JP2016065075A - エクジソン受容体複合体を通して外因性遺伝子の発現を調節するためのキラルジアシルヒドラジンリガンド - Google Patents

エクジソン受容体複合体を通して外因性遺伝子の発現を調節するためのキラルジアシルヒドラジンリガンド Download PDF

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Abstract

【課題】ホスト細胞内の興味ある標的遺伝子の発現を調節するために有用なエクジソン受容体に基づく誘導性遺伝子発現システムの使用のための、ジアシルヒドラジンリガンドおよびキラルジアシルヒドラジンリガンドの提供。【解決手段】式１で表される化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、結晶形又は非晶形及び式１で表される化合物を含む医薬組成物。（Ａはアルコキシ基等；Ｂはアリール基等；Ｒ１及びＲ２はアルキル基等）【選択図】図１

Description

本発明は、バイオテクノロジー、遺伝子工学、および医薬品化学の分野に関する。一実
施形態によれば、本発明は遺伝子発現の分野に関する。別の実施形態によれば本発明は、
天然および変異核内受容体に対するジアシルヒドラジンリガンドおよびキラルジアシルヒ
ドラジンリガンドならびに核内受容体に基づく誘導性遺伝子発現システムにおけるそれら
の使用に関し、かつ、これらのリガンドおよび誘導性遺伝子発現システムを用いた、ホス
ト細胞内での遺伝子発現の調節法に関する。
ここに引用される様々な出版物の開示は、その全体が参照によりここに取り込まれる。
しかしながら、ここにおけるいずれの参考文献の引用も、これらの参考文献が本発明に対
する「先行技術」として入手可能であることの承認と解釈されてはならない。
遺伝子工学の分野における遺伝子発現の正確な制御は、発生およびその他の生理的過程
を研究、操作、ならびに制御するための貴重な手段である。遺伝子発現は、幾つかの特異
的なタンパク質‐タンパク質相互作用に関わる複雑な生物学的過程である。タンパク質合
成における第一工程として必要なＲＮＡを産生する遺伝子発現を誘発するため、転写活性
化因子は遺伝子の転写を制御するプロモーターの近傍に導かれなければならない。一般に
転写活性化因子自体は、遺伝子のプロモーター領域に存在するＤＮＡ結合部位に結合する
、少なくとも１のＤＮＡ結合ドメインを有するタンパク質に会合する。従って遺伝子発現
を起こすためには、ＤＮＡ結合ドメインおよびＤＮＡ結合ドメインから適切な距離に位置
するトランス活性化ドメインを含むタンパク質が、遺伝子のプロモーター領域内の正しい
位置に導かれなければならない。
伝統的なトランスジェニックアプローチは、設計されたトランス遺伝子の発現を駆動す
るため、細胞型特異的プロモーターを利用する。トランス遺伝子を含むＤＮＡコンストラ
クトは、最初にホストゲノムに取り込まれる。転写活性化因子により誘発されたとき、所
定の細胞型においてトランス遺伝子の発現が起こる。
細胞内で外来性遺伝子の発現を調節するための別の手段は、誘導性プロモーターを介す
る。このような誘導性プロモーターの使用例は、ＰＲ１−ａプロモーター、原核生物のリ
プレッサー‐オペレーターシステム、免疫抑制性イムノフィリンシステム、およびステロ
イドホルモン受容体システムのような高等真核生物の転写活性化システムを含み、以下こ
れらについて述べる。
タバコ由来のプロモーターであるＰＲ１−ａプロモーターは、病原体の攻撃に続く全身
性の後天的抵抗反応の間に誘導される。ＰＲ１−ａの使用は、これがしばしば内在性物質
、ならびに病原体、ＵＶ−Ｂ照射、および汚染物質のような外来性因子に反応することに
より制限され得る。熱ショック、インターフェロン、および重金属により誘導されるプロ
モーターに基づく遺伝子調節システムについて記述されている（Ｗｕｒｎ ｅｔ ａｌ．
，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８３：５４１４−５４１８（１９８
６）；Ａｒｎｈｅｉｔｅｒ ｅｔ ａｌ，Ｃｅｌｌ ６２：５１−６１（１９９０）；Ｆ
ｉｌｍｕｓ ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ２０：２
７５５０−２７５６０（１９９２））。しかしながらこれらのシステムは、標的ではない
遺伝子の発現におけるこれらの効果のために制限を有する。これらのシステムはまた漏出
性である。
原核生物のリプレッサー−オペレーターシステムは、細菌性のリプレッサータンパク質
およびそれらが結合する独特のオペレーターＤＮＡ配列を利用する。細菌である大腸菌由
来のテトラサイクリン（“Ｔｅｔ”）およびラクトース（“Ｌａｃ”）リプレッサー−オ
ペレーターシステムの両方は、遺伝子発現の制御のため植物および動物において使用され
ている。Ｔｅｔシステムにおいて、テトラサイクリンはＴｅｔＲリプレッサータンパク質
に結合してオペレーターからのリプレッサータンパク質の放出を起こす立体構造変化を生
じさせ、これが転写の起こる結果となる。Ｌａｃシステムにおいて、ｌａｃオペロンはラ
クトースまたはイソプロピル−ｂ−Ｄチオガラクトシドのような合成類似体の存在に反応
して活性化される。残念ながら、このようなシステムの使用はリガンド、すなわちテトラ
サイクリンおよびラクトースの不安定な化学的性質、これらの毒性、これらが天然に存在
すること、あるいは誘導または抑制のためには比較的高い濃度が必要とされることにより
制限される。同様の理由から、動物におけるこのようなシステムの有用性は制限される。
ＦＫ５０６、ラパマイシン、およびシクロスポリンＡのような免疫抑制性分子は、イム
ノフィリンであるＦＫＢＰ１２、シクロフィリンなどに結合できる。この情報を用いて、
単に２個のタンパク質それぞれにＦＫ５０６を配置するか、または１個にＦＫ５０６、も
う１個にシクロスポリンＡを配置することにより、いずれの２個のタンパク質をも接合す
るための一般的戦略が考案されてきた。ＦＫ５０６の合成ホモ二量体（ＦＫ１０１２）、
またはＦＫ５０６‐シクロスポリン（ＦＫＣｓＡ）の融合から生じた化合物はその後、こ
れらの分子の二量体化を誘導するために使用できる（Ｓｐｅｎｃｅｒ ｅｔ ａｌ，Ｓｃ
ｉｅｎｃｅ ２６２：１０１９−２４（１９９３）；Ｂｅｌｓｈａｗ ｅｔ ａｌ，Ｐｒ
ｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９３：４６０４−７（１９９６））。ＦＫ
ＢＰ１２と融合したＧａｌ４ＤＮＡ結合ドメインおよびシクロフィリンと融合したＶＰ１
６活性化ドメイン、ならびにＦＫＣｓＡ化合物が、ヘテロ二量体化およびＧａｌ４結合ド
メインを含むプロモーターの制御下でのレポーター遺伝子の活性化を示すために使用され
た。残念ながら、このシステムは望まれない副作用を有し得る免疫抑制剤を含み、それ故
に様々な哺乳類遺伝子スイッチ応用のための使用は制限される。
ステロイドホルモン受容体システムのような、高等真核生物の転写活性化システムもま
た利用されている。ステロイドホルモン受容体は核内受容体スーパーファミリーのメンバ
ーであり、脊椎動物および無脊椎動物細胞に見出される。残念ながら、特に植物および哺
乳類における遺伝子発現の制御のために受容体を活性化するステロイド化合物の使用は、
これらの生物における多数のその他の天然生物学的経路へのそれらの関与により制限され
る。このような困難を克服するため、昆虫エクジソン受容体（ＥｃＲ）を用いる別のシス
テムが開発されている。
昆虫の成長、脱皮、および発生はエクジソンステロイドホルモン（脱皮ホルモン）およ
び幼若ホルモンにより調節される（Ｄｈａｄｉａｌｌａ ｅｔ ａｌ，Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ
．Ｅｎｔｏｍｏｌ．４３：５４５−５６９（１９９８））。昆虫におけるエクジソンの分
子標的は、少なくともエクジソン受容体（ＥｃＲ）およびウルトラスピラクルタンパク質
（ＵＳＰ）からなる。ＥｃＲは、シグネチャーＤＮＡおよびリガンド結合ドメイン、なら
びに活性化ドメインにより特徴付けられる核内ステロイド受容体スーパーファミリーのメ
ンバーである（Ｋｏｅｌｌｅ ｅｔ ａｌ，Ｃｅｌｌ，６７：５９−７７ （１９９１）
）。ＥｃＲ受容体は、ポナステロンＡおよびムリステロンＡのような幾つかのステロイド
性化合物に反応性である。最近、Ｒｏｈｍ ａｎｄ Ｈａａｓ Ｃｏｍｐａｎｙによって
世界的に発売されている市販の殺虫剤であるテブフェノジドおよびメトキシフェノジドを
含む、エクジステロイドアゴニスト活性を有する非ステロイド性化合物について記述され
ている（国際公開第９６／２７６７３号および米国特許第５，５３０，０２８号を参照の
こと）。両類似体は、その他の生物において例外的な安全特性を有する。
昆虫エクジソン受容体（ＥｃＲ）は、ウルトラスピラクル（ＵＳＰ）、哺乳類レチノイ
ドＸ受容体（ＲＸＲ）の昆虫相同体とヘテロ二量体化し、エクジステロイドおよびエクジ
ソン受容体反応エレメントに結合してエクジソン反応性遺伝子の転写を活性化する。Ｅｃ
Ｒ／ＵＳＰ／リガンド複合体は、昆虫の発生および生殖期間に重要な役割を果たす。Ｅｃ
Ｒは５個のモジュール式ドメイン、Ａ／Ｂ（トランス活性化）、Ｃ（ＤＮＡ結合、ヘテロ
二量体化）、Ｄ（ヒンジ、ヘテロ二量体化）、Ｅ（リガンド結合、ヘテロ二量体化および
トランス活性化）、およびＦ（トランス活性化）ドメインを有する。これらのドメインの
幾つか、例えばＡ／Ｂ、Ｃ、およびＥは、他のタンパク質と融合したときもその機能を保
持する。
堅固に調節された誘導性遺伝子発現システムまたは「遺伝子スイッチ」は、遺伝子治療
、細胞におけるタンパク質の大量生産、細胞に基づくハイスループットスクリーニングア
ッセイ、機能的ゲノミクスおよびトランスジェニック植物および動物における形質の調節
のような様々な応用に有用である。
ＥｃＲに基づく遺伝子スイッチの最初のバージョンはキイロショウジョウバエのＥｃＲ
（ＤｍＥｃＲ）およびマウスのＲＸＲ（ＭｍＲＸＲ）を用い、これらの受容体がステロイ
ド、ポナステロンＡの存在下で、哺乳類細胞株およびトランスジェニックマウスにおいて
レポーター遺伝子をトランス活性化することを示した（Ｃｈｒｉｓｔｏｐｈｅｒｓｏｎ
ｅｔ ａｌ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ Ｕ．Ｓ．Ａ．８９：６３１４−６
３１８（１９９２）；Ｎｏ ｅｔ ａｌ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ Ｕ．
Ｓ．Ａ．９３：３３４６−３３５１（１９９６））。後日、Ｓｕｈｒ ｅｔ ａｌ，Ｐｒ
ｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ ９５：７９９９−８００４（１９９８）は、非ステ
ロイド性エクジソンアゴニストのテブフェノジドが、外因性ヘテロ二量体パートナーの非
存在下でカイコＥｃＲ（ＢｍＥｃＲ）を通し、哺乳類細胞におけるレポーター遺伝子の高
レベルのトランス活性化を誘導することを示した。
国際公開第９７／３８１１７号および国際公開第９９／５８１５５号は外因性遺伝子発
現の調節方法を開示しており、ここで外来性遺伝子およびエクジソン反応エレメントを含
むＤＮＡコンストラクトは、エクジソン受容体に対するリガンドの存在下、および任意に
、サイレントパートナーとして作用することのできる受容体の存在下で、遺伝子発現を誘
導するためにエクジソン反応エレメントに結合するエクジソン受容体を含む第２のＤＮＡ
コンストラクトによって活性化される。選択されたエクジソン受容体はキイロショウジョ
ウバエから単離された。一般にこのようなシステムは、最適な活性化の提供のためにサイ
レントパートナー、好ましくはレチノイドＸ受容体（ＲＸＲ）の存在を必要とする。哺乳
類細胞において、昆虫エクジソン受容体（ＥｃＲ）はレチノイドＸ受容体（ＲＸＲ）とヘ
テロ二量体化して、リガンド依存的な様式で標的遺伝子の発現を調節する。国際公開第９
９／０２６８３号は、カイコガカイコより単離されたエクジソン受容体が、外因性の二量
体パートナーを必要とすることなく哺乳類システムにおいて機能的であることを開示する
。
米国特許第６，２６５，１７３Ｂ１号は、遺伝子発現システムにおける使用のため、受
容体のステロイド／甲状腺ホルモンスーパーファミリーの様々なメンバーが、少なくとも
ＵＳＰの二量体化ドメインを含むキイロショウジョウバエウルトラスピラクル受容体（Ｕ
ＳＰ）またはその断片と組み合わせられることを開示する。米国特許第５，８８０，３３
３号は、植物におけるキイロショウジョウバエＥｃＲとウルトラスピラクル（ＵＳＰ）と
のヘテロ二量体システムを開示しており、ここでトランス活性化ドメインおよびＤＮＡ結
合ドメインは２個の異なるハイブリッドタンパク質に位置する。残念ながら、これらＵＳ
Ｐに基づくシステムは動物細胞においては恒常的であり、そのためレポーター遺伝子発現
の調節には有効でない。
これらの各事例において、トランス活性化ドメインおよびＤＮＡ結合ドメイン（国際公
開第９９／０２６８３号の天然ＥｃＲ、または国際公開第９７／３８１１７の修飾ＥｃＲ
のいずれか）は単一の分子に取り込まれ、他方のヘテロ二量体化パートナー、ＵＳＰまた
はＲＸＲのいずれか、は天然の状態で使用される。
上記のＥｃＲに基づく遺伝子調節システムの弱点は、リガンド非存在下でのかなりのバ
ックグラウンド活性、ならびに植物および動物の両方における使用へのこれらのシステム
の非適用性を含む（米国特許第５，８８０，３３３号を参照のこと）。従って当該技術分
野においては、植物および動物の両方における外因性遺伝子の発現を正確に調整するため
の改善されたＥｃＲに基づくシステムが必要とされている。このような改善されたシステ
ムは、遺伝子治療、タンパク質および抗体の大量生産、細胞に基づくハイスループットス
クリーニングアッセイ、機能的ゲノミクスおよびトランスジェニック動物における形質の
調節のような応用に有用であろう。遺伝子治療のようなある応用のためには、合成非ステ
ロイドリガンドへ十分に反応し、同時に天然ステロイドには非感受性である誘導性遺伝子
発現システムが望まれ得る。従って、単純、コンパクトで、かつ安価で入手しやすいリガ
ンドに依存し、かつホストへの毒性が低い改善されたシステムが、生物学的システムを調
節するために有用であることが証明されるであろう。
最近、トランス活性化およびＤＮＡ結合ドメインが２個の異なるタンパク質に配置され
ることにより互いに隔てられ、リガンド非存在下でのバックグラウンド活性の大きな減少
、およびリガンド存在下での活性のバックグラウンドを超えた著しい増大をもたらす、エ
クジソン受容体に基づく誘導性遺伝子発現システムが示された（参照によりその全体がこ
こに取り込まれる、国際公開第０１／７０８１６Ａ１号を参照のこと）。この２−ハイブ
リッドシステムは、国際公開第９７／３８１１７号および国際公開第９９／０２６８３号
に開示される２つのシステムに比較して、著しく改善された誘導性遺伝子発現調節システ
ムである。この２−ハイブリッドシステムは、転写活性化ドメインをＤＮＡ結合ドメイン
に関してさらに好ましい位置に持ってくるために１組の相互作用するタンパク質の能力を
活用しており、ＤＮＡ結合ドメインが遺伝子のＤＮＡ結合部位に結合するとき転写活性ド
メインはプロモーターをさらに効果的に活性化する（例えば米国特許第５，２８３，１７
３号を参照のこと）。簡単に述べると、この２−ハイブリッド遺伝子発現システムは、第
１が核内受容体ポリペプチドと融合したＤＮＡ結合ドメインをコードし、第２が異なる核
内受容体ポリペプチドと融合したトランス活性化ドメインをコードする、２個の遺伝子発
現カセットを含む。リガンド存在下で、第１のポリペプチドと第２のポリペプチドの相互
作用は、ＤＮＡ結合ドメインをトランス活性化ドメインに効果的に係留する。ＤＮＡ結合
およびトランス活性化ドメインが２個の異なる分子に属することから、リガンド非存在下
でのバックグラウンド活性は大きく減少する。
２−ハイブリッドシステムはまた、ステロイド性リガンド、例えばポナステロンＡ（“
ＰｏｎＡ”）またはムリステロンＡ（“ＭｕｒＡ”）に比較したとき、非ステロイド性リ
ガンド、例えばジアシルヒドラジンに対する改善された感受性も提供する。すなわち、ス
テロイドに比べ、非ステロイド性リガンドはより低い濃度でより高い活性を提供する。加
えて、ＥｃＲ遺伝子スイッチに基づく転写活性化はしばしば細胞株依存性であることから
、各応用に対して最大のトランス活性化能力を得るために遺伝子スイッチシステムを調整
することがより容易である。さらに、この２−ハイブリッドシステムは、無修飾のＲＸＲ
をヘテロ二量体受容体パートナーとして使用したときにしばしば起こるＲＸＲの過剰発現
による幾つかの副作用を避ける。１つの２−ハイブリッドシステムにおいてＥｃＲおよび
ＲＸＲの天然のＤＮＡ結合およびトランス活性化ドメインは除かれ、結果としてこれらの
ハイブリッド分子は細胞内に存在するその他のステロイドホルモン受容体と相互作用する
機会が少ないことから、副作用は減少する。さらなる遺伝子スイッチシステムは以下に開
示されるものを含み、これらはそれぞれが参照としてここに取り込まれる：米国特許第７
，０９１，０３８号；国際公開第２００４０７８９２４号；欧州特許第１２６６０１５号
；米国特許出願公開第２００１００４４１５１号；米国特許出願公開第２００２０１１０
８６１号；米国特許出願公開第２００２０１１９５２１号；米国特許出願公開第２００４
００３３６００号；米国特許出願公開第２００４０１９７８６１号；米国特許出願公開第
２００４０２３５０９７号；米国特許出願公開第２００６００２０１４６号；米国特許出
願公開第２００４００４９４３７号；米国特許出願公開第２００４００９６９４２号；米
国特許出願公開第２００５０２２８０１６号；米国特許出願公開第２００５０２６６４５
７号；米国特許出願公開第２００６０１００４１６号；国際公開第２００１／７０８１６
号；国際公開第２００２／２９０７５号；国際公開第２００２／０６６６１２号；国際公
開第２００２／０６６６１３号；国際公開第２００２／０６６６１４号；国際公開第２０
０２／０６６６１５号；国際公開第２００５／１０８６１７号；米国特許第６，２５８，
６０３号；米国特許出願公開第２００５０２０９２８３号；米国特許出願公開第２００５
０２２８０１６号；米国特許出願公開第２００６００２０１４６号；欧州特許第０９６５
６４４号；米国特許第７，３０４，１６２号；米国特許第７，３０４，１６１号；メキシ
コ特許第２３４７４２号；韓国特許第１０−０５６３１４３号；オーストラリア特許第７
６５３０６号；オーストラリア特許出願公開第２００２−２４８５００号；およびオース
トラリア特許出願公開第２００２−３０６５５０号。
エクジソン受容体に基づく遺伝子調節システムの改良に伴う様々な応用でのそれらの使
用の増加は、現在あるものよりもより高い活性を有するリガンドへの要求の増大をもたら
す。米国特許第６，２５８，６０３Ｂ１号、米国特許出願公開第２００５／０２０９２８
３Ａ１号、および米国特許出願公開第２００６／００２０１４６Ａ１号（およびそれらが
引用する特許）はジベンゾイルヒドラジンリガンドを開示する。しかしながら、改善され
た薬理学的特性を有するさらなるリガンドが必要とされている。出願者は、驚くべき生物
学的活性と予想外の方法でトランス遺伝子の発現を調節する能力を有する、以前には記述
されていないキラルジアシルヒドラジンリガンドを発見した。
本発明は、ホスト細胞内の所望の標的遺伝子の発現を調節するために有用なエクジソン受容体に基づく誘導性遺伝子発現システムと共に使用するための、式１のジアシルヒドラジンリガンド、および式２または３のキラルジアシルヒドラジンリガンドを提供する。本発明のキラルジアシルヒドラジンリガンドは、Ｒ−またはＳ−立体異性体のいずれかの鏡像異性体が豊富である。出願者は、これら新規のキラルジアシルヒドラジンリガンドが驚くほど効果的であることを見出した。従って本発明は、遺伝子治療、タンパク質および抗体の大量生産、細胞に基づくスクリーニングアッセイ、機能的ゲノミクス、プロテオミクス、メタボロミクス、ならびにトランスジェニック生物における形質の調節のような、遺伝子発現レベルの制御が望ましい用途に有用である。本発明の利点は、遺伝子発現調節のため、および使用者の要求に適した発現レベルを調整するための手段を提供することである。
本発明は式１

（式中、Ａはアルコキシ基、アリールアルキルオキシ基、またはアリールオキシ基を表
し、Ｂは任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し、
Ｒ１およびＲ２は互いに独立して任意に置換されたアルキル基、アリールアルキル基、ヒ
ドロキシアルキル基、ハロアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換
されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意
に置換されたアリール基、または任意に置換されたヘテロアリール基を表す）
で表される化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、結晶形または非晶形
に関する。
別の実施形態によれば、本発明は式２
（式中、Ａはアルコキシ基、アリールアルキルオキシ基、アリールオキシ基、アリール
アルキル基、任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表
し、Ｂは任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し、
かつＲ１およびＲ２は互いに独立して任意に置換されたアルキル基、アリールアルキル基
、ヒドロキシアルキル基、ハロアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に
置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、
任意に置換されたアリール基、または任意に置換されたヘテロアリール基を表すが、Ｒ１
およびＲ２は同じではなく、式中、Ｒ１およびＲ２ を有する不斉炭素原子における絶対配
置が主にＳである）
で表される鏡像異性体の豊富な化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、
結晶形または非晶形に関する。
別の実施形態によれば、本発明は式３
（式中、Ａはアルコキシ基、アリールアルキルオキシ基、アリールオキシ基、アリール
アルキル基、任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表
し、Ｂは任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し、
かつＲ１およびＲ２は互いに独立して任意に置換されたアルキル基、アリールアルキル基
、ヒドロキシアルキル基、ハロアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に
置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、
任意に置換されたアリール基、または任意に置換されたヘテロアリール基を表すが、Ｒ１
およびＲ２は同じではなく、式中、Ｒ１およびＲ２ を有する不斉炭素原子における絶対配
置が主にＲである）
で表される鏡像異性体の豊富な化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、
結晶形または非晶形に関する。
一実施形態によれば本発明は、少なくとも９５％の鏡像異性体過剰率を有する（Ｒ）−
３，５−ジメチル安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（２−エチル
−３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド、あるいはその薬理学的に許容される塩、水
和物、結晶形または非晶形に関する。
別の実施形態によれば本発明は、少なくとも９５％の鏡像異性体過剰率を有する（Ｒ）
−３，５−ジメチル安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（２−エチ
ル−３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド、あるいはその薬理学的に許容される塩、
水和物、結晶形または非晶形を含む医薬組成物に関する。
本発明はまた、式４

（式中、Ａはアリールアルキル基、任意に置換されたアリール基または任意に置換され
たヘテロアリール基を表し、Ｂは任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘ
テロアリール基を表し、Ｒ２は任意に置換されたアルキル基、アリールアルキル基、ヒド
ロキシアルキル基、ハロアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換さ
れたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に
置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表すが、Ｒ２は−ＣＲ
８Ｒ９ＣＨＲ１０ＣＲ１１Ｒ１２と同じではなく、かつＲ８、Ｒ９、Ｒ１０、Ｒ１１、お
よびＲ１２は互いに独立して水素、アルキル基、シクロアルキル基、複素環基、アリール
基またはヘテロアリール基から選択され、式中、Ｒ２が付着する不斉炭素原子はＲまたは
Ｓ異性体のどちらかの鏡像異性体が豊富である）
で表される化合物を調製するための方法であって、
ａ）式５

で表される化合物と式６
Ｒ２ＨＣ＝Ｎ−ＮＨ−ＣＯ２Ｒ７ 式６
（式中、ＸおよびＹは互いに独立してＯ、あるいはＲがアルキル基またはアリール基の
ＮＲであり、ＣａＣｂは互いに独立してＳ立体配置の不斉炭素原子またはＲ立体配置の不
斉炭素原子であり、Ｒ１４およびＲ１５は互いに独立してアルキル基またはアリール基で
あり、Ｒ１３はハロ基、水素、アルキル基、アルコキシ基またはＯＳＯ２ＣＦ３であり、
Ｒ７はアルキル基、アリールアルキル基またはアリール基であり、かつＲ２、Ｒ８、Ｒ９
、Ｒ１０、Ｒ１１、およびＲ１２は上記と同じ意味である）
で表される化合物を、式７
で表される化合物を形成するために反応させる工程と、
ｂ）式８
で表される化合物を形成するため、式７で表される化合物を還元する工程と、
ｃ）式９
で表される化合物を形成するため、式８で表される化合物を、式Ｂ−ＣＯ−ＬＧで表され
、ＬＧが脱離基である化合物と反応させる工程と、
ｄ）式１０
で表される化合物を形成するため、式９で表される化合物のＲ７ＣＯ２−残基を除去する
工程、および
ｅ）式４で表される化合物を形成するため、式１０で表される化合物を、式Ａ−ＣＯ−
ＬＧで表され、ＬＧが脱離基である化合物と反応させる工程とを含む方法にも関する。
本発明はまた、式１のジアシルヒドラジンリガンドあるいは式２または３のキラルジア
シルヒドラジンリガンドによる遺伝子発現調節システムを用いた、ホスト細胞における遺
伝子発現の調節方法にも関する。
一実施形態によれば本発明は、減少したレベルのバックグラウンド遺伝子発現を有し、
かつμＭ以下の濃度のリガンドに反応する誘導性遺伝子発現システムにおける、式１のジ
アシルヒドラジンリガンドあるいは式２または３のキラルジアシルヒドラジンリガンドの
使用に関する。
別の実施形態によれば本発明は、ホスト細胞内で標的遺伝子の発現を調節する方法に関
し、ここで該ホスト細胞は
ｉ）トランス活性化ドメイン
ｉｉ）ＤＮＡ結合ドメイン、および
ｉｉｉ）グループＨ核内受容体リガンド結合ドメイン
を含む第１のポリペプチドをコードする第１のポリヌクレオチドを含む第１の遺伝子発現
カセット、および
ｉ）該ＤＮＡ結合ドメインに結合可能な反応エレメント
ｉｉ）該トランス活性化ドメインによって活性化されるプロモーター、および
ｉｉｉ）該標的遺伝子
を含む第２の遺伝子発現カセットを含み、
該方法は該ホスト細胞を式１で表されるジアシルヒドラジンリガンドあるいは式２また
は３で表されるキラルジアシルヒドラジンリガンドと接触させることを含み、ここで該標
的遺伝子の発現は調節される。
別の実施形態によれば、本発明は、リガンドを被験体の細胞内でエクジソン受容体複合
体に接触させることを含む、トランスジェニック被験体における内在性または異種性遺伝
子発現を調節するための方法に関し、ここで該細胞はさらに、リガンドと組み合わせたと
きのエクジソン受容体複合体に対するＤＮＡ結合配列を含み、かつエクジソン受容体複合
体‐リガンド‐ＤＮＡ結合配列複合体の形成が該遺伝子の発現を誘導し、かつ該リガンド
が式１で表されるジアシルヒドラジンリガンドあるいは式２または３で表されるキラルジ
アシルヒドラジンリガンドであり、トランスジェニック被験体における内在性または異種
性遺伝子発現が調節される。
別の実施形態によれば本発明は、
ａ）ホスト細胞内に遺伝子発現調節システムを導入する工程であって、該システムが
ｉ）ホスト細胞内で発現可能な第１の遺伝子発現カセットであって、
（ａ）その発現が調節されるべき遺伝子に結合する反応エレメントを認識するＤＮＡ
結合ドメイン、および
（ｂ）エクジソン受容体リガンド結合ドメイン
を含む第１のハイブリッドポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む、該第
１の遺伝子発現カセット、
ｉｉ）該ホスト細胞内で発現可能な第２の遺伝子発現カセットであって、
（ａ）トランス活性化ドメイン、および
（ｂ）キメラレチノイドＸ受容体リガンド結合ドメイン
を含む第２のハイブリッドポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む、該第
２の遺伝子発現カセット、および
ｉｉｉ）ホスト細胞内で発現可能な第３の遺伝子発現カセットであって、
（ａ）第１のハイブリッドポリペプチドのＤＮＡ結合ドメインにより認識される反応
エレメント、
（ｂ）第２のハイブリッドポリペプチドのトランス活性化ドメインにより活性化され
るプロモーター、および
（ｃ）その発現が調節されるべき遺伝子
を含むポリヌクレオチド配列を含む、該第３の遺伝子発現カセットを含む工程、および
ｂ）ホスト細胞内に式１で表されるジアシルヒドラジンリガンドあるいは式２または３
で表されるキラルジアシルヒドラジンリガンドを導入し、ここでホスト細胞内の遺伝子発
現が調節される工程を含む、ホスト細胞内で標的遺伝子の発現を調節する方法に関する。
別の実施形態によれば、本発明はポリペプチドを産生するための方法であって、
ａ）式１で表されるジアシルヒドラジンリガンドあるいは式２または３で表されるキラ
ルジアシルヒドラジンリガンドへの曝露に実質的に非感受性である細胞を選択する工程、
ｂ）細胞内へ
ｉ）ＤＮＡコンストラクトであって、
（ａ）ポリペプチドをコードする外因性遺伝子、および
（ｂ）該遺伝子が反応エレメントの制御下にある、該反応エレメント
を含むコンストラクト、および
ｉｉ）エクジソン受容体複合体であって、
（ａ）該反応エレメントに結合するＤＮＡ結合ドメイン、
（ｂ）該リガンドの結合ドメイン、
（ｃ）トランス活性化ドメインを含む複合体を導入する工程、および
ｃ）ポリペプチドが産生される、該リガンドへ該細胞を曝露する工程を含む方法に関す
る。
本発明のこの実施形態は、細胞によるポリペプチド産生を時間的に制御する利点を提供
する。さらにこれらの事例において、このようなポリペプチドの蓄積が細胞を傷害し得る
場合、該細胞を本発明の化合物に接触させることにより、ポリペプチドの発現は短期間に
限定される可能性がある。このような制御は、外因性遺伝子が治療上の遺伝子である場合
特に重要である。治療上の遺伝子は、糖尿病患者におけるインスリンの産生のような、必
要な機能を制御するポリペプチドを産生するために所望されてよい。これらはまた、癌細
胞に致死的であるような、傷害性または致死性のタンパク質までをも産生するために使用
されてよい。このような制御はまた、トランスジェニック植物におけるように、産生され
るタンパク質の量が成長または生殖における代謝性の排出を構成し得る場合に重要であろ
う。
スイッチコンストラクトＣＶＢＥ、およびレポーターコンストラクト６ＸＥｃＲＥ ＬａｃＺの模式図。両コンストラクトに隣接するものは末端反復配列であり、Ｇ４１８およびピューロマイシンは選択マーカーであり、ＣＭＶはサイトメガロウィルスプロモーターであり、ＶＢＥはＶＰ１６トランス活性化ドメインの下流に挿入したカイコＥｃＲの２６−５４６のアミノ酸に対するコード配列であり、６ＸＥｃＲＥは６コピーのエクジソン反応エレメントであり、ｌａｃＺはレポーター酵素のβ‐ガラクトシダーゼをコードする。 （Ａ）ｒａｃ−、（Ｂ）（Ｒ）−および（Ｃ）（Ｓ）−３，５−ジメチル‐安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（２，６−ジクロロ−ベンゾイル）−ヒドラジドのキラルＨＰＬＣの比較。 マウスにおけるＲｈｅｏＳｗｉｔｃｈ（登録商標）Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｓｙｓｔｅｍ遺伝子発現の誘導における、ｒａｃ−、（Ｒ）−および（Ｓ）−２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのｉｎ ｖｉｖｏでの比較を示すグラフ。黒丸はＳ鏡像異性体、黒三角はラセミ体、および白丸はＲ鏡像異性体を示す。 ２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのラセミ体およびＲ鏡像異性体のサンプルロットの表。メタノール／水またはトルエン／ヘプタンからの迅速な結晶化／沈殿により得られたＲ鏡像異性体のサンプルは、同じ粉末でのＸ線回析パターン（データ未提示）をもたらし、互いに比較したとき、およびＣＨ３ＯＨ結晶化により得られた標準物（１６５．１℃−１６６．５℃）と比較したとき、基本的に同じ融点（［トルエン／ヘプタン］１６６．２℃−１６７．１℃、［ＣＨ３ＯＨ／Ｈ２Ｏ］１６６．５−１６７．４℃）を有していた。メタノール蒸発により得られたラセミ体の、別々の２調製によるサンプルは、実験エラーおよび純度におけるわずかな変動の範囲内で基本的に同じ融点（１７０−１７１℃、１６９−１７０℃）を示した。 ２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドの、微粒子化したＲ鏡像異性体の粒径分布を示す表。 ２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドの、微粒子化したラセミ体の粒径分布を示す表。 ２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドの、微粒子化したラセミ体およびＲ鏡像異性体の、バルクおよびタップ密度分析を示す表。 ２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドの、微粒子化したラセミ体およびＲ鏡像異性体の、熱重量分析／示差熱分析（ＴＧＡ／ＤＴＡ）分析（温度プロット）は異なる結晶形を示す。ロット番号ＲＥＨ−２８−９−１およびＲＥＨ−２８−４−２のサンプル重量は７．７１９９４ｍｇである。サンプル１ｍｇあたりのμＶの単位におけるシグナル出力（μＶ／ｍｇ）；熱重量分析−サンプルの重量変化のパーセンテージ（ＴＧ％）。両方の物質はＤＴＡ特性において吸熱現象を示した。Ｒ鏡像異性体の開始温度（１６３．６℃）はラセミ体のそれ（１７１．２℃）に比較して著しく低かった。Ｒ鏡像異性体の融合熱（５９．８ｕｖ．ｓ／ｍｇ）もまた、ラセミ体のそれ（８０．８ｕｖ．ｓ／ｍｇ）に比較して著しく低かった。 薬理学的賦形剤中の２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのラセミ体およびＲ鏡像異性体の、医薬賦形剤中での定性比較溶解度試験を示す表。 熱力学的平衡試験（９０℃５分間、または表示された時間；２回の処理）に続き、室温まで冷却し、薬理学的賦形剤中の２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのラセミ体およびＲ鏡像異性体を加えた結果を示す表。処理１は、室温で＜２．５時間攪拌した結果である。 ２０％ＰＥＧ１０００蒸留水溶液ｐＨ７．０中の、２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのラセミ体およびＲ鏡像異性体の溶解度（μＭ）を示す表。 水性ポリソルベート８０中の、２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのラセミ体およびＲ鏡像異性体の溶解度を示す表。 Ｃａｃｏ−２細胞の単層を通した、２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのラセミ体およびＲ鏡像異性体の双方向性の透過率を示す表。ａ透過率の分類：（ＰａｐｐＡ→Ｂ）＜１．０Ｘ１０−６ｃｍ／ｓ＝低；（ＰａｐｐＡ→Ｂ）＞１．０Ｘ１０−６ｃｍ／ｓ＝高；ｂ有意な流出：流出＞３．０および（ＰａｐｐＢ→Ａ）＞１．０Ｘ１０−６ｃｍ／ｓ。 ＭＤＲ１−ＭＤＣＫ細胞における、２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのラセミ体およびＲ鏡像異性体の透過率を示す表。分類：Ａ−Ｂ Ｐａｐｐ＞３．０および流出比＜３．０：高。Ａ−Ｂ Ｐａｐｐ＞３．０および１０＞流出比＞３．０：中。Ａ−Ｂ Ｐａｐｐ＞３．０および流出比＞１０：低。Ａ−Ｂ Ｐａｐｐ＜３．０：低。 ヒト肝臓ミクロソームにおける、２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのラセミ体およびＲ鏡像異性体の安定性を示す表。 Ｃ５７ＢＬ／６Ｎ：Ｃｒｌマウスにおける、２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのラセミ体およびＲ鏡像異性体／Ｌａｂｒａｓｏｌ調製品の投与予定を示す表。ａ９日間（第１の雌１８匹／群）または１２日間（第２の雌１８匹／群）の投与量；ｂ交換の可能性があるものとして含まれる。 ２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのラセミ体の非微粒子化および微粒子化サンプルの顕微鏡写真。注記、参照の縮尺は５０ミクロン。 Ｌａｂｒａｓｏｌ中の２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのラセミ体およびＲ鏡像異性体の４投与量（３、１０、３０および５０ｍｇ／ｋｇ／日）における投与後９日目の、その日の投与の数時間後の血清濃度を示す表。 Ｌａｂｒａｓｏｌ中の２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのラセミ体およびＲ鏡像異性体の４投与量（３、１０、３０および５０ｍｇ／ｋｇ／日）における投与後１２日目の、その日の投与の数時間後の血清濃度を示す表。 ｐＣＭＶ／ＧＥＶＹ（ＤＥＦ）プラスミドの図表示。プラスミドｐＣＭＶ／ＧＥＦｙ（ＤＥＦ）は、Ｖ３９０Ｉ／Ｙ４１０Ｅ／Ｅ２７４Ｖ変異を有するトウヒシントメハマキのＥｃＲ由来で、かつ酵母ＧＡＬ４−ＤＢＤ（ａａ １−１４７）の下流に融合されたＤ、Ｅ、およびＦドメインから構成され、ｐＢＩＮＤベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、マディソン、ウィスコンシン、米国）のＣＭＶプロモーター、および下流のＳＶ４０ポリアデニル化シグナルの制御下に配置される。ここに示されるＥｃＲのＤＥＦドメインは、５’および３’末端の２０−２５ｎｔ配列に基づいて設計されたプライマーを用いて増幅した。５’および３’プライマーにはそれぞれＢａｍＨＩおよびＸｂａＩ制限酵素部位を加えた。ＰＣＲ産物を適切な制限酵素で消化し、ｐＢＩＮＤベクター内へクローン化した。 ｐＣＭＶ／ＶＰ１６−Ｈｓ−ＬｍＲＸＲベクターの図表示。ｐＣＭＶ／ＶＰ１６−Ｈｓ−ＬｍＲＸＲベクターは、ＶＰ１６活性化ドメインの下流に融合され、かつｐＢＩＮＤベクター内のＣＭＶプロモーターの制御下に置かれる、ヒトＲＸＲβ（Ｅドメインのへリックス１−８）およびトノサマバッタＲＸＲ（Ｅドメインのへリックス９−１２）由来のキメラＲＸＲを含む。 ｐ６ｘＧＡＬ４ＲＥ−ＴＴＲ−ＳＥＡＰレポーターベクターの図表示。誘導性ＳＥＡＰレポーターベクターであるｐ６ｘＧＡＬ４ＲＥ−ＴＴＲ−ＳＥＡＰは、トランスサイレチン（ＴＴＲ）プロモーターの上流の６コピーのＧａｌ４反応エレメントからなる誘導性プロモーターの制御下に置かれた、ヒト分泌型アルカリフォスファターゼレポーター遺伝子を含む。 Ｅ１およびＥ３領域が欠失し、かつＲＴＳ−ＩＬ１２構成要素がＥ１領域に取って代わった、Ａｄ−ＲＴＳ−ｈＩＬ−１２の図表示。 Ａｄ．ＲｈｅｏＳＰ１−ｍＩＬ１２プラスミドを感染させたＢ１６細胞の注射、および０、３、１０、３０、５０ｍｇ／ｋｇ／日の投与量でのジアシルヒドラジンのＲ鏡像異性体およびラセミ体の投与後の、腫瘍および血清中のｍＩＬ１２ｐ７０の発現を示すグラフ。コントロール：リガンドを５０ｍｇ／ｋｇ／日のみで３日間投与される、形質導入されていないＢ１６関連マウス（Ｌｉｇａｎｄ５０）および未処置（リガンドなし）の腫瘍関連マウス（Ｔｕコントロール）。「Ｌ３日間、後中止３日間」：リガンドで３日間処置し、その後のさらなる３日間はリガンドを与えなかったマウス。 Ａｄ．ＲｈｅｏＳＰ１−ｍＩＬ１２プラスミドを感染させたＢ１６細胞の注射、および０、３、１０、３０、５０ｍｇ／ｋｇ／日の投与量でのジアシルヒドラジンのＲ鏡像異性体およびラセミ体の投与後の、腫瘍および血清中のｍＩＦＮ−γの発現を示すグラフ。コントロール：リガンドを５０ｍｇ／ｋｇ／日のみで３日間投与される、形質導入されていないＢ１６関連マウス（Ｌｉｇａｎｄ５０）および未処置（リガンドなし）の腫瘍関連マウス（Ｔｕコントロール）。「Ｌ３日間、後中止３日間」：リガンドで３日間処置し、その後のさらなる３日間はリガンドを与えなかったマウス。
本発明は式１
（式中、Ａはアルコキシ基、アリールアルキルオキシ基、またはアリールオキシ基を表
し、Ｂは任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し、
Ｒ１およびＲ２は互いに独立して任意に置換されたアルキル基、アリールアルキル基、ヒ
ドロキシアルキル基、ハロアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換
されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意
に置換されたアリール基、または任意に置換されたヘテロアリール基を表す）
で表される化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、結晶形または非晶形
に関する。
別の実施形態によれば、本発明は式２
（式中、Ａはアルコキシ基、アリールアルキルオキシ基、アリールオキシ基、アリール
アルキル基、任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表
し、Ｂは任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し、
かつＲ１およびＲ２は互いに独立して任意に置換されたアルキル基、アリールアルキル基
、ヒドロキシアルキル基、ハロアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に
置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、
任意に置換されたアリール基、または任意に置換されたヘテロアリール基を表すが、Ｒ１
およびＲ２は同じではなく、式中、Ｒ１およびＲ２ を有する不斉炭素原子における絶対配
置が主にＳである）
で表される鏡像異性体の豊富な化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、
結晶形または非晶形に関する。
別の実施形態によれば、本発明は式３
（式中、Ａはアルコキシ基、アリールアルキルオキシ基、アリールオキシ基、アリールアルキル基、任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し、Ｂは任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し、かつＲ１およびＲ２は互いに独立して任意に置換されたアルキル基、アリールアルキル基、ヒドロキシアルキル基、ハロアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に置換されたアリール基、または任意に置換されたヘテロアリール基を表すが、Ｒ１およびＲ２は同じではなく、式中、Ｒ１およびＲ２を有する不斉炭素原子における絶対配置が主にＲである）で表される鏡像異性体の豊富な化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、結晶形または非晶形に関する。
別の実施形態によれば、本発明は式２または３
（式中、Ａは−ＯＣ（ＣＨ３）３、−ＯＣＨ２Ｐｈ、任意に置換されたアリール基また
は任意に置換されたヘテロアリール基を表し、Ｂは任意に置換されたアリール基を表し、
Ｒ１は任意に置換された（Ｃ１−Ｃ６）アルキル基、ヒドロキシ（Ｃ１−Ｃ４）アルキル
基または任意に置換された（Ｃ２−Ｃ６）アルケニル基を表し、かつＲ２は任意に置換さ
れた（Ｃ１−Ｃ６）アルキル基、アリール（Ｃ１−Ｃ４）アルキル基、任意に置換された
（Ｃ３−Ｃ７）シクロアルキル基または任意に置換されたアリール基を表すが、Ｒ１およ
びＲ２は同じではなく、式中、Ｒ１およびＲ２ を有する不斉炭素原子における絶対配置が
式２では主にＳであり、かつＲ１およびＲ２ を有する不斉炭素原子における絶対配置が式
３では主にＲである）
で表される化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、結晶形または非晶形
に関する。
別の実施形態によれば、本発明は式２または３
（式中、Ａは任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を
表し、Ｂは任意に置換されたアリール基を表し、Ｒ１は任意に置換された（Ｃ１−Ｃ６）
アルキル基、ヒドロキシ（Ｃ１−Ｃ４）アルキル基または任意に置換された（Ｃ２−Ｃ６
）アルケニル基を表し、かつＲ２は任意に置換された（Ｃ１−Ｃ６）アルキル基、アリー
ル（Ｃ１−Ｃ４）アルキル基、任意に置換された（Ｃ３−Ｃ７）シクロアルキル基または
任意に置換されたアリール基を表すが、Ｒ１およびＲ２は同じではなく、式中、Ｒ１およ
びＲ２ を有する不斉炭素原子における絶対配置が式２では主にＳであり、かつＲ１および
Ｒ２ を有する不斉炭素原子における絶対配置が式３では主にＲである）
で表される化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、結晶形または非晶形
に関する。
別の実施形態によれば、本発明は式２または３
（式中、Ａは
で表され、
Ｒ３ａ、Ｒ３ｂ、Ｒ３ｃ、Ｒ３ｄおよびＲ３ｅは互いに独立して水素、ハロ基、ニトロ基
、シアノ基、ヒドロキシ基、アミノ基、任意に置換されたアルキル基、ハロアルキル基、
ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意
に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換されたアリール
基、任意に置換されたヘテロアリール基、任意に置換された複素環基、アルコキシ基、ア
リールオキシ基、アリールアルキルオキシ基、アルキルチオ基、カルボキシアミド基、ス
ルフォンアミド基、−ＣＯＲｃ、−ＳＯ２Ｒｄ、−Ｎ（Ｒｅ）ＣＯＲｆ、−Ｎ（Ｒｅ）Ｓ
Ｏ２Ｒｇまたは−Ｎ（Ｒｅ）Ｃ＝Ｎ（Ｒｈ）−アミノ基から選択され；または
Ｒ３ａおよびＲ３ｂはまとまって、それらが付着する炭素原子と共に、縮合した、５、６
、または７員のシクロアルキル基または複素環を形成するか；またはＲ３ｂおよびＲ３ｃ
はまとまって、それらが付着する炭素原子と共に、縮合した、５、６、または７員のシク
ロアルキル基または複素環を形成し；
Ｒ４ａ、Ｒ４ｂ、Ｒ４ｃ、Ｒ５ａ、Ｒ５ｂ、Ｒ６ａ、Ｒ６ｂ、およびＲ６ｃは互いに独立
して水素、ハロ基、ニトロ基、シアノ基、ヒドロキシ基、アミノ基、任意に置換されたア
ルキル基、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換さ
れたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基
、任意に置換されたアリール基、任意に置換されたヘテロアリール基、任意に置換された
複素環基、アルコキシ基、アリールオキシ基、アリールアルキルオキシ基、アルキルチオ
基、カルボキシアミド基、スルフォンアミド基、−ＣＯＲｃ、−ＳＯ２Ｒｄ、−Ｎ（Ｒｅ
）ＣＯＲｆ、−Ｎ（Ｒｅ）ＳＯ２Ｒｇまたは−Ｎ（Ｒｅ）Ｃ＝Ｎ（Ｒｈ）−アミノ基から
選択され；
ＸはＯまたはＳであり、Ｂは
で表され；かつ
Ｒ３ｆ、Ｒ３ｇ、Ｒ３ｈ、Ｒ３ｉ、およびＲ３ｊは互いに独立して水素、ハロ基、ニトロ
基、シアノ基、ヒドロキシ基、アミノ基、任意に置換されたアルキル基、ハロアルキル基
、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任
意に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換されたアリー
ル基、任意に置換されたヘテロアリール基、任意に置換された複素環基、アルコキシ基、
アリールオキシ基、アリールアルキルオキシ基、アルキルチオ基、カルボキシアミド基、
スルフォンアミド基、−ＣＯＲｃ、−ＳＯ２Ｒｄ、−Ｎ（Ｒｅ）ＣＯＲｆ、−Ｎ（Ｒｅ）
ＳＯ２Ｒｇまたは−Ｎ（Ｒｅ）Ｃ＝Ｎ（Ｒｈ）−アミノ基から選択され；または
Ｒ３ｆおよびＲ３ｇはまとまって、それらが付着する炭素原子と共に、縮合した、５、６
、または７員のシクロアルキル基または複素環を形成するか；またはＲ３ｇおよびＲ３ｈ
はまとまって、それらが付着する炭素原子と共に、縮合した、５、６、または７員のシク
ロアルキル基または複素環を形成し；
式中、Ｒｃは水素、ヒドロキシ基、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールア
ルキル基、任意に置換されたアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置
換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任
意に置換されたアリール基、任意に置換されたヘテロアリール基、アルコキシ基、アリー
ルオキシ基、またはアリールアルキルオキシ基を表し；
Ｒｄはハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換された
アルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任意
に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に置換されたアリール基ま
たは任意に置換されたヘテロアリール基を表し；
Ｒｅは水素、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換
されたアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基
、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に置換されたアリー
ル基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し；
Ｒｆは水素、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換
されたアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基
、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に置換されたアリー
ル基、任意に置換されたヘテロアリール基、アルコキシ基、アリールオキシ基、アリール
アルキルオキシ基、またはアミノ基を表し；
Ｒｇはハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換された
アルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任意
に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に置換されたアリール基、
任意に置換されたヘテロアリール基、またはアミノ基を表し；
Ｒｈは水素、アルキル基、アリール基、シアノ基、またはニトロ基を表し；
Ｒ１は任意に置換された（Ｃ１−Ｃ６）アルキル基、ヒドロキシ（Ｃ１−Ｃ４）アルキル
基、または任意に置換された（Ｃ２−Ｃ６）アルケニル基を表し；かつ
Ｒ２は任意に置換された（Ｃ１−Ｃ６）アルキル基、アリール（Ｃ１−Ｃ４）アルキル基
、任意に置換された（Ｃ３−Ｃ７）シクロアルキル基、または任意に置換されたアリール
基で表されるが、Ｒ１およびＲ２は同じではなく、
式中、Ｒ１およびＲ２ を有する不斉炭素原子における絶対配置が式２では主にＳであり、
かつ
Ｒ１およびＲ２ を有する不斉炭素原子における絶対配置が式３では主にＲである）
で表される鏡像異性体の豊富な化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、
結晶形または非晶形に関する。
別の実施形態によれば、本発明は式２
（式中、Ａ、Ｂ、Ｒ３ａ、Ｒ３ｂ、Ｒ３ｃ、Ｒ３ｄ、Ｒ３ｅ、Ｒ３ｆ、Ｒ３ｇ、Ｒ３ｈ
、Ｒ３ｉ、Ｒ３ｊ、Ｒ４ａ、Ｒ４ｂ、Ｒ４ｃ、Ｒ５ａ、Ｒ５ｂ、Ｒ６ａ、Ｒ６ｂ、Ｒ６ｃ
およびＸは上記と同じ意味であり、
Ｒ１は（Ｃ１−Ｃ６）アルキル基、ヒドロキシ（Ｃ１−Ｃ４）アルキル基、または（Ｃ２
−Ｃ４）アルケニル基を表し；かつＲ２は任意に置換された（Ｃ３−Ｃ７）シクロアルキ
ル基を表し、式中、Ｒ１およびＲ２ を有する不斉炭素原子における絶対配置が主にＳであ
る）
で表される鏡像異性体の豊富な化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、
結晶形または非晶形に関する。
別の実施形態によれば、本発明は式３
（式中、Ａ、Ｂ、Ｒ３ａ、Ｒ３ｂ、Ｒ３ｃ、Ｒ３ｄ、Ｒ３ｅ、Ｒ３ｆ、Ｒ３ｇ、Ｒ３ｈ
、Ｒ３ｉ、Ｒ３ｊ、Ｒ４ａ、Ｒ４ｂ、Ｒ４ｃ、Ｒ５ａ、Ｒ５ｂ、Ｒ６ａ、Ｒ６ｂ、Ｒ６ｃ
およびＸは上記と同じ意味であり、
Ｒ１は（Ｃ１−Ｃ６）アルキル基、ヒドロキシ（Ｃ１−Ｃ４）アルキル基、または（Ｃ２
−Ｃ４）アルケニル基を表し；かつＲ２は任意に置換された（Ｃ１−Ｃ６）アルキル基を
表すがＲ１およびＲ２は同じではなく、式中、Ｒ１およびＲ２ を有する不斉炭素原子にお
ける絶対配置が主にＲである）
で表される鏡像異性体の豊富な化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、
結晶形または非晶形に関する。
一実施形態によれば、本発明は式２
（式中、Ａは
で表され、
Ｂは
で表され、
Ｒ３ａ、Ｒ３ｂ、Ｒ３ｃ、Ｒ３ｄ、Ｒ３ｅ、Ｒ３ｆ、Ｒ３ｇ、Ｒ３ｈ、Ｒ３ｉ、およびＲ
３ｊは互いに独立して水素、ハロ基、（Ｃ１−Ｃ４）アルキル基、または（Ｃ１−Ｃ４）
アルコキシ基から選択され、
Ｒ１は（Ｃ１−Ｃ６）アルキル基、ヒドロキシ（Ｃ１−Ｃ４）アルキル基、または（Ｃ２
−Ｃ４）アルケニル基を表し；かつＲ２は任意に置換された（Ｃ３−Ｃ７）シクロアルキ
ル基を表し、式中、Ｒ１およびＲ２ を有する不斉炭素原子における絶対配置が主にＳであ
る）
で表される鏡像異性体の豊富な化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、
結晶形または非晶形に関する。
別の実施形態によれば、本発明は式３
（式中、Ａは
で表され、
Ｂは
で表され、
Ｒ３ａ、Ｒ３ｂ、Ｒ３ｃ、Ｒ３ｄ、Ｒ３ｅ、Ｒ３ｆ、Ｒ３ｇ、Ｒ３ｈ、Ｒ３ｉ、およびＲ
３ｊは互いに独立して水素、ハロ基、（Ｃ１−Ｃ４）アルキル基、または（Ｃ１−Ｃ４）
アルコキシ基から選択され、
Ｒ１は（Ｃ１−Ｃ６）アルキル基、ヒドロキシ（Ｃ１−Ｃ４）アルキル基、または（Ｃ２
−Ｃ４）アルケニル基を表し；かつＲ２は任意に置換された（Ｃ１−Ｃ６）アルキル基を
表し、式中、Ｒ１およびＲ２ を有する不斉炭素原子における絶対配置が主にＲである）
で表される鏡像異性体の豊富な化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、
結晶形または非晶形に関する。
別の実施形態によれば本発明は、少なくとも５０％、７５％、８５％、９５％、または
＞９９％のＳ異性体の鏡像異性体過剰率を有する、式２で示される鏡像異性体の豊富な化
合物に関する。一実施形態によれば、式２で示される化合物は実質的にＳ異性体からなる
。
別の実施形態によれば本発明は、少なくとも５０％、７５％、８５％、９５％、または
＞９９％のＲ異性体の鏡像異性体過剰率を有する、式３で示される鏡像異性体の豊富な化
合物に関する。一実施形態によれば、式３で示される化合物は実質的にＲ異性体からなる
。
別の実施形態によれば本発明は、式１、２、または３で表される化合物を含む医薬組成
物に関する。
一実施形態によれば本発明は、少なくとも９５％、または少なくとも９９％の鏡像異性
体過剰率を有する（Ｒ）−３，５−ジメチル安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチ
ル）−Ｎ’−（２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド、あるいはその薬
理学的に許容される塩、水和物、結晶形または非晶形に関する。一実施形態によれば、該
化合物は鏡像異性的に純粋である。
別の実施形態によれば本発明は、少なくとも９５％、または少なくとも９９％の鏡像異
性体過剰率を有する（Ｒ）−３，５−ジメチル安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブ
チル）−Ｎ’−（２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド、あるいはその
薬理学的に許容される塩、水和物、結晶形または非晶形を含む医薬組成物に関する。一実
施形態によれば、該化合物は鏡像異性的に純粋である。
鏡像異性的に純粋な（Ｒ）−３，５−ジメチル安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−
ブチル）−Ｎ’−（２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジドは、それをｉ
ｎ ｖｉｖｏでの医薬品としての使用に独特に適応させる有利な特性の組み合わせをもつ
ことが予期せず発見された。このような特性は、ラセミ体に比較した、より低い融点およ
びより低い融合熱（実施例６８）；ラセミ体に比較した、多数の液体医薬賦形剤中へのよ
り良い溶解性（実施例６８）；ラセミ体に比較した、ある細胞におけるより良い透過性（
実施例６９）；ラセミ体よりも血液脳関門を通過しやすいと思われること（実施例６９）
；ラセミ体に比較した、肝細胞代謝に対するより良い安定性（実施例７０）；Ｌａｂｒａ
ｓｏｌ溶液または懸濁液として経口投与した際、ラセミ体に比較して著しく高い血漿濃度
を達成すること（実施例７１）；およびＥｃＲに基づく遺伝子スイッチの活性化により、
ラセミ体に比較してより大きなｉｎ ｖｉｖｏでの遺伝子発現を達成すること（実施例７
２）を含む。
本発明はまた、式４
（式中、Ａはアリールアルキル基、任意に置換されたアリール基または任意に置換され
たヘテロアリール基を表し、Ｂは任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘ
テロアリール基を表し、Ｒ２は任意に置換されたアルキル基、アリールアルキル基、ヒド
ロキシアルキル基、ハロアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換さ
れたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に
置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表すが、Ｒ２は−ＣＲ
８Ｒ９ＣＨＲ１０ＣＲ１１Ｒ１２と同じではなく、かつＲ８、Ｒ９、Ｒ１０、Ｒ１１、お
よびＲ１２は互いに独立して水素、アルキル基、シクロアルキル基、複素環基、アリール
基またはヘテロアリール基から選択され、式中、Ｒ２が付着する不斉炭素原子はＲまたは
Ｓ異性体のどちらかの鏡像異性体が豊富である）
で表される化合物を調製するための方法であって、
ａ）式５

で表される化合物と式６
Ｒ２ＨＣ＝Ｎ−ＮＨ−ＣＯ２Ｒ７ 式６
（式中、ＸおよびＹは互いに独立してＯ、あるいはＲがアルキル基またはアリール基のＮ
Ｒであり、ＣａＣｂは互いに独立してＳ立体配置の不斉炭素原子またはＲ立体配置の不斉
炭素原子であり、Ｒ１４およびＲ１５は互いに独立してアルキル基またはアリール基であ
り、Ｒ１３はハロ基、水素、アルキル基、アルコキシ基またはＯＳＯ２ＣＦ３であり、Ｒ
７はアルキル基、アリールアルキル基またはアリール基であり、かつＲ２、Ｒ８、Ｒ９、
Ｒ１０、Ｒ１１、およびＲ１２は上記と同じ意味である）
で表される化合物を、式７
で表される化合物を形成するために反応させる工程と、
ｂ）式８
で表される化合物を形成するため、式７で表される化合物を還元する工程と、
ｃ）式９
で表される化合物を形成するため、式８で表される化合物を、式Ｂ−ＣＯ−ＬＧで表され
、ＬＧが脱離基である化合物と反応させる工程と、
ｄ）式１０
で表される化合物を形成するため、式９で表される化合物のＲ７ＣＯ２−残基を除去する
工程、および
ｅ）式４で表される化合物を形成するため、式１０で表される化合物を、式Ａ−ＣＯ−
ＬＧで表され、ＬＧが脱離基である化合物と反応させる工程とを含む方法にも関する。
別の実施形態によれば本発明は、式４（式中、Ｒ８、Ｒ９、Ｒ１０、Ｒ１１、およびＲ
１２が水素である）で表される化合物の調製方法に関する。
別の実施形態によれば、本発明は式４
（式中、Ｒ８、Ｒ９、Ｒ１０、Ｒ１１、およびＲ１２が水素であり；ＸがＮＲであり、
かつＲがメチル基であり；ＹがＯであり；Ｒ１４がメチル基であり；Ｒ１５がフェニル基
であり；かつＣａおよびＣｂのそれぞれがＲ立体配置である）
で表される化合物の調製方法に関する。
別の実施形態によれば、本発明は式４
（式中、Ｒ８、Ｒ９、Ｒ１０、Ｒ１１、およびＲ１２が水素であり；ＸがＮＲであり、
かつＲがメチル基であり；ＹがＯであり；Ｒ１４がメチル基であり；Ｒ１５がフェニル基
であり；かつＣａおよびＣｂのそれぞれがＳ立体配置である）
で表される化合物の調製方法に関する。
別の実施形態によれば、本発明は式４
（式中、Ｒ８、Ｒ９、Ｒ１０、Ｒ１１、およびＲ１２が水素であり；ＸがＮＲであり、
かつＲがメチル基であり；ＹがＯであり；Ｒ１４がメチル基であり；Ｒ１５がフェニル基
であり；ＣａおよびＣｂのそれぞれがＳ立体配置であり；かつＢが３，５−ジ−メチルフ
ェニル基である）
で表される化合物の調製方法に関する。
別の実施形態によれば、本発明は式４
（式中、Ｒ８、Ｒ９、Ｒ１０、Ｒ１１、およびＲ１２が水素であり；ＸがＮＲであり、
かつＲがメチル基であり；ＹがＯであり；Ｒ１４がメチル基であり；Ｒ１５がフェニル基
であり；ＣａおよびＣｂのそれぞれがＳ立体配置であり；かつＡが２−エチル−３−メト
キシフェニル基である）
で表される化合物の調製方法に関する。
別の実施形態によれば、本発明は式４
（式中、Ｒ８、Ｒ９、Ｒ１０、Ｒ１１、およびＲ１２が水素であり；ＸがＮＲであり、
かつＲがメチル基であり；ＹがＯであり；Ｒ１４がメチル基であり；Ｒ１５がフェニル基
であり；ＣａおよびＣｂのそれぞれがＳ立体配置であり；かつＲ２がｔｅｒｔ−ブチル基
である）
で表される化合物の調製方法に関する。
本発明はまた、式２または３で表される化合物を調製するための方法であって、
ａ）式１１
で表される化合物と式１２
で表される化合物のケトンを、式１３
（式中、Ｒ１およびＲ２は同じではない）
で表される化合物を形成するために反応させる工程と；
ｂ）式Ｓ−１４、または、式Ｒ−１４
で表される化合物を形成するため、式１３で表される化合物をキラル触媒の存在下で還元
する工程；および
ｃ）式２または３で表される化合物を形成するため、式Ｓ−１４またはＲ−１４で表さ
れる化合物を、式Ｂ−ＣＯ−ＬＧで表され、ＬＧが脱離基である化合物と反応させる工程
とを含む方法にも関する。
本発明の式１で表されるジアシルヒドラジンは、ｒａｃ−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチ
ル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジ
ルエステル、またはｒａｃ−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５
−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ｔｅｒｔ−ブチルエステルを含むがこ
れらに限定されない。
式２または３で表される本発明のキラルジアシルヒドラジンは以下：
（Ｓ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−シクロヘキシル−ブチル）−Ｎ’−（
２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｓ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−シクロヘキシル−ブチル）−Ｎ’−（
３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｓ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−シクロヘキシル−ブチル）−Ｎ’−（
４−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベン
ゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステル；
（Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベン
ゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ｔｅｒｔ−ブチルエステル；
（Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−４−ヒドロキシ−ブチル）−Ｎ’−（３，５
−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステル；
（Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−４−ヒドロキシ−ブチル）−Ｎ’−（３，５
−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステル；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ’−ベンゾイル−Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル
−ブチル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（２−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（２−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（２−フルオロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（２−クロロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ’−（２−ブロモ−ベンゾイル）−Ｎ−（１−
ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（３−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（３−クロロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（４−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（４−エチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（４−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（４−クロロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（２，６−ジフルオロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（２，６−ジクロロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（３，４−ジメトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（３，５−ジフルオロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（３，５−ジメトキシ−４−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（４−メチル−ベンゾ［１，３］ジオキソール−５−カルボニル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（５−メチル−２，３−ジヒドロ−ベンゾ［１，４］ジオキシン−６−カルボニル）−ヒ
ドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（５−エチル−２，３−ジヒドロ−ベンゾ［１，４］ジオキシン−６−カルボニル）−ヒ
ドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（ナフタレン−１−カルボニル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（ナフタレン−２−カルボニル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（チオフェン−２−カルボニル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（２，５−ジメチル−フラン−３−カルボニル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（２−クロロ−ピリジン−３−カルボニル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（６−クロロ−ピリジン−３−カルボニル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（３−メトキシ−２−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメトキシ−４−メチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブ
チル）−Ｎ’−（３−メトキシ−２−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；および
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ’−（４−エチル−ベンゾイル）−Ｎ−（１−
フェネチル−ブト−３−エニル）−ヒドラジドを含むがこれらに限定されない。
式２または３で表されるキラルジアシルヒドラジンは、分子の他の部分（すなわち、Ｒ
１およびＲ２ を有する不斉炭素原子においてではない）にキラル中心を含んでよい。全て
の可能な鏡像異性体、ジアステレオマーおよび立体異性体は、本発明の範囲内に包含され
ることが企図される。
本発明はまた、式１のジアシルヒドラジンリガンドあるいは式２または３のキラルジア
シルヒドラジンリガンドによる遺伝子発現調節システムを用いた、ホスト細胞における遺
伝子発現の調節方法にも関する。
一実施形態によれば本発明は、リガンド非存在下での減少したレベルのバックグラウン
ド遺伝子発現を有し、かつμＭ以下の濃度のリガンドに反応する誘導性遺伝子発現システ
ムにおける、式１のジアシルヒドラジンリガンドあるいは式２または３のキラルジアシル
ヒドラジンリガンドの使用に関する。
別の実施形態によれば本発明は、ホスト細胞内で標的遺伝子の発現を調節する方法に関
し、ここで該ホスト細胞は
ｉ）トランス活性化ドメイン
ｉｉ）ＤＮＡ結合ドメイン、および
ｉｉｉ）グループＨ核内受容体リガンド結合ドメイン
を含む第１のポリペプチドをコードする第１のポリヌクレオチドを含む第１の遺伝子発現
カセット、および
ｉ）該ＤＮＡ結合ドメインに結合可能な反応エレメント
ｉｉ）該トランス活性化ドメインによって活性化されるプロモーター、および
ｉｉｉ）該標的遺伝子
を含む第２の遺伝子発現カセットを含み、
該方法は該ホスト細胞を式１で表されるジアシルヒドラジンリガンドあるいは式２また
は３で表されるキラルジアシルヒドラジンリガンドと接触させることを含み、ここで該標
的遺伝子の発現は調節される。
別の実施形態によれば本発明は、ホスト細胞内で所望の遺伝子の発現を調節する方法に
関し、ここで該ホスト細胞は
ｉ）ＤＮＡ結合ドメイン、および
ｉｉ）グループＨ核内受容体リガンド結合ドメイン
を含む第１のポリペプチドをコードする第１のポリヌクレオチドを含む第１の組み換え遺
伝子発現カセット、および
ｉ）該ＤＮＡ結合ドメインに結合可能な反応エレメント
ｉｉ）プロモーター、および
ｉｉｉ）該所望の遺伝子
を含む第２の組み換え遺伝子発現カセットを含み、
該方法は該ホスト細胞を式１で表されるジアシルヒドラジンリガンドあるいは式２また
は３で表されるキラルジアシルヒドラジンリガンドと接触させることを含み、ここで該所
望の遺伝子の発現は調節される。
別の実施形態によれば、本発明は、リガンドを被験体の細胞内でエクジソン受容体複合
体に接触させることを含む、トランスジェニック被験体における内在性または異種性遺伝
子発現を調節するための方法に関し、ここで該細胞はさらに、リガンドと組み合わせたと
きのエクジソン受容体複合体に対するＤＮＡ結合配列を含み、かつエクジソン受容体複合
体‐リガンド‐ＤＮＡ結合配列複合体の形成が該遺伝子の発現を誘導し、かつ該リガンド
が式１で表されるジアシルヒドラジンリガンドあるいは式２または３で表されるキラルジ
アシルヒドラジンリガンドであり、トランスジェニック被験体における内在性または異種
性遺伝子発現が調節される。
一実施形態によれば、細胞は自己細胞である。すなわち該細胞は被験体から得られ、エ
クジソン受容体複合体およびＤＮＡ結合配列と共にトランスフェクトされる。トランスフ
ェクトされた該自己細胞はその後、後にリガンドで処置される被験体へ移植により戻され
る。該自己細胞は、点滴または注射（例えば直接注射）を含む幾つかの方法のいずれによ
っても移植されてよい。一実施形態によれば、自己細胞は腫瘍内注射により移植される。
別の実施形態によれば、本発明は、リガンドを被験体の細胞内でキメラエクジソン受容
体複合体に接触させることを含む、トランスジェニック被験体における内在性または異種
性遺伝子発現を調節するための方法に関し、ここで該細胞はさらに、リガンドと組み合わ
せたときのエクジソン受容体複合体に対するＤＮＡ結合配列（プロモーターをさらに含む
）を含み、かつエクジソン受容体複合体‐リガンド‐ＤＮＡ結合配列複合体の形成が該遺
伝子の発現を誘導し、かつ該リガンドが式１で表されるジアシルヒドラジンリガンドある
いは式２または３で表されるキラルジアシルヒドラジンリガンドであり、トランスジェニ
ック被験体における内在性または異種性遺伝子発現が調節される。
別の実施形態によれば、トランスジェニック非験体は植物、昆虫、動物、あるいは哺乳
類、例えばヒトまたはウシ、ブタ、ヒツジ、ヤギ、ウマ、イヌもしくはネコのような獣医
学的動物である。
別の実施形態によれば、本発明はトランスジェニック被験体におけるトランス遺伝子発
現の調節方法に関し、ここで該トランスジェニック被験体はトランス遺伝子発現の調節が
可能な組み換えエクジソン受容体複合体を含む。該方法は、該被験体に有効量の式１で表
されるジアシルヒドラジンリガンドあるいは式２または３で表されるキラルジアシルヒド
ラジンリガンドを投与することを含む。
別の実施形態によれば本発明は、
ａ）ホスト細胞内に遺伝子発現調節システムを導入する工程であって、該システムが
ｉ）ホスト細胞内で発現可能な第１の遺伝子発現カセットであって、
（ａ）その発現が調節されるべき遺伝子に結合する反応エレメントを認識するＤＮＡ
結合ドメイン、および
（ｂ）エクジソン受容体リガンド結合ドメイン
を含む第１のハイブリッドポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む、該第
１の遺伝子発現カセット、
ｉｉ）該ホスト細胞内で発現可能な第２の遺伝子発現カセットであって、
（ａ）トランス活性化ドメイン、および
（ｂ）キメラレチノイドＸ受容体リガンド結合ドメイン
を含む第２のハイブリッドポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む、該第
２の遺伝子発現カセット、および
ｉｉｉ）ホスト細胞内で発現可能な第３の遺伝子発現カセットであって、
（ａ）第１のハイブリッドポリペプチドのＤＮＡ結合ドメインにより認識される反
応エレメント、
（ｂ）第２のハイブリッドポリペプチドのトランス活性化ドメインにより活性化さ
れるプロモーター、および
（ｃ）その発現が調節されるべき遺伝子
を含むポリヌクレオチド配列を含む、該第３の遺伝子発現カセットを含む工程、および
ｂ）ホスト細胞内の遺伝子発現が調節される、ホスト細胞内に式１で表されるジアシル
ヒドラジンリガンドあるいは式２または３で表されるキラルジアシルヒドラジンリガンド
を導入する工程を含む、ホスト細胞内で標的遺伝子の発現を調節する方法に関する。
別の実施形態によれば、本発明は、
ａ）式１で表されるジアシルヒドラジンリガンドあるいは式２または３で表されるキラ
ルジアシルヒドラジンリガンドへの曝露に実質的に非感受性であるホスト細胞を選択する
工程、
ｂ）ホスト細胞内へ
ｉ）ＤＮＡコンストラクトであって、
（ａ）ポリペプチドをコードする外因性遺伝子、および
（ｂ）該遺伝子が反応エレメントの制御下にある、反応エレメント
を含むコンストラクト、および
ｉｉ）エクジソン受容体複合体であって、
ａ）該反応エレメントに結合するＤＮＡ結合ドメイン、
ｂ）前記化合物の結合ドメイン、
ｃ）トランス活性化ドメインを含む複合体、を導入する工程、および
ｄ）前記化合物へ該細胞を曝露し、ここでポリペプチドが産生される工程を含む、ポ
リペプチドを産生するための方法に関する。
別の実施形態によれば本発明は、エクジソン受容体複合体またはエクジソン受容体リガ
ンド結合ドメインが変異を含む、方法に関する。
ここで用いられる略語は、他に記載のない限り、化学および生物学の技術分野における
それらの従来の意味を持つ。例えば、「ｈ」は時間を意味し、「ｍｉｎ」は分を意味し、
「ｓｅｃ」は秒を意味し、「ｄ」は日を意味し、「μＬ」はマイクロリットルを意味し、
「ｍＬ」はミリリットルを意味し、「Ｌ」はリットルを意味し、「μＭ」はマイクロモル
濃度を意味し、「ｍＭ」はミリモル濃度を意味し、「Ｍ」はモル濃度を意味し、「ｍｏｌ
」はモルを意味し、「ｍｍｏｌ」はミリモルを意味し、「μｇ」はマイクログラムを意味
し、「ｍｇ」はミリグラムを意味し、「Ａ」はアデニンまたはアデノシンを意味し、「Ｔ
」はチミンまたはチミジンを意味し、「Ｇ」はグアニンまたはグアノシンを意味し、「Ｃ
」はシチジンまたはシトシンを意味し、「ｘｇ」は重力の倍数を意味し、「ｎｔ」はヌク
レオチドを意味し、「ａａ」はアミノ酸を意味し、「ｂｐ」は塩基対を意味し、「ｋｂ」
はキロベースを意味し、「ｋ」はキロを意味し、「μ」はマイクロを意味し、「℃」は摂
氏温度を意味し、「ＴＨＦ」はテトラヒドロフランを意味し、「ＤＭＥ」はジメトキシエ
タンを意味し、「ＤＭＦ」はジメチルホルムアミドを意味し、「ＮＭＲ」は核磁気共鳴を
意味し、「ｐｓｉ」は平方インチあたりのポンドに関するものであり、かつ「ＴＬＣ」は
薄層クロマトグラフィー」を意味する。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「アルキル基」との語は、１な
いし１０の炭素、または指定された数の炭素（Ｃ１−Ｃ１０は１ないし１０の炭素を意味
する）を有する、直鎖または分岐の脂肪族飽和炭化水素に関する。代表的なアルキル基は
、メチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、イソプロピル基、ｎ−ブチル基、ｓｅｃ−ブチ
ル基、イソブチル基、ｔｅｒｔ−ブチル基、ｎ−ペンチル基、ｎ−ヘキシル基、イソヘキ
シル基、ｎ−ヘプチル基、４，４−ジメチルフェニル基、ｎ−オクチル基、２，２，４−
トリメチルペンチル基、ノニル基、デシル基などを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「任意に置換されたアルキル基
」との語は、ニトロ基、シアノ基、アミノ基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意
に置換されたヘテロアリール基、任意に置換された複素環基、アルコキシ基、アリールオ
キシ基、アリールアルキルオキシ基、アルキルチオ基、カルボキシアミド基、スルフォン
アミド基、−ＣＯＲＣ、−ＳＯ２Ｒｄ、−Ｎ（Ｒｅ）ＣＯＲｆ、−Ｎ（Ｒｅ）ＳＯ２Ｒｇ
または−Ｎ（Ｒｅ）Ｃ＝Ｎ（Ｒｈ）−アミノ基から互いに独立して選択される１ないし３
の置換基により任意に置換された、上に定義されたアルキル基に関する。代表的な置換ア
ルキル基は、−ＣＨ２ＯＣＨ３、−ＣＨ２ＣＨ２ＮＨ２、−ＣＨ２ＣＨ２ＣＮ、−ＣＨ２
ＳＯ２ＣＨ３などを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「ハロアルキル基」との語は、
１ないし６のハロ置換基を有する、上に定義されたアルキル基に関する。代表的なハロア
ルキル基は、トリフルオロメチル基、−ＣＨ２ＣＨ２Ｆなどを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「ヒドロキシアルキル基」との
語は、１ないし３のヒドロキシ置換基、一般的には１のヒドロキシ置換基を有する、上に
定義されたアルキル基に関する。代表的なヒドロキシアルキル基は、ヒドロキシメチル基
、ヒドロキシエチル基、ヒドロキシプロピル基などを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「アリールアルキル基」との語
は、１ないし３のアリール置換基（該アリール置換基は下記のように任意に置換されてよ
い）、一般的には１または２のアリール置換基を有する、上に定義されたアルキル基に関
する。代表的なアリールアルキル基は、例えば、ベンジル基、フェニルエチル基、４−フ
ルオロフェニルエチル基、フェニルプロピル基、ジフェニルメチル基などを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「シクロアルキル基」との語は
、３ないし１２の炭素原子または指定された数の炭素を有する１ないし３の環を含む、飽
和および部分的に不飽和（１または２の二重結合を含む）の環状炭化水素基に関する。代
表的なシクロアルキル基は、シクロプロピル基、シクロブチル基、シクロペンチル基、シ
クロヘキシル基、シクロヘプチル基、シクロオクチル基、ノルボルニル基、デカリン基、
アダマンチル基などを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「任意に置換されたシクロアル
キル基」との語は、ハロ基、ニトロ基、シアノ基、ヒドロキシ基、アミノ基、任意に置換
されたアルキル基、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意
に置換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアル
キニル基、任意に置換されたアリール基、任意に置換されたヘテロアリール基、任意に置
換された複素環基、アルコキシ基、アリールオキシ基、アリールアルキルオキシ基、アル
キルチオ基、カルボキシアミド基、スルフォンアミド基、−ＣＯＲｃ、−ＳＯ２Ｒｄ、−
Ｎ（Ｒｅ）ＣＯＲｆ、−Ｎ（Ｒｅ）ＳＯ２Ｒｇまたは−Ｎ（Ｒｅ）Ｃ＝Ｎ（Ｒｈ）−アミ
ノ基から互いに独立して選択される１ないし３の置換基により任意に置換された、上に定
義されたシクロアルキル基に関する。代表的な、任意に置換されたシクロアルキル基は
などを含む。任意に置換されたシクロアルキル基は、下記のように任意に置換されたアリ
ール基を供給するためにアリール基へ融合されてよい。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「アルケニル基」との語は、１
ないし３の炭素−炭素二重結合、一般的には１または２の二重結合を含む、上に定義され
たアルキル基に関する。代表的なアルケニル基は、−ＣＨ＝ＣＨ２、−ＣＨ２ＣＨ＝ＣＨ
２、−ＣＨ２ＣＨ２ＣＨ＝ＣＨ２、−ＣＨ２ＣＨ２ＣＨ＝ＣＨＣＨ３などを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「任意に置換されたアルケニル
基」との語は、ハロ基、ニトロ基、シアノ基、ヒドロキシ基、アミノ基、任意に置換され
たアルキル基、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置
換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニ
ル基、任意に置換されたアリール基、任意に置換されたヘテロアリール基、任意に置換さ
れた複素環基、アルコキシ基、アリールオキシ基、アリールアルキルオキシ基、アルキル
チオ基、カルボキシアミド基、スルフォンアミド基、−ＣＯＲｃ、−ＳＯ２Ｒｄ、−Ｎ（
Ｒｅ）ＣＯＲｆ、−Ｎ（Ｒｅ）ＳＯ２Ｒｇまたは−Ｎ（Ｒｅ）Ｃ＝Ｎ（Ｒｈ）−アミノ基
から互いに独立して選択される１ないし３の置換基により任意に置換された、上に定義さ
れたアルケニル基に関する。代表的な任意に置換されたアルケニル基は、−ＣＨ＝ＣＨＰ
ｈ、−ＣＨ２ＣＨ＝ＣＨＰｈなどを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「アルキニル基」との語は、１
ないし３の炭素−炭素三重結合、一般的には１または２の三重結合を含む、上に定義され
たアルキル基に関する。代表的なアルキニル基は、−Ｃ≡ＣＨ、−Ｃ≡ＣＣＨ３、−ＣＨ
２Ｃ≡ＣＨ、−ＣＨ２ＣＨ２Ｃ≡ＣＨ、および−ＣＨ２ＣＨ２Ｃ≡ＣＣＨ３などを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「任意に置換されたアルキニル
基」との語は、ハロ基、ニトロ基、シアノ基、ヒドロキシ基、アミノ基、任意に置換され
たアルキル基、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置
換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニ
ル基、任意に置換されたアリール基、任意に置換されたヘテロアリール基、任意に置換さ
れた複素環基、アルコキシ基、アリールオキシ基、アリールアルキルオキシ基、アルキル
チオ基、カルボキシアミド基、スルフォンアミド基、−ＣＯＲｃ、−ＳＯ２Ｒｄ、−Ｎ（
Ｒｅ）ＣＯＲｆ、−Ｎ（Ｒｅ）ＳＯ２Ｒｇまたは−Ｎ（Ｒｅ）Ｃ＝Ｎ（Ｒｈ）−アミノ基
から互いに独立して選択される１ないし３の置換基により任意に置換された、上に定義さ
れたアルキニル基に関する。代表的な任意に置換されたアルキニル基は、−Ｃ≡ＣＰｈ、
−ＣＨ２Ｃ≡ＣＰｈなどを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「アリール基」との語は、フェ
ニル基（Ｐｈと略される）、１−ナフチル基、および２−ナフチル基のような、６ないし
１２の炭素原子を有する単環および二環の芳香環システムに関する。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「任意に置換されたアリール基
」との語は、ハロ基、ニトロ基、シアノ基、ヒドロキシ基、アミノ基、任意に置換された
アルキル基、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換
されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル
基、任意に置換されたアリール基、任意に置換されたヘテロアリール基、任意に置換され
た複素環基、アルコキシ基、アリールオキシ基、アリールアルキルオキシ基、アルキルチ
オ基、カルボキシアミド基、スルフォンアミド基、−ＣＯＲｃ、−ＳＯ２Ｒｄ、−Ｎ（Ｒ
ｅ）ＣＯＲｆ、−Ｎ（Ｒｅ）ＳＯ２Ｒｇまたは−Ｎ（Ｒｅ）Ｃ＝Ｎ（Ｒｈ）−アミノ基か
ら互いに独立して選択される１ないし５の置換基、一般的には１ないし３の置換基により
任意に置換された、上に定義されたアリール基に関する。代表的な任意に置換されたアリ
ール基は、２−メチルフェニル基、２−メトキシフェニル基、２−フルオロフェニル基、
２−クロロフェニル基、２−ブロモフェニル基、３−メチルフェニル基、３−メトキシフ
ェニル基、３−クロロフェニル基、４−メチルフェニル基、４−エチルフェニル基、４−
メトキシフェニル基、４−クロロフェニル基、２，６−ジ−フルオロフェニル基、２，６
−ジ−クロロフェニル基、２−メチル基、３−メトキシフェニル基、２−エチル基、３−
メトキシフェニル基、３，４−ジ−メトキシフェニル基、３，５−ジ−フルオロフェニル
基、３，５−ジ−メチルフェニル基、および３，５−ジメトキシ基、４−メチルフェニル
基などを含む。任意に置換されたアリール基との語は、融合された任意に置換されたシク
ロアルキル基、および融合された任意に置換された複素環基環を有する基を含むことが意
図される。例は
などを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「ヘテロアリール基」との語は
、５ないし１４の炭素原子、ならびに酸素、窒素および硫黄から互いに独立して選択され
る１、２、３または４のヘテロ原子を有する、単環および二環の芳香環システムに関する
。代表的なヘテロアリール基は、１−ピロリル基、２−ピロリル基、３−ピロリル基、２
−イミダゾリル基、４−イミダゾリル基、ピラジニル基、２−オキサゾリル基、４−オキ
サゾリル基、５−オキサゾリル基、３−イソオキサゾリル基、４−イソオキサゾリル基、
５−イソオキサゾリル基、２−チアゾリル基、４−チアゾリル基、５−チアゾリル基、２
−フリル基、３−フリル基、２−チエニル基、３−チエニル基、２−ピリジル基、３−ピ
リジル基、４−ピリジル基、２−ピリミジル基、４−ピリミジル基、５−ベンゾチアゾリ
ル基、プリニル基、２−ベンゾイミダゾリル基、４−ベンゾイミダゾリル基、５−ベンゾ
イミダゾリル基、２−ベンゾチアゾリル基、４−ベンゾチアゾリル基、５−ベンゾチアゾ
リル基、５−インドリル基、５−インドリル基、３−インダゾリル基、４−インダゾリル
基、５−インダゾリル基、１−イソキノリル基、５−イソキノリル基、２−キノキサリニ
ル基、５−キノキサリニル基、２−キノリル基、３−キノリル基、６−キノリル基などを
含む。ヘテロアリール基との語は、可能性のあるＮ−酸化物を含むことが意図される。代
表的なＮ−酸化物はピリジルＮ−酸化物などを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「任意に置換されたヘテロアリ
ール基」との語は、いずれの利用可能な炭素原子も、ハロ基、ニトロ基、シアノ基、ヒド
ロキシ基、アミノ基、任意に置換されたアルキル基、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキ
ル基、アリールアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアル
ケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換されたアリール基、任意に置換さ
れたヘテロアリール基、任意に置換された複素環基、アルコキシ基、アリールオキシ基、
アリールアルキルオキシ基、アルキルチオ基、カルボキシアミド基、スルフォンアミド基
、−ＣＯＲｃ、−ＳＯ２Ｒｄ、−Ｎ（Ｒｅ）ＣＯＲｆ、−Ｎ（Ｒｅ）ＳＯ２Ｒｇまたは−
Ｎ（Ｒｅ）Ｃ＝Ｎ（Ｒｈ）−アミノ基から互いに独立して選択される１ないし４の置換基
、一般的には１ないし２の置換基により任意に置換された、上に定義されたヘテロアリー
ル基に関する。代表的な置換されたヘテロアリール基は
などを含む。
従前に同定されたキラルジアシルヒドラジンリガンドの末端部分であるＡおよびＢにつ
いての、任意に置換されたアリール基および任意に置換されたヘテロアリール基の特異的
な化学的性質は狭義には決定的でなく、記述のように広く多様な置換基が意図される。任
意に置換されたアリール基および任意に置換されたヘテロアリール基に関する置換基は、
好ましくは炭素およびヘテロ原子の総数が約２０を超えないもの、さらに好ましくは約１
５を超えないものが選択される。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「複素環基」との語は、２ない
し１２の炭素原子ならびに１もしくは２の酸素、硫黄、または窒素原子を有する１ないし
３の環を含む、飽和および部分的に不飽和（１または２の二重結合を含む）の環状基に関
する。該複素環基は、炭素原子または窒素原子を通して、分子の他の部分に任意に連結で
きる。代表的な複素環基は
などを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「任意に置換された複素環基」
との語は、ハロ基、ニトロ基、シアノ基、ヒドロキシ基、アミノ基、任意に置換されたア
ルキル基、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換さ
れたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基
、任意に置換されたアリール基、任意に置換されたヘテロアリール基、任意に置換された
複素環基、アルコキシ基、アリールオキシ基、アリールアルキルオキシ基、アルキルチオ
基、カルボキシアミド基、スルフォンアミド基、−ＣＯＲｃ、−ＳＯ２Ｒｄ、−Ｎ（Ｒｅ
）ＣＯＲｆ、−Ｎ（Ｒｅ）ＳＯ２Ｒｇまたは−Ｎ（Ｒｅ）Ｃ＝Ｎ（Ｒｈ）−アミノ基から
互いに独立して選択される１ないし４の置換基、典型的には１ないし２の置換基により任
意に置換された、上に定義された複素環基に関する。代表的な任意に置換された複素環基
は
などを含む。任意に置換された複素環基は、上記のように任意に置換されたアリール基を
供給するためにアリール基へ融合されてよい。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「アルコキシ基」との語は、ヒ
ドロキシアルキル基、ハロアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換されたアルキル
基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、または末端酸
素原子に付着した任意に置換されたアルキニル基に関する。代表的なアルコキシ基は、メ
トキシ基、ｔｅｒｔ−ブトキシ基、ＯＣＨ２ＣＨ＝ＣＨ２などを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「アリールオキシ基」との語は
、末端酸素原子に付着した任意に置換されたアリール基に関する。代表的なアリールオキ
シ基は、フェノキシ基などを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「アリールアルキルオキシ基」
との語は、末端酸素原子に付着したアリールアルキル基に関する。代表的なアリールアル
キルオキシ基は、ベンジルオキシ基などを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「アルキルチオ基」との語は、
ヒドロキシアルキル基、ハロアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換されたアルキ
ル基、任意に置換されたアルケニル基、または末端硫黄原子に付着した任意に置換された
アルキニル基に関する。代表的なアルキルチオ基は−ＳＣＨ３などを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「ハロ基」もしくは「ハロゲン
」との語は、フルオロ基、クロロ基、ブロモ基またはヨード基に関する。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「アミノ基」との語は、Ｒａお
よびＲｂが互いに独立して水素、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアル
キル基、任意に置換されたアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換
された複素環基、任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基
であるか；またはＲａおよびＲｂがまとまって、それらが付着する窒素原子と共に４ない
し７員複素環を形成する、式−ＮＲａＲｂで表される遊離基に関する。代表的なアミノ基
は、−ＮＨ２、−Ｎ（Ｈ）ＣＨ３、−Ｎ（ＣＨ３）２、−Ｎ（Ｈ）ＣＨ２Ｐｈなどを含む
。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「カルボキシアミド基」との語
は、式−ＣＯ−アミノ基で表される遊離基に関する。代表的なカルボキシアミド基は、−
ＣＯＮＨ２、−ＣＯＮ（Ｈ）ＣＨ３、−ＣＯＮ（Ｈ）Ｐｈなどを含む。
ここで、それ自体または他の基の一部として用いられる「スルフォンアミド基」との語
は、式−ＳＯ２−アミノ基で表される遊離基に関する。代表的なスルフォンアミド基は、
−ＳＯ２ＮＨ２、−ＳＯ２Ｎ（Ｈ）ＣＨ３、−ＳＯ２Ｎ（Ｈ）Ｐｈなどを含む。
上記の任意に置換された基に関し、Ｒｃは水素、ヒドロキシ基、ハロアルキル基、ヒド
ロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換されたアルキル基、任意に置換され
たシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、
任意に置換された複素環基、任意に置換されたアリール基、任意に置換されたヘテロアリ
ール基、アルコキシ基、アリールオキシ基、またはアリールアルキルオキシ基を表し；Ｒ
ｄはハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換されたア
ルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任意に
置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に置換されたアリール基また
は任意に置換されたヘテロアリール基を表し；Ｒｅは水素、ハロアルキル基、ヒドロキシ
アルキル基、アリールアルキル基、任意に置換されたアルキル基、任意に置換されたシク
ロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に
置換された複素環基、任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリー
ル基を表し；Ｒｆは水素、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基
、任意に置換されたアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換された
アルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に置換
されたアリール基、任意に置換されたヘテロアリール基、アルコキシ基、アリールオキシ
基、アリールアルキルオキシ基、またはアミノ基を表し；Ｒｇはハロアルキル基、ヒドロ
キシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換されたアルキル基、任意に置換された
シクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任
意に置換された複素環基、任意に置換されたアリール基、任意に置換されたヘテロアリー
ル基、またはアミノ基を表し；Ｒｈは水素、アルキル基、アリール基、シアノ基、または
ニトロ基を表す。
本明細書を通じ、基およびその任意の置換基は、安定な成分および化合物を供給するよ
うに選択される。
本発明の化合物は、これらの化合物を構成する原子の１以上において、原子同位元素を
人為的な割合で含んでよい。例えば、化合物は例えばトリチウム（３Ｈ）、ヨウ素−１２
５（１２５Ｉ）、または炭素−１４（１４Ｃ）のような放射性同位元素により放射標識さ
れてよい。本発明の化合物の全ての同位体的な変化は、放射性であるかどうかに関わりな
く、本発明の範囲内に含まれることが企図される。
本発明の化合物は、それらもまた本発明の範囲内である塩を形成してよい。ここで本発
明の化合物への参照は、他に記載のない限り、その塩への参照を含むことが理解される。
ここで用いられる「塩」との語は、無機および／または有機の酸および塩基により形成さ
れる、酸性および／または塩基性の塩を意味する。加えて、式１、２または３で表される
化合物が塩基成分および酸成分の両方を含むとき、双性イオン（分子内塩）が形成されて
よく、これらはここで用いられる「塩」との語に含まれる。例えば調製の間に用いられる
可能性のある分離または精製工程においては、その他の塩もまた有用であるが、薬理学的
に許容される（すなわち無毒性、生理学的に許容される）塩が好ましい。式１、２または
３で表される化合物の塩は、例えば、塩が沈殿するような溶媒または水性溶媒中で、化合
物を例えば同等量のようなある量の酸または塩基と反応させ、続いて凍結乾燥することに
より形成されてよい。
塩基成分を含む本発明の化合物は、様々な有機および無機酸により塩を形成してよい。
代表的な酸付加塩は、酢酸塩（酢酸またはトリハロ酢酸、例えばトリフルオロ酢酸により
形成されるもの、）アジピン酸塩、アルギン酸塩、アスコルビン酸塩、アスパラギン酸塩
、安息香酸塩、ベンゼンスルホン酸塩、重硫酸塩、ホウ酸塩、酪酸塩、クエン酸塩、樟脳
酸塩、樟脳スルホン酸塩、シクロペンタンプロピオン酸塩、ジグルコン酸塩、ドデシル硫
酸塩、エタンスルホン酸塩、フマル酸塩、グルコヘプタン酸塩、グリセロリン酸塩、ヘミ
硫酸塩、ヘプタン酸塩、ヘキサン酸塩、塩酸塩（塩酸により形成される）、臭化水素酸塩
（臭化水素酸により形成される）、ヨウ化水素酸塩、２−ヒドロキシエタンスルホン酸塩
、乳酸塩、マレイン酸塩（マレイン酸により形成される）、メタンスルホン酸塩（メタン
スルホン酸により形成される）、２−ナフタレンスルホン酸塩、ニコチン酸塩、硝酸塩、
シュウ酸塩、ペクチン酸塩、過硫酸塩、３−フェニルプロピオン酸塩、リン酸塩、ピクリ
ン酸塩、ピバル酸塩、プロピオン酸塩、サリチル酸塩、コハク酸塩、硫酸塩（硫酸により
形成されるような）、スルホン酸塩（ここで述べられたような）、酒石酸塩、チオシアン
酸塩、トシレートのようなトルエンスルホン酸塩、ウンデカン酸塩などを含む。
酸成分を含む本発明の化合物は、様々な有機および無機塩基により塩を形成してよい。
代表的な塩基性塩は、アンモニウム塩、ナトリウム、リチウム、カリウム塩のようなアル
カリ金属塩、カルシウムおよびマグネシウム塩のようなアルカリ土類金属塩、有機塩基（
例えば有機アミン）による塩、例えばベンザチン、ジシクロヘキシルアミン、ヒドラバミ
ン（Ｎ，Ｎ−ビス（デヒドロアビエチル）エチレンジアミンにより形成される）、Ｎ−メ
チル−Ｄ−グルカミン、Ｎ−メチル−Ｄ−グルカミド、ｔ−ブチルアミン、およびアルギ
ニン、リジンのようなアミノ酸による塩などを含む。
本明細書中で使用される立体化学の用語および慣例は、他に記載のない限り、Ｐｕｒｅ
＆ Ａｐｐｌ． Ｃｈｅｍ ６８：２１９３ （１９９６）に記載されたものと一致す
る。
「鏡像異性体過剰率」または「ｅｅ」との語は、一鏡像異性体が他に比較してどれくらい
存在するかの基準に関する。ＲおよびＳ鏡像異性体の混合物に対し、パーセント鏡像異性
体過剰率は｜Ｒ−Ｓ｜＊１００と定義され、ここでＲおよびＳはそれぞれのモル、または
Ｒ＋Ｓ＝１であるような、混合物中の鏡像異性体の重量分率である。キラル物質の旋光度
についての知識により、パーセント鏡像異性体過剰率は（［α］ｏｂｓ／［α］ｍａｘ）
＊１００と定義され、ここで［α］ｏｂｓは鏡像異性体混合物の旋光度であり、［α］ｍ
ａｘは純粋な鏡像異性体の旋光度である。鏡像異性体過剰率の決定は、ＮＭＲ分光法、キ
ラルカラムクロマトグラフィー、または光学的旋光分析を含む、様々な分析方法を用いる
ことにより可能である。
「鏡像異性的に純粋」または「エナンチオピュア」との語は、その全ての分子（検出範
囲内で）が同じ掌性方向を持つ、キラル物質のサンプルに関する。
「鏡像異性体が豊富」または「エナンチオエンリッチ」との語は、その鏡像異性の比率
が５０：５０よりも大きなキラル物質のサンプルに関する。鏡像異性体が豊富な化合物は
鏡像異性的に純粋であり得る。
「不斉炭素原子」との語は、４個の異なる原子または原子団に付着する、有機化合物の
分子内の炭素原子に関する。
「主に」との語は、５０：５０よりも大きな比率を意味する。
「脱離基」または「ＬＧ」との語は、特定の反応における基質の残渣または主要部とみ
なされるものの中で、原子または集団から脱離する原子または集団に関する。アミド結合
反応において、代表的な脱離基は−Ｆ、−Ｃｌ、−Ｂｒ、−ＯＣ６Ｆ５などを含む。
本発明の目的のための「単離された」との語は、その最初の環境（それが自然に存在す
る環境）から除去された物質（例えば化学化合物、または核酸もしくはタンパク質のよう
な生物学的物質）を示す。例えば、植物または動物内で自然な状態で存在するポリヌクレ
オチドは単離されていないが、自然に存在する隣接した核酸から分離された同じポリヌク
レオチドは「単離された」とみなされる。
生物学的物質へ適用される「精製された」との語は、その物質が、他の化合物の存在に
排他的である絶対的な純度を示す形で存在することを要求しない。これはむしろ相対的な
定義である。
「核酸」、「核酸分子」、「オリゴヌクレオチド」および「ポリヌクレオチド」は互換
的に使用され、リボヌクレオシド（アデノシン、グアノシン、ウリジン、またはシチジン
；「ＲＮＡ分子」）もしくはデオキシリボヌクレオシド（デオキシアデノシン、デオキシ
グアノシン、デオキシチミジン、またはデオキシシチジン；「ＤＮＡ分子」）のリン酸エ
ステル重合体、またはそのリン酸エステル類似体のいずれか、例えばホスホロチオエート
およびチオエステルの、単鎖の形、または二重鎖へリックスに関する。二重鎖ＤＮＡ−Ｄ
ＮＡ、ＤＮＡ−ＲＮＡ、およびＲＮＡ−ＲＮＡへリックスが可能である。核酸分子、特に
ＤＮＡまたはＲＮＡ分子との語は、分子の一次および二次構造のみに関し、それを特定の
三次構造のいずれかに限定するものではない。従って、この語は見出される二重鎖ＤＮＡ
、とりわけ線状もしくは環状ＤＮＡ分子（例えば制限酵素断片）、プラスミド、超らせん
ＤＮＡおよび染色体を含む。特定の二重鎖ＤＮＡ分子の構造について考察する中で、ここ
では配列は、転写されないＤＮＡ鎖（すなわちｍＲＮＡへの配列相同性をもつ鎖）に沿っ
た５’から３’への方向における配列のみが与えられるという通常の慣習に従って記述さ
れてよい。「組み換えＤＮＡ分子」は、分子生物学的操作を受けているＤＮＡ分子である
。ＤＮＡはｃＤＮＡ、ゲノムＤＮＡ、プラスミドＤＮＡ、合成ＤＮＡ、および半合成ＤＮ
Ａを含むがこれらに限定されない。
「断片」との語は、参照核酸に比較した長さが短く、かつ共通部分にわたって、参照核
酸に対し同一のヌクレオチド配列を含むヌクレオチド配列に関する。本発明によるこのよ
うな核酸断片は、それが適切であるとき、構成物としてのより大きなポリヌクレオチドに
含まれてよい。このような断片は、本発明による核酸の、長さが少なくとも６、８、９、
１０、１２、１５、１８、２０、２１、２２、２３、２４、２５、３０、３９、４０、４
２、４５、４８、５０、５１、５４、５７、６０、６３、６６、７０、７５、７８、８０
、９０、１００、１０５、１２０、１３５、１５０、２００、３００、５００、７２０、
９００、１０００または１５００の範囲の連続したヌクレオチドであるオリゴヌクレオチ
ドを含むか、またはこれらから成る。
ここで用いられる、「単離された核酸断片」は、任意に合成、非天然、または改変され
たヌクレオチド塩基を含む、単鎖もしくは二重鎖のＲＮＡまたはＤＮＡの重合体に関する
。ＤＮＡ重合体の形である単離された核酸断片は、ｃＤＮＡ、ゲノムＤＮＡ、または合成
ＤＮＡの１以上のセグメントを含んでよい。
「遺伝子」は、ｃＤＮＡおよびゲノムＤＮＡ核酸を含む、機能的分子（例えばポリペプ
チドまたはＲＮＡ）をコードするヌクレオチドを含むポリヌクレオチドに関する。「遺伝
子」はまた、翻訳配列に先立ち（５’非コード配列）、かつ続く（３’非コード配列）調
節性配列を含む、特定のＲＮＡ、タンパク質またはポリペプチドを発現する核酸断片に関
する。「天然遺伝子」は、それ自体の調節性配列と共に天然に見出される遺伝子に関する
。「キメラ遺伝子」は、天然において共には見出されない調節性および／またはコード配
列を含む、天然遺伝子ではない遺伝子のいずれかに関する。従ってキメラ遺伝子は、異な
る源由来の調節性配列およびコード配列、または同じ源由来であるが、天然に見出される
ものとは異なる方法で配置された調節性配列および翻訳配列を含んでよい。キメラ遺伝子
は、異なる源由来のコード配列および／または異なる源由来の調節性配列を含んでよい。
「内在性遺伝子」は、生物のゲノムにおいてその天然の位置にある天然遺伝子に関する。
「外来性」遺伝子または「異種性」遺伝子は、ホスト生物内に通常は見出されないが、遺
伝子移入によってホスト生物内へ導入される遺伝子に関する。外来性遺伝子は、非天然生
物内へ挿入された天然遺伝子、またはキメラ遺伝子を含むことができる。「トランス遺伝
子」は形質転換方法によってゲノム内へ導入された遺伝子である。
「異種性」ＤＮＡは、細胞内または細胞の染色体部位内に自然には位置していないＤＮ
Ａに関する。好ましくは、異種性ＤＮＡは細胞に対して外来性である遺伝子を含む。
「ゲノム」との語は、染色体の、同様にミトコンドリアの、葉緑体、およびウィルス性
ＤＮＡまたはＲＮＡを含む。
核酸分子は、温度および溶液イオン強度の適切な条件下で、該核酸分子の単鎖形がその
他の核酸分子とアニールできるとき、ｃＤＮＡ、ゲノムＤＮＡ、またはＲＮＡのような別
の核酸分子と「ハイブリダイズ可能」である（以下のＳａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，
１９８９を参照のこと）。ハイブリダイゼーションおよび洗浄の条件は公知であり、Ｓａ
ｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔ
ｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｓｅｃｏｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａ
ｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ
（１９８９）中、特に１１章およびその中の表１１．１（全体が参照としてここに取り込
まれる）に例証されている。温度およびイオン強度の条件は、ハイブリダイゼーションの
「ストリンジェンシー」を決定する。
ストリンジェンシー条件は、遠縁の生物由来の相同性配列のような中程度に類似の断片
から、近縁の生物由来の機能的酵素を複製する遺伝子のような高度に類似の断片までを選
別するために調整できる。相同的な核酸の事前のスクリーニングのためには、５５゜のＴ
ｍに相当する低いストリンジェンシーハイブリダイゼーション条件が使用できる（例えば
、５ｘＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、０．２５％ミルク、およびホルムアミドなし；または３
０％ホルムアミド、５ｘＳＳＣ、０．５％ＳＤＳ）。中程度のストリンジェンシーハイブ
リダイゼーション条件はより高いＴｍに相当する（例えば５ｘまたは６ｘＳＳＣと４０％
ホルムアミド）。高度のストリンジェンシーハイブリダイゼーション条件は最も高いＴｍ
に相当する（例えば５０％ホルムアミド、５ｘまたは６ｘＳＳＣ）。
ハイブリダイゼーションには相補的配列を含む２つの核酸が必要とされ、ハイブリダイ
ゼーションのストリンジェンシーに依存するものの、塩基間のミスマッチがあり得る。「
相補的」との語は、互いにハイブリダイズできるヌクレオチド塩基間の関連性の記述に用
いられる。例えばＤＮＡに関しては、アデノシンはチミンに相補的であり、シトシンはグ
アニンに相補的である。従って本発明はまた、ここに開示または使用された完全配列、同
様に実質的に類似の核酸配列に相補的な、単離された核酸断片も含む。
一実施形態によればポリヌクレオチドは、５５℃のＴｍにおけるハイブリダイゼーショ
ン工程を含むハイブリダイゼーション条件を使用し、かつ上で説明した条件を利用するこ
とによって検出される。別の実施形態によればＴｍは６０℃であり；一実施形態によれば
Ｔｍは６３℃であり；別の実施形態によればＴｍは６５℃である。
ハイブリダイゼーション後の洗浄もまた、ストリンジェンシー条件を決定する。条件の
一設定は、６ｘＳＳＣ、０．５％ＳＤＳ、室温で１５分に始まり、続いて２ｘＳＳＣ、０
．５％ＳＤＳ、４５℃で３０分を繰り返し、続いて０．２ｘＳＳＣ、０．５％ＳＤＳ、５
０℃で３０分を２回繰り返す、一連の洗浄を用いる。ストリンジェント条件の一設定はよ
り高い温度を用い、ここで洗浄は、最後の０．２ｘＳＳＣ、０．５％ＳＤＳ中での３０分
、２回の洗浄の温度が６０℃に増大することを除いては上記と同様である、。高度なスト
リンジェント条件の別の設定は、６５℃における０．１ｘＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ中での
最後の２回の洗浄を用いる。
核酸をハイブリダイズするための適切なストリンジェンシーは、変化することが当該技
術分野において公知である核酸の長さおよび相補性の程度に依存する。２つのヌクレオチ
ド配列の間で相同性の類似の程度が大きいほど、これらの配列を有する核酸のハイブリッ
ドのためのＴｍの値は大きくなる。核酸ハイブリダイゼーションの相対的安定性（より高
いＴｍに相当する）は、次の順番で減少する：ＲＮＡ：ＲＮＡ、ＤＮＡ：ＲＮＡ、ＤＮＡ
：ＤＮＡ。長さが１００ヌクレオチドを超えるハイブリッドのためには、Ｔｍを算出する
ための式が得られる（上記Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．， ９．５０−０．５１を参
照のこと）。より短い核酸、すなわちオリゴヌクレオチドのハイブリダイゼーションのた
めにはミスマッチの位置がより重要になり、オリゴヌクレオチドの長さがその特異性を決
定する（上記Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，１１．７−１１．８を参照のこと）。
本発明の一実施形態によればポリヌクレオチドは、５００ｍＭ未満の塩および少なくと
も３７摂氏温度におけるハイブリダイゼーション工程、ならびに少なくとも６３摂氏温度
における２ｘＳＳＰＥ中での洗浄工程を含むハイブリダイゼーション条件を利用すること
によって検出される。一実施形態によればハイブリダイゼーション条件は、ハイブリダイ
ゼーション工程に２００ｍＭ未満の塩および少なくとも３７摂氏温度を含む。別の実施形
態によればハイブリダイゼーション条件は、ハイブリダイゼーションおよび洗浄工程の両
方に、２ｘＳＳＰＥおよび６３摂氏温度を含む。
別の実施形態によれば、ハイブリダイズ可能な核酸の長さは少なくとも約１０ヌクレオ
チドである。好ましくはハイブリダイズ可能な核酸の最短の長さは少なくとも約１５ヌク
レオチドであり；さらに好ましくは少なくとも約２０ヌクレオチドであり；最も好ましく
は、長さは少なくとも３０ヌクレオチドである。さらに、当業者は温度および洗浄液の塩
濃度が、プローブの長さのような要素に従い、必要に応じて調整されてよいことを認識す
るであろう。
「プローブ」との語は、二重鎖分子を形成するために相補的な単鎖標的核酸と塩基対に
なることのできる、単鎖核酸分子に関する。
ここで用いられる「オリゴヌクレオチド」との語は、ゲノムＤＮＡ分子、ｃＤＮＡ分子
、プラスミドＤＮＡまたはｍＲＮＡ分子とハイブリダイズ可能な短い核酸に関する。オリ
ゴヌクレオチドは、例えば３２Ｐ−ヌクレオチド、またはビオチンのような標識が共有結
合したヌクレオチドによって標識できる。標識オリゴヌクレオチドは、核酸の存在を検出
するためのプローブとして使用できる。オリゴヌクレオチド（それらのうち一つ、または
両方が標識されてよい）は、核酸の完全長または断片のクローニングのため、あるいは核
酸の存在を検出するためのＰＣＲプライマーとして使用できる。オリゴヌクレオチドはま
た、ＤＮＡ分子と共に三重へリックスを形成するためにも使用できる。一般に、オリゴヌ
クレオチドは合成的に、好ましくは核酸合成機において調製される。従ってオリゴヌクレ
オチドは、チオエステル結合などのような非自然発生のホスホエステル類似体結合により
調製できる。
「プライマー」は、適切な条件下でＤＮＡ合成の開始点となることのできる二重鎖核酸
領域を作り出すために、標的核酸配列へハイブリダイズするオリゴヌクレオチドに関する
。このようなプライマーはポリメラーゼ連鎖反応に用いられてよい。
「ポリメラーゼ連鎖反応」はＰＣＲと略され、特定の核酸配列を酵素的に増幅するため
のｉｎ ｖｉｔｒｏ方法に関する。ＰＣＲは一連の温度サイクルの反復に関し、各サイク
ルが、標的分子の鎖を分離するための鋳型核酸の変性、単鎖ＰＣＲオリゴヌクレオチドプ
ライマーの鋳型核酸へのアニーリング、およびＤＮＡポリメラーゼによるアニールしたプ
ライマーの伸長の３段階を含む。ＰＣＲは標的分子の存在の検出のため、および定量的も
しくは半定量的条件下で、核酸の出発プールの中での標的分子の相対量を決定するための
手段を提供する。
「逆転写ポリメラーゼ連鎖反応」はＲＴ−ＰＣＲと略され、１または複数のＲＮＡ分子
由来の１または複数の標的ｃＤＮＡ分子を酵素的に産生し、続いて特定の核酸配列または
上記の１または複数の標的ｃＤＮＡ分子内の配列を酵素的に増幅するためのｉｎ ｖｉｔ
ｒｏ方法に関する。ＲＴ−ＰＣＲはまた、標的分子の存在の検出のため、および定量的も
しくは半定量的条件下で、核酸の出発プールの中での標的分子の相対量を決定するための
手段も提供する。
ＤＮＡ「コード配列」は、ポリペプチドをコードし、かつ適切な調節性配列の制御下に
置かれたとき、ｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｉｎ ｖｉｖｏにおける細胞内で転写およびポリ
ペプチドに翻訳され得る二重鎖ＤＮＡ配列に関する。「適切な調節性配列」は、コード配
列の上流（５’非コード配列）、その内部、または下流（３’非コード配列）に位置し、
かつ転写、ＲＮＡのプロセシングもしくは安定性、または関連するコード配列の翻訳に影
響するヌクレオチド配列に関する。調節性配列は、プロモーター、翻訳リーダー配列、イ
ントロン、ポリアデニル化認識配列、ＲＮＡプロセシング部位、エフェクター結合部位、
およびステムループ構造を含んでよい。コード配列の境界は、５’（アミノ）末端の開始
コドンおよび３’（カルボキシル）末端の翻訳終止コドンにより決定される。コード配列
は、原核生物の配列、ｍＲＮＡ由来のｃＤＮＡ、ゲノムＤＮＡ配列、および合成ＤＮＡ配
列までも含むことができるが、これらに限定されない。コード配列が真核細胞内での発現
を企図する場合、ポリアデニル化シグナルおよび転写終結配列は通常コード配列の３’に
位置し得る。
「翻訳領域」はＯＲＦと略され、翻訳開始シグナルまたはＡＴＧもしくはＡＵＧのよう
な開始コドン、および終止コドンを含み、かつ潜在的にポリペプチド配列に翻訳される、
ＤＮＡ、ｃＤＮＡ、またはＲＮＡのいずれかである核酸配列の長さに関する。
ここで「頭−頭」との語は、互いに関連する２つのポリヌクレオチド配列の方向性を表
現するために用いられる。一方のポリヌクレオチドのコード鎖の５’末端が他方のポリヌ
クレオチドのコード鎖の５’末端に隣接しており、これにより各ポリヌクレオチドの転写
方向が、他方のポリヌクレオチドの５’末端から離れて進行するとき、２つのポリヌクレ
オチドは頭−頭の方向性において位置する。「頭−頭」との語は、（５’）−（５’）と
略されてよく、また、（←→）もしくは（３’←５’５’→３’）のシンボルによって示
されてもよい。
ここで「尾−尾」との語は、互いに関連する２つのポリヌクレオチド配列の方向性を表
現するために用いられる。一方のポリヌクレオチドのコード鎖の３’末端が他方のポリヌ
クレオチドのコード鎖の３’末端に隣接しており、これにより各ポリヌクレオチドの転写
方向が、他方のポリヌクレオチドへ向かって進行するとき、２つのポリヌクレオチドは尾
−尾の方向性において位置する。「尾−尾」との語は、（３’）−（３’）と略されてよ
く、また、（→←）もしくは（５’→３’３’←５’）のシンボルによって示されてもよ
い。
ここで「頭−尾」との語は、互いに関連する２つのポリヌクレオチド配列の方向性を表
現するために用いられる。一方のポリヌクレオチドのコード鎖の５’末端が他方のポリヌ
クレオチドのコード鎖の３’末端に隣接しており、これにより各ポリヌクレオチドの転写
方向が、他方のポリヌクレオチドの転写方向と同じ方向へ進行するとき、２つのポリヌク
レオチドは頭−尾の方向性において位置する。「頭−尾」との語は、（５’）−（３’）
と略されてよく、また、（→→）もしくは（５’→３’５’→３’）のシンボルによって
示されてもよい。
「下流」との語は、参照ヌクレオチド配列に対し、３’に位置するヌクレオチド配列に
関する。特に、下流のヌクレオチド配列は一般に転写の開始点に続く配列に関する。例え
ば、遺伝子の翻訳開始コドンは転写の開始部位の下流に位置する。
「上流」との語は、参照ヌクレオチド配列に対し、５’に位置するヌクレオチド配列に
関する。特に、上流のヌクレオチド配列は一般にコード配列または転写の開始点の５’側
に位置する配列に関する。例えば、ほとんどのプロモーターは転写開始部位の上流に位置
する。
「制限エンドヌクレアーゼ」および「制限酵素」との語は互換的に用いられ、二重鎖Ｄ
ＮＡ内の特異的なヌクレオチド配列内に結合し、かつ切断する酵素に関する。
「相同組み換え」は、外来性ＤＮＡを別のＤＮＡ分子内へ挿入すること、例えば染色体
内へのベクターの挿入に関する。好ましくは、相同組み換えのためにベクターは特異的な
染色体部位を標的にする。特異的な相同組み換えのためにベクターは、相補的な結合およ
びベクターの染色体内への取り込みを可能にするため、染色体の配列に対する相同性領域
を十分な長さで含むであろう。より長い相同性領域およびより大きな配列類似性の程度は
、相同組み換えの効率を増大させるであろう。
公知の幾つかの方法が、本発明のポリヌクレオチドを増殖するために用いられてよい。
ひとたび適切なホストシステムおよび増殖条件が確立すれば、組み換え発現ベクターは増
殖し、多量に調製できる。ここに述べるように、使用できる発現ベクターは、ほんの数例
を挙げれば下記のベクター：ワクシニアウィルスまたはアデノウィルスのような、ヒトま
たは動物ウィルス；バキュロウィルスのような昆虫ウィルス；酵母ベクター；バクテリオ
ファージベクター（例えばラムダ）、ならびにプラスミドおよびコスミドＤＮＡベクター
、またはその派生物を含むがこれらに限定されない。
「ベクター」は核酸のクローニングおよび／またはホスト細胞内への移入のためのいず
れかのビヒクルに関する。ベクターは、そこへ別のＤＮＡセグメントが付着してよく、付
着したセグメントの複製がもたらされるレプリコンであってよい。「レプリコン」は、ｉ
ｎ ｖｉｖｏでＤＮＡ複製の自律的単位として機能する、すなわちそれ自体の制御下に複
製可能な遺伝的要素（例えばプラスミド、ファージ、コスミド、染色体、ウィルス）のい
ずれかに関する。「ベクター」との語は、ｉｎ ｖｉｔｒｏ、ｅｘ ｖｉｖｏまたはｉｎ
ｖｉｖｏで細胞内に核酸を導入するための、ウィルス性および非ウィルス性両方のビヒ
クルを含む。当該技術分野において公知の多数のベクターが、核酸の操作、反応エレメン
トおよびプロモーターの遺伝子内への取り込みなどのために用いられてよい。可能なベク
ターは例えば、例えばラムダ派生物のようなバクテリオファージを含むプラスミドもしく
は改変ウィルス、またはｐＢＲ３２２もしくはｐＵＣプラスミド派生物のようなプラスミ
ド、またはＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔベクターを含む。例えば、反応エレメントおよびプロモ
ーターに相当するＤＮＡ断片の適したベクターへの挿入は、適切なＤＮＡ断片を、相補的
な付着末端を有する選択されたベクターへ連結することにより達成できる。あるいは、Ｄ
ＮＡ分子の末端は酵素的に改変されてよいか、またはヌクレオチド配列（リンカー）をＤ
ＮＡ末端に連結することにより、どのような部位も作り出されてよい。このようなベクタ
ーは、マーカーを細胞ゲノム内に取り込んだ細胞の選択を提供する選択マーカー遺伝子を
含むように設計されてよい。このようなマーカーは、これを取り込み、かつ該マーカーに
よりコードされるタンパク質を発現するホスト細胞の同定および／または選択を可能にす
る。
ウィルス性ベクター、特にレトロウィルスベクターは、細胞内、同様に生きた動物被験
体内での広く多様な遺伝子送達応用において使用されている。使用可能なウィルス性ベク
ターは、レトロウィルス、アデノ随伴ウィルス、ポックス、バキュロウィルス、ワクシニ
ア、単純ヘルペス、エプスタイン−バー、アデノウィルス、ジェミニウィルス、およびカ
リモウィルスベクターを含むがこれらに限定されない。非ウィルス性ベクターは、プラス
ミド、リポソーム、電気的に荷電した脂質（サイトフェクチン）、ＤＮＡ−タンパク質複
合体、および生体高分子を含むがこれらに限定されない。核酸に加え、ベクターはまた、
１以上の調節性領域、および／または選択、測定、および核酸移入結果の監視（どの組織
に移入されたか、発現の持続など）に有用な選択マーカーも含んでよい。
「プラスミド」との語は、しばしば細胞の中心的代謝の一部ではない遺伝子を保有し、
かつ通常は環状の二重鎖ＤＮＡ分子の形である染色体外エレメントに関する。このような
エレメントは、どのような源からも由来する、自律的複製配列、ゲノム統合配列、ファー
ジまたはヌクレオチド配列、単鎖もしくは二重鎖ＤＮＡまたはＲＮＡの、線状、環状、ま
たは超らせんであってよく、ここにおいて幾つかのヌクレオチド配列は、選択された遺伝
子産物のプロモーター断片およびＤＮＡ配列を適切な３’非翻訳配列と共に細胞内へ導入
できる独特な構成へ連結されるかまたは組み換えられている。
「クローニングベクター」は、連続的に複製され、複製開始点を含む核酸、好ましくは
ＤＮＡの単位の長さである「レプリコン」に関する。レプリコンは例えばプラスミド、フ
ァージまたはコスミドであり、そこへ別の核酸セグメントが付着してよく、付着したセグ
メントの複製がもたらされるクローニングベクターは、一細胞型において複製、かつ別の
細胞型において発現することが可能であってよい（「シャトルベクター」）。
「発現ベクター」との語は、ホスト細胞の形質転換に続き、挿入された核酸配列の発現
を可能にするために設計されたベクター、プラスミドまたはビヒクルに関する。クローン
化遺伝子、すなわち挿入された核酸配列は通常プロモーター、最小プロモーター、エンハ
ンサーなどのような制御エレメントの制御下に置かれる。望ましいホスト細胞内での核酸
の発現を駆動するために有用な開始制御領域、またはプロモーターは多数存在し、当業者
に公知である。実質的に、これらの遺伝子を駆動できるいずれのプロモーターも本発明に
適しており、ウィルス性プロモーター、細菌性プロモーター、動物プロモーター、哺乳類
プロモーター、合成プロモーター、恒常的プロモーター、組織特異的プロモーター、発生
特異的プロモーター、誘導性プロモーター、光調節性プロモーター；ＣＹＣ１、ＨＩＳ３
、ＧＡＬ１、ＧＡＬ４、ＧＡＬ１０、ＡＤＨ１、ＰＧＫ、ＰＨＯ５、ＧＡＰＤＨ、ＡＤＣ
１、ＴＲＰ１、ＵＲＡ３、ＬＥＵ２、ＥＮＯ、ＴＰＩ、アルカリホスファターゼプロモー
ター（サッカロミセス属における発現に有用）；ＡＯＸ１プロモーター（ピキア属におけ
る発現に有用）；β−ラクタマーゼ、ｌａｃ、ａｒａ、ｔｅｔ、ｔｒｐ、ＩＰＬ、ＩＰＲ
、Ｔ７、ｔａｃ、およびｔｒｃプロモーター（大腸菌における発現に有効）；光調節性−
、種子特異的−、花粉特異的−、卵巣特異的−、病原性または疾患関連−、カリフラワー
モザイクウィルス３５Ｓ、ＣＭＶ３５Ｓ最小、ｃａｓｓａｖａ ｖｅｉｎ ｍｏｓａｉｃ
ｖｉｒｕｓ（ＣｓＶＭＶ）、葉緑素ａ／ｂ結合タンパク質、リブロース１，５−二リン
酸カルボキシラーゼ、苗条特異的、根特異的、キチナーゼ、ストレス誘導性、ｒｉｃｅ
ｔｕｎｇｒｏ ｂａｃｉｌｌｉｆｏｒｍ ｖｉｒｕｓ、植物スーパープロモーター、ジャ
ガイモロイシンアミノペプチダーゼ、硝酸還元酵素、マンノピン合成酵素、ノパリン合成
酵素、ユビキチン、ゼインタンパク質、およびアントシアニンプロモーター（植物細胞に
おける発現に有効）；ＳＶ４０初期（ＳＶ４０ｅ）プロモーター領域、ラウス肉腫ウィル
ス（ＲＳＶ）の３’末端反復配列（ＬＴＲ）に含まれるプロモーター、アデノウィルス（
Ａｄ）のＥ１Ａまたは主要後期プロモーター（ＭＬＰ）遺伝子のプロモーター、サイトメ
ガロウィルス（ＣＭＶ）初期プロモーター、単純ヘルペスウィルス（ＨＳＶ）チミジンキ
ナーゼ（ＴＫ）プロモーター、バキュロウィルスＩＥ１プロモーター、伸長因子１アルフ
ァ（ＥＦ１）プロモーター、ホスホグリセリン酸キナーゼ（ＰＧＫ）プロモーター、ユビ
キチン（Ｕｂｃ）プロモーター、アルブミンプロモーター、マウスメタロチオネイン−Ｌ
プロモーターおよび転写制御領域、遍在性プロモーター（ＨＰＲＴ、ビメンチン、α−ア
クチン、チューブリンなど）、中間径フィラメント（デスミン、神経フィラメント、ケラ
チン、ＧＦＡＰなど）のプロモーター、治療的遺伝子のプロモーター（ＭＤＲ、ＣＦＴＲ
または第ＶＩＩＩ型因子などの）、病原性または疾患関連プロモーター、および膵臓の腺
房細胞内で活性があるエラスターゼＩ遺伝子制御領域のような、組織特異性を示し、かつ
トランスジェニック動物において利用されているプロモーターを含むがこれらに限定され
ない、公知の動物および哺乳類プロモーター；膵臓のベータ細胞内で活性があるインスリ
ン遺伝子制御領域、リンパ系細胞内で活性がある免疫グロブリン遺伝子制御領域、精巣、
乳房、リンパ系およびマスト細胞内で活性があるマウス乳癌ウィルス制御領域；アルブミ
ン遺伝子、肝臓において活性があるＡｐｏＡＩおよびＡｐｏＡｌｌ制御領域、肝臓におい
て活性があるアルファ−フェトタンパク質遺伝子制御領域、肝臓において活性があるアル
ファ１−抗トリプシン遺伝子制御領域、骨髄系細胞において活性があるベータ−グロビン
遺伝子制御領域、脳の乏突起膠細胞において活性があるミエリン塩基性タンパク質遺伝子
制御領域、骨格筋において活性があるミオシン軽鎖−２遺伝子制御領域、および視床下部
において活性がある性腺刺激ホルモン放出ホルモン遺伝子制御領域、ピルビン酸キナーゼ
プロモーター、ビリンプロモーター、脂肪酸結合腸管タンパク質のプロモーター、平滑筋
細胞α−アクチンのプロモーターなどが含まれるが、これらに限定されない。加えて、こ
れらの発現配列はエンハンサーまたは調節性配列などの追加により改変されてよい。
ベクターは当該技術分野において公知の方法、例えばトランスフェクション、エレクト
ロポレーション、微量注入、形質導入、細胞融合、ＤＥＡＥデキストラン、リン酸カルシ
ウム沈殿、リポフェクション（リソソーム融合）、遺伝子銃の使用、またはＤＮＡベクタ
ー輸送体によって望まれるホスト細胞へ導入されてよい（例えば、Ｗｕ ｅｔ ａｌ，Ｊ
．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６７：９６３−９６７（１９９２）；Ｗｕ ｅｔ ａｌ，Ｊ．
Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６３：１４６２１−１４６２４（１９８８）；および １９９０
年３月１５日に提出された、Ｈａｒｔｍｕｔ ｅｔ ａｌ，カナダ特許出願第２，０１２
，３１１号を参照のこと）。
本発明のポリヌクレオチドはまた、リポフェクションによりｉｎ ｖｉｖｏで導入する
こともできる。過去十年間に、核酸のｉｎ ｖｉｔｒｏでの被包およびトランスフェクシ
ョンのためのリポソームの使用が増大してきた。リポソームを介したトランスフェクショ
ンによって遭遇する困難および危険を制限するために設計された合成陽イオン性脂質が、
マーカーをコードする遺伝子のｉｎ ｖｉｖｏトランスフェクションのためのリポソーム
の調製に使用できる（Ｆｅｌｇｎｅｒ ｅｔ ａｌ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓ
ｃｉ．ＵＳＡ．８４：７４１３（１９８７）；Ｍａｃｋｅｙ ｅｔ ａｌ，Ｐｒｏｃ．Ｎ
ａｔｌ．Ａｃａｄ．ＳｃＬ ＵＳＡ ８５：８０２７−８０３１（１９８８）；および
Ｕｌｍｅｒ ｅｔ ａｌ，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２５９：１７４５−１７４８（１９９３））
。陽イオン性脂質の使用は、陰性に荷電した核酸の被包を促進する可能性があり、かつ陰
性に荷電した細胞膜との融合も促進する（Ｆｅｌｇｎｅｒ ｅｔ ａｌ，Ｓｃｉｅｎｃｅ
３３７：３８７−３８８（１９８９））。核酸の移入のために特に有用な脂質化合物お
よび組成物は、国際公開第９５／１８８６３号、国際公開第９６／１７８２３号および米
国特許第５，４５９，１２７号に記載されている。外因性遺伝子をｉｎ ｖｉｖｏで特定
の臓器へ導入するためのリポフェクションの使用は、確実な実用的利点をもつ。リポソー
ムの特定の細胞への分子ターゲティングは利点の一領域を表す。膵臓、肝臓、腎臓、およ
び脳のような細胞の不均一性をもつ組織において、トランスフェクションを特定の細胞型
へ方向付けることが特に好ましいであろうことは明らかである。脂質はターゲティングの
目的のため、その他の分子に化学的に結合されてよい（上記、Ｍａｃｋｅｙ ｅｔ ａｌ
．１９８８）。標的にされたペプチド、例えばホルモンまたは神経伝達物質、および抗体
のようなタンパク質、あるいは非ペプチド分子はリポソームへ化学的に結合されてよい。
陽イオン性オリゴペプチド（国際公開第９５／２１９３１号）、ＤＮＡ結合タンパク質
由来のペプチド（国際公開第９６／２５５０８号）、または陽イオン性重合体（国際公開
第９５／２１９３１号）のようなその他の分子もまた、ｉｎ ｖｉｖｏでの核酸のトラン
スフェクションの促進に有用である。
ベクターをネイキッドＤＮＡプラスミドとしてｉｎ ｖｉｖｏで導入することも可能で
ある（米国特許第５，６９３，６２２号、第５，５８９，４６６号および第５，５８０，
８５９号を参照のこと）。受容体を介したＤＮＡ送達アプローチもまた使用できる（Ｃｕ
ｒｉｅｌ ｅｔ ａｌ，Ｈｕｍ．Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．３：１４７−１５４（１９９２）
；および Ｗｕ ｅｔ ａｌ，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６２：４４２９−４４３２（
１９８７））。
「トランスフェクション」との語は、細胞による外因性もしくは異種性のＲＮＡまたは
ＤＮＡの取り込みに関する。細胞は、外因性もしくは異種性のＲＮＡまたはＤＮＡを、こ
のようなＲＮＡまたはＤＮＡが細胞の内部に導入されたとき、「トランスフェクト」され
ている。細胞は、トランスフェクトされたＲＮＡまたはＤＮＡが表現型の変化をもたらす
とき、外因性もしくは異種性のＲＮＡまたはＤＮＡによって「形質転換」されている。形
質転換するＲＮＡまたはＤＮＡは、細胞のゲノムを作り上げる染色体ＤＮＡ内へ統合（共
有結合）できる。
「形質転換」は、遺伝的に安定な遺伝形質をもたらす、ホスト生物のゲノム内への核酸
断片の移入に関する。形質転換核酸断片を含むホスト生物は、「トランスジェニック」ま
たは「組み換え」または「形質転換」生物と称される。
さらに、本発明のポリヌクレオチドを含む組み換えベクターは、その増幅またはその発
現が求められる細胞ホストにおける１以上の複製開始点、マーカー、または選択マーカー
を含んでよい。
「選択マーカー」との語は、同定因子、通常は抗生剤、または化学薬品抵抗性遺伝子に
関する。選択マーカーはマーカー遺伝子の効果、すなわち抗生剤に対する抵抗性、除草剤
に対する抵抗性、比色マーカー、酵素、蛍光マーカーなどに基づいて選択可能であり、こ
こで該効果は、所望の核酸の遺伝形質の追跡および／または所望の核酸を受け継いだ
細胞もしくは生物の同定のために用いられる。当該技術分野において公知かつ用いられて
いる選択マーカー遺伝子の例は、アンピシリン、ストレプトマイシン、ゲンタマイシン、
カナマイシン、ハイグロマイシン、ビアラホス除草剤、スルホンアミドなどに対する抵抗
性を提供する遺伝子；および表現型のマーカーとして用いられる遺伝子、すなわちアント
シアニン調節性遺伝子、イソペンタニル転移酵素遺伝子などを含む。
「レポーター遺伝子」との語は、レポーター遺伝子の効果に基づいて同定可能な同定因
子をコードする核酸に関する。
ここで該効果は、所望の核酸を受け継いだ細胞もしくは
生物の同定のための、所望の核酸の遺伝形質の追跡および／または遺伝子発現誘導また
は転写の測定に用いられる。当該技術分野において公知かつ用いられているレポーター遺
伝子の例は、ルシフェラーゼ（Ｌｕｃ）、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）、クロラムフェ
ニコールアセチル基転移酵素（ＣＡＴ）、β−ガラクトシダーゼ（ＬａｃＺ）、β−グル
クロニダーゼ（Ｇｕｓ）などを含む。選択マーカー遺伝子もまた、レポーター遺伝子とみ
なされてよい。
「プロモーター」および「プロモーター配列」は互換的に用いられ、コード配列または
機能的ＲＮＡの発現を制御できるＤＮＡ配列に関する。一般に、コード配列はプロモータ
ー配列に対して３’に位置する。プロモーターはその全体が天然遺伝子由来であってよい
か、または天然に見出される異なるプロモーター由来の異なるエレメントから構成されて
よいか、もしくは合成ＤＮＡセグメントさえも含んでよい。当業者は、異なるプロモータ
ーは異なる組織もしくは細胞型において、または発生の異なる段階において、または異な
る環境的もしくは生理的条件への反応において遺伝子発現を導いてよいことを理解する。
遺伝子をほとんどの細胞型においてほとんどの時点に発現させるプロモーターは、一般に
「恒常的プロモーター」と称される。遺伝子を特定の細胞型において発現させるプロモー
ターは、一般に「細胞特異的プロモーター」または「組織特異的プロモーター」と称され
る。遺伝子を発生または細胞分化の特定の段階において発現させるプロモーターは、一般
に「発生特異的プロモーター」または「細胞分化特異的プロモーター」と称される。細胞
の、プロモーターを誘導する薬剤、生物学的分子、化学薬品、リガンド、光などへの曝露
またはそれらによる処置後に誘導されかつ遺伝子を発現させるプロモーターは、一般に「
誘導性プロモーター」または「調節性プロモーター」と称される。ほとんどの場合、調節
性配列の正確な境界は完全に定義されないことから、異なる長さのＤＮＡ断片は同等のプ
ロモーター活性を有してよいことがさらに認識される。
プロモーター配列は、典型的にはその３’末端が転写開始部位付近に隣接し、バックグ
ラウンドを超えて検出可能なレベルで転写を開始するために必要な最小数の塩基またはエ
レメントを含むために上流（５’方向）へと伸展する。プロモーター配列の中には転写開
始部位（都合よくは、例えばＳ１ヌクレアーゼによるマッピングにより定義される）、同
様にＲＮＡポリメラーゼの結合に関与するタンパク質結合ドメイン（コンセンサス配列）
が見出され得る。
コード配列は、ＲＮＡポリメラーゼがコード配列をｍＲＮＡへ転写し、ｍＲＮＡが転移
ＲＮＡによりスプライスされ（コード配列がイントロンを含む場合）、コード配列によっ
てコードされるタンパク質に翻訳されるときに、細胞内で転写および翻訳制御配列の「制
御下」にある。
「転写および翻訳制御配列」は、ホスト細胞内でコード配列を発現するために提供され
る、プロモーター、エンハンサー、転写終結区などのようなＤＮＡ調節性配列に関する。
「反応エレメント」との語は、転写因子のＤＮＡ結合ドメイン、例えば第１のハイブリ
ッドタンパク質のＤＮＡ結合ドメインとの相互作用を通して介される、プロモーターにお
ける反応性を与える１以上のシス作動性のＤＮＡエレメントに関する。このＤＮＡエレメ
ントは、その配列が回文構造（完全または不完全）であってよいか、または配列モチーフ
、もしくは不定数のヌクレオチドによって分離されるハーフサイトで構成されてよい。該
ハーフサイトは同様または同一であることができ、直接もしくは反転した反復として、ま
たは単一ハーフサイトもしくは直列に隣接するハーフサイトの多量体として配置できる。
反応エレメントは、該反応エレメントが取り込まれるであろう細胞または生物の性質に依
存して、異なる生物から分離された最小プロモーターを含んでよい。第１のハイブリッド
タンパク質のＤＮＡ結合ドメインは、リガンドの存在下または非存在下で反応エレメント
のＤＮＡ配列に結合し、この反応エレメントの制御下で下流遺伝子の転写を開始または抑
制する。天然エクジソン受容体の反応エレメントに対するＤＮＡ配列の例は、ＲＲＧＧ／
ＴＴＣＡＮＴＧＡＣ／ＡＣＹＹ（配列番号１６）（Ｃｈｅｒｂａｓ ｅｔ．ａｌ，Ｇｅｎ
ｅｓ Ｄｅｖ．５：１２０−１３１（１９９１）を参照）；ＡＧＧＴＣＡＮ（ｎ）ＡＧＧ
ＴＣＡ、ここでＮ（ｎ）は１以上のスペーサーヌクレオチドであり得る（配列番号１７）
（Ｄ’Ａｖｉｎｏ ｅｔ ａｌ，ＭｏＩ．Ｃｅｌｌ．Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ．１１３：１
−９（１９９５）を参照）；およびＧＧＧＴＴＧＡＡＴＧＡＡＴＴＴ（配列番号１８）（
Ａｎｔｏｎｉｅｗｓｋｉ ｅｔ ａｌ，ＭｏＩ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１４：４４６５−
４４７４（１９９４）を参照）を含む。
「機能的に連結した」との語は、一方の機能が他方によって影響される、単一核酸断片
における核酸配列の関連に関する。例えばプロモーターは、それがコード配列の発現に影
響するとき、該コード配列に機能的に連結する（すなわち、該コード配列は該プロモータ
ーの転写制御下にある）。コード配列は、センスまたはアンチセンス方向で調節性配列へ
機能的に連結できる。
ここで用いられる「発現」との語は、転写、ならびに核酸もしくはポリヌクレオチド由
来のセンス（ｍＲＮＡ）またはアンチセンスＲＮＡの安定な蓄積に関する。発現はまた、
ｍＲＮＡのタンパク質またはポリペプチドへの翻訳にも関し得る。
「カセット」、「発現カセット」および「遺伝子発現カセット」の語は、特定の制限酵
素部位において、または相同性組み換えによって、核酸またはポリヌクレオチドへ挿入で
きるＤＮＡのセグメントに関する。ＤＮＡのセグメントは所望のポリペプチドをコード
するポリヌクレオチドを含み、カセットおよび制限酵素部位は、転写および翻訳に適切な
読み枠でカセットの挿入を確実にするよう設計される。「形質転換カセット」は、所望の
ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含み、かつ該ポリヌクレオチドに加え、
特定のホスト細胞の形質転換を促進するエレメントを有する特定のベクターに関する。本
発明のカセット、発現カセット、遺伝子発現カセット、および形質転換カセットはまた、
所望のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドのホスト細胞内での増強された発現
を可能にするエレメントも含んでよい。これらのエレメントは、プロモーター、最小プロ
モーター、エンハンサー、反応エレメント、転写終結区配列、ポリアデニル化配列などを
含んでよいが、これらに限定されない。
本発明の目的のための「遺伝子スイッチ」との語は、プロモーターに会合する反応エレ
メントと、反応エレメントおよびプロモーターが取り込まれる遺伝子の発現を調節する１
以上のリガンドの存在下でのＥｃＲに基づくシステムとの組み合わせに関する。
「調節する（ｍｏｄｕｌａｔｅおよびｍｏｄｕｌａｔｅｓ）」との語は、タンパク質も
しくはポリペプチド産生の誘導、減少、または阻害をそれぞれもたらす、核酸もしくは遺
伝子発現を誘導する、減少させる、または阻害することを意味する。
本発明のプラスミドまたはベクターは、ホスト細胞内での遺伝子発現の駆動に適切な少
なくとも１のプロモーターをさらに含んでよい。
本発明の実施形態において用いられてよいエンハンサーは、ＳＶ４０エンハンサー、サ
イトメガロウィルス（ＣＭＶ）エンハンサー、伸長因子１（ＥＦ１）エンハンサー、酵母
エンハンサー、ウィルス遺伝子エンハンサーなどを含むが、これらに限定されない。
終結制御領域、すなわち転写終結区またはポリアデニル化配列もまた、好ましいホスト
にとって自然である様々な遺伝子由来であってよい。選択肢として、転写終結区部位は必
要ではないかもしれないが、含まれることが最も好ましい。本発明の一実施形態によれば
、終結制御領域は、合成配列、合成ポリアデニル化シグナル、ＳＶ４０後期ポリアデニル
化シグナル、ＳＶ４０ポリアデニル化シグナル、ウシ成長ホルモン（ＢＧＨ）ポリアデニ
ル化シグナル、ウィルス性転写終結区配列などから構成されてよいか、またはこれら由来
であってよい。
「３’非コード配列」または「３’非翻訳領域（ＵＴＲ）」との語は、コード配列の下
流（３’）に位置するＤＮＡ配列に関し、ポリアデニル化［ポリ（Ａ）］認識配列、およ
びｍＲＮＡプロセシングもしくは遺伝子発現に影響可能な調節性シグナルをコードするそ
の他の配列を含んでよい。ポリアデニル化シグナルは通常、ｍＲＮＡ前駆体の３’末端の
ポリアデニル酸路の付加への影響により特徴付けられる。
「調節性領域」は、第２の核酸配列の発現を調節する核酸配列に関する。調節性領域は
、特定の核酸（相同性領域）の発現に必然的に関連する配列を含んでよいか、または異な
るタンパク質もしくは合成タンパク質（異種性領域）の発現までにも関連する異なる起源
の配列を含んでよい。特に配列は、特異的もしくは非特異的な様式、および誘導性もしく
は非誘導性の様式において遺伝子の転写を刺激または抑制する、原核細胞、真核細胞、も
しくはウィルス性遺伝子の配列、または派生配列であることができる。調節性領域は、複
製開始点、ＲＮＡスプライス部位、プロモーター、エンハンサー、転写終結配列、および
ポリペプチドを標的細胞の分泌経路へ導くシグナル配列を含む。
「異種性の源」由来の調節性領域は、発現した核酸に自然には会合しない調節性領域に
関する。異種性の源のうちに含まれるものは、異なる種由来の調節性領域、異なる遺伝子
由来の調節性領域、ハイブリッド調節性配列、および自然発生しないが、当業者により設
計される調節性配列である。
「ＲＮＡ転写」は、ＤＮＡ配列のＲＮＡポリメラーゼにより触媒される転写からもたら
される産物に関する。ＲＮＡ転写物がＤＮＡ配列の完全な相補的コピーであるとき、それ
は第１の転写物とみなされるか、または成熟ＲＮＡとみなされる、第１の転写物の転写後
のプロセシング由来のＲＮＡ配列である可能性がある。「メッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮ
Ａ）」は、イントロンをもたず、かつ細胞によってタンパク質へ翻訳できるＲＮＡに関す
る。「ｃＤＮＡ」は、ｍＲＮＡに相補的であり、かつｍＲＮＡに由来する二重鎖ＤＮＡに
関する。「センス」ＲＮＡは、細胞によってタンパク質へ翻訳できる、ｍＲＮＡを含むＲ
ＮＡ転写物に関する。「アンチセンスＲＮＡ」は、標的となる第１の転写物もしくはｍＲ
ＮＡの全体または部分に相補的であり、かつ標的遺伝子の発現を遮断するＲＮＡ転写物に
関する。アンチセンスＲＮＡの相補性は、特定の遺伝子転写物のいずれの部分、すなわち
５’非コード配列、３’非コード配列、またはコード配列にもあってよい。「機能的ＲＮ
Ａ」は、アンチセンスＲＮＡ、リボザイムＲＮＡ、またはまだ翻訳されていない、細胞の
作用における効果を有するその他のＲＮＡに関する。
「ポリペプチド」、「ペプチド」、および「タンパク質」は互換的に用いられ、共有結
合したアミノ酸残基により構成される重合化合物に関する。アミノ酸は以下の一般的構造
を有する。
「単離されたポリペプチド」、「単離されたペプチド」、または「単離されたタンパク
質」は、自然な状態において普通はそれらと会合する化合物（例えばその他のタンパク質
またはポリペプチド、核酸、炭水化物、脂質）を実質的に含まないポリペプチドまたはタ
ンパク質に関する。「単離された」とは、その他の化合物との人工的もしくは合成混合物
、あるいは生物学的活性を妨害しない不純物の存在、および例えば不完全な精製、安定剤
の添加、もしくは薬理学的に許容される製剤への調合により存在し得る不純物を除外する
ことを意味しない。
「置換変異体ポリペプチド」または「置換変異体」は、少なくとも１の野生型もしくは
自然発生アミノ酸の、野生型もしくは自然発生ポリペプチドに比較して異なるアミノ酸に
よる置換を含む変異体ポリペプチドを意味することが理解されるであろう。置換変異体ポ
リペプチドは、野生型もしくは自然発生アミノ酸の置換を１のみ含んでよく、「点変異体
」または「単一点変異体」と称されてよい。あるいは、置換変異体ポリペプチドは、２以
上の野生型もしくは自然発生アミノ酸の、野生型もしくは自然発生ポリペプチドに比較し
た２以上のアミノ酸による置換を含む。本発明によれば、置換変異を含むグループＨ核内
受容体リガンド結合ドメインポリペプチドは、少なくとも１の野生型もしくは自然発生ア
ミノ酸の、野生型もしくは自然発生グループＨ核内受容体リガンド結合ドメインポリペプ
チドに比較して異なるアミノ酸による置換を含む。
ここで置換変異体ポリペプチドは、２以上の野生型もしくは自然発生アミノ酸の置換を
含み、この置換は、該置換のために欠失した野生型もしくは自然発生アミノ酸と同数、す
なわち２の野生型もしくは自然発生アミノ酸が２の非野生型もしくは非自然発生アミノ酸
により交換されるか、あるいは該置換のために欠失した野生型アミノ酸と同数ではない、
すなわち２の野生型アミノ酸が１の非野生型アミノ酸により交換されるか（置換＋欠失変
異）、または２の野生型アミノ酸が３の非野生型アミノ酸により交換されるか（置換＋挿
入変異）のいずれかを含んでよい。
置換変異体は、アミノ酸残基、および参照ポリペプチド配列内で交換された数、および
新規の置換されたアミノ酸残基を示すため、省略された命名法を用いて記述されてよい。
例えば、ポリペプチドの２０番目のアミノ酸残基が置換された置換変異体は、「ｘ２０ｚ
」と略されてよく、ここで「ｘ」は置換されるアミノ酸を表す。「２０」はポリペプチド
内でのアミノ酸残基の位置または番号を表し、「ｚ」は新規に置換したアミノ酸を表す。
従って、「Ｅ２０Ａ」または「Ｇｌｕ２０Ａｌａ」として互換的に略される置換変異体は
、ポリペプチドの位置２０において、グルタミン酸（当該技術分野において、一般に「Ｅ
」または「Ｇｌｕ」と略される）の代わりにアラニン（当該技術分野において、一般に「
Ａ」または「Ａｌａ」と略される）残基を含むことを示す。
置換変異は、ｉｎ ｖｉｔｒｏ部位特異的突然変異誘発（Ｈｕｔｃｈｉｎｓｏｎ ｅｔ
ａｌ，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５３：６５５１（１９７８）；Ｚｏｌｌｅｒ ｅｔ
ａｌ，ＤＮＡ ３：４７９−４８８（１９８４）；Ｏｌｉｐｈａｎｔ ｅｔ ａｌ，Ｇ
ｅｎｅ ４４：１７７（１９８６）；Ｈｕｔｃｈｉｎｓｏｎ ｅｔ ａｌ，Ｐｒｏｃ．Ｎ
ａｔｌ Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８３：７１０（１９８６））、ＴＡＢ（登録商標）
リンカー（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）の使用、制限酵素消化／断片の欠失および置換、ＰＣＲ
を介する／オリゴヌクレオチド−定方向突然変異誘発などを含むがこれらに限定されない
、公知の突然変異誘発技術のいずれかを用いて作られてよい。ＰＣＲに基づく技術は、部
位特異的突然変異誘発が好ましい（ＰＣＲ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ： Ｐｒｉｎｃｉｐｌ
ｅｓ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｆｏｒ ＤＮＡ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏ
ｎ，Ｈ．Ｅｒｌｉｃｈ，ｅｄ．，Ｓｔｏｃｋｔｏｎ Ｐｒｅｓｓ，Ｃｈａｐｔｅｒ ６，
ｐｐ．６１−７０中の、Ｈｉｇｕｃｈｉ，１９８９，“Ｕｓｉｎｇ ＰＣＲ ｔｏ Ｅｎ
ｇｉｎｅｅｒ ＤＮＡ”を参照のこと）。
本発明のポリペプチドの「断片」は、アミノ酸配列が参照ポリペプチドのそれよりも短
く、全体の部分にわたって参照ポリペプチドと同一のアミノ酸配列を含むポリペプチドに
関する。このような断片は適切な場合、それが一部である、より大きなポリペプチド内に
含まれる。本発明のポリペプチドのこのような断片は、少なくとも２、３、４、５、６、
８、１０、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２５、２６
、３０、３５、４０、４５、５０、１００、２００、２４０、または３００の長さのアミ
ノ酸を有してよい。
ポリペプチドまたはタンパク質の「バリアント」は、ポリペプチドまたはタンパク質か
ら由来し、該ポリペプチドまたはタンパク質の少なくとも１の生物学的性質を保持する類
似体、断片、派生物、または変異体のいずれにも関する。ポリペプチドまたはタンパク質
の異なるバリアントは、天然に存在し得る。このようなバリアントは、タンパク質をコー
ドする構造遺伝子のヌクレオチド配列の違いにより特徴付けられる対立遺伝子変異であっ
てよいか、または異なるスプライシングもしくは後翻訳修飾に関連してよい。当業者は、
単一もしくは複数のアミノ酸の置換、欠失、付加、または交換を有するバリアントを産生
できる。これらのバリアントはとりわけ、（ａ）１以上のアミノ酸残基が、保存された、
または保存されていないアミノ酸により置換されるバリアント、（ｂ）１以上のアミノ酸
が、ポリペプチドまたはタンパク質に付加されるバリアント、（ｃ）１以上のアミノ酸が
置換基を含むバリアント、および（ｄ）ポリペプチドまたはタンパク質が、血清アルブミ
ンのような別のポリペプチドと融合するバリアントを含んでよい。これらのバリアントを
得るための、遺伝学的（抑制、欠失、突然変異など）、化学的、および酵素的技術を含む
技術は当業者に公知である。バリアントポリペプチドは、好ましくは少なくとも約１４ア
ミノ酸を含む。
「相同性」との語は、２つのポリヌクレオチドまたは２つのポリヌクレオチド部分の間
での同一性のパーセントに関する。一部分からの配列の他方への対応は、公知の技術によ
り決定できる。例えば相同性は、配列情報を整列し、かつ容易に入手可能なコンピュータ
プログラムを用いることによる、２つのポリペプチド分子間の配列情報の直接比較によっ
て決定できる。あるいは相同性は、相同領域間で安定な二本鎖を形成する条件下でのポリ
ヌクレオチドのハイブリダイゼーション、それに続く単鎖特異的ヌクレアーゼによる消化
および消化された断片のサイズ決定により決定できる。
ここで、その全ての文法型およびつづりの変化において用いられる「相同的」との語は
、スーパーファミリー（例えば、免疫グロブリンスーパーファミリー）由来のタンパク質
、および異なる種由来の相同的なタンパク質（ミオシン軽鎖など）を含む、「共通の進化
的起源」をもつタンパク質間の関連性に関する（Ｒｅｅｃｋ ｅｔ ａｌ，Ｃｅｌｌ ５
０：６６７（１９８７））。このようなタンパク質（およびそれらをコードする遺伝子）
は、それらの高度な配列類似性の反映としての配列相同性を有する。しかしながら、一般
的な用法および本出願における「相同的」との語は、「高度に」のような副詞で修飾され
るときには配列類似性に関するのであって、共通の進化的起源に関するのではない可能性
がある。
従って、その全ての文法型において用いられる「配列類似性」との語は、共通の進化的
起源を共有し得るかまたはし得ない、核酸もしくはタンパク質のアミノ酸配列の間の同一
性または対応の程度に関する（Ｒｅｅｃｋ ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ ５０：６６７（１
９８７）を参照のこと）。一実施形態によれば、２つのＤＮＡ配列は、該ＤＮＡ配列の規
定された長さにわたって少なくとも約５０％（好ましくは少なくとも約７５％、および最
も好ましくは少なくとも約９０もしくは９５％）のヌクレオチドが一致するとき、「実質
的に相同的」または「実質的に類似」である。実質的に相同な配列は、配列データバンク
において入手可能な標準ソフトウェアを用いて、または例えばこの特定のシステムのため
に規定されたストリンジェントな条件下でのサザンハイブリダイゼーション実験において
、配列を比較することにより同定できる。適切なハイブリダイゼーション条件を規定する
ことは当該技術分野の範囲内である（例えば前記のＳａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ，１９
８９を参照のこと）。
ここで用いられる「実質的に類似」は、１以上のヌクレオチド塩基の変化が１以上のア
ミノ酸の置換をもたらすが、ＤＮＡ配列によってコードされるタンパク質の機能的性質に
は影響しない核酸断片に関する。「実質的に類似」はまた、１以上のヌクレオチド塩基の
変化が、アンチセンスまたはコサプレッション技術による遺伝子発現の変化を仲介するた
めの核酸断片の能力に影響しない核酸断片にも関する。「実質的に類似」はまた、得られ
る転写物の機能的性質に実質的に影響しない１以上のヌクレオチド塩基の欠失または挿入
のような、本発明の核酸断片の修飾にも関する。それ故、本発明は特定の例となる配列以
上を包含することが理解される。提唱された修飾のそれぞれは、コードされる産物の生物
学的活性の保持の判定のように、十分に当該技術分野の日常的な技術の範囲内である。
さらに当業者は、本発明に包含される実質的に類似の配列はまた、ストリンジェントな
条件下で（０．１ＸＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、６５℃、および２ＸＳＳＣ、０．１％ＳＤ
Ｓに続く０．１ＸＳＳＣ、０．１％ＳＤＳによる洗浄）ここに例示される配列とハイブリ
ダイズするそれらの能力によって定義されることも認識する。本発明の実質的に類似の核
酸断片は、そのＤＮＡ配列がここに報告される核酸断片のＤＮＡ配列と少なくとも７０％
同一な核酸断片である。本発明の核酸断片は、そのＤＮＡ配列がここに報告される核酸断
片のＤＮＡ配列と少なくとも８０％同一な核酸断片を含む。その他の核酸断片は、ここに
報告される核酸断片のＤＮＡ配列と少なくとも９０％同一である。その他の核酸断片は、
ここに報告される核酸断片のＤＮＡ配列と少なくとも９５％同一である。
２つのアミノ酸配列は、約４０％を超えるアミノ酸が一致するか、または６０％を超え
て類似するとき、「実質的に相同的」または「実質的に類似」である。好ましくは、類似
または相同的な配列は、例えばＧＣＧ（Ｇｅｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｍｐｕｔｅｒ Ｇｒｏｕ
ｐ、ＧＣＧパッケージ、バージョン７のプログラムマニュアル、マディソン、ウィスコン
シン）パイルアッププログラムを用いたアラインメントにより同定される。
ここで用いられる「相当する」との語は、類似性または相同性が測定される分子からの
正確な位置が同一かまたは異なるかについての、類似または相同的な配列に関する。核酸
またはアミノ酸配列アラインメントはスペースを含んでよい。従って、「相当する」との
語は配列類似性に関し、アミノ酸残基またはヌクレオチド塩基の番号付けに関するもので
はない。
アミノ酸またはヌクレオチド配列の「実質的な一部」は、当業者による手動での配列の
評価、またはＢＬＡＳＴ（Ｂａｓｉｃ Ｌｏｃａｌ Ａｌｉｇｎｍｅｎｔ Ｓｅａｒｃｈ
Ｔｏｏｌ； Ａｌｔｓｃｈｕｌ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５：４０
３−４１０（１９９３）；ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ＢＬＡＳＴ／も
参照のこと）のようなアルゴリズムを用いたコンピュータ自動配列比較および同定のいず
れかによってポリペプチドまたは遺伝子を推定的に同定するために、十分なポリペプチド
のアミノ酸配列または遺伝子のヌクレオチド配列を含む。一般に、既知のタンパク質また
は遺伝子に相同的なポリペプチドまたは核酸配列を推定的に同定するためには、１０以上
の近接するアミノ酸または３０以上のヌクレオチドの配列が必要である。さらにヌクレオ
チド配列に関しては、２０〜３０の近接したヌクレオチドを含む遺伝子特異的なオリゴヌ
クレオチドプローブが、遺伝子同定（例えばサザンハイブリダイゼーション）および単離
（例えば細菌コロニーまたはバクテリオファージプラークのｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイ
ゼーション）の配列依存性方法において用いられてよい。加えて、プライマーを含む特定
の核酸断片を得るために、ＰＣＲにおいて１２〜１５塩基の短いオリゴヌクレオチドが増
幅プライマーとして用いられてよい。従って、ヌクレオチド配列の「実質的な一部」は、
該配列を含む核酸断片を特異的に同定および／または単離するために十分な配列を含む。
当該技術分野において公知の「パーセント同一性」との語は、配列の比較によって決定
された、２以上のポリペプチド配列または２以上のポリヌクレオチド配列の間の関連性で
ある。当該技術分野において「同一性」はまた、これら配列のひと続きの間の一致によっ
て決定された可能性がある事例として、ポリペプチドまたはポリヌクレオチド配列間の配
列関連性の程度も意味する。「同一性」および「類似性」は、Ｃｏｍｐｕｔａｔｉｏｎａ
ｌ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ （Ｌｅｓｋ，Ａ．Ｍ．，ｅｄ．）Ｏｘｆｏｒ
ｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８８）；Ｂｉｏｃｏｍ
ｐｕｔｉｎｇ：Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ ａｎｄ Ｇｅｎｏｍｅ Ｐｒｏｊｅｃｔｓ（Ｓ
ｍｉｔｈ，Ｄ．Ｗ．，ｅｄ．）Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９
９３）；Ｃｏｍｐｕｔｅｒ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ｄａｔａ，Ｐ
ａｒｔ Ｉ（Ｇｒｉｆｆｉｎ，Ａ．Ｍ．，ａｎｄ Ｇｒｉｆｆｉｎ，Ｈ．Ｇ．，ｅｄｓ．
）Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｊｅｒｓｅｙ（１９９４）；Ｓｅｑｕｅｎｃｅ
Ａｎａｌｙｓｉｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ（ｖｏｎ Ｈｅｉｎｊｅ
，Ｇ．，ｅｄ．）Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ（１９８７）；ａｎｄ Ｓｅｑｕｅｎｃ
ｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｐｒｉｍｅｒ（Ｇｒｉｂｓｋｏｖ，Ｍ．ａｎｄ Ｄｅｖｅｒｅｕ
ｘ，Ｊ．，ｅｄｓ．）Ｓｔｏｃｋｔｏｎ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ （１９９１）
に記載されるものを含むが、これらに限定されない公知の方法によって容易に算出できる
。同一性を決定するための方法は、試験される配列の間が最もよく一致するように設計さ
れる。同一性および類似性を決定するための方法は、公的に入手可能なコンピュータプロ
グラム内に体系化される。配列アラインメントおよびパーセント同一性の算出は、ＬＡＳ
ＥＲＧＥＮＥバイオインフォマティクスコンピューティングスイート（ＤＮＡＳＴＡＲ
Ｉｎｃ．、マディソン、ウィスコンシン）のＭｅｇａｌｉｇｎプログラムを用いて行われ
てよい。配列の複数のアラインメントは、初期設定のパラメーター（ＧＡＰ ＰＥＮＡＬ
ＴＹ＝１０、ＧＡＰ ＬＥＮＧＴＨ ＰＥＮＡＬＴＹ＝１０）によるアラインメントのＣ
ｌｕｓｔａｌ法（Ｈｉｇｇｉｎｓ ｅｔ ａｌ，ＣＡＢＩＯＳ．５：１５１−１５３（１
９８９））を用いて行なってよい。Ｃｌｕｓｔａｌ法を用いたペアワイズアラインメント
のための初期設定のパラメーターは、ＫＴＵＰＬＥ １、ＧＡＰ ＰＥＮＡＬＴＹ＝３、
ＷＩＮＤＯＷ＝５およびＤＩＡＧＯＮＡＬＳ ＳＡＶＥＤ＝５が選択されてよい。
「配列解析ソフトウェア」との語は、ヌクレオチドまたはアミノ酸配列の解析に有用な
、いずれのコンピュータアルゴリズムまたはソフトウェアプログラムにも関する。「配列
解析ソフトウェア」は、市販されるかまたは自主的に開発されてよい。代表的な配列解析
ソフトウェアは、プログラムのＧＣＧスイート（Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ Ｐａｃｋａｇｅ
Ｖｅｒｓｉｏｎ ９．０，Ｇｅｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｍｐｕｔｅｒ Ｇｒｏｕｐ （ＧＣＧ
）、マディソン、ウィスコンシン）、ＢＬＡＳＴＰ、ＢＬＡＳＴＮ、ＢＬＡＳＴＸ（Ａｌ
ｔｓｃｈｕｌ ｅｔ ａｌ，Ｊ．ＭｏＩ．Ｂｉｏｌ．２１５：４０３−４１０ （１９９
０））およびＤＮＡＳＴＡＲ（ＤＮＡＳＴＡＲ，Ｉｎｃ．１２２８サウスパークストリー
ト、マディソン、ウィスコンシン、５３７１５ 米国）を含む得るがこれらに限定されな
い。本出願の状況において、配列解析ソフトウェアは他に記載のない限り、解析結果がプ
ログラムの参照する「初期設定の値」に基づくであろう解析に使用されることが理解され
得る。ここで用いられる「初期設定の値」は、最初に初期化したときにソフトウェアによ
り本来ロードされる値またはパラメーターのいずれの設定も意味し得る。
ＤＮＡの配列に関連する「化学的に合成された」は、成分ヌクレオチドがｉｎ ｖｉｔ
ｒｏで構築されたことを意味する。ＤＮＡの手動での化学合成は、よく確立された方法を
用いて達成され得るか、または幾つかの市販の装置の一つを用いた自動化学合成を行なう
ことができる。従って遺伝子は、ホスト細胞のコドンバイアスを反映するヌクレオチド配
列の最適化に基づく、最適な遺伝子発現のために調整できる。当業者は、コドンの使用が
ホストに好ましいコドンへと偏っていれば、遺伝子発現は成功する可能性のあることを認
識する。好ましいコドンの決定は、配列情報が入手可能なホスト細胞由来の遺伝子の調査
に基づくことができる。
ここで用いられる、２以上の個々に機能的な遺伝子調節システムは、ａ）所定の各シス
テムの、それぞれのリガンドによる選択された濃度における調節が、そのシステムの遺伝
子発現の規模において測定可能な変化をもたらすとき、およびｂ）該変化が、細胞、組織
、または生物において同時に機能的なその他の全てのシステムの発現における変化に比べ
、実際の調節の同時性および連続性に関わりなく統計学的に有意に異なるとき、「直交性
」であると言える。好ましくは、個々に機能的な遺伝子調節システムそれぞれの調節は、
遺伝子発現において、細胞、組織、または生物におけるその他の全ての機能的システムに
比べ、少なくとも２倍大きな変化をもたらす。さらに好ましくは、該変化は少なくとも５
倍大きい。さらになお好ましくは、該変化は少なくとも１０倍大きい。さらに一層好まし
くは、該変化は少なくとも１００倍大きい。さらになお一層好ましくは、該変化は少なく
とも５００倍大きい。理想的には、所定の各システムの、それぞれのリガンドによる選択
された濃度における調節が、そのシステムの遺伝子発現の規模において測定可能な変化を
もたらし、かつ細胞、組織、または生物において機能的なその他の全てのシステムの発現
において測定可能な変化をもたらさない。このような事例において、複数の誘導性遺伝子
調節システムは「完全に直交性」であると言える。本発明は、ここにその全体が参照とし
て取り込まれる米国特許出願公開第２００２／０１１０８６１Ａ１号に記載されるような
、直交的リガンドおよび直交的受容体に基づく遺伝子発現システムの探索に有用である。
「調節する」との語は、外因性遺伝子のトランス活性化を誘導または抑制する所定のリ
ガンド／受容体複合体の能力を意味する。
「外因性遺伝子」との語は、被験体にとって外来性の遺伝子、すなわち形質転換過程、
内在性の突然変異遺伝子の非突然変異バージョン、または内在性の非突然変異遺伝子の突
然変異バージョンを通して被験体内へ導入された遺伝子を意味する。形質転換の方法は本
発明にとって決定的ではなく、当該技術分野において公知である、被験体に適切ないずれ
の方法も使用されてよい。例えば、トランスジェニック植物は形質転換細胞からの再生に
よって得られる。アグロバクテリウム・ツメファシエンスまたはそのＴｉプラスミドを用
いたアグロ感染、エレクトロポレーション、植物細胞およびプロトプラストの微量注入法
、ならびに微粒子形質転換のような、多数の形質転換方法が文献により知られている。動
物細胞の形質転換、およびこのような形質転換細胞のトランスジェニック動物における再
生のための相補的な技術が知られている。外因性遺伝子は天然もしくは合成遺伝子のいず
れかであることができ、かつ、ＤＮＡの媒介物を通して、例えば逆転写酵素により機能し
得る、ＤＮＡもしくはＲＮＡの形で被験体へ導入される治療的遺伝子であることができる
。このような遺伝子は標的細胞に導入でき、被験体へ直接導入でき、または形質転換細胞
、例えば自己細胞の移入により被験体へ間接的に導入できる。「治療的遺伝子」との語は
、このような遺伝子が発現するホスト細胞へ、有益な機能を分け与える遺伝子を意味する
。
「エクジソン受容体複合体」との語は、一般にステロイド受容体ファミリーの２つのメ
ンバーであるエクジソン受容体（「ＥｃＲ」）およびウルトラスピラクル（「ＵＳＰ」）
タンパク質からなるヘテロ二量体タンパク質複合体に関する（Ｙａｏ ｅｔ ａｌ，Ｎａ
ｔｕｒｅ ３６６：４７６−４７９（１９９３））；Ｙａｏ ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ
７１：６３−７２（１９９２）を参照のこと）。機能的なエクジステロイド受容体複合体
はまた、イムノフィリンのようなさらなるタンパク質も含んでよい。転写因子として知ら
れているステロイド受容体ファミリータンパク質のさらなるメンバー（例えば、ＤＨＲ３
８、ベータＦＴＺ−１またはその他の昆虫ホモログ）もまた、ＥｃＲおよび／またはＵＳ
Ｐのリガンド依存性または非依存性のパートナーであってよい。エクジソン受容体複合体
はまた、エクジソン受容体タンパク質と、ウルトラスピラクルタンパク質の脊椎動物ホモ
ログ、レチノイン酸−Ｘ−受容体（「ＲＸＲ」）タンパク質とのヘテロ二量体でもあり得
る。エクジソン受容体タンパク質またはＵＳＰのホモ二量体複合体もまた、ある状況下に
おいて機能的であり得る。
エクジステロイド受容体複合体は、ＥｃＲを含むが複合体のその他のタンパク質を排除
しない、複合体のタンパク質の一つに結合する、活性のあるエクジステロイドまたは非ス
テロイド性リガンドにより活性化できる。
エクジソン受容体複合体はステロイド受容体スーパーファミリーのメンバーであるタン
パク質を含み、ここでは全てのメンバーがアミノ末端トランス活性化ドメイン、ＤＮＡ結
合ドメイン（「ＤＢＤ」）、およびヒンジ領域によって分離されるリガンド結合ドメイン
（「ＬＢＤ」）の存在により特徴付けられる。該ファミリーの幾つかのメンバーはまた、
ＬＢＤのカルボキシ末端側に別のトランス活性化ドメインを有してよい。ＤＢＤは、２つ
のアミノ酸モチーフであるＰ−ボックスとＤ−ボックスの間の２つのシステインジンクフ
ィンガーの存在により特徴付けられ、これがエクジソン反応エレメントの特異性を与える
。これらのドメインは天然型、改変型、または異種性受容体タンパク質の異なるドメイン
のキメラのいずれかであってよい。
外因性遺伝子、反応エレメント、およびエクジソン受容体複合体を作り上げるＤＮＡ配
列は、古細菌、原核細胞、例えば大腸菌、枯草菌もしくはその他の腸内細菌、または真核
細胞、例えば植物もしくは動物細胞内へ取り込まれてよい。しかしながら、遺伝子により
発現される多数のタンパク質は、細菌においては不正確に処理されることから、真核細胞
が好ましい。細胞は単細胞または多細胞生物の形であってよい。外因性遺伝子、反応エレ
メント、および受容体複合体のヌクレオチド配列はまた、ＲＮＡ分子、好ましくはタバコ
モザイクウィルスのような機能的ウィルスＲＮＡの形で取り込まれ得る。真核細胞に関し
ては、脊椎動物細胞が、エクジソン受容体に対する本発明のリガンドへの反応を与える分
子を自然に欠いているため好ましい。結果として、それらは本発明のリガンドに対し「実
質的に非感受性」である。従って本発明のリガンドは、形質転換細胞または生物全体に、
無視できる程度の生理的またはその他の効果を有するであろう。従って細胞は、リガンド
それ自体の存在によって実質的に影響されることなく、増殖し、かつ望まれる産物を発現
できる。
「被験体」との語は、未変化の昆虫、植物、もしくは動物、または昆虫、植物もしくは
動物由来の細胞を意味する。リガンドは、被験体が真菌または酵母の場合にも十分同等に
作用するであろうことが予測される。被験体が未変化の動物であるとき、該動物は好まし
くは脊椎動物であり、最も好ましくは哺乳動物である。
本発明の式１で表されるジアシルヒドラジンリガンドおよび式２もしくは３で表される
キラルジアシルヒドラジンリガンドは、外因性遺伝子に連結する反応エレメントへ次々に
結合するエクジソン受容体複合体と共に用いられるとき、外因性遺伝子の発現の外部から
の時間的な調節手段を提供する。様々な成分が互いに結合する順番、すなわちリガンドか
ら受容体複合体へ、および受容体複合体から反応エレメントへ、は決定的ではない。典型
的には、外因性遺伝子の発現調節は、エクジソン受容体の特定のコントロール、または調
節性ＤＮＡエレメントへの結合に対する反応内にある。エクジソン受容体タンパク質は、
その他のステロイド受容体ファミリーメンバーのように少なくとも３つのドメイン、トラ
ンス活性化ドメイン、ＤＮＡ結合ドメイン、およびリガンド結合ドメインを有する。この
受容体はまた、ステロイド受容体ファミリーのサブセットのように、ヘテロ二量体化性質
の原因である、あまりよく定義されていない領域も有する。ＵＳＰまたはＲＸＲタンパク
質とのヘテロ二量体化の後の、エクジソン受容体タンパク質のリガンド結合ドメインへの
リガンドの結合は、活性型二量体タンパク質のＤＮＡ結合ドメインの、反応エレメントへ
の結合を可能にすることから、外来性遺伝子の発現または抑制がもたらされる。このメカ
ニズムは、ＥｃＲまたはＵＳＰのいずれかへのリガンド結合の可能性、および結果として
の、活性のあるホモ二量体複合体の形成（すなわち、ＥｃＲ＋ＥｃＲまたはＵＳＰ＋ＵＳ
Ｐ）を除外しない。好ましくは、キメラ遺伝子スイッチの産生のため、１以上の受容体ド
メインが異なり得る。典型的には、３つのドメインの１以上がその他のドメインの源とは
異なる源から選択されてよく、それによりキメラ受容体は選択されたホスト細胞または生
物におけるトランス活性化、リガンドの相補的結合、および特定の反応エレメントの認識
を最適化される。さらに、反応エレメントそれ自体は、酵母由来のＧＡＬ−４タンパク質
（Ｓａｄｏｗｓｋｉ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ ３３５：５６３−５６４ （１９
８８）を参照のこと）または大腸菌由来のＬｅｘＡタンパク質（Ｂｒｅｎｔ ｅｔ ａｌ
，Ｃｅｌｌ ４３：７２９−７３６（１９８５）を参照のこと）のような、その他のＤＮ
Ａ結合タンパク質ドメインに対する反応エレメントをキメラエクジソン受容体複合体へ適
合させることにより改変できる。キメラシステムのその他の利点は、望まれる最終的な結
果に従い、外因性遺伝子の駆動に使用されるプロモーターを選択できることである。この
ような二重の制御は、発現のタイミングと同様に発現が起こる細胞を制御できることから
、遺伝子治療の分野、特に細胞毒性タンパク質が産生される場合に特に重要である。適切
なプロモーターに機能的に連結した外因性遺伝子が被験体の細胞に導入されるとき、該外
因性遺伝子の発現は本発明のリガンドの存在により制御される。プロモーターは恒常的ま
たは誘導的に調節されてよいか、または組織特異的（すなわち、特定の型の細胞のみに発
現される）もしくは生物のある発生段階に特異的であってよい。
様々なポリペプチドをコードする多数のゲノムおよびｃＤＮＡ核酸配列が公知である。
本発明のリガンドに有用な外因性遺伝物質は、例えば、細胞から放出できる分泌タンパク
質；基質を毒性物質から無毒性物質へ、または非活性物質を活性物質へ代謝できる酵素；
細胞表面受容体などの、所望の生物学的に活性のあるタンパク質をコードする遺伝子を
含む。有用な遺伝子はまた、血液凝固因子、インスリン、副甲状腺ホルモン、黄体ホルモ
ン放出因子、アルファおよびベータ精液インヒビン、およびヒト成長ホルモンのようなホ
ルモンをコードする遺伝子；存在しないときに異常状態を発生させる酵素のようなタンパ
ク質をコードする遺伝子；インターフェロン、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子、
コロニー刺激因子１、腫瘍壊死因子、およびエリスロポエチンのような、サイトカインま
たはリンフォカインをコードする遺伝子；アルファ抗トリプシンのような阻害物質をコー
ドする遺伝子、ジフテリアおよびコレラ毒素のような薬剤として作用する物質をコードす
る遺伝子などを含む。有用な遺伝子はまた、癌治療および遺伝疾患の治療のために有用な
ものも含む。当業者は実質的に全ての既知遺伝子の核酸配列情報へのアクセスを有し、公
共のデポジトリー、配列を公表した施設から直接核酸分子を入手できるか、または該分子
を調製するための日常的な方法を利用できる。
一実施形態によれば外因性遺伝子は、ｅｘ ｖｉｖｏでアデノウィルスにより自己樹状
細胞へトランスフェクトされ、ＲｈｅｏＳｗｉｔｃｈ（商標）Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ
Ｓｙｓｔｅｍ（ＲＴＳ）の制御下にあるｈＩＬ−１２である。
遺伝子治療での使用のためには、ここに記載されるリガンドは単独、または薬理学的に
許容される担体を含む医薬組成物の一部として投与されてよい。一実施形態によれば、該
医薬組成物は液剤、懸濁剤、錠剤、カプセル剤、軟膏剤、エリキシル剤、または注射用組
成物の形にある。
薬理学的に許容される担体は、糖類、例えばラクトースもしくはシュクロース、マンニ
トールもしくはソルビトールのような賦形剤、セルロース製剤および／またはリン酸カル
シウム、例えばリン酸三カルシウムまたはリン酸水素カルシウム、同様に、例えばトウモ
ロコシ澱粉、小麦澱粉、米澱粉、ジャガイモ澱粉を用いた澱粉ペーストのような結合剤、
ゼラチン、トラガカント、メチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、カ
ルボキシメチルセルロースナトリウム、および／またはポリビニルピロリドンを含む。所
望であれば、上記の澱粉、同様にカルボキシメチル澱粉、架橋結合ポリビニルピロリドン
、寒天、またはアルギン酸もしくはアルギン酸ナトリウムのようなその塩、のような崩壊
剤が添加されてよい。助剤はフロー調節剤または潤滑剤、例えばシリカ、タルク、ステア
リン酸、またはステアリン酸マグネシウムもしくはステアリン酸カルシウムのようなその
塩、および／またはポリエチレングリコールである。一実施形態によれば、糖衣コアが適
切なコーティング（必要であれば胃液に抵抗性の）により提供される。この目的のため、
任意にアラビアゴム、タルク、ポリビニルピロリドン、ポリエチレングリコールおよび／
または二酸化チタン、ラッカー溶液および適切な有機溶媒または溶媒混合物を含む、濃縮
糖液が用いられてよい。胃液に抵抗性のコーティングを産生するために、アセチルセルロ
ースフタル酸塩またはヒドロキシプロピルメチルセルロースフタル酸塩のようなセルロー
ス製剤に適した溶液が用いられる。例えば識別のため、または活性化合物の投与量を特徴
付けるため、錠剤または糖衣コーティングに色素または顔料が添加されてよい。
経口で使用できるその他の医薬製剤は、ゼラチンで作られた押し込み型カプセル、同様
にゼラチンで作られた柔らかい密封されたカプセル、およびグリセロールまたはソルビト
ールのような可塑剤を含む。押し込み型カプセルは、ラクトースのような賦形剤、澱粉の
ような結合剤、および／またはタルクもしくはステアリン酸マグネシウムのような潤滑剤
、および任意に安定剤、と任意に混合されてよい顆粒またはナノ粒子の形において、有効
化合物を含むことができる。一実施形態によれば、該可塑剤は、脂肪油、または液体パラ
フィンのような適した液体へ、任意に安定剤と共に溶解または懸濁される。
脂肪油はモノ−、ジ−、またはトリグリセリドを含んでよい。モノ−、ジ−、およびト
リグリセリドはＣ６、Ｃ８、Ｃ１０、Ｃ１２、Ｃ１４、Ｃ１６、Ｃ１８、Ｃ２０およびＣ
２２酸由来のものを含む。代表的なジグリセリドは、特に、ジオレイン、ジパルミトオレ
イン、および混合カプリリン−カプリンジグリセリドを含む。好ましいトリグリセリドは
植物油、魚油、動物性脂肪、水素化植物油、部分的水素化植物油、合成トリグリセリド、
修飾トリグリセリド、分画トリグリセリド、中および長鎖トリグリセリド、構築トリグリ
セリド、およびそれらの混合物を含む。代表的なトリグリセリドは、アーモンド油；ババ
ス油；ルリジサ油；カシス種油；キャノーラ油；ヒマシ油；ココナッツ油；トウモロコシ
油；綿実油；月見草油；ブドウ種油；落花生油；辛子種油；オリーブ油；パーム油；パー
ム核油；ピーナッツ油；菜種油；サフラワー油；胡麻油；サメ肝油；大豆油；ヒマワリ油
；水素化パーム油；水素化ヒマシ油；水素化ココナッツ油；水素化パーム油；水素化大豆
油；水素化植物油；水素化綿実およびヒマシ油；部分的水素化大豆油、部分的大豆および
綿実油；グリセリルトリカプリル酸塩；グリセリルトリカプリル酸塩；グリセリルトリカ
プリン酸；グリセリルトリウンデカン酸塩；グリセリルトリラウリン酸塩；グリセリルト
リカプリル酸塩；グリセリルトリオレイン酸塩；グリセリルトリリノール酸塩；グリセリ
ルトリリノレン酸塩；グリセリルトリカプリル酸塩／カプリン酸；グリセリルトリカプリ
ル酸塩／カプリン酸／ラウリン酸；グリセリルトリカプリル酸塩／カプリン酸／リノール
酸；およびグリセリルトリカプリル酸塩／カプリン酸／ステアリン酸を含む。
一実施形態によれば、トリグリセリドは商品名ＬＡＢＲＡＦＡＣ ＣＣで入手可能な中
鎖トリグリセリドである。その他のトリグリセリドは中性油、例えば中性植物油、特にＭ
ＩＧＬＹＯＬ ８１０； ＭＩＧＬＹＯＬ ８１２； ＭＩＧＬＹＯＬ ８１８；および
ＣＡＰＴＥＸ ３５５を含む、商品名ＭＩＧＬＹＯＬで知られ、かつ市販されているよう
な分画ココナッツ油を含む。その他のトリグリセリドは、ＭＹＲＩＴＯＬ ８１３を含む
、商品名ＭＹＲＩＴＯＬで知られ、かつ市販されているようなカプリル−カプリン酸トリ
グリセリドを含む。この種類のさらなるトリグリセリドは、ＣＡＰＭＵＬ ＭＣＴ、ＣＡ
ＰＴＥＸ ２００、ＣＡＰＴＥＸ ３００、ＣＡＰＴＥＸ ８００、ＮＥＯＢＥＥ Ｍ５
およびＭＡＺＯＬ １４００である。
トリグリセリドを含む医薬組成物はさらに、水性溶媒への溶解によって透明な溶液を形
成し得る、親油性および／または親水性界面活性剤を含む。このような界面活性剤の一つ
は、トコフェロールポリエチレングリコール１０００コハク酸（ビタミンＥ ＴＰＧＳ）
である。このような組成物の例は、米国特許第６，２６７，９８５号に記載されている。
別の実施形態によれば、薬理学的に許容される担体は、ＰＥＧ−８カプリル／カプリン
酸グリセリドであるＬａｂｒａｓｏｌ（Ｇａｔｔｅｆｏｓｓｅ ＳＡ）を含む。別の実施
形態によれば、薬理学的に許容される担体は、ＰＬ９０Ｇ、ビタミンＥ ＴＰＧＳ、およ
びＭｉｇｌｙｏｌ ８１２Ｎを含む。このような処方の成分を表１に示す。
直腸性に使用できる可能性のある医薬製剤は、例えば坐薬基剤と共に１以上のリガンド
からなる坐薬を含む。適切な坐薬基剤は、例えば天然または合成のトリグリセリド、また
はパラフィン炭化水素である。加えて、リガンドと基剤の組み合わせからなるゼラチン直
腸カプセルの使用もまた可能である。可能な基剤物質は、例えば、液体トリグリセリド、
ポリエチレングリコール、またはパラフィン炭化水素を含む。
非経口投与に適した処方は、リガンドの水溶性の形での水溶液、例えば水溶性塩または
アルカリ溶液を含む。加えて、適切な油性注射用懸濁液としてのリガンドの懸濁液も投与
されてよい。適切な親油性溶媒またはビヒクルは、脂肪油、例えば胡麻油、または合成脂
肪酸エステル、例えばエチルオレイン酸塩もしくはトリグリセリド、またはポリエチレン
グリコール４００を含む。水性注射用懸濁液は、懸濁液の粘度を増大させる物質、例えば
カルボキシメチルセルロースナトリウム、ソルビトール、および／またはデキストランを
含んでよい。懸濁液はまた、任意に安定剤も含んでよい。
局所用組成物は、適切な担体の選択により、油剤、クリーム剤、ローション剤、軟膏剤
などとして処方されてよい。適切な担体は、植物または鉱物油、白色ワセリン（白色軟パ
ラフィン）、分岐鎖脂肪または油、動物性脂肪または高分子量アルコール（Ｃ１２を超え
る）を含む。乳化剤、安定剤、保湿剤および抗酸化剤、同様に必要であれば色または芳香
を与える薬剤もまた含まれてよい。さらに、これらの局所用処方には経皮浸透増強剤を用
いることができる。このような増強剤の例は、米国特許第３，９８９，８１６号および第
４，４４４，７６２号に見出すことができる。
クリーム剤は、鉱物油、自己乳化蜜ろうおよび水の混合物から処方され、ここに少量の
アーモンド油のような油に溶解したリガンドが混合される。このようなクリーム剤の代表
的な例は、約４０部の水、約２０部の蜜ろう、約４０部の鉱物油、および約１部のアーモ
ンド油を含むものである。
軟膏剤は、アーモンド油のような植物油に懸濁したリガンドと温めた軟パラフィンを混
合し、該混合物を冷却することにより処方されてよい。このような軟膏剤の代表的な例は
、重量による約３０％のアーモンド油、および約７０％の白色軟パラフィンを含むもので
ある。
ローション剤は、プロピレングリコールまたはポリエチレングリコールのような適切な
高分子量アルコールに懸濁したリガンドの調製により、便利に調製されてよい。
医薬組成物に添加されてよい抗酸化剤の例は、ＢＨＡおよびＢＨＴを含む。
一実施形態によれば、医薬組成物は固形ゼラチンカプセルにおいて、１ｍＬのＬａｂｒ
ａｓｏｌ中に３０ｍｇのリガンドを含む。別の実施形態によれば、該カプセルは１、２、
３、４、５、６、７、８、９、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０
、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９５または１００ｍｇのリガンド
を含む。
医薬組成物は重量により０．０１％から９９％のリガンドを含んでよい。組成物は単一
または複数の用量形態であってよい。いずれの特定の医薬組成物中のリガンドの量も、有
効量、すなわち望まれる遺伝子の発現または抑制の誘発に必要な量に依存するであろう。
一実施形態によれば、０．１から７．５ｍｇ／ｋｇが被験体へ投与される。別の実施形態
によれば、０．１から３ｍｇ／ｋｇが被験体へ投与される。別の実施形態によれば、０．
１から３ｍｇ／ｋｇが投与される。
該医薬組成物を投与するための適切な経路は、経口、経直腸、局所（経皮、経頬、およ
び舌下を含む）、経膣、非経口（皮下、筋肉内、静脈内、皮内、包膜内、腫瘍内および硬
膜外を含む）および経鼻チューブを含む。当業者は、投与に好ましい経路は治療される状
態に依存し、かつ受取者の状態のような因子によって異なる可能性のあることを理解する
であろう。該医薬組成物は１日に１回以上投与されてよい。一実施形態によれば、該医薬
組成物は、エクジソン受容体複合体およびＤＮＡ結合配列を含む細胞の投与前２４時間に
始まって、毎日投与される。
ここに記載される、本発明の式１で表されるジアシルヒドラジンリガンドならびに式２
または３で表されるキラルジアシルヒドラジンリガンドはまた、その他の薬理学的に活性
のある化合物と組み合わせて投与されてもよい。ここに記載される、リガンドと組み合わ
せて使用される薬理学的に活性のある化合物は、受取者の有害作用、または化合物間の望
まれない相互作用を避けるために選択され得ることが当業者により理解されるであろう。
リガンドと組み合わせて使用されてよいその他の薬理学的に活性のある化合物の例は例え
ば、ＡＩＤＳ化学療法剤、アミノ酸誘導体、鎮痛剤、麻酔剤、校門直腸産物、制酸剤およ
び整腸剤、抗生剤、抗凝固剤、解毒剤、抗線溶剤、抗ヒスタミン剤、抗炎症剤、抗腫瘍剤
、抗寄生虫剤、抗原虫剤、解熱剤、防腐剤、抗痙攣剤および抗コリン剤、抗ウィルス剤、
食欲抑制剤、関節炎薬、生物反応修飾剤、骨代謝調節剤、腸排出剤、心血管剤、中枢神経
系刺激剤、大脳代謝増強剤、耳垢溶解剤、コリンエステラーゼ阻害剤、感冒および咳製剤
、コロニー刺激因子、避妊薬、細胞保護剤、歯科製剤、脱臭剤、皮膚科製剤、解毒剤、糖
尿病薬、診断薬、下痢薬、ドーパミン受容体アゴニスト、電解質、酵素および消化薬、麦
角製剤、妊娠促進薬、繊維補助剤、抗真菌薬、乳汁漏出阻害剤、胃酸分泌阻害剤、胃腸運
動促進剤、性腺刺激ホルモン阻害剤、育毛促進剤、増血剤、血行動態製剤、止血薬、ヒス
タミンＨ２受容体アンタゴニスト、ホルモン、血糖上昇剤、脂質低下薬、免疫抑制剤、下
剤、抗らい薬、白血球除去剤、肺界面活性剤、偏頭痛薬、粘液溶解薬、筋弛緩拮抗剤、筋
弛緩剤、麻酔拮抗剤、点鼻薬、悪心薬ヌクレオシド類似体、栄養補助剤、骨粗しょう症治
療剤、分娩促進剤、副交感神経遮断薬、副交感神経刺激薬、パーキンソン病治療薬、ペニ
シリンアジュバント、リン脂質、血小板阻害剤、ポルフィリン症薬、プロスタグランジン
類似体、プロスタグランジン、プロトンポンプ阻害剤、そう痒症薬、向精神薬、キノロン
、呼吸促進剤、唾液分泌促進剤、塩代用薬、硬化薬、皮膚創傷製剤、喫煙休止補助剤、ス
ルフォンアミド、交感神経遮断薬、トゥレット症候群治療薬、抗振戦薬、抗結核剤、尿酸
排泄促進薬、尿路製剤、子宮収縮剤、子宮弛緩剤、膣製剤、抗めまい薬、ビタミンＤ類似
体、ビタミン、および医学画像対比薬剤を含む。幾つかの場合には、リガンドは薬剤療法
の補助剤、例えば特定の薬剤を代謝する酵素を産生する遺伝子を「遮断する」ものとして
有用であり得る。
上記の応用に加え、農業への応用のため、本発明のリガンドはバチルスチューリンゲン
シス（Ｂｔ）毒素のような殺虫性タンパク質の発現を制御するためにも用いられてよい。
このような発現は組織または植物特異的であり得る。加えて、特に植物害虫の制御もまた
必要なときには１以上の殺虫剤をここに記載するリガンドと組み合わせてよく、それによ
り、もし殺虫剤が別に散布されていればより少ない全散布数になることを含んださらなる
利点と有効性が提供される。殺虫剤の混合物を利用するとき、組成物中の各成分の相対的
割合は、相対的な有効性、ならびに作物、殺虫剤、および／または処理される雑草に関連
した各殺虫剤の望まれる散布率に依存するであろう。当業者は、殺虫剤の混合物は、１種
の殺虫剤の単独使用よりもより広い範囲の活性のような利点を提供し得ることを認識する
であろう。ここに記載されるリガンドと共に該組成物中へ組み合わせられる殺虫剤の例は
、殺真菌剤、除草剤、殺虫剤、殺ダニ剤、および殺菌剤を含む。
ここに記載される本発明の式１で表されるジアシルヒドラジンリガンドならびに式２ま
たは３で表されるキラルジアシルヒドラジンリガンドは、従来の高リットル水圧スプレー
、低リットルスプレー、エアブラスト、および航空散布のような一般に利用される方法に
よる水性のスプレーとして、植物の葉へ散布できる。希釈および散布率は、利用する機器
の型、望まれる方法および散布頻度、ならびにリガンド散布率に依存し得る。スプレータ
ンク内には追加のアジュバントを含むことが望ましいであろう。このようなアジュバント
は界面活性剤、分散剤、展着剤、固着剤、消泡剤、乳化剤、およびＭｃＣｕｔｃｈｅｏｎ
’ｓ Ｅｍｕｌｓｉｆｉｅｒｓ ａｎｄ Ｄｅｔｅｒｇｅｎｔｓ， ＭｃＣｕｔｃｈｅｏ
ｎ’ｓ Ｅｍｕｌｓｉｆｉｅｒｓ ａｎｄ Ｄｅｔｅｒｇｅｎｔｓ／Ｆｕｎｃｔｉｏｎａ
ｌ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ， およびＭｃＣｕｔｃｈｅｏｎ ’ｓ Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ
Ｍａｔｅｒｉａｌｓ（全てＭｃＣｕｔｃｈｅｏｎ Ｄｉｖｉｓｉｏｎ ｏｆ ＭＣ Ｐ
ｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ（ニュージャージー）より毎年発行される）に記載
されるその他の類似物質を含む。これらのリガンドはまた、散布前に肥料または肥料物質
と共に混合することもできる。これらのリガンドおよび固形肥料物質はまた、混合または
混和機器内で混合できるか、あるいは顆粒製剤中へ肥料と共に取り込むことができる。作
物および処理される雑草に適した、肥料のいずれの相対的な割合も使用できる。ここに記
載されるリガンドは、一般に５％から５０％の肥料組成物を含み得る。これらの組成物は
、望まれる植物の迅速な成長を促進する肥料物質を提供し、同時に遺伝子発現を制御する
。
ホスト細胞および非ヒト生物
上記のように、式１で表されるジアシルヒドラジンリガンドならびに式２または３で表
されるキラルジアシルヒドラジンリガンドは、ホスト細における遺伝子発現を調節するた
めに使用されてよい。トランスジェニックホスト細胞における発現は、所望の様々な遺
伝子の発現に有用であり得る。本発明は、原核および真核ホスト細胞における遺伝子発現
の調節のためのリガンドを提供する。
トランスジェニックホスト細胞における発現は、ワクチンとして植物において産生され
る抗原；アルファ−アミラーゼ、フィターゼ、グルカン、およびキシラナーゼのような酵
素；植物における昆虫、線虫、真菌、細菌、ウィルス、および非生物的ストレスに対する
抵抗性の遺伝子；抗原；栄養補助食品；医薬品；ビタミン；アミノ酸含有量、除草剤抵抗
性、寒冷、干ばつ、および熱耐性を調節する遺伝子；工業製品；油、タンパク質、炭水化
物；抗酸化剤；雄性の生殖不能な植物；花；燃料；その他の結果としての性質；状態、疾
病、障害、機能不全、もしくは遺伝的欠陥の治療に使用され得る治療的ポリペプチドまた
は産物、例えばモノクローナル抗体、酵素、プロテアーゼ、サイトカイン、インターフェ
ロン、インスリン、エリスロポエチン、凝固因子、その他の血液因子または成分；遺伝子
治療のためのウィルス性ベクター；ワクチンのためのウィルス；創薬、機能的ゲノミクス
、およびプロテオミクス解析ならびに応用のための標的；ホスト内に既に存在する経路の
調節のための経路の介在物；これまでにホストの使用では不可能であった新しい産物の合
成のための経路の介在物；細胞に基づくアッセイ；機能的ゲノミクスアッセイ；プロテオ
ミクスアッセイなどを含むがこれらに限定されない、所望の様々なポリペプチドの発現
のために有用である。さらに遺伝子産物は、ホストのより高い増殖収率の付与、または用
いられる別の増殖モードを可能にするために有用であろう。
従って本発明は、単離されたホスト細胞において遺伝子発現を調節するため、式１で表
されるジアシルヒドラジンリガンドならびに式２または３で表されるキラルジアシルヒド
ラジンリガンドを提供する。一実施形態によれば、単離されたホスト細胞は原核ホスト細
胞または真核ホスト細胞である。別の実施形態によれば、単離されたホスト細胞は無脊椎
動物ホスト細胞または脊椎動物ホスト細胞である。好ましくはホスト細胞は、細菌細胞、
真菌細胞、酵母細胞、線虫細胞、昆虫細胞、魚細胞、植物細胞、鳥細胞、動物細胞、およ
び哺乳類細胞から成る群より選択される。さらに好ましくは、ホスト細胞は酵母細胞、線
虫細胞、昆虫細胞、植物細胞、ゼブラフィッシュ細胞、ニワトリ細胞、ハムスター細胞、
マウス細胞、ラット細胞、ウサギ細胞、ネコ細胞、イヌ細胞、ウシ細胞、ヤギ細胞、雌ウ
シ細胞、ブタ細胞、ウマ細胞、ヒツジ細胞、類人猿細胞、サル細胞、チンパンジー細胞、
またはヒト細胞である。ホスト細胞の例は、アスペルギルス、トリコデルマ、サッカロミ
セス、ピキア、カンジダ、ハンゼヌラのような真菌または酵母種、またはシネコシスティ
ス、シネココッカス、サルモネラ、バチルス、アシネトバクター、ロドコッカス、ストレ
プトミセス、エシェリキア、シュードモナス、メチロモナス、メチロバクテリウム、アル
カリゲネス、アナベナ、チオバチルス、メタノバクテリウムおよびクレブシエラの属にお
けるような細菌種；リンゴ、シロイヌナズナ、トウジンビエ、バナナ、オオムギ、マメ、
ビート、ケツルアズキ、ヒヨコマメ、チリ、キュウリ、ナス、ソラマメ、トウモロコシ、
メロン、アワ、リョクトウ、カラスムギ、オクラ、キビ、パパイヤ、ピーナッツ、エンド
ウマメ、コショウ、キマメ、パイナップル、インゲンマメ、ジャガイモ、カボチャ、イネ
、モロコシ、ダイズ、カボチャ、サトウキビ、サトウダイコン、ヒマワリ、サツマイモ、
茶、トマト、タバコ、スイカ、およびコムギから成る群より選択される植物種；動物；お
よび哺乳類ホスト細胞を含むが、これらに限定されない。
別の実施形態によれば、ホスト細胞はサッカロミセス、ピキア、およびカンジダホスト
細胞から成る群より選択される酵母細胞である。
別の実施形態によれば、ホスト細胞はシノラブディス・エレガンス線虫細胞である。
別の実施形態によれば、ホスト細胞は昆虫細胞である。
別の実施形態によれば、ホスト細胞はリンゴ、シロイヌナズナ、トウジンビエ、バナナ
、オオムギ、マメ、ビート、ケツルアズキ、ヒヨコマメ、チリ、キュウリ、ナス、ソラマ
メ、トウモロコシ、メロン、アワ、リョクトウ、カラスムギ、オクラ、キビ、パパイヤ、
ピーナッツ、エンドウマメ、コショウ、キマメ、パイナップル、インゲンマメ、ジャガイ
モ、カボチャ、イネ、モロコシ、ダイズ、カボチャ、サトウキビ、サトウダイコン、ヒマ
ワリ、サツマイモ、茶、トマト、タバコ、スイカ、およびコムギ細胞から成る群より選択
される植物細胞である。
別の実施形態によれば、ホスト細胞はゼブラフィッシュ細胞である。
別の実施形態によれば、ホスト細胞はニワトリ細胞である。
別の実施形態によれば、ホスト細胞はハムスター細胞、マウス細胞、ラット細胞、ウサ
ギ細胞、ネコ細胞、イヌ細胞、ウシ細胞、ヤギ細胞、雌ウシ細胞、ブタ細胞、ウマ細胞、
ヒツジ細胞、サル細胞、チンパンジー細胞、およびヒト細胞から成る群より選択される哺
乳類細胞である。
ホスト細胞の形質転換は当該技術分野において公知であり、エレクトロポレーション、
ウィルス感染、プラスミド／ベクタートランスフェクション、非ウィルス性ベクターを介
したトランスフェクション、アグロバクテリウムを介した形質転換、微粒子銃などを含む
が、これらに限定されない様々な方法により達成されてよい。所望される遺伝子産物の発
現は、適切な条件下で形質転換されたホスト細胞を培養すること、および形質転換遺伝子
の発現を誘導することを含む。原核細胞および真核細胞における培養条件および遺伝子発
現プロトコルは、当該技術分野において公知である。細胞は回収されて、かつ遺伝子産物
は該遺伝子産物に特異的なプロトコルに従って分離される。
加えて、ホスト細胞は挿入したポリヌクレオチドの発現を調節するか、または望まれる
特定の様式においてポリペプチド産物を修飾および加工するものが選択されてよい。異な
るホスト細胞は、翻訳および後翻訳プロセシングならびに修飾のための特徴的かつ特異的
な機構を有する。適切な細胞株またはホストシステムは、発現される外来性タンパク質の
望まれる修飾およびプロセシングを確実にするために選択できる。例えば、細菌システム
における発現はグリコシル化されないコアタンパク質産物の産生のために用いられる。し
かしながら、細菌において発現するポリペプチドは正しく折り畳まれない可能性がある。
酵母における発現はグリコシル化された産物を産生できる。真核細胞における発現は、異
種性タンパク質の「天然」グリコシル化およびフォールディングの可能性を増大できる。
さらに、哺乳類細胞における発現はポリペプチドの活性を再構成、または構成するための
手段を提供できる。さらに、異なるベクター／ホスト発現システムは、タンパク質切断の
ようなプロセシング反応に異なる程度で影響するであろう。本発明の式１で表されるジア
シルヒドラジンリガンドならびに式２または３で表されるキラルジアシルヒドラジンリガ
ンドは、単離されたホスト細胞を含む非ヒト生物において使用されてよい。一実施形態に
よれば、非ヒト生物は原核生物または真核生物である。別の実施形態によれば、非ヒト生
物は無脊椎生物または脊椎生物である。
好ましくは、非ヒト生物は、細菌、真菌、酵母、線虫、昆虫、魚、植物、鳥、動物、お
よび哺乳類から成る群より選択される。さらに好ましくは、非ヒト生物は、酵母、線虫、
昆虫、植物、ゼブラフィッシュ、ニワトリ、ハムスター、マウス、ラット、ウサギ、ネコ
、イヌ、ウシ、ヤギ、雌ウシ、ブタ、ウマ、ヒツジ、霊長類、サル、またはチンパンジー
である。
別の実施形態によれば、非ヒト生物は、サッカロミセス、ピキア、およびカンジダから
成る群より選択される酵母である。
別の実施形態によれば、非ヒト生物はシノラブディス・エレガンス線虫である。
別の実施形態によれば、非ヒト生物は、リンゴ、シロイヌナズナ、トウジンビエ、バナ
ナ、オオムギ、マメ、ビート、ケツルアズキ、ヒヨコマメ、チリ、キュウリ、ナス、ソラ
マメ、トウモロコシ、メロン、アワ、リョクトウ、カラスムギ、オクラ、キビ、パパイヤ
、ピーナッツ、エンドウマメ、コショウ、キマメ、パイナップル、インゲンマメ、ジャガ
イモ、カボチャ、イネ、モロコシ、ダイズ、カボチャ、サトウキビ、サトウダイコン、ヒ
マワリ、サツマイモ、茶、トマト、タバコ、スイカ、およびコムギから成る群より選択さ
れる植物である。
別の実施形態によれば、非ヒト生物はマウス（Ｍｕｓ ｍｕｓｃｕｌｕｓ）である。
遺伝子発現調節システム
本発明は、エクジソン受容体に基づく誘導遺伝子発現システムにおいて有用な、式１で
表されるジアシルヒドラジンリガンドならびに式２または３で表されるキラルジアシルヒ
ドラジンリガンドに関する。これらのジアシルヒドラジンリガンドは、原核および真核ホ
スト細胞の両方において、改善された誘導遺伝子発現システムを提供する。従って本発明
は、遺伝子の発現を調節するために有用な、式１で表されるジアシルヒドラジンリガンド
ならびに式２または３で表されるキラルジアシルヒドラジンリガンドに関する。特に本発
明は、グループＨ核内受容体リガンド結合ドメインを含むポリペプチドをコードするポリ
ヌクレオチドを含むホスト細胞内で発現可能な、少なくとも１の遺伝子発現カセットを含
む遺伝子発現調節システムをトランス活性化する能力を有する、式１で表されるジアシル
ヒドラジンリガンドならびに式２または３で表されるキラルジアシルヒドラジンリガンド
に関する。一実施形態によれば、グループＨ核内受容体リガンド結合ドメインはエクジソ
ン受容体、偏在性受容体、オーファン受容体１、ＮＥＲ−１、ステロイドホルモン核内受
容体１、レチノイドＸ受容体相互作用タンパク質−１５、肝臓Ｘ受容体β、ステロイドホ
ルモン受容体様タンパク質、肝臓Ｘ受容体、肝臓Ｘ受容体α、ファルネソイドＸ受容体、
受容体相互作用タンパク質１４、またはファルネソール受容体由来である。別の実施形態
によれば、グループＨ核内受容体リガンド結合ドメインはエクジソン受容体由来である。
別の実施形態によれば、遺伝子発現調節システムは、トランス活性化ドメイン、その発
現が調節されるべき遺伝子に結合する反応エレメントを認識するＤＮＡ結合ドメイン、お
よび置換変異を含むグループＨ核内受容体リガンド結合ドメインを含むポリペプチドをコ
ードするポリヌクレオチドを含む遺伝子発現カセットを含む。遺伝子発現調節システムは
さらに、ｉ）第１の遺伝子発現カセットの、コードされるポリペプチドのＤＮＡ結合ドメ
インにより認識される反応エレメント；ｉｉ）第１の遺伝子発現カセットの、コードされ
るポリペプチドのトランス活性化ドメインにより活性化されるプロモーター；およびｉｉ
ｉ）その発現が調節されるべき遺伝子を含む、第２の遺伝子発現カセットを含んでよい。
別の実施形態によれば、遺伝子発現調節システムは、ａ）トランス活性化ドメイン、そ
の発現が調節されるべき遺伝子に結合する反応エレメントを認識するＤＮＡ結合ドメイン
、および置換変異を含むグループＨ核内受容体リガンド結合ドメインを含むポリペプチド
をコードするポリヌクレオチド、ならびにｂ）脊椎動物レチノイドＸ受容体リガンド結合
ドメイン、無脊椎動物レチノイドＸ受容体リガンド結合ドメイン、ウルトラスピラクルタ
ンパク質リガンド結合ドメイン、および第１のポリペプチド断片が脊椎動物レチノイドＸ
受容体リガンド結合ドメイン、無脊椎動物レチノイドＸ受容体リガンド結合ドメイン、も
しくはウルトラスピラクルタンパク質リガンド結合ドメイン由来であり、かつ第２のポリ
ペプチド断片が異なる脊椎動物レチノイドＸ受容体リガンド結合ドメイン、無脊椎動物レ
チノイドＸ受容体リガンド結合ドメイン、もしくはウルトラスピラクルタンパク質リガン
ド結合ドメイン由来である、２つのポリペプチド断片を含むキメラリガンド結合ドメイン
から成る群より選択される第２の核内受容体リガンド結合ドメインを含む遺伝子発現カセ
ット、を含む。遺伝子発現調節システムはさらに、ｉ）第１の遺伝子発現カセットの、コ
ードされるポリペプチドのＤＮＡ結合ドメインにより認識される反応エレメント；ｉｉ）
第１の遺伝子発現カセットの、コードされるポリペプチドのトランス活性化ドメインによ
り活性化されるプロモーター；およびｉｉｉ）その発現が調節されるべき遺伝子を含む、
第２の遺伝子発現カセットを含んでよい。
別の実施形態によれば、遺伝子発現調節システムは、その発現が調節されるべき遺伝子
に結合する反応エレメントを認識するＤＮＡ結合ドメインおよび核内受容体リガンド結合
ドメインを含む第１のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む第１の遺伝子発
現カセット、ならびにトランス活性化ドメイン、および核内受容体リガンド結合ドメイン
の１つが置換変異を含むグループＨ核内受容体リガンド結合ドメインである核内受容体リ
ガンド結合ドメインを含む第２のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む第２
の遺伝子発現カセットを含む。一実施形態によれば、第１のポリペプチドはトランス活性
化ドメインを実質的に含まず、かつ第２のポリペプチドはＤＮＡ結合ドメインを実質的に
含まない。本発明の目的のための「実質的に含まない」は、問題のタンパク質が、活性化
または結合活性を提供するための問題のドメインの十分な配列を含まないことを意味する
。遺伝子発現調節システムはさらに、ｉ）第１の遺伝子発現カセットの第１のポリペプチ
ドのＤＮＡ結合ドメインにより認識される反応エレメント、ｉｉ）第２の遺伝子発現カセ
ットの第２のポリペプチドのトランス活性化ドメインにより活性化されるプロモーター、
およびｉｉｉ）その発現が調節されるべき遺伝子を含む、第３の遺伝子発現カセットを含
んでよい。
１つの核内受容体リガンド結合ドメインのみが置換変異を含むグループＨリガンド結合
ドメインであるとき、もう１つの核内受容体リガンド結合ドメインは、置換変異を含むグ
ループＨリガンド結合ドメインと二量体を形成するその他のいずれの核内受容体由来であ
ってもよい。例えば、置換変異を含むグループＨ核内受容体リガンド結合ドメインが置換
変異を含むエクジソン受容体リガンド結合ドメインであるとき、もう１つの核内受容体リ
ガンド結合ドメイン（パートナー）は、エクジソン受容体、脊椎動物レチノイドＸ受容体
（ＲＸＲ）、無脊椎動物ＲＸＲ、ウルトラスピラクルタンパク質（ＵＳＰ）、あるいは脊
椎動物ＲＸＲ、無脊椎動物ＲＸＲ、およびＵＳＰから成る群より選択される、少なくとも
２の異なる核内受容体リガンド結合ドメインポリペプチド断片を含むキメラ核内受容体由
来であってよい（その全体がここに参照として取り込まれる、国際公開第０１／７０８１
６Ａ２号、国際特許出願第ＰＣＴ／ＵＳ０２／０５２３５号および米国特許出願公開第２
００４／００９６９４２Ａ１号を参照のこと）。「パートナー」核内受容体リガンド結合
ドメインは、さらに切断変異、欠失変異、置換変異または別の修飾を含んでよい。
一実施形態によれば、脊椎動物ＲＸＲリガンド結合ドメインは、ヒト（Ｈｏｍｏ ｓａ
ｐｉｅｎｓ）、マウス（Ｍｕｓ ｍｕｓｃｕｌｕｓ）、ラット（Ｒａｔｔｕｓ ｎｏｒｖ
ｅｇｉｃｕｓ）、ニワトリ（Ｇａｌｌｕｓ ｇａｌｌｕｓ）、ブタ（Ｓｕｓ ｓｃｒｏｆ
ａ ｄｏｍｅｓｔｉｃａ）、アフリカツメガエル（Ｘｅｎｏｐｕｓ ｌａｅｖｉｓ）、ゼ
ブラフィッシュ（Ｄａｎｉｏ ｒｅｒｉｏ）、ミサキマメイタボヤ（Ｐｏｌｙａｎｄｒｏ
ｃａｒｐａ ｍｉｓａｋｉｅｎｓｉｓ）、またはクラゲ（Ｔｒｉｐｅｄａｌｉａ ｃｙｓ
ｏｐｈｏｒａ）ＲＸＲ由来である。
一実施形態によれば、無脊椎動物ＲＸＲリガンド結合ドメインは、トノサマバッタ（Ｌ
ｏｃｕｓｔａ ｍｉｇｒａｔｏｒｉａ）ウルトラスピラクルポリペプチド（「ＬｍＵＳＰ
」）、マダニ（Ａｍｂｌｙｏｍｍａ ａｍｅｒｉｃａｎｕｍ）ＲＸＲホモログ１（「Ａｍ
ａＲＸＲ１」）、マダニ（Ａｍｂｌｙｏｍｍａ ａｍｅｒｉｃａｎｕｍ）ＲＸＲホモログ
２（「ＡｍａＲＸＲ２」）、シオマネキ（Ｃｅｌｕｃａ ｐｕｇｉｌａｔｏｒ）ＲＸＲホ
モログ（「ＣｐＲＸＲ」）、カブトムシ（Ｔｅｎｅｂｒｉｏ ｍｏｌｉｔｏｒ）ＲＸＲホ
モログ（「ＴｍＲＸＲ」）、ミツバチ（Ａｐｉｓ ｍｅｌｌｉｆｅｒａ）ＲＸＲホモログ
（「ＡｍＲＸＲ」）、アブラムシ（Ｍｙｚｕｓ ｐｅｒｓｉｃａｅ）ＲＸＲホモログ（「
ＭｐＲＸＲ」）、または非双翅類／非鱗翅目ＲＸＲホモログ由来である。
一実施形態によれば、キメラＲＸＲリガンド結合ドメインは、脊椎動物種ＲＸＲポリペ
プチド断片、無脊椎動物種ＲＸＲポリペプチド断片、および非双翅類／非鱗翅目無脊椎動
物種ＲＸＲホモログポリペプチド断片から成る群より選択される少なくとも２つのポリペ
プチド断片を含む。本発明における使用のためのキメラＲＸＲリガンド結合ドメインは、
少なくとも２の異なる種のＲＸＲポリペプチド断片、または種が同じ場合には、ＲＸＲポ
リペプチド断片の種の２以上の異なるアイソフォーム由来であり得る２以上のポリペプチ
ド断片を含んでよい。
一実施形態によれば、キメラＲＸＲリガンド結合ドメインは、少なくとも１つの脊椎動
物種ＲＸＲポリペプチド断片、および１つの無脊椎動物種ＲＸＲポリペプチド断片を含む
。
別の実施形態によれば、キメラＲＸＲリガンド結合ドメインは、少なくとも１つの脊椎
動物種ＲＸＲポリペプチド断片、および１つの非双翅類／非鱗翅目無脊椎動物種ＲＸＲホ
モログポリペプチド断片を含む。
別の実施形態によれば、その発現が調節されるべき遺伝子はホスト細胞に対して相同遺
伝子である。別の実施形態によれば、その発現が調節されるべき遺伝子はホスト細胞に対
して異種性遺伝子である。
下記のように、本発明における使用のための式１で表されるジアシルヒドラジンリガン
ドならびに式２または３で表されるキラルジアシルヒドラジンリガンドは、遺伝子に連結
する反応エレメントへ次々に結合する核内レセプターのリガンド結合ドメインと組み合わ
されるとき、遺伝子の発現の外部からの時間的な調節手段を提供する。例えばリガンド結
合ドメインへのリガンド、反応エレメントへのＤＮＡ結合ドメイン、プロモーターへのト
ランス活性化ドメインなどの、互いに結合する本発明の様々な成分の結合機序または順番
は決定的ではない。
エクジソン受容体は核内受容体スーパーファミリーのメンバーであり、サブファミリー
１、グループＨ（ここでは「グループＨ核内受容体」と称される）に分類される。各グル
ープのメンバーは、Ｅ（リガンド結合）ドメインにおいて４０−６０％のアミノ酸同一性
を共有する（Ｌａｕｄｅｔ ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ ９７：１６１−１６３（１９９９
））。エクジソン受容体に加え、この核内受容体サブファミリー１、グループＨのその他
のメンバーは、偏在性受容体（ＵＲ）、オーファン受容体１（ＯＲ−１）、ステロイドホ
ルモン核内受容体１（ＮＥＲ−１）、レチノイドＸ受容体相互作用タンパク質−１５（Ｒ
ＩＰ−１５）、肝臓Ｘ受容体β（ＬＸＲβ）、ステロイドホルモン受容体様タンパク質（
ＲＬＤ−１）、肝臓Ｘ受容体（ＬＸＲ）、肝臓Ｘ受容体α（ＬＸＲα）、ファルネソイド
Ｘ受容体（ＦＸＲ）、受容体相互作用タンパク質１４（ＲＩＰ−１４）、またはファルネ
ソール受容体（ＨＲＲ−１）を含む。
特定の例において、グループＨ核内受容体のリガンド結合ドメイン、およびその核内受
容体のリガンド結合ドメインパートナーへのリガンドの結合は、遺伝子の発現または抑制
を可能にする。この機序は、グループＨ核内受容体（ＧＨＮＲ）もしくはそのパートナー
へのリガンド結合、および結果としての活性化ホモ二量体複合体（例えば、ＧＨＮＲ＋Ｇ
ＨＮＲ、またはパートナー＋パートナー）に対する可能性を除外しない。好ましくは、ハ
イブリッド遺伝子スイッチを作り出すために１以上の受容体ドメインが変化する。典型的
には、ＤＢＤ、ＬＢＤ，およびトランス活性化ドメインの３つのドメインのうち１以上が
他のドメインの源とは異なる源から選択されてよく、これによりハイブリッド遺伝子およ
び結果としてのハイブリッドタンパク質は、トランス活性化活性、リガンドの相補的結合
、および特定の反応エレメントの認識のために、選択されたホスト細胞または生物内で最
適化される。加えて、ハイブリッド受容体を適合させるために、反応エレメントはそれ自
体が修飾できるか、あるいは酵母由来のＧＡＬ−４タンパク質（Ｓａｄｏｗｓｋｉ ｅｔ
ａｌ，Ｎａｔｕｒｅ ３３５：５６３−５６４（１９８８）を参照）もしくは大腸菌由
来のＬｅｘＡタンパク質（Ｂｒｅｎｔ ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ ４３：７２９−７３６
（１９８５）を参照）のようなその他のＤＮＡ結合タンパク質ドメインの反応エレメント
、またはこのような特異的相互作用のために設計、修飾、および選択されたタンパク質と
の標的となる相互作用に特異的な合成反応エレメント（例えば、Ｋｉｍ ｅｔ ａｌ，
Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９４：３６１６−３６２０（１９９７
）を参照）により置換できる。２−ハイブリッドシステムの別の利点は、望まれる最終結
果に従った遺伝子発現を駆動するために、使用するプロモーターを選択できることである
。このような二重の制御は、発現のタイミングと同様に発現が起こる細胞を制御できるこ
とから、遺伝子治療の分野、特に細胞毒性タンパク質が産生される場合に特に重要である
。適切なプロモーターに機能的に連結した遺伝子が被験体の細胞に導入されるとき、該外
因性遺伝子の発現は本発明のシステムの存在により制御される。プロモーターは恒常的ま
たは誘導的に調節されてよいか、または組織特異的（すなわち、特定の型の細胞のみに発
現される）もしくは生物のある発生段階に特異的であってよい。
ここに記載されるものは特に、置換変異を含むグループＨ核内受容体リガンド結合ドメ
インを含む遺伝子発現調節システムにおいて有用な、式１で表されるジアシルヒドラジン
リガンドならびに式２または３で表されるキラルジアシルヒドラジンリガンドである。遺
伝子発現システムは、トランス活性化ドメイン、ＤＮＡ結合ドメインおよびリガンド結合
ドメインが、１つのコードされるポリペプチド上にある遺伝子発現システムに基づく「単
一スイッチ」であってよい。あるいは遺伝子発現調節システムは、トランス活性化ドメイ
ンおよびＤＮＡ結合ドメインが、２つの異なる、コードされるポリペプチド上に位置する
遺伝子発現調節システムに基づく「二重スイッチ」または「２ハイブリッド」であってよ
い。
本発明における使用のためのエクジソン受容体に基づく遺伝子発現調節システムは、ヘ
テロ二量体またはホモ二量体のいずれかであってよい。機能的なＥｃＲ複合体は一般に、
ステロイド受容体ファミリーの２メンバー、様々な昆虫から得られるエクジソン受容体タ
ンパク質、およびウルトラスピラクル（ＵＳＰ）もしくはＵＳＰの脊椎動物ホモログであ
るレチノイドＸ受容体タンパク質から成るヘテロ二量体タンパク質に関する（Ｎａｔｕｒ
ｅ ３６６：４７６−４７９（１９９３）ａｎｄ Ｙａｏ ｅｔ ａｌ，Ｃｅｌｌ ７１
：６３−７２（１９９２）を参照のこと）。しかしながら、以下に詳述するように複合体
はホモ二量体であってもよい。機能的なエクジステロイド受容体複合体はまた、イムノフ
ィリンのようなさらなるタンパク質も含んでよい。転写因子として知られているステロイ
ド受容体ファミリータンパク質のさらなるメンバー（例えば、ＤＨＲ３８またはベータＦ
ＴＺ−１）もまた、ＥｃＲ、ＵＳＰおよび／またはＲＸＲのリガンド依存性または非依存
性のパートナーであってよい。さらに、一般に共活性化因子（アダプターまたはメディエ
ーターとも称される）として知られるタンパク質のようなその他の補助因子も必要とされ
得る。これらのタンパク質はＤＮＡに配列特異的に結合せず、基本転写に関与しない。こ
れらは転写活性化におけるその効果を、クロマチン構造への影響により、また活性化因子
と開始因子複合体の相互作用により活性化因子のＤＮＡ結合を刺激することを含む、様々
な機序を通して発揮する。このような共活性化因子の例は、ＲＩＰ１４０、ＴＩＦ１、Ｒ
ＡＰ４６／Ｂａｇ−１、ＡＲＡ７０、ＳＲＣ−１／ＮＣｏＡ−１、ＴＩＦ２／ＧＲＩＰ／
ＮＣｏＡ−２、ＡＣＴＲ／ＡＩＢ１／ＲＡＣ３／ｐＣＩＰ、同様にｐｒｏｍｉｓｃｕｏｕ
ｓ ｃｏａｃｔｉｖａｔｏｒ Ｃ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｅｌｅｍｅｎｔ Ｂ ｂｉｎｄｉ
ｎｇ ｐｒｏｔｅｉｎ、ＣＢＰ／ｐ３００を含む（総説として、Ｇｌａｓｓ ｅｔ ａｌ
，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．９：２２２−２３２（１９９７）を参照の
こと）。また、一般に補助抑制因子として知られる（抑制因子、サイレンサー、またはサ
イレンシングメディエーターとしても知られる）タンパク質補助因子が、リガンド非存在
下での転写活性化を効果的に阻害するために必要とされ得る。これらの補助抑制因子は、
反応エレメントにおいて、活性を停止させるためにリガンドの結合していないエクジソン
受容体と相互作用してよい。現在ある証拠は、リガンドの結合が受容体の立体構造を変化
させ、これが補助抑制因子の放出および上記の共活性化因子の動員をもたらすことにより
、サイレンシング活性を消失させることを示唆する。補助抑制因子の例は、Ｎ−ＣｏＲお
よびＳＭＡＲＴを含む（総説として、Ｈｏｒｗｉｔｚ ｅｔ ａｌ，Ｍｏｌ Ｅｎｄｏｃ
ｒｉｎｏｌ．１０：１１６７−１１７７（１９９６）を参照のこと）。これらの補助因子
は細胞もしくは生物内に内在するか、または調節性もしくは非調節性のいずれかの様式に
おいて発現されるトランス遺伝子として、外因的に加えられてよい。エクジソン受容体タ
ンパク質、ＵＳＰ、またはＲＸＲのホモ二量体複合体もまた、ある環境下において機能的
であり得る。
エクジソン受容体複合体は、典型的には核内受容体スーパーファミリーのメンバーであ
るタンパク質を含み、ここでは一般に全てのメンバーがアミノ末端トランス活性化ドメイ
ン、ＤＮＡ結合ドメイン（「ＤＢＤ」）、およびヒンジ領域によってＤＢＤから分離され
るリガンド結合ドメイン（「ＬＢＤ」）の存在により特徴付けられる。ここで用いられる
「ＤＮＡ結合ドメイン」との語は、ＤＮＡ結合タンパク質の最小のポリペプチド配列を含
み、これはＤＮＡ結合ドメインが特定の反応エレメントと結合するために機能する限り、
ＤＮＡ結合タンパク質の全長までに至る。核内受容体スーパーファミリーのメンバーは、
４または５のドメイン：Ａ／Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｅおよび幾つかのメンバーにおいてはＦの存在
によっても特徴付けられる（米国特許第４，９８１，７８４号、およびＥｖａｎｓ，Ｓｃ
ｉｅｎｃｅ ２４０：８８９−８９５（１９８８）を参照のこと）。「Ａ／Ｂ」ドメイン
はトランス活性化ドメインに相当し、「Ｃ」はＤＮＡ結合ドメインに相当し、「Ｄ」はヒ
ンジ領域に相当し、かつ「Ｅ」はリガンド結合ドメインに相当する。ファミリーの幾つか
のメンバーは、「Ｆ」に相当するＬＢＤのカルボキシ末端側に別のトランス活性化ドメイ
ンもまた有してよい。
ＤＢＤは、２つのアミノ酸モチーフであるＰ−ボックスとＤ−ボックスの間の２つのシ
ステインジンクフィンガーの存在により特徴付けられ、これがエクジソン反応エレメント
の特異性を与える。これらのドメインは天然型、改変型、または異種性受容体タンパク質
の異なるドメインのキメラのいずれかであってよい。ＥｃＲ受容体はまた、ステロイド受
容体ファミリーのサブセットのように、ヘテロ二量体化性質の原因である、あまりよく定
義されていない領域も有する。核内受容体のドメインは天然ではモジュール式であること
から、ＬＢＤ、ＤＢＤ、およびトランス活性化ドメインは交換されてよい。
遺伝子スイッチシステムは、エクジソン受容体複合体由来の成分を取り込むことが知ら
れている。しかしながら、これらのシステムにおいてＥｃＲが使用されるいかなる時にも
、それは同分子上の天然もしくは改変されたＤＮＡ結合ドメインおよびトランス活性化ド
メインと結合する。ＵＳＰまたはＲＸＲは典型的にはサイレントパートナーとして用いら
れる。これまでに、ＤＮＡ結合ドメインとトランス活性化ドメインが同分子上に存在する
時、リガンド非存在下でのバックグラウンド活性は高く、このような活性は、ＤＮＡ結合
ドメインとトランス活性化ドメインが異なる分子上に存在する時、すなわちヘテロ二量体
またはホモ二量体複合体の２つのパートナーそれぞれに存在する時には劇的に減少するこ
とが示されてきた（国際特許出願第ＰＣＴ／ＵＳ０１／０９０５０号を参照のこと）。
遺伝子発現の調節方法
本発明はまた、本発明の遺伝子発現調節システムおよびリガンドを用いた、ホスト細胞
における遺伝子発現の調節方法にも関する。特に本発明は、
ａ）ホスト細胞内に遺伝子発現調節システムを導入する工程；および
ｂ）ホスト細胞内に式１で表されるジアシルヒドラジンリガンドあるいは式２または３
で表されるキラルジアシルヒドラジンリガンドを導入する工程であって、ここで調節され
るべき遺伝子が
ｉ）該遺伝子発現システムのＤＮＡ結合ドメインにより認識されるドメインを含む反
応エレメント；
ｉｉ）該遺伝子発現システムのトランス活性化ドメインにより活性化されるプロモー
ター；、および
ｉｉｉ）式１で表されるジアシルヒドラジンリガンドあるいは式２または３で表され
るキラルジアシルヒドラジンリガンドのホスト細胞への導入によって遺伝子発現が調節さ
れる、その発現が調節されるべき遺伝子；を含む遺伝子発現カセットの構成成分である工
程；
を含む、ホスト細胞内で遺伝子の発現を調節する方法を提供する。
本発明は、
ａ）ホスト細胞内に遺伝子発現調節システムを導入する工程；および
ｂ）ホスト細胞内に遺伝子発現カセットを導入する工程であって、ここで該遺伝子発現
カセットが
ｉ）該遺伝子発現システム由来のＤＮＡ結合ドメインにより認識されるドメインを含
む反応エレメント；
ｉｉ）該遺伝子発現システムのトランス活性化ドメインにより活性化されるプロモー
ター；、および
ｉｉｉ）その発現が調節されるべき遺伝子を含む工程；および
ｃ）ホスト細胞内に式１で表されるジアシルヒドラジンリガンドあるいは式２または３
で表されるキラルジアシルヒドラジンリガンドを導入する工程であって；式１で表される
ジアシルヒドラジンリガンドあるいは式２または３で表されるキラルジアシルヒドラジン
リガンドのホスト細胞への導入によって遺伝子発現が調節される工程；
を含む、ホスト細胞内で遺伝子の発現を調節する方法もまた提供する。
本発明は、遺伝子発現調節システムの第１のハイブリッドポリペプチド由来のＤＮＡ結
合ドメインが結合するドメインを含む反応エレメント；遺伝子発現調節システムの第２の
ハイブリッドポリペプチドのトランス活性化ドメインにより活性化されるプロモーター；
およびその発現が調節されるべき遺伝子を含む遺伝子発現カセットを含む、ホスト細胞内
で遺伝子の発現を調節する方法もまた提供し、ここで該方法は、ａ）ホスト細胞内に遺伝
子発現調節システムを導入する工程；および、ｂ）ホスト細胞内に式１で表されるジアシ
ルヒドラジンリガンドあるいは式２または３で表されるキラルジアシルヒドラジンリガン
ドを導入する工程であって；リガンドのホストへの導入によって遺伝子発現が調節される
工程を含む。
ここに開示される方法を用いてホスト細胞内に発現させるための所望の遺伝子は、内
在性または異種性遺伝子であってよい。望まれる遺伝子またはタンパク質の、核酸または
アミノ酸配列の情報は、多数の公共アクセスデータベースのうちの一つ、例えばＧＥＮＢ
ＡＮＫ、ＥＭＢＬ、Ｓｗｉｓｓ−ＰｒｏｔおよびＰＩＲ、あるいは多数の生物学関係学術
雑誌出版物中に見出すことができる。従って、当業者は実質的に全ての既知遺伝子の核酸
配列情報へのアクセスを有する。このような情報は、ここに記載される方法で使用される
遺伝子発現カセット内に所望の遺伝子を挿入するための、望まれるコンストラクトを構
築するために使用できる。
遺伝子発現／転写の測定
本発明の方法の有用な測定の一つは、ＲＮＡ，好ましくはｍＲＮＡ種の同一性および存
在量を含む転写状態に関するものである。このような測定は、存在する幾つかの遺伝子発
現技術のいずれかによってｃＤＮＡの存在量を測定することにより、便利に行われる。
核酸アレイ技術は、差動的なｍＲＮＡ発現を決定するために有用な技術である。このよ
うな技術は例えば、オリゴヌクレオチドチップおよびＤＮＡマイクロアレイを含む。この
ような手法は、固体担体に固定して、細胞、組織、もしくは生物全体から抽出され、ｃＤ
ＮＡに変換された全ｍＲＮＡのプールから調製されたプローブとハイブリダイズさせる、
種々の遺伝子またはｃＤＮＡに相当するＤＮＡ断片またはオリゴヌクレオチドに依存する
。オリゴヌクレオチドチップは、フォトリソグラフィー技術を用いて基板上に合成された
オリゴヌクレオチドのアレイである。１７００遺伝子までの解析に使用できるチップが産
生されている。ＤＮＡマイクロアレイは、典型的にはＰＣＲ産物であり、顕微鏡スライド
上へロボットによりプリントされたＤＮＡサンプルのアレイである。各遺伝子は、完全ま
たは部分的な長さの標的ＤＮＡ配列により解析される。現在、１０，０００遺伝子までの
マイクロアレイが日常的、商業的に調製されている。これら２つの手法の第１の違いは、
オリゴヌクレオチドチップが短いＤＮＡ分子の断片化を可能にする２５ｍｅｒオリゴヌク
レオチドを典型的に利用するのに対し、マイクロアレイの約１０００塩基対である比較的
大きなＤＮＡ標的は、複雑なＤＮＡ混合物の断片化においてさらなる感度を提供し得るこ
とである。
本発明の方法の別の有用な測定は、細胞内に存在する構成タンパク質種の存在量を当該
技術分野において公知の方法を用いて測定することにより、細胞の翻訳状態を決定するこ
とである。
様々な生理的機能に関連する遺伝子の同定が望まれるとき、細胞増殖、アポトーシス、
老化、分化、接着、特定の分子への結合、他細胞への結合、細胞の組織化、器官形成、細
胞内輸送、輸送促進、エネルギー変換、代謝、筋形成、神経発生、および／または造血の
ような機能の変化が測定されるアッセイが利用されてよい。
加えて、本発明を用いた遺伝子発現調節を測定するため、選択性マーカーまたはレポー
ター遺伝子の発現が使用されてよい。
遺伝子発現産物を検出するためのその他の方法は当該技術分野において公知であり、サ
ザンブロット（ＤＮＡ検出）、ドットまたはスロットブロット（ＤＮＡ、ＲＮＡ）、ノー
ザンブロット（ＲＮＡ）、ＲＴ−ＰＣＲ（ＲＮＡ）、ウェスタンブロット（ポリペプチド
検出）、およびＥＬＩＳＡ（ポリペプチド）分析を含む。あまり好ましくはないが、特定
の核酸配列を検出するため、それにハイブリダイズする標識タンパク質が使用できる。
幾つかの場合には、核酸配列の量を増幅することが必要である。これは、例えばポリメ
ラーゼ連鎖反応（「ＰＣＲ］）、リガーゼ連鎖反応（「ＬＣＲ］）、鎖置換増幅（「ＳＤ
Ａ」）、転写に基づく増幅などを含む幾つかの適した方法の１以上を用いて行われてよい
。ＰＣＲは公知の手法に従って行われ、ここで例えば、核酸サンプルは熱安定性ＤＮＡポ
リメラーゼの存在下、ハイブリダイズ可能な条件下で、１つのプライマーが１つの鎖の検
出されるべき特定の配列にハイブリダイズする１組のオリゴヌクレオチドプライマーによ
って処理される。該プライマーは、各鋳型鎖の、それがハイブリダイズする特定の配列に
対して十分に相補的である。各プライマーの伸長産物が合成され、それはハイブリダイズ
する核酸鋳型鎖に相補的である。各プライマーから合成された伸長産物はまた、同じプラ
イマーを用いたさらなる伸長産物の合成のための鋳型としても役立つ。伸長産物の合成に
十分な数の一巡の後、サンプルは、配列または検出されるべき配列が存在するかどうかを
評価するため、上記のように分析されてよい。
一般的方法
ここで用いられる標準的な組み換えＤＮＡおよび分子クローニング手法は当該技術分野
において公知であり、Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｊ．，Ｆｒｉｔｓｃｈ，Ｅ．Ｆ．ａｎｄ Ｍａ
ｎｉａｔｉｓ，Ｔ．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ
Ｍａｎｕａｌ；Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅ
ｓｓ：Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．（１９８９）（Ｍａｎｉａｔｉ
ｓ）により、および Ｔ．Ｊ．Ｓｉｌｈａｖｙ，Ｍ．Ｌ．Ｂｅｎｎａｎ，ａｎｄ Ｌ．Ｗ
．Ｅｎｑｕｉｓｔ，Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ ｗｉｔｈ Ｇｅｎｅ Ｆｕｓｉｏｎｓ，Ｃ
ｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ
Ｈａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．（１９８４）により、および Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．
，Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，
Ｇｒｅｅｎｅ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ａｓｓｏｃ，ａｎｄ Ｗｉｌｅｙ−Ｉｎｔｅｒｓ
ｃｉｅｎｃｅ（１９８７）により記述される。
細菌培養の維持および増殖に適した材料および方法は、当該技術分野において公知であ
る。以下の実施例における使用に適した手法は、Ｍａｎｕａｌ ｏｆ Ｍｅｔｈｏｄｓ
ｆｏｒ Ｇｅｎｅｒａｌ Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ （Ｐｈｉｌｌｉｐｐ Ｇｅｒｈａ
ｒｄｔ，Ｒ．Ｇ．Ｅ．Ｍｕｒｒａｙ，Ｒａｌｐｈ Ｎ．Ｃｏｓｔｉｌｏｗ，Ｅｕｇｅｎｅ
Ｗ．Ｎｅｓｔｅｒ，Ｗｉｌｌｉｓ Ａ．Ｗｏｏｄ，Ｎｏｅｌ Ｒ．Ｋｒｉｅｇ ａｎｄ
Ｇ．Ｂｒｉｇｇｓ Ｐｈｉｌｌｉｐｓ，ｅｄｓ），Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｓｏｃｉｅｔｙ
ｆｏｒ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ，ＤＣ．（１９９４））、
または Ｔｈｏｍａｓ Ｄ．Ｂｒｏｃｋ ｉｎ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ：Ａ Ｔｅ
ｘｔｂｏｏｋ ｏｆ Ｉｎｄｕｓｔｒｉａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，Ｓｅｃｏｎｄ
Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｓｉｎａｕｅｒ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｓ，Ｉｎｃ．，Ｓｕｎｄｅｒｌ
ａｎｄ，ＭＡ（１９８９）にその設定が見出されるであろう。全ての試薬、制限酵素、お
よびホスト細胞の増殖および維持のために用いられる材料は、他に記載のない限りＡｌｄ
ｒｉｃｈ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ（ミルウォーキー、ウィスコンシン）、ＤＩＦＣＯ Ｌａ
ｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（デトロイト、ミシガン）、ＧＩＢＣＯ／ＢＲＬ（ゲーサーズバー
グ、メリーランド）、または Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｍｐａｎｙ（セント
ルイス、ミズーリ）から得た。
遺伝配列の操作は、Ｇｅｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｍｐｕｔｅｒ Ｇｒｏｕｐ Ｉｎｃ． （
Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ Ｐａｃｋａｇｅ Ｖｅｒｓｉｏｎ ９．０， Ｇｅｎｅｔｉｃｓ
Ｃｏｍｐｕｔｅｒ Ｇｒｏｕｐ （ＧＣＧ）、マジソン、ウィスコンシン）から入手でき
るプログラムスイートを用いて達成されてよい。ＧＣＧプログラムの「パイルアップ」を
用いる際、ｇａｐクリエーションの初期設定値は１２、ｇａｐエクステンションの初期設
定値は４が用いられてよい。ＣＧＣ「Ｇａｐ」または「Ｂｅｎｅｆｉｔ」プログラムを用
いる際、初期設定のｇａｐクリエーションペナルティーは５０、初期設定のｇａｐエクス
テンションペナルティーは３が用いられてよい。これら、またはその他のＧＣＧプログラ
ムにおいて、ＧＣＧプログラムパラメーターが指示されないいずれの場合にも、初期設定
値が用いられてよい。
融点はガラス毛管内でＥｌｅｃｔｒｏｔｈｅｒｍａｌ（登録商標）装置を用いて測定し
、補正はされない。旋光度（［α］２５５８９）は、室温において１０ｃｍの長さの石英
セル内でＰｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ Ｍｏｄｅｌ ３４１旋光計を用いて測定した。濃度
はｇ／１００ｍＬで与えられた。１Ｈ ＮＭＲスペクトルはＢｒｕｋｅｒ ＮＭＲを用い
、３００ＭＨｚ、または４００．１３ＭＨｚにおいて記録した。他に記載のない限り、内
部参照は溶媒であった。１３Ｃ ＮＭＲスペクトルはＢｒｕｋｅｒ ＮＭＲにより、１０
０．６ＭＨｚにおいて記録した。他に記載のない限り、内部参照は溶媒であった。ＬＣ−
ＭＳ分析はＡｇｉｌｅｎｔ １１００ ＬＣスタックとＡｇｉｌｅｎｔ ｓｉｎｇｌｅ
ｑｕａｄマススペクトロメーターとの組み合わせを用いて行った。溶媒はＴ＝０．１５％
ＢからＴ＝１０．９８％Ｂの勾配中の（Ａ）Ｈ２Ｏ／０．１％ギ酸、および（Ｂ）ＡＣＮ
／０．１％ギ酸、および７５ｍｍＸ２．１ｍｍ Ｃ１８カラム中でフローレート＝０．２
ｍＬ／分の停止時間は２０分であった。正確なマス分析はＡｇｉｌｅｎｔ ＥＳＩ／ＴＯ
Ｆマススペクトロメーターへの直接注入により行った。Ｘ線結晶構造の決定は、Ｂｒｕｋ
ｅｒ ＳＭＡＲＴ６０００を用いて行った。基本的な分析はＰｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ
２４００ ＣＨＮアナライザーで行った。分析薄層クロマトグラフィーまたはＴＬＣは、
Ｍａｃｈｅｒｅｙ−Ｎａｇｅｌ Ｐｏｌｙｇｒａｍ（登録商標） Ｓｉｌ Ｇ／ＵＶ２５
４ ０．２ｍｍプレートを用いて行った。ほとんどのプレートはＵＶ光により可視化した
。幾つかはヨウ素またはリンモリブデン酸を用いて現像した。シリカゲルクロマトグラフ
ィーはＡｌｄｒｉｃｈシリカゲル（２３０〜４００メッシュ、６０Å）を用い、ガラスカ
ラム中で約３０ｐｓｉのＮ２またはアルゴン上部圧力下で行った。分析ＨＰＬＣは、８１
１Ｃダイナミックミキサー、３０６ＵＶ／ＶＩＳ １５５検出器、および２１５液体ハン
ドラーを備えた、ＧｉｌｓｏｎＨＰＬＣシステムを用いて行った。ＵＶ吸光度は２２０ｎ
ｍおよび２５４ｎｍにおいて測定し、統合は２５４ｎｍにおいて行った。フロー率は典型
的には１ｍＬ／分にて行った。順相クロマトグラフィーは４．６ｍｍＸ２５ｃｍのＤｕＰ
ｏｎｔ Ｚｏｒｂａｘ ＯＤＳカラムを用いて行った。逆相クロマトグラフィーはＡｌｌ
ｔｅｃｈ Ａｄｓｏｒｂｏｓｐｈｅｒｅ ５ミクロン、４．６ｍｍＸ２５ｃｍ Ｃ１８カ
ラムを用いて行った。キラルＨＰＬＣはＣＨＩＲＡＬＣＥＬ（登録商標）５ミクロン、４
．６ｍｍＸ２５ｃｍ ＯＤ−Ｈカラム、ＣＨＩＲＡＫＰＡＫ（登録商標）５ミクロン、４
．６ｍｍＸ２５ｃｍ ＡＤ−Ｈカラム、または５ミクロン、 １００Å、４．６ｍｍＸ２
５ｃｍ Ｒｅｇｉｓ Ｒｅｘｃｈｒｏｍ （Ｓ，Ｓ） ＵＬＭＯカラムを用いて行った。
他に記載のない限り、溶媒は試薬グレードであった。無水溶媒は購入したものを使用した
。
一般合成法
Ａ、ＢおよびＲ２が上記のように定義され、かつＲ１がアルケニル基を表す、式２また
は式３で表される鏡像異性体の豊富な化合物は、一般模式図１に記載される不斉合成を通
して調製されてよい。
保護ヒドラジン１（例えばカルバジン酸ベンジルまたはカルバジン酸ｔ−ブチル）とア
ルデヒドＲ２ＣＨＯとの反応は２を産出する。２の不斉アリル化は、とりわけキラル試薬
およびＲ２の選択に依存して、３または４のいずれかを鏡像異性体の豊富な形で供給する
。不斉アリル化反応を行なうための方法は当該技術分野において公知であり、本発明の化
合物を調製するために利用されてよい。不斉アリル化反応において特に有用なキラル試薬
の合成は、Ｌｅｉｇｈｔｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１２５：９
５９６ （２００３）および国際公開第０３／０７４５３４号に記載されている。３とカ
ルボン酸塩化物Ｂ−ＣＯＣｌとの反応は５を与える。カルボン酸Ｂ−ＣＯ２Ｈもまた、３
と共役して５を供給し得る。５の保護基の除去は６を与える。当業者は、ヒドラジンの脱
保護のために、保護基の性質に依存した様々な方法があることを認識する。適切な保護／
脱保護の戦略は“Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ Ｇｒｏｕｐｓ ｉｎ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｓｙｎ
ｔｈｅｓｉｓ”，Ｔ．Ｗ．Ｇｒｅｅｎ ａｎｄ Ｐ．Ｇ．Ｍ．Ｗｕｔｓ（１９９９）にお
いて考察されている。７とカルボン酸塩化物Ａ−ＣＯＣｌまたはカルボン酸Ａ−ＣＯ２Ｈ
との反応との反応は８、式２で表される化合物を与える。同様に、反応４は式３で表され
る化合物を導く。
Ａ、Ｂ、Ｒ１およびＲ２が上記のように定義され、式２または式３で表される鏡像異性
体の豊富な化合物もまた、一般模式図２に記載される不斉還元を通して調製されてよい。
アシルヒドラジン１とケトンＲ１ＣＯＲ２との反応は、ヒドラジン２を供給する。２の
不斉還元は、とりわけ還元試薬、Ｒ１およびＲ２の選択に依存して、３または４を鏡像異
性体の豊富な形で供給する。米国特許第５，２５０，７３１号は、キラルホスホラン触媒
複合体の存在下で光学的に活性のあるアシルヒドラジンを与える、アシルヒドラジンの不
斉触媒水素化について記述している。当業者は、その他のキラルリガンドもまた使用され
てよいことを認識するであろう。さらに当業者は、さらなる不斉還元方法も利用されてよ
いことを認識するであろう。この例において、３とＢＣＯＣｌの反応は５、式２で表され
る化合物を与える。同様に、反応４は式３で表される化合物を導く。
加えて、式２または式３で表される鏡像異性体の豊富な化合物は、キラル分割、あるい
は不斉合成とキラル分割との組み合わせ、または不斉水素化とキラル分割との組み合わせ
を通して調製されてよい。一般模式図３に描写されるように、ラセミジアシルヒドラジン
をキラルＨＰＬＣクロマトグラフィーへ供することは、式２または式３で表される鏡像異
性体の豊富な化合物を供給する。キラル分割における使用に適切なキラルカラムは、例え
ばＤａｉｃｅｌ ＣＨＩＲＡＬＣＥＬ（登録商標）ＯＤ−Ｈ、Ｄａｉｃｅｌ ＣＨＩＲＡ
ＫＰＡＫ（登録商標）ＡＤ−Ｈ、およびＲｅｇｉｓ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ ＵＬＭ
Ｏキラルカラムを含む。その他のキラル分割法もまた可能である。キラル分割方法におけ
る使用のためのラセミジアシルヒドラジンは、米国特許出願公開第２００５／０２０９２
８３Ａ１号および米国特許出願公開第２００６／００２０１４６Ａ１号に記載される方法
論を用いて調製されてよい。
Ｒ１がアルケニル基を表す、式２または式３で表される鏡像異性体の豊富な化合物は、
標準の化学的形質転換を用いてさらに合成されてよい。一般模式図４に描写されている式
３で表される鏡像異性体の豊富な化合物のように、アルケニル基は、アルキル基、ヒドロ
キシアルキル基、任意にシクロアルキル基で置換されたアルキル基、任意に複素環基で置
換されたアルキル基、アルコキシ基で置換されたアルキル基、ハロアルキル基、およびそ
の他の任意に置換されたアルキル基へ転換されてよい。当業者は、アルケンを本発明のそ
の他の基へ転換するために使用されてよい、単一または複数工程の化学的形質転換の種類
を認識するであろう。
本発明は、上記の一般合成法、および本発明の例としての、下記の限定されない実施例
への参照によりより良く理解されるであろう。
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド
化合物１：カルバジン酸ベンジルは市販されている。
化合物２：カルバジン酸ベンジル（３００ｇ、１．８１モル）は、還流冷却器、温度計
、マグネチックスターラー、および５００ｍＬの添加漏斗を備えた３Ｌの四首フラスコ中
で、１．２Ｌのメチルアルコールに溶解した。４５℃の温度にした混合物へ、氷酢酸（５
ｍＬ）を加えた。ピバルアルデヒド（２４８．８ｇ溶液、２．１７モル、ｔ−ブタノール
中で約７５％）を３０分にわたり部分的に加えた。ＴＬＣでモニターする間、反応を還流
により３０分間熱した。混合物を室温に近い温度まで冷却し、全用量が約７００ｍＬにな
るまで回転式エバポレーターにより濃縮した。約７ｇの活性炭を約３０℃において加えた
。混合物を一夜攪拌し、ポアサイズ「Ｃ」のガラスフリットブフナー漏斗中のセライトパ
ッドを通して濾過した。溶媒を真空中で除去し、残った浅黄色油を結晶皿に注ぎ、スパー
テルを用いた操作により結晶化を誘導した。材料を顆粒化し、残りの溶媒を室温にて空気
中で数日間蒸発させ、４２０．４ｇの未精製産物を残した。３００ｍＬの酢酸エチルと１
Ｌのヘキサンを最初に沸騰させた混合物からの室温での再結晶化により、３６３．２ｇの
オフホワイト固体である（Ｅ）−Ｎ’−（２，２−ジメチル−プロピリデン）−ヒドラジ
ンカルボン酸ベンジルエステルを生じた。４３．１ｇの２番目の収穫物および同等の融点
は、約１５０ｍＬのヘキサンと４５ｍＬの酢酸エチルとの混合物から得られた。総収率：
９６．１％。Ｒｆ＝０．３２（２：１ ヘキサン：酢酸エチル）；ｍｐ＝７４〜７４．５
℃；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ８．０（１Ｈ、ｂｒ ｓ）、７．４−
７．３（５Ｈ、ｍ）、７．１ （ＩＨ、ｓ）、５．２０（２Ｈ、ｓ）、１．１（９Ｈ、ｓ
）。
化合物３：（Ｓ，Ｓ）−２−アリル−２−クロロ−３，４−ジメチル−５−フェニル−
［１，３，２］オキサザシロリジンは、Ｌｅｉｇｈｔｏｎ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ａｍ
． Ｃｈｅｍ． Ｓｏｃ． １２５：９５９６ （２００３）および国際公開第０３／０
７４５３４号の改変法を用いて調製した。全体の手順は、最小化された短い瞬間大気に曝
す、無水の閉鎖システム化で行った。乾燥機で乾燥した、ガス口、攪拌器、および添加漏
斗を備えた５Ｌの四首フラスコへ、最初にアリルトリクロロシラン（４１９．５ｇ、２．
３９モル）、次に２Ｌの無水ＣＨ２Ｃｌ２を負荷した。溶液は氷／塩浴内でアルゴン下に
おいて０℃まで冷却した。トリエチルアミン（４８５ｇ、４．７９モル）を添加漏斗を通
して加え、温度を０℃に保った。この時点で、反応は透明な琥珀色であった。２時間にわ
たり、内部温度を＜１５℃に保って、Ｓ，Ｓ−プソイドエフェドリン（３５９ｇ、２．１
７モル）を固体添加漏斗を用いて部分的に加えた。添加漏斗は２００ｍＬのＣＨ２Ｃｌ２
で反応中へ洗い流した。時間が経過すると、ペースト様の半顆粒固体が形成された（Ｅｔ
３ＮＣｌ）。薄茶色の粘調のスラリーを氷上で約２時間攪拌し、その後氷浴を取り外すこ
とにより、数時間かけて反応を室温にした。システムをアルゴン下に保ち、約１２時間後
、ほとんどのＣＨ２Ｃｌ２を蒸留により取り除いた。１Ｌの無水ヘキサンを加え、溶媒を
再び蒸留した。その後１Ｌの無水ペンタンを加え、混合物をアルゴン下で約１時間室温に
て攪拌した。初めにＣＨ２Ｃｌ２中で形成された以前のペースト様のスラッジは、最初に
ヘキサンの添加により、次に、特にペンタンの添加の後さらに顆粒状になった。溶液の色
は明るい琥珀色であった。部分的に、および穏やかなアルゴン圧の使用により、ペンタン
および可溶性産物は反応フラスコの外へ、ガラスウールフィルターおよびＰＦＡチューブ
を通り、蒸留ヘッドおよびマグネチックスターラーを備えた、２番目の乾燥した１Ｌ，三
首丸底フラスコ内へ移動した。溶液移動と交互に、濃縮された油性産物を後に残し、ペン
タンを第２のフラスコから留去した。この過程を繰り返し、残余のＥｔ３ＮＣｌを２回、
各５００ｍＬのペンタンで洗浄し、洗浄液をアルゴン雰囲気下で２番目のフラスコへ移し
た。約１０ｔｏｒｒの真空度での蒸留により、留分中の産物を集めた。約３％までのアリ
ルトリクロロシランを含むと考えられる前留分において、約５６．３ｇ（９．７％）が回
収された。主要な留分、精製された（Ｓ，Ｓ）−２−アリル−２−クロロ−３，４−ジメ
チル−５−フェニル−［１，３，２］オキサザシロリジンは４１３．３ｇ（７１％）の量
、ｂｐ＝１４０〜１４４＠約１０ｔｏｒｒ、回収時にはやや粘調の浅黄色であるが、セプ
タム／パラフィルムにより固く密閉して数日間にわたり冷蔵するとオレンジ色になる。こ
の材料は冷蔵保存され、その特性は示されておらず、かつ続くアリル化反応においてさら
に精製することなく使用された。
化合物４：温度計およびマグネチックスターラーを備えた５Ｌの四首フラスコを乾燥機
で乾燥させ、２Ｌの無水ＣＨ２Ｃｌ２、続いてＮ’−（２，２−ジメチル−プロピリデン
）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステル（２２０ｇ、９３９ｍｍｏｌ）を加える間、
アルゴン下に維持した。混合物は、大きな、約１０ガロンの氷／塩水浴中で２〜３℃にお
いて冷却および攪拌した。（Ｓ，Ｓ）−２−アリル−２−クロロ−３，４−ジメチル−５
−フェニル−［１，３，２］オキサザシロリジン（３６３ｇ、１．３５５モル）を、約３
０分にわたり、カニューレを用いて穏やかなアルゴン圧の補助によりフラスコ内へ加えた
。温度を２〜３℃に保つ間、最初に淡黄色であった溶液は、透明な明るいオレンジ色にな
った。反応を室温で自然に室温まで温め、ＣＨ２ＯＨ中の少量の分割量の反応停止をモニ
ターし、かつＴＬＣ（２：１ ヘキサン：ＥｔＯＡｃ）により分析した。開始から３６時
間後、ＴＬＣ分析は約９０％の完了を示した。混合物を５℃に冷却し、さらなる４６ｇ（
０．１７９ｍｍｏｌ）のオキサザシロリジンを加え、混合物を室温にまで温めた。約８時
間後、反応を再び５℃に冷却し、予め冷却した１００ｍＬの脱イオン水中の１００ｇのＫ
２ＣＯ３溶液により約１時間にわたって反応を停止させた。反応停止の間、発熱が温度を
１７℃くらいまで上昇させた。約１００ｍＬのさらなる脱イオン水を加えた。溶液の外見
は透明の青緑色になった。反応または反応停止の間、明らかなガスの発生する時間はなか
った。室温での攪拌の４日後、溶液は明るい黄色になり、５日後有機相はゲル化したが色
はなお明るい黄色であった。混合物を約１５℃に冷却し（後にこれは必要でないことが明
らかになる）、約１．２５Ｌのヘキサンを加え、ゲルは部分的に崩壊し、かつ攪拌によっ
て破壊された。上清を吸い出し、ガラスウールを通して濾過する一方、フラスコに残った
白色ゲルに約１Ｌの一部分を加えた。プソイドエフェドリンを白色個体として沈殿させ、
残ったいずれのゲルも崩壊させるため、さらなるヘキサンもまた上清へ加えた。ヘキサン
抽出物を合わせ、溶媒を真空中で除去した。全体的に、ゲルの抽出、ヘキサンにより誘導
されるプソイドエフェドリンの沈殿、ならびにガラスウールおよびガラスフリットブフナ
ー漏斗を通し、黄色油としての未精製のアリルヒドラジドを得るために約５〜６Ｌのヘキ
サンが使用された。バッチにおいて、この未精製の材料を３倍量のヘキサンで処理し、室
温に静置し、沈殿したプソイドエフェドリンからデカントし、別の漏斗へ移した。産物溶
液を、１．４ＮのＨＣｌをそれぞれ約２５ｍＬずつ用いて２回洗浄し（ほとんどの色が除
かれる）、続いて１０％Ｋ２ＣＯ３および塩水で洗浄することにより、残りのプソイドエ
フェドリンから分離した。未精製産物のヘキサン溶液は固体無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥し
、明るい黄色の粘性の油を与えるために溶媒を真空中で除去した。ＴＬＣ（２：１ ヘキ
サン：ＥｔＯＡｃ）は、Ｒｆ＝０．４に望まれる産物を示し；０．２５および０．３１に
おいて２つの不純物が見られ（各５〜１０％、そのうちの１つはおそらく出発物質））、
かつＲｆ＝０．４の上に幾つかの顕著な不純物が見られた。以前、基線に検出されたプソ
イドエフェドリンは、現在消失した。真空ポンプの微量の溶媒を除去した後、総量１９６
．８ｇ（７５．８％）の（Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブト−３−エニル）−
ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステルを琥珀色の油として検出した。現在いくらか濃縮
され顆粒状である最初のゲルを、約２Ｌの沸騰したヘキサンで濃縮した。固体を濾過し、
ヘキサンを除去し、沈殿したプソイドエフェドリンから油をデカントすると、約１８ｇを
生じた。この材料と、上記の最初の産物のバッチからの残基（約３〜４ｇ）を合わせ、以
前のように１．４ＮのＨＣｌ、Ｋ２ＣＯ３水溶液、および塩水により洗浄した。ヘキサン
の除去により、２０．６ｇのさらなる産物が琥珀色の油として生じ、これはＴＬＣにより
最初のバッチと同一と見られた。（Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブト−３−エ
ニル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステルの一部１０．１ｇをシリカゲル上で定量
的なクロマトグラフィーを行なうと、８．８８ｇ（クロマトグラフィーによる８８％の収
率）の透明なオフホワイトの油である純粋な産物を生じた。Ｒｆ＝０．４３（２：１ ヘ
キサン：酢酸エチル）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ７．４（５Ｈ、ｂ
ｒ ｓ）、６．２（１Ｈ、ｂｒ ｓ）、６．０（１Ｈ、ｂｒ ｓ）、５．１５（２Ｈ、ｓ
）、５．１（２Ｈ， ｓ）、４．１（１Ｈ、ｂｒ）、２．７（１Ｈ、ｍ）、２．４（１Ｈ
、ｂｒ ｄ）、２．０（１Ｈ、ｍ）、０．９５（９Ｈ、ｓ）；ｅｅ＝９８．１％、ＡＤ−
Ｈカラム；［α］２５５８９−４２．５°（ｃ２．１８、ＣＨ３ＯＨ）。
化合物５：（Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブト−３−エニル）−ヒドラジン
カルボン酸ベンジルエステル（１１０ｇ、３９８ｍｍｏｌ）および５００ｍＬの塩化メチ
レンを、温度計およびマグネチックスターラーを備えた２Ｌの丸底フラスコに加えた。続
いてＫ２ＣＯ３溶液（８２．５１ｇ、２００ｍＬの脱イオン水中で５９７ｍｍｏｌ）を加
え、フラスコを約１０℃まで冷却した。その後２０分間にわたり、未希釈の３，５−ジメ
チルベンゾイル塩化物（７３．８２ｇ、４３７．８ｍｍｏｌ）をゆっくりと加えた。残余
の酸塩化物をフラスコ内へすすぎ入れ、反応混合物を希釈するために１Ｌの塩化メチレン
を用いた。添加の間、温度が１５℃を超えないようにした。最初は氷浴中、次に室温にお
いて、反応を一夜攪拌した。約１６時間目のＴＬＣ分析は、残余の酸塩化物により反応が
終了したことを示し；混合物は全部で約４０時間攪拌した。反応混合物を２Ｌの分液漏斗
へ注いだ。有機層を回収し、水層の少量の逆流ＣＨ２Ｃｌ２と合わせた。有機相をもう一
度１０％Ｋ２ＣＯ３で洗浄し、塩水で洗浄し、その後固体のＭｇＳＯ４／Ｎａ２ＳＯ４上
で乾燥させた。混合物を塩から濾過し、溶媒を真空中で除去して顆粒状の明るいベージュ
色の固体を得た。未精製産物を３００ｍＬの２：１ヘキサン：エーテル中に懸濁して攪拌
し、ブフナー漏斗で濾過して、残余の３，５−ジメチルベンゾイル塩化物を実質的に除去
した。回収した固体を、全量約１２００ｍＬの組み合わせた２：１ヘキサン：エーテルで
４回以上洗浄することにより、白色の顆粒状固体が得られた。産物を回収して空気中で乾
燥させ、１４４．５５ｇの（Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブト−３−エニル）
−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステルを
得た。収率＝８８．９％。３０ｇのサンプルを２０５ｍＬの沸騰させたメタノールに溶解
し、室温で結晶化させた。結果としてできた凝集材料をブフナー内で５０ｍＬのＣＨ３Ｏ
Ｈにて洗浄し、２２．２ｇ、ｍｐ＝１４６℃、（ｅｅ＞９９．９％）を得た。（Ｒ）−Ｎ
’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブト−３−エニル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾ
イル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステルの分析サンプルは、この材料を沸騰した
ＣＨ３ＯＨから２度再結晶化し、続くクーゲルロール短経路蒸留および固体として回収さ
れた、純粋な白色の材料として得られた：ｍｐ＝１４５．５〜１４７℃。Ｒｆ＝０．１２
（１０：１ ヘキサン：酢酸エチル）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ７
．５−７．２（ｍ、９Ｈ、ψ＋ＮＨ）、７．２−６．８（ｍ）、６．４（Ｓ）、６．３（
Ｓ）、５．９５（ｂｒ、５Ｈ、ベンジリック＋Ｃ＝Ｃ）、５．４−４．６（ｍ、９Ｈ、ア
リルのＮ−ＣＨ、ψ−ＣＨ３）、３．６５（ｂｒ）、２．５（ｍ）、２．３５（Ｓ）、２
．３（Ｓ）、１．２−０．８（ｍ、９Ｈ、−Ｃ（ＣＨ３）３）；［α］２５５８９−１２
．８°（ｃ２．０１、ＣＨＣｌ３）。
化合物６：（Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブト−３−エニル）−Ｎ’−（３
，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステル（１３．５ｇ、
３３ｍｍｏｌ）を室温で１００ｍＬの氷酢酸に懸濁した。木炭上の１０％パラジウム（０
．２４ｇ）をスラリーとして４．４ｇの酢酸中に加えた。灰色の懸濁物をＰａｒｒ水素添
加装置上で１０−３０ｐｓｉにて９０分間振とうし、反応をＴＬＣでモニターした。触媒
を処理させ、反応液をピペットで除去し、波状濾紙（Ｓｃｈｌｅｉｃｈｅｒ ＆ Ｓｃｈ
ｕｅｌｌ、５９７ １／２、直径１２５ｍｍ）に通した。残余の触媒を酢酸で洗浄し、洗
浄液を濾紙に通して、酢酸と産物を合わせた質量が１５６ｇになるようにした。混合物を
氷上で冷却し、約６００ｍＬの脱イオン水を加えた。３０分間にわたって産物の油を除去
し、その後結晶化させた。これを、紙を通して濾過し、空中で乾燥させ、紙上から７．９
ｇの明るい黄色の固体を回収した。数時間にわたり濾液からさらなる０．５２ｇの産物を
沈殿させ、総収量８．４２ｇ（９２．２％）の（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−
（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−ヒドラジドを得た；Ｒｆ＝０．５（１：１ ヘキサ
ン：酢酸エチル）；［α］２５５８９＋７．６３（ｃ１．９８、ＣＨ３ＯＨ）、１Ｈ Ｎ
ＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ７．０５（１Ｈ、ｓ）、７．０２（２Ｈ、ｓ）、４
．６＋３．５（１Ｈ、２ｄ）、４．１（２Ｈ、ｓ、ＮＨ２）、２．３８＋２．３７（６Ｈ
、２ｓ）、１．１−２．１（４Ｈ、ｍ）、１．０＋０．９（９Ｈ、２ｓ）、１．０＋０．
９８（３Ｈ、２ｔ）、２つの異なる構造異性体。
化合物７（タイトル化合物）：（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒ
ｔ−ブチル−ブチル）−ヒドラジド（３５ｇ、１２６．６ｍｍｏｌ）を、マグネチックス
ターラーを備えた５００ｍＬの丸底フラスコ中で１００ｍＬの塩化メチレンに溶解した。
水溶性Ｋ２ＣＯ３（２６．２５ｇ、１８９．９ｍｍｏｌ、７５ｍＬの脱イオン水溶液）を
加え、混合物を氷上で攪拌した。固体の２−エチル−３−メトキシベンゾイル塩化物（２
７．６７ｇ、１３９．３ｍｍｏｌ）を加え、２５ｍＬのＣＨ２Ｃｌ２を用いてフラスコ内
へすすぎ込んだ。混合物を氷上で約４０時間攪拌し、浴槽を室温まで温めた。操作の補助
の必要に応じ、さらなる塩化メチレンおよび水を加えた。有機層を分離し、ＭｇＳＯ４上
で乾燥させた。約５ｇの活性炭を加え、紙を通した濾過で塩および炭素を除去した。溶媒
を真空中、最初は回転式エバポレーターで、次に高度の真空中で蒸発させ、わずかなＣＨ
２Ｃｌ２を含む５７．８ｇの未精製産物を得た。未精製材料をフリットガラスブフナー漏
斗（ポアサイズＡＳＴＭ４０−６０Ｃ、Ｐｙｒｅｘ）中で、最初は３ｘ１００ｍＬ分のエ
ーテル（２％エタノール）により、次に１ｘ１００ｍＬ部の１：１ヘキサン：エーテルに
より粉砕した。産物をその後２ｘ２００ｍＬの脱イオン水と混合することにより洗浄し、
空気中で乾燥させた。（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル
−ブチル）−Ｎ’−（２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド（（Ｒ）−
２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドとも呼ばれる）を、明るい白色の粉状固
体（３６．５１ｇ、６５．７％の収率、極めて純粋かつＨＰＬＣおよびキラルＨＰＬＣに
よる高いｅｅ、ＴＬＣによる１スポット、１：１ヘキサン：エーテル）として回収した。
合わせた有機洗浄液の蒸発は約２０ｇの材料を生じ、これをフリットガラスブフナー漏斗
、ポアサイズＡＳＴＭ４０−６０Ｃ中で、最初は２００ｍＬの２：１ヘキサン：エーテル
により、次に２ｘ１００ｍＬの２：１ヘキサン：エーテルにより粉砕した。材料を３ｘ１
００ｍＬの脱イオン水と混合することにより洗浄し、空気中で乾燥させた。２番目の産物
を白色粉末（１２．９８ｇ、２３．４％の収率、極めて純粋、かつＨＰＬＣおよびキラル
ＨＰＬＣによる高いｅｅ）として回収した。３番目の産物を同様の方法で、オフホワイト
の固体（１．５２ｇ、２．７％、９８％の純度、＞９９％のｅｅ）として得た。最後のサ
ンプルを温かいメタノールに溶解し、０．４５ミクロンのシリンジフィルターを通して大
きな結晶皿へ濾過することにより調製した。材料を回収し、スパーテルで微粉砕し、一定
の重量になるまで乾燥機中で５０〜５８℃において熱した。ＨＰＬＣ分析は９９．３％の
化学的純度、および＞９９．９％ｅｅ、Ｒｆ＝０．２８（１：１ ヘキサン：酢酸エチル
）；ｍｐ＝１６２．２〜１６２．８℃；［α］２５５８９＋１２．９（ｃ２．０４、ＣＨ
３ＯＨ）、１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）δ７．０−７．１（４Ｈ、ｍ）、
６．９（１Ｈ、ｄ）、６．１−６．４（１Ｈ、２ｄ）、４．５−４．７（１Ｈ、２ｄ）、
３．７８（３Ｈ、ｓ）、２．３（６Ｈ、ｓ）、２．３（１Ｈ、ｍ）、１．９（２Ｈ、ｍ）
、１．５５（３Ｈ、ｍ）、１．１−１．１５（９Ｈ、２ｓ）、０．９−１．０（６Ｈ、ｍ
）を示した。
実施例２ないし２９は、実施例１に記載される方法論を用いて調製した。パーセント鏡
像異性体過剰率（ｅｅ）はキラルＨＰＬＣにより決定された。表２は実施例２ないし２９
の分析データを提供する。










（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（Ｓ）−［２−（６−メトキシ−ナフタレン−２−イル）−プロピオニル］−ヒドラジド
化合物１：（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル
）−ヒドラジドは、実施例１に記載されている通りに調製した。
化合物２：化合物２は相当するカルボン酸から調整した。マグネチックスターラーを備
えた丸底フラスコ内の、８．２ｍＬのクロロホルム中の（Ｓ）−（＋）−２−（６−メト
キシナフタレン−２−イル）−プロピオン酸（Ｎａｐｒｏｘｅｎ、２ｇ、８．６９ｍｍｏ
ｌ）溶液に、塩化チオニル（１．２４ｇ、１０．４２ｍｍｏｌ）を加えた。ＤＭＦの液滴
を加え、混合物を３時間還流した。塩化メチレンを加える間、クロロホルムおよび余剰の
塩化チオニルを反応混合物から蒸留した。余剰の溶媒の蒸発は、（Ｓ）−２−（６−メト
キシ−ナフタレン−２−イル）−プロピオニル塩化物（１．９１８ｇ、８８．８％の収率
）を生じた。Ｒｆ＝０．２（１：１ ヘキサン：酢酸エチル）。１Ｈ ＮＭＲ（４００Ｍ
Ｈｚ、ＣＤＣｌ３）δ９．９８（ｂｒ、１Ｈ）、７．７８（ｔ、２Ｈ）、７．３６（ｄ、
１Ｈ）、７．１８（ｄ、１Ｈ）、７．１４（ｍ、２Ｈ）、４．２５（ｑ、１Ｈ）、３．９
３（ｓ、３Ｈ）、１．６８（ｄ、３Ｈ）。
化合物３（タイトル化合物）：（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒ
ｔ−ブチル−ブチル）−ヒドラジド（前駆体に基づく推定ｅｅは＞９９％、１．１ｇ、３
．９８ｍｍｏｌ）を、１０ｍＬの塩化メチレン中に溶解した。水溶性Ｋ２ＣＯ３溶液（２
．５ｍＬ中、０．９０７ｇ、６．５７ｍｍｏｌ）を反応溶液に加えた。（Ｓ）−２−（６
−メトキシ−ナフタレン−２−イル）−プロピオニル塩化物（１．０９ｇ、４．３８ｍｍ
ｏｌ）を加え、反応を２４時間攪拌し、ＴＬＣによりモニターした。操作の補助の必要に
応じ、さらなる塩化メチレンおよび水を加えた。有機層を分離し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥
させ、濾過し、溶媒を真空中で除去して未精製産物を得た：ｍｐ＝９８℃（ガラス）−１
２３℃。未精製材料を２：１ヘキサン：エーテルにより２回粉砕し、１．５５４ｇ、収率
８０．１％の（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル
）−Ｎ’−（Ｓ）−［２−（６−メトキシ−ナフタレン−２−イル）−プロピオニル］−
ヒドラジド、ｍｐ＝９８℃（ガラス）−１２２℃を得た。粉砕された材料を３５℃におい
てイソプロパノールから結晶化して結晶化産物を得た。３つのロットの１Ｈ ＮＭＲスペ
クトルは全て同等であった。Ｒｆ＝０．１５（１：１ ヘキサン：エチルエーテル）；ｍ
ｐ＝１５８〜１６０℃（加熱は１５０℃において開始した）；ｍｐ＝１５６〜１６４℃（
加熱は２５℃において開始した）；［α］２５５８９＋９５．８゜（ｃ２．０２、ＣＨ３
ＯＨ）、１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ６）δ９．９６＋９．８２（ＮＨ、
２ｓ）、７．７１＋７．５８（２Ｈ、２ｄ）、７．６３（１Ｈ、ｓ）、７．４９＋７．３
１（１Ｈ、２ｄ）、７．２６（１Ｈ、ｓ）、７．１３＋６．７７（１Ｈ、２ｄ）、７．０
６（２Ｈ、ｓ）、６．６８＋６．３０（１Ｈ、２ｓ）、４．３１（ｍ、１Ｈ）、３．８８
＋３．８５（３Ｈ、２ｓ）、３．５８（１Ｈ、ｍ）、２．３０＋１．８３（６Ｈ、２ｓ）
、１．６４−１．０３（４Ｈ、ｍｍ）、１．００（３Ｈ、ｍ）、０．８７＋０．８４（９
Ｈ、２ｓ）、０．６３（３Ｈ、ｔ）；１３Ｃ ＮＭＲ（１００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ１
７３．９、１７２．２、１５７．８、１３７．３、１３３．７、１３０．８、１２９．１
、１２８．８、１２７．４、１２５．９、１２５．８、１２３．７、１２３．３、１１９
．２、１１９．１、１０５．５、６２．７、５５．３、４５．１、３５．０、２８．５、
２７．６、２６．９、２１．２、１７．５、１４．２；ＨＲＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ、Ｃ３
１Ｈ３９Ｎ２Ｏ３［Ｍ−Ｈ］−についての計算値：４８７．２９６６、測定値：４８７．
２９４９、Ｃ３１Ｈ４０ＣｌＮ２Ｏ３［Ｍ＋Ｃｌ］−についての計算値：５２３．２７３
３、測定値：５２３．２７１８、Ｃ３１Ｈ４０Ｎ２Ｏ３についての分析的計算値：Ｃ、７
６．１９；Ｈ、８．２５；Ｎ、５．７３；Ｏ、９．８；測定値：Ｃ、７６．０１；Ｈ、８
．３５；Ｎ、５．７０。
実施例１における不斉アリル化反応の立体化学的経路を決定するため、（Ｒ）−３，５
−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（Ｓ）−［２−（
６−メトキシ−ナフタレン−２−イル）−プロピオニル］−ヒドラジドのＸ線結晶構造を
決定した。この実験は、Ｒで表されるｔｅｒｔ−ブチル基およびｎ−プロピル基を有する
炭素の絶対配置を確立した。
（Ｓ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
（２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド
化合物１：（Ｅ）−Ｎ’−（２，２−ジメチル−プロピリデン）−ヒドラジンカルボン
酸ベンジルエステルは、実施例１に記載された通りに調製された。
化合物２：（Ｒ，Ｒ）−２−アリル−２−クロロ−３，４−ジメチル−５−フェニル−
［１，３，２］オキサザシロリジンは、Ｒ，Ｒ−プソイドエフェドリンを用い、実施例１
に記載された方法論を用いて調製された。
化合物３：（Ｓ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブト−３−エニル）−ヒドラジン
カルボン酸ベンジルエステルは、実施例１に記載された方法論を用いて調製された。分析
データ：Ｒｆ＝０．４６（２：１ヘキサン：酢酸エチル）；ｍｐ＝６９〜７１℃；１Ｈ
ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ７．４（ｂｒ ｓ、５Ｈ）、６．２（ｂｒ ｓ、
１Ｈ）、６．０（ｂｒ ｓ、１Ｈ）、５．１５（ｓ、２Ｈ）、５．１（ｓ、２Ｈ）、４．
１（ｂｒ、１Ｈ）、２．７（ｍ、１Ｈ），２．４（ｂｒ ｄ、１Ｈ）、２．０（ｍ、１Ｈ
）、０．９５（ｓ、９Ｈ）；ｅｅ＝９８．２％、ＡＤＨカラム；［α］２５５８９＋３９
．３°（ｃ＝２．０３、ＣＨＣｌ３）。
化合物４：（Ｓ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブト−３−エニル）−Ｎ’−（３
，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステルは、実施例１に
記載された方法論を用いて調製された。分析データ：Ｒｆ＝０．４３（２：１ヘキサン：
酢酸エチル）；ｍｐ＝１５０〜１５１．５℃；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３
）δ７．４５−６．８８（ｍ、７Ｈ）、６．４４＋６．２８（２ｓ、１Ｈ）、５．９６（
ｂｒ、１Ｈ）、５．３８−４．６８（ｍ、５Ｈ）、３．６９（ｂｒ、１Ｈ）、２．６８−
２．４３（ｍ、２Ｈ）、２．３６＋２．２９（２ｓ、６Ｈ）、１．１３＋１．０２＋０．
９４（３ｓ、９Ｈ）；［α］２５５８９＋１２．５°（ｃ＝２．０１、ＣＨＣｌ３）。
化合物５：（Ｓ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル
）−ヒドラジドは、実施例１に記載された方法論を用いて調製された。分析データ：Ｒｆ
＝０．５（１：１ヘキサン：酢酸エチル）；ｍｐ＝１１２〜１１２．８℃；１Ｈ ＮＭＲ
（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ７．０５（ｓ、１Ｈ）、７．０２（ｓ、２Ｈ）、４．６
＋３．５（２ｄ、１Ｈ）、２．３８＋２．３７（２ｓ、６Ｈ）、１．２−２．１（ｍ、４
Ｈ）、１．１＋１．０（２ｓ、９Ｈ）、１．０５＋０．９８（２ｔ、３Ｈ）２つの異なる
構造異性体；［α］２５５８９−７．９７（ｃ２．１４、ＣＨ３ＯＨ）。
化合物６（タイトル化合物）：（Ｓ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒ
ｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド
は、実施例１に記載された方法論を用いて調製された。分析データ：Ｒｆ＝０．２８（１
：１ヘキサン：酢酸エチル）；ｍｐ＝１５６．５〜１５７．５℃；［α］２５５８９−１
３．３９°（ｃ２．０５、ＣＨ３ＯＨ）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ６
）δ１０．４＋１０．２６（ｓ、１Ｈ）、７．１８−７．１４（ｍ、３Ｈ）、７．０８（
ｄ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．０３（ｔ，Ｊ＝８．４Ｈｚ、１Ｈ）、６．３４＋６．
２１（ｄ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、１Ｈ）、４．５７＋４．３８（ｄ，Ｊ＝８．４Ｈｚ、１Ｈ）
、３．７８（ｓ、３Ｈ）、２．２９（ｓ、６Ｈ）、２．２７−２．２３（ｍ、１Ｈ）、１
．８９−１．７９（ｍ、２Ｈ）、１．５９−１．３８（ｍ、３Ｈ）、１．０９＋１．０６
（ｓ、９Ｈ）、０．９５＋０．８７（ｔ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、６Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（１
００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ６）δ１７３．４０、１６８．２４、１５７．６４、１３７．
１８、１３６．９８、１３６．５０、１３０．８９、１３０．７３、１３０．２０、１２
６．９６、１２５．２８、１２４．８３、１１９．３７、１１８．９５、１１２．４１、
６２．２９、５６．１１、３５．４５、２８．７１、２７．５６、２１．２４、２０．１
５、１５．１５、１４．６８；ＨＲＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ、Ｃ２７Ｈ３９Ｎ２Ｏ３［Ｍ＋
Ｈ］＋についての計算値：４３９．２９５５、測定値：４３９．２９５、Ｃ２７Ｈ３８Ｎ
ａＮ２Ｏ３［Ｍ＋Ｎａ］＋についての計算値：４６１．２７７４、測定値：４６１．２７
６５；Ｃ２７Ｈ３８Ｎ２Ｏ３についての分析的計算値：Ｃ、７３．９４；Ｈ、８．７３；
Ｎ、６．３９；Ｏ、１０．９４、測定値：Ｃ、７３．８７；Ｈ、８．９４；Ｎ、６．３８
；ｅｅ：＞９９．９％；Ｒｅｇｉｓ（Ｓ，Ｓ）ＵＬＭＯ、１ｍＬ／分のフローレートにお
ける９８：２のヘキサン：メタノールの混合物。
実施例３２ないし４７は、実施例３１に記載される方法論を用いて調製した。パーセン
ト鏡像異性体過剰率（ｅｅ）はキラルＨＰＬＣにより決定された。



（Ｓ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベン
ゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ｔｅｒｔ−ブチルエステル
化合物１：カルバジン酸ｔ−ブチルは市販されている。
化合物２：ピバルアルデヒド（５２．１ｇ、４５４ｍｍｏｌ、約７５％のｔ−ブタノー
ル溶液）を、還流冷却器、温度計、および添加漏斗を備えた１Ｌの三首丸底フラスコ中で
、１２０ｍＬのメタノールに溶解した。氷酢酸（１ｍＬ）を加え、続いて反応熱を逃すこ
となくカルバジン酸ｔ−ブチル（５０ｇ、３７８ｍｍｏｌ）を制御しながら添加した。Ｔ
ＬＣによりモニターしながら混合物を４時間攪拌した。反応の完了に従って溶媒を真空中
で除去し、残渣をペンタン中に採取し、ペンタンを蒸発させた。得られた油を静置により
結晶化して、Ｎ’−（２，２−ジメチル−プロピリデン）−ヒドラジンカルボン酸ｔｅｒ
ｔ−ブチルエステル（７５．７ｇ、９３％）を得た。Ｒｆ＝０．４２（２：１ヘキサン：
酢酸エチル、１％酢酸）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ７．６（ｂｒ
ｓ、１Ｈ）、７．１（ｓ、１Ｈ）、１．５（ｓ、９Ｈ）、１．１（ｓ、９Ｈ）ｐｐｍ。
化合物３：（Ｒ，Ｒ）−２−アリル−２−クロロ−３，４−ジメチル−５−フェニル−
［１，３，２］オキサザシロリジンは、Ｒ，Ｒ−プソイドエフェドリンを用い、実施例１
に記載された方法論を用いて調製された。
化合物４：Ｎ’−（２，２−ジメチル−プロピリデン）−ヒドラジンカルボン酸ｔｅｒ
ｔ−ブチルエステル（１２ｇ、５９．９ｍｍｏｌ）を、乾燥した、温度計、マグネチック
スターラー、および窒素雰囲気を備えた１Ｌの三首丸底フラスコへ負荷した。無水塩化メ
チレン（２００ｍＬ）を、カテーテルを用いてフラスコ内へ負荷した。混合物を氷浴中で
０℃に冷却した。続いて（Ｒ，Ｒ）−２−アリル−２−クロロ−３，４−ジメチル−５−
フェニル−［１，３，２］オキサザシロリジン（２４．０７ｇ、８９．８７ｍｍｏｌ）を
不活性化状態でフラスコへ加えた。数分以内に、最初の明るい黄色の溶液は透明な暗い黄
色へ変化した。ＴＬＣによりモニターしながら、反応を０℃で６時間攪拌し、その後室温
に温め、一夜攪拌した。反応を約２５ｍＬのメタノールの添加により停止させ、これによ
り色は明るくなった。溶液を濃縮し、残渣を１００ｍＬの酢酸エチルおよび１００ｍＬの
水で希釈した。相を分離し、水層を酢酸エチルにより２回抽出した。有機相を合わせ、塩
水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥して濃縮した。得られた油を、ヘキサン中の１０％酢
酸エチルを用いたカラムクロマトグラフィーにより精製した。精製された（Ｓ）−Ｎ’−
（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブト−３−エニル）−ヒドラジンカルボン酸ｔｅｒｔ−ブチル
エステルを油として得た（２．８７ｇ、２４．４％の収率）。不純な画分もまた回収した
（３．１７ｇ）。Ｒｆ＝０．４４（５：１ヘキサン：酢酸エチル、Ｉ２可視化）；１Ｈ
ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ６．０７（ｂｒ、１Ｈ、ＮＨ）、５．８５（ｍ、
１Ｈ）、５．０（ｄｄ、２Ｈ）、２．６（ｍ、１Ｈ）、２．３３（ｍ、１Ｈ）、２．３（
ｍ、１Ｈ），１．４（ｓ、９Ｈ）、０．９（ｓ、９Ｈ）。
化合物５：（Ｓ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブト−３−エニル）−ヒドラジン
カルボン酸ｔｅｒｔ−ブチルエステル（２．３４ｇ、９．６５ｍｍｏｌ）をＰａｒｒビン
中でメタノール（５０ｍＬ）に溶解した。１０％Ｐｄ／Ｃ（７０ｍｇ）を水（１．６ｍＬ
）中のスラリーとして加え、混合物をＰａｒｒ水素添加装置で４．５時間、開始の圧力５
５ｐｓｉで振とうした。圧力の低下を反応の進行の測定としてモニターし、３０分後にお
そらく反応が完了したことが示された。触媒を実質的に処理させ、上清をピペットで除去
し、０．４５ミクロンのシリンジフィルターに通し、ＴＬＣで分析した。溶媒を真空中で
除去し、かすかな淡黄色の油としての（Ｓ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）
−ヒドラジンカルボン酸ｔｅｒｔ−ブチルエステルを得た。Ｒｆ＝０．４８（５：１ヘキ
サン：酢酸エチル、Ｉ２可視化）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）６．０（
ｂｒ、１Ｈ）、４．０（ｂｒ、１Ｈ）、２．５（ｄ、１Ｈ）、１．５（ｓ、９Ｈ）、１．
１（ｍ、２Ｈ）、１．６（ｂｒ、２Ｈ）、０．９４（ｓ、９Ｈ）、０．９４（ｔ、３Ｈ）
。
化合物６（タイトル化合物）：（Ｓ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−ヒ
ドラジンカルボン酸ｔｅｒｔ−ブチルエステル（１ｇ、４．０９ｍｍｏｌ）を、マグネチ
ックスターラーを備えたバイアル内で約３ｍＬの塩化メチレンに溶解した。約２ｍＬの０
．８ｇＫ２ＣＯ３水溶液（５．７９ｍｍｏｌ）、続いて０．８１ｇ（４．８０ｍｍｏｌ）
の３，５−ジメチルベンゾイル塩化物を加えた。反応を最初は氷上で、次に室温まで温め
、一夜攪拌した。その後、それぞれ数ｍＬの水および塩化メチレンを加え、全ての固体を
溶解した。水層を除去し、有機層を固体ＭｇＳＯ４上で乾燥させた。ＴＬＣは反応が約９
５％完了したことを示した。混合物を幾つかのガラスウールを通してバイアル中へ濾過し
た。溶媒を３：１ヘキサン：エーテルおよびペンタンで追跡するＮ２の流れにより蒸発さ
せた。残渣をスパーテルで操作して結晶化を開始させ、凝固が完了した後、小さなフリッ
トガラス漏斗内で２〜３ｍＬのペンタンにより３回粉砕した。空中で乾燥した後、３００
ｍｇ（１９．５％）の（Ｓ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，
５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ｔｅｒｔ−ブチルエステルを得た。
ＴＬＣはこれが極めて純粋であることを示し、キラルＨＰＬＣはｅｅ＝９３．３％を示し
た。融点決定のために、産物を５０℃の真空乾燥機で乾燥させた。Ｒｆ＝０．４２（４：
１ヘキサン：酢酸エチル、ＵＶ（強）、Ｉ２（弱）可視化）；ｍｐ＝１１５．５〜１１７
．５℃；［α］２５５８９−３０．１８（ｃ２．０２、ＣＨ３ＯＨ）、１Ｈ ＮＭＲ（４
００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ７．１５−７．０３（ｍ、３Ｈ）、６．０７＋６．００（ｓ
＋ｄ、１Ｈ）、４．５２＋４．４０（２ｄｄ、１Ｈ）、２．３２＋２．２８＋２．２３（
３ｓ、６Ｈ）、１．８５−０．８９（ｍ、２５Ｈ）。
（Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベン
ゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ｔｅｒｔ−ブチルエステル
化合物１：（Ｒ）−Ｎ’３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブ
ト−３−エニル）−ヒドラジドは、実施例１に記載された通りに調製された。
化合物２（タイトル化合物）：ＴＨＦ（１０ｍｌ）中の（Ｒ）−Ｎ’３，５−ジメチル
−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−ヒドラジド（４００ｍｇ、１．４４
ｍｍｏｌ）溶液をｔ−ｂｏｃ無水物（６２９ｍｇ、２．８８ｍｍｏｌ）へ加えた。反応を
４０時間還流し、冷却し、エーテル（２０ｍＬ）で希釈し、Ｈ２Ｏで洗浄して無水Ｎａ２
ＳＯ４上で乾燥した。溶媒を真空中で蒸発させ、残渣をフラッシュクロマトグラフィーお
よび薄層クロマトグラフィーで精製して、白色固体としての（Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒ
ｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン
酸ｔｅｒｔ−ブチルエステル（４５．７ｍｇ、４．１％の収率）を得た。Ｒｆ＝０．３９
（１：３ＥｔＯＡｃ：ｎ−ヘキサン）；［α］２５５８９＋２６．２５（ｃ２．０９、Ｃ
Ｈ３ＯＨ）、１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ７．１５−７．０３（ｍ、３
Ｈ）、６．０７＋６．００（２ｄ、１Ｈ）、４．５９＋４．５０（２ｄｄ、１Ｈ）、２．
３７＋２．３４（２ｓ、６Ｈ）、１．８５−０．８９（ｍ、２５Ｈ）ｐｐｍ；ＨＲＭＳ（
ＥＳＩ）ｍ／ｚ、Ｃ２２Ｈ３７Ｎ２Ｏ３［Ｍ＋Ｈ］＋についての計算値：３７７．２８０
４、測定値：３７７．２７９５、Ｃ２２Ｈ３６Ｎ２ＮａＯ３［Ｍ＋Ｎａ］＋についての計
算値：３９９．２６２４、測定値：３９９．２６１８。
（Ｒ）−３−メトキシ−２−メチル−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブト−
３−エニル）−Ｎ’−（（Ｓ）−３，３，３−トリフルオロ−２−メトキシ−２−フェニ
ル−プロピオニル）−ヒドラジド
化合物１：３−メトキシ−２−メチル−安息香酸ヒドラジドは、米国特許出願公開第２
００５／０２０９２８３ Ａ１号に記載の方法論を用いて調製した。
化合物２：ピバルアルデヒド（１３．４５ｇ、１５６ｍｍｏｌ）を、丸底フラスコ内で
３００ｍＬのメタノールに溶解した。３−メトキシ−２−メチル−安息香酸ヒドラジド（
２６．６ｇ、１４７．６ｍｍｏｌ）および１００滴の氷酢酸を加え、混合物をＴＬＣでモ
ニターしながら約８時間還流にて熱した。反応の完了に従って溶媒を真空中で除去し、産
物を冷ヘキサン中でスラリー化し、ブフナー漏斗で濾過して２４．４ｇ（６６％）の３−
メトキシ−２−メチル−安息香酸（２，２−ジメチル−プロピリデン）−ヒドラジドを得
た。Ｒｆ＝０．１９、（２：１ヘキサン：酢酸エチル）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、
ＤＭＳＯ−ｄ６）δ７．４２＋７．４１（３ｓ、１Ｈ）、７．１（ｔ、１Ｈ）、６．９（
ｄ、１Ｈ）、６．８２（ｄ、１Ｈ）、３．７８（ｓ、３Ｈ）、２．２＋２．１（２ｓ、３
Ｈ）、１．０７＋１．０（３ｓ、９Ｈ）、複数の立体構造、おそらくＥ／Ｚ混合物。
化合物３：（Ｓ，Ｓ）−２−アリル−２−クロロ−３，４−ジメチル−５−フェニル−
［１，３，２］オキサザシロリジンは実施例１に記載の通りに調製した。
化合物４：３−メトキシ−２−メチル−安息香酸（２，２−ジメチル−プロピリデン）
−ヒドラジド（１０．８４ｇ、４３．３１ｍｍｏｌ）を、窒素雰囲気下に保持した、乾燥
した１Ｌの丸底フラスコ内に負荷した。３５０ｍＬの無水塩化メチレンをカテーテルによ
り加えた。フラスコを氷浴中で約５℃まで冷却した。（Ｓ，Ｓ）−２−アリル−２−クロ
ロ−３，４−ジメチル−５−フェニル−［１，３，２］オキサザシロリジン（１７．４ｇ
、６５ｍｍｏｌ）をシリンジにより加えた。数分以内に最初の明るい混合物は暗い透明な
黄色に変化し、約５℃の窒素下で攪拌を続けた。４時間後、ＴＬＣは完全な反応を示した
。約２５ｍＬのメタノールを穏やかな混合で加えることにより、反応を停止させた。暗い
色は散逸した。溶液を濃縮し、残渣を酢酸エチル（１００ｍＬ）および水（１００ｍＬ）
で希釈した。相を分離し、水層を酢酸エチル（２ｘ１００ｍＬ）で抽出した。合わせた有
機相を塩水で１回洗浄し、ＭｇＳＯ４上で乾燥させ、デカントし、濃縮し、静置により結
晶化した暗い黄色の油を得た（１３．６６ｇ、７２．４％の収率）。未精製材料は、おそ
らくプソイドエフェドリンである不溶性の粉状残渣を除去する一方、４：１ヘキサン：酢
酸エチルから結晶化した。１回の結晶化の後、純化された材料は、Ｍｏｓｈｅｒ分析の決
定によりＲ−異性体を支持する、約８０％のｅｅを示した。３回の結晶化の後、６．６５
ｇの（Ｒ）−３−メトキシ−２−メチル−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブト
−３−エニル）−ヒドラジド（３５．２％）を固体結晶として回収したが、ｅｅのさらな
る改善はみられなかった。Ｒｆ＝０．３８（２：１ヘキサン：酢酸エチル）；１Ｈ ＮＭ
Ｒ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ７．２２（ｔ、１Ｈ）、７．１１（ｂｒ ｓ、１Ｈ）
、６．９５（ｄ、１Ｈ）、６．１５（ｍ、１Ｈ）、５．２（ｄ、１Ｈ）、５．１５（ｄ、
１Ｈ）、３．８９（ｓ、３Ｈ）、２．８０（ｄ、１Ｈ）、２．５０（ｄｍ、１Ｈ）、２．
３３（ｓ、３Ｈ）、２．２（ｄｔ、１Ｈ）、１．０８（ｓ、９Ｈ）。
化合物５（タイトル化合物）：（Ｒ）−３−メトキシ−２−メチル−安息香酸Ｎ’−（
１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブト−３−エニル）−ヒドラジド（１００ｍｇ、０．３４４ｍｍ
ｏｌ）および（Ｒ）−（＋）−アルファ−メチル−アルファ−（トリフルオロメチル）−
フェニルアセチル塩化物（１０４ｍｇ、０．４１３ｍｍｏｌ）をバイアル内で１．５ｍＬ
の塩化メチレンに溶解した。約０．５ｍＬのＫ２ＣＯ３水溶液（９５ｍｇ、０．６９ｍｍ
ｏｌ）を加え、反応混合物を室温にて一夜攪拌し、ＴＬＣでモニターした。相を分離し、
操作の補助の必要性に応じてさらなる塩化メチレンおよび／または水を加えた。塩化メチ
レン層をＭｇＳＯ４上またはＮａ２ＳＯ４上で乾燥させ、溶媒を真空中で除去し、油性の
固体としての未精製産物を得た。この残渣を、結晶化が始まるとすぐにヘキサン／エーテ
ルにより粉砕した。結晶化をさらに妨害することなく進行させた。母液からの分離により
、Ｘ線結晶構造を得られたものから８３ｍｇ（１６．４％）の結晶性（Ｒ）−３−メトキ
シ−２−メチル−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブト−３−エニル）−Ｎ’−
（（Ｓ）−３，３，３−トリフルオロ−２−メトキシ−２−フェニル−プロピオニル）−
ヒドラジドが得られた。Ｍｐ＝１２８−１２９℃；［α］２５５８９＋６６．４°（ｃ２
．００、ＣＨ３ＯＨ）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ７．５（ｄ、２Ｈ
）、７．２−７．３（ｍ、４Ｈ）、７．０７（ｍ、１Ｈ）、６．９（ｄ、１Ｈ）、６．６
＋６．２（ｂｒ、１Ｈ）、５．２（ｄ、１Ｈ）、５．１（ｄ、１Ｈ）、４．８（１Ｈ、ｂ
ｒ）、３．８５（ｓ、３Ｈ）、３．８（ｓ、３Ｈ）、２．５５（ｂｒ、１Ｈ）、２．３５
（ｂｒ、２Ｈ）、１．５（３Ｈ）、１．０５（ｂｒ ｓ、９Ｈ）；１３Ｃ ＮＭＲ（１０
０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ１６８．１、１５８．３、１３８．７、１３４．０、１２９．
４、１２８．０、１２６．５、１２６．４、１２６．３、１２４．９、１２２．１、１１
８．０、１１７．０、１１２．２、５７．３、５５．７、３５．８、３２．０、２８．１
、１２．３；ＨＲＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚＣ２７Ｈ３４Ｆ３Ｎ２Ｏ４［Ｍ＋Ｈ］＋について
の計算値：５０７．２４７１、測定値：５０７．２４６３、ｍ／ｚＣ２７Ｈ３３Ｆ３Ｎ２
ＮａＯ４［Ｍ＋Ｎａ］＋についての計算値：５２９．２２９０、測定値：５２９．２２８
４。Ｃ２７Ｈ３３Ｆ３Ｎ２Ｏ４についての分析的計算値：Ｃ、６４．０２；Ｈ、６．５７
；Ｆ、１１．２５；Ｎ、５．５３；Ｏ、１２．６３。測定値：Ｃ、６３．８７；Ｈ、６．
７１；Ｎ、５．５２。
実施例５０における不斉アリル化反応の立体化学的経路を決定するため、（Ｒ）−３−
メトキシ−２−メチル−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブト−３−エニル）−
Ｎ’−（（Ｓ）−３，３，３−トリフルオロ−２−メトキシ−２−フェニル−プロピオニ
ル）−ヒドラジドのＸ線結晶構造を決定した。この実験は、Ｒで表されるｔｅｒｔ−ブチ
ル基およびｎ−プロピル基を有する炭素の絶対配置を確立した。
（Ｒ）−３，５−ジメトキシ−４−メチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブ
チル）−Ｎ’−（３−メトキシ−２−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド
化合物１：（Ｒ）−３−メトキシ−２−メチル−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチ
ル−ブト−３−エニル）−ヒドラジドは実施例５０に記載された通りに調製した。
化合物２：（Ｒ）−３−メトキシ−２−メチル−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチ
ル−ブト−３−エニル）−ヒドラジド（３．０５ｇ、１０．５ｍｍｏｌ）を１００ｍｌの
メタノールに溶解した。木炭上のパラジウム（１％、２４０ｍｇ）を注意深く加え、混合
物をＰａｒｒ水素添加装置で２．５時間、開始圧力５５ｐｓｉにて振とうした。圧力の低
下を反応の進行の測定としてモニターし、１．５時間後に水素の取り込みが停止した。混
合物はセライトパッドを通して濾過し、溶媒を真空下で除去した。数種の溶媒を用いたＴ
ＬＣによる分析は２つのヒドラジドスポットの区別においてほとんど成功しなかったが、
３：１ヘキサン：酢酸エチル（Ｒｆ＝０．２８）が辛うじて成功であった。未精製産物を
２：１ペンタン：ヘキサンから２回結晶化し、＞０．６ｇの（Ｒ）−３−メトキシ−２−
メチル−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−ヒドラジドを得た。１Ｈ
ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ７．０５（ｔ、１Ｈ）、６．７９（ｄ、１Ｈ）、
６．７６（ｄ、１Ｈ）、３．７（ｓ、３Ｈ）、２．３７（ｍ、１Ｈ）、２．１２（ｓ、３
Ｈ）、１．７−１．１（ｍ、４Ｈ）、０．９０（ｓ、９Ｈ）、０．８２（ｔ、３Ｈ）。
化合物３（タイトル化合物）：（Ｒ）−３−メトキシ−２−メチル−安息香酸Ｎ’−（
１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−ヒドラジド（１００ｍｇ、０．３４ｍｍｏｌ）および
３，５−ジメトキシ−４−メチル−ベンゾイル塩化物（９０ｍｇ、０．４１ｍｍｏｌ）を
１ｍＬの塩化メチレンに溶解した。１．５当量の約２５％Ｋ２ＣＯ３溶液を加え、反応混
合物を室温で攪拌し、ＴＬＣによりモニターした。完了に従って相を分離し、操作の補助
の必要性に応じてさらなるＣＨ２Ｃｌ２および／または水を加えた。ＣＨ２Ｃｌ２相をＭ
ｇＳＯ４またはＮａ２ＳＯ４上で乾燥し、溶媒を真空中で除去して油性の固体を得た。こ
れを１：１ヘキサン：エーテルにより粉砕し、空気中で乾燥させて（Ｒ）−３，５−ジメ
トキシ−４−メチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３−メ
トキシ−２−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジドを得た。Ｒｆ＝０．２９（２：１ヘキサ
ン：酢酸エチル）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ７．１（ｔ、１Ｈ）、
７．０（ｓ、ＮＨ １Ｈ）、６．９（ｄ、１Ｈ）、６．７（ｓ、２Ｈ）、６．３（ｄ、１
Ｈ）、４．７８（ｍ、１Ｈ）、３．９５（ｓ、３Ｈ）、３．８５（２ｓ、６Ｈ）、２．２
（ｓ、３Ｈ）、２．０５（ｍ、１Ｈ）、１．９５（ｓ、３Ｈ）、１．８（ｍ、１Ｈ）、１
．６（ｍ、２Ｈ）、１．２＋１．１＋１．０５（３ｓ、９Ｈ）、１．０５（ｍ、３Ｈ）；
ＨＲＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ、Ｃ２７Ｈ３９Ｎ２Ｏ５［Ｍ＋Ｈ］＋についての計算値：４７
１．２８５９、測定値：４７１．２８５０、Ｃ２７Ｈ３８ＮａＮ２Ｏ５［Ｍ＋Ｎａ］＋に
ついての計算値：４９３．２６７０、測定値：４９３．２６７８。
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−シクロヘキシル−ブチル）−Ｎ’−（
２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド
化合物１：カルバン酸ベンジルは市販されている。
化合物２：カルバン酸ベンジル（２５ｇ、１５０．４４ｍｍｏｌ）を、窒素雰囲気下で
、マグネチックスターラーを備えた丸底フラスコ内で２００ｍＬのエタノールに溶解した
。シクロヘキサンカルバルデヒド（１７．７ｇ、１５８ｍｍｏｌ）および酢酸（１ｍＬ）
を溶液に加え、混合物を室温で８時間攪拌した。得られた固体沈殿を濾過し、ヘキサンで
洗浄し、酢酸エチルから結晶化し、開放された実験台で一夜乾燥させ、２８．８７ｇ（７
３．７％の収率）の白色結晶であるＮ’−シクロヘキシルメチレン−ヒドラジンカルボン
酸ベンジルエステルを得た。Ｒｆ＝０．６７（１：３ヘキサン：酢酸エチル）、１Ｈ Ｎ
ＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ７．８（１Ｈ、ｂｒ ｓ）、７．４（５Ｈ、ｍ）、
７．１（１Ｈ、ｂｒ ｓ）、５．３（２Ｈ、ｓ）、２．４（１Ｈ、ｍ）、１．７−１．９
（４Ｈ、ｍ）、１．３（６Ｈ、ｍ）；ＨＲＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ、Ｃ１５Ｈ２１Ｎ２Ｏ２
［Ｍ＋Ｈ］＋についての計算値：２６１．１６０３、測定値：２６１．１５９２、Ｃ１５
Ｈ２０ＮａＮ２Ｏ２［Ｍ＋Ｎａ］＋についての計算値：２８３．１４２６、測定値：２８
３．１４１７。
化合物３：（Ｓ，Ｓ）−２−アリル−２−クロロ−３，４−ジメチル−５−フェニル−
［１，３，２］オキサザシロリジンは実施例１に記載された通りに調製した。
化合物４：マグネチックスターラーを備えた丸底フラスコに、窒素雰囲気下で、７５ｍ
Ｌの無水ＣＨ２Ｃｌ３中の５ｇ（１９．２１ｍｍｏｌ）のＮ’−シクロヘキシルメチレン
−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステルを負荷した。混合物を０℃に冷却し、シリンジ
を用いて溶液に（Ｓ，Ｓ）−オキサザシロリジン（５．６６ｇ、２１．１ｍｍｏｌ）を加
えた。約３０分後に氷浴を取り除き、反応を室温にて一夜攪拌した。水溶性Ｎａ２ＣＯ３
を加え、反応を停止させた。有機層を除き、水相をＣＨＣｌ３で抽出した。合わせた有機
相を数回水で逆洗し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、回転式エバポレーターを用いて溶
媒を除いた。得られた未精製産物をカラムクロマトグラフィーで精製し、２．３１ｇ、収
率３９．８％の、明るい黄色の粘性油である（Ｒ）−Ｎ’−（１−シクロヘキシル−ブト
−３−エニル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステルを得た。Ｒｆ＝０．４１（３：
１ヘキサン：酢酸エチル）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ７．４（５Ｈ
、ｍ）、６．３（１Ｈ、ｂｒ）、５．９（１Ｈ、ｂｒ ｓ）、５．２５（２Ｈ、ｓ）、５
．２（２Ｈ、ｂｒ ｓ）、２．９５（１Ｈ、ｂｒ ｓ）、２．３５（１Ｈ、ｂｒ ｄ）、
２．１７（１Ｈ、ｂｒ ｍ）、１．８（２Ｈ、ｂｒ ｍ）、１．７５（２Ｈ、ｂｒ ｄ）
、１．５５（１Ｈ、ｂｒ ｔ）、１．０−１．４（６Ｈ、ｍ）ｐｐｍ；ＨＲＭＳ（ＥＳＩ
）ｍ／ｚ、Ｃ１８Ｈ２７Ｎ２Ｏ２［Ｍ＋Ｈ］＋についての計算値：３０３．２０７２、測
定値：３０３．２０７９、Ｃ１８Ｈ２６ＮａＮ２Ｏ２［Ｍ＋Ｎａ］＋についての計算値：
３２５．１８９２、測定値：３２５．１８９９。
化合物５：（Ｒ）−Ｎ’−（１−シクロヘキシル−ブト−３−エニル）−ヒドラジンカ
ルボン酸ベンジルエステル（２．２０ｇ、７．２７ｍｍｏｌ）を、マグネチックスターラ
ーを備えたバイアル内で２ｍＬの塩化メチレンに溶解した。Ｋ２ＣＯ３水溶液（１．５１
ｇ、４ｍＬ中に１０．９１ｍｍｏｌ）を加え、混合物を氷上で冷却した。未希釈の酸塩化
物をゆっくりと加え、約１ｍＬの塩化メチレンを追跡およびすすぎに使用した。混合物を
ＴＬＣによりモニターしながら、最初は氷上で、次に室温にて一夜攪拌した。操作の補助
のため、水および／またはＣＨ２Ｃｌ２を反応混合物に加え、有機層を回収した。水層を
ＣＨ２Ｃｌ２により１回抽出し、有機層を合わせて固体Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させた。溶
媒を真空下で除去し、残渣を２：１ヘキサン：エーテルにより粉砕して、２．９３ｇ（９
２．７％）の、白色固体としての（Ｒ）−Ｎ’−（１−シクロヘキシル−ブト−３−エニ
ル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステ
ルを得た。Ｒｆ＝０．３３（３：１ヘキサン：酢酸エチル）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨ
ｚ、ＤＭＳＯ−ｄ６）δ９．８＋９．６５（０．５Ｈ、ＮＨ，２ｓ）、７．１−７．５（
３．５Ｈ、ｍ）、６．９−７．１（５Ｈ、ｍ）、６．０５（０．５Ｈ、ｍ）、５．９（０
．５Ｈ、ｍ）、５．２（１Ｈ、ｍ）、５．０（２Ｈ、ｍ）、４．８（１Ｈ、ｍ）、４．３
５（１Ｈ、ｍ）、２．３５（２Ｈ、ｂｒ ｍ）、２．２５（６Ｈ、ｓ）、０．８−２．０
（１１Ｈ、ｍ）；ＨＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ、Ｃ２７Ｈ３５Ｎ２Ｏ３［Ｍ＋Ｈ］＋について
の計算値：４３５．２６４７、測定値：４３５．２６５９、Ｃ２７Ｈ３４ＮａＮ２Ｏ３［
Ｍ＋Ｎａ］＋についての計算値：４５７．２４６７、測定値：４５７．２４７０。
化合物６：（Ｒ）−Ｎ’−（１−シクロヘキシル−ブト−３−エニル）−Ｎ’−（３，
５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステル（２．９１ｇ、６
．７ｍｍｏｌ）を約５０ｍＬの氷酢酸中に懸濁した。１０２ｍｇの木炭上の１０％パラジ
ウムを、数ｍＬの酢酸中にスラリーとして加えた。混合物を酢酸で７５ｍＬに希釈し、Ｐ
ａｒｒ水素添加装置で９０分間２０〜３０ｐｓｉにおいて振とうした。懸濁物を２日間静
置し、炭素を沈殿させた。上清を０．４５ミクロンのシリンジフィルターを通して再結晶
皿へ濾過し、溶媒を蒸発させて２．０６ｇ（１０２％の物質収支）の（Ｒ）−３，５−ジ
メチル−安息香酸Ｎ−（１−シクロヘキシル−ブチル）−ヒドラジドを、赤褐色の粘性油
として得た。Ｒｆ＝０．２４（２：１ヘキサン：酢酸エチル）；１Ｈ ＮＭＲ（４００Ｍ
Ｈｚ、ＣＤＣｌ３）δ７．０５（１Ｈ、ｓ）、７．０（２Ｈ、ｓ）、４．５５＋３．３５
（１Ｈ、２ｔ）、２．４（６Ｈ、ｓ）、０．８−１．９（１５Ｈ、ｍ）、０．９（３Ｈ、
ｔ）；ＨＲＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ、Ｃ１９Ｈ３１Ｎ２Ｏ［Ｍ＋Ｈ］＋についての計算値：
３０３．２４３６、測定値：３０３．２４４１、Ｃ１９Ｈ３０Ｎ２ＮａＯ［Ｍ＋Ｎａ］＋
についての計算値：３２５．２２５６、測定値：３２５．２２６２。
化合物７（タイトル化合物）：（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−シクロ
ヘキシル−ブチル）−ヒドラジド（０．１４ｇ、０．４６ｍｍｏｌ）を、マグネチックス
ターラーを備えたバイアル内で１ｍＬの塩化メチレンに溶解した。Ｋ２ＣＯ３水溶液（０
．１ｇ、０．６９ｍｍｏｌ、２．７７ｍＬ）を加えた。フラスコを氷上で冷却し、未希釈
の酸塩化物を加えた。約０．８ｍＬのさらなる塩化メチレンを追跡およびすすぎに使用し
た。反応をＴＬＣによりモニターしながら、混合物を最初は氷上で、次に室温にて一夜攪
拌した。操作の補助のため、水およびＣＨ２Ｃｌ２を反応混合物に加え、水層をＣＨ２Ｃ
ｌ２により１回抽出した。有機層を合わせ、固体Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させた。溶媒を真
空中で除去し、未精製産物をクロマトグラフィーで精製して、１４３ｍｇ（収率６７．９
％）の（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−シクロヘキシル−ブチル）−Ｎ’
−（２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジドを、赤褐色の粘性油として得
た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ６）δ１０．４（１Ｈ、２ｓ）、７．０
−７．２５（５Ｈ、ｍ）、６．２（１Ｈ、ｍ）、４．４５（１Ｈ、ｍ）、３．８（３Ｈ、
ｓ）、２．３５（６Ｈ、ｓ）、２．０−２．２（２Ｈ、ｍ）、０．９−２．０（１５Ｈ、
ｍ）、０．９（６Ｈ、ｍ）。
実施例５３ないし５５は、実施例５２に記載される方法論を用いて調製した。パーセン
ト鏡像異性体過剰率（ｅｅ）はキラルＨＰＬＣにより決定された。
（Ｓ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−シクロヘキシル−ブチル）−Ｎ’−（
２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド
化合物１：Ｎ’−シクロヘキシルメチレン−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステルは
、実施例５２に記載された通りに調製した。
化合物２：（Ｒ，Ｒ）−２−アリル−２−クロロ−３，４−ジメチル−５−フェニル−
［１，３，２］オキサザシロリジンは、Ｒ，Ｒ−プソイドエフェドリンを用いて、実施例
１に記載の方法論により調製した。
化合物３：（Ｓ）−Ｎ’−（１−シクロヘキシル−ブト−３−エニル）−ヒドラジンカ
ルボン酸ベンジルエステルは、実施例５２に記載の方法論を用いて、収率６９％の明るい
黄色の粘性油として調製した。分析データ：Ｒｆ＝０．４１（３：１ヘキサン：酢酸エチ
ル）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ６）δ８．６５（１Ｈ、ｂｒ ｓ）、
７．４（５Ｈ、ｍ）、５．８５（１Ｈ、ｂｒ）、５．１（４Ｈ、ｍ）、４．２（１Ｈ、ｓ
）、２．７（１Ｈ、ｂｒ ｓ）、２．１（１Ｈ、ｂｒ ｍ）、２．０（１Ｈ、ｂｒ ｍ）
、１．８（２Ｈ、ｂｒ ｍ）、１．６５（２Ｈ、ｂｒ ｍ）、１．４５（１Ｈ、ｂｒ ｍ
）１．０−１．２（６Ｈ、ｂｒ ｍ）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ７
．４（５Ｈ、ｍ）、６．３（１Ｈ、ｂｒ）、５．９（１Ｈ、ｂｒ ｓ）、５．２５（２Ｈ
、ｓ）、５．２（２Ｈ、ｂｒ ｓ）、２．９５（１Ｈ、ｂｒ ｓ）、２．３５（１Ｈ、ｂ
ｒ ｄ）、２．１７（１Ｈ、ｂｒ ｍ）、１．８（２Ｈ、ｂｒ ｍ）、１．７５（２Ｈ、
ｂｒ ｄ）、１．５５（１Ｈ、ｂｒ ｔ）、１．０−１．４（６Ｈ、ｍ）；ＨＲＭＳ（Ｅ
ＳＩ）ｍ／ｚ、Ｃ１８Ｈ２７Ｎ２Ｏ２［Ｍ＋Ｈ］＋についての計算値：３０３．２０７２
、測定値：３０３．２０５７、Ｃ１８Ｈ２６ＮａＮ２Ｏ２［Ｍ＋Ｎａ］＋についての計算
値：３２５．１８９２、測定値：３２５．１８７３。
化合物４：（Ｓ）−Ｎ’−（１−シクロヘキシル−ブト−３−エニル）−Ｎ’−（３，
５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステルは、収率８４．８
％の白色固体として、実施例５２に記載の方法論を用いて調製した。分析データ：ｅｅ＞
８０％、Ｒｆ＝０．３４（３：１ヘキサン：酢酸エチル）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ
、ＤＭＳＯ−ｄ６）δ９．８＋９．６５（０．５Ｈ、ＮＨ、２ｓ）、７．１−７．５（３
．５Ｈ、ｍ）、６．９−７．１（５Ｈ、ｍ）、６．０５（０．５Ｈ、ｍ）、５．９（０．
５Ｈ、ｍ）、５．２（１Ｈ、ｍ）、５．０（２Ｈ、ｍ）、４．８（１Ｈ、ｍ）、４．３５
（１Ｈ、ｍ）、２．３５（２Ｈ、ｂｒ ｍ）、２．２５（６Ｈ、ｓ）、０．８−２．０（
１１Ｈ、ｍ）；ＨＲＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ、Ｃ２７Ｈ３５Ｎ２Ｏ３［Ｍ＋Ｈ］＋について
の計算値：４３５．２６４７、測定値：４３５．２６５５、Ｃ２７Ｈ３４ＮａＮ２Ｏ３［
Ｍ＋Ｎａ］＋についての計算値：４５７．２４６７、測定値：４５７．２４６９。
化合物５：（Ｓ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−シクロヘキシル−ブチル）
−ヒドラジドは、実施例５２に記載の方法論を用いて調製した。分析データ：Ｒｆ＝０．
２４（２：１ヘキサン：酢酸エチル）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ６）
δ７．０５＋６．９５（１Ｈ、ｓ）、７．０＋６．８５（２Ｈ、２ｓ）、４．５５＋４．
０５（２Ｈ、２ｓ）、４．３＋３．１５（１Ｈ、２ｔ）、２．３（６Ｈ、２ｓ）、０．６
−１．９（１５Ｈ、ｍ）、０．９＋０．８（３Ｈ、２ｔ）；（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３
）δ７．０５（１Ｈ、ｓ）、７．０（２Ｈ、ｓ）、４．５５＋３．３５（１Ｈ、２ｔ）、
２．４（６Ｈ、ｓ）、０．８−１．９（１５Ｈ、ｍ）、０．９（３Ｈ、ｔ）；ＨＲＭＳ（
ＥＳＩ）ｍ／ｚ、Ｃ１９Ｈ３１Ｎ２Ｏ［Ｍ＋Ｈ］＋についての計算値：３０３．２４３６
、測定値：３０３．２４４０、Ｃ１９Ｈ３０Ｎ２ＮａＯ［Ｍ＋Ｎａ］＋についての計算値
：３２５．２２５６、測定値：３２５．２２６０。
化合物６（タイトル化合物）：（Ｓ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−シクロ
ヘキシル−ブチル）−Ｎ’−（２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジドは
、実施例５２に記載の方法論を用い、３７％のｅｅにおいて調製した。
実施例５７ないし５９は、実施例５６に記載される方法論を用いて調製した。パーセン
ト鏡像異性体過剰率（ｅｅ）はキラルＨＰＬＣにより決定された。表３は実施例５７ない
し５９の分析データを提供する。

（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−シクロヘキシル−ブト−３−エニル）
−Ｎ’−（３−メトキシ−２−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド
化合物１：３−メトキシ−２−メチル−安息香酸ヒドラジドは、実施例５０に記載され
た通りに調製した。
化合物２：１０．０ｇ（５５．５ｍｍｏｌ）の３−メトキシ−２−メチル−安息香酸ヒ
ドラジドを、２００ｍＬの無水エチルアルコールに溶解した。シクロヘキサンカルバルデ
ヒド（６．８５ｇ、６１．０ｍｍｏｌ）および氷酢酸（３ｍＬ）を加え、反応混合物をＴ
ＬＣでモニターしながら１８時間攪拌した。沈殿物を濾過により回収し、ヘキサンで洗浄
した。産物３−メトキシ−２−メチル−安息香酸シクロヘキシルメチレン−ヒドラジドを
白色固体として得た（９．３６ｇ、収率６１％）：Ｒｆ＝０．２０（３：１ＥｔＯＡｃ：
ｎ−ヘキサン）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ１１．１７（ｓ、１Ｈ）
、７．９１（ｓ、１Ｈ）、７．５０（ｄ，Ｊ＝４．８Ｈｚ、１Ｈ）、７．２５（ｔ，Ｊ＝
６．４Ｈｚ、１Ｈ）、６．９９（ｔ，Ｊ＝５．６Ｈｚ、１Ｈ）、３．８９（ｓ、３Ｈ）、
２．２８（ｓ、３Ｈ）、１．９２−１．６２（ｍ、５Ｈ）、１．３８−１．１４（ｍ、６
Ｈ）；ＨＲＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ、Ｃ１６Ｈ２３Ｎ２Ｏ２［Ｍ＋Ｈ］＋についての計算値
：２７５．１７６０、測定値：２７５．１７５２、Ｃ１６Ｈ２２Ｎ２ＮａＯ２［Ｍ＋Ｎａ
］＋についての計算値：２９７．１５７９、測定値：２９７．１５６８。
化合物３：（Ｓ，Ｓ）−２−アリル−２−クロロ−３，４−ジメチル−５−フェニル−
［１，３，２］オキサザシロリジンは、実施例１に記載された通りに調製した。
化合物４：３−メトキシ−２−メチル−安息香酸シクロヘキシルメチレン−ヒドラジド
（２．８ｇ、１０．２ｍｍｏｌ）および無水ＣＨＣｌ３（５０ｍＬ）を、スターラーおよ
び窒素口を備えた丸底フラスコへ加えた。（Ｓ，Ｓ）−オキサザシロリジン（３．２８ｇ
、１２．２０ｍｍｏｌ）を液滴として加えた。反応を５０℃で６時間、その後室温で１８
時間攪拌した。飽和ＮａＨＣＯ３溶液（３０ｍＬ）を加え、反応を停止させた。ＣＨＣｌ
３層を分離し、水層をＣＨＣｌ３（２ｘ３０ｍＬ）で抽出した。ＣＨＣｌ３溶液を合わせ
、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させた。溶媒を真空中で蒸発させ、未精製混合物をフラッシ
ュクロマトグラフィーで精製して、（Ｒ）−３−メトキシ−２−メチル−安息香酸Ｎ’−
（１−シクロヘキシル−ブト−３−エニル）−ヒドラジドを白色固体（１．７４ｇ、収率
５４％）として得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ９．６９（ｓ、１Ｈ
）、７．２４（ｔ，Ｊ＝８．０Ｈｚ、１Ｈ）、７．０５（ｄ，Ｊ＝８．０Ｈｚ、１Ｈ）、
６．８８（ｄ，Ｊ＝７．６Ｈｚ、１Ｈ）、５．９２（ｍ、１Ｈ）、５．１５（ｄｄ、Ｊ＝
１．６、１７．２Ｈｚ、１Ｈ）、５．０８（ｄｄ，Ｊ＝１．６、１０．４Ｈｚ、１Ｈ）、
４．９１（ｄｄ，Ｊ＝３．６、６．８Ｈｚ、１Ｈ）、３．８３（ｓ、３Ｈ）、２．７５（
ｍ、１Ｈ）、２．２６−２．２２（ｍ、１Ｈ）、２．１６（ｓ、３Ｈ）、２．１４−２．
０８（ｍ、１Ｈ）、１．８１−１．０８（ｍ、１１Ｈ）；ＨＲＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ、Ｃ
１９Ｈ２９Ｎ２Ｏ２［Ｍ＋Ｈ］＋についての計算値：３１７．２２２９、測定値：３１７
．２２２１、ｍ／ｚ、Ｃ１９Ｈ２９Ｎ２Ｏ２［Ｍ＋Ｎａ］＋Ｃ１９Ｈ２８Ｎ２ＮａＯ２に
ついての計算値：３３９．２０４８、測定値：３３９．２０３７。
化合物５（タイトル化合物）：（Ｒ）−３−メトキシ−２−メチル−安息香酸Ｎ’−（
１−シクロヘキシル−ブト−３−エニル）−ヒドラジド（１．３ｇ、４．１１ｍｍｏｌ）
のＣＨ２Ｃｌ２溶液（５ｍＬ）へ、Ｋ２ＣＯ３（２．２７ｇ、１６．４４ｍｍｏｌ）Ｈ２
Ｏ（５ｍＬ）、および最後に３，５−ジメチルベンゾイル塩化物（７２７ｍｇ、４．３１
ｍｍｏｌ）を加えた。反応を室温で２４時間攪拌した。操作の補助のため、さらなるＣＨ
２Ｃｌ２およびＨ２Ｏを加え、ＣＨ２Ｃｌ２層を分離し、水層をＣＨ２Ｃｌ２で抽出した
。ＣＨ２Ｃｌ２溶液を合わせ、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させた。溶媒を真空中で蒸発さ
せ、残渣をフラッシュクロマトグラフィーで精製して、（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息
香酸Ｎ−（１−シクロヘキシル−ブト−３−エニル）−Ｎ’−（３−メトキシ−２−メチ
ル−ベンゾイル）−ヒドラジドを白色固体（１．４５ｇ、収率７８％）として得た。Ｒｆ
＝０．２１（３：１ＥｔＯＡｃ：ｎ−ヘキサン）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳ
Ｏ−ｄ６）δ１０．４７＋１０．３９（２ｓ、１Ｈ）、７．２０−７．０１（ｍ、５Ｈ）
、６．３７（ｄ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、１Ｈ）、６．２２−５．８９（ｍ、１Ｈ）、５．１８
（ｄｄ、１Ｈ）、５．０２（ｄｄ、１Ｈ）、４．４６（ｍ、１Ｈ）、３．７９（ｓ、３Ｈ
）、２．４４−２．３４（ｍ、２Ｈ）、２．２９（ｓ、３Ｈ）、２．０２−１．５３（ｍ
、８Ｈ）、１．２６−１．０２（ｍ、３Ｈ）；ＨＲＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ、Ｃ２８Ｈ３７
Ｎ２Ｏ３［Ｍ＋Ｈ］＋についての計算値：４４９．２８０４、測定値：４４９．２７９３
、Ｃ２８Ｈ３６Ｎ２ＮａＯ３［Ｍ＋Ｎａ］＋についての計算値：４７１．２６２４、測定
値：４７１．２６１５。

（Ｒ）−４−メトキシ−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−シクロヘキシル−ブト
−３−エニル）−Ｎ’−（３−メトキシ−２−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド
合成
（Ｒ）−４−メトキシ−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−シクロヘキシル−ブト
−３−エニル）−Ｎ’−（３−メトキシ−２−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジドは、実
施例６０に記載の方法論を用い、収率７１％で調製した。分析データ：Ｒｆ＝０．１４（
１：３ＥｔＯＡｃ：ｎ−ヘキサン）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ６）δ
１０．４６＋１０．３８（２ｓ、１Ｈ）、７．２１−６．４２（ｍ、５Ｈ）、６．１６−
５．９３（ｍ、１Ｈ）、５．２３（ｄｄ、１Ｈ）、５．０１（ｄｄ、１Ｈ）、４．４５（
ｍ、１Ｈ）、３．７９（ｓ、３Ｈ）、３．７７（ｓ、６Ｈ）、２．４２−２．２８（ｍ、
２Ｈ）、２．０４（ｓ、３Ｈ）、１．８８−１．０５（ｍ、１４Ｈ）；ＨＲＭＳ（ＥＳＩ
）ｍ／ｚ、Ｃ２９Ｈ３８Ｎ２Ｏ５［Ｍ＋Ｈ］＋についての計算値：４９５．２８５９、測
定値：４９５．２８４８、Ｃ２９Ｈ３８Ｎ２ＮａＯ５［Ｍ＋Ｎａ］＋についての計算値：
５１７．２６７８、測定値：５１７．２６６７。

（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ’−（４−エチル−ベンゾイル）−Ｎ−（１−
フェネチル−ブト−３−エニル）−ヒドラジド
化合物１：４−エチル−安息香酸ヒドラジドは市販されている。
化合物２：４−エチル−安息香酸ヒドラジド（１０ｇ、６０．９ｍｍｏｌ）を３２ｍＬ
のメタノールに溶解した。酢酸（１ｍＬ）を加え、混合物を還流し、ヒドロシンナムアル
デヒド（５．７７ｇ、６７ｍｍｏｌ）をゆっくりと加えた。反応混合物を１０時間還流し
、ＴＬＣによりモニターした。沈殿物を濾過により回収し、ヘキサンで洗浄した。４−エ
チル−安息香酸（３−フェニル−プロピリデン）−ヒドラジドを、白色固体として得た（
９．３４ｇ、収率５４．７％）。Ｒｆ＝０．３６（１：１ＥｔＯＡｃ：ｎ−ヘキサン）；
１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ８．８７（ｓ、１Ｈ）、７．７２−７．２
４（ｍ、１０Ｈ）、２．８７（ｔ，Ｊ＝１５．２Ｈｚ、２Ｈ）、２．７９−２．５７（ｍ
、４Ｈ）、１．２４（ｔ，Ｊ＝８Ｈｚ、３Ｈ）。
化合物３：（Ｒ）−（＋）−メチルρ−トリルスルホキシド（０．５ｇ、３．２１ｍｍ
ｏｌ）およびテトラブチルアンモニウムトリフェニル−ジフルオロケイ酸塩（ＴＢＡＴ）
（０．１２ｇ、０．２１４ｍｍｏｌ）を、窒素下およびマグネチックスターラーで攪拌し
ながら、０．０３８ｍＬの２−メチル−２−ブテンおよび２．４ｍＬの無水塩化メチレン
に溶解した。アリルトリクロロシラン（０．２３ｍＬ、１．６１ｍｍｏｌ）を−７８℃で
加え、反応を１５分間攪拌した。４−エチル安息香酸（１−メチル３−フェニル−プロピ
リデン）ヒドラジド（０．３ｇ、１．０７ｍｍｏｌ）を１１．６ｍＬの無水塩化メチレン
に溶解し、３０分間にわたって反応に加えた。ＴＬＣでモニターしながら、反応混合物を
窒素下で−７８℃から−７０℃に保持して５時間攪拌した。その後塩水を加え、混合物を
室温に戻した。有機層を除去し、３つの塩化メチレン抽出物を合わせ、硫酸ナトリウム上
で乾燥させた。溶媒を蒸発させ、未精製混合物を２：１および１：１ペンタン：酢酸エチ
ルの段階勾配を用いたフラッシュクロマトグラフィーで精製した。精製した（Ｒ）−４−
エチル−安息香酸Ｎ’−（１−フェネチル−ブト−３−エニル）−ヒドラジドを透明な油
として得た（０．１４５ｇ、収率５７．６％、Ｃｈｉｒａｌｃｅｌ ＡＤＨ上のキラルＨ
ＰＬＣによるｅｅ５７．６％）。Ｒｆ＝０．５０（１：１ＥｔＯＡｃ：ｎ−ヘキサン）；
１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ７．６４−７．１３（ｍ、９Ｈ）、５．９
１（ｍ、１Ｈ）、５．１５（ｔ，Ｊ＝２８．０Ｈｚ、２Ｈ）、３．１２（ｍ、１Ｈ）、２
．７６−２．６３（ｍ、４Ｈ）、２．３８−２．２４（ｍ、２Ｈ）、１．８８−１．７４
（ｍ、２Ｈ）、１．２３（ｔ，Ｊ＝８．０Ｈｚ、３Ｈ）。
化合物４（タイトル化合物）：（Ｒ）−４−エチル−安息香酸−Ｎ’−（１−フェネチ
ル−ブト−３−エニル）−ヒドラジド（０．１ｇ、０．３１ｍｍｏｌ）を、０．４７ｍＬ
の塩化メチレンにマグネチックスターラーで攪拌しながら溶解した。０．７ｍＬの脱イオ
ン水中の炭酸水素カリウム（０．０６４ｇ、０．３７ｍｍｏｌ）および３，５−ジメチル
ベンゾイル塩化物（０．０６３ｇ、０．３７ｍｍｏｌ）を混合物に加えた。反応混合物を
最初は氷上で、次に室温まで温め、週末の間ＴＬＣでモニターしながら攪拌した。有機層
を除去し、水層を塩化メチレンで３回抽出し、硫酸ナトリウム上で乾燥させた。溶媒を蒸
発させ、未精製混合物を２：１ヘキサン：酢酸エチルを溶離液として用いたフラッシュク
ロマトグラフィーで精製した。精製した（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ’−（４
−エチル−ベンゾイル）−Ｎ−（１−フェネチル−ブト−３−エニル）−ヒドラジドを黄
色の油として得た（０．１０２ｇ、収率７２．９％、Ｃｈｉｒａｌｃｅｌ ＡＤＨ上のキ
ラルＨＰＬＣによるｅｅ５１．２％）。Ｒｆ＝０．３４（２：１ヘキサン：ＥｔＯＡｃ）
；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ７．８−７．０２（ｍ、１２Ｈ）、５．
９９（ｂｒ、１Ｈ）、５．２２（ｄ，Ｊ＝２４．０Ｈｚ、２Ｈ）、２．７３（ｄ，Ｊ＝８
Ｈｚ、２Ｈ）、２．３１（ｓ、６Ｈ）、２．１２−２．０３（ｍ、２Ｈ）、１．８７（ｓ
、１Ｈ）、１．６１（ｓ、２Ｈ）、１．２９（ｔ，Ｊ＝８．０Ｈｚ、３Ｈ）；ＨＲＭＳ（
ＥＳＩ）ｍ／ｚ、Ｃ３０Ｈ３５Ｎ２Ｏ２［Ｍ＋Ｈ］＋についての計算値：４５５．２６９
９、測定値：４５５．２６８５、Ｃ３０Ｈ３４Ｎ２ＮａＯ２［Ｍ＋Ｎａ］＋についての計
算値：４７７．２５１８、測定値：４７７．２５０５。
（Ｓ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−４−ヒドロキシ−ブチル）−Ｎ’−（３，５
−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステル
化合物１：化合物１は実施例３１に記載の通りに調製した。
化合物２（タイトル化合物）：（Ｓ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブト−３−エ
ニル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエス
テル（２００ｍｇ、０．４９ｍｍｏｌ）のＴＨＦ（３ｍＬ）溶液へ、ジメチルスルフィド
ボラン（ＴＨＦ中で２Ｍ、１２５μＬ、０．２５ｍｍｏｌ）を０℃において加えた。混合
物を室温で１６時間攪拌した。余剰のボランおよびＴＨＦを真空中で除去し、さらなるＴ
ＨＦ（３ｍＬ）、続いてＨ２Ｏ２（６１マイクロリットル、０．５４ｍｍｏｌ）および３
Ｎ ＮａＯＨ（９０マイクロリットル、０．２７ｍｍｏｌ）を加えた。５０〜５５℃にお
いて１時間攪拌した後、さらに水を加え、混合物をエーテルで抽出し、エーテル層を無水
Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させた。溶媒を真空中で除去し、残渣をフラッシュクロマトグラフ
ィーで精製して、（Ｓ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−４−ヒドロキシ−ブチル）−
Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステルを白
色固体（１２８ｍｇ、収率６１％）として得た。Ｒｆ＝０．３０（１：１ＥｔＯＡｃ：ｎ
−ヘキサン）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ６）δ９．７１＋９．６３（
２ｓ、１Ｈ）、７．４４−６．８８（ｍ、８Ｈ）、５．０６（ｄｄ、Ｊ＝３．６、１２．
８Ｈｚ、１Ｈ）、４．７９（ｄｄ、Ｊ＝１２．４、２５．２Ｈｚ、１Ｈ）、４．４３（ｄ
，Ｊ＝１０．８Ｈｚ、１Ｈ）、４．２８（ｔ，Ｊ＝５．２Ｈｚ、１Ｈ）、３．４７（ｍ、
２Ｈ）、２．２７（ｓ、６Ｈ）、１．８６−１．２１（ｍ、４Ｈ）、１．０１（ｓ、９Ｈ
）；ＨＲＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ、Ｃ２５Ｈ３５Ｎ２Ｏ４［Ｍ＋Ｈ］＋についての計算値：
４２７．２５９７、測定値：４２７．２５８７、Ｃ２５Ｈ３４Ｎ２ＮａＯ４［Ｍ＋Ｎａ］
＋についての計算値：４４９．２４１６、測定値：４４９．２４０７。
（Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−４−ヒドロキシ−ブチル）−Ｎ’−（３，５
−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステル
合成
（Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−４−ヒドロキシ−ブチル）−Ｎ’−（３，５
−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステルは、実施例６３に記
載の方法論を用い、＞９９％のｅｅにおいて調製した。
実施例６５
この実施例は、本発明の化合物の鏡像異性体過剰率（ｅｅ）の決定に使用される分析法
を説明する。
図２Ａ〜Ｃに示すように、ｒａｃ−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−
ブチル−ブチル）−Ｎ’−（２，６−ジクロロ−ベンゾイル）−ヒドラジド（実施例１６
）、（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’
−（２，６−ジクロロ−ベンゾイル）−ヒドラジドおよび（Ｓ）−３，５−ジメチル−安
息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（２，６−ジクロロ−ベンゾイル
）−ヒドラジド（実施例４１）のためのキラルＨＰＬＣクロマトグラムは、鏡像異性体過
剰率の決定に使用される方法を説明する。ｒａｃ−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１
−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（２，６−ジクロロ−ベンゾイル）−ヒドラジド
は、５０％のＲ−異性体（約１６分におけるピーク１）および５０％のＳ−異性体（約１
９分におけるピーク２）を含む。（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒ
ｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（２，６−ジクロロ−ベンゾイル）−ヒドラジドの鏡像異
性体の豊富なサンプルは、＞９９％のｅｅにより、Ｓ−異性体を実質的に含まない。（Ｓ
）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（２，
６−ジクロロ−ベンゾイル）−ヒドラジドの鏡像異性体の豊富なサンプルは、＞９９％の
ｅｅにより、Ｒ−異性体を実質的に含まない。この実験で、データは２．０ｍＬ／分のフ
ローレートにおいて、４．６ｍｍＸ２５ｃｍのＲｅｇｉｓ Ｒｅｘｃｈｒｏｍ （Ｓ，
Ｓ） ＵＬＭＯカラムを用い、ヘキサン中の２％メタノールを溶媒として用い、２０μＬ
の注入量で作成された。式２または３で表されるその他の化合物の鏡像異性体過剰率は、
他に記載のない限り同様の様式において決定された。
実施例６６
この実施例は、本発明の化合物のｉｎ ｖｉｔｒｏ試験を例証する。
遺伝子発現カセット
ＧＡＬ４ ＤＢＤ（ｌ−１４７）−ＣｆＥｃＲ（ＤＥＦ）／ＶＰ１６ＡＤ−βＲＸＲＥ
Ｆ−ＬｍＵＳＰＥＦ：トウヒの青虫であるトウヒシントメハマキのＥｃＲ由来の野生型Ｄ
、Ｅ、およびＦドメイン（「ＣｆＥｃＲ−ＤＥＦ」；配列番号１）をＧＡＬ４ＤＮＡ結合
ドメイン（「Ｇａｌ４ＤＢＤ １−１４７」；配列番号２）へ融合し、ホスホグリセリン
酸キナーゼプロモーター（「ＰＧＫ」；配列番号３）の制御下に配置した。ヒトＲＸＲβ
（「ＨｓＲＸＲβ−ＥＦ」；配列番号４のヌクレオチド１−４６５）由来のＥＦドメイン
のヘリックス１から８、およびトノサマバッタウルトラスピラクルタンパク質（「ＬｍＵ
ＳＰ−ＥＦ」；配列番号５のヌクレオチド４０３−６３０）のＥＦドメインのへリックス
９から１２を、ＶＰ１６由来のトランス活性化ドメイン（「ＶＰ１６ＡＤ」；配列番号６
）へ融合し、伸長因子−１αプロモーター（「ＥＦ−１α」；配列番号７）の制御下に配
置した。５つのコンセンサスＧＡＬ４反応エレメント結合サイト（「５ＸＧＡＬ４ＲＥ」
；配列番号８を含むＧＡＬ４ＲＥの５コピーを含む）を、合成ＴＡＴＡ最小プロモーター
（配列番号９）へ融合し、ルシフェラーゼレポーター遺伝子（拝謁番号１０）の上流に配
置した。
安定化細胞株
ＧＡＬ４ＤＢＤ（１−１４７）ＣｆＥｃＲ（ＤＥＦ）およびＶＰ１６ＡＤ βＲＸＲＥ
Ｆ−ＬｍＵＳＰＥＦに対する転写カセットを、ＣＨＯ細胞へ一過性にトランスフェクトし
た。これらは単一のプラスミド上で、広範に活性のある細胞プロモーター（それぞれＰＧ
ＫおよびＥＦ−１α）の制御下にある。安定的にトランスフェクトされた細胞は、ゼオシ
ン抵抗性によって選択した。個々に単離されたＣＨＯ細胞クローンに、ＧＡＬ４ＲＥ−ル
シフェラーゼレポーター（ｐＦＲ Ｌｕｃ）を一過性にトランスフェクトした。ハイグロ
マイシンを用いて２７〜６３クローンを選択した。
キラルジアシルヒドラジンリガンドによる処理
細胞をトリプシン処理し、１ｍＬあたり２．５ｘ１０４の濃度に希釈した。１００μＬ
の細胞懸濁液を９６ウェルプレートの各ウェルに入れ、５％ＣＯ２下で３７℃において２
４時間培養した。リガンド保存液はＤＭＳＯ中で調製し、全ての処理のために３００倍希
釈した。用量反応試験は、３３μＭないし０．０１μＭの範囲の８濃度で構成された。
レポーター遺伝子アッセイ
ルシフェラーゼレポーター遺伝子発現は、ＰｒｏｍｅｇａからのＢｒｉｇｈｔ−Ｇｌｏ
（商標）ルシフェラーゼアッセイシステム（Ｅ２６５０）を用い、細胞の処理から４８時
間後に測定した。発光はＤｙｎｅｘ ＭＬＸマイクロタイタープレートルミノメーターを
用い、室温で検出した。
安定化細胞株
Ｓｕｈｒ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ
９５：７９９９−８０４ （１９９８）に記載のＣＶＢＥおよび６ＸＥｃＲＥを含む、
安定的に形質転換された細胞の集団を得た。ＨＥＫ−２９３細胞とも呼ばれるヒト２９３
腎臓細胞へ、最初にスイッチコンストラクトＣＶＢＥ、次に６ＸＥｃＲＥ ＬａｃＺレポ
ーターコンストラクトをコードするレトロウィルスベクターを連続的に感染させた。スイ
ッチコンストラクトは、インフレームでＶＰ１６トランス活性化ドメイン（ＶＢＥ）の下
流へ挿入された、カイコＥｃＲ（ＢＥ）（Ｉａｔｒｏｕ）由来のアミノ酸２６〜５４６の
コード配列を含んだ。合成ＡＴＧ開始コドンを、サイトメガロウィルス（ＣＶＢＥ）前初
期プロモーターの制御下で、末端反復配列（ＬＴＲ）に隣接して配置した。レポーターコ
ンストラクトは、ＬａｃＺの上流に配置され、両端にＬＴＲ配列が隣接する、６コピーの
エクジソン反応エレメント（ＥｃＲＥ）結合部位（６ＸＥｃＲＥ）を含んだ。
個々のクローンを分離するため希釈クローニングを用いた。クローンは４５０μｇ／ｍ
ＬのＧ４１８および１００ｎｇ／ｍｌのピューロマイシンを用いて選択した。個々のクロ
ーンは、試験リガンドの存在下および非存在下でのそれらの反応に基づいて評価した。ス
クリーニングおよびＳＡＲの目的のため、クローンＺ３を選択した。
ＣＶＢＥおよび６ＸＥｃＲＥ ＬａｃＺにより安定的に形質転換されたヒト２９３腎臓
細胞は、１０％ＦＢＳ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ， ２６１４０−０８７）
、４５０ｇｕｍ Ｇ４１８（Ｍｅｄｉａｔｅｓ， ３０−２３４−ＣＲ）、および１００
ｇｎｏｍｅ ｐｒｏｍｉｓｉｎｇ（Ｓｉｇｍａ， Ｐ−７２５５）を含む最小必須培地（
Ｍｅｄｉａｔｅｓ， １０−０１０−ＣＶ）中で、３７℃において５％ＣＯ２を含む雰囲
気中で維持し、それらが７５％コンフルエンスに達したときに継代培養した。
キラルジアシルヒドラジンリガンドによる処理
Ｚ３細胞を９６ウェル細胞培養プレートへ１ウェルあたり２．５ｘ１０３の濃度でまき
、５％ＣＯ２下で３７℃において２４時間培養した。リガンドの保存液はＤＭＳＯ中で調
製した。リガンドの保存液を培地で１００倍希釈し、この希釈されたリガンド溶液（３３
μＭ）の５０μＬを細胞に加えた。ＤＭＳＯの最終濃度はコントロール群および処理群の
両方で０．０３％に維持した。
レポーター遺伝子アッセイ
レポーター遺伝子発現は細胞の処理後４８時間に評価し、β−ガラクトシダーゼ活性を
Ｔｒｏｐｉｘ （ＧＳＹ１０００）のＧａｌ Ｓｃｒｅｅｎ（商標）生物発光レポーター
遺伝子アッセイシステムを用いて測定した。誘導倍率活性は、リガンド処理細胞の相対光
単位（「ＲＬＵ」）をＤＭＳＯ処理細胞のＲＬＵで割ることにより算出した。発光はＤｙ
ｎｅｘ ＭＬＸマイクロタイタープレートルミノメーターを用い、室温で検出した。
スイッチコンストラクトＣＶＢＥ、およびレポーターコンストラクト６ＸＥｃＲＥ Ｌ
ａｃＺの模式図。両コンストラクトに隣接するものは末端反復配列であり、Ｇ４１８およ
びピューロマイシンは選択マーカーであり、ＣＭＶはサイトメガロウィルスプロモーター
であり、ＶＢＥはＶＰ１６トランス活性化ドメインの下流に挿入したカイコＥｃＲの２６
−５４６のアミノ酸に対するコード配列であり、６ＸＥｃＲＥは６コピーのエクジソン反
応エレメントであり、ｌａｃＺはレポーター酵素のβ‐ガラクトシダーゼをコードする。
遺伝子発現カセット
ＧＡＬ４ ＤＢＤ−ＣｆＥｃＲ（ＤＥＦ）／ＶＰ１６ＡＤ−ＭｍＲＸＲＥ：トウヒの青
虫であるトウヒシントメハマキのＥｃＲ由来の野生型Ｄ、Ｅ、およびＦドメイン（「Ｃｆ
ＥｃＲ−ＤＥＦ」；配列番号１）をＧＡＬ４ＤＮＡ結合ドメイン（「Ｇａｌ４ＤＢＤ １
−１４７」；配列番号２）へ融合し、ｐＭベクター（ＰＴ３１１９−５， Ｃｌｏｎｔｅ
ｃｈ、パロアルト、カリフォルニア）のＳＶ４０ｅプロモーターの制御下に配置した。マ
ウスＲＸＲ（「ＭｍＲＸＲ−ＤＥ」；配列番号１１）由来のＤおよびＥドメインをＶＰ１
６（「ＶＰ１６ＡＤ」；配列番号６）由来のトランス活性化ドメインへ融合し、ｐＶＰ１
６ベクター（ＰＴ３１２７−５， Ｃｌｏｎｔｅｃｈ、パロアルト、カリフォルニア）の
ＳＶ４０ｅプロモーターの制御下に配置した。
安定化細胞株
ＣＨＯ細胞に、ＳＶ４０ｅプロモーターにより制御されるＧＡＬ４ ＤＢＤ−ＣｆＥｃ
Ｒ（ＤＥＦ）およびＶＰ １６ＡＤ−ＭｍＲＸＲＥの転写カセットを一過性にトランスフ
ェクトした。ハイグロマイシンを用い、安定的にトランスフェクトされた細胞を選択した
。個々に単離されたＣＨＯ細胞株に、ＧＡＬ４ ＲＥ−ルシフェラーゼレポーター（ｐＦ
Ｒ−Ｌｕｃ， Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ、ラホヤ、カリフォルニア）を一過性にトランスフ
ェクトした。ゼオシンを用い、１３Ｂ３クローンを選択した。
キラルジアシルヒドラジンリガンドによる処理
細胞をトリプシン処理し、１ｍＬあたり２．５ｘ１０４細胞の濃度に希釈した。１００
μＬの細胞懸濁液を９６ウェル細胞プレートの各ウェルに入れ、５％ＣＯ２下において３
７℃で２４時間培養した。リガンド保存液はＤＭＳＯ中で調製し、全ての処理のために３
００倍希釈した。用量反応試験は、３３μＭないし０．０１μＭの範囲の８濃度で構成さ
れた。
遺伝子スイッチアッセイ−工学的ＥｃＲ：ＵＳＰ／ＰＸＲシステム
細胞の遺伝子スイッチアッセイは、以下のコンストラクトをマウス胚性繊維芽細胞（Ｎ
ＩＨ３Ｔ３）へ一過性にトランスフェクトすることにより行った。トウヒシントメハマキ
のＥｃＲ由来の野生型Ｄ、Ｅ、およびＦドメイン、あるいはそれらのＶ３９０Ｉ／Ｙ４１
０Ｅ／Ｅ２７４Ｖ変異体をＧＡＬ４−ＤＢＤへ融合し、ｐＢＩＮＤベクター（Ｐｒｏｍｅ
ｇａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、マディソン、ウィスコンシン、米国）のＣＭＶプロモー
ターの制御下に配置した。示されるＥｃＲのＤＥＦドメインは、５’および３’末端にお
ける２０〜２５ｎｔ配列に基づいて設計されたプライマーを用いて増幅された。制限酵素
部位ＥｃｏＲ Ｉ／ＢａｍＨ ＩおよびＸｂａ Ｉを、５’および３’プライマーそれぞ
れに加えた。ＰＣＲ産物を適切な制限酵素で消化し、ｐＢＩＮＤベクターへクローン化し
た。ｐＢＩＮＤベクターへクローン化したＥｃＲ ＬＢＤを、シークエンシングにより検
証した。ＶＰ１６−ＡＤへ融合し、ＳＶ４０ｅプロモーターの制御下に配置した、ヒトＲ
ＸＲβおよびトノサマバッタＲＸＲのキメラＲＸＲは、以前に記述されたように構築した
（Ｋｕｍａｒ Ｐ ＆ Ｋａｔａｋａｍ Ａ ｉｎ Ｇｅｎｅ Ｔｒａｎｓｆｅｒ， Ｆ
ｒｉｅｄｍａｎｎ Ｔ ａｎｄ Ｒｏｓｓｉ Ｊ， ｅｄｓ， ｐｐ． ６４３−６５１
（２００７）， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐ
ｒｅｓｓ， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ， ＮＹ）。誘導性ルシフェラーゼ
レポータープラスミドのｐＦＲＬｕｃ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｓｙｓ
ｔｅｍｓ、ラホヤ、カリフォルニア、米国）は、５コピーのＧＡＬ４反応エレメントおよ
び合成最小プロモーターを含む。
ＮＩＨ３Ｔ３細胞は、１０％ウシ胎仔血清を補ったダルベッコ変法イーグル培地（両方
ともＭｅｄｉａｔｅｃｈ Ｉｎｃ．、マナッサス、バージニアから得た）中で、３７℃、
５％ＣＯ２において維持した。細胞を９６ウェルプレートへ、５０μＬの増殖培地中に２
，５００細胞／ウェルの濃度でまいた。次の日、細胞を最初に、ジメチルスルフォキシド
（ＤＭＳＯ；コントロール）またはリガンドを含むＤＭＳＯ溶液を含んだ、３５μＬの無
血清ＤＭＥＭで処理した。その後細胞へ、１ウェルあたり１５μｌの、０．０４μｇのＥ
ｃＲコンストラクト、０．０４μｇのＲＸＲコンストラクト、および０．１６μｇのルシ
フェラーゼレポーターコンストラクトを含むＤＭＥＭを、ＳｕｐｅｒＦｅｃｔ（商標）ト
ランスフェクション試薬（Ｑｉａｇｅｎ Ｉｎｃ．、バレンシア、カリフォルニア、米国
）を用い、製造者の指示に従ってトランスフェクトした。リガンドは、コントロールおよ
び処理ウェルの両方で０．０１〜３３μＭの８用量において、ＤＭＳＯの最終濃度０．３
３％で試験された。処理およびトランスフェクション培養の４８時間後に、細胞のルシフ
ェラーゼ活性を、Ｂｒｉｇｈｔ−Ｇｌｏ（商標）ルシフェラーゼアッセイシステム（Ｐｒ
ｏｍｅｇａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、マディソン、ウィスコンシン、米国）を用い、製
造者の指示に従ってアッセイした。ＥＣ５０値は、最小限に二重測定した。
レポーター遺伝子アッセイ
ルシフェラーゼレポーター遺伝子発現は、ＰｒｏｍｅｇａからのＢｒｉｇｈｔ−Ｇｌｏ
（商標）ルシフェラーゼアッセイシステム（Ｅ２６５０）を用い、細胞の処理から４８時
間後に測定した。発光はＤｙｎｅｘ ＭＬＸマイクロタイタープレートルミノメーターを
用い、室温で検出した。
各アッセイは２つの異なるウェル内で行い、２つの値を平均した。誘導倍率は、リガン
ド処理細胞の相対光単位（「ＲＬＵ」）をＤＭＳＯ処理細胞のＲＬＵで割ることにより算
出した。ＥＣ５０は、３−パラメーターロジスティックモデルを用いた用量反応データか
ら算出した。相対的Ｍａｘ ＦＩは、いずれかの濃度において観察されるＧＳ（商標）−
Ｅリガンド（３，５−ジメチル安息香酸Ｎ−ｔｅｒｔ−ブチル−Ｎ’−（２−エチル−３
−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド）の最大誘導倍率に相対的な、いずれかの濃度に
おいて観察される試験リガンド（本発明の実施形態）の最大誘導倍率として決定した。






実施例６７
この実施例は、本発明の化合物のｉｎ ｖｉｖｏ試験を例証する。本発明のキラルジア
シルヒドラジンリガンドによるレポーター酵素のｉｎ ｖｉｖｏでの誘導は、遺伝子スイ
ッチを含むＣ５７ＢＬ／６マウスモデルシステムにおいて評価した。
遺伝子発現カセット
トウヒの青虫であるトウヒシントメハマキのＥｃＲ由来の野生型Ｄ、Ｅ、およびＦドメ
イン（「ＣｆＥｃＲ−ＤＥＦ」；配列番号１）を［Ｖ１０７（ｇｔｔ）→Ｉ１０７（ａｔ
ｔ）およびＹ１２７（ｔａｃ）→Ｅ１２７（ｇａｇ）］に変異させ、ＧＡＬ４ＤＮＡ結合
ドメイン（「Ｇａｌ４ＤＢＤ １−１４７」；配列番号２）へ融合した。ヒトＲＸＲβ（
「ＨｓＲＸＲβ−ＥＦ」；配列番号４のヌクレオチド１−４６５）由来のＥＦドメインの
ヘリックス１から８、およびトノサマバッタウルトラスピラクルタンパク質（「ＬｍＵＳ
Ｐ−ＥＦ」；配列番号５のヌクレオチド４０３−６３０）のＥＦドメインのへリックス９
から１２を、６ｘＧＡＬ４反応エレメント（配列番号１３）およびトランスサイレチンプ
ロモーター（配列番号１４）の制御下に配置されるレポーター遺伝子であるヒト分泌型ア
ルカリホスファターゼ（「ＳＥＡＰ」、配列番号１２）を制御する、ＶＰ１６由来のトラ
ンス活性化ドメイン（「ＶＰ１６ＡＤ」；配列番号６）へ融合した。遺伝子スイッチの各
エレメントは別々のプラスミド上に存在した。受容体発現は、ＣＭＶプロモーター（配列
番号１５）の制御下にあった。誘導は、リガンド存在下で発現したレポータータンパク質
量で評価した。
遺伝子スイッチのエレクトロポレーション
マウス血清中のＳＥＡＰ発現は、マウス四頭筋へ遺伝子スイッチをエレクトロポレーシ
ョンした後に評価した。マウスはケタミン（１００ｍｇ／ｍＬ）およびキシラジン（２０
ｍｇ／ｍＬ）の混合物２μＬ／ｇにより麻酔した。その後動物の毛を剃り、２ｘ５０μＬ
量のポリグルタミン酸（１２ｍｇ／ｍＬ水）中のＤＮＡベクターを筋肉内に注入し、電極
伝導性ゲルを適用し、電極キャリバー（１ｃｍｘ１ｃｍ；モデル３８４）を後肢に配置し
た。筋肉を１秒間隔の２０ｍ秒／パルスで、２００Ｖ／ｃｍ、８回、エレクトロポレーシ
ョンした。動物がパルスの半分を受けた後、横電場方向を逆にした。エレクトロポレーシ
ョンは、ＢＴＸ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ ＳｙｓｔｅｍｓのＥＣＭ８３
０エレクトロポレーターで行った。
キラルジアシルヒドラジンリガンドによる処置
幾つかの実験において、マウスは遺伝子スイッチのエレクトロポレーション後３日間、
５０μＬのＤＭＳＯ中の２，６μｍｏｌのリガンドを、腹腔内注射（ＩＰ）された。別の
実験においては、リガンドの濃度を２６ｎｍｏｌ／５０μＬのＤＭＳＯ／マウスに減少さ
せた。ＳＥＡＰ発現はリガンド投与後２〜１１日評価した。他の実験において、リガンド
はげっ歯類用固形試料において投与された。固形試料は、２ｇのリガンドを２０ｍＬのア
セトンに溶解し、これをオートクレーブ可能な固形試料であるＰｕｒｉｎａ Ｍｉｌｌｓ
のＬａｂＤｉｅｔ ５０１０、１ｋｇに加えることにより調製した。これをＨｏｂａｒｔ
ミキサー中でよく混合し、その後Ｃｒｏｓｓ Ｂｌｅｎｄミキサー中でさらに１５分間混
合した。動物は固形試料を１、２、または３日間自由に摂取した。全ての値は４動物から
の平均である。リガンドを加えていないベクター単独により処置された動物からの血清中
のバックグラウンドＳＥＡＰは０〜１１ｎｇ／ｍｌ血清であった。
レポーターアッセイ
マウス血清は、微小ガラスキャピラリー管を用いて後眼窩からの出血を採取した血液を
遠心することにより得た。ＳＥＡＰ定量は、Ｃｌｏｎｔｅｃｈ Ｇｒｅａｔ Ｅｓｃａｐ
ｅケミルミネセンスキットを用い、Ｃｌｏｎｔｅｃｈ ＳＥＡＰ標準物質との比較により
決定した。
（Ｒ）−２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル
）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジド（実施例１）の、ＲｈｅｏＳ
ｗｉｔｃｈ（登録商標）Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｓｙｓｔｅｍ（ＲＴＳ）遺伝子発現誘
導に対する相対的なｉｎ ｖｉｖｏ有効性を評価するため、１２匹のＣ５７ＢＬ６マウス
に以下のベクター；ｐＣＭＶ／ＧＥＶＹ（ＤＥＦ）、ｐＣＭＶ／ＶＰ１６−Ｈｓ−ＬｍＲ
ＸＲおよびｐ６ＸＧＡＬ４ＲＥ−ＴＴＲ−ＳＥＡＰをエレクトロポレーションした。プラ
スミドｐＣＭＶ／ＧＥＦｙ（ＤＥＦ）は、Ｖ３９０Ｉ／Ｙ４１０Ｅ／Ｅ２７４Ｖ変異を有
するトウヒシントメハマキのＥｃＲ由来で、かつ酵母ＧＡＬ４−ＤＢＤ（ａａ １−１４
７）の下流に融合されたＤ、Ｅ、およびＦドメインから構成され、ｐＢＩＮＤベクター（
Ｐｒｏｍｅｇａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、マディソン、ウィスコンシン、米国）のＣＭ
Ｖプロモーター、および下流のＳＶ４０ポリアデニル化シグナルの制御下に配置される。
ここに示されるＥｃＲのＤＥＦドメインは、５’および３’末端の２０−２５ｎｔ配列に
基づいて設計されたプライマーを用いて増幅した。５’および３’プライマーにはそれぞ
れＢａｍＨＩおよびＸｂａＩ制限酵素部位を加えた。ＰＣＲ産物を適切な制限酵素で消化
し、ｐＢＩＮＤベクター内へクローン化した（図２０）。ｐＣＭＶ／ＶＰ１６−Ｈｓ−Ｌ
ｍＲＸＲベクターは、ＶＰ１６活性化ドメインの下流に融合され、かつｐＢＩＮＤベクタ
ー内のＣＭＶプロモーターの制御下に置かれる、ヒトＲＸＲβ（Ｅドメインのへリックス
１−８）およびトノサマバッタＲＸＲ（Ｅドメインのへリックス９−１２）由来のキメラ
ＲＸＲを含む（図２１）。誘導性ＳＥＡＰレポーターベクターであるｐ６ｘＧＡＬ４ＲＥ
−ＴＴＲ−ＳＥＡＰは、トランスサイレチン（ＴＴＲ）プロモーターの上流の６コピーの
Ｇａｌ４反応エレメントからなる誘導性プロモーターの制御下に置かれた、ヒト分泌型ア
ルカリフォスファターゼレポーター遺伝子を含む（図２２）。マウス四頭筋へのプラスミ
ドＤＮＡのエレクトロポレーションから３日後、３種のリガンド調製品を、２６ｎｍｏｌ
／マウス（１１．４μｇ／マウス、約５７０μｇ／ｋｇ）の率において、腹腔内注射によ
りマウスへ投与した。リガンド投与後、続いてマウス血清中のヒト分泌型アルカリホスフ
ァターゼ（ＳＥＡＰ）発現を１７日間モニターした。（Ｓ）−２−エチル−３−メトキシ
−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベン
ゾイル）−ヒドラジド（実施例３１）、およびｒａｃ−２−エチル−３−メトキシ−安息
香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル
）−ヒドラジドの相対的なｉｎ ｖｉｖｏ有効性を、比較のために評価した。図３に示す
ように、（Ｓ）−２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−
ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジド（●−●）はＲＴＳ遺
伝子レポーター発現を誘導しなかった。ｒａｃ−２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ
’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒ
ドラジドは、中等度のＲＴＳ遺伝子レポーター発現を誘導した（▲‐‐▲）。（Ｒ）−２
−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（
３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジド（○−○）は、実質的なＲＴＳ遺伝子レポ
ーター発現を誘導した。
実施例６８
２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’
−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのＲ鏡像異性体およびラセミ体の物理
的特性：
形態：固体サンプルロットは図４で報告した。Ｒ鏡像異性体に関して、メタノール／水
またはトルエン／ヘプタンからの迅速な結晶化／沈殿により得られたサンプルは、同じ粉
末でのＸ線回析パターン（データ未提示）をもたらし、互いに比較したとき、およびＣＨ
３ＯＨ結晶化により得られた標準物（１６５．１℃−１６６．５℃）と比較したとき、基
本的に同じ融点（［トルエン／ヘプタン］１６６．２℃−１６７．１℃、［ＣＨ３ＯＨ／
Ｈ２Ｏ］１６６．５−１６７．４℃）を有する。ラセミ体に関して、メタノール蒸発によ
り得られた、別々の２調製によるサンプルは、実験エラーおよび純度におけるわずかな変
動の範囲内で基本的に同じ融点（１７０−１７１℃、１６９−１７０℃）を示した。２−
エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３
，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのラセミ体およびＲ鏡像異性体の形態は最も
典型的であるとみえる。
微粒子化および粒径：粒径を標準化するため、２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ
’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒ
ドラジドのＲ鏡像異性体およびラセミ体それぞれを２０メッシュを通して前選別し、微粒
子化した。粒径は、約２０ｍｇの試験物質を１５ｍＬのファルコンチューブへ量り入れる
ことにより決定した。１０ｍＬの脱イオン水を粉末に加えた。懸濁液を混合し、２０分間
超音波処理し、その後直ちにＭａｌｖｅｒｎ Ｍａｓｔｅｒｓｉｚｅｒデバイスを用いた
レーザー光回析により粒径を解析した。粒径分布を図５および６に示す。ラセミ体は全体
としてＲ鏡像異性体よりもわずかに大きな粒径を有するように見えるが、２つのサンプル
はきわめて同様である。
バルクおよびタップ密度分析：２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅ
ｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドの、微
粒子化したＲ鏡像異性体およびラセミ体のバルク密度を、測定された重量および１０ｍＬ
メスシリンダー内の体積を用いて算出した。微粒子化した材料のタップ密度は、材料の重
量およびタップ体積を用いて算出した。タップ体積はタップ密度分析計（モデル：ＪＥＬ
のＳｔａｍｐｆｖｏｌｕｍｅｔｅｒ，ＳＴＡＶ２００３）を用いて測定し、タップ体積が
一定になったときにこれを記録した（図７）。Ｒ鏡像異性体はやや低いバルク密度および
タップ密度を有する。両方の物質は綿状であった（低バルク密度）。
熱重量分析／示差熱分析（ＴＧＡ／ＤＴＡ）分析：２−エチル−３−メトキシ−安息香
酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）
−ヒドラジドの、微粒子化したＲ鏡像異性体およびラセミ体を、熱重量分析／示差熱分析
により分析した。熱重量プロットを図８に示す。両方の物質はＤＴＡ特性において吸熱現
象を示した。Ｒ鏡像異性体の開始温度（１６３．６℃）はラセミ体のそれ（１７１．２℃
）に比較して著しく低かった。Ｒ鏡像異性体の融合熱（５９．８ｕｖ．ｓ／ｍｇ）もまた
、ラセミ体のそれ（８０．８ｕｖ．ｓ／ｍｇ）に比較して著しく低かった。これは２物質
が異なる結晶形であることを例証する。Ｒ鏡像異性体のより低い融点およびより低い融合
熱は、異なる溶解度特性を反映する。
１５０℃を超えて熱することにより、Ｒ鏡像異性体は総重量の０．４％を失い、ラセミ
体は総重量の０．８％を失った（図８）。２物質中の水分含有量（熱により除去可能な水
分）はわずかに異なる。
動的水蒸気吸着分析：乾燥状態に曝露したとき（２０％ＲＨ）、ラセミ体はどのような
有意の重量減少も示さなかったが、Ｒ鏡像異性体は、おそらくサンプルの移動または貯蔵
の間に獲得した緩く結合する水分に相当する、総重量の０．９％を失った（データ未提示
）。乾燥状態下での脱水の後、２物質は低（３０〜４０％ＲＨ）、中（５０〜６０％ＲＨ
）、および高（７０〜８０％ＲＨ）湿度へ曝露することにより、同程度の重量増加を示し
た。７０％ＲＨにおいて、Ｒ鏡像異性体の重量増加は６．３％であり、ラセミ体の重量増
加は６．３％であることから（データ未提示）、両物質の中程度の吸湿性が示される。
医薬賦形剤における溶解度：アッセイ１：微粒子化された２−エチル−３−メトキシ−
安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾ
イル）−ヒドラジドのＲ鏡像異性体およびラセミ体の溶解度を、市販の賦形剤中で定性的
に評価した（図９）。ガラスバイアル内の１０ｍｇ／ｇ（試験物／賦形剤）の、最初の溶
液／懸濁液は、５分間隔で３０秒回転させながら室温で１５分間超音波処理し、続いて３
分間隔で３０秒回転させながらアルミニウムブロック内において１２分間５０℃で加熱す
ることにより調製した。この最初の１０ｍｇ／ｇ賦形剤サンプルの外観に基づき、２〜４
点の連続濃度を、以下の点：５、１０、１５、２０、３０、５０ｍｇ／ｇ（試験物／賦形
剤）の何点かにおいて上昇または下降のサンプリングにより走査した。Ｒ鏡像異性体およ
びラセミ体が同程度に可溶性であるとみえるとき、未希釈のポリソルベート８０を除く全
ての試験された医薬賦形剤において、Ｒ鏡像異性体はラセミ体よりもさらに可溶性であっ
た（図９を参照）。いずれのサンプルにも色の変化はみられなかった。透明なガラスバイ
アル内の幾つかの調製品の写真を撮った（未提示）。
アッセイ２：各賦形剤につき、図９のアッセイにおいて２−エチル−３−メトキシ−安
息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイ
ル）−ヒドラジドのＲ鏡像異性体またはラセミ体が不溶性である最低濃度を同定した。こ
の同じ濃度における、両物質の懸濁液をバイアル内に調製した。各サンプルを室温で＜２
．５時間攪拌した（処理１）。別の実験として、試験物／賦形剤の組み合わせをアルミニ
ウムブロック内で５分間９０℃で、または図１０に示すように必要に応じてより長く熱し
、室温まで冷却し、同じ微粒子化された物質の少量をまいた（処理２）。物理的外観を７
２時間目、または示された時間（図１０）に記録した。全ての事例において、色の変化は
見られなかった。この溶解度アッセイは、最初の粒径および形態には無関係に、完全に溶
解した状態から操作された。結晶ラセミ体のどのような形態も有する過飽和の２−エチル
−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−
ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのラセミ体溶液をまくことによって沈殿／結晶化が
観察されるが、Ｒ鏡像異性体は完全に溶解している（特に加熱なしで）ことから、試験さ
れた濃度におけるラセミ体とＲ鏡像異性体の間の溶解度の違いが示唆される。透明なガラ
スバイアル内の調製品の写真を撮った（アッセイ１の条件で９０℃に加熱しなかったＲ鏡
像異性体、および９０℃処理後、冷却してまいたラセミ体、未提示）。
アッセイ３：２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブ
チル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのＲ鏡像異性体およびラ
セミ体を、１ｍＬあたり１〜２ｍｇの粉末の、蒸留水中の２０％ＰＥＧ１０００、ｐＨ７
．０と混合した。混合物を３７℃でインキュベートし、室温で約２時間ボルテックスし、
室温でさらに１２時間静置した。溶液を濾過または遠心し、最小限４点の検量線による一
般的なＬＣ／ＭＳ／ＭＳ法を用いた、二重のＬＣ／ＭＳ／ＭＳ注入により濃度を定量した
（図１１）。Ｌｏｂｅｎｂｅｒｇ Ｒ，ｅｔ ａｌ．，Ｓｏｌｕｂｉｌｉｔｙ ａｓ ａ
ｌｉｍｉｔｉｎｇ ｆａｃｔｏｒ ｔｏ ｄｒｕｇ ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ，Ｉｎ：Ｏ
ｒａｌ Ｄｒｕｇ Ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ，Ｊ．Ｂ．Ｄｒｅｓｓｍａｎ（Ｅｄ），Ｍａｒ
ｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ，ＮＹ，２０００およびＭａｄｅｒ ＷＪ，Ｇｒａｄｙ ＬＴ，Ｄ
ｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｏｌｕｂｉｌｉｔｙ，Ｃｈａｐｔｅｒ ５ ｉｎ
Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ｏｆ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｐｈｙｓｉｃａｌ Ｍｅｔｈｏｄｓ
ｉｎ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｖｏｌ．１，Ｐａｒｔ Ｖ，Ｗｅｉｓｓｂｅｒｇｅｒ，Ｖ
．Ａ．，Ｒｏｓｓｉｔｅｒ，Ｂ．Ｗ．，Ｅｄｓ．，Ｗｉｌｅｙ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１９
７１を参照のこと。
アッセイ４：処方賦形剤および生物学的液体の平衡溶解度は薬剤の生物学的利用能に影
響を与え、溶解の動態学もまた生物学的利用能の決定における限定要因であり得る。２−
エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３
，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのＲ鏡像異性体およびラセミ体の溶解度を薬
理学的界面活性剤ポリソルベート８０の水性調製品中において定量的に確立し、圧縮され
た試験物質の内因性の溶解率を観察した。０．５％、１％、および１．５％ポリソルベー
ト８０溶液中のラセミ体とＲ鏡像異性体の混合物は、２ｍＬのエッペンドルフバイアルに
２０＋／−１ｍｇの試験物質、続いて５００ｍｇのポリソルベート溶液を加えることによ
り調製した。混合物をビーズで１２０秒間打ち、２５℃で１６から２４時間振とうし、Ｓ
ｐｉｎ−Ｘ（０．２μＭ）を用いて濾過した。濾液のｐＨを記録した。濾液中の試験物質
の濃度を、定量的ＨＰＬＣ分析により測定した（図１２）。１．０および１．５％ポリソ
ルベート８０溶液中で、Ｒ鏡像異性体は２〜３倍、さらに可溶性である。脱イオン水およ
び０．５％ポリソルベート８０中で、ラセミ体およびＲ鏡像異性体の溶解度は同程度であ
る。
次に、２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）
−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのＲ鏡像異性体およびラセミ体
の内因性溶解特性を、以下の試験条件に従い、１％ポリソルベート８０蒸留水溶液中の圧
縮ペレット（直径７ｍｍ、１００ｍｇ）を用いて３７℃で決定した。
容器：１０００ｍＬ
溶媒：１％ポリソルベート８０蒸留水溶液（０．８μＭフィルターを通し、真空濾過し
た）
溶媒量：１０００ｍＬ
速度：１００ＲＰＭ
温度：３７℃
サンプリング点：１５、３０，４５、６０、９０および１２０分
サンプリング量：１ｍＬ（３０ミクロンを通して濾過）
分析：ＨＰＬＣ（各ロットから標準溶液を作製）
サンプルサイズ：ｎ＝２ペレット／試験物質
ラセミ体およびＲ鏡像異性体の放出は１２０分までにはＨＰＬＣの検出限界未満であっ
た。１２０分後には、両物質のペレットは溶媒中で未変化のままであった。
実施例６９
２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’
−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのＲ鏡像異性体およびラセミ体の細胞
膜透過性特性：
Ｃａｃｏ−２細胞の単層を通した双方向性の透過率（Ｓａｍｂｕｙ Ｙ，ｅｔ ａｌ．
，Ｔｈｅ Ｃａｃｏ−２ ｃｅｌｌ ｌｉｎｅ ａｓ ａ ｍｏｄｅｌ ｏｆ ｔｈｅ
ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ ｂａｒｒｉｅｒ： ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ ｏｆ ｃｅｌｌ ａｎ
ｄ ｃｕｌｔｕｒｅ−ｒｅｌａｔｅｄ ｆａｃｔｏｒｓ ｏｎ Ｃａｃｏ−２ ｃｅｌｌ
ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ Ｔｏ
ｘｉｃｏｌ．２００５ Ｊａｎ；２１（１）：１−２６ および Ａｒｔｕｒｓｓｏｎ
Ｐ，ｅｔ ａｌ．，Ｃａｃｏ−２ ｍｏｎｏｌａｙｅｒｓ ｉｎ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ
ａｌ ａｎｄ ｔｈｅｏｒｅｔｉｃａｌ ｐｒｅｄｉｃｔｉｏｎｓ ｏｆ ｄｒｕｇ ｔ
ｒａｎｓｐｏｒｔ．Ａｄｖ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖ Ｒｅｖ．２００１ Ｍａｒ １；４
６（ｌ−３）：２７−４３を参照のこと）：
データを図１３に示す。試験化合物は最大ＤＭＳＯ濃度＜１％において、ＨＢＳＳｇ中
の５μＭとして調製した。２１から２８日目のＣａｃｏ−２細胞のコンフルエントな単層
を準備した。受け取りウェルを１％ＢＳＡ改変ハンクス緩衝液ＨＢＳＳｇにより準備し、
Ｃａｃｏ−２細胞の頂端および基底側をｐＨ７．４±０．２に維持した。単層は双方向に
おいて投与された（Ｎ＝２）：頂端側は（Ａ→Ｂ）評価のために投与され、基底側は（Ｂ
→Ａ）評価のために投与された。試験化合物濃度は、最小限４点の検量線による一般的な
ＬＣ／ＭＳ／ＭＳ法を用い、１２０分の時点において頂端および基底側の両方について測
定した。図１３の値は：Ｃａｃｏ−２細胞単層を含むＴｒａｎｓｗｅｌｌ（登録商標）ウ
ェルからの試験化合物のパーセント回収率；双方向における見かけ上の透過率（Ｐａｐｐ
）；流出率（ＰａｐｐＢ→Ａ）／（ＰａｐｐＡ→Ｂ）；低または高のいずれかに分類され
る試験化合物の吸収可能性；流出の分類は、流出＞３．０および（ＰａｐｐＢ→Ａ）＞１
．０ｘ１０−６ｃｍ／ｓのときに有意であること、を表す。双方向において、Ｒ鏡像異性
体はラセミ体よりもさらに透過性である。また、Ｒ鏡像異性体の流出率はより低い。
ＭＤＲ１−ＭＤＣＫ細胞を用いた血液脳関門透過の可能性の決定（Ｔａｕｂ ＭＥ，
ｅｔ ａｌ．，Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ ｏｆ ｍｕｌｔｉｐｌｅ
Ｐ−ｇｌｙｃｏｐｒｏｔｅｉｎ（Ｐ−ｇｐ）ｐｒｏｂｅ ｓｕｂｓｔｒａｔｅｓ：Ｉｎ
ｆｌｕｅｎｃｅ ｏｆ ｃｅｌｌ ｌｉｎｅ ａｎｄ ｍｏｄｕｌａｔｏｒ ｃｏｎｃｅ
ｎｔｒａｔｉｏｎ ｏｎ Ｐ−ｇｐ ａｃｔｉｖｉｔｙ．Ｄｒｕｇ Ｍｅｔａｂ Ｄｉｓ
ｐｏｓ．２００５ Ｎｏｖ；３３（１１）：１６７９−８７ ａｎｄ Ｗａｎｇ Ｑ，ｅ
ｔ ａｌ．，Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ＭＤＲ−ＭＤＣＫ ｃｅｌｌ ｌｉ
ｎｅ ａｓ ａ ｐｅｒｍｅａｂｉｌｉｔｙ ｓｃｒｅｅｎ ｆｏｒ ｔｈｅ ｂｌｏｏ
ｄ−ｂｒａｉｎ ｂａｒｒｉｅｒ．Ｉｎｔ Ｊ Ｐｈａｒｍ．２００５ Ｊａｎ ２０；
２８８（２）：３４９−５９．（Ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍｓ Ｉｎｃ．広報
より改訂）を参照のこと）：
データを図１４に示す。試験化合物は最大ＤＭＳＯ濃度＜１％において、５μＭＨＢＳ
Ｓｇ溶液として調製した。７から１１日目のＭＤＲ１−ＭＤＣＫ細胞のコンフルエントな
単層を準備した。受け取りウェルを１％ＢＳＡ改変ハンクス緩衝液（ＨＢＳＳｇ）により
準備し、頂端および基底側をｐＨ７．４±０．２に維持した。単層は双方向において投与
された（Ｎ＝２）：頂端側は（Ａ→Ｂ）評価のために投与され、基底側は（Ｂ→Ａ）評価
のために投与された。試験化合物濃度は、最小限４点の検量線による一般的なＬＣ／ＭＳ
／ＭＳ法を用い、１２０分の時点において頂端および基底側の両方について測定した。図
１４に報告された値：ＭＤＲ１−ＭＤＣＫ細胞単層を含むＴｒａｎｓｗｅｌｌ（登録商標
）ウェルからの試験化合物のパーセント回収率；双方向における見かけ上の透過率（Ｐａ
ｐｐ）；流出率（ＰａｐｐＢ→Ａ）／（ＰａｐｐＡ→Ｂ）；および血液脳関門透過の可能
性の分類。ＭＤＲ１−ＭＤＣＫ細胞におけるＡ→ＢおよびＢ→Ａ双方向で、２−エチル−
３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジ
メチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのＲ鏡像異性体はラセミ体よりもさらに透過性である
。また、Ｒ鏡像異性体はより低い流出率を示す。Ｒ鏡像異性体は血液脳関門を中程度に透
過すると分類されるが、ラセミ体は低度と分類される。高度の血液脳関門透過は、中枢神
経システム（ＣＮＳ）の透過が必要とされる医療適用のための重要な利点である。
実施例７０
２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’
−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのＲ鏡像異性体およびラセミ体のミク
ロソーム代謝（Ｊｅｆｆｒｅｙ Ｐ，ｅｔ ａｌ．，Ｕｔｉｌｉｔｙ ｏｆ ｍｅｔａｂ
ｏｌｉｃ ｓｔａｂｉｌｉｔｙ ｓｃｒｅｅｎｉｎｇ：ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｏｆ ｉ
ｎ ｖｉｔｒｏ ａｎｄ ｉｎ ｖｉｖｏ ｃｌｅａｒａｎｃｅ．Ｘｅｎｏｂｉｏｔｉｃ
ａ．２００１ Ａｕｇ−Ｓｅｐ；３１（８−９）：５９１−８ および Ｌｉｎ ＪＨ，
ｅｔ ａｌ．，Ｒｏｌｅ ｏｆ ｐｈａｒｍａｃｏｋｉｎｅｔｉｃｓ ａｎｄ ｍｅｔａ
ｂｏｌｉｓｍ ｉｎ ｄｒｕｇ ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ ａｎｄ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ
．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ Ｒｅｖ．１９９７ Ｄｅｃ；４９（４）：４０３−４９を参照の
こと）。
試験化合物は、ＤＭＳＯ（濃度は０．２５％未満）、メタノールまたはアセトニトリル
の５μＭ溶液として調製した。性別の混ざったヒト肝臓ミクロソームを＞１０ドナーから
プールし、１ｍＭのＮＡＤＰＨと共にインキュベートした。試験化合物を、１．０ｍｇ／
ｍＬのミクロソームタンパク質と１ｍＭのＮＡＤＰＨを含む緩衝液中で３７℃においてイ
ンキュベートした。０および６０分に混合物をサンプリングし、試験化合物に相当するピ
ーク領域の１０〜１００％範囲をＬＣ／ＭＳ／ＭＳによりモニターした。アッセイは二重
に行った（Ｎ＝２、別々のインキュベーション）。図１５に報告したデータは、テストス
テロン標準物質の残留パーセントおよび試験物質の残留パーセントである。Ｒ鏡像異性体
は、ヒト肝臓ミクロソームでの代謝に対してラセミ体よりもわずかに、より安定である。
実施例７１
２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’
−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのＲ鏡像異性体およびラセミ体の生物
学的利用能
Ｌａｂｒａｓｏｌ中の化合物をＣ５７ＢＬ／６Ｎ：Ｃｒｌ（野生型）マウス（Ｃｈａｒ
ｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）へ、ヒトにおいて意図される投与経路
である経管栄養法により投与した。投与量は３、１０、３０、または５０ｍｇ／ｋｇ／日
および２．５ｍＬ／ｋｇ／用量として設定した（図１６）。用量は９日間（第１の雌１８
匹／群）または１２日間（第２の雌１８匹／群）投与した（図１６）。９日および１２日
の時点で血液を採取した。濃度を逆相ＨＰＬＣにより定量した。
各濃度に対し、サンプルは、ビーカー内の固体のＲ鏡像異性体またはラセミ体へＬａｂ
ｒａｓｏｌを加えること、目に見える凝集を破壊するため超音波処理すること、および均
一な外観になるまでマグネチックスターラーで攪拌することにより調製した。混合物をメ
スシリンダーへ移し、要求される体積まで、ビーカーをラブラソールですすいだ液を継ぎ
足した。シリンダーの内容を反転して混合し、投与までマグネチックスターラーで攪拌し
た。
これらのＬａｂｒａｓｏｌ投与調製品は微粒子化されたＲ鏡像異性体を利用したが、微
粒子化されていないラセミ体は利用していない。微粒子化されていないラセミ体試料がそ
のＬａｂｒａｓｏｌ中での溶解を偏らせるかもしれない可能性に取り組むため、独立の実
験を行った。この実験において、微粒子化、および非微粒子化ラセミ体の２０ｍｇ／ｍＬ
調製品の溶解度および概観が試験された。微粒子化ラセミ体（ロットＲＥＨ−２８−９−
１／ＰＹＡＰ−２−８−２−２Ｍ）、非微粒子化ラセミ体（ロット＃ＰＹＡＰ−２−８−
２−２）、および微粒子化Ｒ鏡像異性体（ロット＃ＲＥＨ−２８−４−２）をそれぞれラ
ブラソールに懸濁し、手動で回転させ、その後Ｂｒａｎｓｏｎ ２１００卓上超音波処理
器で２５〜２８℃において３ｘ５分間隔、および１ｘ１０分間隔で、手動による回転を組
み入れながら超音波処理した。Ｒ鏡像異性体は容易に溶解したが、微粒子化ラセミ体混合
物および非微粒子化ラセミ体混合物は、懸濁した微細な粒子により濁ったままであった（
写真は未撮影）。視覚的な検査によると、微粒子化および非微粒子化ラセミ体サンプル中
の不溶性物質の量は実質的に同じであった。顕微鏡観察（図１７）により、微粒子化およ
び非微粒子化ラセミ体懸濁液両方における大部分の粒子は２５ミクロン未満であることが
明らかにされた（図１７）。幾つかの大きめの結晶性断片が非微粒子化サンプル中に残っ
ていた。微粒子化および非微粒子化ラセミ体サンプル両方が同様の量の不溶性物質をもた
らすことから、Ｒ鏡像異性体およびラセミ体のＬａｂｒａｓｏｌ調製品の主要な違いは、
溶質の最初の粒径よりも内因性の溶解度であると考えられる。
時間的な作用としてのマウス血清濃度は定量的ＨＰＬＣにより測定した。Ｌａｂｒａｓ
ｏｌ中のＲ鏡像異性体は、高めの用量である３０および５０ｍｇ／ｋｇ／日（１２および
２０ｍｇ／ｍＬＬａｂｒａｓｏｌ投与）において著しく高めの血清濃度を達成する。ラセ
ミ体の血清濃度は著しく低めのままであった（＜４〜５倍のＡＵＣ）（図１８および１９
）。ラセミ体とＲ鏡像異性体の間の最初の粒径の違いは、血清濃度の違いの一部分を説明
する可能性がある。Ｌａｂｒａｓｏｌ中における、ラセミ体を超えるＲ鏡像異性体のより
大きな内因性溶解度もまた、血清濃度の違いの一部分を説明する可能性がある。さらに、
血清濃度の違いは細胞膜透過性（Ｃａｃｏ−２細胞およびＭＤＣＫ細胞の実験について；
図１３および１４）、吸収、分布、または排泄の違いによる可能性がある。
実施例７２
遺伝子改変腫瘍細胞からのトランス遺伝子ＩＬ−１２産生のｉｎ ｖｉｖｏ誘導に対す
る、２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ
’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのＲ鏡像異性体およびラセミ体の比
較。
本実施例で試験されたトランス遺伝子は、ＲＴＳの制御下にあるマウスＩＬ−１２であ
る。マウスメラノーマ細胞（Ｂ１６）に、ＲＴＳの制御下にあるマウスＩＬ−１２トラン
ス遺伝子を保有するアデノウィルスベクター、Ａｄ−ＲＴＳ−ｍＩＬ−１２を形質導入し
た。これらの細胞をＣ５７ＢＬ／６マウス（Ｂ１６細胞に組織適合性）皮下注射し、マウ
スを異なる用量の２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−
ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのＲ鏡像異性体および
ラセミ体により３日間処理した。コントロール群は、形質導入されていないＢ１６細胞お
よび高めの用量のリガンドを投与されたマウス、ならびに形質導入されたＢ１６細胞を投
与され、かつリガンドを投与されていない別の群を含んだ。リガンドにより直接誘導され
るトランス遺伝子の発現を評価するため、皮下注射から７２時間後に各群の半分のマウス
から腫瘍および血清を回収した。腫瘍抽出物および血清を準備し、ＩＬ−１２をＥＬＩＳ
Ａによりアッセイした。
残りのマウスは、さらなる７２時間にリガンド投与が中止されたときのトランス遺伝子
の遮断を試験するために用いられた。結果は、リガンドのＲ鏡像異性体およびラセミ体で
処置したマウスの腫瘍および血清中のトランス遺伝子ＩＬ−１２発現における違いを示唆
する。リガンド投与の中止は、全ての群においてトランス遺伝子の遮断を同様の様式でも
たらした。
材料および方法：Ｂ１６細胞は、ｉｎ ｖｉｔｒｏでＡｄ．−ＲＴＳ−ｍＩＬ−１２（
ＭＯＩ＝１００）に感染させた。４８時間後、５ｘ１０５（Ｂ１６、右側腹部）細胞をＣ
５７ＢＬ／６マウスに皮下注射した（１０マウス／群）。Ｒ鏡像異性体およびラセミ体リ
ガンドをＬａｂｒａｓｏｌ中で、１０ｍｇ／ｍＬの混合物を５０℃で５分間加熱すること
により溶解した。視覚的な検査に基づくと、両リガンドはＬａｂｒａｓｏｌ中に溶解した
。活性化リガンドは、以下の用量（０ｍｇ／ｋｇ；３ｍｇ／ｋｇ；１０ｍｇ／ｋｇ；３０
ｍｇ／ｋｇおよび５０ｍｇ／ｋｇ）を毎日、３日間、経管栄養法により投与した。さらな
るコントロールは、リガンドのみを投与されたＢ１６関連マウスを含んだ（５０ｍｇ／ｋ
ｇ／日、３日間、および無処置の腫瘍関連マウス）。腫瘍病変部および末梢血を分離する
ため、５マウス／群を回収した。組織を、全量１ｍｌのリン酸緩衝食塩水中でホモジナイ
ズした。ライセート／血清を−８０℃で凍結保存した。代わりの５マウス／群を、さらな
るリガンドの投与なしでさらに７２時間そのままにした。これら後者の５マウス／群を、
腫瘍病変部および末梢血を分離するために回収した。組織を上記のようにホモジナイズし
て凍結保存し、ライセート／血清を−８０℃で凍結保存した。検体を水浴中で３７℃にお
いて解凍し、ｍＩＬ−１２ｐ７０について、また腫瘍へのＣＴＬ輸送に重要なＩＬ−１２
依存性サイトカインと推定されるＩＦＮ−γについても、特異的ＥＬＩＳＡ（ＢＤ−Ｐｈ
ａｒｍｉｎｇｅｎ）を用いて分析した。
結果：腫瘍内のトランス遺伝子ＩＬ−１２発現、同様に血清濃度は、両リガンドの量依
存性パターンに従った（図２４および２５）。しかしながら発現レベルは、２−エチル−
３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジ
メチル−ベンゾイル）−ヒドラジドのＲ鏡像異性体により処置されたマウスにおいて２．
５から３倍高めであった。このパターンは腫瘍抽出物および血清において観察された。形
質導入されていないＢ１６細胞およびリガンドの最大用量を投与された、あるいは形質導
入されたＢ１６細胞を投与されかつリガンドを投与されなかったコントロール群は、どの
ようなＩＬ−１２発現も示さなかった。リガンド処置を３日間中止された群では、発現レ
ベルは全ての処置群と同じ比率まで降下し、このことはリガンドが除去されたこと、およ
びＲＴＳ活性化はリガンドが取り除かれたときには可逆的であることを示す。腫瘍および
血清中のＩＦＮ−γ濃度をアッセイしたとき、Ｒ鏡像異性体群は明らかに増大した発現を
示した。
実施例７３
２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’
−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドを含む医薬組成物
表１は２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）
−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジド、ＰＬ９０Ｇ、ビタミンＥ Ｔ
ＰＧＳ、ＢＨＴ，およびＭｉｇｌｙｏｌ ８１２Ｎを含む医薬組成物を示す。ＰＬ９０Ｇ
はダイズ由来の高度に精製されたホスファチジルコリンである。ＰＬ９０Ｇの製造者はＬ
ｉｐｏｉｄの子会社のＰＨＯＳＰＨＯＬＩＰＩＤ ＧｍｂＨである。ビタミンＥ ＴＰＧ
ＳはＧＲＡＳ（安全であると一般に認識される）化合物であり、現在の国民医薬品集（Ｎ
Ｆ）研究書の全ての要件に従う。Ｍｉｇｌｙｏｌ ８１２Ｎは分画された植物Ｃ８および
Ｃ１０脂肪酸のトリグリセリドを含む。Ｍｉｇｌｙｏｌ ８１２Ｎの製造に用いられる脂
肪酸はＧＲＡＳに分類され、中鎖トリグリセリドに対する現在のＮＦおよびＥＰ研究書の
要件に合致する。ＢＨＴ［ＭｅＣ６Ｈ２（ＣＭｅ３）２ＯＨ］は、抗酸化食品添加物とし
て広く用いられている親油性（脂溶性）フェノールである、有機化合物である。この処方
は硬質ゼラチンカプセル内に分注された。
実施例７４
疾患の動物モデルにおける有効性
ＲＴＳおよびｍＩＬ−１２もしくはｈＩＬ−１２をコードするアデノウィルスベクター
をそれぞれ形質導入されたマウスまたはヒト樹状細胞（ＤＣ）は、２−エチル−３−メト
キシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−
ベンゾイル）−ヒドラジドの存在下、ｉｎ ｖｉｔｒｏで量依存性にサイトカインを発現
した。２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−
Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドの非存在下では、ＩＬ−１２発現
は基礎レベルであった。
マウスインターロイキン−１２ｐ７０（ＤＣ−ＳＰ１（ＩＬ−１２ｐ７０））をコードす
るアデノウィルスベクターを形質導入された腫瘍内送達ＤＣの抗腫瘍有効性における、２
−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（
３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドの様々な投与経路および用量の比較分析を
、Ｂ１６メラノーママウスモデルにおいて行った。結果は、腹腔内注射（ｉ．ｐ．）、経
管栄養法または食物混合により投与された２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（
１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジ
ドとの組み合わせによる（ＤＣ−ＳＰ１（ＩＬ−１２ｐ７０））治療により、抗腫瘍有効
性が示されたことを示唆した。至適な抗腫瘍効果は、＞３０ｍｇ／ｋｇの２−エチル−３
−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメ
チル−ベンゾイル）−ヒドラジドの用量を（ＤＣ−ＳＰ１（ＩＬ−１２ｐ７０））と共に
投与する治療において生じた。
処置開始前にマウスに腫瘍を接種した（腫瘍を形成するため、Ｃ５７／ＢＬ６マウスに
Ｂ１６細胞を皮下注射した）マウスＢ１６メラノーマモデルにおいて、腫瘍内に注射され
たマウスＩＬ−１２遺伝子を保有する形質導入ＡｄＤＣは、ＡｄＤＣの注射後４８時間以
内の２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ
’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドの全身投与に依存して、腫瘍の完全
な退縮および動物の生存の延長を仲介した。この薬剤依存性効果は：腫瘍およびＤＬＮ内
のトランス遺伝子発現；腫瘍微小環境内でのＡｄ−ＤＣ生存の延長；ＤＬＮ内でのＡｄＤ
Ｃの遊走および残留；ならびに抗Ｂ１６ＣＤ８＋Ｔ細胞の誘導と関連していた。
上記のマウスＢ１６メラノーマモデルにおいて、２−エチル−３−メトキシ−安息香酸
Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−
ヒドラジドによる１３日間の処置と組み合わせた１０７ＡｄＤＣの注射から構成される腫
瘍内治療は、腫瘍特異的な防御免疫を示した。腫瘍が取り除かれた動物に再負荷すると、
５０日目（腫瘍接種後）にこれらの動物はＢ１６メラノーマに対して抵抗性になったが、
ＭＣ３８大腸癌の進行に対してはそうでなかった。
実施例７５
複製能力のない、ＲＴＳおよびｈＩＬ−１２を有する組み換えアデノウィルス
図２３は、Ｅ１およびＥ３領域が欠失し、かつＲＴＳ−ＩＬ１２構成要素がＥ１領域に
取って代わった、Ａｄ−ＲＴＳ−ｈＩＬ−１２の図表示である（図２３は縮尺通りに描か
れていない）。図２３で使用される用語は以下の意味を持つ：
ＲＴＳ−ＩＬ−１２：ＲｈｅｏＳｗｉｔｃｈ（登録商標）Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｓ
ｙｓｔｅｍの制御下にあるヒトＩＬ−１２
Ｐｒｅｇ：活性化薬剤により調節される、ＩＬ１２発現を駆動するプロモーター
ｈＩＬ−１２：ＩＲＥＳ配列により分離される、ヒトＩＬ−１２のｐ４０およびｐ３５
サブユニットのコード配列
ｐｏｌｙＡ：ポリアデニル化シグナル
ＰｕｂＣ：ユビキチンＣプロモーター
ＶＰ１６−ＲＸＲ：ＶＰ１６転写活性化ドメインおよびキメラＲＸＲとの融合タンパク
質
ＩＲＥＳ：内部リボソーム侵入部位
Ｇａｌ４−ＥｃＲ：Ｇａｌ４ＤＮＡ結合ドメインおよびエクジソン受容体リガンド結合
ドメインの融合タンパク質
Ａｄ：Ｅ１およびＥ３遺伝子欠失を含むアデノウィルス−５骨格
組み換えアデノウィルスベクターＡｄ−ＲＴＳ−ｈＩＬ−１２は、Ａｎｄｅｒｓｏｎ
ｅｔ ａｌ， Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ， ４： １０３４−１０３８（２０００）に
記載の通りに調製した。Ａｄ−ＲＴＳ−ｈＩＬ−１２ベクターは以下の様式により産生し
た。ＥＭＣＶ−ＩＲＥＳ（内部リボソーム侵入部位）により分離される受容体融合タンパ
ク質、ＶＰ１６−ＲＸＲおよびＧａｌ４−ＥｃＲのコード配列を、ヒトユビキチンＣプロ
モーター（恒常的プロモーター）の制御下にアデノウィルスシャトルベクター内へ挿入し
た。続いて、合成誘導プロモーターの制御下に置かれた、ＩＲＥＳにより分離されるヒト
ＩＬ−１２のｐ４０およびｐ３５サブユニットのコード配列を、ユビキチンＣプロモータ
ーおよび受容体配列の上流に挿入した。シャトルベクターは、Ｅ１配列が欠失し、かつＲ
ＴＳおよびＩＬ１２配列に取って代わられたもの（ＲＴＳ−ｈＩＬ−１２）由来の左末端
からｍｕｌ６までのアデノウィルス血清型５配列を含む。ＲＴＳ−ｈＩＬ−１２を保有す
るシャトルベクターは、リガンド依存性のＩＬ−１２発現のために、ＨＴ−１０８０細胞
への一過性トランスフェクションにより試験された。その後シャトルベクターを、ＨＥＫ
２９３細胞への共トランスフェクションによってＥ３欠失アデノウィルス骨格と再結合し
、組み換えアデノウィルスＡｄ−ＲＴＳ−ｈＩＬ−１２を得た。臨床グレードのアデノウ
ィルスベクターはｃＧＭＰ施設で産生した。
実施例７６
ｈＩＬ−１２トランス遺伝子を含むアデノウィルスおよびＲｈｅｏｓｗｉｔｃｈ（登録商
標）Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｓｙｓｔｅｍによる自己未熟樹状細胞の形質導入
白血球除去によるＰＢＭＣの回収：被験者はＨｉｌｌｍａｎ ｏｕｔｐａｔｉｅｎｔ
ＣＴＲＣにおいて９０〜１２０分の白血球除去を受けた。白血球除去の手順は、片方の腕
の静脈からの血液の採取；血液をその成分が分離され１以上の成分が除かれる遠心（細胞
分離器）を通過させること；残りの成分を被験者の同じかまたは別の腕の静脈へ戻すこと
を含む。細胞分離装置を通した血液の処理のいずれの１回においても、被験者の全血量の
１５％を超える量は採取されなかった。細胞分離器内で、血液は血漿、血小板、白血球、
および赤血球に分離された。白血球（ＷＢＣ）は除かれ、その他の全ての成分は被験者の
循環中へ戻された。この手順のための２つの末梢ＩＶラインを用いるために、全ての試み
が行われた。それが不可能な場合、中央ラインが必要とされ得る。白血球除去を受けるた
め、被験者は医師による検査を通過しなければならず、かつ手順に先立ちバイタルサイン
（血圧を含む）について日常的にスクリーニングした。
処理：採取後、ｌｅｕｋａｐａｃｋを用手でＣＰＬへ送り、直ちにＥＬＵＴＲＡ（商標
）での遠心エルトリエーションにより処理した。これは臨床用途のために検証された閉鎖
システムである。単球分画を回収し、細胞の回収および生存率が確立された後、これらを
ＩＬ−４およびＧＭ−ＣＳＦ存在下で６日間培養するためにＡａｓｔｒｏｍカートリッジ
へ移した。全ての処理および洗浄手順は無菌状態下で行われた。
最初のプレーティング：単一のｌｅｕｋａｐａｃｋから回収された単球を、生存細胞の
数を決定するためトリパンブルー色素存在下で計数した。単球の純度をフローサイトメト
リーにより評価した。単球を、ＳＯＰ−ＣＰＬ−０１６６あたり１，０００ＩＵ／ｍＬの
ＩＬ−４および１，０００ＩＵ／ｍＬのＧＭ−ＣＳＦを含む無血清および無抗生物質のＣ
ｅｌｌＧｅｎｉｘ培地に再懸濁し、Ａａｓｔｒｏｍカートリッジに配置した。カセットの
接種には、５０ｍｌの最小負荷量および最小細胞数が必要とされる。
培養：Ａａｓｔｒｏｍカートリッジを、完全に閉鎖されｃＧＭＰに適合した未熟ＤＣ発
生のための自動化培養装置である、Ｒｅｐｌｉｃｅｌｌ Ｓｙｓｔｅｍ内のインキュベー
ター内に配置した。
未熟ＤＣの回収：６日目にＡａｓｔｒｏｍカートリッジをインキュベーターから取り除
き、未熟ＤＣを回収した。細胞を１，５００ｒｐｍの遠心により回収し、ＣｅｌｌＧｅｎ
ｉｘ培地で洗浄し、トリパンブルー色素存在下で計数し、かつ形態および表現型の特徴を
調べた。
生存率：トリパンブルー存在下での血球計算板による細胞計数を行って決定した。一般
に、回収された細胞の＞９５％は生存、すなわちトリパンブルー色素を排除する。生存率
が７０％未満であれば、未熟ＤＣは廃棄され得る。
表現型の決定：培養において発生した細胞を血球計算板上で顕微鏡観察により計数し、
トリパンブルー色素を用いた予備的な区別の数値（ＤＣ対リンパ球）を得た。区別の数値
の確認は、ＤＣ対リンパ球にゲートをかけ、未熟ＤＣの高い前方および側方散乱をそれら
の同定の判断基準として用いるフローサイトメトリーにより行った。未熟ＤＣは、樹状細
胞の形態およびＤＣ表現型を有する細胞を日常的に＞８０％含む。
ＩＬ−１２ｐ７０力価アッセイ：成熟ＤＣはＩＬ−１２ｐ７０を自発的に、あるいはＣ
Ｄ４０Ｌによる活性化によって自然免疫シグナル（例えばＬＰＳ）の追加ありまたは追加
なしで、ＩＬ−１２ｐ７０を産生する能力をもつことは確立されている。標準化されたＩ
Ｌ−１２ｐ７０産生アッセイが最近確立され、これは少量のサンプルまたは様々な条件下
で産生されたＤＣワクチンの大きなロットに適用できる。現在の力価アッセイは２つの異
なる工程から構成され、第１は、反応者としてのＤＣと、ヒトＣＤ４０リガンド遺伝子を
安定的にトランスフェクトされた刺激者としてのＪ５８８リンパ腫細胞との共インキュベ
ーションに関する。第２の工程は、これらの共培養からの上清を、Ｊ５５８／ＣＤ４０Ｌ
＋／−ＬＰＳで刺激されたＤＣにより分泌されたＩＬ−１２ｐ７０の濃度についてＬｕｍ
ｉｎｅｘシステム中で試験することに関する。この力価アッセイは、アッセイ間で１８．
５％（ｎ＝３０）のＣＶおよび広いダイナミックレンジを有し、これはＩＬ−１２ｐ７０
産生の大いに異なる濃度により特徴付けられる様々なＤＣ産物の評価を促進する。１３人
の正常ドナーの単球から産生されたＤＣ産物を用いて確立されたアッセイの正常範囲は８
〜９９９ｐｇ／ｍＬ、平均２７０ｐｇ／ｍＬである。
実施例７７
未熟ＤＣのアデノウィルス形質導入
未熟ＤＣを回収し、計数して生存率について試験した。約６〜７ｘ１０７ＤＣへ、至適
ウィルス吸着時間（２時間ないし４時間、未確定）に対する至適感染効率（至適ＭＯＩ、
５００ないし１０００、未確定）においてアデノウィルスベクターにより形質導入した。
形質導入後、吸着されなかったいずれのウィルス粒子も除去するため、細胞を繰り返し洗
浄した。一定分量を無菌性、エンドトキシン、マイコプラズマ、ＤＣ表現型およびＩＬ−
１２トランス遺伝子誘導アッセイのために取っておいた。放出試験が完了するまで、５ｘ
１０７細胞の標的用量は生理食塩水中で４℃において保持される。
全ての放出試験に合格した、形質導入されたＤＣ（ＡｄＤＣ）は下記のように患者への
投与のためクリニックへ届けられる。
形質導入されたＡｄＤＣによるＩＬ−１２トランス遺伝子誘導のｉｎ ｖｉｔｒｏ試験
は、結果を得るまでに最低２日間必要であり、それ故に（Ｒ）−２−エチル−３−メトキ
シ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベ
ンゾイル）−ヒドラジドへの反応におけるＩＬ−１２産生は、ＡｄＤＣの腫瘍内注射に対
する放出の判断基準にはなり得ない。しかしながら、３人の健常志願者由来のＡｄＤＣに
よる予備調査に基づき、（Ｒ）−２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅ
ｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドへの反
応における誘導されたＩＬ−１２産生は、２４時間以内に百万細胞あたり８０ないし３０
０ｎｇＩＬ−１２の標的範囲内を達成した（３つのＡｄＤＣ調製品のうち２つにおいて、
８０ｎｇ／百万細胞／２４時間の発現レベルが観察された）。従って、ｉｎ ｖｉｔｒｏ
でのＩＬ−１２誘導結果は治療成績の分析に用いられる。形質導入されたＡｄＤＣそれ自
体は、ウィルス形質導入および洗浄後の注射に使用される。残った未形質導入および形質
導入ＤＣのいずれも、必要に応じた将来の分析のために凍結保存した。
ＡｄＤＣの患者への投与：１回の注射量１５０マイクロリットルあたり５ｘ１０７細胞
（または試行の被験者からの、ＤＣ収量の約９０％）を含む、０．９％生理食塩水溶液中
のＡｄＤＣの単回腫瘍内注射。被験者は、１回の注射あたり５ｘ１０７細胞を超えない、
可能な最大用量のＡｄＤＣを投与されなければならない。
実施例７８
ステージＩＩＩおよびＩＶメラノーマの被験者において、ＲｈｅｏＳｗｉｔｃｈ（登録商
標）の制御下でｈＩＬ−１２を発現するように操作され、アデノウィルスにより形質導入
された自己樹状細胞のヒトへの投与。
コホート１は１２被験者で構成され得り、コホート２は２８被験者で構成され得る。全
ての被験者は、最初に（Ｒ）−２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒ
ｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドを投与さ
れてから約２４時間後に、形質導入された自己ＡｄＤＣの単回腫瘍内注射を受けることに
なる。コホート１の被験者は、段階的に増大する（Ｒ）−２−エチル−３−メトキシ−安
息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイ
ル）−ヒドラジドの用量を投与されるため、３被験者ずつ４群（Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ）に配置
された。コホート２では、被験者は（Ｒ）−２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−
（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラ
ジドの最大耐容性の経口用量（コホート１から決定された）を受けることになる。ＡｄＤ
Ｃの注射後直ちに、被験者は（Ｒ）−２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−
ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドで
さらなる１３日間処置されるであろう。コホート１の各群の全ての被験者に対し、被験者
が次により高い用量の（Ｒ）−２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒ
ｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドの投与に
登録される前、ＡｄＤＣの注射後１か月までに、安全性、耐性、およびトランス遺伝子の
機能について評価されるであろう。コホート１が入院患者処置段階を完了してから３０日
後、かつ形質導入された自己樹状細胞の腫瘍内注射から少なくとも６ないし８週間に、も
し被験者が再処置を希望し、かつ被験者が再処置に対する判断基準に適合すれば、（Ｒ）
−２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’
−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドの連続１４日間の投与と共にＤＣが追
加で注射されるであろう。（Ｒ）−２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−（１−ｔ
ｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジドの用
量（０．０１ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ、１．０ｍｇ／ｋｇまたは１０．０ｍｇ／ｋ
ｇ）は、コホート１からの最大許容量であり得る。
患者は身体検査（ＥＣＯＧ活動指標を含む）により、バイタルサイン、血清化学、尿検
査、血液学、有害事象、抗体、ならびにアデノウィルスベクターおよびＲｈｅｏＳｗｉｔ
ｃｈ（登録商標）Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｓｙｓｔｅｍの成分に対する細胞免疫反応に
ついて評価されるであろう。また、（Ｒ）−２−エチル−３−メトキシ−安息香酸Ｎ’−
（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラ
ジドおよびその主要な代謝物の経口投与における、一用量および定常状態の薬物動態／Ａ
ＤＭＥ；標的腫瘍および／または流入領域リンパ節の組織診におけるｈＩＬ−１２レベル
の測定を通したトランス遺伝子機能の解析；標的腫瘍、流入領域リンパ節および末梢循環
の組織診における細胞免疫反応（Ｔ細胞）の測定による免疫効果の評価、も評価されるで
あろう。
前記の実施形態および例証はどのような観点においても本発明の範囲を限定しようと意
図するものではなく、かつここに提示する請求項は、全ての実施形態および例証を明らか
に提示されているか否かに関わらず包含しようと意図することが理解されなければならな
い。
前記の実施形態および例証はどのような観点においても本発明の範囲を限定しようと意図するものではなく、かつここに提示する請求項は、全ての実施形態および例証を明らかに提示されているか否かに関わらず包含しようと意図することが理解されなければならない。

本発明は以下の態様を含み得る。
［１］
式１
式中、Ａはアルコキシ基、アリールアルキルオキシ基、またはアリールオキシ基を表し 、Ｂは任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し、Ｒ １ およびＲ ２ は互いに独立して任意に置換されたアルキル基、アリールアルキル基、ヒド ロキシアルキル基、ハロアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換さ れたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に 置換されたアリール基、または任意に置換されたヘテロアリール基を表す；
で表される化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、結晶形または非晶形 。
［２］
式２
式中、Ａはアルコキシ基、アリールアルキルオキシ基、アリールオキシ基、アリールア ルキル基、任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し 、Ｂは任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し、か つＲ １ およびＲ ２ は互いに独立して任意に置換されたアルキル基、アリールアルキル基、 ヒドロキシアルキル基、ハロアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置 換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任 意に置換されたアリール基、または任意に置換されたヘテロアリール基を表すが、Ｒ １ お よびＲ ２ は同じではなく、式中、Ｒ １ およびＲ ２ を有する不斉炭素原子における絶対配置 が主にＳである；
で表される鏡像異性体の豊富な化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、 結晶形または非晶形。
［３］
式３
式中、Ａはアルコキシ基、アリールアルキルオキシ基、アリールオキシ基、アリールア ルキル基、任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し 、Ｂは任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し、か つＲ １ およびＲ ２ は互いに独立して任意に置換されたアルキル基、アリールアルキル基、 ヒドロキシアルキル基、ハロアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置 換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任 意に置換されたアリール基、または任意に置換されたヘテロアリール基を表すが、Ｒ １ お よびＲ ２ は同じではなく、式中、Ｒ １ およびＲ ２ を有する不斉炭素原子における絶対配置 が主にＲである；
で表される鏡像異性体の豊富な化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、 結晶形または非晶形。
［４］
少なくとも５０％の鏡像異性体過剰率を有する請求項２または３に記載の化合物。
［５］
少なくとも７５％の鏡像異性体過剰率を有する請求項４に記載の化合物。
［６］
少なくとも８５％の鏡像異性体過剰率を有する請求項５に記載の化合物。
［７］
少なくとも９５％の鏡像異性体過剰率を有する請求項６に記載の化合物。
［８］
式中、Ａは−ＯＣ（ＣＨ ３ ） ３ 、−ＯＣＨ ２ Ｐｈ、任意に置換されたアリール基または 任意に置換されたヘテロアリール基を表し、Ｂは任意に置換されたアリール基を表し、Ｒ １ は任意に置換された（Ｃ １ −Ｃ ６ ）アルキル基、ヒドロキシ（Ｃ １ −Ｃ ４ ）アルキル基 または任意に置換された（Ｃ ２ −Ｃ ６ ）アルケニル基を表し、かつＲ ２ は任意に置換され た（Ｃ １ −Ｃ ６ ）アルキル基、アリール（Ｃ １ −Ｃ ４ ）アルキル基、任意に置換された（ Ｃ ３ −Ｃ ７ ）シクロアルキル基または任意に置換されたアリール基を表す；
で表される請求項２または３に記載の化合物。
［９］
Ａが任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表す、請 求項８に記載の化合物。
［１０］
式中、
Ｒ ３ａ 、Ｒ ３ｂ 、Ｒ ３ｃ 、Ｒ ３ｄ およびＲ ３ｅ は互いに独立して水素、ハロ基、ニトロ 基、シアノ基、ヒドロキシ基、アミノ基、任意に置換されたアルキル基、ハロアルキル基 、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任 意に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換されたアリー ル基、任意に置換されたヘテロアリール基、任意に置換された複素環基、アルコキシ基、 アリールオキシ基、アリールアルキルオキシ基、アルキルチオ基、カルボキシアミド基、 スルフォンアミド基、−ＣＯＲ ｃ 、−ＳＯ ２ Ｒ ｄ 、−Ｎ（Ｒ ｅ ）ＣＯＲ ｆ 、−Ｎ（Ｒ ｅ ） ＳＯ ２ Ｒ ｇ または−Ｎ（Ｒ ｅ ）Ｃ＝Ｎ（Ｒ ｈ ）−アミノ基から選択され；または
Ｒ ３ａ およびＲ ３ｂ はまとまって、それらが付着する炭素原子と共に、シクロアルキル 基または複素環基と融合した５、６、または７員環を形成するか；またはＲ ３ｂ およびＲ ３ｃ はまとまって、それらが付着する炭素原子と共に、シクロアルキル基または複素環基 と融合した５、６、または７員環を形成し；
Ｒ ４ａ 、Ｒ ４ｂ 、Ｒ ４ｃ 、Ｒ ５ａ 、Ｒ ５ｂ 、Ｒ ６ａ 、Ｒ ６ｂ 、およびＲ ６ｃ は互いに独 立して水素、ハロ基、ニトロ基、シアノ基、ヒドロキシ基、アミノ基、任意に置換された アルキル基、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換 されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル 基、任意に置換されたアリール基、任意に置換されたヘテロアリール基、任意に置換され た複素環基、アルコキシ基、アリールオキシ基、アリールアルキルオキシ基、アルキルチ オ基、カルボキシアミド基、スルフォンアミド基、−ＣＯＲ ｃ 、−ＳＯ ２ Ｒ ｄ 、−Ｎ（Ｒ ｅ ）ＣＯＲ ｆ 、−Ｎ（Ｒ ｅ ）ＳＯ ２ Ｒ ｇ または−Ｎ（Ｒ ｅ ）Ｃ＝Ｎ（Ｒ ｈ ）−アミノ基か ら選択され；
ＸはＯまたはＳであり、Ｂは
で表され；かつ
Ｒ ３ｆ 、Ｒ ３ｇ 、Ｒ ３ｈ 、Ｒ ３ｉ 、およびＲ ３ｊ は互いに独立して水素、ハロ基、ニト ロ基、シアノ基、ヒドロキシ基、アミノ基、任意に置換されたアルキル基、ハロアルキル 基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、 任意に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換されたアリ ール基、任意に置換されたヘテロアリール基、任意に置換された複素環基、アルコキシ基 、アリールオキシ基、アリールアルキルオキシ基、アルキルチオ基、カルボキシアミド基 、スルフォンアミド基、−ＣＯＲ ｃ 、−ＳＯ ２ Ｒ ｄ 、−Ｎ（Ｒ ｅ ）ＣＯＲ ｆ 、−Ｎ（Ｒ ｅ ）ＳＯ ２ Ｒ ｇ または−Ｎ（Ｒ ｅ ）Ｃ＝Ｎ（Ｒ ｈ ）−アミノ基から選択され；または
Ｒ ３ｆ およびＲ ３ｇ はまとまって、それらが付着する炭素原子と共に、シクロアルキル 基または複素環基と融合した５、６、または７員環を形成するか；またはＲ ３ｇ およびＲ ３ｈ はまとまって、それらが付着する炭素原子と共に、シクロアルキル基または複素環基 と融合した５、６、または７員環を形成し；
式中、
Ｒ ｃ は水素、ヒドロキシ基、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキ ル基、任意に置換されたアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換さ れたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に 置換されたアリール基、任意に置換されたヘテロアリール基、アルコキシ基、アリールオ キシ基、またはアリールアルキルオキシ基を表し；
Ｒ ｄ はハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換され たアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任 意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に置換されたアリール基 または任意に置換されたヘテロアリール基を表し；
Ｒ ｅ は水素、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置 換されたアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル 基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に置換されたアリ ール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し；
Ｒ ｆ は水素、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置 換されたアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル 基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に置換されたアリ ール基、任意に置換されたヘテロアリール基、アルコキシ基、アリールオキシ基、アリー ルアルキルオキシ基、またはアミノ基を表し；
Ｒ ｇ はハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換され たアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任 意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に置換されたアリール基 、任意に置換されたヘテロアリール基、またはアミノ基を表し；
Ｒ ｈ は水素、アルキル基、アリール基、シアノ基、またはニトロ基を表す；
請求項９に記載の化合物。
［１１］
式中、Ｒ １ は（Ｃ １ −Ｃ ６ ）アルキル基、ヒドロキシ（Ｃ １ −Ｃ ４ ）アルキル基、また は（Ｃ ２ −Ｃ ４ ）アルケニル基を表し；かつ
Ｒ ２ は任意に置換された（Ｃ １ −Ｃ ６ ）アルキル基を表し；
式中、Ｒ １ およびＲ ２ を有する不斉炭素原子における絶対配置が主にＲである；
請求項１０に記載の化合物。
［１２］
式中、Ａは
で表され、
Ｒ ３ａ 、Ｒ ３ｂ 、Ｒ ３ｃ 、Ｒ ３ｄ およびＲ ３ｅ は互いに独立して水素、ハロ基、（Ｃ １ −Ｃ ４ ）アルキル基、または（Ｃ １ −Ｃ ４ ）アルコキシ基で表され；かつ
Ｒ ３ｆ 、Ｒ ３ｇ 、Ｒ ３ｈ 、Ｒ ３ｉ 、およびＲ ３ｊ は互いに独立して水素、ハロ基、（Ｃ １ −Ｃ ４ ）アルキル基、または（Ｃ １ −Ｃ ４ ）アルコキシ基で表される；
請求項１１に記載の化合物。
［１３］
少なくとも５０％の鏡像異性体過剰率を有する請求項８に記載の化合物。
［１４］
少なくとも７５％の鏡像異性体過剰率を有する請求項１３に記載の化合物。
［１５］
少なくとも８５％の鏡像異性体過剰率を有する請求項１４に記載の化合物。
［１６］
少なくとも９５％の鏡像異性体過剰率を有する請求項１５に記載の化合物。
［１７］
（Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベン ゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステル；
（Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベン ゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ｔｅｒｔ−ブチルエステル；
（Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−４−ヒドロキシ−ブチル）−Ｎ’−（３，５ −ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステル；
（Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−４−ヒドロキシ−ブチル）−Ｎ’−（３，５ −ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステル；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ’−ベンゾイル−Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル −ブチル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （２−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （２−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （２−フルオロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （２−クロロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ’−（２−ブロモ−ベンゾイル）−Ｎ−（１− ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （３−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （３−クロロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （４−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （４−エチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （４−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （４−クロロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （２，６−ジフルオロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （２，６−ジクロロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （３，４−ジメトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （３，５−ジフルオロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （３，５−ジメトキシ−４−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （４−メチル−ベンゾ［１，３］ジオキソール−５−カルボニル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （５−メチル−２，３−ジヒドロ−ベンゾ［１，４］ジオキシン−６−カルボニル）−ヒ ドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （５−エチル−２，３−ジヒドロ−ベンゾ［１，４］ジオキシン−６−カルボニル）−ヒ ドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （ナフタレン−１−カルボニル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （ナフタレン−２−カルボニル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （チオフェン−２−カルボニル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （２，５−ジメチル−フラン−３−カルボニル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （２−クロロ−ピリジン−３−カルボニル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （６−クロロ−ピリジン−３−カルボニル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’− （３−メトキシ−２−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
（Ｒ）−３，５−ジメトキシ−４−メチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブ チル）−Ｎ’−（３−メトキシ−２−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；または
（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ’−（４−エチル−ベンゾイル）−Ｎ−（１− フェネチル−ブト−３−エニル）−ヒドラジド
から選択される請求項３に記載の化合物。
［１８］
少なくとも９５％の鏡像異性体過剰率を有する（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ −（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル ）−ヒドラジド、またはその薬理学的に許容される塩、水和物、結晶形または非晶形。
［１９］
少なくとも９９％の鏡像異性体過剰率を有する（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ −（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル ）−ヒドラジド、またはその薬理学的に許容される塩、水和物、結晶形または非晶形。
［２０］
請求項１〜１７のいずれか１項に記載の化合物を含む医薬組成物。
［２１］
請求項１８または１９に記載の化合物を含む医薬組成物。
［２２］
式４
式中、Ａはアリールアルキル基、任意に置換されたアリール基または任意に置換された ヘテロアリール基を表し、Ｂは任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテ ロアリール基を表し、Ｒ ２ は任意に置換されたアルキル基、アリールアルキル基、ヒドロ キシアルキル基、ハロアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換され たアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に置 換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表すが、Ｒ ２ は−ＣＲ ８ Ｒ ９ ＣＨＲ １０ ＣＲ １１ Ｒ １２ と同じではなく、かつＲ ８ 、Ｒ ９ 、Ｒ １０ 、Ｒ １１ 、およ びＲ １２ は互いに独立して水素、アルキル基、シクロアルキル基、複素環基、アリール基 またはヘテロアリール基から選択され、式中、Ｒ ２ が付着する不斉炭素原子はＲまたはＳ 異性体のどちらかの鏡像異性体が豊富である；
で表される化合物を調製するための方法であって、
ａ）式５
で表される化合物と式６
Ｒ ２ ＨＣ＝Ｎ−ＮＨ−ＣＯ ２ Ｒ ７ 式６
式中、ＸおよびＹは互いに独立してＯ、あるいはＲがアルキル基またはアリール基のＮ Ｒであり、Ｃ ａ およびＣ ｂ は互いに独立してＳ立体配置の不斉炭素原子またはＲ立体配置 の不斉炭素原子であり、Ｒ １４ およびＲ １５ は互いに独立してアルキル基またはアリール 基であり、Ｒ １３ はハロ基、水素、アルキル基、アルコキシ基またはＯＳＯ ２ ＣＦ ３ であ り、Ｒ ７ はアルキル基、アリールアルキル基またはアリール基であり、かつＲ ２ 、Ｒ ８ 、 Ｒ ９ 、Ｒ １０ 、Ｒ １１ 、およびＲ １２ は上記と同じ意味である；
で表される化合物を、式７
で表される化合物を形成するために反応させる工程と、
ｂ）式８
で表される化合物を形成するため、式７で表される化合物を還元する工程と、
ｃ）式９
で表される化合物を形成するため、式８で表される化合物を、式Ｂ−ＣＯ−ＬＧで表され 、ＬＧが脱離基である化合物と反応させる工程と、
ｄ）式１０
で表される化合物を形成するため、式９で表される化合物のＲ ７ ＣＯ ２ −残基を除去する 工程、および
ｅ）式４で表される化合物を形成するため、式１０で表される化合物を、式Ａ−ＣＯ− ＬＧで表され、ＬＧが脱離基である化合物と反応させる工程とを含む方法。
［２３］
式中、Ｒ ８ 、Ｒ ９ 、Ｒ １０ 、Ｒ １１ 、およびＲ １２ が水素を表す；
請求項２２に記載の方法。
［２４］
式中、ＸがＮＲであり、かつＲがメチル基であり；ＹがＯであり；Ｒ １４ がメチル基で あり；Ｒ １５ がフェニル基であり；かつＣ ａ およびＣ ｂ のそれぞれがＲ立体配置である； 請求項２３に記載の方法。
［２５］
式中、ＸがＮＲであり、かつＲがメチル基であり；ＹがＯであり；Ｒ １４ がメチル基で あり；Ｒ １５ がフェニル基であり；かつＣ ａ およびＣ ｂ のそれぞれがＳ立体配置である； 請求項２４に記載の方法。
［２６］
請求項２または３に記載の化合物を調製するための方法であって、
ａ）式１１
で表される化合物と式１２
で表される化合物のケトンを、式１３
式中、Ｒ １ およびＲ ２ は同じではない；
で表される化合物を形成するために反応させる工程と；
ｂ）式Ｓ−１４、または、式Ｒ−１４
で表される化合物を形成するため、式１３で表される化合物をキラル触媒の存在下で還元 する工程；および
ｃ）請求項２または３に記載の化合物を形成するため、式Ｓ−１４またはＲ−１４で表 される化合物を、式Ｂ−ＣＯ−ＬＧで表され、ＬＧが脱離基である化合物と反応させる工 程とを含む方法。
［２７］
Ｂが３，５−ジ−メチルフェニル基である請求項２５または２６に記載の方法。
［２８］
Ａが２−エチル−３−メトキシフェニル基である請求項２５または２６に記載の方法。 ［２９］
Ｒ ２ がｔｅｒｔ−ブチル基である請求項２５または２６に記載の方法。
［３０］
ホスト細胞内で所望の遺伝子の発現を調節する方法であって、該ホスト細胞が
ｉ）ＤＮＡ結合ドメイン、および
ｉｉ）グループＨ核内受容体リガンド結合ドメイン
を含む第１のポリペプチドをコードする第１のポリヌクレオチドを含む第１の組み換え遺 伝子発現カセット、および
ｉ）該ＤＮＡ結合ドメインに結合可能な反応エレメント
ｉｉ）プロモーター、および
ｉｉｉ）該所望の遺伝子
を含む第２の組み換え遺伝子発現カセットを含み、
該方法が該ホスト細胞を請求項１〜３のいずれか１項に記載の化合物と接触させること を含み、ここで該所望の遺伝子の発現が調節される方法。
［３１］
リガンドを前記被験体の細胞内でエクジソン受容体複合体に接触させることを含む、ト ランスジェニック被験体における内在性または異種性遺伝子発現を調節するための方法で あって、ここで前記細胞はさらに、リガンドと組み合わせたときの前記エクジソン受容体 複合体に対するＤＮＡ結合配列を含み、かつエクジソン受容体複合体‐リガンド‐ＤＮＡ 結合配列複合体の形成が遺伝子の発現を誘導し、かつ前記リガンドが請求項１〜３のいず れか１項に記載の化合物であり、トランスジェニック被験体における内在性または異種性 遺伝子発現が調節される方法。
［３２］
前記エクジソン受容体複合体がキメラエクジソン受容体複合体であり、かつ前記ＤＮＡ 結合配列がさらにプロモーターを含む、請求項３１に記載の方法。
［３３］
該被験体が植物である、請求項３１に記載の方法。
［３４］
該被験体が動物である、請求項３１に記載の方法。
［３５］
該被験体が哺乳類である、請求項３１に記載の方法。
［３６］
該被験体がヒトである、請求項３４に記載の方法。
［３７］
前記細胞が自己細胞である、請求項３１に記載の方法。
［３８］
前記自己細胞が前記エクジソン受容体複合体および該エクジソン複合体に対するＤＮＡ 結合配列を含み、かつ前記細胞が前記被験体をトランスジェニックにするため前記被験体 内へ移植される、請求項３７に記載の方法。
［３９］
前記移植が注射による、請求項３８に記載の方法。
［４０］
前記注射が腫瘍内へ行なわれる、請求項３９に記載の方法。
［４１］
前記リガンドが薬理学的に許容される担体を含む医薬組成物の一部として前記トランス ジェニック被験体へ投与される、請求項３１に記載の方法。
［４２］
前記医薬組成物が経口投与される、請求項４１に記載の方法。
［４３］
前記薬理学的に許容される担体が親油性溶媒を含む、請求項４１に記載の方法。
［４４］
トランスジェニック被験体におけるトランス遺伝子発現の調節方法であって、ここで前 記トランスジェニック被験体がトランス遺伝子発現の調節が可能な組み換えエクジソン受 容体複合体を含み、該方法が前記被験体に請求項１〜３のいずれか１項に記載の化合物を 投与することを含む方法。
［４５］
（ａ）ホスト細胞内に遺伝子発現調節システムを導入する工程であって、該システムが （ｉ）ホスト細胞内で発現可能な第１の組み換え遺伝子発現カセットであって、
（ａ）その発現が調節されるべき遺伝子に結合する反応エレメントを認識するＤＮ Ａ結合ドメイン、および
（ｂ）エクジソン受容体リガンド結合ドメイン
を含む第１のハイブリッドポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む、該第 １の組み換え遺伝子発現カセット、
（ｉｉ）該ホスト細胞内で発現可能な第２の組み換え遺伝子発現カセットであって、 （ａ）トランス活性化ドメイン、および
（ｂ）キメラレチノイドＸ受容体リガンド結合ドメイン
を含む第２のハイブリッドポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む、該第 ２の組み換え遺伝子発現カセット、および
（ｉｉｉ）ホスト細胞内で発現可能な第３の組み換え遺伝子発現カセットであって、 （ａ）第１のハイブリッドポリペプチドのＤＮＡ結合ドメインにより認識される反 応エレメント、
（ｂ）第２のハイブリッドポリペプチドのトランス活性化ドメインにより活性化さ れるプロモーター、および
（ｃ）その発現が調節されるべき遺伝子
を含むポリヌクレオチド配列を含む、該第３の組み換え遺伝子発現カセットを含む工程、 および
（ｂ）ホスト細胞内に請求項１〜３のいずれか１項に記載の化合物を導入し、ここでホ スト細胞内の遺伝子発現が調節される工程を含む、ホスト細胞内で遺伝子の発現を調節す る方法。
［４６］
（ａ）請求項１〜３のいずれか１項に記載の化合物への曝露に実質的に非感受性である ホスト細胞を選択する工程、
（ｂ）ホスト細胞内へ
（ｉ）ＤＮＡコンストラクトであって、
（ａ）ポリペプチドをコードする外因性遺伝子、および
（ｂ）該遺伝子が反応エレメントの制御下にある、反応エレメント
を含むコンストラクト、および
（ｉｉ）エクジソン受容体複合体であって、
ａ）該反応エレメントに結合するＤＮＡ結合ドメイン、
ｂ）前記化合物の結合ドメイン、
ｃ）トランス活性化ドメインを含む複合体、を導入する工程、および
（ｃ）前記化合物へ該細胞を曝露し、ここでポリペプチドが産生される工程を含む、ポ リペプチドを産生するための方法。
［４７］
前記エクジソン受容体複合体またはエクジソン受容体リガンド結合ドメインが変異を含 む、請求項３１〜４４のいずれか１項に記載の方法。

Claims (47)

  1. 式１

    式中、Ａはアルコキシ基、アリールアルキルオキシ基、またはアリールオキシ基を表し
    、Ｂは任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し、Ｒ
    １およびＲ２は互いに独立して任意に置換されたアルキル基、アリールアルキル基、ヒド
    ロキシアルキル基、ハロアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換さ
    れたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に
    置換されたアリール基、または任意に置換されたヘテロアリール基を表す；
    で表される化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、結晶形または非晶形
    。
  2. 式２

    式中、Ａはアルコキシ基、アリールアルキルオキシ基、アリールオキシ基、アリールア
    ルキル基、任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し
    、Ｂは任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し、か
    つＲ１およびＲ２は互いに独立して任意に置換されたアルキル基、アリールアルキル基、
    ヒドロキシアルキル基、ハロアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置
    換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任
    意に置換されたアリール基、または任意に置換されたヘテロアリール基を表すが、Ｒ１お
    よびＲ２は同じではなく、式中、Ｒ１およびＲ２に関連する不斉炭素原子における無水の
    立体配置が主にＳである；
    で表される鏡像異性体の豊富な化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、
    結晶形または非晶形。
  3. 式３

    式中、Ａはアルコキシ基、アリールアルキルオキシ基、アリールオキシ基、アリールア
    ルキル基、任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し
    、Ｂは任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し、か
    つＲ１およびＲ２は互いに独立して任意に置換されたアルキル基、アリールアルキル基、
    ヒドロキシアルキル基、ハロアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置
    換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任
    意に置換されたアリール基、または任意に置換されたヘテロアリール基を表すが、Ｒ１お
    よびＲ２は同じではなく、式中、Ｒ１およびＲ２に関連する不斉炭素原子における無水の
    立体配置が主にＲである；
    で表される鏡像異性体の豊富な化合物、あるいはその薬理学的に許容される塩、水和物、
    結晶形または非晶形。
  4. 少なくとも５０％の鏡像異性体過剰率を有する請求項２または３に記載の化合物。
  5. 少なくとも７５％の鏡像異性体過剰率を有する請求項４に記載の化合物。
  6. 少なくとも８５％の鏡像異性体過剰率を有する請求項５に記載の化合物。
  7. 少なくとも９５％の鏡像異性体過剰率を有する請求項６に記載の化合物。
  8. 式中、Ａは−ＯＣ（ＣＨ３）３、−ＯＣＨ２Ｐｈ、任意に置換されたアリール基または
    任意に置換されたヘテロアリール基を表し、Ｂは任意に置換されたアリール基を表し、Ｒ
    １は任意に置換された（Ｃ１−Ｃ６）アルキル基、ヒドロキシ（Ｃ１−Ｃ４）アルキル基
    または任意に置換された（Ｃ２−Ｃ６）アルケニル基を表し、かつＲ２は任意に置換され
    た（Ｃ１−Ｃ６）アルキル基、アリール（Ｃ１−Ｃ４）アルキル基、任意に置換された（
    Ｃ３−Ｃ７）シクロアルキル基または任意に置換されたアリール基を表す；
    で表される請求項２または３に記載の化合物。
  9. Ａが任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表す、請
    求項８に記載の化合物。

  10. 式中、
    Ｒ３ａ、Ｒ３ｂ、Ｒ３ｃ、Ｒ３ｄおよびＲ３ｅは互いに独立して水素、ハロ基、ニトロ
    基、シアノ基、ヒドロキシ基、アミノ基、任意に置換されたアルキル基、ハロアルキル基
    、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任
    意に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換されたアリー
    ル基、任意に置換されたヘテロアリール基、任意に置換された複素環基、アルコキシ基、
    アリールオキシ基、アリールアルキルオキシ基、アルキルチオ基、カルボキシアミド基、
    スルフォンアミド基、−ＣＯＲｃ、−ＳＯ２Ｒｄ、−Ｎ（Ｒｅ）ＣＯＲｆ、−Ｎ（Ｒｅ）
    ＳＯ２Ｒｇまたは−Ｎ（Ｒｅ）Ｃ＝Ｎ（Ｒｈ）−アミノ基から選択され；または
    Ｒ３ａおよびＲ３ｂはまとまって、それらが付着する炭素原子と共に、シクロアルキル
    基または複素環基と融合した５、６、または７員環を形成するか；またはＲ３ｂおよびＲ
    ３ｃはまとまって、それらが付着する炭素原子と共に、シクロアルキル基または複素環基
    と融合した５、６、または７員環を形成し；
    Ｒ４ａ、Ｒ４ｂ、Ｒ４ｃ、Ｒ５ａ、Ｒ５ｂ、Ｒ６ａ、Ｒ６ｂ、およびＲ６ｃは互いに独
    立して水素、ハロ基、ニトロ基、シアノ基、ヒドロキシ基、アミノ基、任意に置換された
    アルキル基、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換
    されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル
    基、任意に置換されたアリール基、任意に置換されたヘテロアリール基、任意に置換され
    た複素環基、アルコキシ基、アリールオキシ基、アリールアルキルオキシ基、アルキルチ
    オ基、カルボキシアミド基、スルフォンアミド基、−ＣＯＲｃ、−ＳＯ２Ｒｄ、−Ｎ（Ｒ
    ｅ）ＣＯＲｆ、−Ｎ（Ｒｅ）ＳＯ２Ｒｇまたは−Ｎ（Ｒｅ）Ｃ＝Ｎ（Ｒｈ）−アミノ基か
    ら選択され；
    ＸはＯまたはＳであり、Ｂは
    で表され；かつ
    Ｒ３ｆ、Ｒ３ｇ、Ｒ３ｈ、Ｒ３ｉ、およびＲ３ｊは互いに独立して水素、ハロ基、ニト
    ロ基、シアノ基、ヒドロキシ基、アミノ基、任意に置換されたアルキル基、ハロアルキル
    基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、
    任意に置換されたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換されたアリ
    ール基、任意に置換されたヘテロアリール基、任意に置換された複素環基、アルコキシ基
    、アリールオキシ基、アリールアルキルオキシ基、アルキルチオ基、カルボキシアミド基
    、スルフォンアミド基、−ＣＯＲｃ、−ＳＯ２Ｒｄ、−Ｎ（Ｒｅ）ＣＯＲｆ、−Ｎ（Ｒｅ
    ）ＳＯ２Ｒｇまたは−Ｎ（Ｒｅ）Ｃ＝Ｎ（Ｒｈ）−アミノ基から選択され；または
    Ｒ３ｆおよびＲ３ｇはまとまって、それらが付着する炭素原子と共に、シクロアルキル
    基または複素環基と融合した５、６、または７員環を形成するか；またはＲ３ｇおよびＲ
    ３ｈはまとまって、それらが付着する炭素原子と共に、シクロアルキル基または複素環基
    と融合した５、６、または７員環を形成し；
    式中、
    Ｒｃは水素、ヒドロキシ基、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキ
    ル基、任意に置換されたアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換さ
    れたアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に
    置換されたアリール基、任意に置換されたヘテロアリール基、アルコキシ基、アリールオ
    キシ基、またはアリールアルキルオキシ基を表し；
    Ｒｄはハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換され
    たアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任
    意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に置換されたアリール基
    または任意に置換されたヘテロアリール基を表し；
    Ｒｅは水素、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置
    換されたアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル
    基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に置換されたアリ
    ール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表し；
    Ｒｆは水素、ハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置
    換されたアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル
    基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に置換されたアリ
    ール基、任意に置換されたヘテロアリール基、アルコキシ基、アリールオキシ基、アリー
    ルアルキルオキシ基、またはアミノ基を表し；
    Ｒｇはハロアルキル基、ヒドロキシアルキル基、アリールアルキル基、任意に置換され
    たアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換されたアルケニル基、任
    意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に置換されたアリール基
    、任意に置換されたヘテロアリール基、またはアミノ基を表し；
    Ｒｈは水素、アルキル基、アリール基、シアノ基、またはニトロ基を表す；
    請求項９に記載の化合物。
  11. 式中、Ｒ１は（Ｃ１−Ｃ６）アルキル基、ヒドロキシ（Ｃ１−Ｃ４）アルキル基、また
    は（Ｃ２−Ｃ４）アルケニル基を表し；かつ
    Ｒ２は任意に置換された（Ｃ１−Ｃ６）アルキル基を表し；
    式中、Ｒ１およびＲ２に関連する不斉炭素原子における無水の立体配置が主にＲである；
    請求項１０に記載の化合物。
  12. 式中、Ａは
    で表され、
    Ｒ３ａ、Ｒ３ｂ、Ｒ３ｃ、Ｒ３ｄおよびＲ３ｅは互いに独立して水素、ハロ基、（Ｃ１
    −Ｃ４）アルキル基、または（Ｃ１−Ｃ４）アルコキシ基で表され；かつ
    Ｒ３ｆ、Ｒ３ｇ、Ｒ３ｈ、Ｒ３ｉ、およびＲ３ｊは互いに独立して水素、ハロ基、（Ｃ
    １−Ｃ４）アルキル基、または（Ｃ１−Ｃ４）アルコキシ基で表される；
    請求項１１に記載の化合物。
  13. 少なくとも５０％の鏡像異性体過剰率を有する請求項８に記載の化合物。
  14. 少なくとも７５％の鏡像異性体過剰率を有する請求項１３に記載の化合物。
  15. 少なくとも８５％の鏡像異性体過剰率を有する請求項１４に記載の化合物。
  16. 少なくとも９５％の鏡像異性体過剰率を有する請求項１５に記載の化合物。
  17. （Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベン
    ゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステル；
    （Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（３，５−ジメチル−ベン
    ゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ｔｅｒｔ−ブチルエステル；
    （Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−４−ヒドロキシ−ブチル）−Ｎ’−（３，５
    −ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステル；
    （Ｒ）−Ｎ’−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−４−ヒドロキシ−ブチル）−Ｎ’−（３，５
    −ジメチル−ベンゾイル）−ヒドラジンカルボン酸ベンジルエステル；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ’−ベンゾイル−Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル
    −ブチル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （２−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （２−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （２−フルオロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （２−クロロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ’−（２−ブロモ−ベンゾイル）−Ｎ−（１−
    ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （３−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （３−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （３−クロロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （４−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （４−エチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （４−メトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （４−クロロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （２，６−ジフルオロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （２，６−ジクロロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （３，４−ジメトキシ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （３，５−ジフルオロ−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （３，５−ジメトキシ−４−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （４−メチル−ベンゾ［１，３］ジオキソール−５−カルボニル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （５−メチル−２，３−ジヒドロ−ベンゾ［１，４］ジオキシン−６−カルボニル）−ヒ
    ドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （５−エチル−２，３−ジヒドロ−ベンゾ［１，４］ジオキシン−６−カルボニル）−ヒ
    ドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （ナフタレン−１−カルボニル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （ナフタレン−２−カルボニル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （チオフェン−２−カルボニル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （２，５−ジメチル−フラン−３−カルボニル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （２−クロロ−ピリジン−３−カルボニル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （６−クロロ−ピリジン−３−カルボニル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−
    （３−メトキシ−２−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；
    （Ｒ）−３，５−ジメトキシ−４−メチル−安息香酸Ｎ−（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブ
    チル）−Ｎ’−（３−メトキシ−２−メチル−ベンゾイル）−ヒドラジド；または
    （Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ’−（４−エチル−ベンゾイル）−Ｎ−（１−
    フェネチル−ブト−３−エニル）−ヒドラジド
    から選択される請求項３に記載の化合物。
  18. 少なくとも９５％の鏡像異性体過剰率を有する（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ
    −（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル
    ）−ヒドラジド、またはその薬理学的に許容される塩、水和物、結晶形または非晶形。
  19. 少なくとも９９％の鏡像異性体過剰率を有する（Ｒ）−３，５−ジメチル−安息香酸Ｎ
    −（１−ｔｅｒｔ−ブチル−ブチル）−Ｎ’−（２−エチル−３−メトキシ−ベンゾイル
    ）−ヒドラジド、またはその薬理学的に許容される塩、水和物、結晶形または非晶形。
  20. 請求項１〜１７のいずれか１項に記載の化合物を含む医薬組成物。
  21. 請求項１８または１９に記載の化合物を含む医薬組成物。
  22. 式４

    式中、Ａはアリールアルキル基、任意に置換されたアリール基または任意に置換された
    ヘテロアリール基を表し、Ｂは任意に置換されたアリール基または任意に置換されたヘテ
    ロアリール基を表し、Ｒ２は任意に置換されたアルキル基、アリールアルキル基、ヒドロ
    キシアルキル基、ハロアルキル基、任意に置換されたシクロアルキル基、任意に置換され
    たアルケニル基、任意に置換されたアルキニル基、任意に置換された複素環基、任意に置
    換されたアリール基または任意に置換されたヘテロアリール基を表すが、Ｒ２は−ＣＲ８
    Ｒ９ＣＨＲ１０ＣＲ１１Ｒ１２と同じではなく、かつＲ８、Ｒ９、Ｒ１０、Ｒ１１、およ
    びＲ１２は互いに独立して水素、アルキル基、シクロアルキル基、複素環基、アリール基
    またはヘテロアリール基から選択され、式中、Ｒ２が付着する不斉炭素原子はＲまたはＳ
    異性体のどちらかの鏡像異性体が豊富である；
    で表される化合物を調製するための方法であって、
    ａ）式５

    で表される化合物と式６
    Ｒ２ＨＣ＝Ｎ−ＮＨ−ＣＯ２Ｒ７ 式６
    式中、ＸおよびＹは互いに独立してＯ、あるいはＲがアルキル基またはアリール基のＮ
    Ｒであり、ＣａおよびＣｂは互いに独立してＳ立体配置の不斉炭素原子またはＲ立体配置
    の不斉炭素原子であり、Ｒ１４およびＲ１５は互いに独立してアルキル基またはアリール
    基であり、Ｒ１３はハロ基、水素、アルキル基、アルコキシ基またはＯＳＯ２ＣＦ３であ
    り、Ｒ７はアルキル基、アリールアルキル基またはアリール基であり、かつＲ２、Ｒ８、
    Ｒ９、Ｒ１０、Ｒ１１、およびＲ１２は上記と同じ意味である；
    で表される化合物を、式７
    で表される化合物を形成するために反応させる工程と、
    ｂ）式８
    で表される化合物を形成するため、式７で表される化合物を還元する工程と、
    ｃ）式９

    で表される化合物を形成するため、式８で表される化合物を、式Ｂ−ＣＯ−ＬＧで表され
    、ＬＧが脱離基である化合物と反応させる工程と、
    ｄ）式１０

    で表される化合物を形成するため、式９で表される化合物のＲ７ＣＯ２−残基を除去する
    工程、および
    ｅ）式４で表される化合物を形成するため、式１０で表される化合物を、式Ａ−ＣＯ−
    ＬＧで表され、ＬＧが脱離基である化合物と反応させる工程とを含む方法。
  23. 式中、Ｒ８、Ｒ９、Ｒ１０、Ｒ１１、およびＲ１２が水素を表す；
    請求項２２に記載の方法。
  24. 式中、ＸがＮＲであり、かつＲがメチル基であり；ＹがＯであり；Ｒ１４がメチル基で
    あり；Ｒ１５がフェニル基であり；かつＣａおよびＣｂのそれぞれがＲ立体配置である；
    請求項２３に記載の方法。
  25. 式中、ＸがＮＲであり、かつＲがメチル基であり；ＹがＯであり；Ｒ１４がメチル基で
    あり；Ｒ１５がフェニル基であり；かつＣａおよびＣｂのそれぞれがＳ立体配置である；
    請求項２４に記載の方法。
  26. 請求項２または３に記載の化合物を調製するための方法であって、
    ａ）式１１
    で表される化合物と式１２
    で表される化合物のケトンを、式１３

    式中、Ｒ１およびＲ２は同じではない；
    で表される化合物を形成するために反応させる工程と；
    ｂ）式Ｓ−１４、または、式Ｒ−１４
    で表される化合物を形成するため、式１３で表される化合物をキラル触媒の存在下で還元
    する工程；および
    ｃ）請求項２または３に記載の化合物を形成するため、式Ｓ−１４またはＲ−１４で表
    される化合物を、式Ｂ−ＣＯ−ＬＧで表され、ＬＧが脱離基である化合物と反応させる工
    程とを含む方法。
  27. Ｂが３，５−ジ−メチルフェニル基である請求項２５または２６に記載の方法。
  28. Ａが２−エチル−３−メトキシフェニル基である請求項２５または２６に記載の方法。
  29. Ｒ２がｔｅｒｔ−ブチル基である請求項２５または２６に記載の方法。
  30. ホスト細胞内で興味ある遺伝子の発現を調節する方法であって、該ホスト細胞が
    ｉ）ＤＮＡ結合ドメイン、および
    ｉｉ）グループＨ核内受容体リガンド結合ドメイン
    を含む第１のポリペプチドをコードする第１のポリヌクレオチドを含む第１の組み換え遺
    伝子発現カセット、および
    ｉ）該ＤＮＡ結合ドメインに結合可能な反応エレメント
    ｉｉ）プロモーター、および
    ｉｉｉ）該興味ある遺伝子
    を含む第２の組み換え遺伝子発現カセットを含み、
    該方法が該ホスト細胞を請求項１〜３のいずれか１項に記載の化合物と接触させること
    を含み、ここで該興味ある遺伝子の発現が調節される方法。
  31. リガンドを前記被験体の細胞内でエクジソン受容体複合体に接触させることを含む、ト
    ランスジェニック被験体における内在性または異種性遺伝子発現を調節するための方法で
    あって、ここで前記細胞はさらに、リガンドと組み合わせたときの前記エクジソン受容体
    複合体に対するＤＮＡ結合配列を含み、かつエクジソン受容体複合体‐リガンド‐ＤＮＡ
    結合配列複合体の形成が遺伝子の発現を誘導し、かつ前記リガンドが請求項１〜３のいず
    れか１項に記載の化合物であり、トランスジェニック被験体における内在性または異種性
    遺伝子発現が調節される方法。
  32. 前記エクジソン受容体複合体がキメラエクジソン受容体複合体であり、かつ前記ＤＮＡ
    結合配列がさらにプロモーターを含む、請求項３１に記載の方法。
  33. 該被験体が植物である、請求項３１に記載の方法。
  34. 該被験体が動物である、請求項３１に記載の方法。
  35. 該被験体が哺乳類である、請求項３１に記載の方法。
  36. 該被験体がヒトである、請求項３４に記載の方法。
  37. 前記細胞が自己細胞である、請求項３１に記載の方法。
  38. 前記自己細胞が前記エクジソン受容体複合体および該エクジソン複合体に対するＤＮＡ
    結合配列を含み、かつ前記細胞が前記被験体をトランスジェニックにするため前記被験体
    内へ移植される、請求項３７に記載の方法。
  39. 前記移植が注射による、請求項３８に記載の方法。
  40. 前記注射が腫瘍内へ行なわれる、請求項３９に記載の方法。
  41. 前記リガンドが薬理学的に許容される担体を含む医薬組成物の一部として前記トランス
    ジェニック被験体へ投与される、請求項３１に記載の方法。
  42. 前記医薬組成物が経口投与される、請求項４１に記載の方法。
  43. 前記薬理学的に許容される担体が親油性溶媒を含む、請求項４１に記載の方法。
  44. トランスジェニック被験体におけるトランス遺伝子発現の調節方法であって、ここで前
    記トランスジェニック被験体がトランス遺伝子発現の調節が可能な組み換えエクジソン受
    容体複合体を含み、該方法が前記被験体に請求項１〜３のいずれか１項に記載の化合物を
    投与することを含む方法。
  45. （ａ）ホスト細胞内に遺伝子発現調節システムを導入する工程であって、該システムが
    （ｉ）ホスト細胞内で発現可能な第１の組み換え遺伝子発現カセットであって、
    （ａ）その発現が調節されるべき遺伝子に結合する反応エレメントを認識するＤＮ
    Ａ結合ドメイン、および
    （ｂ）エクジソン受容体リガンド結合ドメイン
    を含む第１のハイブリッドポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む、該第
    １の組み換え遺伝子発現カセット、
    （ｉｉ）該ホスト細胞内で発現可能な第２の組み換え遺伝子発現カセットであって、
    （ａ）トランス活性化ドメイン、および
    （ｂ）キメラレチノイドＸ受容体リガンド結合ドメイン
    を含む第２のハイブリッドポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む、該第
    ２の組み換え遺伝子発現カセット、および
    （ｉｉｉ）ホスト細胞内で発現可能な第３の組み換え遺伝子発現カセットであって、
    （ａ）第１のハイブリッドポリペプチドのＤＮＡ結合ドメインにより認識される反
    応エレメント、
    （ｂ）第２のハイブリッドポリペプチドのトランス活性化ドメインにより活性化さ
    れるプロモーター、および
    （ｃ）その発現が調節されるべき遺伝子
    を含むポリヌクレオチド配列を含む、該第３の組み換え遺伝子発現カセットを含む工程、
    および
    （ｂ）ホスト細胞内に請求項１〜３のいずれか１項に記載の化合物を導入し、ここでホ
    スト細胞内の遺伝子発現が調節される工程を含む、ホスト細胞内で遺伝子の発現を調節す
    る方法。
  46. （ａ）請求項１〜３のいずれか１項に記載の化合物への曝露に実質的に非感受性である
    ホスト細胞を選択する工程、
    （ｂ）ホスト細胞内へ
    （ｉ）ＤＮＡコンストラクトであって、
    （ａ）ポリペプチドをコードする外因性遺伝子、および
    （ｂ）該遺伝子が反応エレメントの制御下にある、反応エレメント
    を含むコンストラクト、および
    （ｉｉ）エクジソン受容体複合体であって、
    ａ）該反応エレメントに結合するＤＮＡ結合ドメイン、
    ｂ）前記化合物の結合ドメイン、
    ｃ）トランス活性化ドメインを含む複合体、を導入する工程、および
    （ｃ）前記化合物へ該細胞を曝露し、ここでポリペプチドが産生される工程を含む、ポ
    リペプチドを産生するための方法。
  47. 前記エクジソン受容体複合体またはエクジソン受容体リガンド結合ドメインが変異を含
    む、請求項３１〜４４のいずれか１項に記載の方法。
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