JP2009500382A - 熱可逆性免疫アジュバントエマルション - Google Patents

熱可逆性免疫アジュバントエマルション Download PDF

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Abstract

本発明は、油滴の容量による母集団の90%のサイズが200nm以下である、少なくとも、スクアレン、水性溶媒、ポリオキシエチレンアルキルエーテルである非イオン界面活性剤、および熱可逆性疎水性非イオン界面活性剤を含む水中油型アジュバントエマルションに関する。本発明はまた、少なくとも1つのワクチン抗原を水中油型エマルションと混合する、免疫原性組成物の製造方法に関する。本発明は、温度変化による転相法によって水中油型エマルションが得られることを特徴とする。

Description

本発明は、ワクチンの分野に関する;より詳しくは、本発明は、アジュバントエマルションを含むワクチンの分野に関する。
従来技術として、1種類またはそれ以上のアジュバントを含有するワクチンが多数存在する。特許文献1には、特に、油滴のサイズが100〜1000nmの間である水中油型エマルションを含むアジュバント製剤が記載されている。このエマルションは、油滴のサイズを縮小させるのに十分に大きい剪断力を得るために高い機械的エネルギーを使用する製造の過程で高圧ホモジナイザー(マイクロフルイダイザー)を用いて得られる。この教示によると、得られる油滴のサイズ範囲の最小値は100nmであり、平均値はそれよりも非常に高く、最高で約170nmであり、より一般的には約500nmである。
米国特許第6,299,884号
低エネルギー法であると同時に再現性があり、かつ完全に信頼性のある、より簡単な(いずれもの特定の剪断技術を必要としない)方法を用いて得ることができる、上記特許にて提案された製剤の代わりになる有用な製剤が望まれている;加えて、該アジュバント製剤は、特に、得られる免疫応答の増大または存在する抗原の量の減少を可能にすることと同時にその完全に安全な投与に有害であろう毒性の徴候を示さないことによって、ワクチンを有効に補助できなければならない。
この目的を達成するために、本発明の主題は、少なくとも、
スクアレン、
水性溶媒、
ポリオキシエチレンアルキルエーテルである親水性非イオン界面活性剤、
疎水性非イオン界面活性剤
を含むことを特徴とする水中油型アジュバントエマルションであって、
それが熱可逆性であること、および油滴の容量による母集団の90%が200nm以下のサイズであることを特徴とする、水中油型アジュバントエマルションにある。
本発明によると、かかるエマルションは温度変化による転相法によって得られ、工業的見地から非常に大きな利益をもたらす。かかる方法は、製薬工業に必要な安全性および収益性の保証の全てを提供する。加えて、この方法によって、単分散エマルションを得ることができ、その小滴サイズは非常小さく、このようにして得られたエマルションは特に安定となり、滅菌フィルターによって容易に濾過することができ、そのカットオフ閾値は200nmである。
特定の特徴によると、油滴の容量による母集団の90%(またはd90)は、160nm以下のサイズであり、150nm以下でもよい。
本発明の特定の実施態様によると、本発明のエマルションはまた、アルジトールを含む;これにより、アルジトールを含有しない同組成物に必要な温度よりも低い温度で転相を得ることが可能になり、生産コストおよびエマルションの成分の熱変性のリスクをも低減させることが可能になる。
特定の有利な実施態様によると、本発明の疎水性非イオン界面活性剤は、ソルビタンエステルまたはマンニッドエステルである。かかる界面活性剤は、注射液剤中にて全く安全に使用することができるという利点を有する。
本発明の特定の実施態様によると、該エマルションはまた、アルキルポリグリコシドおよび凍結保護剤(例えば、糖、特に、ドデシルマルトシドおよび/またはシュークロース)を含む。
かくして、凍結乾燥および復元後にその特性(特に、粒度特性)を回復する凍結乾燥可能なエマルションを得ることができる。すなわち、凍結乾燥し、次いで、復元したエマルションはなおも単分散であり、容量による母集団の90%が200nm以下のサイズである油滴からなる。このことは、しばしば、安定性(ある種の抗原またはある種のアジュバントのいずれかの安定性)のために凍結乾燥形態で保存されなければならないワクチンの分野にとって特に重要である。
本発明の主題はまた、水中油型エマルションが温度変化による転相法によって得られることを特徴とする、少なくとも1種類のワクチン抗原を水中油型エマルションと混合することによる免疫原性組成物の製造方法である。
一の実施態様によると、本発明の方法は、少なくとも1つの、油中水型逆エマルションを冷却することによって水中油型エマルションを調製する工程を含み、ここで、該油中水型逆エマルションが、少なくとも、
スクアレン、
水性溶媒、
ポリオキシエチレンアルキルエーテルである親水性非イオン界面活性剤、
疎水性非イオン界面活性剤
を含む。
工業的見地から非常に有利なかかる方法によって、非常に低用量の抗原であっても非常に有効である安定な免疫原性組成物が得られる。
加えて、使用される製造方法によって、エマルションの油滴は全て、非常に小さいサイズのものにキャリブレートされる;実際、粒度特性(サイズおよび粒度分布)を測定した場合、エマルションは、非常狭くて低い値(一般に、80〜90nm)を中心とするガウス分布曲線を有する単分散エマルションであることが判明する。
本発明の方法の特定の実施態様によると、油中水型逆エマルションは、スクアレン、水性溶媒、ポリオキシエチレンアルキルエーテルである親水性非イオン界面活性剤、および疎水性非イオン界面活性剤を混合して、まず、粗水中油型エマルションを得、次いで、このエマルションを少なくとも転相温度まで加熱して逆エマルションを得ることによって得られる。このようにして該方法を実施すると、エマルションの様々な成分が高温にさらされる時間を制限するという利点が得られる。
別の実施態様によると、本発明の方法は、以下の工程:
一方で、水性溶媒およびポリオキシエチレンアルキルエーテルを含む水性相を、他方で、スクアレンおよび疎水性界面活性剤を含む油性相を、別々に、少なくとも転相温度と等しい温度まで加熱すること、次いで、
この2つの相を混合して油中水型逆エマルションを得ること
を含む。
本発明の特定の実施態様によると、水性相および油性相の各々を、混合する前に別々に、転相温度よりも低い温度まで加熱する。次いで、この2つの相を混合して油中水型エマルションを得る;次いで、全体を少なくとも転相温度と等しい温度まで加熱して油中水型逆エマルションを得る。
特定の実施態様によると、本発明の製造方法はまた、凍結乾燥工程を含む。かくして、本発明の方法は、安定性のために凍結乾燥形態で保存しなければならない抗原を含有する免疫原性組成物の製造に使用することができる。
本発明の多くの利点は、以下の記載で明らかになるであろう。
本発明の記載の目的のために、本明細書に記載するパラメーターd50およびd90は、容量に関する値である;d50値は、小滴の容量による母集団の50%の値を意味する。
本発明の目的のために、「水中油型エマルション」なる用語は、緩衝化されてもよい水または生理食塩水のいずれかからなり得る水性相中における油性相の分散を意味するものである。本発明の特定の実施態様によると、エマルションの水性相は、ダルベッコのリン酸緩衝溶液(D−PBS、カルシウムまたはマグネシウムを含まない)のような緩衝液からなる。
「アジュバントエマルション」なる用語は、免疫アジュバントエマルション、すなわち、抗原の投与の間に誘導される免疫系の応答を、該エマルションの不在下で得られる応答と比べて修飾することができるエマルションを意味するものである;この免疫系応答には、抗体産生、またはある種の細胞(特に、抗原提示細胞(例えば、樹状細胞)、Tリンパ球およびBリンパ球)の活性化が反映され得る。この細胞活性化は、細胞の表面での活性化マーカーの存在またはサイトカインの放出によって立証することができる。該アジュバントエマルションによって誘導される免疫応答の修飾は、本質的に定量的であり得る(すなわち、誘導応答の増大が得られる)か、または、本質的に定性的であり得る(すなわち、本質的に異なるかまたは異なる配向を有する応答が得られるか、またはさらなる応答が得られる)。「アジュバントエマルション」なる用語はまたは、同一の誘導応答のために投与される抗原の量を減少させることを可能にするエマルションを意味するものである。
本発明の目的のために、「免疫原性組成物」なる用語は、免疫系応答を誘導するために、ヒトまたは動物に投与することができる、少なくとも1種類の抗原を含む組成物を意味するものである。この応答は、体液性応答(抗体産生)または細胞応答(免疫細胞の増殖および/または活性化)であり得る。免疫原性組成物は、予防目的もしくは治療目的またはその両方のための組成物であり得る。本発明に従って得られる免疫原性組成物は、ワクチンのために通常使用されるかまたは推奨される経路のいずれか(非経口または経粘膜)によって投与することができ、種々の形態、特に、液体または凍結乾燥形態であり得る。筋肉注射、皮下注射もしくは皮内注射のための注射器もしくは無針注射器、または鼻腔用スプレーによって投与され得る。
本発明の目的のために、「抗原」なる用語は、その性質に関係なく、含まれるのが微生物全体であってもサブユニット抗原であっても、ワクチンにおいて使用され得るいずれもの抗原を意味するものである;抗原は、実際、ペプチド、タンパク質、糖タンパク質、多糖、糖脂質、リポペプチドなどであり得る。
本発明のアジュバントエマルションは、特にウイルス抗原に適している;実際、ヒトサイトメガロウイルス、ヒト免疫不全ウイルスおよびインフルエンザウイルスの抗原の場合に特に良好な結果が得られた。
インフルエンザウイルス抗原に関して、単一のウイルス株、または種々のウイルス株の混合物に由来する抗原を使用することができる。卵または細胞にて慣用的に培養されたウイルス由来の抗原を使用することができる。本発明によると、単一の株であっても株の混合物であっても、満足のいく免疫系応答を得ることができると同時にワクチン中に存在する抗原の量を非常に実質的に減少させることができることが判明した。このことは、非常に短期間で非常に大量のワクチンを生産することができなければならないインフルエンザ大流行に対するワクチンの調製の場合に特に大きな価値のあるものであり得る。
本発明によると、水中油型エマルションは、当初はサメの肝臓由来であった油であるスクアレンを含む;それは、実験化学式がC3050である6つの二重結合を含む油である;この油は、代謝可能であり、注射用医薬品に使用することができる質を有する。オリーブオイルから抽出される植物起源のスクアレンも存在する。特に、Fluka社によって提供される動物起源のスクアレンを使用すると良好な結果が得られた。濃縮エマルションの調製に使用されるスクアレンの量は、有利には、5〜45%である;この濃縮エマルションは、その後、免疫原性組成物の調製の間に希釈されて、スクアレンの量が0.5〜5%の免疫薬を調製することができる。この希釈は、本発明のアジュバントエマルションと抗原を含む懸濁液とを単純に混合することによって行うことができる。
本発明によると、当該エマルションは、親水性/親油性バランスまたはHLBの値が10またはそれ以上であり、ポリオキシエチレン化脂肪アルコールエーテルまたはn−アルキルポリオキシエチレングリコールエーテルとしても知られているポリオキシエチレンアルキルエーテル(PAE)の化学基に属する親水性非イオン界面活性剤を含む。これらの非イオン界面活性剤は、脂肪アルコールとエチレンオキシドとの化学的縮合によって得られる。それらは、CH3(CH2)x−(O−CH2−CH2)n−OH(nは、エチレンオキシド単位の数を示し、通常、10〜60であり、x+1は使用する脂肪アルコールに依存する炭素数である)のタイプの一般的な化学式を有する。一般に、これらの生成物は、類似の長さの炭化水素をベースとする鎖をもつポリマーの混合物である。
本発明のエマルションは、通常、単一の親水性PAEを含む。全体的なHLB値が≧10である限りいくつかのPAEの混合物もまた適している。
本発明の主題に適しているポリオキシエチレン化脂肪アルコールエーテルは、周囲温度で液体形態であっても固体形態であってもよい。固体化合物のうち、水性相に直接溶解するものまたは実質的な加熱を必要としないものが好ましい。
エチレンオキシド単位の数が十分である限り、ラウリル、ミリスチル、セチル、オレイルおよび/またはステアリルアルコールのポリオキシエチレン化エーテルは、本発明の主題に特に適している。それらは、特に、ICI America's Inc.社によって販売されている製品についてBrij(登録商標)、Cognis社によって販売されている製品についてEumulgin(登録商標)、またはSEPPIC社によって販売されている製品についてSimulsol(登録商標)の商品名の下に知られている製品の範囲で見つけることができる。
本発明の特に好ましいエマルションは、親水性非イオン界面活性剤として、ceteareth−12(Eumulgin(登録商標)B1の名称の下に販売)、ceteareth−20(Eumulgin(登録商標)B2)、steareth−21(Eumulgin(登録商標)S21)、ceteth−20(Simulsol(登録商標)58またはBrij(登録商標)58)、ceteth−10(Brij(登録商標)56)、steareth−10(Brij(登録商標)76)、steareth−20(Brij(登録商標)78)、oleth−10(Brij(登録商標)96またはBrij(登録商標)97)およびoleth−20(Brij(登録商標)98またはBrij(登録商標)99)からなる群から選択されるポリオキシエチレンアルキルエーテルを含有する。各化学名に付けられた番号は、化学式中のエチレンオキシド単位の数に対応する。
Brij(登録商標)56なる製品を用いて良好な結果が得られた。半合成起源のために特に適しており好ましい化合物は、EumulginTMB1の名称の下にCognis社によって供給されるポリオキシエチレン(12)セトステアリルエーテルである。この化合物は、CH3(CH2)15−(O−CH2−CH2)12−OHおよびCH3(CH2)17−(O−CH2−CH2)12−OHの混合物である。
本発明によると、アジュバントエマルションはまた、疎水性非イオン界面活性剤を含む;それは、製薬工業で使用され得る界面活性剤でなければならない;この点において適している界面活性剤のうち、ソルビタンエステルおよびマンニッドエステルを挙げることができる;ソルビタンエステルは、脂肪酸、およびソルビトールの部分エステルとその一および二無水物との混合物の反応によって得られる;これは、モノ−、ジ−もしくはトリエステルまたはそれらの混合物を含むことができる;それらは、全体的な親水性−親油性バランス(HLB)が9以下、好ましくは、6以下の疎水性界面活性剤である。それらは、特に、Span(登録商標)の名称の下にICI Americas Inc.社によって販売されている界面活性剤、またはDehymulsTMの名称の下にCognis社によって販売されている界面活性剤またはArlacelTMの名称の下にICI社によって販売されている界面活性剤の範囲で見つけることができる;特に適している界面活性剤の例としては、Dehymuls SMOTMまたはSpan(登録商標)80の名称の下に販売されているモノオレイン酸ソルビタンが挙げられる。マンニッドエステルからなる界面活性剤のうちでは、Sigma社によって販売されているか、またはMontanide 80TMの名称の下にSeppic社によって販売されているモノオレイン酸マンニッドが挙げられる。
この度、エマルションを調製することに関して従来技術において提案されている全ての界面活性剤のうちのこれらの特定の界面活性剤の選択により、転相法を用いて水中油型アジュバントエマルションを非常に有利に製造することができることが見出された。
これに関し、スクアレンおよび各界面活性剤の使用量は、有利には、状態図が、界面張力が非常に低いゼロ平均曲率相(マイクロエマルションまたはラメラ相タイプ)を含む混合物を得るように選択される。
スクアレンの使用の場合には、使用される種々の界面活性剤の全体的なHLB値が8.5〜10、特に、8.6〜9.6の間である場合に、得られるエマルションは安定かつ単分散であり、油滴のサイズは非常に小さい(d90が200nm以下)ことが判明した。エマルションの組成物中の親水性界面活性剤および疎水性界面活性剤の各濃度を決定するために、下記式を使用することができる:
HLBm=(HLBe×M)+HLBpae(1−M)
ここで、
HLBmは、混合物のHLBに相当し、好ましくは、8.5〜10、特に、8.6〜9.6であり、
HLBeは、疎水性界面活性剤のHLBに相当し、
Mは、疎水性界面活性剤およびポリオキシエチレンアルキルエーテル(PAE)からなる混合物中の疎水性界面活性剤の質量パーセントに相当し、
HLBpaeは、PAEのHLBに相当する。
5〜45%の濃度のスクアレンを使用することによって、転相温度が95℃以下のエマルションが非常に有利に得られることが判明した。
かかるエマルションについて、0.9〜9%の濃度のポリオキシエチレンアルキルエーテルおよび0.7〜7%の濃度の疎水性非イオン界面活性剤を使用することができる;エマルションの残部は水性溶媒からなる。
本発明の特定の実施態様によると、免疫原性組成物はまた、アルジトール、例えば、特に、グリセロール、エリスリトール、キシリトール、ソルビトールまたはマンニトールを含む。特に、Roquette Freres社によって販売されているマンニトールを用いると良好な結果が得られた。当該製造方法において使用するアルジトールの量は、1〜10%、特に、2〜7の範囲であり得る。
本発明の特定の実施態様によると、アジュバントエマルションはまた、得られたエマルションの凍結乾燥を可能にする凍結保護剤を含む;凍結保護剤のうち、糖が特に好ましく、特にシュークロースが好ましい。加えて、本発明のエマルションは、糖ヘッドの界面活性剤であるアルキルポリグリコシドを含むことができる;特に、デシル−D−ガラクトシドウロン酸ナトリウムであり得るか、または好ましい実施態様によるとRoche社から入手可能なドデシル−β−マルトシドであり得る。
温度を変化させることによって得られる転相による本発明のエマルションの製造方法によって、油滴のサイズが非常に均一である水中油型エマルションが非常に容易にかつ非常に再現性良く得られる:d90値(容量による)は、200nm以下、好ましくは、150nm以下であり、100nmに近くてもよく、一方、d50値は、100nm以下、または90nmであってよい。本発明の方法に従って製造されたエマルションのほとんどは、約80nmのd50値、約100nmのd90値を得ることができる(測定は、Coulter LS230を用いて行われる)。かくして、得られたエマルションが十分に希釈される条件下で該エマルションの滅菌濾過を行うことができる。
小滴のサイズが均一かつ非常に小さいかかるエマルションは、経時的に安定である。かくして、本発明に従って調製され、4℃で貯蔵されたエマルションは、2年後に、エマルションが非常に高度に安定であることを証明する90nmのd50値および116nmのd90値をもつ単分散プロフィールを保存していることが判明した。
小滴のサイズは、様々な手段によって測定することができ、特に、LS系のBeckman Coulter装置(特に、LS230)またはMastersizer系のMalvern装置(特に、Mastersizer 2000)のようなレーザー回折粒度によって測定することができる。これらの装置の測定の原理は、試料にレーザー光を照射した場合に角度(大、中および小角検出器)の関数として粒子により散乱した光の強度を分析することに基づいている。この分析は、使用される物質のサイズおよび性質に従って選択される数学的モデルによって行われる。サブミクロン粒子のサイズの測定の場合、試料の屈折率(スクアレンについては1.495)およびその媒体の屈折率(水については1.332)を考慮して特定の光学モデル(Mie理論)を適用することが必要である;非常に微細な粒子が発する弱い強度を検出する能力を有することが必要であり、分析の最適化を要する:
大角偏光強度示差散乱測定のためのさらなる検出セル(40nmから測定可能な、CoulterからのPIDSシステム)、
Malvernからの青色光および赤色光の2つの波長を合わせる検出システム。広角散乱および後方散乱検出器を伴う短波長の青色光源は、サブミクロン域における分析の性能レベルを強化する。
使用した装置に従って、測定値は、使用した装置の要素およびデータ処理ソフトウェアに応じてわずかに変化し得る。かくして、同一の本発明のエマルションを2つの装置で分析し、以下の結果を得た:
− 以下のパラメーターをもってLS230を使用した場合:IR(粒子)=1.495;IR(媒体)=1.332;吸収値=0;d50=80〜90nm、およびd90=120〜130nm;
− 以下のパラメーターをもってMastersizer 2000を使用した場合:IR(粒子)=1.495;IR(媒体)=1.332;吸収値=0;あいまいさ=4〜7%;「汎用」光学モデル;d50=90〜100nm、およびd90=140〜150nm。
本発明の方法は、以下のように行われ得る:油性相(スクアレンおよび疎水性非イオン界面活性剤)中に水性相(ポリオキシエチレンアルキルエーテルを含む、アルジトールを添加していてもよい緩衝溶液)を配合することにより;または、逆に、該水性相中に該油性相を配合することにより、濃縮粗水中油型エマルションを調製する。次いで、迅速に不安定性さを示す非キャリブレート水中油型エマルションを得る。このエマルションを撹拌し、転相が得られるまで、すなわち、油中水型エマルションが得られるまで、加熱する。転相または相転移は、伝導度測定法によりモニターすることができる。実際、温度上昇の間、転相が起こるまで伝導度は増加する;転相が起こった時、伝導度の相対的に急激な低下が観察される。伝導度に従う曲線の曲率の変化が生じるところの温度は、1つのタイプのエマルションから別のタイプのエマルションへの経過を反映する;それが転相温度である。実際には、この温度は、非常に正確なポイント値というよりむしろ温度範囲である;実際、この温度は、エマルション全体が転相現象を受けるような1または2℃の範囲内で測定される温度であると考えられる。この転相温度に達すると、したがって、油中水型エマルションの存在下になると、加熱を止め、混合物を冷却する。冷却は、単純にエマルションを自然に周囲温度に戻すことによって受動的に、またはエマルションを例えば氷浴中に浸漬することによってより能動的に行うことができる。温度が転相温度を通過すると、油中水型エマルションは再び転相して、もう一度、水中油型エマルションとなる。この時、このエマルション中の油滴のサイズは非常に均一で小さい;得られたエマルションは非常に安定である。ワクチン抗原を含む溶液による希釈を待つ間、そのまま貯蔵することができる。
このエマルションは熱可逆性であり、これは、再び転相温度以上の温度になった場合には、もう一度、油中水型エマルションとなることを意味する。伝導度に従う曲線は、受けた熱転相の回数と関係なく同一エマルションについて重ね合わせることができること、および得られたエマルションは、常に同一の粒度プロフィールを有することが判明する。
本発明によると有利には、エマルションの形成は、95℃以下の、特に、45〜80℃、さらに特に、50〜65℃の転相温度を有するように選択される。この温度範囲は、比較的高い温度(約37℃)で貯蔵する場合にエマルションの状態が変化する危険性がないので有利である。さらにまた、熱可逆性エマルションの製造方法におけると同様に、成分の加熱は激しすぎず、これは、成分の構造的完全性の保持に寄与する。エマルションの転相温度が高い場合、特に、約80℃またはそれ以上である場合には、エマルションの組成物にアルジトールを加えることによってそれを低下させることが有用であり得る。該アルジトールは、通常、ソルビトール、マンニトール、グリセロール、キシリトールまたはエリスリトールから選択される。アルジトールを1〜10%(w/w)の濃度範囲で、特に、2〜7%(w/w)の濃度範囲で使用すると、エマルションの転相温度は、約10℃低下する。水だけからなる水性相に代えて緩衝生理食塩水水性相を用いることによってエマルションの転相温度を低下させることもできる。通常、トリス緩衝液、またはPBS、もしくはCa2+およびMg2+を含まないダルベッコPBS緩衝液のようなリン酸緩衝液が使用される。
上記した方法の代替法が存在する。詳しくは、上記したように、水性および油性の2つの相を混合して粗エマルションを得、次いで、加熱し、次いで、冷却することができる。
別法として、調製した2つの相を別々に転相温度よりもわずかに高い温度に加熱した後に混合して油中水型逆エマルションを得、それを水中油型サブミクロンエマルションが得られるまで冷却することができる。
混合を行う前に各相をわずかに加熱して、水中油型エマルションを得、次いで、このエマルションを加熱して相転移させた後、冷却することもできる。
これらの操作は全て、バッチ調製用の別々の容器中で行うことができるが、オンラインプロセスを使用することもできる。
エマルションをオンラインで調製する方法は、特に、高温条件下で、温度調節した静的ミキサーにより、予め別々に調製しておいた水性および油性の2つの相を混合すること、次いで、該静的ミキサーの出口で連絡している冷却熱交換器によりオンライン冷却すること、次いで、適当な容器(フラスコまたは反応器)中での本発明のエマルションの最終回収からなり得る。成分を導入する管の軸に対して傾斜しているクロスブレードで構成される一連の混合要素からなる静的ミキサーが成功裏に使用された。混合に必要なエネルギーは、流体を輸送するポンプによってもたらされ、混合は、いずれもの可動部を用いずに、混合物の成分の分離、置換および連続的配合によって混合要素を介して行われる。
オンライン製造法は、以下のようにして行われる:水性相(ポリオキシエチレンアルキルエーテルを含む緩衝溶液)および油性相(スクアレンおよび疎水性非イオン界面活性剤)を2つのフラスコまたは反応器中にて別々に調製する。2つの相を撹拌しながら転相温度よりも僅かに高い温度まで加熱する。次いで、2つの相を2つのポンプによって温度調節した静的ミキサー中に導入する。その流速は、本発明のエマルションの組成物が得られるように調節される。2つの相が該静的ミキサーを通過する間に油中水型逆エマルションが得られる。その後、静的ミキサーの出口で連絡している冷却熱交換器をオンラインで通過させることによって逆エマルションを冷却する。次いで、冷却熱交換器を介して油中水型エマルションを転相させて、水中油型エマルションを得、それをフラスコまたは反応器中に回収する。その特性は、バッチ法により得られたエマルションのものと同一である。
次に、本発明のアジュバントエマルションは、免疫原性組成物の調製のために使用される。簡単な実施態様は、少なくとも1種類のワクチン抗原を含む溶液と上記実施態様のうちの1つにより得られたエマルションとを混合することにある。スクアレンの量が免疫原性組成物の合計質量の少なくとも5質量%を表す場合、得られた免疫原性組成物は、水中油型エマルションの形態または熱可逆性水中油型エマルションの形態である。別法として、エマルションを調製する前に抗原を水性相または油性相と混合することができる。このようにして該方法を行うことは、もちろん、該抗原が熱転相法に適合する抗原であることを含む。
抗原の溶液はまた、鉱物塩または1種類もしくはそれ以上の緩衝液、および、安定剤、保存剤または任意には他のアジュバントのような通常ワクチンに使用されるいずれもの他の化合物を含有することができる。
凍結乾燥可能なエマルションの調製のために、まず、好ましくは、水性相として緩衝溶液よりもむしろ水を選択すること以外は上記したように濃縮液体エマルションを調製し、次いで、このエマルションをアルジトール、糖およびアルキルポリグリコシドを含む溶液(例えば、マンニトール、シュークロースおよびドデシルマルトシドを含む溶液)で希釈する。
次いで、得られたエマルションを複数の試料(例えば、0.5ml)に分け、以下のようにして行うことができる凍結乾燥サイクルに付す:
− +4℃での試料の負荷、
− −45℃の設定温度で約2時間の冷凍、
− 0℃の設定温度で14〜19時間の一次乾燥、
− +25℃の設定温度で3時間30分の二次乾燥。
次いで、得られたエマルションは、免疫原性組成物の調製に使用するまで、すなわち、ワクチン抗原を含む組成物と合わせるまで、保存することができる。免疫原性組成物の調製のためのこの工程は、抗原を含む水溶液に凍結乾燥エマルションを溶解することによって実施することができる。このようにして得られた免疫原性組成物は、その後、液体状態で保存することができるか、または、抗原の性質が許すならば凍結乾燥物の形態で保存するためにさらなる凍結乾燥サイクルに付すことができる。
別法として、濃縮エマルションを、ワクチン抗原とアルジトール、糖およびアルキルポリグリコシドとの両方を含む水溶液で直接希釈することができ、その後、得られた組成物を凍結乾燥に付すことができる。該方法を行うこのような方法は、もちろん、抗原が凍結乾燥法に適合する抗原であることを意味する。
以下の実施例は本発明の様々な実施態様を例示する。
実施例1: 本発明のアジュバントエマルションの調製
EumulginTM B1(3.71g)およびマンニトールのPBS緩衝液中10%溶液33.9gをビーカー中にて混合し、該混合物を約30℃で撹拌しながらホモジナイズした。
別の容器中にて、DehymulsTM SMO 2.89gおよびスクアレン19.5gを電磁撹拌した。
各容器中にて均一相が得られると、水性相を油性相中に混和し、それを撹拌しながら30℃に維持した。
混和が完了したら、得られた粗エマルションを、撹拌を続けながら、温度が58〜60℃に達するまで加熱した。
次いで、加熱を止めたが、温度が周囲温度に達するまで撹拌は続けた。
次いで、水中油型エマルションを得た。その油滴のサイズは約80nmに集中しており(測定はLS230を使用して行った)、その質量による組成は、以下のとおりであった:
スクアレン32.5%、
ポリオキシエチレン(12)セトステアリルエーテル6.18%、
モノオレイン酸ソルビタン4.82%、
マンニトール6%。
実施例2: AIDSに対するワクチン組成物
抗原として解毒したTAT III Bタンパク質を含むワクチン組成物を調製した。該TATタンパク質は、以下の条件下でヨードアセトアミドを使用するアルカリ媒体中でのアルキル化反応によって解毒した:ヨードアセトアミドのマイクロモル数=200×TATのマイクロモル数+DTTのマイクロモル数。この解毒したタンパク質およびその製造方法はWO 99/33346に詳細に記載されており、そこでは、それはカルボキシメチル化TATなる用語の下に同定されている。この組換えTAT抗原は、50mMトリス緩衝液(pH7.5)の存在下、−70℃にて溶液中で保存される。
以下の定量的組成を有する200μlの免疫薬を得るように、濃縮溶液から投与されるべきワクチン組成物を調製した:
抗原のみを有する組成物について:pH7.5の50mMトリス緩衝液、100mMのNaCl中、TAT 20μg;
本発明の組成物について:
TAT 20μg、
スクアレン 5mg、
DehymulsTM SMO 0.75mg、
EumulginTM B1 0.94mg、
マンニトール 0.91mg。
8週齢雌性BALB/cマウス6匹ずつの2つのグループを準備し、調製した組成物の1つをマウス1匹につき1回投与量200μlの割合で皮下注射した;注射は0日目および21日目に行った。
一次応答を評価するために14日目に、そして、二次応答を評価するために34日目に、後眼窩から血液試料を採取した。標準ELISAアッセイにより特異的IgG1およびIgG2a力価を判定した。
37日目にマウスを屠殺した;それらの脾臓を取り出し、脾細胞を単離した。
体液性応答に関して得られた結果を下記表にまとめる。この表では、IgG力価を任意のELISA単位(log10)で表す。
各グループのマウスについて、表に示した値は、各マウスについて得られた値の幾何平均力価である。
Figure 2009500382
得られた結果は、本発明のエマルションは、IgG2a応答がIgG1応答よりも大きく増大するので、全体的な体液性応答の増大を可能にし、1型Tヘルパー応答を促進する傾向にあることを示している。
細胞性応答に関しては、取り出された脾細胞の組換えTATタンパク質による再刺激後のELISPOTアッセイにより、脾細胞が本発明の調製物で免疫化したマウスから採取したものである場合にγインターフェロンを産生する細胞の数の明らかな増加を立証することができた(抗原のみを含有する調製物についての細胞106個につき39スポットに対して細胞106個につき486スポット)。同様に、培養上清中のサイトカインのアッセイは、γインターフェロン(1940pg/mlに対して5028pg/ml)およびインターロイキン5(2394pg/mlに対して5365pg/ml)の両方の分泌が多いことを示した。
実施例3: ヒトサイトメガロウイルス感染に対するワクチン組成物の調製
ヌクレオチド配列およびタンパク質配列が米国特許第5,834,307号に記載されているgBと称するCytomegalovirus(CMV)Towne株のエンベロープ糖タンパク質に由来する組換えタンパク質をワクチン抗原として含むワクチン組成物を調製した。この組換えタンパク質は、修飾したgB遺伝子を含有するpPRgB27clv4と称するプラスミドをトランスフェクトした組換えCHO系によって産生される。特に、CHO系によるこの組換えタンパク質の産生を容易にするために、バリン677〜アルギニン752のアミノ酸配列に対応するgBタンパク質の膜貫通領域をコードする遺伝子の部分を欠失させること、および、天然gB中に存在する開裂部位を除去するように3つの点変異を導入することによってgB遺伝子をあらかじめ修飾した。実際、組換えCHO系によって産生される組換えタンパク質は、gBdTMと称する切断部位および膜貫通領域を欠いているトランケートしたgBタンパク質に対応する。
プラスミドpPRgB27clv4の構築およびトランケートしたgBタンパク質(gBdTM)の組換えCHO系による産生は、米国特許第6,100,064号に記載されている。トランケートしたgBタンパク質の精製は、Rasmussen L. et al.(J. Virol. (1985) 55:274-280)によって記載されているモノクローナル抗体15D8を使用してイムノアフィニティークロマトグラフカラムにて行われる。
このようにして得られ、リン酸緩衝液中にて維持されているgB抗原を0.975mg/mlで含む原組成物、実施例1の記載に従って濃縮した本発明のエマルション、およびマイクロフルイダイゼーションにより得られた従来技術のエマルションから、以下の組成を有する免疫組成物50μlを調製した:
pH6のクエン酸緩衝液中のgB 2μg(gB単独と称するグループ)、
pH6のクエン酸緩衝液中のgB 2μg;スクアレン1.075mg;MontaneTM VG 85 0.133mgおよびTweenTM80 0.125mg(「従来技術のエマルション含有」と称するグループ)、
pH7.4のPBS緩衝液中、gB 2μg;スクアレン1.25mg;DehymulsTM SMO 0.185mg;EumulginTM B1 0.235mgおよびマンニトール0.230mg(「本発明のエマルション含有」と称するグループ)。
8週齢雌性Outbred OF1マウス10匹ずつの3つのグループを準備し、上記組成物のうちの1つで0日目および21日目の2回皮下免疫化した(各グループのマウスには、どちらの回も同じ組成物を投与した)。
20日目および34日目に、後眼窩から血液試料を採取し、gB抗原に対して特異的なIgG1タイプの抗体およびIgG2aタイプの抗体の濃度を測定するのに使用した。
ELISAアッセイによってアッセイを行った;得られた結果を下記表に示し、ELISA力価のlog10で表した。示した値は、各グループのマウスについて得られた平均値である。
Figure 2009500382
これらの結果は、IgG1タイプおよびIgG2aタイプの両方の抗体のより大きな誘発を可能にした本発明のエマルションの有効性を示しており、加えて、同時に十分なレベルのTH2タイプの応答(その指標はIgG1力価である)を維持しながら、従来技術のエマルションと比較して、TH1応答(その指標はIgG2a力価である)に対する免疫応答を方向付けるものであるヒトサイトメガロウイルスに対するワクチンと関連する望ましい結果を得た。
実施例4: インフルエンザに対するワクチン組成物
インフルエンザウイルス抗原は、使用したウイルス株がA/New Caledonia H1N1株であることを除いてWO 96/05294の実施例に記載されている方法に従って得られた。
この抗原調製物、実施例1で得られた本発明の濃縮エマルション、およびAlOOH Rehydraの名称の下にREHEISにより提供されたアルミニウム懸濁液を使用して、免疫薬50μlを調製した。この免疫薬は以下に示す組成を有しており、インフルエンザ抗原の量は血球凝集素HAの重量によって表す:
PBS緩衝液中HA 1μg、または
PBS緩衝液中HA 5μg、または
HA 1μgおよび水酸化アルミニウム60μg、または
HA 1μg;スクアレン1.25mg;DehymulsTM SMO 0.185mg;EumulginTM B 0.235mg;マンニトール0.21mg;PBS緩衝液中の全体の混合物。
8週齢雌性BALB/cマウス5匹ずつの8つのグループを準備し、以下の分類に従って調製した組成物を0日目に投与した:
HA 1μgを有する組成物を皮下投与したグループ1つ、
HA 1μgを有する同組成物を皮内投与したグループ1つ、
HA 5μgを有する組成物を皮下投与したグループ1つ、
HA 5μgを有する同組成物を皮内投与したグループ1つ、
HA 1μgおよびアルミニウム60μgを有する組成物を皮下投与したグループ1つ、
HA 1μgおよびアルミニウム60μgを有する同組成物を皮内投与したグループ1つ、
HA 1μgおよび本発明のエマルションを有する組成物を皮下投与したグループ1つ、
HA 1μgおよび本発明のエマルションを有する組成物を皮内投与したグループ1つ。
14日目、28日目、41日目、56日目および105日目に各マウスから血液試料を採取した。
免疫化したマウスからの血清を、まず、三価ワクチンのインフルエンザ株A/H1N1に対して誘発された全抗体の含有量を評価するためにELISA法によりアッセイし(抗体力価は、任意のELISA単位のlog10値として表され、検出閾値は1.3log10である)、次に、インフルエンザ株A/H1N1に対する機能的抗体の含有量を測定するためにHAI(血球凝集阻害)法によりアッセイした。抗体力価は、算術的値における希釈度の逆数として表し、検出閾値は5である。
得られた結果を以下の表に示す。表に示した値は、各グループのマウスの力価の平均値を表す。
ELISA力価:
Figure 2009500382
HAI力価:
Figure 2009500382
これらの結果は、本発明の有利な点を示す;詳しくは、従来技術において幅広く使用されている周知のアジュバントである水酸化アルミニウムは、本発明の製剤と同様の迅速性および同様の強度をもってインフルエンザ抗原の免疫原性を増大させることはできなかった;本発明の組成物は皮下投与または皮内投与のどちらであっても特に有効であった。
実施例5: インフルエンザに対するワクチン組成物
関与するワクチンが、抗原として3種類のインフルエンザ株を含有し、皮内投与される、インフルエンザに対するワクチンである場合にワクチン抗原の量を減少させることについて本発明の有利な点をマウスにて評価することが目的であった。
この目的を達成するために、実施例1の濃縮エマルションをPBS緩衝液で希釈して5%スクアレンエマルションを得、それをさらに、該抗原を含む組成物で半分の濃度に希釈した。
実際、WO 96/05294に記載の方法で得られた3種類のウイルス株に由来するインフルエンザウイルスを含む組成物を得た。この場合、この3種類の株は、A/New Caledonia(H1N1)株、A/Wyoming(H3N2)株およびB/Jiangsu株であった。このような三価ワクチン組成物は、インフルエンザワクチンにとって通常ものものであり、2004年のインフルエンザシーズンの間に北半球で販売されたワクチンに相当する。各ウイルス株の抗原の量は、血球凝集素HAの量により評価される。
容量50μlの調製した免疫薬は、以下に示す組成を有した:
pH7.4のPBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 0.33μg;
pH7.4のPBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 1.31μg;
pH7.4のPBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 5.25μg;
pH7.4のPBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 10.5μg;
pH7.4のPBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 21μg;
pH7.4のPBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 0.33μg;スクアレン1.25mg;DehymulsTM SMO 0.185mg;EumulginTM B1 0.235mgおよびマンニトール0.230mg;
pH7.4のPBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 1.31μg;スクアレン1.25mg;DehymulsTM SMO 0.185mg;EumulginTM B1 0.235mgおよびマンニトール0.230mg;
pH7.4のPBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 5.25μg;スクアレン1.25mg;DehymulsTM SMO 0.185mg;EumulginTM B1 0.235mgおよびマンニトール0.230mg。
6〜8週齢雌性BALB/cマウス10匹ずつの8つのグループを準備し、1グループにつき1つの組成物の割合で、調製した組成物の1つを皮内(耳の内面)投与した。
投与の3週間後、血液を採取し、各グループについて各ウイルス株に対して誘発されたIgGをELISAによりアッセイした;各グループについて各ウイルス株に対する血球凝集素阻害アッセイも行った。
得られた結果を、グループごとに平均の形態で以下の表に示す。ELISAの結果を任意の単位のlog10で表し、HAIの結果は希釈度の逆数の幾何平均力価である。
Figure 2009500382
これらの結果は、抗原の量を減少させることについて本発明の特に有利な点を示す;詳しくは、本発明のエマルションにより、誘発された同一の免疫応答について、免疫薬中に存在する抗原の量を非常に実質的に減少させることができた。
実施例6: 非ナイーブ集団におけるインフルエンザに対する三価ワクチン組成物
個体が既にインフルエンザウイルスと接触しているために、または、個体が予めインフルエンザワクチンで免疫化されているために既に身体がインフルエンザウイルス抗原と接触した個体に投与されるインフルエンザワクチンの場合の本発明のエマルションの有効性を試験することを目的とする。
Vaccine, 2003, 21:940-5においてC.W. Potterにより公表された情報に従って、この試験を行うための動物モデルとして、三価ワクチンで筋肉内予備免疫化されたBALB/cマウスを使用することができる。
PBS緩衝液のみを含む免疫薬、または2004年のシーズンからの三価ワクチン、すなわち、A/New Caledonia(H1N1)株、A/Wyoming(H3N2)株およびB/Jiangsu株をpH7.4のPBS緩衝液中各株のHA 5μgの割合で含むワクチンの50μlを調製した。
BALB/cマウス7匹ずつの6つのグループを準備した;3つのグループは緩衝液のみを含む該免疫薬で皮内免疫化し、他の3つのグループは三価ワクチンで皮内免疫化した。
また、実施例1の濃縮エマルション、および上記の2004年のシーズンの3種類のウイルス株を含むワクチン組成物から、以下の組成を有する免疫薬30μlを調製した:
PBS緩衝液のみ、
PBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 0.3μg、
pH7.4のPBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 0.3μg;スクアレン0.75mg;DehymulsTM SMO 0.11mg;EumulginTM B1 0.143mgおよびマンニトール0.138mg。
このようにして調製した各組成物を使用して、予めPBS緩衝液のみを投与したマウスのグループおよび三価ワクチンを1回投与したマウスのグループの両方を34日目に皮内(耳の内面)免疫化した。
56日目に、各マウスから血液試料を採取し、血球凝集素阻害アッセイによって、H1N1株(A/New Caledonia)に対して産生された抗体の力価を測定した。
得られた結果を以下の表にまとめて示し、同一の免疫化プロトコールに従った各グループのマウスについて得られた平均値で表す。
Figure 2009500382
これらの結果は、投与される抗原に関して非ナイーブである個体においてさえ本願発明がいかに有利であるかを示す。実際に、インフルエンザ抗原で予備感染または予備免疫化されたマウスを免疫化するためにISCOMを使用した場合にISCOMの弱いアジュバント効果を示すことができただけというこのモデルを使用した場合のC.W. Potterによる知見とは反対に、ナイーブマウスの場合であっても既にインフルエンザワクチンで免疫化されたマウスの場合であっても、本発明のエマルションは、誘発された応答を有意に増大させることができたことを示している。
実施例7: 低用量の抗原を含む、インフルエンザに対する三価ワクチン組成物
実施例1の濃縮エマルション、および2004年のシーズンの3種類のウイルス株(A/New Caledonia(H1N1)株、A/Wyoming(H3N2)株およびB/Jiangsu株)を含むワクチン組成物から、以下の組成を有する免疫薬30μlを調製した:
PBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 0.1μg、
PBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 0.4μg、
PBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 1.6μg、
PBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 6.3μg、
pH7.4のPBS緩衝液中、HA 0.1μg;スクアレン0.75mg;DehymulsTM SMO 0.11mg;EumulginTM B1 0.143mgおよびマンニトール0.138mg、
pH7.4のPBS緩衝液中、HA 0.4μg;スクアレン0.75mg;DehymulsTM SMO 0.11mg;EumulginTM B1 0.143mgおよびマンニトール0.138mg。
8週齢雌性BALB/cマウス8匹ずつの6つのグループを準備し、0日目に上記組成物の1つ(1グループにつき1つの組成物)の30μlを皮内(耳の内面)投与した。
29日目に、各グループにおいて半分のマウスに、1回目に投与したものと同じ性質を有するものを2回目に皮内投与した。
22日目および43日目に血液試料を採取して、誘発された抗体の量を測定した。
投与した株(H1N1、H3N2およびB)の全てに関して、22日目および43日目に誘発された抗体についてELISAによって抗体力価をアッセイし、H1N1株に関してのみ22日目および43日目の両日にHAIによっても抗体力価をアッセイした。得られた結果を以下の表にまとめて示す。この表では、示された力価は、各グループのマウスについて得られた平均値である。43日目の結果に関して、平均値は、2回ワクチン投与したマウスおよび1回のみ投与したマウスについて、同一グループ内で別々に測定した。
Figure 2009500382
Figure 2009500382
これらの結果は、本発明のエマルションにより、低用量の抗原の場合でさえ、非常に実質的な体液性応答が得られたことを示している。かくして、最も優れた結果は各ウイルス株のHA 0.4μgおよび本発明のエマルションの薬で得られた結果であることがわかる;これらの結果は、非常に意外なことに、HA 6.3μgのみの薬を使用することによって得られた結果よりも非常に優れている。加えて、追加免疫薬を投与しなかった個体においてさえ免疫系は抗体を誘発し続けるが、非アジュバント処理ワクチンの抗原を投与した個体についてはそうではないことがわかる。
実施例8: インフルエンザに対する三価ワクチン組成物
実施例1の濃縮エマルション、および2004年のシーズンの3種類のウイルス株(A/New Caledonia(H1N1)株、A/Wyoming(H3N2)株およびB/Jiangsu株)を含むワクチン組成物から、以下の組成を有する免疫薬30μlを調製した:
PBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 0.1μg、
PBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 0.4μg、
PBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 1.6μg、
PBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 6.3μg、
pH7.4のPBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 0.1μg;スクアレン0.75mg;DehymulsTM SMO 0.11mg;EumulginTM B1 0.143mgおよびマンニトール0.138mg、
pH7.4のPBS緩衝液中、HA 0.4μg;スクアレン0.75mg;DehymulsTM SMO 0.11mg;EumulginTM B1 0.143mgおよびマンニトール0.138mg。
8週齢雌性C57BL/6Jマウス8匹ずつの6つのグループを準備し、0日目に、上記組成物の1つ(1グループにつき1つの組成物)の30μlを皮内(耳の内面)投与した。
23日目に血液試料を採取して、誘発された抗体の量を測定した。
投与した株の全て(H1N1、H3N2およびB)に関して誘発された抗体について抗体力価をELISAおよびHAIによりアッセイした。
得られた結果を下記表にまとめて示した。この表において示した力価は、各グループのマウスについて得られた平均値である。
Figure 2009500382
得られた結果はまた、存在する抗原の量を非常に実質的に減少させることができるという本発明のエマルションの非常に有利な点を示している。特に、本発明のエマルションでアジュバント処理したわずか0.1μgのHAの場合、HA 6.3μgの場合と同様に優れた結果が得られると考えられる。
実施例9: 本発明のエマルションまたは従来技術のエマルションを含む、インフルエンザに対する三価ワクチン組成物
実施例1の濃縮エマルション、および2004年のシーズンの3種類のウイルス株(A/New Caledonia(H1N1)株、A/Wyoming(H3N2)株およびB/Jiangsu株)を含むワクチン組成物から、以下の組成を有する免疫薬30μlを調製した:
PBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 0.3μg、
PBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 6.3μg、
pH7.4のPBS緩衝液中、HA 0.3μg;スクアレン0.21mg;DehymulsTM SMO 0.031mg;EumulginTM B1 0.040mgおよびマンニトール0.039mg(エマルション0.7%)、
pH7.4のPBS緩衝液中、HA 0.3μg;スクアレン0.75mg;DehymulsTM SMO 0.11mg;EumulginTM B1 0.143mgおよびマンニトール0.138mg(エマルション2.5%)、
HA 0.3μg;スクアレン0.645mg;TweenTM 80 0.075mg;SpanTM 85 0.075mg(マイクロフルイダイゼーションにより得られた従来技術のエマルション)。
8週齢雌性BALB/cマウス8匹ずつの5つのグループを準備し、0日目に、上記組成物の1つ(1グループにつき1つの組成物)の30μlで皮内(耳の内面)投与した。
誘発された抗体の量を評価するために、21日目に血液試料を採取し、該血液試料についてHAI(血球凝集阻害)によりA/H1N1株、A/H3N2株およびB株に対する活性を測定した。
各グループのマウスについて得られた結果を以下の表に示す。
Figure 2009500382
これらの結果は、温度変化による転相からなる非常に簡単な調製方法により本発明に従って得られたエマルションに関して、非常に高速の剪断速度を使用して得られた従来技術のエマルションと同様に優れており、かつ、それよりもわずかに良好なアジュバントが得られたことを示している。
実施例10: 様々な濃度の本発明のエマルションを含む、インフルエンザに対する三価ワクチン組成物
実施例1の濃縮エマルション、および2004年のシーズンの3種類のウイルス株(A/New Caledonia(H1N1)株、A/Wyoming(H3N2)株およびB/Jiangsu株)を含むワクチン組成物から、以下の組成を有する免疫薬30μを調製した:
PBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 0.3μg、
PBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 6.3μg、
pH7.4のPBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 0.3μg;スクアレン0.12mg;DehymulsTM SMO 0.018mg;EumulginTM B1 0.023mgおよびマンニトール0.022mg(エマルション0.4%)、
pH7.4のPBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 0.3μg;スクアレン0.299mg;DehymulsTM SMO 0.044mg;EumulginTM B1 0.057mgおよびマンニトール0.055mg(エマルション1%)、
pH7.4のPBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 0.3μg;スクアレン0.75mg;DehymulsTM SMO 0.11mg;EumulginTM B1 0.143mgおよびマンニトール0.138mg(エマルション2.5%)。
8週齢雌性BALB/cマウス8匹ずつの5つのグループを準備し、0日目に、上記組成物の1つ(1グループにつき1つの組成物)の30μlを皮内(耳の内面)投与した。
誘発された抗体の量を評価するために、21日目に血液試料を採取し、これらの血液試料について抗H1N1抗体、抗H3N2抗体および抗B抗体をELISAにより測定し、A/H1N1株、A/H3N2株およびB株に対する活性をHAI(血球凝集阻害)により測定した。
得られた結果は、各グループについての平均の形態で以下の表に示される;ELISAの結果は、任意のELISA単位のlog10で表し、HAIの結果は、希釈度の逆数の相加平均力価である。
Figure 2009500382
これらの結果により、評価した株がどれであっても、本発明のエマルションは、非常に低用量の抗原を用いて非常に実質的な免疫系応答を得ることができたことを確認する。
実施例11: 凍結乾燥可能な組成物の調製
緩衝液の代わりに水を使用する以外は実施例1におけると同様の方法を行った;その後、得られたエマルションを、マンニトール、シュークロースおよびドデシルマルトシドを含む水溶液で希釈して、最終組成が以下のとおりであるエマルションを得た:
スクアレン5%、
ポリオキシエチレンセトステアリルエーテル0.95%、
モノオレイン酸ソルビタン0.75%、
マンニトール3%、
ドデシルマルトシド2%、
シュークロース6%。
このエマルションを凍結乾燥させ、4℃で3ヶ月間保存した;次いで、復元した後、その特性、特に、その単分散エマルション品質が保存されており、d50およびd90値が凍結乾燥前に測定した値に近いことがわかった。
このエマルションを、ワクチン抗原を含む溶液で50/50に希釈してワクチン組成物を得ることができた。
実施例12: 本発明のエマルションおよび該エマルション中に存在する界面活性剤のアジュバント効果の比較
本発明のエマルションのアジュバント活性を、該エマルション中に存在する界面活性剤EumulginTM B1のものと比べて評価することを目的とした。
このために、インフルエンザ抗原を使用してマウスについて試験を行った。
この目的を達成するために、使用したウイルス株がA/New Caledonia H1N1株である以外はWO 96/05294の実施例に記載された方法に従ってインフルエンザウイルス抗原を得た。2004年のシーズンの3種類のウイルス株(A/New Caledonia(H1N1)株、A/Wyoming(H3N2)株およびB/Jiangsu株)を含むワクチン組成物もまた入手した。
本発明に従って得られた実施例1に記載の濃縮エマルション、EumulginTM B1およびインフルエンザウイルス抗原組成物から、以下の組成を有する免疫薬100μlを調製した:
pH7.4のPBS緩衝液中、H1N1株のHA 1μg;
pH7.4のPBS緩衝液中、H1N1株のHA 5μg;
pH7.4のPBS緩衝液中、H1N1株のHA 1μg;スクアレン2.5mg;DehymulsTM SMO 0.37mg;EumulginTM B1 0.48mgおよびマンニトール0.46mg;
pH7.4のPBS緩衝液中、H1N1株のHA 1μgおよびEumulginTM B1 0.48mg;
pH7.4のPBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 0.33μg;
pH7.4のPBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 1.66μg;
pH7.4のPBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 0.33μg;スクアレン2.5mg;DehymulsTM SMO 0.37mg;EumulginTM B1 0.48mgおよびマンニトール0.46mg;
pH7.4のPBS緩衝液中、各ウイルス株のHA 0.33μgおよびEumulginTM B1 0.48mg。
雌性BALB/cマウス8匹ずつの8つのグループを準備し、0日目に、1回の筋肉注射により免疫化した。21日目および35日目に血液試料を採取して、A/H1N1インフルエンザ株または三価ワクチンの各株に対して誘発された全抗体の含有量をELISAアッセイにより評価した。下記表に示した抗体力価は、任意のELISA単位のlog10値として表し、検出閾値は1.3 log10である。
Figure 2009500382
この試験で得られた結果により、先の試験で既に得られた結果、すなわち、本発明のエマルションは同一の免疫系応答について抗原の用量を大きく減少させることができることが確認される;実際、本発明のエマルションおよびわずか1μgのHAを使用すると、アジュバントなしでHA 5μgの薬を使用するよりも良好な応答が得られた。
使用した界面活性剤は、単独で使用した場合にはアジュバント効果をあまり示さないが、本発明のエマルションはそれ自身が全ての試験株に関して高いアジュバント効果を生じることも観察される。

Claims (31)

  1. 少なくとも、
    スクアレン、
    水性溶媒、
    ポリオキシエチレンアルキルエーテルである非イオン界面活性剤、
    疎水性非イオン界面活性剤
    を含むことを特徴とする水中油型アジュバントエマルションであって、
    それが熱可逆性であること、および油滴の容量による母集団の90%が200nm以下のサイズであることを特徴とする、水中油型アジュバントエマルション。
  2. 油滴の容量による母集団の90%が160nm以下のサイズであることを特徴とする、請求項1記載のエマルション。
  3. 油滴の容量による母集団の90%が150nm以下のサイズであることを特徴とする、請求項1または2記載のエマルション。
  4. 油滴の容量による母集団の50%が100nm以下のサイズであることを特徴とする、請求項1〜3いずれか1項記載のエマルション。
  5. 油滴の容量による母集団の50%が90nm以下のサイズであることを特徴とする、請求項1〜4いずれか1項記載のエマルション。
  6. さらに少なくとも1種類のアルジトールを含むことを特徴とする、請求項1〜5いずれか1項記載のエマルション。
  7. 疎水性非イオン界面活性剤がソルビタンエステルまたはマンニッドエステルを含むことを特徴とする、請求項1記載のエマルション。
  8. ポリオキシエチレンアルキルエーテルがポリオキシエチレン(12)セトステアリルエーテルであることを特徴とする、請求項1〜7いずれか1項記載のエマルション。
  9. アルジトールがグリセロール、エリスリトール、キシリトール、ソルビトールおよびマンニトールから選択されることを特徴とする、請求項1〜8いずれか1項記載のエマルション。
  10. 疎水性非イオン界面活性剤がモノオレイン酸ソルビタンであることを特徴とする、請求項1〜9いずれか1項記載のエマルション。
  11. スクアレンの量が5〜45%であることを特徴とする、請求項1〜10いずれか1項記載のエマルション。
  12. ポリオキシエチレンアルキルエーテルをベースとする界面活性剤の量が0.9〜9%であることを特徴とする、請求項1〜11いずれか1項記載のエマルション。
  13. 疎水性非イオン界面活性剤の量が0.7〜7%であることを特徴とする、請求項1〜12いずれか1項記載のエマルション。
  14. スクアレン32.5%、
    ポリオキシエチレン(12)セトステアリルエーテル6.18%、
    モノオレイン酸ソルビタン4.82%、
    マンニトール6%
    を含むことを特徴とする、請求項1〜13いずれか1項記載のアジュバントエマルション。
  15. さらにアルキルポリグリコシドを含むことを特徴とする、請求項1〜14いずれか1項記載のエマルション。
  16. さらに凍結保護剤を含むことを特徴とする、請求項1〜15いずれか1項記載のエマルション。
  17. 筋肉内投与を目的とした免疫原性組成物を製造するための、請求項1〜16いずれか1項記載のエマルションの使用。
  18. 皮内投与を目的とした免疫原性組成物を製造するための、請求項1〜16いずれか1項記載のエマルションの使用。
  19. 皮下投与を目的とした免疫原性組成物を製造するための、請求項1〜16いずれか1項記載のエマルションの使用。
  20. インフルエンザに対する投与を目的とした免疫原性組成物を製造するための、請求項1〜16いずれか1項記載のエマルションの使用。
  21. AIDSに対する投与を目的とした免疫原性組成物を製造するための、請求項1〜16いずれか1項記載のエマルションの使用。
  22. ヒトサイトメガロウイルス病理に対する投与を目的とした免疫原性組成物を製造するための、請求項1〜16いずれか1項記載のエマルションの使用。
  23. 少なくとも1つのワクチン抗原を水中油型エマルションと混合することを含む免疫原性組成物の製造方法であって、該水中油型エマルションが温度変化による転相法によって得られることを特徴とする、方法。
  24. 少なくとも、油中水型逆エマルションを冷却することによって水中油型エマルションを調製する工程を含むことを特徴とし、ここで、該油中水型逆エマルションが、少なくとも、
    スクアレン、
    水性溶媒、
    ポリオキシエチレンアルキルエーテルである親水性非イオン界面活性剤、
    疎水性非イオン界面活性剤
    を含む、請求項23記載の方法。
  25. 油中水型逆エマルションが、スクアレン、水性溶媒、ポリオキシエチレンアルキルエーテルである非イオン界面活性剤、および疎水性非イオン界面活性剤を混合して、まず、粗水中油型エマルションを得、次いで、このエマルションを少なくとも転相温度まで加熱して油中水型逆エマルションを得ることによって得られることを特徴とする、請求項24記載の方法。
  26. 一方で、水性溶媒およびポリオキシエチレンアルキルエーテルである界面活性剤を含む水性相を、他方で、スクアレンおよび疎水性界面活性剤を含む油性相を、別々に、少なくとも転相温度と等しい温度まで加熱すること、次いで、
    この2つの相を混合して油中水型逆エマルションを得る、
    請求項24記載の方法。
  27. 一方で、水性溶媒およびポリオキシエチレンアルキルエーテルである界面活性剤を含む水性相を、他方で、スクアレンおよび疎水性界面活性剤を含む油性相を、別々に、エマルションの転相温度よりも低い温度まで加熱し、
    次いで、この2つの相を混合して、水中油型エマルションを得、
    次いで、得られた水中油型エマルションを少なくとも転相温度と等しい温度まで加熱して、油中水型逆エマルションを得る、
    請求項24記載の方法。
  28. 転相温度が45〜80℃の間であることを特徴とする、請求項23〜27いずれか1項記載の方法。
  29. 転相温度が50〜65℃の間であることを特徴とする、請求項28記載の方法。
  30. さらに、少なくとも1つの凍結乾燥工程を含むことを特徴とする、請求項23〜29いずれか1項記載の方法。
  31. 請求項23〜30いずれか1項記載の方法によって得ることができることを特徴とする、免疫原性組成物。
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