記核酸プローブの第二のセットを含んでいてもよく、第二のセットの前記プローブの前記標的相補配列は、第二のヒト染色体、例えば（第一の染色体が２１番染色体の場合）１３または１８番染色体の異なる標的断片に相補的である。

Claims (73)

  1. 標的核酸断片の存在に関する試料試験方法であって、
    （ｉ） 断片化した核酸の試料を供すること、
    （ｉｉ） 標的断片が一本鎖となる変性条件を付与すること、
    （ｉｉｉ） 前記標的断片よりも長い、内在性標的相補配列を含有するターゲティングオリゴヌクレオチドであって、ターゲティングオリゴヌクレオチド及び標的断片間のハイブリダイゼーションによりターゲティングオリゴヌクレオチドの上流及び下流フランキング配列間の位置に二本鎖配列が形成される、ターゲティングオリゴヌクレオチド、及び
    遊離５’及び３’末端をそれぞれ有し、前記上流及び下流フランキング配列にそれぞれ相補的であるヘッド配列及びテール配列
    を含む核酸プローブに、前記試料を接触させること、
    （ｉｖ） 前記ヘッド配列及び前記テール配列が前記フランキング配列にハイブリダイズし、前記標的断片が、存在していれば、前記標的相補配列にハイブリダイズし、それにより標的断片の末端がヘッド配列の５’末端及びテール配列の３’末端と並んで配置されるアニーリング条件を付与すること、
    （ｖ） 前記標的断片が存在する場合、前記標的断片の３’末端が前記ヘッド配列の５’末端に連結されて第一のライゲーション接合部を形成し、該標的断片の５’末端が前記テール配列の３’末端に連結されて第二のライゲーション接合部を形成し、該ヘッド配列及び該テール配列並びに該標的断片を含む核酸連続鎖を含む二重連結産物を生成するライゲーション条件を付与し、該連続鎖は環状核酸であること、
    （ｖｉ） 前記二重連結産物が存在するかを検出すること、を含み
    前記二重連結産物の検出が前記試料中の前記標的断片の存在を示す、方法。
  2. 前記断片化した核酸の試料が制限酵素消化物であり、前記標的断片が制限断片である、請求項１に記載の方法。
  3. 前記ヘッド配列の５’末端及び前記標的断片の３’末端が、隣接する前記ターゲティングオリゴヌクレオチドのヌクレオチドにハイブリダイズし、前記テール配列の３’末端及び前記標的断片の５’末端が、隣接する該ターゲティングオリゴヌクレオチドのヌクレオチドにハイブリダイズする、請求項１または２に記載の方法。
  4. 前記二重連結産物を検出する工程が、前記核酸連続鎖の前記第一及び第二のライゲーション接合部全体を増幅するための条件を付与し、増幅産物が存在するかを検出することを含む、請求項１〜３のいずれかに記載の方法。
  5. 前記二重連結産物を検出する工程が、ローリングサークル複製のための条件を付与し、ローリングサークル複製産物が存在するかを検出することを含む、請求項４に記載の方法。
  6. 前記ローリングサークル複製が超分岐ローリングサークル複製である、請求項５に記載の方法。
  7. さらに固相上に捕捉することにより前記二重連結産物を濃縮することを含む、請求項１に記載の方法。
  8. 前記プローブが前記ヘッド配列及び前記テール配列を一つの核酸分子上に含む、請求項５〜７のいずれかに記載の方法。
  9. 前記プローブが、５’及び３’末端にヘッド配列及びテール配列をそれぞれ有する骨格オリゴヌクレオチドを含み、前記骨格オリゴヌクレオチドのヘッド配列及びテール配列が、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記フランキング配列に、前記アニーリング条件でトランス結合する、請求項８に記載の方法。
  10. 前記骨格オリゴヌクレオチドが、前記ヘッド配列及び前記テール配列間にカスタム配列を含み、該カスタム配列は、前記プローブの他の領域または前記標的断片に相補的でない、請求項９に記載の方法。
  11. 前記骨格オリゴヌクレオチドの前記ヘッド配列及び前記テール配列が隣接している、請求項９に記載の方法。
  12. 前記ヘッド配列及び前記テール配列は、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの末端に位置し、前記アニーリング条件下で前記フランキング配列にシス結合する、請求項５〜８のいずれかに記載の方法。
  13. 前記ターゲティングオリゴヌクレオチドが、前記ターゲティングオリゴヌクレオチド並びに前記ヘッド及び／またはテール配列の間にカスタム配列を含み、該カスタム配列は、前記プローブの他の領域または前記標的断片に相補的でない、請求項１２に記載の方法。
  14. 前記テール配列は、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの３’末端に位置し、前記プローブが、前記ヘッド配列を５’末端に有する骨格オリゴヌクレオチドを含み、
    前記アニーリング条件下で、該テール配列が、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記下流フランキング配列にシス結合し、該骨格オリゴヌクレオチドの該ヘッド配列が、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記上流フランキング配列にトランス結合する、請求項１〜７のいずれかに記載の方法。
  15. 前記骨格オリゴヌクレオチドが一対の逆反復配列を含み、
    前記アニーリング条件下で該逆反復配列がヘアピン構造を形成し、それにより前記骨格オリゴヌクレオチドの３’末端を前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端に並列するよう配置し、
    前記ライゲーションのための条件下で、前記二重連結産物が該ターゲティングオリゴヌクレオチド、前記標的断片、及び該骨格オリゴヌクレオチドを含む環状核酸となるように、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端を該骨格オリゴヌクレオチドの３’末端に連結する、請求項１４に記載の方法。
  16. 前記ヘッド配列が、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端に位置し、前記プローブが、３’末端に前記テール配列を有する骨格オリゴヌクレオチドを含んでおり、
    前記アニーリング条件下で、該ヘッド配列が該ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記上流フランキング配列にシス結合し、前記骨格オリゴヌクレオチドの該テール配列が該ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記下流フランキング配列にトランス結合する、請求項１〜７のいずれかに記載の方法。
  17. 前記骨格オリゴヌクレオチドが一対の逆反復配列を含み、
    前記アニーリング条件下で前記逆反復配列がヘアピン構造を形成し、それにより該骨格オリゴヌクレオチドの５’末端が前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの３’末端に並列するよう配置し、
    前記ライゲーションのための条件下で、前記二重連結産物が該ターゲティングオリゴヌクレオチド、前記標的断片、及び該骨格オリゴヌクレオチドを含む環状核酸となるように、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端を該骨格オリゴヌクレオチドの３’末端に連結する、請求項１６に記載の方法。
  18. 前記アニーリング条件下で、前記骨格オリゴヌクレオチドがヘアピンループを形成するように、該骨格オリゴヌクレオチドが前記逆反復配列間にカスタム配列を含む、請求項１４〜１７のいずれかに記載の方法。
  19. 前記アニーリング条件下で、前記ターゲティングオリゴヌクレオチドがヘアピンループを形成するように、該ターゲティングオリゴヌクレオチドが、前記下流フランキング配列及び前記テール配列の間にカスタム配列を含む、請求項１４または１５のいずれかに記載の方法。
  20. 前記アニーリング条件下で前記ターゲティングオリゴヌクレオチドがヘアピンループを形成するように、該ターゲティングオリゴヌクレオチドが前記ヘッド配列及び前記上流フランキング配列の間にカスタム配列を含む、請求項１６または１７のいずれかに記載の方法。
  21. 前記骨格オリゴヌクレオチドが捕捉部分を担持する、請求項１４〜２０のいずれかに記載の方法。
  22. 前記二重連結産物が存在するかを検出する工程が、前記骨格オリゴヌクレオチドを基質上で前記捕捉部分を介して捕捉すること、該基質を洗浄して連結されていないプローブを除去するとともに該基質及び捕捉した骨格オリゴヌクレオチドを含む捕捉分画を保持すること、及び該捕捉分画中の該二重連結産物の存在について試験することを含む、請求項２１に記載の方法。
  23. 前記捕捉部分がビオチンである、請求項２１または２２に記載の方法。
  24. 前記標的相補配列の長さが１０〜３０ヌクレオチドである、請求項１〜２３のいずれかに記載の方法。
  25. 前記標的相補配列が、前記標的断片に対して５個未満の塩基対ミスマッチを有する、請求項１〜２４のいずれかに記載の方法。
  26. 前記標的相補配列が該標的断片の正確な相補体である、請求項２５に記載の方法。
  27. 各フランキング配列の長さが１０〜３０ヌクレオチドである、請求項１〜２６のいずれかに記載の方法。
  28. 前記上流及び下流フランキング配列が互いに異なる、請求項１〜２７のいずれかに記載の方法。
  29. 前記ヘッド配列が、前記上流フランキング配列に対して５個未満の塩基対ミスマッチを有し、前記テール配列が、前記下流フランキング配列に対して５個未満の塩基対ミスマッチを有する、請求項１〜２８のいずれかに記載の方法。
  30. 前記ヘッド配列が、前記上流フランキング配列の正確な相補体であり、前記テール配列が前記下流フランキング配列の正確な相補体である、請求項２９に記載の方法。
  31. 前記ターゲティングオリゴヌクレオチドが直鎖状である請求項１〜３０のいずれかに記載の方法。
  32. 前記試料が断片化したヒト染色体の試料であり、前記標的断片が一つの染色体に特異的なヒトゲノム断片である、請求項１〜３１のいずれかに記載の方法。
  33. 前記標的断片が、ヒトゲノムの一つの遺伝子座に特異的である、請求項３２に記載の方法。
  34. 前記プローブ核酸がＤＮＡである、請求項１〜３３のいずれかに記載の方法。
  35. 同時に複数の前記プローブを用いて、複数の異なる標的核酸断片を多重試験することを含む、請求項１〜３４のいずれかに記載の方法。
  36. 断片化染色体の試料を、染色体の複数の断片を結合するためのプローブのセットに接触させることを含む請求項３５に記載の方法であって、該セットの各プローブは該染色体に特異的な異なる標的断片を結合するためのものである、方法。
  37. 前記プローブは共通のカスタム配列を有する、請求項３６に記載の方法。
  38. 断片化染色体の試料を、二つ以上の染色体の複数の断片を結合するためのプローブの複数のセットに接触させることを含む請求項３５に記載の方法であって、該プローブの複数のセットは、
    第一の染色体に特異的な複数の標的断片を結合するための第一のプローブセット、及び
    第二の染色体に特異的な複数の標的断片を結合するための第二のプローブセット、及び、必要に応じて、
    一つまたは複数のさらなる染色体に特異的な複数の標的断片の結合のための一つまたは複数のさらなるプローブセットを含む、方法。
  39. 各プローブのセットは、前記染色体に特異的な複数の標的断片の結合のための少なくとも５００個の異なるプローブを含む、請求項３８に記載の方法。
  40. 一つのセット中の前記プローブが共通のカスタム配列を有し、該カスタム配列はサブセットに共通し他のセットのプローブのカスタム配列とは異なる、請求項３８または３９に記載の方法。
  41. 各プローブのセットに対し前記二重連結産物を検出し、該産物中の前記カスタム配列の相対量を検出することにより、前記試料中の前記複数の染色体の相対量を決定することを含む、請求項４０に記載の方法。
  42. 前記一つまたは複数の染色体がヒト染色体である、請求項３６〜４１のいずれかに記載の方法。
  43. 一本鎖標的核酸断片を結合するための核酸プローブであって、該プローブが、
    前記標的断片よりも長い、内在性標的相補配列を含有するターゲティングオリゴヌクレオチドであり、該ターゲティングオリゴヌクレオチド及び該標的断片間のハイブリダイゼーションにより該ターゲティングオリゴヌクレオチドの上流及び下流フランキング配列間に位置する二本鎖配列が形成される、前記ターゲティングオリゴヌクレオチド、及び
    遊離５’及び３’末端をそれぞれ有する、前記上流及び下流フランキング配列にそれぞれ相補的である、ヘッド配列及びテール配列を含み、
    よって、上記標的断片存在下のアニーリング条件下で、該ヘッド配列及び該テール配列は上記フランキング配列にハイブリダイズして、該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端の間のギャップを画定し、該ギャップにおいて該標的断片は上記標的相補配列にハイブリダイズし、それにより該標的断片の末端が該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端と並んで配置され、
    該ギャップにおける該標的断片のハイブリダイゼーションにより、該標的断片並びに該ヘッド配列及び該テール配列を含む環状核酸が完成する、核酸プローブ。
  44. 前記ヘッド／またはテール配列はカスタム配列に連結され、該カスタム配列は、前記プローブの他の領域または前記標的断片に相補的でない、請求項４３に記載の核酸プローブ。
  45. 単一核酸分子が前記ヘッド配列及び前記テール配列を含む、請求項４３または４４に記載の核酸プローブ。
  46. 前記ヘッド配列及び前記テール配列が前記ターゲティングオリゴヌクレオチドから分離して前記フランキング配列にトランス結合する、請求項４３または４４に記載のプローブ。
  47. 前記ヘッド配列及び前記テール配列が、骨格オリゴヌクレオチドの５’及び３’末端にそれぞれ位置する、請求項４６に記載のプローブ。
  48. 前記骨格オリゴヌクレオチドが、前記ヘッド配列及び前記テール配列の間にカスタム配列を含み、該カスタム配列は、前記プローブの他の領域または前記標的断片に相補的でない、請求項４７に記載のプローブ。
  49. 前記骨格オリゴヌクレオチドの前記ヘッド配列及び前記テール配列が隣接している、請求項４７に記載のプローブ。
  50. 一本鎖標的核酸断片を結合するための核酸プローブであって、該プローブが、
    前記標的断片よりも長い、内在性標的相補配列を含有するターゲティングオリゴヌクレオチドであり、該ターゲティングオリゴヌクレオチド及び該標的断片間のハイブリダイゼーションにより該ターゲティングオリゴヌクレオチドの上流及び下流フランキング配列間に位置する二本鎖配列が形成される、前記ターゲティングオリゴヌクレオチド、及び
    遊離５’及び３’末端をそれぞれ有する、前記上流及び下流フランキング配列にそれぞれ相補的である、ヘッド配列及びテール配列を含み、
    よって、上記標的断片存在下のアニーリング条件下で、該ヘッド配列及び該テール配列は上記フランキング配列にハイブリダイズして、該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端の間のギャップを画定し、該ギャップにおいて該標的断片は上記標的相補配列にハイブリダイズし、それにより該標的断片の末端が該ヘッド配列の５’末端及び該テール配列の３’末端と並んで配置され、
    該ヘッド配列が、該ターゲティングオリゴヌクレオチドの５’末端であり、及び／または該テール配列が該ターゲティングオリゴヌクレオチドの３’末端であり、よって該ギャップにおける該標的断片のハイブリダイゼーションにより、該標的断片、該ヘッド配列及び該テール配列、該標的相補配列及び該フランキング配列を含む核酸鎖が完成され、該鎖は環状核酸である、核酸プローブ。
  51. 前記ヘッド配列及び前記テール配列が前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの両末端に位置し前記フランキング配列にシス結合する、請求項４３または５０に記載のプローブ。
  52. 前記標的相補配列の長さが１０〜３０ヌクレオチドである、請求項４３〜５１のいずれかに記載のプローブ。
  53. 前記標的相補配列が前記標的断片に対して５個未満の塩基対ミスマッチを有する、請求項４３〜５２のいずれかに記載のプローブ。
  54. 前記標的相補配列が前記標的断片の正確な相補体である、請求項５３に記載のプローブ。
  55. 各フランキング配列の長さが１０〜３０ヌクレオチドである、請求項４３〜５４のいずれかに記載のプローブ。
  56. 前記ターゲティングオリゴヌクレオチドの前記上流及び下流フランキング配列が互いに異なる、請求項４３〜５５のいずれかに記載のプローブ。
  57. 前記ヘッド配列が、前記上流フランキング配列に対して５個未満の塩基対ミスマッチを有し、前記テール配列が前記下流フランキング配列に対して５個未満の塩基対ミスマッチを有する、請求項４３〜５６のいずれかに記載のプローブ。
  58. 前記ヘッド配列及び前記テール配列が前記フランキング配列の正確な相補体である、請求項５７に記載のプローブ。
  59. 前記ターゲティングオリゴヌクレオチドが直鎖状である、請求項４３〜５８のいずれかに記載のプローブ。
  60. 前記標的断片が制限エンドヌクレアーゼ断片である、請求項４３〜５９のいずれかに記載のプローブ。
  61. 前記標的断片がヒトゲノム断片である、請求項４３〜６０のいずれかに記載のプローブ。
  62. 前記標的断片が、一つの染色体に特異的なヒトゲノム断片である、請求項６１に記載のプローブ。
  63. 前記標的断片が該ヒトゲノムの一つの遺伝子座に特異的である、請求項６２に記載のプローブ。
  64. 前記プローブ核酸がＤＮＡである、請求項４３〜６３のいずれかに記載のプローブ。
  65. 請求項５２〜８１のいずれかに記載のプローブを複数含む、一本鎖標的核酸断片を結合するためのプローブのセットであって、該プローブが複数の異なる標的断片を結合するための複数の異なる標的相補配列を有する、プローブのセット。
  66. ヒト染色体の複数の断片を結合するための、請求項６５に記載のプローブのセットであって、該セットの各プローブは、該染色体に特異的であって異なる標的断片を結合する、プローブのセット。
  67. 前記プローブが共通のカスタム配列を有する、請求項６６に記載のプローブのセット。
  68. 二つ以上のヒト染色体の異なる断片を結合するためのプローブの複数のセットを含む組成物であって、
    第一の染色体に特異的な複数の標的断片を結合するための、第一のプローブのセット、
    第二の染色体に特異的な複数の標的断片を結合するための、第二のプローブのセット、及び、必要に応じて、
    一つまたは複数のさらなる染色体に特異的な複数の標的断片を結合するためのプローブの一つまたは複数のさらなるセット、を含む組成物。
  69. 一つのセット中の前記プローブが共通のカスタム配列を有し、該カスタム配列は該セットに共通であるが他のセットのプローブのカスタム配列とは異なる、請求項６８に記載の組成物。
  70. 一つまたは複数の容器内の溶液中の請求項６５〜６９のいずれかに記載の一つまたは複数のプローブのセットを含むキット。
  71. 標的核酸断片の存在について試験するための、請求項４３〜６４のいずれかに記載のプローブ、請求項６５〜６９のいずれかに記載のプローブのセット、または請求項７０に記載のキットの使用。
  72. 標的一本鎖核酸断片の存在について試料を試験するためのプローブの使用であって、該プローブは、該標的断片の正確な相補体である配列を含有するターゲティングオリゴヌクレオチド及び該ターゲティングオリゴヌクレオチド上で該標的断片に隣接してハイブリダイズするヘッド及びテールオリゴヌクレオチド配列を含み、
    該標的断片及び該プローブ間のハイブリダイゼーションにより、該ヘッド配列及び該テール配列へのライゲーションのための該標的断片の鋳型が形成される、プローブの使用。
  73. 前記プローブが請求項４３〜６４のいずれかに記載される、請求項７２に記載の使用。
JP2016535002A 2013-12-02 2014-11-26 核酸プローブ及びゲノム断片検出方法 Active JP6542771B2 (ja)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB1321191.7A GB2520763A (en) 2013-12-02 2013-12-02 Nucleic acid probe and method of detecting genomic fragments
GB1321191.7 2013-12-02
PCT/IB2014/003061 WO2015083001A2 (en) 2013-12-02 2014-11-26 Nucleic acid probe and method of detecting genomic fragments

Related Child Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2019110035A Division JP6571895B1 (ja) 2013-12-02 2019-06-13 核酸プローブ及びゲノム断片検出方法

Publications (3)

Publication Number Publication Date
JP2016537990A true JP2016537990A (ja) 2016-12-08
JP2016537990A5 JP2016537990A5 (ja) 2017-12-28
JP6542771B2 JP6542771B2 (ja) 2019-07-10

Family

ID=49979619

Family Applications (3)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2016535002A Active JP6542771B2 (ja) 2013-12-02 2014-11-26 核酸プローブ及びゲノム断片検出方法
JP2019110035A Active JP6571895B1 (ja) 2013-12-02 2019-06-13 核酸プローブ及びゲノム断片検出方法
JP2019146042A Active JP6766236B2 (ja) 2013-12-02 2019-08-08 核酸プローブ及びゲノム断片検出方法

Family Applications After (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2019110035A Active JP6571895B1 (ja) 2013-12-02 2019-06-13 核酸プローブ及びゲノム断片検出方法
JP2019146042A Active JP6766236B2 (ja) 2013-12-02 2019-08-08 核酸プローブ及びゲノム断片検出方法

Country Status (13)

Country Link
US (3) US10240198B2 (ja)
EP (2) EP3077540B1 (ja)
JP (3) JP6542771B2 (ja)
KR (1) KR102390285B1 (ja)
CN (2) CN108707652B (ja)
AU (2) AU2014358861B2 (ja)
BR (1) BR112016012264B1 (ja)
CA (1) CA2931013C (ja)
ES (2) ES2818920T3 (ja)
GB (1) GB2520763A (ja)
HK (1) HK1258148A1 (ja)
RU (1) RU2733888C2 (ja)
WO (1) WO2015083001A2 (ja)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2018527915A (ja) * 2015-09-18 2018-09-27 ヴァナディス ダイアグノスティクス Ｄｎａ試料を分析するためのプローブ組及びその使用方法
JP2022511546A (ja) * 2018-12-05 2022-01-31 深▲せん▼華大智造極創科技有限公司 ローリングサークル増幅方法、シーケンシングライブラリの調製方法及び調製されたｄｎａナノスフィア

Families Citing this family (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB2520763A (en) 2013-12-02 2015-06-03 Vanadis Diagnostics Ab Nucleic acid probe and method of detecting genomic fragments
GB2520765A (en) 2013-12-02 2015-06-03 Vanadis Diagnostics Ab Multiplex detection of nucleic acids
US10174383B2 (en) 2014-08-13 2019-01-08 Vanadis Diagnostics Method of estimating the amount of a methylated locus in a sample
GB201507376D0 (en) 2015-04-30 2015-06-17 Vanadis Diagnostics Ab Use of a porous transparent capillary membrane for counting rolling circle amplification products
JPWO2017135383A1 (ja) * 2016-02-03 2018-12-06 国立大学法人豊橋技術科学大学 偽環状二重鎖ポリヌクレオチドと、それを用いた遺伝子発現阻害剤
RU2755151C2 (ru) * 2016-10-27 2021-09-13 Ванадис Дайэгностикс Способ получения продуктов с помощью амплификации по типу катящегося кольца
WO2018214036A1 (zh) * 2017-05-23 2018-11-29 深圳华大基因股份有限公司 基于滚环扩增的基因组目标区域富集方法及其应用
US11117128B2 (en) 2017-08-25 2021-09-14 Vanadis Diagnostics Ab Filtration device
AU2019247652A1 (en) 2018-04-02 2020-10-15 Enumera Molecular, Inc. Methods, systems, and compositions for counting nucleic acid molecules
CN109652506A (zh) * 2018-12-20 2019-04-19 派德洛格(天津)生物科技有限公司 荧光原位检测人EGFR基因21号外显子p.L858R突变的方法及试剂盒
WO2020206170A1 (en) 2019-04-02 2020-10-08 Progenity, Inc. Methods, systems, and compositions for counting nucleic acid molecules
US20230242971A1 (en) * 2020-05-08 2023-08-03 Roche Sequencing Solutions, Inc. Removal of excess oligonucleotides from a reation mixture
US20240218436A1 (en) * 2021-04-29 2024-07-04 Illumina, Inc. Amplification techniques for nucleic acid characterization
WO2023282164A1 (ja) * 2021-07-08 2023-01-12 国立大学法人九州大学 プローブ、プローブセット、及び哺乳動物の核酸検出キット
WO2023034618A1 (en) * 2021-09-03 2023-03-09 Micronoma, Inc. Methods of identifying cancer-associated microbial biomarkers
GB202213930D0 (en) * 2022-09-23 2022-11-09 Xu Bo Padlock blocking oligonucleotide

Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2003535599A (ja) * 2000-06-06 2003-12-02 ティーエム バイオサイエンス コーポレイション 核酸の捕捉部とその使用
WO2007083766A1 (ja) * 2006-01-20 2007-07-26 Olympus Corporation 分子内プローブによる核酸配列の検出方法
JP2007537751A (ja) * 2004-05-18 2007-12-27 オリンク・アーベー 特定の核酸を同時に増幅する方法
JP2008518639A (ja) * 2005-03-18 2008-06-05 ザ チャイニーズ ユニバーシティー オブ ホンコン 染色体異数性の検出方法
JP2008527979A (ja) * 2005-01-12 2008-07-31 アプレラ コーポレイション 核酸の選択的増幅のための組成物、方法およびキット
JP2009535050A (ja) * 2006-05-03 2009-10-01 ザ チャイニーズ ユニバーシティ オブ ホンコン 出生前診断及びモニタリングのための新規の胎児マーカー
WO2012168803A2 (en) * 2011-06-07 2012-12-13 Koninklijke Philips Electronics N.V. Providing nucleotide sequence data
US20130224729A1 (en) * 2009-08-12 2013-08-29 President And Fellows Of Harvard College Biodetection Methods and Compositions
JP2016537989A (ja) * 2013-12-02 2016-12-08 バナディス ダイアグノスティクス 核酸の多重検出

Family Cites Families (23)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5854033A (en) 1995-11-21 1998-12-29 Yale University Rolling circle replication reporter systems
US6573051B2 (en) 2001-03-09 2003-06-03 Molecular Staging, Inc. Open circle probes with intramolecular stem structures
ATE425263T1 (de) * 2001-11-19 2009-03-15 Parallele Bioscience Inc Multiplex-oligonukleotidaddition und zielamplifikation
US20040171047A1 (en) * 2002-05-22 2004-09-02 Dahl Gary A. Target-dependent transcription
US20060003333A1 (en) 2002-11-19 2006-01-05 Singulex, Inc. Preparation of defined highly labeled probes
MXPA05006633A (es) * 2002-12-18 2006-05-25 Third Wave Tech Inc Deteccion de pequenos acidos nucleicos.
ATE462801T1 (de) * 2003-11-04 2010-04-15 Applied Biosystems Llc Konkatamere ligationsprodukte: zusammensetzungen, verfahren und kits dafür
AU2006264564B2 (en) 2005-07-04 2012-04-19 Erasmus University Medical Center Chromosome conformation capture-on-chip (4c) assay
US20070087355A1 (en) 2005-10-14 2007-04-19 Barrett Michael T Comparative genomic hybridization assays and compositions for practicing the same
US8038595B2 (en) 2006-01-25 2011-10-18 Beth Israel Deaconess Medical Center Devices and methods for tissue transplant and regeneration
US20090061424A1 (en) * 2007-08-30 2009-03-05 Sigma-Aldrich Company Universal ligation array for analyzing gene expression or genomic variations
US9388457B2 (en) * 2007-09-14 2016-07-12 Affymetrix, Inc. Locus specific amplification using array probes
GB0912909D0 (en) 2009-07-23 2009-08-26 Olink Genomics Ab Probes for specific analysis of nucleic acids
JP2013511292A (ja) * 2009-11-23 2013-04-04 ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー プローブハイブリダイゼーションおよび制限を使用したシグナル増幅による標的核酸のアッセイ方法
GB0921264D0 (en) * 2009-12-03 2010-01-20 Olink Genomics Ab Method for amplification of target nucleic acid
EP2569447A4 (en) 2010-05-14 2013-11-27 Fluidigm Corp ANALYZES FOR DETECTION OF GENOTYPE, MUTATIONS, AND / OR ANEUPLOIDIE
US20120034603A1 (en) 2010-08-06 2012-02-09 Tandem Diagnostics, Inc. Ligation-based detection of genetic variants
GB2492042B (en) 2011-05-11 2020-04-15 Agilent Technologies Inc Selector probes for nucleic acid analysis comprising at each end a non-adjacent target specific region
US20140336058A1 (en) * 2011-12-02 2014-11-13 Qiagen Gmbh Method and kit for characterizing rna in a composition
US9193994B2 (en) * 2012-04-20 2015-11-24 Samsung Electronics Co., Ltd. Polynucleotide and use thereof
CN102899417A (zh) * 2012-10-24 2013-01-30 武汉大学 一种microRNAs荧光检测探针
CN105074007A (zh) 2013-03-12 2015-11-18 考希尔股份有限公司 用于产前遗传分析的系统和方法
GB2520763A (en) 2013-12-02 2015-06-03 Vanadis Diagnostics Ab Nucleic acid probe and method of detecting genomic fragments

Patent Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2003535599A (ja) * 2000-06-06 2003-12-02 ティーエム バイオサイエンス コーポレイション 核酸の捕捉部とその使用
JP2007537751A (ja) * 2004-05-18 2007-12-27 オリンク・アーベー 特定の核酸を同時に増幅する方法
JP2008527979A (ja) * 2005-01-12 2008-07-31 アプレラ コーポレイション 核酸の選択的増幅のための組成物、方法およびキット
JP2008518639A (ja) * 2005-03-18 2008-06-05 ザ チャイニーズ ユニバーシティー オブ ホンコン 染色体異数性の検出方法
WO2007083766A1 (ja) * 2006-01-20 2007-07-26 Olympus Corporation 分子内プローブによる核酸配列の検出方法
JP2009535050A (ja) * 2006-05-03 2009-10-01 ザ チャイニーズ ユニバーシティ オブ ホンコン 出生前診断及びモニタリングのための新規の胎児マーカー
US20130224729A1 (en) * 2009-08-12 2013-08-29 President And Fellows Of Harvard College Biodetection Methods and Compositions
WO2012168803A2 (en) * 2011-06-07 2012-12-13 Koninklijke Philips Electronics N.V. Providing nucleotide sequence data
JP2016537989A (ja) * 2013-12-02 2016-12-08 バナディス ダイアグノスティクス 核酸の多重検出

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2018527915A (ja) * 2015-09-18 2018-09-27 ヴァナディス ダイアグノスティクス Ｄｎａ試料を分析するためのプローブ組及びその使用方法
US10822640B2 (en) 2015-09-18 2020-11-03 Vanadis Diagnostics Probe set for analyzing a DNA sample and method for using the same
US11591639B2 (en) 2015-09-18 2023-02-28 Vanadis Diagnostics Probe set for analyzing a DNA sample and method for using the same
JP2022511546A (ja) * 2018-12-05 2022-01-31 深▲せん▼華大智造極創科技有限公司 ローリングサークル増幅方法、シーケンシングライブラリの調製方法及び調製されたｄｎａナノスフィア
JP7393429B2 (ja) 2018-12-05 2023-12-06 深▲せん▼華大智造極創科技有限公司 ローリングサークル増幅方法、シーケンシングライブラリの調製方法及び調製されたｄｎａナノスフィア

Also Published As

Publication number Publication date
CA2931013A1 (en) 2015-06-11
AU2014358861A1 (en) 2016-06-09
EP3770273A1 (en) 2021-01-27
US20200318186A1 (en) 2020-10-08
CN108707652B (zh) 2022-04-15
WO2015083001A2 (en) 2015-06-11
US10731214B2 (en) 2020-08-04
EP3077540A2 (en) 2016-10-12
JP6766236B2 (ja) 2020-10-07
CN105899680A (zh) 2016-08-24
KR102390285B1 (ko) 2022-04-25
ES2899693T3 (es) 2022-03-14
ES2818920T3 (es) 2021-04-14
US10240198B2 (en) 2019-03-26
CA2931013C (en) 2023-06-06
AU2021200461B2 (en) 2022-10-06
KR20160096633A (ko) 2016-08-16
US20190194748A1 (en) 2019-06-27
CN108707652A (zh) 2018-10-26
RU2733888C2 (ru) 2020-10-07
EP3077540B1 (en) 2020-09-02
WO2015083001A3 (en) 2015-11-26
EP3770273B1 (en) 2021-09-29
HK1258148A1 (zh) 2019-11-08
JP6542771B2 (ja) 2019-07-10
JP6571895B1 (ja) 2019-09-04
US20170016065A1 (en) 2017-01-19
JP2019176867A (ja) 2019-10-17
GB2520763A (en) 2015-06-03
GB201321191D0 (en) 2014-01-15
JP2019216734A (ja) 2019-12-26
BR112016012264B1 (pt) 2023-04-25
AU2021200461A1 (en) 2021-02-25
CN105899680B (zh) 2018-06-15
BR112016012264A2 (pt) 2017-09-26
AU2014358861B2 (en) 2020-12-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP6571895B1 (ja) 核酸プローブ及びゲノム断片検出方法
JP7091400B2 (ja) 核酸の多重検出
TW202411431A (zh) 準確地平行定量變體核酸的高靈敏度方法

Legal Events

Date Code Title Description
A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20171117

A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20171117

A977 Report on retrieval

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007

Effective date: 20180906

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20181005

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20181225

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20190517

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20190613

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 6542771

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250