JP2007312668A - 自動培養装置 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】インキュベータ36内に気密に形成された細胞の培養器2を設置し、培養器に気密に接続された送液管4を介して培地容器14と洗浄液容器10と骨髄液容器12の液を選択的に培養器に注入する送液手段34と、培養器内の液を排液管8を介して排出する排液手段42とを備え、培地を培養器に注入した後に骨髄液を注入して設定時間静置させた後、培養器内を洗浄して培養器に接着する幹細胞を選択的に分離した後、培地を培養器に注入して幹細胞を培養し、十分な細胞数に増殖させた後、分化培地15を培養器に注入して目的の組織細胞に分化させて、分化させた組織細胞を培養器から抜き出して回収容器48に回収する。
【選択図】 図1
Description
(1)腸骨等に穿刺し、ヘパリンナトリウムなどの血液凝固防止剤を含んだシリンジで骨髄液を採取する。
(2)骨髄液に含まれる赤血球など血球系細胞を排除し、MSCを分離するために、遠沈管に骨髄液を入れ、遠心分離を行って密度勾配法により目的の細胞であるMSC層の液をピペツターで吸出し、培地等で希釈した後にシャーレなどの培養器へ注入して培養(インキュベート)する。
(3)その後、所定の培養条件下において継続して培養する。ここで、所定の培養条件は、温度37℃前後、CO2濃度5%が一般的である。凡そ3日おきにピペツターなどを使用しながら培地交換して培養を継続する。
(4)細胞が増殖し、局所に細胞密度の高いコロニーが形成されるか、あるいは培養面積の60〜90%程度まで細胞が増殖したら、複数の新しいシャーレに再播種する継代を行う。この継代は、培養中のシャーレにタンパク分解酵素を入れて細胞を浮遊させ、数分後にタンパク分解酵素失活剤を注入して、複数の新しいシャーレに再播種することにより行う。このように細胞増殖に伴い継代を複数回行うことにより、シャーレの数が鼠算的に増加する。例えば、培養器の面積が約75cm2の場合、約1〜1.5×106個の細胞を回収できる。
(5)適当な日数が経過し、細胞が充分量増殖した後に、骨又は軟骨などの用途に応じて適当な成分を含有する培地に切り替え、目的の組織の細胞に分化誘導する。
(6)目的の組織の培養細胞の回収は、シャーレにタンパク分解酵素を入れて細胞を浮遊させ、数分後にタンパク分解酵素の失活剤を注入して回収する。回収した培養細胞は、被験者への移植などに利用する。例えば、最終的には1×107個以上の細胞を必要とする場合が多く、例えば約75cm2のシャーレの場合は、10枚以上必要となる。
オペレータが細胞培養の開始指令を制御装置に入力することにより、培養プロトコールに従って一連のシーケンス動作が開始する。まず、培養器2にバッグ14の第1の培地を注入し、続いて培養器2に液溜め32から骨髄液を注入し、しばらく(例えば、30分以上)静止した後、培養器2内の培地をバッグ50に排液する。これにより、培養器2に接着する間葉系幹細胞以外の細胞を排出させて間葉系幹細胞を分離することができる。この場合、必要に応じて、バッグ10の洗浄液又はバッグ14の第1の培地を培養器2に注入して、再び排出する処理を繰返し行うことにより、間葉系幹細胞の分離精度を向上することができる。
ステップS2では、培養器2に残された間葉系幹細胞を第1の培地により培養する。このステップでは、必要に応じて、培地交換及び培地内に空気を送る操作を行う。この培養は、培養器2内の細胞数が所定の十分な数になるまで行う。
継代操作は、通常、培養操作に含まれる処理である。つまり、ステップS2の培養操作において、細胞数が十分に増えていない場合であっても、培養器2内に局所的に細胞密度が高いコロニーが形成されると、その領域における増殖速度が抑制されることから、培養器2内の細胞を播き直す継代を行う。この継代は、培養中の培養器2にバッグ12のタンパク分解酵素を注入して細胞を浮遊させた後、タンパク分解酵素の失活剤が含有された第1の培地を注入することにより行う。このように、細胞増殖に伴い継代を複数回行うことにより、培養器2内の細胞密度が均等化され、増殖を促すことができる。
適当な日数が経過し、培養操作によって細胞数が十分な数に達したことを、例えば、画像取得手段52の画像により確認したときは、培養操作を停止して、培養された間葉系幹細胞を目的とする組織細胞に分化誘導する操作を行う。この分化操作は、骨又は軟骨などの用途に応じて適当な成分を含有する第2の培地に切り替えて培養し、目的の組織の細胞に誘導する。この培養は、ステップS2の培養操作と同様の操作になる。
ステップS4の操作で、目的の組織の細胞への分化が完了したら、培養器2内の細胞を回収する。この回収は、培養器2にバッグ12のタンパク分解酵素を入れて細胞を浮遊させ、数分後にタンパク分解酵素の失活剤を含有する第1の培地を注入して、バッグ48に回収する。回収した培養細胞は、被験者への移植などに利用する。
以下、上記実施形態の自動培養装置を用いて、ヒト骨髄液から間葉形幹細胞を培養した結果について、具体的かつ詳細に述べる。
(1)実験条件
図1の自動培養装置の制御装置に、図2〜図6の培養プロトコールを実行するシーケンス制御ソフトを搭載した。また、培養に用いた薬剤は表1のとおりである。
液溜め32に投入された骨髄は、日詰まりをおこすこともなく、培養器2へ到達し、第1の培地150mlと培容器2内で混和した。投入直後の骨髄液には、多量の血球成分が含まれており、光の透過率の関係で顕微鏡画像には何も写らないが、図3ステップS13,S14の静置及び洗浄を経ることで、図7に示すように、浮遊系細胞は除去された。本実施例では、7回の洗浄を行った。
骨髄液からのMSCの分離精製・増殖・分化・回収の工程を完全閉鎖系環境の中で、自動で行うことが可能となった。また、コンタミネーションを生じることはなく、またその恐れも感じることもなかった。さらに、細胞数は通常利用される75cm2の培養器の約6.5倍の面積を有する培養器を用いたため、その期待値はせいぜい約1×107個であったが、3×107個と非常に多い細胞を得ることができた。
1)評価方法
本実施例の方法で培養した細胞の分化能を確認するため、回収した細胞の総数を測定した上で、その一部を採取し、PNPP法を用いてアルカリフォスフォターゼ活性(ALP活性)を測定した。また、コントロールとして、用手法で培養した40歳女性、本発明の自動培養装置で培養した40歳男性のMSCも比較として用いた。なお、ALP活性測定用試薬は、p-Nitrophenyl phosphate tablets sets (Sigma製)を用いた。
測定の結果、本発明の方法で分化誘導処理を行った29歳男性由来のMSCと、用手法で行った40歳女性由来のMSCで高いALP活性を示しており、本実施例で分化誘導処理を行ったMSCは分化能を有していることが示された(図9)。本発明で行った40歳男性のMSCのALP活性が低いが、これは本発明の影響よりも、被験者の年齢や状態が影響しているものと考えられる。
本実施例により骨髄液からのMSCの分離精製・増殖・分化を自動で実現できることが明確になった。さらに骨髄液からのMSCは、骨への分化能を有することが示された。
1)方法
本実施例の方法で培養した骨髄細胞を用いた骨分化によるインビボ(In vivo)評価をヌードマウスヘの細胞移植により行った。具体的な方法は、回収した細胞は1×106個をTCP(Tricalcium phosphate)頼粒50mgに混ぜ、ヌードマウスの皮下に移植し、4週後に取り出し、HE染色(ヘマトキシリン・エオジン染色)を行い顕微鏡で観察した。
移植実験の結果、TCP頼粒中に混ぜられた細胞の中に、骨に分化した部分が存在しており、得られた細胞には骨分化能が存在することが判明した(図10)。
本実施例の方法により分離精製・増殖・分化させたMSCは、骨形成能を有することが示された。
4、8 チューブ
10,12,14,15 バッグ
16,18,20,21,22,24,23,44,46 ピンチ弁
26 ヒータ
32 液溜め
34,42 ポンプ
36 インキュベータ
48、50 バッグ
52 画像取得手段
54 揺動手段
Claims (4)
- インキュベータ内に設置され気密に形成された細胞の培養器と、培地が貯留された培地容器と、洗浄液が貯留された洗浄液容器と、骨髄液が貯留された骨髄液容器と、前記培養器に気密に接続された送液管を介して前記培地容器と前記洗浄液容器と前記骨髄液容器の液を選択的に前記培養器に注入する送液手段と、前記培養器内の液を排液管を介して排出する排液手段と、前記送液手段と前記排液手段を予め定められた培養プロトコールに従って制御する制御手段とを備えてなり、
前記制御手段は、前記送液手段を制御して前記培地を前記培養器に注入した後に前記骨髄液を前記培養器に注入して設定時間静置させる初期操作と、
該初期操作の後に前記排液手段と前記送液手段を制御して、前記培養器内を前記培地又は前記洗浄液によって洗浄して前記培養器に接着する幹細胞を選択的に分離する分離操作と、
該分離操作後に前記培養器に前記培地を注入して前記幹細胞を培養する培養操作を含んでなる自動培養装置。 - インキュベータ内に設置され気密に形成された細胞の培養器と、タンパク質分解酵素を失活させる成分が含まれた第1の培地が貯留された第1の培地容器と、該第1の培地とは異なる第2の培地が貯留された第2の培地容器と、タンパク質分解酵素が貯留されたタンパク質分解酵素容器と、洗浄液が貯留された洗浄液容器と、骨髄液が貯留された骨髄液容器と、前記培養器に気密に接続された送液管を介して前記第1の培地容器と前記第2の培地容器と前記タンパク質分解酵素容器と前記洗浄液容器と前記骨髄液容器の液を選択的に前記培養器に注入する送液手段と、前記培養器内の液を排液管を介して排液タンク又は細胞回収タンクに選択的に排出する排液手段と、前記送液手段と前記排液手段を予め定められた培養プロトコールに従って制御する制御手段とを備えてなり、
前記制御手段は、前記送液手段を制御して前記第1の培地を前記培養器に注入した後に前記骨髄液を前記培養器に注入して設定時間静置させる初期操作と、
該初期操作の後に前記排液手段と前記送液手段を制御して、前記培養器内を前記培地又は前記洗浄液によって洗浄して前記培養器に接着する幹細胞を選択的に分離する分離操作と、
該分離操作後に前記送液手段を制御して前記第1の培地を前記培養器に注入して前記幹細胞を培養する培養操作と、
該培養操作により前記幹細胞が十分に増殖したことを確認した後、前記送液手段を制御して前記第2の培地を前記培養器に注入して前記幹細胞を組織細胞に分化させる分化操作と、
該分化操作後に、前記送液手段を制御して前記タンパク質分解酵素を前記培養器に注入して前記幹細胞を浮遊させ、前記第1の培地を前記培養器に注入して浮遊した前記幹細胞を前記細胞回収タンクに排出する細胞回収操作を含んでなる自動培養装置。 - 請求項1又は2に記載の自動培養装置において、
前記制御手段は、前記培養操作において前記幹細胞の増殖が不十分であるとき、前記送液手段を制御して前記タンパク質分解酵素を前記培養器に注入して前記幹細胞を浮遊させて前記培養器内部を懸濁させる操作を含んでなることを特徴とする自動培養装置。 - 請求項1乃至3のいずれか1項に記載の自動培養装置において、
さらに、前記培養器を揺らす揺動手段を備え、前記制御手段は、前記分離操作時に前記揺動手段を制御して前記培養器を揺らすことを特徴とする自動培養装置。
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