JP2014533294A - ホスホイノシチド3−キナーゼ阻害剤およびヤヌスキナーゼ2−シグナル伝達兼転写活性化因子5経路の調節剤の組合せ - Google Patents

ホスホイノシチド3−キナーゼ阻害剤およびヤヌスキナーゼ2−シグナル伝達兼転写活性化因子5経路の調節剤の組合せ Download PDF

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Abstract

本発明は、増殖性疾患、特には固形腫瘍疾患を治療するための、(a)ホスホイノシチド3−キナーゼ阻害剤化合物および(b)JAK2−STAT5経路を調節する化合物を含む組合せ医薬(pharmaceutical combination);このような組合せを含む医薬組成物;増殖性疾患を治療するための医薬の調製のための、このような組合せの使用;同時、個別または逐次使用のための組合せ製剤(combined preparation)としてこのような組合せを含む商業的パッケージまたは製品;ならびに温血動物、特にはヒトを治療する方法に関する。

Description

本発明は、同時、個別または逐次使用のための、特に増殖性疾患、特にはPI3K/Akt経路が同時に調節不全となる増殖性疾患を治療するための、(a)ホスホイノシチド3−キナーゼ(PI3K)阻害剤化合物および(b)ヤヌスキナーゼ2(JAK2)−シグナル伝達兼転写活性化因子5(Signal Transducer and Activator of Transcription 5、STAT5)経路を調節する化合物、および場合により少なくとも1つの薬学的に許容される担体を含む組合せ医薬(pharmaceutical combination);このような組合せを含む医薬組成物;増殖性疾患を治療するための医薬の調製のための、このような組合せの使用;同時、個別または逐次使用のための組合せ製剤(combined preparation)としてこのような組合せを含む商業的パッケージまたは製品;および温血動物、特にはヒトを治療する方法に関する。
主要なシグナル経路(例えば、PI3K/mTOR)を標的にする高度に特異的な阻害剤が急速に開発され、癌研究学界に多くの興奮を引き起こしている。これらの合理的にデザインされた幾つかの療法の臨床的有効性および低い毒性は、癌治療の新たな時代への期待を抱かせた。残念ながら、単剤標的癌療法は、適応耐性、腫瘍再発および避けられない悪化により多くの場合妨げられる。発癌シグナル経路間のクロストークをよりよく理解することが、標的療法に対する耐性の抑制に不可欠であり、新規の、根治的と期待される併用療法(combination therapy)をもたらすはずである。
多様な正常細胞機能の中心的制御因子、ホスファチジルイノシトール3−キナーゼ(PI3K)経路は、多くの場合、腫瘍性形質転換中に破壊される。癌におけるPI3K経路の活性化の機構には、該キナーゼのアルファ触媒サブユニットであるp110αをコードする遺伝子であるPIK3CAの変異および/または増幅;PI3K活性を逆転するホスファターゼであるPTENの発現の喪失;発癌受容体チロシンキナーゼの下流の活性化;およびAkt増幅が含まれる。細胞死の減少、細胞増殖、遊走、浸潤、代謝、血管新生および化学療法に対する耐性の増加により、異常なPI3K経路は、癌細胞に競合優位性を与える。当然のことながら、PI3K/Akt/mTORカスケードは、魅力的な治療標的であり、この経路の幾つかの阻害剤は現在、臨床試験中である。
トリプルネガティブ乳癌の幾つかの細胞株および原発性腫瘍モデルを用いて、本発明者らは、PI3K/mTOR阻害が、JAK2−STAT5シグナル伝達を活性化して悪性の正のフィードバックループを誘発し、転移において重要な役割を有する走化性サイトカインIL−8の分泌を誘導することを見出した。IL−8は今度はJAK2/STAT5にフィードバックし、これによりループを完了する。特に、誘導性JAK2 shRNAおよびJAK2阻害剤は、このフィードバックを抑制し、腫瘍の播種および転移を低減した。
PI3K/mTOR阻害の機構的理解から得られた洞察に基づき、本発明者らは、PI3K/mTORおよびJAK2−STAT5経路の複合阻害(combined inhibition)の治療有効性を実証した。実際、PI3K/mTORおよびJAK2−STAT5の複合阻害は、腫瘍の増殖および播種(seed)ならびに転移を低減した。
WO2006/122806は、PI3−キナーゼなどの脂質キナーゼの活性を阻害することが記載されているイミダゾキノリン誘導体を記載している。本発明に適した特定のイミダゾキノリン誘導体、この調製および該誘導体を含有する適切な医薬製剤はWO2006/122806に記載されており、式I
[式中、
は、ナフチルまたはフェニルであり(前記フェニルは、ハロゲン;非置換またはハロゲン、シアノ、イミダゾリルもしくはトリアゾリルにより置換されている低級アルキル;シクロアルキル;低級アルキル、低級アルキルスルホニル、低級アルコキシおよび低級アルコキシ低級アルキルアミノからなる群から独立に選択される、1つまたは2つの置換基により置換されているアミノ;低級アルキルおよび低級アルキルスルホニルからなる群から独立に選択される、非置換または1つもしくは2つの置換基により置換されているピペラジニル;2−オキソ−ピロリジニル;低級アルコキシ低級アルキル;イミダゾリル;
ピラゾリル;およびトリアゾリル;からなる群から独立に選択される、1つまたは2つの置換基により置換されている);
は、OまたはSであり;
は、低級アルキルであり;
は、非置換もしくはハロゲン、シアノ、低級アルキル、低級アルコキシにより置換されているピリジル、または非置換もしくは低級アルキルにより置換されているピペラジニル;非置換または低級アルコキシにより置換されているピリミジニル;非置換またはハロゲンにより置換されているキノリニル;
キノキサリニル;またはアルコキシで置換されているフェニルであり
は、水素またはハロゲンであり;
nは、0または1であり;
は、オキシドであり;
(ただし、n=1の場合、基Rを有するN原子は正の電荷を有する);
は、水素またはアミノである]の化合物、もしくはその互換異性体、または薬学的に許容されるその塩、またはその水和物もしくは溶媒和物を含む。
式Iの化合物の定義において使用されている基および記号は、WO2006/122806に開示されている意味を有し、該公報は参照により本出願に組み込まれている。
本発明の化合物は、WO2006/122806に詳細に記載されている化合物である。本発明の化合物は、2−メチル−2−[4−(3−メチル−2−オキソ−8−キノリン−3−イル−2,3−ジヒドロ−イミダゾ[4,5−c]キノリン−1−イル)−フェニル]−プロピオニトリルおよびこのモノトシル酸塩(monotosylate salt)(BEZ−235としても知られる化合物A)である。2−メチル−2−[4−(3−メチル−2−オキソ−8−キノリン−3−イル−2,3−ジヒドロ−イミダゾ[4,5−c]キノリン−1−イル)−フェニル]−プロピオニトリルの合成は、例えば、実施例7としてWO2006/122806に記載されている。本発明の別の化合物は、8−(6−メトキシ−ピリジン−3−イル)−3−メチル−1−(4−ピペラジン−1−イル−3−トリフルオロメチル−フェニル)−1,3−ジヒドロ−イミダゾ[4,5−c]キノリン−2−オン(化合物B)である。8−(6−メトキシ−ピリジン−3−イル)−3−メチル−1−(4−ピペラジン−1−イル−3−トリフルオロメチル−フェニル)−1,3−ジヒドロ−イミダゾ[4,5−c]キノリン−2−オンの合成は、例えば、実施例86としてWO2006/122806に記載されている。
WO07/084786は、PI3−キナーゼなどの脂質キナーゼの活性を阻害することが見出されたピリミジン誘導体を記載している。本発明に適した特定のピリミジン誘導体、この調製および該誘導体を含有する適切な医薬製剤はWO07/084786に記載されており、式II
の化合物、
またはその立体異性体、その互換異性体、または薬学的に許容されるその塩を含み、式中、
Wは、CRまたはN(ここで、Rは、
(1)水素、
(2)シアノ、
(3)ハロゲン、
(4)メチル、
(5)トリフルオロメチル、
(6)スルホンアミド
からなる群から選択される)であり;
は、
(1)水素、
(2)シアノ、
(3)ニトロ、
(4)ハロゲン、
(5)置換および非置換アルキル、
(6)置換および非置換アルケニル、
(7)置換および非置換アルキニル、
(8)置換および非置換アリール、
(9)置換および非置換ヘテロアリール、
(10)置換および非置換ヘテロシクリル、
(11)置換および非置換シクロアルキル、
(12)−COR1a
(13)−CO1a
(14)−CONR1a1b
(15)−NR1a1b
(16)−NR1aCOR1b
(17)−NR1aSO1b
(18)−OCOR1a
(19)−OR1a
(20)−SR1a
(21)−SOR1a
(22)−SO1a、ならびに
(23)−SONR1a1b
(ここで、R1aおよびR1bは、
(a)水素、
(b)置換または非置換アルキル、
(c)置換および非置換アリール、
(d)置換および非置換ヘテロアリール、
(e)置換および非置換ヘテロシクリル、ならびに
(f)置換および非置換シクロアルキルからなる群から独立に選択される)からなる群から選択され;
は、
(1)水素、
(2)シアノ、
(3)ニトロ、
(4)ハロゲン、
(5)ヒドロキシ、
(6)アミノ、
(7)置換および非置換アルキル、
(8)−COR2a、ならびに
(9)−NR2aCOR2b
(ここで、R2aおよびR2bは、
(a)水素、および
(b)置換または非置換アルキルからなる群から独立に選択される)からなる群から選択され;
は、
(1)水素、
(2)シアノ、
(3)ニトロ、
(4)ハロゲン、
(5)置換および非置換アルキル、
(6)置換および非置換アルケニル、
(7)置換および非置換アルキニル、
(8)置換および非置換アリール、
(9)置換および非置換ヘテロアリール、
(10)置換および非置換ヘテロシクリル、
(11)置換および非置換シクロアルキル、
(12)−COR3a
(13)−NR3a3b
(14)−NR3aCOR3b
(15)−NR3aSO3b
(16)−OR3a
(17)−SR3a
(18)−SOR3a
(19)−SO3a、ならびに
(20)−SONR3a3b
(ここで、R3aおよびR3bは、
(a)水素、
(b)置換または非置換アルキル、
(c)置換および非置換アリール、
(d)置換および非置換ヘテロアリール、
(e)置換および非置換ヘテロシクリル、ならびに
(f)置換および非置換シクロアルキルからなる群から独立に選択される)からなる群から選択され;ならびに
は、
(1)水素、および
(2)ハロゲンからなる群から選択される。
式IIの化合物の定義において使用されている基および記号は、WO07/084786に開示されている意味を有し、該公報は参照により本出願に組み込まれている。
本発明の化合物は、WO07/084786に詳細に記載されている化合物である。本発明の化合物は、5−(2,6−ジ−モルホリン−4−イル−ピリミジン−4−イル)−4−トリフルオロメチル−ピリジン−2−イルアミン(BKM−120としても知られる化合物C)である。5−(2,6−ジ−モルホリン−4−イル−ピリミジン−4−イル)−4−トリフルオロメチル−ピリジン−2−イルアミンの合成は、実施例10としてWO07/084786に記載されている。
本発明の文脈において、および実施例で実証されているように、PI3K阻害剤は、哺乳類ラパマイシン標的(mTOR)の阻害剤に置き換えられてもよい。故に、本明細書で使用されるとき、用語「PI3K阻害剤」および「ホスホイノシチド3−キナーゼ(PI3K)阻害剤」化合物は、mTOR阻害剤も含む。さらに、本明細書で使用されるとき、用語「PI3K阻害剤」および「ホスホイノシチド3−キナーゼ(PI3K)阻害剤」は、AKTなどの他のPI3K経路成分の阻害剤も包含する。mTOR阻害剤は、ラパマイシン標的(mTOR)経路の活性を低下させる化合物である。ラパマイシン標的経路の活性低下は、ラパマイシンの標的の生物学的機能の低下により定義される。ラパマイシン生物学的機能の標的には、例えば、インターロイキン−2(IL−2)に対する応答の阻害、TおよびB細胞の活性化のブロック、増殖の制御、および細胞増殖の制御が含まれる。mTOR阻害剤は、例えば、タンパク質FK−結合タンパク質12(FKBP12)に結合して作用する。mTOR阻害剤は、当技術分野で知られており、または本明細書に記載された方法を用いて同定される。mTOR阻害剤は、例えば、ラパマイシン、テムシロリムス(2,2−ビス(ヒドロキシメチル)プロピオン酸;CCI−779)またはエベロリムス(RAD001);AP23573またはこれらの模倣体もしくは誘導体などのマクロライド抗生物質である。さらなるmTOR阻害剤は、テムシロリムス、リダフォロリムス(AP23573としても知られる)、MK−8669(正式にはデフォロリムスとして知られる)、シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスである。ラパマイシンの模倣体および誘導体は、米国特許第RE37.421号;5,985,890号;5,912,253号;5,728,710号;5,712,129号;5,648,361号;7,332,601号;7,282,505号;6,680,330号に記載されているものなど、当技術分野で知られている。故に、本明細書で使用されるとき、用語PI3K阻害剤は、PI3KおよびmTORの両方を阻害するmTOR阻害剤および/または化合物、例えば化合物Aも含む。
ヤヌスキナーゼ(JAK)は、4つのメンバー、JAK1、JAK2、JAK3およびTYK2を有する細胞内タンパク質チロシンキナーゼの一ファミリーを形成する。これらのキナーゼは、細胞増殖、分化および細胞生存を含むさまざまな生物学的応答を誘導するサイトカイン受容体シグナル伝達の媒介において重要である。マウスにおけるノックアウト実験は、JAKがとりわけ造血において重要であることを示した。さらに、JAK2は、骨髄増殖性疾患および癌に関与することが示された。染色体再配列および/または負のJAK/STAT(STAT=シグナル伝達活性化因子(signal transducing and activating factor)(複数可))経路制御因子の喪失によるJAK2活性化は、血液悪性腫瘍および特定の固形腫瘍で観察されている。
ヤヌスキナーゼ2(一般にJAK2と呼ばれる)は、II型サイトカイン受容体ファミリー(例えばインターフェロン受容体)、GM−CSF受容体ファミリー(IL−3R、IL−5RおよびGM−CSF−R)、gp130受容体ファミリー(例えばIL−6R)、および一本鎖受容体(例えばEpo−R、Tpo−R、GH−R、PRL−R)のメンバーによるシグナル伝達に関与しているヒトタンパク質である。JAK2シグナル伝達は、プロラクチン受容体から下流で活性化される。JAK2遺伝子はTEL(ETV6)(TEL−JAK2)と融合し、PCM1遺伝子は、白血病患者において見出されている。さらに、JAK2における変異は、真性赤血球増加症、本態性血小板血症、および他の骨髄増殖性障害に関与している。この変異(617位でのバリンのフェニルアラニンへの変化)は、エリスロポエチンおよびトロンボポエチンなどの増殖因子に対して造血細胞をより感受性にするようである。JAK2の喪失は、マウスにおいて胎生12日目までは致死的である。JAK2オルソログは、完全なゲノムデータが利用可能な全ての哺乳類で同定されている。
JAK−STATシグナル伝達経路は、細胞の外側の化学シグナルからの情報を、細胞膜を通じて細胞核中のDNA上の遺伝子プロモーターに伝達し、細胞におけるDNA転写および活性をもたらす。JAK−STAT系は、セカンドメッセンジャー系に代わる主なシグナル伝達である。JAK−STAT系は、3つの主成分、すなわち、受容体、JAKおよびSTATからなる。JAKはヤヌスキナーゼの略であり、STATはシグナル伝達兼転写活性化因子の略である。受容体は、インターフェロン、インターロイキン、増殖因子、または他の化学的メッセンジャーからのシグナルにより活性化される。これが、自らを自己リン酸化する(リン酸基がタンパク質上の「オン」および「オフ」スイッチとして作用する)JAKのキナーゼ機能を活性化する。STATタンパク質が、次いでリン酸化受容体に結合する。STATはリン酸化され、細胞核に移行し、DNAに結合し、STATに応答した遺伝子の転写を促進する。哺乳類では、7つのSTAT遺伝子があり、1つ1つが異なるDNA配列に結合する。STATは、プロモーターと呼ばれるDNA配列に結合し、他のDNA配列の発現を制御する。これは、細胞増殖、分化および死のような基本的な細胞機能に影響を与える。JAK−STAT経路は、哺乳類に対する粘菌および寄生虫から(ただし、菌類または植物ではない)進化的に保存される。破壊されたまたは調節不全のJAK−STAT機能性(通常、遺伝的または後天的遺伝子欠陥による)は、免疫不全症候群および癌をもたらす可能性がある。
チロシンキナーゼ活性を有するJAKは、幾つかの細胞表面サイトカインおよびホルモン受容体に結合する。受容体へのリガンドの結合は、JAKの活性化を誘発する。キナーゼ活性が増えるにつれ、JAKは、受容体上のチロシン残基をリン酸化し、ホスホチロシン結合SH2ドメインを含有するタンパク質と相互作用するための部位を作る。これらのホスホチロシン残基を結合することができるSH2ドメインを有するSTATが受容体に動員され、JAKにより自らチロシンリン酸化される。これらのホスホチロシンは、次いで他のSTATのSH2ドメインに対する結合部位として作用し、該STATの二量体化を媒介する。種々のSTATがヘテロまたはホモ二量体を形成する。活性化されたSTAT二量体は細胞核に蓄積し、この標的遺伝子の転写を活性化する。STATはまた、上皮増殖因子受容体などの受容体チロシンキナーゼ、およびc−srcなどの非受容体チロシンキナーゼによっても直接チロシン−リン酸化され得る。該経路は、複数のレベルで負に調節される。タンパク質チロシンホスファターゼは、サイトカイン受容体および活性化STATからリン酸塩を除去する。他のサイトカインシグナル抑制因子(SOCS)は、JAKを結合および阻害すること、またはサイトカイン受容体上のホスホチロシン結合部位をSTATと競合することにより、STATリン酸化を阻害する。STATはまた、幾つかの機構を通じて核で作用する活性化STATのタンパク質阻害剤(PIAS)によっても負に調節される。例えば、PIAS1およびPIAS3は、STAT1およびSTAT3による転写活性化を、それぞれ、これらが認識するDNA配列への結合および該配列へのアクセスのブロックにより阻害する。
ヤヌスキナーゼ阻害剤は、1つまたは複数のヤヌスキナーゼファミリーの酵素(JAK1、JAK2、JAK3、TYK2)の効果を阻害すること、JAK−STATシグナル伝達経路を妨げることにより機能する薬の一クラスである。
幾つかのJAK2阻害剤が、真性赤血球増加症、本態性血小板血症、および骨髄線維症を伴う骨髄化生の治療のために開発中である。JAK2の幾つかの阻害剤は、例えば乾癬について臨床試験中である。
JAK2阻害剤の例は、急性骨髄性白血病(AML)についてのJAK2に対するレスタウルチニブ、乾癬、骨髄線維症、および関節リウマチについてのJAK1/JAK2に対するルクソリチニブ、再発リンパ腫、進行骨髄性腫瘍、骨髄線維症およびCIMFについてのJAK2に対するSB1518、骨髄増殖性障害についてのJAK2に対するCYT387、関節リウマチについての第IIb相試験が開始しているJAK1/JAK2に対するLY3009104(INCB28050)、JAK2に対するINC424(INCB01842としても知られる)、JAK2に対する化合物D、JAK2に対するTG101348(骨髄線維症に対する第I相試験結果が公開されている)、JAK2に対するLY2784544、JAK2に対するBMS−911543、およびNS−018(Nakayaら、2011、Blood Cancer Journal、1、e29;doi:10.1038/bcj.2011.29)である。
WO 2005/080393は、とりわけ、異常または調節不全キナーゼ活性を伴う障害の治療において有用な7H−ピロロ[2,3d]ピリミジン−2イル−アミノ誘導体を開示している。
Bioorganic & Medical Chemistry Letters 16(2006)、2689頁は、焦点接着キナーゼ阻害剤としての特定の7H−ピロロ[2,3d]ピリミジンの設計および合成を開示している。
WO2009/098236に開示されているように、下に示された式IIIの7−フェニル−7H−ピロロ[2,3d]ピリミジン−2イル−アミノ誘導体は、有利な薬理学的特性を有し、例えば、JAK2キナーゼおよび/またはJAK3キナーゼ(ただしJAK1キナーゼも)などのヤヌスキナーゼのチロシンキナーゼ活性を阻害することが見出された。故に、式IIIの化合物は、JAK2(および/またはJAK3)キナーゼのチロシンキナーゼ活性に依存する疾患、特には腫瘍疾患、白血病、真性赤血球増加症、本態性血小板血症、および骨髄化生を伴う骨髄線維症などの増殖性疾患を治療するために本発明の組合せにおいて使用されるのに例えば適している。
一態様において、本発明は、式III
[式中、
は、非置換または置換ヘテロシクリル、非置換または置換アリール、非置換または置換シクロアルキルを表し;
は、水素、ハロゲン、低級アルキル、低級アルキルオキシ、低級ハロアルキル、シクロアルキル、シクロアルキルオキシ、ハロシクロアルキル、シクロアルキルオキシ、ハロシクロアルキルオキシを表し;
は、水素、ハロゲン、低級アルキル、低級アルキルオキシ、低級ハロアルキル、シクロアルキル、シクロアルキルオキシ、ハロシクロアルキル、シクロアルキルオキシ、ハロシクロアルキルオキシを表し;
またはRおよび/もしくはRは、RもしくはRに連結されて、R/Rが付着しているフェニル環に縮合した環状部分を形成し;
2aは、水素、ハロゲン、低級アルキル、低級アルキルオキシ、低級ハロアルキル、シクロアルキル、シクロアルキルオキシ、ハロシクロアルキル、シクロアルキルオキシ、ハロシクロアルキルオキシを表し;
3aは、水素、ハロゲン、低級アルキル、低級アルキルオキシ、低級ハロアルキル、シクロアルキル、シクロアルキルオキシ、ハロシクロアルキル、シクロアルキルオキシ、ハロシクロアルキルオキシを表し;
は、基:
(ここで、Aは、以下の基:
の1つを表し、
を付された原子は、フェニル環に結合されている)を表し;
または
は、以下の基:
の1つを表し;
は、互いに独立に水素、低級アルキル、低級ハロアルキル、シクロアルキル、ハロシクロアルキルを表し、またはこれらが付着している炭素と一緒になってシクロアルキルを形成し;
およびRは、これらが付着している窒素と一緒になって、場合により置換されている複素環を表し、
または
は、水素もしくは場合により置換されているアルキルを表し、および
は、場合により置換されているアルキルを表し;
は、アルキル、ヒドロキシ、低級アルキルオキシ、低級ハロアルキルオキシ、シクロアルキルオキシ、ハロシクロアルキルオキシ、低級アルキルスルホニル、低級ハロアルキルスルホニル、シクロアルキルスルホニル、ハロシクロアルキルスルホニル、低級アルキルスルフィニル、低級ハロアルキルスルフィニル、シクロアルキルスルフィニル、ハロシクロアルキルスルフィニルを表し;
は、Hまたは低級アルキルを表し;
10は、水素、低級アルキル、低級ハロアルキル、シクロアルキル、ハロシクロアルキルを表し;
nは、0、1または2を表す]の化合物
またはその塩に関する。
式IVの化合物の定義において使用されている基および記号は、WO2009/098236に開示されている意味を有し、該公報は参照により本出願に組み込まれている。
WO2008/148867は、式(IV)
(式中、キノキサリン環の2および8位は、環状基により置換されている)のキノキサリン化合物を開示している。化合物は、JAK2およびJAK3キナーゼを含むヤヌスキナーゼのチロシンキナーゼ活性の阻害剤として有用であり得る。WO2008/148867の実施例98は、8−(3,5−ジフルオロ−4−モルホリン−4−イルメチル−フェニル)−2−(1−ピペリジン−4−イル−1H−ピラゾール−4−イル)−キノキサリン(BSK805またはBSK−805としても知られる化合物D)を記載している。
式IVの化合物の定義において使用されている基および記号は、WO2008/148867に開示されている意味を有し、該公報は参照により本出願に組み込まれている。
本明細書で使用されるとき、STAT5は、2つの高度に関連したタンパク質、STAT5AおよびSTAT5Bを指し、これらは、別個の遺伝子によりコードされているがアミノ酸レベルでは90%同一である(Grimley PM、Dong F、Rui H、1999、Cytokine Growth Factor Rev. 10(2):131〜157頁)。シグナル伝達兼転写活性化因子5A(STAT5A)は、ヒトにおいてSTAT5A遺伝子によりコードされるタンパク質である。STAT5Aオルソログは、完全なゲノムデータが利用可能な幾つかの胎盤で同定されている。この遺伝子によりコードされたタンパク質は、転写因子のSTATファミリーのメンバーである。サイトカインおよび増殖因子に応答して、STATファミリーメンバーは受容体関連キナーゼによりリン酸化され、次いでホモまたはヘテロ二量体を形成し、該二量体は細胞核へ移行し、転写活性化因子として作用する。このタンパク質は、IL2、IL3、IL7GM−CSF、エリスロポエチン、トロンボポエチン、および種々の成長ホルモンなどの多くの細胞リガンドの応答により活性化され、ならびに該応答を媒介する。TEL/JAK2遺伝子融合に関連した骨髄腫およびリンパ腫においてこのタンパク質の活性化は、細胞刺激とは無関係であり、腫瘍形成に不可欠であることが示されている。この遺伝子のマウス対応物は、BCL2L1/BCL−X(L)の発現を誘導することが見出され、細胞におけるこの遺伝子の抗アポトーシス機能を示唆している。STAT5Aは、CRKL、上皮増殖因子受容体、ERBB4、エリスロポエチン受容体、ヤヌスキナーゼ1、ヤヌスキナーゼ2、MAPK1、NMI、およびPTPN11と相互作用することが示されている。シグナル伝達兼転写活性化因子5Bは、ヒトにおいてSTAT5B遺伝子によりコードされるタンパク質である。STAT5Bオルソログは、完全なゲノムデータが利用可能なほとんどの胎盤で同定されている。この遺伝子にコードされたタンパク質は、転写因子のSTATファミリーのメンバーである。このタンパク質は、IL2、IL4、CSF1、および種々の成長ホルモンなどのさまざまな細胞リガンドにより誘発されるシグナル伝達を媒介する。該タンパク質は、TCRシグナル伝達、アポトーシス、成人の乳腺発達、および肝臓遺伝子発現の性的二形性などの多様な生物学的プロセスに関与することが示されている。この遺伝子は、急性前骨髄球性白血病(APML)の小さいサブセットにおいてレチノイン酸受容体アルファ(RARA)遺伝子に融合することが見出された。STAT5Bは、PTPN11、ヤヌスキナーゼ2、ヤヌスキナーゼ1およびグルココルチコイド受容体と相互作用することが示されている。
STAT5阻害剤は当技術分野で知られている。例えばCumaraswamyら、2011、MedChemComm、DOI: 10.1039/c1md00175bを参照のこと。これらには、ピモジド、N’−((4−オキソ−4H−クロメン−3−イル)メチレン)ニコチノヒドラジド(化合物E)、「IQDMA」(N1−(11H−インドロ[3,2−c]キノリン−6−イル)−N2,N2−ジメチルエタン−1,2−ジアミン;(化合物F)、ならびにCumaraswamyら、2011、(MedChemComm、DOI: 10.1039/c1md00175b;それぞれ化合物G、HおよびI)に記載された化合物12、13および14が含まれる。
故に、本発明はまた、(a)ホスホイノシチド3−キナーゼ(PI3K)阻害剤化合物および(b)ヤヌスキナーゼ2(JAK2)−シグナル伝達兼転写活性化因子5(STAT5)経路を調節する化合物を含む組合せ製剤または医薬組成物などの組合せにも関する。より具体的には、第1の実施形態において本発明は、(a)ホスホイノシチド3−キナーゼ(PI3K)阻害剤化合物および(b)JAK2調節剤(modulator)を含む組合せに関する。
用語「組合せ(combination)」および「組合せ製剤(combined preparation)」は本明細書で使用されるとき、上に定義された組合せパートナー(a)および(b)が、独立に投与され得る、または区別された量の組合せパートナー(a)および(b)を用いた種々の固定された組合せの使用により投与され得る(すなわち、同時にまたは異なる時点で)という意味で、「キット・オブ・パーツ(kit of parts)」も定義する。キット・オブ・パーツのパーツは、次いで、例えば、同時にまたは経時的に交互に(すなわち、キット・オブ・パーツの任意のパーツに対し、異なる時点でおよび同等のまたは異なる時間間隔で)投与され得る。組合せ製剤において投与される、組合せパートナー(a)対組合せパートナー(b)の合計量の比は、例えば、治療される患者亜集団のニーズまたは単一患者のニーズに対処するために変えることができる。
実施例に示されているように、PI3K/mTOR阻害剤およびJAK2−STAT5阻害剤による併用療法は、腫瘍疾患の治療において予期せぬ改善をもたらすことが見出された。同時、逐次または個別に投与される場合、PI3K/mTOR阻害剤およびJAK2−STAT5阻害剤は、相乗的に相互作用して細胞数および腫瘍増殖を低減し、ならびに循環腫瘍細胞の数および転移を減少させる。この予期せぬ相乗効果は、各化合物に求められる用量の低下を可能にし、副作用の低減ならびに化合物および治療の臨床効果の増大をもたらす。
1つまたは複数の成分間の相乗的相互作用を判定しながら、該効果に対する最適範囲および該効果に対する各成分の絶対用量範囲は、治療を必要としている患者に種々のw/w比範囲および用量にわたる成分を投与して、確定的に測定することができる。ヒトに関して、患者に対し臨床試験を実施することの複雑さおよび費用は、相乗効果に関する1次モデルとしてのこの形態の試験の使用を非実用的にする。しかし、1つの種における相乗効果の観察は、他の種における該効果を予測することができ、ならびに相乗効果を測定するための本明細書に記載されたような動物モデルが存在し、このような試験の結果も、薬物動態的/薬力学的方法を適用して、有効用量および血漿濃度比範囲ならびに他の種において必要とされる絶対用量および血漿濃度を予測するのに使用することができる。ヒトにおいて見られる腫瘍モデルと効果の間の確立された相関は、動物における相乗効果が、例えば、下の実施例に記載されているような腫瘍モデルで実証され得ることを示唆している。
一態様において本発明は、相乗的相互作用を同定するのに使用される、例えば下の実施例に記載されているような腫瘍モデルで観察された範囲に対応する組合せ範囲(w/w)で、(a)PI3K阻害剤化合物および(b)JAK2−STAT5経路を調節する化合物、または薬学的に許容される塩もしくはその溶媒和物を含む、ヒト投与のための相乗的組合せを提供する。適切には、ヒトにおける比範囲は、50:1〜1:50重量部、50:1〜1:20、50:1〜1:10、50:1〜1:1、20:1〜1:50、20:1〜1:20、20:1〜1:10、20:1〜1:1、10:1〜1:50、10:1〜1:20、10:1〜1:10、10:1〜1:1、1:1〜1:50、1.1〜1:20および1:1〜1:10の間から選択される非ヒト範囲に対応する。より適切には、ヒト範囲は、10:1〜1:1または5:1〜1:1または2:1〜1:1重量部の順の非ヒト範囲に対応する。
さらなる態様により、本発明は、(a)PI3K阻害剤化合物および(b)JAK2−STAT5経路を調節する化合物、または薬学的に許容されるその塩を含み、各成分の用量範囲が、相乗的相互作用を同定するのに主に使用される適切な腫瘍モデル、例えば下の実施例に記載された腫瘍モデルで観察された相乗的範囲に対応する、ヒトに投与するための相乗的組合せを提供する。適切には、ヒトにおけるPI3K阻害剤化合物の用量範囲は、適切な腫瘍モデル、例えば下の実施例に記載されているようなマウスモデルにおける1〜1000mg/kg、例えば、1〜500mg/kg、1〜1000mg/kg、1〜200mg/kg、1〜100mg/kg、1〜50mg/kg、1〜30mg/kg(例えば化合物Aについては1〜35mg/kgまたは1〜10mg/kg、化合物Bについては1〜25mg/kg)の用量範囲に対応する。
JAK2−STAT5経路を調節する化合物に関して、ヒトにおける用量範囲は、適切な腫瘍モデル、例えば下の実施例に記載されているようなマウスモデルにおける1〜50mg/kgまたは1〜30mg/kg(例えば1〜25mg/kg、1〜10mg/kgまたは1〜2.5mg/kg)の相乗的範囲に適切には対応する。
適切には、ヒトで使用するためのPI3K阻害剤化合物の用量は、1日1回または1日2回(b.i.d.)または1日3回(t.i.d.)、1〜1200mg、1〜500mg、1〜100mg、1〜50mg、1〜25mg、500〜1200mg、100〜1200mg、100〜500mg、50〜1200mg、50〜500mg、または50〜100mg、適切には50〜100mgから選択される範囲にあり、JAK2−STAT5経路を調節する化合物の用量は、1日1回、b.i.dまたはt.i.d、1〜1000mg、1〜500mg、1〜200mg、1〜100mg、1〜50mg、1〜25mg、10〜100mg、10〜200mg、50〜200mgまたは100〜500mgから選択される範囲にある。
さらなる態様によって本発明は、(a)PI3K阻害剤化合物を最大耐用量(maximal tolerable dose、MTD)の10%〜100%、好ましくは50%〜100%、またはより好ましくは70%〜100%、80%〜100%もしくは90%〜100%で、および(b)JAK2−STAT5経路を調節する化合物をMTDの10%〜100%、好ましくは50%〜100%、またはより好ましくは70%〜100%、80%〜100%もしくは90%〜100%で含む、ヒトに投与するための相乗的組合せを提供する。一実施形態において化合物の1つ、好ましくはPI3K阻害剤化合物は、MTDで投与され、他の化合物、好ましくはJAK2−STAT5経路を調節する化合物は、MTDの50%〜100%、好ましくはMTDの60%〜90%で投与される。MTDは、容認できない副作用なしに投与することができる薬の最高用量に対応する。MTDを決定することは当技術分野の範囲内である。例えば、MTDは、用量制限毒性を明らかにするための用量漸増試験、および生物学的に活性な耐量レベルの決定を含む第I相試験において適切に決定することができる。
本発明の一実施形態において、(a)ホスホイノシチド3−キナーゼ(PI3K)阻害剤化合物阻害剤は、化合物A、化合物Bまたは化合物Cからなる群から選択される。
本発明の一実施形態において、(b)JAK2−STAT5調節剤は、レスタウルチニブ、ルクソリチニブ、SB1518、CYT387、LY3009104(INCB28050)、INC424(INCB01842としても知られる)、化合物D(BSK−805)、TG101348、LY2784544、BMS−911543およびNS−018からなる群から選択される阻害剤である。
本発明のさらなる態様は、対象の腫瘍におけるIL−8および/もしくはJAK2/STAT5の発現、または前記対象の血漿中のIL−8の存在に基づき、どの対象がBEZに対し抵抗することになるかを予測するためのキットおよび方法を含む。
用語「治療(処理)する(treating)」または「治療(処理)(treatment)」は本明細書で使用されるとき、疾患の進行の遅延をもたらす治療を含む。用語「進行の遅延」は本明細書で使用されるとき、治療される増殖性疾患の前段階または初期相にある患者への該組合せの投与を意味し、患者は、例えば対応する疾患の前形態が診断され、または患者は、例えば薬物治療中の状態、もしくは偶然の結果、対応する疾患が発生する可能性がある状態にある。
治療される対象は、通常はヒトである。大部分はヒトを指すが、しかし、本発明はヒトに限定されない。本発明において、対象は、ヒトに次いでウシ、ブタ、ウマ、ニワトリ、ネコ、イヌ、ラクダ等などの動物を含むがこれらに限定されない、任意の温血動物であってもよい。
本発明の一実施形態において、増殖性疾患は乳癌、特に転移性乳癌またはトリプルネガティブ型の乳癌である。
本発明の別の実施形態において、増殖性疾患は固形腫瘍である。用語「固形腫瘍」は、特には、乳癌、卵巣癌、結腸および一般にはGI(胃腸)管の癌、頸癌、肺癌、特に小細胞肺癌および非小細胞肺癌、頭部および頸部癌、膀胱癌、前立腺の癌またはカポジ肉腫を意味する。本組合せは、固形腫瘍の増殖を阻害するが、液性腫瘍も阻害する。さらに、腫瘍型および使用される特定の組合せに応じて、腫瘍体積の減少が得られる可能性がある。本明細書に開示された組合せは、腫瘍、例えば乳癌の転移拡大、および微小転移の増殖または発生を防ぐのにも適している。本明細書に開示された組合せは、予後不良患者の治療に特に適している。
コード番号、一般名または商標名により特定された活性剤の構造は、標準的概論「The Merck Index」の現行版、またはデータベース、例えばPatents International(例えばIMS World Publications)から得ることができる。対応するこの内容は、参照により本明細書に組み込まれている。
組合せパートナー(a)および(b)への言及は、薬学的に許容される塩も含むことが意図されると理解されるであろう。これらの組合せパートナー(a)および(b)が、例えば、少なくとも1つの塩基性中心を有する場合、これらは酸付加塩を形成することができる。所望の場合、さらに存在する塩基性中心を有する、対応する酸付加塩も形成することができる。酸性基(例えばCOOH)を有する組合せパートナー(a)および(b)も、塩基との塩を形成することができる。組合せパートナー(a)または(b)または薬学的に許容されるその塩は、水和物の形態で使用することもでき、または結晶化に使用される他の溶媒を含むこともできる。
(a)ホスホイノシチド3−キナーゼ阻害剤化合物および(b)JAK2−STAT5経路を調節する化合物(該活性成分が、各々の場合において遊離形態、または薬学的に許容される塩の形態で存在する)、および場合により少なくとも1つの薬学的に許容される担体を含む組合せは、以下、本発明の組合せと呼ばれる。
本発明の組合せは、有効性および安全性の両方に対し相乗的および相加的利点の両方を有する。ホスホイノシチド3−キナーゼ阻害剤化合物と、JAK2−STSAT5経路を調節する化合物との組合せの治療効果は、該組合せにおける各成分のより低い安全な投与量範囲をもたらすことができる。
本発明の組合せの薬理学的活性は、例えば、臨床試験または以下に本質的に記載される試験手順において実証することができる。適切な臨床試験は、例えば、進行固形腫瘍を有する患者における非盲検非無作為化用量漸増試験である。このような試験は、本発明の組合せの活性成分の相加または相乗効果を証明することができる。増殖性疾患に対する有益な効果は、これらの試験の結果を通じて直接、または当業者にそれ自体知られている試験デザインの変更により、実証することができる。このような試験は、特に、活性成分を用いた単剤療法および本発明の組合せの効果を比較するのに適している。好ましくは、組合せパートナー(a)は固定用量で投与され、組合せパートナー(b)の用量は、最大耐用量(Maximum Tolerated Dosage、MTD)に達するまで漸増される。
本発明の組合せを含む、増殖性疾患に対して治療的に有効である量を含む医薬組成物を提供することが、本発明の1つの目的である。この組成物において、組合せパートナー(a)および(b)は、1つの組み合わせ単位剤形(combined unit dosage form)または2つの別個の単位剤形で、一緒に、順々に(one after the other)または個別に投与されてもよい。単位剤形はまた、固定された組合せであってもよい。
本発明による医薬組成物は、それ自体が知られている方法で調製することができ、ヒトを含む哺乳類(温血動物)への経口または直腸投与などの経腸投与、および非経口投与に適したものである。あるいは、薬剤が個別に投与される場合、一方は経腸製剤であってもよく、他方は非経口的に投与されてもよい。
新規の医薬組成物は、例えば、活性成分の約10%〜約100%、好ましくは約20%〜約60%を含有する。経腸または非経口投与用の併用療法のための医薬製剤は、例えば、糖衣錠、錠剤、カプセルまたは坐薬、およびさらにアンプルなどの単位剤形にあるものである。特に指示がなければ、これらは、それ自体が知られている方法で、例えば、従来の混合、造粒、糖衣、溶解または凍結乾燥プロセスによって調製される。必要な有効量は、複数の投与単位の投与により達することができるため、各剤形の個々の用量に含有される組合せパートナーの単位含量は、それ自体で有効量を構成する必要はないことが理解されよう。
経口剤形用の組成物の調製において、例えば、水、グリコール、油、アルコール、香味剤、保存料、着色剤などの通常の医薬媒体;または固形経口製剤が液体製剤より好ましい、例えば、粉末、カプセルおよび錠剤などの経口固形製剤の場合、デンプン、糖、微結晶性セルロース、希釈剤、造粒剤、滑沢剤、結合剤、崩壊剤等などの担体のいずれかが使用されてもよい。投与の容易さのため、錠剤およびカプセルは最も有利な経口単位剤形であり、この場合、固形医薬担体が明らかに使用される。
特に、本発明の組合せの各組合せパートナーの治療的に有効な量は、同時にまたは逐次任意の順番で投与されてもよく、成分は個別にまたは固定された組合せとして投与されてもよい。例えば、本発明による増殖性疾患の進行の遅延または治療の方法は、同時にまたは逐次任意の順番で、共同して治療的に有効な量で、好ましくは相乗的有効量で、(i)遊離形態または薬学的に許容される塩形態での第1の組合せパートナーを投与すること、および(ii)遊離形態または薬学的に許容される塩形態での第2の組合せパートナーを投与することを含んでもよい。本発明の組合せの個々の組合せパートナーは、療法の過程中の異なる時間で個別に、または分割併用形態もしくは単回併用形態で同時に投与されてもよい。さらに、用語、投与する(administering)は、インビボで組合せパートナーそれ自体に変換する、組合せパートナーのプロドラッグの使用も包含する。従って、本発明は、同時または交互の治療の全てのこのような投与計画(regime)を包含すると理解されるべきであり、用語「投与する(administering)」は、これに応じて解釈されるべきである。
本発明の組合せは、組合せ製剤または医薬組成物であってもよい。
さらに、本発明は、増殖性疾患を有する温血動物に、前記増殖性疾患に対して治療的に有効である量で本発明の組合せを投与することを含む、該動物を治療する方法に関する。
さらに、本発明は、増殖性疾患を治療するための、および増殖性疾患を治療するための医薬の調製のための、本発明の組合せの使用に関する。
さらに、本発明は、指示書と一緒に、本発明の組合せを活性成分として含む、増殖性疾患の進行の遅延または治療におけるその同時、個別または逐次使用のための、商業的パッケージを提供する。
本発明の実施形態は、以下を含む組合せにより代表される。
− レスタウルチニブならびに化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− ルクソリチニブならびに化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− SB1518ならびに化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− CYT387ならびに化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− LY3009104ならびに化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− INC424ならびに化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− 化合物Dならびに化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− TG101348ならびに化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− LY2784544ならびに化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− BMS−911543ならびに化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− NS−018ならびに化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− 化合物(COUMPOUND)Eならびに化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− 化合物(COUMPOUND)Fならびに化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− 化合物(COUMPOUND)Gならびに化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− 化合物(COUMPOUND)Hならびに化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− 化合物(COUMPOUND)Iならびに化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
別の実施形態において、本発明は、以下を含む組合せを提供する。
− 化合物Aならびにレスタウルチニブ、ルクソリチニブ、SB1518、CYT387、LY3009104、INC424、LY2784544、BMS−911543、NS−018、化合物(COUMPOUND)D、TG101348、化合物E、化合物F、化合物G、化合物Hおよび化合物Iからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− 化合物Bならびにレスタウルチニブ、ルクソリチニブ、SB1518、CYT387、LY3009104、INC424、LY2784544、BMS−911543、NS−018、化合物(COUMPOUND)D、TG101348、化合物E、化合物F、化合物G、化合物Hおよび化合物Iからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− 化合物Cならびにレスタウルチニブ、ルクソリチニブ、SB1518、CYT387、LY3009104、INC424、LY2784544、BMS−911543、NS−018、化合物(COUMPOUND)D、TG101348、化合物E、化合物F、化合物G、化合物Hおよび化合物Iからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− ラパマイシンならびにレスタウルチニブ、ルクソリチニブ、SB1518、CYT387、LY3009104、INC424、LY2784544、BMS−911543、NS−018、化合物(COUMPOUND)D、TG101348、化合物E、化合物F、化合物G、化合物Hおよび化合物Iからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− テムシロリムスならびにレスタウルチニブ、ルクソリチニブ、SB1518、CYT387、LY3009104、INC424、LY2784544、BMS−911543、NS−018、化合物(COUMPOUND)D、TG101348、化合物E、化合物F、化合物G、化合物Hおよび化合物Iからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− エベロリムスならびにレスタウルチニブ、ルクソリチニブ、SB1518、CYT387、LY3009104、INC424、LY2784544、BMS−911543、NS−018、化合物(COUMPOUND)D、TG101348、化合物E、化合物F、化合物G、化合物Hおよび化合物Iからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− テムシロリムスならびにレスタウルチニブ、ルクソリチニブ、SB1518、CYT387、LY3009104、INC424、LY2784544、BMS−911543、NS−018、化合物(COUMPOUND)D、TG101348、化合物E、化合物F、化合物G、化合物Hおよび化合物Iからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− リダフォロリムスならびにレスタウルチニブ、ルクソリチニブ、SB1518、CYT387、LY3009104、INC424、LY2784544、BMS−911543、NS−018、化合物(COUMPOUND)D、TG101348、化合物E、化合物F、化合物G、化合物Hおよび化合物Iからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− MK−8669ならびにレスタウルチニブ、ルクソリチニブ、SB1518、CYT387、LY3009104、INC424、LY2784544、BMS−911543、NS−018、化合物(COUMPOUND)D、TG101348、化合物E、化合物F、化合物G、化合物Hおよび化合物Iからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− シロリムスならびにレスタウルチニブ、ルクソリチニブ、SB1518、CYT387、LY3009104、INC424、LY2784544、BMS−911543、NS−018、化合物(COUMPOUND)D、TG101348、化合物E、化合物F、化合物G、化合物Hおよび化合物Iからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− ゾタロリムスならびにレスタウルチニブ、ルクソリチニブ、SB1518、CYT387、LY3009104、INC424、LY2784544、BMS−911543、NS−018、化合物(COUMPOUND)D、TG101348、化合物E、化合物F、化合物G、化合物Hおよび化合物Iからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
− バイオリムスならびにレスタウルチニブ、ルクソリチニブ、SB1518、CYT387、LY3009104、INC424、LY2784544、BMS−911543、NS−018、化合物(COUMPOUND)D、TG101348、化合物E、化合物F、化合物G、化合物Hおよび化合物Iからなる群から選択される1つまたは複数の化合物。
さらなる態様において、本発明は以下を提供する。
− (a)本発明の組合せ、および場合により少なくとも1つの薬学的に許容される担体を含み、活性成分が、各々の場合において遊離形態、または薬学的に許容されるその塩もしくは任意のその水和物の形態で存在する、同時、個別または逐次使用のための組合せ;
− 増殖性疾患に対し共同して治療的に有効である量の本発明の組合せ、および少なくとも1つの薬学的に許容される担体を含む医薬組成物;
− 増殖性疾患を治療するための、本発明の組合せの使用;
− 増殖性疾患を治療するための医薬の調製のための、本発明の組合せの使用;
− PI3K阻害剤が、化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスから選択される、本発明の組合せである組合せの使用;ならびに
− JAK2−STAT5経路を調節する化合物が、JAK2を阻害する化合物、例えばレスタウルチニブ、ルクソリチニブ、SB1518、CYT387、LY3009104(INCB28050)、INC424(INCB01842としても知られる)、LY2784544、BMS−911543、NS−018、またはTG101348である、本発明の組合せの使用。
さらに、特に、本発明は、(a)ホスホイノシチド3−キナーゼ阻害剤化合物の1つまたは複数の単位剤形、および(b)JAK2−STAT5経路を調節する化合物を含む組合せ製剤に関する。
さらに、特に、本発明は、増殖性疾患を治療するための医薬の調製のための、(a)ホスホイノシチド3−キナーゼ阻害剤化合物、および(b)JAK2−STAT5経路を調節する化合物を含む組合せの使用に関する。
本発明の組合せに使用される各組合せパートナーの有効投与量は、使用される特定の化合物または医薬組成物、投与様式、治療中の状態、治療中の状態の重症度に応じて異なってもよい。故に、本発明の組合せの投与計画は、投与経路ならびに患者の腎臓および肝臓機能を含むさまざまな要因に従って選択される。当業の医師、臨床医または獣医師は、状態の進行を防ぎ、対抗し、または阻止するのに必要とされる単一活性成分の有効量を容易に決定および処方することができる。毒性なしに有効性をもたらす範囲内の活性成分の濃度を達成するうえで最適な精度は、標的部位への活性成分の利用可能性の動態に基づく投与計画を必要とする。
本発明の組合せにおいて使用される組合せパートナーが、単剤として市販されているような形態で適用される場合、これらの投与量および投与様式は、特に本明細書に言及されていなければ、本明細書に記載された有益な効果をもたらすためにそれぞれの市販薬の添付文書に提供された情報に従って行われてよい。
化合物Aは、約50〜1000mg/日までさまざまである投与量範囲でヒトに投与することができる。化合物Bは、約25〜800mg/日までさまざまである投与量範囲でヒトに投与することができる。化合物Cは、約25〜800mg/日までさまざまである投与量範囲でヒトに投与することができる。
実施例で実証されているように、用語「化合物」は本明細書で使用されるとき、標的遺伝子の発現を減少させるまたはサイレンシングするsiRNAも含む。「RNAi」は、動物および植物における配列特異的転写後遺伝子サイレンシングのプロセスである。RNAiは、二本鎖でありサイレント(標的)遺伝子と配列において相同である低分子干渉RNA分子(siRNA)を使用する。故に、標的遺伝子の転写により生成されたmRNAとのsiRNA分子の配列特異的結合は、遺伝子発現の極めて特異的な標的ノックダウンを可能にする。本発明による「siRNA」または「低分子干渉リボ核酸」は、以下の態様を含む当技術分野で公知の意味を有する。siRNAは、生理学的条件下で相補領域に沿ってハイブリダイズする二本鎖のリボヌクレオチドからなる。二本鎖は通常は分かれている。二本鎖は細胞において別々の役割を有するため、一方の鎖は、「ガイド」配列としても知られる「アンチセンス」鎖と呼ばれ、機能的RISC複合体において使用されて切断のため正しいmRNAにこれをガイドする。「アンチセンス」のこの使用は、RNA化合物に関連しているため、本明細書の他の場所で言及されているアンチセンス標的DNA化合物とは異なる。他方の鎖は、「アンチガイド」配列として知られ、標的配列と同じヌクレオチド配列を含有するため、センス鎖としても知られている。鎖は、特定の実施形態において分子リンカーにより結合されてもよい。個々のリボヌクレオチドは、非修飾自然発生リボヌクレオチド、非修飾自然発生デオキシリボヌクレオチドであってもよく、またはこれらは本明細書の他の場所で記載されているように化学的に修飾されてもよく、もしくは合成であってもよい。
幾つかの実施形態において、siRNA分子は、標的遺伝子の下方制御を可能にするために該遺伝子のコード配列の少なくとも一領域と実質的に同一である。幾つかの実施形態において、siRNA分子の配列と遺伝子の標的領域の間の同一性の程度は、少なくとも60%配列同一性、幾つかの実施形態においては少なくとも75%配列同一性、例えば少なくとも85%同一性、90%同一性、少なくとも95%同一性、少なくとも97%、または少なくとも99%同一性である。
異なるアミノ酸/ポリペプチド/核酸配列間のパーセンテージ同一性の計算は、次のように行うことができる。マルチプルアライメントが、ClustalXプログラム(ペアワイズパラメータ:ギャップ開始10.0、ギャップ伸長0.1、タンパク質マトリックスGonnet 250、DNAマトリックスIUB;マルチプルパラメータ:ギャップ開始10.0、ギャップ伸長0.2、遅延分岐配列30%、DNA移行重み(transition weight)0.5、ネガティブマトリックスオフ、タンパク質マトリックスgonnetシリーズ、DNA重みIUB;タンパク質ギャップパラメータ、残基特異的ペナルティオン、親水性ペナルティオン、親水性残基GPSNDQERK、ギャップ分離距離4、エンドギャップ分離オフ)により最初に生成される。パーセンテージ同一性が、次いで、(N/T)100(Nは、2つの配列が同一残基を共有する位置の数であり、Tは、比較される位置の合計数である)としてマルチプルアライメントから計算される。あるいは、パーセンテージ同一性は、(N/S)100(Sは、比較されているより短い配列の長さである)として計算することができる。アミノ酸/ポリペプチド/核酸配列は、デノボ合成されてもよく、または天然のアミノ酸/ポリペプチド/核酸配列、もしくはその誘導体であってもよい。実質的に類似したヌクレオチド配列は、ストリンジェントな条件下で、本明細書に言及された核酸配列またはその相補体のいずれかにハイブリダイズする配列によりコードされる。ストリンジェントな条件とは、ヌクレオチドが、約45℃、6×塩化ナトリウム/クエン酸ナトリウム(SSC)中でフィルター結合DNAまたはRNAにハイブリダイズし、この後、約5〜65℃、0.2×SSC/0.1%SDS中で少なくとも1回洗浄することを意味する。あるいは、実質的に類似したポリペプチドは、本発明によるペプチド配列と少なくとも1個(ただし5、10、20、50または100個未満)のアミノ酸が異なる可能性がある。遺伝コードの縮重のため、任意の核酸配列が、その機能的バリアントを提供するために、該配列によりコードされたタンパク質の配列に実質的に影響を与えることなく異なり得または変更され得ることは明らかである。適切なヌクレオチドバリアントは、配列内に同じアミノ酸をコードする異なるコドンを置換して改変された配列を有し、故にサイレント変化を生じさせるものである。他の適切なバリアントは、相同なヌクレオチド配列を有するものであるが、保存的変化を生じさせるために、置換するアミノ酸と類似した生物物理学的特性の側鎖を有するアミノ酸をコードする異なるコドンを置換して改変される配列の全て、または部分を含むものである。例えば小さな非極性疎水性アミノ酸には、グリシン、アラニン、ロイシン、イソロイシン、バリン、プロリン、およびメチオニンが含まれ、大きな非極性疎水性アミノ酸には、フェニルアラニン、トリプトファンおよびチロシンが含まれ;極性中性アミノ酸には、セリン、スレオニン、システイン、アスパラギンおよびグルタミンが含まれ;正に荷電された(塩基性)アミノ酸には、リシン、アルギニンおよびヒスチジンが含まれ、ならびに負に荷電された(酸性)アミノ酸には、アスパラギン酸およびグルタミン酸が含まれる。タンパク質またはDNA配列の正確なアライメントは複雑なプロセスであり、多くの研究者により詳細に調べられている。特に重要なのは、配列の最適マッチング間のトレードオフ、このようなマッチを得るためのギャップの導入である。タンパク質の場合には、マッチがスコア化される手段も重要である。PAMマトリックスのファミリー(例えば、Dayhoff, M.ら、1978、Atlas of protein sequence and structure、Natl. Biomed. Res. Found.)およびBLOSUMマトリックスは、保存的置換の性質および可能性を定量化し、マルチプルアライメントアルゴリズムにおいて使用されるが、他の同等に適用可能なマトリックスが当業者に知られるであろう。一般的なマルチプルアライメントプログラムClustalW、およびこのウィンドウズ(登録商標)バージョンClustalX(Thompsonら、1994、Nucleic Acids Research、22、4673〜4680頁;Thompsonら、1997、Nucleic Acids Research、24、4876〜4882頁)は、タンパク質およびDNAのマルチプルアライメントを作成するための効率的な方法である。しばしば、自動的に作成されたアライメントは、試験されているタンパク質ファミリーに関する訓練されたユーザーの知識、例えば、主な保存部位に関する生物学的知識を活用する手動のアライメントを必要とする。1つのこのようなアライメントエディタープログラムは、Align(http://www.gwdg. de/dhepper/download/; Hepperle、D.、2001: Multicolor Sequence Alignment Editor. Institute of Freshwater Ecology and Inland Fisheries、16775シュテヒリン、ドイツ)であるが、JalViewまたはCinemaなどの他のものも適している。タンパク質間のパーセンテージ同一性の計算は、Clustalによるマルチプルアライメントの作成中に起こる。しかし、これらの値は、アライメントが手動で改善された場合、または2つの配列を意図的に比較するために再計算される必要がある。アライメント内のタンパク質配列の対に対するこの値を計算するプログラムには、アミノ酸置換のモデルとして「Similarity Table」オプション(P)を用いるPHYLIP系統発生パッケージ(Felsenstein;http://evolution.gs. washington.edu/ phylip.html)内のPROTDISTが含まれる。DNA/RNAについては、同一のオプションがPHYL1PのDNADISTプログラム内に存在する。
本発明によればdsRNA分子は、標的遺伝子のmRNA領域と実質的に同一である二本鎖領域を含む。標的遺伝子の対応する配列と100%同一性を有する領域が適している。この状態は、「完全に相補的」と呼ばれる。しかし、該領域は、標的化されたmRNAの領域の長さに応じて、標的遺伝子の対応する領域と比較して1個、2個または3個のミスマッチも含有し得、そのため完全に相補的でない可能性がある。一実施形態において、本発明のRNA分子は、1つの所与の遺伝子を特異的に標的にする。所望のmRNAのみを標的にするために、siRNA試薬は、標的mRNAとの100%相同性、および細胞または生物に存在する全ての他の遺伝子に対する少なくとも2個のミスマッチヌクレオチドを有し得る。特定の標的配列の発現を効果的に阻害するために十分な配列同一性を有するsiRNAを解析および同定する方法は、当技術分野で知られている。配列同一性は、当技術分野で公知の配列比較およびアライメントアルゴリズム(Gribskov and Devereux、Sequence Analysis Primer、Stockton Press、1991、およびそこに引用されている参考文献を参考のこと)、ならびに例えば、デフォルトパラメータを用いてBESTFITソフトウェアプログラムにおいて実行されるSmith−Watermanアルゴリズム(例えば、University of Wisconsin Genetic Computing Group)により、ヌクレオチド配列間のパーセント差を計算して最適化することができる。
本発明によれば、標的に相補的なsiRNAの領域の長さは、10〜100ヌクレオチド、12〜25ヌクレオチド、14〜22ヌクレオチドまたは15、16、17または18ヌクレオチドであってもよい。対応する標的領域に対するミスマッチがある場合、相補領域の長さは、幾分より長いことが一般に求められる。一実施形態において、阻害剤はsiRNA分子であり、および約5bp〜50bpを含み、幾つかの実施形態においては10bp〜35bp、または15bp〜30bp、例えば18bp〜25bpを含む。幾つかの実施形態において、siRNA分子は、20bp超および23bp未満を含む。
siRNAは、オーバーハング末端(標的に相補的であっても相補的でなくてもよい)、またはsiRNA自体に相補的であるが標的遺伝子には相補的でない追加のヌクレオチドを有し得るため、siRNAの各個別の鎖の全長は、10〜100ヌクレオチド、15〜49ヌクレオチド、17〜30ヌクレオチドまたは19〜25ヌクレオチドであってもよい。語句「各鎖は49ヌクレオチド以下である」は、全ての修飾または非修飾ヌクレオチドを含むが、鎖の3’または5’末端に付加され得る任意の化学的部分は含まない、鎖中の連続するヌクレオチドの合計数を意味する。鎖に挿入される短い化学的部分はカウントされないが、2本の別個の鎖を合わせるようにデザインされた化学リンカーは、連続するヌクレオチドを作製するとは見なされない。
語句「5’末端または3’末端の少なくとも一方における1〜6ヌクレオチドオーバーハング」は、生理学的条件下で2本の別個の鎖から形成する相補的siRNAの構造を指す。末端ヌクレオチドがsiRNAの二本鎖領域の部分であるならば、siRNAは平滑末端と見なされる。1つまたは複数ヌクレオチドが一末端で不対であるならば、オーバーハングが作製される。オーバーハング長は、オーバーハングヌクレオチドの数により測定される。オーバーハングヌクレオチドは、どちらかの鎖の5’末端または3’末端のどちらにでもあり得る。
本発明によるsiRNAは、高いインビボ安定性を示し、少なくとも1つの修飾ヌクレオチドを鎖の少なくとも一方に含むことにより、経口送達に特に適し得る。故に本発明によるsiRNAは、少なくとも1つの修飾または非天然リボヌクレオチドを含有する。多くの公知の化学的修飾の長い記載が、PCT特許出願公開WO 200370918に示されている。送達に適切な修飾には、a)3’キャップ;b)5’キャップ、c)修飾ヌクレオシド間連結;またはd)修飾糖もしくは塩基部分の中から選択され得る化学的修飾が含まれる。適切な修飾には、糖部分(すなわち、例えば2’−O−(2−メトキシエチル)または2’−MOE)(Martinら、Helv. Chim. Acta、1995、78、486〜504頁)などの糖部分の2’位、すなわち、アルコキシアルコキシ基)または塩基部分(すなわち、別のヌクレオチド鎖中の別の特定の塩基と対合する能力を維持する非天然または修飾塩基)に対する修飾が含まれるが、これらに限定されない。他の修飾には、例えばホスホロチオエート、キラルホスホロチオエートまたはホスホロジチオエートとのリン酸エステル基(隣接するリボヌクレオチドを連結する)の置換を含むがこれらに限定されない、いわゆる「骨格」修飾が含まれる。本明細書で3’キャップまたは5’キャップと呼ばれることもある末端修飾は、重要となり得る。キャップは、siRNAに安定性を与えることが見出された「T−T」などの追加のヌクレオチドを単純に付加することからなり得る。キャップは、当業者に知られている多くの錯体化学からなり得る。
適切なsiRNA分子のデザインは複雑なプロセスであり、標的mRNA分子の配列の極めて慎重な解析を伴う。siRNAをデザインするための1つの例示的方法が、WO2005/059132に例示されている。次いで、相当な発明的努力により、本発明者らは、RNA干渉を引き起こすのに必要とされる親和性および同様に安定性を有する、ヌクレオチド塩基の特定の組成を有するsiRNAの定義された配列を選択しなければならない。siRNA分子は、デノボ合成されてもよく、または微生物により産生されてもよい。例えば、siRNA分子は、例えば大腸菌(E.coli)などの細菌により産生されてもよい。少なくとも1つの修飾または非天然リボヌクレオチドを含有するsiRNAを含むsiRNAの合成方法は、当業者によく知られており、容易に利用可能である。例えば、さまざまな合成化学反応が、PCT特許出願公開WO2005021749およびWO200370918に示されている。該反応は、溶液中で、または幾つかの実施形態においては、固相上で行うことができ、またはポリマー担持試薬の使用と、これに続く、RNAiを媒介することができるsiRNA分子が形成される条件下での合成RNA鎖の結合により行うことができる。siNAs(低分子干渉核酸)は、ウラシル(siRNA)またはチリミジン(thyrimidine)(siDNA)を含み得ると理解されるべきである。従って、上に言及されたヌクレオチドUおよびTは、交換することができる。しかし、siRNAが使用されることが好ましい。誤解を避けるために、用語siRNAは本明細書で使用されるとき、miRNA、shRNAおよびshRNAmirも含む。
本発明により使用される遺伝子サイレンシング分子、すなわち阻害剤は、幾つかの実施形態において核酸(例えば、siRNAまたはアンチセンスまたはリボザイム)である。このような分子は、治療中の対象の細胞のDNAに組み込まれるようになるものであってもよい(ただし、必ずしもではない)。未分化細胞は、遺伝子サイレンシング分子により安定に形質転換され得、遺伝子修飾娘細胞の産生をもたらす(この場合、例えば特異的転写因子、または遺伝子活性化因子による、対象における発現の制御が必要とされ得る)。遺伝子サイレンシング分子は、デノボ合成されてもよく、および標的細胞に遺伝子サイレンシングを誘導する(例えばRNA干渉により)のに十分な量で導入されてもよい。あるいは、該分子は、微生物、例えば大腸菌(E.coli)により産生されてもよく、次いで、標的細胞に遺伝子サイレンシングを誘導するのに十分な量で導入されてもよい。該分子は、遺伝子サイレンシング配列をコードする核酸を有するベクターにより産生されてもよい。ベクターは、核酸の発現を制御および/または増強することができるエレメントを含むことができる。ベクターは、組換えベクターであってもよい。ベクターは、例えばプラスミド、コスミド、ファージ、またはウイルスDNAを含むことができる。遺伝子サイレンシング分子を合成するためのベクターに加えて、または該ベクターを使用する代わりに、ベクターは、遺伝子サイレンシング配列により標的細胞を形質転換するための送達系として使用されてもよい。
組換えベクターは、他の機能性エレメントも含むことができる。例えば、組換えベクターは、ベクターが標的細胞において自律複製するようにデザインされてもよい。この場合、核酸複製を誘導するエレメントが、組換えベクターにおいて必要とされ得る。あるいは、組換えベクターは、ベクターおよび組換え核酸分子が標的細胞のゲノムに組み込まれるようにデザインされてもよい。この場合、標的化された組み込み(例えば相同な組換えによる)を促す核酸配列が望ましい。組換えベクターはまた、クローニングプロセスにおいて選択可能なマーカーとして使用することができる遺伝子をコードするDNAも有することができる。
組換えベクターはまた、必要に応じて核酸の発現を制御するためのプロモーターまたは制御因子またはエンハンサーも含むことができる。組織特異的プロモーター/エンハンサーエレメントは、特定の細胞型、例えば、内皮細胞における核酸の発現を制御するのに使用することができる。プロモーターは、構成的または誘導的であってもよい。
あるいは、遺伝子サイレンシング分子は、ベクターに組み込まれた状態または組み込まれていない状態で、対象における標的細胞または組織に投与することができる。例えば、該分子は、リポソームまたはウイルス粒子(例えばレトロウイルス、ヘルペスウイルス、ポックスウイルス、ワクシニアウイルス、アデノウイルス、レンチウイルス等)内に組み込まれてもよい。あるいは「裸の」siRNAまたはアンチセンス分子が、適切な手段、例えば直接的エンドサイトーシス取り込みにより対象の細胞に挿入されてもよい。
遺伝子サイレンシング分子はまた、トランスフェクション、感染、マイクロインジェクション、細胞融合、プロトプラスト融合または弾道衝撃(ballistic bombardment)により、治療される対象の細胞に導入することもできる。例えば、導入は、コーティングされた金粒子を用いた弾道トランスフェクション;siNA分子を含有するリポソーム;遺伝子サイレンシング配列を含むウイルスベクター、または遺伝子サイレンシング分子の直接適用による直接核酸取り込みを提供する手段(例えばエンドサイトーシス)によってもよい。
本発明の一実施形態において、siNA分子は、標的細胞に送達され得(ベクター中であるか「裸」であるかにかかわらず)、次いで複製を宿主細胞に依存し得、これにより治療的に有効なレベルに達し得る。この場合、siNAは、幾つかの実施形態において、siNAが細胞において転写され、次いで翻訳を妨げる(標的遺伝子産物をコードする内因性mRNAの破壊を誘導することにより)ことを可能にする発現カセットに組み込まれる。
以下の実施例は、上に記載された本発明を例示する。しかし、これらは、本発明の範囲をいかなる形でも制限することを意図しない。本発明の組合せの有益な効果も、当業者にそれ自体公知の他の試験モデルにより判定することができる。
化合物Aによる二重PI3K/mTOR阻害が、インビトロおよびインビボでJAK2/STAT5を活性化することを示す図である。(A)示されているように化合物A(BEZ−235)で処理された3つの異なる乳癌株で行われた経時的実験からの溶解物(lysate)の免疫ブロット(ヒト株:MDA 468およびMDA 231 LM2)。インビボデータについては、異種移植片担持SCID/ベージュマウスが、示された時点で解剖前にビヒクルまたは30mg/kgの化合物Aで1回処理された。(B)JAK2およびJAK1がsiRNAにより枯渇されたMDA 468およびMDA 231 LM2ヒト細胞株由来の溶解物の免疫ブロット。siNT=非標的対照siRNA。(C)JAK2/STAT5シグナル伝達が、siRNA(左のパネル)またはJAK2特異的阻害剤BSK−805(化合物D)(右のパネル)によりブロックされた、8時間BEZ処理されたMDA 468 細胞由来の溶解物の免疫ブロット。pJAK2がELISAにより測定され、合計JAK2レベルに対して正規化された。濃度測定定量化(densitometric quantification)は、合計STAT5に対して正規化されたpSTAT5について示されている。 化合物AとJAK2阻害剤である化合物(COUMPOUND)Dとの組合せが、細胞生存能を低下させ、アポトーシスを誘発することを示す図である。(A)低血清条件下(0.5%)で増殖され、300nM BEZ(化合物A)および/または350nM BSK(化合物D)で72時間処理された細胞株のWST−1生存アッセイにより測定された細胞生存能の平均パーセンテージを示す棒グラフ(左のパネル)。処理8時間後の同じ細胞株由来の溶解物の免疫ブロット(右のパネル)。データは、4つの独立した実験の平均±SDである;P<0.05、**P<0.01。(B)単独処理および組合せ処理20時間後の3つの細胞株由来の溶解物の免疫ブロット。(C)示されているように300nM BEZ(化合物A)および/または350nM BSK(化合物D)で処理されたアネキシンVおよびPI染色細胞のFACS分析により測定された、処理48時間後のアポトーシス細胞の平均パーセンテージを示す棒グラフ(左)。300nM BEZ(化合物A)および/または350nM BSK(化合物D)で24時間処理された細胞由来の溶解物の免疫ブロット(右)。データは、平均±SDである(n=5、P<0.05、**P<0.01。(C)示されているように300nM BEZおよび/または350nM BSKで処理されたアネキシンVおよびPI染色細胞のFACS分析により測定された、処理48時間後のアポトーシス細胞の平均パーセンテージを示す棒グラフ(左)。300nM BEZおよび/または350nM BSKで24時間処理された細胞由来の溶解物の免疫ブロット(右)。データは、平均±SDである(n=5、P<0.05、**P<0.01。 化合物A(二重PI3K/mTOR阻害)が、乳癌においてIL−8分泌を誘導することを示す図である。(A)BEZ処理細胞由来の可溶性因子は、JAK2/STAT5を活性化する。示されているのは、300nM BEZで24時間処理された細胞由来の条件培地で30分間処理された細胞の溶解物の免疫ブロットである。条件培地中に存在するBEZの対照として、本発明者らは、BEZ(SN BEZ対照)を含有する培地で処理された細胞の溶解物を使用した。(B)IL−8は、BEZで乳癌細胞を処理すると分泌される。上清中の示されたサイトカインの発現を示すサイトカインアレイ(上のパネル)、またはそれぞれ300nM BEZで24時間処理された細胞もしくは30mg/kg BEZで10日間処理された同種移植片担持マウスの腫瘍溶解物(下のパネル)。マウスMIP2は、ヒトIL−8の機能的相同体である。 化合物A(二重PI3K/mTOR阻害)が、乳癌においてIL−8分泌を誘導することを示す図である。(C)BEZ処理した時のIL−8過剰発現の動態。示されているように300nM BEZで処理された細胞におけるIL−8分泌(左のパネル)およびmRNA上方制御(右のパネル)の時間経過を示す棒グラフ。IL−8のレベルが、それぞれELISAおよびRQ−PCRにより測定され、平均±SDとして示されている(n=4、P<0.05)。(D)BEZは、乳癌細胞株パネルにおいてIL−8分泌およびJAK2/STAT5のリン酸化を増加させた。300nMのBEZ−235で8時間処理されたトリプルネガティブ乳癌および管腔乳癌細胞株のパネルにおけるIL−8分泌とJAK2活性化の間の相関グラフ(計数=0.77)(表1を参照のこと)。 化合物A(PI3K/mTOR阻害)が、JAK2/STAT5の二相性活性化を誘導することを示す図である。(A)溶解30分前に添加されたDMSOまたは300nM BEZ単独またはIgGもしくはCXCR1ブロッキング抗体との組合せで処理された細胞由来の溶解物の免疫ブロット。(B)示されているように300nMのBEZで処理された細胞由来の溶解物の免疫ブロット。(C)DMSOまたは300nM BEZで8時間処理された細胞由来の溶解物の免疫沈降(IP)および免疫ブロッティング。WCL:全細胞溶解物。 化合物A(PI3K/mTOR阻害)が、JAK2/STAT5の二相性活性化を誘導することを示す図である。(D)DMSOまたは300nM BEZで8時間処理される前に、IRS1がsiRNAにより枯渇された細胞由来の溶解物の免疫ブロット。siNTは非標的siRNAを指す。(E)300nM BEZおよび/または350nM BSKで20時間(左)または8時間(左)処理した時の、IL−8分泌(左)およびmRNA(右)のレベルを示す棒グラフ。IL−8のレベルは、それぞれELISAおよびRQ−PCRにより測定され、平均±SDとして示されている(n=4、P<0.05)。 共標的PI3K/mTOR(化合物A)およびJAK2/STAT5(化合物D)が、原発性腫瘍増殖および転移を減少させることを示す図である。(A)〜(D)ビヒクル対照(VHC)、30mg/kg BEZ、120mg/kg BSKまたは25mg/kg BEZおよび100mg/kg BSKで処理されたマウスの腫瘍の増殖曲線ならびに腫瘍溶解物の免疫ブロット。Cでは、JAK2がdox投与により阻害されてJAK2 shRNA(shJAK2)の活性化をもたらす。shNTは非標的shRNAを指し、注入は同所細胞注入を指し、および矢印は、処理および/またはdoxの投与の開始を示す。Bでは、示されているのは、処理の終了1日前のルシフェラーゼ発現MDA231 LM2腫瘍の代表的な生物発光画像である。免疫ブロッティングは、MDA468については処理の14日後、MDA231 LM2については処理の10日後、および4T−1については処理の6日後に回収された腫瘍で行われた。結果は、平均腫瘍体積±SEMとして表されている(n=4〜8、P<0.05、**P<0.01、***P<0.001)。 共標的PI3K/mTOR(化合物A)およびJAK2/STAT5(化合物D)が、原発性腫瘍増殖および転移を減少させることを示す図である。(A)〜(D)ビヒクル対照(VHC)、30mg/kg BEZ、120mg/kg BSKまたは25mg/kg BEZおよび100mg/kg BSKで処理されたマウスの腫瘍の増殖曲線ならびに腫瘍溶解物の免疫ブロット。Cでは、JAK2がdox投与により阻害されてJAK2 shRNA(shJAK2)の活性化をもたらす。shNTは非標的shRNAを指し、注入は同所細胞注入を指し、および矢印は、処理および/またはdoxの投与の開始を示す。Bでは、示されているのは、処理の終了1日前のルシフェラーゼ発現MDA231 LM2腫瘍の代表的な生物発光画像である。免疫ブロッティングは、MDA468については処理の14日後、MDA231 LM2については処理の10日後、および4T−1については処理の6日後に回収された腫瘍で行われた。結果は、平均腫瘍体積±SEMとして表されている(n=4〜8、P<0.05、**P<0.01、***P<0.001)。 共標的PI3K/mTOR(化合物A)およびJAK2/STAT5(化合物D)が、原発性腫瘍増殖および転移を減少させることを示す図である。(E)A〜Dのような処理の開始21日後(MDA231 LM2)または5日後(4T−1)に実施された尾静脈血中のGFP+細胞のFACS分析により測定された循環腫瘍細胞(CTC)数を示す棒グラフ。データは、105抹消血細胞(PBC)に対して正規化されたGFP+CTCとして表され、平均±SEMである(n=4)。(F)上段左および真ん中:B〜Cのように処理された腫瘍担持マウスからの原発性腫瘍の除去4週間後に回収された肺の代表的な画像。上段右:Dのような処理の19日後の腫瘍担持マウスから回収された肺の代表的な画像。棒グラフは、B〜Dのように処理されたマウスの転移指数を示す。転移指数は、目に見える肺転移結節の合計数を腫瘍体積で除して計算された。結果は、平均±SDとして表されている(n=4〜8、P<0.05、**P<0.01)。 インビボでのIL−8分泌が、化合物A(BEZ)処理すると増強され、化合物D(JAK2/STAT5の遮断)により低減されることを示す図である。(A)図5A〜Dのように処理されたマウスの腫瘍における、ELISA(左および真ん中)またはサイトカインアレイの定量化(右)により測定されたIL−8レベルを示す棒グラフ。結果は、平均±SDである(n=3〜8)。(B)図5A〜Cのように処理された腫瘍担持マウスの血漿における、ELISAにより測定されたIL−8レベルを示す棒グラフ。結果は、平均±SDである(n=4)。 インビボでのIL−8分泌が、化合物A(BEZ)処理すると増強され、化合物D(JAK2/STAT5の遮断)により低減されることを示す図である。(C)PI3K/mTORおよびJAK2/STAT5阻害によるこの遮断の阻害により誘発された、同定された正のフィードバックループを例示する概略図。 化合物A(BEZ処理)が、ヒト原発性トリプルネガティブ乳房腫瘍におけるJAK2/STAT5およびIL−8分泌を活性化することを示す図である。(A)免疫不全マウスで増殖され30mg/kg BEZまたはビヒクル(VHC)で4日間処理された、原発性トリプルネガティブ乳房腫瘍由来の溶解物の免疫ブロット。(B)30mg/kg BEZまたはビヒクル(VHC)による処理の3日目にマウスから切開された腫瘍、またはマウスの血漿中における、ELISAにより測定されたIL−8レベルを示す棒グラフである。 二重PI3K/mTOR阻害および単一PI3Kまたは単一mTOR阻害が、JAK2/STAT5を活性化することを示す図である。(A)示されているようなBEZ処理による経時的実験からの細胞溶解物の免疫ブロット。(B)示されているようなRAD001またはBKM120処理による経時的実験からの細胞溶解物の免疫ブロット。 組み合わされたPI3K/mTORおよびJAK2/STAT5阻害が、細胞生存能を低下させることを示す図である。(A)300nM化合物A(BEZ)および/または350nM化合物D(BSK)で48時間処理された3つの乳癌細胞株のFACS細胞サイクル分析。データは、平均±SDである(n=4、P<0.05、**P<0.01)。(B)および(C)完全血清条件(10%FCS)での300nM化合物A(BEZ)および/または350nM化合物D(BSK)による処理、または低血清条件(0.5%FCS)での化合物A(BEZ)およびJAK2のドキシサイクリン誘導下方制御による処理の72時間後のWST−1生存アッセイを示す棒グラフ。両方の細胞株におけるJAK2のノックダウンを示す細胞溶解物の免疫ブロット((C)、右のパネル)。 IL−8受容体CXCR1が乳癌細胞で発現され、IL−8がJAK2/STAT5を活性化することを示す図である。(A)細胞におけるCXCR1表面受容体の存在を確認する、MDA468(上のパネル)およびMDA231 LM2(下のパネル)における2つのIL−8受容体CXCR1およびCXCR2の発現レベルのFACS分析を示す棒グラフ。データは、平均±SDである(n=3、P<0.05、**P<0.01)。(B)組換えサイトカイン(IL−8、IL−6、G−CSF 10ng/ml、EPO 20単位/ml)による刺激30分後の溶解された細胞の免疫ブロット。 二重PI3K/mTORおよびJAK/STAT5阻害が、原発性腫瘍増殖を低減させ、マウスの体重に対する有害な影響を与えないことを示す図である。(A)MDA 468腫瘍担持マウスの体重が週1回モニターされ、処理/組合せでの有意な変化は観察されなかった(左のパネル)。処理前の切開された腫瘍の重量(右のパネル)。データは、それぞれn=6〜8の平均±SEMである。(B)増殖に関する尺度として、有糸分裂像がH&E染色腫瘍スライスで評価され、有糸分裂指数として示されている。データは、それぞれn=6〜8腫瘍/処理群の平均±SEMである。 二重PI3K/mTORおよびJAK/STAT5阻害が、原発性腫瘍増殖を低減させ、マウスの体重に対する有害な影響を与えないことを示す図である。(C)pSTAT5、pAKTおよびpS6に対するIHC染色が処理された腫瘍で行われ、代表的な写真が示されている。 二重PI3K/mTORおよびJAK/STAT5阻害が、原発性腫瘍増殖を低減させ、マウスの体重に対する有害な影響を与えないことを示す図である。(D)MDA 231 LM2モデルにおける体重および腫瘍の重量((A)を参照のこと)。データは、それぞれn=7〜8の平均±SDである。(E)および(F)処理終了時点の処理された4T−1腫瘍の有糸分裂指数、(B)を参照のこと。データは、それぞれn=5〜7腫瘍/処理群の平均±SDである。 二重PI3K/mTORおよびJAK/STAT5阻害が、原発性腫瘍増殖を低減させ、マウスの体重に対する有害な影響を与えないことを示す図である。(E)および(F)処理終了時点の処理された4T−1腫瘍の有糸分裂指数、(B)を参照のこと。データは、それぞれn=5〜7腫瘍/処理群の平均±SDである。 二重PI3K/mTORおよびJAK/STAT5阻害が、原発性腫瘍増殖を低減させ、マウスの体重に対する有害な影響を与えないことを示す図である。(G)pSTAT5、pAKTおよびpS6に対するIHC染色が処理された腫瘍で行われ、代表的な写真が示されている。 IL−8およびJAK2シグナル伝達が、転移細胞でより高いことを示す図である。(A)親乳癌株(168FARNおよびMDA 231)対これらの転移亜株(4T−1およびMDA 231 LM2)由来の細胞溶解物の免疫ブロットおよびELISA測定。(B)MDA231およびMDA231 LM2細胞におけるIL−8上清ELISAおよびIL−8 RQ−PCRを示すグラフ。示された結果は、平均±SDである(n=3、P<0.05)。(D)FACSにより測定された、処理された腫瘍におけるIL−8受容体CXCR1のエンドポイント発現レベルを示す棒グラフ、MFI=平均蛍光強度。(E)管腔細胞株(グレー)およびトリプルネガティブ細胞株(黒)の浸潤能に対してブロットされた基礎IL−8分泌を示すグラフ。 IL−8およびJAK2シグナル伝達が、転移細胞でより高いことを示す図である。(C)MDA 231およびMDA 231 LM2細胞でのCXCR1およびCXCR2発現のFACS分析の写真。示された結果は、3つの独立した実験の代表的なグラフである。 化合物A(BEZ)媒介JAK2およびIL−8活性化が、阻害剤に対する感受性と相関することを示す図である。(E)BEZ非感受性乳癌株(Brachmannら、2009)は、感受性株より高いBEZ誘導JAK2リン酸化およびIL−8分泌を示す。BEZ処理した時のpJAK2(左)およびIL−8分泌(右)のレベル、およびBEZに対する感受性に基づきブロットされた、表1に示された乳癌株を示すグラフ。 細胞生存能を示す図である。0.5%血清下で増殖され300nM BEZおよび/または350nM BSKで72時間処理された、2つのBEZ非感受性株(左のパネル)および2つのBEZ感受性株(右のパネル)のWST−1アッセイにより測定された細胞生存能の平均パーセンテージを示す棒グラフ。データは、平均±SEMである(n=4、p<0.05)。 共標的PI3K/mTORおよびJAK2/STAT5が、原発性腫瘍増殖、腫瘍播種および転移を低減させることを示す図である。(A)実験セットアップの図。(B)VHC、BEZ、BSKおよびBEZ/BSK処理動物からの肺の代表的なIHC写真。左のパネル:記載されているように処理されたMDA231 LM2担持動物からのH&E(左)およびビメンチン(右)染色肺。スケールバー250μm。右のパネル:記載されているように処理された4T−1担持動物からのH&E染色肺。矢印は転移を示し、右の画像は単一転移巣の拡大図である。スケールバー200μm。 (A)記載されているように処理されたマウスの1切片当たりのビメンチン陽性肺面積のパーセンテージを示す棒グラフ。結果は、平均±SEMとして表されている(n=8)。(B)BSKは、腫瘍細胞自律的に転移を低減させる。左のパネル:実験セットアップの図。MDA231 LM2 shJAK2またはMDA231 LM2 shNT腫瘍を担持するマウスが、記載されているようにBSKで処理された。右のパネル:目に見える肺転移結節の合計数を腫瘍体積で除して計算された転移指数を示す棒グラフ。結果は、平均±SEMとして表されている(n=3〜4、p<0.05)。 (A)マトリゲルコートボイデンチャンバーに播種され、300nM BEZ、350nM BSKおよび/またはCXCR1ブロッキング抗体で処理された、MDA231 LM2細胞の相対浸潤を示す棒グラフである。浸潤は、48時間後に評価された。データは、細胞数に対して正規化された相対浸潤値を表し、平均±SEMである(n=4、p<0.05)。(B)記載されているように処理されたマウスのMDA231 LM2腫瘍におけるCXCR1細胞のパーセンテージを示す棒グラフ。データは、平均±SEMである(n=4〜6、p<0.05)。(C)記載されているように阻害剤で処理されたCXCR1染色(上のパネル)、アネキシンVおよびPI染色(下のパネル)MDA231 LM2細胞で行われたFACS分析の代表的なドットプロット。処理の48時間後のアポトーシス細胞および死細胞の平均パーセンテージを示す棒グラフ。データは、平均±SEMである(n=4、p<0.05)。(D)上のパネル:実験セットアップの図である。MDA231 LM2腫瘍を担持するマウスが、記載されているように処理された。腫瘍は、切開され、分離され、異なる希釈で再移植された。再移植の前の細胞生存能がPI−FACS染色により分析され、全ての処理群において同等であることが見出された(データ不図示)。下のパネル:記載されているような処理後のTIC頻度を示す棒グラフ。データは、3つの独立した実験からの平均推定値であり、合計n=7マウス、p<0.05、***p<0.0001。 BEZ235処理が、原発性ヒトTNBC異種移植片におけるJAK2/STAT5およびIL−8分泌を活性化することを示す図である。(A)30mg/kg BEZまたはVHCで4日間処理された原発性TNBC異種移植片由来の溶解物の免疫ブロット。ELISAデータは、平均±SDである(n=3)。(B)30mg/kg BEZまたはVHCによる処理の3日目にマウスから切開された腫瘍、またはマウスの血漿中における、ELISAにより測定されたIL−8レベルを示す棒グラフ。データは、平均±SEMである(n=3〜4、p<0.05)。 共標的PI3K/mTORおよびJAK2が、転移性乳癌の2つのモデルにおける無イベント生存率および全生存率を向上させることを示す図である。(A)上のパネル:実験セットアップの図。下のパネル:記載されているようにBEZおよび/またはBSKで処理されたMDA231 LM2(左)および4T−1(右)腫瘍担持マウスのカプラン−マイヤー生存曲線を示す図。イベントは、腫瘍が1cmに達した時にスコア化された(n=4、p<0.05、**p<0.01)。(B)上のパネル:実験セットアップの図。下のパネル:記載されているようにBEZおよび/またはBSKで処理されたMDA231 LM2(左)および4T−1(右)腫瘍担持マウスのカプラン−マイヤー生存曲線を示す図。イベントは、マウスが苦痛のいずれかの徴候を示した時にスコア化された;(n=4、p<0.05、**p<0.01)。 CXCR1の阻害がp−FAKをブロックし、JAK2/STAT5活性化の第1相がEGFR非依存的であることを示す図である。(A)非標的siRNA(siNT)およびCXCR1を標的にする2つの異なるsiRNAでトランスフェクトされたMDA468およびMDA231 LM2細胞におけるCXCR1 mRNAのレベルを示す棒グラフ。CXCR1レベルはRT−qPCRにより測定され、平均±SEMとして示されている(n=2)。(B)非標的siRNA(siNT)またはCXCR1を標的にするsiRNA(siCXCR)で一過性にトランスフェクトされた細胞、およびDMSOまたは300nM BEZで処理された細胞由来の溶解物の免疫ブロット。ELISAデータは、平均±SDである(n=3)。(C)300nM BEZ235および/または100nM AEE788で8時間処理された細胞由来の溶解物の免疫ブロット。 JAK2/STAT5およびIL−8/CXCR1シグナル伝達が、浸潤および転移を促進することを示す図である。(A)300nM BEZ235および/または350nM BSKで48時間処理されたMDA231 LM2細胞を用いて行われた浸潤アッセイからの代表的な写真。スケールバー50μm。(B)記載されているように処理されたマウス由来の腫瘍の生着率(take rate)を示す表。腫瘍開始細胞(TIC)頻度および信頼区間の推定値は、Rおよび「statmod」パッケージ(HuおよびSmyth、2009)を用いて計算された。
化合物および製剤 NVP−BEZ235(AN4)(PI3K/mTOR阻害剤)、NVP−BSK805(JAK2阻害剤)、NVP−BKM−120(汎(pan)−PI3K阻害剤)およびRAD001(mTORC1阻害剤)は、全てNovartis(バーゼル、スイス)製であった。化合物を10mmol/L DMSOストック溶液として調製し、-20℃で光から保護して貯蔵した。マウスの投与のため、NVP−BSK805をNMP/PEG300/ソルトールHS15(5%/80%/15%)中で新しく調製し、NVP−BEZ235をNMP/PEG300(10%/90%)中で新しく調製し、両方を強制経口投与により10mL/kgで適用した。
細胞株、細胞培養およびインビトロ実験 親MDA−MB−231の肺転移亜株、MDA 231 LM2(または4175)は、Joan Massague(メモリアルスローン−ケタリング癌センター、ニューヨーク)から入手した。MCF10A細胞は、5%ウマ血清(Hyclone)、20ng/mlの上皮増殖因子(EGF)(Peprotech)、0.5μg/mlのヒドロコルチゾン(Sigma)、100ng/mlのコレラ毒素(Sigma)、10μg/mlのインスリン(Sigma)、100IU/mlのペニシリンおよび100μg/mlのストレプトマイシンを補充したDMEM/F12(Invitrogen)中で培養した。SUM159PT細胞は、Charlotte Kuperwasser(タフツ大学、ボストン、MA)による好意により提供され、ハムF12、5%FCS、1μg/mlインスリン、0.5μg/mlヒドロコルチゾン中で増殖させた。Balb/c株4T−1、4T−1−GFPおよび168FARNは、Nancy Hynes(FMI、バーゼル、スイス)により提供された。他の細胞株は全てATCCからであり、培養条件はATCCプロトコルに従った。阻害剤での処理のため、細胞を血清なしで一晩同期化し、次いで示されているように刺激し、処理した。ドキシサイクリン誘導性shRNAを用いた実験のため、500ng/mlのドキシサイクリン(Sigma)を培地に添加し、実験を48時間後に開始して標的の効率的なノックダウンを確保した。インビトロでの細胞生存能は、細胞増殖試薬WST−1(Roche)を用いて測定した。手短には、細胞(2.5〜4×10個)を200μl通常増殖培地において四連で96ウェルプレートに播種し、培養培地にDMSOまたは阻害剤を添加する前に24時間付着させた。72時間後、20μl/ウェルのホルマザン色素を添加した。インキュベーション後(4時間、37℃、5%CO雰囲気)、490nMの吸光度をELISAプレートリーダーを用いて記録した。ヒトサイトカインインターロイキン−6、インターロイキン−8、GCSFおよびエリスロポエチン(EPO)をPeprotechから入手し、EPOについては10mg/ml/5000単位/mlでPBSに溶解した。サイトカイン刺激は、細胞を低血清条件下で維持しながら10ng/ml(EPOについては10単位/ml)で30分間行った。抗体ブロッキング実験は、細胞の溶解の前に抗CXCR1(R&D、MAB330、1μg/ml)、抗CXCR2(R&D、MAB331、2.5μg/ml)またはマウスIgG抗体(R&D、1μg/ml)を用いて45分間行った。
免疫ブロッティングおよび免疫沈降 ウエスタンブロッティングおよびELISA用の細胞は、RIPA緩衝液で溶解させた。異種移植片溶解物は、RIPA緩衝液(50mM Tris−HCl pH8、150mM NaCl、1%NP−40、0.5%デオキシコール酸ナトリウム、0.1%SDS)に低温均質化腫瘍粉末を溶解して調製した。RIPAは、1×プロテアーゼ阻害剤カクテル(Complete Mini、Roche)、0.2mmol/Lバナジウム酸ナトリウム、20mMフッ化ナトリウムおよび1mmol/Lフッ化フェニルメチルスルホニルを補充した。IRS−1免疫沈降のため、500〜1000μgのタンパク質を含有する細胞溶解物を、1μgの抗体および20〜50μlのプロテインAセファロースビーズ(Zymed Laboratories,Inc.、サウスサンフランシスコ、CA)と4℃で一晩インキュベートした。免疫沈降物または全細胞溶解物(30〜80μg)をSDS-PAGEに供し、PVDF膜(Immobilon−P、Millipore)に移し、PBS 0.1% Tween 20中5%乳により室温で1時間ブロックした。膜は次いで、示されているように抗体と一晩インキュベートし、室温で1時間、1:5〜10,000でHRP結合抗マウスまたは抗ウサギ2次抗体に曝露させた。タンパク質は、ECLキット(Amersham)または増強化学発光検出システム(Pierce Biotechnology)を用いて可視化した。示された試験のそれぞれにおいて、示されている結果は、少なくとも3つの独立した実験の典型である。以下の抗体を使用した:抗JAK2(Cell Signaling)、抗JAK1(Cell Signaling)、抗pSTAT5(Tyr694、Cell Signaling)、抗STAT5(STAT5A&B、Cell Signaling)、抗STAT3(Cell Signaling)、抗pSTAT3(Tyr705、Cell Signaling)、抗AKT 汎(pan)(Cell Signaling)、抗pAKT(Thr308およびSer473、Cell Signaling)、抗ERK2(Santa Cruz)、抗S6(Cell Signaling)、抗pS6(Ser235/236、Cell Signaling)、抗PARP(Cell Signaling)、抗MCL1(Cell Signaling)、抗BIM(EL、LおよびSアイソフォーム、Cell Signaling)、抗pIGF1R/pInsR(Invitrogen)、抗IGF1Rbeta(Cell Signaling)、抗InsRbeta(Santa Cruz)、抗IRS1(Upstate)、抗pIRS1(Tyr612、Calbiochem)。
ELISAおよびサイトカインアレイ pJAK2レベルを評価するために、試験した全てのpJAK2抗体の交差反応性のため ELISAアッセイ(Tyr1007/1008、Invitrogen)を適用した。RIPA溶解物、細胞培養上清およびマウス尾静脈血血漿中のインターロイキン−8レベルを、同様にELISA(Biolegend)により測定した。細胞培養上清およびマウス腫瘍溶解物でのサイトカインアレイを、製造者のプロトコル(R&D systems、ヒトおよびマウスサイトカインアレイパネルA)に従って行った。
RNA調製およびRQ−PCR 全RNAは、製造者のプロトコル(Qiagen)に従ってRNeasy Mini KitおよびDNase除去カラムを用いて抽出した。1μgの全RNAを、Invitrogen製のThermo Script RT−PCR Systemを用いて転写した。PCRおよび蛍光検出は、1×TaqMan(登録商標)Universal PCR Master Mix(Applied Biosystems)および25ng cDNAを含有する20μlの反応体積で、製造者のプロトコルに従ってStepOnePlus Sequence Detection System(Applied Biosystems、ロートクロイツ、スイス)を用いて行った。IL−8、GAPDHおよびRPLP0 mRNAの定量化には、1×Taqman(登録商標)Gene Expression Assays Hs00174103_m1、Hs02758991_g1およびHs99999902_m1(Applied Biosystems)を使用した。全ての測定は二連で行い、Ct値の算術平均を計算に使用した:標的遺伝子平均Ct値は、それぞれのハウスキーピング遺伝子(GAPDHおよびRPS0)、平均Ct値(内部標準遺伝子、Ct)に対して正規化し、次いで実験対照に対して正規化した。得られた値を2の累乗(-ΔΔCt)して、相対的定量化の実験対照(2(-ΔΔCt)法(LivakおよびSchmittgen、2001)と比較した制御のn倍変化として表した。
遺伝子サイレンシング手順 siRNAは、Sigma−AldrichからRP−HPLC精製二本鎖として注文し、配列は以下であった:siJAK1_1 5’−GCACAGAAGACGGAGGAAAUGGUAU−3’(配列番号1)、siJAK1_2 5’−GCCUUAAGGAAUAUCUUCCAAAGAA−3’(配列番号2)、si−IRS1:5’−AACAAGACAGCUGGUACCAGG−3’(配列番号3)、siNT(非標的対照)5’−AUUCUAUCACUAGCGUGACUU−3’(配列番号4)。JAK2として、Validated Stealth RNAi(商標)siRNAをSigma−Aldrichから注文した(VHS41246)。siRNAのトランスフェクションは、製造者のガイドライン(Dharma Fect 1、Dharmacon)に従って行った。レンチウイルス産生のため、293T細胞を10cm培養皿当たり細胞2.5×10個の密度で播種した。細胞を、pLKO1−tet−on−JAK2 shRNA(#629、標的配列:TGGATAGTTACAACTCGGCTT(配列番号5))またはpLK01−tet−on−非サイレンシングshRNA(Wiederschainら、2009)のいずれか15μgおよび10μgの第3世代パッケージングプラスミドミックスで、PEI法(PEI:DNA比=4:1)によりコトランスフェクトした。培養培地を16時間後に新鮮培地と交換した。上清を、トランスフェクション48および72時間後に回収した。ウイルス価を判定するため、10MDA−MB−468およびMDA−MB−231−LM2細胞を6ウェルプレートに播種し、1ミリリットル当たり8μのポリブレン(Sigma−Aldrich)の存在下、ベクターのさまざまな希釈物を形質導入した。培養培地を、1.5μg/mlの濃度でピューロマイシン(Sigma−Aldrich)を含有する新鮮培地と72時間後に交換した。感染多重度20でウイルスベクターを形質導入したMDA−MD−468およびMDA−MB−231−LM2細胞を実験に使用した。
フローサイトメトリ 細胞をトリプシン−EDTAを用いて剥離し、通常の増殖培地に再懸濁し、カウントした。腫瘍は機械的および酵素的に解離した(コラゲナーゼIIおよびHyQtase消化を用いて)。アネキシンV染色のため、細胞0.5×10個を冷PBS/5%BSAで洗浄し、70μl結合緩衝液に再懸濁し、製造者のプロトコル(Becton Dickinson)に従ってアネキシンVに対するフィコエリトリン(PE)標識抗体で標識した。細胞サイクル分析のため、細胞1×10個をPBS中で洗浄し、4℃で60分間、70%エタノールに固定し、2回洗浄し、PI緩衝液(50μg/mlヨウ化プロピジウム、10μg/ml RNAse A、0.1%クエン酸ナトリウムおよび0.1%トリトンX−100を補充したPBS)に再懸濁した。CXCR1およびCXCR2細胞表面発現の分析のため、細胞を、2.5μg/細胞10個抗CXCR1(R&D、MAB330)、抗CXCR2(R&D、MAB331)または1μg/10細胞マウスIgG抗体(R&D)と4℃で20分間インキュベートし、次いで洗浄および分析前に暗所で、抗マウス2次IgG−AlexaFluor647(Biolegend)と4℃で15分間インキュベートした。1試料当たり少なくとも10細胞を、FACScanフローサイトメーター(Becton Dickinson、バーゼル、スイス)で分析した。
動物実験 SCID/ベージュ、SCID/NODおよびBalb/cマウス(Jackson Labs)は、特定の病原体フリー条件下で維持し、実験動物利用に関する施設および国の規制基準に従った、FMIのInstitutional Animal Care and Use Committeesにより承認されたプロトコルを順守して使用した。乳癌細胞株の同所生着のため、MDA−MB−468細胞1×10個、MDA−MB−231−LM2細胞1×10個および4T−1または4T−1−GFP細胞0.5×10個を、基底膜マトリックスフェノールレッドフリー(BD Biosciences)およびPBS 1:1の100μl混合物に懸濁し、乳腺4または乳腺2と3の間に注入した。原発性患者乳房腫瘍を1mm×1mm片にカットし、乳腺4に移植した。腫瘍担持マウスを、処理の開始前に腫瘍体積に基づき無作為化し、処理は、平均腫瘍体積が少なくとも100mmであった場合に開始した。BEZ−235およびBKS−805を連続6日間毎日経口投与し(上記の処方を参照のこと)、この後1日休薬した。shRNAの発現は、48時間ごとに新しくする飲料水(5%ショ糖液2g/l)にドキシサイクリンを添加して誘導した。腫瘍を3〜4日ごとにノギスで測定し、腫瘍体積を式0.5×(大きいほうの直径)×(小さいほうの直径)により計算した。エンドポイント腫瘍サイズを、式AB/C<A/C×B/C(C=腫瘍体積VHC、A=腫瘍体積化合物1、B=腫瘍体積化合物2、AB=腫瘍体積組合せ)(Clarke、1997)を用いて相乗作用について分析した。
免疫組織化学 腫瘍を、10%NBF(中性緩衝ホルマリン)に4℃で24時間固定し、70%EtOHで洗浄し、パラフィンに包埋し、H&E、抗Ki67(Thermo Scientific)、抗pSTAT5(Tyr694、cell signaling)、抗pAKT(Ser473、cell signaling)、抗pS6(Ser235/236、cell signaling)、抗PARP(cell signaling)および抗マウスF4/80(AbD Serotec)抗体で染色した。マウス肺をブアン固定液に固定し、目に見える転移肺結節を双眼によりカウントした。
統計解析 報告されている各値は、少なくとも3つの独立した実験の平均±s.d.またはs.e.を表している。データを正規分布について試験し、スチューデントt検定またはノンパラメトリックなマンホイットニーU検定は、プログラムJMP4(SAS、ケーリー、NC、USA)を用いて適用した。P値<0.05を統計的に有意と見なした。
本発明者らは、化合物A、二重PI3KおよびmTOR阻害剤の単一用量を適用し、処理の2、4、8および20時間後の標的阻害および潜在的シグナル伝達経路クロストークを分析した。本発明者らは、化合物Aが、PTEN不全MDA 468およびRAS変異MDA 231 LM2乳癌株、ならびにマウス乳癌株4T−1においてpAKTを減少させ、処理20時間後までpS6レベルを完全にブロックすることを見出した。本発明者らはさらに、インビボモデルを使用してこれらの結果を確認した。驚くべきことに、本発明者らは、インビトロでのBEZ処理の4時間〜8時間後およびインビボでの処理の8時間後に、pJAK2およびpSTAT5のかなりの上方制御を検出した。しかし、pSTAT3のレベルは、BEZ処理により概して影響を受けないままであった。二重阻害剤化合物Aのどちらの群が、JAK2に対する観察されたクロストークに関与し得るのかを解明するために、本発明者らはPI3K特異的阻害剤(BKM120)およびmTOR阻害剤(RAD001)を使用した。本発明者らは、PI3KおよびmTORの単一阻害が両方ともpJAK2およびpSTAT5を、ただし異なる時点で上方制御することを見出した。RAD001はJAK2を容易に活性化する(処理の4時間目に始まる)が、本発明者らは、BKM120処理では該化合物の添加後8時間で始まるより遅い応答を観察した。JAK2およびJAK1は両方とも、細胞型および関連する受容体に応じてSTAT5およびSTAT3にシグナル伝達できるという事実を踏まえ(Desrivieresら、2006;Bezbradicaら、2009)、本発明者らは両方のJAKのsiRNA枯渇を行い、JAK2のみがSTAT5の活性化に関与し、一方JAK1は、使用した実験モデルではSTAT3の上流にあることを見出した。次に、本発明者らは、JAK2活性化がBEZ処理によるpSTAT5の上方制御に必要かどうか、および高度に特異的なJAK2阻害剤、化合物(COUMPOUND)D(Radimerskiら、2010)は、このクロストークをブロックするのに十分かどうかを調べた。結果は、JAK2のsiRNA枯渇およびJAK2の活性の阻害が両方とも、BEZによるpSTAT5の上方制御を妨害する(counteract)ことを示している。故に、本発明者らは、二重PI3K/mTOR阻害に対する耐性をもたらす、JAK2/STAT5に惹起された正のフィードバックループを見出した。機構的に、PI3K/mTOR阻害は、幾つかの細胞株および原発性トリプルネガティブ乳癌において、JAK2/STAT5のIRS1依存的活性化およびIL−8の分泌を増加させた。JAK2の遺伝的または薬理学的阻害は、このフィードバックループを無効にした。本発明者らは、PI3K/mTORおよびJAK2阻害の組合せが、インビトロでの癌細胞数、ならびにインビボでの腫瘍増殖、循環腫瘍細胞の数および転移を相乗的に低減することをさらに示した。本発明者らの研究は、故に、増殖因子シグナル伝達、JAK/STAT活性化とサイトカイン分泌の間の新たな関連を明らかにした。本発明者らの結果は、増殖性疾患におけるPI3K/mTORおよびJAK2/STAT5経路の複合標的化に根拠を提供するものである。
表1 BEZは、乳癌細胞株パネルにおけるJAK2/STAT5のリン酸化およびIL−8分泌を増加させた。示されているのは、トリプルネガティブ(太字)および管腔(グレー)乳癌細胞株を300nM BEZでそれぞれ8時間または20時間処理した時の、JAK2/STAT5リン酸化およびIL−8分泌のレベルである。pSTAT5/STAT5レベルは免疫ブロッティングにより評価され、濃度測定により定量化された。pJAK2/JAK2およびIL−8レベルは、ELISAにより測定された。DMSO細胞と比べたBEZ処理からの値が示されている。データは、平均±SDとして示されている(n=3)。

Claims (14)

  1. (a)ホスホイノシチド3−キナーゼ(PI3K)阻害剤化合物および(b)ヤヌスキナーゼ2(JAK2)−シグナル伝達兼転写活性化因子5(STAT5)経路を調節する化合物、および場合により少なくとも1つの薬学的に許容される担体を含み、活性成分が、各々の場合において遊離形態、または薬学的に許容されるその塩もしくは任意のその水和物の形態で存在する、同時、個別または逐次使用のための、医薬として使用するための組合せ。
  2. ホスホイノシチド3−キナーゼ阻害剤化合物が、化合物A、化合物B、化合物C、ラパマイシン、テムシロリムス、エベロリムス、テムシロリムス、リダフォロリムス、MK−8669、シロリムス、ゾタロリムスおよびバイオリムスからなる群から選択される、請求項1に記載の組合せ。
  3. JAK2−STAT5経路を調節する化合物が、レスタウルチニブ、ルクソリチニブ、SB1518、CYT387、LY3009104、INC424、LY2784544、BMS−911543、NS−018、TG101348、化合物(COUMPOUND)D、化合物E、化合物F、化合物G、化合物Hおよび化合物Iからなる群から選択される、請求項1または2に記載の組合せ。
  4. ホスホイノシチド3−キナーゼ阻害剤化合物および/またはJAK2−STAT5経路を調節する化合物がsiRNAである、請求項1から3のいずれかに記載の組合せ。
  5. JAK2−STAT5経路を調節する化合物が、インターロイキン8(IL8)の分泌を阻害する、請求項1から4のいずれかに記載の組合せ。
  6. ホスホイノシチド3−キナーゼ阻害剤が化合物Aである、請求項1から5のいずれかに記載の組合せ。
  7. ホスホイノシチド3−キナーゼ阻害剤が化合物Cである、請求項1から6のいずれかに記載の組合せ。
  8. ホスホイノシチド3−キナーゼ阻害剤がエベロリムスである、請求項1から7のいずれかに記載の組合せ。
  9. 増殖性疾患の治療において使用するための、請求項1から8のいずれかに記載の組合せ。
  10. 固形腫瘍の治療において使用するための、請求項1から9のいずれかに記載の組合せ。
  11. 乳癌の治療において使用するための、請求項1から10のいずれかに記載の組合せ。
  12. 転移性乳癌の治療において使用するための、請求項1から11のいずれかに記載の組合せ。
  13. トリプルネガティブ乳癌の治療において使用するための、請求項1から12のいずれかに記載の組合せ。
  14. 前記製剤が、(a)ホスホイノシチド−3キナーゼ阻害剤(PI3K)の1つまたは複数の単位剤形および(b)JAK2−STAT5経路を調節する化合物の1つまたは複数の単位剤形を含む、請求項1から13のいずれかに記載の組合せ。
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