JP2004533262A

JP2004533262A - 遺伝子転写を調節する特性を含むｄｎａ配列及びそのようなｄｎａ配列を検出し且つ使用するための方法

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Publication number: JP2004533262A
Application number: JP2003510461A
Authority: JP
Inventors: オッテ，アリエ，ピエテル; クルッケベルグ，アーサー，レオ
Original assignee: クロマジェニックスビー．ブイ．
Priority date: 2001-07-04
Filing date: 2002-06-14
Publication date: 2004-11-04
Anticipated expiration: 2022-06-14
Also published as: US20070037256A1; AU2002314629B2; AU2007234619A1; EP1600510B1; US7192741B2; EP1829972B1; PT1600510E; EP1829971A3; US20070031934A1; EP1806407B1; EP1829971A1; ATE474053T1; KR20090037485A; DK1808488T3; JP4500044B2; NO338477B1; CY1107678T1; ES2285630T3; DK1842919T3; EP1842919B1

Abstract

本発明は、調節配列の体系的な説明及び識別に関連する。本発明は、他のスクリーニングの間に且つ調節配列が識別されうるところの検出方法を提供する。本発明は、調節配列、且つ様々な分野たとえば制限されるものではないがタンパク質生産、診断、形質転換植物及び動物、並びに治療分野におけるそれらの使用方法をさらに提供する。

Description

【技術分野】
【０００１】
本発明は、医薬及び細胞生物学の分野に関連する。本発明は、詳細には遺伝子転写の調節の手段及び方法に関連する。本発明は、DNA配列が遺伝子転写を調節する特性及び／又は遺伝子転写を抑制する特性を含むかどうかを決定するための方法にさらに関連する。
【背景技術】
【０００２】
様々なゲノムプロジェクトの発達に伴い、完全な生物体ゲノムの配列が利用可能になってきている。データの洪水は、多くの研究員の目的（interest）を引き起こしている。より注目され得る発見の１つは、ヒトゲノムはショウジョウバエ（fruit fly）のような簡単な生物体のゲノムよりも極めて多くの遺伝子をコードしていないという所見であった。多くの研究員の焦点は、遺伝子の同定から遺伝子発現及び遺伝子機能の決定に今シフトしている。そのような技術の例が、DNAマイクロアレイ、機能的ゲノミクス（genomics）利用及びプロテオミクス（proteomics）である。これらの技術は、それらがコードする配列の機能及び発現の周りに集中されていることで共通点を有する。しかしながら、我々の遺伝子の知識は劇的に増加する一方、遺伝子の発現がどのように制御されるかの理解は、この迅速に増加する知識に適用する能力を制限している。これは例えば、遺伝子組み換え植物及び動物の生成、並びにヒト遺伝子治療の場合である。これらの利用において、外来の核酸は、コードする配列の発現を得るために細胞内に典型的に導入される。細胞のゲノム内への外来の核酸のしばしばの組み込みは、導入された配列の長期にわたる機能のために必要とされる。しかしながら、ゲノム内への配列の組み込みは、発現の予測不可能性をもたらす。なぜならば、周りのDNAが、組み込まれた配列の転写に影響を及ぼすためである。この予測不可能性は、導入された配列が周りのDNAの効果に影響を及ぼす転写から組み込まれた配列を機能的に単離するために十分なゲノム情報をいまだ提供されることができないという事実に一部拠るものである。他の部分では、これは、周りのDNAの効果に影響を与える転写について十分に知られていないという事実に拠る。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００３】
本発明は、インシスで（in cis）遺伝子の転写に影響を与える能力を含むDNA配列に関連がある。典型的には、必要ではないけれども、調査された配列は機能的タンパク質をそれら自身でコードしていない。インシスで遺伝子転写に影響を与える能力を有する種々の配列エレメントが、同定されてきている。これらのエレメントは、プロモーター、エンハンサー及びサイレンサーから境界エレメント（boundary element）及びマトリックス結合領域（matrix attachment regions）に及んでいる。
【０００４】
非常に多くの種々の型の調節塩基配列（regulatory sequences）が発見されてきているという事実は、有効な発現カセットを設計することが非常に簡単であるという印象を与える。しかしながら、全く逆が真実である。発現カセットの設計は、試行錯誤によって今なおしばしばおこなわれている、ターゲット細胞又はその後代において外来遺伝子のある種の発現を得ることを可能にすることはかなり頻繁に可能である。しかしながら、非常にしばしば、発現カセットがターゲット細胞において表わすことができる発現のレベル又は発現の持続性を、何らかの正確性で予測することは困難である。
【課題を解決するための手段】
【０００５】
本発明はなかんずく、新規の転写調節エレメントを検出し且つ単離するための手段及び方法を提供する。遺伝子転写を調節する特性を有するDNA配列を検出し、任意的に選択するための方法であって、転写システムに様々なフラグメント含有ベクターを備えることを含み、前記ベクターは、ｉ）遺伝子転写を抑制する特性を有するエレメント、及びｉｉ）レポーター遺伝子の転写を指示するプロモーターを含み、前記方法は前記遺伝子転写を調節する特性を有する前記DNA配列を識別するために前記転写システムにおいて選択ステップを実行することをさらに含む方法が提供される。好ましい実施態様では、前記フラグメントは、ｉ）遺伝子転写を抑制する特性を有する前記エレメント、及びｉｉ）前記レポーター遺伝子の転写を指示する前記プロモーターの間に配置される。RNAポリメラーゼは、どこでRNA合成が開始すべきかを合図するプロモーターと呼ばれる特定の配列に結合後、転写工程を開始する。調節する特性は、所定の細胞型及び／又は所定のプロモーターにおいてインシスで前記プロモーターからの転写を助長することができる。同一のDNA配列は、１つの型の細胞において又は１つの型のプロモーターとともに、助長する特性を含むことができる。一方、それは他の細胞において又は他の型のプロモーターとともに、遺伝子転写を調節する他の特性を含むことができるか又は含まない。転写は、特定のプロモーターの転写に対する調節エレメント（又はそれに結合するタンパク質）の直接の影響を通じて影響されうる。しかしながら、転写は、非直接的な影響によってもまた影響されうる。例えば調節エレメントが、１つ又はそれ以上の他の調節エレメントの機能に影響を与えるからである。遺伝子転写を調節する特性は、安定な（stable）遺伝子転写特性をもまた含みうる。安定とは、観察された転写レベルが少なくとも30細胞分割の間、有意には変化されないことを意味する。安定な特性は、発現特徴が多くの細胞分割にわたって予測可能であるべきところの状況において有益である。典型的な例は、外来遺伝子でトランスフェクションされた細胞株（cell line）である。他の例は、形質転換動物及び植物並びに遺伝子治療である。導入された発現カセットが細胞分割若しくは植物又は動物世代の数の増加後に夫々に非常にしばしば違うように機能する。好ましい実施態様では、安定な特性は、形質転換植物又は動物の後の世代において遺伝子転写を維持する能力を含む。もちろん、発現が誘発可能である場合、前記特性は形質転換植物又は動物の後の世代において発現の誘発性を維持する特性を含む。しばしば、発現レベルは、細胞分割の数の増加に伴い劇的に落ちる。本発明の方法では、細胞分割の数の増加につれて転写レベルの劇的な落ち込みを少なくとも部分的に防ぐことが可能であるDNA配列を検出し、任意的に選択する、ことが可能である。従って、好ましい実施態様では、前記遺伝子転写を調節する特性は、安定な遺伝子転写特性を含む。驚くべきことには、前記方法は転写の長期的な安定性を必ずしも測定しないという事実にもかかわらず、前記安定な遺伝子転写特性を有するDNA配列を含むフラグメントは、本発明の方法で検出され且つ任意的に選択され得る。本発明の好ましい実施態様では、前記遺伝子転写を調節する特性は、遺伝子転写を助長する安定な特性を含む。目的の遺伝子を有する発現ベクターへの遺伝子転写を調節する特性を有するDNA配列の組み込みは、細胞のゲノムへの発現ベクターの組み込みに応答して目的の前記遺伝子のより高いレベルの転写を生じること、且つその上、前記より高い遺伝子発現レベルはまた、遺伝子転写を調節する特性を有する前記DNA配列の不存在におけるよりもより安定であるということが観察されている。
【０００６】
細胞のゲノム内に目的の遺伝子を導入するために且つ目的の前記遺伝子の発現を取得するために設計された実験において、次のことが観察されている。目的の前記遺伝子とともに遺伝子転写を調節する特性を有するDNAがまた導入された場合、前記DNA配列が目的の前記遺伝子とともに導入されないときよりも、目的の前記遺伝子の遺伝子生成物を或る量よりも多く発現したクローンが、より多く検出された。すなわち、本発明は、前記細胞のゲノムに目的の前記遺伝子を備えると目的の遺伝子の遺伝子生成物をあるレベルよりも多く発現する細胞の数を増加する方法をまた提供し、該方法は、前記目的の前記遺伝子とともに遺伝子転写を調節する特性を含むDNA配列を前記細胞に備えることを含む。
【０００７】
遺伝子転写を調節する特性を有するフラグメントを検出することの機会は、フラグメントがそこから得られるところの起源で変わる。典型的には、前記特性を有するフラグメントの存在又は不存在についての先行する知識がない。それらの状況において、多くのフラグメントは、遺伝子転写を調節する特性を有するDNA配列を含まない。これらの状況において、前記特性を有するDNA配列のための正式な選択ステップが導入される。これは、前記リポーター遺伝子の生産物の特性に基づき前記配列を含むセレクションベクターによって行われ、これはそれに有利にも不利にも選択されうる。例えば、前記遺伝子生成物は、蛍光若しくは色沈着（例えば、緑蛍光タンパク質及びその誘導体、ルシフェラーゼ、又はアルカリホスファターゼ）を誘発し、又は抗生物質耐性を与え、若しくはアポトーシス及び細胞死を誘発しうる。
【０００８】
本発明の方法は、遺伝子転写を助長する特性を含むDNA配列を検出し、且つ任意的に選択する、ために特に適している。目的の遺伝子を含む発現ベクターに組み込まれると、ベクターが遺伝子転写を抑制する特性を有するエレメントを含まなくとも、選択されたDNA配列の少なくとも幾つかは宿主細胞中で目的の前記遺伝子の遺伝子転写を劇的に増加することができる。この遺伝子転写を助長する特性は、外来遺伝子でトランスフェクションされた細胞株において又は形質転換動物及び植物において非常に有用である。
【０００９】
前記転写システムは、細胞フリーのインビトロ（in vitro）転写システムでありうる。自動化された現在の専門的技術では、そのような細胞フリーシステムは、正確且つ迅速でありうる。しかしながら、本発明のために、前記転写システムは宿主細胞を好ましくは含む。宿主細胞を使用することは、フラグメントが細胞内で活性により検出され且つ任意的に選択されることを保証する。
【００１０】
本発明の方法において、遺伝子転写を抑制する特性を有するエレメントは、使用される転写システムにおいてプロモーターからの転写を抑制する。前記抑制は、検出不可能な発現レベルにまで進む必要はない。重要なことは、抑制の不存在又は存在において発現レベルの相違が、検出可能であり且つ任意的に選択可能であるということである。好ましい実施態様では、前記ベクターにおける遺伝子転写抑制は、遺伝子転写を抑制するクロマチンをもたらす。この好ましい実施態様では、遺伝子転写を抑制するクロマチンの形成を少なくとも部分的に妨げることが可能であるDNA配列が検出され且つ任意的に選択されうる。１つの観点では、遺伝子転写を抑制するクロマチンの形成を少なくとも部分的に妨げることが可能であるDNA配列は、安定な遺伝子転写特性を含む。好ましい実施態様では、遺伝子転写抑制に関係するDNA配列が、タンパク質複合体によって認識されるDNA配列であり、及び前記転写システムが前記複合体を含む。好ましくは、前記複合体は、HP1を含むヘテロクロマチン結合性タンパク質（heterochromatin-binding protein）、ポリコーム−グループ（Pc-G）タンパク質、ヒストン脱アセチル化酵素活性又はMeCP２（メチル−CpG−結合性タンパク質）を含む。多くの生物体が、１つ又はそれ以上のこれらのタンパク質を含む。これらのタンパク質はしばしば、他の種においても活性を示す。従って、前記複合体は、２つ又はそれ以上の種からのタンパク質をまた含むことができる。既知のクロマチンに関連付けられたタンパク質複合物の前記されたセットは、多くの塩基対にわたる長い範囲の抑制をももたらすことができる。前記複合体は、細胞分割すると娘細胞に遺伝子の抑制された状態を安定に移すことにまた関係する。この方法で選択された配列は、多くの塩基対にわたる長い範囲の抗抑制をもたらすことができる（ファンデルフラッグら、2000年）。
【００１１】
使用されるベクターは、DNAクローニングに適切であり且つ転写システムで使用されうる任意のベクターであり得る。宿主細胞が使用される場合、該ベクターが、エピソーム的に複製するベクターであることが好ましい。このようにして、ベクターの組込みの異なる部位による効果は避けられる。組込みの部位でベクターを挟む（flanking）DNAエレメントは、プロモーターの転写のレベルに対して影響を与え且つそれによって、遺伝子転写を調節する特性を有するDNA配列を含むフラグメントの影響をまねることができる。好ましい実施態様では、前記ベクターが、イプシュタイン−バール（Epstein-Barr）ウィルス（EBV）、OriP、及び核抗原（EBNA-1）からの複製起源を含む。そのようなベクターは、適切な条件下で真核生物の細胞の多くの型において複製することができ且つクロマチン内に組入れる（assemble）ことが可能である。
【００１２】
他の観点では、本発明は、ｉ）植物若しくは脊椎動物から単離されたDNA配列又はそれらの誘導体、又はｉｉ）合成DNA配列すなわち遺伝子エンジニアリングの手段によって構築されたDNA配列を含むDNA配列であって、本発明に従う方法の手段によって検出され、選択され及び任意的にクローニングされ得る、抑制を阻害する配列であるところの前記DNA配列を提供する。他の観点では、本発明は、ｉ）植物若しくは脊椎動物から単離されたDNA配列又はそれらの誘導体、又はｉｉ）合成DNA配列すなわち遺伝子エンジニアリングの手段によって構築されたDNA配列を含むDNA配列であって、本発明の方法の手段によって検出され、選択され及び任意的にクローニングされるところの前記DNA配列を提供する。好ましくは、前記DNA配列は、表４Ａに記載されている配列又はそれらの機能的相同物を含む。表４に記載されている配列の機能的相同物は、表４（表４Ａ又は表４Ｂである）に与えられた情報で導出された配列である。例えば、表４に示された配列に又は配列から塩基を削除し、修飾し及び／又は挿入することによって表４における配列から導出されうる配列であり、ここで前記導出された配列は表４に記載されている配列の種類と同一の活性（しかし、必ずしも同じ量ではない）を含む。機能的相同物は、表４に記載されている配列の２又はそれ以上からの部分を含む配列である。合成DNA配列は、生物体に存在する配列から直接的に又は間接的に導出されない配列である。例えばショウジョウバエscsを含む配列又はscsの配列は、該scs又はscs配列が人工的に生成されたときであっても合成配列ではない。
【００１３】
１つの観点において、本発明はより高次の遺伝子調節の知識を増加すること並びにこの知識を利用するための手段及び方法に関連がある。シングル遺伝子の転写を指示し且つ調節するエレメント例えば古典的なプロモーター及びエンハンサーは特性が調べられているが、一方、染色体領域全体の遺伝子転写能力を支配するより高位の調節エレメントはまだ殆ど注意が払われていない。そのような高位エレメントに関連する我々の知識の殆どは、胚形成の研究からきている。胚形成の間、細胞は種々の発達経路に委ねられる。委ねられた後には、多くの細胞分割の後でさえも細胞はそれらの運命をめったに変化しない。
【００１４】
細胞型特異的遺伝子転写パターンの安定な伝達はプロモーターの文脈に依存しないが、その代わりにDNAの構造における変化に及びクロマチンと称される関係するタンパク質によって調整されることがだんだんに判ってきた。染色体レベルでの遺伝子調節は、DNAの修飾（例えば、メチル化）、ヒストンの修飾（例えばアセチル化及び又はメチル化）、及び離れた染色体のエレメント間での長い範囲の相互作用を包含する。
【００１５】
クロマチンテンプレートは、DNA、ヒストン及び非ヒストンタンパク質の高度に凝縮された複合体であり、それは核内にゲノム全体をパッケージすることができ且つ同時に特定の遺伝子の適切な転写を可能にする。真核細胞染色体は、遺伝子転写の活性のための均一のテンプレートではない。クロマチン及びクロマチン領域の種々の型は区別され得、それらは遺伝子転写に区別をつけて影響を与える。いわゆるヘテロクロマチン（heterochromatin）領域は「閉ざされた（closed）」クロマチン構造を識別し、一方、真正クロマチン（euchromatin）はより拡散し且つ「開いた（open）」クロマチン構造に関連する。真正クロマチン領域は、構造的な変化に賦され得、条件的ヘテロクロマチン（facultative heterochromatin）及び条件的真正クロマチン（facultative euchromatin）と言われる多かれ少なかれ凝縮された構造を生じる。条件的真正クロマチン又は条件的ヘテロクロマチンの形成は、クロマチンが仲介する遺伝子調節の潜在する機構を表わすと信じられており、遺伝子を細胞型特異的な様式で活性な又は抑制された状態に保持する。
【００１６】
全ての真核生物において、幾つかのクロマチンに関連付けられたタンパク質複合体が識別されており、それは細胞型特異性の維持に関係し、それらの１つはポリコーム−グループ（Pc-G）複合体である。Pc-G複合体は、遺伝子の安定な抑制に関係し、そこではクロマチン構造における変化は重要な役割を果たすと信じられている。同様に、トリソラックス（trithorax）グループ（TrG）と名付けられたタンパク質の第２のクラスが識別されており、それはPcGタンパク質の活性を妨げる。TrGタンパク質は、遺伝子の維持に関係する。それ故に、それらの個々の活性のモードに基づき、PcG及びTrGタンパク質は、遺伝子転写パターンの遺伝性の伝達にとって重要である細胞のメモリーシステムを表わす。
【００１７】
PcG及びTrG複合体がそれらの目標遺伝子にどのように関連付けられているかは、いまだ不明である。遺伝子研究は、遺伝子の転写的に不活性な状態を維持するシス（cis）活動調節配列（regulatory sequence）の特徴を調べた。これらのシス活動調節配列によって仲介されるサイレンシング（silencing）は、機能的PcGタンパク質の存在に依存し、それ故にこれらの配列はPcG応答エレメント（PcG response elements；PRE）と名付けられている。クロマチンのPcG仲介された抑制に関係する配列は識別されている。しかしながら（脊椎動物又は植物のいずれにおいても）クロマチンの抑制を仲介するために要求される全ての配列情報を含む完全なPREはまだ見つかってはいない。
【００１８】
加えて、コヒーレントな様式（coherent way）で長い範囲の抑制能力を有する配列を研究することはまだ可能ではない。これは、そのような長い範囲の活動配列を体系的にスクリーンすることが不可能であることに大部分拠る。１つの観点では、本発明はDNAにおけるそのような配列を体系的に検出するための手段及び方法を提供する。１つの実施態様では、本発明は、遺伝子転写抑制特性を有するDNA配列を識別するための方法であって、
テスト核酸の集合を用意すること、
プロモーターの転写制御下にあるテスト核酸及び第１のレポーター遺伝子を含む発現ベクターの集合を生成すること、
細胞に発現ベクターの前記集合を備えること、
それらの後代を含む細胞又はベクターを選択すること、ここで前記第１のレポーター遺伝子の転写は抑制されている、及び
前記細胞中の前記テスト核酸を識別すること、
を含む。前記識別されたテスト核酸は、前記プロモーター機能を抑制する能力を有し、従って遺伝子転写を抑制する特性を有する。好ましくは、前記識別されたテスト核酸はまた回収され且つクローニングされる。前記特性を有するDNA配列の不存在下におけるレベルと比較して、前記プロモーターに物理的にリンクされた場合、前記特性は前記プロモーターからの転写のレベルを減少する能力を少なくとも一部分含む。好ましい実施態様では、前記遺伝子転写抑制特性は、遺伝子転写を抑制するクロマチン特性を有する。すなわち、転写のレベルの前記減少は、遺伝子転写を抑制する構成を有するクロマチンの結果である。この構成は好ましくは、前記プロモーターを包含する。しかしながら、前記構成がエンハンサーなどを包含することもまた可能であり、それによって前記プロモーター上で前記エンハンサーの転写を助長する効果を少なくとも一部分不活性にする。特に好ましい実施態様では、遺伝子転写を抑制するクロマチン特性を有する前記DNA配列はポリコーム−グループ様応答エレメントを含む。
【００１９】
上記に記載された方法を使用して、プロモーターからの転写のレベルを減少する能力を含む幾つかの核酸配列及び従って遺伝子転写を抑制する特性を含む核酸配列を検索することが可能である。遺伝子転写を抑制する特性を有するエレメント例えばポリコーム−グループ様応答エレメントの１又はそれ以上のコンセンサス配列が推論されうるような配列類似性について、類似の機能を有する配列が互いに比較されうる。その上、生命体のゲノムの全体の配列が知られ且つ簡単に理解されることを考えると、これらのゲノム又はそれらの一部をスクリーンすること、及びゲノムにおけるこれらの配列の存在を予測することは可能である。ゲノム中の遺伝子転写を調節する特性及び／又は遺伝子転写を抑制する特性を含むDNA配列の存在及び配置の知識は、ゲノムにおける遺伝子転写のより高位の調節の我々の知識を大いに増加する。
【００２０】
ポリコーム−グループ応答エレメントは、前記エレメントを有する１つ又はそれ以上のポリコームグループタンパク質の直接的な及び／又は間接的な相互作用に応答してプロモーターからの転写を抑制することができるエレメントである。ポリコーム−グループ様応答エレメントは、ポリコーム−グループ応答エレメント又は代替的には前記エレメントを有する１つ又はそれ以上のタンパク質の直接的な及び／又は間接的な相互作用に応答してプロモーターの転写を抑制することができるエレメントである。ここで、前記１つ又はそれ以上のタンパク質は、ポリコームグループに属しないが、前記相互作用の結果、遺伝子転写を抑制するクロマチンが形成される。そのようなタンパク質の例は、クロマチンに関連付けられたタンパク質例えばヘテロクロマチンタンパク質１（HP1）（アイゼンベルグら、1990年）である。遺伝子活性を抑制するクロマチンに関連付けられた他のタンパク質は、メチル−CpG結合性タンパク質、MeCP2（ナンら、1997年）である。好ましい実施態様では、本発明のポリコーム−グループ様応答エレメントは、長い距離好ましくは2000塩基対よりも多くに亙ってプロモーターの転写を抑制する能力を有する（ファンデルフラッグら、2000年）。
【００２１】
テスト核酸の集合は、多くの方法で生成され得る。テスト配列として人工的な配列を使用し、遺伝子転写を抑制する特性のためのコンセンサス配列を得ることが可能である。異なる特性は異なるコンセンサス配列を含むことができる。好ましくは、前記集合は染色体のDNAから生成される。このようにして、染色体において自然に生じる配列を含む遺伝子転写を抑制する特性が見つけられる。これは、染色体におけるこれらの特性の位置が、前記位置におけるより高位の遺伝子転写に対するそれらの影響が消滅するとすぐに決定されうるという有利点を有する。
【００２２】
レポーター遺伝子は、その存在が細胞において直接的に又は間接的に検出されうるところの発現生成物をコードする遺伝子である。遺伝子転写を抑制する特性を検出するための方法では、細胞内への発現ベクターの転移（transfer）は、前記レポーター遺伝子の発現を導出する。しかしながら、テスト核酸が遺伝子転写を抑制する特性例えばポリコーム−グループ様応答エレメントを含む場合、発現は前記細胞において抑制され、それによって前記レポーター遺伝子の少なくとも部分的に減少した発現を導出する。従って、前記プロモーターの転写を抑制することが可能な核酸の存在又は非存在は、前記細胞における前記発現生成物を検出することによって検出され得、それによって減少した検出又は非検出が遺伝子転写を抑制する特性の存在を示す。レポーター遺伝子は、蛍光レポータータンパク質をコードし得る。すると、減少した発現は蛍光手段によって例えばフローサイトメーター（flow cytometer）において検出され得る。蛍光を示さない又は低い蛍光を示す細胞は、蛍光活性化細胞ソーター（a fluorescence activated cell sorter）及び発現ベクター及び／又は例えば増幅反応の手段によって単離されたテスト核酸を使用しソートされ得る。好ましくは、前記第１のレポーター遺伝子は選択可能なレポーター遺伝子を含み、その発現は前記細胞に前記第１のレポーター遺伝子の低いレベルを発現しない又は低いレベルで発現する細胞全体にわたって少なくとも成長不利点を直接的に又は間接的に備える。遺伝子転写を抑制する特性を有するDNA配列についてスクリーンされる場合、前記第１レポーター遺伝子の発現は好ましくは直接的に又は間接的に前記細胞に対して毒性である。そのような毒性発現生成物の非限定的な例は、リシン（ricin）又はそれらの毒性変異体である。他の例では、前記第１のレポーター遺伝子は、アポトーシスを誘発する遺伝子生産物をコードする。好ましくは、前記アポローシスを誘発する遺伝子生産物は、アデノウィルス（adenovirus） 13S E1A又はそれらの機能的等価体である（ブレッケンリッジ及びショール、2000年）。他の実施態様では、前記アポトーシスを誘発する遺伝子生産物は、アポプチン（apoptin）又はそれらの機能的等価体を含む（ピーターセン及びノートボーン、2000年）。
【００２３】
他の例はいわゆる自殺遺伝子生産物例えば単純ヘルペスウィルスチミジンキナーゼ（HSV-tk）をコードする遺伝子である。HSV-tkを発現する細胞の培地へのガンシクロビル（gancyclovir）の添加は、これらの細胞において毒性物質の形成を生じ、それ故にこれらの細胞を殺す。特に好ましい実施態様では、前記自殺遺伝子はシトシンデアミナーゼ（cytosine deaminase）を含む。シトシンデアミナーゼはシトシンをウラシルに転化する。この酵素活性は、原核生物及び低度の真核生物において見つけられ、しかし高度の真核生物においては存在しない。該遺伝子は、プロドラッグ５−フルオロシトシン（5-FC）と組み合わせて代謝性自殺遺伝子として使用される。シトシンデアミナーゼは、非毒性５−FCを５−フルオロウラシルに転化することができ、それはDNA合成を妨害することによって細胞を殺し、それによってアポトーシスを引き起こす（ミューレンら、1992年；ウェイ及びフーバー、1996年）。
【００２４】
前記第１のレポーター遺伝子の転写を制御するプロモーターは、活性である又は前記細胞内で活性化され得る任意のプロモーターであり得る。特定のプロモーターを選択することによって、遺伝子転写を抑制する特性例えば前記特定のプロモーターの転写を抑制することができるポリコーム−グループ様応答エレメントを選択することが可能である。このようにして、前記特定のプロモーターが属するところのプロモーターのクラスを特異的に抑制する特性を選択することが可能である。好ましい実施態様では、前記プロモーターは、これを含む細胞にシグナルを備えると、前記プロモーターの活性が誘発されうるところのプロモーターを含む。そのような誘発性プロモーターは好ましくは、テトラサイクリン応答性プロモーターを含む。該シグナルはここでは、テトラサイクリン、ドキシサイクリン及び等価な化合物である。そのようなプロモーターは、真核生物細胞においてテトラサイクリン応答性にまた適合されうる（インら、1996年）。テトラサイクリン又はそれらの等価物を添加すると遺伝子の発現を誘発し又は抑制するプロモーター及び処理する分子は入手可能である。
【００２５】
本発明の発現ベクターでトランスフェクションされた細胞は、典型的に低い頻度で且つ遺伝子転写を抑制する特性を有するDNA配列の存在に関連付けられない理由のために、前記第１のレポーター遺伝子の発現生成物の検出可能な量を発現しない。これは例えば、前記第１のレポーター遺伝子のコード配列を破壊する組み換え事象に拠ることができる。本発明の好ましい実施態様では、発現ベクターの前記集合は、第２のレポーター遺伝子をさらに含む。前記第２のレポーター遺伝子の発現は好ましくは、第２のプロモーターの制御下である。前記第２のレポーター遺伝子の発現生成物の発現の検出のための方法は、前記テスト核酸の発現を抑制する活性を確認するために使用され得、それによって前記第１のレポーター遺伝子を誤って表わさない細胞の数の少なくとも一部を減少する。好ましい実施態様では、前記第２のレポーター遺伝子は発現カセットを含む細胞を選択するために使用される。このようにして、前記発現カセットを含まない細胞は、容易に無視されうる。この目的を達成するために、前記第２のレポーター遺伝子の発現生成物は好ましくは、ポジティブ優性選択可能なレポーター遺伝子を含む。好ましくは、前記ポジティブ優性選択可能なレポーター遺伝子は、さもなくば毒性化合物に対する耐性を付与することが可能な発現生成物をコードする。非限定的な例は、G418耐性及びハイグロマイシン耐性である。
【００２６】
遺伝子転写を抑制する特性は転写を抑制することができることを考慮すると、この実施態様では、発現ベクターは、遺伝子転写を調節する特性を有して、遺伝子転写を抑制する特性を有するDNA配列の転写抑制効果を妨害することを出来る少なくとも１つのDNA配列をさらに含むことが好ましい。発現ベクターにおける前記転写を妨害するエレメントの配置は好ましくは、それが前記第２のレポーター遺伝子の転写のレベルに対する前記遺伝子転写を抑制する特性の低減する効果を効率的に邪魔するようなものである。好ましい実施態様では、遺伝子転写を調節する特性を有する前記DNA配列は、前記第１のレポーター遺伝子及び前記第２のレポーター遺伝子を含む発現カセットを機能的に分離する。好ましくは、前記第２のレポーター遺伝子（及び前記第２のレポーター遺伝子の転写を制御するプロモーター）は、遺伝子転写を調節する特性を有するDNA配列によって両側を挟まれる。遺伝子転写を調節する特性を有するDNA配列の例は、表１及び表２にリストされたいわゆるSTARエレメントである。
【００２７】
本発明の方法は、遺伝子転写を調節する特性及び／又は遺伝子転写を抑制する特性を有する多くのエレメントのクローニング及び識別をもたらす。そのようなエレメントは、前記特性を実行する際に役立たない例えば遺伝子転写を抑制するクロマチンの形成に関係しない無関係な核酸を含んでもよい。そのようなエレメントにおける機能的配列は、当業者に知られている種々の方法によって描写され得る。１つの実施態様では、削除及び／又は置換は、遺伝子転写を調節する特性又は遺伝子転写を抑制する特性を有するDNA配列においてなされる。そのようにして修飾されるDNAは、本発明の方法で活性の試験をされる。これは、シングル修飾された核酸を使用し又は前記修飾された核酸を含むテスト核酸の集合を生成することによって行われうる。本発明のDNA配列内の機能的配列の説明は、遺伝子転写を調節する特性及び／又は遺伝子転写を抑制する特性を有するエレメントのためのコンセンサス配列の説明を可能にする。それぞれが種々の機能性及び発現パターンを含む幾つかのポリコーム−グループ様複合体があることを考慮すると、コンセンサス配列の１より多い型が本発明の方法で見つけられることが予想される。同じように、コンセンサス配列の１より多い型が遺伝子転写を調節する特性を含むエレメントのために見つけられることが予想される。従って、本発明は、遺伝子転写を調節す特性及び／又は遺伝子転写を抑制する特性を有する単離された及び／又は組み換えられた核酸例えばポリコーム−グループ様応答エレメントのライブラリーをさらに提供する。１つの実施態様では、前記ライブラリーは、同一のコンセンサス配列を含む単離された及び又は組み換えられた核酸を含む。好ましい実施態様では、前記ライブラリーは、コンセンサス配列の１より多い型を含む。前記ライブラリーは例えば、所与のDNA分子がDNAを調節する特性を有するかどうかを決定するために使用されうる。好ましい実施態様では、前記ライブラリーは、遺伝子転写を助長する機能を有する全てのエレメントを本質的に含み、該エレメントは、染色体の安定な遺伝子転写特性及び／又は遺伝子転写抑制特性を有するエレメント例えばポリコーム−グループ様応答エレメントを含む。染色体上のこれらのエレメントの配置に対する知識とともに、このことは前記染色体上に自然に存在する遺伝子の遺伝子発現のより高位の調節のための及び組み換え手段によって前記染色体中に導入された遺伝子（外来核酸）のための予測を行うことを当業者に可能にする。そのような予測は例えば、外来DNAの挿入のために前記染色体上に安定な候補位置を選択するために使用されうる。適切な位置は、或る細胞、細胞型及び／又は組織において特異的に発現されることを期待される位置であり得る。好ましくは、前記染色体は、21番染色体又は22番染色体を含む。特に好ましい実施態様では、細胞において遺伝子転写を調節する特性又は遺伝子転写を抑制する特性を有する全てのDNA配列が、ライブラリーにある。この実施態様では、ゲノム全体が、適切な候補位置の予測のために使用されうる。１つの実施態様では、前記ライブラリーは、植物からヒトに亙る種々の異なる細胞株において生成されている。種々の細胞株及び／又は種（species）において、遺伝子転写を抑制する特性を有するDNA配列と相互作用することが可能な種々のタンパク質（又はタンパク質複合体）が発現され、遺伝子転写を抑制する特性を有する種々のDNAエレメントをもたらす。同様に、遺伝子転写を調節する特性を有するDNA配列と直接的に又は間接的に相互作用する種々のタンパク質が発現されるであろう。それ故に、ライブラリーの作成は、細胞型依存性であり且つ関連したタンパク質の存在に依存する。これはまた、ポリコーム−グループ様応答エレメントの場合でもある。HP1が細胞型１（celltype one）において発現される場合、HP1に依存するエレメントは本発明の方法によって検出されるであろう。HP1が細胞型２（cell type two）において発現されない場合、本発明の方法は、細胞型１から回収されたエレメントを検出しないであろう。
【００２８】
本発明の１つの観点では、前記ライブラリーは、遺伝子転写を抑制するクロマチンの形成を少なくとも一部を妨げることが可能な少なくとも一つのエレメントを含む。染色体又はゲノム上の遺伝子転写を抑制する特性を有するDNA配列の位置の知識とともに、そのように妨げるエレメントの位置の知識は、前記染色体又はゲノムにおいて（挿入された）遺伝子の遺伝子転写のより高位の調節のより正確な予測を可能にする。好ましくは、前記ライブラリーは他の転写調節エレメント例えばエンハンサー及びサイレンサーをさらに含む。そのような配列はより高位の遺伝子調節に限定的影響を有しているけれども、そのような他の配列の位置についての情報は、その中に導入された外来配列の発現のためのゲノムにおける適切な位置についての予測の正確性をさらに増加する。好ましくは、前記ライブラリーは、遺伝子転写を調節する特性を有する全てのDNA配列及び／又は染色体の全ての他の調節配列を本質的に含む。
【００２９】
染色体がすでに何千万の塩基から典型的に成ることを考慮すれば、ライブラリーが高位の遺伝子調節を与えうるところの情報は少なくとも部分的に自動化されたシステム内に組み入れられることが好ましい。
【００３０】
本発明のライブラリーの他の使用は、染色体上の配列の目的の修飾、たとえば、「より高位の」調節配列が変異された後の遺伝子の転写に対する予測の生成である。例えば、本発明の１つ又はそれ以上のポリコーム−グループ様応答エレメント、及び／又は前記染色体上の他の調節エレメントが変異されうる。このことは、ポリコーム−グループ様応答エレメント及び／又は他の発現を調節するエレメントの近傍にある遺伝子の転写レベルを変化させると予期される。
【００３１】
本発明のライブラリー又はシステムのまた別の使用は、ゲノムにおける変異から生じる遺伝子発現の予測である。変異が変更された遺伝子転写を生じる場合には、そのような変更された遺伝子転写の検出は、前記自然に生じる変異の存在を示すことができる。このアプローチは、例えば診断用アッセイにおいてテストされるべき配列又はタンパク質の数を制限する際に使用される。このことは、マイクロアレイアプローチにおいて特に重要である。なぜならば、これらのアプローチにおいて、試験されるべき発現された配列の数はアレイが最大に保存できる配列の数によって制限されるからである。本発明の手段及び方法を用いて、マイクロアレイアプローチにおいてテストされるべき配列の数を制限することが可能である。
【００３２】
本発明のシステム又はライブラリーのまた別の使用は、薬のターゲットの発見である。調整エレメント（それらが「より高位の」エレメントか又はそうでなくとも）は、それらに結合できる蛋白質（複合体）の故に機能する。本発明のシステムは、特定のタンパク質（複合体）の結合を又は機能を妨げないための薬のターゲティングが特定の遺伝子の代替の発現の見込みを有するかどうかを決定するために使用されうる。
【００３３】
本発明は、本発明の方法によって取得可能な遺伝子転写を抑制する特性を有するDNA配列をさらに提供する。好ましい実施態様では、遺伝子転写を抑制する特性を有する前記DNA配列は、脊椎動物又は植物から得られる。より好ましくは、遺伝子転写を抑制する特性を有する前記DNA配列は、表４Ｂに従う配列又はそれらの機能的相同体を含む。DNA構築物に本発明のDNA配列を備えること又はそのようなDNA配列を修飾することもまた可能である。好ましい実施態様では、目的の核酸に動作可能にリンクされたプロモーターを含むDNA構築物が用意される。好ましくは、遺伝子転写を調節する及び／又は抑制する特性を有する前記DNA配列の活性の特性の量が、前記プロモーターと比較して前記構築物内での前記DNA配列の方向に依存する。好ましくは、前記遺伝子転写を調節する及び／又は抑制する特性がシグナルの存在に依存する。好ましくは、前記シグナルがDNA結合性タンパク質（DNA-binding protein）を含む。好ましくは、前記シグナルがヒト免疫不全ウィルスTATタンパク質（a human immuno-deficiency virus TAT protein）を含む。
【００３４】
遺伝子転写を調節する特性又は遺伝子転写を抑制する特性を有するDNA配列の使用の一つは勿論、目的の遺伝子の転写の調節である。目的の遺伝子の転写は、前記特性を有するDNA配列が備えられ又は除去されるように前記遺伝子の近傍において配列を変更することによって変更されうる。特定の発現特徴は、遺伝子転写を調節する特性及び／又は遺伝子転写を抑制する特性を有するDNA配列（の一部）を結合することによって設計されうる。例えば、発現ベクターにおける安定な遺伝子転写特性を有する配列の複製は、ターゲット細胞における前記ベクターの導入に応答して、前記ターゲット細胞又は後代における発現の改善された安定性を導出する。遺伝子転写を調節する特性を有するDNA配列を結合することによって、変更された遺伝子転写調節特性は、種類若しくは量又は両方で生成されうる。
【００３５】
望ましい遺伝子転写を調節する特性及び／又は遺伝子転写を抑制する特性を有するDNA配列を設計することもまた可能である。他のタンパク質及びDNA配列とともにDNA結合性タンパク質は、DNA配列の特性を決定する。１つ又はそれ以上の他のタンパク質結合DNA配列を、ある特性を有するDNA配列内に挿入することが可能である。結合性タンパク質の結合を可能にすることによって、該特性を妨げる又は指示することが可能であり、その結果設計者の特性を有するDNA配列の生成を可能にする。特定の遺伝子転写を調節する特性及び／又は遺伝子転写を抑制する特性を有するDNA配からタンパク質結合部位を除去することも勿論また可能であり、それによって生じたDNA配列の特性を変更する。付加と除去の組み合わせが、また可能である。特定の遺伝子転写を調節する特性及び／又は遺伝子転写を抑制する特性は、本発明において記載された検出方法を調整することによって選択可能であり得る。例えば、誘発可能な遺伝子転写調節特性及び／又は遺伝子転写抑制特性を有するDNA配列を合成することが可能である。例えば遺伝子転写を抑制する特性を有するDNA配列にTAT結合性エレメントを含めることによって、TATを含む細胞において遺伝子転写を抑制する特性を少なくとも一部不活性にすることが可能である。同様に、シグナルの不存在下又は存在下においてそれらのターゲット配列にのみ結合する利用可能なDNA結合性タンパク質がある。そのようなタンパク質の非限定的な例は、TETリプレッサー及びそれらの種々の変異体、lac−リプレッサー、ステロイドホルモン受容体、レチノイン酸受容体及び誘導体である。細胞型特異的な遺伝子転写調節特性及び／又は遺伝子転写抑制特性を有するDNA配列を設計することが例えば可能である。例えば、上記したTAT例の場合である。言及されるDNA配列は、TATを発現するHIV感染した細胞に特異的にされうる。あるいは、DNA配列は細胞型特異的な様式で発現されるタンパク質複合体に特異的に作成されうる。
【００３６】
遺伝子転写を調節する特性及び／又は遺伝子転写を抑制する特性を有するDNA配列を含む発現構築物は、前記発現構築物の１より上のコピーを含む細胞内で前記構築物から発現を得るために適切である。発現構築物が前記細胞のゲノムにおいて存在する場合及びまた発現カセットが前記細胞中において１より上のコピーで存在する場合もまたである。その上、それらは、１つより上のコピーにおいて同一の位置内に統合された場合にさえ働く。
【００３７】
本発明の好ましい実施態様では、遺伝子転写を調節する特性を有する前記DNA配列は、いわゆるSTAR（Stabilizing Anti-Repression：安定化抗抑制）配列を含む。本明細書中で使用されるSTAR配列という語は、記載された遺伝子転写を調節する特性の１又はそれ以上を有するDNA配列を言う。
【００３８】
いくつかの方法が、ある共通の特性を共有するDNA配列のファミリーから配列識別子を抽出するために当業者にとって利用可能である。そのような配列識別子は次に、１つ又はそれ以上の識別子を共有する配列を識別するために使用され得る。そのような１つ又はそれ以上の識別子を共有する配列は、同じファミリーの配列のメンバーである可能性が高い、すなわち、ファミリーの共通の特徴を共有する可能性が高いようである。本明細書では、STAR活性を有する非常に多くの配列（いわゆるSTAR配列）が、STAR活性を有する配列に特徴的である配列識別子（パターン）を得るために使用された。これらのパターンは、テスト配列がSTAR活性を含んでいる可能性があるかどうかを決定するために使用されうる。従って、１つの観点から、本発明は、約50〜5000塩基対の核酸配列内のSTAR配列の存在を検出するための方法であって、前記配列における少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度を決定し、そして出現の頻度がSTAR配列を含む少なくとも１つの配列における前記少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度を表わすことを決定することを含む、前記方法を提供する。原則的に、配列パターンがSTAR配列を表わすかどうかを決定するための任意の方法が適している。多くの種々の方法が、当業者にとって利用可能である。本発明の好ましい実施態様では、出現の頻度が、STAR配列を含む少なくとも１つの配列における前記少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度を表わすことを決定する前記ステップが、前記少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度が、前記少なくとも１つのSTAR配列及び少なくとも１つの制御配列の間で有意に異なることを決定することを含む。原則的に、任意の有意な相違が、STAR配列の存在のために識別力がある。しかしながら、特に好ましい実施態様では、前記少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度が、前記少なくとも１つの制御配列と比較して、STAR配列を含む前記少なくとも１つの配列において有意に高い。STAR配列を含む相当多くの配列が、本発明で識別されている。パターンが制御配列とSTAR配列を含む配列とを区別する際にいかに有効であるかをテストするためにこれらの配列を使用することが可能である。いわゆる判別式分析（discriminant analysis）を使用して、一つの種（species）におけるSTAR配列の任意のセットに基づき、最適な判別配列（discriminative sequence）パターン又はそれらの組み合わせを決定することが可能である。従って、好ましくは前記パターンの少なくとも１つが、STAR配列を含む前記少なくとも１つの配列と制御配列との間の所望の及び好ましくは最適の判別に基づいて選択される。所望の判別は、バイオインフォマティックスを通じて前記パターンに関連づけられた或る重みファクターであり得る。
【００３９】
好ましい実施態様では、テスト核酸における配列パターンの出現の頻度は、STAR配列を含むことが知られている配列における出現の頻度と比較される。この場合において出願の頻度が同様である場合、パターンはSTAR配列を含む配列を表わすと考えられる。好ましい実施態様では、他の基準が使用される。STRA配列を含む配列においてパターンの出現の頻度が、制御配列における前記パターンの出現の頻度と比較される。該2つの頻度を比較することによって、各パターンについて決定し、STAR配列を含む配列における前記頻度が制御配列における頻度と有意に異なるかどうかをその後分析する。この実施態様では、もしSTAR配列を含む少なくとも１つの配列においてパターンの出現の頻度が制御配列における同じパターンの出願の頻度と有意に異なる場合、配列パターンは、STAR配列を含む配列を表わすと考えられる。STAR配列を含む配列の多くの数を使用することによって、統計的な相違が確立されうるところのパターンの数が増加し、その結果出現の頻度がSTAR配列を含む配列を表わすところのパターンの数を増大する。好ましくは、出現の頻度はSTAR配列を含む少なくとも2配列における、より好ましくはSTAR配列を含む少なくとも5配列における前記少なくとも１つの配列パターンの出願の頻度を表わす。より好ましくは、STAR配列を含む少なくとも10配列におけるものである。より好ましくは、出現の頻度は、STAR配列を含む少なくとも20配列における少なくとも１つの配列の出現の頻度を表わす。特に好ましい実施態様では、出現の頻度はSTAR配列を含む少なくとも50配列における前記少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度を表わす。STAR配列を含む配列を表示するところのパターンは使用される制御核酸の型にまた依存する。使用される制御配列の型は好ましくは、STAR配列の存在が検出されるべきであるところの配列に基づき選択される。好ましい実施態様では、前記制御配列が、STAR配列を含む前記少なくとも１つの配列と類似のAT/CG含量を有するランダム配列を含む。他の好ましい実施態様では、制御配列は、前記STAR配列を含む前記配列のように同じ種から得られる。例えば、テスト配列が、植物細胞において活性である、STAR配列の存在を検査される場合、制御配列は好ましくは植物細胞からまたその後取得される。同様に、ヒト細胞におけるSTAR活性をテストするために、制御核酸が好ましくは、ヒトゲノムからまた取得される。好ましい実施態様では、制御配列は、STAR配列を含む前記少なくとも１つの塩基の50%〜150%を含む。特に好ましい実施態様では、前記制御配列は、STAR配列を含む前記少なくとも１つの塩基の90%〜110%を含む。より好ましくは、95%〜105%である。
【００４０】
パターンは、2よりも多い任意の数の塩基を含む。好ましくは、少なくとも１つの配列パターンは少なくとも5を含み、より好ましくは少なくとも6である。他の実施態様では、少なくとも１つの配列パターンは少なくとも8塩基を含む。好ましい実施態様では、前記少なくとも１つの配列パターンは、表９及び／又は表１０にリスとされたパターンを含む。パターンは、塩基の連続したリストから成ってもよい。しかしながら、該パターンは、判別できない又は部分的にのみ判別できる多くの塩基によって１つ又はそれ以上の回数を妨害される塩基をもまた含んでもよい。部分的に判別的な塩基は例えば、プリン（purine）として示される。
【００４１】
好ましくは、STAR活性の存在は機能的アッセイを使用して検証される。幾つかの方法は配列がSTAR活性を含むかどうかを決定するために明細書中に示される。STAR活性は、前記配列が次の機能の少なくとも１つを実行することができる場合に確認される：（i）本発明の遺伝子転写を抑制するエレメントを含む配列の効果を少なくとも部分的に阻害する、（ii）クロマチンに関連づけられた抑制を少なくとも部分的にブロックする、（iii）エンハンサーの活性を少なくとも部分的にブロックする、（iv）同一の核酸のみと比較して転写ユニットをコードする核酸に動作可能にリンクされることに応答して与える、（iv-a）転写のより高い予測可能性、（iv-b）より高い転写、及び／又は（iv-c）長期にわたる転写のより高い安定性。
【００４２】
本発明において識別されるSTAR活性を含む非常に多くの配列は、種類において同じであり量において必ずしも必要でない同じ活性を含む配列を生成し且つ識別するために広い種々の可能性を開く。例えば、本発明において識別された配列を変更し、且つ変更された配列のSTAR活性を試験することは当業者の範囲内であることは知られている。変更は、配列における１つ又はそれ以上の削除、挿入及び変異を含みうる。
【００４３】
STAR活性を含む配列は、400塩基の広がりで識別された。しかしながら、それら400塩基の全てがSTAR活性を保存するために必要とされるのではないことが予測される。400〜5000塩基のフラグメントに対して或る特性を与える配列を区切るための方法は、よく知られている。STAR活性を含むフラグメントの最小配列長は、約50塩基であると見積もられる。
【００４４】
表９及び表１０は、STAR活性を含む核酸分子において過剰に表わされているために見つけられている6塩基のパターンをリストする。この過剰の表現は、STAR配列を表わすと考えられている。該表は、65個のSTAR配列のファミリーのために生成された。同様の表が異なるセットのSTAR配列から又はより小さい若しくはより大きいセットのSTAR配列から開始して生成されうる。それがSTARエレメントを含まない配列と比較して前記STAR配列において過剰に表わされているならば、パターンはSTAR配列を表わす。これは、ランダム配列でありうる。しかしながら、関連していない偏見を排除するために、STAR配列を含む配列は好ましくは、ゲノム又はそれらの重要な部分と比較される。好ましくは脊椎動物又は植物のゲノム、より好ましくはヒトゲノムである。ゲノムの重要な部分は例えば、染色体である。好ましくはSTAR配列及び前記制御配列を含む配列は、同一の種の核酸から取得される。
【００４５】
多くのSTAR配列は、配列パターンの出現の頻度、過剰又は低度に表わされているパターンのSTARの多くの代表の決定のために使用される。核酸によって発現されうる多くの官能性特性がそれに結合するプロテイン性分子によって介在されることを考慮すると、代表パターンはSTAR配列において過剰に表わされることが好ましい。そのように過剰に表わされるパターンは、そのようなタンパク質性分子のための結合部位の一部分であり得る。好ましくは出現の頻度は、STAR配列を含む少なくとも2配列における、より好ましくはSTAR配列を含む5配列における前記少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度を表わす。より好ましくはSTAR配列を含む少なくとも10配列である。より好ましくは出現の頻度は、STAR配列を含む少なくとも20配列における前記少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度を表わす。特に好ましい実施態様では、出現の頻度はSTAR配列を含む少なくとも50における前記少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度を表わす。好ましくは、STAR配列を含む前記配列は、図２６に記載されている配列の少なくとも１つを含む。
【００４６】
STAR活性は、図２６にリスとされた配列によって共有される特性である。しかしながら、これは、それらが同一の識別子配列を全て共有しなければならないことを意味しない。異なる識別子が存在することは確実に可能性がある。識別子は、それを含むフラグメント上の共通の特性を与えてもよく、しかしながらこれはそのように必要ではない。
【００４７】
配列パターン又はパターンの出現の頻度を決定するためのSTAR活性を含む多くの配列を使用することによって、そのようなSTAR配列において存在する又は存在しない他よるもよりしばしば多いパターンを選択することが可能である。この方法において、STAR配列において非常にしばしば過剰に表わされている又は低度に表わされているパターンを見つけることが可能である。しばしば過剰に又は低度に表わされているパターンは、テストセットにおける候補STAR配列を識別するようである。過剰に又は低度に表わされているパターンの他の方法は、パターン又はパターンの組み合わせが配列におけるSTARを識別するために最も適されていることを決定する。いわゆる判別可能な統計を使用して、我々はSTARエレメントを含む配列を識別する際に最も実行するパターンのセットを識別している。好ましい実施態様では、STAR配列を検出するための前記少なくとも１つの配列パターンが、配列パターンGGACCC、CCCTGC、AAGCCC、CCCCCA及び／又はAGCACCを含む。他の実施態様では、STAR配列を決定するための前記少なくとも１つの配列パターンが、配列パターンCCCN{16}AGC、GGCN{9}GAC、CACN{13}AGG及び／又はCTGN{4}GCCを含む。
【００４８】
STAR配列のリストは、それらの中に１つ又はそれ以上のコンセンサス配列を検出するためにまた使用されうる。それ故に、本発明はSTARエレメントのためのコンセンサス配列をまた提供する。このコンセンサス配列は勿論、テスト配列において候補STARエレメントを識別するために使用されうる。
【００４９】
その上、一端STARエレメントを含む配列が脊椎動物において識別されていると、それは脊椎動物に属する他の種におけるSTARエレメントを含む配列を識別するために配列相同性の手段によって使用されうる。好ましくは、哺乳動物のSTAR配列が、他の哺乳動物種におけるSTAR配列をスクリーンするために使用される。同様に一端STARエレメントを含む配列が植物種内で識別されていると、それは他の植物種における同様の機能を有する相同性配列をスクリーンするために使用されうる。１つの観点における本発明は、本発明に従う方法によって取得可能なSTAR配列を提供する。さらにSTAR配列の集合が提供される。好ましくは前記STAR配列は、脊椎動物又は植物STAR配列である。より好ましくは、前記STAR配列は、哺乳動物STAR配列又は被子植物（単子葉植物例えば稲、又は双子葉植物例えばアラビドプシス（Arabidopsis））である。より好ましくは、前記STAR配列は、霊長類及び／又はヒトSTAR配列である。
【００５０】
STAR活性を含む配列のリストは、テスト配列がSTARエレメントを含むかどうかを決定するために使用されうる。上記したように、この目的のためのそのようなリストを使用するための多くの種々の方法がある。好ましい実施態様では、本発明は約50〜5000塩基対の核酸配列がSTAR配列を含むかどうかを検出するための方法であって、前記方法は本発明のSTAR配列の集合における前記パターンの出現の頻度を含む配列パターンの第１のテーブルを生成すること、少なくとも１つの参照（reference）配列における前記パターンの出現の頻度を含む前記パターンの第２のテーブルを生成すること、出現の頻度が前記２つのテーブル間で異なるところの少なくとも１つのパターンを選択すること、前記選択されたパターンの少なくとも１つの出現の頻度を約50〜5000塩基対の核酸配列において決定すること、及び前記テスト核酸における出現の頻度がSTAR配列の前記集合物における前記選択されたパターンの出現の頻度を表わすかどうかを決定することを含む、前記方法を提供する。
【００５１】
代替的に、前記決定することは前記テスト核酸における出現の頻度がSTAR配列の前記集合物における前記選択されたパターンの出現の頻度を表わすかどうかを決定することを含む。好ましくは、前記方法は、前記候補STARが本発明の方法を使用し遺伝子を調節する特性を有するかどうかを決定することをさらに含む。好ましくは、STARの前記集合物は、図２６に記載されているような配列を含む。
【００５２】
他の観点において、本発明は、本発明の方法によって取得されるSTAR配列を含む単離された及び／又は組換えられた核酸配列を提供する。
【００５３】
上記したように、STAR配列は指向的な様式で、すなわち、それを含むフラグメントの１つの側に向って、他の側に向ってよりも多く、その活性を発揮することができる。。STAR活性は、STARエレメントの数を複製することによって多量に増幅されうる。後者は、STARエレメントがSTAR活性を含む１つ又はそれ以上のエレメントを含んでもよいことを示唆する。それを含むフラグメント上にSTAR活性を与えることが可能な配列を識別する他の方法は、脊椎動物又は植物配列、STAR活性を含む配列からの選択を含み、そして選択された配列の隣接配列が他の種において保存されるかどうかを識別することを含む。そのような保存された隣接配列は、機能的配列（functional sequences）である可能性が高い。１つの観点から、それ故に本発明は、STARエレメントを含む脊椎動物又は植物種からの約50〜5000塩基対の配列を選択すること、及び前記種において前記選択された配列の隣接配列が少なくとの１つの他の種において保存されるかどうかを識別することを含む方法を提供する。それ故に本発明は、約50〜5000塩基対の核酸配列内のSTAR配列の存在を検出する方法であって、一つの種（species）の細胞の染色体の一部分におけるSTAR配列を含む配列を識別すること、そして前記配列及び異なる種の染色体の配列との間の重要な相同性を検出することを含む方法を提供する。好ましくは、前記種は、植物又は脊椎動物種を含み、好ましくは哺乳動物種である。本発明は脊椎動物種又は植物種の約50〜5000塩基対の核酸配列内のSTARエレメントの存在を検出するための方法であって、前記核酸配列の隣接配列が少なくとも１つの他の種に保存されるかどうかを識別することを含む、前記方法をまた提供する。
【００５４】
バイオインフォマティクス的な情報を使用し、STAR配列を含む配列の存在を検出するための本発明の方法はその性質として反復可能であることに注目することは重要である。STAR配列を含む多くの配列が、本発明の方法で識別され、多くのパターンがSTAR配列を含む配列と制御配列との間で判別可能であることが見い出された。これらの新規に見つかった判別可能なパターンを使用して、STAR配列を含む多くの配列が識別され、その結果それは判別可能であるパターンのセットなどを増加する。この反復性の観点は、本発明において提供される方法の重要な観点である。
【００５５】
配列に関連する用語「特性」は、前記配列の活性を云う。明細書中で使用される用語「STAR」、「STAR配列」又は「STARエレメント」は、上記した遺伝子転写を調節する特性の１つ以上を有するDNA配列を云う。用語「SINC」又は「SINCエレメント」（下記にリストされている）は、上記した遺伝子転写を抑制する特性の１つ以上を有するDNA配列を云う。本明細書中で使用される用語「DNA配列」は、別記しない限りは、塩基の特定の順序のリストを云うのではなく、DNAの物理的な片を云う。DNA配列に関連して転写特性は、前記DNA配列が目的の遺伝子の転写について有する効果を言う。本明細書中で使用される「特性」（quality）は、転写システムにおける核酸又はタンパク質の検出可能な特性又は属性を云う。
（実施例）
【実施例１】
【００５６】
STARエレメント及びSINCエレメントを単離する方法
物質及び方法：
プラスミド及び菌株
STARエレメントのための選択ベクター、pSelect-SV40-zeo（「pSelect」、図１）は、次のようにして構築される：pREP4ベクター（Invitrogen V004-50）が、プラスミドバックボーンとして使用される。それは、霊長類の細胞株における高いコピーのエピソーマル複製のために、複製のイプシュタイン（Epstein）バール（Barr）oriP起源及びEBNA-1核性抗原を提供し、；哺乳動物細胞における選択のために、チミジンキナーゼプロモーター及びポリアデニレーション部位を有するハイグロマイシン（hygromycin）耐性遺伝子に提供し；及び大腸菌における維持のために、アンピシリン耐性遺伝子及び複製のcolE1起源を提供する。ベクターは、XbaI及びNheI制限部位の間に４つの連続したLexAオペレーター部位を含む（ブンケル及びキングストン、1994年）。LexAオペレーターとNheI部位の間に、次の制限部位から成るポリリンカーが埋め込まれた；HindIII-AscI-BamHI-AscI-HindIII。NheI部位とSalI部位の間に、SV40プロモーター及びポリアデニル化部位を有するゼオシン（zeocin）制限遺伝子があり、それはpSV40/Zeo（Invitrogen V502-20）から導出される；これは、STARスクリーンのための選択可能なマーカーである。
【００５７】
pSDHベクター（図２）は次のようにして構築される。pGL3-Control由来のルシフェラーゼレポーター遺伝子（Promega E1741）は、ＰＣＲによって増幅されそしてSacII/BamHI-消化されたpUHD10-3（ゴッセン及びビュヤード、1992年）内に挿入される。これはTet-Offプロモーターの制御下に及びSV40ポリアデニル化シグナルの上流にルシフェラーゼを配置する。複数のクローニング部位はPCRによって、Tet-Offプロモーター（MCSI,XhoI-NotI-EcoRI-SalI）の上流かつポリアデニル化シグナル（MSCII,NheI-BglII-EcoRV-HindIII）の下流に導入される。遺伝子ライブラリーは、プラセンタ（placenta）（Clontech 6550-1）から精製された又はバクテリア/P1(BAC/PAC)人工染色体内で運ばれたヒトゲノムDNAのSau3AI消化によって構築される。BAC/PACクローンは、1q12細胞発生の領域（クローン RP1154H19及びRP3328E19）からの又は異種再生の遺伝子のHOXクラスター（クローン RP1167F23、RP1170019及びRP11387A1）からのゲノムDNAを含む。該DNAはサイズで分画され、及び0.5〜２kbサイズフラクションは、標準の技術（サムブルックら、1989年）によって、BamHI−消化されたpSelectベクター内にライゲーションされる。
【００５８】
宿主株の構築は、記載されている（ファンデルフラッグら、2000年）。手短に言えば、それらはU-2 OSヒト骨肉腫細胞株（American Type Culture Collection HTB-96）に基づく。U-2 OSは、Tet-リプレッサーDNA結合性ドメイン及びVP16転写促進ドメインから成るタンパク質キメラをコードするpTet-Offプラスミド（Clontech K1620-A）で安定にトランスフェクションされる。該細胞株は次に、LexADNA結合性ドメイン、及びHP1又はHPC2（DNAにつながれた場合に遺伝子発現を抑制する２つのショウジョウバエポリコーム−グループタンパク質）のいずれかのコード領域を含む融合タンパク質遺伝子で引き続き安定的にトランスフェクションされる。LexA-リプレッサー遺伝子は、Tet-Off転写的調整システムの制御下である（ゴッセン及びビュヤード、1992年）。
【００５９】
ライブラリースクリーニング及び STAR エレメント特性
pSelectにおける遺伝子ライブラリーは、トランスフェクション試薬の提供者（Life Technologies）によって推奨されているように、リン酸カルシウム沈殿（グラハム及びファンデルイービー、1973年；ウィグラーら、1978年）によってU-2 OS/Tet-Off/LexA-リプレッサー細胞株内にトランスフェクションされる。トランスフェクションされた細胞は、ハイグロマイシン選択（25マイクロg/ml）及びテトラサイクリン抑制（ドキシサイクリン（doxycycline）、10ナノg/ml）下で、１週間（50% コンフルエンス（confluence））培養された。その後ドキシサイクリン濃度は、LexA-リプレッサー遺伝子を誘発するために0.1ナノg/mlにまで減少され、そして２日後にゼオシンが250マイクロg/mlまで添加された。細胞はさらに、（エンプティpSelectでトランスフェクションされた）コントロール培養がゼオシンによって殺されるまで、４〜５週間培養された。
【００６０】
ライブラリートランスフェクションからのゼオシン耐性コロニーは増殖され、且つプラスミドDNAは、標準技術（サムブルックら、1989年）によって、大腸菌内において単離され且つレスキューされる。レスキューされたDNA内における候補STARエレメントは、U-2 OS/Tet-Off/LexA-リプレッサーへの再トランスフェクション及びドキシサイクリン濃度の低下後に、制限エンドヌクレアーゼマッピング（サムブルックら、1989年）、DNA配列分析（サンガーら、1977年）によって且つSTAR活性（ゼオシン耐性）のために解析される。
【００６１】
ヒトゲノムにおける公知の配列に対応するDNA配列を有する候補STARエレメントは、ヒトゲノムデータベース（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/genome/seq/HsBlast.html、2001年6月20日）のBLAST調査（アルツシュルら、1990年）によって識別される。エレメントの染色体の位置が、反復DNAの比率及び近傍の遺伝子の識別とともに記録される。再トランスフェクション後に、STAR活性を示すそれらの候補は、pSDHプラスミド内にSTARフラグメントをサブクローニングすること及びU-2 OS染色体のDNA内への安定な組み込みによって更に特徴付けられる。pSDHプラスミドは、U-2 OS細胞内にpBABE-puro（モルゲンステレン及びランド、1990年）と共にトランスフェクションされ、且つピューロマイシン耐性について選択される。STARエレメント毎に、およそ30個の個々のクローンの個体群が分離され且つ培養される。クローンは、製造者の指示書（ロッシュ 1669893）に従いルシフェラーゼ活性を周期的にアッセイされる。
【００６２】
結果：
STARエレメント機能的特徴付け。ヒトゲノムDNA並びにHOX及び1q12座のスクリーンは、17個の正真正銘のSTARエレメントを生じた。基準は、（１）エレメントが、pSelectに基づくクローンを宿主U-2 OSヒト骨肉腫細胞株内に再トランスフェクションした後にSTAR活性を示した（初期スクリーンで発現される抗抑制活性はプラスミド特異的であり、且つ宿主細胞内における人工的な変化によるものではないことを示す）；（２）エレメントが、ヒトゲノム配列データベースにおける配列と一致するDNA配列を含む（クローンは例えばバクテリア起源又はベクター起源からの汚染するDNA配列を含まないことを示す）。
【００６３】
STARエレメントは、pSDHプラスミド内にサブクローニングされ、且つ宿主細胞ゲノム内に組み込まれる。レポーター遺伝子の発現は、ゲノム内にランダムに組み入れられた後にレポーター遺伝子をサイレンシングから防ぐためのSTARエレメントの能力を示すために安定なトランスフェクションの個体群においてアッセイされる。これは、（１）高発現を示すクローンの個体群の割合及び（２）STARエレメントによって導出された過剰発現の程度に対する情報を提供する。
【００６４】
クローンによるルシフェラーゼレポーター遺伝子の発現は、それがSTARエレメントを含まないプラスミドの平均レベル（参照レベル）のよりも2倍上である場合、有意であると考えられる。全てのプラスミドにとって、発現レベルにおける分散は、クローンの間で観察される：非発現から参照レベルより非常に上にまで発現する及び殆ど過剰発現しないから多く過剰発現するまで。優れたSTAR活性は、幾つかの高く過剰発現するクローンを含む多くの過剰発現するクローンをもたらすプラスミドによって明示される。
【００６５】
代表的な実験からの結果は、表１及び図３〜５に示される。
【００６６】
【表１】

ルシフェラーゼリポーター遺伝子の発現は、STARエレメントなし（「エンプティ（empty）」、ネガティブコントロール）又はSTARエレメントを含む（ポジティブコントロールエレメント、ショウジョウバエからのSCSを含む、）、組み込まれたpSDHプラスミドを含む細胞株において測定される。ネガティブコントロールの平均発現レベルは、参照レベルとして定義され、且つそれらの発現レベルが参照レベルの2倍よりも大きい場合、過剰発現であると考えられる。各プラスミドの過剰発現するクローンのパーセント、及び過剰発現倍数が、各プラスミドのために解析されたクローンの数とともに報告される。
【００６７】
結果は、テストされるヒトSTARエレメントが保護されていないレポーター遺伝子又はショウジョウバエSCSエレメント（ケルム及びシェドル、1992年）によって保護されたレポーター遺伝子よりもより高い割合の過剰発現クローンを生じることを示す。その上、これらのプラスミドによる過剰発現の程度は、保護されていない又はSCS保護されたレポーターよりもSTAR保護されたレポーター遺伝子からのものが非常に大きい。
【００６８】
STARエレメント配列及びゲノム配置データ
表２は、17個のSTARエレメントの夫々の染色体位置、同様にすぐ隣の遺伝子及びエレメントの反復DNA含量をリストする。STARエレメントは多くの染色体を超えて分布される。それらは、それらの真のDNA配列及び反復DNA含量において多様化され、且つ近隣の遺伝子に関連付けられた様々な程度を表示する。
【００６９】
【表２】

¹染色体の位置は、ヒトゲノムデータベースに対するSTARクローンからのDNA配列データのBLAST調査によって決定される。該位置は、各染色体の細胞遺伝学的イデオグラムと言及される標準命名法に従い与えられる；例えば1p2.3は1番染色体の短いアーム（arm）の第2の細胞遺伝学的バンドの第３の細胞遺伝学的サブバンドである（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Class/MLACourse/Genetics/chrombanding.html）。F, 正の（Forward）配列反応結果；R,逆の（Reverse）配列反応結果；N.d.,決められていない（not yet determined）。
²ヒトゲノムマップビュービルド（HumanGenome Map View Build）22に基づく（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/cgi-bin/Entrez/hum_srch?chr=hum_chr.inf&query、2001年4月）。L,左；R,右。
^*位置があいまい、幾つかのヒット
【００７０】
SINCエレメントスクリーン
物質及び方法：
SINCスクリーンのためのプラスミド、pSINC-Select（「pSS」、図６）は、次のようにして構築される：pREP4ベクター（Invitrogen V004-50）が、プラスミドバックボーンとして使用される。それは、複製のイプシュタイン（Epstein）バール（Barr）oriP起源及び初期細胞株における高いコピーのエピソーマル複製のためのEBNA-1核性抗原を提供し；それは、哺乳動物細胞の選択のために、チミジンキナーゼプロモーター及びポリアデニレーション部位を有するハイグロマイシン（hygromycin）に提供し；及びそれは大腸菌における維持のためのアンピシリン耐性遺伝子及び複製のcolE1起源を提供する。ベクターはTet-Offプロモーターを含み、Tet-Off転写的調節システムによって調節するために、プラスミドpUDH10-3（ゴッセン及びビュヤード、1992年）からのタンデムテット（Tet）応答エレメント（TRE）から成る。TREは、融合タンパク質（シトシンデアミナーゼ／ウラシルフォスホリボシルトランスフェラーゼ；Invivogen porf-codaupp）をコードするcodA::upp遺伝子の発現を調節する。これは、いわゆる「自殺遺伝子」である；codA::upp酵素の活性は、プロドラッグ５−フルオロシトシン（5-FC）を毒性薬物５−フルオロウラシル（5-FU）に転化し、それによってアポトーシス及び細胞死をもたらす（ミューレンら、1992年；ティラビーら、1998年；ウェイ及びフーバー、1996年）。Tet-Offプロモーターの上流は、スクリーニングのためのSau3AI-消化されたゲノムDNAをクローニングするためのBglII制限部位である。pREP4 DNAは、クローニングされたSINCエレメントによってpREP4コンポーネントにおける必須のプラスミドエレメントのサイレンシングを防止するためにSTAR配列によってゲノムDNA及び自殺遺伝子から分離される。
【００７１】
ヒト22番染色体（Invitrogen/Research Genetics 96010-22）を含むBACクローンのライブラリーからのゲノムDNAは、Sau3AIで部分的に消化され且つBglII-消化されたpSS内にライゲーションされる（サムブルックら、1989年）。組み換えプラスミドのライブラリーは、トランスフェクション試薬の提供者（Life Technologies）によって推奨されているように、カルシウムリン酸沈殿（グラハム及びファンデルイービー、1973年；ウィグラーら、1978年）によってU-2 OS/Tet-Off細胞株内にトランスフェクションされる。トランスフェクションされた細胞は、ハイグロマイシン選択（25マイクロg/ml）及びテトラサイクリン抑制（ドキシサイクリン（doxycycline）、10ナノg/ml）下で、３週間培養される。その後5-FCが１マイクロg/mlの濃度まで添加され、そして細胞はSINCエレメントを選択するために３週間の間更に培養される。
【００７２】
候補SINCを含むコロニーは収穫され、そしてPCR1及びPCR2（図６）とともにポリメラーゼ連鎖反応において使用される；PCR生成物は、慣用技術（サムブルックら、1989年）によって、HindIII及びXhoI制限エンドヌクレアーゼで消化され且つpBluescript II SK(+)（Stratagene 212207）内にクローニングされる。候補SINCエレメントのDNA配列が決定され（サンガーら、1977年）及びヒトゲノムにおける対応する配列は、ヒトゲノムデータベース（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/genome/seq/HsBlast.html、2001年6月20日）のBLAST調査（アルツシュルら、1990年）によって識別される。エレメントの染色体の位置が、反復DNAの比率及び近傍の遺伝子の識別とともに記録される。
【００７３】
結果：
選択期間の終わりでは、コロニーはコントロール培養（エンプティpSS）において明らかでなく、且つ多くのコロニーがゲノムDNAを有するpSSを含む培養内で明らかである。これらの生き残ったクローンは、候補SINCエレメントを含む。これらの生き残ったクローンは、候補SINCエレメントを含む。エレメントはPCRによって回収され且つ標準クローニングベクター、pBluescript内にサブクローニングされる。エレメントのDNA配列が決定され、そしてヒトゲノム配列と比較される（表３）。全ての場合において、シーケンスされたエレメントは、期待されたように、22番染色体上に見つけられる。
【００７４】
【表３】

¹染色体の位置は、ヒトゲノムデータベースに対するSTARクローンからのDNA配列データのBLAST調査によって決定される。該位置は、各染色体の細胞遺伝学的イデオグラムと言及される標準命名法に従い与えられる；例えば1p2.3は1番染色体の短いアーム（arm）の第2の細胞遺伝学的バンドの第３の細胞遺伝学的サブバンドである（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Class/MLACourse/Genetics/chrombanding.html）。
【００７５】
【表４Ａ】

【００７６】
【表４Ｂ】

【実施例２】
【００７７】
STAR、SINC又は組み合わされたSTAR／SINCによる導入遺伝子の発現特性
背景：
部位特異的組み換えは、それらの染色体の位置からの異種のDNAを正確に除去するために使用される。これは、2つのシステムの１つによって日常的に実行されている：バクテリオファージP1（フェングら、1999年）のcre リコンビナーゼ及びloxPターゲット、又は酵母のFLP組み換え及びFRT（FLP組み換えターゲット）（ウィグレイら、1994年）。これらのシステムでは、（通常レポーター遺伝子及び／又は選択可能なマーカーを含む）DNA領域は、loxP又はFRTターゲットによって染色体に両面を挟まれる。その後、リコンビナーゼの活性は、染色体からDNA領域の正確な切除を触媒する。リコンビナーゼは、その２つの認識配列をシングル部位に分離し、それらの間の配列を削除する。従って、DNAの全長は、リコンビナーゼの導入又は活性化に応答して、インビボ（in vivo）で引き続き削除されるべきターゲット部位によって両面を挟まれなければならない（シュヴェンクら、1995年；ディメッキ、1996年）。Cre及びFlpリコンビナーゼは、最小の6個（loxP）又は8個（FRT）塩基対でスペーサーによって分離された（セネコフら、1985年）、2個の13塩基対に反転された反復の間で組み替えを触媒する。loxP配列はATAACTTCGTATAであり、且つFRT配列はGAAGTTCCTATACである。
【００７８】
プロトコル：
慣用的なDNAクローニング（サムブルックら、1989年）を使用し、（レポータータンパク質例えば緑蛍光タンパク質（GFP）をコードする）レポーター遺伝子（ビィリューゼンら、1997年）又はルシフェラーゼ（ヒメス及びシャノン、2000年）が構築され、それはSTARエレメントの対によって、SINCエレメントの対によって又はSTAR/SINC組み合わせエレメントの対によってプラスミドにおいて両面を挟まれる。各場合において、エレメントはリコンビナーゼターゲット部位によってそれら自身両面を挟まれる。１つのエレメントはloxP部位の対によって両面を挟まれ、及び他はFRT部位の対によって両面を挟まれる（図１）。転写に応答して、プラスミドは細胞の小さいパーセント内において宿主染色体内に組み込まれ、そして組み込まれたものは、抗生物質によって選択される。同様の構築物は３つのテストエレメント（STAR、SINC、STAR/SINC）の夫々のために作成される。
【００７９】
慣用の技術（「SuperFect Transfection Reagent Handbook」、Qiagen、1997年11月）、を使用し、これらのプラスミドは、U-2 OSヒト骨肉腫細胞株内にトランスフェクトされ、且つハイグロマイシン耐性のために選択される。ハイグロマイシン耐性単離体は、細胞株のゲノム内に安定に組み込まれたプラスミドを有する。夫々の単離体は、細胞培養培地内で増殖され、且つ組み換えレポーター遺伝子の発現は例えばフロー部位メトリー（ステュルら、2000年）によってアッセイされる。
【００８０】
その後慣用技術（トランスフェクション、又はホルモン刺激）を使用して、前記からの安定な単離体は、リコンビナーゼ活性を導出し又は活性化するように処理される。これは、例えばcreリコンビナーゼ活性はSTAR１の切除を触媒し、そして引き続きFLPリコンビナーゼ活性はSTAR2の切除を触媒するように順次行われる。これらの細胞におけるレポーター遺伝子の発現のレベルがアッセイされ、値が親のSTARを含む単離物の値を基準として比較される。
【実施例３】
【００８１】
STARの配列分析；エレメント機能のための最小必須配列の決定；エレメント間の配列の保存；及びタンデム及び複数のエレメントの特性
背景：STAR又はSINCエレメントを含むDNAフラグメントがpSelect（図１）又はpSS（図６）プラスミドを使用し遺伝子の選択によって夫々単離される。このセクションはSTAR又はSINC活性を有するそれらのフラグメント内にDNA配列を特徴付けるためのアプローチを記載する。
【００８２】
プロトコル：
DNA配列：オリゴヌクレオチドが、DNAフラグメントをシーケンスするためにpSelect及びpSS選択プラスミドの配列に基づき設計される。フラグメントはジデオキシ連鎖端末技術（サンガーら、1977年）を使用してシーケンスされる。その後、DNA配列は、公のヒトゲノム配列データベース（http://www.ncbi.nlm.nih.gov:80/cgi-bin/Entrez/hum_srch?chr=hum_chr.inf&query）を使用して染色体位置に配置される。フラグメント配列の近接における遺伝子及び遺伝子密度は、ゲノム配列アノテーションから記録される。それらの遺伝子の転写的活性は、公のDNAマイクロアレイのデータベース（http://arrays.rockefeller.edu/xenopus/links.html）及びSAGE（Serial Analysis of Gene Experssion;http://bioinfo.amc.uva.nl/HTM-bin/index.cgi）データから決定される。いったんSTAR及びSINC配列に対する位置の情報が集計されると、データは基礎となるコンセンサス配列の観点から分析される。コンセンサス配列又はトレンド（これによる理解はヌクレオチドの組み合わせに特に豊富例えばC及びG塩基に豊富であるローカルエリアである）が、類似性探索アルゴリズム例えばclustalw（ヒギンスら、1996年）及びブロサム類似性スコアリング（blosum similarity scoring）（アルツシュル及びギッシュ、1996年）を使用し検出される。その後、任意の基礎となるコンセンサス又はトレンドは、BLAST調査（アルツシュルら、1990年）を実行することによってゲノムスケール上の他の潜在的なSTARを識別するために使用される。前の研究は、既知のインシュレーター及び境界エレメントに結合する転写的な調節タンパク質を識別している（ガスツナーら、1999年；ゲラシモヴァ及びコルセス、1998年）。記載されている実施例では、タンパク質結合部位は、インシュレーター又は境界機能に必須であるところのDNase I 過敏部位と一致する。STARエレメントが既知の調節タンパク質によってまた境界されるところの仮定は、STARエレメントにおいて生じる配列モチーフのための転写ファクターのTRANSFACデータベース（http://transfac.gdf.de/TRANSFAC/）を検索することによって試験される。STAR又はSINC集合のメンバー間で共通である配列モチーフは、対応する転写ファクターがそのエレメントに結合するところの指標である。
【００８３】
最小の必須配列：この配列知識を使用して、STAR（又はSINC）エレメントは、機能性のために切り捨てられ及び試験される。これは、STAR-又はSINC-含有フラグメントのサブフラグメントを、標準技術（サムブルックら、1989年）によってpSelect又はpSS内にクローニングするためにポリメラーゼ連鎖反応（PCR）を使用して行われる。サブフラグメントを含むプラスミドは、U-2 OS細胞内にトランスフェクションされ、且つ抗生物質耐性（STARエレメント）又はプロドラッグ耐性（SINCエレメント）をアッセイすることによって機能性のために試験される。
【００８４】
方向性：STAR及びSINCエレメントは、pSelect及びpSSプラスミドを使用してそれらの方向性を夫々テストされる。例えば、pSelectスクリーンによって単離されたSTARエレメントの方向性は、53方向性として言及される。エレメントの方向性は、慣用の組み換えDNA技術（サムブルックら、1989年）によって、反転される。生じたプラスミドは、U-2 OS細胞株内にトランスフェクションされ、且つレポーター遺伝子の発現がアッセイされる（ビィリューゼンら、1997年、ヒメス及びシャノン、2000年）。反転方向性エレメントを有するプラスミドからの発現のレベルは、53方向性のそれらと比較される。反転方向性プラスミドが類似の発現レベルを有する場合、その結果STARエレメントは方向性を示さない。
【００８５】
組み合わせ及び複数のエレメント：STARエレメントが混合された塩基対において機能することができるかどうかを決定するために、種々のエレメントが組み合わされ且つ試験される。分析は、組み換えDNA技術（サムブルックら、1989年）によって、MCSIにおける１つのSTARエレメント及びMSCII内の異なるSTARを挿入することによってpSDHプラスミド内で実行される。生じたプラスミドはトランスフェクションされ、及びレポーター遺伝子の発現がアッセイされる（ビィリューゼンら、1997年；ヒメス及びシャノン、2000年）；結果は、MSCI及びMSCIIで同一のエレメントを含むプラスミドからの発現と比較される；もし該発現が、プラスミドの２つの型と同様であれば、その結果種々のSTARエレメントはお互いに邪魔をしないということが結論づけられる。
【００８６】
シングルSTAR又はSINCエレメントの強度は、エレメントのタンデム反復と比較される。これは、組み換えＤＮＡ技術（サムブルックら、1989年）によって、DNAリガーゼを有する目的のSTAR又はSINCエレメントのコンカタメリゼーション（concatamerization）及びpSDH又はpSSプラスミド内へのライゲーション生成物の挿入によって行われる。生じたプラスミドは、U-2 OS細胞内にトランスフェクションされ、且つレポーター遺伝子の発現がアッセイされる（ビィリューゼンら、1997年、ヒメス及びシャノン、2000年）；結果は、シングルSTAR又はSINCエレメントを含むプラスミドからの発現と比較される。
【実施例４】
【００８７】
STAR、SINC又はそれらの組み合わせが機能するところの距離を超えての決定
背景：
STARエレメントは、シングル及び複数の導入遺伝子の発現を最適化するために使用される。STARエレメントのシングル対が大きい又は複数の導入遺伝子をサイレンシングから防ぐことができるかを決定するために、STARエレメントが活動するところの範囲を超えて決定することが必要である。同様の情報が、SINCエレメント及びSTAR/SINC組み合わせのために決定される。
【００８８】
プロトコル：
STAR及びSINCエレメントは、次のようにpSelect又はpSS夫々に基づき誘導プラスミドを使用し距離を超えてそれらの機能を試験される。500bpから10kb由来のランダムDNAフラグメントのライブラリーは、標準DNAクローニング技術（サムブルックら、1989年）によって組み立てられる。フラグメントはこのライブラリーから選択され、それは上記したようにpSelect及びpSSで試験することによってSTAR又はSINC活性を有しない。STARエレメント及びSTAR/SINC組み合わせにとって、これらのフラグメントは適切なpSelectプラスミド（図１）におけるクローニング部位とレポーター遺伝子のプロモーターとの間に挿入される。プラスミドのこのセットは、U-2 OS細胞株内にトランスフェクションされ、そして発現が上記したように測定される。レポーター遺伝子発現の強度は、プロモーターからのSTAR活性エレメントを分離するランダムフラグメントの長さに関連させられる。SINCエレメントは、類似のファッションにおいて評価される：ランダムDNAフラグメントはSINCエレメントと適切なpSSのプロモーターとの間に挿入され、且つレポーター遺伝子の抑制の程度は、ランダムDNAフラグメントの長さに関連させられる。
【実施例５】
【００８９】
実施例５（ａ）
STARエレメントのための遺伝的選択における自然に生じるSINCエレメントの使用
背景：
STARエレメントのための現在のスクリーンは、選択プラスミドにおいて選択可能なマーカーの抑制を提供するためにキメラlexA-PcGタンパク質を使用する。自然に生じるSINCエレメントを使用し選択を繰り返すことによってSTARエレメントは識別され、それはこれらの自然に生じるSINCエレメントによる抑制活性に特異的である。
【００９０】
SINCエレメントスクリーンは、「Tet-Off」プロモーターをサイレンシングさせ且つcodA::upp自殺遺伝子の抑制をブロックすることができるゲノムDNAのランダムに生成されたフラグメントを識別するための遺伝子選択の能力に基づく。この選択から回収したSINCエレメントは、遺伝的にサイレンシングさせるエレメントのランダムサンプリングを表し、且つ種々のクラスのエレメントが回収される。このプロトコルにとって、これらの多様なSINCエレメントは前記したlexA-PcGを基にした選択において回収されたそれらよりも種々のクラスのSTARエレメントを回収するために使用される。
【００９１】
プロトコル：
現在の選択からのSINCエレメントは機能的特性及びDNA配列特性に基づきクラス内に特徴付けられ且つソートされる（機能的特性は抑制の強度を含む；配列特性は識別可能な保存されたモチーフを含む；実施例３参照）。各クラスからの代表的なエレメントは、標準DNAクローニング技術（サムブルックら、1989年）を介してpSelectプラスミドにおけるlexA結合部位を置換するために使用される。遺伝子バンクは、これらの新しいプラスミドの各々で作成され且つ上記したような新しい、SINC特異的なSTARエレメント（ファンデルフラッグら、2000年）を識別するために使用される。これは、全体のゲノムDNAで且つ使用されるSINCエレメントをまた含むBACクローンからのDNAで行われる。
【００９２】
実施例５（ｂ）
STARエレメント及びSINCエレメントの最大長の決定
背景：
STARエレメントは、pSelectプラスミドを使用して回収されたDNAのフラグメントとしてクローニングされ、それは2kbよりも少ないゲノムDNAフラグメントでおこなわれる。しかしながら、これらは、より拡張されたSTARエレメントの部分であってもよい。拡張されたSTAR活性は、次の実験によって試験される。
【００９３】
プロトコル：
pSelectにおいてクローニングされたSTARエレメントは、ヒトゲノム配列にマッピングされる。それらがより拡張されたSTARエレメントの部分であるかを決定するために、クローンを包含する4kbの領域が、標準の組み換えDNA技術（サムブルックら、1989年）によってPCRによって増幅され且つpSelect及び／又はpSDHプラスミド内にクローニングされる。生じたプラスミドは、U-2 OS細胞内にトランスフェクションされ且つ上記したようにレポーター遺伝子発現のためにアッセイされる；オリジナルの2kb STARエレメントを含むプラスミドは、対照として含まれる。3つの可能な結果が期待されうる：（１）、対照及び拡張されたSTAR単離物による同様の発現、STARエレメントはオリジナルの2kbフラグメントに限られることを示す；（２）拡張されたSTAR単離物による低い発現、STARエレメントは2kbフラグメント内に含まれ且つ距離を超えて効果的に活動しない又は拡張されたフラグメントはSINCエレメントを含むことを示唆する、；（３）拡張されたSTAR単離物によるより高い発現、拡張された領域はより完全なSTAR活性エレメントを含むことを示唆する、。結果（３）の場合、実行は6kbのより大きいPCRフラグメントで繰り返される。
【００９４】
STARエレメントは、様々なタンパク質が結合しているところの部位の合成（composite）であってもまたよい。それ故に、STAR活性を有する大きなDNAフラグメントは、STAR活性で小さいフラグメントに分割しうる（実施例３を参照）。2kbよりも大きいエレメントは、それらが2kb（内部的削除を含む）よりも少ないトランケーション（truncation）後にSTAR活性をまた示す場合、STARエレメントとして認識される。
【実施例６】
【００９５】
STARエレメント、SINCエレメント、又はそれらの組み合わせ及び近傍の導入遺伝子のメチル化及びヒストンアセチル化状態
背景：
STARエレメント及びSINCエレメントの調節特性は、ローカルな染色体構造に関連付けられ、それはDNAそれ自身によって及びDNAに関連付けられたタンパク質によって決定される。遺伝子発現における変化に関連付けられている染色体構造の変化は、巨大分子の第2の修飾、特にＤＮＡのメチル化又はヒストンタンパク質のアセチル化によってしばしば生成される。STARエレメント及びSINCエレメントで且つ近傍の導入遺伝子で生じる第２の変性を識別することは、これらのエレメントの顕著な特徴（hallmarks）を提供する。
【００９６】
プロトコル：
DNAメチル化：STARエレメント又はSINCエレメント又はそれらの組み合わせは、標準技術（サムブルックら、1989年）によってpSelectプラスミド内にクローニングされる。U-2 OS細胞は、レポーター遺伝子での基本的DNAメチル化を決定するために、これらのプラスミドで且つ対照としてSTARエレメント又はSINCエレメントを欠くpSelectで安定にトランスフェクションされる。細胞は収穫され且つ染色体は標準手法（トーマス、1998年）によって精製される。該DNAは、別の反応（サムブルックら、1989年）においてHpaII及びMspI制限エンドヌクレアーゼで消化される。これらの制限酵素の両方は、非メチル化配列CCGGを切断することができる。外側のＣがメチル化される場合、MspI及びHpaIIの両方が割れることをできない。しかしながら、内部のＣがメチル化される場合、違うHpaII、MspIは配列を割れることができる。該DNAがササンブロット法に賦され、そして該ブロットが非直接的なエンドラベリング（パジン及びカドナガ、1998年）によって解析される。対照として、ありのままの対応するpSelectプラスミド、メチル化されていないDNAは記載された酵素でまた切断され、そしてサザンブロット法に賦される。
【００９７】
種々のサイズのDNAフラグメントの比較は、DNAがインビボ（in vivo）でメチル化されるかどうかを明らかにする。
【００９８】
ヒストンアセチル化：DNAメチル化分析のために使用される同一のトランスフェクションされた細胞株が、これらの実験のために使用される。下記に記載された方法は、STARエレメント及びSINCエレメント及びレポーター遺伝子上のヒストンアセチル化パターンの高い解決マップを生成する（リットら、2001年）。核のミクロコッカル（micrococcal）ヌクレアーゼ消化は、ショ糖グラジエントで画分化され、且つ生成されたヌクレオソームモノマー及びダイマーは、抗アセチルヒストン抗体を有する免疫沈降によって、アセチル化されたヒストンに豊富である。ヌクレオソーム画分及び免疫沈降物は分析に賦され、例えばプライマー及びタックマン（Taqman）プローブ（それはレポーター遺伝子若しくはSTAR又はSINCエレメントに0.1kbのムービングウィンドウでアニールされて、0.2kb生成物を与える）を使用し、リアルタイムPCR（ジュングら、2000年）によって分析される。その結果、PCR（それはサンプルにおけるテンプレートDNAの多数に比例している）の間、タックマンプローブ蛍光シグナルの増加の割合が測定される。ヌクレオソーム画分及び免疫沈降物におけるテンプレートDNAの多数の割合は、レポーター遺伝子及びSTARエレメント又はSINCエレメントに対して（又はエレメントの不存在におけるレポーター遺伝子に対して）の各0.1kbのためにヒストンアセチル化のパターンのファイン−マップを提供する。
【実施例７】
【００９９】
インビボ（in vivo）ヌクレオソーム配置及びDNAse I 敏感性部位
背景：
染色体は、DNA、ヒストン及び非ヒストンタンパク質から成る。該ヒストンは、ヌクレオソームを作成するためにDNAの〜150bpによってラップされているコア粒子を形成する。ヌクレオソームは、リンカーDNAの50〜75bpによって分離される。染色体のDNA上に安定に配置されたヌクレオソームは遺伝子発現を抑制し、且つヌクレオソームを排除するフ又はさもなくば染色体を改造するファクターは、この抑制を克服することができる。染色体の領域におけるヌクレオソームの配置は、ミクロコッカル（micrococcal）ヌクレアーゼ（MNase）アッセイによって分析される；MNaseは、リンカーDNAにおいて優先的にクロマチンを切断する。同様に、DNAのある領域は、構成的に非ヒストンタンパク質にさらされ、且つこれらはしばしば調節領域例えばシス−行動(acting)調節ファクターが結合するところの部位である。実験的に、これらの部位は酵素DNase Iによる消化に対して過過敏である。
【０１００】
プロトコル：
レポーター遺伝子上の且つSTARエレメント又はSINCエレメントのいずれか上のヌクレオソームの位置を決定するために、MNaseが使用される（サルツ及びジョスト、1993年）。核は、培養されたU-2 OS細胞から精製され且つ上記したように（ヒストンアセチル化）MNaseで消化される。STARエレメント及びSINCエレメント又はレポーター遺伝子におけるDNase I 過過敏部位を探すために、精製された核が上記したように（ウォールラスら、1998年）適切な濃度（例えば、100マクロg/mlゲノムDNA及び20〜100 U/ml DNase I）でDNase Iで処理される。そのままの（naked）DNAは、対照としてDNase Iで消化される。そのままのDNAは、対照としてDNase Iで消化される。両方の技術にとって、レポーター遺伝子及びSTARエレメント又はSINCエレメントが、（タナカら、1996年；ファンデルフラッグら、2000年）に記載されているように、第１の拡張又は非直接的なエンドラベル及びサザンブロット法を使用しファインマップされる。MNaseアッセイは、STARエレメント若しくはSINCエレメント又はレポーター遺伝子に対するヌクレオソームの位置に対応するオートラジオグラム上に別々のバンドの位置（ladder）を明らかにする。DNase I過過敏部位は、そのままのDNA対照において存在しない又は突出していないところの生じたオートラジオグラムにおける別々のバンドとして現れる。
【実施例８】
【０１０１】
STARエレメント及びSINCエレメントの細胞型、組織依存性及びプロモーター依存性
背景：
あるインシュレーター又は境界エレメントが組織特異性を表示しうることが報告されている（タカダら、2000年）。STARエレメントは、インシュレーター及び境界エレメントに共通に多くの特性を有する。入り交じった及び組織特異的STARエレメント及びSINCエレメントは導入遺伝子的用途においてバイオテクノロジー的価値を有する。下記に記載されたアッセイは、細胞型依存性を評価するために実行される。エレメントの細胞及び組織特異性は、DNAマイクロアレイの公知のデータベース（http://arrays.rockefeller.edu/xenopus/links.html）及びSAGE（Serial Analysis of Gene Expression;http://bioinfo.amc.uva.nl/HTM-bin/index.cgi）データを使用しヒトゲノムにおけるエレメントの近傍の遺伝子の発現を試験することによってさらに試験される。
【０１０２】
プロトコル：
STARエレメントはpSDHプラスミド内で試験され且つSINCエレメントはpSSプラスミド内で試験される。３つの細胞株が、標準のプロトコルを使用しトランスフェクションされる：ヒト U-2 OS骨肉腫細胞株（ヘルディンら、1986年）、アフリカサバンナモンキー（African green monkey）の腎臓由来のヴェロ（Vero）細胞株（シミズら、1967年）、及びチャイニーズハムスター卵巣由来のCHO細胞株（カオ及びプック、1968年）。すべての3つの細胞型において機能することができるエレメントは、入り混じったものとして分類される。該細胞株の１つ又は２つにおいてのみ活性を表示するそれらは、それらの細胞型機能性において制限されていると分類される。
【０１０３】
プロモーター特異性：
STARエレメント及びSINCエレメントは、２つのプロモーター、完全なサイトメガロウィルス（CMV）プロモーター又はテトラサクリン応答エレメント（Tetracycline Response Element）及び最小のCMVプロモーター（tTA転写的活性剤との組み合わせ）を有する機能との関連で、現在選択され且つ選択される。プロモーター特異性を評価するために、STAR及びSINC機能が、他の共通に使用されるウィルスプロモーターすなわち猿のウィルス型40（SV40）初期及び後期プロモーター、アデノウィルスE1A及び主な後期プロモーター、並びにラウス肉腫ウィルス（Rous sarcoma virus;RSV）長末端反復（ドールら、1996年；スミスら、2000年；ウィバー及びカダン、2000年；クスゥら、1995年）で試験される。これらのプロモーターの夫々は、STARエレメント又はSINCエレメントとともに標準の技術（サムブルックら、1989年）によってpSelect及びpSSプラスミド内に夫々別個にクローニングされる。生じたプラスミドは、上記したように、U-2 OS細胞株内にトランスフェクションされ、且つレポーター遺伝子発現のためにアッセイされる。これらのプロモーターをサイレンシングさせるSINCエレメント又はサイレンシングに対して保護するためのSTARエレメントの能力は、STARエレメント又はSINCエレメントを欠くプラスミドとの比較によって決定される。
【実施例９】
【０１０４】
STARエレメント及びSINCエレメントの改善の方法
背景：
改善されたSTARエレメント及びSINCエレメントが開発される。改善は抗抑制又は抑制活性の増加した強度並びに誘発可能な及び組織特異的な活性を有するエレメントをもたらすこれらの改善は組み合わせの技術によって作成される。
【０１０５】
プロトコル
強制された発展：エラープローンPCR（Error Prone PCR）（チェリーら、1999年；ヘンケ及びボルンショイヤー、1999年）は、エレメント当たり１つ又は２つのポイント変異の平均を導出するために使用される。突然変異したエレメントは、例えば蛍光活性化されたセルソーティング及び抗生物質耐性（ベネットら、1998年）によってレポーター選択可能なマーカー融合タンパク質を含むpSelect（又はpSS）プラスミドを使用しスクリーンされる。エラープローンPCR及び選択の次の段階は、活性において更なる改善を有するエレメントを導出するために実行される。
【０１０６】
タンデム及び異種の組み合わせ：上記したように、エレメントのタンデム及び異種の組み合わせは、シングルエレメントと比較して活性のために試験される（実施例３）。
【０１０７】
STARエレメント及びSINCエレメントの相対的な優位が、ケースバイケースに基づいて試験される。それは、エレメントの強度を試験するために使用される；例えば新しいSTARエレメントが既知であり、強いSINCエレメントエレメントに対して優位である場合、その結果該STARは非常に強いとして分類される。STAR及びSINCの間の優位関係は細胞型−、組織−又はプロモーター−特異的であるところの可能性が、また考えられる（実施例８）。優位性試験は、標準組み換えDNA技術（サムブルックら、1989年）によって個々のSTARエレメントの上流に配置された個々のSINCエレメントとともにpSelectプラスミドを利用する。該プラスミドは、U-2 OS細胞にトランスフェクションされ、且つレポーター遺伝子がアッセイされる。SINC優位性は、STARエレメントのみを有するプラスミドよりもより低い発現によって表わされ、一方STAR優位性は、SINCエレメントのみを有するプラスミドよりもより高い発現によって表わされる。
【０１０８】
新規な特徴（例えば、誘発性、組織特異性）を付加するためにSTARエレメント及びSINCエレメントに対する他のDNA結合性タンパク質のための結合部位の導入
【０１０９】
背景：
調節可能なSTARエレメント及びSINCエレメントは、それらをシングル依存性DNA結合性タンパク質のための結合部位に結合することによって生成される。１つの例では、これはSTAR若しくはSINC又はSTAR/SINC組み合わせ及びグルココルチコイド応答エレメント（GRE: glucocorticoid response element）の並列を含む。グルココルチコイド刺激の不存在下、STARエレメント又はSINCエレメントは、記載されているように機能する。刺激に応答して、自然に生じるグルココルチコイドレセプターはGREに結合し且つSTAR又はSINC機能を妨害する。
【０１１０】
プロトコル：
慣用のDNAクローニング（サムブルックら、1989年）を使用し、GREは、STARエレメント又はSINCエレメントに隣接したpSelect又はpSSベクター内に夫々導入される。該プラスミドは、上記したようにU-2 OS細胞内にトランスフェクションされる。細胞は、2つの培地に分割される；１つは、グルココルチコイド（10マイクロM）で処理される。レポーター遺伝子の発現は２つの培地間で測定され且つ比較される。発現における相違は、シングル依存性DNA結合性タンパク質の活性によってSTAR及びSINC機能を調節する能力を示す。
【０１１１】
入り交じったSTAR及びSINCエレメント：
これらの特性を試験し又は助長することは、種々の細胞株における培養、抗生物質選択なしの長期間培養を含む（実施例８及び１０）。
【実施例１０】
【０１１２】
STARエレメント及びSINCエレメントは導入遺伝子の維持のための連続的な選択の必要性を未然に防ぐ。
背景：
導入遺伝子学において、選択マーカーに対する信頼は、２つの欠点がある：選択剤は通常高価であり且つ細胞に代謝性コスト（metabolic cost）を運び、且つ導入遺伝子用途において特に導入遺伝子それ自身が製品（例えば作物、遺伝子治療ベクター）内にある場合、含有選択可能マーカーに対する規制的且つ倫理的な異議がある。STARエレメント及びSINCエレメントは遺伝子組み換え単離物を確立した後に選択を維持するための必要性を減少し又は除去する。引き続き、耐性遺伝子は、導入遺伝子発現の減少した損失で部位特異的組み替えによって形質転換されたゲノムから除去されうる。
【０１１３】
プロトコル：
レポーター遺伝子の両面を挟む染色体的に統合されたSTARエレメントを含む安定的にトランスフェクションされたU-2 OS細胞株は、上記したようにトランス−行動（trans-acting）抗生物質耐性を有するpSDHプラスミドの同時トランスフェクションによって生成される。実験は、選択の不存在下に長期に渡る（３〜６ヶ月）培養の間にこれらの細胞株におけるレポーター遺伝子発現レベルの安定性を試験することを含む。これは、pSDHプラスミドにおけるルシフェラーゼ又はGFPレポーター遺伝子の両面を挟むSTARエレメントで試験される。抗生物質耐性遺伝子は、抗生物質選択マーカーがリコンビナーゼターゲット部位によって両面を挟まれるところの（pSDHに基づく）発現プラスミドを構築することによって除去される。選択可能なマーカーは、上記したように（実施例２）、リコンビナーゼ活性によって引き続き切り取られる。
【実施例１１】
【０１１４】
予測可能性及び収率が発現システムにおけるSTARエレメントの応用によって改善される。
STARエレメントは、導入遺伝子発現ユニットに対する転写抑制機能の効果をブロックするために機能する。これらの抑制影響は、異種クロマチン（「位置影響」、（ボイヴィン及びデュラ、1998年））に又は導入遺伝子の近傍のコピー（「反復導入された遺伝子サイレンシング（repeat-induced gene silencing）」、（ガーリックら、1998年））によりうる。異種タンパク質生成のためのSTARエレメントの２つの利点は、高い発現プライマリー組み換え宿主細胞の増加した予測可能性、及び生成サイクルの間の増加した収率である。これら利益は本実施例において示される。
【０１１５】
物質及び方法：
pSDHベクター及びSTAR含有誘導体の構築：pSDH-Tetベクターは、プライマーC67及びC68（全てPCRプライマー及び突然変異オリゴヌクレオチドが表５にリストされている）を使用しプラスミドpREP4-HSF-Luc（ファンデルフラッグら、2000年）からのルシフェラーゼオープンリーディングフレームのポリメラーゼ連鎖反応増幅（PCR）、及びSacII/BamHIフラグメントをSac II/BamHI-消化されたpUHD10-3（ゴッセン及びビュヤード、1992年）の挿入によって構築された。ルシフェラーゼ発現ユニットはプライマーC65及びC66で再増幅され且つそれを２つの複数のクローニング部位（MCSI及びMSCII）で両面を挟むためにpUHD10-3内に再挿入された。その結果、AscI部位は、EcoRIでの消化及び（アニールされたオリゴヌクレオチドD93及びD94を含む）リンカーの挿入によってMCSI内に導入された。CMVプロモーターは、ベクター pSDH-CMVを生成するために、プライマーD90及びD91を有するプラスミドpCMV-Bsd（Invitrogen K510-01）から増幅され及びSalI/SacII消化且つライゲーションによるpSDH-Tet内のTet-Offプロモーターを置換するために使用される。このベクターにおけるルシフェラーゼオープンリーディングフレームは、次のようにしてSEAP（Secreted Alkaline Phosphatase）によって置換される：ベクター pSDH-CMVは、SacII及びBamHIで消化されそして平滑（blunt）にされた：SEAPオープンリーディングフレームは、EcoRI/SAlI消化によってpSEAP−ベーシック（Clontech 6037-1）から分離され、ベクター pSDH-CSを生成するために平滑にされ且つpSDH-CMV内にライゲーションされた。SV40プロモーターの制御下でピューロマイシン耐性遺伝子は、プライマーC81及びC82を使用し、PCRによってプラスミドpBabe-Puro（モルゲンステルン及びランド、1990年）から単離された。これは、pGL3-puroを生成するために、NcoI/XbaIで消化されたベクターpGL3-コントロール（BamHI部位が除去された）（Promega E1741）内にライゲーションされた。pGL3-puroは、SV-40-ピューロ耐性遺伝子を分離するためにBgiII/SalIで消化されて、それは平滑にされ且つNheI消化された、平滑末端（blunt-ended）pSDH-CS内にライゲーションされた。生じたベクターpSDH-CSPは、図７に示される。全てのクローニングステップは、当業者に知られている方法（サムブルックら、1989年）に従い、試薬の製造者によって提供される指示書に従い実行された。
【０１１６】
STARエレメントは、適切な制限酵素でSTARエレメントおよびpSDH-CSPベクターを消化し、引き続きライゲーションすることによる２段階で、MCSI及びMCSII内に挿入された。組み換えられたpSDHベクターにおけるSTARエレメンントの方向性は、制限マッピングによって決定された。挿入物の識別及び方向性は、DNA配列解析によって検証された。配列決定（sequencing）は、製造者の指示書に従って、ベックマン（Beckman）CEQ2000自動化DNAシーケンサーを使用しジデオキシ方法（サンガーら、1977年）によって実行された。簡単にいうと、DNAは、QIAprep Spin Miniprep及びプラスミドミディ（Midi）キット（夫々QIAGEN 27106及び12145）を使用し大腸菌から生成された。サイクル配列決定が、色素ターミネーター（CEQ Dye Terminator Cycle Sequencing Kit、Beckman 608000）の存在下でカスタムオリゴヌクレオチドC85、E25及びE42（表５）を使用し、実行された。
【０１１７】
【表５】

【０１１８】
pSDHプラスミドを有するCHO細胞のトランスフェクション及び培養：
チャイニーズハムスター卵巣細胞株CHO-K1（ATCC CCL-61）が、HAMS-F12培地＋2mMグルタミン、100 U/mlペニシリン及び100マイクログラム/ml ストレプトマイシンを含むウシ胎仔血清（Fetal Calf Serum）内で、37≡/5% CO₂下で培養された。細胞は、製造者によって記載されたようにSuperFect（QIAGEN）を使用し、pSDH−CSPベクター及びMCSI及びMSCIIにおいてSTAR6又はSTAR49を含むその誘導体でトランスフェクションされた。簡単に言えば、細胞は、培養容器に接種され且つ70〜90％集合にまで一晩成長された。SuperFect試薬は、6マイクロリットル/マイクログラムの割合（例えば10cmペトリ皿に、20マイクログラムDNA及び120マイクロリットルSuperFect）で（PvuIでの消化によって本実施例において線形化された）プラスミドDNAで結合され、且つ細胞に添加された。一晩のインキュベーション後、トランスフェクション混合物は、新鮮な培地で置き換えられ、及びトランスフェクションされた細胞はさらにインキュベートされた。一晩の培養後、5マイクログラム/ml ピューロマイシンが添加された。ピューロマイシン選択は2週間内に完了され、その後時間個々のピューロマイシン耐性CHO/pSDH-CSPクローンがランダムに分離されそしてさらに培養された。
【０１１９】
SEAP（Secreted Alkaline Phosphatase）アッセイ：
CHO/pSDH-CSPクローンの培養培地におけるSEAP活性（ベルゲルら、1988年；ヘンソルンら、1988年；カイン、1997年；ヤングら、1997年）は、製造者（Clontech Great EscAPe kit #K2041）によって記載されるように決定された。簡単に言えば、培地の分取は、65≡で熱不活性化され、その後アッセイバッファー及びCSPD化学発光法基質で結合され、そして室温で10分間インキュベートされる。その後、基質変換の割合は、照度計（luminometer）（Turner 20/20TD）において決定された。細胞密度は、Coulter ACT10 細胞カウンター（cell counter）においてトリプシン化された細胞を計算することによって決定された。
【０１２０】
pSDHプラスミドを有するU-2 OS細胞のトランスフェクション及び培養：
ヒト骨肉腫U-2 OS細胞株（ATCC #HTB-96）がダルベッコMEM培地（Dulbeccos Modified Eagle Medium）+グルタミン、ペニシリン及びストレプトマイシン（以前に同じ）を含む10%ウシ胎仔血清内で、37≡/5% CO₂下で培養された。細胞は、SuperFect（以前に同じ）を使用し、（プラスミドpBabe-Puroとともに）pSDH-CMVベクター及びMCSI及びMSCIIにおいてSTAR6又はSTAR8を含むその誘導体で同時トランスフェクションされた。ピューロマイシン選択は2週間内に完了され、その後時間個々のピューロマイシン耐性U-2 OS/pSDH-CMVクローンがランダムに分離されそしてさらに培養された。
【０１２１】
ルシフェラーゼ活性：
ルシフェラーゼ活性（ヒメス及びシャノン、2000年）が、照度計（Turner 20/20TD）を使用しアッセイキット製造者の指示書（Roche 1669893）に従い再懸濁された細胞においてアッセイされた。合計細胞タンパク質濃度は、製造者の指示書（Sigma B-9643）に従いビシンコニン酸（bicinchonic acid）方法によって決定され、且つルシフェラーゼデータを正規化するために使用された。
【０１２２】
結果：
pSDH-CSPベクター又はSTAR6若しくはSTAR49を含むpSDH-CSPプラスミド（表６）を含む組み換えCHO細胞クローンは、3週間培養された。その後、培養上清におけるSEAP活性が決定され、且つ細胞数に基づき発現される（図8）。見られうるように、発現ユニットにおいてSTARエレメントを有するクローンは分離され、それはSTARエレメントを含まない発現ユニットのクローンよりも2〜2倍高いSEAP活性を発現する。その上、STARのないクローンの最大の活性で又はそれより上でSEAP活性を発現するSTAR含有クローンの数は、かなり高い：STARクローン群集の25%〜40%がpSDH-CSPクローンの最高SEAP発現を超える。
【０１２３】
【表６】

¹染色体位置は、ヒトゲノムデータベースに対するSTARエレメントからのDNA配列データのBLAST調査によって決定される。該位置は、各染色体の細胞遺伝学的イデオグラムと言及される標準命名法に従い与えられる。例えば1p2.3は1番染色体の短いアーム（arm）の第2の細胞遺伝学的バンドの第3の細胞遺伝学的サブバンドである（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Class/MLACourse/Genetics/chrombanding.html）。種々のゲノム座、両方のゲノム座からのDNAを識別した正の（forward）及び逆の（reverse）シーケンス反応である場合が示される。
²正確な長さは、DNA配列分析によって決定され、およその長さが制限マッピングによって決定される。
³STAR3の配列及び位置が表２及び表４の集合故に洗練されている。
⁴表２及び表４におけるこれら数を有するSTARは無視されており（以下、「oldSTAR5」などとして言及される）及びSTARエレメントに割り当てられたそれら数がDNA配列別表に示される。oldSTAR5、oldSTAR14及びoldSTAR16、クローニングされたDNAは、2よりも多い染色体位置からのキメラであった；oldSTAR9及びoldSTAR13、クローニングされたDNAは、STAR4に同一であった。
⁵表４「STAR18」に同一
【０１２４】
pSDH-CMVベクター又はSTAR6若しくはSTAR8（表６）を含むpSDH-CMVプラスミドを含む組み換えU-２ OS細胞クローンは、3週間培養された。その後、宿主細胞内のルシフェラーゼ活性が決定され且つ総細胞タンパク質に正規化された相対ルシフェラーゼユニット（図９）として表現される。発現ユニットの両面を挟むSTARエレメントを有する組み換えU-2 OSクローンは、STARのないクローンよりもより高い収率を有した：STAR8クローンから観察された最高の発現は、STARのないクローンからの発現よりも2〜3倍高かった。STAR6クローンは、STARのないクローンよりも5倍高い最大の発現レベルを有した。STARエレメントは同様により高い予測可能性を与えた：両方のSTARエレメントにとって、クローンの15〜20％が最高の発現レベルを有するSTARのないクローンと類似の又はそれよりも大きいレベルでルシフェラーゼ発現を示した。
【０１２５】
これらの結果は、強いCMVプロモーターとともに使用される場合、STARエレメントは異種のタンパク質（ルシフェラーゼ及びSEAP）の収率を増加する。本実施例によって導出された全ての3つのSTARエレメントは、高められた収率を提供する。STARエレメントによって与えられた増加した予測可能性は、STARなしのクローンによって示された最高の収率と等しいか又はそれよりも大きい収率を有するクローンの大部分によって明らかにされた。
【実施例１２】
【０１２６】
STARエレメントは導入遺伝子発現の安定性を改善する
組み換えられた宿主細胞の培養の間、抗生物質の選択を維持することは共通のプラクティスである。これは、導入遺伝子の転写的サイレンシング又はプロセス例えば組み換えによってゲノムからの導入遺伝子の損失を防ぐことを目的とされる。しかしながら、それは異種のタンパク質の生産にとって多くの理由のために望ましいものではない。第1に、使用される抗生物質はとても高価であり、生産物の単位コストに重大な寄与をする。第2に、生物薬剤的な使用の点から、タンパク質は、明らかに純粋、生成物に抗生物質の痕跡がないことでなければならない。異種タンパク質生産のためのSTARエレメントの一つの利点は、抗生物質選択の不存在下であっても、それらは、長期の培養の間、導入遺伝子に対して安定な発現を与えるということである：この特性は、本実施例で示される。
【０１２７】
物質及び方法：
U-2 OS細胞株は、プラスミドpSDH-Tet-STAR6でトランスフェクションされ、且つ実施例１１に記載されているように培養された。個々のピューロマイシン耐性クローンが分離され、かつドキシサイクリンの存在なしにさらに培養された。週間隔で、1:20の希釈率で細胞は新しい培地容器に移された。ルシフェラーゼ活性は、実施例１１に記載されているように定期的な間隔で測定された。15週間後、培養は２つの複製に分けられた：一つの複製はピューロマイシンを受け続け、一方他の複製は実験の残りにおいて抗生物質を受けなかった（25週間合計）。
【０１２８】
結果：
表７は、抗生物質のある又はなしで、長期にわたる成長の間、STAR6で両面を挟まれた発現ユニットによるルシフェラーゼ発現に対するデータを表わす。見られうるように、レポーター導入遺伝子、ルシフェラーゼの発現は、実験の持続の間、U-2 OS宿主細胞において安定に保持される。該培養が２つの処理（抗生物質ををプラスと抗生物質なし）に分けられた後、ルシフェラーゼの発現は、抗生物質選択の不存在下で基本的に安定であった。これは、長期に渡る培養の間、サイレンシング又は損失（loss）から導入遺伝子を防ぐためのSTARエレメントの能力を示す。それは、この特性は抗生物質選択から独立であることをまた示す。それ故に、異種のタンパク質の生産は、抗生物質の又は難しい下流の処理の費用を生じることのないことを可能にする。
【０１２９】
【表７】

¹プラスミドpSDH-Tet-STAR6は、U-2 OS細胞内にトランスフェクションされ、且つクローンは実施例１に記載されたようにドキシサイクリンのない培地内で分離されかつ培養された。細胞は、1:20の希釈率で、新鮮な培養容器に移された。
²細胞分割の数は、１週間で培養が細胞集合（それは〜6細胞分割を表わす）に達するとの推定に基いている。
³ルシフェラーゼは、実施例１に記載されているようにアッセイされた。
⁴60細胞分割後に、細胞は2つの培養容器に移された；一つは、第1の60細胞分割についてはピューロマイシンを含む培養培地を供給され、且つ第2は抗生物質を欠く培養培地を供給された。
【実施例１３】
【０１３０】
STARエレメントの最小必須配列
STARエレメントは実施例１に記載された遺伝的スクリーンから分離される。該スクリーンは、ほぼ0.5〜２キロ塩基（以前に同じ）にサイズ分画されたヒトゲノムDNAで構築されたライブラリーを使用する。該STARエレメントは、500から2361塩基対の範囲である（表６）。分離されている多くのSTARエレメントにとって、STAR活性は初期に分離されたクローンよりもより小さいDNAフラグメントによって与えられる。STAR活性にとって必須であるこれらの最小のフラグメントサイズを決定することは、2つの理由で有用である。第１に、より小さい機能的STARエレメントは、コンパクトな発現ベクターの設計に有利であり、それ故により小さいベクターが、より高い効力で宿主細胞にトランスフェクションする。第２に、最小必須のSTAR配列を決定することは、助長された機能性のそれらの配列の変性を許容する。２つのSTAR配列は、それらの最小必須配列を決定するためにファインマッピングされる。
【０１３１】
物質及び方法：
STAR10（1167塩基対）及びSTAR27（1520塩基対）が、ファインマッピングされている。それらは、ほぼ等しい長さ（図１０凡例）のサブフラグメントを生成するためにPCRによって増幅されている。初期のテストのために、これらは、BamHI部位でpSelectベクター内にクローニングされ、且つ実施例１に記載されているようにU-2OS/Tet-Off/LexA-HP1細胞内にトランスフェクションされる。ハイグロマイシン耐性の選択の後、LexA-HP1がドキシサイクリン濃度を低くすることによって導出された。その後、トランスフェクションされた細胞は、LexA−HP1結合による抑制からのSV40−Zeo発現ユニットを保護するためのSTARフラグメントの能力をテストするためにゼオシンとともにインキュベーションされた。
【０１３２】
結果：
この実験では、STAR10及びSTAR27は、期待されたように遺伝子サイレンシングに対して良い保護を与える（図１０）。これは、ゼオシンの存在下における強い（rubst）成長によって表わされる。
【０１３３】
3個のSTAR10サブフラグメントのうち、10A（〜400塩基対）は、ゼオシンの存在下においてトランスフェクションされた細胞に対して活発な（vigorous）成長を与え、完全長STARエレメントのそれを超える。他の2個のサブフラグメントを含むpSelect構築物でトランスフェクションされた細胞は、ゼオシンの存在下で成長しない。これらの結果は、STAR10の抗抑制活性に責任のあるDNA配列を包含する場合に、〜400塩基対10Aフラグメントを識別する。
【０１３４】
STAR27は、本実験においてトランスフェクションされた細胞に対して。ゼオシンにおける普通の成長を与える。このSTARのサブフラグメントの一つ、27B（〜500塩基対）は、ゼオシン含有培地において宿主細胞の弱い成長を許容する。これは、このSTARの抗抑制活性がサブフラグメント27B上に部分的に配置されるが、完全な活性は同様に27A及び/又は27C（夫々〜500塩基対）からの配列を要求する。
【実施例１４】
【０１３５】
培養された哺乳動物細胞の多様な株におけるSTARエレメント機能
異種のタンパク質発現のための宿主細胞株の選択は、タンパク質の特性、収率及び単位コストのために重要なパラメータである。考慮例えばポスト翻訳変性、分泌経路能力及び細胞株不死は、特定の生物薬剤的な生成システムのために適切な細胞株を指示する。この理由のために、収率、予測可能性及び安定性の観点においてSTARエレメントによって与えられる利点は、多様の細胞株において取得可能であるべきである。これは、それがそもそもクローニングされているところのヒトU-2 OS細胞株、及びバイオテクノロジーにおいて広く適用されているCHO細胞株におけるSTAR6の機能を比較することによって試験された。
【０１３６】
物質及び方法：
実施例１１の実験が参照される。
【０１３７】
結果：
CHO細胞内のSEAPレポーター遺伝子の発現は、図8に表わされている；U-2 OS細胞におけるルシフェラーゼレポーター遺伝子の発現は、図９に示される。これらの2つの実験の結果の比較によって、STAR6エレメントは、両方の細胞株において機能的であることは明らかである：レポーター遺伝子発現はそれらの両方においてより予測可能であり、及び該レポーター遺伝子がSTAR６による位置効果から保護される場合、各細胞株のクローンはより高い収率を示した。これらの２つの細胞株は、異なる種（ヒト及びハムスター）並びに異なる組織型（骨及び卵巣）から得られ、このSTARエレメントは異種タンパク質発現を改善する際にその中で利用されうるところの宿主細胞の広い範囲を反映する。
【実施例１５】
【０１３８】
種々の転写プロモーターに関連されているSTARエレメント機能
導入遺伝子転写は、外来のプロモーターの制御下で導入遺伝子のオープンリーディングフレームを配置することによって達成される。プロモーターの選択は、異種のタンパク質の性質及び生成システムによって影響される。ほとんどの場合、強い構成的プロモーター（constitutive promoter）は、それらが提供できる高い収率の故に好まれる。幾つかのウィルスプロモーターは、これらの特性を有する；CMV-MIE（cytomegalovirus immediate early gene）のプロモーター／エンハンサー（「CMVプロモーター」）は、共通の生物化学的な使用において最強のプロモーターであると一般にみなされている（ボシャルトら、1985年；ドールら、1996年；フェッキング及びホフステッテル、1986年）。サルのウィルスSV40プロモーターもまた、どちらかというと強力であり（ボシャルトら、1985年；フェッキング及びホフステッテル、1986年）、且つ哺乳動物細胞ベクターにおける異所性の発現のためにしばしば使用される。Tet-Offプロモーターは導出可能である：該プロモーターは、tTAプラスミド（Clontech K1620-A）を発現する細胞株においてテトラサイクリン又は関連する抗生物質（ドキシサイクリンが通常使用される）の存在下で抑制され、及び抗生物質の除去は転写的導出を生じる（ドイシュレら、1995年；ゴッセン及びビュヤード、1992年；イズミ及びギルバート、1999年；ウマナら、1999年）。
【０１３９】
物質及び方法：
pSDH-Tet及びpSDH-CMVベクターの構築が、実施例１１に記載されている。pSDH-SV40は、プラスミド pSelect-SV40-Zeo（実施例１）からのSV-40プロモーター（プライマー D41及びD42）のPCR増幅によって構築され、引き続きSacII及びSalIでPCR生成物の消化された。pSDH-CMVベクターはCMVプロモーターを除去するためにSacII及びSalIで消化され、且つベクター及びSV40フラグメントはpSDH-SV40を生成するためにともにライゲーションされた。STAR6は実施例１１で記載されたようにMCSI及びMCSII内でクローニングされた。プラスミド pSDH-Tet、pSDH-Tet-STAR6、pSDH-Tet-STAR7、pSDH-SV40及びpSDH-SV40-STAR6は、製造者によって記載されたようにSuperFectを使用し,
U-2 OS内にpBabe-Puroで同時にトランスフェクションされた。細胞培養、ピューロマイシン選択及びルシフェラーゼアッセイは、実施例１１に記載されているように実施された。
【０１４０】
結果：
図９、１１及び１２は、3つの異なるプロモーターからのルシフェラーゼレポーター遺伝子の発現を比較する：2つの強く且つ構成的なウィルスプロモーター（CMV及びSV40）、及び導出可能なTet-Offプロモーター。全ての3つのプロモーターは、U-2 OS 細胞においてSTAR6エレメントとの関連においてテストされた。結果は、全ての3つのプロモーターからの収率及び予測可能性は、STAR6によって増加される。実施例１１及び１４に記載されているように、STAR6はCMVプロモーターの関連において有益である（図９）。同様の改善が、SV-40プロモーターとの関連において見られる（図１１）：最高発現するSTAR6クローンからの収率は、最良のpSDH-SV40クローンよりも２〜３倍良く、且つ6個のSTARクローン（20%の群集）は最良のSTARのないクローンよりも高い収率を有する。導出すする（低いドキシサイクリン）濃度下でTet-Offプロモーターの関連において、STAR6は導入遺伝子発現の収率及び予測可能性をまた改善する（図１２）：最高発現するSTAR6クローンは、最良のpSDH-Tetクローンよりも20倍高い収率を有し、及び9個のSTAR6クローン（35％の群集）は、最良のSTARのないクローンよりも高い収率を有する。STARエレメントはその導入遺伝子を保護する特性において多様的であり、それ故にそれは、転写の様々なバイオテクノロジー的に有益なプロモーターとの関連において機能する。
【実施例１６】
【０１４１】
STARエレメント機能は方向性でありうる
短い核酸配列が対称（例えば反復性（palindromic））でありうるのに対して、より長い自然に生じる配列は典型的には非対称である。結果として、核酸配列の情報内容は方向性であり、且つそれら自身の配列はそれらの5及び3末端に関して記載されうる。核酸配列情報の方向性は、どの組み換えDNA分子が当業者に知られている標準クローニング技術（サムブルックら、1989年）を使用しその中で組み立てられるかの調整に影響を与える。STARエレメントは、長く、非対称的なDNA配列であり、且つそれらがpSelectベクターにおいてそもそもその中でクローニングされる方向性に基づく方向性を有する。上記された実施例では、pSDHベクターにおける2つのSTARエレメントを使用し、これは方向的に保持された。この方向性は、ゼオシン耐性遺伝子に関連して、自然に又は5-3方向性として記載される（図１３参照）。この実施例では、STAR機能のための方向性の重要性が、pSDH-Tetベクターにおいてテストされる。pSDHベクターにおけるレポーター遺伝子は目的のSTARエレメントのコピーによって両方の側を両面に挟まれ、各STARコピーの方向性が考慮されなければならない。この実施例は、自然（native）の方向性を逆（opposite）の方向性と比較する（図１３）。
【０１４２】
物質及び方法：
STAR66エレメントは、実施例１１に記載されているようにpSDH-Tet内にクローニングされた。U-2 OS細胞は、プラスミド pSDH-Tet-STAR66- native及びpSDH-Tet-STAR66- oppositeで同時にトランスフェクションされた。夫々のクローンは分離され、そして培養された；ルシフェラーゼ発現のレベルは、記載されたように（以前に同じ）決定された。
【０１４３】
結果：
自然の方向性及び逆の方向性におけるSTAR66活性の比較の結果が、図１４に示される。STAR66が逆の方向性にある場合、一つのクローンのみの収率が合理的に高い（60ルシフェラーゼユニット）。その一方、STAR66が自然の方向性にある場合最高発現クローンの収率かなり高く（100ルシフェラーゼユニット）、且つ予測可能性は同様により高い：自然の方向性群集（30%）の7個のクローンが、逆の方向性群集からの最高発現クローンのレベルより上のルシフェラーゼを発現し、且つ自然の方向性群集（60％）の15個のクローンが、相対ルシフェラーゼユニットの10よりも上のルシフェラーゼを発現する。それ故に、STAR66機能は方向性であることが示される。
【実施例１７】
【０１４４】
STARエレメントとの関連における導入遺伝子の発現はコピー数依存性である
異質タンパク質発現のための導入遺伝子発現ユニットは、細胞分割の間に安定な保存を保証するために宿主細胞のゲノム内に一般的に組み込まれる。組み込みは、ゲノム内に挿入されるべき発現ユニットの一つ又は複数のコピーを生じうる：複数のコピーはタンデムアレーとして存在しても又は存在しなくてもよい。STARエレメントによって保護された導入遺伝子のために示された増加した収率（上記に同様）は、STARエレメントは導入遺伝子発現ユニットがゲノム内で組み込みの部位に関連付けられた転写に対して影響に独立的に機能することを許容する（配置効果からの独立性（ボイヴィン及びデュラ、1998年））。それは、STARエレメントは各発現ユニットがそれらがタンデムアレーとして組み込まれた場合に発現ユニットの近傍するコピーに独立的に機能することを許容することをさらに示唆する（反復導出された遺伝子サイレンシングからの独立性（independence from repeat-induced gene silencing）（ガーリックら、1998年））。コピー数依存性は、下記の実施例で記載されるように導入遺伝子発現レベル及びコピー数の間の関係から決定される。
【０１４５】
物質及び方法：
U-2 OS細胞は、pSDH-Tet-STAR10で同時トランスフェクションされ、そして記載されたように（以前に同様）ピューロマイシン選択下で培養された。8個の個々のクローンが分離され、そしてさらに培養された。その後、細胞は収穫され、そして一つの部分は、記載したように（以前に同様）ルシフェラーゼ活性を試験された。残った細胞は溶解され、そしてゲノムDNAはDNeasy Tissue Kit（QIAGEN 69504）を使用し製造者によって記載されたように精製された。DNAサンプルは、UV分光測定法によって数値化された。3マイクログラムの各ゲノムDNAサンプルが、製造者によって記載されたように（New England Bioabs）一晩PvuII及びXhoIで消化され、そしてアガロースゲル電気泳動法によって分離された。DNAフラグメントは、記載されたように（サムブルックら、1989年）ナイロン膜に移され、そして（BamHI/SacII-消化されたpSDH-Tetから分離された）ルシフェラーゼ遺伝子に対して放射活性的にラベル化されたプローブでハイブリダイズされた。ブロット（blot）は、記載されたように（サムブルックら、1989年）洗われ、そしてフォスファーイメージャースクリーン（Personal F/X,BioRad）にさらされた。生じたオートラジオグラム（図１５）はルシフェラーゼDNAバンドの相対強度を決定するために、デンシトメトリーによって解析され、それは導入遺伝子コピー数を表わす。
【０１４６】
結果：
pSDH-Tet-STAR10クローン群集からのコロニーにおけるルシフェラーゼの酵素活性及びコピー数（DNAバンド強度）が、図１６に示される。導入遺伝子コピー数は、これらのpSDH-Tet-STAR10クローン（r=0.86）におけるルシフェラーゼ発現のレベルに高く相関されている。このことは、STAR10が導入遺伝子発現ユニットに対してコピー数増加依存性を与え、タンデムアレーにおける他の導入遺伝子コピーに独立及び組み込みの部位で遺伝子サイレンシング影響に独立する導入遺伝子発現を作成する。
【実施例１８】
【０１４７】
エンハンサーブロッカーとしてのしかしエンハンサーではないSTARエレメント機能
遺伝子プロモーターは、転写を開始するためにそれらの能力に対してポジティブな及びネガティブな影響の両方に付される。ポジティブな影響を働かせるエレメントの重要な分類は、エンハンサーである。エンハンサーは、それらが遠くに配置された場合（多くのキロ塩基対）にでさえ、プロモーターに影響を特徴的に与えることができる。六量体クロマチン形成（例えばポリコームグループタンパク質）によって作用するネガティブな影響は上記に記載されており、且つそれらはSTAR活性のターゲットである。エンハンサー機能のための及び六量体クロマチン形成のための生化学的な基礎は、基本的に類似しており、それ故にそれらはいずれも、DNAに対するタンパク質の結合を含む、それ故に、STARエレメントがネガティブ影響と同様にポジティブ影響をブロックすることができるかどうかを決定すること、換言すれば組み込みの部位の近傍におけるゲノム的エンハンサーからの導入遺伝子を保護することが重要である。エンハンサー活性からの導入遺伝子を保護する能力は、バイオテクノロジーの用途に導入遺伝子の安定な且つ予測可能な能力（performance）を保証する。この実施例は、エンハンサーブロッキングアッセイにおけるSTARエレメントの能力を検査する。
【０１４８】
それらの機能に対して重要であるところのSTAR活性の他の特徴は、それらは導入遺伝子に対して与える増加した収率である（実施例１１）。六量体クロマチン形成タンパク質が候補STARエレメントに対して近傍に結合される場合、複数のSTARがゼオシン発現の高いレベルを維持するためにそれらの能力に基づき分離される。複数のSTARはゼオシン発現ユニット内に六量体クロマチンの核酸をブロックすることが予測される故に、高い発現が、生じるために予測される。しかしながら、第２のシナリオは、ゼオシン耐性クローンにおけるDNAフラグメントがエンハンサーを含むことである。エンハンサーは、ポリコーム−グループタンパク質例えばSTARスクリーンの方法（チンク及びパロ、1995年）において使用されるそれらの抑制効果を克服する能力を有することが示されている。この現象によって分離されたエンハンサーは、間違ったポジティブとみなされ、それ故にエンハンサーはSTARのために本明細書中に請求された特性を有しない。STARエレメントがエンハンサーでないことを示すために、それらはエンハンサーアッセイにおいて試験されている。
【０１４９】
エンハンサーブロッキングアッセイ及びエンハンサーアッセイは、方法的に及び概念的に類似である。該アッセイは、図１７において体系的に示される。エンハンサーをブロックするためのSTARエレメントの能力は、E47/E-boxエンハンサーシステムを使用し実行される。E47タンパク質は、それがそれらのプロモーターの近傍に配置されたE-box DNA配列に結合されている場合、プロモーターによって転写を活性化することができる（クォングら、2002年）。E47は、B及びTリンパ球分化の制御において通常含まれる（クォングら、2002年）が、しかしそれは異所的に発現した場合、多様な細胞型において機能することが可能である（ピーターソンら、2002年）。E-boxは反復性（palindromic）DNA配列、CANNTGである（クノフラーら、2002年）。エンハンサーブロッキングアッセイにおいて、E-boxは、発現ベクターにおいて（最小プロモーターを含む）ルシフェラーゼレポーター遺伝子の上流に配置される。STARエレメントのためのクローニング部位は、E-boxと該プロモーターとの間に配置される。E47タンパク質は、第2のプラスミド上にコードされる。アッセイは、E47プラスミド及びルシフェラーゼ発現ベクターの両方を細胞内にトランスフェクションすることによって実行される：E47タンパク質は、E-boxに発現され且つE-boxに結合され、及びE47/E-box複合体はエンハンサーとして作用することができる。ルシフェラーゼ発現ベクターがSTARエレメントを含まない場合、E47/E-box複合体はルシフェラーゼ発現を助長する（図１７、状況１）。STARエレメントがE-boxとプロモーターとの間に挿入される場合、エンハンサーをブロックするためのそれらの能力が、ルシフェラーゼ活性の低減した発現によって示される（図１７、状況２）；STARがエンハンサーをブロックできない場合、ルシフェラーゼ発現は活性化される（図１７、状況３）。
【０１５０】
エンハンサーとして作用するためのSTARエレメントの能力は、同一のルシフェラーゼ発現ベクターを利用する。E47の不存在において、E-boxそれ自身は転写に影響を与えない。代わりに、STARエレメントによるエンハンサー行動は、ルシフェラーゼ転写の活性化を結果する。アッセイは、E47プラスミドなしにルシフェラーゼ発現ベクターをトランスフェクションすることによって実行される。発現ベクターがSTARエレメントを含まない場合、ルシフェラーゼ発現は低い（図１７Ｂ、状況１）。STARエレメントがエンハンサー特性と有しない場合において、STARエレメントがベクター内に存在するときルシフェラーゼ発現は低い（図１７Ｂ、状況２）。STARエレメントがエンハンサー特性を有する場合、ルシフェラーゼ発現はSTAR含有ベクターにおいて活性化される（図１７Ｂ、状況３）。
【０１５１】
物質及び方法：
ルシフェラーゼ発現ベクターは、ｐGL3-E-boxルシフェラーゼ（W.Romanowのギフト）を生成するために、E-box及びプラスミドｐGL3-basic（Promega E1751）におけるルシフェラーゼ遺伝子のプラスミド mu-E5+E2x6-cat（ルエジンスキーら、1991年）上流からのヒトアルカリ性フォスファターゼ最小プロモーター（a human alkaline phosphatase minimal promotor）を挿入することによって構築される。E47発現プラスミドは、pHBApr-1-neoプラスミドにおけるベータ−アクチンプロモーターの制御下でE47オープンリーディングフレームを含む；E47は連続的にこのプラスミド（W.Romanowのギフト）から発現される。
【０１５２】
STARエレメント1、2、3、6、10、11、18及び27は、ルシフェラーゼ発現ベクター内にクローニングされている。ショウジョウバエscsエレメントおよびニワトリベータ−グロビンHS4-6x コア（「HS4」）エレメントを含むクローンは、ポジティブコントロール（それらは、エンハンサーをブロックし且つ固有のエンハンサー特性を有しないとして知られている（チュングら、1993年；ケルム及びシェドル、1992年））であるとして含まれ、及びエンプティルシフェラーゼ発現ベクターは、ネガティブコントロールとして含まれている。全てのアッセイは、U-2 OS細胞株を使用し実行された。エンハンサー−ブロッキングアッセイにおいて、E47プラスミドは、ルシフェラーゼ発現ベクター（エンプティベクター、又はSTAR若しくはポジティブコントロールエレメントを含む）で同時にトランスフェクションされた。エンハンサーアッセイにおいて、E47プラスミドは、エンハンサー活性のためのポジティブコントロールとしてSTARのないルシフェラーゼ発現で同日にトランスフェクションされた；全ての他のサンプルは同時トランスフェクションの間にモック（mock）プラスミドを受けた。一時的にトランスフェクションされた細胞は、プラスミドトランスフェクション（以前に同様）後に、48時間ルシフェラーゼ活性をアッセイされた。E-boxを含まない又はSTAR/コントロールエレメントを含まないプラスミドから発現したルシフェラーゼ活性は差し引かれ、及びルシフェラーゼ活性は、記載されたように（以前に同様）タンパク質含量に対して正規化された。
【０１５３】
結果：
図１８は、エンハンサー−ブロッキングアッセイの結果を示す。STARエレメント（又は既知のエンハンサー−ブロッキングエレメント scs及びHS4）の不存在下で、E-47/E-boxエンハンサー複合体は、ルシフェラーゼ（「ベクター」）の発現を活性化する。；発現のこの助長されたレベルは、100に正規化されている。エンハンサー活性は、テストされた全てのエレメントによってブロックされる。エンハンサー活性は、期待されたように（ベルら、2001年；ゲラシモワ及びコルセス、2001年）、HS4及びscsエレメントによってまたブロックされる。これらの結果は、転写的サイレンシングの拡散をブロックするためのそれらの能力（ネガティブ影響）に加えて、STARエレメントはエンハンサーの活性をブロックすることができる（ポジティブ影響）ことを示す。
【０１５４】
図１９は、エンハンサーアッセイの結果を示す。E47/E-box複合体による増強によるルシフェラーゼ発現のレベルは、100にセットされた（「E47」）。比較として、STARエレメントは、ルシフェラーゼ発現の有意な活性化をもたらさない。期待されるように、scs及びHS4エレメントはレポーター遺伝子の活性をまた生じない。それ故に。少なくともテストされたSTARエレメントはエンハンサー特性を保有しないと結論付けられる。
【実施例１９】
【０１５５】
サイレンシングを導出するクロマチン（SINC; Silencing Inducing Chromatin）エレメントの特徴
物質及び方法：
SINCスクリーンの一般的な特性は実施例１に記載されており、及びそれの幾つかの観点はここに要約される。ゲノムDNAにおけるSINCエレメントをスクリーニングするために使用されるpSSベクターの一つのバージョンは、pSS-codA::uppである（図２０）。それは、2つのSTAR６エレメントによって両面を挟まれた、自殺遺伝子発現ユニットから成る。Tet-Offプロモーターの制御下でcodA::upp自殺遺伝子から成る発現ユニットは、BglII制限サイトの下流である。pSSベクターの第二のバージョン、pSS-hrGFP（図２１）は、一つのSTAR6エレメントをSTAR8での置換及び自殺遺伝子を緑蛍光タンパク質（Stratagene 240059）をコードするhrGFP遺伝子での置換によって生成された。22番染色体（Research Genetics 96010-22）からのヒトゲノムDNAは、Sau3AIで部分的に消化され、かつサイズフラクション化された。0.5から10キロ塩基対フラクションは、pSS-codA::uppのBglII部位内にライゲーションされた。このライブラリーは、1.2キロ塩基対の平均挿入サイズを有する〜20,000独立クローンで表わされる。該ライブラリーは、大腸菌内で増幅される。増幅されたライブラリーからの精製されたDNAは、標準技術（リン酸カルシウム；Life Technologies 18306-019）によってU-2 OS/Tet-Off細胞（ファンデルフラッグら、2000年）内にトランスフェクションされた。コントロールトランスフェクションは、エンプティpSS-codA::uppベクターDNAを使用して実行され、2400ハイグロマイシン耐性コロニーを生じた。トランスフェクションされた細胞は、高ドシサイクリン（10ng/ml）で３週間を超えてハイグロマシン耐性（25mg/ml）のために選択され、及び1800ハイグロマイシン耐性コロニーは、ライブラリートランスフェクションから回収された。その後、これらのコロニーは、プロドラッグ５−フルオロウラシル（5-FC）を4日目に5mg/mlの増加になるように1mg/mlで、10ng/mlのドキシサイクリン濃度でインキュベートされた。3週間後、3個の弱く成長する（エンプティpSS-codA::uppでトランスフェクションされた）コントロールコロニーを除く全ては、死んだいた；58個のライブラリートランスフェクションされたコロニーが生き残った。これらのコロニーは、プロドラッグ処理から回収されることを可能にし、そしてさらに培養された。５−FC耐性単離物が回収され、該細胞は溶解され、そしてSINCエレメントを回収するために、DNAの一部分がプライマーD30及びD51を使用しPCR増幅に付された。５−FC耐性コロニーからのPCR生成物は、慣用の方法（サムブルックら、1989年）によって、pBluescript II SK(+) プラスミド（Stratagene 212207）のHindIII及びXhoI部位の間でクローニングされた。候補SINCエレメントのDNA配列は、pBluescriptベクターのための商業的に利用可能なプライマー（Stratagene 300301及び300302）を使用し、記載されたように決定された（前記に同様）。これらのSINCエレメントの配列は、表４Ｂにあらわされる。
【０１５６】
6個の候補エレメントが、それらの自然の方向性においてプラスミドpSS-hrGFP内にクローニングされ、及び生じたプラスミドは、U-2 OS/Tet-Off細胞内にトランスフェクションされた。ハイグロマイシン耐性のための選択後、pSS-hrGFP-SINC形質転換体の群集は、高いドキシサイクリン濃度（10ng/ml）でさらに培養された。合計の細胞性RNA（cellular RNA）は、製造者によって記載されたように、RNeasy Mini Kit（QIAGEN 74104）を使用して抽出された。これらの群集におけるGFP mRNA 豊富（abundance）のノーザンブロット法分析は、標準技術（サムブルックら、1989年）を使用して評価された。GFPプローブは、phrGFP-1における塩基対690〜1419を含むBamHI-EcoRIフラグメントであった。ブロットは、pSS-hrGFP導出されたプラスミドコピー数のためのコントロールとしてハイグロマイシンmRNAのために且つ遺伝的にコードされたmRNA量のためのコントロールとしてベータアクチンのためにまたプローブされた。ハイグロマイシンプローブは、pREP4(Invitrogen)における8219〜10144から伸張するSfuI-Sal Iフラグメントであり、及びベータ−アクチンプローブは、Clontech, ＃9800-1からであった。ハイブリダイゼーション及び洗浄後、該ブロットはフォスファーイメージャースクリーンに付され、及び放射活性シグナルが、BioRad Personal F/X phosphorimagerを使用して可視化され且つ数値化された。
【０１５７】
結果：
GFPレポーター遺伝に近接してクローニングされたSINCエレメントは、レポーター遺伝子転写のサイレンシングを導出するが、他の遺伝子の転写に影響を与えない。SINC活性の正確な測定は、絶対的なGFP発現を単に測定するのではなくて、2つの参照遺伝子（reference gene）の発現に相対的なGFPの発現を決定することによるこの事実の利点である。一つの参照遺伝子は、pSS-hrGFPプラスミド（STARエレメントによって定義されるドメインの外側、図21）上のハイグロマイシン耐性遺伝子であり、及び他は遺伝子的ベータ−アクチン遺伝子である。SINC活性は、ハイグロマイシン及びベータ−アクチンシグナルに対するGFPシグナルの割合における減少としてRNAブロット分析によって数値化される。特徴付けられている候補SINCエレメントの間で、あるものは、GFP転写において非常に相対的な減少を示し、これらのDNAはサイレントクロマチンの形成を導出することができることを示す。（表４Ｂにおいてラベル化されたPSINCS35）SINC35エレメントは、これらの候補の最強の活性を有する。それは、GFP/ハイグロマイシン割合において69%減少及びGFP/ベータ−アクチンシグナルにおける75%減少をもたらす。オリジナルの明細書中に記載された及び本明細書の提出までに分離され且つ特徴付けらてれている他の5つの候補におけるSINC活性の強度は、より弱い。それ故に、SINC35は、多様なバイオテクノロジー的用途において、サイレントクロマチンの導出のための潜在的な遺伝的エレメントとして優れた能力を有する。
【実施例２０】
【０１５８】
STARエレメントはマウスとヒトの間で保存される
ヒトゲノムデータベース（htt://genome.ucsc.edu/cgi-bin/hgGateway）に対するSTAR DNA配列のBLAT分析は、これらの配列の幾つかがヒトゲノムの他の領域と高い配列相同性を有することが明らかにである。これらの複製された領域は、候補STARエレメントである；それらがSTAR活性を示さない場合、それらはクローニングされたSTARのパラログ(paralogs)とみなされる（2個の遺伝子又は遺伝的エレメントは、それらが複製イベントから得られる場合、パラロガス（paralogous）と言われる（リー、1997年））。
【０１５９】
マウスゲノム（http://www.ensembl.org/Mus_musculus/blastview）に対するヒトSTARのBLAST分析は、マウスとヒトとの間に高い配列保存の領域をまた表わす。この配列保存は、65個のヒトSTARエレメントのうちの15個のフラグメントに見られている。保存は64%〜89%の範囲であり、141個の塩基対の長さを超え909塩基対までである（表８）。配列保存のこれらの程度は、有意に且つこれらのDNA配列が同様にマウスゲノム内でSTAR活性を与えても良いことを示唆する。表８のマウス及びヒトゲノムからの配列の幾つかは、オルトログ（ortholog）として厳密に定義される（2個の遺伝子又は遺伝的エレメントは、それらが種形成イベント（リー、1997年）から得られる場合、オルトログ（orthologous）と言われる。）。例えば、STAR6は、ヒト及びマウスゲノムの両方においてSLC8A1及びHAAO遺伝子の間にある。他の場合、クローニングされたヒトSTARは、ヒトゲノム内にパラログを有し、及びそのオルトログはマウスゲノム内で識別されている。例えば、STAR3aは、ヒト15番染色体の15q11.2のフラグメントである。この領域は、ヒト5番染色体上の5q33.3でのDNAフラグメントと96.9%同一性があり（パラロガス）、それはIL12B インターロイキン遺伝子に近い。これらのヒトDNAは、マウス11番染色体上の11B2領域のフラグメントとほぼ80%同一性を共有する。該11B2フラグメントは、（マウス）IL12Bインターロイキン遺伝子にも近い。それ故にSTAR3a及びマウス11B2フラグメントは、パラログとして厳密に定義されうる。マウス及びヒトゲノムにおけるSTAR活性が高い配列保存の領域の間で共有されるという仮説を試験するために、マウスにおいて、保存された配列を有するヒトSTARの一つ、STAR18がより詳細に解析されている。オリジナルのSTAR18クローンで検出されたマウスゲノムにおける配列保存は、約500塩基対のためにヒト2番染色体に対して左側に伸張される（図２２；左及び右は、2番染色体のアームの標準記述に関連する）。この実施例では、我々は、配列保存の領域が、オリジナルのクローンよりも長さにおいてより伸張する「ヒト」における「自然に生じる（naturally occurring）」STARエレメントかどうかを試験する。我々は、このSTARエレメントのSTAR機能が、マウス及びヒトの間に保存されるかどうかをまた試験する。STAR18の周りのマウス/ヒト配列の領域は、PCR増幅によって3つのフラグメント中のヒトBACクローンRP11-387A1から回収された：完全な領域（プライマーE93及びE94）、左方向の半分（プライマーE93及びE92）、及び右方向の半分（プライマーE57及びE94）。相同性マウス領域からの対応するフラグメントが、同一のファッション（夫々、プライマーE95及びE98、E95及びE96、並びにE97及びE98）においてBACクローン RP23-400H17から回収された。全てのフラグメントは。pSelectベクター内にクローニングされ、且つU-2Os/Tet-Off/LexA-HP1細胞株（以前に同様）内にトランスフェクションされた。次の転写、ハイグロマイシン選択は。トランスフェクションされた細胞を選択するために実行された。LexA-HP1タンパク質は、ドキシサイクリン濃度を低くすることによって導出され、且つ抗生物質ゼオシンに耐える（STAR活性の測定）ためのトランスフェクションされた細胞の能力が、細胞成長を監視することによって評価された。
【０１６０】
【表８】

¹ヒトゲノムにおけるSTARエレメントの細胞遺伝位置。
²マウスゲノムにおけるSTARエレメントオルトログの細胞遺伝位置。
³高い配列類似性を示す領域の長さ、及び類似性のパーセント。ある場合では、一つより上の高い類似性のブロックが生じる；それらの場合、各ブロックは、別々に記載される。類似性＜60%は、有意であると考えられない。
【０１６１】
結果：
オリジナルSTAR18クローンは、ゼオシン耐性遺伝子のサイレンシングを防止するためにその能力に基づきpSelectベクター内にライゲーションされたヒトDNAを消化されたSau3AIから分離された。マウスゲノムを有するヒトSTAR18クローン（497塩基対）の配列は、オルトロガスヒト及びマウスSTAR18領域の間に高い配列類似性（72%）を示した。それは、クローニングされた領域の左端に定義するSau3AIの488塩基対直接の左側に伸張する領域において高い類似性（73%）をまた発見する。これらの領域の外で、ヒトとマウスDNAの間の配列類似性は、60%以下に落ちる。
【０１６２】
図２２に示されているように、ヒト及びマウスSTAR18エレメントの両方が、lexA-HP1抑制タンパク質を発現する宿主細胞へのゼオシンに対する生存を与える。オリジナルの497個の塩基対STAR18クローン及びそのマウスオルトログはいずれも、成長する能力を与える（図２２、ａ及びｄ）。両方のゲノムからの高い類似性の近接する488個の塩基対領域はまた、成長する能力を与え、及び事実それらの成長表現型はオリジナルのSTAR18クローン（図２２、ｂ及びｅ）のそれよりもより激しい。配列類似性の完全な領域が試験された場合、マウスとヒトの両方からのこれらのDNAは成長を与え、及び成長表現型は、2つのサブ−フラグメントよりもより激しい（図２２、ｃ及びｆ）。これらの結果は、ヒトSTAR18のSTAR活性は、マウスからのそのオルトログ内に保存されることを示している。これらオルト領域間の高い配列保存は特に注目に値しなぜならばそれらはタンパク質をコードする配列ではないためであり、それらは変異を通じてそれらの進化的分岐を防いでいるある調節機能を有することの結論を導く。
【０１６３】
この分析は、オリジナルのスクリーニング・プログラムによって識別されたクローニングされたSTARエレメントが、ある場合において部分的なSTARエレメントを表してもよく、且つそれらがその中に埋め込まれるところのゲノムDNAの分析はより強力なSTAR活性を有する配列を識別することができるということを示す。
【実施例２１】
【０１６４】
STARエレメントは特徴的なDNA配列モチーフを含む
STARエレメントは、導入遺伝子発現の観点においてそれらの抗抑制表現型に基づき分離される。この抗抑制表現タイプは、STARエレメントに関連付けられているクロマチン形成を調節する基礎的な生化学的プロセスを反映する。これらのプロセスは、典型的に配列特異的であり且つタンパク質結合又はDNA構造から生じる。これは、STARエレメントがDNA配列類似性を共有することを示唆する。STARエレメント間の配列類似性の識別は、機能的スクリーン及びテストによってすでに識別されているエレメントの特性である配列モチーフを提供する。該配列モチーフは、その機能が本特許の請求項に一致するところの新しいSTARエレメントを認識し且つ請求するためにまた有益である。該機能は、改善された収率及び真核宿主細胞内で発現される導入遺伝子の安定性を含む。
【０１６５】
STARエレメントを特徴付ける配列モチーフを識別する他の利点は、：（１）ゲノムデータベースにおける新しいSTARエレメントの予測及び識別のための探索モチーフの提供、（２）エレメントの修飾のための理論的根拠の提供及び（３）STAR活性の機能的分析のための情報の提供を含む。バイオインフォマティックスを使用し、STARエレメント間の配列類似性が識別されている；該結果は、本実施例で表わされる。
【０１６６】
バイオインフォマティックス及び統計的背景。
調節DNAエレメントは、配列特異的DNA結合性タンパク質との相互作用を介して典型的に機能する。DNAエレメント例えばその調節特性が識別されているがその相互作用タンパク質が知られていないところのSTARエレメントのバイオインフォマティックス分析は、配列モチーフの識別のための統計学的アプローチを要求する。これは、参照配列（例えば完全なヒトゲノム）と比較して、調節DNAエレメント（例えばSTARエレメント）のセットにおいて過剰に現れている短いDNA配列パターンを検出する方法によって達成されうる。該方法は、各調節エレメントにおけるパターンに観察され且つ期待された事象の数を決定する。期待された事象の数は、参照配列における各パターンの観察された事象の数から計算される。
【０１６７】
DNA配列パターンは、所定の長さ例えば6塩基対のオリゴヌクレオチドでありうる。最も簡単な分析において、4つのヌクレオチド（A、C、G及びT）から成る6塩基対オリゴヌクレオチド（六量体）にとって、4⁶＝4096の明らかなオリゴヌクレオチド（AAAAAA〜TTTTTTまでの全ての組み合わせ）がある。調節配列及び参照配列が完全なランダムであり且つA、C、G及びTヌクレオチドの等しい特性を有した場合、その結果、各六量体の期待された頻度は、1/4096（〜0.00024）である。しかしながら、参照配列における各六量体の真の頻度は、G：C塩基対などの含量における傾向によりこれよりも典型的に異なる。それ故に、参照配列における各オリゴヌクレオチドの頻度は、パターンのための「頻度テーブル」を生成するために、数えることによって経験的に決定される。
【０１６８】
その後、参照配列の該パターン頻度テーブルは、調節的エレメントセットにおける各パターンの事象の期待された頻度を計算するために使用される。期待された頻度は、パターンの事象の観察された頻度と比較される。セットにおける「過剰に表わされている（over-represented）」パターンが識別される；例えば、六量体ACGTGAが、20キロ塩基対の配列において5回生じることを期待されるが、15回生じることを観察される場合、その結果それは3倍過剰に表わされている。エレメントがゲノム全体のように同一の六量体組成を有していた場合、その六量体配列パターンの15事象の10回が調節エレメント内に期待されない。いったん過剰に表わされているパターンが識別される場合、統計テストはそれらの過剰表現が有意であるか又は偶然によるものかどうかを決定するために適用される。このテストのために、有意なインデックス、「sig」が各パターンのために計算される。有意なインデックスは、各パターンの事象の可能性から導出され、それは2項分布によって見積もられる。可能性は可能なパターン（六量体について4096）の数を考慮する。最も高いsig値は、最も過剰に表わされているオリゴヌクレオチド（ファンヘルデンら、1998年）に対応する。実務的な用語において、sig＞＝0であるオリゴヌクレオチドは、過剰に表わされていると考えられる。sig＞＝0であるパターンは、調節エレメント配列のセットにおいて一回の機会（＝10⁰）により過剰に表れるようである。しかしながら、sig＞＝１でパターンが、10（＝10¹）配列セットにいて一回、sig＞＝２が100（＝10²）配列セットにおいて一回などと過剰に表れることが期待される。調節エレメントセットにおいて非常に過剰に表わされているパターンは、分類のためのモデル及び調節エレメント配列予測を展開するために使用される。これは、判別式分析（Discriminant Analysis）、いわゆる当業者に知られた統計的分類（ヒュベルティ、1994年）の「管理された（supervised）」方法を使用する。判別式分析において、既知の又は分類された項目（例えば、STARエレメント）のセットは、特定の変異体（例えば配列パターン例えば六量体）に基づきそれらの項目を認識するためのモデルを「トレーニングする（train）」ために使用される。その結果、トレーニングされたモデルは、他の項目が既知の項目のセット（例えば、DNA配列がSTARエレメントである）に属するように分類されるべきであるかどうかを予測するために使用される。この実施例では、トレーニングセットにおける既知の項目が、STARエレメント（ポジティブなトレーニングセット）である。それらは、STARエレメントと同じ長さを有するゲノム（ネガティブなトレーニングセット）からランダムに選択される配列と対照される。判別式分析は、ポジティブを判別する変化体のセットに基づきネガティブからポジティブを判別するための基準を確立する；この実施例では、変異体は、非常に過剰に表わされているパターン（例えば、六量体）である。
【０１６９】
過剰に表わされているパターンの数がトレーニングセットのサイズと比較して高い場合に、該モデルは過剰なトレーニングによりバイアスをかけられうる。過剰トレーニングは、変異体のフォワードステップワイズ選択を適用することによって回避される（ヒュベルティ、1994年）。ステップワイズ判別式分析の目標は、ポジティブとネガティブとの間で最大の判別式分析を提供する変異体の最小の数を選択することである。該モデルは、ポジティブな及びネガティブなトレーニングセットにおける項目を適切に分類するためのそれらの能力のための変異体を一つずつ評価するためにトレーニングされる。これは、モデルに対する新しい変化体の添加がモデルの予言的な力を非常に増加することのないまで（すなわち、分類エラー割合が最小化されるまで）行われる。その結果、この最適化されたモデルは、「新しい」項目がポジティブか又はネガティブかどうかを予測するための試験をするために使用される（ヒュベルティ、1994年）。
【０１７０】
複雑な項目例えばDNA配列にとって、ポジティブトレーニングセットのあるエレメントがネガティブ（間違ったネガティブ；false negatives）として分類され、及びネガティブトレーニングセットのあるメンバーはポジティブ（間違ったポジティブ；false positives）として分類される。トレーニングされたモデルが、新しい項目をテストするために適用される場合、同じような誤分類の型が生じることが期待される。明細書中に記載したバイオインフォマティックス方法において、第１のステップ、パターン頻度分析は、配列パターンの大部分のセット（例えば、全ての4096六量体）を、非常に過剰に表わされたパターンの最小セット（例えば100六量体）にまで減少する；第２のステップ、ステップワイズ判別式分析は、過剰に表わされたパターンのセットを、最大の判別力を有するそれらのパターンのサブセット（例えば、5〜10六量体）にまで減少する。それ故に、このアプローチは、調節DNAエレメント例えばSTARエレメントを識別するための、簡単且つ健全な（rubst）基準を提供する。
【０１７１】
DNA結合性タンパク質は、それらが占領する結合サイトの型に基づき区別される。あるものは隣接している配列を認識する；この型のタンパク質にとって、長さ6塩基対（六量体）のオリゴヌクレオチドであるパターンは、バイオインフォマティクス分析（にとって実りのあるものであるファンヘルデンら、1998年）。他のタンパク質は、二分染色体を配列するために結合する：接触は、固定された幅の非保存された領域によって分離された高く保存されたトリヌクレオチドの対の間に作成される（ファンヘルデンら、2000年）。二分染色体結合性タンパク質によって結合してもよいSTARエレメントにおける配列を識別するために、頻度分析がこの型のパターンのために行われ、ここで二つのトリヌクレオチド間のスペースは0〜20まで変化される（すなわち、XXXN{0-20}XXX、ここでXはトリヌクレオチドを構成する特定のヌクレオチド、及びNは長さにおいて0〜20塩基対のランダムヌクレオチドである）。二分染色体頻度分析の結果は、上記したように線形判別式分析のためにまた使用される。
【０１７２】
物質及び方法：
元の特許出願に記載されている遺伝的スクリーンを使用し、66個のSTARエレメントがヒトゲノムDNAから最初に分離され、且つ詳細に（表６）特徴付けられた。該スクリーンは、胎座（Clontech 6550-1）から精製され又はバクテリアの/P染色体（BAC/PAC）人工クロマチン内に運ばれているのいずれかで、ヒトゲノムDNAのSau3AI消化によって構築された遺伝子ライブラリー上で実行された。BAC/PACクローンは、1番染色体（クローン RP1154H19及びRP3328E19）の領域からの、ヒト遺伝子（クローン RP1167F23、RP1170019及びRP11387A1）のHOXクラスタからの又はヒト22番染色体（Research Genetics 96010-22）からのゲノムDNAを含む。該DNAはサイズフラクションされ、そして0.5〜2kbサイズフラクションは、標準技術（サムブルックら、1989年）によって、BamHI-消化されたpSelectベクター内にライゲーションされる。低いドキシサイクリン濃度でゼオシンに対する抵抗性を与えるヒトゲノムDNAを含むpSelectプラスミドが分離され且つ大腸菌内で増殖された。表６のSTARエレメントを生じたスクリーンは、ヒトゲノムのほぼ1〜2％でアッセイされている。
【０１７３】
これら66個のプラスミド内のヒトゲノムDNAは挿入は、Beckman CEQ2000 automated DNA sequencerを使用し製造者の指示書を用いて、ジデオキシ法（サンガーら、1977年）によってシーケンスされた。簡単に言えば、DNAは、QIAprep Spin Miniprep及びプラスミド Midi Kits（夫々、QIAGEN 27106及び12145）を使用し、大腸菌から精製された。環状解読（cycle sequencing）が、二分染色体ターミネーター（CEQ Dye Terminator Cycle Sequencing Kit, Beckmann 608000）の存在において、pSelectベクター（プライマー D89及びD95、表５）に対応するカスタムオリゴヌクレオチドを使用して実行された。組み立てられたSTAR DNA配列は、BLAT（Basic Local Alignment Tool（ケント、2002年））；http://gonome.ucsc.edu/cgi-bin/hgGateway；表６）を使用し、ヒトゲノム（データベースは。2001年8月に作成された）内に配置された。概して、組み合わされたSTAR配列は、平均長1.3キロ塩基対とともに、85.6キロ塩基対を含む。
【０１７４】
ヒトゲノムDNA内のSTARエレメントを区別する配列モチーフは、2段階の工程を使用してバイオインフォマティックス分析によって、次のように（体系的な図の図２３を参照）識別された。分析は２つの入力データセットを有する：（１）STARエレメント（STAR１−STAR65が使用された；表６）のDNA配列、及び（２）ヒトゲノムのDNA配列（1番染色体を除き、それはその大きいサイズによる含むことが実現不可能であった；二分染色体分析にとって、ヒト遺伝的DNA配列（〜27Mb）のランダムサブセットが使用された）。
【０１７５】
パターン頻度分析：
分析における第１のステップは、RSA-Toolsソフトウェア（調節配列分析ツール；http://www.ucmb.ulb.ac.be/bioinfomatics/rsa-tools/；次の情報を決定するための参照基準（ファンヘルデンら、1998年；ファンヘルデンら、2000年、ファンヘルデンら、2000年）：（１）ヒトゲノム内の全ての二分染色体及び六量体オリゴヌクレオチドの頻度；（２）65個のSTARエレメントにおけるオリゴヌクレオチド及び二分染色体の頻度；及び（３）ゲノムと比較してSTARエレメント内の過剰に表わされたそれらのオリゴヌクレオチド及び二分染色体の重要な複数のインデックス。コントロール分析は、表６のSTARエレメントの長さに一致するヒトゲノム（すなわち、2689ラ10³キロ塩基対））からランダムに選択された65個の配列で行われた。
【０１７６】
判別式分析：
過剰に表わされたオリゴヌクレオチド及び二分染色体は、線形判別式分析（ヒューベルティ、1994年）によってSTARエレメントの予測のためのモデルをトレーニングするために使用された。変異体の予備選択は、頻度分析の過剰に表わさているオリゴヌクレオチド（oligos）又は二分染色体からの最高の夫々の判別力を有する50個のパターンを選択することによって実行された。その結果、これらの予備選択された変異体は、変異体の最も判別できる組み合わせを選択するために（ヒュベルティ、1994年）、ステップワイズ線形判別式分析におけるモデルトレーニングのために使用された。変異体選択は、分類エラー割合（誤ったネガティブ分類のパーセント）を最小化することに基づいていた。さらに、期待されたエラー割合は、（誤ったポジティブ分類のパーセントを最小化する）ランダム配列のコントロールセットに対する同一の判別可能なアプローチを適用することによって見積もられた。
【０１７７】
判別式分析のトレーニング段階からの予測モデルは、２つの方法でテストされた。第１に、モデル（トレーニングセット）を生成するために使用されたSTARエレメント及びランダム配列が分類される。第２に、19個の候補STARエレメント（上記したように、ゼオシン選択によって最近クローニングされた）の集合物における配列が分類された。これら候補STARエレメントは、表１１（配列ID:67-84）にリストされる。
【０１７８】
結果：
パターン頻度分析は、参照配列としてヒトゲノムを使用し、65個のSTARエレメントに対してRSA−Toolsで実行された。166個の六量体のオリゴヌクレオチドがゲノム全体（表９）と比較してSTARエレメントのセット（sig＞＝0）内で過剰に表わされるべきことが見つかった。最も重要な過剰に表わされたさているオリゴヌクレオチド CCCCACは、65個のSTARエレメント間で107回生じ、しかし49回のみ生じることが期待される。それは8.76の有意性係数を有する；言い換えれば、その過剰に表わされたことがランダム偶然によるものであることの可能性は、1／10^8.76、すなわち50億回に１回よりも少ない。
【０１７９】
【表９】

【０１８０】
オリゴヌクレオチドの95個は、１よりも大きい有意性係数を有し、及びそれ故にSTARエレメントにおいて高く過剰に表わされている。過剰に表わされたオリゴヌクレオチドの間で、それらの観察され且つ期待された事象は、夫々6及び1（オリゴ163について、CGCGAA、sig=0.02）から133及び95（オリゴ120について、CCCAGG、sig=0.49）までの範囲である。期待された事象における相違は、ファクター例えばヒトゲノムのG：C含量を反映する。それ故に、それらの多くの事象におけるオリゴヌクレオチド間の相違は、それらの過剰に表わされているとよりも重要ではない；例えば、オリゴ２（CAGCGG）は36/9＝4倍過剰に表わされており、それは5千万回に1回のランダムチャンス（sig=7.75）による可能性を有する。
【０１８１】
表９は、夫々過剰に表れたオリゴヌクレオチドが見つかったところのSTARエレメントの数をまた表わす。例えば、最も重要なオリゴヌクレオチド、オリゴ１（CCCCAC）は107回生じ、しかし51個のSTARのみに見つかっている。すなわち、それは平均的にSTARあたり2コピーとして生じる。少なくとも豊富なオリゴヌクレオチド、番号166（AATCGG）は、STARあたり単一のコピーとして平均的に生じる（11個のSTAR上で13個の事象）；単一のコピーオリゴヌクレオチドはしばしば特により低い存在度オリゴに生じる。他の極端な場合、オリゴ4（CAGCCC）はそれらが見つけられる（37個のＳＴＡＲ）ところのそれらのSTARにおいて平均3回生じる。最も広範囲にわたるオリゴヌクレオチドは番号120（CCCAGG）であり、それは58個のSTAR上で生じ（STARあたり平均2回）、もっとも少なく広範囲にわたるオリゴヌクレオチドは番号114（CGTCGC）であり、それは6個のSTARのみで（及びSTARあたり平均１回のみ）生じる。
【０１８２】
二分染色体頻度分析の結果が、表１０に与えられる。730個の二分染色体が、参照配列と比較してSTARエレメントのセット（sig＞＝0）において過剰に表わされていた。最も上位に過剰に表わされている二分染色体、CCCN{2}CGGは、65個のSTARエレメントの間で36回生じ、しかし7回のみ生じると期待された。それは、9.31の有意性係数を有する；言い換えれば、その過剰に表わされてさいることは偶然によるものであることの可能性は、1／10^9.31、すなわち20億回に１回よりも少ない。
【０１８３】
【表１０】

【０１８４】
397個の二分染色体は、１よりも多い有意性係数を有し、且つそれ故にSTARエレメント内で高く過剰に表わされている。該過剰に表わされている二分染色体の間で、観察され且つ期待されたそれらの事象は、夫々9及び１（5個の二分染色体について（番号380、435、493、640及び665））から118及び63（番号30について、（AGGN{2}GGG）、sig＞＝4.44）までの範囲である。
【０１８５】
パターン頻度分析によってSTARエレメントにおいて過剰に表わされていることが見つかったオリゴヌクレオチド及び二分染色体は、線形判別式分析によってそれらの判別の能力について試験された。判別モデルは、50個の最も判別できるオリゴヌクレオチド（表９）又は二分染色体（表１０）パターンの間で最良の組み合わせのステップワイズ選択によってトレーニングされた。該モデルは、4個の（二分染色体）又は5個の変異体の組み込み後に最適なエラー割合で達成された。オリゴ分析から判別可能な変異体は、番号11、30、94、122及び160（表９）であり；二分染色体解析からのそれらは、番号73、194、419及び497（表１０）である。
【０１８６】
その結果、判別モデルは、トレーニングセットおよびそれらの関連付けられたランダム配列において65個のSTARエレメントを分類するために使用された。オリゴヌクレオチド変異体を使用する該モデルは、STARエレメント（真のポジティブ）として65個のSTARエレメントのうち46個を分類し；二分染色体モデルは、真のポジティブとしてSTARエレメントのうち49個を分類する。組み合わせで、該モデルは、STARエレメントとして65個のSTARエレメントのうち59個を分類する（91%、図24）。誤ったポジティブ割合（STARとして分類されるランダム配列）は、二分染色体モデルにつき7個、オリゴヌクレオチドモデルにつき8個及び2つのモデル（20％）の結合された予測可能性について13個であった。LDAによってSTARとして分類されていな表６のSTARエレメントは、STAR7、22、35、44、46及び65である。これらのエレメントは、機能的アッセイにおいて安定する抗抑制活性を示し、それ故にLDAによってそれらはSTARとして分類されないという事実はそれらがSTARエレメントの他のクラス（又は複数のクラス）を表していることを示唆する。
【０１８７】
その結果、該モデルは、表１１にリストされたテストセットにおいて19個の候補STARエレメントを分類するために使用された。二分染色体モデルは、STARエレメントとしてこれらの候補STARの12個を分類し、オリゴヌクレオチドモデルは、STARとして14個を分類する。STARエレメントとして分類される候補の結合された数は、15(79%)個である。これは、65個のSTARのトレーニングセットで得られるよりも低い割合の分類であり；これは、2つの理由が期待される。第一に、判別モデルは表６の65個のSTARでトレーニングされ、且つこのトレーニングセットに基づく判別可能な変異体は、テストセットにおいて十分によく表わされていなくてもよい。第二に、テストセットにおける候補STAR配列は、インビボ（in vivo）機能における観点から十分にまだ特徴付けられていず、且つ弱い抗抑制特性のみを有するエレメントを含んでもよい。
【０１８８】
この分析は、STARエレメントのバイオインフォマティックス分類に対する統計的アプローチの能力を示す。STAR配列は、全体としてヒトゲノムと比較して非常に過剰に表わされている多くの二分染色体及び六量体オリゴヌクレオチドパターンを含む。これらのパターンは、STAR活性を与えるタンパク質の結合部位を表してもよく；そのような場合にも、それらはSTARエレメント配列を認識するために使用されうる配列モチーフのセットを形成する。
【０１８９】
判別式分析によってSTARエレメントを認識するためのこれらのパターンを使用し、本発明の遺伝的スクリーンによって取得されるエレメントの高い部分が、STARとして事実上分類される。これは、これらのエレメントの間で、基礎的な配列及び機能的な類似性を反映する。本明細書に記載されている方法（判別式分析に引き続くパターン頻度分析）の重要な観点は、それが反復可能であることである；例えば一つのトレーニングセット内において表６の66個のSTARエレメントを有する表１１の19個の候補STARエレメントを含むことによって、改善された判別モデルがトレーングされうる。その結果、この改善されたモデルは、STARとして他の候補調節エレメントを分類するために使用されうる。本発明の方法を使用し、バイオインフォマティックス分析の反復と組み合わせた、遺伝的配列のインビボ（in vivo）スクリーニングにおける大規模化は、ゲノムが完全にスクリーンされる場合にエレメントの100%認識及び予測を漸近にアプローチするSTARエレメントを判別する手段を提供する。STAR機能のこれら説得力のある且つ総合的な予測は、全てのヒトSTARエレメントが認識され且つ導入遺伝子発現を改善する際に使用するために利用可能であるということを保証する。
【０１９０】
【表１１】

¹染色体の位置は、ヒトゲノムデータベースに対するSTARエレメントからのDNA配列データのBLAST調査によって決定される。該位置は、各染色体の細胞遺伝学的イデオグラムと言及される標準命名法に従い与えられる。例えば1p2.3は1番染色体の短いアーム（arm）の第２の細胞遺伝学的バンドの第３の細胞遺伝学的サブバンドである（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Class/MLACourse/Genetics/chrombanding.html）。種々のゲノム座、両方のゲノム座からのDNAを識別した正の（forward）及び逆の（reverse）シーケンス反応である場合が示される。
F, 正の（Forward）配列反応結果；R,逆の（Reverse）配列反応結果。
正の及び逆のシーケンス結果は、種々のゲノム位置にマップされ、各配列は、ヒトゲノムデータベースからの配列情報に基づき（制限マッピングによって決定されたように）オリジナルのクローンの全長にまで拡張された。
²ND：決められていない（not determined）。
【実施例２２】
【０１９１】
シロイヌナズナ（Arabidopsis thaliana）からのSTARエレメントのクローニング及び特徴
導入遺伝子サイレンシングは、転写的及び転写後のレベルのいずれにおいても形質転換植物において生じる（メイヤー、2000年；ヴァンス及びヴァウチェルト、2001年）。いずれの場合にも、導入遺伝子発現の望ましい結果は、サイレンシングによって解決されうる；導入遺伝子の低い発現及び不安定性は望ましい形質（例えば有害な（pest）耐性）の貧しい発現又は組み換えタンパク質の低い収率を生じる。それは、貧弱な予測可能性をまた生じる：バイオテクノロジー的に有益なレベルで導入遺伝子を発現する形質転換植物の割合は低く、それは、有益な発現特性を有するそれらの形質転換された個々の骨の折れ且つ高価なスクリーニングを必要とする。本実施例は、形質転換植物における転写的な導入遺伝子サイレンシングを防ぐ際に使用するための、双子葉植物シロイヌナズナ（Arabidopsis thaliana）のゲノムからのSTARエレメントの分離を記載する。シロイヌナズナは、それが十分に研究されたモデル生物体である故に、本実施例のために選択された：それはコンパクトなゲノムを有し、それは遺伝的及び組み換えDNA操作に対して敏感に反応し、かつそのゲノムは配列決定されている（ベヴァンら、2001年、イニチアティブ、2000年、マインケら、1998年）。
【０１９２】
物質及び方法：
ゲノムDNAは、記載されているように（スタムら、1998年）、Arabidopsis thaliana ecotype Columbiaから分離され、且つMboIで部分的に消化された。該消化されたDNAは、アガロースゲル電気泳動及び該ゲルからの精製（QIAquick Gel Extraction Kit,QIAGEN 28706）によって0.5〜2キロ塩基対にサイズフラクションされ、引き続きpSelectベクター（以前に同様）内にライゲーションされた。U-2 OS/TetOff/LexA-HP1 細胞株内へのトランスフェクション及び低いドキシサイクリン濃度でのゼオシン耐性の選択は、前記した様に（以前に同様）実行された。プラスミドは、ゼオシン耐性コロニーから分離され且つU-2 OS/Tet Off/LexA-HP1細胞株内にトランスフェクションされた。
【０１９３】
再トランスフェクションに応答してゼオシン耐性を与えられるシロイヌナズナゲノムDNAフラグメントの配列決定は、前記した様に（以前に同様）実行された。DNA配列は、BLAST分析（（アルツシュルら、1990年）；URL http://www.ncbi.nlm.nih.gov/blast/Blast）によってシロイヌナズナゲノムの配列と比較された。
【０１９４】
STAR活性は、逆転写PCR（RT-PCR）によって組み換え宿主細胞におけるハイグロマイシン-及びゼオシン-耐性遺伝子のmRNAレベルを測定することによってさらにテストされた。U-2 OS/Tet Off/LexA-HP1細胞株の細胞は、シロイヌナズナSTARエレメント、ショウジョウバエscsエレメント又は挿入物を含まないもの（以前に同様）を含むpSelectプラスミドでトランスフェクションされた。これらは、高いドキシサイクリン濃度で2週間の間、ハイグロマイシンで培養され、その後ドキシサイクリン濃度は、lexA-HP1抑制タンパク質を導出するために0.1ng/mlに少なくされた。10日後、総RNAは、RNeasy mini kit（QIAGEN 74104）によって製造者によって記載されてように単離された。第一ストランドcDNA合成は、oligo(dT)18プライマーを使用するRevertAid First Strand cDNA Synthesis ki（MBIFermenta 1622）を使用して製造者によって記載されているように実行された。cDNAの部分標本（aliquot）は、（ゼオシンマーカーについての）プライマーD58及びD80、及び（ハイグロマイシンについての）D70及びD71を使用し、並びにTaq DNAポリメラーゼ（Promega M2661）を使用しPCR反応におけるテンプレートとして使用された。反応条件は、１分の間94≡、１分の間54≡、及び90秒での間72≡の15≡〜20サイクルであった。これらの条件は、投入したRNAとPCR生成物DNAの間に直線関係を生じる。PCR生成物はアガロースゲル電気泳動法によって分離され、及びゼオシン及びハイグロマイシンは、テンプレートとして、精製されたpSelectプラスミドを有する前記の様なPCR生成物を使用し、前記したように（サムブルックら、1989年）サザンブロット法によって検出された。ゼオシン及びハイグロマイシンシグナルの割合は、ゼオシン遺伝子の正規化された発現（normalized expression）レベルに対応する。
【０１９５】
結果：
pSelectベクターにおけるシロイヌナズナゲノムDNAのライブラリーは、大腸菌内に69,000個のプライマリークローンを含み、その80%が挿入物を持っていた。平均の挿入物サイズは、ほぼ1000塩基対であった；それ故にライブラリーは、シロイヌナズナゲノムのほぼ40%を表した。
【０１９６】
（シロイヌナズナゲノムのほぼ16%を表している）このライブラリーの部分は、U-2 OS/TetOff/LexA-HP1細胞株内にトランスフェクションされた。ハイグロマイシン選択は、形質転換体を分離するために強制され、それは27,000個の生きたクローンをもたらした。その後、これらは、低いドキシサイクリン濃度でゼオシン選択に付された。56個のゼオシン耐性コロニーからの想定されるSTAR含有プラスミドが大腸菌内でレスキューされ且つU-2 OS/Tet Off/LexA-HP1細胞内に再トランスフェクションされた。これらのプラスミドの44個（テストされたプラスミドの79%）は、低いドキシサイクリン濃度で宿主細胞に対してゼオシン耐性を与え、プラスミドがSTARエレメントを有することを示している。これは、ヒトU-2 OS細胞におけるpSelectスクリーンは、植物ゲノムDNAからのSTARエレメントの検出で高く効率的であることを示す。
【０１９７】
これら44個の候補STARエレメントのDNA配列が決定された。それらの35個は、シロイヌナズナ核ゲノム配列（表12；配列ID:85〜配列ID:119）のデータベースにおけるシングル座であるとして識別された。他の4個は、葉緑体ゲノム由来であるとして識別され、4個は2つの座からのDNAフラグメントのキメラであり、及び１個はヒトイヌナズナゲノムデータベースにおいて見つからなかった。
【０１９８】
【表１２】

【０１９９】
クローニングされたシロイナズナSTARエレメントの強度は、RT-PCRアッセイを使用し、ゼオシン耐性遺伝子の転写抑制を防ぐためにそれらの能力を評価することによってテストされた。それらのサンプルの間で投入されたRNAの対照として、各STARトランスフェクションのためのハイグロマイシン耐性遺伝子の転写レベルもまた評価された。この分析は、シロイヌナズナSTARエレメントの12個について実行されている。該結果（図２５）は、シロイヌナズナSTARエレメントが、転写的抑制からゼオシン耐性遺伝子を保護するためにそれらの能力におけるショウジョウバエscsエレメント（ポジティブコントロール）及びエンプティベクター（「SV40」；ネガティブコントロール）よりも優れている。特に、STAR-A28及びSTAR-A30は、lexA-HP1抑制が発現される場合、（ハイグロマイシン耐性遺伝子mRNAの内部的な制御に正規化された）scsエレメントよりも2倍高いゼオシン耐性遺伝子発現のレベルを可能にする。
【０２００】
これらの結果は、本願発明の方法が、ヒト以外の他の種のゲノムからSTARエレメントを回収するために成功裡に適用されうることを示す。植物ゲノムからのSTARエレメントに対するその成功の適用は特に重要である。何故ならば、それは本発明の方法が適用可能であるところの広い分類学的範囲を示すからであり且つ植物はバイオテクノロジー的発展の重要なターゲットであるからである。
【０２０１】
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【図面の簡単な説明】
【０２０２】
【図１】STARエレメントを選択し且つ特徴付けるためのプラスミドのpSelectファミリー。ショウジョウバエSV40プロモーターの制御下で、耐性マーカー（ゼオシン又はピューロマイシン）又はレポーター遺伝子（GFP又はルシフェラーゼ）がAscI及びHindIII部位によって両面を挟まれるBamHIクローニング部位に近接している。クローニング部位の上部はlexAオペレーターであり、lexAタンパク質がそれに結合できる。オペレーターへのキメラlexA-ポリコームグループタンパク質の結合は、マーカー又はレポーター遺伝子の抑制をもたらす。抑制をブロックするクローニング部位で挿入されたDNAフラグメントは、マーカー又はレポーター遺伝子の永続的な発現によって識別される。プラスミドは、培養された哺乳動物細胞内でoriP配列によりエピソーム的に複製する。
【図２】STARエレメントをテストするためのpSDHファミリー。２つの複数のクローニング部位（MSCI及びMSCII）は、発現が上流プロモーター（CMV、Tet-Off、またはSV40）によって駆動されるところのレポーター遺伝子（GFP又はルシフェラーゼ）を両面に挟む。テストされるべきSTARエレメントは、MCSI及びMCSIIで挿入される。これらは、特有の制限部位（MCSI: XhoI、NotI、EcoRI及びSa1I；MCSII:HindIII、EcoRV、BglII及びNheI）を含む。該プラスミドは哺乳動物細胞のゲノムにおいてランダムに組み込まれた後に複製する。
【図３】ルシフェラーゼを過剰発現するクローンの割合。U-2 OSヒト骨肉種細胞は、（Tet-Offプロモーターの制御下でルシフェラーゼプロモーター遺伝子を含む）pSDHプラスミドで安定にトランスフェクションされ、及び個々のトランスフェクションされたクローンは単離され且つ培養された。ルシフェラーゼ発現は、酵素的に測定される。STARなし(STARless) pSDH（「参照レベル」）を含むクローンによって平均ルシフェラーゼ発現が決定された。全てのプラスミドのためのセットからのクローンは、それらのルシフェラーゼ活性が前記参照レベルより2倍より高い場合に、「過剰発現（over-expressing）」としてスコアされる。各プラスミドにおける過剰発現するクローンのパーセントがプロットに記録される。
【図４】過剰発現するクローンによる過剰発現倍数。ゲノムDNA内に組み込まれたSTAR含有pSDHプラスミドにおける過剰発現の範囲は、参照レベルによって各クローンのルシフェラーゼ活性を分割することによって決定された。有意な発現（上記参照レベルの2倍より多い）を示すそれらのために、真の倍数増加が記載された；これらのデータの最小値及び中央値が各プラスミドのためにプロットされる。
【図５】過剰発現するクローンによる過剰発現倍数。ゲノムDNA内に組み込まれたSTAR含有pSDHプラスミドにおける過剰発現の範囲は、参照レベルによって各クローンのルシフェラーゼ活性を分割することによって決定された。有意な発現（上記参照レベルの2倍より多い）を示すそれらのために、真の倍数増加が記載された；これらのデータの最小値及び中央値が各プラスミドのためにプロットされる。
【図６】SINCエレメントを選択し且つ特徴付けるためのpSS（SINC-Select）プラスミド。CodA::upp自殺遺伝子は、プロドラッグ５−フルオロシトシンを毒性薬物５−フルオロウラシルに転化するタンパク質をコードする。低くされたテトラサイクリン濃度による導出に応答し、宿主細胞はプロドラッグに感受性になる。サイレンシング活性を有するクローニング部位（BglII及びXhoI）で挿入されたゲノムDNAフラグメントは、自殺遺伝子の発現を防止し且つプロドラッグ抵抗コロニーの形成を可能にする。STARエレメントは、プラスミドの機能的コンポーネントへのサイレンシングされたクロマチンの拡散を防ぐために選択コンポーネントを両面に挟む。プラスミドは、培養された哺乳動物細胞内でoriP配列によりエピソーム的に複製する。
【図７】STAR活性を試験するために使用されるpSDH-CSPプラスミド。SEAP（Secreted Alkaline Phosphatase）レポーター遺伝子は、CMVプロモーターの制御下であり、且つピューロマイシン耐性選択可能なマーカー（puro）は、SV40プロモーターの制御下である。これらの２つの遺伝子を両面に挟むことは、STARエレメントがその中でクローニングされうる複数のクローニング部位である。該プラスミドは、大腸菌（Escherichia coli）内の増殖のためにオリジナルの複製（ori）及びアンピシリン耐性遺伝子（ampR）をまた有する。
【図８】STAR6及びSTAR49は、予測可能性及び導入遺伝子発現の収率を改善する。pSDH-CSP、pSDH-CSP-STAR6、又はpSDH-CSP-STAR49でトランスフェクションされたCHO細胞によるCMVプロモーターからのSEAPの発現が決定された。STAR含有構築物は、pSDH-CSP構築物のみと比較してより大きい予測可能性及び高い収率を与える。
【図９】STAR6及びSTAR8は、予測可能性及び導入遺伝子発現の収率を改善する。pSDH-CMV、pSDH-CMV-STAR6、又はpSDH-CMV-STAR8でトランスフェクションされたU-2 OS細胞によるCMVプロモーターからのルシフェラーゼの発現が決定された。STAR含有構築物は、pSDH-CMV構築物のみと比較してより大きい予測可能性及び高い収率を与える。
【図１０】STAR10及びSTAR27の最小必須配列。STARエレメントの部分は、PCRによって増幅された：STAR10は、フラグメント10Aを生じるためにプライマーE23及びE12で、フラグメント10Bを生じるためにプライマーE13及びE14で、及びフラグメント10Cを生じるためにプライマーE15及びE16で増殖された。これらサブフラグメントは、pSelectベクター内にクローニングされた。U-2OS/Te-Off/LexA-HP1 細胞内にトランスフェクションした後、ゼオシン存在下における培養の成長が観察された。成長率は、活発な（+++）から悪い（+/-に）と様々であり、一方ある培養は、試験されたDNAフラグメントにおけるSTAR活性の不存在によるゼオシン処理（-）で生存することに失敗した。
【図１１】SV40プロモーターとの関連におけるSTARエレメント機能。pSDH-SV40及びpSDH-SV40-STAR6は、ヒト骨肉腫内U-2 OS細胞株にトランスフェクションされ、且つルシフェラーゼの発現はピューロマイシン耐性クローンにおけるSTAR6によってサイレンシングされる遺伝子からの保護あり又はなしでアッセイされた。
【図１２】Tet-Offプロモーターとの関連におけるSTARエレメント機能。pSDH-Tet及びpSDH-Tet-STAR6は、ヒト骨肉腫内U-2 OS細胞株にトランスフェクションされ、且つルシフェラーゼの発現はピューロマイシン耐性クローンにおけるSTAR６によってサイレンシングされる遺伝子からの保護あり又はなしでアッセイされた。
【図１３】STARエレメント方向性の説明図であって、それらがpSelectベクター内にクローニングされる場合（パネルA）、それらがそれらの自然の方向性を穂損するためにpSDHベクター内にクローニングされる場合（パネルB）及び、それらが逆の方向においてpSDHベクター内にクローニングされる、説明図。
【図１４】STAR66機能の方向性。STAR66エレメントは、自然（STAR66 native）又は反対の方向（STAR66 opposite）のいずれかにおけるpSDH内にクローニングされ、且つU-2 OS細胞内にトランスフェクションされた。ルシフェラーゼ活性は、ピューロマイシン耐性クローンでアッセイされた。
【図１５】STAR機能のコピー数依存性。U-2 OSゲノムDNA内に組み込まれた、pSDH-Tet-STAR10内にルシフェラーゼ発現ユニットのサザンブロット法。放射活性ルシフェラーゼDNAプローブは、各クローンのゲノムにおける導入遺伝子DNAの量を検出するために使用され、その後それはフォスファーイメージャー（phosphorimager）で数値化された。
【図１６】STAR機能のコピー数依存性。各クローンにおけるpSDH-Tet-STAR発現のコピー数は、フォスファーイメージャーによって決定され、且つ各クローンによって発現されたルシフェラーゼレポーターの活性と比較される。
【図１７】エンハンサーブロッキング及びエンハンサーアッセイ。エンハンサーブロッキング及びエンハンサー活性のためのSTARをテストするために使用されるルシフェラーゼ活性ベクターが、概略的に示される。E47エンハンサータンパク質のためのE-Box結合部位は、STARエレメントのためのクローニング部位の上流である。STARクローニング部位の下流は、ヒトアルカリフォスファターゼ最小プロモーター(human alkaline phosphatase minimal promotor)（mp）の制御下のルシフェラーゼ遺伝子である。ヒストグラムは、3つの可能性のある実験状況（本文参照）のための期待された結果を示している。パネル A: エンハンサー−ブロッキングアッセイ。パネル B:エンハンサーアッセイ。
【図１８】エンハンサー−ブロッキングアッセイ。最小プロモーターからのルシフェラーゼ発現は、エンプティベクター（ベクター）におけるE47/E-boxエンハンサーによって活性化される。エンハンサー−ブロッカー（scs,HS4）又はSTARエレメント（STARエレメント1,2,3,6,10,11,18及び27）の挿入は、E47/E-boxエンハンサーによってルシフェラーゼ活性をブロックする。
【図１９】エンハンサーアッセイ。最小プロモーターからのルシフェラーゼ発現は、エンプティベクター（E47）におけるE47/E-boxエンハンサーによって活性化される。Scs及びHS4エレメント又は種々のSTARエレメント（STARエレメント1,2,3,6,10,11,18及び27）の挿入は、リポーター遺伝子の転写を活性化しない。
【図２０】SINCエレメントの分離のために使用されるpSS-codA::uppベクター。codA::upp自殺遺伝子は、プロドラッグ５−フルオロシトシンを毒性薬物５−フルオロウラシルに転化するタンパク質をコードする。低くされたドキシサイクリン濃度による導出に応答して、宿主細胞はプロドラッグに感受性になる。サイレンシング活性を有するBglIIクローニング部位で挿入されたゲノムDNAフラグメントは、自殺遺伝子の発現を防止し且つプロドラッグ耐性コロニーの形成を可能にする。STARエレメントは、プラスミドの機能的コンポーネントに対するサイレンシングされたクロマチンの拡散を防止するために選択コンポーネントの両面を挟む。プラスミドは、ハイグロマイシン耐性遺伝子を有する哺乳動物細胞内にトランスフェクション後、及びアンピシリン耐性遺伝子を有する大腸菌細胞内にトランスフェクション後に選択される。それは、培養された哺乳動物細胞内でoriP及びEBNA-1配列により、及び大腸菌内でori配列によりエピソーム的に複製する。
【図２１】pSS-hrGFPプラスミドは、自殺遺伝子を（緑蛍光タンパク質をコードする）hrGFPでの置換及びSTAR6をGFPレポーター遺伝子のSTAR8下流での置換を除いてpSS-cod::Auppプラスミドに同一である。
【図２２】マウスとヒトとの間のSTAR18配列保存。497個の塩基対STAR18を含むヒトゲノムの領域が示される（ブラックボックス）；該エレメントは、ヒト2番染色体上のHOXD8及びHOXD4ホメオボックス遺伝子の間に生じる。それは、72％配列同一を共有するマウス2番染色体における領域に並べられる。STAR18の左に対して直ぐにヒト2番染色体の領域は、マウス2番染色体でまた高く保存されている（73％同一性；グレーボックス）；これらの領域を超えると、該同一性は60%以下に落ちる。ゼオシンに対する成長を与えるために、別々に又は組み合わせてのいずれかでヒト及びマウス由来のこれらの領域の能力が示される；- 成長しない；+ 普通の成長；++ 活発な成長、+++ 迅速な成長。
【図２３】バイオインフォマティックス分析ワークフローの説明図。詳細には、本文を参照。
【図２４】65個のSTARエレメントのトレーニングセットの分類に対する判別式分析の結果。ステップワイズ線形判別式分析（Linear Discriminant Analysis；LDA）によってSTARとして正確に分類されるSTARエレメントは、ベン（Venn）ダイアグラム内に示される。LDAの変数は、6量体のオリゴヌクレオチド（「オリゴ；oligos」）のための及び二分染色体のための頻度分析結果から選択された。ダイアグラムは、正確に分類するSTARにおいて２つのセットの変数の一致を示す。
【図２５】U-2 OS/TEs-Off/lexA-HP1細胞が、候補アラビドプシスSTARエレメントでトランスフェクションされかつ低いドキシサイクリン濃度で培養された。総RNAは単離され且つRT-PCRに付された；ゼオシン及びハイグロマイシン耐性mRNAに対応するバンドは、サザンブロット法によって検出され、且つフォスファーイメージャーで数値化された。ハイグロマイシンシグナルに対するゼオシンの割合は、12の種々のアラビドプシスSTARエレメント、ショウジョウバエ scs エレメント又は両面を挟まれていないエレメントによって両面を挟まれたゼオシン発現ユニットを含む形質転換体（transfectants）のために示される。
【図２６】STAR１−STAR65を含む配列（配列ID（SEQ ID）：1-65）STAR66及びテストセットを含む配列（配列ID：66-84）アラビドプシスSTAR A1-A35を含む配列（配列ID：85-119）

Claims

遺伝子転写を調節する特性を有するDNA配列を選択するための方法であって、転写システムに様々なフラグメント含有ベクターを備えることを含み、前記ベクターは、ｉ）遺伝子転写を抑制する特性を有するエレメント、及びｉｉ）レポーター遺伝子の転写を指示するプロモーターをさらに含み、前記方法は前記遺伝子転写を調節する特性を有する前記DNA配列を含むフラグメントを識別するために前記転写システムにおいて選択ステップを実行することをさらに含む、前記方法。
前記DNA配列は安定な遺伝子転写調節特性を含む、請求項１に記載の方法。
前記DNA配列は遺伝子転写を助長する特性を含む、請求項１又は２に記載の方法。
前記転写システムは、宿主細胞を含む、請求項１〜３のいずれか一項に記載の方法。
前記プロモーターは前記転写システムにおいて活性であってもよく、しかし前記ベクターにおける遺伝子転写抑制は遺伝子転写を抑制するクロマチンをもたらす、請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法。
遺伝子転写抑制に関係するDNA配列がタンパク質複合体によって認識されるDNA配列であり、かつ前記転写システムが前記複合体を含む、請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
前記複合体は、ヘテロクロマチン結合性タンパク質HP1、ポリコーム−グループ（Pc-G）タンパク質、ヒストン脱アセチル化酵素活性又はMeCP２（メチル−CpG−結合性タンパク質）を含む、請求項５に記載の方法。
前記ベクターがエピソーム的に複製するベクターである、請求項１〜７のいずれか一項に記載の方法。
前記ベクターが、イプシュタイン−バール（Epstein-Barr）ウィルス（EBV）、OriP、及び核抗原（EBNA-1）からの複製起源を含むことを特徴とする、請求項１〜８のいずれかに一項に記載の方法。
ｉ）植物若しくは脊椎動物から単離されたDNA配列又はそれらの誘導体、又はｉｉ）合成DNA配列すなわち遺伝子エンジニアリングの手段によって構築されたDNA配列を含むDNA配列であって、請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法の手段によって検出され、選択され及び任意的にクローニングされ得る、抑制を阻害する配列であるところの前記DNA配列。
ｉ）植物若しくは脊椎動物から単離されたDNA配列又はそれらの誘導体、又はｉｉ）合成DNA配列すなわち遺伝子エンジニアリングの手段によって構築されたDNA配列を含むDNA配列であって、請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法の手段によって検出され、選択され及び任意的にクローニングされるところの前記DNA配列。
遺伝子転写抑制特性を有するDNA配列を識別するための方法であって、
テスト核酸の集合を用意すること、
プロモーターの転写制御下にあるテスト核酸及び第１のレポーター遺伝子を含む発現ベクターの集合を生成すること、
細胞に発現ベクターの前記集合を備えること、
それらの後代を含む細胞又はベクターを選択すること、ここで前記第１のレポーター遺伝子の転写は抑制されている、及び
前記細胞中の前記テスト核酸を識別すること、
を含む、前記方法。
前記DNA配列は遺伝子転写を抑制するクロマチン特性を有する、請求項１２に記載の方法。
前記DNA配列はポリコーム−グループ様応答エレメントを含む、請求項１２又は１３に記載の方法。
前記ベクターが第２のレポーター遺伝子をさらに含む、請求項１２〜１４のいずれか一項に記載の方法。
前記転写システムが細胞を含む、請求項１２〜１５のいずれか一項に記載の方法。
前記第２のレポーター遺伝子がベクター含有細胞の選択を行うために使用される、請求項１６に記載の方法。
ベクターが、遺伝子転写を調節する特性を有するDNA配列をさらに含む、請求項１２〜１７のいずれか一項に記載の方法。
前記DNA配列は安定な遺伝子転写調節特性を含む、請求項１８に記載の方法。
前記DNA配列は、請求項１０又は１１に記載の配列を含む、請求項１８又は１９に記載の方法。
前記DNA配列が、前記ベクターにおける前記DNA配列の一つの側に存在する、遺伝子転写を抑制する特性を有するDNA配列の転写を抑制する効果の拡散を少なくとも一部分ブロックする、請求項１８〜２０のいずれか一項に記載の方法。
前記DNA配列が、前記第２のレポーター遺伝子の転写に対する遺伝子転写を抑制する効果を少なくとも一部分阻害する、請求項２１に記載の方法。
前記第１のレポーター遺伝子が自殺遺伝子を含む、請求項１２〜２２のいずれか一項に記載の方法。
前記第２のレポーター遺伝子が優勢な選択可能なレポーター遺伝子を含む、請求項１２〜２３のいずれか一項に記載の方法。
前記プロモーターが誘導性プロモーターを含む、請求項１〜９又は１２〜２４のいずれか一項に記載の方法。
請求項１２〜２５のいずれか一項に記載の方法によって取得可能な遺伝子転写を抑制する特性を有するDNA配列。
表４Ｂに従う配列又はそれらの機能的相同物を含む、請求項２６に記載のDNA配列。
遺伝子転写を抑制する特性を有する前記DNA配列が請求項１２〜２５のいずれか一項に記載の方法によって取得可能なDNA配列を含む、請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法。
約50〜5000塩基対の核酸配列内のSTAR配列の存在を検出するための方法であって、前記配列における少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度を決定し、そして出現の頻度がSTAR配列を含む少なくとも１つの配列における前記少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度を表わすことを決定することを含む、前記方法。
出現の頻度が、STAR配列を含む少なくとも１つの配列における前記少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度を表わすことを決定する前記ステップが、前記少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度が、前記少なくとも１つのSTAR配列及び少なくとも１つの制御配列の間で有意に異なることを決定することを含む、請求項２９に記載の方法。
前記少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度が、前記少なくとも１つの制御配列と比較して、STAR配列を含む前記少なくとも１つの配列において有意に高い、請求項３０に記載の方法。
前記パターンの少なくとも１つが、STAR配列を含む前記少なくとも１つの配列と制御配列との間で所望の及び好ましくは最適の判別に基づいて選択される、請求項２９〜３１のいずれか一項に記載の方法。
前記制御配列が、STAR配列を含む前記少なくとも１つの配列と類似のAT/CG含量を有するランダム配列を含む、請求項３０〜３２のいずれか一項に記載の方法。
少なくとも１つの配列パターンが少なくとも5塩基を含む、請求項２９〜３３のいずれか一項に記載の方法。
少なくとも１つの配列パターンが少なくとも6塩基を含む、請求項３４に記載の方法。
前記少なくとも１つの配列パターンが表９及び／又は表１０にリストされたパターンを含む、請求項２９〜３５のいずれか一項に記載の方法。
前記パターンが少なくとも8塩基を含む、請求項２９〜３６のいずれか一項に記載の方法。
前記出現が、STAR配列を含む少なくとも2配列における前記少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度を表わす、請求項２９〜３７のいずれか一項に記載の方法。
前記出現が、STAR配列を含む少なくとも5配列における前記少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度を表わす、請求項２９〜３７のいずれか一項に記載の方法。
前記出現が、STAR配列を含む少なくとも10配列における前記少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度を表わす、請求項３９に記載の方法。
前記出現が、STAR配列を含む少なくとも50配列における前記少なくとも１つの配列パターンの出現の頻度を表わす、請求項２９〜４０のいずれか一項に記載の方法。
STAR配列を含む前記配列が、図２６に示された配列の少なくとも１つを含む、請求項２９〜４１のいずれか一項に記載の方法。
STAR配列を含む前記配列が図２６に示された配列を含む、請求項４２に記載の方法。
前記少なくとも１つの配列パターンが、配列パターンGGACCC、CCCTGC、AAGCCC、CCCCCA及び／又はAGCACCを含む、請求項２９〜４３のいずれか一項に記載の方法。
前記少なくとも１つの配列パターンが、配列パターンCCCN{16}AGC、GGCN{9}GAC、CACN{13}AGG及び／又はCTGN{4}GCCを含む、請求項２９〜４４のいずれか一項に記載の方法。
約50〜5000塩基対の核酸配列内のSTAR配列の存在を検出するための方法であって、一つの種（species）の細胞の染色体の一部分におけるSTAR配列を含む配列を識別すること、そして前記配列及び異なる種の染色体の配列との間の有意な相同性を検出することを含む、前記方法。
前記種が植物種又は脊椎動物種、好ましくは哺乳動物種を含む、請求項４６に記載の方法。
脊椎動物種又は植物種の約50〜5000塩基対の核酸配列内のSTARエレメントの存在を検出するための方法であって、前記核酸配列の隣接（flanking）配列が少なくとも１つの他の種に保存されているかどうかを識別することを含む、前記方法。
請求項１〜９、２９〜４８のいずれか一項に記載の方法によって取得可能なSTAR配列。
STAR配列を含む前記少なくとも１つの配列が請求項４９に記載のSTAR配列である、請求項２９〜４８のいずれか一項に記載の方法。
請求項４９に記載のSTAR配列の集合。
約50〜5000塩基対の核酸配列がSTAR配列を含むかどうかを決定するための方法であって、請求項５１に記載されたSTAR配列の集合における前記パターンの出現の頻度を含む配列パターンの第１のテーブルを生成すること、少なくとも１つの参照配列における前記パターンの出現の頻度を含む前記パターンの第２のテーブルを生成すること、出現の頻度が前記２つのテーブル間で異なるところの少なくとも１つのパターンを選択すること、約50〜5000塩基対の核酸配列内で前記選択されたパターンの少なくとも１つの出現の頻度を決定すること、及び前記テスト核酸における出現の頻度がSTAR配列の前記集合物における前記選択されたパターンの出現の頻度を表わすかどうかを決定することを含む、前記方法。
約50〜5000塩基の前記核酸配列が遺伝子転写を調節する特性を含むかどうかを決定することをさらに含む、請求項２９〜４８、５０及び５２のいずれか一項に記載の方法。
前記遺伝子転写を調節する特性が請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法を使用して決定される、請求項５３に記載の方法。
STARの前記集合物が図２６に記載されている配列を含む、請求項５２又は５３に記載の方法。
請求項５２〜５５のいずれか一項に記載の方法によって取得可能なSTAR配列を含む、単離された及び／又は組換えられた核酸配列。
請求項１０、１１、２６、２７、４９及び５６のいずれか一項に記載のDNA配列を備えられたDNA構築物。
請求項１０、１１、２６、２７、４９及び５６のいずれか一項に記載されたDNA配列が修飾されているところのDNA構築物。
目的の核酸に動作可能にリンクされたプロモーターを含む、請求項５７又は５８に記載のDNA構築物。
遺伝子転写を調節する及び／又は抑制する特性を有する前記DNA配列の特性の活性の量が、前記プロモーターと比較して前記構築物内での前記DNA配列の方向に依存する、請求項５９に記載のDNA構築物。
遺伝子転写を調節する及び／又は抑制する特性がシグナルの存在に依存する、請求項５７〜６０のいずれか一項に記載されたDNA構築物又は請求項１０、１１、２６、２７、４９又は５６に記載されたDNA配列。
前記シグナルがDNA結合性タンパク質を含む、請求項６１に記載のDNA構築物又はDNA配列。
前記シグナルがヒト免疫不全ウィルスTATタンパク質を含む、請求項６１又は請求項６２に記載のDNA構築物又はDNA配列。
目的の核酸の転写を調節するために、請求項１０、１１、２６、２７、４９、５６〜６３のいずれか一項に記載のDNA構築物又はDNA配列を使用する方法。
細胞内で遺伝子生成物を生産するための方法であって、目的の遺伝子及び請求項１０、１１、２６、２７、４９、５６〜６３のいずれか一項に記載のDNA配列又はDNA構築物を含む発現カセットを生成すること、及び細胞内で前記発現カセットの転写をさせることを含む、前記方法。
前記遺伝子生産物の生産が誘発可能である、請求項６５に記載の方法。
遺伝子転写を調節する特性及び／又は遺伝子転写を抑制する特性を含む、単離された及び／又は組換えられた核酸のライブラリー。
前記核酸が同一のコンセンサス配列を含む、請求項６７に記載のライブラリー。
前記遺伝子転写を抑制する特性が、遺伝子転写を抑制するクロマチンの形成を誘発する特性を含む、請求項６７又は６８に記載のライブラリー。
前記遺伝子転写を調節する特性が安定な転写特性を有する、請求項６７〜６９のいずれか一項に記載のライブラリー。
前記遺伝子転写を調節する特性が、遺伝子転写を抑制するクロマチンの形成を妨げる特性を含む、請求項７０に記載のライブラリー。
前記遺伝子転写を調節する特性が転写を助長する特性を含む、請求項６７〜７１のいずれか一項に記載のライブラリー。
染色体の遺伝子転写を調節する特性を有する全てのDNA配列を本質的に含む、請求項６７〜７２のいずれか一項に記載のライブラリー。
前記染色体が哺乳動物又は植物の染色体である、請求項７３に記載のライブラリー。
前記染色体がヒトの染色体を含む、請求項７４に記載のライブラリー。
細胞の核DNAの遺伝子転写を調節する特性を有する全てのDNA配列を本質的に含む、請求項７３〜７５のいずれか一項に記載のライブラリー。
遺伝子転写を調節する特性を有するDNA配列を選択するための方法であって、転写システムに様々なフラグメント含有ベクターを備えることを含み、前記ベクターは、ｉ）遺伝子転写を調節する特性を有するエレメント、及びｉｉ）レポーター遺伝子の転写を指示するプロモーターを含み、前記方法は前記遺伝子転写を調節する特性を有する前記DNA配列を含むフラグメントを識別するために前記転写システムにおいて選択ステップを実行することをさらに含む、前記方法。