JP2014526905A - 分子検出アッセイ - Google Patents

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Abstract

【課題】本発明は、改良型の分子検出アッセイを提供することを課題とする。
【解決手段】本発明は、細胞破壊および核酸処理を可能にする条件下で直接的にバイサルファイト薬剤で生体サンプルを処理することと；処理サンプルからバイサルファイト薬剤を除去することと；処理サンプル中でターゲット核酸を検出することとを含む、分子検出アッセイに関するものである。
【選択図】なし

Description

本発明は、分子検出アッセイのためのサンプルのプロセシング方法に関するものであり、特に、疾患を検出する核酸検出アッセイのための臨床サンプルのプロセシング方法に関するものである。
ヒトの分子試験は、医学的診断および患者の管理にとってますます重要となっている。動物の分子試験は、獣医学的用途において重要性が増している。核酸試験は、現代の法医学、出入国管理、実父確定アサインメントおよび他のヒト識別用途にとって不可欠なツールである。発生遺伝学は、癌研究、バイオマーカの識別、個体素因および潜在的薬剤ターゲットにとってますます重要となっている。ＲＮＡジェノタイピングは、研究、応用試験および診断学の全ての領域において、個体間または細胞間の遺伝的差異を分析するために使用される用途の範囲を包含している。生体サンプルを扱う場合、現在の分子試験は、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）等の技術によって核酸検出を実行する前に、サンプルの特定の前処理を必要とする。サンプル前処理は現在、不可欠であると考えられており、多くの商用キットおよび系が開発されて、市場において用いられている。残念なことに、前処理は、分子試験においてコストを加え、そしてさらなるプロセシング時間および装置を必要とする。
Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｓｉｇｎａｔｕｒｅｓ Ｐｔｙ Ｌｔｄ（Ｓｙｄｎｅｙ、豪州）は、国際公開第２００６／０５８３９３号パンフレットおよび米国特許第７８３３９４２号明細書において開示されるような微生物の検出方法を開発した。本方法は、微生物の微生物核酸を薬剤で処理して、微生物を検出するために用いられ得る特有の核酸配列を有する微生物核酸に由来する核酸の簡略形を形成するものである。
本発明者は、現在分子検出アッセイにおいて必要とされるような、サンプル前処理を必要としない改良型の分子検出アッセイを開発した。
本発明は、サンプル浄化工程、すなわち細胞を溶解したり核酸を精製したりする生体サンプルのプロセシングを必要とせずとも、生体サンプルに実行される分子検出アッセイに関するものである。
第１態様において、本発明は、分子検出アッセイであって：
（ａ）細胞破壊および核酸処理を可能にする条件下で直接的にバイサルファイト薬剤で生体サンプルを処理することと；
（ｂ）処理サンプルからバイサルファイト薬剤を除去することと；
（ｃ）処理サンプル中でターゲット核酸を検出することと
を含む分子検出アッセイを提供する。
生体サンプルは、工程（ａ）に先立ち、細胞の破壊または化学／物理的処理を必要とする。
生体サンプルは、糞便、鼻水、血液、血漿、血清、頬細胞、膿、創傷、濃縮濾液、脳脊髄液、精液、液状化検体細胞診（ＬＢＣ）組織、ＦＦＰＥ、レーザ捕獲細胞、培養細胞、ペレット化細胞、細菌培養物、細菌コロニー、ウイルス懸濁液、吸引物、気管支洗浄液、痰サンプル、環境サンプル、環境濃縮物、食品、原料、水サンプル、または水濃縮物等から選択されてよい。
検出される核酸は、ＤＮＡ、ＲＮＡ、またはＤＮＡおよびＲＮＡ双方の組合せであってよい。
アッセイは、動物における感染症、遺伝的疾患または遺伝的形質を検出するのに適している。好ましくは、動物はヒトである。
感染症は、細菌、ウイルス、ウイロイド、酵母、菌類、プリオン、寄生虫またはアメーバを含む微生物によって引き起こされてよい。
遺伝的疾患は、癌、突然変異、コピー数変異、遺伝性疾患、環境誘導疾患、発癌因子への暴露によって引き起こされる疾患、ゲノム中のヌクレオチドリピート長の拡大または縮小によって特徴付けられる疾患であってよい。
遺伝的形質は、遺伝的変化および後成的変化が疾患状態の進行に寄与する癌または任意の他の疾患に感応性であってよい。
好ましくは、バイサルファイト薬剤は、ナトリウムバイサルファイトまたはナトリウムメタバイサルファイトである。バイサルファイト薬剤は好ましくは、ｐＨ範囲が約４．５から約５．５である約２．５Ｍから約３．５Ｍの濃度で用いられる。より好ましくは、バイサルファイト薬剤は、約５．０のｐＨにて約３Ｍの濃度で用いられる。
好ましくは、工程（ａ）は、約１分間から３０分間、約７５℃から９５℃の間で加熱することを伴う。より好ましくは、サンプルは、約１０から２０分間、約８０℃から９５℃の間の温度で加熱される。温度および加熱期間が、処理されるサンプルおよび検出されるべき核酸の細胞源に応じて変動してよいことはいうまでもない。
バイサルファイトは、任意の適切な手段によって処理サンプルから除去されてよい。例は、カラムベースの精製を含み、またはビーズベースの精製が最適であるが、場合によっては単純な沈殿工程で十分なことがある。
バイサルファイトの除去後、サンプルは好ましくは、ｐＨが少なくとも１０、より好ましくはｐＨが約１１．５から約１２．５までである溶出バッファ中に再懸濁される。少なくとも約１２のｐＨが、ほとんどのサンプルに適していることが発見された。
バイサルファイト薬剤は、処理核酸においてシトシンをウラシルに変更する。二本鎖ＤＮＡにおいて、バイサルファイト薬剤は、相補的二本鎖ゲノムＤＮＡの各鎖において、シトシンをウラシルに変更して、２つの誘導体を形成するが、非相補的な核酸分子である。
１つの好ましい形態において、誘導微生物核酸は実質的に、塩基アデニン（Ａ）、グアニン（Ｇ）、チミン（Ｔ）およびウラシル（Ｕ）を含有し、対応する未処理核酸と実質的に同じ総数の塩基を有する。
処理核酸が増幅されれば、増幅核酸は実質的に塩基アデニン（Ａ）、グアニン（Ｇ）およびチミン（Ｔ）を含有する。増幅は、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）、等温増幅またはシグナル増幅等の任意の適切な手段によって実行されてよい。
好ましい形態において、アッセイはさらに、核酸プライマーまたはプローブを処理サンプルに与えることを含む。
好ましくは、処理サンプルは、増幅反応を受けて、微生物に特異的なターゲット核酸分子または遺伝的指標を形成する。
ターゲット核酸分子は好ましくは、増幅によって検出される。適切な増幅検出の例は、ＰＣＲ、ｑＰＣＲ、逆転写酵素ＰＣＲ、デジタルＰＣＲ、等温増幅またはシグナル増幅を含む。
処理核酸は、Ｒｏｃｈｅ ４５４、ＡＢＩ ＳＯＬｉＤもしくはＩｏｎ ｔｏｒｒｅｎｔ ｓｙｓｔｅｍｓ等の配列決定法、Ｉｌｌｕｍｉｎａ Ｈｉ Ｓｅｑ ＳＢＳ技術、Ｈｅｌｉｃｏｓ Ｈｅｌｉｓｃｏｐｅ、またはＰａｃｉｆｉｃ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓによって用いられるＳＭＲＴ技術、あるいは任意の他の等価技術によって検出されてもよい。
好ましい形態において、ターゲット核酸分子は：
微生物特異的核酸分子のターゲット領域に結合可能なディテクタリガンドを提供し、かつディテクタリガンドがターゲット領域に結合するのに十分な時間を与えることと；
ディテクタリガンドのターゲット領域への結合を測定して、微生物特異的核酸分子の存在を検出することと
によって検出される。
別の好ましい形態において、ターゲット核酸分子は、増幅産物を分離し、かつ分離産物を視覚化することによって検出される。好ましくは、増幅産物は、電気泳動によって分離され、かつゲル上で１つまたは複数のバンドを視覚化することによって検出される。
好ましくは、ターゲット核酸分子は、細胞中に天然に存在しない。
第２態様において、本発明は、サンプルの直接的処理のための分子検出アッセイのためのキットを提供し、キットは：
バイサルファイト試薬と；
核酸溶出および反応試薬と；
ターゲット核酸用ＰＣＲプライマーと；
アッセイを実行するための使用説明書と
を含む。
キットはさらに、核酸分離または精製カラム、ＰＣＲマスターミックス、ＰＣＲ用試薬、コントロール核酸プライマー、反応チューブ、試験チューブ、スワブ等を含んでよい。
本明細書を通して、文脈上別異の解釈を要する場合を除き、用語「含む」、または「含み」もしくは「含んでいる」等の変化形は、明示される要素、整数もしくは工程、または要素、整数もしくは工程の群の包含を意味するが、あらゆる他の要素、整数もしくは工程、または要素、整数もしくは工程の群の除外を意味しないことが理解されるであろう。
本明細書中に含まれている文献、行為、材料、装置、物品等に関する任意の議論は、単に本発明の文脈を形成することを目的とするだけである。本発明の開発前に豪州において存在したため、これらの事項の一部または全部が、先行技術ベースのコンポーネントを形成する、または、本発明に関連する分野において共通する一般知識であったという自認として、受け取られるべきではない。
本発明がより明確に理解され得るように、好ましい実施形態が以下の図面および例を参照して記載されるであろう。
本発明を用いたクロストリジウム・ディフィシル検出の結果を示す。Ａ．Ｆａｍチャンネルがクロストリジウム・ディフィシルのｔｃｄＡ／Ｂ遺伝子に特異的である；Ｂ．Ｃｙ５チャンネルが抽出コントロールに特異的である。 同じサンプル由来の３つのウイルスの増幅結果を示す。Ａ．Ｆａｍ＝ノロウイルス（一本鎖ＲＮＡウイルス）；Ｂ．Ｈｅｘ＝アデノウイルス（二本鎖ＤＮＡウイルス）；Ｃ．Ｃｙ５＝ロータウイルス（一本鎖ＲＮＡウイルス） 糞便材料内にヒト細胞を混ぜる影響を示す。Ａは、３Ｍバイサルファイト試薬中にて１５分間、９５℃で加熱され、続いて高いｐＨのバッファ（１２．３）中に再懸濁されて、ヒトβ−グロビン遺伝子について増幅されたヒトＭＲＣ５細胞を示す。Ｂは、３Ｍバイサルファイト試薬中にて１５分間、９５℃で加熱され、続いて高いｐＨのバッファ（１２．３）中に再懸濁されて、ヒトβ−グロビン遺伝子について増幅された、糞便材料内に混ぜられた同細胞を示す。
利点
本発明は、先行技術の方法に勝る多くの利点を有しており、以下を含む。
ａ．サンプルの細胞溶解および核酸変換が、同じチューブ内で同時に起こり、完全な溶解および変換が３０分未満で達成され得、さらに言えば僅か１０から２０分で達成され得る。
ｂ．糞便材料等のサンプルが、感度を損なうことなく直接的にプロセシングされ得る。
ｃ．本発明に基づく試験は、一次患者サンプルに、プロテイナーゼＫ等の酵素による前処理なしに実行され得るという利点を有する。
ｄ．本方法は、現在市場に出ている商用精製キット等の高価な精製法を何ら必要としない。これらの商用キットは、ほんの少し例を挙げれば、血液、糞便、培養細胞、ＦＦＰＥ、細菌、ウイルスおよび寄生虫等のほぼ全てのサンプル型に利用可能である。これらの商用キットは、サンプルを精製するために数千ドルも費やすことがあり、そして２から４時間かかることがある。世界中のほぼ全ての研究所は、現在用いられている分子アッセイにおいて、これらのサンプル精製用キットを、その後の任意の増幅工程の前に用いている。
ｅ．バイサルファイトの除去後、サンプルは続いて、熱脱スルホン化等のさらなる処理を何ら必要としない単純な溶出バッファ中に再懸濁され、こうしてプロセスを単純化する。
ｆ．本方法は、特殊化されたウイルス精製キットを何ら用いる必要なく、同じチューブ内で同じサンプルからＲＮＡウイルスおよびＤＮＡウイルスの双方を同時に検出することができる。ＲＮＡウイルスおよびＤＮＡウイルスの双方は（一方が一本鎖であり、もう一方が二本鎖であろうとも）、本発明によって等しい効率で溶解され、かつ変換される。
ｇ．驚くべきことに、高いｐＨである溶出バッファは、ＲＮＡを分解しない。この発見は、先行技術の教示が、ＲＮＡを高い温度および高いｐＨで処理しないように特に忠告しているので、先行技術において教示されてきたことに反するものである。
ｈ．本方法は、類似の条件を用いて全ての細菌型を溶解し、かつ変換することができるので、単一の患者サンプルが、クロストリジウム・ディフィシル、サルモネラ属、カンピロバクター属および寄生虫等について複数の試験に用いられ得るので、各細菌またはターゲット微生物のための抽出法を別々にするという問題を解消する。
ｉ．本方法は、従来の溶解技術に対して耐性のある丈夫な外殻を形成することができる、寄生虫等の溶解させるのが困難なサンプルに適用可能である。従って、結核菌（ＴＢ）（従来の溶解技術に対して非常に耐性がある）等のターゲット生物は、感度の良い核酸ベースの診断試験が必要とされるので、検出するのに理想的であろう。
ｊ．本方法は、Ｃ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）を、直接的に血清から効率良く溶解し、かつ変換することができ、僅か１０コピーのウイルスを用いて、重要なＲＮＡウイルスを非常に低い濃度で検出するという有用性を証明している。
ｋ．本方法はまた、現在実行されているような、長時間かかるサンプルプロセシング時間を短くし、かつサンプルが精製されてからバイサルファイト変換されて、再び精製されなければならないという問題を解消する。
ｌ．本方法は、患者糞便材料における、結腸直腸癌の高感度検出に適している。このようなサンプルは非侵襲性であり、検出の一次手段として、内視鏡検査への依存を減らすであろう。また、「サンプルから結果まで」が、複雑なサンプルプロセシング手順なしに３時間未満になると予想される。診断のために血清サンプルよりも糞便材料を使用することは、多くの利点を有し、この最上位にあるのは、感度が常に大きな問題となる血清サンプルとは異なり、多数のヒト細胞がサンプル中に存在しやすいことである。
サンプル
本発明は、糞便、鼻水、血液、血漿、血清、頬細胞、膿、創傷、濃縮濾液、脳脊髄液、精液、液状化検体細胞診（ＬＢＣ）組織、ＦＦＰＥ、レーザ捕獲細胞、培養細胞、ペレット化細胞、細菌培養物、細菌コロニー、ウイルス懸濁液、吸引物、気管支洗浄液、痰サンプル、環境サンプル、環境濃縮物、食品、原料、水サンプル、水濃縮物等を含むサンプルをプロセシングするのに適している。
サンプル処理（ＨＧＳ）
本発明に従うサンプルの好ましい処理方法は、以下の通りである。サンプルは、２００μlの３Ｍ（２．５から３．５Ｍの範囲）ナトリウムバイサルファイトｐＨ５．０（４．５から５．５のｐＨ範囲）内に直接入れられて、１０から２０分間、７５℃から９５℃の間で加熱される。
バイサルファイトは、任意の適切な手段によって、処理サンプルから除去される。例は、カラムベースの精製を含み、またはビーズベースの精製が最適であるが、場合によっては単純な沈殿工程で十分なことがある。
バイサルファイトの除去後、サンプルは、ｐＨが１１．５から１２．５の間（＞ｐＨ１２が好ましい）である溶出バッファ中に再懸濁される。
サンプルはこれで、さらなるプロセシングがなくとも、ＰＣＲ増幅の準備が整う。
バイサルファイトの除去
バイサルファイト除去は、ＭｅｔｈｙｌＥａｓｙ（商標）技術（Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｓｉｇｎａｔｕｒｅｓ）等の市販の方法によって達成されてよい。手短に言うと、２４０μlの試薬＃３がサンプルに加えられて、サンプルが遠心カラムに移される。続いて、カラムは１０，０００×ｇで回転されて、バイサルファイトを除去する。続いて、カラムは、洗浄の間１０，０００×ｇで回転することで、３００μlの試薬＃４で２回洗浄される。２０から５０μlの溶出バッファが加えられて、サンプルはきれいなコレクションチューブ内に回転により集められる。サンプルはこれで、ＰＣＲ増幅の準備が整う。
サンプル前処理
現行のサンプル前処理は、Ｑｉａｇｅｎ Ｉｎｃ（Ｖａｌｅｎｃｉａ，ＣＡ ９１３５５ ＵＳＡ）、Ｓｉｇｍａ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ（Ｓｔ Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ，ＵＳＡ）、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ（Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ ９２００８，ＵＳＡ）、およびＰｒｏｍｅｇａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ（Ｍａｄｉｓｏｎ，ＷＩ ５３７１１ ＵＳＡ）によって販売される商用キットを伴う。
本発明は、以下の方法と比較された。
「インハウス」病院試験
便のサンプルが１０分間９５℃で加熱されてから希釈され、続いてサンプルはクロストリジウム・ディフィシルのｔｃｄＢ遺伝子について増幅された。
Ｑｉａｇｅｎ精製
ＱＩＡａｍｐ ＤＮＡ Ｓｔｏｏｌ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ（５０）Ｃａｔ＃５１５０４。
市販の寄生虫試験
ＡｕｓＤｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ Ｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ Ｐａｒａｓｉｔｅｓ ５，Ｃａｔａｌｏｇｕｅ ｎｕｍｂｅｒ：６５０２。
結果
糞便サンプル
表１、表２、表３および表４における試験された全糞便サンプルは、以下のように処理された：
スワブが糞便材料内に入れられ、続いて、２００μlの３ＭナトリウムバイサルファイトｐＨ５．０を含有するチューブへ移されて混合されてから、１５分間９５℃で加熱された。
バイサルファイトは、ＭｅｔｈｙｌＥａｓｙ（商標）法を用いて除去され、サンプルは２０から５０μlの溶出バッファ中に再懸濁され、続いて標準的な条件を用いて増幅された。
表１は「インハウス」病院試験の結果を示しており、同サンプルがＱｉａｇｅｎ精製を用いて試験され、そして同サンプルが本発明に従う方法を用いて試験された。結果からわかるように、「インハウス」病院試験は、７つの偽陰性結果および１つの偽陽性結果をもたらした（ＥＩＡおよび培養ならびに市販の分子診断キットによって確かめられた）ことから、この方法は一次患者サンプル中のクロストリジウム・ディフィシルの検出に必要とされる感度を有していなかったことを示唆している。Ｑｉａｇｅｎ法を用いて、４サンプルがプロセシングに十分な材料を有しておらず、１サンプルが偽陰性結果を示した（ＥＩＡによればＧＤＨ陽性）。これらの結果は、クロストリジウム・ディフィシルの迅速な診断について、本発明に従う方法（ＨＧＳ法）の有用性を証明している。また、限られた容量のサンプルが、ＨＧＳ法を用いて容易にアッセイされている。また、Ｑｉａｇｅｎ法は、少なくとも２時間のサンプル調製時間を必要とし、予め定めた量の糞便材料を検量しなければならない。
表１． クロストリジウム・ディフィシルの検出のための、「インハウス」病院試験対Ｑｉａｇｅｎ精製対ＨＧＳ法の結果。
表２．標準的な顕微鏡検査対市販の寄生虫検出キット対ＨＧＳ法の結果。
表２は、標準的な顕微鏡検査、市販の寄生虫試験（Ａｕｓｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ Ｅａｓｙ−Ｐｌｅｘ Ｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ ｐａｒａｓｉｔｅ ５）とＨＧＳ法との直接比較の結果を示している。結果からわかるように、市販の方法は、ジアルジア属嚢胞を含有するサンプルの多くを溶解させることができない。これは、全てのジアルジア属サンプル、および従来の顕微鏡検査によって見落とされる一部のサンプルをも容易に検出するＨＧＳ法と対照的である。また、いくつかのサンプルが寄生虫および細菌の双方を含有したように、ＨＧＳ方法は細菌および寄生虫の溶解に汎用性があるように見え、結果が後に病院によって確かめられた。
表３は、微生物検出のためのＨＧＳ法対従来の培養方法の結果を示している。見てわかるように、培養方法は、分子法が検出したカンピロバクター属種を含有する１サンプルを検出できなかった。また、交差反応性がクロストリジウム・ディフィシルを含有するサンプルで検出されなかった。全ての陽性培養結果はＨＧＳ法と一致しており、従来の培養と比較して分子法の感度が良いことを示唆している。さらに、ＨＧＳ法の結果は、従来の培養方法に必要とされる一晩培養と比較して、僅か３時間で入手可能である。
表３．腸内細菌の検出のための従来の培養方法対ＨＧＳ法の結果
処理条件
クロストリジウム・ディフィシルについて陽性の３つ、およびクロストリジウム・ディフィシルについて陰性の１つの４つの便サンプルが、抽出効率に及ぼす温度および時間の影響を決定するためにアッセイされた。また、抽出コントロール（１６ｓ ｒＤＮＡ遺伝子）が、便サンプル内に存在する混合叢に及ぼす条件の影響を決定するために、含められた。Ｆａｍチャンネルがクロストリジウム・ディフィシルのｔｃｄＡ／Ｂ遺伝子に特異的であり、Ｃｙ５チャンネルが抽出コントロールに特異的である。結果は、図１および表４に示される。
表４の結果からわかるように、これらのサンプルの溶解に好ましい温度および時間は、８５℃から９５℃の間で１５分間である。全ての陽性サンプルおよび糞便叢が容易に検出された。
表４．便サンプルを用いるＨＧＳ溶解／変換方法の効率に及ぼす、時間および温度の影響。
表５．血清サンプルから直接的にＨＣＶを効率良く検出する方法の能力に及ぼす、溶出バッファｐＨの影響
１０μlのＨＣＶ（Ａｃｒｏｍｅｔｒｉｘ）が、２００μlの３Ｍナトリウムバイサルファイトに加えられて、５、１０または１５分間、７５℃、７５℃、８０℃および９０℃にまで加熱された。バイサルファイトが、修正ＭｅｔｈｙｌＥａｓｙ（商標）法を用いて除去され、サンプルが、２０μlの溶出バッファ中に再懸濁され、１２μlが逆転写された後、２μlが標準的な条件を用いて増幅された。
表５の結果からわかるように、ＨＣＶ ＲＮＡは、試験された最も高い温度である９０℃での溶解変換に容易に耐えることができる。さらに驚くべきことに、アッセイは高いｐＨのバッファの存在下でＲＮＡウイルス検出に有効であった。このことは、ＲＮＡ種がほぼ中性のｐＨに維持される必要があることを示す公表文献と相容れないものである。
表４の結果と組み合わせられたこれらの結果は、１５分間の約９０℃の温度が、クロストリジウム・ディフィシル等の二本鎖ＤＮＡ含有生物およびＨＣＶ等の一本鎖ＲＮＡウイルスのための汎用サンプルプロセシング方法で有り得たことを示唆している。また、クロストリジウム・ディフィシルは芽胞含有生物であるので、これらの結果は、本方法が、丈夫な芽胞をこじ開ける程十分に厳しいが、ＲＮＡ含有ウイルスが分解されない程十分に穏やかであることを示唆している。ここでも、このようなデータは先行技術によって予測されなかったであろう。
ＰＣＲ ＡおよびＰＣＲ Ｂは、用いたマスターミックスが異なる（それぞれＪｕｍｐＳｔａｒｔ（Ｓｉｇｍａ）およびＦａｓｔＳｔａｒｔ（Ｒｏｃｈｅ））。
血清
ＨＣＶの希釈液（Ｚｅｐｔｏｏｍｅｔｒｉｘ）が調製された後、各１０μlの希釈液が２００μlの３Ｍナトリウムバイサルファイトに加えられて、１０分間７５℃にまで加熱された。
バイサルファイトが、ＭｅｔｈｙｌＥａｓｙ（商標）法を用いて除去され、サンプルが、２０μlの溶出バッファ中に再懸濁され、１２μlが逆転写された後、２μlが標準的な条件を用いて増幅された。
表６．血清からの直接的なＨＣＶウイルスの高感度検出。
表６からわかるように、血清を直接プロセシングするＨＧＳ法を用いる場合、僅か２ＩＵのＨＣＶが、効率良く溶解され得、かつ同時に変換され得る。これらの結果は、プロセスのターゲットとしてＲＮＡウイルスを用いて生み出され得る感度が優れていることを証明している。
表７は、同じ抽出条件下でのＲＮＡウイルスおよびＤＮＡウイルス双方の同時溶解／変換を示している。
図２は、同じサンプル由来の３つのウイルスの増幅を示している。
Ａ．Ｆａｍ＝ノロウイルス（一本鎖ＲＮＡウイルス）
Ｂ．Ｈｅｘ＝アデノウイルス（二本鎖ＤＮＡウイルス）
Ｃ．Ｃｙ５＝ロータウイルス（一本鎖ＲＮＡウイルス）
ノロウイルス、アデノウイルスおよびロータウイルスの質的サンプルが、Ｚｅｐｔｏｍｅｔｒｉｘから得られた。各ウイルスのサンプル（１０μl）が、３Ｍナトリウムバイサルファイトに加えられて、サンプルは１０、１５および２０分間９０℃で加熱された。その後、バイサルファイトが、修正ＭｅｔｈｙｌＥａｓｙ（商標）法を用いて除去され、サンプルが、２０μlの溶出バッファ中に再懸濁され、１２μlが逆転写された後、２μlが標準的な条件を用いて増幅された。
表７からわかるように、９０℃での１５分の加熱後、ＲＮＡウイルスおよびＤＮＡウイルスの双方が効率的に溶解され、かつ変換されている。双方のウイルス型が同じ条件下で精製された。これらの結果は、さらに、同じサンプル由来のＤＮＡウイルスおよびＲＮＡウイルス双方の溶解および効率的変換のための汎用サンプル調製方法としてのＨＧＳ法の有用性を証明している。ここでも、驚くべきことに、ＲＮＡウイルスは、９０℃のサンプル処理および高いｐＨのバッファに容易に耐えることができる。
表７．同じ抽出条件下でのＲＮＡウイルスおよびＤＮＡウイルス双方の同時溶解／変換。
糞便サンプルに、Ｚｅｐｔｏｍｅｔｒｉｘから得られたノロウイルス、アデノウイルスおよびロータウイルスの質的サンプルが混ぜられた。ウイルスのサンプル（１０μl）が、糞便材料内に混ぜられ、サンプルが混合された。スワブが糞便材料内に入れられ、続いて、２００μlの３ＭナトリウムバイサルファイトｐＨ５．０を含有するチューブへ移されてから、１５分間９５℃で加熱された。
バイサルファイトが、修正ＭｅｔｈｙｌＥａｓｙ（商標）法を用いて除去され、サンプルが、２０μlの溶出バッファ中に再懸濁され、１２μlが逆転写された後、２μlが標準的な条件を用いて増幅された。
表８．糞便サンプルにウイルスが混ざる影響。
表８の結果は、ウイルス粒子が糞便サンプル内に混ぜられて、汎用条件が適用される場合でさえ、ＤＮＡウイルスおよびＲＮＡウイルスの双方が有効に溶解され、かつ変換されることを示している。従って、本方法は、注目する任意の微生物について、任意のサンプル型に適用可能なはずである。
ヒト細胞
本発明が癌等のヒト疾患の検出にも適しているかを決定するために、５μl、１０μlおよび２０μlの希釈ヒト細胞が、２００μlの３Ｍバイサルファイト中にて、１０分または１５分間、７０℃、８０℃、９０℃および９５℃でインキュベートされた。サンプルは、バイサルファイト溶液を除去するためにプロセシングされて、５０μlのバッファｐＨ１２．３中に再懸濁された。続いて、材料（２μl）が、ヒトβ−グロビン遺伝子特異的プライマーおよびプローブを用いて、増幅された。結果は、表９および図３に示される。
表９．ヒトＭＲＣ５細胞を用いた、時間／温度の最適化
表９からわかるように、前処理なしのヒト細胞の同時溶解および変換にとって好ましい時間および温度は、１５分間、９０から９５℃の間である。
図３は、糞便材料内にヒト細胞を混ぜる影響を示している。図３Ａは、３Ｍバイサルファイト試薬中にて１５分間、９５℃で加熱され、続いて高いｐＨのバッファ（１２．３）中に再懸濁されて、ヒトβ−グロビン遺伝子について増幅されたヒトＭＲＣ５細胞を示している。図３Ｂは、３Ｍバイサルファイト試薬中にて１５分間、９５℃で加熱され、続いて高いｐＨのバッファ（１２．３）中に再懸濁されて、ヒトβ−グロビン遺伝子について増幅された、糞便材料内に混ぜられた同細胞を示している。結果からわかるように、ヒト細胞は、サンプル前処理もＤＮＡ単離も何ら必要とせずに、一次ヒト糞便材料において溶解され、かつ効率的に変換され得る。
結果は、ヒト細胞のメチル化プロファイリングが、バイサルファイトに先立つ前処理もサンプル精製も必要とせずに、患者から得られる糞便サンプルに直接的に実行され得ることを示している。従って、本方法は、一次患者材料からの直接的な結腸直腸癌の診断のための非侵襲性の、かつ単純な方法として理想的である。
診断試験キット
本発明は、診断研究所等において使いやすくできる診断キットの形で提供されてよい。表１０および表１１は、例えば、微生物用の代表的な試験キットにおいて提供される試薬を示している。キットは使用説明書を含む。チューブ、スワブおよび他の研究所の備品がキット内に提供されない場合があることは、これらの材料が普通、診断研究所において容易に入手可能であるので、いうまでもない。
表１０．２個のうちのボックス１（室温で保存）
表１１．２個のうちのボックス２（受取り後直ぐに−２０℃で保存）
ボックス２は、サンプルがプロセシングされるのとは異なる場所にあるＤＮＡ「クリーンルーム」において−２０℃で保存されなければならない。
特異的な微生物または遺伝的試験用のキットは、ターゲット核酸分子の増幅を可能にするＰＣＲプライマーを含む。
広く記載される本発明の精神または範囲から逸脱しない範囲で、多くの変更および／または修正が具体的な実施形態において示されるような本発明になされてよいことは、当業者によって十分理解されるであろう。従って、本実施形態は、あらゆる点において、制限的なものではなく、説明のためのものであると考えられるべきである。

Claims (20)

  1. 細胞破壊および核酸処理を可能にする条件下で直接的にバイサルファイト薬剤で生体サンプルを処理することと；
    処理サンプルからバイサルファイト薬剤を除去することと；
    処理サンプル中でターゲット核酸を検出することと
    を含む、分子検出アッセイ。
  2. 生体サンプルは、糞便、鼻水、血液、血漿、血清、頬細胞、膿、創傷、濃縮濾液、脳脊髄液、精液、液状化検体細胞診（ＬＢＣ）組織、ＦＦＰＥ、レーザ捕獲細胞、培養細胞、ペレット化細胞、細菌培養物、細菌コロニー、ウイルス懸濁液、吸引物、気管支洗浄液、痰サンプル、環境サンプル、環境濃縮物、食品、原料、水サンプル、または水濃縮物から選択される、請求項１に記載のアッセイ。
  3. 動物における感染症、遺伝的疾患または遺伝的形質を検出するための、請求項１または請求項２に記載のアッセイ。
  4. 感染症は微生物によって引き起こされる、請求項３に記載のアッセイ。
  5. 微生物は、細菌、ウイルス、ウイロイド、酵母、菌類、プリオン、寄生虫またはアメーバである、請求項４に記載のアッセイ。
  6. 遺伝的疾患は、癌、コピー数変異と関連した疾患、遺伝性疾患、環境誘導疾患、発癌因子への暴露によって引き起こされる疾患、ヌクレオチドリピート長の拡大または縮小によって特徴付けられる疾患である、請求項２に記載のアッセイ。
  7. バイサルファイト薬剤は、ナトリウムバイサルファイトまたはナトリウムメタバイサルファイトである、請求項１から請求項６の何れか一項に記載のアッセイ。
  8. バイサルファイト薬剤は、ｐＨ範囲が４．５から５．５である２．５Ｍから３．５Ｍの濃度で用いられる、請求項７に記載のアッセイ。
  9. バイサルファイト薬剤は、５．０のｐＨにて３Ｍの濃度で用いられる、請求項８に記載のアッセイ。
  10. 処理工程は、１分間から３０分間、７５℃から９５℃の間で加熱することを伴う、請求項１から請求項９の何れか一項に記載のアッセイ。
  11. サンプルは、１０から２０分間、８０℃から９５℃の間の温度で加熱される、請求項１０に記載のアッセイ。
  12. バイサルファイトは、カラムベースの精製、ビーズベースの精製または沈殿によって除去される、請求項１から請求項１１の何れか一項に記載のアッセイ。
  13. バイサルファイトの除去後、処理サンプルは、ｐＨが少なくとも１０である溶出バッファ中に再懸濁される、請求項１から請求項１２の何れか一項に記載のアッセイ。
  14. 溶出バッファは、ｐＨが１１．５から１２．５までである、請求項１３に記載のアッセイ。
  15. 溶出バッファは、ｐＨが少なくとも１２である、請求項１４に記載のアッセイ。
  16. 核酸プライマーまたはプローブを処理サンプルに与えることをさらに有する、請求項１から請求項１５の何れか一項に記載のアッセイ。
  17. ターゲット核酸分子は増幅によって検出される、請求項１６に記載のアッセイ。
  18. 増幅は、ＰＣＲ、ｑＰＣＲ、逆転写ＰＣＲ、デジタルＰＣＲ、等温増幅またはシグナル増幅である、請求項１７に記載のアッセイ。
  19. ターゲット核酸は、処理材料を配列決定することによって検出される、請求項１から請求項１８の何れか一項に記載のアッセイ。
  20. サンプルの直接的処理のための分子検出アッセイのためのキットであって：
    バイサルファイト試薬と；
    核酸溶出および反応試薬と；
    ターゲット核酸用プライマーと；
    アッセイを実行するための使用説明書と
    を含むキット。
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