JP2012131757A - 高強度ペプチドゲル - Google Patents

Abstract

【課題】実用上十分な力学的強度を有するペプチドゲルを提供すること。
【解決手段】本発明のペプチドゲルは、光架橋により共有結合を形成する反応基および／または生体分子間相互作用により結合可能なリンカー構造を有するアミノ酸を含む自己組織化ペプチドを含む水溶液から形成される。
【選択図】なし

Description

本発明は、高強度のペプチドゲルに関する。

細胞外マトリックスが、細胞増殖、分化、細胞間や細胞と組織間の相互作用に影響を与え、重要なシグナル伝達を促進させることが知られている。さらに、従来の培養皿による２次元培養よりも、３次元環境で細胞を培養することにより、ｉｎ ｖｉｖｏに近似し、最適化した細胞外マトリックス／細胞微小環境が得られ、複雑な組織再構築を可能として移植効果が増幅されると考えられる。

３次元細胞培養には、コラーゲン、Ｍａｔｒｉｇｅｌのような動物由来の材料が使用されている。しかしながら、動物由来の材料は、免疫源性や感染症などの問題がある。このような感染等のおそれを取り除くためＰＬＡ、ＰＬＧＡ、リン酸カルシウムのような合成スキャフォールドも３次元細胞培養に使用されている。しかしながら、これらの合成スキャフォールドは、細胞増殖性に優れない。また、このような材料としては、例えば、特許文献１または特許文献２で開示されるような自己組織化ペプチドが挙げられる。しかしながら、特許文献１または２の自己組織化ペプチドから得られるスキャフォールド（ペプチドゲル）は、力学的強度が不十分であるので、例えば、ピンセットでつまむと崩れてしまう等の操作性の問題がある。

近年、細胞シートを作成して心臓周囲に添付する方法が開発されている。特許文献３には、心筋梗塞部位の表面部に塗布した自己組織化ナノペプチドをゲル化させる心筋幹・前駆細胞移植方法が開示されている。しかしながら、この方法では大動物の心筋層を修復するのに必要な厚みを持った移植シートを作成することは困難である。

米国特許５６７０４８３号明細書 国際公開第２００７／０００９７９号パンフレット 特開２００９−９００３１号公報

本発明は、上記課題を解決するためになされたものであり、その目的は、実用上十分な力学的強度を有するペプチドゲルを提供することである。

本発明のペプチドゲルは、光架橋により共有結合を形成する反応基および／または生体分子間相互作用により結合可能なリンカー構造を有するアミノ酸を含む自己組織化ペプチドを含む水溶液から形成される。
好ましい実施形態においては、上記光架橋により共有結合を形成する反応基が自己組織化ペプチドのアミノ基と共有結合可能な反応基である。
好ましい実施形態においては、上記共有結合および／または分子間相互作用により結合可能なアミノ酸がアジドフェニルアラニン、ビオチン結合リジン、ベンゾリルフェニルアラニンからなる群より選択される少なくとも１種である。
好ましい実施形態においては、上記自己組織化ペプチドのアミノ基と共有結合可能な反応基が自己組織化ペプチドのＣ末端に導入されている。
好ましい実施形態においては、上記自己組織化ペプチドが、ＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤ（配列番号１）、ＤＬＲＬＤＬＬＬＤＬＲＬＤ（配列番号５）、ＤＡＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤ（配列番号６）、ＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＡＤ（配列番号７）、ＤＡＲＬＤＬＬＬＤＬＲＬＤ（配列番号８）、ＤＡＲＬＤＬＬＬＤＬＲＡＤ（配列番号９）、ＤＬＲＬＤＡＬＬＤＬＲＬＤ（配列番号１０）、または、ＤＬＲＬＤＬＬＡＤＬＲＬＤ（配列番号１１）のアミノ酸配列からなるペプチドである。
好ましい実施形態においては、上記自己組織化ペプチドが下記のアミノ酸配列からなる：
アミノ酸配列：ａ_１ｂ_１ｃ_１ｂ_２ａ_２ｂ_３ｄｂ_４ａ_３ｂ_５ｃ_２ｂ_６ａ_４
（該アミノ酸配列中、ａ_１〜ａ_４は、塩基性アミノ酸残基であり；ｂ_１〜ｂ_６は、非電荷極性アミノ酸残基および／または疎水性アミノ酸残基であり、ただし、そのうちの少なくとも５個は、疎水性アミノ酸残基であり；ｃ_１およびｃ_２は、酸性アミノ酸残基であり；ｄは、疎水性アミノ酸残基である。）
好ましい実施形態においては、上記自己組織化ペプチドが、ＲＬＤＬＲＬＡＬＲＬＤＬＲ（配列番号４）、ＲＬＤＬＲＬＬＬＲＬＤＬＲ（配列番号１２）、ＲＡＤＬＲＬＡＬＲＬＤＬＲ（配列番号１３）、ＲＬＤＬＲＬＡＬＲＬＤＡＲ（配列番号１４）、ＲＡＤＬＲＬＬＬＲＬＤＬＲ（配列番号１５）、ＲＡＤＬＲＬＬＬＲＬＤＡＲ（配列番号１６）、ＲＬＤＬＲＡＬＬＲＬＤＬＲ（配列番号１７）、または、ＲＬＤＬＲＬＬＡＲＬＤＬＲ（配列番号１８）のアミノ酸配列からなるペプチドである。
本発明の別の局面によれば、細胞培養用基材が提供される。該細胞培養用基材は、上記ペプチドゲルを含む。
本発明のさらに別の局面によれば、薬剤輸送・徐放用担体が提供される。該薬剤輸送・徐放用担体は、上記ペプチドゲルを含む。

本発明によれば、より力学的強度の高いペプチドゲルが得られる。本発明のペプチドゲルは、試薬や有機溶媒を用いることなく、ペプチド同士を結合させて、高強度を実現しているので、これらの影響を受けることなく、様々な用途に用いることができる。

実施例１で得られたペプチドゲルの観察方法を説明する模式図である。 実施例１で得られたペプチドゲルのメニスカスの形状を示す写真である。 実施例２で得られたペプチドゲルを示す写真である。 実施例３で得られたペプチドゲルのメニスカスの形状を示す写真である。 実施例１で得られたペプチドゲルのブロモフェノールブルーの徐放性試験の結果を示すグラフである。 実施例１で得られたペプチドゲルと実施例２で得られたペプチドゲルのフェノールレッドの徐放性試験の結果を示すグラフである。 実施例１で得られたペプチドゲル内でのＨＥＫ２９３細胞を３日間培養後のゲル内の顕微鏡写真である。 実施例２で得られたペプチドゲル内でのマウス３Ｔ３細胞を３日間培養後のゲル内の顕微鏡写真である。

Ａ．用語の定義
（１）本明細書において、「自己組織化ペプチド」とは、溶媒中において、ペプチド分子同士の相互作用を介して自発的に集合するペプチドをいう。相互作用としては、特に限定されず、例えば、水素結合、イオン間相互作用、ファンデルワールス力等の静電的相互作用、疎水性相互作用が挙げられる。１つの実施形態において、自己組織化ペプチドは、室温の水溶液（例えば、０．４ｗ／ｖ％のペプチド水溶液）中において、自己組織化してナノファイバーまたはゲルを形成し得る。
（２）本明細書において、「ゲル」とは、粘性的な性質と弾性的な性質とを併せ持つ粘弾性物質をいう。
（３）本明細書において、「親水性アミノ酸」は、アルギニン（Ａｒｇ／Ｒ）、リジン（Ｌｙｓ／Ｋ）、ヒスチジン（Ｈｉｓ／Ｈ）等の塩基性アミノ酸、アスパラギン酸（Ａｓｐ／Ｄ）、グルタミン酸（Ｇｌｕ／Ｅ）等の酸性アミノ酸、チロシン（Ｔｙｒ／Ｙ）、セリン（Ｓｅｒ／Ｓ）、トレオニン（Ｔｈｒ／Ｔ）、アスパラギン（Ａｓｎ／Ｎ）、グルタミン（Ｇｌｎ／Ｑ）、システイン（Ｃｙｓ／Ｃ）等の非電荷極性アミノ酸を含む。上記括弧内のアルファベットはそれぞれ、アミノ酸の三文字表記および一文字表記である。
（４）本明細書において、「疎水性アミノ酸」は、アラニン（Ａｌａ／Ａ）、ロイシン（Ｌｅｕ／Ｌ）、イソロイシン（Ｉｌｅ／Ｉ）、バリン（Ｖａｌ／Ｖ）、メチオニン（Ｍｅｔ／Ｍ）、フェニルアラニン（Ｐｈｅ／Ｆ）、トリプトファン（Ｔｒｐ／Ｗ）、グリシン（Ｇｌｙ／Ｇ）、プロリン（Ｐｒｏ／Ｐ）等の非極性アミノ酸を含む。上記括弧内のアルファベットはそれぞれ、アミノ酸の三文字表記および一文字表記である。

Ｂ．ペプチドゲル
本発明のペプチドゲルは、光架橋により共有結合を形成する反応基および／または生体分子間相互作用により結合可能なリンカー構造を有するアミノ酸（以下、結合能を有するアミノ酸ともいう）を含む自己組織化ペプチドを含む水溶液から形成される。本発明のペプチドゲルでは、自己組織化ペプチドが水溶液中で自発的に集合して、ナノメートルスケールの幅を有する繊維状の分子集合体、いわゆるナノファイバーを形成し、該ナノファイバー間に働く静電的相互作用を主因として三次元網状構造を形成することにより、ゲルが形成されると推測される。本発明のペプチドゲルは、自己組織化ペプチドに含まれるアミノ酸が有する光架橋により共有結合を形成する反応基および／または生体分子間相互作用により結合可能なリンカー構造により、上記ナノファイバーを形成する自己組織化ペプチド同士および／または該ナノファイバー同士がさらに結合されると考えられる。これにより、より力学的強度の高いペプチドゲルが得られると考えられる。

上記水溶液中に含まれるペプチドは、１種類のみであってもよく、２種類以上であってもよい。また、上記結合能を有するアミノ酸を含んでいない自己組織化ペプチドを含んでいてもよい。該水溶液は、本発明で用いられるペプチドおよび水に加えて、任意の適切な添加物をさらに含み得る。また、該水溶液は、細胞等の不溶物を含んでいてもよい。

上記水溶液中におけるペプチド濃度は、好ましくは０．１〜１０ｗ／ｖ％、さらに好ましくは１〜５ｗ／ｖ％である。濃度がこの範囲である場合、力学的強度に優れたペプチドゲルが得られ得る。また、細胞培養基材として用いた場合に、良好な細胞生存率が得られ得る。本発明のペプチドゲルは、ペプチド濃度を高濃度にすることなく、より力学的強度の高いペプチドゲルが得られる。

Ｂ−１．光架橋により共有結合を形成する反応基および／または生体分子間相互作用により結合可能なリンカー構造を有するアミノ酸を含む自己組織化ペプチド
本発明で用いる自己組織化ペプチドは、上記結合能を有するアミノ酸を含む。このような自己組織化ペプチドを用いることにより、ペプチド同士の静電的相互作用による自己組織化に加えて、光架橋による共有結合および／または生体間相互作用による結合を形成することができ、より力学的強度の高いペプチドゲルの形成が可能となる。また、これらの結合は、試薬や有機溶媒を用いることなく形成が可能であるため、本発明のペプチドゲルは、これらの影響を考慮する必要がなく、様々な用途に適用され得る。

本発明で用いる自己組織化ペプチドにおいて、結合能を有するアミノ酸が導入される位置は、特に制限はない。例えば、該アミノ酸が自己組織化ペプチドの片側末端のみに導入されていてもよく、自己組織化ペプチドの両末端に導入されていてもよく、配列内に導入されていてもよい。また、上記結合能を有するアミノ酸は、自己組織化ペプチドに１種のみ含まれていてもよく、２種以上含まれていてもよい。

Ｂ−１−１．結合能を有するアミノ酸
上記結合能を有するアミノ酸としては、光架橋により共有結合を形成する反応基および／または生体分子間相互作用により結合可能なリンカー構造を有するアミノ酸であればよく、任意の適切なものを用いることができる。

上記光架橋により共有結合を形成する反応基を有するアミノ酸としては、任意の適切なものを用いることができる。本発明で用いる自己組織化ペプチドは、後述の通り、疎水性アミノ酸残基および親水性アミノ酸残基を含む。したがって、例えば、結合能を有するアミノ酸を自己組織化ペプチドの配列内に入れる場合、該アミノ酸を入れる位置にあるべきアミノ酸が親水性アミノ酸残基である場合には、親水性アミノ酸に光架橋により共有結合を形成する反応基および／または生体分子間相互作用により結合可能なリンカー構造を持たせたものを用いればよい。

上記光架橋により共有結合を形成する反応基は、紫外線の照射により自己組織化ペプチドのＮ末端のアミノ基や該ペプチドを構成するアミノ酸残基の側鎖と共有結合を形成する。光架橋により共有結合を形成する反応基とアミノ基やアミノ酸残基の側鎖との結合は、反応性が高く、また光のない状態でも安定している。さらに、該反応基による光架橋は、光への感度が高いため、紫外線の照射による損傷も考慮しなくてもよい。

光架橋により共有結合を形成する反応基としては、特に制限はなく、例えば、アリールアジド基、ジアジリン基、ベンゾフェノン基等が挙げられる。なかでも、入手が容易であり、試薬を用いることなく共有結合等の化学結合を構成できるという点から、光架橋により共有結合を形成する反応基としてアリールアジド基およびベンゾフェノン基を有するアミノ酸を用いることが好ましい。

上記結合能を有するアミノ酸に含まれる光架橋により共有結合を形成する反応基は、好ましくは自己組織化ペプチドに含まれるアミノ基と共有結合可能な反応基である。このような反応基を有することにより、自己組織化ペプチドのＮ末端のアミノ基および／または自己組織化ペプチドを構成するアミノ酸に含まれるアミノ基と結合することにより、自己組織化ペプチド同士および／または自己組織化ペプチドにより形成されるナノファイバー間に結合を形成することができ、力学的強度の高いペプチドゲルが得られる。

上記自己組織化ペプチドに含まれるアミノ基と共有結合可能な反応基は、好ましくは自己組織化ペプチドのＣ末端側に導入される。自己組織化ペプチドのＣ末端にアミノ基と共有結合可能な反応基を導入することにより、より力学的強度の高いペプチドゲルが得られる。一般に、自己組織化ペプチドが形成するβシート構造では、それぞれのペプチドが有するアミノ基とカルボニル基とが水素結合している。自己組織化ペプチドのＣ末端にアミノ基と光架橋で共有結合可能な反応基が導入されることにより、該反応基が他の自己組織化ペプチドのＮ末端のアミノ基と共有結合を形成すると考えられる。これにより、自己組織化ペプチド間および／または自己組織化ペプチドにより形成されるナノファイバー間の結合がより強固になり、より力学的強度の高いペプチドゲルが得られると考えられる。

上記光架橋により共有結合を形成する反応基を有するアミノ酸としては、コスト面に優れる点から、好ましくはアジドフェニルアラニン、ベンゾリルフェニルアラニンが用いられる。

生体分子間相互作用としては、特に制限はなく、例えば、タンパク質−タンパク質間、受容体−リガンド間、抗原−抗体間等の相互作用が挙げられる。具体的には、アビジン−ビオチン間の相互作用が挙げられる。生体分子間相互作用により結合可能なリンカー構造を有するアミノ酸としては、コスト面に優れ、親和性および結合の安定性が高いという点から、ビオチン結合リジンが好ましい。

生体分子間相互作用により結合させる場合、両方の生体分子に由来するリンカー構造を有するアミノ酸を用いてもよく、一方の生体分子に由来するリンカー構造を有するアミノ酸のみを用いてもよい。一方の生体分子に由来するリンカー構造を有するアミノ酸のみを用いる場合には、他方の生体分子をペプチドゲルの形成に用いる水溶液に添加することにより、自己組織化ペプチド間および／または自己組織化ペプチドにより形成されるナノファイバー間の結合を形成し得る。ビオチン結合リジンを含む自己組織化ペプチドを用いて、自己組織化ペプチド間および／または自己組織化ペプチドにより形成されるナノファイバー間の結合を形成する場合、該自己組織化ペプチドを含む水溶液にさらにアビジンを加えることにより、自己組織化ペプチドに含まれるビオチンとアビジン間の相互作用により、強固な結合が形成され、より力学的強度の高いペプチドゲルが得られる。水溶液に添加する生体分子の量は、ペプチドに含まれるリンカー構造の数や、用いるペプチドの量に応じて、適宜設定することができる。

上記生体分子間相互作用により結合可能なリンカー構造を有するアミノ酸が導入される部分は特に制限はない。製造が容易であり、試薬を用いることなく共有結合等の化学結合を構成できるという点から、末端に該アミノ酸が導入されていることが好ましい。

Ｂ−１−２．自己組織化ペプチド
本発明で用いる自己組織化ペプチドとしては、上記の結合能を有するアミノ酸を含むものであればよく、任意の適切な自己組織化ペプチドを用いることができる。一般に、ナノファイバーを構成する自己組織化ペプチドは、水溶液中で、親水性の側鎖が配置される面と疎水性の側鎖が配置される面とからなるβシート構造をとり、親水性面間に働く水素結合、イオン間相互作用等および疎水性面間に働く疎水性相互作用等の相互作用によって、複数のペプチドが自発的に集合すると考えられている。したがって、ナノファイバーを構成する自己組織化ペプチドは、例えば、親水性アミノ酸と疎水性アミノ酸とを、交互に、かつ、等しい割合で有するものが挙げられる。自己組織化ペプチドとしては、１０〜２０残基のアミノ酸配列からなるペプチドが用いられる。

自己組織化ペプチドを構成するアミノ酸は、Ｌ−アミノ酸であってもよく、Ｄ−アミノ酸であってもよい。また、天然アミノ酸であってもよく、非天然アミノ酸であってもよい。低価格で入手可能であり、ペプチド合成が容易であることから、好ましくは天然アミノ酸である。

好ましくは、本発明で用いる自己組織化ペプチドは、１３残基のアミノ酸配列からなるペプチドであって、７位の疎水性アミノ酸残基を中心として、疎水性アミノ酸と親水性アミノ酸が交互に位置するアミノ酸配列からなり、該配列内のいずれかの位置に上記の結合能を有するアミノ酸を含む。すなわち、本発明で用いられる自己組織化ペプチドは、１，３，５，９，１１および１３位に親水性アミノ酸が、２，４，６，７，８，１０および１２位に疎水性アミノ酸が位置する１３残基のアミノ酸配列からなり、該配列のいずれかの位置に上記の結合能を有するアミノ酸を含むことが好ましい。上記自己組織化ペプチドにおいては、６〜８位の３つのアミノ酸残基が連続して疎水性アミノ酸残基となる。このようにアミノ酸配列の中心に形成された疎水性領域は、その疎水性相互作用等により、強度に優れたペプチドゲルの形成に寄与し得ると推測される。該自己組織化ペプチドに含まれる疎水性アミノ酸残基および親水性アミノ酸残基は、同一であっても異なっていても良い。結合能を有するアミノ酸は、上記のアミノ酸配列内の任意の部分に導入され得る。

上記親水性アミノ酸残基は、好ましくはアルギニン残基、リジン残基、ヒスチジン残基、アスパラギン酸残基、グルタミン酸残基、チロシン残基、セリン残基、トレオニン残基、アスパラギン残基、グルタミン残基、システイン残基である。

上記疎水性アミノ酸残基は、好ましくはアラニン残基、ロイシン残基、イソロイシン残基、バリン残基、メチオニン残基、フェニルアラニン残基、トリプトファン残基、グリシン残基、プロリン残基であり、さらに好ましくはロイシン残基、アラニン残基、バリン残基、またはイソロイシン残基であり、特に好ましくはロイシン残基またはアラニン残基である。これらのアミノ酸は、入手が容易だからである。

本発明の別の好ましい実施形態で用いられる自己組織化ペプチドを以下に例示する。
ｎ−ＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤ−ｃ（配列番号１）
ｎ−ＤＬＲＬＤＬＬＬＤＬＲＬＤ−ｃ（配列番号５）
ｎ−ＤＡＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤ−ｃ（配列番号６）
ｎ−ＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＡＤ−ｃ（配列番号７）
ｎ−ＤＡＲＬＤＬＬＬＤＬＲＬＤ−ｃ（配列番号８）
ｎ−ＤＡＲＬＤＬＬＬＤＬＲＡＤ−ｃ（配列番号９）
ｎ−ＤＬＲＬＤＡＬＬＤＬＲＬＤ−ｃ（配列番号１０）
ｎ−ＤＬＲＬＤＬＬＡＤＬＲＬＤ−ｃ（配列番号１１）

本発明の他の好ましい実施形態においては、自己組織化ペプチドは、下記のアミノ酸配列からなる。
アミノ酸配列：ａ_１ｂ_１ｃ_１ｂ_２ａ_２ｂ_３ｄｂ_４ａ_３ｂ_５ｃ_２ｂ_６ａ_４
（上記アミノ酸配列中、ａ_１〜ａ_４は、塩基性アミノ酸残基であり；ｂ_１〜ｂ_６は、非電荷極性アミノ酸残基および／または疎水性アミノ酸残基であり、ただし、そのうちの少なくとも５個は、疎水性アミノ酸残基であり；ｃ_１およびｃ_２は、酸性アミノ酸残基であり；ｄは、疎水性アミノ酸残基である。）このような自己組織化ペプチドを用いることにより、より力学的強度の高いペプチドゲルを得ることができる。結合能を有するアミノ酸は、上記のアミノ酸配列内の任意の部分に導入され得る。

上記自己組織化ペプチドは、７位の疎水性アミノ酸残基を中心として、一残基おきに塩基性アミノ酸残基（１、５、９、および１３位）および酸性アミノ酸残基（３および１１位）をＮ末端方向およびＣ末端方向に対称の位置に有する１３残基のアミノ酸配列からなる。すなわち、上記自己組織化ペプチドは、親水性アミノ酸と疎水性アミノ酸とを交互に有さないことを１つの特徴とする。また、上記自己組織化ペプチドは、親水性アミノ酸残基と疎水性アミノ酸残基とを等しい割合で有さないことを別の特徴とする。また、上記自己組織化ペプチドは、７位の疎水性アミノ酸残基を中心として、４個の塩基性アミノ酸残基と２個の酸性アミノ酸残基とを所定の対称の位置に有し、Ｎ末端とＣ末端のアミノ酸残基がともに塩基性アミノ酸残基であることをさらに別の特徴とする。一般的には、７位を疎水性アミノ酸残基とすることは、βシート構造の形成にとって不利になり、また、親水性アミノ酸と疎水性アミノ酸との割合を不均等にするので、ペプチドの自己組織化能に悪影響を及ぼすと考えられてきた。しかしながら、上記自己組織化ペプチドは、優れた自己組織化能を有し、さらには、従来よりも力学的強度に優れたペプチドゲルを形成し得る。このような効果が奏される理由は定かではないが、７位を疎水性アミノ酸とすることに加えて、塩基性アミノ酸残基を酸性アミノ酸残基よりも２個多く有し、かつ、それぞれのアミノ酸残基を特定の位置に有することにより、βシート構造を形成する能力を維持しつつ、ペプチド分子間に静電的引力と静電的斥力とが極めて優れたバランスで働くことによるものと考えられる。

上記アミノ酸配列中、ａ_１〜ａ_４は、塩基性アミノ酸残基である。塩基性アミノ酸は、好ましくはアルギニン、リジン、またはヒスチジンであり、より好ましくはアルギニンまたはリジンである。これらのアミノ酸は、塩基性が強いからである。ａ_１〜ａ_４は、同一のアミノ酸残基であってもよく、異なるアミノ酸残基であってもよい。

上記アミノ酸配列中、ｂ_１〜ｂ_６は、非電荷極性アミノ酸残基および／または疎水性アミノ酸残基であり、そのうちの少なくとも５個は、疎水性アミノ酸残基である。疎水性アミノ酸は、好ましくはアラニン、ロイシン、イソロイシン、バリン、メチオニン、フェニルアラニン、トリプトファン、グリシン、またはプロリンである。非電荷極性アミノ酸は、好ましくはチロシン、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、またはシステインである。これらのアミノ酸は、入手が容易だからである。

好ましくは、ｂ_３およびｂ_４は、それぞれ独立して任意の適切な疎水性アミノ酸残基であり、さらに好ましくはロイシン残基、アラニン残基、バリン残基、またはイソロイシン残基であり、特に好ましくはロイシン残基またはアラニン残基である。上記アミノ酸配列において、それぞれ６位と８位に位置するｂ_３とｂ_４が疎水性アミノ酸残基である場合、６〜８位の３つのアミノ酸残基が連続して疎水性アミノ酸残基となる。このようにアミノ酸配列の中心に形成された疎水性領域は、その疎水性相互作用等により、強度に優れたペプチドゲルの形成に寄与し得ると推測される。

好ましくは、ｂ_１〜ｂ_６はすべて疎水性アミノ酸残基である。自己組織化ペプチドが好適にβシート構造を形成し、自己組織化し得るからである。より好ましくは、ｂ_１〜ｂ_６は、それぞれ独立してロイシン残基、アラニン残基、バリン残基、またはイソロイシン残基であり、さらに好ましくはロイシン残基またはアラニン残基である。好ましい実施形態においては、ｂ_１〜ｂ_６のうちの４個以上がロイシン残基であり、特に好ましくはそのうちの５個以上がロイシン残基であり、最も好ましくはすべてがロイシン残基である。水への溶解性に優れ、かつ、力学的強度の高いペプチドゲルを形成し得る自己組織化ペプチドが得られ得るからである。

上記アミノ酸配列中、ｃ_１およびｃ_２は、酸性アミノ酸残基である。酸性アミノ酸は、好ましくはアスパラギン酸またはグルタミン酸である。これらのアミノ酸は、入手が容易だからである。ｃ_１およびｃ_２は、同一のアミノ酸残基であってもよく、異なるアミノ酸残基であってもよい。

上記アミノ酸配列中、ｄは、疎水性アミノ酸残基である。上記のとおり、ｄが疎水性アミノ酸残基であり、かつ、所定の対称構造を有することにより、上記自己組織化ペプチドは従来のペプチドゲルよりも力学的強度に優れたゲルを形成し得ると考えられる。このような効果が奏される理由は定かではないが、本発明の自己組織化ペプチドは、７位のアミノ酸残基ｄが疎水性アミノ酸残基であることにより、自己組織化する際のペプチド同士の重なりが一定となり、均一性が高い集合状態を形成し得るためと推測される。

ｄは、好ましくはアラニン残基、バリン残基、ロイシン残基、またはイソロイシン残基である。この場合、自己組織化ペプチドが形成するβシート構造の親水性面側のアミノ酸の側鎖長は非相補的となり得るが、該自己組織化ペプチドは、優れた自己組織化能を発揮し得、さらには、従来よりも力学的強度に優れたペプチドゲルを形成し得る。これは、自己組織化にとって好適な静電的引力を得るためには、βシート構造の親水性面側のアミノ酸の側鎖長が相補的であることが好ましいという従来の知見とは大きく異なる効果である。ここで、「側鎖長が相補的」とは、相互作用を発揮する一対のアミノ酸残基（例えば、塩基性アミノ酸残基と酸性アミノ酸残基）の側鎖長に主として関与する原子の数の和が一定であることをいう。例えば、図１は、側鎖長が非相補的な場合のペプチド間の距離を説明する模式図である。図１に示されるとおり、点線で囲まれるアラニン残基−アルギニン残基対の側鎖長に主として関与する原子の数の和（７）は、実線で囲まれるアスパラギン酸残基−アルギニン残基対の側鎖長に主として関与する原子の数の和（９）よりも小さい。

上記自己組織化ペプチドに含まれるアミノ酸残基の中性領域における電荷の総和は、実質的に＋２である。すなわち、上記自己組織化ペプチドは、中性領域において該ペプチドに含まれるアミノ酸残基の側鎖に由来するプラス電荷とマイナス電荷とが相殺されない。加えて、Ｎ末端とＣ末端のアミノ酸残基がともに塩基性アミノ酸残基であることから、本発明の自己組織化ペプチドは、例えば、ペプチド間に静電的引力に加えて静電的斥力が働き、これらの微妙なバランスが保たれることで過度の会合が実質的に生じないため、中性領域で沈殿することなく安定なゲルを形成し得ると推測される。なお、本明細書において、「中性領域」とは、ｐＨ６〜８、好ましくは、ｐＨ６．５〜７．５の領域をいう。

各ｐＨにおける上記自己組織化ペプチドの電荷は、例えば、レーニンジャー（Ｌｅｈｎｉｎｇｅｒ）〔Ｂｉｏｃｈｉｍｉｅ、１９７９〕の方法に従って算出され得る。レーニンジャーの方法は、例えば、ＥＭＢＬ ＷＷＷ Ｇａｔｅｗａｙ ｔｏ Ｉｓｏｅｌｅｃｔｒｉｃ Ｐｏｉｎｔ Ｓｅｒｖｉｃｅのウェブサイト（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｅｍｂｌ−ｈｅｉｄｅｌｂｅｒｇ．ｄｅ／ｃｇｉ／ｐｉ−ｗｒａｐｐｅｒ．ｐｌ）上で利用可能なプログラムにより行なわれ得る。

本発明の別の好ましい実施形態で用いられる自己組織化ペプチドを以下に例示する。
ｎ−ＲＬＤＬＲＬＡＬＲＬＤＬＲ−ｃ（配列番号４）
ｎ−ＲＬＤＬＲＬＬＬＲＬＤＬＲ−ｃ（配列番号１２）
ｎ−ＲＡＤＬＲＬＡＬＲＬＤＬＲ−ｃ（配列番号１３）
ｎ−ＲＬＤＬＲＬＡＬＲＬＤＡＲ−ｃ（配列番号１４）
ｎ−ＲＡＤＬＲＬＬＬＲＬＤＬＲ−ｃ（配列番号１５）
ｎ−ＲＡＤＬＲＬＬＬＲＬＤＡＲ−ｃ（配列番号１６）
ｎ−ＲＬＤＬＲＡＬＬＲＬＤＬＲ−ｃ（配列番号１７）
ｎ−ＲＬＤＬＲＬＬＡＲＬＤＬＲ−ｃ（配列番号１８）

上記自己組織化ペプチドは、任意の適切な製造方法によって製造され得る。例えば、Ｆｍｏｃ法等の固相法又は液相法等の化学合成方法、遺伝子組換え発現等の分子生物学的方法が挙げられる。

Ｂ−２．その他の成分
本発明のペプチドゲルが含む添加物は、ペプチドゲルの用途、含まれるペプチドの種類等に応じて適切に選択され得る。添加物の具体例としては、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、塩酸、リン酸、炭酸水素ナトリウム等のｐＨ調整剤；アミノ酸類；ビタミンＡ、ビタミンＢ群、ビタミンＣ、ビタミンＤ、ビタミンＥおよびその誘導体等のビタミン類；単糖、二糖、オリゴ糖等の糖類；ヒアルロン酸、キトサン、親水化セルロース等の多糖類；エタノール、プロパノール、イソプロパノール等のアルコール類；グリセリン、プロピレングリコール等の多価アルコール類；フェノールレッド等の色素；ホルモン、サイトカイン（造血因子、増殖因子等）、ペプチド等の生理活性物質；酵素；抗体；ＤＮＡ；ＲＮＡ；その他一般的な低分子化合物が挙げられる。添加物は、１種類のみ添加されてもよく、２種類以上組み合わせて添加されてもよい。水溶液中における添加物の濃度は、目的、ペプチドゲルの用途等に応じて適切に設定され得る。

生理活性物質、酵素、抗体などのアミノ基を含む添加物、または、自己組織化ペプチドが有する生体分子間相互作用により結合可能なリンカー構造と結合可能な生体分子と結合した添加物を用いることにより、ペプチドゲルの内部および／または表面にこれらの添加物が化学的に結合し得る。これにより、添加物とペプチドゲルとをより強固に結びつけることができる。このような添加剤を用いる場合、光架橋反応による共有結合および／または生体分子間相互作用による結合を形成する前にこれらの添加剤をペプチドゲルに加えておくことが好ましい。

添加物を含む水溶液の具体例としては、リン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）、Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ等の各種緩衝液、ダルベッコ変法イーグル培地（ＤＭＥＭ）等の細胞培養用培地、水酸化ナトリウム、塩酸、炭酸水素ナトリウム等でｐＨを調整した水溶液、が挙げられる。

上記水溶液は、目的に応じて、任意の適切なｐＨであり得る。たとえば、本発明で用いるペプチドを溶解する前後における水溶液のｐＨは、それぞれ好ましくは５〜９であり、さらに好ましくは５．５〜８であり、特に好ましくは６．０〜７．５である。この範囲であれば、力学的強度に優れたペプチドゲルが得られ得る。さらに、上記水溶液が細胞を含む場合に、良好な細胞生存率が得られ得る。

上記細胞としては、目的等に応じて、任意の適切な細胞が選択され得る。細胞は、動物細胞であっても、植物細胞であってもよい。細胞の具体例としては、軟骨細胞、筋芽細胞、骨髄細胞、線維芽細胞、肝細胞、心筋細胞等が挙げられる。

上記ペプチドゲルは、任意の適切な方法によって形成され得る。代表的には、上記ペプチドゲルは、少なくとも１種の本発明で用いるペプチドを含む水溶液を静置することにより形成され得る。静置する際の温度または時間は、本発明で用いるペプチドが自己組織化してゲルを形成する限り特に制限はなく、ゲルの使用目的、該ペプチドの種類、濃度等に応じて適切に設定され得る。静置する時間は、通常１分以上、好ましくは３分以上、より好ましくは５分以上である。温度は、通常４〜５０℃、好ましくは１５〜４５℃である。

Ｃ．ペプチドゲルの用途
本発明のペプチドゲルの好ましい用途としては、例えば、細胞培養用基材；タンパク質検出用基材；スキンケア用品、ヘアケア用品等の化粧品；じょくそう製剤、骨充填剤、美容形成用注入剤、眼科用手術補助剤、人工硝子体、人工水晶体、関節潤滑剤、点眼剤、ＤＤＳ基材、止血剤等の医薬品；湿潤用保水剤；乾燥剤；コンタクトレンズ等の医療機器へのコーティング剤が挙げられる。

タンパク質検出用基材は、例えば、本発明のペプチドゲルを、任意の厚み（例えば、０．０１〜１ｍｍ程度）となるよう、任意の材料表面にコーティングすることにより得られる。このタンパク質検出用基材の表面に、種類や発現量が未知のタンパク質を含む溶液を少量スポットする。ここで、上記Ｂ−２項で説明したように、本発明のペプチドゲルとタンパク質が有するアミノ基とは光架橋反応により共有結合を形成し得る。したがって、未知のタンパク質をスポットした後に光架橋反応を行うことにより、自己組織化ペプチドと未知のタンパク質とをより強固に結合させることができる。次いで、任意のタンパク質同定工程を行うことにより、タンパク質の種類や発現量を同定することができる。

Ｄ．細胞培養用基材
本発明の細胞培養基材は、上記ペプチドゲルを含む。本発明の細胞培養基材は、化学合成によって得られる自己組織化ペプチドから形成されるので、病原体等が混入することなく、安全な細胞培養が可能である。また、上記本発明で用いるペプチドから形成されたゲルは、中性領域で透明、かつ、力学的強度に優れ得るので、本発明の細胞培養基材は、細胞培養時の視認性および操作性に優れる。

上記細胞培養基材は、その内部において本発明で用いるペプチドが自己組織化し、繊維状となって三次元網目構造を形成している。したがって、細胞培養基材上での培養だけでなく、細胞培養基材中での培養も可能である。

細胞培養基材上で培養する場合は、既に形成された本発明のペプチドゲル上に培養対象の細胞を乗せて培養し得る。細胞培養基材中で培養する場合は、本発明で用いるペプチドまたはペプチド水溶液と細胞または細胞懸濁液とを混合し、該混合物からペプチドゲルを形成して培養し得る。

ペプチドゲルの液相は、溶媒置換により所望の培養液に置換することができる。溶媒置換は、例えば、商品名「セルカルチャーインサート」等を用いて行われ得る。ペプチドゲルの詳細（ペプチド濃度、水溶液（混合物）が含み得る添加物の種類、ｐＨ等）および形成方法は、上記Ｃ項で記載したとおりである。

培養対象の細胞は、目的等に応じて任意の適切な細胞が選択され得る。細胞は、動物細胞であっても、植物細胞であってもよい。細胞の具体例としては、軟骨細胞、筋芽細胞、骨髄細胞、線維芽細胞、肝細胞、心筋細胞等が挙げられる。培養液および培養条件は、培養する細胞の種類、目的等に応じて適切に選択され得る。

本発明の細胞培養用基材は、生体適合性および安全性に優れるので、例えば、再生医療分野等での三次元細胞培養において好適に利用され得る。

以下、実施例によって本発明を具体的に説明するが、本発明はこれら実施例によって限定されるものではない。

（参考例１）
ＲｅｓＰｅｐ（Ｉｎｔａｖｉｓ社製）を用いて、Ｆｍｏｃ合成法により、配列番号１のアミノ酸配列からなる自己組織化ペプチドのＣ末端にアジドフェニルアラニン（ＦＮ_３）が導入された自己組織化ペプチド（ＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤ−ＦＮ_３）、配列番号１のアミノ酸配列からなる自己組織化ペプチドのＮ末端にアジドフェニルアラニン（ＦＮ_３）が導入された自己組織化ペプチド（ＦＮ_３−ＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤ）、配列番号２のアミノ酸配列の自己組織化ペプチドであって、７位のフェニルアラニンがアジド基を有する自己組織化ペプチド（ＤＬＲＬＤＬ−ＦＮ_３−ＬＤＬＲＬＤ）を合成した。ペプチドの生成は、ＴＯＦ-ＭＳ質量分析法（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ社製）を用いて確認した。

（参考例２）
アジドフェニルアラニンに代えてビオチン結合リジンを用いた以外は、参考例１と同様にして、Ｃ末端にビオチン結合リジン（ＫＢｉｏ）が導入された自己組織化ペプチド（ＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤ−ＫＢｉｏ）、Ｎ末端にビオチン結合リジン（ＫＢｉｏ）が導入された自己組織化ペプチド（ＫＢｉｏ−ＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤ）、配列番号３のアミノ酸配列の自己組織化ペプチドであって、７位のリジンにビオチンが結合している自己組織化ペプチド（ＤＬＲＬＤＬ−ＫＢｉｏ−ＬＤＬＲＬＤ）を合成した。

（参考例３）
アジドフェニルアラニンに代えてベンゾリルフェニルアラニンを用いた以外は、参考例１と同様にして、Ｃ末端にベンゾリルフェニルアラニンが導入された自己組織化ペプチド（ＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤ−ＦＢｚｏ）、Ｎ末端にベンゾリルフェニルアラニンが導入された自己組織化ペプチド（ＦＢｚｏ−ＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤ）、配列内にベンゾリルフェニルアラニンが導入された自己組織化ペプチド（ＤＬＲＬＤＬ−ＦＢｚｏ−ＬＤＬＲＬＤ）を合成した。

（参考例４）
ＲｅｓＰｅｐ（Ｉｎｔａｖｉｓ社製）を用いて、Ｆｍｏｃ合成法により、配列番号４のアミノ酸配列からなる自己組織化ペプチドのＣ末端にアジドフェニルアラニン（ＦＮ_３）が導入された自己組織化ペプチド（ＲＬＤＬＲＬＡＬＲＬＤＬＲ−ＦＮ_３）を合成した。ペプチドの生成は、ＴＯＦ-ＭＳ質量分析法（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ社製）を用いて確認した。

（参考例５）
参考例１と同様にして、配列番号２のアミノ酸配列からなる自己組織化ペプチド（ＤＬＲＬＤＬＦＬＤＬＲＬＤ）、配列番号１９のアミノ酸配列からなる自己組織化ペプチド（ＦＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤ）、配列番号２０のアミノ酸配列からなる自己組織化ペプチド（ＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤＦ）を合成した。

[実施例１]
参考例１で得られた各自己組織化ペプチドをＤＭＳＯに溶解させた後、脱イオン水をペプチド濃度が１ｗ／ｖ％となるよう添加し、ペプチドゲルを得た。得られたペプチドゲルに紫外線を２Ｊ／ｓｃｍ^２（通常の蛍光灯下での条件）で１２時間（積算光量：８０ｍJ／ｃｍ^２）照射し、本発明のペプチドゲルを得た。

得られたペプチドゲルを同量チューブに入れ、図１に示すように底の浅い容器に斜めに立てかけ、３０分間静置した。静置後、得られたゲルを真上（図１における矢印の方向）から写真で撮影し、ゲルの硬度をメニスカスの形状により確認した。各ペプチドゲルの凹型メニスカスの形状により、得られたペプチドゲルの力学的強度を確認した。各静置後のペプチドゲルの写真を図２に示す。Ｃ末端にアジドフェニルアラニン（ＦＮ_３）が導入された自己組織化ペプチド（ＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤ−ＦＮ_３）を用いたペプチドゲルが図２中の５のチューブに、Ｎ末端にアジドフェニルアラニン（ＦＮ_３）が導入された自己組織化ペプチド（ＦＮ_３−ＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤ）を用いたペプチドゲルが図２中の３のチューブに、配列内にアジドフェニルアラニン（ＦＮ_３）が導入された自己組織化ペプチド（ＤＬＲＬＤＬ−ＦＮ_３−ＬＤＬＲＬＤ）を用いたペプチドゲルが図２中の１のチューブにそれぞれ対応する。

実施例１で得られたペプチドゲルは、斜めに立てかけた状態であってもゲルが斜めになり難く、実用上十分な強度を示していた。

（比較例１）
参考例５で得られた自己組織化ペプチドを用いた以外は、実施例１と同様にしてペプチドゲルを得た。実施例１と同様にして、得られたペプチドゲルの力学的強度を確認した。各静置後のペプチドゲルの写真を図２に示す。配列番号２の自己組織化ペプチドを用いたペプチドゲルが図２中の２のチューブに、配列番号１９の自己組織化ペプチドを用いたペプチドゲルが図２中の４のチューブに、配列番号２０の自己組織化ペプチドを用いたペプチドゲルが図２中の６のチューブにそれぞれ対応する。

比較例１で得られたペプチドゲルは、実施例１で得られたペプチドゲルと各アミノ酸配列中のフェニルアラニンが光架橋により共有結合を形成する反応基を有していない点のみが相違する。比較例１で得られたペプチドゲルは、実施例１で得られたペプチドゲルに比べて流動性が高かった。

[実施例２]
参考例２で得られた各自己組織化ペプチドを、ＤＭＳＯに溶解させた後、脱イオン水をペプチド濃度が１ｗ／ｖ％となるように添加し、ペプチドゲルを得た。得られたペプチドゲルに卵白由来のアビジンの１０ｍｇ／ｍｌ溶液を０．１ｍｌ加え、本発明のペプチドゲルを得た。

ビオチン結合リジンがアミノ酸配列の７位に導入された自己組織化ペプチド（ＤＬＲＬＤＬ−ＫＢｉｏ−ＬＤＬＲＬＤ）を用いたペプチドゲルの写真を図３に示す。得られたペプチドゲルは１日後には、塊状のペプチドゲルとなっていた。得られたペプチドゲルは、スパーテルで操作可能な硬さ（力学的強度）であった。

[実施例３]
参考例３で得られた各自己組織化ペプチドをＤＭＳＯに溶解させた後、脱イオン水をペプチド濃度が１ｗ／ｖ％となるよう添加し、ペプチドゲルを得た。得られたペプチドゲルに紫外線灯（ＵＶＰ社製ＴＲＡＮＳＩＬＬＵＭＩＮＡＴＯＲ）を用いて、紫外線を８Ｊ／ｓｃｍ^２（通常の蛍光灯下での条件）で１時間（積算光量：２８．８ｋJ／ｃｍ^２）照射し、本発明のペプチドゲルを得た。

得られたペプチドゲルをチューブに入れ、逆さにした状態で１分間静置し、各ペプチドゲルの凹型メニスカスの形状により、得られたペプチドゲルの力学的強度を確認した。各ペプチドゲルをチューブに入れた写真を図４に示す。図４（ａ）が逆さにした直後のチューブ中のゲルの状態を、図４（ｂ）が逆さにした状態で１分間静置した後のチューブ中のゲルの状態を示す。Ｃ末端にベンゾリルフェニルアラニンが導入された自己組織化ペプチド（ＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤ−ＦＢｚｏ）が図４中の３、Ｎ末端にベンゾリルフェニルアラニンが導入された自己組織化ペプチド（ＦＢｚｏ−ＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤ）が図４中の２、アミノ酸配列の７位にベンゾリルフェニルアラニンが導入された自己組織化ペプチド（ＤＬＲＬＤＬ−ＦＢｚｏ−ＬＤＬＲＬＤ）が図４中の１にそれぞれ対応する。実施例３で得られたペプチドゲルは、図４（ｂ）に示すように、静置後も上底に残っているハイドロゲルの体積が大きく、実用上十分な強度のペプチドゲルが得られた。

（比較例２）
参考例５で得られた自己組織化ペプチドを用いた以外は、実施例３と同様にしてペプチドゲルを得た。実施例３と同様にして、得られたペプチドゲルの力学的強度を確認した。各静置後のペプチドゲルの写真を図４に示す。配列番号１９の自己組織化ペプチドを用いたペプチドゲルが図２中の４のチューブに、配列番号２の自己組織化ペプチドを用いたペプチドゲルが図２中の５のチューブに、配列番号２０の自己組織化ペプチドを用いたペプチドゲルが図２中の６のチューブにそれぞれ対応する。

比較例２で得られたペプチドゲルは、実施例３で得られたペプチドゲルと各アミノ酸配列中のフェニルアラニンが光架橋により共有結合を形成する反応基を有していない点のみが相違する。比較例２で得られたペプチドゲルは、実施例３で得られたペプチドゲルに比べて流動性が高かった。

[実施例４]
参考例４で得られた各自己組織化ペプチドをＤＭＳＯに溶解させた後、脱イオン水をペプチド濃度が１ｗ／ｖ％となるよう添加し、ペプチドゲルを得た。得られたペプチドゲルに紫外線灯（ＵＶＰ社製ＴＲＡＮＳＩＬＬＵＭＩＮＡＴＯＲ）を用いて、紫外線を８Ｊ／ｓｃｍ^２（通常の蛍光灯下での条件）で１時間（積算光量：２８．８ｋJ／ｃｍ^２）照射し、本発明のペプチドゲルを得た。

得られたペプチドゲルをチューブに入れ、逆さにした状態で１分間静置し、実施例４で得られたペプチドゲルの形状変化から得られたペプチドゲルの力学的強度を確認した。実施例４で得られたペプチドゲルも逆さにしても落ちてくることが無く、実用上十分な強度のペプチドゲルが得られた。

[試験例１：薬剤徐放試験]
Ｎａｇａｉら（Ｊ．Ｃｏｎｔ．Ｒｅｌ．１１５，２００６，１８−２５）の方法に従って、本発明のペプチドゲルの薬物徐放性について試験した。参考例１で得られたＣ末端にアジドフェニルアラニン（ＦＮ_３）が導入された自己組織化ペプチドのＤＭＳＯ溶液（ペプチド濃度：３ｗ／ｖ％）とブロモフェノールブルーを含む水溶液とを体積比１：２で混合し、ブロモフェノールブルーを分散させたペプチドゲルを得た。得られたペプチドゲルの上層に６００μｌの緩衝液を添加し、０．５，１，２，４，８時間経過後に、上層の緩衝液の５９０ｎｍでの吸光度をバイオフォトメータープラス(エッペンドルフ社製)で測定した。各時間の吸光度から算出した濃度を図５に示す。本発明のペプチドゲルからの徐放速度は、上記Ｎａｇａｉらに開示されたハイドロゲルＲＡＤＡ１６（親水性ペプチドと疎水性ペプチドが交互に配置された自己組織化ペプチドを用いたゲル）と同程度であった。

［試験例２］
ブロモフェノールブルーに代えて、フェノールレッドを用いた以外は試験例１と同様にして、フェノールレッドを分散させたペプチドゲルを得た。０．５，１，２，４，８時間経過後に、得られたペプチドゲルの上層の緩衝液の４０５ｎｍでの吸光度をバイオフォトメータープラス(エッペンドルフ社製)で測定した。各時間の吸光度から算出した濃度を図６に示す（図６中▲のプロット）。本発明のペプチドゲルからの徐放速度は、上記Ｎａｇａｉらに開示されたハイドロゲルＲＡＤＡ１６（親水性アミノ酸と疎水性アミノ酸が交互に配置された自己組織化ペプチドを用いたゲル）と同程度であった。

［試験例３］
Ｃ末端にアジドフェニルアラニンが導入された自己組織化ペプチドに代えて、参考例２で得られたＮ末端にビオチン結合リジンが導入された自己組織化ペプチドのＤＭＳＯ溶液（ペプチド濃度：３ｗ／ｖ％）を用いた以外は試験例２と同様にして、上層の緩衝液の吸光度を測定した。各時間の吸光度から算出した濃度を図６に示す（図６中△のプロット）。本発明のペプチドゲルからの徐放速度は、上記Ｎａｇａｉらに開示されたハイドロゲルＲＡＤＡ１６（親水性アミノ酸と疎水性アミノ酸が交互に配置された自己組織化ペプチドを用いたゲル）と同程度であった。

［試験例４：細胞培養試験］
参考例１で得られたＣ末端にアジドフェニルアラニンが導入された自己組織化ペプチド（２ｍｍｏｌ）に１００μｌのＤＭＳＯを加えてよく混合し、混合液を得た。９６ｗｅｌｌの組織培養用マイクロプレート(旭硝子社製)に該混合液を１ｗｅｌｌあたり２０μｌ添加した。さらに、培地ＤＭＥＭ(和光純薬社製)１８０μｌを加えて、３０分ＣＯ_２インキュベータ内（アステック社製）で静置し、ゲル化および平衡化させ、上澄みを除いた。培地内のＤＭＳＯ除去のために、上記培地の添加と回収を数回繰り返した。Ｗｅｌｌ内にＨＥＫ２９３細胞を播種し、ＣＯ_２インキュベータ内で３日間培養した。図７に培養後のペプチドゲルの写真を示す。培養後のペプチドゲルを顕微鏡で観察すると、ゲル内で細胞が増殖しており（図７中線で囲んだ部分）、細胞の生存を確認した。

［試験例５］
Ｃ末端にアジドフェニルアラニンが導入された自己組織化ペプチドに代えて、参考例２で得られたＮ末端にビオチン結合リジンを導入した自己組織化ペプチドを用いたこと、ＨＥＫ２９３細胞に代えてマウス３Ｔ３細胞を用いた以外は試験例４と同様にして、細胞を培養した。図８に培養後のペプチドゲルの写真を示す。培養後のペプチドゲルを顕微鏡で観察すると、ゲル内で細胞が増殖しており（図８中線で囲んだ部分）、細胞の生存を確認した。

試験例１〜５の結果からわかるとおり、本発明のペプチドゲルは、従来のペプチドゲルよりも高強度であるが、薬剤の徐放性や細胞培養については従来のペプチドゲルと同様に好適に用いることができる。

本発明のペプチドゲルは、再生医療、ドラッグデリバリーシステム、化粧品、人工硝子体、止血剤、美容整形用注射剤、骨充填、関節潤滑剤、湿潤用保水材等に適用され得る。

Claims (9)

1. 光架橋により共有結合を形成する反応基および／または生体分子間相互作用により結合可能なリンカー構造を有するアミノ酸を含む自己組織化ペプチドを含む水溶液から形成される、ペプチドゲル。
2. 前記光架橋により共有結合を形成する反応基が自己組織化ペプチドのアミノ基と共有結合可能な反応基である、請求項１に記載のペプチドゲル。
3. 前記共有結合および／または分子間相互作用により結合可能なアミノ酸がアジドフェニルアラニン、ビオチン結合リジン、ベンゾリルフェニルアラニンからなる群より選択される少なくとも１種である、請求項１または２に記載のペプチドゲル。
4. 前記自己組織化ペプチドのアミノ基と共有結合可能な反応基が自己組織化ペプチドのＣ末端に導入されている、請求項１から３のいずれかに記載のペプチドゲル。
5. 前記自己組織化ペプチドが、ＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤ（配列番号１）、ＤＬＲＬＤＬＬＬＤＬＲＬＤ（配列番号５）、ＤＡＲＬＤＬＡＬＤＬＲＬＤ（配列番号６）、ＤＬＲＬＤＬＡＬＤＬＲＡＤ（配列番号７）、ＤＡＲＬＤＬＬＬＤＬＲＬＤ（配列番号８）、ＤＡＲＬＤＬＬＬＤＬＲＡＤ（配列番号９）、ＤＬＲＬＤＡＬＬＤＬＲＬＤ（配列番号１０）、または、ＤＬＲＬＤＬＬＡＤＬＲＬＤ（配列番号１１）のアミノ酸配列からなるペプチドである、請求項１から４のいずれかに記載のペプチドゲル。
6. 前記自己組織化ペプチドが下記のアミノ酸配列からなる、請求項１から４のいずれかに記載のペプチドゲル：
   アミノ酸配列：ａ_１ｂ_１ｃ_１ｂ_２ａ_２ｂ_３ｄｂ_４ａ_３ｂ_５ｃ_２ｂ_６ａ_４
   （該アミノ酸配列中、ａ_１〜ａ_４は、塩基性アミノ酸残基であり；ｂ_１〜ｂ_６は、非電荷極性アミノ酸残基および／または疎水性アミノ酸残基であり、ただし、そのうちの少なくとも５個は、疎水性アミノ酸残基であり；ｃ_１およびｃ_２は、酸性アミノ酸残基であり；ｄは、疎水性アミノ酸残基である。）
7. 前記自己組織化ペプチドが、ＲＬＤＬＲＬＡＬＲＬＤＬＲ（配列番号４）、ＲＬＤＬＲＬＬＬＲＬＤＬＲ（配列番号１２）、ＲＡＤＬＲＬＡＬＲＬＤＬＲ（配列番号１３）、ＲＬＤＬＲＬＡＬＲＬＤＡＲ（配列番号１４）、ＲＡＤＬＲＬＬＬＲＬＤＬＲ（配列番号１５）、ＲＡＤＬＲＬＬＬＲＬＤＡＲ（配列番号１６）、ＲＬＤＬＲＡＬＬＲＬＤＬＲ（配列番号１７）、または、ＲＬＤＬＲＬＬＡＲＬＤＬＲ（配列番号１８）のアミノ酸配列からなるペプチドである、請求項６に記載のペプチドゲル。
8. 請求項１から７のいずれかに記載のペプチドゲルを含む、細胞培養用基材。
9. 請求項１から７のいずれかに記載のペプチドゲルを含む、薬剤輸送・徐放用担体。