JP2016052265A - 改良されたrt−pcr反応 - Google Patents
改良されたrt−pcr反応 Download PDFInfo
- Publication number
- JP2016052265A JP2016052265A JP2014178988A JP2014178988A JP2016052265A JP 2016052265 A JP2016052265 A JP 2016052265A JP 2014178988 A JP2014178988 A JP 2014178988A JP 2014178988 A JP2014178988 A JP 2014178988A JP 2016052265 A JP2016052265 A JP 2016052265A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- pcr
- phosphate
- tris
- nucleic acid
- sample
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
代表的な核酸増幅法はPCR(polymerase chain reaction)である。PCRは、(1)熱処理によるDNA変性(2本鎖DNAから1本鎖DNAへの解離)、(2)鋳型1本鎖DNAへのプライマーのアニーリング、(3)DNAポリメラーゼを用いた前記プライマーの伸長、という3ステップを1サイクルとし、このサイクルを繰り返すことによって、試料中の標的核酸を増幅する方法である。RNAを分析する場合、このPCRの前段として、鋳型RNAをcDNAに変換する逆転写(Reverse Transcription)を実施する。これをRT−PCRという。
さらに本発明者らは、リン酸水素カリウムなど、Tris緩衝液ではないリン酸塩についても非特異抑制効果があることを見出し、反応基質となるデオキシヌクレオチド三リン酸以外のリン酸を含有する分子の共役RT−PCRにおける非特異抑制効果を見出し、本発明を完成した。
[項1]
試料中に含まれるRNAを検出するための方法であって、少なくとも一つのデオキシヌクレオチド三リン酸ではないリン酸を含む分子存在下で、耐熱性DNAポリメラーゼ、逆転写酵素、プライマーを用いてRT−PCRによる核酸増幅することからなる方法。
[項2]
リン酸を含む分子がTris−リン酸、リン酸水素カリウム、リン酸二水素カリウムの郡より選択される、項1に記載の方法。
[項3]
Tris−リン酸が50mM〜75mMである、請求項2に記載の方法。
[項4]
リン酸水素カリウムが15mM以上である、請求項3に記載の方法。
[項5]
さらに、少なくとも1種類の標識されたハイブリダイゼーションプローブまたは2本鎖DNA結合蛍光化合物のいずれかを含む、請求項1〜4に記載の方法。
[項6]
試料が、血液、尿、糞便、喀痰、鼻腔液、膣分泌液及び口腔内粘膜からなる群から選択される、請求項1〜5に記載の方法。
[項7]
少なくとも一つのデオキシヌクレオチド三リン酸ではないリン酸を含む分子、dNTP、Mg塩、耐熱性DNAポリメラーゼ、及び逆転写酵素を含む、特異性が向上した核酸増幅のための組成物。
[項8]
リン酸を含む分子がTris−リン酸、リン酸水素カリウム、リン酸二水素カリウムの群より選択される、請求項7に記載の組成物。
[項9]
Tris−リン酸が50mM〜75mMである、請求項8に記載の組成物。
[項10]
リン酸水素カリウムが15mM以上である、請求項9に記載の組成物。
[項11]
さらに、2本鎖DNA結合蛍光性化合物を含む、請求項7〜10に記載の組成物。
・ 糞便懸濁処理液の調製
10%(重量%)となるようにヒト糞便を含む懸濁液を1ml調製した。前記糞便溶液1μlとグリシン10mM、EGTA5mM溶液4μlを混合し、85℃で1分間インキュベートした。
・ RT−PCR試料の調製
配列番号1を鋳型として人工合成したノロウイルス遺伝子RNA断片20コピー/μlとなるように水、または前記のように処理した糞便懸濁処理済液と混合し、RT−PCRの試料とした。また、ネガティブコントロールとして、ノロウイルス遺伝子RNA断片を含まない水、糞便懸濁処理済液を使用した。
(3)1ステップRT−PCR
(3−1)反応液
以下に示される組成の反応液を調製した。
75mM Tris−塩酸、Tris−硫酸、Tris−シュウ酸、またはTris−リン酸(pH7.5)
3.75mM 硫酸マグネシウム
15mM 酢酸カリウム
0.25mg/ml ウシ血清アルブミン
各0.2mM dATP,dGTP,dCTP,dTTP
0.3μM COG2Fプライマー(配列番号2)
0.3μM COG2Rプライマー(配列番号3)
(上記2種のプライマーは非特許文献5に記載の配列である。)
0.1μM 内部標準配列Fプライマー(配列番号4)
0.1μM 内部標準配列Fプライマー(配列番号5)
1000コピー 内部標準配列DNA pBR322 プラスミドDNA
0.2unit/μl rTaq DNA polymerase(東洋紡)
0.2unit/μl anti Taq high(東洋紡)
0.05unit/μl RevertraAce(東洋紡)
(3−2)反応
前記反応液45μlを(1)で処理した各試料5μlに添加した。これを以下の温度サイクルで反応した。
50℃ 5分(逆転写反応)、
95℃ 5分、
94℃ 10秒−56℃ 45秒 45サイクル(PCR)
(4)結果
図1に電気泳動解析の結果を示す。使用した前記プライマーセット(COG2FおよびCOG2R)は98bpの増幅断片を生成する。
PCR反応液緩衝剤として一般に使用される、Tris−塩酸、Tris−硫酸、さらにTris−シュウ酸では、単に水を試料したネガティブコントロール(NTC)でさえ、非特異的な増幅サンプルが顕著に発生しているのに対し、Tris−リン酸ではこの非特異的な増幅が抑制されている。この非特異抑制効果は糞便の有無に関わらず、認められた。
・ 試料の調製
実施例1と同様に、試料を調製した。
(2)1ステップRT−PCR
(2−1)反応液
以下に示される組成の反応液を調製した。
50、75、または100mM Tris−リン酸(pH7.5)
3.75mM 硫酸マグネシウム
15mM 酢酸カリウム
0.25mg/ml ウシ血清アルブミン
各0.2mM dATP,dGTP,dCTP,dTTP
0.3μM COG2Fプライマー
0.3μM COG2Rプライマー
0.1μM 内部標準配列Fプライマー(配列番号1)
0.1μM 内部標準配列Fプライマー(配列番号2)
1000コピー 内部標準配列DNA pBR322 プラスミドDNA
0.2unit/μl rTaq DNA polymerase(東洋紡)
0.2unit/μl anti Taq high(東洋紡)
0.05unit/μl RevertraAce(東洋紡)
(2−2)反応
前記反応液45μlを(1)で処理した各試料5μlに添加した。これを以下の温度サイクルで反応した。
50℃ 5分(逆転写反応)、
95℃ 5分、
94℃ 10秒−56℃ 45秒 45サイクル(PCR)
(3)結果
図1に電気泳動解析の結果を示す。使用した前記プライマーセット(COG2FおよびCOG2R)は98bpの増幅断片を生成する。
100mM Tris−リン酸では、単に水を試料したネガティブコントロール(NTC)でさえ、非特異的な増幅サンプルが発生しているのに対し、Tris−リン酸ではこの非特異的な増幅が抑制されている。この非特異抑制効果は糞便の有無に関わらず、認められた。
・ 試料の調製
実施例1と同様に、人工合成したノロウイルス遺伝子RNA断片 10コピー/μlとなるように糞便懸濁処理済液と混合し、RT−PCRの試料とした。また、ネガティブコントロールとして、ノロウイルス遺伝子RNA断片を含まない糞便懸濁処理済液を使用した。
(2)1ステップRT−PCR
(2−1)反応液
以下に示される組成の反応液を調製した。
75mM Tris−硫酸(pH7.5)
3.75mM 硫酸マグネシウム
0、5、10、15、または20mM リン酸水素カリウム
0.25mg/ml ウシ血清アルブミン
各0.2mM dATP,dGTP,dCTP,dTTP
0.3μM COG2Fプライマー
0.3μM COG2Rプライマー
0.1μM 内部標準配列Fプライマー(配列番号1)
0.1μM 内部標準配列Fプライマー(配列番号2)
1000コピー 内部標準配列DNA pBR322 プラスミドDNA
0.2unit/μl rTaq DNA polymerase(東洋紡)
0.2unit/μl anti Taq high(東洋紡)
0.05unit/μl RevertraAce(東洋紡)
(2−2)反応
前記反応液45μlを(1)で処理した各試料に添加した。これを以下の温度サイクルで反応した。
50℃ 5分(逆転写反応)、
95℃ 5分、
94℃ 10秒−56℃ 45秒 45サイクル(PCR)
(3)結果
図1に電気泳動解析の結果を示す。使用した前記プライマーセット(COG2FおよびCOG2R)は98bpの増幅断片を生成する。
0〜10mMリン酸水素カリウム存在下では、ネガティブコントロール(NTC)において、非特異的増幅産物が発生しているのに対し、15〜20mMリン酸水素カリウム存在下では、非特異的増幅産物の発生が抑制されている。この非特異抑制効果は糞便の有無に関わらず、認められた。
・ 試料の調製
実施例1と同様に、人工合成したノロウイルス遺伝子RNA断片2、10、50、250、1250コピー/μlとなるように糞便懸濁処理済液と混合し、RT−PCRの試料とした。また、ネガティブコントロールとして、ノロウイルス遺伝子RNA断片を含まない糞便懸濁処理済液を使用した。
(2)1ステップRT−PCR
(2−1)反応液
以下に示される組成の反応液を調製した。
75mM Tris−硫酸(pH7.5)
3.75mM 硫酸マグネシウム
15mM リン酸水素カリウム
0.25mg/ml ウシ血清アルブミン
各0.2mM dATP,dGTP,dCTP,dUTP
0.3μM COG2Fプライマー
0.3μM COG2Rプライマー
0.1μM 内部標準配列Fプライマー(配列番号1)
0.1μM 内部標準配列Fプライマー(配列番号2)
1000コピー 内部標準配列DNA pBR322 プラスミドDNA
0.2unit/μl rTaq DNA polymerase(東洋紡)
0.2unit/μl anti Taq high(東洋紡)
0.05unit/μl RevertraAce(東洋紡)
1xEvaGreen dye(Biotium)
(2−2)反応
前記反応液45μlを(1)で処理した各試料に添加した。BioRad社製MiniOpticonを用いて、これを以下の温度サイクルで反応した。
50℃ 5分(逆転写反応)、
95℃ 5分、
94℃ 10秒−56℃ 45秒 45サイクル(PCR)
(2−3)融解曲線解析
反応終了後、直ちに「70℃ 0.5℃/秒 90℃融解曲線解析」に供した。すなわち、70℃から 0.5℃/秒 で90℃まで上昇させた。
(3)結果
図4に融解曲線解析の結果を示す。使用した前記プライマーセット(COG2FおよびCOG2R)は、ノロウイルスG2タイプが存在すると80℃付近にピークを与えることがわかっている。また、使用した内部標準配列プライマーセットは、反応液に含まれる内部標準配列DNAのピークを85℃付近に与えることがわかっている。
この結果、2本鎖DNA結合性蛍光色素であるEvaGreen存在下でも、0コピーにおいては内部標準のみのピークが認められ、G2 RNA存在下ではG2由来のピークと内部標準に由来するピークのみが認められ、特異的な検出が行えた。
Claims (11)
- 試料中に含まれるRNAを検出するための方法であって、少なくとも一つのデオキシヌクレオチド三リン酸ではないリン酸を含む分子存在下で、耐熱性DNAポリメラーゼ、逆転写酵素、プライマーを用いてRT−PCRによる核酸増幅することからなる方法。
- リン酸を含む分子がTris−リン酸、リン酸水素カリウム、リン酸二水素カリウムの郡より選択される、請求項1に記載の方法。
- Tris−リン酸が50mM〜75mMである、請求項2に記載の方法。
- リン酸水素カリウムが15mM以上である、請求項3に記載の方法。
- さらに、少なくとも1種類の標識されたハイブリダイゼーションプローブまたは2本鎖DNA結合蛍光化合物のいずれかを含む、請求項1〜4に記載の方法。
- 試料が、血液、尿、糞便、喀痰、鼻腔液、膣分泌液及び口腔内粘膜からなる群から選択される、請求項1〜5に記載の方法。
- 少なくとも一つのデオキシヌクレオチド三リン酸ではないリン酸を含む分子、dNTP、Mg塩、耐熱性DNAポリメラーゼ、及び逆転写酵素を含む、特異性が向上したRT−PCRによる核酸増幅のための組成物。
- リン酸を含む分子がTris−リン酸、リン酸水素カリウム、リン酸二水素カリウムの郡より選択される、請求項7に記載の組成物。
- Tris−リン酸が50mM〜75mMである、請求項8に記載の組成物。
- リン酸水素カリウムが15mM以上である、請求項9に記載の組成物。
- さらに、2本鎖DNA結合蛍光性化合物を含む、請求項7〜10に記載の組成物。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2014178988A JP6467829B2 (ja) | 2014-09-03 | 2014-09-03 | 改良されたrt−pcr反応 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2014178988A JP6467829B2 (ja) | 2014-09-03 | 2014-09-03 | 改良されたrt−pcr反応 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JP2016052265A true JP2016052265A (ja) | 2016-04-14 |
JP6467829B2 JP6467829B2 (ja) | 2019-02-13 |
Family
ID=55744017
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2014178988A Active JP6467829B2 (ja) | 2014-09-03 | 2014-09-03 | 改良されたrt−pcr反応 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP6467829B2 (ja) |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2018029510A (ja) * | 2016-08-24 | 2018-03-01 | 東洋製罐グループホールディングス株式会社 | 核酸増幅及び検出方法、並びに核酸増幅及び検出用溶液 |
CN110452956A (zh) * | 2018-05-08 | 2019-11-15 | 北京中科生仪科技有限公司 | 一种pcr反应试剂的冻干微球及其制备方法 |
WO2021020380A1 (ja) * | 2019-07-30 | 2021-02-04 | 東洋紡株式会社 | 改良されたウイルス検出方法 |
JP2021019558A (ja) * | 2019-07-30 | 2021-02-18 | 東洋紡株式会社 | 改良されたウイルス検出方法 |
JP2021019559A (ja) * | 2019-07-30 | 2021-02-18 | 東洋紡株式会社 | 改良されたウイルス検出方法 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2004189327A (ja) * | 2002-12-13 | 2004-07-08 | Shikoku Sanyu Kasei Kk | 浄化槽マンホールの嵩上げ枠 |
JP2004524853A (ja) * | 2001-04-30 | 2004-08-19 | イギリス国 | 増幅方法 |
-
2014
- 2014-09-03 JP JP2014178988A patent/JP6467829B2/ja active Active
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2004524853A (ja) * | 2001-04-30 | 2004-08-19 | イギリス国 | 増幅方法 |
JP2004189327A (ja) * | 2002-12-13 | 2004-07-08 | Shikoku Sanyu Kasei Kk | 浄化槽マンホールの嵩上げ枠 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
BIOSCI. BIOTECHNOL. BIOCHEM., 2007, VOL. 71, NO. 8, PP. 1970-1978, JPN6018024278, ISSN: 0003826660 * |
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2018029510A (ja) * | 2016-08-24 | 2018-03-01 | 東洋製罐グループホールディングス株式会社 | 核酸増幅及び検出方法、並びに核酸増幅及び検出用溶液 |
CN110452956A (zh) * | 2018-05-08 | 2019-11-15 | 北京中科生仪科技有限公司 | 一种pcr反应试剂的冻干微球及其制备方法 |
CN110452956B (zh) * | 2018-05-08 | 2023-11-03 | 北京中科生仪科技有限公司 | 一种pcr反应试剂的冻干微球及其制备方法 |
WO2021020380A1 (ja) * | 2019-07-30 | 2021-02-04 | 東洋紡株式会社 | 改良されたウイルス検出方法 |
JP2021019558A (ja) * | 2019-07-30 | 2021-02-18 | 東洋紡株式会社 | 改良されたウイルス検出方法 |
JP2021019559A (ja) * | 2019-07-30 | 2021-02-18 | 東洋紡株式会社 | 改良されたウイルス検出方法 |
CN114375342A (zh) * | 2019-07-30 | 2022-04-19 | 东洋纺株式会社 | 经改良的病毒检测方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP6467829B2 (ja) | 2019-02-13 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
TWI733038B (zh) | 基因突變特異性擴增效率提高的dna聚合酶 | |
JP6467829B2 (ja) | 改良されたrt−pcr反応 | |
JPH08266298A (ja) | 核酸を増幅するための方法及びキット並びにpcr用組成物 | |
JPH09107997A (ja) | 標的核酸の増幅方法及び増幅キット並びにpcr用組成物 | |
JP4047395B2 (ja) | 核酸の同時増幅方法 | |
WO2006102695A1 (en) | Identifying respiratory infectious organisms | |
US20120045747A1 (en) | Kit for detecting hepatitis b virus and method for detecting hepatitis b virus using the same | |
KR102030244B1 (ko) | 뎅기 바이러스 검출용 올리고뉴클레오티드 세트 및 이의 용도 | |
JP2022546443A (ja) | cccDNAから転写されたHBV RNAを含む、B型肝炎ウイルスRNAの増幅および検出のための組成物および方法 | |
KR20120020067A (ko) | 헤파티티스 c 바이러스 검출용 키트 및 이를 이용한 헤파티티스 c 바이러스의 검출 방법 | |
JP2009131252A (ja) | Rnaの検出方法 | |
JP2016019495A (ja) | 核酸増幅法 | |
JP6538660B2 (ja) | オーバーラッププライマー及び融解プローブを用いた一塩基多型の検出 | |
US20150031576A1 (en) | Real time pcr detection of m. tuberculosis resistant/susceptible to rifampicin and/or isoniazid | |
KR102030245B1 (ko) | 치쿤군야 바이러스 검출용 올리고뉴클레오티드 세트 및 이의 용도 | |
WO2018151246A1 (ja) | Rnaを検出する方法およびrnaを検出するための試薬 | |
US20230416824A1 (en) | Systems for the detection of targeted gene variations and viral genomes and methods of producing and using same | |
JP7160142B2 (ja) | 核酸増幅用試薬及び核酸増幅法 | |
US20050244813A1 (en) | Detection of human papillomavirus e6 mrna | |
JP5546109B2 (ja) | 核酸の塩基配列の識別方法 | |
US20120052483A1 (en) | Kit for detecting hiv-1 and method for detecting hiv-1 using the same | |
KR20190100675A (ko) | Sfts 바이러스 검출용 올리고뉴클레오티드 세트 및 이의 용도 | |
JP2007000040A (ja) | B型肝炎ウイルスの検出方法 | |
JP7472476B2 (ja) | プライマー及び百日咳菌 rRNAの検出方法 | |
EP4310195A1 (en) | Method for nucleic acid detection using signal-mediated amplification of rna technology and rna aptamers |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20170821 |
|
A977 | Report on retrieval |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007 Effective date: 20180621 |
|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20180703 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20180830 |
|
TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20181218 |
|
A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20181231 |
|
R151 | Written notification of patent or utility model registration |
Ref document number: 6467829 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R151 |
|
S531 | Written request for registration of change of domicile |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313531 |
|
R350 | Written notification of registration of transfer |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350 |