JP2009545421A - 創傷組織を治療するための固体包帯材の製造方法 - Google Patents

Abstract

ヒトなどの哺乳動物における創傷組織を治療するための固体包帯材であって、フィブリノーゲン構成要素およびフィブリノーゲン活性体から本質的になる止血層を含む固体包帯材の調製方法を提供する。また、これらの包帯材を使用して創傷組織を治療する方法、ならびにこれらの包帯材の止血層を調製するのに、または哺乳動物における創傷組織を治療するのに有用な凍結組成物および液体組成物を提供する。

Description

本発明は、ヒトなどの哺乳動物患者における創傷組織を治療するための固体包帯材の製造方法、ならびに該方法よって製造される包帯材および中間体に関する。

プレホスピタルケアにおいて出血を止めるのに利用可能な材料および方法（ガーゼ包帯材、直接圧迫および止血帯）は、残念なことに、過去２０００年間で大きく変わっていない（非特許文献１参照）。熟練者にかかっても、一律に効果的でなく、接触可能な部位からの過剰な出血または致命的な出血が生じることも珍しくない（非特許文献２参照）。

ベトナムの死亡率データは、戦死の１０％が、抑制されない肢出血によるものであることを示している（非特許文献３参照）。効果的な戦場の出血抑制方法を使用することによって、ベトナム戦争時の失血による死亡の３分の１までを防ぐことができたであろう（非特許文献３参照）。

一般市民の外傷死亡率統計では、肢出血によるプレホスピタル死の正確な数が提示されていないが、事例および逸話報告は、同様の発生を示している（非特許文献２参照）。生存率の実質的な増加は、簡単かつ効果的な出血抑制方法のプレホスピタル使用に影響され得ることがこれらのデータによって示唆される。

従来のガーゼ包帯の欠陥を克服するために開発された、いくつかのより新しい止血剤が現在使用されている。これらの止血剤には以下のものが含まれる。
・多孔性多糖粒子（ＴｒａｕｍａＤＥＸ（登録商標）、Ｍｅｄａｆｏｒ Ｉｎｃ．（ミネソタ州Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ））；
・ゼオライト（ＱｕｉｋＣｌｏｔ（登録商標）、Ｚ−Ｍｅｄｉｃａ Ｃｏｒｐ（コネチカット州Ｗａｌｌｉｎｇｔｏｎ））；
・アセチル化ポリ−Ｎ−アセチルグルコサミン（Ｒａｐｉｄ Ｄｅｐｌｏｙｍｅｎｔ Ｈｅｍｏｓｔａｔ（商標）（ＲＤＨ）、Ｍａｒｉｎｅ Ｐｏｌｙｍｅｒ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（マサチューセッツ州Ｄａｎｖｅｒｓ））；
・キトサン（ＨｅｍＣｏｎ（登録商標）包帯、ＨｅｍＣｏｎ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ ｉｎｃ．（オレゴン州Ｐｏｒｔｌａｎｄ））；
・液体フィブリンシーラント（Ｔｉｓｓｅｅｌ ＶＨ、Ｂａｘｔｅｒ（イリノイ州Ｄｅｅｒｆｉｅｌｄ））；
・ウマコラーゲン上のヒトフィブリノーゲンおよびトロンビン（ＴａｃｈｏＣｏｍｂ−Ｓ、Ｈａｆｓｌｕｎｄ Ｎｙｃｏｍｅｄ Ｐｈａｒｍａ（オーストリアＩｉｎｚ）；
・微小分散酸化セルロース（ｍ＃ｄｏｃ（商標）、Ａｌｌｔｒａｃｅｌ Ｇｒｏｕｐ（アイルランドＤｕｂｌｉｎ））；
・没食子酸プロピル（Ｈｅｍｏｓｔａｔｉｎ（商標）、Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｃｏｎｔｒｏｌ Ｓｙｓｔｅｍｓ Ｉｎｃ．（インディアナ州Ｆｉｓｈｅｒｓ））；
・イプシロンアミノカプロン酸およびトロンビン（Ｈｅｍａｒｒｅｓｔ（商標）貼付材、Ｃｌａｒｉｏｎ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ，Ｉｎｃ））；
・純化ウシ真皮コラーゲン（Ａｖｉｔｅｎｅ（登録商標）シート（不織布またはＡｖｉｔｅｎｅミクロフィブリルコラーゲン止血薬（ＭＣＨ）、Ｄａｖｏｌ，Ｉｎｃ．（ロードアイランド州Ｃｒａｎｓｔｏｎ））；
・再生セルロースの調節酸化（Ｓｕｒｇｉｃｅｌ（登録商標）、Ｅｔｈｉｃｏｎ Ｉｎｃ．（ニュージャージ州Ｓｏｍｅｒｖｉｌｌｅ））：
・エチルセルロース被膜を有する硫酸アルミニウム（Ｓｏｒｂａｓｔａｃｅ Ｍｉｃｒｏｃａｐｓ、Ｈｅｍｏｓｔａｃｅ，ＬＬＣ（ルイジアナ州Ｎｅｗ Ｏｒｌｅａｎｓ））；
・微孔性ヒドロゲル形成ポリアクリルアミド（ＢｉｏＨｅｍｏｓｔａｔ、Ｈｅｍｏｄｙｎｅ，Ｉｎｃ．（ヴァージニア州Ｒｉｃｈｍｏｎｄ）；および
・組換え活性化因子ＶＩＩ（ＮｏｖｏＳｅｖｅｎ（登録商標）、ＮｏｖｏＮｏｒｄｉｓｋ Ｉｎｃ．（ニュージャージ州Ｐｒｉｎｃｅｔｏｎ）。
これらの薬剤は、外傷の動物モデルおよび／または戦場において使用された場合に成功の度合いが異なっていた。

１つの当該薬剤は、ＴｒａｕｍａＤＥＸ（商標）の商品名で販売されているデンプン系止血剤である。この製品は、傷の中または上に直接注がれる微孔性多糖粒子を含む。該粒子は、傷における血液および血漿から水を吸収して、凝血因子および血小板の蓄積および濃縮をもたらすことによって、それらの止血効果を発揮すると思われる。しかし、致死的な鼠径部創傷モデルの２つの試験において、この薬剤は、標準的なガーゼ包帯に比べて有意な利点を示さなかった（非特許文献４参照）。

別の粒子系薬剤は、傷の中または上に直接注がれるゼオライト顆粒止血剤であるＱｕｉｃｋＣｌｏｔ（商標）粉末である。該ゼオライト粒子も、凝血因子および血小板の蓄積および濃縮をもたらす液体吸収を介してそれらの止血効果を発揮すると思われる。この薬剤は、いくつかの動物試験において成功裡に使用されたが、粒子による液体吸収の発熱プロセスに関する懸念が残る。この反応は、三度熱傷を引き起こすのに十分に苛酷である、インビトロで１４３℃を超える温度およびインビボで５０℃を超える温度を生じさせることがいくつかの試験によって示された（非特許文献５参照）。ＱｕｉｃｋＣｌｏｔ（商標）の発熱反応は、臨床的有意性が未知の全体および組織学的組織変化をもたらすことも確認された（非特許文献６参照）。

これらの粒子系薬剤と異なり、Ｒａｐｉｄ Ｄｅｐｌｏｙｍｅｎｔ Ｈｅｍｏｓｔａｔ（商標）は、赤血球凝集、血小板活性化、凝血カスケード活性化および局部血管収縮を介してその止血効果を発揮すると思われる。Ｒａｐｉｄ Ｄｅｐｌｏｙｍｅｎｔ Ｈｅｍｏｓｔａｔ（商標）は、ポリ−Ｎ−アセチル−グルコサミンで構成された寒天誘導包帯材である。本来の包帯材設計は、小さな出血を抑えるのに有効であったが、大動脈および肝臓傷害のブタモデルにおいて、失血を抑えるためにガーゼ裏当てを追加する必要があった（非特許文献７参照）。

別のポリ−Ｎ−アセチル−グルコサミン由来包帯材は、報告によると、傷の部位におけるキトサンの粘膜付着性表面密度および構造的保全性を最適にするように設計された凍結乾燥キトサン包帯材であるＨｅｍＣｏｎ（商標）キトサン包帯である。ＨｅｍＣｏｎ（商標）キトサン包帯は、主に傷に対する接着を介してその止血効果を発揮すると思われるが、血小板機能を向上させ、傷上に形成する血塊に赤血球を導入することもできることを示唆する証拠もある。この包帯は、動脈出血のいくつかの動物モデルにおいて止血の向上および失血の抑制を示したが、傷に対する接着が不十分であるために失敗したものを含めて、包帯間の顕著なばらつきが観察された（非特許文献８参照）。

Ｔｉｓｓｅｅｌ ＶＨなどの液体フィブリンシーラントは、出血抑制のための手術室補助材として長年使用されてきた（非特許文献９；非特許文献１０；非特許文献１１；非特許文献１２；非特許文献１３参照）。止血のための組織接着剤が最初に言及されたのは、１９０９年に遡る（非特許文献１４参照）。液体フィブリンシーラントは、典型的には、フィブリノーゲンおよびトロンビンで構成されるが、フィブリノーゲン精製の副産物として、または追加成分として因子ＸＩＩＩ／ＸＩＩＩａを含んでいてもよい（したがって、一部の用途において、十分な因子ＸＩＩＩ／ＸＩＩＩａまたは他のトランスアミナーゼが内在して、フィブリン形成を誘発するため、因子ＸＩＩＩ／ＸＩＩＩａがフィブリンに存在する必要がない。）。しかし、液体として、これらのフィブリンシーラントは、戦場における外傷を治療するのに有用であることが証明されなかった。

コラーゲン支持体を有する乾燥フィブリノーゲン−トロンビン包帯材（例えば、Ｈａｆｓｌｕｎｄ Ｎｙｃｏｍｅｄ Ｐｈａｒｍａ（オーストリアＩｉｎｚ）から入手可能なＴａｃｈｏＣｏｍｂ（商標）、ＴａｃｈｏＣｏｍｂ（商標）ＨおよびＴａｃｈｏＳｉｌ）も多くのヨーロッパ諸国において手術室での用途に利用可能である（非特許文献１５参照）。これらのフィブリノーゲン−トロンビン包帯材は、液体フィブリンシーラントに必要な予備混合を必要としないが、４℃で保管する必要があり、傷に適用する前に食塩水で予め濡らす必要があることにより、戦場用途に対するそれらの利用には限界がある。これらの包帯材は、また、高圧、高容量の出血に対して効果的でない（非特許文献１６参照）。

創傷組織を治療するための乾燥フィブリノーゲン／トロンビン包帯材は、米国赤十字社（ＡＲＣ）からも入手可能である。特許文献１に開示されているように、この特定の包帯材は、裏当て材料および複数の層で構成され、その２つの外層は、フィブリノーゲンを含み（ただし、トロンビンを含まない）、内層は、トロンビンおよび塩化カルシウムを含む（ただし、フィブリノーゲンを含まない）。この包帯材は、いくつかの出血の動物モデルにおいて大きな成功を示したが、包帯は、脆弱で、柔軟性がなく、扱うと裂ける傾向がある（非特許文献７；非特許文献１７参照）。

他のフィブリノーゲン／トロンビン系包帯材も提案された。例えば、特許文献２には、フィブリノーゲンおよびトロンビンなどの凝集タンパク質を含むコラーゲンなどの糖タンパク質マトリックスで構成される傷の閉鎖および治癒のための吸収性シート材料が開示されている。特許文献３には、その少なくとも一方がＰＥＧ、ＰＶＰ、ＢＳＡ、マンニトール、ＦＩＣＯＬＬ、デキストラン、ミオイノシトールまたは塩化カルシウムなどの補強充填剤も含有するフィブリノーゲンおよびトロンビンの個別層で構成された補強生物学的シーラントが開示されている。特許文献４には、ヒアルロン酸またはカルボキシメチルセルロースなどの生体吸収性ポリマー、ならびに粉末トロンビンおよび／または粉末フィブリノーゲンで構成された止血組成物で構成された包帯材が開示されている。特許文献５には、（ｉ）フィブリノーゲンの粒子；（ｉｉ）トロンビンの粒子；および（ｉｉｉ）塩化カルシウムをその上に有する裏当て材料で構成された包帯が開示されている。特許文献６には、裏当て材料、およびそれらの間にトロンビンの離散領域を有する複数のフィブリノーゲン層で構成された包帯材が開示されている。今日まで、これらの包帯材のいずれもが使用のために許可されておらず、または市販されていない。

加えて、フィブリノーゲン／トロンビン固体包帯材を製造するための過去の努力は、まさしくそれらを傷の治療のための望ましい成分にする特性−水性条件下で迅速に反応してフィブリンを形成する能力によって常に妨げられてきた。因子ＸＩＩＩの存在は、フィブリンＩａを架橋フィブリンＩＩにさらに変換させる混合物をもたらす。

ヒトについての全体的な凝血プロセスを図１に示す。そこに示されるように、フィブリノーゲンのフィブリンIへの変換は、それぞれフィブリノーゲンのアルファ（α）鎖およびベータ（β）鎖からの２つの小ペプチド（ＡおよびＢ）の開裂を含む。これらの小ペプチドは、直接検出・監視するのが困難である。しかし、この開裂に起因するアルファ鎖およびベータ鎖の分子量の減少をゲル電気泳動によって監視することができる。同様に、フィブリンＩの架橋フィブリンＩＩへの変換後に、フィブリノーゲンのガンマ（γ）鎖単量体のゲル上で消失し得る（γ鎖単量体に対する因子ＸＩＩＩの作用によってγ−γ二量体に変換されるため）。

未熟な反応を回避するために、フィブリノーゲン／トロンビン固体包帯材を製造するこれまでの試みは、包帯材の使用前にあまりにも多くのフィブリンを形成することを防止するために、フィブリノーゲン構成要素とトロンビン構成要素をできるだけ分離することを強調していた。例えば、Ｈａｆｓｌｕｎｄ Ｎｙｃｏｍｅｄ Ｐｈａｒｍａから入手可能な、コラーゲン支持体を有するフィブリノーゲン−トロンビン包帯材（例えば、ＴａｃｈｏＣｏｍｂ（商標）、ＴａｃｈｏＣｏｍｂ（商標）ＨおよびＴａｃｈｏＳｉｌ）は、フィブリノーゲンおよびトロンビンの粒子を非水性液に懸濁させ、次いで懸濁液をコラーゲンベース上に噴霧することによって調製される。水性環境でなく、非水性環境を使用することは、フィブリノーゲンとトロンビンの過度の相互作用を防止することを目的とする。

それぞれフィブリノーゲンとトロンビンをできるだけ分けて維持するように同様に設計された、この方法の別法が提案された。例えば、特許文献５に開示されているフィブリノーゲン／トロンビン固体包帯材は、溶媒の不在下で粉末フィブリノーゲンと粉末トロンビンを混合し、次いで乾燥粉末混合物を裏当て材料の接着側に塗布することによって調製された。特許文献１および特許文献６に開示されているフィブリノーゲン／トロンビン固体包帯材は、それぞれ実質的に互いに接触しないフィブリノーゲンまたはトロンビンの個別層および離散層を含む。しかし、これらの手法は、完璧でなかった。

適正に機能するために、フィブリノーゲン／トロンビン系固体包帯材は、いくつかの基準を満たさなければならない。最初に、フィブリノーゲンおよびトロンビンは、首尾よく相互作用して血塊を形成できなければならず、この血塊が傷に多く接着するほど、包帯材が良好に機能する。全体的に、ひび割れおよび剥落等による活性成分のロスは、究極的には性能の低下をもたらし、使用者の人気が落ちるため、包帯材は高度の保全性を有していなければならない。既知のフィブリノーゲン／トロンビン固体包帯材は、これらの特性の１つ以上を欠いていることが報告された。

また、包帯材のすべての部分が、その順調な使用を保証するために、同等に十分に機能しなければならないため、均質でなければならない。包帯材は、また、迅速かつ大きな労力または特別の労力を伴わずに水和しなければならない。相対的に平坦な包帯材が一般的に好ましく、可能であれば渦巻き状または不規則な非平面構造を避けるべきである（これらは、効果的な利用を妨害し、場合によっては性能の低下をもたらし得る。）。柔軟性は、性能を向上させるとともに、効果的に治療できる傷の形状寸法および箇所の数を増加するのに極めて好ましい別の特性である。既知のフィブリノーゲン／トロンビン固体包帯材は、水和すると柔軟になり得るが、水和前に柔軟性を有するのに十分な水分を保有していない（例えば、非特許文献１６、非特許文献１８、非特許文献１９参照）。

使用前に包帯材に存在するフィブリン、特に不溶性の架橋フィブリンＩＩの量は、比較的少なくなければならない。この後者の特性は、いくつかの理由により重要である。第１に、製造時における不溶性フィブリンの存在は、保全性の低下、均質性の欠如および困難／緩慢な水和を示し得る低品質の包帯材を通常もたらす。これらの結果は、通常は、当業者によって視覚的に検出され得る。

例えば、フィブリノーゲン／トロンビン系固体包帯材における前形成フィブリンの存在を均質な表面外観からのずれによって視覚的に検出することができる。特に、粗い外観またはでこぼこの外観は、製造時に形成され、性能をさらに損なう可能性が高い著しいフィブリンの塊が存在することを伝えることが多い。固体包帯材の表面上の固体の平滑かつ光沢性のある「シート」も、使用中に水和を緩慢化させる（またはさらには阻止する）傾向を有することになるフィブリンの合図である。固体包帯材の過度の巻上りは、製造時に著しい量のフィブリンが形成されたことを示す別の合図である。水または水溶液を添加すると、過度のフィブリン含有量を有する包帯材は、水和が遅く、水和を開始するために、ときには表面の機械的浸透による液体の強制的な印加をしばしば必要とする。さらに、一度水和すると、著しい量の前形成フィブリンを有する包帯材は、まだらのある際だって不均質な外観を通常有する。

前形成フィブリンの量を特許文献６に記載されている方法などの様々な生化学的アッセイによって評価することもできる。このアッセイによると、フィブリノーゲンγ鎖の架橋γ−γ二量体への変換をフィブリンの存在の指標として用いる（γ−γ二量体に変換されるγ鎖の割合が、生成されたフィブリンの量の測度になる。）。

他のアッセイは、Ａα鎖の遊離α鎖およびフィブリノペプチドＡへの変換またはＢβ鎖の遊離β鎖およびフィブリノペプチドＢへの変換などのフィブリノーゲンの他の構成要素鎖の変化を評価することが可能である。これらの変化を特許文献６に記載されているγからγ−γへの変換と同様にしてゲル電気泳動によって監視することができる。興味深いことに、特許文献６において、比較的高レベル（１０％まで）のγ−γ二量体化が報告され、これらの包帯材は、使用前に実質的な量のフィブリンを含むことが示された。この所見は、これらの包帯材のいくつかに観察された剥離および／またはひび割れを説明することができる。

適正に機能するフィブリノーゲン／トロンビン系固体包帯材では、水和は、通常数秒以内で完了し、水（または何らかの水溶液）を包帯材上に加えること以外に何も必要としないはずである。この溶液は、包帯材が貼付される傷部からの血液または別の体液であり得るか、あるいは包帯材が治療すべき傷上に存在している間に包帯材に加えられる生理食塩水または他の生理的に許容し得る水性液体などの何らかの外部供給源からのものであってもよい。より長い水和時間、すなわち一般には５秒を超える水和時間は、包帯材のいくつかの部分が失われるか、または十分な架橋フィブリンの形成前に自由に流動し続けることになる液体内に流され得るため、包帯材の性能を損なうことになる。継続的な出血の潜在的に致命的な結果を考慮すると、使用中の包帯材の水和の遅れは、極めて望ましくない。加えて、過度のフィブリン含有量を有する包帯材の性能は、本明細書に記載するＥＶＰＡおよび粘着アッセイならびにインビボ試験および臨床的使用時における低スコアによって反映されるように、通常劣っている。

よって、創傷組織、特に戦場における外傷に起因する創傷組織を治療するのに使用できる固体包帯材の必要性が当該技術分野に依然として存在する。

米国特許第６，７６２，３３６号明細書 米国特許第４，６８３，１４２号明細書 米国特許第５，７０２，７１５号明細書 米国特許第６，０５６，９７０号明細書 米国特許第７，１８９，４１０号明細書 米国特許出願公開第２００６／０１５５２３４号明細書 米国特許第３，０１２，８９３号明細書 米国特許第５，７１６，６４５号明細書

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したがって、本発明の目的は、哺乳動物の創傷組織、特に外傷に起因する創傷組織を治療することができる固体包帯材の製造方法を提供することである。本発明のさらなる目的は、哺乳動物の創傷組織、特にヒトの組織を治療するための固体包帯材、および当該包帯材の製造に有用な中間体を提供することである。本発明の他の目的、特徴および利点は、以下の好ましい実施形態の詳細な説明に記載され、一部にその説明から明らかになり、かつ／または本発明の実践によって学習することができる。これらの目的および利点は、本明細書に記載され、特に以下の請求項に指摘されている方法および組成物によって実現・達成されることになる。

これらの目的および他の目的に従って、本発明の第１の実施形態は、哺乳動物における創傷組織を治療するための固体包帯材の製造方法であって、（ａ）フィブリノーゲン活性体によるフィブリノーゲン構成要素の活性化を阻害するのに十分に低い温度で、フィブリノーゲン構成要素とフィブリノーゲン活性体の水性液体混合物を形成すること、（ｂ）水性混合物の温度を低下させて、凍結水性混合物を形成すること、および（ｃ）凍結水性混合物の水分含有量を低下させて、フィブリノーゲン構成要素およびフィブリノーゲン活性体から本質的になる止血層を有する固体包帯材を製造することを含む方法を対象とする。

本発明の他の実施形態は、この方法によって製造される固体包帯材およびこの方法を通じて製造される中間体を対象とする。

好ましい実施形態についての先述の概略説明および以下の詳細な説明は、例示的および説明的なものにすぎず、本明細書に主張する発明のさらなる説明を提供するが、それに限定されないことを意図することを理解されたい。

ＥＲＬのウェブサイト（http://www.enzymeresearch.co.uk/coag.htm）によって提供されるヒト凝血カスケードの概観図である。 本明細書に記載する生体外ブタ動脈切開アッセイのための機構の図である。 実施例１で達成された結果を示すグラフである。 実施例６から１２で製造した包帯材に対するＥＶＰＡおよび粘着アッセイの結果を示すグラフである。 実施例１３に示される、−８０℃で保管された凍結組成物の性能特性を示すグラフである。 実施例２０、２１および２２で達成された結果を示すグラフである。 実施例２０、２１および２２で達成された結果を示すグラフである。 実施例２０、２１および２２で達成された結果を示すグラフである。 実施例２０、２１および２２で達成された結果を示すグラフである。 実施例２０、２１および２２で達成された結果を示すグラフである。

他に指定する場合を除いて、本明細書に用いられているすべての技術用語および科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者に広く理解されているのと同じ意味を有する。本明細書に言及されているすべての特許および文献は、参照により組み込まれている。

本明細書に用いられているように、「ａ」、「ａｎ」および「ｔｈｅ」などの単数冠詞は、文脈がそうでないことを明確かつ明瞭に指示する場合を除いて、その冠詞の対象の複数物を排除することを意図しない。

本明細書に用いられている「患者」は、医療介護および／または治療を必要とするヒトまたは動物の個体を指す。

本明細書に用いられている「傷」は、循環系からの血液および／または患者の身体からの任意の他の液体の損失をもたらす患者の任意の組織に対する任意の損傷を指す。組織は、臓器または血管などの内部組織であってもよいし、皮膚などの外部組織であってもよい。失血は、破壊臓器からなどの内的なものであってもよいし、裂傷からなどの外的なものであってもよい。傷は、臓器などの軟質組織に存在してもよいし、骨などの硬質組織に存在してもよい。損傷は、外傷、感染または外科的介入を含む任意の物質または源によって引き起こされたものであってもよい。

本明細書に用いられている「吸収性材料」は、自然にかつ／または哺乳動物の身体によって分解されて、癒傷および／または組織再生に著しく干渉しないように、かつ著しい代謝妨害を引き起こさずに、消費または除去される成分になる材料を指す。

本明細書に用いられている「安定性」は、活性および／または機能を決定づける材料の特性の維持を指す。

本明細書に用いられている「好適な」は、材料が包帯材またはその任意の構成要素の安定性に悪影響を及ぼさないことを意味することを意図する。

本明細書に用いられている「結着剤」は、包帯材の止血層の構成要素の接着性および／または凝集性を向上させる化合物または化合物の混合物を指す。

本明細書に用いられている「可溶化剤」は、水性溶媒への１つまたは複数のタンパク質の溶解を向上させる化合物または化合物の混合物を指す。

本明細書に用いられている「充填剤」は、包帯材の止血層に嵩および／または多孔性を与える化合物または化合物の混合物を指す。

本明細書に用いられている「離型剤」は、製造金型からの包帯材の除去を容易にする化合物または化合物の混合物を指す。

本明細書に用いられている「発泡剤」は、好適な条件下で水和すると気体を生成する化合物または化合物の混合物を指す。

本明細書に用いられている「固体」は、包帯材が、傷に直面する側を下向きにして硬質表面に配置され、次いで室温で２４時間放置された場合に形状が実質的に変化しないことを意味することを意図する。

本明細書に用いられている「凍結した」は、組成物が、傷に直面する側を下向きにして硬質表面に配置され、次いで−４０℃で２４時間放置された場合に形状が実質的に変化しないが、傷に直面する側を下向きにして硬質表面に配置され、次いで室温で２４時間放置された場合に形状が実質的に変化することを意味することを意図する。したがって、本発明の文脈では、「固体」包帯材は「凍結した」ものではなく、「凍結した」組成物または混合物は「固体」ではない。

本発明の第１の好ましい実施形態は、哺乳動物における創傷組織を治療するための固体包帯材の製造方法であって、（ａ）フィブリノーゲン活性体によるフィブリノーゲン構成要素の活性化を阻害するのに十分に低い温度で、フィブリノーゲン構成要素とフィブリノーゲン活性体の水性液体混合物を形成すること、（ｂ）水性混合物の温度を低下させて、凍結水性混合物を形成すること、および（ｃ）凍結水性混合物の水分含有量を低下させて、フィブリノーゲン構成要素およびフィブリノーゲン活性体から本質的になる止血層を有する固体包帯材を製造することを含む方法を対象とする。

本明細書に用いられているように、「から本質的になる」は、フィブリノーゲン構成要素およびフィブリノーゲン活性体が、創傷組織を治療することを目的として使用される場合に固体包帯材の止血層の唯一の必要かつ必須の成分であることを意味することを意図する。よって、止血層は、フィブリノーゲン構成要素およびフィブリノーゲン活性体に加えて、特定の用途に所望される他の成分を含有してもよいが、これらの他の成分は、固体包帯材が通常の条件下で意図するように機能するために必要とされない。すなわち、これらの他の成分は、意図する使用条件下で包帯材を組織に貼付する場合に、フィブリノーゲン構成要素およびフィブリノーゲン活性体が反応し、通常の創傷組織からの血液および／または液体の流量を減少させるのに十分なフィブリンを形成するのに必要でない。しかし、特定の状況における使用の条件が正常でない場合、例えば、患者が因子ＸＩＩＩ欠乏症にかかっている血友病患者である場合は、本発明の主旨から逸脱することなく、因子ＸＩＩＩ／ＸＩＩＩａまたはある種の他のトランスアミナーゼなどの適切なさらなる構成要素を止血層に添加することができる。同様に、本発明の固体包帯材は、これらの止血層の１つまたは複数の層、ならびに１つまたは複数の支持層（例えば、裏当て材料または内部支持材料）および剥離層などの１つまたは複数の他の層を含むことができる。

本発明の他の好ましい実施形態は、哺乳動物における創傷組織の治療方法であって、本発明の固体包帯材を創傷組織に貼付し、傷からの血液および／または他の液体の損失を抑えるのに十分なフィブリンを形成するのに十分な時間にわたって十分な圧力を包帯材に加えることを含む方法を対象とする。

さらに他の好ましい実施形態は、フィブリノーゲン構成要素、フィブリノーゲン活性体および水から本質的になる組成物であって、低温で少なくとも２４時間安定する組成物を対象とする。これらは凍結した組成物および液体組成物を含む。当該組成物は、本発明の固体包帯材の止血層の調製に特に有用であるが、それ自体を創傷組織の治療に使用することもできる。

本発明の一部の実施形態によれば、固体包帯材の止血層は、単一片として注型される。これらの実施形態によれば、フィブリノーゲン構成要素の水溶液およびフィブリノーゲン活性体の水溶液を金型等の好適な容器に混合しながら導入することによって止血層を形成することができる。次いで、得られた水性混合物を冷却して、フィブリノーゲン構成要素およびフィブリノーゲン活性体の凍結水性混合物を形成する。

本発明の一部の他の実施形態によれば、止血層は、単一源、例えば、フィブリノーゲンとフィブリノーゲン活性体の混合物を含有する水溶液から作製される。これらの実施形態によれば、フィブリノーゲン構成要素とフィブリノーゲン活性体の液体水性混合物を金型等の好適な容器に導入し、次いで温度を低下させて、フィブリノーゲン構成要素とフィブリノーゲン活性体の凍結水性混合物を形成することによって止血層を形成することができる。

好ましくは、本発明の実施形態の各々において、止血層は、全体を通じて実質的に均質である。

本発明の一部の好ましい実施形態によれば、固体包帯材は、金型を使用して製造される。これらの実施形態によれば、固体包帯材は、止血層および支持層に加えて、剥離層を所望によりさらに含むことができる。本明細書に用いられているように、「剥離層」は、その中で固体包帯材が製造された金型からの固体包帯材の除去を促進または容易にする１つまたは複数の薬剤（「離型剤」）を指す。好ましい当該薬剤は、スクロースであるが、他の好適な離型剤としては、ゼラチン、ヒアルロンおよびヒアルロン酸などのその誘導体、マンニトール、ソルビトールならびにグルコールが挙げられる。当該剥離層は、好ましくは、フィブリノーゲン構成要素とフィブリノーゲン活性体の液体水性混合物または溶液を導入する前に金型に配置または形成される。

あるいは、当該１つまたは複数の離型剤を止血層に含有させることもできる。これらの実施形態によれば、液体水性混合物を金型に導入する前または最中に、離型剤を液体水性混合物に導入することができる。液体水性混合物を形成する前または最中に、離型剤をフィブリノーゲン構成要素および／またはフィブリノーゲン活性体の溶液に導入することができる。

フィブリノーゲン構成要素とフィブリノーゲン活性体の水性混合を任意の好適な容器で実施することができる。一部の好ましい実施形態によれば、混合に使用される容器は、液体水性混合物をその後に凍結させる金型である。当該実施形態によれば、フィブリノーゲン構成要素およびフィブリノーゲン活性体の個別の液体水溶液を同時に金型に導入することによって、２つの溶液を混合させる。あるいは、フィブリノーゲン構成要素およびフィブリノーゲン活性体の単一液体水溶液を容器内で調製し、次いで金型に導入することもできる。

所定の金型の大きさおよび幾何学構造は、製造する固体包帯材の所望の大きさおよび形に応じて当業者が経験的に決定することができる。金型の好適な材料としては、ポリ塩化ビニル（ＰＶＣ）、グリコール修飾ポリエチレンテトラフタレート（ＰＥＴＧ）およびポリエチレンなどのポリマーが挙げられるが、それらに限定されない。他の好適な材料としては、ステンレス鋼などの金属、紙、板紙および防水紙または防水板紙が挙げられる。金型を維持する温度で固体である高速溶解材料および／または凍結乾燥して固体にすることが可能な材料から金型を作製することもできる。

本発明の方法によれば、フィブリノーゲン構成要素とフィブリノーゲン活性体の液体水性混合物の形成を、フィブリノーゲン活性体によるフィブリノーゲン構成要素の活性化を阻害するのに十分に低い温度で行う。

フィブリノーゲン活性体によるフィブリノーゲン構成要素の活性化を当業者に知られており、利用可能な任意の好適な方法で測定することができる。例えば、得られた固体包帯材における均質な表面の外観からのずれに注目することによって、フィブリノーゲン構成要素の活性化によるフィブリンの形成を目視的に検知することができる。固体包帯材の表面の、固体の平滑かつ光沢性のある「シート」も、縁の過度のカールのようにフィブリンの兆候である。さらに、一度水和すると、著しい量のフィブリンを有する包帯材は、まだらのある際だって不均質な外観を通常有する。

好ましくは、特許文献６に記載されている方法などの様々な生化学的アッセイによって、フィブリノーゲン構成要素の活性化を評価することができる。このアッセイによれば、フィブリノーゲンγ鎖の架橋γ−γ二量体への変換を、フィブリノーゲン活性体によるフィブリノーゲン構成要素の活性化の指標として用いることができる（γ−γ二量体に変換されたγ鎖の割合が、活性化されたフィブリノーゲンの量に関連する。）。

他の生化学的アッセイは、Ａα鎖の遊離α鎖およびフィブリノペプチドＡへの変換またはＢβ鎖の遊離β鎖およびフィブリノペプチドＢへの変換などのフィブリノーゲンの他の構成要素鎖の変化を評価することが可能である。これらの変化を特許文献６に記載されているγからγ−γへの変換と同様にしてゲル電気泳動によって監視することができる。

本発明の方法を用いて調製される好ましい液体水性混合物は、一般には、検出可能なγ−γ二量体を含有しないが、ある状況では、包帯材が９％までのγ−γ二量体、またはさらには３８％までのγ−γ二量体を含有することが許容され得る。同様に、好ましい液体水性混合物は、６０％までの遊離α鎖を含有しても許容可能に機能することができる。特に好ましい水性混合物は、６０％未満の遊離α鎖、より好ましくは５０％未満、さらにより好ましくは４０％未満、３０％未満、２０％未満、または１０％未満のα鎖を含有することになる。一部の好ましい実施形態によれば、これらの値は、液体水性混合物が好適な温度、好ましくは４℃±２℃以下に維持されれば、経時的に殆ど変化しない。

液体水性混合物を調製するための温度は、フィブリノーゲン活性体によるフィブリノーゲン構成要素の活性化を阻害するのに十分な温度である。好ましくは、温度は、２℃から８℃以下、より好ましくは４℃±２℃以下である。任意の好適な方法を用いて、液体水性混合物を調製するための所望の温度を達成することができる。

一部の好ましい実施形態によれば、所望の温度以下の温度を有する環境に容器または金型を配置することによって所望の温度まで冷却する。好ましくは、容器または金型を、液体水性混合物を調製するための所望の温度より実質的に低い温度まで冷却する。特に好ましい実施形態によれば、約−８０℃の温度を有する環境に容器または金型を十分な時間配置することによって冷却する。

他の実施形態によれば、液体水性混合物を調製する前に、フィブリノーゲン構成要素の水溶液およびフィブリノーゲン活性体の水溶液を所望の温度まで冷却する。氷上に水溶液を含む容器を配置するなどの任意の好適な方法によって当該冷却を達成することができる。

液体水性混合物を調製すると、それを好適な温度で保管してもよいし、そのまま使用して、本発明の凍結水性混合物を調製してもよい。好ましくは、液体水性混合物をそのまま使用して、凍結水性混合物を調製する。

本発明の一部の好ましい実施形態によれば、続いて、液体水性混合物を、それがフィブリノーゲン構成要素とフィブリノーゲン活性体の凍結水性混合物になる温度まで冷却する。当該凍結水性混合物をそのまま使用してもよいし、好適な温度で保管してもよい。

当業者に知られており、利用可能な方法および技術のいずれかを用いて、液体水性混合物を必要な温度まで冷却することができる。例えば、液体水性混合物を、液体水性混合物を凍結させるのに十分な温度まで冷却された第２の容器または金型に導入することができる。あるいは、容器または金型内の液体水性混合物を、液体水性混合物を凍結させるのに十分な温度を有する環境に配置することができる。当該環境は、例えば、−５℃、−１０℃、−１５℃、−２０℃、−２５℃、−３０℃、−４０℃、−５０℃または−８０℃などの所定の温度に設定されたフリーザーを含むことが可能である。金型の１つまたは複数の表面が、所望の温度まで冷却された、かつ／または冷却される表面に密着するように金型を配置することができる。あるいは、液体水溶液を含む金型または容器をドライアイス（−７８℃）上に配置するか、またはドライアイス／アセトン、ドライアイス／液体窒素または液体窒素単独などの好適な冷却槽内に配置することもできる。金型または容器を、液体窒素の蒸発によって生成された窒素ガス流、または他の好適な低温の気体冷媒の中に配置することもできる。この場合、ガス流が、冷却される金型の単一側面と接触することが望まれ得る。より好ましい実施形態において、当該ガス流を、冷却される物体の２つ以上の側面に誘導することが可能である。

本発明の方法を用いて調製される好ましい凍結水性混合物は、一般には、検出可能なγ−γ二量体を含有しないが、ある状況では、混合物が９％までのγ−γ二量体、またはさらには３８％までのγ−γ二量体を含有することが許容され得る。同様に、好ましい凍結水性混合物は、５７％までの遊離α鎖を含有しても許容可能に機能することができる。特に好ましい凍結水性混合物は、５７％未満の遊離α鎖、より好ましくは４６％未満、さらにより好ましくは４６％未満、３１％未満、２０％未満、１６％未満または１０％未満のα鎖を含有することになる。一部の好ましい実施形態によれば、これらの値は経時的に殆ど変化しない。

凍結水性混合物を保管してもよいし、固体包帯材を調製する、または創傷組織を治療するためにそのまま使用してもよい。本発明の一部の実施形態は、これらの凍結水性混合物、および固体包帯材の調製または創傷組織の治療のためのそれらの使用を対象とする。

好ましくは、固体包帯材を調製するのに使用する場合は、水分含有量を所望の量、すなわち包帯材が固体であるが、凍結しておらず、傷に直面する表面を下に向けて室温で２４時間放置しても形状が実質的に変化しない量まで減少させる凍結乾燥などの処理を凍結水性混合物に施す。同じ結果を達成する乾燥、スプレー乾燥、真空乾燥およびガラス化などの同様の処理を採用してもよい。

本明細書に用いられているように、「水分含有量」は、包帯材における自由に利用可能な量を指す。「自由に利用可能な」は、水が包帯材の非液体構成要素の１つまたは複数の構成要素に結合または複合していないこと意味する。本明細書に言及されている水分含有量は、ＦＤＡに承認された修正カールフィッシャー法（非特許文献２０、非特許文献２１、非特許文献２２）と実質的に同様の手順または近赤外分光法によって測定された量を指す。

当業者は、固体包帯材を形成するための凍結水性混合物の温度およびその持続時間を含む（ただし、それらに限定されない）凍結乾燥の適切な条件を経験的に決定することができる。当該条件は、例えば、凍結水性混合物、固体包帯材の所望の水分含有量、方法が実施される環境および使用される装置に依存することになる。

本発明の方法によって製造される固体包帯材も本発明の好ましい実施形態である。当該包帯材は、さらなる水和を伴って、または伴わずに、創傷組織に適用されるとフィブリン塊を形成する十分なフィブリノーゲン構成要素および十分なフィブリノーゲン活性体を含有する。当該包帯材は、架橋しているか否かにかかわらず、望ましくない量のフィブリンを含有しない。当業者は、視覚的外観、柔軟性および水和時間などの固体包帯材の所定の特性、ならびにその意図する用途に基づいて、特定量のフィブリンが望ましくないかどうかを経験的に判断することができる（例えば、滲出傷への使用を意図する包帯材は、動脈傷への使用を意図する包帯材より多量のフィブリンを許容することができる。）。

所定の包帯材に存在するフィブリンの量を、当業者に知られており、利用可能である任意の好適な方法によって測定することができる。例えば、均質な表面の外観からのずれに注目することによって、特定の包帯材におけるフィブリンの量を検出することができる。固体包帯材の表面上の固体の平滑かつ光沢性のある「シート」も、縁の過度のカールのようにフィブリンの兆候である。さらに、一度水和すると、著しい量のフィブリンを有する包帯材は、まだらのある際だって不均質な外観を通常有する。

あるいは、フィブリンの量を特許文献６に記載されている方法などの様々な生化学的アッセイによって評価することもできる。このアッセイによると、フィブリノーゲンγ鎖の架橋γ−γ二量体への変換をフィブリンの存在の指標として用いる（γ−γ二量体に変換されるγ鎖の割合が、生成されたフィブリンの量の測度になる。）。

他の生化学的アッセイは、Ａα鎖の遊離α鎖およびフィブリノペプチドＡへの変換またはＢβ鎖の遊離β鎖およびフィブリノペプチドＢへの変換などのフィブリノーゲンの他の構成要素鎖の変化を評価することが可能である。これらの変化を特許文献６に記載されているγからγ−γへの変換と同様にしてゲル電気泳動によって監視することができる。

本発明の方法を用いて調製される好ましい固体包帯材は、一般には、検出可能なγ−γ二量体を含有しないが、ある状況では、包帯材が９％までのγ−γ二量体、またはさらには３８％までのγ−γ二量体を含有することが許容され得る。同様に、好ましい凍結水性混合物は、５７％までの遊離α鎖を含有しても許容可能に機能することができる。特に好ましい凍結水性混合物は、５７％未満の遊離α鎖、より好ましくは４６％未満、さらにより好ましくは４６％未満、３１％未満、２０％未満、１６％未満または１０％未満のα鎖を含有することになる。

一部の好ましい実施形態によれば、固体包帯材の止血層は、該層（複数可）の互いの接着および／または任意の支持層（複数可）への接着を促進または向上させる結着剤を含有することもできる。好適な結着剤の実例としては、スクロース、マンニトール、ソルビトール、ゼラチン、ヒアルロンおよびヒアルロン酸などのその誘導体、マルトース、ポビドン、デンプン、キトサンおよびその誘導体、およびカルボキシメチルセルロースなどのセルロース誘導体、ならびにその２つ以上の混合物が挙げられるが、それらに限定されない。当該結着剤をフィブリノーゲン構成要素とフィブリノーゲン活性体の水性混合物に導入してもよいし、混合前にフィブリノーゲン構成要素の水溶液および／またはフィブリノーゲン活性体の水溶液に導入してもよい。

固体包帯材の止血層（複数可）は、スクロース、ラクトース、マルトース、絹、フィブリン、コラーゲン、アルブミン、ポリソルベート（Ｔｗｅｅｎ（商標））、キチン、キトサンおよびＮＯＣＣ−キトサンなどのその誘導体、アルギン酸およびその塩、セルロースおよびその誘導体、プロテオグリカン、ヒアルロンおよびヒアルロン酸などのその誘導体、グリコール酸ポリマー、グリコール酸／乳酸共重合体、ならびにその２つ以上の混合物などの１つまたは複数の好適な充填剤を所望により含有することもできる。当該充填剤をフィブリノーゲン構成要素とフィブリノーゲン活性体の水性混合物に導入してもよいし、混合前にフィブリノーゲン構成要素の水溶液および／またはフィブリノーゲン活性体の水溶液に導入してもよい。

固体包帯材の止血層は、スクロース、デキストロース、マンノース、トレハロース、マンニトール、ソルビトール、アルブミン、ヒアルロンおよびヒアルロン酸などのその誘導体、ソルベート、ポリソルベート（Ｔｗｅｅｎ（商標））、ソルビタン（ＳＰＡＮ（商標））ならびにその２つ以上の混合物などの可溶化剤を所望により含有することもできる。当該可溶化剤をフィブリノーゲン構成要素とフィブリノーゲン活性体の水性混合物に導入してもよいし、混合前にフィブリノーゲン構成要素の水溶液および／またはフィブリノーゲン活性体の水溶液に導入してもよい。

固体包帯材の止血層は、生理的に許容し得る酸（例えば、クエン酸または酢酸）と生理的に好適な塩基（例えば、重炭酸ナトリウムまたは炭酸カルシウム）の混合物などの１つまたは複数の好適な発泡剤を所望により含有することもできる。他の好適な発泡剤としては、二酸化炭素（例えば、特許文献７参照）または他の生理的に許容し得る気体（例えば、窒素またはアルゴン）および医薬として許容し得る過酸化物を含有する糖粒子などの加圧ガスを含有する乾燥粒子が挙げられるが、それらに限定されない。当該発泡剤をフィブリノーゲン構成要素とフィブリノーゲン活性体の水性混合物に導入してもよいし、混合前にフィブリノーゲン構成要素の水溶液および／またはフィブリノーゲン活性体の水溶液に導入してもよい。

固体包帯材の止血層（複数可）は、塩化カルシウムなどの好適なカルシウムイオン源および／またはトランスアミナーゼ（例えば、因子ＸＩＩＩ／ＸＩＩＩａ）もしくはグルタルアルデヒドなどのフィブリン架橋材を所望により含有することもできる。カルシウムイオン源および／またはフィブリン架橋材をフィブリノーゲン構成要素とフィブリノーゲン活性体の水性混合物に導入してもよいし、混合前にフィブリノーゲン構成要素の水溶液および／またはフィブリノーゲン活性体の水溶液に導入してもよい。

特定の固体包帯材の好適な水分含有量は、その意図する用途に応じて当業者が経験的に決定することができる。

例えば、本発明の一部の実施形態において、より高い水分含有量は、より軟質の固体包帯材に対応づけられる。したがって、肢傷を対象とする固体包帯材において、少なくとも６％、さらにより好ましくは６％から４４％の範囲の水分含有量を有することが好まれ得る。

同様に、本発明の他の実施形態において、より低い水分含有量は、より硬質の固体包帯材に対応づけられる。したがって、腹部または胸部の傷などの平坦傷を対象とする固体包帯材において、６％未満、さらにより好ましくは１％から６％の範囲の水分含有量を有することが好まれ得る。

よって、固体包帯材の好適な水分含有量の実例としては、５３％未満；４４％未満；２８％未満；２４％未満；１６％未満；１２％未満；６％未満；５％未満；４％未満；３％未満；２．５％未満；２％未満；１．４％未満；０から１２％（０％および１２％を含まない）；０から６％；０から４％；０から３％；０から２％；０から１％；１から１６％；１から１１％；１から８％；１から６％；１から４％；１から３％；１から２％；および２から４％（各値は±０．９％）が挙げられるが、それらに限定されない。

固体包帯材の止血層におけるフィブリノーゲン構成要素は、当業者に知られており、利用可能な任意の好適なフィブリノーゲンであってもよい。フィブリノーゲン構成要素は、フィブリノーゲンα、βおよび／またはγ鎖、可溶性フィブリンIまたはフィブリンＩＩ、あるいはその２つ以上の混合物などのフィブリノーゲンの機能的誘導体または代謝物質であってもよい。特定の用途のための具体的なフィブリノーゲン（または機能的誘導体若しくは代謝物質）は、当業者が経験的に選択することができる。本明細書に用いられているように、「フィブリノーゲン」という用語は、フィブリノーゲンと少量の因子ＸＩＩＩ／因子ＸＩＩＩａまたは何らかの他の当該トランスアミナーゼとの混合物を含むことを意図する。当該少量は、当該技術分野で現在知られており、利用可能な方法および技術に従って精製された後に哺乳動物フィブリノーゲンに通常見いだされるものとして、当業者に広く認識され、任意の量であってもよく、典型的には０．１から２０単位／ｍＬであってもよい。

好ましくは、固体包帯材のフィブリノーゲン構成要素として採用されるフィブリノーゲンは、哺乳動物への導入に好適な精製フィブリノーゲンである。典型的には、当該フィブリノーゲンは、因子ＸＩＩＩ／ＸＩＩＩａを含み、適切なレベルまで精製され、ウイルス不活性化されたヒト血漿タンパク質の混合物の一部である。固体包帯材を調製するためのフィブリノーゲンの好ましい水溶液は、７．４±０．１付近のｐＨで３７．５ｍｇ／ｍＬ付近のフィブリノーゲンを含有するが、５．５〜８．５の範囲のｐＨも許容され得る。フィブリノーゲン構成要素として使用するための好適なフィブリノーゲンは、例えば特許文献８に記載されており、同様の材料は、例えば、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｅｎｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｈａｅｍａｔｏｌｏｇｉｃ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ ａｎｄ Ａｎｉａｒａなどの供給源から商業的に入手可能である。

好ましくは、フィブリノーゲン構成要素は、固体包帯材１平方センチメートル当たりのフィブリノーゲンが約１．５から約１３．０ｍｇ（±０．９ｍｇ）、好ましくは約３．０から約１３．０ｍｇ／ｃｍ²の量で存在する。しかし、固体包帯材に意図される特定の用途に応じてより多い、または少ない量を採用することができる。例えば、強い接着性が所望される一部の実施形態において、フィブリノーゲン構成要素は、固体包帯材１平方センチメートル当たりのフィブリノーゲンが約１１．０から約１３．０ｍｇ（±０．９ｍｇ）の量で存在する。同様に、低圧血管の治療を目的とする一部の実施形態によれば、より低量のフィブリノーゲン構成要素を採用することができる。

固体包帯材の止血層に採用されるフィブリノーゲン活性体は、フィブリノーゲンをフィブリンに変換することが当業者に知られている物質または物質の混合物のいずれかであってもよい。好適なフィブリノーゲン活性体の実例としては、ヒトトロンビンまたはウシトロンビンなどのトロンビン、およびヒトプロトロンビンまたはプロトロンビン複合体濃縮物（因子ＩＩ、ＶＩＩ、ＩＸおよびＸの混合物）などのプロトロンビン；バトロキソビン、レプチラーゼ（バトロキソビンと因子ＸＩＩＩａの混合物）、ボトロンビン、カロビン、フィブロザイム、およびハラクスの毒液から単離された酵素；ならびにこれらのいずれかの２つ以上の混合物が挙げられるが、それらに限定されない（非特許文献２３、非特許文献２４、非特許文献２５、および非特許文献２６参照）。

好ましくは、フィブリノーゲン活性体は、トロンビンである。より好ましくは、フィブリノーゲン活性体は、哺乳動物トロンビンであるが、鳥類および／または魚類トロンビンも適切な状況において採用できる。任意の好適な哺乳動物トロンビンを固体包帯材に使用できるが、止血層に採用されるトロンビンは、好ましくは、固体包帯材の意図する用途のために十分に精製され、ウイルス不活性化されたヒト血漿タンパク質の凍結乾燥混合物である。好適なトロンビンは、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｅｎｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｈａｅｍａｔｏｌｏｇｉｃ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ ａｎｄ Ｂｉｏｍｏｌ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌなどの供給源から商業的に入手可能である。固体包帯材を調製するためのトロンビンの特に好ましい水溶液は、１０から２０００±５０国際単位／ｍＬの力価、より好ましくは２５±２．５国際単位／ｍＬの力価でトロンビンを含有する。他の構成成分としては、アルブミン（一般には約０．１ｍｇ／ｍＬ）およびグリシン（一般には約１００ｍＭ±０．１ｍＭ）を挙げることができる。トロンビンのこの特に好ましい水溶液のｐＨは、一般には６．５〜７．８、好ましくは７．４±０．１の範囲であるが、５．５〜８．５の範囲のｐＨも許容され得る。

止血層に加えて、固体包帯材は、１つまたは複数の支持層をさらに含むことができる。本明細書に用いられているように、「支持層」は、固体包帯材、および／または当該包帯材が創傷組織に貼付されるときに形成するフィブリン凝塊の構造保全性を維持または向上させる材料を指す。

本発明の一部の好ましい実施形態によれば、支持層は、創傷組織に貼付される面と反対側の包帯材の面に裏当て材料を含む。当該裏当て材料は、生理的に許容し得る接着剤が塗布されてもよいし、（例えば、十分な表面正電荷を有することによって）自己接着してもよい。好ましくは、フィブリノーゲン構成要素とフィブリノーゲン活性体の液体水性混合物または溶液を導入する前に、裏当て材料を金型または容器に配置する。フィブリノーゲン構成要素とフィブリノーゲン活性体の液体水性混合物または溶液を導入する前に、生理的に許容し得る接着剤を裏当て材料上に配置してもよい。

裏当て材料は、１つまたは複数の吸収性材料あるいは１つまたは複数の非吸収性材料もしくはそれらの混合物を含むことができる。好ましくは、裏当て材料は、単一の吸収性材料である。

当業者に知られており、利用可能な任意の好適な吸収性材料を本発明に採用することができる。例えば、吸収性材料は、絹、フィブリン、ケラチン、コラーゲンおよび／またはゼラチンなどのタンパク質物質であってもよい。あるいは、吸収性材料は、アルギン酸塩、キチン、セルロース、プロテオグリカン（例えば、ポリ−Ｎ−アセチルグルコサミン）、ヒアルロンおよびその誘導体（例えば、ヒアルロン酸）、グリコール酸ポリマー、乳酸ポリマーまたはグリコール酸／乳酸共重合体などの炭水化物物質であってもよい。吸収性材料は、タンパク質物質の混合物または炭水化物物質の混合物、あるいはタンパク質物質と炭水化物物質の両方の混合物を含むこともできる。具体的な吸収性材料は、固体包帯材の意図する用途に応じて当業者が経験的に選択することができる。

本発明の一部の好ましい実施形態によれば、吸収性材料は、炭水化物物質である。特に好ましい吸収性材料の実例としては、ＶＩＣＲＹＬ（商標）（グリコール酸／乳酸共重合体）およびＤＥＸＯＮ（商標）（グリコール酸ポリマー）の商品名で販売されている材料が挙げられるが、それらに限定されない。

当業者に知られており、利用可能な任意の好適な非吸収性材料を裏当て材料として採用できる。好適な非吸収性材料としては、プラスチック、シリコーンポリマー、紙および紙製品、ラテックスならびにガーゼ等が挙げられるが、それらに限定されない。

他の好ましい実施形態によれば、支持層は、内部支持材料を含む。当該内部支持材料は、好ましくは、固体包帯材の止血層内に全面的に含められるが、一部の実施形態において、２つの隣接止血層の間に配置されてもよい。好ましくは、内部支持材料は、フィブリノーゲン構成要素とフィブリノーゲン活性体の液体水性混合物または溶液の導入時に金型または容器に配置される。

裏当て材料と同様に、内部支持材料は、吸収性材料または非吸収性材料、あるいは２つ以上の吸収性材料の混合物もしくは２つ以上の非吸収性材料の混合物または吸収性材料と非吸収性材料の混合物などのそれらの混合物であってもよい。

さらに他の好ましい実施形態によれば、支持層は、包帯材の傷に直面する面、すなわち創傷組織に貼付される面に前部支持材料を含むことができる。裏当て材料および内部支持材料と同様に、前部支持材料は、吸収性材料または非吸収性材料、あるいは２つ以上の吸収性材料の混合物もしくは２つ以上の非吸収性材料の混合物または吸収性材料と非吸収性材料の混合物などのそれらの混合物であってもよい。

さらに他の好ましい実施形態によれば、固体包帯材は、止血層に加えて、裏当て材料および内部支持材料の両方を含む。すなわち、固体包帯材は、止血層に加えて、２つの支持層を含む。さらに他の好ましい実施形態によれば、固体包帯材は、止血層に加えて、前部支持材料および内部支持材料の両方を含む。さらに他の好ましい実施形態によれば、固体包帯材は、止血層に加えて、裏当て材料、前部支持材料および内部支持材料を含む。

本発明の包帯材のそれぞれの層を、当業者に知られており、利用可能な任意の好適な手段によって貼り合わせることができる。例えば、生理的に許容し得る接着剤を裏当て材料（存在する場合）に塗布し、続いて止血層を貼付することができる。

本発明の一部の実施形態において、生理的に許容し得る接着剤は、包帯材を創傷組織に貼付した後に、止血層により形成されるフィブリン凝塊から裏当て材料を分離できるような剪断強度および／または構造を有する。他の実施形態において、生理的に許容し得る接着剤は、包帯を創傷組織に貼付した後に、裏当て材料をフィブリン凝塊から分離できないような剪断強度および／または構造を有する。

固体包帯材の止血層に対する好適なフィブリノーゲンおよび好適なフィブリノーゲン活性体を、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ ａｎｄ Ｅｎｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓなどの商業的供給業者からの供給源；当業者に知られており、利用可能な方法のいずれかによるヒトまたは哺乳動物血漿からの抽出および精製による供給源；標準的なＤＮＡ技術に従って導入されたヒトまたは哺乳動物血漿タンパク質を発現する遺伝子を含む血漿もしくは組換え組織培養、ウイルス、酵母または細菌等から誘導された上清またはペーストからの供給源；および／または標準的な形質転換技術に従って導入され、所望のフィブリノーゲンおよび／または所望のフィブリノーゲン活性体を発現する遺伝子を含む形質転換哺乳動物（例えば、ヤギ、ヒツジ、ウシ）の体液（例えば、血液、乳、リンパ液または尿等）からの供給源を含むが、それらに限定されない、当業者に知られており、利用可能な任意の好適な供給源から得ることができる。

本発明の一部の好ましい実施形態によれば、フィブリノーゲンは、ウシフィブリノーゲン、ブタフィブリノーゲン、ヒツジフィブリノーゲン、ウマフィブリノーゲン、ヤギフィブリノーゲン、ネコフィブリノーゲン、イヌフィブリノーゲン、マウスフィブリノーゲンまたはヒトフィブリノーゲンなどの哺乳動物フィブリノーゲンである。他の実施形態によれば、フィブリノーゲンは、鳥類フィブリノーゲンまたは魚類フィブリノーゲンである。これらの実施形態のいずれかによれば、フィブリノーゲンは、組換え製造フィブリノーゲンまたは形質転換フィブリノーゲンであってもよい。

本発明の一部の好ましい実施形態によれば、フィブリノーゲン活性体は、ウシトロンビン、ブタトロンビン、ヒツジトロンビン、ウマトロンビン、ヤギトロンビン、ネコトロンビン、イヌトロンビン、マウストロンビンまたはヒトトロンビンなどの哺乳動物トロンビンである。他の実施形態によれば、トロンビンは、鳥類トロンビンまたは魚類トロンビンである。これらの実施形態のいずれかによれば、トロンビンは、組換え製造トロンビンまたは形質転換トロンビンであってもよい。

一般的な提案として、固体包帯材に使用するためのフィブリノーゲンおよび／またはフィブリノーゲン活性体の純度は、タンパク質の最適な効果および安定性をもたらすことが当業者に知られている純度になる。好ましくは、フィブリノーゲンおよび／またはフィブリノーゲン活性体に析出、濃縮、ダイアフィルトレーションおよびアフィニティクロマトグラフィー（好ましくはイムノアフィニティクロマトグラフィー）などの複数の精製工程を施して、固体包帯材の製造、保管および／または使用時におけるフィブリノーゲンおよび／またはフィブリノーゲン活性体の断片化、活性化および／または劣化を引き起こす物質を除去した。精製によって除去されるのが好ましい当該物質の実例としては、インターアルファトリプシン阻害薬およびプレアルファ阻害薬などのタンパク質汚染物質；脂質などの非タンパク質汚染物質；ならびにリポタンパク質などのタンパク質汚染物質と非タンパク質汚染物質の混合物が挙げられる。

固体包帯材に採用されるフィブリノーゲン活性体の量は、好ましくは、その効果および安定性の両方を最適化するように選択される。そのように、固体包帯材の特定の用途に対する好適な濃度は、当業者が経験的に決定することができる。本発明の一部の好ましい実施形態によれば、フィブリノーゲン活性体がヒトトロンビンである場合は、採用されるヒトトロンビンの量は、フィブリノーゲン構成要素１ｍｇ当たり２．５０単位とフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．０２５単位との間である（すべての値は±０．００１である）。他の好ましい実施形態は、トロンビンの量がフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．２５０単位とフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．０６２単位との間である同様の固体包帯材、ならびにトロンビンの量がフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１２５単位とフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．０８０単位の間である。

固体包帯材の使用時において、フィブリノーゲンおよびフィブリノーゲン活性体は、好ましくは、出血する傷から漏出する患者の内在液によって包帯材が創傷組織に貼付されるときに活性化される。あるいは、創傷組織からの液体損失が、タンパク質層の十分な水和をもたらすのに不十分である状況において、フィブリノーゲン構成要素および／またはトロンビンは、包帯材が創傷組織に貼付される前または最中に、任意の必要な共因子および／または酵素を所望により含有する好適な生理的に許容し得る液体によって活性化され得る。

本発明のいくつかの実施形態において、止血層は、成長因子、薬物、ポリクロナル抗体、モノクロナル抗体および他の化合物などの１つまたは複数の補給物を含有することもできる。当該補給物の実例としては、アプロトニン、トランキサム酸およびイプシロン−アミノ−カプロン酸などの線維素阻害薬；テトラシクリンおよびシプロフロキサシン、アモキシシリンならびにメトロニダゾールなどの抗生物質；活性化タンパク質Ｃ、ヘパリン、プロスタシクリン、プロスタグランジン（特に（ＰＧＩ₂）、ロイコトリエン、抗トロンビンＩＩＩ、ＡＤＰアーゼおよびプラスミノゲン活性体などの抗凝血材；デキサメタソン、プロスタシクリンの阻害薬、炎症を阻害するプロスタグランジン、ロイコトリエンおよび／またはキニンなどのステロイド；カルシウムチャネル遮断材、血管拡張薬および血管収縮薬などの心臓血管薬；化学誘因物質；ブピバカインなどの局部麻酔薬；および５−フルオロウラシル（５−ＦＵ）、タキソールおよび／またはタキソテレなどの抗増殖／抗腫瘍薬；ガングシクロビル、ジドブジン、アマンチジン、ビダラビン、リバラビン、トリフルリジン、アシクロビル、ジデオキシウリジン、およびウイルス構成要素または遺伝子生成物に対する抗体などの抗ウイルス薬；アルファまたはベータまたはガンマインターフェロン、アルファまたはベータ腫瘍壊死因子およびインターロイキンなどのサイトカイン；コロニー刺激因子；エリスロポイエチン；ジフルカン、ケタコニゾールおよびニスタチンなどの抗真菌薬；ペンタミジンなどの駆虫薬；アルファ−１−抗トリプシンおよびアルファ−１−抗キモトリプシンなどの抗炎症薬；ブピバカインなどの麻酔薬；鎮痛薬；防腐薬；ホルモン；ビタミンおよび他の栄養補助食品；糖タンパク質；フィブロネクチン；ペプチドおよびタンパク質；炭水化物（単一性および／または複合性）；プロテオグリカン；抗血管形成薬；抗原；脂質またはリポソーム；オリゴヌクレオチド（センスおよび／またはアンチセンスＤＮＡおよび／またはＲＮＡ）；ならびに遺伝子治療試薬が挙げられるが、それらに限定されない。本発明の他の実施形態において、裏当て層および／または内部支持層は、存在すれば、１つまたは複数の補給物を含有することができる。本発明の一部の好ましい実施形態によれば、治療補給物は、フィブリンへの溶解限度を超える量で存在する。

以下の実施例は、例示にすぎず、添付の請求項によって定義される本発明の範囲を限定することを意図しない。本発明の主旨および範囲を逸脱することなく、本発明の方法に様々な修正および変更を加えることができることを当業者に明らかになるであろう。したがって、本発明は、本発明の修正および変更が添付の請求項およびそれらの同等物の範囲内にある限りにおいて、該修正および変更を包括することを意図する。

最初に特許文献１に記載された生体外ブタ動脈切開（ＥＶＰＡ）性能試験によって、傷害血管を密閉する包帯材の能力を測定した。ＥＶＰＡ性能試験では、ブタ動脈における穴の液流を止める包帯材の能力を評価する。特許文献１に記載されている手順は、止血包帯を評価するのに有用であることが示されたが、インビボでの成功のための要件を忠実に再現することができなかった。より具体的には、特許文献１に記載されている手順は、３７℃における試験を必要としていたのに対して、現実の世界では、傷は、典型的にはそれより低温である。この低い温度は、外傷犠牲者におけるフィブリン形成速度およびその止血効果を著しく低下させ得る（例えば、非特許文献６参照）。特許文献１における試験は、傷害組織に対する包帯材の高度な接着力を必要とすることもできなかった。したがって、フィブリンが形成されても、包帯材が組織の傷に密着できない故障モードは、この試験によって検出されないことになる。また、外傷患者によっては、治療中に該手順に利用される圧力（２００ｍＨｇ）を超え得る。この全体的な結果は、大形動物、現実的な外傷試験および臨床環境における包帯材性能を正確に予測するために、典型的には小形動物（ラットおよびウサギなど）を含む多くの動物試験を実施しなければならないことである。

本発明を展開するために必要とされる時間および動物試験の数を最小限にするために、改善された生体外試験手順を開発した。これを遂行するために、包帯材試験を実施する基本条件を変更し、試験パラメータの厳密性を高めて、現実的な傷の温度における現実の生理的課題を表すより低い温度（すなわち３７℃に対して２９〜３３℃）（非特許文献６）、より高い圧力（すなわち２００ｍｍＨｇに対して２５０ｍｍＨｇ）、より長い試験時間（２分間対して３分間）およびより大きな動脈傷（特許文献１では１８ゲージのニードル穿孔が用いられていたのに対して、改訂手順では２．８ｍｍから４ｍｍ×６ｍｍの穿孔を用いた）を含めた。

加えて、傷組織に対する包帯材の接着性を直に測定する新しい試験を導入した。これらの両試験は、厳密性の著しい改善を示したため、これまでの生体外試験を凌ぎ、効果について多くのインビボ試験に取って代わることが可能である。

以下の実施例に用いられる略語のリストを以下に示す。
ＣＦＢ：全フィブリノーゲン緩衝材（１００ｍＭ塩化ナトリウム、１．１ｍＭ塩化カルシウム、１０ｍＭトリス、１０ｍＭクエン酸ナトリウム、１．５％スクロース、ヒト血清アルブミン（全タンパク質１ｇ当たり８０ｍｇ）およびＴｗｅｅｎ（商標）８０（動物源）（全タンパク質１ｇ当たり１５ｍｇ）
ＣＴＢ：全トロンビン緩衝材（１５０ｍＭ塩化ナトリウム、４０ｍＭ塩化カルシウム、１０ｍＭトリスおよび１００ｕｇ／ｍｌでＨＳＡが添加された１００ｍＭのＬ−リシン）
ＥＲＬ：Ｅｍｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ
ＥＶＰＡ：生体外ブタ動脈切開
ＦＤ：発明の止血包帯材
ＨＳＡ：ヒト血清アルブミン
ＨＤ：特許文献１に開示されている「サンドウィッチ」フィブリンシーラント止血包帯材
ＩＦＢ：不完全フィブリノーゲン緩衝材；ＨＳＡおよびＴｗｅｅｎのないＣＦＢ
ＰＥＴＧ：グリコール修飾ポリエチレンテトラフタレート
ＰＰＧ：ポリプロピレン
ＰＶＣ：ポリ塩化ビニル
ＴＲＩＳ：トリスヒドロキシメチルアミノメタン（２−アミノ−２−ヒドロキシメチル−１，３−プロパンジオール）

裏当て材料（ＤＥＸＯＮ（商標））を切断し、各ＰＥＴＧ２．４×２．４ｃｍ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。フィブリノーゲン（Ｅｍｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（商標））をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５、３１．７、２５．９、２０．１６、１４．４、８．６４および４．３ｍｇ／ｍｌに調整した。２ｍｌのフィブリノーゲンを金型に送達すると、フィブリノーゲン用量が１３、１１、９、７、５、３または１．５ｍｇ／ｃｍ²になるであろう。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン溶液を以下に記載するように混合すると、混合物が、フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位を含有する溶液を生成するようにトロンビンの濃度を調製した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃フリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置された銅板に配置した。反復ピペッターにフィブリノーゲンを充填し、第２の反復ピペッターにトロンビンを充填した。２ｍｌのフィブリノーゲンおよび３００マイクロリットルのトロンビンを各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、それらを凍結させ、次いで少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、凍結包帯材を、予め冷却されたＧｅｎｅｓｉｓ（商標）凍結乾燥器（Ｖｉｒｔｉｓ（ニューヨーク州Ｇａｒｄｉｎｅｒ））内に配置した。チャンバを密閉し、温度を平衡にした。次いで、チャンバを排気し、一次および二次乾燥サイクルを介して包帯材を凍結乾燥した。

包帯材を凍結乾燥器から取り出し、フォイルパウチで密封し、試験まで室温で保管した。続いて、包帯材をＥＶＰＡ、接着性および重量アッセイで評価した。

結果を以下の表に示し、図３Ａ〜３Ｃにグラフで示す。

単層包帯材を以下のように製造した。裏当て材料を切断し、各ＰＥＴＧ２．４×２．４ｃｍ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

すべての包帯材について、ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１１４をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃フリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置された銅板に配置した。反復ピペッターにフィブリノーゲンを充填し、第２の反復ピペッターにトロンビンを充填した。２ｍｌのフィブリノーゲンおよび３００マイクロリットルのトロンビンを各金型に同時に分配した。金型を満たすと、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、包帯材を上記のように凍結乾燥した。完了すると、５グラムの乾燥材を含む低透湿度の箔のルバッグで包帯材を保管した。

上記と同じ材料を使用して、先述のようにして¹三層包帯材を製造した。続いて、包帯材の相対水分含有量を所望の量まで増加させるために、包帯材を様々な時間にわたって３７℃、１００％相対湿度の条件下に置いた。包帯材を視覚的に、それらの処理特性および他の物理的特性について評価した。この評価に続いて、包帯材の各々のサンプルを試験して、それらの水分含有量を求めた。ＥＶＰＡ、接着性および保持重量アッセイで残りの包帯材の性能試験を行った。

結果：
アッセイの結果を以下の表に示す。

結論：
単層包帯材は、非常に高い水分量でも十分に機能した。２８％程度の水分量で十分に機能性を保持することが判明した。水分量が４４％まで上昇すると、包帯材は依然として機能したが、それらの活性がいくらか低下した。より高量の水分でも、ある程度の機能を保持することができる。水分含有量が２．５％の本来の包帯材は、柔軟でなかったが、外観、平坦面、保全性、高速かつ単純な水和、ならびに水和後の滑らかな外観を含むすべての他の所望の特性を有していた。水分含有量が５．８％まで上昇すると、単層包帯材は、柔軟になる一方、機能性および所望の特性を保持していた。それらは、カールする、または保全性を失う、または水和前に過剰量のフィブリンを形成することなく、柔軟性を保持した。

これは、水分を加えると所望の特性が低下し始め、水分が３３％まで増加するまでに完全に特性が失われる三層包帯材と対照的であった。

裏当てを利用する包帯材については、裏当て材料を切断し、各ＰＥＴＧ２．４×２．４ｃｍ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。裏当て材料を有さない包帯材については、ＰＥＴＧ２．４×２．４ｃｍ金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

すべての包帯材について、ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１１４をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃フリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置された銅板に配置した。反復ピペッターにフィブリノーゲンを充填し、第２の反復ピペッターにトロンビンを充填した。２ｍｌのフィブリノーゲンおよび３００マイクロリットルのトロンビンを各金型に同時に分配した。金型を満たすと、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、包帯材を以下のように凍結乾燥した。

ＥＶＰＡアッセイで両グループの性能試験を行った。加えて、裏当てを有するグループを接着性および保持重量アッセイで試験した。

結果：

結論：
裏当て材料を用いて処方した包帯材は、良好な性能を発揮し、すべての包帯材がＥＶＰＡ試験に合格し、接着性および保持重量の値も高かった。裏当て材料を有さない包帯材は、ＥＶＰＡアッセイにおいてさほど効果的でなかったが、驚いたことには、その７５％がＥＶＰＡ試験に合格した。裏当てがなければ、他の試験を実施することができなかった。ＥＶＰＡアッセイに合格した、裏当てを用いずに製造した包帯材の能力は、それらが動脈傷害を治療するのに効果的であり、静脈および小血管傷害を治療するのにさらにより効果的であることを示す。

すべての包帯材について、ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１３０をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。細断されたＶＩＣＲＹＬ（商標）メッシュが内部に分散されたグループについては、この支持材料を切断して約１ｍｍ×１ｍｍ片とし、金型に充填する前にトロンビン溶液中に分散させた。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。ルアーロック端が取り除かれた１０または３ｍＬポリプロピレンシリンジ（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）で構成された円筒状金型を使用した。プランジャーをそれぞれ６ｍＬおよび２ｍＬの標線まで引いた。裏当てを利用する包帯材については、支持材料を切断し、各金型内に配置し、プランジャーに隣接するまで押し下げた。調製すると、金型を直立に配置し、ドライアイスで囲み、開口部を上部で露出させた。１ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１５ｍＬのトロンビン（裏当て材料が内部に分散された、または分散されていない）を１０ｍＬ金型内に分配し、１ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１５ｍＬのトロンビン（支持材料が内部に分散された、または分散されていない）を３ｍＬ金型内に分配し、それらを５分間にわたって凍結させた。次いで、金型を凍結乾燥器内に配置し、記載したように凍結乾燥する前に、少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

凍結乾燥器から取り出すと、改造型ＥＶＰＡアッセイで両グループの性能試験を行った。手短に述べると、プラスチック発泡体を動脈上に滑らせた。このカバーは、動脈および周囲組織内の穴に対応する穴をその中に有していた。暖かい生理食塩水を包帯材の表面に添加し、金型をそのまま発泡体内の穴から動脈表面に押し下げた。次いで、プランジャーを押し下げ、手で３分間保持した後、プランジャーをさらに押し下げながら金型を引き出した。この時点で、動脈を加圧し、アッセイを以前のように続けた。

結果：

結論：
裏当てを含まない包帯材またはＤＥＸＯＮ（商標）メッシュ裏当てを含む包帯材は、良好な性能を発揮し、すべて２５０ｍｍＨｇにおけるＥＶＰＡ試験に合格した。支持材料を組成物全体に分散させた場合も、包帯材は良好な性能を発揮し、大サイズ（１０ｍＬ金型）の包帯材は全２５０ｍｍＨｇの圧力を保持したのに対して、より小さいものは１５０ｍｍＨｇまでの圧力を保持した。これは、支持材料の使用が随意であってもよく、その箇所が、要望に応じて包帯材の「背面」であるか、または組成物全体に分散されていてもよいことを示す。

支持材料を包帯材の「背面」（すなわち、傷に直面しない面）に有してなる包帯材を、最初にメッシュ支持体を切断し、それを各ＰＥＴＧ１０×１０ｃｍ金型内に配置することによって製造した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

包帯材の「前面」（すなわち、傷に直面する面）に支持材料を有してなる包帯材については、支持材料を金型内に含めずに製造した。フィブリノーゲンおよびトロンビンを金型内に配置した直後に支持メッシュを包帯材の上部に配置し（以下参照）、凍結前にそれを表面に軽く押し込んだ。他はすべて、下記と同様に包帯材を製造した。

すべての包帯材について、ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１１４をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃フリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置されたアルミニウム板に配置した。アルミニウム板は、中央に０．２５インチの穴が空けられており、管の一部を真空源に接続できるように継手が取りつけられていた。金型の中心をアルミニウム板の穴に合わせ、真空をオンした。真空は、金型が移動することを防止し、それをアルミニウム板に対して平坦に保持するという２つの目的を果たした。３５ミリリットルのフィブリノーゲンおよび５．２５ミリリットルのトロンビンを５０ｍｌの試験管に入れ、３回逆転させ、金型内に注いだ。金型を満たし、上記のように支持材料を塗布した後に、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、先述のように包帯材を凍結乾燥した。

ＥＶＰＡアッセイで両グループの性能試験を行った。加えて、裏当てを有するグループも接着性および保持重量アッセイで試験した。

結果：

結論：
いずれの方向の裏当て材料で処方された包帯材も良好であり、すべての包帯材がＥＶＰＡ試験に合格し、接着性および保持重量の値も高かった。これは、支持材料の箇所が、要望に応じて、包帯材の「背面」であってもよいし、組成物の「前面」であってもよいことを示す。

裏当て材料（ＤＥＸＯＮ（商標））を２．４×２．４ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

フィブリノーゲン（Ｅｎｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（商標）（ＥＲＬ）ロット３１１４）をＣＦＢで処方した。ＣＦＢを用いて、フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。混合前の３１２０単位／ｍｌのトロンビンに対応するフィブリノーゲン１ｍｇ当たり１２．５単位を（混合すると）生成するようにトロンビン濃度をＣＴＢで調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃フリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却された銅板に配置した。反復ピペッターにフィブリノーゲンを充填し、第２の反復ピペッターにトロンビンを充填した。２ｍｌのフィブリノーゲンおよび３００マイクロリットルのトロンビンを各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、それらを以下に記載するように凍結乾燥し、以下に記載するようにＥＶＰＡおよび接着性アッセイを用いて性能試験を行った。これらの結果を図４Ａおよび４Ｂに示す。

裏当て材料を１．５×１．５ｃｍのＰＶＣ金型内に配置した。１５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。ＰＥＴＧプラスチックの第２の部分を１．５×１．５金型の上部に装着し、所定位置に保持した。これにより閉鎖した金型が形成された。次いで、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。フィブリノーゲン（ＥＲＬロット３１００）をＣＦＢで処方した。ＣＦＢを用いて、フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。混合前の６２４、６２．４、２５、１２．５、６．２４、３．９９、３．１２および２．５単位／ｍｌのトロンビンに対応するフィブリノーゲン１ｍｇ当たり２．５、０．２５、０．１、０．０５、０．０２５、０．０１６、０．０１２５および０．０１単位の量を（混合すると）送達するように、ＣＴＢを用いてトロンビン濃度を調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。次いで、金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。１８ゲージの針を使用して、金型の上部に３つの穴を空けた。１つの穴は、フィブリノーゲンを注入するために使用され、第２の穴は、トロンビンを注入するために使用され、第３の穴は、金型の内部から排出される空気を放出するための通気口として機能した。次いで、ピペットにフィブリノーゲンを充填し、第２のピペットにトロンビンを充填した。これらのピペットを介して、０．７８ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１７ｍｌのトロンビンを各金型内に注入した。金型を満たすと、金型を３０秒間にわたって液体窒素のプールの上部に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、それらを以下に記載するように凍結乾燥し、以下に記載するようにＥＶＰＡおよび接着性アッセイを用いて性能試験を行った。これらの結果を図４Ａおよび図４Ｂに示す。

裏当て材料を２．４×２．４ｃｍのＰＶＣ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。フィブリノーゲン（ＥＲＬロット３１００）をＣＦＢで処方した。ＣＦＢを用いて、フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。混合前の３１．２、６．２４、３．１２、１．５６および０．７８単位／ｍｌのトロンビンに対応するフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１２５、０．０２５、０．０１２５、０．００６２５および０．００３１単位の量を混合すると送達するように、ＣＴＢを用いてトロンビン濃度を調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。１８ゲージの針が装着された３ｍｌシリンジに２ｍｌのフィブリノーゲンを充填し、２２ゲージの針が装着された第２の１ｍｌシリンジに０．３ｍｌのトロンビンを充填した。両シリンジの内容物を各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、金型を３０秒間にわたって液体窒素の上部に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、それらを以下に記載するように凍結乾燥し、以下に記載するようにＥＶＰＡおよび接着性アッセイを用いて性能試験を行った。これらの結果を図４Ａおよび図４Ｂに示す。

裏当て材料を２．４×２．４ｃｍのＰＶＣ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。３グラムのフィブリノーゲン（Ｓｉｇｍａ（商標）Ｌｏｔ＃Ｆ−３８７９）を含むバイアルを−２０℃のフリーザーから取り出し、１８時間にわたって４℃で配置した。次いで、ボトルをフリーザーから取り出し、６０分間にわたって室温に戻した。ボトルに対して、３７℃の水を６０ｍｌ添加し、３７℃で１５分間混合させた。溶液になると、フィブリノーゲンを不完全フィブリノーゲン緩衝材（ＨＳＡおよびＴｗｅｅｎ（商標）を含まないＣＦＢであるＩＦＢ）に対して室温で４時間透析した。４時間の終了時に、ＨＳＡを全タンパク質１ｇ当たり８０ｍｇの濃度まで添加し、Ｔｗｅｅｎ（商標）８０（動物源）を全タンパク質１ｇ当たり１５ｍｇの濃度まで添加した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。次いで、フィブリノーゲン濃度をＣＦＢで３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。混合前の６２４、６２．４、３１．２、２０．８および１５．６単位／ｍｌのトロンビンに対応するフィブリノーゲン１ｍｇ当たり２．５、０．２５、０．１２５、０．０８３および０．０６２５単位の量を（混合すると）送達するように、ＣＴＢを用いてトロンビン濃度を調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。１８ゲージの針が装着された３ｍｌシリンジに２ｍｌのフィブリノーゲンを充填し、２２ゲージの針が装着された第２の１ｍｌシリンジに０．３ｍｌのトロンビンを充填した。両シリンジの内容物を各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、金型を３０秒間にわたって液体窒素の上部に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、それらを以下に記載するように凍結乾燥し、以下に記載するようにＥＶＰＡおよび接着性アッセイを用いて性能試験を行った。これらの結果を図４Ａおよび図４Ｂに示す。

裏当て材料を２．４×２．４ｃｍのＰＶＣ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。ＰＥＴＧプラスチックの第２の部分を金型の上部に装着するように切断し、金型の各端部に位置するクリップによって所定の位置に保持して、閉鎖金型を製造した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。フィブリノーゲン（ＥＲＬロット３０６０）をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。ＣＦＢを使用して、フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。（混合前の）６２４、６２．４、３１．２、２０．８および１５．６単位／ｍｌのトロンビンに対応するフィブリノーゲン１ｍｇ当たり２．５、０．２５、０．１２５、０．０８３および０．０６２の量を（混合後に）送達するように、ＣＴＢを用いてトロンビン濃度を調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。１８ゲージの針が装着された３ｍｌシリンジに２ｍｌのフィブリノーゲンを充填し、２２ゲージの針が装着された第２の１ｍｌシリンジに０．３ｍｌのトロンビンを充填した。両シリンジの内容物を各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、金型を３０秒間にわたって液体窒素の上部に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、それらを以下に記載するように凍結乾燥し、以下に記載するようにＥＶＰＡおよび接着性アッセイを用いて性能試験を行った。これらの結果を図４Ａおよび図４Ｂに示す。

裏当て材料各２．４×２．４ｃｍのＰＶＣ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。ＰＥＴＧプラスチックの第２の部分を２．４×２．４金型の上部に装着するように切断し、金型の各端部に位置するクリップの使用によって所定の位置に保持して、閉鎖金型を作製した。次いで、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。３グラムのフィブリノーゲン（Ｓｉｇｍａ（商標）Ｌｏｔ＃Ｆ−３８７９）を含むバイアルを−２０℃のフリーザーから取り出し、１８時間にわたって４℃で配置した。次いで、ボトルをフリーザーから取り出し、６０分間にわたって室温に戻した。ボトルに対して、３７℃の水を６０ｍｌ添加し、３７℃で１５分間混合させた。溶液になると、フィブリノーゲンをＩＦＢに対して室温で４時間透析した。４時間の終了時に、ＨＳＡを全タンパク質１ｇ当たり８０ｍｇの濃度まで添加し、Ｔｗｅｅｎ（商標）８０（動物源）を全タンパク質１ｇ当たり１５ｍｇの濃度まで添加した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。ＣＦＢを用いて、フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。（混合前の）６２４、６２．４、３１．２、２４．９６および２０．７９単位／ｍｌのトロンビンに対応するフィブリノーゲン１ｍｇ当たり２．５、０．２５、０．１２５、０．１および０．０８３単位の量を（混合すると）送達するように、トロンビン濃度を調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。１８ゲージの針が装着された３ｍｌシリンジに２ｍｌのフィブリノーゲンを充填し、２２ゲージの針が装着された第２の１ｍｌシリンジに０．３ｍｌのトロンビンを充填した。両シリンジの内容物を各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、金型を３０秒間にわたって液体窒素の上部に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、それらを以下に記載するように凍結乾燥し、以下に記載するようにＥＶＰＡおよび接着性アッセイを用いて性能試験を行った。これらの結果を図４Ａおよび図４Ｂに示す。

裏当て材料を２．４×２．４ｃｍのＰＶＣ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。ＰＥＴＧプラスチックの第２の部分を金型の上部に装着するように切断し、金型の各端部に位置するクリップの使用によって所定の位置に保持して、閉鎖金型を作製した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

３グラムのフィブリノーゲン（Ｓｉｇｍａ（商標）Ｌｏｔ＃Ｆ−３８７９）を含むバイアルを−２０℃のフリーザーから取り出し、１８時間にわたって４℃で配置した。次いで、ボトルを６０分間にわたって室温に戻した。ボトルに対して、３７℃の水を６０ｍｌ添加し、３７℃で２０分間混合させた。溶液になると、フィブリノーゲンをＩＦＢに対して室温で４時間透析した。４時間の終了時に、ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）を全タンパク質１ｇ当たり８０ｍｇの濃度まで添加し、Ｔｗｅｅｎ（商標）８０（動物源）を全タンパク質１ｇ当たり１５ｍｇの濃度まで添加した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。ＣＦＢを用いて、フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。（混合前の）６２４、６２．４、３１．２、２０．８および１５．６単位／ｍｌのトロンビンに対応するフィブリノーゲン１ｍｇ当たり２．５、０．２５、０．１２５、０．０８および０．０６単位の量を（混合後に）送達するように、トロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。１８ゲージの針が装着された３ｍｌシリンジに２ｍｌのフィブリノーゲンを充填し、２２ゲージの針が装着された第２の１ｍｌシリンジに０．３ｍｌのトロンビンを充填した。両シリンジの内容物を各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、金型を３０秒間にわたって液体窒素の上部に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、それらを以下に記載するように凍結乾燥し、以下に記載するようにＥＶＰＡおよび接着性アッセイを用いて性能試験を行った。

三層（サンドウィッチ）包帯材
上記の単層包帯材を製造するのに利用したのと同じフィブリノーゲンおよびトロンビン源を使用して、特許文献１に記載されている方法を用いて三層包帯材を製造した。

結果
ＥＶＰＡおよび接着性アッセイの結果をそれぞれ図４Ａおよび４Ｂに示す。

結論（実施例６から１２）：
フィブリノーゲン１ｍｇ当たり２．５から０．０２５単位のトロンビンで製造した包帯材は、いずれのアッセイにおいても活性であったのに対して、フィブリノーゲンに対するトロンビンの割合がより大きいかまたは小さい包帯材は、活性ではなかった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり２．５から０．０５単位の範囲のトロンビンに有意により大きな活性が見られた。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．２５から０．０６２単位の範囲のトロンビンにより大きな性能の向上が見られたが、フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１２５から０．０８単位の範囲のトロンビンに最適な性能が見られた。これは、フィブリノーゲン１ｍｇ当たり１２．５単位のトロンビンで十分な性能に達し、トロンビン濃度がフィブリノーゲン１ｍｇ当たり１２．５単位のトロンビン未満に低下すると許容し得ない性能になり、フィブリノーゲン１ｍｇ当たり１．４のトロンビン単位で実質的に活性がなくなる特許文献１に記載の方法を用いて製造された包帯材と対照的であった。特許文献１の三層包帯材の性能が、少量のトロンビンを使用することによって低下するのに対して、本明細書に記載の包帯材がこの範囲で高い活性を示したことを考慮すれば、性能の限界値および最適値の双方のこの差は、甚大である。

裏当て材料を切断し、各２．４×２．４ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。Ｅｎｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（ＥＲＬ）フィブリノーゲンロット３１１４をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するように、トロンビンをＣＴＢで調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置されたアルミニウム板に配置した。反復ピペッターにフィブリノーゲンを充填し、第２の反復ピペッターにトロンビンを充填した。２ｍｌのフィブリノーゲンおよび３００マイクロリットルのトロンビンを各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。１日目に１グループの包帯材を凍結乾燥し、残りを−８０℃に維持した。７日目に第２のグループの包帯材を凍結乾燥し、１４日目に第３のグループを凍結乾燥した。

すべての包帯材を凍結乾燥すると、本明細書に記載のＥＶＰＡ、接着性および重量アッセイを用いてそれらの試験を行った。

結果：

これらの結果を図５Ａおよび図５Ｂにもグラフで示す。

結論：
十分に混合、凍結されたフィブリノーゲンおよびトロンビンの組成物は、７日間および１４日間にわたって安定性および機能性を維持し、それらの性能に明らかな低下はなかった。より長く保管しても、同様の結果がもたらされることが期待される。

裏当て材料を切断し、各２．４×２．４ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

包帯材グループ１（アルブミンなし、Ｔｗｅｅｎ８０なし）：Ｅｎｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（ＥＲＬ）フィブリノーゲンロット３１３０を１００ｍＭ塩化ナトリウム、１．１ｍＭ塩化カルシウム、１０ｍＭトリス、１０ｍＭクエン酸ナトリウムおよび１．５％スクロースで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。

包帯材グループ２（アルブミンなし、Ｔｗｅｅｎ８０）：ＥＲＬフィブリノーゲンを１００ｍＭ塩化ナトリウム、１．１ｍＭ塩化カルシウム、１０ｍＭトリス、１０ｍＭクエン酸ナトリウムおよび１．５％スクロースで処方した。Ｔｗｅｅｎ８０（動物源）を全タンパク質１ｇ当たり１５ｍｇまで添加した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。

包帯材グループ３（アルブミン、Ｔｗｅｅｎ８０なし）：ＥＲＬフィブリノーゲンを１００ｍＭ塩化ナトリウム、１．１ｍＭ塩化カルシウム、１０ｍＭトリス、１０ｍＭクエン酸ナトリウムおよび１．５％スクロースで処方した。ＨＳＡを全タンパク質１ｇ当たり８０ｍｇまで添加した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。

包帯材グループ４（アルブミン、Ｔｗｅｅｎ８０）：ＥＲＬフィブリノーゲンを１００ｍＭ塩化ナトリウム、１．１ｍＭ塩化カルシウム、１０ｍＭトリス、１０ｍＭクエン酸ナトリウムおよび１．５％スクロース（フィブリノーゲン完全緩衝材）で処方した。また、ＨＳＡを全タンパク質１ｇ当たり８０ｍｇまで添加し、Ｔｗｅｅｎ８０（動物源）を全タンパク質１ｇ当たり１５ｍｇまで添加した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲン溶液を使用するまで氷上に配置した。

トロンビンを１５０ｍＭ塩化ナトリウム、４０ｍＭ塩化カルシウム、１０ｍＭトリスおよび１００ｍＭのＬ−リシンで処方し、ＨＳＡを１００μｇ／ｍｌの濃度で添加した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。調製すると、トロンビン溶液を使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲン溶液およびトロンビン溶液の温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置されたアルミニウム板に配置した。反復ピペッターにフィブリノーゲン溶液を充填し、第２の反復ピペッターにトロンビン溶液を充填した。２ｍｌのフィブリノーゲン溶液および３００マイクロリットルのトロンビン溶液を各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。

結果：

結論：
それらの結果は、アルブミンの添加により包帯材性能が向上したことを示している。Ｔｗｅｅｎを添加することにより、性能がさらに向上した。両方を組み合わせると、最良の性能が得られた。

金型は、１”×１”平方の切込みが刻まれた３／１６”のＰｌｅｘｉｇｌａｓのプラスチックスペーサで隔てられた一対のアルミニウム板からなっていた。使用に際して、一緒になって包帯材の金型を形成する垂直装着された、板−スペーサ−板「サンドウィッチ」の上部方向へ切込みの開放側を配向させた。上部をドライアイスのわずかに上方にして、ドライアイスペレットに浸すことによって金型を予備冷却した。次いで、裏当て材料を切断し、各金型内に配置した。ＥＲＬフィブリノーゲンをＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。最終製品において１３ｍｇ／ｃｍ²のフィブリノーゲンを有する包帯材を製造するようにフィブリノーゲン濃度を調整した。トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。最終包帯材においてフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位を送達するようにトロンビンを調整した。

フィブリノーゲンおよびトロンビンを必要な温度（２、４、６および８℃）まで冷却し、予め冷却された１５ｍＬの円錐管内で混合し、金型内に分配する前に、渦を用いて高速で５秒間混合した。次いで、フィブリノーゲン−トロンビン混合物を、血清ピペットを使用して金型内に添加した。

結果：

結論：
３８〜５７％の遊離α鎖を含み、γ−γ二量体を含まない機能的包帯材を製造した。

金型は、１”×１”平方の切込みが刻まれた３／１６”のＰｌｅｘｉｇｌａｓのプラスチックスペーサで隔てられた一対のアルミニウム板または鋼板からなっていた。使用に際して、一緒になって包帯材の金型を形成する垂直装着された、板−スペーサ−板「サンドウィッチ」の上部方向へ切込みの開放側を配向させた。いくつかのグループにおいて、薄いプラスチック（ＰＶＣ）ライナーを使用して、金型冷却板に対する製品接触面を確保した。金型を所望の温度まで予備冷却し、裏当て材料を切断し、各金型内に配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンをＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。最終製品において１３ｍｇ／ｃｍ²のフィブリノーゲンを有する包帯材を製造するようにフィブリノーゲン濃度を調整した。トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。最終包帯材においてフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位を送達するようにトロンビンを調整した。

フィブリノーゲンおよびトロンビンを金型内に分配した。金型を満たすと、それらを凍結させ、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に−８０℃に維持した。次いで、包帯材を上記のように凍結乾燥した。完了すると、５グラムの乾燥材を含む低透湿度の箔のバッグ内に包帯材を保管した。

先述のように、ＥＶＰＡおよび接着性アッセイで包帯材の性能を評価した。製造した包帯材の生化学的特性決定を上記のようにゲル電気泳動によって行った。

結果：

結論：
すべての性能試験に合格する包帯材が製造された。遊離α鎖の割合は、４６から５６％であったのに対して、包帯材のいずれにも検出可能なγ−γ二量体が存在しなかった。

金型は、１”×１”平方の切込みが刻まれた３／１６”のＰｌｅｘｉｇｌａｓのプラスチックスペーサで隔てられた一対のアルミニウム板からなっていた。使用に際して、一緒になって包帯材の金型を形成する垂直装着された、板−スペーサ−板「サンドウィッチ」の上部方向へ切込みの開放側を配向させた。上部をドライアイスのわずかに上方にして、ドライアイスペレットに浸すことによって金型を予備冷却した。次いで、裏当て材料を切断し、各金型内に配置した。ＥＲＬフィブリノーゲンをＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。最終製品において１３ｍｇ／ｃｍ²のフィブリノーゲンを有する包帯材を製造するようにフィブリノーゲン濃度を調整した。トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。最終包帯材においてフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位を送達するようにトロンビンを調整した。

フィブリノーゲンおよびトロンビンを氷上に維持し、予め冷却された１５ｍＬ円錐管に添加し、渦を用いて高速で５秒間混合し、次いで血清ピペットを使用して金型内に添加するか、あるいはフィブリノーゲンを分配するための６０ｍＬシリンジおよびトロンビンを分配するための３ｍＬシリンジ内に充填し、シリンジをリニアシリンジポンプ内に配置し、管を使用して、各シリンジをＴ形コネクタの両端に接続した。次いで、ポンプを作動させ、コネクタの底部を使用して、フィブリノーゲン−トロンビン混合物を金型内に分配した。

金型を満たすと、それらを凍結させ、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に−８０℃に維持した。次いで、包帯材を上記のように凍結乾燥した。完了すると、５グラムの乾燥材を含む低透湿度の箔のバッグ内に包帯材を保管した。

先述のように、ＥＶＰＡおよび接着性アッセイで包帯材の性能を評価した。製造した包帯材の生化学的特性決定を上記のようにゲル電気泳動によって行った。

結果：

結論：
すべての性能試験に不合格の包帯材が製造された。これらの包帯材における遊離α量は、在来のフィブリノーゲンからフィブリンＩａへの完全な変換を示す１００％であった。γ−γ二量体の量は、５５〜５８％であった。フィブリノーゲンとトロンビンを混合するのに用いた方法間の差はなかった。

裏当て材料を切断し、各１．５×１．５ｃｍのＰＶＣ金型内に配置した。１５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１１２をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンの量を送達するように、トロンビンをＣＴＢで調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。

金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置されたアルミニウム板に配置した。２．４ｍｌのフィブリノーゲンを予め冷却された１２×７５ｍｍの管内にピペットで添加した後、３６０μｌのトロンビンを添加した。管を３秒間渦撹拌し、８９７μｌのアリコットを取り、金型内にピペットで添加した。６つの時点（２５秒、１、２、３、５および８分）の包帯材および対照包帯材を製造した。対照包帯材を予備混合せず、７８０μｌのフィブリノーゲンおよび１１７μｌのトロンビンをドライアイス上の金型内にピペットで同時に添加した。各金型を満たすと、それらを凍結乾燥器内に配置する前に、少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

結果：

結論：
遊離α量が０から４２％の十分に機能的な包帯材が製造された。

裏当て材料を切断し、各２．４×２．４ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

Ｅｎｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（ＥＲＬ）フィブリノーゲンロット３１１２をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するように、トロンビンをＣＴＢで調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、いくつかのグループを鋼製凍結乾燥器棚上に配置した。棚温度は、−１０℃、−２０℃、−３０℃および−４０℃であり、金型を３０分間にわたって棚上に配置して、平衡させた。１８ゲージの針が装着された３ｍｌシリンジに２ｍｌのフィブリノーゲンを充填し、２２ゲージの針が装着された第２の１ｍｌシリンジに０．３ｍｌのトロンビンを充填した。両シリンジを各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、それらを３０分間にわたってそれぞれの設定温度で凍結乾燥器内部に維持した。その後、先述のように凍結乾燥する前に少なくとも２時間にわたってそれらを−８０℃のフリーザーに戻した。

加えて、２つのグループの包帯材を、ドライアイス上に配置されたアルミニウム板に配置することによって製造した。１８ゲージの針が装着された３ｍｌシリンジに２ｍｌのフィブリノーゲンを充填し、２２ゲージの針が装着された第２の１ｍｌシリンジに０．３ｍｌのトロンビンを充填した。両シリンジを各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、それらを５分間にわたってドライアイス上に維持するか、あるいは３０秒間にわたって液体窒素上に配置した。その後、先述のように凍結乾燥する前に少なくとも２時間にわたってそれらを−８０℃のフリーザーに戻した。

ＥＶＰＡ、接着性および重量アッセイで、凍結乾燥した包帯材の性能を試験した。また、記載したようにゲル電気泳動を用いてそれらを分析した。

結果：

結論：
遊離α鎖量が１０％から３３％で、検出可能なγ−γ二量体を有さない包帯材が製造された。性能は、遊離α鎖の量および凍結温度と反比例的に関連づけられた。

ヒトフィブリノーゲン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ）をフィブリノーゲン３５ｍｇ／ｍｌの濃度にてＣＦＢで処方し、ウシトロンビン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ）を８７．５Ｕ／ｍｌの濃度にてＣＴＢで処方した。緩衝材のｐＨを各ウェルに対する目標ｐＨに合わせて調整した。

フィブリノーゲンおよびトロンビンの両方に対するｐＨの範囲は、０．５単位で増加する５．５から８．５であった。２つの試験温度、すなわち４℃および２４℃を用いた。平底９６ウェルＥＬＩＳＡプレート（Ｎａｌｇｅｎｃ、ＶＷＲ）で実験を行った。

１００μｌのフィブリノーゲンを９６ウェルプレートの各ウェル（３．５ｍｇ／ウェル）内にピペットで添加した後、１００μｌのトロンビン（８．７５Ｕ／ウェル）を添加した。以下のプレート設定を参照されたい。評価前に、プレートを１０分間インキュベートさせた。凝塊の形成および接着性ならびに混濁を検出するための逆転によって凝塊形成および構造を評価した。

プレート設定

結果：
室温のプレート：
すべてのウェルで凝塊が形成された。５．５および６．０のｐＨのフィブリノーゲンは、トロンビンのすべてのｐＨ範囲において極めて不透明な凝塊を有していた。５．５から７．０のｐＨ範囲のトロンビンを使用した６．５のｐＨのフィブリノーゲンは、不透明な凝塊を有していた。ｐＨ７．５を超えるトロンビンでは、凝塊は透明であった。７．０以上のｐＨ値のフィブリノーゲンは、トロンビンのすべてのｐＨ値において透明な凝塊を形成した。結果を図６Ａに示す。

４℃のプレート：
すべてのウェルで凝塊が形成された。５．５および６．０のｐＨのフィブリノーゲンは、トロンビンのすべてのｐＨ範囲において極めて不透明な凝塊を有していた。５．５から７．０のｐＨ範囲のトロンビンを使用した６．５のｐＨのフィブリノーゲンは、不透明な凝塊を有していた。ｐＨ７．５を超えるトロンビンでは、凝塊は透明であった。７．０以上のｐＨ値のフィブリノーゲンは、トロンビンのすべてのｐＨ値において透明な凝塊を形成した。結果を図６Ｂに示す。

接着性：
プレートをペーパータオル上で逆転させ、プレートの背面を軽く叩くことによって接着性を測定した。３０秒後にプレートを取り除き、プレートに残留する凝塊を接着性があると見なし、ペーパータオル上に落ちた凝塊を接着性がないと見なした。

所見：
不透明性が異なる凝塊が形成されたが、ｐＨ５．５および６．０のフィブリノーゲンを使用して形成された凝塊は、接着性が欠如していた。これは、トロンビンｐＨが５．５から７．０である場合のｐＨ６．５のフィブリノーゲンにも当てはまることであった。フィブリノーゲンｐＨが７．０以上であれば、試験したすべてのトロンビンｐＨ範囲において接着性のある凝塊が形成された。これは、室温のプレートおよび４℃のプレートの双方に当てはまることであった。

結論：
これらの結果から、包帯材は、７．０以上のｐＨのフィブリノーゲンを有することが好ましいが、トロンビンのｐＨは、５．５から８．５の範囲で変化し得ると判断された。

ヒトフィブリノーゲン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ）をフィブリノーゲン３５ｍｇ／ｍｌの濃度にて（塩化カルシウムが欠如した）改造型ＣＦＢで処方し、ウシトロンビン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ）を８７．５Ｕ／ｍｌの濃度にて（塩化カルシウムが欠如した）改造型ＣＴＢで処方した。緩衝材のｐＨを各ウェルに対する目標ｐＨに合わせて調整した。

フィブリノーゲンおよびトロンビンの両方に対するｐＨの範囲は、０．５単位で増加する５．５から８．５であった。２つの試験温度、すなわち４℃および２４℃を用いた。平底９６ウェルＥＬＩＳＡプレート（Ｎａｌｇｅｎｅ、ＶＷＲ）で実験を行った。

１００μｌのフィブリノーゲンを９６ウェルプレートの各ウェル（３．５ｍｇ／ウェル）内にピペットで添加した後、１００μｌのトロンビン（８．７５Ｕ／ウェル）を添加した。以下のプレート設定を参照されたい。評価前に、プレートを１０分間インキュベートさせた。凝塊の形成および接着性ならびに混濁を検出するための逆転によって凝塊形成および構造を評価した。

プレート設定

結果：
室温のプレート：
すべてのウェルで凝塊が形成された。５．５および６．０のｐＨのフィブリノーゲンは、トロンビンのすべてのｐＨ範囲において極めて不透明な凝塊を有していた。５．５から８．５のｐＨ範囲のトロンビンを使用した６．５のｐＨのフィブリノーゲンは、不透明でない凝塊を有していたが、それが前回の結果と異なる。ｐＨ７．５を超えるトロンビンでは、凝塊は透明であった。６．５以上のｐＨ値のフィブリノーゲンは、トロンビンのすべてのｐＨ値において凝塊を形成した。結果を図６Ｃに示す。

４℃のプレート：
すべてのウェルで凝塊が形成された。５．５および６．０のｐＨのフィブリノーゲンは、トロンビンのすべてのｐＨ範囲において極めて不透明な凝塊を有していた。５．５から７．０のｐＨ範囲のトロンビンを使用した６．５のｐＨのフィブリノーゲンは、不透明な凝塊を有していた。ｐＨ７．５を超えるトロンビンでは、凝塊は透明であった。７．０以上のｐＨ値のフィブリノーゲンは、トロンビンのすべてのｐＨ値において凝塊を形成した。結果を図６Ｄに示す。

接着性：
プレートをペーパータオル上で逆転させ、プレートの背面を軽く叩くことによって接着性を測定した。３０秒後にプレートを取り除き、プレートに残留する凝塊を接着性があると見なし、ペーパータオル上に落ちた凝塊を接着性がないと見なした。

所見：
不透明性が異なる凝塊が形成されたが、ｐＨ５．５および６．０のフィブリノーゲンを使用して形成された凝塊は、接着性が欠如していた。フィブリノーゲンｐＨが６．５以上になると、試験したすべてのトロンビンｐＨ範囲で接着性凝塊が形成された。これは、室温のプレートおよび４℃のプレートの双方に当てはまることであった。これらの結果は、緩衝材がＣａＣｌ₂を含んでいない場合に、ｐＨ６．５のフィブリノーゲンが接着性凝塊を形成したという点で前回の結果と異なる。

結論：
これらの結果から、ＣａＣｌ₂が存在しなければ、包帯材は、６．５以上のｐＨのフィブリノーゲンを有するべきであるが、トロンビンのｐＨは、５．５から８．５の範囲で変化し得ると判断された。

ヒトフィブリノーゲン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ）をフィブリノーゲン３５ｍｇ／ｍｌの濃度にてＣＦＢで処方した。ウシトロンビン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ）を８７．５Ｕ／ｍｌの濃度にてＣＴＢで処方した。緩衝材のｐＨを各ウェルに対する目標ｐＨに合わせて調整した。包帯材をディスポーザブル２．４×２．４ｃｍ組織金型で製造した。吸収性裏当て材料。シリンジ（２．０ｍｌ）。ドライアイスによる垂直双方向凍結。

裏当て材料を各２．４×２．４ｃｍのＰＶＣ金型内に配置した。１５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。ＰＥＴＧプラスチックの第２の部分を１．５×１．５の金型の上部に装着し、所定位置に保持した。これにより、閉鎖金型が形成された。次いで、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

フィブリノーゲン（Ｓｉｇｍａ）をＣＦＢで処方した。ＣＦＢを用いて、フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。フィブリノーゲンの最終ｐＨを以下に示すように調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨを以下に示すように調整した。混合前の２５単位／ｍｌのトロンビンに対応するフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位を（混合すると）送達するように、ＣＴＢを用いてトロンビン濃度を調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。次いで、金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。１８ゲージの針を使用して、金型の上部に３つの穴を空けた。１つの穴は、フィブリノーゲンを注入するために使用され、第２の穴は、トロンビンを注入するために使用された。これらの穴は、金型の両端に位置し、金型の上部の中央に位置する第３の穴は、金型の内部から排出される空気を放出するための通気口として機能した。次いで、２つの３ｍｌシリンジに２．０ｍｌのフィブリノーゲンおよびトロンビンをそれぞれ充填した。次いで、金型の端部の２つの穴を介して、これらを金型内に同時に注入した。金型を満たすと、金型をドライアイスペレットで覆い、２分間凍結させた後、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、それらを以下に記載するように凍結乾燥した。

包帯材を製造する組合せ

評価基準
包帯材をそれらの外観について評価した。大量の粉末材料で構成されていると思われる包帯材は、性能が劣るということが、フィブリンシーラントをベースとする包帯材の製造の長い経験によって判明した。同様に、包帯材における前形成フィブリンの視覚的検出は、包帯材が低い接着性を有することを示すものであるため、性能と反比例的に相関する。水和の容易さおよび速度も容易に評価され、容易かつ迅速に均一に水和する包帯材では、良好な性能が予想される。最終的に、高密度かつ均一なフィブリンからなる凝塊を形成する能力も良好な性能に必要とされ、視覚的に評価され得る。

すべての包帯材を視覚的に評価した。加えて、包帯材１〜４および６を３７℃の水２ｍｌで水和し、水和速度、凝塊を形成するそれらの能力、および後の接着性を視覚的に評価した。

結果：
凍結乾燥後の外観
すべての包帯材を視覚的規準により容易に評価した（図７Ａおよび７Ｂ参照）。包帯材１および２は、他の包帯材と比較して粉末が非常に多かった。粉末が多い包帯材の相対的割合は、フィブリノーゲンのｐＨが上昇するに従って低下した。

包帯材１および２は、以下の図において高密度の白色のまだら領域として見ることができる前形成フィブリンをいくらか有していたのに対して、包帯材３、４および６は、前形成フィブリンを大量に有し、可溶化するのが遅かった。対照的に、５番の包帯材は、高度な保全性を有し、視覚的に検出可能な前形成フィブリンを有していなかった。これらの結果を以下の表に要約する。

結論：
包帯材特性を以上の表に示す。包帯材は、該ｐＨ範囲のすべての部分で凝塊を形成した。５．５から６．０のフィブリノーゲンｐＨおよび６．０から６．５のトロンビンｐＨの包帯材は、水和前の保全性が最も低かった。それらは、また、水和前にフィブリノーゲンが形成されていた。６．５から７．０のフィブリノーゲンｐＨおよび７．０から８．０のトロンビンｐＨの包帯材は、保全性がより高かったが、水和前のフィブリンがより多かった。８．０から８．５のｐＨのフィブリノーゲンおよび７．５のｐＨのトロンビンを使用して製造した包帯材は、良好な保全性を有していたが、水和前のフィブリンの量が多く、水和するのが困難であった。対照的に、フィブリノーゲンおよびトロンビンの両方がｐＨ７．０である場合は、得られた包帯材は、優れた保全性を有し、前形成フィブリンの量もより少なかった。ｐＨ７．５のフィブリノーゲンと７．０のｐＨのトロンビンとの組合せを使用して最良の包帯材を得た。

裏当て材料（Ｄｅｘｏｎ（商標））を切断し、各１．５×１．５のＰＶＣ金型内に配置した。１５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。ＰＥＴＧプラスチックの第２の部分を切断して、１．５×１．５の金型の上部に装着し、金型の各端部に位置するバインダクリップを加えることによって所定位置に保持した。これで金型は閉鎖された。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１００をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度をＣＦＢで３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンをＣＴＢで調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、直立（垂直）位置で２つのアルミニウム板の間に配置し、次いでドライアイス上に配置した。１８ゲージの針を使用して、金型の上部に３つの穴を空けた。１つの穴は、フィブリノーゲンの導入に使用され、第２の穴は、トロンビンの導入に使用され、第３の穴は、金型内に存在する空気を放出するために使用された。ピペットにフィブリノーゲンを充填し、第２のピペットにトロンビンを充填した。０．７８ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１７ｍｌのトロンビンを各金型内に同時に分配した。各金型を満たすと、それらを３０秒間にわたって液体窒素の上部に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置し、先述のように凍結乾燥する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。

結果：

結論：
これらの結果から、７．３から７．５の全ｐＨで製造される包帯材は、優れた性能を示すと判断された。

裏当てを利用する包帯材では、裏当て材料を切断し、各２．４×２．４ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１１４をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンをＣＴＢで調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置された銅板に配置した。反復ピペッターにフィブリノーゲンを充填し、第２の反復ピペッターにトロンビンを充填した。２ｍｌのフィブリノーゲンおよび３００マイクロリットルのトロンビンを各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、包帯材を記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当て材料を各１．５×１．５のＰＶＣ金型内に配置した。１５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。ＰＥＴＧプラスチックの第２の部分を１．５×１．５の金型の上部に装着し、所定位置に保持した。これにより、閉鎖した金型を形成した。金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

フィブリノーゲン（ＥＲＬロット３１００）をＣＦＢで処方した。ＣＦＢを用いてフィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。混合前の２５単位／ｍｌのトロンビンに対応するフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位を（混合すると）送達するように、ＣＴＢを使用してトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。次いで、金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。１８ゲージの針を使用して、金型の上部に３つの穴を空けた。１つの穴は、フィブリノーゲンを注入するために使用され、第２の穴は、トロンビンを注入するために使用され、第３の穴は、金型内部から排出される空気を放出するための通気口として機能した。次いで、ピペットにフィブリノーゲンを充填し、第２のピペットにトロンビンを充填した。これらのピペットを介して、０．７８ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１７ｍｌのトロンビンを各金型内に同時に注入した。金型を満たすと、金型を３０秒間にわたって液体窒素のプールの上部に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、それらを記載されているように凍結乾燥した。

結果：

すべての包帯材について、ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１３０をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。細断されたＶＩＣＲＹＬ（商標）メッシュが内部に分散されたグループについては、この支持材料を切断して約１ｍｍ×１ｍｍ片とし、金型に充填する前にトロンビン溶液中に分散させた。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。ルアーロック端が取り除かれた１０または３ｍＬポリプロピレンシリンジ（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）で構成された円筒状金型を使用した。プランジャーをそれぞれ６ｍＬおよび２ｍＬの標線まで引いた。裏当てを利用する包帯材については、支持材料を切断し、各金型内に配置し、プランジャーに隣接するまで押し下げた。調製すると、金型を直立に配置し、ドライアイスで囲み、開口部を上部で露出させた。１ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１５ｍｌのトロンビン（裏当て材料が内部に分散された、または分散されていない）を１０ｍＬ金型内に分配し、１ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１５ｍＬのトロンビン（支持材料が内部に分散された、または分散されていない）を３ｍＬ金型内に分配し、それらを５分間にわたって凍結させた。次いで、金型を凍結乾燥器内に配置し、記載したように凍結乾燥する前に、少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザー内に配置した。

結果：

概要

結論：
製造条件のためのＥＶＰＡ試験に合格した包帯材が製造された。

裏当て材料を各１．５×１．５のＰＶＣ金型内に配置した。１５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。ＰＥＴＧプラスチックの第２の部分を１．５×１．５の金型の上部に装着し、所定位置に保持した。これにより、閉鎖した金型を形成した。金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

フィブリノーゲン（ＥＲＬロット３１００）をＣＦＢで処方した。ＣＦＢを用いてフィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。混合前の２５単位／ｍｌのトロンビンに対応するフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位を（混合すると）送達するように、ＣＴＢを使用してトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。次いで、金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。１８ゲージの針を使用して、金型の上部に３つの穴を空けた。１つの穴は、フィブリノーゲンを注入するために使用され、第２の穴は、トロンビンを注入するために使用され、第３の穴は、金型内部から排出される空気を放出するための通気口として機能した。次いで、ピペットにフィブリノーゲンを充填し、第２のピペットにトロンビンを充填した。これらのピペットを介して、０．７８ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１７ｍｌのトロンビンを各金型内に同時に注入した。金型を満たすと、金型を３０秒間にわたって液体窒素のプールの上部に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、それらを記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当てを利用する包帯材では、裏当て材料を切断し、各２．４×２．４ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１１４をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置された銅板に配置した。反復ピペッターにフィブリノーゲンを充填し、第２の反復ピペッターにトロンビンを充填した。２ｍｌのフィブリノーゲンおよび３００マイクロリットルのトロンビンを各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、包帯材を記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当て材料を各２．４×２．４ｃｍのＰＶＣ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

フィブリノーゲン（ＥＲＬロット３１００）をＣＦＢで処方した。ＣＦＢを用いて、フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するように、トロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。１８ゲージの針が装着された３ｍｌシリンジに２ｍｌのフィブリノーゲンを充填し、２２ゲージの針が装着された第２の１ｍｌシリンジに０．３ｍｌのトロンビンを充填した。両シリンジの内容物を各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、金型を３０秒間にわたって液体窒素の上部に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、それらを記載するように凍結乾燥した。

結果：

裏当て材料を切断し、各１０×１０ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。５０マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１１４をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するように、トロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するように、トロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃フリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置されたアルミニウム板に配置した。アルミニウム板は、中央に０．２５インチの穴が空けられており、管の一部を真空源に接続できるように継手が取りつけられていた。金型の中心をアルミニウム板の穴に合わせ、真空をオンした。真空は、金型が移動することを防止し、それをアルミニウム板に対して平坦に保持するという２つの目的を果たした。３５ミリリットルのフィブリノーゲンおよび５．２５ミリリットルのトロンビンを５０ｍｌの試験管に入れ、３回逆転させ、金型内に注いだ。金型を満たし、上記のように支持材料を塗布した後に、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、包帯材を記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当て材料を切断し、各１．５×１．５ｃｍのＰＶＣ金型内に配置した。１５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット２８９０をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するように、トロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するように、トロンビンを調整した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃フリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置されたアルミニウム板に配置した。ＩＪ Ｆｉｓｎｅｒの２つの自動分配システムを製造元の説明書に従って組み立てた。１つのシリンジにフィブリノーゲンを充填し、第２のシリンジにトロンビンを充填した。０．７８ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１７ｍｌのトロンビンを各金型内に同時に分配した。各金型を満たすと、それらを３０秒間にわたって液体窒素の上部に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。

結果：

概要：

結論：
多くの様々な充填技術を用いて製造した包帯材は、いずれもそれらを試験したアッセイに合格した。これは、多くの様々な充填手順によるトロンビン構成要素とフィブリノーゲン構成要素の許容し得る混合が存在することを示している。

裏当て材料を切断し、各２．４×２．４ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１１４をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置された銅板に配置した。反復ピペッターにフィブリノーゲンを充填し、第２の反復ピペッターにトロンビンを充填した。２ｍｌのフィブリノーゲンおよび３００マイクロリットルのトロンビンを各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、包帯材を記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当て材料を各１．５×１．５ｃｍのＰＶＣ金型内に配置した。１５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。ＰＥＴＧプラスチックの第２の部分を切断して、１．５×１．５の金型の上部に装着し、所定位置に保持した。これにより、閉鎖した金型を形成した。金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

フィブリノーゲン（ＥＲＬロット３１００）をＣＦＢで処方した。ＣＦＢを用いてフィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。混合前の２５単位／ｍｌのトロンビンに対応するフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位を（混合すると）送達するように、ＣＴＢを使用してトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。次いで、金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。１８ゲージの針を使用して、金型の上部に３つの穴を空けた。１つの穴は、フィブリノーゲンを注入するために使用され、第２の穴は、トロンビンを注入するために使用され、第３の穴は、金型内部から排出される空気を放出するための通気口として機能した。次いで、ピペットにフィブリノーゲンを充填し、第２のピペットにトロンビンを充填した。これらのピペットを介して、０．７８ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１７ｍｌのトロンビンを各金型内に同時に注入した。金型を満たすと、金型を３０秒間にわたって液体窒素のプールの上部に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、それらを記載されているように凍結乾燥した。

結果：

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１３０をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。細断されたＶＩＣＲＹＬ（商標）メッシュが内部に分散されたグループについては、この支持材料を切断して約１ｍｍ×１ｍｍ片とし、金型に充填する前にトロンビン溶液中に分散させた。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。ルアーロック端が取り除かれた１０または３ｍＬポリプロピレンシリンジ（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）で構成された円筒状金型を使用した。プランジャーをそれぞれ６ｍＬおよび２ｍＬの標線まで引いた。裏当てを利用する包帯材については、支持材料を切断し、各金型内に配置し、プランジャーに隣接するまで押し下げた。調製すると、金型を直立に配置し、ドライアイスで囲み、開口部を上部で露出させた。１ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１５ｍＬトロンビン（裏当て材料が内部に分散された、または分散されていない）を１０ｍＬ金型内に分配し、１ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１５ｍＬのトロンビン（支持材料が内部に分散された、または分散されていない）を３ｍＬ金型内に分配し、それらを５分間にわたって凍結させた。次いで、金型を凍結乾燥器内に配置し、記載したように凍結乾燥する前に、少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザー内に配置した。

結果：

結論：
様々な条件下で製造し、凍結させた包帯材は、いずれも各実施例に用いたアッセイに合格した。フィブリノーゲンおよびトロンビンを様々な条件下で液体として組み合わせ、凍結させることができる。

裏当て材料を各１．５×１．５ｃｍのＰＶＣ金型内に配置した。１５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。ＰＥＴＧプラスチックの第２の部分を切断して、１．５×１．５の金型の上部に装着し、所定位置に保持した。これにより、閉鎖した金型を形成した。金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

フィブリノーゲン（ＥＲＬロット３１００）をＣＦＢで処方した。ＣＦＢを用いてフィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。混合前の２５単位／ｍｌのトロンビンに対応するフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位を（混合すると）送達するように、ＣＴＢを使用してトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。次いで、金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。１８ゲージの針を使用して、金型の上部に３つの穴を空けた。１つの穴は、フィブリノーゲンを注入するために使用され、第２の穴は、トロンビンを注入するために使用され、第３の穴は、金型内部から排出される空気を放出するための通気口として機能した。次いで、ピペットにフィブリノーゲンを充填し、第２のピペットにトロンビンを充填した。これらのピペットを介して、０．７８ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１７ｍｌのトロンビンを各金型内に同時に注入した。金型を満たすと、金型を３０秒間にわたって液体窒素のプールの上部に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、それらを記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当て材料を切断し、各２．４×２．４ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。
ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１１４をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置された銅板に配置した。反復ピペッターにフィブリノーゲンを充填し、第２の反復ピペッターにトロンビンを充填した。２ｍｌのフィブリノーゲンおよび３００マイクロリットルのトロンビンを各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、包帯材を記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当て材料を切断し、各１０×１０ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。５０マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１１４をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するように、トロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するように、トロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃フリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置されたアルミニウム板に配置した。アルミニウム板は、中央に０．２５インチの穴が空けられており、管の一部を真空源に接続できるように継手が取りつけられていた。金型の中心をアルミニウム板の穴に合わせ、真空をオンした。真空は、金型が移動することを防止し、それをアルミニウム板に対して平坦に保持するという２つの目的を果たした。３５ミリリットルのフィブリノーゲンおよび５．２５ミリリットルのトロンビンを５０ｍｌの試験管に入れ、３回逆転させ、金型内に注いだ。金型を満たし、上記のように支持材料を塗布した後に、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、包帯材を記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当て材料を切断し、各３．７×２．４ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１００をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するように、トロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置されたアルミニウム板に配置した。ピペットにフィブリノーゲンを充填し、第２のピペットにトロンビンを充填した。３．１ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．４６５ｍｌのトロンビンを各金型内に同時に分配した。各金型を満たすと、それらを３０秒間にわたって液体窒素上に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、包帯材を記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当て材料を切断し、６３．６ｃｍ²の丸形金型内に配置した。５０マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１００をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するように、トロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置されたアルミニウム板に配置した。２２ミリリットルのフィブリノーゲンおよび３．３ミリリットルのトロンビンを５０ｍｌ試験管に配置し、３回逆転させ、金型内に注いだ。金型を満たすと、金型を３０秒間にわたって液体窒素上に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、包帯材を記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当て材料を切断し、６３．６ｃｍ²の丸形金型内に配置した。５０マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１００をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するように、トロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置されたアルミニウム板に配置した。５．２×５．６ｃｍの金型では、１０．１ミリリットルのフィブリノーゲンおよび１．５ミリリットルのトロンビンを５０ｍｌ試験管に配置し、３回逆転させ、金型内に注いだ。１３．０×８．０ｃｍの金型には３６ｍｌのフィブリノーゲンおよび５．４ｍｌのトロンビンを入れた。７．０×３．０ｃｍの金型には７．３ｍｌのフィブリノーゲンおよび１．１ｍｌのトロンビンを入れた。金型を満たすと、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、包帯材を記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当て材料を切断し、６３．６ｃｍ²の丸形金型内に配置した。５０マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１１２をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するように、トロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置されたアルミニウム板に配置した。５．５×６．０ｃｍの金型では、１１．５ミリリットルのフィブリノーゲンおよび１．７３ミリリットルのトロンビンを５０ｍｌ試験管に配置し、３回逆転させ、金型内に注いだ。１０．０×８．０ｃｍの金型には２７．７ｍｌのフィブリノーゲンおよび４．１６ｍｌのトロンビンを入れた。１２．０×８．０ｃｍの金型には３７．４ｍｌのフィブリノーゲンおよび５．６２ｍｌのトロンビンを入れた。各金型を満たすと、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。

結果：

結論：
小（２．２５ｃｍ²）から大（１０８ｃｍ²）のいくつかの大きさの包帯材を製造することができる。製造した包帯材のすべてが、それぞれの試験基準に合格した。試薬の混合ならびに凍結時間および凍結温度を制御すれば、包帯材を任意の合理的かつ有用かつ許容可能な大きさで製造することができる。

裏当て材料を各１．５×１．５ｃｍのＰＶＣ金型内に配置した。１５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。ＰＥＴＧプラスチックの第２の部分を切断して、１．５×１．５の金型の上部に装着し、所定位置に保持した。これにより、閉鎖した金型を形成した。金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

フィブリノーゲン（ＥＲＬロット３１００）をＣＦＢで処方した。ＣＦＢを用いてフィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。混合前の２５単位／ｍｌのトロンビンに対応するフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位を（混合すると）送達するように、ＣＴＢを使用してトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。次いで、金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。１８ゲージの針を使用して、金型の上部に３つの穴を空けた。１つの穴は、フィブリノーゲンを注入するために使用され、第２の穴は、トロンビンを注入するために使用され、第３の穴は、金型内部から排出される空気を放出するための通気口として機能した。次いで、ピペットにフィブリノーゲンを充填し、第２のピペットにトロンビンを充填した。これらのピペットを介して、０．７８ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１７ｍｌのトロンビンを各金型内に同時に注入した。金型を満たすと、金型を３０秒間にわたって液体窒素のプールの上部に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、それらを記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当てを利用する包帯材では、裏当て材料を切断し、各２．４×２．４ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１１４をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置された銅板に配置した。反復ピペッターにフィブリノーゲンを充填し、第２の反復ピペッターにトロンビンを充填した。２ｍｌのフィブリノーゲンおよび３００マイクロリットルのトロンビンを各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、包帯材を記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当て材料を切断し、２．４×２．４ｃｍのステンレス鋼金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

フィブリノーゲン（ＥＲＬロット３１００）をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。混合前の２５単位／ｍｌのトロンビンに対応するフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位を（混合すると）送達するように、ＣＴＢを使用してトロンビン濃度を調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。次いで、金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。次いで、ピペットにフィブリノーゲンを充填し、第２のピペットにトロンビンを充填した。これらのピペットを介して２．０ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．３ｍｌのトロンビンを各金型に同時に注入した。金型を満たすと、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、包帯材を記載されているように凍結乾燥した。

結果：

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１３０をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。細断されたＶＩＣＲＹＬ（商標）メッシュが内部に分散されたグループについては、この支持材料を切断して約１ｍｍ×１ｍｍ片とし、金型に充填する前にトロンビン溶液中に分散させた。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。ルアーロック端が取り除かれた１０または３ｍＬポリプロピレンシリンジ（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）で構成された円筒状金型を使用した。プランジャーをそれぞれ６ｍＬおよび２ｍＬの標線まで引いた。裏当てを利用する包帯材については、支持材料を切断し、各金型内に配置し、プランジャーに隣接するまで押し下げた。調製すると、金型を直立に配置し、ドライアイスで囲み、開口部を上部で露出させた。１ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１５ｍＬトロンビン（裏当て材料が内部に分散された、または分散されていない）を１０ｍＬ金型内に分配し、１ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１５ｍＬのトロンビン（支持材料が内部に分散された、または分散されていない）を３ｍＬ金型内に分配し、それらを５分間にわたって凍結させた。次いで、金型を凍結乾燥器内に配置し、記載したように凍結乾燥する前に、少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

結果：

概要：

結論：
金型支持体として様々なプラスチックまたは金属を使用して包帯材を製造することができる。これらの包帯材のすべてが、それぞれの試験基準に合格した。

裏当て材料を切断し、各１０×１０ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。５０マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１１４をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するように、トロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するように、トロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃フリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置されたアルミニウム板に配置した。アルミニウム板は、中央に０．２５インチの穴が空けられており、管の一部を真空源に接続できるように継手が取りつけられていた。金型の中心をアルミニウム板の穴に合わせ、真空をオンした。真空は、金型が移動することを防止し、それをアルミニウム板に対して平坦に保持するという２つの目的を果たした。３５ミリリットルのフィブリノーゲンおよび５．２５ミリリットルのトロンビンを５０ｍｌの試験管に入れ、３回逆転させ、金型内に注いだ。金型を満たし、上記のように支持材料を塗布した後に、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、包帯材を記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当て材料を各１．５×１．５のＰＶＣ金型内に配置した。１５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。ＰＥＴＧプラスチックの第２の部分を切断して、１．５×１．５の金型の上部に装着し、所定位置に保持した。これにより、閉鎖した金型を形成した。金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

フィブリノーゲン（ＥＲＬロット３１００）をＣＦＢで処方した。ＣＦＢを用いてフィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。混合前の２５単位／ｍｌのトロンビンに対応するフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位を（混合すると）送達するように、ＣＴＢを使用してトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。次いで、金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。１８ゲージの針を使用して、金型の上部に３つの穴を空けた。１つの穴は、フィブリノーゲンを注入するために使用され、第２の穴は、トロンビンを注入するために使用され、第３の穴は、金型内部から排出される空気を放出するための通気口として機能した。次いで、ピペットにフィブリノーゲンを充填し、第２のピペットにトロンビンを充填した。これらのピペットを介して、０．７８ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１７ｍｌのトロンビンを各金型内に同時に注入した。金型を満たすと、金型を３０秒間にわたって液体窒素のプールの上部に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、それらを記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当て材料を切断し、各２．４×２．４ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１１４をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置された銅板に配置した。反復ピペッターにフィブリノーゲンを充填し、第２の反復ピペッターにトロンビンを充填した。２ｍｌのフィブリノーゲンおよび３００マイクロリットルのトロンビンを各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、包帯材を記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当て材料を切断し、各２．４×２．４ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１３０をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、温度が−５０℃に設定された鋼製凍結乾燥器棚に配置した。金型温度が−５０℃に対して平衡するように金型を３０分間にわたって棚上に維持した。３０分後、反復ピペッターにフィブリノーゲンを充填し、第２の反復ピペッターにトロンビンを充填した。２ｍｌのフィブリノーゲンおよび３００マイクロリットルのトロンビンを各金型に同時に分配した。金型を満たすと、それらを−５０℃で３０分間にわたって凍結乾燥器内部に維持した。その後、それらを凍結乾燥する前に２４時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。

結果：

概要：

結論：
高速凍結および高速伝熱を可能にする金属板上で製造された包帯材は、すべての試験基準に合格する。同等の速度で熱を伝えることができる他の金属または同様の材料も同様の結果をもたらすことが期待されるであろう。

裏当て材料を切断し、各２．４×２．４ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１１４をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上に配置された銅板に配置した。反復ピペッターにフィブリノーゲンを充填し、第２の反復ピペッターにトロンビンを充填した。２ｍｌのフィブリノーゲンおよび３００マイクロリットルのトロンビンを各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、包帯材を記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当て材料を各１．５×１．５のＰＶＣ金型内に配置した。１５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。ＰＥＴＧプラスチックの第２の部分を切断して、１．５×１．５の金型の上部に装着し、所定位置に保持した。これにより、閉鎖した金型を形成した。金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

フィブリノーゲン（ＥＲＬロット３１００）をＣＦＢで処方した。ＣＦＢを用いてフィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。混合前の２５単位／ｍｌのトロンビンに対応するフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位を（混合すると）送達するように、ＣＴＢを使用してトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。次いで、金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。１８ゲージの針を使用して、金型の上部に３つの穴を空けた。１つの穴は、フィブリノーゲンを注入するために使用され、第２の穴は、トロンビンを注入するために使用され、第３の穴は、金型内部から排出される空気を放出するための通気口として機能した。次いで、ピペットにフィブリノーゲンを充填し、第２のピペットにトロンビンを充填した。これらのピペットを介して、０．７８ｍｌのフィブリノーゲンおよび０．１７ｍｌのトロンビンを各金型内に同時に注入した。金型を満たすと、金型を３０秒間にわたって液体窒素のプールの上部に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、それらを記載されているように凍結乾燥し、記載されているようにＥＶＰＡおよび接着性アッセイを用いて性能試験を行った。

結果：

裏当て材料を各１．５×１．５ｃｍのＰＶＣ金型内に配置した。１５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。次いで、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

３グラムのフィブリノーゲン（Ｓｉｇｍａ（商標）Ｌｏｔ＃Ｆ−３８７９）を含むバイアルを−２０℃のフリーザーから取り出し、１８時間にわたって４℃で配置した。次いで、ボトルをフリーザーから取り出し、６０分間にわたって室温に戻した。ボトルに対して、３７℃の水を６０ｍｌ添加し、３７℃で１５分間混合させた。溶液になると、フィブリノーゲンをＩＦＢに対して透析した。４時間の終了時に、ＨＳＡを全タンパク質１ｇ当たり８０ｍｇの濃度まで添加し、Ｔｗｅｅｎ８０（動物源）を全タンパク質１ｇ当たり１５ｍｇ／ｇの濃度まで添加した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。ＣＦＢを用いて、フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。（混合前の）２５単位／ｍｌのトロンビンに対応するフィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位の量を（混合すると）送達するように、トロンビン濃度を調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。１８ゲージの針が装着された３ｍｌシリンジに２ｍｌのフィブリノーゲンを充填し、２２ゲージの針が装着された第２の１ｍｌシリンジに０．３ｍｌのトロンビンを充填した。両シリンジの内容物を各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、金型を３０秒間にわたって液体窒素上に配置し、次いで、凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。それらを記載されているように凍結乾燥した。

結果：

裏当て材料を切断し、各２．４×２．４ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１３０をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、小さな窒素凍結トンネルの内部に位置するアルミニウム支持体に配置した。液体窒素をトンネルの前部に送り込むと、そこで液体から気体に変化した。液体窒素がトンネルに入る状態および圧力の変化によって、気体が傾斜路を上昇し、金型上を流れ、トンネルから出る。フィブリノーゲンまたはトロンビンを添加する前に、トンネルおよび金型を液体窒素ガスで５分間冷却した。

５分後、反復ピペッターにフィブリノーゲンを充填し、第２の反復ピペッターにトロンビンを充填した。金型を支持するアルミニウム支持体を凍結トンネルから滑り出した。２ｍｌのフィブリノーゲンおよび３００マイクロリットルのトロンビンを各金型に同時に分配した。金型を満たすと、それらを凍結トンネルの内部に戻した。次いで、液体窒素を始動させ、３分間流した。その後、包帯材を凍結乾燥する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。

結果：

裏当て材料を切断し、各２．４×２．４ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１３０をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、鋼製凍結乾燥器棚上に配置した。棚温度は、−５℃、−１０℃、−１５℃、−２０℃、−２５℃、−３０℃、−４０℃および−５０℃であった。各温度で、金型を３０分間にわたって棚上に配置して、平衡させた。３０分後、反復ピペッターにフィブリノーゲンを充填し、第２の反復ピペッターにトロンビンを充填した。２ｍｌのフィブリノーゲンおよび３００マイクロリットルのトロンビンを各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、それらを凍結乾燥器内部にそれらの設定温度で３０分間維持した。その後、それらを凍結乾燥する前に２４時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。

結果：

裏当て材料を切断し、各２．４×２．４ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。

ＥＲＬフィブリノーゲンロット３１１２をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。

トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するようにトロンビンを調整した。調製すると、トロンビンを使用するまで氷上に配置した。

分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、鋼製凍結乾燥器棚上に配置した。棚温度は、−１０℃、−２０℃、−３０℃および−４０℃であった。各温度で、金型を３０分間にわたって棚上に配置して、平衡させた。１８ゲージの針が装着された３ｍｌシリンジに２ｍｌのフィブリノーゲンを充填し、２２ゲージの針が装着された第２の１ｍｌシリンジに０．３ｍｌのトロンビンを充填した。両シリンジの内容物を各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、それらを凍結乾燥器内部にそれらの設定温度で３０分間維持した。その後、それらを凍結乾燥する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。

加えて、ドライアイス上に配置されたアルミニウム板に配置することのみによって、またはその後３０秒間にわたって液体窒素上に配置することによって、１グループの包帯材を製造した。１８ゲージの針が装着された３ｍｌシリンジに２ｍｌのフィブリノーゲンを充填し、２２ゲージの針が装着された第２の１ｍｌシリンジに０．３ｍｌのトロンビンを充填した。両シリンジの内容物を各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、それらをドライアイス上に５分間維持するか、または液体窒素上に３０秒間配置した。その後、それらを凍結乾燥する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。

概要

裏当て材料を切断し、各２．４×２．４ｃｍのＰＥＴＧ金型内に配置した。２５マイクロリットルの２％スクロースを裏当て材料の４隅の各々の上部にピペットで添加した。完了すると、金型を少なくとも６０分間にわたって−８０℃のフリーザーに配置した。フィブリノーゲンロット（ＥＲＬロット３１５０）をＣＦＢで処方した。フィブリノーゲン濃度を３７．５ｍｇ／ｍｌに調整した。フィブリノーゲンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。調製すると、フィブリノーゲンを使用するまで氷上に配置した。トロンビンをＣＴＢで処方した。トロンビンの最終ｐＨは、７．４±０．１であった。フィブリノーゲン１ｍｇ当たり０．１単位または２５単位／ｍｌのトロンビンを送達するように、ＣＴＢを用いてトロンビン濃度を調整した。分配前のフィブリノーゲンおよびトロンビンの温度は、４℃±２℃であった。３つの金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に配置した。反復ピペッターにフィブリノーゲンを充填し、第２の反復ピペッターにトロンビンを充填した。２ｍｌのフィブリノーゲンおよび３００マイクロリットルのトロンビンを各金型内に同時に分配した。金型を満たすと、それらを凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。これは、実験に対する「対照」プロセスであった。残りの金型を−８０℃のフリーザーから取り出し、実験台に配置し、室温（２５℃±５℃）に対して平衡させた。反復ピペッターにフィブリノーゲンを充填し、第２の反復ピペッターにトロンビンを充填した。２ｍｌのフィブリノーゲンおよび３００マイクロリットルのトロンビンを各金型内に同時に分配した。金型を１、５、１０および１５分間にわたって室温に維持した。各時点の終了時に、５分間にわたって、ドライアイス上で予備冷却されたアルミニウム板に金型を配置した。５分間の終了時に、金型を凍結乾燥器内に配置する前に少なくとも２時間にわたって−８０℃のフリーザーに戻した。次いで、それらを凍結乾燥し、それらの性能および生化学特性を記載されているように試験した。

結果：

結論：
３１％の遊離α鎖を含み、γ−γ二量体を含まない完全機能性包帯材を、対照プロセスを用いて製造した。該プロセスを変更して、フィブリノーゲンとトロンビンの混合物を室温で１分間静置させても同様の結果が認められた。反応物質を混合し、５分間保持しても、それらの性能は、いくらか低下したが、許容可能であった。これらの包帯材において、γ−γ二量体が９％の量で検出された。時間をさらに１０分間まで延ばすと、ＥＶＰＡアッセイにおける活性の許容不可能な低下および遊離α鎖の量の著しい増加ならびに高量のγ−γ二量体（３９％）がもたらされた。保持時間を１５分間まで延ばすと、接着性および重量保持能力の両方が低下した。

ＥＶＰＡ性能試験
装置および供給材料：
・インライン高圧変換器（Ａｓｈｃｒｏｆｔ Ｄｕｒａｌｉｆｅ（商標）または同等物）
・蠕動ポンプ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｂｉｏｔｅｃｈ（商標）、Ｍｏｄｅｌ Ｐ−１または同等物）
・電圧計（Ｃｒａｆｔｓｍａｎ（商標）Ｐｒｏｆｅｓｓｉｏｎａｌ Ｍｏｄｅｌ ８２３２４または同等物）
・圧力または電圧情報を記録するためのソフトウェアを備えたコンピュータ
・付属片を備えたＴｙｇｏｎ（商標）管（サイズ別）
・予め３７℃に設定された水槽（Ｂａｘｔｅｒ Ｄｕｒａｂａｔｈ（商標））
・予め３７℃に設定されたインキュベーションチャンバ（ＶＷＲ（商標）、Ｍｏｄｅｌ １４００Ｇまたは同等物）
・水槽およびオーブンの両方の温度を監視するための温度計
・種類別鉗子、止血剤およびハサミ
・中央に約０．６ｃｍの穴をあけ、シリンジおよびプランジャーの両方により小さい穴をあけた１０ｃｃおよび２０ｃｃシリンジ。シリンジの端部まであけられた穴は、プランジャーを引き戻し、固定するのに使用されることになる。
・Ｏ−リング（サイズ１０および１３）
・１０ｃｃおよび２０ｃｃのシリンジに装着するプラスチック遮蔽材（長さが約３．５ｃｍ）
・先端付Ｐ−１０００ Ｐｉｐｅｔｍａｎ（商標）
・新生児サイズのカフおよびブラダーを有する血圧計
・所望の圧力プロファイルを維持するようにポンプを制御するプログラム式論理制御装置（ＰＬＣ）（オプション。所望により手動制御を用いることもできる）

１．材料および化学物質
・ブタ下行大動脈（Ｐｅｌ−Ｆｒｅｅｚ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ（商標）、カタログ＃５９４０２−２または同等物）
・シアノアクリレート接着剤（Ｖｅｔｂｏｎｄ（商標）、３Ｍまたは同等物）
・１８ゲージ針（複数可）
・３７℃に維持された０．９％生理食塩水
・赤色食品着色料
・血管穿孔機（複数可）、２．８ｍｍ他
・プラスチックラップ

２．動脈洗浄および保管
１．使用するまで動脈を−２０℃で保管する。
２．Ｈ₂Ｏ槽にて３７℃で動脈を解凍する。
３．動脈の外面の脂肪および結合組織を洗浄する。
４．動脈を切断して、５ｃｍ以下の断片にする。
５．動脈を−２０℃に再凍結し、使用するまで保管することができる。

３．アッセイのための動脈処理
１．動脈を、滑らかな内壁が外側を向くように裏返しにする。
２．サイズ１３のＯ−リングを伸ばして２０ｃｃシリンジに被せ、またはサイズ１０のＯ−リングを伸ばして１０ｃｃシリンジに被せて、一方の側に約０．６ｃｍ（０．２５インチ）の穴をあける。
３．動脈を引き裂かないように、または嵌りが緩くなりすぎないように注意して、動脈をシリンジ上に引っ張る。動脈がシリンジにぴったりと嵌っているものとする。同じ大きさの別のＯ−リングをシリンジの底面の上に滑らせる。
４．両Ｏ−リングを慎重に引っ張って動脈の末端に被せる。Ｏ−リング間の距離は、少なくとも３．５ｃｍとする。
５．動脈の表面を粗面化するために、いくつかの外科用ハサミを使用して、動脈の表面を静かに擦る。
６．１８ゲージの針を使用して、シリンジの円筒の穴の部位を覆う動脈に穴をあける（上記注を参照）。
７．生検穿孔機の先端を動脈の穴に挿入する。穿孔機のプランジャーを押し下げて、動脈に開口を設ける。２回繰り返して、穴があいており、結合組織がないことを確認する。
８．付随的な動脈によって穴を繕う。一般には、これは、ラテックス手袋から当て布を切断し、それをシアノアクリレート接着剤で穴上に接着する。接着剤を少なくとも１０分間硬化させる。
９．加温、加湿された容器に動脈を入れ、それをインキュベーションチャンバに入れる。動脈を少なくとも３０分間にわたって加温させる。

４．溶液および装置の準備
１．水槽およびインキュベーションチャンバが２９〜３３℃に維持されていることを確認する。
２．当日のアッセイを完了するのに十分な０．９％生理食塩水がポンプの液溜に存在していることを確認する。必要に応じてそれ以上を追加する。
３．アッセイを実施する前に溶液が加温されるように、０．９％生理食塩水および０．９％生理食塩水を数滴の赤色食品着色料とともに水槽内の容器内に加える。
４．ＫｉｍＷｉｐｅｓ（商標）で裏打ちし、少量の水を添加して、動脈を濡れた状態に維持することによって、インキュベーションチャンバ内の動脈を加温するための容器を処理する。
５．管を気泡について検査する。気泡が存在する場合は、ポンプをオンにし、すべての気泡が除去されるまで０．９％食塩水を流す。

５．包帯材の貼付
１．止血包帯材パウチを開き、止血包帯材を取り出す。
２．メッシュ裏当て側を上にして、止血包帯材を動脈の穴に被せるように配置する。
３．試験対象物に応じた量の生理食塩水で止血包帯材を徐々に濡らす。
注：標準（フィブリノーゲン１３〜１５ｍｇ／ｃｍ²）の２．４×２．４ｃｍ止血包帯材を８００μｌの生理食塩水または他の血液代用物で濡らす必要がある。使用する生理食塩水の量を、実施される具体的な実験の要件に応じて調整することができる。しかし、あらゆる変化をデータ収集用紙に記録すべきである。
注：生理食塩水が縁から流出しないように注意して、２９〜３３℃に加温された０．９％生理食塩水または他の血液代用物を一滴ずつ添加して止血包帯材を濡らす。正の対照との濡れ特性の差をすべてデータ収集用紙に記録すべきである。
４．遮蔽材を、Ｏ−リング間で平らになるように注意して、止血包帯材上に静かに配置する。軽く押して、所定位置に固定する。
５．動脈および止血包帯材にプラスチックラップを巻きつける。
６．ブラダーが止血包帯材に隣接するように注意して、血圧カフを巻きつける。
７．ブラダーを１００〜１２０ｍｍＨｇまで加圧し、圧力を監視し、１００ｍｍHgを下回った場合には再び加圧する。圧力を５分間維持する。
注：時間および圧力を実験の要件に応じて変更することができる。標準的な状態からの変化をデータ収集用紙に記録すべきである。
８．重合後、動脈を慎重に解き、止血包帯材の状態を記録する。正の対照とのあらゆる違いをデータ収集用紙に記録すべきである。

排除基準：メッシュ裏当ては、動脈の穴の上に維持されていなければならない。重合中にずれ、完全に穴を覆わなくなった場合は、その止血包帯材を排除しなければならない。

試験手順
１．試験装置構成の図
試験装置の構成を図２に示す。システム内の圧力の読取り（圧力ゲージ）または制御を行うためのいくつかの追加的な不図示の片を利用してもよい。
２．装置および動脈のアセンブリー
シリンジおよび動脈内の気泡の量を最小限にするように注意して、３７℃に加温された赤色の０．９％生理食塩水を動脈およびシリンジに充填する。開口を最上にして動脈に充填することで、これを容易にすることができる。管内の気泡ができるだけ少なくなるようにして、動脈およびシリンジを試験装置に装着する。約３ｍｌ／分の量を送達するように、蠕動ポンプを較正すべきである。有効であれば、ＰＬＣを所定の範囲の圧力および試験対象物に応じた保持時間に従って動作させるべきである。手動制御下である場合は、システムの１つまたは複数の圧力読取り片によって読み取られたシステム圧力を参照しながら、ポンプを手動でオン・オフすることによって、遵守すべき圧力／時間プロファイルを達成する。試験の結論に従って、止血包帯材を動脈に対する接着性および動脈穴におけるプラグの形成に関して主観的に評価する。正の対照とのあらゆる違いをデータ収集用紙に記録すべきである。

合格基準
３分間にわたって圧力に耐えることが可能な止血包帯材は、アッセイに合格したものと見なされる。止血包帯材がアッセイに成功裡に合格した場合は、試験が終了してから動脈に生じる圧力の自然低下がグラフ上に含まれないように、データ収集をすぐに停止すべきである。オペレータがデータ収集の停止に失敗した場合は、これらの点をデータファイルから削除して、試験後に生じる自然の圧力低下を実際の包帯材の欠陥と混同するのを回避することができる。止血包帯材の貼付から完了までの全試験時間は、予め設定した基準内になければならない。達した最高圧力はデータ収集用紙に記録すべきである。
注：典型的な課題は、１工程において３分間にわたって２５０ｍｍＨｇとすることであるが、それを試験対象物に基づいて変更することができる。標準的な手順の変更点をデータ収集用紙に記録すべきである。

不合格基準
試験中のいずれかの時点で生理食塩水の漏れを生じさせた止血包帯材は、アッセイに不合格であったと見なされる。
注：（全試験時間が、設定された上限を超えない限り）動脈膨張によって引き起こされる構造欠陥を無視し、試験を継続または再開することができる。

漏れが生じたときは、その欠陥がグラフ上で容易に観察されるように、データ収集を停止する前に圧力を２０ｍｍＨｇ以下に低下させるべきである。漏れが生じた際の圧力をデータ収集用紙に記録すべきである。装置の故障により実験の途中でデータ収集が停止した場合は、試験の終了または止血包帯材の機能停止のいずれか早い方の時点まで５分間隔でデータを手で収集することができる。それらのデータ点をデータ収集用紙の裏に記録し、明確に表示し、データ表に手入力すべきである。

排除基準
全試験時間が、その手順に対して許容される最大時間を超えた場合は、原因にかかわらず、結果を排除しなければならない。パッチングまたは指圧によって固定できない不随物からの漏れが存在する場合は、結果を排除しなければならない。Ｏ−リングでの漏れにより試験が失敗した場合は、結果を排除しなければならない。メッシュ裏当てが動脈の穴を完全に覆わない場合は、結果を排除しなければならない。

接着性性能試験
１．装置および供給材料
止血剤、ブタ動脈および止血包帯材（通常はＥＶＰＡアッセイの完了後に実施するが、接着性アッセイを行うために実施する必要はない）。

Ｉ．動脈＋包帯材の処理
ＥＶＰＡアッセイを完了せずに包帯材を貼付した後は、包帯材は、接着性アッセイおよび重量限界試験（有効な場合）が可能な状態にある。包帯材を塗布し、続いてＥＶＰＡ分析を行った後に、溶液がどこにも飛び散らないように、動脈およびシリンジシステムを徐々にポンプから分離する。ＥＶＰＡアッセイによる加温された赤色生理食塩水は、接着性アッセイおよび重量限界試験（有効な場合）が完了するまでシリンジ内に残留する。

接着性アッセイの実施
１．（ＥＶＰＡ分析を伴う、または伴わない）動脈および止血剤の処理後に、メッシュの角を引き上げ、既知の質量の止血剤をその角に塗布する。
注：ＥＶＰＡアッセイの実施中に流路の漏れが生じた場合は、止血包帯材の反対側の接着性を試験して、全体的な接着性のより正確な評価結果を得る。
２．止血剤を落下または捩れさせないように注意して、止血剤を静かに分離させる。止血剤が上部付近にくるようにシリンジを回転させ、包帯材が許す程度まで止血剤に包帯材を剥離させる。これは通常１０秒以内で行われる。止血剤が包帯材の剥離を停止した後に、以下のスケールに従って包帯の接着性を評価する。

排除基準
メッシュ裏当ては、動脈の穴の上に維持されていなければならない。重合中にずれて、穴を完全に覆わなくなった場合は、その止血包帯材を排除しなければならない。

合格基準
接着性スコアが３の包帯材は、アッセイに合格したものと見なされる。

不合格基準
包帯材が、貼付後および／またはＥＶＰＡアッセイの実施前に動脈に接着しない場合は、０のスコアが与えられ、接着性試験に不合格となる。２以下のスコアが与えられた場合は、その包帯材は、接着性アッセイに不合格であったと見なされる。

保持重量性能アッセイ
「接着性試験」の初期スコアリングの後に、メッシュ裏当てが動脈から全面的に引き離されるまで、重量を止血剤に漸進的に付加することができる。次いで、包帯材が保持する最大重量を、包帯材が動脈への接着を保持し得る重量の測度として記録する。

水分アッセイ
ブリンクマン・メトローム・モイスチャ・アナライザ・システムを使用して、水分測定を実施した。該システムは、個々の構成要素、すなわち７７４オーブンサンプルプロセッサ、７７４ＳＣコントローラ、８３６チトランド、５ｍｌおよび５０ｍｌ８００ドシノユニットおよび８０１スターラを含む。データ収集、分析および記憶のためのブリンクマン・チアモソフトウェアを使用して、該システムをコンピュータに接続した。カールフィッシャー法を用いて凍結乾燥サンプルの水分含有量を測定するための製造元の推奨および仕様に従って、モイスチャシステムをセットアップし、実行する。

すべての構成要素をオンにし、使用する前に動作温度にした。標準として、かつ計測器を較正するために、ラクトースおよび水を流した。装置を成功裡に較正すると、サンプルを以下のように調製した。少なくとも３０ｍｇの重量の包帯材断片をバイアルに入れ、キャップした。バイアルを番号順に７７４オーブンサンプルプロセッサに配置し、１つの空の密閉バイアルを調湿空間に配置する。次いで、装置を動作させて、対照およびサンプルにおける水分含有量（残留水分）を測定した。

ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル電気泳動
各包帯材を１／４インチの約５０ｍｇの断片に切断し、次いで断片を１５ｍＬの円錐管内に配置する。製造対照（すなわち時間０）については、１．０ｍＬのオクダ溶解溶液（１０Ｍの尿素、０．１％硫酸ドデシルナトリウム、０．１％のβ−メルカプトエタノール）を添加する。残留する３つの断片について、８０μＬの０．９％生理食塩水を添加して、包帯材を濡らす。次いで、それらの断片を３７℃で２、５および１０分間または所望の時間にわたってインキュベートする。所望の時点で反応を停止するために、１．０ｍＬのオクダ溶解溶液を添加する。次いで、サンプルを室温で一晩インキュベートし、次いで７０℃で３０分間インキュベートする。

ゲル上への充填のためのサンプルを調製するために、オクダ溶解溶液に既に溶解したサンプルを、２０μＬアリコットが１０μｇを含むようにサンプル緩衝材に添加した。次いで、１μＬの０．１Ｍジチオスレイトールを各サンプルに添加した。次いで、２０μＬの各希釈サンプルを１．０ｍｍ厚、１０ウェルの８％トリス−グリシンゲル（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）上に充填する。次いで、ダイ前面がゲルの端部に達するまで１４０Ｖでゲルを流した。次いで、それらを取り除き、少なくとも１時間にわたって振盪台上のクマシーブルー染色材（５０ｖ／ｖ％メタノール、０．２５ｗ／ｖ％クマシーブリリアントブルー、ｄｄＨ２Ｏ中１０ｗ／ｖ％酢酸）中に入れた。次いで、バックグラウンドがほぼ無色になるまでゲルを振盪台上の脱染溶液（２５％メタノール、１０％酢酸、６５％ｄｄＨ２Ｏ）に移す。

脱染後、ゲルを走査し、生じた変換の量を測定するためにγ−γ二量体バンドならびにＡαおよびＢβバンドをシオン濃度測定ソフトウェアによって分析した。

Claims (47)

1. 哺乳動物における創傷組織を治療するための固体包帯材の製造方法であって、
   （ａ）フィブリノーゲン活性体によるフィブリノーゲン構成要素の活性化を阻害するのに十分に低い温度で、前記フィブリノーゲン構成要素と前記フィブリノーゲン活性体の液体水性混合物を形成すること、
   （ｂ）前記水性混合物の温度を低下させて、凍結水性混合物を形成すること、および
   （ｃ）前記凍結水性混合物の水分含有量を低下させて、前記フィブリノーゲン構成要素および前記フィブリノーゲン活性体から本質的になる止血層を有する固体包帯材を製造すること、
   を含むことを特徴とする方法。
2. 前記固体包帯材は、少なくとも１つの支持層をさらに含むことを特徴とする請求項１に記載の方法。
3. 前記支持層は、裏当て材料を含むことを特徴とする請求項２に記載の方法。
4. 前記支持層は、内部支持材料を含むことを特徴とする請求項３に記載の方法。
5. 前記支持層は、吸収性材料を含むことを特徴とする請求項３に記載の方法。
6. 前記支持層は、非吸収性材料を含むことを特徴とする請求項３に記載の方法。
7. 前記非吸収性材料は、シリコーンポリマー、紙、ガーゼ、プラスチック、金属およびラテックスからなる群から選択されることを特徴とする請求項６に記載の方法。
8. 前記固体包帯材は、前記止血層と前記裏当て層の間に少なくとも１つの生理的に許容し得る接着剤をさらに含むことを特徴とする請求項３に記載の方法。
9. 前記吸収性材料は、タンパク質材料および炭水化物物質からなる群から選択されることを特徴とする請求項５に記載の方法。
10. 前記タンパク質材料は、ケラチン、絹、フィブリン、コラーゲンおよびゼラチンからなる群から選択される少なくとも１つの物質であることを特徴とする請求項９に記載の方法。
11. 前記炭水化物基質は、アルギン酸およびその塩、キチン、キトサン、セルロース、ｎ−アセチルグルコサミン、プロテオグリカン、ヒアルロン、ヒアルロン酸、グリコール酸ポリマー、乳酸ポリマー、グリコール酸／乳酸共重合体ならびにそれらの２つ以上の混合物からなる群から選択されることを特徴とする請求項９に記載の方法。
12. 前記止血層は、フィブリン架橋材および／またはカルシウムイオン源も含むことを特徴とする請求項１に記載の方法。
13. 前記止血層は、少なくとも１つの充填剤；少なくとも１つの可溶化剤；少なくとも１つの発泡剤；および少なくとも１つの離型剤のうちの１つまたは複数も含むことを特徴とする請求項１に記載の方法。
14. 前記充填剤は、スクロース、ラクトース、マルトース、ケラチン、絹、フィブリン、コラーゲン、ゼラチン、アルブミン、ポリソルベート、キチン、キトサン、アルギン酸およびその塩、セルロース、プロテオグリカン、ヒアルロン、ヒアルロン酸、グリコール酸ポリマー、乳酸ポリマー、グリコール酸／乳酸共重合体ならびにそれらの２つ以上の混合物からなる群から選択されることを特徴とする請求項１３に記載の方法。
15. 前記可溶化剤は、スクロース、ラクトース、マルトース、デキストロース、マンノース、トレハロース、マンニトール、ソルビトール、アルブミン、ヒアルロン、ヒアルロン酸、ソルベート、ポリソルベートおよびそれらの２つ以上の混合物からなる群から選択されることを特徴とする請求項１３に記載の方法。
16. 前記離型剤は、ゼラチン、ヒアルロン、ヒアルロン酸、マンニトール、ソルビトール、ポリソルベート、ソルビタン、ラクトース、マルトース、トレハロース、ソルベート、グルコースおよびそれらの２つ以上の混合物からなる群から選択されることを特徴とする請求項１３に記載の方法。
17. 前記発泡剤は、重炭酸ナトリウム／クエン酸、重炭酸ナトリウム／酢酸、炭酸カルシウム／クエン酸および炭酸カルシウム／酢酸の混合物、ならびに炭水化物混入加圧不活性ガスからなる群から選択されることを特徴とする請求項１３に記載の方法。
18. 前記止血層は、抗生物質、抗凝血材、ステロイド、心臓血管薬、成長因子、抗体（ポリおよびモノ）、化学吸引物質、麻酔薬、抗増殖／抗腫瘍薬、抗ウイルス薬、サイトカイン、コロニー刺激因子、抗真菌薬、駆虫薬、抗炎症薬、防腐材、ホルモン、ビタミン、糖タンパク質、フィブロネクチン、ペプチド、タンパク質、炭水化物、プロテオグリカン、抗血管形成材、抗原、ヌクレオチド、脂質、リポソーム、線維素分解阻害薬および遺伝子治療薬からなる群から選択される少なくとも１つの治療補給物も含むことを特徴とする請求項１に記載の方法。
19. 前記治療補給物は、フィブリンへのその溶解限度以上の量で存在することを特徴とする請求項１８に記載の方法。
20. 前記止血層は、前記支持層に対する前記止血層の接着性を向上させるのに有効な量の少なくとも１つの結着剤をさらに含むことを特徴とする請求項２に記載の方法。
21. 前記結着剤は、スクロース、マンニトール、ソルビトール、ゼラチン、ヒアルロン、ヒアルロン酸、マルトース、ポビドン、キトサンおよびカルボキシメチルセルロースからなる群から選択されることを特徴とする請求項２０に記載の方法。
22. 前記止血層は、全体を通じて実質的に均質であることを特徴とする請求項１に記載の方法。
23. 前記止血層は、単層であることを特徴とする請求項１に記載の方法。
24. 前記凍結水性混合物は、（ｃ）において凍結乾燥されることを特徴とする請求項１に記載の方法。
25. 前記水分含有量は、少なくとも６％であることを特徴とする請求項１に記載の方法。
26. 前記水分含有量は、６％未満であることを特徴とする請求項１に記載の方法。
27. 前記フィブリノーゲン構成要素は、哺乳動物フィブリノーゲンであることを特徴とする請求項１に記載の方法。
28. 前記哺乳動物フィブリノーゲンは、ウシフィブリノーゲン、ブタフィブリノーゲン、ヒツジフィブリノーゲン、ウマフィブリノーゲン、ヤギフィブリノーゲン、ネコフィブリノーゲン、イヌフィブリノーゲン、マウスフィブリノーゲンおよびヒトフィブリノーゲンからなる群から選択されることを特徴とする請求項２７に記載の方法。
29. 前記フィブリノーゲン構成要素は、ヒトフィブリノーゲン、ヒトフィブリンＩ、ヒトフィブリンＩＩ、ヒトフィブリノーゲンα鎖、ヒトフィブリノーゲンβ鎖、ヒトフィブリノーゲンγ鎖およびそれらの２つ以上の混合物からなる群から選択されることを特徴とする請求項１に記載の方法。
30. 前記フィブリノーゲンは、組換え製造フィブリノーゲンおよび形質転換フィブリノーゲンからなる群から選択されることを特徴とする請求項２８または２９に記載の方法。
31. 前記フィブリノーゲン活性体は、トロンビン、プロトロンビン、蛇毒およびそれらの２つ以上の混合物からなる群から選択されることを特徴とする請求項１に記載の方法。
32. 前記トロンビンは、哺乳動物トロンビンであることを特徴とする請求項３１に記載の方法。
33. 前記哺乳動物トロンビンは、ウシトロンビン、ブタトロンビン、ヒツジトロンビン、ウマトロンビン、ヤギトロンビン、ネコトロンビン、イヌトロンビン、マウストロンビンおよびヒトトロンビンからなる群から選択されることを特徴とする請求項３２に記載の方法。
34. 前記トロンビンは、組換え製造トロンビンおよび形質転換トロンビンからなる群から選択されることを特徴とする請求項３２に記載の固体包帯材。
35. 哺乳動物における創傷組織を治療する方法であって、請求項１に記載の方法によって調製された固体包帯材を前記創傷組織に配置し、血液および／または他の液体の前記創傷組織からの損失を抑えるのに十分なフィブリンが形成されるように十分な時間にわたって十分な圧力を前記包帯材に加えることを含むことを特徴とする方法。
36. 哺乳動物における創傷組織を治療するための固体包帯材であって、請求項１に記載の方法によって調製されることを特徴とする固体包帯材。
37. 請求項１に記載の（ａ）および（ｂ）によって調製されることを特徴とする凍結水性混合物。
38. 請求項１に記載の（ａ）によって調製されることを特徴とする液体水性混合物。
39. 哺乳動物における創傷組織を治療するための固体包帯材であって、請求項１に記載の方法によって調製され、５７％未満の遊離フィブリノーゲンα−鎖をさらに含むことを特徴とする固体包帯材。
40. 哺乳動物における創傷組織を治療するための固体包帯材であって、請求項１に記載の方法によって調製され、遊離フィブリノーゲンα−鎖を実質的にさらに含まないことを特徴とする固体包帯材。
41. 哺乳動物における創傷組織を治療するための固体包帯材であって、請求項１に記載の方法によって調製され、フィブリンＩａを実質的にさらに含まないことを特徴とする固体包帯材。
42. 哺乳動物における創傷組織を治療するための固体包帯材であって、請求項１に記載の方法によって調製され、フィブリノーゲン鎖γ二量体を実質的にさらに含まないことを特徴とする固体包帯材。
43. 哺乳動物における創傷組織を治療するための固体包帯材であって、請求項１に記載の方法によって調製され、９％未満のフィブリノーゲン鎖γ二量体をさらに含むことを特徴とする固体包帯材。
44. 前記支持層は、前面支持材料を含むことを特徴とする請求項２に記載の方法。
45. 前記温度を−１０℃と−１９６℃の間の温度まで低下させることを特徴とする請求項１に記載の方法。
46. 水平または垂直方向にある間に、前記液体水性混合物を凍結させながら、前記温度を低下させることを特徴とする請求項１に記載の方法。
47. 哺乳動物における創傷組織を治療するための固体包帯材であって、請求項１に記載の方法によって調製され、９％を超えないフィブリノーゲン鎖γ二量体および５７％を超えない遊離フィブリノーゲンα鎖をさらに含むことを特徴とする固体包帯材。

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