JP2016518200A - バルーン表面被覆 - Google Patents
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Abstract
Description
意外にも、活性剤、およびセラックアルカリ塩または好ましくはセラックアンモニウム塩の被覆を施したカテーテルバルーンが上記目的を達成するために適していることが見出された。
−シードラック
−手工セラック
−機械製作セラック
−PhEur7ヨーロッパ薬局方第7版仕様:漂白セラック、漂白脱ワックスセラック、ワックス含有セラック、脱ワックスセラック
−米国薬局方および国民医薬品集(USP−NF):通常漂白セラック、精製漂白セラック、オレンジセラック、および脱ワックスオレンジセラック
セラックは、水蒸気及び酸素の透過性が低いために、錠剤やペレットのための湿気防止用被覆剤として広く用いられている。セラックは長期に薬剤の放出を制御する被覆剤としても用いられており、それは通常アルコール溶液(製薬薄膜 pharmaceutical glazes)または他の有機溶媒を用いた溶液の形体で用いられる。
1.可燃性でかつ毒性を有する。
2.その蒸気が被覆装置運転者の障害原因となる。
3.溶媒が高価である。
4.製剤における溶媒残留物。
バルーンカテーテルを被覆するための本発明の1方法は、以下のステップを含む I) 被覆のないバルーンカテーテルを提供する工程;
および、
IIA)活性剤およびセラックの水溶液を提供するか;
または、
IIB)活性剤溶液を提供すると共に、セラック水溶液を提供する工程;
および、
IIIA)前記バルーンカテーテルのバルーンの表面を前記活性剤と前記セラックの水溶液で被覆するか;
または、
IIIB)前記バルーンカテーテルの前記バルーンの表面を前記活性剤の溶液で被覆し、次いで前記セラックの水溶液で被覆するか、または前記バルーンカテーテルのバルーンの表面を前記セラックの水溶液で被覆し、次いで前記活性剤の溶液で被覆する工程;
IV) 前記被覆カテーテルバルーンを乾燥する工程。
D’)再びセラック水溶液を適用する工程。
勿論各被覆工程の後に乾燥工程を行うことができるが、さらに詳細な方法は以下に示す:
A)非被覆バルーンカテーテルを提供する工程;
および、
B)活性剤溶液の提供とセラック水溶液を提供する工程;
および、
C)前記バルーンの表面を前記セラックの水溶液で被覆し、前記被覆したバルーン表面を乾燥する工程;
および、
D)前記活性剤の溶液を適用した後、前記被覆したバルーンを乾燥し、
次いで
E)前記被覆したカテーテルバルーンを乾燥する工程。
IA)非被覆バルーンカテーテルを提供する工程;
および
IIA)活性剤とセラックの水溶液を提供する工程;
および
IIIA)前記カテーテルバルーンの表面を活性剤およびセラックの水溶液で被覆する工程;
および
IV)被覆したカテーテルバルーンを乾燥する工程。
本発明の別の態様は、請求項1に記載のバルーンカテーテルを被覆する方法に関し、以下の工程を含む:
IA)非被覆バルーンカテーテルを提供する工程;
および
IIA)活性剤と水溶性セラック塩の水溶液を提供する工程;
または、
IIB)活性剤の溶液を提供し、かつ水溶性セラック塩の水溶液を提供する工程;
および
IIIA)前記バルーンカテーテルのバルーンの表面を前記活性剤および前記水溶性セラックの水溶液で被覆する工程;
または
IIIB)前記バルーンカテーテルのバルーンの表面を前記活性剤の溶液で、次いで前記水溶性セラック塩の水溶液で被覆するか、または前記バルーンカテーテルのバルーンの表面を前記水溶性セラック塩の水溶液で、次いで前記活性剤の溶液で被覆する工程;
IV) 前記被覆したバルーンを乾燥する工程
上記工程において、前記水溶性セラック塩の水溶液または前記活性剤の水溶液および前記水溶性セラック塩は、セラックのアルカリ塩またはアンモニウム塩を用いて作成される。
本発明に、さらに以下の工程からなる拡張可能なカテーテルバルーンを装填または被覆するための方法を含み、それは以下の工程を含む:
IA)非被覆カテーテルバルーンを提供する工程;
および
IIB)活性剤の溶液とセラックの水溶液を提供する工程;
および
IIIB)前記カテーテルバルーンの表面を、前記活性剤の溶液、次いで前記セラックの水溶液で被覆するか、または前記カテーテルバルーンの表面を前記セラックの水溶液、次いで前記活性剤の溶液で被覆する工程;
IV) 被覆されたカテーテルバルーンを乾燥する工程。
本発明の被覆方法は任意選択的であるがさらに工程V)を含む:
V)前記活性剤およびセラックアルカリ塩被覆カテーテルバルーンの滅菌。
さらに本発明は活性剤およびセラックアルカリ塩および任意選択的にベースコートおよび/またはトップコートを含むカテーテルバルーンを含む。本明細書で用いられる用語「ベースコート」とは、前記カテーテルバルーンの表面のすぐ上に存在するカテーテルバルーンの被覆層を言う。この層は直接カテーテルバルーンの材料を被覆する第1層である。また本明細書で用いられる用語「上層」または「トップコート」は活性剤含有層に被せられる活性剤のない被覆層を言う。
基本的に、水溶性の重合体は、酸素および窒素分子、ヒドロキシ、カルボン酸、スルホン酸、リン酸、アミノ基、イミノ基などが存在する結果として高い親水性を有する。ここでの水溶性重合体は好ましくは、ポリサッカライド、およびポリペプチド並びにこれらの半合成誘導体のような高分子、かつ完全に合成により作成された化合物が好ましい。
脂肪酸は以下の群から選ばれることが好ましい:オクタン酸(カプリル酸)、デカン酸(カプリン酸)、ドデカン酸(ラウリン酸)、テトラデカン酸(ミリスチン酸)、ヘキサデカン酸(パルミチン酸)、ヘプタデカン酸(マルガリン酸)、オクタデカン酸(ステアリン酸)、エイコサン酸(アラキン酸)、ドコサン酸(ベヘン酸)、テトラコサン酸(リグノセリン酸)、シスー9−テトラデセン酸(ミリストレイン酸)、シスー9−ヘキサデセン酸(パルミトレイン酸)、シス−6−オクタデセン酸(ペトロセリン酸)、シス−9−オクタデセン酸(オレイン酸)、シス−11―オクタデセン酸(バクセン酸)、シス−9−エイコセン酸(ガドレイン酸)、シス−11−エイコセン酸(ゴンド酸)、シス−13−ドコセン酸(エルカ酸)、シス−15−テトラコセン酸(ネルボン酸)t9−オクタデセン酸(t−バクセン酸)、t3−ヘキサデセン酸、9,12−オクタデカジエン酸(リノール酸)、6,9,12−オクタデカトリエン酸(γ−リノール酸)、8,11,14−エイコサトリエン酸(ジホモ−γ―リノレン酸)、5,8,11,14−エイコサテトラエン酸(アラキドン酸)、7,10,13,16−ドコサテトラエン酸、4,7,10,13,16−ドコサペンタエン酸、9,12,15−オクタデカトリエン酸(α―リノール酸)6,9,12,15−オクタデカテトラエン酸(ステアリドン酸)、8,11,14,17−エイコサテトラエン酸、5,8,11,14,17−エイコサペンタエン酸(EPA)、7,10,13,16,19−ドコサペンタエン酸(DPA)、4,7,10,13,16,19−ドコサヘキサエン酸(DHA)、5,8,11−エイコサトリエン酸(ミード酸)、9c,11t 13t エレオステアリン酸、8t 10t 12cカレンド酸、9c 11t 13c カタルピック酸、4,7,9,11,13,16、19ドコサヘプタデカン酸(ステラヘプタエン酸)、タクソレイク酸、ピノレニック酸、サイアドン酸、6−オクタデシノイン酸(タリリン酸)、t11−オクタデセン−9−イン酸(サンタルビックまたはキシメニック酸)、9−オクタデシン酸(ステアロリック酸)、6−オクタデセン−9−イン酸(6,9−オクタデセンイン酸)、t10−ヘプタデセン−8−イン酸(ピルリック酸)、9−オクタデセン−12−イン酸(クレペニニック酸)、t7,t11−オクタデカジエン−9−イン酸(ヘイステリック酸)、t8,t10−オクタデカジエン−12−イン酸、5,8,11,14−エイコサテトライン酸(ETYA)、エレオステアリン酸、カレンディク酸、カタルピック酸、ステラヘプタエン酸、タクソレイン酸、レチノイン酸、イソパルミチン酸、プリスタン酸、フィタン酸、11,12−メチレンオクタデカン酸、9,10−メチレンヘキサデカン酸、コロナリック酸、(R,S)リポ酸、(S)−リポ酸、(R)−リポ酸、6,8−ビス(メチルスルファニル−)オクタン酸、4,6−ビス(メチルスルファニル)−ヘキサン酸、ブタン酸、1,2−ジチオランオクタンカルボキシル酸、(R,S)−ジチアンオクタン酸、(R)−6,8−ジチアンオクタン酸、(S)−6,8−ジチアンオクタン酸、セレブロン酸、ヒドロキシネルボン酸、リシノール酸、レスクエロリック酸、ブラシル酸およびサプシック酸またはこれらの混合物。
以下に示す実施例は、本発明の範囲を限定することなく詳細にその実施形態を示すものである。
実施例1 パクリタキセルとアクアラッカ(AQUALACCA)25によるカテーテルバルーンの被覆
まず、120mgのパクリタキセルを800μLのエタノールに溶解し、24時間室温で攪拌して800μLのアクアラッカ25と混合する。
実施例2 シロリムスを含むセラク「セラクア」被覆剤によるカテーテルバルーンの被覆
市販されるポリアミド製の膨張可能なバルーンを備えた拡張カテーテルを提供する。バルーン表面はテクスチャー加工がされているが溝や凹みはない。
水2.0mL中にラパマイシン140μgを溶解した溶液を調製し、カテーテルバルーンを該溶液中に浸し、次に、カテーテルバルーンを完全に乾燥し、酸化エチレンで殺菌した。
実施例3 シロリムスおよびアラビアゴムを含む「セラクア」被覆剤によるカテーテルバルーンの被覆
膨張血管の拡張に適したバルーンカテーテルのバルーンは、超音波浴中で10分間アセトンとエタノールで脱脂し、次ぎにバルーンカテーテルを100℃で乾燥する。50℃の純水中で噴霧乾燥粉末に1重量%の重炭酸アンモニウム溶液を添加し、ゴムが完全に溶解するまで機械的に攪拌して、アラビアゴムの溶液を調製した。ゴム溶液のpHが7を超えるまで重炭酸アンモニウムを添加した。次に、この溶液を18重量%溶液に調製されるようにセラックと混合した。120mgのシロリムスを1mLセラック水溶液中に溶解し、カテーテルバルーンに噴霧して塗布する。被覆されたカテーテルバルーンは、70℃で13時間を超えない範囲で乾燥する。
実施例4 パクリタキセルおよび可塑剤を含む「セラクア」被覆剤によるカテーテルバルーンの被覆
まず、120mgのパクリタキセルを800μLのエタノール中に溶解し、190gのセラックおよび9gのグリセロールを1000mLの2.5重量%の重炭酸アンモニウム溶液中に溶解し、40℃で24時間攪拌する。この後、この100μLのパクリタキセル溶液を900μLのセラックアンモニウム塩溶液に混合しカテーテルバルーン上にピペットする。被覆したカテーテルバルーンは70℃で一晩乾燥した。
実施例2に記載する方法でラパマイシン溶液とセラック塩溶液を調製した。次いで、100μLのシロリムス溶液を900μLのセラック塩溶液と混合した。
実施例6 シロリムス含む「セラクア」被覆剤によるカテーテルバルーンの被覆
ポリアミド製の膨張可能なバルーンを備えた市販の拡張カテーテルを提供する。バルーンの表面はテクスチャー加工されているが溝やへこみはない。
次に、この溶液をカテーテルバルーンの表面の水平部分に刷毛塗りで塗布した。140μgのラパマイシンを水2.0mLに溶解した溶液を調製し、カテーテルバルーンを当該溶液に浸した。次に、カテーテルバルーンを完全に乾燥し、酸化エチレンで殺菌した。
実施例7 シロリムスを含む「セラクア」被覆剤によるカテーテルバルーンの被覆
まず、100mgのシロリムスを1mLのアクアラッカ25中に溶解した。
実施例8 パクリタキセルを含む「セラクア」被覆剤によるカテーテルバルーンの被覆
先ず、120mgのパクリタキセルを1mLのアクアゴールド(AQUAGOLD)に溶解した。この溶液の水分を真空下で蒸発させ、ペレットを1mLのエタノール中で溶解した。
実施例9:本発明により被覆されたバルーンの薬物動態学的評価
この試験は短期(1時間―5日間)でパクリタキセルの組織吸収および本発明のカテーテルバルーンによって与えられた保持特性を評価するためのものである。
グループ1 3.0μg/mm2のパクリタキセル+3.0μg/mm2のセラック塩(AQUALACCA25)
グループ2 3.0μg/mm2のパクリタキセル+2.0μg/mm2のセラック塩(AQUALACCA25)
全ての試験バルーンは直径が3.0mmで長さが15mmであった。
方法
全ての実験用動物は、経口のアセチルサリチル酸(最初の投与量325mg、翌日の投与量75mg)およびクロピドグレル(最初の投与量300mg、引き続いて投与量75mg)からなる二重の抗血小板治療を介入3日前から始め、犠牲死するまで続けた。麻酔薬での麻酔導入後、前記動物に挿管して機械的換気を維持した。麻酔を施した手術面を維持するために麻酔薬の連続的輸液を始めた。次に、経皮的セルヂンガー法を用いて左または右大腿部動脈に動脈鞘を導入した。最初のヘパリン(〜400U・kg)のボーラス投与を行ない、少なくとも300秒のACT時間を維持するために30分ごとにACTの測定をした。動脈内ニトログリセリン(200μg)の投与後動脈造影を行った。目標とする場所の選定は、これらの場所は、被覆したステントと動脈壁との均一な相互作用を確保するために側枝または10%より大きいテーパーを持った場所を回避するように選ばれた、障害バルーンは、バルーン対動脈比が1.2−1.3:1.0を達成するように十分確実な比率で膨張させた。障害処理法に従い、処理したバルーンを同じ場所に進め同様のバルーン対動脈比で50秒間膨張させる。予め定められた時点で、動物は認められた安楽死の解決法を用いて安楽死させた。安楽死後は、前記心臓を試験血管が傷つかないように注意して可及的に速やかに取り出した。前記心臓を異常有無の発見のために調べた後、動物認識番号、プロトコル番号および収集日付をラベル表示した。前記心臓をヘパラン化生理食塩水で血液を取り除くために洗浄した。試験部位は、冠動脈造影法および目印としての側枝を用いて立体顕微鏡で分析した。全ての試験血管部分は動物識別番号、プロトコル番号および収集日付でラベル表示した。また全ての組織は、ドライアイスで―68℃に凍結したコンテナ中に入れてHPLC試験場に送付した。
定性的冠動脈造影
冠動脈造影をシーメンス コロスコップ ミレニウム エディション ユニット(Siemens Coroskopm Mijjenium Edition
unit)を用い、ジャドキンス 6 フレンチ ガイディング カテーテル(Judkins Right 6 French guiding catheeter)を冠動脈造影のために使用した。QCA分析は、QアンジオXAソフトウエア バージョン7.1.14.0(メジス メディカル イメイジング システム(Medis Medical Imaging System))を利用し、2個の対側投影によって目隠し法で実施した。基準および28日後の参考追跡直径(RVD)は測定標準となるガイディングカテーテルを用いて処理部分の近位端および遠位端から採用した。バルーン対動脈の比率は計算により得た。追跡後の狭窄部の直径の百分率(%DS)は、[1−(MLD/RVD)]X100%として算出した。
HPLC分析
血漿、LAD、LCxおよびRCAのパクリタキセル濃度を、高速液体クロマトグラフィーにより測定した。(アナカット インスティテュート フュール ビオテクノロギー社、(AnaKat Institut fur Biotechnologie GmbH,Berlin,Germany)試料起源秘匿分析)。端的に言えば、融解後、組織を自然冷却した後その温度で重さを測り、その試料にその重さに応じて異なる容量のエタノールを加えた(組織を十分に覆うのに十分な容量)。さらに試料を40分間超音波で処理し,次いで約200mlの試料を遠心分離にかけた。検定線を50乃至5000ng/ml間の範囲で作成した。前記検定線作成のための試料は100mg/mlの濃度を持った貯蔵溶液を希釈して作成した。全試料(組織および検定線からの試料)のアリコットを自動試料採取瓶に移し、同容量の0.1%蟻酸を加えた。高速液体クロマトグラフィーの流速はODSハイパーシルのカラムを通して0.2ml/分(サーモエレクトロン社(ThermoElectron Corporation,Thermo,Scientific,Waltham,Massachusetts,USA))であり、粒径は5m、孔径は120Åである。定組成移動相は蟻酸(0.1%)を含む70%メタノールからなっていた。パクリタキセルは、854から105AMUへのパクリタキセルの変移を伴った複合モニタリングモードでの質量分析で測定した。組織のパクリタキセル濃度はμg/gで表した。
追跡調査
前記試験用動物は、表1に示した試験計画に従って1、24、48時間、5日間(各時点で2匹)を予定した。
表1:血管および動物へのカテーテルバルーンの配置を示す試験計画
結果は、中央値およびで四分位範囲値で表した。グループ2では試料数が限られているので(1時点で僅か1匹のみ)統計的試験は適用しなかった。
結果
作業前の手順
一晩絶食させた後、動物に体重に応じた混合薬で予備麻酔を施した。この薬剤は、アトロピン(1mg/20kg sc.)、ケタミン(1ml/10kg im)およびキシラジン(1ml/10kg im)を含む。注射は、有資格の動物科学技術者によって首または臀部の何れかの筋肉の4分割区分に対して行われた。動物は準備室に移され、そこでは耳介周辺の静脈中に点滴のラインが置かれ、処理中は点滴液(乳酸加リンゲル液または0.9%サリン)が投与された。さらに必要があれば、点滴液に抗不整脈剤(リドカイン200mg/l、メトプロロル5mg/l)を加えた。動物が(プロポフォールボーラスで)十分に麻酔された後、固定されて漏れがないようにカフを膨らませ、適切な大きさの気管内チューブを挿管した。次に動物はカテーテル実験室に移され、麻酔器と送風機が取り付けられた。
基準血管およびバルーン配備の特性
全グループ並びに各時点での血管の基準遠位および近位の血管直径および平均血管の基準QCAパラメータに差異はなかった(表2)。平均の過大拡張は120−130%でグループ間で再現可能であった。全ての試験バルーンは直径3.0mm、長さ15mmであり、3分±20秒間循環のままであった。
表2:基準QCA血管の特性
パクリタキセルの組織への取り込みおよび保持
追跡試験時内では、死亡や大きな問題となる事項、心臓疾患などは見られなかった。全ての試験動物は安楽死を迎えるまで良好な一般的状態を保っていた。1時間の追跡試験時間では、本発明のカテーテルバルーンは、それぞれ454.27μg/gおよび515.9μg/gの濃度のパクリタキセルを放出していた。グループ1での1日間の追跡調査では、組織内のパクリタキセルの濃度の中間値は、同じように追跡調査を設定したグループ2では60.85μg/gであったのに対して、202.86μg/gであった。48時間経過後でも同じような傾向が見られた(それぞれ15.3と2.11μg/g)。最終的な観察では、両グループ(図1)間でパクリタキセル濃度は同じであった。グループ1の1個のバルーンは、5日間の追跡調査で血管壁に対して薬剤を何等放出しなかった。
バルーン上のパクリタキセル残渣
バルーン上のパクリタキセル残渣の分析では、グループ2のバルーン表面には、元の薬剤量の約50%が、またグループ1のバルーン表面では40%が残留していることがHPLC分析の結果から判った。
結論
全ての試験用バルーンが支障なく試験場に導入配置された。送達または回収にも何等問題は起こらなかった。通常の膨張でのバルーンの直径は設計通りの値であった。不都合な出来事はなく、処理後も追跡試験後も問題はなかった。解剖の結果では、試験部位に肉眼的な心筋梗塞や炎症の兆候は見られなかった。5日間の追跡試験を行った血管には処理された血管部位に損傷または薬剤の毒性の何れかに起因する付着物が見られた。非常に短時間の観察および試験計画のために、試験用バルーンカテーテルの安全性を確立できなかったことに留意すべきである。
実施例10:従来のバルーンカテーテルの生物学的試験
試験には体重が35−42kgの8匹の洗浄した国産ブタが用いられ、24個のパクリタキセル溶出バルーンが配備された。地域生物倫理委員会の適切な承認が得られた.各動物の3個の冠状動脈(LAD、LCX、RCA)が、どの実験群に対しても1;1;1となるようにしてランダムに割り当てられた。
1.3.0μg/mm2パクリタキセル+0.3μg/mm2アルファリノレン+0.3μg/mm2ボスウエリック酸
2.3.0μg/mm2パクリタキセル+0.3μg/mm2 zアルファリノレン
3. 3.0μg/mm2パクリタキセル+3.0μg/mm2 エタノール溶液として適用されたセラック(セラックは酸の形態;バルーンは従来品)
試験用バルーンは全て直径が3.0mmで、長さが20mmであった。
方法
試験動物は、介入前3日前から全試験を通して、アセチルサリチル酸およびクロピドグレルからなる抗血小板治療を受けた。通常的な麻酔の下で、6Fシースを通る到達大腿動脈の通路をステントを2つの異なる冠動脈中に導入し移植するために得た。また全てのバルーンを、バルーン/動脈直径比1.15:1.0に確保された膨張圧における「ライブ(live)」の定性的血管造影分析の手引きの下で移植した。
HPLC分析
血漿、LAD、LCx、およびRCAのパクリタキセル濃度は、高速液体クロマトグラフィーにより測定された(AnaKat institut fur Biotechnologie GmbH,Berlin,Germany,analysis blinded to sample origin(資料元不明分析))。手短に言えば、組織を解凍後、大気温度で重量を測り、その重量によって、試料に異なる量のエタノールを加えた(組織を完全に覆うのに十分なエタノール量)。次に試料を超音波で40分間処理した。約200mlの試料を遠心分離した。
予備処理
一晩絶食させた後、実験動物をその動物の体重に基づき混合物で麻酔を施した。これらの薬物は、アトロピン(1mg/20kg sc)、ケタミン(4mL/10kg im)およびキシラジン1ml/10kgim)を含む。有資格技術者が、首部または臀部の筋肉に対して筋肉注射を行なった。動物は前処理室に移され、静脈ラインは耳介周辺の静脈を取り、静脈注射液(乳化リンゲルまたは0.9%生理食塩水)が処理中を通して投与された。これらの静脈注射用液体中には抗不整脈剤(リドカイン200mg/l、メトプロロル5mg/l)を加えた。試験動物が十分な麻酔水準(1−3%のイソフルラン麻酔ガスマスク)に到達した場合に、適切な大きさの気管内挿入管を挿管し、所定の位置に拘束して漏洩しないようにカフを膨らませた。次に動物をカテーテル検査室に移し、テーブル上に置いて、麻酔および換気ユニットを取り付けた。
総処理手順
総計24個のバルーンを グループ1および2のそれぞれ8個およびグループ3(本発明よるもの)の8個に分散して配備した。それらの各々を送達前に検査した。構造の異常性は見当たらなかった。バルーンは、大腿動脈を経て選択された動脈部分に容易に導入され、実際にQCAガイダンスに沿ってバルーン/動脈の比率1.1:1を確認した後、所望の部分に首尾よく配備された。全ての試験されるバルーンを60秒間膨張させた。グループ3の場合には、血管は開口のままであり、末端の流れは損なわれないが、過度の拡張のためにバルーンは膨張後に切開が見られ、それ故にステントの移植は必要なかった。
追跡調査
試験動物は、1時間、13および7日(1時点で2匹のブタ)を予定した。全追跡調査時点に亘って,死亡もなければ否定的事象である心臓事故が注目されることもなかった。全ての動物が良好な通常的条件を保ち、安定的な体重増加が認められた。
統計的解析
結果は、平均値および標準偏差(SD)として表された。変数の基準分布はコルモゴロフ・スミモフ(Kolmogorov−Smimov)の検定により検証された。また分散均一性はルビーン検定(Levene)により検証された。血管造影およびHPLC分析のデータはアノ−バ(ANOVA)(分散分析)を用いて分析した。歪んだ分布や不均一な変動の場合には母数によらないクラスカル・ウォリス検定およびユー マン・ホイットニー検定を用いた。p−価<0.05は統計的に重要であると思われる。
結果
基準的な血管およびバルーン配備の特性:基準的血管、参照直径、最小内腔直径、バルーン直径および全グループ並びに調査グループ間の各時点におけるステント対動脈の比率のような基本的なQCA結果に差はなかった。
パクリタキセルの濃度分析
1時間の観察では、グループ3においては、血管壁内におけるパクリタキセルの濃度は極めて高い。1日では、統計的に有意ではないが、数値的にさらに高いままである。グループ3では、3日および7日で、濃度は1μg/gに低下し、またグループ1および2では認識できない水準まで低下した(表3)。これらの結果は、最初の負荷量分析の百分率においても続いていた。
表3:血管壁内パクリタキセル濃度
結論
全ての試験バルーンが、試験現場に容易に導入され配備された。セラックアンモニウム塩で被覆された本発明による両パクリタキセルバルーン(実施例9)は、より効果的にパクリタキセルを血管壁に送達することができた。表3に見られるように、本発明によるカテーテルバルーンの配置後の組織においては、パクリタキセル濃度(約500μg/g)は、セラックを酸の形態で被覆したカテーテルバルーン(従来技術によるバルーン:1時間後に約50μg/g)に比べて約10倍高く、それは酸の形態のセラックによる被覆および触媒物質としてのアルファーリノレンで被覆されたカテーテルバルーンから得られた組織濃度中の薬剤量は比較的乏しいものであることを示した。
実施例11:本発明により被覆されたバルーンの安全調査
追跡時間(FUP)を1、3、24時間および48時間とし、本発明により被覆された薬剤溶出バルーンを用いて12匹のブタ(3x4匹のブタ)の冠動脈を膨張させた。前記バルーンを1.3:1の割合で2x30秒で膨張させた。追跡時間終了後、溶出物は外植され、液体窒素中に貯えられ、かつ組織のパクリタキセル/シロリムスの測定のために送付された。各バルーンにおける10個のカテーテルチップおよび12−15個の血漿サンプル(バルーン拡張後5、10および60分のバルーン使用に直ちにサンプリングした血液からのもの)もまた評価のために送付された。
グループ1. 3.0μg/mm2のパクリタキセル+3.0μg/mm2のアクアラッカ25+上面被覆としての2.0μg/mm2のPEG(「マスター」)
グループ2. 3.0μg/mm2のパクリタキセル+2.0μg/mm2のアクアラッカ(「レン」(Ren))
グループ3. 5.0μg/mm2のシロリムス+3.0μg/mm2のアクアラッカ25+0.5μg/mm2のオメガ脂肪酸+上面被覆としての2.0μg/mm2のPEG
全てのカテーテルバルーンは微小ピペットにより被覆された。
試験は、米国食品医薬品局の優良試験所規範規定(Good Laboratory Practice)21CFR58特別管理の承認の下で行われた。
方法
表4:試験計画
最初の終了点の解析:不都合な事象および動脈組織の評価、および血漿内パクリタキセルの濃度およびバルーン表面の残留パクリタキセルに関しての安全評価。死亡または「臨床事象」のような不都合な出来事についての評価を行った。
実験動物
種類: サス スクロファ (Sus scrofa)
系統: ヨークシャブタ
供給源: 動物産業
受け取リ時の年齢: 青少年期
介入時の重量: 30−40kg
動物の数(予備も含め): 12匹
結果
表5:移植計画
全ての動物が1匹1日当たりクロピドグレル(300mg)およびアスピリン(250mg)の投与を経皮冠動脈介入(PCI)前に受け入れた。FUP中、ブタは1匹当たり毎日75mgのクロピドグレルおよび100mgのアスピリンを投薬した。PCI前、動物は10,000IUの非分割ヘパリンを受け、移植処理中、必要に応じて各時間ごとに追加の2000IUヘパリンを補充した。
グループ1バルーン
表6:グループ1バルーンの動脈組織中のパクリタキセル濃度
表7:グループ1バルーンの血漿内パクリタキセル濃度
表8:グループ1バルーンのバルーン表面における残留パクリタキセル濃度
グループ2バルーン
表9:グループ2バルーンの動脈組織でのパクリタキセル濃度
表10:グループ2バルーンの血漿内パクリタキセル濃度
表11: グループ2バルーンのバルーン表面の残留パクリタキセル濃度
グループ3測定
表12:グループ3バルーンの動脈組織でのシロリムス濃度
表13:グループ3バルーンの血漿内パクリタキセル濃度
表14:グループ3バルーンのバルーン表面におけるシロリムス濃度
Claims (15)
- 活性剤および水溶性セラック塩による被覆を含むバルーンカテーテル。
- 前記水溶性セラック塩がセラックアンモニウム塩である請求項1記載のバルーンカテーテル。
- 前記被覆は、前記活性剤の濃度勾配を含む請求項1又は2に記載のバルーンカテーテル。
- 前記活性剤の前記濃度勾配は、基質物質としての水溶性セラック塩の層中に存在する請求項1〜3のいずれか1項に記載のバルーンカテーテル。
- 前記活性剤は、抗再狭窄剤、抗増殖性剤、免疫抑制剤、抗脈管形成剤、抗炎症および/または抗血栓症剤である請求項1〜4のいずれか1項に記載のバルーンカテーテル。
- 前記活性剤は、以下からなる群から選ばれることを特徴とする請求項1〜5の何れか1項に記載のカテーテルバルーン:アブシキマブ、アセメタシン、アセチルビスミオンB、アクラルビシン、アデメチオニン、アドリアマイシン、アエスシン、アフロモソン、アカゲリン、アルデスロイキン、アミドロン、アミノグルテチミド、アムサクリン、アナキンラ、アナストロゾール、アネモニン、アノプテリン、抗真菌剤、抗血栓剤、アポシマリン、アルガトロバン、アリストラクタム−AII、アリストロキン酸、アスコマイシン、アスパラギナーゼ、アスピリン、アトルバスタチン、オーラノフィン、アザチオプリン、アジスロマイシン、バッカチン、バフィロマイシン、バシリキシマブ、ベンダムスチン、ベンゾカイン、ベルべリン、ベツリン、ベツリン酸、ビロボール、ビスパルセノリジン、ブレオマイシン、コンブレタスタチン、ボスウェル酸およびその誘導体、ブルセアノールA,BおよびC、ブリオフィリンA、ブスルファン、抗トロンビン、ビバリルジン、カドへリン、カンプトテシン、カぺシタビン、o−(カルバモイル)フェノキシ酢酸、カルポプラチン、カルムスチン、セレコキシブ、セファランチン、セリバスタチン、CETP阻害剤、クロラムブシル、リン酸クロロキン、シクトキシン、シプロフロキサシン、シスプラチン、クラドリビン、クラリスロマイシン、コルヒチン、コンカナマイシン、クマディン、C型ナトリウム利尿ペプチド(CNP)、クドライソフラボンA、クルクミン、シクロホスファミド、シクロスポリンA、シタラビン、ダカルバジン、ダクリズマブ、ダクチノマイシン、ダプソーン、ダウノルビシン、ジクロフェナク、1,11−ジメトキシカンチン−6−オン、ドセタキセル、ドキソルビシン、ダウノマイシン、エピルビシン、エリスロマイシン、エストラムスチン、エトポシド、エベロリムス、フィルグラスチム、フルロブラスチン、フルバスタチン、フルダラビン、フルダラビン−5’ −リン酸二水素、フルオロウラシル、フォリマイシン、ホスフェストロール、ゲムシタビン、グハラキノシド、ギンコール、ギンコール酸、グリコシド1a、4−ヒドロキシオキシシクロホスファミド、イダルビシン、イホスファミド、ジョサマイシン、ラパコール、ロムスチン、ロバスタチン、メルファラン、ミデカマイシン、ミトキサントロン、ニムスチン、ピタバスタチン、プラバスタチン、プロカルバジン、マイトマイシン、メトトレキサート、メルカプトプリン、チオグアニン、オキサリプラチン、イリノテカン、トポテカン、ヒドルキシカルバミド、ミルテフォシン、ペントスタチン、ペグアスパラガーゼ、エキセメスタン、レトロゾール、フォルメスタン、ミコフェノール酸モフェチル、β−ラパコン、ポドフィロトキシン、ポドフィリン酸−2−エチルヒドラジド、モルグラモスチム(rhuGM−CSF)、ペグインターフェロンα−2b、レノグラスチム(r−HuG−CSF)、マクロゴール、セレクチン(サイトカインアンタゴニスト)、サイトカイニン阻害剤、COX−2阻害剤、アンギオぺプチン、筋細胞増殖を抑制するモノクロ-ナル抗体、bFGF拮抗薬、プロブコール、プロスタグランジン、1−ヒドロキシ−11−メトキシカンチン−6−オン、スコポレチン、NOドナー、四硝酸ペンタエリスリトールおよびシドノンイミン類、S−ニトロソ誘導体、タモキシフェン、スタウロスポリン、β−エストラジオール、α−エストラジオール、エストリオール、エストロン、エチニルエストラジオール、メドロキシプロゲステロン、エストラジオールシピオネート、安息香酸エストラジオール、トラニラスト、カメバコーリンおよび他の癌治療に用いられるテルペノイド、ベラパミル、チロシンキナーゼ阻害剤(チロホスチン)、パクリタキセルおよびその誘導体、6−α−ヒドロキシパクリタキセル、タキソテール、モフェブタゾン、ロナゾラク、リドカイン、ケトプロフェン、メフェナム酸、ピロキシカム、メロキシカム、ペニシラミン、水酸化クロロキン、アウロチオマレイン酸ナトリウム、オキサセプロール、β−シトステロール、ミルテカイン、ポリドカノール、ノニバミド、レボメンソール、エリプチシン、D−24851(カルビオケム)、コルセミド、サイトカラシンA−E、インダノシン、ノコダゾール、バシトラシン、ビトロネクチン受容体拮抗薬、アゼラスチン、グアニジル基シクラーゼ刺激剤、金属プロテイナーゼ−1および−2の組織阻害剤、遊離核酸、ウイルス伝達に組み込まれた核酸、DNAおよびRNAフラグメント、プラスミノーゲン活性化因子阻害剤1、プラスミノーゲン活性化因子阻害剤2、アンチセンスオリゴヌクレオチド、VEGF阻害剤、IGF−1、抗生物質のグループによる活性剤、セファドロキシル、セファゾリン、セファクロル、セフォキシチン、トブラマイシン、ゲンタマイシン、ペニシリン、ジクロキサシリン、オキサシリン、スルホンアミド、メトロニダゾール、エノキサパリン、ヘパリン、ヒルジン、PPACK、プロタミン、プロウロキナーゼ、ストレプトキナーゼ、ワルファリン、ウロキナーゼ、血管拡張剤、ジピリダモール(dipyramidole)、トラピジル、ニトロプルシド、PDGF拮抗薬、トリアゾロピリミジン、セラミン、ACE阻害剤、カプトプリ、シラザプリル、リシノプリル、エナラプリル、ロサルタン、チオプロテアーゼ阻害剤、プロスタシクリン、バピプロスト、インターフェロンα,βおよびγ、ヒスタミン拮抗薬、セロトニン阻害剤、アポトーシス阻害剤、アポトーシス調節剤、ハロフジノン、ニフェジビン、トコフェロール、トラニラスト、モルシドミン、茶ポリフェノール、エピカテキンガレート、エピガロカテキンガレート、レフルノミド、エタネルセプト、スルファサラジン、テトラサイクリン、トリアムジノロン、ムタマイシン、プロカインイミド、レチノイン酸、キニジン、ジソピラミド、フルカイニド、プロパフェノン、ソタロール、天然および合成で得られたステロイド、ブリオフィリンA、イノトジオール、マキロシドA、グハアキノシド、マンソニン、ストレブロシド、ヒドロコルチゾン、ベタメタゾン、デキサメタゾン、非ステロイド性物質(NSAIDS)、フェノプロフェン、イブプロフェン、インドメタシン、ナプロキセン、フェニルブタゾン、抗ウイルス薬、アシクロビル、ガンシクロビルジドブジン、クロトリマゾール、フルシトシン、グリセオフルビン、ケトコナゾール、ミコナゾール、ナイスタチン、テルビナフィン、抗原生動物薬、クロロキン、メフロキン、キニーネ、天然テルペノイド、ヒッポカエスクリン、バリントゲノール−C21−アンゲレート、14−デヒロドアグロスチスタチン、アグロスケリン、アガロスチスタチン、17−ヒドロキシアグロスチスタチン、オヴァトジオライド、4,7−オキシシクロアニソメリック酸、バッカリノイドB1, B2, B3 および B7、ツベイモシド、ブルセアンチノシドC、ヤダンジオシドNおよびP、イソデオキシエレファントピン、トメンファントピンAおよびB、コロナリンA,B,CおよびD、ウルソール酸、ヒプタチン酸A、イソイリドゲルマナール、メイテンフォリオール、エフサンチンA、エクシサニンA および B、ロンギカウリンB、スクルポネアチンC、カメバウニン、ロイカメニンAおよびB、13,18−デヒドロ−6−アルファ−セネシオイロキシチャパリン、タクサマイリンAおよびB、レジェニロール、トリプトライド、シマリン、ヒドロキシアノプテリン、プロトアネモニン、塩化ケルブリン、シンコクリンAおよびB、ジヒドロニチジン、塩化ニチジン、12−ベータ−ヒドロキシプレグナジエン−3,20−ジオン、ヘレナリン、インジシン、インジシン−N−酸化物、ラシオカルピン、イノトジオール、ポドフィロトキシン、ジャスシジンAおよびB、ラレアチン、マロテリン、マロトクロマノール、イソブチリルマロトクロマノール、マーチャンチンA、メイタンシン、リコリジシン、マルゲチン、パンクラチスタチン、リリオデニン、オキソウシンスニン、ペリプロコシドA、デオキシソロスパミン、サイコルビン、リシンA、サンギナリン、マンブ小麦酸、メチルソルビフォリン、スファセリアクロモン、シゾフィラン、ジヒロドウサムバレンシン、ヒドロキシウサムバリン、ストリクノペンタミン、ストリクノフィリン、ウサムバリン、ウサムバレンシン、リリオデニン、ダフノレチン、ラリシレジノール、メトキシラリシレジノール、シリンガレシノール、シロリムス(ラパマイシン)、ラパマイシン誘導体、バイオリムスA9、ピメクロリムス、エベロリムス、ゾタロリムス、タクロリムス、ファスジル、エポチロン、ソマトスタチン、ロキシスロマイシン、トロレアンドマイシン、シンバスタチン、ロスバスタチン、ビンブラスチン、ビンクリスチン、ビンデシン、テニポシド、ビノレルビン、トロフォスファミド、トレオスルファン、テモゾロマイド、チオテパ、トレチノイン、スピラマイシン、ウンベリフェロン、デスアセチルビスミオンA、ビスミオンAおよびB、ゼオリン。
- 前記活性剤は、以下の群から選ばれる請求項6に記載のバルーンカテーテル:パクリタキセル、タキサン、ドセタキセル、ナブパクリタキセルなどのアルブミンと結合したパクリタキセル、シロリムス、パイオリムスA9、ピメクロリムス、エバロリムス、ゾタロリムス、タクロリムス、ナブシロリムスなどのアルブミンと結合したシロリムス、ファスジルおよびエポチロン。
- 前記活性剤は、パクリタキセルまたはシロリムスである請求項7に記載のバルーンカテーテル。
- 前記被覆はさらに水溶性重合体および/または可塑剤を含む請求項1〜4のいずれか1項に記載のバルーンカテーテル。
- 前記水溶性重合体は、セルローズ、ヒドロキシプロピル、メチルセルローズ、ヒドロキシプロピルセルローズ、カルボキシメチルセルローズ、ポリビニールピロリダドン、澱粉、ヒドロキシルエチル澱粉、ポリアクリル酸、ポリエチレンエイミン、デキストラン、寒天、カラゲナン、アルギン酸塩、これらの物質の共重合体および/または混合物からなる群から選択される請求項9に記載のバルーンカテーテル。
- 請求項1に記載のバルーンカテーテルを被覆する方法であって、該方法は以下の工程、即ち、
IA)非被覆バルーンカテーテルを提供する工程;
および
IIA)活性剤の水溶液と水溶性セラック塩を提供する工程
または
IIB)前記活性剤の溶液を提供し、かつ水溶性セラック塩の水溶液を提供する工程
および
IIIA)前記バルーンカテーテルの前記バルーン表面を前記活性剤の水溶液と前記水溶性セラック塩とで被覆する工程
または
IIIB)前記バルーンカテーテルの前記バルーン表面を前記活性剤の溶液で被覆し、次いで前記水溶性セラック塩の水溶液で被覆するか、前記バルーンカテーテルの前記バルーン表面を前記水溶性セラック塩の水溶液で被覆し、次いで前記活性剤の溶液で被覆する工程、
IV) 被覆したバルーンを乾燥する工程
からなり、
前記水溶性セラック塩の水溶液、または前記活性剤と前記水溶性セラック塩の水溶液は、セラックのアルカリ塩またはアンモニウム塩を用いて作成される方法。 - 前記セラックのアンモニウム塩溶液は、アンモニア、炭酸アンモニウム、または重炭酸アンモニウムとセラックの溶液である請求項11に記載の方法。
- 前記活性剤は、パクリタキセルまたはシロリムスである請求項11又は12記載の方法。
- 前記活性剤含有溶液は、噴霧被覆法、刷毛塗り被覆法、蒸着法またはピペット被覆法が適用される請求項11〜13のいずれか1項の記載による方法
- 請求項11〜14のいずれか1項による方法で得られた被覆バルーンカテーテル。
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