JP2005523888A - 癌関連エピトープ - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、癌関連エピトープ、抗体およびこのようなエピトープに対して指向されたポリペプチド結合実体(entity)に関する。本発明はまた、このエピトープ、抗体または結合実体を含む診断剤、および種々の診断目的または治療目的のためのこれらのエピトープ、抗体または結合実体の使用に関する。これらのエピトープ、抗体または結合実体を含む薬学的組成物もまた、本発明に従って企図される。
悪性腫瘍は、しばしばこれらの腫瘍の検出および潜在的な処置のための手段を提供する特有の抗原または「マーカー」を発現する。例えば、腫瘍に特有の抗原は、精製され、処方され、そして抗体産生に使用される。これらの抗原によって惹起された抗体は、宿主における腫瘍マーカーのレベルをモニターする検出ツールとして使用され、疾患の過程または処置の有効性を追跡し得る。抗体はまた、毒素と結合され、癌を処置するために投与される。ある場合において、これらの抗原は、ワクチンとして使用され得、癌患者における抗体応答および細胞性免疫応答を刺激し、それによって癌の成長および拡大を阻止する。
本発明は、2つの別個のポリペプチドを含む単離された癌関連エピトープを提供する。第1のポリペプチドは、配列番号3のサイトケラチン8を有し得、そして第2のポリペプチドは、配列番号4のサイトケラチン18を有し得る。あるいは、第1のポリペプチドは、配列番号5のサイトケラチン8を有し得、そして第2のポリペプチドは、配列番号6のサイトケラチン18を有し得る。さらに、第1のポリペプチドは、配列番号3のサイトケラチン8を有し得、そして第2のポリペプチドは、配列番号6のサイトケラチン18を有し得る。第1のポリペプチドはまた、配列番号5のサイトケラチン8を有し得、そして第2のポリペプチドは、配列番号4のサイトケラチン18を有し得る。
本発明によると、別個のK8サイトケラチンポリペプチドが、K18サイトケラチンポリペプチドと結合して、癌性細胞においてのみ可視的であり正常細胞においては不可視である、抗原性エピトープを形成する。そのような新規エピトープ(neoepitope)は、癌腫細胞におけるK8/K18複合体の特異的タンパク質分解切断によって、作製される。癌細胞において可視的なこの新規エピトープは、癌の診断剤でありかつ癌患者の処置のために有用である、抗体または結合実体を作製するために使用される。
用語「抗体」とは、最も広い意味で使用され、詳細には、所望される生物学的活性を示す限りは、モノクローナル抗体(全長モノクローナル抗体を含む)、ポリクローナル抗体、多重特異的抗体(例えば、二重特異的抗体)、および抗体フラグメント(例えば、Fab、F(ab’)2およびFv)を網羅する。
本発明に従って、免疫学的に認識可能な1以上の新規のネオエピトープが、サイトケラチンK8タンパク質およびサイトケラチンK18タンパク質の特異的タンパク質分解性切断を介して種々の腺癌細胞で生成される。正常な、非癌性細胞は、このようなネオエピトープを提示しない。サイトケラチンK8タンパク質およびサイトケラチンK18タンパク質は、別個のタンパク質である。しかし、これらは、サイトケラチンK8/サイトケラチンK18複合体を形成する。免疫学的に認識可能なネオエピトープは、サイトケラチンK8タンパク質およびサイトケラチンK18タンパク質の両方に由来するアミノ酸を含む。
本発明のサイトケラチンエピトープは、生存可能な癌細胞および腺癌細胞の表面上に均一な点状パターンで表示される。免疫組織学研究は、本発明の癌関連エピトープが、正常なサイトカイン8および18とは対照的に、悪性結腸上皮と正常結腸上皮との間、および肝臓における結腸癌転移とまわりを取り囲む正常肝細胞との間を区別するのに使用され得ることを示す。さらに、本発明の癌関連エピトープは、生検の悪性領域内の増殖細胞の膜と結合するが、休止細胞は、エピトープ用に染色された場合、糸状のパターンを有した。
(1)Fabは、抗体分子の一価の抗原結合フラグメントを含むフラグメントである。Fabフラグメントは、抗体全体を酵素パパインで消化することによって産生され、インタクトな軽鎖、および1つの重鎖の一部を生じ得る。
本発明はまた、本明細書中で同定された抗原性エピトープ、結合実体および抗体セグメントの改変体および誘導体を提供する。例えば、配列番号3、4、5または6の抗原性エピトープの任意の誘導体または改変体は、本発明の範囲内である場合、特にこの改変体または誘導体が、腺癌を予防または処置するためのワクチンとしての特性を保持するか、もしくは改善された特異性を有するか、あるいは腺癌を検出するための改善されたマーカーである場合に、企図される。同様に、配列番号7〜35の抗体ポリペプチドの任意の誘導体または改変体は、特に、この改変体または誘導体抗体ポリペプチドが、本発明の抗原性エピトープ(例えば、配列番号3、4、5または6を有する抗原性エピトープ)に対して改善された特異性または結合親和性を有する場合、本発明により企図される。
「疎水性アミノ酸」は、生理的pHで帯電しておらず、かつ水溶液によって反発される側鎖を有するアミノ酸をいう。遺伝的にコードされた疎水性アミノ酸の例としては、Ile、LeuおよびValが挙げられる。遺伝的にコードされない疎水性アミノ酸の例としては、t−BuAが挙げられる。
RASQS V−SSS −−−−Y LA(配列番号15)
KSSQS LLYSS NNKNY LA(配列番号27)
関連した可変軽鎖CDR1フラグメントおよび結合実体は、以下の式(配列番号47)である。
Xaa11−Xaa12−Xaa13−Xaa14−Xaa15−Xaa16−Xaa17−Xaa18−Xaa19−Xaa20−Xaa21−Xaa22−Xaa23−Xaa24−Xaa25−Xaa26−Xaa27
ここで、
Xaa11は、塩基性アミノ酸であり;
Xaa12は、脂肪族アミノ酸または極性アミノ酸であり;
Xaa13、Xaa15、Xaa19およびXaa20は別々に、各々がセリンであり;
Xaa14は、グルタミンであり;
Xaa16、Xaa26およびXaa27は別々に、各々が脂肪族アミノ酸であり;
Xaa17は、脂肪族アミノ酸であるか、またはアミノ酸が存在せず;
Xaa18およびXaa25は別々に、各々が極性アミノ酸であり;
Xaa21、Xaa22およびXaa24は別々に、各々が極性アミノ酸であるか、またはアミノ酸が存在せず;
そして、Xaa23は、塩基性アミノ酸であるか、またはアミノ酸が存在しない。
いくつかの実施形態において、Xaa21、Xaa22およびXaa24は、アスパラギンであるか、またはアミノ酸が存在しない。他の実施形態において、Xaa25はチロシンである。
DASNRAT(配列番号17)、
GASSRAT(配列番号22)および
WASTRES(配列番号29)。
関連する可変軽鎖CDR2フラグメントおよび結合実体は、以下の式(配列番号48)である。
ここで、
Xaa31は、酸性アミノ酸、無極性アミノ酸または芳香族アミノ酸であり;
Xaa32は、アラニンであり;
Xaa33は、セリンであり;
Xaa34およびXaa37は別々に、各々が極性アミノ酸であり;
Xaa35は、塩基性アミノ酸であり;そして
Xaa36は、酸性アミノ酸または脂肪族アミノ酸である。
QQYGNSPPYT(配列番号24)および
QQYYSTPPM (配列番号32)。
関連する可変軽鎖CDR3フラグメントおよび結合実体は、以下の式(配列番号49)である。
Xaa41−Xaa42−Xaa43−Xaa44−Xaa45−Xaa46−Xaa47−Xaa48−Xaa49−Xaa50
ここで、
Xaa41およびXaa42は別々に、各々がグルタミンであり;
Xaa43は、チロシンであり;
Xaa44およびXaa49は別々に、各々が無極性アミノ酸、極性アミノ酸または芳香族アミノ酸であり;
Xaa45およびXaa46は別々に、各々が極性アミノ酸であり;
Xaa47およびXaa48は別々に、各々がプロリンであり;そして
Xaa50は、極性アミノ酸であるか、またはアミノ酸が存在しない。
本発明はまた、生物学的試験サンプルにおける本発明の癌関連エピトープの検出方法を提供する。当業者に公知の任意の免疫アッセイまたはインビボ画像化の手順が、生物学的試験サンプルにおける本発明の癌関連エピトープを検出するために使用され得る。例えば、本発明の癌関連エピトープは、免疫化学的、免疫組織学的、ELISA、放射免疫アッセイ、核磁気共鳴、磁気共鳴画像化、表面プラスモン共鳴および関連した手順によって検出され得る。
1088747764046_0
号に記載される)。
本発明に従って、本発明の抗原性エピトープ、このようなエピトープに対して指向される抗体または結合実体、および本発明のエピトープの形成を阻害するプロテアーゼインヒビターが、癌防止および/または治療のために使用され得る。本発明の抗原性エピトープは、癌関連エピトープを有する細胞に対して指向される、哺乳動物における免疫学的応答を刺激するために、ワクチンとして使用され得る。本発明の抗原性エピトープに対して指向される抗体または結合実体は、腺癌と戦い得るか、または防ぎ得る。さらに、本発明は腺癌を防止または処置するために、サイトケラチン8および/またはサイトケラチン18の切断を阻害するプロテアーゼインヒビターを投与することを意図する。
本発明はさらに、本抗体、結合実体、抗原性エピトープまたはトリプシン様プロテアーゼインヒビターを含む組成物に関連する。このような組成物は、本発明の抗原性エピトープの検出、ならびに本発明の抗原性エピトープの存在と関連する、癌の予防および処置を包含する治療方法に有用である。
本発明は、本発明の抗原性エピトープの検出および腺癌処置のためのキットをさらに提供する。
(COU−1モノクローナル抗体の単離)
IgM HMab、COU−1を、ハイブリドーマ細胞株B9165を用いて選択した。このハイブリドーマ細胞株B9165は、ヒトリンパ芽球腫細胞株WI−L2−729−HF2を結腸癌患者に由来する腸間膜リンパ節から得られたリンパ球と融合することにより誘導された(35)。結腸直腸癌を有する患者において腫瘍領域から流れ出る腸間膜リンパ節を、滅菌条件下で刻んだ。細片を脱脂綿を用いたろ過により除去し、そしてリンパ球をFicoll−Isopaque(Boehringer−Mannheim,Mannheim,Federal Republic of Germany)で、遠心分離により精製した。
免疫細胞化学分析を、種々のヒト腫瘍細胞株から調製した細胞塗沫標本およびヒト末梢血白血球から調製した細胞塗沫標本について実施した。細胞を、ホルモル−アセトン(86mM リン酸緩衝液(pH7.2)中の9.5%ホルムアルデヒド、43%アセトン)を用いた処理によってスライドに固定した。約50μlのCOU−1上清(ハイブリドーマB9165;ECACC 87040201由来)を固定した細胞の塗沫標本上に配置し、そして加湿チャンバ中で4℃にて一晩インキュベートし、その後、リンスし、そしてPBS−Tween中に80:1希釈した西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)標識ウサギ抗ヒトIgM(Dakopatts)とともに室温にて1時間インキュベーションした。最後に、ペルオキシダーゼの基質(PBS中0.01% H2O2および0.6μg/mlのジアミノベンジジン)を添加した。これらの塗沫標本をヘマトキシリンで軽く対比染色し、そして載せた。表3は、種々の細胞の塗沫標本上のCOU−1の分析によって得られた結果を示す。
予備的な免疫組織化学的分析を、アセトン中で固定した凍結組織切片について行った。内因性IgMを、抗μ鎖抗体(Dakopatts,Copenhagen,Denmarkから購入)のFab’フラグメントを用いたインキュベーションによってブロックし、その後、COU−1抗体(0.5μg/ml)とともにインキュベートした。抗μ鎖抗体Fab’フラグメントを、B.Nielsenら,Hybridoma 6(1),1987,103−109頁に従って調製した。癌組織についての明確な特異性はCOU−1抗体を用いて観察されたが、いくつかの非特異的結合は、特定の組織型(例えば、乳房の細管)において観察された。
(抗体)
IgM HMab、COU−1は、上記のように、ヒトリンパ芽球腫細胞株WI−L2−729−HF2と、結腸癌患者由来の腸間膜リンパ節から得られたリンパ球とを融合させることによって誘導されたハイブリドーマ細胞株B9165によって分泌される。このハイブリドーマ細胞株B9165を、European Collection of Cell Cultures(ECACC)、CAMR、Salisbury、Wiltshire、SP4 OJG、UK寄託番号ECACC 87040201で寄託した。ECACCについてのさらなる情報は、ecacc.orgにウェブサイトにおいて得られ得る。
ELISAウェル(Costar,Cambridge,MA)を、PBS(pH7.4)において、サイトケラチン精製手順からの画分を用いて、または異なる組換えK8/K18複合体(5μg/ml)を用いて、4℃で一晩コーティングした。ウェルをPBSで2回洗浄し、PBS中の3%BSAで1時間、37℃でブロックし、そしてHMab COU−1抗体とともに2時間、37℃でインキュベートした。プレートをPBS−0.05% Tween 20を用いて10×洗浄し、そして結合した抗体を、PBS中に1000倍に希釈したアルカリホスファターゼ(AP)標識ヤギ抗ヒトκ鎖(Sigma)を用いて検出した。結合した抗体を、パラ−ニトロフェニルホスフェート(Sigma)(1mg/ml 1mM MgCl2、10%(w/v)ジエタノールアミン、pH9.6)を用いて可視化し、405nmで読んだ。
ヒト乳房腺癌細胞株MCF7(ATCC)を、10%FCS、非必須アミノ酸、1mMピルビン酸ナトリウム、1mM HEPES緩衝液、100Uペニシリン/ml、100mgストレプトマイシン/ml、および2mM L−グルタミンを補充したイーグルMEM(Gibco)において維持した。ヒト結腸腺癌細胞株Colon137(Dr.Ebbesen,Aarhus University,Denmarkによって親切にも提供された)を、上記のようなFCS、ペニシリン、ストレプトマイシンおよびL−グルタミンを補充したRPMI 1640(Gibco)において維持した。
サイトケラチンを、新鮮な外科的に除去された結腸癌組織または正常結腸上皮から調製した。組織サンプル(1〜5g)を、剪断して細かく刻み、そして氷上で、27.000rpmで3×5秒間、ブレードローター(Euro Turrax T20b basic,IKA Labortechnik,Staufen,Germany)を使用して、1%(v/v)Emulphogene(Sigma)を含む10〜30mlのTris緩衝化生理食塩水(TBS)(10 mM Tris、0.14M NaCl、15mM NaN3、pH7.6)中でホモジナイズさせた。酵素インヒビター:1ml当たり、5mMヨードアセトアミド、10mM PMSF、5mM EDTA(すべて、Sigma)、5mM Cyclocapron(KABI、Stockholm、Sweden)、および10U Aprotinin(Bayer,Leverkusen,Germany)を、ホモジナイゼーション、超音波処理およびイオン交換クロマトグラフィーの間、緩衝液中でインキュベートした。懸濁液を、4℃で10分間、10.000gで遠心分離によってペレット化し、1%Emulphohgeneを含むTBS中で2回洗浄し、そして緩衝液A(0.1% SDS(w/v)および0.05% Emulphogeneを含む10 mM Tris、pH 8.6)中に再懸濁させた。懸濁液を3×15秒間、氷上で超音波処理し、4℃で10分間、12.000gで遠心分離した。上清を、緩衝液Aで予め平衡化された、アニオン交換カラム(20ml Q−Sepharose Fast Flowカラム、QFF、(Pharmacia Upjohn,Uppsala,Sweden))に適用した。10カラム容量の緩衝液Aを用いてカラムを洗浄した後に、結合タンパク質を、緩衝液A中の1M NaClに線形勾配で溶出した。1mlの画分を収集し、そしてさらに、SDS−PAGE/ウェスタンブロッティングおよびELISAによって分析した。ELISAについて、10μlの各画分を、100μl TBS中のSM2ビーズ(BioRad)を含むウェルに添加し、続いて、上記のように、COU−1とともにインキュベートした。ビーズは、洗浄剤と結合し、従って、画分中のタンパク質の直接的なコーティングが可能になる。
分析のための8cmの4〜20%または10%(w/v)のポリアクリルアミドゲル、およびN末端配列決定のための15cmの14%ポリアクリルアミドゲルでの不連続緩衝系において、電気泳動を実施した(36)。サンプルを、2×サンプル緩衝液(100mMのTris緩衝化生理食塩水中の4%SDS、0.2%ブロモフェノールブルー、20%グリセロール)と混合し、5分間沸騰させ、そして変性および還元(100mM DTT)条件下で分離させた。タンパク質バンドを、クーマシーブリリアントブルーで可視化した。分離されたタンパク質をまた、移動緩衝液(10%(v/v)エタノール、25mM Tris、200mM グリシン)を使用して、氷において1時間100ボルトで、ポリビニリデンジフルオリド膜(PVDF,Immobilon P,Millipore,Bedford,MA)上にエレクトロブロットした。移動の前に、膜を、エタノール中に2分間予め浸し、そして膜およびゲルを、10分間、移動緩衝液中でインキュベートさせた。移動に続いて、膜を2時間、ウェスタンブロット緩衝液(50mM Tris、350mM NaCl、15mM NaN3、0.1% Tween−20)中でブロックし、ウェスタンブロット緩衝液で3回洗浄し、そしてCOU−1抗体(5μg/ml)、マウス抗K8抗体(1/2000に希釈)、マウス抗K−18抗体(1/2000に希釈)、またはヤギ抗GST抗体(1/1000に希釈、Pharmacia Upjohn)とともに、室温で一晩、インキュベートした。膜をウェスタンブロット緩衝液で洗浄し、そしてAP結合ウサギ抗ヤギIgG抗体(1/1000に希釈、Sigma)、またはAP結合ウサギ抗ヒトIgM抗体(1/500に希釈、DAKO、Glostrup、Denmark)とともに、2時間室温でインキュベートした。PBS中での3回の洗浄後、膜を15分間、室温で、0.2%グルタルアルデヒドを用いて固定し、そして最終的に、PBSで洗浄した。結合したAP結合体を、NBT/BCIP(Bio−Rad,Hercules,CA)によって可視化した。MCF7またはColon 137細胞(SDSサンプル緩衝液中に再懸濁し、そして超音波処理した)を、抗原コントロールとして使用した。低い範囲のタンパク質マーカー(Bio−Rad)を使用して、フラグメントの分子量を示した。
先に記載された手順(37)を、アミノ酸配列決定およびアミノ酸分析に使用した。N末端配列決定のために、精製サイトケラチンをSDS−PAGEで泳動し、そしてクーマシーでの検出の前に、PVDF膜上にエレクトロブロットした。ブロットから異なるバンドを切り出し、そしてApplied Biosystems 470Aタンパク質シーケンサー(ABI,Forster,CA)において配列決定した。サイトケラチンに類似の配列を、BLASTプログラムを使用して、GenBank/EBI/DDBI/PDBデータベースにおいて検索した。
K8タンパク質およびK18タンパク質のパネルをコードするE.coli DH5a保有プラスミドを分析した。パネルは、全長およびK8およびK18のいくつかのN末端およびC末端欠失フラグメントからなり、GST融合タンパク質として、改変pGEX−2Tベクターにクローニングした(38)。E.coli培養物を、OD600が0.6に達するまで、37℃で、20mM MgCl2および50mgカルベニシリン/mlを補充したSuper Broth培地で増殖させた。次いで、タンパク質発現を、1mM IPTG(Sigma)および4μM cAMPを用いて誘導し、そして培養物をさらに3時間、30℃で増殖させた。細菌を4.000gで15分間4℃でペレット化した。SDS−PAGEのために、ペレットをサンプル緩衝液中に再懸濁させ、そして電気泳動の前に5×10秒間、超音波処理した。組換えK8またはK18タンパク質の精製のために、上記のように増殖させ、そして処理した400ml培養物のペレットを、1mg/mlリゾチームを含む50ml溶解緩衝液(50mM Tris−HCl、100 mM NaCl、1mM EDTA、5mM β−メルカプトエタノール、pH 8.0)中に再懸濁させ、そして30分間、4℃でインキュベートさせた。懸濁液を3×20秒間、超音波処理し、そして4℃で20.000gでペレット化させた。ペレットを2回、高塩緩衝液(50 mM Tris−HCl、2M NaCl、10mM EDTA、5 mM β−メルカプトエタノール、1% NP40、pH 8.0)中で2回洗浄し、溶解緩衝液において1回洗浄した。続いて、ペレットを、2M尿素を含む溶解緩衝液において2回洗浄し、そして8M尿素を含む溶解緩衝液において4℃で保存した。
異なるC末端欠失もしくはN末端欠失またはインタクトなK8タンパク質およびK18タンパク質のパネルを、上記のように、SDS−PAGEによって分離し、そしてPVDF膜に移した。ブロッキング後、膜を、PBS、2%BSAおよび4M尿素中の100μg/mlの精製K8タンパク質またはK18タンパク質とともに16時間4℃でインキュベートした;K8タンパク質が膜に移された場合、膜を、精製K18タンパク質とともにインキュベートし、その逆も同様である(38)。次いで、膜をPBSで洗浄し、10%FCSを含むウェスタンブロット緩衝液中で、COU−1(5μg/ml)とともに2時間、室温でインキュベートし、上記のように、結合を検出した。
組換えインタクトK8またはK18(およびそのフラグメント)のヘテロタイプ複合体に結合するHMab COU−1の動力学を、BIAcore機器(Pharmacia)を使用して、表面プラズモン共鳴測定によって決定した。センサーチップを、N−ヒドロキシスクシンイミドおよびN−エチル−N’−(3−ジエチルアミノプロピル)カルボジイミドを用いて免疫化のために活性化した。ヘテロタイプサイトケラチン複合体を、50μlの50μg/mlサンプルの注入によって、表面に結合させた。過剰の活性化エステルを、30μl 1Mエタノールアミン(pH8.5)を用いてクエンチした。代表的に、3000共鳴単位を固定した。固定ヘテロタイプサイトケラチン複合体に対するCOU−1の結合を、COU−1を、ある範囲の濃度(0.5〜80μg/ml)で、5μl/分の流速で注入することによって、研究した。会合を、単位時間当たりの共鳴単位の増加としてモニターした。解離測定を、20μl/分の流速で、会合相の最後に続いて得た。結合表面を、10mM HCl、1M NaCl(pH2.0)で再生し、そして10の測定の間、活性を維持した。会合速度定数konおよび解離速度定数koffを、以前に記載されるように、一連の測定から決定した(39)。会合定数および解離定数は、Bioevaluation program version 3.1(Pharmacia)を使用して、動力学的データから推定した。
細胞を、Lab Tekチャンバスライド(Nalge Nunc,Naperville,IL)内に播種し、48時間、37℃で、5%CO2で、増殖させて、ガラススライドに接着させた。細胞を、氷冷96%エタノールで5分間固定し、PBSで3×洗浄し、そしてPBS中で1時間、室温で、10%正常ヤギ血清を用いてブロックした。マウス抗K8抗体(1/1000)またはマウス抗K18抗体(1/1000)のいずれかと一緒に、COU−1(5μg/ml)を4℃で一晩インキュベートした。PBSで洗浄後、細胞を、FITC標識ヤギ抗ヒトγ−鎖およびTexas Red標識ヤギ抗マウスIgG抗体(1/200に希釈、ともに、Jackson ImmunoResarch,West Grove,PA由来)とともに、1時間、室温暗所でインキュベートした。細胞をPBSで3×5分間洗浄し、そしてスライドに、PBS/グリセロール(Molecular Probes,Eugene,OR)中の抗退色試薬Slow FadeTMを載せた。結果を、MRC−1024共焦点レーザー走査顕微鏡(Bio−Rad)を使用して分析し、Zeiss Anyvert 100TVに付着させた。コントロールとして、一次抗体を除外するかまたは一次抗体の代わりに種およびアイソタイプを一致させたコントロール抗体を含む、全ての実験もまた実施した。さらに、分析される細胞の微分干渉コントラスト(DIC)画像を得た。
(結腸癌および正常な結腸上皮からのサイトケラチンの精製)
新たな外科的に取り出した結腸癌組織および正常な結腸上皮を使用して、サイトケラチンおよび他の細胞骨格タンパク質が、生理学的塩濃度の緩衝液中で不溶性繊維状構造として存在するという事実を利用することによって、サイトケラチンK8およびK18を別々に抽出した。非イオン性界面活性剤をこの緩衝液に添加して、細胞膜を部分的に破壊することによって、ホモジナイゼーションを改善した。不溶性中間体のフィラメントタンパク質を、遠心分離によって沈殿させ、続いてSDS含有緩衝液中で可溶化し、そして線形塩勾配を使用して、QFF陰イオン交換クロマトグラフィーによって分離した。
COU−1によって認識されるエピトープの性質を詳述するために、このエピトープを、組換えNまたはC末端欠失のK8およびK18フラグメント、またはGST融合タンパク質として発現されるインタクトなK8およびK18のパネルを使用して、マッピングした。これらのフラグメントの性質を、図4に示す。
短縮K8/K18ヘテロ型複合体と比較して通常のK8およびK18の細胞分布を評価するために、乳癌細胞株および結腸癌細胞株である、MCF−7およびBrCaOlをCOU−1およびMab M20(抗K8)またはMab CY−90 (抗K18)のいずれかを用いて共染色して、高分解能共焦点顕微鏡によって分析した(図11および図12)。Mab M20およびMab CY−90の両方とも、中間フィラメントの長い線維を染色し、複合体の相互結合ネットワークを形成した。これらの線維は、核周辺リング(perinuclear ring)から広がり、この核周辺リングからそのフィラメントは核表面に結合するようであり、そして、細胞質全体に延び、原形質膜で終結する。対照的に、COU−1は、斑点パターンを提示し、短いフィラメントフラグメントおよび桿状様粒子の染色を伴い、これは断片化された中間フィラメントを示す。
癌の検出のために有用な抗体をさらに開発するために、抗体の一部をコードする核酸をクローニングし、そしてファージディスプレイ選択によって、本発明の癌関連エピトープへの結合についてスクリーニングした。これらの核酸は、ヒトFabフラグメントおよび他のフラグメントをコードする。
(抗体)
ヒトモノクローナルIgM抗体のCOU−1は、ハイブリドーマ細胞株B9165(これは、上記のように、ヒトリンパ芽球細胞株WI−L2−729−HF2と、結腸癌を有する患者由来の腸間膜リンパ節から得られたリンパ球との融合によって誘導された)によって分泌される。Borup−Christensen,P.,Erb,K.,Jensenius,J.C.,Nielsen,B.およびSvehag,S.−E.(1986)Int.J.Cancer 37,683−688もまた参照のこと。ヒト−ヒトハイブリドーマ細胞株を、SSR3血清補充物(Medicult,Copenhagen,Denmark)を補充した無タンパク質培地(RPMI 1640培地(GIBCO,Grand Island,N.Y.))中で増殖させた。COU−1抗体を、Sepharose結合マウスモノクローナル抗ヒトμ鎖抗体(HB57,American Type Culture Collections,Rockville,MD)でのアフィニティクロマトグラフィーによって、細胞培養物上清から精製した。抗体を、0.1Mジエチルアミン(pH10.5)で溶出し、その後、FPLCで分画した。正常ヒト血清から精製したIgM(Cappel,Cochranville,PA)を、コントロールとして使用した。
総RNAを、グアニジニウム法によって、B9165ハイブリドーマ細胞株から調製した。逆転写後、μ鎖(Fd領域)およびκ鎖を、ファミリー特異的プライマーセットを使用して、Perssonら、(1991)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 88,2432−2436に記載される方法を用いて、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によって増幅した。増幅した軽鎖DNAを、Burtonら、(1991)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 88,10134−10137およびBarbasら、(1991)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 88,7978−7982に記載されるように、制限酵素ScaIおよびXbaIで切断し、SacI/XbaIで線状化したpComb3ベクターと、3時間連結した。連結した材料を精製し、そしてエレクトロポレーションによって、200μlのEscherichia coli XL1−Blue細胞中に形質転換した。形質転換後、細胞を一晩増殖させ、そしてファージミドDNAを調製した。
B9165抗体ライブラリーのパニングを、Burtonら、(1991)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 88,10134−10137に記載される方法を使用して実施した。簡潔には、マイクロタイターウェルを、0.1Mビカルボネート緩衝液(pH8.6)中で4℃にて、超音波処理した結腸癌細胞株(colo 137)の溶解物を用いて一晩コーティングした。Ditzelら、(1992)Eur.J.Nucl.Med.19,409−417を参照のこと。3% BSAを含むPBSでの37℃で1時間のブロッキング後、50μlのPBS中ファージ懸濁物を各ウェルに添加し、そして2時間インキュベートした。未結合のファージを、0.05%(w/v)Tween 20(PBS−Tween)(Merck,Darmstadt,FRG)を含むPBSで10回激しく洗浄して除去した。抗原結合Fabを有するものについて富化された、結合したファージを、0.2Mグリシン/HCl(pH2.2)で溶出した。溶出したファージを、E.coliの感染によって増幅し、そしてVCS−M13ヘルパーファージでの重複感染によって回収した。パニング手順を、2回実施した。ファージミドDNAを、最後の回のパニングから単離し、NheIおよびSpeIで切断し、そして再び連結した。この工程は、cpIII遺伝子を切り出し、可溶性Fabフラグメントを産生するベクターを得た。
Fabを、Burtonら、(1991)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 88,10134−10137およびBarbasら、(1991)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 88,7978−7982によって報告された方法を使用して、凍結−解凍手順によって、細菌上清として調製した。
組換えB9165 Fabを、いくらかの改変を加えて、Ditzelら、(1995)J.Immunol.154,895−908に記載される方法を使用して精製した。簡潔には、適切なクローンを含むE.coliを、カルベニシリン(50μg/ml)、テトラサイクリン(10μg/ml)およびMgC12(20mM)を含むスーパーブロスの1リットルの培養物中に接種し、振とうしながら6時間、37℃で増殖させた。次いで、タンパク質発現を、2mMのイソプロピルβ−D−チオガラクトピラノシドで誘導し、そして30℃で一晩増殖を続けた。可溶性Fabを、プロテインGγ結合マトリクス(Pharmacia)に架橋された、ヒトIgG F(ab’)2に対するヤギ抗体(Pierce)を使用するアフィニティクロマトグラフィーによって細菌上清から精製した。このカラムを、PBSで洗浄し、そして結合したFabを、0.2Mグリシン/HCl(pH2.2)で溶出し、直ぐに1M Tris/HCl(pH9.0)で中和した。
配列決定を、373A自動化DNAシーケンサー(ABI,Foster City,Ca)で、Taq蛍光ジデオキシターミネーターサイクル配列決定キット(ABI)を使用して実施した。軽鎖配列の解明のためのプライマーは、(+)鎖にハイブリダイズするSEQKbプライマー(5’−ATAGAAGTTGTTCAGCAGGCA−3’、配列番号41)、および(−)鎖にハイブリダイズするKEFプライマー(5’−GAATTCTAAACTAGCTAGTTCG−3’、配列番号42)であった。重鎖について、CMHDプライマー(5’−CAAGGGCTTGAGTGGATGGGA−3’、配列番号43)および(−)鎖に結合するT3プライマー(5’−ATTAACCCTCACTAAAG−3’、配列番号44)を使用した。
ヒト結腸癌細胞株(H3619およびcolo 137)、ならびに乳癌細胞株(MCF−7およびH3396)を、10% FBSを含むIscove改変ダルベッコ培地中で増殖させ、そして単層を形成するために、チャンバになったカバーガラス(Nunc,Kamstrup,Denmark)に、37℃、5%CO2にて、48時間接着させた。実験を、一次COU−1抗体、B9165 Fab、マウス抗サイトケラチン8、マウス抗サイトケラチン18およびHuMab 16.88を使用して、以下に示されるように実施した。全ての抗体を、B9165 Fab(30μg/ml)以外、10μg/mlで試験した。
組織試料を、外科的切除を受けた結腸直腸癌患者より得た。正常な結腸組織を、腫瘍の部位から約15cm離れた切除片から取った。組織を96%のアルコール中、6時間、4℃で固定した。その後、組織をパラフィン包埋し、そして5μmの切片に切断した。切片をキシロール中で脱パラフィン処理し、段階的なアルコールで再水和し、そしてPBS−Tween中で洗浄した。切片を、2時間、室温で、加湿器中で、100μlのマウスモノクローナル抗体、ヒトモノクローナルIgM抗体または正常ポリクローナルヒトIgM(全て0.5〜10μg/ml)とともにインキュベートした。スライドを洗浄し、そして10%(w/v)ウシ血清アルブミンを有するPBS中で希釈した、AP標識ウサギ抗ヒトIgM(Dako,Glostrup,Denmark)、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)標識ウサギ抗ヒトIgM(Dako)またはHRP標識ウサギ抗マウスIgG(Dako)とともに1時間室温でインキュベートした。洗浄後、HRPを発色体基質(0.01%H2O2を有するPBS1mlあたり0.6mgジアミノベンジジン)および0.2mgナフトール−AS−Mxリン酸(Sigma)を含むAP、1mg Fast Red TR Salt(Sigma)、0.1M Tris/HCl 1mlあたり20μgジメチルホルムアミド、1Mレバミゾール、pH 8.2での顕色により可視化する。切片を、Mayer’s ヘマトキシリンで対比染色し、キシレン中で脱水し、Aquamount(Gurr,Poole,England)中で標本にした。染色強度を、以下のようにランク付けした:(−)染色なし、(+)弱い染色、(++)中程度の染色、(+++)強い染色。
(ファージディスプレイ発現および癌関連エピトープと結合し得るHuMabの配列決定)
RNAをB9165細胞株から抽出し、対応するcDNAに由来する重鎖(μ、Fd領域)および軽鎖(κ)遺伝子を、3’ファミリー特異的プライマーおよび5’定常プライマーを使用するPCRで増幅した。次いで、軽鎖産物および重鎖産物を続いてM13ファージ表面発現ベクターpComb3にクローン化し、2×106メンバーのライブラリーを生成する。ファージライブラリーをCOU−1抗原陽性結腸癌細胞株(colon 137)の超音波処理で2回選択した。選択の最後の回に由来する、溶出したファージを使用し、E.coli XLI−blue細胞に感染させる。DNAをこれらの細胞から調製し、そして遺伝子IIIフラグメントをNheI/SpeI消化およびライゲーションにより取り除いた。再構築したファージミドを使用し、XLI−blueを形質転換し、可溶性Fabフラグメントを分泌するクローンを作製した。ELISAにおいて、試験した80個の単一Fab発現クローンのうち3個の上清は、colon 137溶解液に結合し、そしてオボアルブミンと結合しないことを示した。
結腸腺癌および直腸腺癌の組織生検においてCOU−1により認識される抗原の細胞下局在を、間接的な免疫ペルオキシダーゼ法およびアルカリホスファターゼ法を用いて研究した。高い倍率で、COU−1による中間径フィラメントの明確な原線維染色を観察した。小さな細胞培養物または個々の細胞において、強い染色を、おそらく細胞表面に関連する周辺で認めた。加えて、隣接した細胞間の接合域に関連した、増強された染色を認めた。8つの結腸癌または直腸癌のうち5つにおいて、隣接した正常結腸陰窩上皮細胞中の染色がないことを、観察した。他の3つの癌において、癌組織の強い染色に加え、陰性細胞に囲まれたいくつかの個々の細胞の弱い染色を、隣接した形態学的に正常な結腸組織中で観察した。これらの結腸上皮は形態学的に正常と見られるが、これはそうではないかもしれない。マウス抗サイトケラチン8抗体および抗サイトケラチン18抗体(示さず)は、隣接した正常な結腸上皮ならびに結腸癌組織の強い染色を生じた。しかし、COU−1は、悪性細胞とのみ反応し、正常な上皮とは反応しなかった。COU−1、マウス抗サイトケラチン8および18、ならびに16.88の染色レベルの比較を、表3に示す。16.88抗体は、結腸癌細胞の強い染色、正常の結腸上皮のいくつかの領域のみにおける弱い染色を示したが、しかしさらに染色された平滑筋線維および染色された結合組織に由来する筋上皮を観察した(表5)。
以下の参考文献は、本明細書中に示された事項に対する系統として、模範的な手順または他の詳細補充を提供する程度まで、本明細書中に参考として具体的に援用される。
Claims (69)
- 2つの別々のポリペプチド、サイトケラチン8ポリぺプチドおよびサイトケラチン18ポリペプチドを含む単離された癌関連エピトープであって、該サイトケラチン8ポリペプチドが、配列番号3または配列番号5から本質的になり、そして該サイトケラチン18ポリペプチドが、配列番号4または配列番号6から本質的になる、単離された癌関連エピトープ。
- 請求項1に記載の単離されたエピトープであって、前記サイトケラチン8ポリペプチドが、約475アミノ酸よりも短く、そして前記サイトケラチン18ポリペプチドが、約425アミノ酸よりも短い、単離されたエピトープ。
- 請求項1に記載の単離されたエピトープであって、前記癌関連エピトープが、腺癌細胞の線維状細胞質構造において検出されるが、正常細胞において実質的に検出されない、単離されたエピトープ。
- 請求項1に記載の単離されたエピトープであって、前記癌関連エピトープが、結腸腺癌細胞、卵巣腺癌細胞、腎腺癌細胞、乳腺癌細胞、肺腺癌細胞、膵臓腺癌細胞および非セミノーマ精巣癌細胞の線維状細胞質構造において検出される、単離されたエピトープ。
- 2つの別々のポリペプチド、サイトケラチン8ポリぺプチドおよびサイトケラチン18ポリペプチドを含む癌関連エピトープを含む腺癌を予防または処置するためのワクチン組成物であって、該サイトケラチン8ポリぺプチドが、配列番号3または配列番号5から本質的になり、そしてサイトケラチン18ポリペプチドが、配列番号4または配列番号6から本質的になる、ワクチン組成物。
- 請求項5に記載のワクチン組成物であって、前記サイトケラチン8ポリペプチドが、約475アミノ酸よりも短く、そして前記サイトケラチン18ポリペプチドが、約425アミノ酸よりも短い、ワクチン組成物。
- 請求項5に記載のワクチン組成物であって、前記腺癌が、結腸腺癌、卵巣腺癌、腎腺癌、乳腺癌、肺腺癌、膵臓腺癌または非セミノーマ精巣癌である、ワクチン組成物。
- 2つの別々のポリペプチド、サイトケラチン8ポリぺプチドおよびサイトケラチン18ポリペプチドを含む癌関連エピトープに結合し得る単離された結合実体ポリペプチドであって、該サイトケラチン8ポリペプチドが、配列番号3または配列番号5から本質的になり、そして該サイトケラチン18ポリペプチドが、配列番号4または配列番号6から本質的になる、単離された結合実体ポリペプチド。
- 請求項8に記載の単離された結合実体ポリペプチドであって、前記サイトケラチン8ポリペプチドが、約475アミノ酸よりも短く、そして前記サイトケラチン18ポリペプチドが、約425アミノ酸よりも短い、単離された結合実体ポリペプチド。
- 請求項8に記載の単離された結合実体ポリペプチドであって、該結合実体ポリペプチドが、約425アミノ酸よりも短い、単離された結合実体ポリペプチド。
- 請求項8に記載の単離された結合実体ポリペプチドであって、該結合実体ポリペプチドが、約200アミノ酸よりも短い、単離された結合実体ポリペプチド。
- 請求項8に記載の単離された結合実体ポリペプチドであって、該結合実体ポリペプチドが、抗体である、単離された結合実体ポリペプチド。
- 請求項8に記載の単離された結合実体ポリペプチドであって、該結合実体ポリペプチドが、腺癌細胞の線維状細胞質構造において癌関連エピトープを検出し得るが、正常細胞の線維状構造において実質的に検出し得ない、単離された結合実体ポリペプチド。
- 請求項8に記載の結合実体であって、該結合実体ポリペプチドが、結腸腺癌細胞、卵巣腺癌細胞、腎腺癌細胞、乳腺癌細胞、肺腺癌細胞、膵臓腺癌細胞および非セミノーマ精巣癌細胞の線維状細胞質構造において癌関連を検出し得る、結合実体。
- 請求項8に記載の結合実体であって、該結合実体ポリペプチドが、配列番号7〜35のいずれか1つに少なくとも98%相同なアミノ酸配列を有するポリペプチドから本質的になる、結合実体。
- 請求項8に記載の結合実体であって、該結合実体が、配列番号7〜35または配列番号47〜49のいずれか1つを有するポリペプチドから本質的になる、結合実体。
- 請求項8に記載の結合実体であって、該結合実体が、配列番号36〜39のいずれか1つを含む核酸によってコードされる、結合実体。
- 癌を検出するためのキットであって、該キットは、癌関連エピトープに結合し得る結合実体ポリペプチドを含む容器を備え、該癌関連エピトープが、2つの別々のポリペプチド、サイトケラチン8ポリぺプチドおよびサイトケラチン18ポリペプチドを含み、該サイトケラチン8ポリペプチドが、配列番号3または配列番号5から本質的になり、そして該サイトケラチン18ポリペプチドが、配列番号4または配列番号6から本質的になる、キット。
- 請求項18に記載のキットであって、前記サイトケラチン8ポリペプチドが、約475アミノ酸よりも短く、そして前記サイトケラチン18ポリペプチドが、約425アミノ酸よりも短い、キット。
- 請求項18に記載のキットであって、前記結合実体ポリペプチドが、約425アミノ酸よりも短い、キット。
- 請求項18に記載のキットであって、前記結合実体ポリペプチドが、約200アミノ酸よりも短い、キット。
- 請求項18に記載のキットであって、前記結合実体ポリペプチドが、抗体である、キット。
- 請求項18に記載のキットであって、前記癌が、腺癌である、キット。
- 請求項18に記載のキットであって、前記癌が、結腸腺癌、卵巣腺癌、腎腺癌、乳腺癌、肺腺癌、膵臓腺癌または非セミノーマ精巣癌である、キット。
- 請求項18に記載のキットであって、前記結合実体ポリペプチドが、標識または診断画像化剤をさらに含む、キット。
- 請求項18に記載のキットであって、前記結合実体ポリペプチドが、硫酸バリウム、ヨーセタム酸、ヨーパン酸、イポデートカルシウム、ジアトリゾエートナトリウム、ジアトリゾエートメグルミン、メトリザマイド、チロパノエートナトリウム、フッ素−18、炭素−11、ヨウ素−123、テクネチウム−99m、ヨウ素−131、インジウム−111、フッ素、ガドリニウム、フルオレセイン、イソチオシアレート、ローダミン、フィコエリトリン、フィコシアニン、アロフィコシアニン、オプトアルデヒド、フルオレサミン、ルミナル、イソルミナル、ルシフェリン、ルシフェラーゼ、またはエクオリンをさらに含む、キット。
- 請求項18に記載のキットであって、前記結合実体が、配列番号7〜35のいずれか1つに少なくとも98%相同性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドから本質的になる、キット。
- 請求項18に記載のキットであって、前記結合実体が、配列番号7〜35または配列番号47〜49のいずれか1つを有するポリペプチドから本質的になる、キット。
- 請求項18に記載のキットであって、前記結合実体が、配列番号36〜39のいずれか1つを含む核酸によってコードされる、キット。
- 結合実体ポリペプチドおよび薬学的に受容可能なキャリアを含有する治療組成物であって、該結合実体ポリペプチドが、2つの別々のポリペプチド、サイトケラチン8ポリぺプチドおよびサイトケラチン18ポリペプチドを含む癌関連エピトープに結合し得、該サイトケラチン8ポリペプチドが、配列番号3または配列番号5を含み、そして該サイトケラチン18ポリペプチドが、配列番号4または配列番号6を含む、治療組成物。
- 請求項30に記載の治療組成物であって、前記サイトケラチン8ポリペプチドが、約475アミノ酸よりも短く、そして前記サイトケラチン18ポリペプチドが、約425アミノ酸よりも短い、治療組成物。
- 請求項30に記載の治療組成物であって、前記結合実体ポリペプチドが、約425アミノ酸よりも短い、治療組成物。
- 請求項30に記載の治療組成物であって、前記結合実体ポリペプチドが、約200アミノ酸よりも短い、治療組成物。
- 請求項30に記載の治療組成物であって、前記結合実体ポリペプチドが、抗体である、治療組成物。
- 請求項30に記載の治療組成物であって、前記結合実体が、腺癌細胞の線維状細胞質構造において前記癌関連エピトープに結合し得るが、正常細胞の線維状構造において実質的に結合し得ない、治療組成物。
- 請求項30に記載の治療組成物であって、前記結合実体が、結腸腺癌細胞、卵巣腺癌細胞、腎腺癌細胞、乳腺癌細胞、肺腺癌細胞、膵臓腺癌細胞および非セミノーマ精巣癌細胞の線維状細胞質構造において、前記癌関連エピトープに結合し得る、治療組成物。
- 請求項30に記載の治療組成物であって、ここで、前記結合実体が、配列番号7〜35のいずれか1つに対して少なくとも98%相同なアミノ酸配列を有するポリペプチドから本質的になる、治療組成物。
- 請求項30に記載の治療組成物であって、ここで、前記結合実体が、配列番号7〜35または配列番号47〜49のいずれか1つを有するポリペプチドから本質的になる、治療組成物。
- 請求項30に記載の治療組成物であって、ここで、前記結合実体が、配列番号36〜39のいずれか1つを含む核酸によってコードされる、治療組成物。
- 腺癌を処置するための治療組成物であって、該組成物は、Xaa1SR↓Xaa4(配列番号40)を切断するプロテアーゼのインヒビターおよび薬学的に受容可能なキャリアを含有し、ここで、Xaa1は、セリン、フェニルアラニンまたはバリンであり、そしてXaa4は、セリンまたはバリンである、治療組成物。
- 請求項40に記載の治療組成物であって、ここで、前記プロテアーゼは、トリプシン様プロテアーゼである、治療組成物。
- 請求項40に記載の治療組成物であって、ここで、前記インヒビターは、ダイズトリプシンインヒビター、α−2−マクログロブリン、α−1−アンチトリプシン、アプロチニン、膵分泌性トリプシンインヒビター、コーントリプシンインヒビター、カボチャトリプシンインヒビターまたはヒトアミロイドβ−タンパク質前駆体インヒビターである、治療組成物。
- 請求項40に記載の治療組成物であって、ここで、前記腺癌が、結腸腺癌、卵巣腺癌、直腸腺癌、乳腺癌、肺腺癌、膵臓腺癌または非セミノーマ精巣癌である、治療組成物。
- 腺癌を検出する方法であって、該方法は、
試験サンプルと結合実体ポリペプチドを接触させる工程、および
該結合実体ポリペプチドが、サイトケラチン8ポリペプチドおよびサイトケラチン18ポリペプチドの2つの別々のポリペプチドを含むエピトープに結合するかどうかを検出する工程
を包含し、ここで、該サイトケラチン8ポリペプチドは、配列番号3または配列番号5から本質的になり、そして該サイトケラチン18ポリペプチドは、配列番号4または配列番号6から本質的になる、方法。 - 請求項44に記載の方法であって、ここで、前記サイトケラチン8ポリペプチドが、約475アミノ酸より短く、そして前記サイトケラチン18ポリペプチドが、約425アミノ酸より短い、方法。
- 請求項44に記載の方法であって、ここで、前記結合実体ポリペプチドが、約425アミノ酸より短い、方法。
- 請求項44に記載の方法であって、ここで、前記結合実体ポリペプチドが、約200アミノ酸より短い、方法。
- 請求項44に記載の方法であって、ここで、前記結合実体ポリペプチドが、抗体である、方法。
- 請求項44に記載の方法であって、ここで、前記結合実体が、配列番号7〜35のいずれか1つに対して少なくとも98%相同なアミノ酸配列を有するポリペプチドから本質的になる、方法。
- 請求項44に記載の方法であって、ここで、前記結合実体が、配列番号7〜35または配列番号47〜49のいずれか1つを有するポリペプチドから本質的になる、方法。
- 請求項44に記載の方法であって、ここで、前記結合実体が、配列番号36〜39のいずれか1つを含む核酸によってコードされる、方法。
- 請求項44に記載の方法であって、ここで、前記腺癌が、結腸腺癌、卵巣腺癌、直腸腺癌、乳腺癌、肺腺癌、膵臓腺癌または非セミノーマ精巣癌である、方法。
- 請求項44に記載の方法であって、ここで、前記結合実体が、標識薬剤または診断画像化剤をさらに含む、方法。
- 請求項44に記載の方法であって、ここで、前記結合実体が、硫酸バリウム、ヨーセタム酸、ヨーパン酸、イポデートカルシウム、ジアトリゾエートナトリウム、メグルミンジアトリゾエート、メトリザマイド、チロパノエートナトリウム、フッ素−18、炭素−11、ヨウ素−123、テクネチウム−99m、ヨウ素−131、インジウム−111、フッ素、ガドリニウム、フルオレセイン、イソチオシアネート、ローダミン、フィコエリトリン、アロフィコシアニン、オプトアルデヒド、フルオレスカミン、ルミナル、イソルミナル、ルシフェリン、ルシフェラーゼまたはエクオリンをさらに含む、方法。
- 哺乳動物において癌を処置または予防するための方法であって、該方法が、抗新生物形成剤に連結された治療有効量の結合実体ポリペプチドを哺乳動物に投与する工程を包含し、ここで、結合実体ポリペプチドが、サイトケラチン8ポリペプチドおよびサイトケラチン18ポリペプチドの2つの別個のポリペプチドを含む癌関連エピトープに結合し得、そしてここで、該サイトケラチン8ポリペプチドが、配列番号3または配列番号5を含み、そして該サイトケラチン18ポリペプチドが、配列番号4または配列番号6を含む、方法。
- 請求項55に記載の方法であって、ここで、前記サイトケラチン8ポリペプチドが、約475アミノ酸より短く、そして前記サイトケラチン18ポリペプチドが、約425アミノ酸より短い、方法。
- 請求項55に記載の方法であって、ここで、前記結合実体ポリペプチドが、約425アミノ酸より短い、方法。
- 請求項55に記載の方法であって、ここで、前記結合実体ポリペプチドが、約200アミノ酸より短い、方法。
- 請求項55に記載の方法であって、ここで、前記結合実体ポリペプチドが、抗体である、方法。
- 請求項55に記載の方法であって、ここで、前記抗新生物薬剤が、放射性ヨウ素化化合物、毒素、細胞増殖抑制性薬物、または細胞分解性薬物である、方法。
- 請求項55に記載の方法であって、ここで、前記抗新生物薬剤が、アミノグルテチミド、アザチオプリン、硫酸ブレオマイシン、ブスルファン、カルムスチン、クロラムブシル、シスプラチン、シクロホスファミド、シクロスポリン、シタラビン、ダカルバジン、ダクチノマイシン、ダウノルビシン、ドキソルビシン、タキソール、エトポシド、フルオロウラシル、インターフェロン−α、ロムスチン、メルカプトプリン、メトトレキサート、ミトーテン、プロカルバジンHCl、チオグアニン、硫酸ビンブラスチン、硫酸ビンクリスチン、アメリカヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質、コレラ毒素、百日咳毒素、リシン、ゲロニン、アブリン、ジフテリア外毒素、シュードモナス外毒素またはコバルト60である、方法。
- 請求項55に記載の方法であって、ここで、前記結合実体が、配列番号20〜35のいずれか1つに対して少なくとも98%相同なアミノ酸配列を有するポリペプチドを含む、方法。
- 請求項55に記載の方法であって、ここで、前記結合実体が、配列番号7〜35または配列番号47〜49のいずれか1つを有するポリペプチドを含む、方法。
- 請求項55に記載の方法であって、ここで、前記結合実体が、配列番号36〜39のいずれか1つを含む核酸によってコードされる、方法。
- 変異体結合実体を同定するための方法であって、該方法は、
配列番号7〜35のいずれか1つを有するポリペプチドをコードする核酸を、提示タンパク質をコードする核酸に融合し、融合タンパク質をコードする組換え核酸を生成する工程;
該融合タンパク質をコードする組換え核酸を変異させ、変異融合タンパク質をコードする変異核酸を生成する工程;
該変異融合タンパク質を発現する工程;および
2つの別個のポリペプチドを含む癌関連エピトープに結合し得る変異融合タンパク質を選択する工程であって、該2つの別個のポリペプチドが、配列番号3のサイトケラチン8を含む第1のポリペプチドおよび配列番号4のサイトケラチン18を含む第2のポリペプチドを含む、工程、
を包含する、方法。 - 請求項65に記載の方法であって、ここで、前記結合実体が、CDRフラグメントまたはFabフラグメントである、方法。
- 請求項65に記載の方法であって、ここで、前記提示タンパク質が、ファージ提示タンパク質、レトロウイルス提示タンパク質、またはリボソーム提示タンパク質である、方法。
- 哺乳動物において癌を処置および/または予防する医薬の調製のための請求項30の治療組成物の使用。
- 哺乳動物において癌を処置および/または予防する医薬の調製のための請求項40の治療組成物の使用。
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