JP2003509020A - プラーク形成疾患の診断、治療、予防に有用な薬剤、組成物、その使用法 - Google Patents

プラーク形成疾患の診断、治療、予防に有用な薬剤、組成物、その使用法

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Abstract

(57)【要約】 表示技術を使用してプラーク形成疾患に対する免疫を行う方法を提供する。この方法は、表示媒体上に抗原またはエピトープを提示して、プラーク形成疾患を免疫するために、新規の薬剤または医薬組成物を利用する。この方法は、表示媒体上に抗体またはその活性部分を提示して、プラーク形成疾患を免疫するための薬剤または医薬組成物を含む。抗原または抗体のいずれかを用いると、免疫化に続きプラークの離解が生じる。

Description

【発明の詳細な説明】
【０００１】 本発明の技術分野および背景 本発明は、プラーク（斑）形成疾患の処置のための、薬剤および組成物および
その使用法に関する。殊に本発明による方法は（i）プラーク形成の予防および
既存プラークの離解が可能な抗体をインビボで誘導するように表示媒体表面にク
ローニングされ、表示されたプラーク由来抗原；および（ii）少なくともその免
疫原的部分がクローニングされ、媒体上に表示されており、その免疫原的部分が
プラーク形成の予防および既存プラークを離解が可能なプラーク由来抗原に対し
て産生された抗体；の使用を包含する。本発明は、さらにヒトを含む動物の脳に
対して表示媒体を標的とする方法およびプラーク形成プリオンの存在を検出する
方法に関する。
【０００２】 プラーク形成疾患は、脳におけるアミロイドプラーク沈着物の存在ならびにニ
ューロン性の変性によって特徴付けられる。アミロイド沈着物は凝集して不溶性
物質となったペプチドによって形成される。このペプチドの性質は様々な疾患に
おいて変化するが、多くの場合に凝集物はβ−プリーツシート構造を持ち、コン
ゴーレッド色素によって染色される。アルツハイマー病（ＡＤ）に加えて、早期
発症アルツハイマー病、後期発症アルツハイマー病、症候的アルツハイマー病な
どのアミロイド沈着によって特徴付けられる疾患は、例えば、ＳＡＡアミロイド
ーシス、遺伝性アイスランド症候群、多発性骨髄腫およびプリオン病がある。最
も通常のプリオン疾患は、動物ではヒツジおよびヤギのスクレーピーおよびウシ
科のウシ海綿状変性型脳症（ＢＳＥ）がある（Wilesmith と Wells (1991) Curr
. Top. Microbiol. Immunol., 172: 21-38）。ヒトでのプリオン病は：（i）ク
ール病、（ii）クロイツフェルト・ヤコブ病（ＣＩＤ）、（iii）ゲルストマン
・ストロイスラー・シェインカー病（ＧＳＳ）、および（iv）致死性家族性不眠
症（ＦＦＩ）（Gajdusek (1977), Science, 197: 943-960; Medori, Tritschler
et al., (1992), N. Engl. J. Med., 326: 444-449）の４種が確認されている
。
【０００３】 （プリオン病の病因学） プリオン病は正常な細胞プリオンタンパク質（ＰｒＰc）から対応するスクレ
ーピー型アイソフォーム（ＰｒＰSc）への変換を含む。分光学的測定によって、
ＰｒＰcからスクレーピー型アイソフォーム（ＰｒＰSc）への変換には主な遷移
状態コンフォメーションを含み、その他のアミロイド原疾患と同様に、プリオン
病はタンパク質コンフォメーションの疾患であることが示されている。ＰｒＰc
からＰｒＰScへの遷移状態はα−ラセン二次構造の減少（４２％から３０％へ）
およびβ−シート含量の顕著な増加（３％から４３％へ）を伴う（Caughey et a
l., 1991, Pan et al., 1993）。この再配列には、非変性デタージェントへの不
溶性およびタンパク分解に対する部分的な抵抗性を含む、物理化学的に異常な性
質を伴う。以前の研究で、ヒトＰｒＰ（ＰｒＰ１０６〜１２６）の残基１０６〜
１２６と相同的な合成ペプチドがＰｒＰScの病原性および物理化学的特性の一部
を示すことが証明されている（Selvaggini et al., 1993; Tagliavini et al.,
1993; Forloni, et al., 1993）。このペプチドは顕著なコンフォメーション多
形を示し、様々な環境の下で種々の二次構造を獲得する（De Gioia et al., 199
4）。これは、緩衝液中でβ−シートコンフォメーションをとり、凝集してプロ
テアーゼ消化に部分的な抵抗性を示すアミロイド原線維となる傾向がある。最近
、抗体３Ｆ４とそのペプチドエピトープ（ＰｒＰ１０４〜１１３）との複合体に
関するＸ線結晶学的研究で、プリオン病の進行に必須なコンフォメーション再配
列の成分であると思われる可橈性領域の構造的側面が提供された（Kanyo et al.
, 1999）。折りたたみ−ほどきおよび／または溶解−凝集過程に関与する一群の
連続事象の確認は、凝集の予防および／または離解の誘導に基づいてプラーク形
成疾患の処置に新しい治療指針をもたらすであろう（SilenとAgard, 1989; Fren
kel et al., 1998; HoriuchiとCaughey, 1999）。
【０００４】 （アルツハイマー病−臨床的概観） アルツハイマー病（ＡＤ）は老人性痴呆を起こす進行性疾患である。広義には
、この疾患は老齢（典型的には６５才以上）で発症する遅発型およびたとえば３
５才と６０才との間のように老齢期よりかなり前に進行する早発型の二型の類型
に分類される。この疾患の両型での病理学は類似であるが、異常は若年に発症す
る症例でより重症であり、広範囲に及ぶ傾向がある。この疾患は老人斑および神
経原繊維濃縮体の脳病変二型によって特徴付けられる。老人斑は脳組織切片の鏡
検で見ることができ、中心に細胞外アミロイド沈着を持つ、破壊された好中球の
、直径１５０ｍｍまでの部分である。神経原繊維濃縮体は互いに対をなして撚り
合わされたフィラメント２本からなるτタンパク質の細胞内沈着物である。
【０００５】 （ 老人斑およびその他のアミロイドプラーク） 老人斑の基本的構成成分はＡβ−またはβ−アミロイドペプチド（βＡＰ）と
呼ばれるペプチドである。このアミロイドβペプチドは、アミロイド前駆体タン
パク質（ＡＰＰ）と呼ばれる前駆体タンパク質の３９〜４３アミノ酸を持つ内部
断片である。ＡＰＰタンパク質の中の変異体数種がアルツハイマー病の存在に関
連付けられている（例えば、Goate et al., Nature, 349: 704, 1991, バリン71
7がイソロイシンに；Chartier Harlan et al., Nature, 353: 844, 1991, バリ
ン717がグリシンに；Murrel et al., Science, 254: 97, 1991, バリン717がフ
ェニルアラニンに；Mullan et al., Nature Genet., 1: 345, 1992, リジン595
−メチオニン596からアスパラギン595−ロイシン596への二重突然変異体；参照
）。
【０００６】 このような変異体は、ＡＰＰからβ−アミロイドへのプロセッシングの増大ま
たは変化、特にβ−アミロイドの長型（long form: すなわち、Ａβ１−４２お
よびＡβ１−４３）を増量させるＡＰＰのプロセッシングによってアルツハイマ
ー病を起こすと思われている。例えば、プレセニリン遺伝子ＰＳ１およびＰＳ２
などの遺伝子における変異は長型β−アミロイド作製を増量するようにＡＰＰの
プロセッシングに間接的な影響を与えると思われている（Hardy, TINS, 20: 154
, 1997参照）。これらの観察によると、β−アミロイド、特に長型はアルツハイ
マー病における病因の一要素である。
【０００７】 自己凝集が知られているその他のペプチドまたはタンパク質も、限定でないが
、例えば、アミリン（Young AA et al., 1994, FEBS Lett., 343(3): 237-41）
；ボンベシン、セルレイン、コレシストキニンオクタペプチド、エレドイシン、
ガストリン関連ペンタペプチド、ガストリンテトラペプチド、（還元型）ソマト
スタチン、サブスタンスＰ；およびペプチドである黄体形成ホルモン放出ホルモ
ン、ソマトスタチン・Ｎ−Ｔｙｒ（BanksとKastin, Prog. Brain Res., 91: 139
-4, 1992）などが知られている。
【０００８】 高親和性モノクローナル抗体（ｍＡｂ）の該部分への結合は、全タンパク質鎖
または会合の分子動力学を変化させるであろう。適当な選択によって、ｍＡｂは
、不完全に折りたたまれたエピトープを認識し、部分的な折りたたみまたは正し
くない折りたたみのタンパク質を在来型のコンフォメーションに誘導することが
見出されている（Frauenfelder et al., 1979; Blond and Goldberg, 1987; Kar
plus and Petsko, 1990; Carlson and Yarmush, 1992; Solomon と Schwartz, 1
995）。
【０００９】 （処置法） Solomon の米国特許第5,688,561号はタンパク質凝集体の離解およびそのタン
パク質の凝集を予防するために有効なモノクローナル抗体を確認する方法を教示
している。特に米国特許第5,688,561号は、試験管内でβ−アミロイドプラーク
を離解し、またβ−アミロイドプラーク形成を予防するために有効な抗β−アミ
ロイドモノクローナル抗体を示している。米国特許第5,688,561号は、β−アミ
ロイドの凝集によるプラーク形成を予防するために、または既に形成されている
β−アミロイドプラークを離解するために、該抗体のインビボ使用を明記してい
る。しかしながら、これらの教示は、該抗体を作製するために採用すべきエピト
ープを確認していない。これに加えて、これらの教示は、血液脳関門（ＢＢＢ）
を経由して行われる抗体の脳への透過を可能にする手段を提供していない。さら
にその上、この特許は、抗原または抗体に用いる送達手段としてファージ表示技
術の使用を教示していない。なおその上に、米国特許第5,688,561号は該抗体の
インビボでの有効性を証明する実験結果を示していない。
【００１０】 McMichaelの欧州特許第526,511号は、ＡＤが確実になる前の患者にβ−アミロ
イドの同種療法用の用量（１０-２mg/日またはそれ以下）を投与する方法を教示
している。血液約５Ｌを持つ典型的なヒトでは、この用量の上限でも２ng/mL以
下の濃度にしか到らないと考えられる。ヒト血中β−アミロイドの正常な濃度は
典型的には５０〜２００pg/mLの範囲内である（Seubert et al., Nature, 359:
325-327, 1992）。ここに提案された用量は内因性循環β−アミロイドのレベル
を僅かに変化させるだけなので、また欧州特許第526,511号はアジュバントの使
用を推奨していないので、なんらかの治療効果が得られとは考え難い。
【００１１】 Schenkの出願 PCT/US98/25386 および Schenk et al. Nature文献（Nature, 4
00: 173-177, 1999）は、プラークの形成を予防するために、または存在するプ
ラークを溶解するために、抗体を作製する目的で患者にβ−アミロイド免疫原を
投与することを教示している。Schenk によれば、抗原５０mgから１００mgまで
、アジュバントを採用すれば１mgから１０mgまでの抗原が必要である。これらの
両教示はまたどちらも、正常な状態では抗体の脳への侵入を妨害する血液脳関門
を無視して、β−アミロイドに対する抗体の直接的な投与によって同様な効果が
達成されるかもしれないと述べている。
【００１２】 また、注目すべきことは、これらの教示が典型的には、“β−アミロイドペプ
チドの天然型のいずれか、殊にヒト型（すなわち、Ａβ３９、Ａβ４０、Ａβ４
１、Ａβ４２またはＡβ４３）”または“例えば、β−アミロイドペプチド、活
性断片、またはその他のアミノ酸を含む類似体などの、より長いポリペプチド”
または“単量体性免疫原物質の多量体”の使用に限定されていることである。
【００１３】 しかしながら、これらの教示は、β−アミロイドの最初の２８アミノ酸が試験
管内でβ−アミロイドプラークの凝集を離解および阻害の両者を行う抗体を誘導
するために十分であると教示している既知のデータ（HananとSolomon, Amyloid:
Int. J. Exp. Clin. Invest., 3: 130-133, 1996; Solomon et al., Proc. Na
tl. Acad. Sci. U.S.A., 93: 452-455, 1996; Solomon et al., Proc. Natl. A
cad. Sci. U.S.A., 94: 4109-4112, 1997）を無視している。
【００１４】 Schenk文献およびSchenk et al.文献は、β−アミロイドペプチドの３位〜６
位に存在するアミノ酸残基の僅かに４個（ＥＦＲＨ、配列番号１）からなり、連
続エピトープであることが知られているβ−アミロイドプラーク（Frenkel, D.,
J. Neuroimmunol., 88; 85-90, 1998）にあるＮ末端エピトープの使用を教示し
ていない。その後、このエピトープに対する抗体はβ−アミロイド原線維を離解
し、β−アミロイドプラークの溶解を再生し、およびＰＣ１２細胞に及ぼす神経
毒性効果を予防することが示されている（Solomon B. et al., Proc. Natl. Aca
d. Sci. U.S.A., 94: 4109-4112, 1997; Solomon B. et al., Proc. Natl. Acad
. Sci. U.S.A., 93: 452-455, 1996）。
【００１５】 このエピトープはらランダム組合せヘキサペプチド・ファージ表示法を用いて
抗凝集抗体によって結合されるエピトープであることが独立に確認されている（
Frenkel と Solomon, J. of Neuroimmunol., 88: 85-90, 1998）。
【００１６】 このＥＦＲＨ（配列番号１）エピトープは、β−アミロイドペプチドが溶液中
にある時も凝集体中にある時も抗体結合が可能である。モノクローナル抗体によ
るこのエピトープの遮断は、自己凝集を予防し、既に形成されている凝集体の再
溶解を可能にする。
【００１７】 これらの発見は、Schenkと協力者の教示がどうみても効果的でないことを示唆
している。上記のように、ヒト血清中のβ−アミロイドの正常濃度は５０〜２０
０pg/mLであるから、このペプチドによる免疫化は抗体力価が低いか、または強
力なアジバントを使えば高い毒性を示すと考えられ、治療には適用できないであ
ろう。事実、β−アミロイドに対する抗体の有意の血清中力価を達成するために
は、一連の１１ケ月に及ぶ注射が必要であった（Schenk et al., Nature, 400:
173-177, 1999）。一定時間にわたって血清力価が持続する程度は未だに知られ
ていないが、この点が早期発症アルツハイマー病に関して特に重大な問題である
。
【００１８】 Schenkとその協力者によると、例えば、β−アミロイドのような免疫原ペプチ
ドがウイルスまたはバクテリアの表面に表示されるかも知れない。しかしながら
、そのように表示された抗原の使用して免疫することは教示していない。この報
告では、エピトープを解明しておらず、実験データも提供されていない。これに
加え、表示媒体上に表示された抗体の送達法についても、SchenkまたはSchenk e
t al.は全く教示していない。
【００１９】 総括すると、この先行技術は、インビボで短時間に抗凝集抗体の有効な力価を
作製できる方法および／またはプラーク形成疾患の患者の脳内に導入するための
方法を教示していない。さらに、先行技術の教示によって作製される力価の持続
性が確立されていない。
【００２０】 このように、持続効果を持ち、効率が高く、作用発現が迅速で、治療される対
象に及ぼす悪影響がなく、また多量生産が容易なアミロイドプラークをインビボ
で離解するのに効果的な手段は、広く認識された必要性が存在しており、また非
常に有益であろう。
【００２１】 本発明は、ひとつの態様において、次の工程を含んでなり、プラーク形成疾患
を処置するための方法を提供する。工程（ａ）表示媒体上にポリペプチドを表示
する。このポリペプチドは、プラーク形成疾患におけるプラーク形成に関連する
凝集タンパク質の少なくとも１つのエピトープを提示する。この少なくとも１つ
のエピトープは、凝集タンパク質を離解し得る抗体および／または凝集タンパク
質の凝集を防止し得る抗体を創生できる。工程（ｂ）表示媒体をレシピエントの
体内に導入して、凝集タンパク質を離解し得る抗体および／または凝集タンパク
質の凝集を防止し得る抗体をつくる。
【００２２】 本発明は、別の態様において、ポリペプチドを表示する表示媒体を含んでなり
、プラーク形成疾患を処置するための薬剤を提供する。このポリペプチドは、プ
ラーク形成疾患におけるプラーク形成に関連する凝集タンパク質の少なくとも１
つのエピトープを提示する。この少なくとも１つのエピトープは、凝集タンパク
質を離解し得る抗体および／または凝集タンパク質の凝集を防止し得る抗体を創
生できる。
【００２３】 本発明は、さらに別の態様において、ポリペプチドを表示する有効量の表示媒
体を含んでなり、プラーク形成疾患を処置するための医薬組成物を提供する。こ
のポリペプチドは、プラーク形成疾患におけるプラーク形成に関連する凝集タン
パク質の少なくとも１つのエピトープを提示する。この少なくとも１つのエピト
ープは、凝集タンパク質を離解し得る抗体および／または凝集タンパク質の凝集
を防止し得る抗体を創生できる。この医薬組成物は薬学的に許容される担体をさ
らに含み得る。
【００２４】 本発明は、さらに別の態様において、プラーク形成疾患を処置するための表示
媒体をつくる方法を提供する。この方法は、表示媒体のゲノムを遺伝子的に改変
する工程を含んでなり、プラーク形成疾患におけるプラーク形成に関連する凝集
タンパク質の少なくとも１つのエピトープを提示するポリペプチドをコードする
ポリヌクレオチド配列を挿入することにより行う。この少なくとも１つのエピト
ープは、凝集タンパク質を離解し得る抗体および／または凝集タンパク質の凝集
を防止し得る抗体を創生できるものであって、表示媒体が増殖したときに、ポリ
ペプチドを表示媒体が表示する。
【００２５】 本発明は、追加の態様において、次の工程を含み、プラーク形成疾患を処置す
るための方法を提供する。工程（ａ）プラーク形成疾患におけるプラーク形成に
関連する凝集タンパク質の少なくとも１つのエピトープに結合する抗体の少なく
とも１つの免疫学的部分を提示するポリペプチドを表示する。この結合は、凝集
タンパク質を離解し得るか、および／または凝集タンパク質の凝集を防止し得る
。工程（ｂ）表示媒体をレシピエントの体内に導入して、凝集タンパク質を離解
するか、および／または凝集タンパク質の凝集を防止する。
【００２６】 本発明は、さらに追加の態様において、工学処理標的用部分を欠く表示媒体を
レシピエントの脳に導入する方法を提供する。この方法は、表示媒体をレシピエ
ントに経鼻的に投与する工程を含んでなる。
【００２７】 下記する本発明の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、表示媒
体をレシピエントの体内に導入して凝集タンパク質を離解する工程は、レシピエ
ントの臭覚系を経由して効果的となる。
【００２８】 本発明は、別の追加の態様において、ポリペプチドを表示する表示媒体を含み
、プラーク形成疾患を処置するための薬剤を提供する。このポリペプチドは、プ
ラーク形成疾患におけるプラーク形成に関連する凝集タンパク質の少なくとも１
つのエピトープに結合し得る抗体の少なくとも１つの免疫学的部分を提示する。
この抗体の免疫学的部分は、凝集タンパク質を離解し得るか、および／または凝
集タンパク質の凝集を防止し得る。
【００２９】 本発明は、さらに追加の態様において、ポリペプチドを表示する有効量の表示
媒体を含んでなり、プラーク形成疾患を処置するための医薬組成物を提供する。
このポリペプチドは、プラーク形成疾患におけるプラーク形成に関連する凝集タ
ンパク質の少なくとも１つのエピトープに結合し得る抗体の少なくとも１つの免
疫学的部分を提示する。この抗体の免疫学的部分は、凝集タンパク質を離解し得
るか、および／または凝集タンパク質の凝集を防止し得る。この医薬組成物は薬
学的に許容される担体をさらに含んでなる。
【００３０】 本発明は、さらに別の態様において、プラーク形成疾患を処置するための表示
媒体をつくる方法を提供する。この方法は、表示媒体のゲノムを遺伝子的に改変
する工程を含んでなり、プラーク形成疾患におけるプラーク形成に関連する凝集
タンパク質の少なくとも１つのエピトープに結合し得る抗体の少なくとも１つの
免疫学的部分をコードするポリヌクレオチドを挿入することにより行う。この抗
体の免疫学的部分は、凝集タンパク質を離解し得るか、抗体および／または凝集
タンパク質の凝集を防止し得る。
【００３１】 本発明は、さらなる態様において、プリオンタンパク質凝集体を離解し得るか
、および／または該プリオンタンパク質の凝集を防止し得る抗体の少なくとも１
つの免疫学的部分を含むポリヌクレオチドを提供する。
【００３２】 下記する本発明の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、ポリヌ
クレオチドは、配列番号２５で規定するアミノ酸配列により形成される少なくと
も１つのエピトープに結合し得る。
【００３３】 本発明は、さらなる態様において、次の工程を含んでなり、生物サンプル中の
プリオンタンパク質の存在または不存在を検出する方法を提供する。工程（ａ）
抗プリオン抗体またはその免疫学的部分を生物サンプルとともにインキュベート
する。工程（ｂ）抗プリオン抗体またはその免疫学的部分で形成された抗原複合
体の存在または不存在を測定することにより、生物サンプル中のプリオンタンパ
ク質の存在または不存在を決定する。
【００３４】 記載の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、プラーク形成疾患
は、早期発症アルツハイマー病、後期発症アルツハイマー病、症候的アルツハイ
マー病、ＳＡＡアミロイド症、遺伝的アイスランド症候群、老化、多発性骨髄腫
よりなる群から選ばれる。
【００３５】 記載の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、プラーク形成疾患
は、スクレイピー、ウシ海綿状脳症（ＢＳＥ）、クール(kuru)、クロイツフェル
ト・ヤコブ病（ＣＪＤ）、ゲルストマン・シュトロイスラー・シャインカ病（Ｇ
ＳＳ）、致死性家族性不眠症（ＦＦＩ）よりなる群から選ばれる。
【００３６】 記載の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、凝集タンパク質は
、ベータ−アミロイド、血清アミロイドＡ、シスタンチンＣ、ＩｇＧカッパ軽鎖
、プリオンタンパク質よりなる群から選ばれる。
【００３７】 記載の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、表示媒体は、ウイ
ルス、細菌、ポリペプチド担体よりなる群から選ばれる。
【００３８】 記載の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、ウイルスは、２本
鎖ＤＮＡウイルス、１本鎖ＤＮＡウイルス、ポジティブ鎖ＲＮＡウイルス、ネガ
ティブ鎖ＲＮＡウイルスよりなる群から選ばれる。
【００３９】 記載の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、表示媒体はバクテ
リアファージである。
【００４０】 記載の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、表示媒体は糸状バ
クテリアファージである。
【００４１】 記載の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、バクテリアファー
ジ表示媒体は宿主の細菌相で増殖し得る。
【００４２】 記載の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、バクテリアファー
ジ表示媒体は大腸菌内で増殖し得る。
【００４３】 記載の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、バクテリアファー
ジ表示媒体はｆｄである。
【００４４】 記載の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、表示媒体はインビ
ボで増殖し得ない。
【００４５】 記載の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、選択された表示媒
体の１０１０単位の３倍量が３０日間の投与で少なくとも１：５０,０００の抗
体力価を誘導する。これはＥＬＩＳＡにより測定した。
【００４６】 記載の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、該プリオンタンパ
ク質の少なくとも１つのエピトープが配列番号２５に規定するアミノ酸配列によ
り形成される。
【００４７】 記載の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、抗体の免疫学的部
分は、プラーク形成疾患におけるプラーク形成に関連する凝集タンパク質の少な
くとも１つのエピトープに結合するのに働く。この抗体の該免疫学的部分は、該
凝集タンパク質を離解し得るか、および／または該凝集タンパク質の凝集を防止
し得る。
【００４８】 記載の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、プリオンタンパク
質は、プラーク形成に関連する凝集タンパク質である。
【００４９】 記載の好ましい実施態様における更なる特性にしたがって、生物サンプルは、
ヒト、霊長類、サル、ブタ、ウシ、ヒツジ、シカ、エルフ、ネコ、イヌ、ニワト
リの組織および／または体液に由来する。
【００５０】 本発明は、プラーク形成疾患の進行予防や回復のための方法、薬剤、医薬組成
物を提供して、現在知られている問題点を改善するものである。さらに、本発明
は、プラーク形成疾患を予防または治療するのに有用な薬剤および医薬組成物を
つくるための方法、および生物サンプル中の病原性プリオンタンパク質の存在を
検出する方法を含む。
【００５１】 [図面の簡単な説明] 以下に添付の図面を参照しながら、例示のみを目的として本発明を説明する。
詳細な図面に関連して特にここで強調するのは、示された細目は例示であって、
本発明の好適な態様のみを図解検討するのを目的とし、最も有用であると信じら
れるものは何か、また、本発明の原理と概念的側面を容易に理解し得る説明の提
供を目的として提示するということである。この点に関しては、本発明の基本的
な理解に必要なことを越えて本発明の細部を詳細に示そうとするものではなく、
図面によっての説明は、本発明ではどのように幾つかの形体が実際に具体化し得
るのかを当業者に明らかにするものである。 図面においては、以下のとおりである。
【００５２】 [図１] 図１ａはＩgＭ抗体の図式描写である。 図１ｂは臭化エチジウムで染色した１.５％アガロース・ゲルの写真であり、
ＩgＭ５０８の軽鎖および重鎖のｃＤＮＡ断片を示す。レーン１：Ｋｂ（ラダー
）；レーン２および３：ＶＨおよびＶＬ断片であり、それぞれ矢印で示す。 図１ｃは臭化エチジウムで染色した１.５％アガロース・ゲルの写真であり、
抗体ＩgＭ５０８由来のｓｃＦｖＤＮＡ断片を示す。レーン１：Ｋｂ（ラダー）
；レーン２：ｓｃＦｖ５０８ＤＮＡ（７５０ｂｐ）。 図１ｄはｓｃＦｖを表示する繊維状ファージの図式描写である。 図１ｅは可溶性ｓｃＦｖの図式描写である。
【００５３】 [図２] 図２はｌａｃプロモーターの制御下にｓｃＦｖ−５０８−ＣＢＤ融合タンパク
質（本明細書では５０８（Ｆｖ）−ＣＢＤともいう）の産生に使用するプラスミ
ドｐＣＣ−５０８Ｆの物理的地図である。Ａmp res：β−ラクタマーゼをコード
する遺伝子；ＶＨおよびＶＬ：それぞれｓｃＦｖ−５０８の重鎖および軽鎖の可
変ドメインをコードする配列；Ｌin：可変ドメインＶＨおよびＶＬ間に存在する
（Ｇlｙ４Ｓｅｒ)３（配列番号２）リンカーをコードする遺伝子。制限部位およ
びその位置も示す。
【００５４】 [図３] 図３はＴ７プロモーターの制御下にｓｃＦｖ−５０８−ＣＢＤ融合タンパク質
の細胞質発現のために本発明により使用されるプラスミドｐｆＦＥＫＣＡ−５０
８の物理的地図である。Ａmp res：β−ラクタマーゼをコードする遺伝子；ＶＨ およびＶＬ：それぞれｓｃＦｖ−５０８の重鎖および軽鎖の可変ドメインをコー
ドする配列；Ｌin：可変ドメインＶＨおよびＶＬ間に存在する（Ｇlｙ４Ｓｅｒ) ３ （配列番号２）リンカーをコードする遺伝子。Ｔ７プロモーターおよびＴ７末
端：それぞれＴ７プロモーターとＴ７ターミネーター。制限部位およびその位置
も示す。
【００５５】 [図４] 図４はＥＬＩＳＡアッセイにおいて抗体５０８（Ｆｖ）−ＣＢＤによるβＡＰ
結合の分析を示す。分析した抗体をβＡＰ被覆ウエルに加えた。結合した抗体は
ＨＲＰ接合第二抗体により検出した。親５０８ＩgＭ抗体を陽性コントロールと
して使用した。陰性コントロールとしては無関係の抗β−ガラクトシダーゼ抗体
Ｇal６(Ｆｖ)−ＣＢＤを使用した。
【００５６】 [図５] 図５はファージＤＮＡ挿入片のＰＣＲ分析を示す。ｐＣＣ−５０８(Ｆｖ）か
ら単離したＤＮＡ（レーン２）およびｐＣＣ−Ｇal６(Ｆｖ)から単離したＤＮＡ
をＰＣＲ増幅し、１.５％アガロース・ゲル上で分離した。臭化エチジウム染色
およびＵＶ照射によりバンドを可視化した。レーン１はＤＮＡのサイズ・マーカ
ーを含む。矢印は約７５０ｂｐに移動した未処理ｓｃＦｖの位置を示す。
【００５７】 [図６] 図６は５０８（Ｆｖ）−ＣＢＤの発現と精製を示している。１４％ＳＤＳポリ
アクリルアミド・ゲルの各レーンに５〜１０μｇのタンパク質を負荷した。タン
パク質はクマシー・ブリリアント・ブルー染色により可視化した。矢印はｓｃＦ
ｖ−ＣＢＤ融合タンパク質の位置を示す。レーン１：５０８（Ｆｖ）−ＣＢＤ発
現ベクターを担持する非誘発ＢＬ２１(ＤＥ３）細胞からの全細胞抽出物。レー
ン２：ＩＰＴＧにより３時間誘発した５０８（Ｆｖ）−ＣＢＤ発現ベクター担持
非誘発ＢＬ２１(ＤＥ３）細胞からの全細胞抽出物。レーン３：洗浄し、可溶化
し、還元した、再生に用いた封入体。レーン４：セルロース補助再生に際してセ
ルロースに結合しなかったタンパク質。レーン５：ＴＢＳによりセルロースから
洗い出されたタンパク質。レーン６：蒸留水により結晶性セルロースから洗い出
されたタンパク質。レーン７：高ｐＨ溶出および中和によりセルロースから回収
した可溶性５０８（Ｆｖ）−ＣＢＤ。
【００５８】 [図７] 図７は５０８（Ｆｖ）−ＣＢＤの安定性を示す。精製した５０８（Ｆｖ）−Ｃ
ＢＤタンパク質を１日（黒四角）または１週間（黒丸）４℃で保存し、次いで、
図４の説明文に記載したとおりにＥＬＩＳＡアッセイによりβＡＰ結合について
分析した。無関係の抗体Ｇal６(Ｆｖ)−ＣＢＤを陰性コントロール（白四角）と
した。
【００５９】 [図８] 図８はＰＣＲによりアフィニティ濃厚化した５０８(Ｆｖ）変異体の定量とＤ
ＮＡ制限分析を示す。アフィニティ選択１サイクル前の１９種の５０８(Ｆｖ）
変異体マイクロライブラリー・クローンのＤＮＡ（図８ａ）と選択１サイクル後
に拾い上げた１１種のクローンのＤＮＡ（図８ｂ）を分析した。ＤＮＡをＰvuＩ
により消化し、１.５％アガロース・ゲル上で分離した。非変異ｓｃＦｖ−ＣＢ
Ｄは未変化１２５０ｂｐ断片（上方矢印）として現われた。変異したクローンは
７００ｂｐ（中央矢印）および５５０ｂｐ（下方矢印）両方の出現により示され
る。レーン１はＤＮＡサイズ・マーカーを示す。
【００６０】 [図９] 図９はＥＬＩＳＡアッセイにおける変異した５０８（Ｆｖ）誘導体のβＡＰ結
合（図９ａ）および安定性（図９ｂ）の分析を示す。分析した抗体をβＡＰ被覆
ウエルに添加した。１日または１週間４℃で保存した結合抗体を図７の説明文に
記載のとおりに検出した。５０８（Ｆｖ）野生型（白四角）、Ｃ９６（黒四角）
、Ｃ９６Ｙ（黒丸）、Ｃ９６Ｓ（黒三角）。無関係の抗β−ガラクトシダーゼ抗
体Ｇal６(Ｆｖ)−ＣＢＤを陰性コントロールとして用いた（白四角）。
【００６１】 [図１０] 図１０は競合ＥＬＩＳＡアッセイにおける抗体５０８（Ｆｖ）によりβＡＰ結
合の特異的阻害の分析を示す。該抗体を競合するペプチドの様々な濃度で前温置
した：βＡＰ被覆ウエルに添加する前のβＡＰ（配列番号３の酸１〜１６）（黒
四角）または無関係ペプチドＷＶＬＤ（配列番号４）（白四角）。結合した抗体
は図７の説明文に記載のとおりに検出した。
【００６２】 [図１１] 図１１ａおよび１１ｂはｓｃＦｖ５０８Ｆ重鎖のヌクレオチド（配列番号５）
および推定アミノ酸（配列番号６）配列（図１１ａ）、および該軽鎖のリンカー
と可変領域（図１１ｂ）を示す。アミノ酸配列は３文字コードで表す；ＣＤＲお
よびリンカーには下線を付す。
【００６３】 [図１２] 図１２はＰＣ１２細胞に対するβＡＰ介在毒性作用の５０８（Ｆｖ）による防
御作用を示す。細胞は繊維性βＡのみにより、または指示された抗体／βＡＰの
異なるモル比で抗体とインキュベートした繊維性βＡによりインキュベートした
。臭化３−（４，５−ジメチルチアゾール−２−イル）−２，５−ジフェニルテ
トラゾリウム（ＭＴＴ）アッセイ法を細胞生存の評価に使用した。
【００６４】 [図１３] 図１３は５０８（Ｆｖ）による繊維性βＡの離解を示す。前形成原繊維の線維
状態は指示された抗体／βＡＰの異なるモル比の抗体とインキュベートした後ま
たはインキュベートせずに測定した。原繊維βＡに比例するチオフラビン−Ｔ（
ＴｈＴ）アッセイにおけるＴｈＴ試薬の蛍光を用い、原繊維の形態を評価した。
【００６５】 [図１４] 図１４ａ〜ｄは鼻腔内単回投与１日後の免疫蛍光による脳切片の繊維状ファー
ジ（ｆ８８−ＥＦＲＨ）の検出を示す。蛍光ウサギ抗ファージ抗体を用いてのマ
ウス嗅球と海馬切片における線維状ファージの出現（それぞれ図１４ａおよび１
４ｃ）は未処理マウス脳（それぞれ図１４ｂおよび１４ｄ）に比較した通りであ
る。切片は蛍光顕微鏡により１０倍の最終倍率で観察した。
【００６６】 [図１５] 図１５ａ〜ｄは単回鼻腔内投与２８日後のマウス脳から繊維状ファージ（ｆ８
８−ＥＦＲＨ）の消失したことを示す。マウス嗅球と海馬からの繊維状ファージ
の消失は、未処理マウス脳（それぞれ図１５ｂおよび１５ｄ）に比較するように
、蛍光ウサギ抗ファージ抗体を用いて、これらの臓器の切片に証明される（それ
ぞれ図１４ａおよび１４ｃ）。切片は蛍光顕微鏡により１０倍の最終倍率で観察
した。
【００６７】 [図１６] 図１６ａ〜ｄはファージｆ８８−ＥＦＲＨクリアランス後のマウス脳切片の組
織所見を示す。ファージｆ８８−ＥＦＲＨ投与２８日後の嗅球臓器（図１６ａ）
と海馬（図１６ｃ）の脳切片をヘマトキシリンおよびエオシンで染色し、未処理
マウス脳切片（それぞれ図１６ｂおよび１６ｄ）に比較した。染色した切片を試
験し、最終倍率４０倍で写真撮影した。
【００６８】 [図１７] 図１７ａ〜ｄは単回鼻腔内投与後のマウス脳切片におけるビオチニル化βＡＰ
（配列番号３の酸１〜１６）に結合したファージｐＣＣ−５０８Ｆのビオチンの
蛍光検出を示す。マウス嗅球と海馬切片にｓｃＦｖ５０８Ｆを示す繊維状ファー
ジに結合したβＡＰ（配列番号３の酸１〜１６）の出現（それぞれ図１７ａおよ
び１７ｃ）は、ＰＥに結合したストレプトアビジンを用い、未処理マウス脳（そ
れぞれ図１７ｂおよび１７ｄ）に比較した通りである。切片は蛍光顕微鏡により
２０倍の最終倍率で観察した。
【００６９】 [図１８] 図１８ａ〜ｄはビオチニル化βＡＰ（配列番号３の酸１〜１６）に結合したフ
ァージｐＣＣ−５０８Ｆ投与後のマウス脳の組織所見を示す。ファージ投与１日
後に嗅球臓器（図１８ａ）と海馬（図１８ｂ）の切片をヘマトキシリンおよびエ
オシンで染色し、未処理マウス脳切片（それぞれ図１８ｃおよび１８ｄ）に比較
した。染色した切片を試験し、最終倍率４０倍で写真撮影した。
【００７０】 [図１９] 図１９はβ−アミロイド・ペプチドのＥＦＲＨ（配列番号１）エピトープを表
す繊維状ファージによる免疫化スケジュールの図式である。
【００７１】 [図２０] 図２０ａおよび２０ｂはファージ糖タンパク質III（ｇｐIII）の融合物として
β−アミロイド・ペプチドのＥＦＲＨ（配列番号１）エピトープを表すｆ３繊維
状ファージによる免疫化を示す。野生型繊維状ファージ・コートタンパク質（図
２０ａ）およびβ−アミロイドのＮ末端エピトープ（配列番号３の酸１〜１６）
に対し、図１９のスケジュールに従ってＥＦＲＨファージにより免疫したマウス
からの異なる出血の血清ＩgＧ力価。
【００７２】 [図２１] 図２１はｆ３繊維状ファージによる長期持続免疫を示す。野生型繊維状ファー
ジ・コートタンパク質およびβ−アミロイドのＮ末端（配列番号３の酸１〜１６
）に対し、ＥＦＲＨファージにより免疫したマウスからの異なる出血の血清Ｉg
Ｇ力価。
【００７３】 [図２２] 図２２はｆ８８ファージ・ライブラリーから選択されたペプチド提示ファージ
に、抗凝集βＡＰモノクローナル抗体（ｍＡｂ １０Ｄ５）が結合するのを示す
。アセチルコリン・レセプターに対し作製した無関係ｍＡｂ５.５を陰性コント
ロールとして使用した。抗体をファージ被覆ウエルに添加し、結合の検出にＥＬ
ＩＳＡを用いた。
【００７４】 [図２３] 図２３はＹＹＥＦＲＨ（配列番号７）ファージおよびＶＨＥＰＨＥＦＲＨＶＡ
ＬＮＰＶ（配列番号８）ファージに抗凝集βＡＰ ｍＡｂ（１０Ｄ５）が結合す
るのを示す。１μｇ／ｍｌ濃度の抗体をファージ被覆ウエルに添加し、結合をＥ
ＬＩＳＡＳにより分析した。挿入片のない繊維状ファージをコントロールとして
用いた。
【００７５】 [図２４] 図２４ａ〜ｂはファージ糖タンパク質ＶIII（ｇｐＶIII）の融合体としてのβ
−アミロイド・ペプチドＥＦＲＨ（配列番号１）エピトープを表すｆ８８繊維状
ファージによる免疫を示す。野生型繊維状ファージ・コートタンパク質（図２４
ａ）およびβ−アミロイド・ペプチドのＮ末端エピトープ（配列番号３の酸１〜
１６）（図２４ｂ）に対し、ＥＦＲＨファージにより免疫したマウスからの異な
る出血の血清ＩgＧ力価。
【００７６】 [図２５] 図２５はβ−アミロイド・ペプチドのＮ末端から誘導される合成ペプチドによ
る、βＡＰへの結合における免疫マウスの血清阻害を示す。指示どおりに、ウエ
ル当たり種々濃度の種々ペプチドと反応させたｆ８８−ＥＦＲＨにより３回免疫
した後の血清を１：３０００に希釈してアッセイを実施した。ペプチドＷＶＬＤ
（配列番号４）を陰性コントロールとして用いた。
【００７７】 [図２６] 図２６はｆ８８−ＥＦＲＨファージに対して作製した血清抗体によるＰＣ１２
細胞へのβＡＰ介在毒性作用の防御を示す。細胞を繊維性βＡのみにより、また
は３回目の出血からの血清と種々濃度でインキュベートした繊維性βＡによりイ
ンキュベートした。陰性コントロールは非免疫マウスからの血清とした。ＭＴＴ
アッセイを用い、細胞生存を評価した。
【００７８】 [図２７] 図２７はｆ８８−ＥＦＲＨファージに対して作製した血清抗体による繊維性β
−アミロイド形成の干渉を示す。指示どおりに希釈した血清サンプルの存在下に
３７℃１週間インキュベーションした後に形成される繊維性β−アミロイドの量
と相関するＴｈＴ蛍光での評価。陰性コントロールは非免疫マウスからの血清と
した。陽性コントロールは血清なしとした。原繊維形成はＴｈＴアッセイにより
測定した。
【００７９】 [図２８] 図２８はヒト・プリオン・タンパク質１０６−１２６（配列番号２５）および
そのマウス同族体に対応するアミノ酸配列を示す。
【００８０】 [図２９] 図２９はＭＴＴアッセイにより測定したＰｒＰペプチドの神経毒性作用を示す
。ＰＣ１２細胞を、２ｍＭインスリン、２μＭ−Ｌ−グルタミンおよび１００単
位のペニシリン／ストレプトマイシン追加ＤＭＥＭ培地を容れた９６ウエルプレ
ートに播種した。細胞生存度はＰｒＰ１０６−１２６との（異なる濃度での）イ
ンキュベーション後にＭＴＴアッセイにより評価した。ＰｒＰ１０６−１２６は
３７℃で４日間前インキュベートし、次いで３日間細胞に加えるか（灰白色棒）
、または３７℃で４日間前インキュベートし、次いで５日間細胞に加えるか（白
棒）、または３７℃で７日間前インキュベートし、次いで５日間細胞に加える（
黒棒）。
【００８１】 [図３０] 図３０はＴｈＴ結合アッセイによるＰｒＰペプチドの凝集度合いを示す。Ｐｒ
Ｐ１０６−１２６（０〜０.８ｍｇ／ｍｌ）を３７℃で７日間インキュベートし
、４８２ｎｍでの発光を測定して、凝集度合いを定量した。
【００８２】 [図３１] ＰｒＰペプチドの神経毒性に対するｍＡｂ３−１１、２−４０の防御作用を示
す。ＰＣ１２細胞を、２ｍＭインスリン、２ｍＭ−Ｌ−グルタミンおよび１００
単位のペニシリン／ストレプトマイシン追加ＤＭＥＭ培地を容れた９６ウエルプ
レートに播種し、３日間インキュベートした。以下の処理を実施した：（１）陽
性コントロール、未処理細胞；（２）３７℃７日間、前インキュベートした１０
０μＭ−ＰｒＰ１０６−１２６；（３、４、５）１時間、前インキュベートした
凝集ペプチドであって、その後にｍＡｂ３−１１（処理３）、２−４０（処理４
）および３Ｆ４（処理５）と共に細胞に露出した。細胞の生存度はＭＴＴアッセ
イにより評価した。
【００８３】 [図３２] 図３２はｍＡｂによるＰｒＰコンホメーションの変調を示す。ＰｒＰ１０６−
１２６（０.３ｍｇ／ｍｌ）を３７℃で７日間（１）、およびｍＡｂ２−４０、
３−１１および３Ｆ４（それぞれ、処理２、３および４）とインキュベートする
。抗体はＰｒＰインキュベーションに先立ち（灰白色棒）、または１週間のＰｒ
Ｐインキュベーションの後に（白棒）、２４時間、サンプルとインキュベートし
た。原繊維形成はＴｈＴ結合アッセイにより評価した。
【００８４】 [図３３] 図３３はＰｒＰ繊維状凝集形成に対するｍＡｂ３−１１の濃度依存性防御作用
を示す。ＰｒＰ１０６−１２６（０.３ｍｇ／ｍｌ）を、希釈したｍＡｂ３−１
１（それぞれ処理１、２、および３に対応して１：１、１：１０、１：５０）と
３７℃で７日間インキュベートした。抗体はＰｒＰインキュベーションに先立ち
（灰白色棒）、または１週間のＰｒＰインキュベーションの後に（白棒）、２４
時間、サンプルとインキュベートした。アミロイド原繊維形成をＴｈＴ結合アッ
セイにより評価した。
【００８５】 （好適な実施例の説明） 本発明はプラーク形成疾患、例えば、これらに限定されるものではないが、ア
ルツハイマー病およびプリオン生成プラーク形成疾患などの治療に使用し得る方
法、薬剤および組成物の発明である。詳しくは、本発明は、（ｉ）レシピエント
にプラーク由来抗原に活性な免疫を誘発することであって、プラーク形成疾患に
おいて表示媒体上にプラークを形成することと関連する凝集タンパク質の少なく
とも１つのエピトープによりレシピエントを免疫し、その結果、免疫に応答して
誘導された抗体がプラーク形成を防止するか、および／または既存のプラークを
離解させ得るものとする；および（ii）プラーク形成疾患においてプラーク形成
と関連する凝集タンパク質の少なくとも１つのエピトープに結合し得る抗体の少
なくとも免疫部分を投与することにより受動免疫を誘発することであって、該抗
体はプラーク由来抗原に対して作製し、クローン化し、表示媒体に表示するもの
であって、プラーク形成を防止し、かつ、既存のプラークを離解させ得るもので
ある。この受動免疫は、採用した表示媒体がレシピエント内で複製し得るもので
あれば、並外れて長期間持続し得る。本発明はさらにヒトを含む動物の脳を表示
媒体の標的とし、その結果として、脳内に存在するプラーク、例えば、アルツハ
イマー病患者脳内のベータ・アミロイドプラークを離解させる方法に関する。最
後に、本発明は生物サンプル中の凝集形成プリオンタンパク質を検出する方法に
も関する。
【００８６】 本発明の原理と操作は図面とその説明を参照することでよりよく理解し得る。 本発明の少なくとも一態様を詳細に説明する前に理解すべきことは、本発明が
その応用に際して、以下の説明文に述べた成分の構成の詳細と整頓に限定される
ものではないということである。本発明は他の態様であってもよく、あるいは種
々の方法で実用化または実施し得る。また、本明細書にて採用された表現法およ
び用語は説明を目的とするものであって、限定するものと見なすべきではないこ
とを理解すべきである。
【００８７】 以下に示す実施例の部の実施例１〜１５にさらに例示されるように、本発明の
一態様を実用化する一方で、ベータ・アミロイドペプチドから誘導した抗原を、
実験動物の免疫化に使用した繊維状ファージの表面に表示させた。採用したペプ
チドはすべてベータ・アミロイドペプチド（配列番号３）のＥＦＲＨエピトープ
（配列番号１；残基３〜６、配列番号３）を含んでいた。該エピトープはｆｄフ
ァージ被覆糖タンパク質IIIまたはＶIIIの融合タンパク質として提示された。注
射１回当たりの投与量を１０１０ないし１０１２ファージとし、８週令のＢＡＬ
Ｂ／ｃマウスに投与した。代表的な免疫化スケジュールは１４日間隔での３回の
注入であり、腹腔内または鼻腔内に投与された。
【００８８】 免疫化過程に際し、または免疫化の後に、被験マウスの抗体血清力価を、以下
の方法と材料に詳述するように、酵素結合イムノソルベントアッセイ（ＥＬＩＳ
Ａ）によりＡβ特異抗体の産生について試験した。血清力価は次いで３回のみの
免疫化を含むプロトコールに応答して１１ヵ月間持続したことを示した。ＥＦＲ
Ｈを含む試験したエピトープはすべてある力価を生じたが、表示媒体の表面上に
エピトープを表示した場合には、遥かに高い予期せざる力価を生じた。これらの
高い力価は本方法による免疫系に提示された多数のコピーの結果であると信じら
れ、この考えは血清量を調節した結合アッセイの結果により支持される。
【００８９】 ベータ−アミロイド原繊維形成に関連してＥＦＲＨエピトープに対して作製し
て得たポリクローナル抗体の抗凝集性はＴｈＴ結合アッセイにより測定した。１
：１０および１：１００に希釈した血清は、原繊維形態の広範な劣化と共にβ−
アミロイドの原繊維構造形成を中断したが、これはＴｈＴ蛍光の実質的低下によ
り示された。コントロールとして使用した無関係血清（未免疫マウスからの血清
）は原繊維形成を有意には阻害しなかった。
【００９０】 すでに形成されたβＡ原繊維の破壊に対する同一血清の作用（βＡＰの毒性形
状）も定量した。前形成βＡ原繊維とインキュベートしたＥＦＲＨ免疫マウスの
血清は原繊維構造を破壊した。無関係コントロール抗体は原繊維形態に有意な作
用を示さなかった。まとめると、これらの結果は、適切な表示媒体により提示さ
れるＥＦＲＨエピトープの能力が抗凝集抗体の産生を引起し、それが原繊維形成
の過程を阻害するか、または逆転し得ることを確認する。
【００９１】 本発明の態様に従い生成した希釈血清はベータ・アミロイドペプチドの神経毒
性を防止した。この結果はアミロイドプラーク病罹患患者の脳劣化防止における
有力な臨床用途を暗示する。
【００９２】 本発明の他の側面を実用化する一方、また、以下の実施例の部の実施例１５〜
２１にさらに例示するように、プリオン由来ペプチドに対し生成させた部位指向
抗体（ｍＡｂ３−１１および２−４０と命名）は、プリオン生成プラークを防止
または離解するのに有用である。
【００９３】 これらｍＡｂに対するプリオン由来ペプチド（ＰｒＰ１０６−１２６）の結合
は、ＴｈＴおよびＭＴＴアッセイにより測定したように、凝集に対する有意な防
御作用に導いた。本発明により生成したｍＡｂはペプチド繊維性凝集を有意に低
下させ、また、ＴｈＴ結合アッセイにより検定されるように、凝集した形状を離
解したコンホメーションに逆転させる。
【００９４】 ｍＡｂ３−１１および２−４０がＰｒＰペプチドに溶液中でまたは凝集体に結
合することは、このエピトープが凝集過程に関与しており、ＰｒＰペプチド、恐
らく全ＰｒＰペプチドの安定化と離解過程両方をコントロールする調整部位とし
て作用することを示唆している。
【００９５】 即ち、本発明のある態様において、プラーク形成疾患の治療方法を提供するも
のである。本発明のこの態様による方法は、ポリペプチドの表示によって表示媒
体を有効にし、かかるペプチドは、このプラーク形成疾患においてプラーク形成
に関連する凝集タンパク質の少なくとも１つのエピトープを提示し、この少なく
とも１つのエピトープは、凝集タンパク質を離解および／または凝集タンパク質
の凝集を防止し得る抗体をつくり得る。当該提示媒体をレシピエントの体内に導
入し、凝集タンパク質を離解し得るか、および／または凝集タンパク質の凝集を
防止し得る抗体をつくる。
【００９６】 本発明の好ましい実施態様において、表示媒体は、レシピエントに表示媒体の
１０１０単位の３倍量導入後３０日以内であるように選択され、ＥＬＩＳＡによ
り測定すると、レシピレントでの抗体力価は１：５０,０００以上である。
【００９７】 本発明の別の態様において、プラーク形成疾患を処置するための方法が提供さ
れる。本発明のこの態様に関する薬剤は、ポリペプチドを表示する表示媒体を含
み、このポリペプチドは、プラーク形成疾患においてプラーク形成に関連する凝
集タンパク質の少なくとも１つのエピトープを提示し、少なくとも１つのエピト
ープは、凝集タンパク質を離解し得る抗体および／または凝集タンパク質の凝集
を防止し得る抗体を創生できる。
【００９８】 本発明のさらに別の態様において、プラーク形成疾患を処置するための医薬組
成物が提供される。本発明のこの実施態様の組成物は、ポリペプチドを表示する
有効量の表示媒体を含み、このポリペプチドは、プラーク形成疾患におけるプラ
ーク形成に関連する凝集タンパク質の少なくとも１つのエピトープを提示し、こ
の少なくとも１つのエピトープは、凝集タンパク質を離解し得る抗体および／ま
たは凝集タンパク質の凝集を防止し得る抗体を創生できる。この医薬組成物は薬
学的に許容される担体をさらに含む。
【００９９】 本発明のさらなる別の態様により、プラーク形成疾患を処置するための表示媒
体をつくる方法を提供する。本発明のこの態様に関する方法は、プラーク形成疾
患におけるプラーク形成に関連する凝集タンパク質の少なくとも１つのエピトー
プを表示するポリペプチドをコードするポリペプチド配列をその中に挿入するこ
とによって表示媒体のゲノムを遺伝子的修飾による。この少なくとも１つのエピ
トープは、凝集タンパク質を離解し得る抗体および／または凝集タンパク質の凝
集を防止し得る抗体を創生できるものであって、表示媒体が増殖したときに、ポ
リペプチドを表示媒体により表示する。
【０１００】 免疫化を実施するためにベータ・アミロイドペプチド抗原をアジュバントと共
に使用することは、高い毒性と得られる力価が低いために、以前は難しかった。
出発点で先行技術の方法を用い、ＫＬＨ（配列番号９）に接合したベータ・アミ
ロイドの１６個のアミノ酸からなるペプチドでマウスを免疫した。この免疫化で
はベータ・アミロイドに対して低いが測定し得る抗体力価を生じた。
【０１０１】 本発明の一側面を実用化する一方、免疫したマウスを脾臓摘出するとベータ・
アミロイドに特異性を有するｓｃＦｖＡｂ発現ＩｇＭハイブリドーマ５０８の調
製が容易になった。次いで、このハイブリドーマからＲＮＡを抽出し、抗体クロ
ーニングに使用した。ＩｇＭ５０８ハイブリドーマは、ＰＣ１２細胞に対する毒
性作用を防止するＡβに特異的活性を示した（Anavi, S. 1998; 理学修士論文、
テルアビブ大学、分子微生物学・生物工学部門、イスラエル）。ＩｇＭ５０８の
ＶＨおよびＶＬ配列を別々にクローン化し、抗ベータ・アミロイド特異性を有す
る一本鎖抗体を形成させるために市販のベクターを用いて結合した。次いで、こ
の一本鎖抗体をファージ表示ライブラリー中に融合タンパク質として発現させ、
抗ベータ・アミロイド活性クローンを大腸菌での増殖用に選択した。
【０１０２】 さらなる実用化は、アミロイド・ベータに対する精製抗体提示ファージの見掛
け上結合定数を定量することで証明したが、該定数はＥＬＩＳＡテストにより測
定し、結合半値は８×１０−６Ｍに相当する３４０ｎｇ／ｍｌの抗体濃度で得ら
れた。この結果は調製した一本鎖抗体がインビボ条件下で有効であろうことを予
期させる。このファージはまたすでに形成された原繊維構造を破壊し得るもので
あって、結合定数の定量が示唆するように、精製した一本鎖抗体が生物学的に活
性であることを確認させる。
【０１０３】 本発明の他の側面を実用化する一方で、プリオンタンパク質のペプチド配列に
対し作製したモノクローナル抗体がプリオンプラークの離解または形成防止に有
効であることが明らかとなった。
【０１０４】 ＰｒＰ１０６−１２６の毒性を評価するモデルは本発明者らが確立し、神経防
御能力および凝集離解能力について２種の免疫グロブリンクローン［ｍＡｂ３−
１１（ＩｇＭ）およびｍＡｂ２−４０（ＩｇＧ１）と命名］の有効性を試験する
ために利用した。
【０１０５】 実施例１５〜２１にてさらに詳述するように、ｍＡｂ３−１１およびｍＡｂ２
−４０は共にＰＣ−１２細胞に対するＰｒＰ１０６−１２６の用量依存性毒性作
用を低下させた。ｍＡｂ３−１１とＰｒＰ１０６−１２６との同時インキュベー
ションは繊維状凝集を防止したが、一方、すでに形成されている凝集にｍＡｂ３
−１１を添加すると５０％のアミロイド原繊維が離解するに至る（実施例２１）
。
【０１０６】 即ち、本発明の好ましい態様によれば、プラーク形成疾患を処置する方法が提
供される。本発明のこの態様に関する方法では、プラーク形成疾患におけるプラ
ーク形成に関連のある凝集タンパク質の少なくとも１つのエピトープを結合する
ために存在する抗体の少なくとも１つの免疫学的部分を提示するポリペプチドを
表示する。この結合部分は、凝集タンパク質を離解し得るか、および／または凝
集タンパク質の凝集を防止し得る。そしてこの表示媒体をレシピエントの体内に
導入して、凝集タンパク質を離解するか、および／または凝集タンパク質の凝集
を防止する。
【０１０７】 本発明の好ましい態様に従って、明細書中でさらに記載し、かつ実施例部分で
も下記に説明するが、表示媒体はレシピエントの体内に導入され凝集タンパク質
を離解しおよび／または凝集タンパク質の凝集を防止し、レシピエントの臭覚系
を経由して効果的となる。
【０１０８】 本発明の追加の態様において、プラーク形成疾患を処置するための薬剤を提供
する。本発明のこの態様に関する薬剤は、プラーク形成疾患におけるプラーク形
成に関連する凝集タンパク質の少なくとも１つのエピトープに結合し得る抗体の
少なくとも１つの免疫学的部分を提示するポリペプチドを表示する表示媒体を含
んでなる。この抗体の免疫学的部分は、かかる凝集タンパク質を離解し得るか、
および／または凝集タンパク質の凝集を防止し得る。
【０１０９】 本発明のさらなる追加の態様により、プラーク形成疾患を処置するための医薬
組成物を提供する。本発明のこの態様に関する組成物は、プラーク形成疾患にお
けるプラーク形成に関連する凝集タンパク質の少なくとも１つのエピトープに結
合し得る抗体の少なくとも１つの免疫学的部分を提示するポリペプチドを表示す
る有効量の提示媒体を含んでなる。この抗体の免疫学的部分は、凝集タンパク質
を離解することが可能であって、この医薬組成物は薬学的に許容される担体をさ
らに含み得る。
【０１１０】 本発明の追加の態様によれば、プラーク形成疾患を処置するための表示媒体を
つくる方法を提供する。本発明のこの態様の方法は、表示媒体のゲノムを遺伝子
的に改変する工程を含んでなり、プラーク形成疾患におけるプラーク形成に関連
する凝集タンパク質の少なくとも１つのエピトープを結合し得る抗体の少なくと
も１つの免疫学的部分をコードするポリヌクレオチド配列を挿入することにより
行う。かかる抗体の免疫学的部分は凝集部分を離解し得るものである。
【０１１１】 本明細書とそれに付随する請求項の目的上、“患者”、“被験者”および“レ
シピエント”という用語は互換性あるものとして使用する。それらはヒトと他の
動物を包含し、予防、実験、または治療処理の対象である。
【０１１２】 本明細書とそれに付随する請求項の目的上、“ベータ・アミロイドペプチド”
という用語は“β−アミロイドペプチド”、“βＡＰ”、“βＡ”、および“Ａ
β”と同義語である。これらの用語はすべてアミロイド前駆体タンパク質由来の
プラーク形成ぺプチドをいう。
【０１１３】 本明細書にて使用する場合、“ＰｒＰタンパク質”、“ＰｒＰ”、“プリオン
”および“プリオンタンパク質”は、適切な条件下で、プラーク形成疾患の原因
となる凝集形成を誘発し得るポリペプチドをいう。例えば、正常細胞プリオンタ
ンパク質（ＰｒＰＣ）はかかる条件下で相当するスクラピー・イソ型（ＰｒＰＳ
ｃ）に変換され、それがプラーク形成疾患、例えば、これらに限定されるもので
はないが、牛海綿状脳症（ＢＳＥ）すなわち狂牛病、ネコ海綿状脳症、クール、
クロイツフェルト・ヤコブ病（ＣＪＤ）、ゲルシュトマン・シュトラオスラー・
シャインケル病（ＧＳＳ）、致死性家族性不眠症（ＦＦＩ）などの原因となる。
【０１１４】 本明細書および請求項において使用する場合、“離解”（disaggregating）と
いう用語は、一般に非共有結合により結合している凝集タンパク質を可溶化する
ことをいう。
【０１１５】 本明細書とそれに付随する請求項の目的上、“含んでなる”という用語は１つ
以上の引用した要素を包含することをいうが、特定して引用していない他の要素
を除外するものではない。例えば、Ａβペプチドを含んでなる組成物は単離され
たＡβペプチドおよびより大きなポリペプチド配列の１成分としてのＡβペプチ
ド両方を包含する。同様に、抗体の免疫学的部分は抗体のより大きな部分、すな
わち、抗体全体の一部分として含まれていてもよい。
【０１１６】 本明細書および請求項において使用する場合、“治療する”という用語は疾患
の進行を実質的に阻止、遅延または逆転させること、疾患の臨床徴候を実質的に
改善すること、または疾患の臨床徴候の発現を防止することを包含する。
【０１１７】 本明細書および以下に続く請求項において使用する場合、“プラーク形成疾患
”という用語は、例えば、これらに限定されるものではないが、早期発症アルツ
ハイマー病、後期発症性アルツハイマー病、前症候性アルツハイマー病、ＳＡＡ
アミロイド症、遺伝性アイスランド症候群、老化、多発性骨髄腫、およびヒトに
影響することの知られたプリオン病、例えば、クールー、クロイツフェルト−ヤ
コブ病（ＣＪＤ）、ゲルシュトマン−シュトラオスラー−シャインケル病（ＧＳ
Ｓ）、および致死性家族性不眠症（ＦＦＩ）など、および、動物のプリオン病、
例えば、スクラピーおよびＢＳＥなどの疾患における凝集性タンパク質（プラー
ク形成ペプチド）、例えば、これらに限定されるものではないが、ベータ−アミ
ロイド、血清アミロイドＡ、シスタチンＣ，ＩｇＧカッパ軽鎖またはプリオンタ
ンパク質などによるプラーク形成により特徴づけられる疾患をいう。
【０１１８】 上記疾患と関連するアミロイドプラークは脳内に位置するため、提案された治
療様式は血液脳関門（ＢＢＢ）を通過することが可能であり、同様にアミロイド
プラークを溶解し得るものであることを証明しなければならない。通常、ＢＢＢ
を浸透し得る平均分子サイズは約２ｋＤａである。モノクローナル抗体は一般に
１３５〜９００ｋＤａの範囲にある。従って、将来アミロイドプラーク疾患の治
療に抗体を治療的に使用する場合、活性の保持と同時にそのサイズを小さくする
か、または新規の送達方策を開発するかしなければならない。
【０１１９】 抗原エピトープ、例えば、本明細書に記載のＡβのＥＦＲＨ（配列番号１）ま
たはＰｒＰ１０６−１２６（配列番号２５）などからなる小型の合成ペプチドは
一般に不十分な抗原であり、より大きな担体に結合させる必要がある。また、結
合させたとしても、それらが誘導するのは低い親和性の免疫応答のみである。例
えば、Ａβ−ＫＬＨまたはＡβ−原繊維を注射すると、非常にゆっくりした免疫
応答を誘導する（Anavi, S. 1998; 理学修士論文、テルアビブ大学、分子微生物
学・生物工学部門）ため、低い親和性応答を回避する多くの努力がなされている
が、成功は限られている。
【０１２０】 プラーク形成ポリペプチドの病理的作用は中枢神経系（ＣＮＳ）にのみ維持さ
れるので、インビボでかかるプラークを防止する特異性の高いＡｂは血液脳関門
（ＢＢＢ）の浸透性に左右される。例えば、ＡＤの進行段階において証拠が示す
のは、ＢＢＢの浸透性の変化であり、それがかかる抗体を末梢からＣＮＳに直接
送達し、すでに形成されているプラークを離解させ、さらなる毒性作用を最少と
するように導くことである（Schenk et al., Nature 1999, 100: 173-177）。本
発明の好適な態様は表示媒体上に提示されるモノクローナルＡｂが血液脳関門を
通過して脳に直接送達されることからなる。
【０１２１】 増え続ける多数の証拠が示すのは、中枢嗅覚路における嗅覚欠損と変性変化が
ＡＤの臨床経過の早期に影響を受けることである。さらに、ＡＤに関与する解剖
学的パターンは、嗅覚路がＡＤ発症の初期段階にあり得ることを示唆する。
【０１２２】 嗅覚受容体ニューロンは鼻腔の上皮内層に存在する双極性細胞である。その軸
索は篩板を横切って、脳の臭球における嗅覚路の嗅覚路第一シナプスに突き出し
ている。この形状がそれらをハイウエイとすることにより、ウイルスまたはその
他の輸送物質のＢＢＢ通過と、ＣＮＳへの接近を可能とする。
【０１２３】 ＡＤの早期段階では、ＢＢＢが末梢を循環する抗体のＣＮＳへの侵入を制限し
ている可能性がある。対照的に、ファージ表面に表示されたＡβ抗凝集抗体は、
鼻腔投与によりＣＮＳに直接送達されるばかりでなく、患者においてβＡによる
嗅覚の永久的損傷を防止する能力を有する。以前に示されているように、鼻腔投
与（Mathison et al., J. Drug Target, (1998) 5(6), 415-441; Chou et al.,
Biopharm Drug Dispos. (1997) 18(4): 335-46; et al., Gene Therapy (1995)
2: 418-423）はウイルスと高分子がＣＳＦとＣＮＳに侵入するのを可能とする。
【０１２４】 アデノウイルス・ベクターの脳への送達点として嗅覚受容体を用いることは文
献に報告されている。報告によると、この方法では外見上毒性を示さずにレポー
ター遺伝子が１２日間脳内で発現される（Draghia et al., Gene Therapy 2: 41
8-423, 1995９）。
【０１２５】 即ち、本発明の好ましい態様において、凝集し得る抗体の免疫学的部分を表示
する媒体またはプラーク形成疾患に関連するポリペプチドの凝集物の免疫学的部
分を表示する媒体は、この経路で脳に送達される。
【０１２６】 Ａβは末梢組織において細胞により連続的に産生され、それが血液脳関門（Ｂ
ＢＢ）を通過し、特定のニューロン集団に局所的毒作用を及ぼすので、かかる媒
体を鼻腔内投与することでプラークを形成するために利用される得る末梢Ａβの
量を最少とし、疾患の進行を防止することができる。
【０１２７】 ＣＮＳへの薬物送達システムとして繊維性ファージなどの表示媒体を使用する
ことが、アルツハイマー病に対し、また、例えば、プリオン生成疾患などのヒト
・ペプチドの毒性細胞外凝集を含むその他の神経変性疾患に対し、新たな治療法
の展望を開く。
【０１２８】 本発明による表示媒体はウイルス（例えば、繊維性バクテリオファージなどの
バクテリオファージ、例えば、ｆｄ）、細菌およびプリオン表示媒体を含むいず
れのタイプであってもよい。このように、例えば、表示媒体は二本鎖ＤＮＡウイ
ルス、一本鎖ＤＮＡウイルス、ＲＮＡウイルス（プラスまたはマイナス鎖）、細
菌、およびポリペプチド担体などである。本発明の好適な態様によると、表示媒
体はレシピエントにおいて増殖し得るものである。このように、例えば、バクテ
リオファージ表示媒体はレシピエントの体内に棲息する大腸菌などの細菌叢にお
いて増殖し得る。あるいは、表示媒体はインビボ非増殖性粒子である。
【０１２９】 ファージまたはウイルス媒体は目標とし得るインビボ治療法として有望である
。自然界の腸内菌叢の潜在的感染について関心が示されているが（Delmastro et
al., Vaccine 1997, 15: 1276-1285; Willis et al., Gene, 1993, 128: 79-83
; Poul et al., J. Mol. Biol. 1999, 288, 203-211)、ファージをＵＶ不活化す
ると、それらがその感染性相対物同様の免疫原であることを示した（Delmastro
et al., Vaccine 1997, 15: 1276-1285）。不活化ファージの使用は、引続く宿
主細胞内での発現のためにの、ファージ・コード導入遺伝子の核内取込みを不可
能とし（Larocca et al., 1998, Hum. Gene Ther. 9: 2393-2399)、重要な実用
上の問題である。それ故、代わり得る好適な態様に従い、本発明にて採用される
表示媒体は複製用であっても、非複製用であってもよい。
【０１３０】 ファージまたはウイルス表示は、ファージまたはウイルス・コートタンパク質
との融合タンパク質としてｃＤＮＡクローンの発現を伴う。もし発現のために選
択したｃＤＮＡが抗原をコードしているならば、そのファージまたはウイルスを
レシピエントにおいて随意に複製し得る抗原提示媒体として採用してもよい。
【０１３１】 上記のように、本発明の好適な態様によると、ファージまたはウイルスにより
表示される抗原は、抗原精製せずに直接予防接種に使用してもよい。この事例で
は、コートタンパク質の塊が、予防接種被験者にとって“非自己”であるため、
全身性免疫応答を刺激するように作用する。抗原コートタンパク質融合は表示さ
れたｃＤＮＡ遺伝子産物のエピトープに対し特異抗体を引出す。
【０１３２】 抗体ファージまたはウイルス表示は、ファージまたはウイルス・コートタンパ
ク質に抗体の可変領域のコーディング配列を融合することにより実施する。この
目的のために、抗体産生細胞から単離される可変（Ｖ）領域（ＶＨおよびＶＬ）
ｍＲＮＡをｃＤＮＡに逆転写し、重鎖と軽鎖が無作為に集合し、一本鎖Ｆｖ（ｓ
ｃＦｖ）をコードする。これらのカセットは発現用ファージミド・ベクターなど
の適切なベクターに直接クローン化し、ファージまたはウイルス表面上に表示さ
せる。抗体の遺伝子型と表現型間のこの結合が、非固相化または標識化抗原を用
いる抗原特異ファージまたはウイルス抗体の濃厚化を可能とする。関連抗体を表
示するファージまたはウイルスは抗原で被覆した表面に保持される一方で、非粘
着ファージまたはウイルスは洗い流される。結合したファージまたはウイルスを
該表面から回収し、適切な宿主細胞に再感染させ、さらに濃厚化するため、また
最終的には結合分析するために再増殖させる。
【０１３３】 抗体ファージまたはウイルス表示の成功はこの表示と濃厚化方法の組合わせ次
第で定まる。ファージまたはウイルス抗体遺伝子は、配列決定し、変異させ、選
抜して抗原結合性を改善することが可能である。
【０１３４】 抗体分子の様々な領域をコードする遺伝子は、抗原に対するその特異性と親和
性が変わるように再配列することが可能である。該抗体はさらなる取扱いのため
にファージまたはウイルス表面上に維持するか、または可溶性ｓｃＦｖ（〜２５
ｋＤａ）断片として遊離させることができる。
【０１３５】 １９９０年代初めのその発明以来、抗体ファージ表示はモノクローナル抗体の
生成とその工学技術を革命的なものとしてきた。それはファージ表示がすべてイ
ンビトロで行う抗体作製を可能とするからであり、免疫系と免疫化操作を回避し
、抗体の親和性と特異性のインビトロ調製を可能とする。従って、最も効率的な
新規ワクチン開発計画にこの技術の採用されることが期待される。
【０１３６】 さらなる特徴はその安全性を確保し、および／またはその治療効果を上昇させ
るベクターに追加し得る。かかる特徴は、例えば、抗生物質感受性などの組換え
ウイルスで感染させた細胞に対して負に選択するのに使用し得るマーカーを包含
する。従って、負の選択は感染を制御し得る手段であるが、その理由はそれが抗
生物質の添加による誘導可能な自殺手段を備えているからである。かかる防御は
、もし、例えば、変異が起ってウイルスベクターまたは組換え配列の変化した形
状を生じるならば、細胞の形質転換が起こらなくなることを確実なものとする。
特定の細胞型に発現を限定する特徴もまた包含し得る。かかる特徴は、例えば、
所望の細胞型に特異的なプロモーターおよび調節要素を含む。
【０１３７】 ウイルスは非常に特殊化された感染性作因物質であり、多くの場合、宿主の防
御メカニズムを回避するように進化している。一般に、ウイルスは特定の細胞型
に感染し、増殖する。ウイルスベクターの標的特異性は、予め定まった細胞型を
特異的に標的化する本来備わった特異性を利用し、それによって組換え遺伝子を
感染した細胞に導入する。
【０１３８】 本明細書および以下に続く請求項において使用する場合、ポリペプチドという
用語はペプチド結合を介してそこで共有結合により連結したアミノ酸の伸長した
連なりをいう。異なるポリペプチドは本発明による異なる機能性を有する。一態
様によると、ポリペプチドはレシピエントにおいて活性な免疫応答を誘導するよ
うに設計された免疫原から誘導されるが、本発明の他の態様によると、ポリペプ
チドは、例えば、動物において活性な免疫応答誘導の結果として生じる抗体であ
って、レシピエントにおいて受動免疫応答を誘導するように作用し得る抗体から
誘導される。しかし、両方の事例において、該ポリペプチドは可能なコドン使用
法に従ってポリヌクレオチドによりコードされている。
【０１３９】 本明細書にて使用される場合、“免疫応答”またはその等価の“免疫学的応答
”という語句は、レシピエントである患者において凝集性タンパク質（プラーク
形成ペプチド）に対して向けられた有益な体液性（抗体介在）および／または細
胞性（抗原特異Ｔ細胞またはその分泌産物）応答の発生をいう。かかる応答は免
疫原の投与により誘発される能動的応答であるか、または抗体または感作Ｔ細胞
の投与により誘発される受動的応答である。細胞性免疫応答はクラスＩまたはク
ラスII ＭＨＣ分子と会合したポリペプチド・エピトープの提示により誘出され
、それが抗原特異ＣＤ４＋Ｔヘルパー細胞および／またはＣＤ８＋細胞毒性Ｔ細
胞を活性化する。この応答は単球、マクロファージ、ＮＫ細胞、好塩基球、樹枝
状細胞、星状細胞、小膠細胞、好酸球、または先天性免疫のその他の成分の活性
化に関与することも可能である。
【０１４０】 本明細書にて使用される場合、“能動免疫”とは抗原の投与により被験者に付
与される免疫性をいう。 本明細書にて使用される場合、“受動免疫”とは抗原の投与なしに被験者に付
与される免疫性をいう。従って、“受動免疫”とは、これらに限定されるもので
はないが、表示媒体の表面に提示される抗体の免疫学的部分を含む複製可能表示
媒体をレシピエントに投与することからなる。かかる媒体の複製は能動的ではあ
るが、この免疫応答はレシピエントの観点からは受動的である。
【０１４１】 本明細書とそれに付随する請求項の目的上、“エピトープ”および“抗原決定
基”という用語は互換性あるものとして使用し、Ｂおよび／またはＴ細胞が応答
する抗原上の部位をいう。Ｂ細胞エピトープはタンパク質の連続アミノ酸または
三次折り返しにより並置した非連続アミノ酸から双方形成し得る。連続アミノ酸
から形成されるエピトープは変性溶媒に接触させても一般に維持されるが、三次
折り返しにより形成されるエピトープは変性溶媒で処理すると一般に失われる。
エピトープは一般に少なくとも３個、より一般には少なくとも５または８〜１０
個のアミノ酸を特異な空間コンホメーションで含んでいる。エピトープの空間コ
ンホメーションを決定する方法は、例えば、Ｘ線結晶解析および２次元核磁気共
鳴を包含する。例えば、Methods in Molecular Biology, Vol. 66, Glenn E. Mo
rris, Ed. (1996)のエピトープ・マッピング・プロトコール参照。同一エピトー
プを認識する抗体は、１つの抗体が、標的抗原に対するもう１つの他の抗体の結
合を阻害する能力を示す簡単なイムノアッセイにより同定することができる。Ｔ
細胞はＣＤ８細胞について約９個のアミノ酸、あるいはＣＤ４細胞について約１
３〜１５個のアミノ酸の連続するエピトープを認識する。該エピトープを認識す
るＴ細胞は抗原依存性増殖を測定するインビトロアッセイ法により同定すること
ができるが、その方法はエピトープに応答しての感作Ｔ細胞による３Ｈ−チミジ
ン取込みにより（Burke et al., J. Inf. Dis. 170, 1110-19, 1994)、抗原依存
性死滅により（細胞毒性Ｔリンパ球アッセイ、Tigges et al., J. Immunol. 156
, 3901-3910）またはサイトカイン分泌により定量することである。
【０１４２】 細胞介在免疫学的応答の存在は増殖アッセイ（ＣＤ４＋Ｔ細胞）またはＣＴＬ
（細胞毒性Ｔリンパ球）アッセイにより測定することができる。免疫原の予防的
または治療的作用に対する体液性および細胞性応答の相対的寄与は、免疫した同
系動物からＩｇＧとＴ細胞を別々に単離し、第二の被験者で予防的または治療的
効果を測定することにより識別することができる。
【０１４３】 本明細書および請求項にて使用する場合、“抗体”または“免疫グロブリン”
という用語は互換性あるものとして使用し、動物またはレシピエントの免疫応答
の部分として機能する数種の分類の構造的に関連するいずれかのタンパク質をい
い、そのタンパク質はＩｇＧ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＡ、ＩｇＭおよび関連する
タンパク質を包含する。
【０１４４】 正常な生理的条件下で、抗体は血漿と他の体液に、またある種細胞の膜に見出
され、Ｂ細胞と命名される型のリンパ球またはその等価物により産生される。Ｉ
ｇＧクラスの抗体はジスルフィド結合によりつながった４つのポリペプチド鎖か
らでき上がっている。未処理ＩｇＧ分子の４つの鎖はＨ鎖と言われる２つの同じ
重鎖とＬ鎖と言われる２つの同じ軽鎖である。
【０１４５】 ポリクローナル抗体を作成するためには、ウサギもしくはヤギのような宿主を
抗原もしくは抗原断片を用いて通常アジュバントと共に、もし必要ならば担体に
カップルさせて、免疫する。次いで抗原に対する抗体を宿主の血清から採取する
。ポリクローナル抗体は抗原に対する親和性を用いて精製し、単一特異性にする
ことができる。以前の経験からポリクローナル抗体の標準的な作成法は、低力価
および毒性の問題のため、プラーク形成ペプチドのための非凝集性抗体の調製法
としては適していない。
【０１４６】 モノクローナル抗体を作成するためには、抗原による適切なドナー、通常はマ
ウス、の過免疫を実施する。次いで脾臓の抗体産生細胞を単離する。これらの細
胞を骨髄腫細胞のような不死特性を有する細胞と融合させることにより、培養で
維持可能で、かつ求めるモノクローナル抗体を分泌する融合細胞雑種(ハイブリ
ドーマ)が提供される。細胞を次いで大量培養し、培養液から使用のためのモノ
クローナル抗体を収穫する。定義より、モノクローナル抗体は単一のエピトープ
に特異的である。この理由によりモノクローナル抗体は類似の抗原に対して作成
したポリクローナル抗体よりも、しばしば低い親和定数を有する。
【０１４７】 モノクローナル抗体はまた脾臓細胞の初代培養もしくは脾臓由来の細胞株を用
いて生体外で作成することもできる(Anavi, S., 1998。アルツハイマーβ−アミ
ロイドペプチドのＮ末端が，組織培養で神経毒性を阻止する、修士論文)。遺伝
子組換え抗体(一般的に、Huston et al., 1991; Johnson and Bird, 1991; Mern
augh and Mernaugh, 1995を参照)を作成するためには、動物の抗体産生Ｂリンパ
球由来のメッセンジャーＲＮＡもしくはハイブリドーマを逆転写して相補性ＤＮ
Ａ(ｃＤＮＡ)を得る。完全長または部分長の抗体ｃＤＮＡを増幅しファージもし
くはプラスミドにクローニングする。ｃＤＮＡは重鎖もしくは軽鎖のｃＤＮＡの
部分レングスでもよく、また分離していてもリンカーで結合されていてもよい。
適切な発現系を用いて抗体もしくは抗体断片を発現させて遺伝子組換え抗体を得
る。抗体のｃＤＮＡはまた、適切なライブラリーをスクリーニングして得ること
もできる。
【０１４８】 技術上周知のように、抗体は、固相の支持体基質に結合させ、もしくは検出可
能な成分とコンジュゲートさせるか、または結合およびコンジュゲートの両方を
させることができる。蛍光もしくは酵素成分のコンジュゲーションの一般的な考
察については、Johnstone & Thorpe, Immunochemistry in Practice, Blackwell
Scientific Publications, Oxford, 1982を参照のこと。抗体の固相支持体基質
への結合も技術上周知である。一般的な考察については、Harlow & Lane Antibo
dies: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Publications, N
ew York, 1988およびBorrebaeck, Antibody Engineering A Practical Guide,
W. H. Freeman and Co., 1992を参照のこと。
【０１４９】 明細書および請求項で用いる限りでは、語句“抗体の免疫学的部分”は、抗体
のＦ(ａｂ’)２断片、抗体のＦａｂ断片、抗体のＦｖ断片、抗体の重鎖、抗体の
軽鎖、抗体の重鎖および軽鎖の非会合混合物、抗体の重鎖および軽鎖よりなるヘ
テロダイマー、抗体の重鎖の触媒領域、抗体の軽鎖の触媒領域、抗体の軽鎖の可
変部断片、抗体の重鎖の可変部断片、ならびにｓｃＦｖとしても知られている抗
体の単鎖変異体を含む。加えて、この用語は異なる動物種に由来する融合遺伝子
の発現産物であるキメラ免疫グロブリンを含み、その動物種の一つはヒトであっ
てもよく、この場合キメラ免疫グロブリンはヒト化されたと言われる。典型的に
、抗体の免疫学的部分はそれが由来した元の抗体と競合して抗原と特異的結合を
行う。
【０１５０】 任意に、抗体もしくは好ましくは抗体の免疫学的部分は他のタンパク質と化学
的にコンジュゲートさせることができ、または融合タンパク質として発現させる
ことができる。本明細書および付随する請求項の目的のために、全てのそのよう
なタンパク質は抗体もしくは抗体の免疫学的部分の定義に含まれる。
【０１５１】 本明細書で用いる限りでは、用語“免疫原物質”もしくは“免疫原”または“
抗原”は、単独で、アジュバントと共同して、もしくは表示媒体上に与えられて
レシピエントに投与するときに、それ自身に対する免疫応答を誘起することので
きる分子を記述するために互換的に使用される。
【０１５２】 本明細書で用いる限りでは、用語“アジュバント”は、抗原と共同して投与し
た場合に抗原に対する免疫応答を増強するが、単独で投与した場合には抗原に対
する免疫応答を生じない化合物をいう。アジュバントは、リンパ球動員、Ｂ細胞
および／もしくはＴ細胞刺激、ならびにマクロファージ刺激を含むいくつかの機
構で免疫応答を増強することができる。
【０１５３】 本発明の医薬組成物は、活性な成分として、プラーク形成疾患におけるプラー
ク形成に関連する凝集タンパク質の少なくとも１つのエピトープを提示する表示
媒体を含んでなり、かかる少なくとも１つのエピトープは、凝集タンパク質を離
解し得る抗体を創生できる。あるいは、本発明の医薬組成物は、活性成分として
、当該プラーク形成疾患におけるプラーク形成に関連する凝集タンパク質のエピ
トープを結合するために存在する抗体の少なくとも１つの免疫学的部分を表示す
る表示媒体を提示する。
【０１５４】 本発明の製剤はそれ自体を生体に投与することができ、または適切な担体もし
くは添加物と混合した医薬組成物に入れて投与することもできる。
【０１５５】 本明細書で用いる限りでは、“医薬組成物”は、本明細書で記述する１以上の
活性成分と、生理学的に適切な担体および添加物のような他の化学成分とによる
製剤をいう。医薬組成物の目的は化合物の生体への投与を容易にすることにある
。
【０１５６】 本明細書では、“活性成分”は生物学的効果の原因となる製剤をいう。
【０１５７】 以後、互換的に用いられ得る語句“生理学的に許容される担体”および“薬学
的に許容される担体”は、生体に有意の刺激を起こさず、また投与化合物の生物
学的活性および性質を妨げることのない担体もしくは希釈剤をいう。アジュバン
トはこれらの語句に含まれる。
【０１５８】 本明細書では、用語“添加物”は、活性成分の投与を更に容易にするために医
薬組成物に添加される不活性物質をいう。添加物の例には炭酸カルシウム、リン
酸カルシウム、種々の糖類および各タイプの澱粉、セルローズ誘導体、ゼラチン
、植物油およびポリエチレングリコールが含まれるが、これらに限定されるもの
ではない。
【０１５９】 薬剤の処方および投与の技術は、“Remington's Pharmaceutical Sciences,”
Mack Publishing, Co., Easton, PA、最新版で見ることができるが、それは出典
明示により本明細書の一部とする。
【０１６０】 適切な投与経路は、例えば、経口、直腸、経粘膜、特に経鼻、腸管投与、もし
くは筋肉内、皮下および脊髄内投与を含む非経口投与、ならびにクモ膜下、直接
脳室内、静脈、腹腔内、鼻腔内または眼内注射を含む。
【０１６１】 あるいは、全身的よりむしろ局部的に、例えば製剤を患者の脳に直接注射する
ことにより製剤を投与することができる。
【０１６２】 本発明の医薬組成物は技術上周知の工程、例えば、通常の混合、溶解、粉砕、
糖衣錠作成、研和、乳化、カプセル化、捕捉、もしくは凍結乾燥工程によって製
造することができる。
【０１６３】 本発明に従って使用する医薬組成物は、したがって、活性成分を薬剤学的に使
用可能な製剤に加工するのを容易にするところの、添加物および補助剤よりなる
１以上の生理学的に許容される担体を用いて通常の方法で処方することができる
。適切な処方は選択される投与経路に依存する。
【０１６４】 注射用には、発明の活性成分を水溶液、好ましくはハンクス液、リンゲル液、
もしくは生理食塩水のような生理学的に適合性のある緩衝液、に処方してもよい
。経粘膜投与には、バリアーに浸透するのに適切な浸透剤を処方に使用する。そ
のような浸透剤は技術上周知である。
【０１６５】 経口投与には、活性成分を薬学的に許容できる技術上周知の担体と合体させる
ことにより化合物を容易に処方することができる。そのような担体は、発明の化
合物を錠剤、丸剤、糖衣錠、カプセル剤、液剤、ゲル剤、シロップ剤、スラリー
剤、懸濁剤などとして患者の経口摂取用に処方することができる。経口用の薬理
学的製剤は、錠剤もしくは糖衣錠の核を得るために、固体の添加物を用いて得ら
れた混合物を任意に粉砕し、そして望むならば助剤を加えた後、顆粒混合物を加
工することにより調製することができる。適切な添加物は、特に、乳糖、白糖、
マニトール、もしくはソルビトールを含む糖類のような増量剤；例えばトウモロ
コシ澱粉、小麦澱粉、米澱粉、馬鈴薯澱粉、ゼラチン、トラガカントゴム、メチ
ルセルローズ、ハイドロキシプロピルメチルセルローズ、カルボメチルセルロー
ズナトリウムのようなセルローズ製剤；および／もしくはポリビニルピロリドン
(ＰＶＰ)のような生理学的に許容されるポリマーである。もし望むならば、架橋
ポリビニルピロリドン、寒天もしくはアルギン酸またはそれらの塩のような崩壊
剤を加えてもよい。
【０１６６】 糖衣錠の核には適切なコーティングが施される。この目的のために、アラビア
ゴム、タルク、ポリビニルピロリドン、カルボポールゲル、ポリエチレングリコ
ール、二酸化チタン、ラッカー溶液および適切な有機溶媒もしくは溶媒混合物を
任意に含有する濃縮糖溶液を用いることができる。錠剤もしくは糖衣錠には、確
認のためにまたは活性化合物の用量の異なる組み合わせを特徴づけるために、染
料もしくは色素を加えてもよい。
【０１６７】 経口使用可能な医薬組成物は、ゼラチン製の押し嵌めカプセルならびにゼラチ
ンおよびグリセリンもしくはソルビトールのような可塑剤から作成した密封軟カ
プセルを含む。押し嵌めカプセルは、乳糖のような増量剤、澱粉のような結合剤
、タルクもしくはステアリン酸マグネシウムのような滑沢剤および任意に安定剤
との混和物として、活性成分を含有してもよい。軟カプセルでは、活性成分は脂
肪油、流動パラフィンもしくは液状ポリエチレングリコールのような適切な液体
に溶解もしくは懸濁してもよい。加えて、安定剤を添加してもよい。経口投与用
の全ての処方は選択された投与経路にとって適切な用量でなければならない。
【０１６８】 口腔内投与には、組成物は通常の方法で処方された錠剤もしくはトローチ剤の
形状をとってもよい。
【０１６９】 鼻吸入投与には、本発明により使用する活性成分は、加圧パックまたは、例え
ば、ジクロロジフルオロメタン、トリクロロフルオロメタン、ジクロロテトラフ
ルオロエタンもしくは二酸化炭素などの適切な噴射剤の使用により噴霧吸入器か
らエアロゾールスプレーの形状で好都合に供給される。加圧エアロゾルの場合は
、用量単位は一定量を供給するバルブをつけることにより決定することができる
。ディスペンサーで用いる、例えば、ゼラチンのカプセルおよびカートリッジは
、化合物と乳糖もしくは澱粉のような適切な粉末基材との混合粉末を含有して処
方してもよい。
【０１７０】 本明細書で記載する製剤は、例えば、ボーラス注射もしくは連続注入による非
経口投与用に処方してもよい。注射用処方は単位用量の形状、例えばアンプル、
で提供されてもよく、もしくは任意に保存料を加えた多回投与用容器で提供され
てもよい。組成物は懸濁液、溶液または油状もしくは水性添加物中のエマルジョ
ンでもよく、また懸濁剤、安定剤および／もしくは分散剤のような処方剤を含有
してもよい。
【０１７１】 非経口投与のための医薬組成物は水溶性の形状をした活性成分の水溶液を含む
。加えて、活性成分の懸濁液は、適宜、油もしくは水を基材とする注射用懸濁液
として調製してもよい。適切な脂溶性溶媒もしくは溶剤は、胡麻油のような脂肪
油、またはオレイン酸エチル、トリグリセリドもしくはリポゾームのような合成
脂肪酸エステルを含む。水性注射用懸濁剤は、カルボキシメチルセルローズ、ソ
ルビトールもしくはデキストランのような、懸濁液の粘度を高める物質を含有し
てもよい。任意に、懸濁剤は、適切な安定剤もしくは高度に濃厚な液の製剤がで
きるように活性成分の溶解性を高める物質を含有してもよい。
【０１７２】 あるいは、活性成分は、使用前に適切な溶剤、例えば、無菌かつパイロジェン
フリーの水を基材とする溶液で調製用の粉末の形状であってもよい。
【０１７３】 本発明の製剤はまた、例えば、ココアバターもしくはその他のグリセリドのよ
うな通常の坐剤基剤を用いる、坐剤または保持浣腸剤のような直腸用組成物とし
て処方してもよい。
【０１７４】 本発明との関連において使用に適切な医薬組成物は、活性成分が意図する目的
を達成するための有効量を含有されるところの組成物を含む。より具体的には、
治療的有効量とは、治療を受ける患者の疾患の症状を予防、緩和、もしくは改善
、または生存の延長に有効な活性成分の量を意味する。
【０１７５】 治療的有効量の決定は、特にここに提供される詳細な開示を考慮すれば、充分
当業者の能力範囲内である。
【０１７６】 本発明の方法に用いられるいずれも製剤においても、治療的有効量すなわち用
量はインビトロおよび細胞培養アッセイから先ず推定可能である。例えば、所望
の循環抗体濃度もしくは力価を得るために、用量を動物モデルにおいて処方する
ことができる。そのような情報は、ヒトにおける有用な用量をより正確に決定す
るために使用することができる。
【０１７７】 本明細書で記載する活性成分の毒性および治療有効性はインビトロ、細胞培養
もしくは実験動物で標準的な薬学的手順により決定することができる。これらの
インビトロおよび細胞培養アッセイならびに動物実験から得られたデータはヒト
における用量の範囲を処方するのに用いることができる。用量は用いる剤形およ
び採用する投与経路により異なるであろう。正確な処方、投与経路および用量は
患者の状態を見て個々の医師が選択することができる。(例えば、Finglet al.,
1975, in "The Pharmacological Basis of Therapeutics", Ch. 1, p. 1を参照)
。
【０１７８】 投与の用量および間隔は、凝集を防止しもしくは既存の凝集を離解させるため
に充分である抗体の血漿内もしくは脳内レベル(最少有効濃度(ＭＥＣ))を与える
ために、個々に調整してもよい。ＭＥＣは製剤ごとに異なるであろうが、インビ
トロのデータから推測可能である。ＭＥＣに到達するために必要な用量は個々の
特性および投与経路に依存するであろう。血漿中濃度測定のために結合アッセイ
を使用することができる。
【０１７９】 投与間隔もまたＭＥＣ値を用いて決定することができる。製剤は、血漿中濃度
を期間の１０〜９０％、好ましくは３０〜９０％、最も好ましくは５０〜９０％
でＭＥＣ以上に維持する投与法を用いて投与しなければならない。
【０１８０】 治療すべき病状の重症度および応答度に応じて、投与は単回投与もしくは複数
回投与であってもよく、治療のクールは、数日間から数週間もしくは治癒が得ら
れるか疾病状態の軽減が得られるまで続いてもよい。
【０１８１】 投与すべき組成物の量は、勿論治療を受ける被験者、病気の重症度、投与法、
処方を指示する医師の判断などによって異なるであろう。
【０１８２】 所望するならば、本発明の組成物は、ＦＤＡ認可キットのようなパックもしく
はディスペンサーに入れた状態で提供されてもよいが、これは活性成分を含有す
る単一もしくは複数の用量剤形を含んでもよい。パックは、例えば、ＰＴＰパッ
クのような金属もしくはプラスチック箔より成っていてもよい。パックもしくは
ディスペンサーには投与のための説明書が付随していてもよい。パックもしくは
ディスペンサーの容器には、医薬品の製造、使用もしくは販売を規制する政府当
局指定の形式による注意書きがつけられていてもよい。組成物またはヒトもしく
は動物への投与の形状に関する当局による承認に従う注意書きである。そのよう
な注意書きは、例えば、処方薬について米国医薬品庁の承認を受けた表示であっ
てもよく、もしくは承認された添付文書のものでもよい。適合する医薬担体で処
方された本発明の製剤よりなる組成物はまた、上に詳細に記したように、適切な
容器中に調製して入れ、適応疾患治療用の表示を貼ってもよい。
【０１８３】 本発明は、また、生物サンプル中のプリオンタンパク質病原性または非病原性
形態の両方を検出する方法に関する。 即ち、本発明の別の態様において、生物サンプル中のプリオンタンパク質の存
在または不存在を検出する方法を提供するものであり、該方法は次の工程からな
る：（ａ）抗プリオン抗体またはその免疫学的部分を生物サンプルとともにイン
キュベートする；および（ｂ）抗体−抗原複合体の存在または不存在を測定する
ことにより、生物サンプル中のプリオンタンパク質の存在または不存在を決定す
る。
【０１８４】 そのような複合体は、いくつかの技術上周知の方法のいずれかの一つにより検
出することができ、その方法は生化学的および／もしくは光学的検出法を用いる
ことができる。
【０１８５】 即ち、本発明のこの態様は、生物サンプルをアッセイまたはスクリーンする方
法を提供する。この生物サンプルは、本来の非疾患コンホメーションまたは疾患
関連コンホメーションのいずれかにおけるプリオンタンパク質の含有が疑われる
体組織や体液などである。
【０１８６】 本発明のこの態様に基づく検出法はまた、医薬品(天然物由来)、食品、化粧品
もしくはプリオンを含有する可能性のある任意の材料などの産物の迅速で安価な
スクリーニングに利用することができる。
【０１８７】 その検出法はまたプリオン凝集の防止もしくは離解に有用な潜在的抗プリオン
薬の発見のためのアッセイにも利用できることが理解されよう。
【０１８８】 本発明の更なる目的、利点および新規な特徴は以下の実施例を検証することに
より当業者には明らかであろうが、実施例は本発明を限定しようとするものでは
ない。加えて、以上の説明および請求項に記載の本発明の種々の実施態様および
態様の各々は、下記の実施例によりその実験的支持を得ている。
【０１８９】 (実施例) 以下の実施例に言及するが、これらは上の記述と相俟って本発明を非限定的に
例証するものである。
【０１９０】 一般に、本明細書で使用する名称および本発明で利用する実験室手法は、分子
的、生化学的、微生物学的および組換えＤＮＡの技術を含む。そのような技術は
文献に詳細に説明されている。例えば、"Molecular Cloning; A laboratory Man
ual" Sambrook et al., (1989); "Current Protocols in Molecular Biology" V
olumes I-III Ausubel, R. M., ed. (1994); Ausubel et al., "Current Protoc
ols in Molecular Biology", John Wiley and Sons, Baltimore, Maryland (198
9); Perbal, "A Practical Guide to Molecular Cloning", John Wiley $ Sons,
New York (1988); Watson et al., "Recombinant DNA", Scientific American
Books, New York；Birren et al. (eds) "Genome Analysis: A Laboratory Manu
al Series", Vols. 1-4, Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York (19
98);米国特許第４,６６６,８２８号；４,６８３,２０２号；４,８０１,５３１号
；５,１９２,６５９号および５,２７２,０５７号に記載の方法; "Cell Biology:
A Laboratory Handbook", Volumes I-III Cellis, J. E., ed. (1994); "Curre
nt Protocols in Immunology" Volumes I-III Coligan J. E., ed. (1994); Sti
tes et al., (eds), "Basic and Clinical Immunology" (8th Edition"), Apple
ton & Lange, Norwalk, CT (1994); Mishell and Shiigi (eds), "Selected Met
hods in Cellular Immunology", W. H. Freeman and Co., New York (1980)を参
照のこと; 利用可能な免疫アッセイは特許および科学文献に詳細に記載されてい
る、例えば、米国特許第３,７９１,９３２号；３,８３９,１５３号；３,８５０,
７５２号；３,８５０,５７８号；３,８５３,９８７号；３,８６７,５１７号；３
,８７９,２６２号；３,９０１,６５４号；３,９３５,０７４号；３,９８４,５３
３号；３,９９６,３４５号；４,０３４,０７４号；４,０９８,８７６号；４,８
７９,２１９号；５,０１１,７７１号および５,２８１,５２１号; "Oligonucleot
ide Synthesis" Gait, M. J., ed. (1984); "Nucleic Acid Hybridization" Ham
es, B. D. and Higgins S. J., ed. (1985); "Transcription and Translation"
Hames, B. D., and Higgins S. J., eds. (1984); "Animal Cell Culture" Fre
shney, R. I., ed. (1986); "Immobilized Cells and Enzymes" IRL Press, (19
86); "A Practical Guide to Molecular Cloning" Perbal, B., (1984) and "Me
thods in Enzymology" Vol. 1-317, Academic Press, San Diego, CA (1990); M
arsak et al., "Strategies for Protein Purification and Characterization
A Laboratoy Course Manual" CSHL Press (1996)を参照のこと；これらはいず
れも、本明細書で完全に記述されているかのように、出典明示により本明細書の
一部とする。その他の参考文献は本書類の全域に亘って提供される。これらに記
載されている手法は技術上周知と考えられており、読者の便宜のために提供され
る。それらに含まれる全ての情報は、出典明示により本明細書の一部とする。
【０１９１】 以下の材料および方法に言及するが、これらは以下の実施例に記載する実験に
用いたものである。
【０１９２】 (材料および実験方法) 以下の材料および実験方法を使用する一方において、以下の実施例で更に実証
するように、本発明を実践できるようにした。
【０１９３】 一般的組換えＤＮＡおよびファージ手法： 標準的組換えＤＮＡ手法は既報(Sambrook et al., 1989)と実質的に同じ方法
で行った。抗体―ファージ表示手法の一般的プロトコールはPharmacia Biotech
(Uppsala, Sweden)の組換えファージ抗体システム(ＰＲＡＳ)による。
【０１９４】 ファージ表示上での５０８ｓｃＦｖの構築： 抗体の可変領域の供給源として使用した５０８ＩｇＭハイブリドーマは、担体
として用いたスカシガイのヘモシアニンにコンジュゲートさせた、βＡＰのアミ
ノ末端１６残基に相当するペプチドで免疫したマウスの脾臓細胞から作成した。
ｍＲＮＡ抽出、第１鎖のｃＤＮＡ合成、可変重鎖(ＶＨ)および可変軽鎖(ＶＬ)配
列のＰＣＲ増幅、ならびにｓｃＦｖカセットの組み立ては記載(Pharmacia Biote
ch社ＲＰＡＳマニュアル)と実質的に同じプロトコールに従って行った。組み立
てた５０８ｓｃＦｖＤＮＡをＳｆｉＩおよびＮｏｔＩで消化し、１００ｎｇをフ
ァージミドｐＣＣ−Ｇａｌ６(Ｆｖ)(Berdichevsky Y et al., J Immunol Method
s., 31; 228 (1-2): 151-62, 1999)をＳｆｉＩおよびＮｏｔＩを用いて消化して
得たベクターＤＮＡ１５０ｎｇと連結した。このファージ―表示システムはｓｃ
ＦｖをClostridium thermocellum (Morag E et al., Appl Environ Microbiol.,
61 (5): 1980-6, 1995)由来の、セルローズ結合ドメイン(ＣＢＤ)を有する融合
タンパク質と同じ読み取り枠で発現するように設計されている。連結したＤＮＡ
を形質転換によりＸＬ−１ Ｂｌｕｅ細胞(Stragatene, La Jolla, CA)に導入し
、形質転換細胞をアンピシリン１００μｇ／ｍｌおよびグルコース１％を含有す
る２ＸＹＴ寒天プレートに撒き、一夜３７℃で増殖させた。
【０１９５】 β―アミロイド結合性ｓｃｖＦｖ−ＣＢＤ融合タンパク質の選択： 個々のクローンを拾い上げて各々を２ＸＹＴ５ｍｌ、１％グルコース、１００
μｇ／ｍｌアンピシリン中で一夜３０℃で増殖させた。ＩＰＴＧを１ｍＭ濃度で
添加し３時間インキュベートした。誘発処理を行った細胞のペレットを音波処理
して核クローンから可溶性ｓｃＦｖ−ＣＢＤ融合タンパク質を単離した。機能を
有する可溶性５０８(Ｆｖ)を非機能性のものから区別して確認するために、２５
０ｎｇ／ウエルのβ―アミロイドペプチドをエポキシコーティングしたマイクロ
タイタープレートに４℃で１６時間かけて共有結合させた(Solomon, B. et al.,
Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 93: 452-455, 1996)。プレートをＰＢＳ／０.
０５％−Ｔｗｅｅｎ２０(ＰＢＳＴ)で洗浄し、３％ウシ血清アルブミンおよび粉
末ミルクのＰＢＳ溶液との混合物で４℃で１６時間ブロックした。次いでプレー
トを洗浄し、クローンから回収した可溶性ｓｃＦｖ−ＣＢＤと３７℃で１時間イ
ンキュベートした。結合した抗体をウサギ抗ＣＢＤ抗血清次いでＨＲＰとコンジ
ュゲートしたヤギ抗ウサギ抗体により検出した。プレートをペルオキシダーゼの
発色基質(ＡＢＴＳ)で発色させ、シグナルをＥＬＩＳＡマイクロタイタープレー
トリーダーを用いて４０５ｎｍで記録した。陽性ファージクローン(ｐＣＣ−５
０８(Ｆｖ))を増幅させ、そのＤＮＡの配列を自動３７３Ａ型ＤＮＡシーケンサ
ー(Applied Biosystems, USA)を用いて決定した。
【０１９６】 E. coliにおける５０８(Ｆｖ)−ＣＢＤ融合タンパク質の生産： E. coliでの高レベル発現のために、野生型(ｗｔ)および変異型５０８(Ｆｖ)
誘導体を記載の方法(Berdichevsky Y et al., Protein Expir Purif., 17(2): 2
49-59, 1999)によりｐＦＥＫＣＡ３ベクターにクローニングした。このベクター
は強力なＴ７発現プロモーターを使用しており、そこでは、Ｔ７ＲＮＡポリメラ
ーゼ遺伝子がE. coli ＢＬ２１(ＤＥ３)のｌａｃレプレッサーに制御されるＩ
ＰＴＧ誘導性遺伝子(Studier, F. W., et al., Methods Enzymol., 85, 60-89,
1990)として保持されている。ＩＰＴＧで誘導すると、５０８(Ｆｖ)−ＣＢＤタ
ンパク質が不溶性の封入体として蓄積した。これらを既報のセルローズ−助成再
生法(Berdichevsky Y et al., Protein Expr Purif., 17(2): 249-59, 1999)に
より回収した。ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動(ＳＤＳ／ＰＡＧＥ)を用
いて、変性条件下でタンパク質をそれらの分子量に従って分離した(Laemmli, U.
K., Nature 227: 263-270, 1970)。
【０１９７】 精製５０８(Ｆｖ)−ＣＢＤタンパク質の安定性アッセイ： 精製した５０８(Ｆｖ)−ＣＢＤタンパク質の安定性を４℃で７日間保存前後で
チェックした。２５０ｎｇ／ウエルのβ―アミロイドペプチドをマイクロタイタ
ープレートのエポキシコーティングを施したウエルに４℃で１６時間共有結合さ
せた(Solomon B. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 94, 4109-4112, 1997)
。ウエルを３％ウシ血清アルブミンとウシヘモグロビンのＰＢＳ溶液との混合物
で３７℃で２時間かけてブロックし、次いで洗浄し５０８(Ｆｖ)−ＣＢＤタンパ
ク質(特記しない限り、０.５μｇ／ｍｌ)と３７℃で１時間インキュベートした。
結合した抗体断片を、１：５,０００希釈したＨＲＰ―ウサギ抗マウス抗体コン
ジュゲート(BioMakor, Rehovot, Israel)およびＰＢＳＴで１：１０,０００希釈
したウサギ抗ＣＢＤとインキュベートして検出した。結合した抗体断片は上述の
方法によってモニターした。
【０１９８】 ５０８(Ｆｖ)βＡＰ結合変異株の単離用ファージライブラリーの構築： スプライシングオーバーラップ伸長(ＳＯＥ)ＰＣＲ手法を用いて５０８(Ｆｖ)
のＶＬのシステインコドン９６を他のコドンと置き換えた。ｐＣＣ−５０８(Ｆ
ｖ)ＤＮＡを鋳型として使用した。第１ステップでは、鋳型ＤＮＡを以下のプラ
イマーで増幅した。
【０１９９】 アンチセンスプライマー５０８−ｍｕｔ−ＦＯＲ：５’−ＣＣＣＣＣＣＴＣＣ
ＧＡＡＣＧＴＳＮＡＴＧＧＧＴＡＡＣＴｃｇａｔｃｇＣＴＧＡＴＧＧＣＡＧＴＡ
−３’(配列番号１０)にはＰｕｖＩ制限部位(下線部分)を挿入するが、Ｓはヌク
レオチドＣもしくはＧを、そしてＮはＡ、Ｃ、ＴもしくはＧを表す。このプライ
マーはシステインコドン９６をフェニルアラニン(Ｆ)、ロイシン(Ｌ)、セリン(
Ｓ)、チロシン(Ｙ)もしくはトリプトファンコドンと置換するのに使用した。プ
ライマーＳｆｉＩ５’ＢＡＣＫ：５’−ＡＴＣＴＡＴＧＣｇｇｃｃｃａｇｃｃｇ ｇｃｃ ＡＴＧ−３’(配列番号１１)はｓｃＦｖの５’末端にＳｆｉＩ部位を挿入
する。得られたＰＣＲ産物(ＳｆｉＩ−５０８ｍｕｔ)は５０８(Ｆｖ)−ＣＢＤの
５’側半分に相当する。２番目のＰＣＲステップでは、ステップ１由来のＳｆｉ
Ｉ−５０８ｍｕｔＰＣＲ産物を５’末端プライマーとしＣＢＤ(ＢＸ)：５’−Ｇ
ＴＧＧＴＧＣＴＧＡＧＴｇｇａｔｃｃｔａＴＡＣＴＡＣＡＣＴＧＣＣＡＣＣＧＧ
Ｇ−３’(配列番号１２)を３’末端プライマーとしてｐＣＣ−５０８(Ｆｖ)ＤＮ
Ａを増幅することによって完全な５０８(Ｆｖ)ＣＢＤの再会合を行った。最終の
ＰＣＲ産物(ＳｆｉＩ−５０８ｍｕｔ−ＢＸ)はＶＬコドン９６に置換を有し、Ｐ
ｖｕＩ部位を分析用にサイレント変異に改変した完全な５０８(Ｆｖ)−ＣＢＤカ
セットである。ＳｆｉＩ−５０８−ＢＸ ＤＮＡをＳｆｉＩ、ＰｖｕＩおよびＮ
ｏｔＩで消化し、抗E. coliβ―ガラクトシダーゼｓｃＦｖを表示するのに用い
たファージミド(Berdichevsky Y et al., J Immunol Methods, 31; 228 (1-2):
151-62, 1999)であるところの、ＳｆｉＩおよびＮｏｔＩで線状化したｐＣＣ−
Ｇａｌ６(Ｆｖ)ＤＮＡと３断片連結を行った。得られた連結ファージミドＤＮＡ
をエレクトロポレエーションによりE. coli ＸＬ−Ｂｌｕｅ細胞に導入した。E.
coliを培養し、Ｍ１３ＫＯ７ヘルパーファージ(Pharmacia Biotech, Uppsala,
Sweden)をヘルパーファージとして使用して表示用ファージを生産した。
【０２００】 β―アミロイド結合性５０８(Ｆｖ)を表示するファージクローンの親和性選択： レスキュ・ファージ粒子を含有するサンプルを一巡の親和性選択(バイオパン
ニング)および増幅にかけた。選択サイクルには、０.５μｇ／ｍｌのビオチニル
化β―アミロイド１−１６アミノ酸ペプチド(βＡＰ(１−１６)、配列番号３の
酸１−１６)を総容量１ｍｌに加えて使用した。ファージをビオチニル化ペプチ
ドと室温で２時間プレインキュベートし、反応混合物を次いでストレプトアビジ
ンをコーティングした３０ｍｍ径のポリスチレン製ペトリ皿に重層し、室温で２
０分間インキュベートした。ＰＢＳＴで充分洗浄して未結合のファージを除去し
た。グリシンでｐＨ２.２に滴定した０.１Ｍ ＨＣｌ ０.３ｍｌを用いて結合
したファージを溶出した。溶出液を８０μｌの０.５Ｍ Ｔｒｉｓ(ＨＣｌ) ｐ
Ｈ１０で中和し、これをE. coli ＸＬ−Ｂｌｕｅ細胞に感染させた。増幅したフ
ァージ粒子を含有する個々の細菌コロニーを、プライマーＳｆｉＩ５’Ｂａｃｋ
およびＣＢＤ(ＢＸ)を用いるコロニーＰＣＲ(Novagen Madison, USA)の鋳型とし
て使用した。元のｓｃＦｖ−ＣＢＤ断片(約１２５０ｂｐ)のサイズ付近のＰＣＲ
産物を制限酵素ＰｖｕＩで消化してアガローズゲル電気泳動で分析した。
【０２０１】 ｓｃＦｖのビオチニル化βＡＰ(１−１６)への結合： ｓｃＦｖのβＡＰ(１−１６)への結合をＥＬＩＳＡで分析した。０.１Ｍ Ｎ
ａＨＣＯ３、ｐＨ９.６に溶解したストレプトアビジンの１μｇ／ｍｌ溶液５０
μｌでコーティングしたプレートをＰＢＳＴで３回洗浄し、次いで６ｎｇ／μｌ
のビオチニル化βＡＰ(１−１６)５０μｌをウエルに添加し３７℃で３０分間イ
ンキュベートした。ウエルを３％ウシ血清アルブミンおよびウシヘモグロビンの
ＰＢＳ溶液との混合物で３７℃で２時間ブロックし、次いで洗浄しｓｃＦｖ(特
記しない限り、０.５μｇ／ｍｌ)と３７℃で１時間インキュベートした。阻害実
験では、ペプチドを抗体と３７℃で３０分間プレインキュベートした後ペプチド
でコーティングしたウエルに加えた。洗浄後、結合した抗体断片を上述の方法で
検出した。βＡＰ特異的結合を行うファージクローンを増幅させ、そのＤＮＡを
上述の方法で単離し配列を決定した。
【０２０２】 細胞培養およびβＡＰの細胞毒性アッセイ： ラットの褐色細胞腫ＰＣ１２細胞を５％ウマ血清、１０％ウシ胎児血清、２ｍ
Ｍ Ｌ−グルタミン、および１００単位／ｍｌペニシリン／ストレプトマイシン
添加ＤＭＥＭで５％ＣＯ２下３７℃でインキュベートした。神経毒性のアッセイ
には、培養ＰＣ１２細胞を２Ｍインシュリン添加無血清培地中１０４個／１００
μｌ／ウエルの密度で９６ウェルプレートに撒いた。β―ＡＰの神経毒性阻害効
果は次のようにして測定した：０.１２ｍＭ β―アミロイドを３７℃で１週間
インキュベートして原線維を形成させ、更に５０８Ｆ(Ｆｖ)−ＣＢＤ存在下、も
しくは無関係なＧａｌ６(Ｆｖ)−ＣＢＤと共にβＡＰ対ｓｃＦｖ比１５：１もし
くは３０：１で２４時間インキュベートした。βＡＰ／抗体混合物をＰＣ１２細
胞を含有したウエルに添加した。プレートを３７℃で２日間インキュベートし、
その後臭化３−(４，５−ジメチルチアゾール‐２−イル)−２，５−ジフェニル
テトラゾリウム(ＭＴＴ)を用いて細胞の酸化還元活性を測定することによって、
細胞の生存率を既報の方法(Sladowski, D. et al., J. Immunol. Methods., 157
: 203-207, 1993)で測定した。プレートは３７℃で一夜インキュベートした。Ｍ
ＴＴの還元は、５５０ｎｍにセットしたＥＬＩＳＡマイクロタイタープレートリ
ーダーを用いて比色法により測定した。
【０２０３】 β‐アミロイドペプチド凝集のチオフラビンＴ(ＴｈＴ)蛍光定量法による測定： β‐アミロイドペプチドの凝集はチオフラビンＴ(ＴｈＴ)結合アッセイによっ
て測定したが、蛍光強度はβ‐アミロイド原線維形成の程度を反映する。ＴｈＴ
はアミロイド様沈着物を特徴的に染め(Levine, H. III, Protein Sci., 2: 404-
410, 1993)、凝集したβ‐シート標品の懸濁液に加えた場合、４３５ｎｍで励起
すると４８５ｎｍに増強された蛍光放射を示す。０.１Ｍ Ｔｒｉｓ(ＨＣｌ)
ｐＨ７.１中の０.１２Ｍ βＡＰ溶液を３７℃で１週間インキュベートし、更に
５０８Ｆ(Ｆｖ)−ＣＢＤ存在下、もしくは無関係なＧａｌ６(Ｆｖ)−ＣＢＤと共
にβＡＰ対ｓｃＦｖのモル比１５：１もしくは３０：１で２４時間インキュベー
トした。ＴｈＴ(５０ｍＭグリシン、ｐＨ９中２μＭ)１ｍｌを加えた後ＬＳＢ−
５０(Perkin Elmer社、英国)分光光度計で測定した。
【０２０４】 ファージ送達システムの作製： 雌性Ｂａｌｂ／ｃマウス１２匹を各群３匹の４群に分けた。１群はコントロー
ルとして使用した。１０１１個のファージ粒子(ｆｄファージ、George P. Smith
, University of Missouri, Columbia, MOより提供された１５量体ファージペプ
チドライブラリーより取ったもの)を単回鼻腔内投与した後、１、１４および２
８日の間隔で各群のマウスを屠殺し、詳細な分析を行うためにその脳を取り出し
た。
【０２０５】 ｓｃＦｖを有するファージが脳に入り脳由来のβＡＰ断片を除去する能力： ｓｃＦｖ−５０８Ｆを繊維状マイナーコートｇｐＩＩＩに融合させたものを用
いて、βＡＰ凝集阻害活性を有するｓｃＦｖが線維状ファージ表示システムによ
って直接ＣＮＳに運ばれる能力を検討した。
【０２０６】 このｓｃＦｖは凝集阻害活性を有するハイブリドーマ５０８から上述の方法で
調製し、その特異的結合活性を保持していた。３群に分けたＢａｌｂ／ｃマウス
９匹を以下のように処理した。第１群のマウスは１０−３ＭのビオチンβＡ(１
−１６)０.２ｍｌのみで処理した。第２群のマウスは１０−３ＭのビオチンβＡ
(１−１６)０.２ｍｌと１時間プレインキュベーションした５０８Ｆ−ｓｃＦｖ
保持ファージ１０１０個の混合物で処理した。第３群のマウスはコントロールと
して使用した。鼻腔内に単回投与した後、１、１４および２８日の間隔で各群の
マウスを屠殺し、詳細な分析を行うために脳を取り出した。
【０２０７】 組織切片作成： 断頭後直ちに脳を取り出し、正中矢状溝に沿って半分ずつに切断した。無作為
に、半球を０．１Ｍリン酸緩衝液中の４％パラホルムアルデヒド溶液に４℃で２
時間浸漬して固定し、次いで低温に対する保護のために０.１Ｍ ＰＢＳ中４.５
％蔗糖溶液に一夜浸漬した。断片を次いで３０％蔗糖液に移して４℃で２時間浸
漬した。嗅球と海馬を含有する冠状ブロックの断片をＯＣＴに入れ、−２０℃で
６μｍの厚さに切断し、スライドガラス上に載せた。スライドは−７０℃に保持
した。これらのスライドを免疫蛍光法を用いたファージ検出に使用した。
【０２０８】 もう一方の正中矢状溝半球は組織学用のパラフィン組織切片の作製に使用した
。断片を４％パラホルムアルデヒドで２時間固定し、次いで１０％ホルマリン食
塩水に移して室温２時間置き、次いでパラフィン包埋し、ミクロトームで４μｍ
の厚さに切断してスライドガラス上に載せた。スライドは使用まで室温に保持し
た。
【０２０９】 脳切片中の抗原検出： 免疫蛍光：切片をＰＢＳ中３％ウシ血清アルブミンで３０分間ブロックし、次
いでウサギポリクローナル抗ｆｄ血清(１：１００)もしくはＰＥ(Sigma社)とカ
ップルしたストレプトアビジンと３７℃で１時間インキュベートした。次いでス
ライドをＰＢＳ中で５分間ずつ３回洗浄し、再びブロッキング緩衝液で室温５分
間処理し、次いで２次抗体ｒＣｙＴＭ３ロバ抗ウサギＩｇＧ(ファージ検出用)の
１：４００希釈液(Sigma社)もしくはＰＥとカップルしたストレプトアビジンの
１：５０希釈液と室温で１時間インキュベートした。最後に標品をＰＢＳ中で３
回洗浄し、蛍光顕微鏡を使って最終倍率１０倍で観察し、浜松ディジタルカメラ
(Ｃ４７４２)およびMetamorph (Universal Imaging；West Chester, PA)を用い
てフィルムに記録した。
【０２１０】 組織学：６ミクロンの切片をヘマトキシリンおよびエオシンで染色した。染色
した切片を最終倍率４０倍で調べて写真に撮った。最後に、標品をＰＢＳ中で３
回洗浄し、顕微鏡で観察し、フィルムに記録した。
【０２１１】 ｆ３−ＹＹＥＦＲＨによる免疫： マイナーコートｇｐＩＩＩに融合したペプチドＹＹＥＦＲＨ(配列番号７)を保
持する遺伝子組換えｆｄファージで免疫を行った。注射当たり１０１０個のファ
ージの用量を用いて１４日間隔で腹腔内注射して免疫を行った。１回目はフロイ
ント完全アジュバント(Difco社)と共に、もしくはアジュバント無しでマウスに
注射し、２回目はフロイント不完全アジュバント(Difco社)と共に注射した。各
注射の７日後にマウスを放血し、そしてその血清についてファージコートタンパ
ク質およびβＡに対する抗体ＩｇＧの反応性をＥＬＩＳＡで試験した。
【０２１２】 エピトープライブラリー この研究で使用した１５量体のファージライブラリーはGeorge P. Smith (Uni
versity of Missouri, Columbia, MO)から提供された。ライブラリーは約１.９
ｘ１０９個のファージ粒子より成り、ｆｄファージのコート糖タンパク質ＶＩＩ
Ｉに融合した１５アミノ酸残基のランダムペプチドレパトリ‐を形成する。この
ライブラリーを用いた実験は提供者(George P. Smith University of Missouri,
Columbia, MO)の指示に従って実施した。
【０２１３】 抗体のビオチニル化： 抗体のビオチニル化には、０.１Ｍ ＮａＨＣＯ３中各抗体１００μｇをジメ
チルホルムアミドに溶かした１ｍｇ／ｍｌビオチンアミドカプロエートＮ−ヒド
ロキシサクシンイミドエステル(Sigma社、Ｂ２６４３)保存溶液５μｇと室温で
２時間インキュベートし、リン酸緩衝生理食塩水(ＰＢＳ；ＮａＣｌ／０.０１Ｍ
リン酸緩衝液、ｐＨ７.４)中４℃で一夜透析した。
【０２１４】 ペプチドライブラリーからのエピトープ提示ファージ単離： １０９個の感染性ファージ粒子を含有するライブラリーサンプルを３巡の選択
(バイオパンニング)および増幅のサイクルにかけた。各選択サイクルで全容量２
５μｌ中ビオチニル化モノクローナル抗体(１μｇ／μｌ)を使用した。ファージ
クローンをビオチニル化抗体と４℃で一夜プレインキュベートし、反応混合物を
次いで０.５％Ｔｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳ１ｍｌ中、ストレプトアビジンをコー
ティングした３０ｍｍ径のペトリ皿に重層し、室温で２０分間インキュベートし
た。未結合のファージはＰＢＳ／０.０５％Ｔｗｅｅｎ２０で充分洗浄(１０分間
ずつ１０回)して除去した。結合したファージをグリシンでｐＨ２.２に合わせた
０.１Ｍ ＨＣｌ ０.３ｍｌで溶出した。溶出液を中和し、E. coli Ｋ９１細胞
に感染させるのに使用した。パンニングを３回行った後、増幅した粒子を含有す
る個々の細菌コロニーをマイクロタイタープレート上で増殖させ、選択されたフ
ァージについて以下に記述する方法で研究対象の抗体に対する結合能をＥＬＩＳ
Ａで試験した。
【０２１５】 単離されたファージに対する抗体の結合： ファージへの抗体の結合はＥＬＩＳＡで分析した。マイクロタイタープレート
(Maxisorb, Nunc)のウエルをウサギ抗ファージ血清５０μｌ(０.１Ｍ ＮａＨＣ
Ｏ３、ｐＨ８.６中１：１０００希釈)でコーティングし、４℃で一夜インキュベ
ートした。ウエルを３％ウシ血清アルブミンおよびヘモグロビンの１：１(ＰＢ
Ｓ中)混合物を用いて２時間ブロックした。コーティングしたプレートをＰＢＳ
／０.０５％Ｔｗｅｅｎ２０で３回洗浄し、１０１０個のファージ粒子を含有す
る富化されたファージクローン５０μｌをウエルに添加して３７℃で１時間イン
キュベートした。洗浄後、研究対象の抗体を添加し(特記しない限り、１μｇ／ｍ
ｌ)４℃で一夜かけて結合させ、その結合定数を測定した。陽性ファージを増殖
させ、そのＤＮＡ配列をApplied Biosystem Kit (United States, Applied Bios
ystem)を用いてWeizmann Institute of Science (Rehovot, Israel)のSequencin
g Unitにおける挿入領域中で決定した。
【０２１６】 βＡＰ(１−１６)のｆｄｇｐＶＩＩＩファージによる表示： 線維状ファージのコート糖タンパク質ＶＩＩＩはファージコート上約２７００
コピーが提示される。以下のオリゴヌクレオチドを作成した：センス − ５’
−ａｇｃｔｃｃＧＡＴＧＣＴＧＡＡＴＴＣＧＧＴＧＡＴＡＧＣＧＧＣＴＡＣＧＡ
ＡＧＴＧＣＡＴＣＡＴＣＡＧＡＡＡｃｃｔｇｃａｇ−３’(配列番号１３)；およ
びアンチセンス − ５’−ｇｇＴＴＴＣＴＧＡＴＧＡＴＧＣＡＣＴＴＣＧＴＡ
ＧＣＣＧＣＴＡＴＣＡＴＧＡＣＧＡＡＡＴＴＣＡＧＣＡＴＣｇｇ−３’(配列番
号１４)。これらのオリゴヌクレオチドを用いて、ヒトβＡＰのアミノ酸１−１
６をコードし以後の分析に有用な特異的制限部位(ＥｃｏＲＩ)のサイレント変異
を含有するところの二重らせんを形成した(６８−７０℃、１０分間、次いで室
温まで徐々に冷却)。二重らせんをリン酸化し、線維状ファージのｇｐＶＩＩＩ
上に融合ペプチドを表示するのに使用するベクターの、ＨｉｎｄＩＩＩ／Ｐｓｔ
Ｉで線状化したｆ８８−４ファージミドに連結した。得られた連結ファージミド
ＤＮＡを形質転換でE. coli Ｋ９１Ｋ細胞に導入し、形質転換細胞を１０μｇ／
ｍｌテトラサイクリンおよび１％グルコースを含有する２ｘＹＴ寒天プレートに
撒いて３７℃で一夜増殖させた。ファージ粒子を含有する個々の細菌クローンを
用いて１０μｇ／ｍｌテトラサイクリン含有２ＹＴ培地に接種し３７℃で一夜増
殖させた。各コロニーから得られたＤＮＡファージミド生成物をＥｃｏＲＩで分
析した。陽性クローンを更に増殖させ抗原標品とした。
【０２１７】 ｆ８８−ＥＦＲＨによる免疫： メジャーコート糖タンパク質ＶＩＩＩに融合させたペプチドＶＨＥＰＨＥＦＲ
ＨＶＡＬＮＰＶ(配列番号８)を保持する遺伝子組換えｆｄファージで免疫を行っ
た。注射１回当たり１０１０個の用量のファージを用いて１４日間隔で腹腔内注
射して免疫した。１回目はフロイント完全アジュバント(Difco社)と共に、もし
くはアジュバント無しでマウスに注射し、２回目はフロイント不完全アジュバン
ト(Difco社)と共に注射した。各注射の７日後にマウスを放血し、そしてその血
清についてファージコートタンパク質およびβＡに対する抗体ＩｇＧの反応性を
ＥＬＩＳＡで試験した。
【０２１８】 抗体のβ‐アミロイドペプチドへの結合の阻害： 抗体のβＡＰ(１−１６)への結合に対する種々の小ペプチドによる阻害を、上
述の方法でＥＬＩＳＡプレートに共有結合させた２５０ｎｇ／ウエルのビオチニ
ル化β‐アミロイドペプチド(１−１６)を用いて実施した。プレートを３％ウシ
血清アルブミンおよびヘモグロビンの１：１(ＰＢＳ中)混合物を用いて３７℃で
２時間ブロックした。ペプチドを、ｆ８８−ＥＦＲＨによる３回目の免疫後の血
清の１：３０００希釈液とプレインキュベーションした後、βＡＰでコーティン
グしたウエルに添加しウエル中で４℃で一夜放置した。洗浄後、上述の方法でＨ
ＲＰにコンジュゲートしたウサギ抗マウス免疫グロブリンとインキュベートする
ことによって結合した抗体を検出した。結果を用いて、抗体の結合を完全に阻害
するペプチドの半分のモル濃度であるＩＣ５０を算出した。ペプチドはThe Weiz
mann Institute of Scienceのthe Unit for Chemical Services中でApplied Bio
systems Synergy Model430ＡによりＦｍｏｃ化学を用いる固相で合成した。
【０２１９】 細胞培養および細胞毒性アッセイ： ラットの褐色細胞腫ＰＣ１２細胞を５％ウマ血清、１０％ウシ胎児血清、２ｍ
Ｍ Ｌ−グルタミン、および１００単位／ｍｌペニシリン／ストレプトマイシン
添加ＤＭＥＭで５％ＣＯ２下３７℃でインキュベートした。神経毒性のアッセイ
には、培養ＰＣ１２細胞を２Ｍインシュリン添加無血清培地中１０４個／１００
μｌ／ウエルの密度で９６ウェルプレートに撒いた。β―ＡＰの神経毒性阻害効
果は次のようにして測定した：０.１２ｍＭ β―アミロイドを３７℃で１週間
インキュベートして原線維を形成させ、更にＥＦＲＨ−ファージで免疫したマウ
スの血清および無関係なファージで免疫したマウスの血清の５：１および１０：
１希釈液存在下２４時間インキュベートした。βＡＰ／抗体混合物をＰＣ１２細
胞を含んだウエルに添加した。プレートを３７℃で２日間インキュベートし、そ
の後臭化３−(４，５−ジメチルチアゾール‐２−イル)−２，５−ジフェニルテ
トラゾリウム(ＭＴＴ)を用いて細胞の酸化還元活性を測定することによって細胞
の生存率を既報の方法(Sladowski, D. et al., J. Immunol. Methods., 157: 20
3-207, 1993)で測定した。プレートは３７℃で一夜インキュベートした。ＭＴＴ
の還元は５５０ｎｍにセットしたＥＬＩＳＡマイクロタイタープレートリーダー
を用いて比色法により測定した。
【０２２０】 抗ＰｒＰ１０６−１２６モノクローナル抗体の作成 ヒトＰｒＰ１０６−１２６(配列番号２５)に相当する合成ペプチド(Chiron Te
chnologies，Claton, Victoria, Australiaから入手)を大きな担体であるＫＬＨ
にカップルさせたもので免疫したマウスを用いてKohlerおよびMilstein (Kohler
and Milstein 1975)の融合手法に従ってモノクローナル抗体を作成した。
【０２２１】 ハイブリドーマはＥＬＩＳＡを用いて以下の方法でペプチド特異的抗体産生を
試験した。ペプチドＰｒＰ１０６−１２６をＥｕｐｅｒｇｉｔ−Ｃでコーティン
グした９６ウェルプレートのエポキシ基に共有結合させた。残ったエポキシ基は
プレートを３％スキムミルク(ブロッキング液)でインキュベートすることによっ
てブロックした。未希釈のハイブリドーマ上清を加えて３７℃で１時間置いた。
ウエルを充分洗浄(操作の各ステップ同様)し、セイヨウワサビペルオキシダーゼ
(ＨＲＰ)で標識したマウスＩｇＧもしくはＩｇＭ特異的ヤギ抗マウス抗体(ブロ
ッキング溶液で希釈)と更にインキュベートした。洗浄後、オルトフェニレンジ
アミンをＨＲＰの基質に用いて抗体結合を視覚化した。吸光度を４９２ｎｍで測
定した。選択されたモノクローナル抗体をスケールアップし、公表の方法、すな
わちプロテインＡカラム(Harlowet al. 1998)によるＩｇＧ精製法およびKaptive
MカラムによるＩｇＭ精製法を用いて精製した。２種のｍＡｂ、すなわち２−４
０および３−１１を以後の研究に使用した。ｍＡＢ３Ｆ４はSenetek，Ca, USAか
ら購入した。
【０２２２】 ファージ表示ライブラリーを用いた抗体のエピトープ部位の探索： 抗体３−１１(ＩｇＭ)および２−４０(ＩｇＧ)をビオチニル化した。以下のラ
イブラリー(G. P. Smithより提供)を既述の方法(Frenkelet al. 1998)で探索し
て研究対象の抗体のエピトープを探した。 １．異種の１５量体がｐＩＩＩの５個全てのコピー上に表示されているｆＵＳＥ
５／１５量体ライブラリー ２．異種の６量体がｐＶＩＩＩの最高約３００個のコピー上に表示されているｆ
８８−４／６量体ライブラリー(本ペプチドをコードする組換え遺伝子ＶＩＩＩ
はＩＰＴＧで誘導可能)
【０２２３】 抗体のエピトープを探すためのファージのバイオパンニングは既述の方法(Fre
nkel et al.,1998)で実施した。
【０２２４】 ＰｒＰに結合した抗体のペプチドＮＭＫＨによる競合阻害 共有結合したＰｒＰペプチドへの上記の抗体のＥＬＩＳＡによる競合的結合を
上述の方法で行った。抗体をペプチドＮＭＫＨと等モル比でプレインキュベーシ
ョンした後ウエルに添加した。
【０２２５】 ＰｒＰ１０６−１２６の凝集および免疫複合体形成 ＰｒＰ１０６−１２６(１０ｍｇ／ｍｌ)の水溶液を３７℃で種々の時間間隔で
インキュベートすることにより、ペプチド１０６−１２６のインビトロ凝集を誘
発させた。凝集したペプチドをモノクローナル抗体２−４０、３−１１もしくは
３Ｆ４のいずれかと後述の条件でインキュベートした。
【０２２６】 ＰＣ１２細胞を用いたＰｒＰ１０６−１２６の細胞毒性アッセイ ラットの褐色細胞腫ＰＣ１２細胞を８％ウマ血清、８％ウシ胎児血清、２ｍＭ
Ｌ−グルタミン、および１００単位／ｍｌペニシリン／ストレプトマイシン添
加ＤＭＥＭで５％ＣＯ２下３７℃でインキュベートした。
【０２２７】 神経毒性のアッセイには、培養ＰＣ１２細胞を２Ｍインシュリン添加無血清培
地中２ｘ１０４個／１００μｌ／ウエルの密度で９６ウェルプレートに撒いた。
細胞を、３７℃で４−７日間プレインキュベーションした１００μＭのＰｒＰ１
０６−１２６で３−５日間処理した。細胞の生存率は、生存細胞がテトラゾリウ
ム塩である臭化３−(４，５−ジメチルチアゾール‐２−イル)−２，５−ジフェ
ニルテトラゾリウム(ＭＴＴ)をホルマザン生成物に変換するミトコンドリア酵素
の活性を測定するＭＴＴアッセイ(Hansen et al. 1989)によって測定した。ＭＴ
Ｔは終濃度１ｍｇ／ｍｌになるようにウエルに添加し更に３７℃で３時間細胞と
インキュベートした。細胞溶解用緩衝液(５０％ジメチルホルムアミド、ｐＨ４.
７中２０％ｗｔ／ｖｏｌ ＳＤＳ)を添加し、プレートを３７℃で一夜インキュ
ベートした。ＭＴＴの還元を５５０ｎｍの吸光度(ＯＤ)で比色測定した。
【０２２８】 ＰｒＰ１０６−１２６の神経毒性の阻害 ＰｒＰ１０６−１２６の神経毒性に対するｍＡｂの阻害効果を以下の方法で測
定した。ＰｒＰ１０６−１２６(１０ｍｇ／ｍｌ)を３７℃で７日間インキュベー
トしてペプチドの最大凝集を起こさせた。モノクローナル抗体３−１１、２−４
０および３Ｆ４を、既に凝集している１ｍＭのペプチドサンプルに添加して１時
間置いた。抗体‐ペプチド混合物ならびに凝集したペプチドのみをペプチドの終
濃度が１００μＭになるように添加した。上記の反応混合物と３７℃で３日間イ
ンキュベートした後、細胞の生存率を上記の方法で測定した。無処理の細胞での
ＭＴＴアッセイ値を生存率１００％と定義した。
【０２２９】 チオフラビンＴ(ＴｈＴ)蛍光アッセイによるＰｒＰのコンフォーメーション変化
の追跡 増加する量のＰｒＰ１０６−１２６ペプチド(０−０.８ｍｇ／ｍｌ)を３７℃
で７日間インキュベートした。プリオンアミロイド原線維形成をチオフラビンＴ
(ＴｈＴ)結合アッセイで測定した。特定の起源由来のアミロイド原線維へのＴｈ
Ｔの結合は特異的蛍光シグナルを発生しする：溶液中の遊離色素の励起スペクト
ルの励起ピークが３３６ｎｍから１１４ｎｍ赤方偏移し、結合した色素では４５
０ｎｍの新しい励起ピークになる。加えて、結合した色素は増強された４８２ｎ
ｍの発光を有する(Naikiet al. 1989, LeVine 1993)。０.１Ｍ Ｔｒｉｓ／ＨＣ
ｌ ｐＨ７.１中３７℃で７日間インキュベートしたＰｒＰ１０６−１２６(０.
３ｍｇ／ｍｌ)のサンプルを用いて、ｍＡｂ３−１１、２−４０および３Ｆ４の
種々の希釈液の存在下および非存在下でプリオンペプチドの凝集を追跡した。既
に形成されているプリオンアミロイド原線維の離解は、３７℃で７日間インキュ
ベートし次いでｍＡｂを添加して更に２４時間インキュベートしたＰｒＰ１０６
−１２６を用いて行った。サンプルをＴｈＴ(５０ｍＭグリシン、ｐＨ９中２μ
Ｍ)に添加した後、蛍光(４３５ｎｍで励起した後の４８２ｎｍの発光)を測定し
た。
【０２３０】 実験結果 以下の実施例１−６は抗凝集性モノクローナル抗体の単鎖型の生産に関する。
以下の実施例７−８はペプチドもしくは抗体を表示するファージの脳への送達に
関する。以下の実施例９−１４はファージ上に表示されたベータアミロイド抗原
の直接免疫による高力価の抗凝集性ポリクローナル抗体生産、およびこれらの抗
体の特性検討に関する。
【０２３１】 実施例１ ＩｇＭ産生ハイブリドーマ５０８の生成 ＫＬＨ(配列番号９)にコンジュゲートしたベータアミロイドの１６アミノ酸ペ
プチド(配列番号３の酸１−１６)を用いたマウスの免疫は上述の方法で行った。
繰り返し免疫により、最後にベータアミロイドに対する低力価ではあるが測定可
能な力価の抗体が生成した。引き続いた免疫マウスの脾臓摘出により、ベータア
ミロイドに特異性を有するｓｃＦｖＡｂを発現するＩｇＭ産生ハイブリドーマ５
０８の作製が容易になった。次いでこのハイブリドーマからＲＮＡを抽出した。
ＩｇＭ５０８産生ハイブリドーマは、Ａβに特異的活性を有しＰＣ１２細胞に対
するその毒性作用を阻止した(Anavi, S. 1998、the Department of Molecular M
icrobiology and Biotechnology of the Tel-Aviv University, Iからの修士論
文)。
【０２３２】 実施例２ ５０８ＩｇＭ産生ハイブリドーマの可変領域ｓｃＦｖのクローニング ＭＡｂはβ‐アミロイドに対する特異的認識を示し、ＰＣ１２細胞に対するそ
の毒性作用を阻止した(Anavi, S., 1998、 同上)。５０８抗体をｓｃＦｖとして
ファージ表示ベクターにクローニングするために、１０８個の５０８ハイブリド
ーマ細胞からＲＮＡを抽出し、これを抗体の可変領域をコードする配列の材料と
して使用した。可変領域をＲＴ−ＰＣＲを用いて増幅し、実験材料および方法に
記述した方法によりファージ表示ベクターｐＣＣ−Ｇａｌ６(Ｆｖ)にクローニン
グした。ハイブリドーマ由来の抗体をｓｃＦｖとしてクローニングすると、クロ
ーンのいくつかは機能しない異常配列を含有しうる。したがって、機能的にβ―
アミロイドに結合する部位を保持するファージミドを確認するために、１０個の
別々のクローンを無作為に取り出し、それらからｓｓＦｖ−ＣＢＤ融合タンパク
質を生産した。５０８−ｓｃＦｖ発現に使用したプラスミドｐＣＣ−５０８の物
理的地図を図２に示す。ＣＢＤ領域は可溶性ｓｃＦｖの免疫学的検出に使用でき
、もしくは過剰発現した可溶性ｓｃＦｖタンパク質封入体の再生のための新しい
アプローチにも使用できる(Berdinchevsky Y et al., Protein Expr Purif., 17
(2): 249-59, 1999)。５０８−ｓｃＦｖの過剰発現に使用したプラスミドを図３
に示す。選択されたクローン由来の可溶性ｓｃＦｖ−ＣＢＤを，β‐アミロイド
ペプチドでコーティングしたＥＬＩＳＡプレートのウエル中でインキュベートし
た。分析したクローンのうち５０％がβＡＰに対する特異的結合を示した。図１
ａ〜ｅにＩｇＭ抗体からの５０８ｓｃＦｖの作成を図示する。図４に、更なる分
析のために選択された陽性クローンから生成したｓｃＦｖ−ＣＢＤによるβＡＰ
結合を示す。ＰＣＲを用いてその挿入ＤＮＡの特性を検討した。陽性クローン(
ｐＣＣ−５０８(Ｆｖ)と呼称)は未変化の挿入ＤＮＡを含有することが判明した(
図５)。ｐＣＣのＤＮＡ配列決定から、当クローンが未変化のｓｃＦｖ断片を発
現することが確認された(核酸およびアミノ酸配列、および以下に更に記述する
方法で修飾された配列についてはそれぞれ図１１ａ〜ｂならびに配列番号５およ
び６を参照のこと)。
【０２３３】 実施例３ ５０８−(Ｆｖ)抗体の位置指定変異誘発 ｐＣＣ５０８−(Ｆｖ)のＤＮＡ配列分析から、ＶＬ ＣＤＲ３の９６番目の位
置にシステイン残基が異常出現していることが判明した(Kabat, E. A. et al.,
Sequence of proteins of immunological interest, 5th Ed., 1991)。ＶＬ Ｃ
ＤＲ３の推定アミノ酸配列はＨ８９ＱＲＳＳＹＰＣＴ９７(配列番号１５)である
。対を成していないシステイン残基がｓｃＦｖ内に存在することは折りたたみ収
率を低下させ、また溶液中の安定性および保存半減期を減少させる可能性がある
。したがって５０８(Ｆｖ)を実験材料および方法記述の方法で発現ベクターにサ
ブクローニングし、E. coliで生産した。セルローズを助剤とする再生法(Berdic
hevsky Yet al., Protein Expr Purif., 17(2): 249-59, 1999)による５０８(Ｆ
ｖ)−ＣＢＤの生産工程を図６に要約する。５０８(Ｆｖ)−ＣＢＤはこの方法で
ほぼ均一に精製できたが(図６レーン７)、再生効率は比較的悪くまた４℃の保存
で不安定であった(図７)。システインを異なる残基で置換すれば、親和性に有害
な影響を及ぼすことなく可溶性ｓｃＦｖの生産収率と安定性を増加できると推測
された(Kirpriyanov, M. S. et al., Protein Engineering, 10:445-453, 1997)
。
【０２３４】 ５０８ＶＬシステイン９６のコドンを置換するためにＳＯＥ ＰＣＲを用いた
が、この方法でＣｙｓ９６のコドンをフェニルアラニン、ロイシン、セリン、チ
ロシンもしくはトリプトファンのコドンに置換することができた。加えて、使用
したＰＣＲスキームはシステイン残基がその位置に存続することも許容する。５
０８(Ｆｖ)変異株をｐＣＣ−Ｇａｌ６(Ｆｖ)ファージベクターにクローニングし
、その結果(６種の潜在的変異株を有する)マイクロライブラリーが生成した。選
択された置換用残基はKabatのデータベース(Kabat, E.A. et al., Sequence of
proteins of immunological interest, 5th Ed., 1991)の中の種々の抗体に見出
されるので一般的にＣＤＲ３部位に許容される。しかしながら、異なる置換はβ
ＡＰ結合に及ぼす影響も異なる可能性がある。どの置換がβＡＰ結合を保持して
いるかを試験するために、ビオチニル化βＡＰ(１−１６)を捕捉抗原として用い
て５０８(Ｆｖ)Ｍｕｔマイクロファージライブラリーについて１巡の親和性選択
を実施した。親和性選択サイクル後、ＰＣＲ増幅および制限分析を用いてライブ
ラリークローンの富化をモニターした。５０８Ｍｕｔ−(Ｆｖ)−ＣＢＤ ＤＮＡ
をＰｖｕＩで消化すると、アガローズゲル電気泳動および臭化エチジウム染色に
より典型的な制限パターンが得られる。低分子側の７５０および５００ｂｐ断片
は５０８Ｍｕｔ−(Ｆｖ)−ＣＢＤ ＤＮＡを表し、一方未変化の１２５０ｂｐ断
片はベクターとして用いたｐＣＣ−Ｇａｌ６(Ｆｖ) ＤＮＡ由来のｓｃＦｖ−Ｃ
ＢＤを表す。親和性選択を実施する前に、ライブラリーがｐＣＣ−Ｇａｌ(Ｆｖ)
ベクターＤＮＡでひどく汚染されていることが判明した。このことは、無作為に
拾い上げたライブラリークローンの１９個のうち１８個のＤＮＡが、５０８ＶＬ の部位９６に隣接して組み込んだＰｖｕＩ部位で切断されなかった事実から明ら
かである。分析した１９個のうちの僅か１個のみが変異に関連して予期された制
限パターンを示した(図８ａ)。しかし親和性選択の後には無作為に選択したクロ
ーン１１個中５個が予期された制限パターンを示した(図８ｂ)。これは富化係数
が約１０倍であることを示し、このことは５０８ｓｃＦｖ変異株がβＡＰ(１−
１６)エピトープに結合する能力を有することを実証している。５個の変異株の
ＤＮＡ配列を決定し、それを下の表１に示す。５０８ＬＬのシステイン９６コド
ンの適切な置換はファニルアラニン、セリンもしくはチロシンであることが判明
した。
【０２３５】
【表１】
【０２３６】 実施例４ ｓｃＦｖ５０８変異株によるβＡＰ(１−１６)の認識 変異５０８ｓｃＦｖ誘導体を更に検討するために、野生型タンパク質について
上述した方法で変異遺伝子を発現ベクターにサブクローンし、そしてE. coliで
過剰発現させた。種々の変異５０８−(Ｆｖ)タンパク質(表１)とβＡＰ(１−１
６)の相互作用をＥＬＩＳＡアッセイで試験した。図９ａ〜ｂは、野生型５０８
−(Ｆｖ)−ＣＢＤは半最大結合(ＨＭＢ)濃度１０−５Ｍで結合するが、全ての変
異株はβＡＰに対する改善された結合を示すことを示している。すなわちＣ９６
ＳおよびＣ９６ＹのＨＭＢは５ｘ１０−６Ｍ、Ｃ９６ＦのＨＭＢは１０−７Ｍで
ある。更に検討するためにＣ９６Ｆ変異を保持する５０８−ｓｃＦｖ(５０８Ｆ(
Ｆｖ))を選んだが、これはより高い親和性と保存安定性を示す(図９ａ〜ｂ)。５
０８Ｆ(Ｆｖ)によるβＡＰ(１−１６)結合の特異性を競合的ＥＬＩＳＡで試験し
た。図１０に示すように、精製した５０８Ｆ(Ｆｖ)−ＣＢＤのβＡＰへの結合は
液相の競合物質として加えた可溶性βＡＰ(１−１６)ペプチドで用量依存的に阻
害された。約１μＭの競合物質で５０％結合阻害が得られた。結合は無関係のペ
プチド(ＷＶＬＤ、配列番号４)の影響を受けなかった。
【０２３７】 実施例５ ５０８Ｆ(Ｆｖ)によるβ‐アミロイドの神経毒作用の阻止 培養細胞に対するβＡ仲介性神経毒の阻止において５０８Ｆ(Ｆｖ)が親ＩｇＭ
抗体と類似の保護効果を発揮するか否かを調べるために、ラット褐色細胞腫ＰＣ
１２を用いて上述の方法(Solomon B. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 94
: 4109-4112, 1997)でインビトロ試験を行った。抗体の存在下および非存在下に
βＡに曝露した細胞の生存率を測定した。図１２に示すとおり、５０８Ｆ(Ｆｖ)
はβＡＰ：ｓｃＦｖモル比１５：１でβＡの神経毒性を阻止した(細胞生存率９
０％)が、無関係のｓｃＦｖは影響を及ぼさなかった。精製したＣＢＤもしくは
ｓｃＦｖのみでは細胞に影響を及ぼさなかった。
【０２３８】 実施例６ ５０８Ｆ(Ｆｖ)によるβ‐アミロイド原線維の離解 βＡ原線維(βＡＰの毒性型)の破壊に対する５０８Ｆ(Ｆｖ)の効果を調べるた
めに、原線維構造に特異的に結合するＴｈＴ試薬(Levine, H. III, Protein Sci
., 2: 404-410, 1993)を使用した。既成のβＡ原線維に対する干渉をβＡの神経
毒性アッセイと同様にβＡＰ：ｓｃＦｖet al.,モル比で測定し、ＴｈＴの蛍光
測定で定量した。図１３は、ＴｈＴの蛍光の大幅(６２%)な減少で実証されるよ
うに、既成のβＡ原線維とインキュベートした５０８Ｆ(Ｆｖ)は原線維構造を破
壊したことを示し、原線維の形態が著しく変質したことを示している。
【０２３９】 実施例７ 線維状ファージが嗅覚路を介してＣＮＳに入る活性 雌性Ｂａｌｂ／ｃマウスをファージベクターｆ８８−ＥＦＲＨの鼻腔内投与で
処理した。この実験の目的は、線維状ファージが嗅覚路を介して海馬領域に到達
する活性をチェックすることであった。ファージは神経細胞を標的とする特異的
分子を一切保持していないので、投与数日後には何らの害も起こすことなく消失
する筈である。嗅球および海馬領域でのファージの出現を調べるために、以下の
ように抗体による二重標識を使用した。すなわち抗線維状ファージウサギポリク
ローナル抗体、およびファージ表面の糖タンパク質ＶＩＩＩに融合したＥＦＲＨ
エピトープに対するマウスモノクローナル抗体である。１０１１個のファージを
単回鼻腔内投与して１日後に、動物はそのようなファージを嗅球および海馬に示
した(図１４ａ〜ｄ)。投与７日後には、ファージは試験した３匹のマウスのうち
１匹のみに検出されたが、海馬にはファージは見られなかった。投与２８日後に
は、ファージの証拠は検出されなかった(図１５ａ〜ｄ)。図１６ａ〜ｄに示され
るように、処置を受けたマウスのニューロン集団に変化の証拠は見られなかった
。
【０２４０】 線維状ファージは活性抗体断片をＣＮＳに運搬するための適切な媒体である 線維状ファージが嗅覚路を介して抗体をＣＮＳに運搬し、そこでβ‐アミロイ
ドに対する活性を保持しているか否かをチェックするために、抗原抗体免疫複合
体を形成させるため５０８Ｆを表示している線維状ファージを１０-３Ｍのビオ
チニル化βＡＰ(１−１６)とインキュベートした。Ｂａｌｂ／cマウスを２群に
分け、２種の異なる抗原すなわち５０８Ｆ−βＡＰ(１−１６)免疫複合体および
比較のためのβＡＰ(１−６)のみを鼻腔内に投与した。単回投与後、マウスを屠
殺し脳切片を作製し蛍光試薬にカップルしたストレプトアビジンと反応させた。
蛍光は５０８Ｆ−βＡＰ(１−１６)を投与したマウスの脳切片でのみ検出され、
βＡＰ(１−６)のみを投与したマウスの脳切片では検出されないかもしくは遥か
に少ない程度で検出された(図１７ａ〜ｄ)。組織学的所見で処置マウスを特徴付
けるものはなかった(図１８ａ〜ｄ)。
【０２４１】 したがって、ファージは抗体を脳に運搬する不活性媒体として働き、βＡＰ(
１−１６)を脳内に運搬することが推測された。
【０２４２】 実施例９ ｆ３−ＥＦＲＨファージでマウスを免疫することによる抗凝集性βＡＰ抗体の育
成 βＡＰ中の抗凝集性エピトープ(ＥＦＲＨ，配列番号１)は、βＡＰのアミノ酸
配列の３−６番目に位置する。βＡＰに対する特異的免疫応答を引き起こすため
に、マウスをファージのマイナーコートｇｐＩＩＩに融合させたペプチドＹＹＥ
ＦＲＨ(配列番号７)を保持する遺伝子組換えｆｄファージで図１９に示すスケジ
ュールにより免疫した。各投与当たり１０１０個のファージを用いて１４日間隔
で腹腔内注射により免疫した。各注射の７日後にマウスを放血させ、その血清に
ついてＥＬＩＳＡで野生型ファージ(その表面にペプチドＹＹＥＦＲＨを保持し
ない)およびβＡＰに対するＩｇＧ抗体の活性を試験した(図２０ａ〜ｂ)。この
投与経路では３回目の注射の後にβＡＰに対する非常に高い応答が見られた(１
：７５０)。更に、エピトープを保持するファージの注射は長期間持続し(図２１
)、毒性がなく、またアジュバントなしで投与が可能である。ファージベクター
は１回目の注射から１４日以内に高親和性の免疫応答を育成する免疫学的用具で
あることが見出された。ペプチドＹＹＥＦＲＨ(配列番号７)に対する免疫応答は
丸ごとのファージに対する応答と比較して低く、これはファージの外被上の融合
ｇｐＩＩＩの低コピー数で説明できた。したがって、糖タンパク質ＶＩＩＩを通
してエピトープを表示しているファージの更なる分析を行った。
【０２４３】 実施例１０ 抗凝集性ｍＡｂによるｆ８８−ＥＦＲＨペプチド表示ファージの単離 離解性ＥＦＲＨペプチドエピトープを同定するために、ファージエピトープラ
イブラリーをビオチニル化抗体でスクリーニングした。３サイクルのパンニング
およびファージ増幅の後、９０個の個々に単離した最近コロニーをマイクロタイ
タープレート中で増殖させ、そのファージの抗体結合能をアッセイした。ＥＬＩ
ＳＡ分析により、選択し３回のバイアパンニングサイクルを行ったファージクロ
ーンの殆ど(約８０％)はそれぞれ特異的に抗凝集性ｍＡｂに結合することが明ら
かになった。６個の陽性クローン由来のＤＮＡの配列を決定した(表２)。ＥＦＲ
Ｈ配列(配列番号１)が４個のクローンで出現し、もう１個のクローンはプロリン
からフェニルアラニンへの１置換のみが起こっているＥＰＲＨ配列(配列番号１)
を有していた。も一つのクローンでは挿入ペプチドは３個の残基ＦＲＨの配列(
配列番号１の酸２−４)を有していて、グルタミン酸残基を欠如していた。
【０２４４】
【表２】
【０２４５】 ＥＦＲＨ保持ファージへの抗凝集性ｍＡｂの結合は濃度依存性である；半最大
結合は抗体濃度１００ｎｇ／ｍｌで得られたが、これは、これらの抗体が完全な
ペプチドに結合する場合のレベルと同程度の１０−９Ｍ (図４) に相当する。１
個の特定のｆ８８−ＥＦＲＨファージ(Ｃ−ＩＩと命名、表２)は、他と比べてよ
り高レベルの結合を示した(図２２)。これはＥＦＲＨエピトープがファージの表
面により高レベルで露出していることによるのであろう。ｆ８８−ＥＦＲＨもし
くはｆ３−ＥＦＲＨおよび同一濃度の抗凝集性抗体(１μｇ／ｍｌ)との結合試験
は、ファージ当たりのＥＦＲＨエピトープ数が多いほどファージの免疫応答によ
るより高い血清力価をもたらすことを示した(図２３)。
【０２４６】 実施例１１ マウスをｆ８８ファージで免疫することによる抗凝集性βＡＰ抗体の作成 βＡＰに対して同様の特異的免疫応答を起こすために、メジャーコートｇｐＶ
ＩＩＩに融合させたペプチドＶＨＥＰＨＥＦＲＨＶＡＬＮＰＹ(配列番号８)を保
持する遺伝子組換えｆｄファージでマウスを免疫した。このファージは１５量体
ファージペプチドライブラリーから抗凝集性βＡＰ抗体で選択したもので、βＡ
Ｐ中のｍＡｂエピトープ(下線部分)を提示している。このファージを用いて上述
の方法でマウスを免疫した。１０１０個のファージ粒子(アジュバントなし)の各
投与７日後にマウスを放血し、その血清について野生型ファージおよびβＡＰに
対するＩｇＧ抗体の反応性をＥＬＩＳＡで試験した。結果を図２４ａ〜ｂに要約
する。いずれの動物も野生型ファージに対して測定可能なＩｇＧ抗体応答を示し
、力価は２回目および３回目の注射で増加した。この投与経路はまた、３回目の
注射後βＡＰに対してより高い測定可能な力価の応答(１：５０,０００)を与え
た(図２４ｂ)。
【０２４７】 実施例１２ βアミロイドペプチドへの抗体血清の結合に対する阻害 ファージｆ８８−ＥＦＲＨで免疫したマウスの血清とβＡＰとの相互作用を競
合阻害実験で更にアッセイした。図２５はβＡＰ由来の合成ペプチドによるマウ
ス抗体の阻害を示したもので、各ペプチドは、ＤＡＥＦＲＨ(配列番号３の１−
６番目)、ＤＡＥＦＲＨＤ(配列番号３の１−７番目)、ＤＡＥＦＲＨＤＳＧ(配列
番号３の１−９番目)、およびβＡＰ自身であるＤＡＥＦＲＨＤＳＧＹＥＶＨＨ
ＱＫＬＶＦＦＡＥＤＶＧＳＮＫＧＡＩＩＧＬＭＶＧ ＧＶＶ(配列番号３の１−
４０番目)のようなＥＦＲＨ配列を含む。
【０２４８】 図２５は、ＥＦＲＨモチーフ(配列番号１)を保持する合成ペプチドは全て、β
ＡＰへのマウス血清抗体の結合をＩＣ５０値約５Ｘ１０−６Ｍで同程度に阻害し
たことを示している。これらのデータは、βＡＰ分子中のマウス血清抗体エピト
ープが、βＡ分子の可溶化および離解過程の両方を調節する制御部位として作用
することが見出されている、βＡＰ中の３−６番目の部位に相当する４個のアミ
ノ酸残基よりなることを示している。
【０２４９】 ＥＦＲＨファージに対して作成した血清抗体によるβアミロイドの神経毒性作用
の阻止 ｆ８８−ＥＦＲＨで免疫したマウスの血清が、培養細胞に対するβＡ仲介性神
経毒性阻止において親ＩｇＧ抗体同様に保護効果を示すか否かを調べるために、
ラット褐色細胞腫ＰＣ１２を用いたインビトロ試験を上述の方法で行った(Solom
on B. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 94, 4109-4112, 1997)。抗体存在
下もしくは非存在下でβＡに曝露された細胞の生存率を測定した。図２６に示す
ように、１：５希釈した血清はβＡの神経毒性を阻止した(細胞生存率８０％)が
、無関係な血清は効果を示さなかった。
【０２５０】 実施例１４ ＥＦＲＨで免疫したマウスの血清によるβアミロイド原線維の離解 βＡ原線維(βＡＰの毒性型)の破壊に対するｆ８８−ＥＦＲＨ免疫マウスの抗
体の効果を調べるために、原線維構造に特異的に結合するＴｈＴ試薬 (Levine,
H. III, Protein Sci., 2: 404-410, 1993)を使用した。βＡＰサンプルを３７
℃で１週間インキュベートし、次いで種々の希釈度のマウス血清抗体に曝露した
。原線維形成はＴｈＴの蛍光結合アッセイで定量した。図２７は、マウス血清が
１：５および１：２０希釈で、ＴｈＴの蛍光の７５％(１：５希釈)および５０％
(１：２０希釈)という大幅な減少に示されるように、原線維の形態の著しい変質
を起こしてβＡの構造を破壊したことを示している。コントロールとして使用し
た無関係な血清(非免疫マウスの血清)は免疫血清と比べて原線維形成を有意に阻
害しなかった。この結果は、線維状ファージベクターによって表示されるＥＦＲ
Ｈエピトープが、免疫応答を誘起して抗凝固性抗体を生じる活性を強力に実証す
るものである。
【０２５１】 実施例１５ 本発明の教示はまたプラーク形成によっても特徴づけられるプリオン関連疾患
にも応用することができる。
【０２５２】 ＰｒＰタンパク質が神経細胞変性およびグリア細胞反応に関与する可能性は、
アミロイド形成に役割を果たすＰｒＰ配列の同定を導いた。アミノ酸１０６−１
２６よりなるＰｒＰ断片はラット海馬神経(Forloni et al. 1993)ならびにマウ
ス大脳皮質細胞および小脳細胞(Brownら、1994；1997)に対して毒性を有し、そ
して特に高度に原線維形成誘発性である(Selvaggini et al. 1993)であることが
示された。形成されたフィブリンはプロテアーゼ消化に対して部分的に抵抗性で
あり、またインシトゥのアミロイドの諸性質を示した(Selvaggini et al. 1993
、Tagliavini et al., 1993)。ＰｒＰのこの領域に相当する合成ペプチドは、Ｐ
ｒＰＣからＰｒＰＳｃへのコンホーメーション変化に似たα−へリックスからベ
ータ−シートコンホーメーションへの変化を起こす柔軟性を示す。この領域のコ
ンホーメーション可塑性は、この領域内にタンパク質分解酵素による異なる切断
部位を示す２種の異なるプリオン株の発見により更に強固に実証された(Bessen
and Marsh、1994; Telling et al., 1996)。
【０２５３】 以下に更に述べるように、本発明の発明者は、ＰｒＰタンパク質のアミノ酸１
０６−１２６で形成されるエピトープに特異的なｍＡｂ類を作成した。このよう
な抗体はプラーク形成およびその形態を研究において、ならびにプリオン誘発性
プラーク疾患の治療もしくは予防のために有用である。
【０２５４】 ヒトＰｒｐ１０６−１２６のアミノ酸配列に相当する合成ペプチドで免疫した
マウスを、より大きな担体であるＫＬＨにカップルしたものを用いて免疫したマ
ウスを用いて、このペプチド上のエピトープに対して反応性を有するモノクロー
ナル抗体を生成した。免疫マウスから得られた血清をＥＬＩＳＡに供して、主と
して免疫グロブリンＭ(ＩｇＭ)、およびより少数のＩｇＧ分子よりなるいくつか
の陽性クローンを検出して単離した。
【０２５５】 上述の方法で単離し、ｍＡｂ３−１１(ＩｇＭ)およびｍＡｂ２−４０(ＩｇＧ1
)と命名した２個の免疫グロブリンクローンを更なる研究に利用した。
【０２５６】 実施例１６ ファージ表示ライブラリーによるエピトープ部位の探索 ヒトＰｒｐ１０６−１２６ポリペプチドの種々のペプチド断片を表示するファ
ージ表示ライブラリーを、上の実験方法の項に記載した方法で生成した。ｍＡｂ
３−１１もしくはｍＡｂ２−４０と反応性のクローンはライブラリーの６サイク
ルのバイオパンニング(３６８個のクローンをスクリーニングした)で検出されず
、このことはこれらの抗体で認識されるエピトープがコンホーメーション性のも
のである可能性を示している。
【０２５７】 実施例１７ 抗体のＰｒＰへの結合に対するペプチドＮＭＫＨによる競合阻害 上述の抗ＰｒＰ１０６−１２６抗体をアミノ酸配列ＮＭＫＨ(配列番号２６)で
あるペプチドと等モル比でプレインキュベートした後、Ｐｒｐ１０６−１２６と
反応させて、ＮＭＫＨがヒトＰｒｐ１０６−１２６の抗体結合と競合する活性を
測定した。図２８に示すように、この配列は、Ｍ１０９がＬの代わりにそしてＭ
１１２がＶの代わりに入っている２個のアミノ酸を除いてマウスおよびヒト(お
よび他の動物)の配列の間で高度に保存されている。Ｐｒｐ１０６−１２６に相
当するヒトの配列で免疫したマウス由来の抗体が、ペプチドＰｒｐ１０６−１２
６に相当するマウスの配列と交差反応を示さなかったことから、これら２つの差
が多分マウスおよびヒトの配列の間の抗原性の差に寄与していると思われる。
【０２５８】 ＮＭＫＨおよび完全なペプチドとの間の競合(ＥＬＩＳＡによる分析)は検出さ
れなかったが、このことはこのエピトープが３次元コンホーメーションに依存し
一次構造には依存しないという提案を支持している。加えて、ｍＡｂ３Ｆ４(配
列ＭＫＨＭを認識する)とｍＡｂ３−１１を一緒にヒトＰｒｐ１０６−１２６と
反応させても相加的な応答を生じなかったが、このことはこれらのエピトープが
隣接もしくは一部重なり合っている可能性を示唆している(Solomon and Balas,
1991)。
【０２５９】 実施例１８ ＰｒＰの凝集および免疫複合体形成 Ｐｒｐ１０６−１２６を種々の濃度で３７℃でインキュベートすることにより
、用量依存的に原線維の凝集を生じることがチオフラビンＴ結合蛍光アッセイで
測定された(図３０)。０.３ｍｇ／ｍｌのＰｒｐ１０６−１２６濃度を更なる研
究に選択した。
【０２６０】 実施例１９ ＰＣ１２細胞を用いたＰｒｐ１０６−１２６の毒性アッセイ ＰｒＰＳｃの主たる標的器官は神経組織であるので、インビトロのニューロン
モデルシステムを用いてＰｒＰの毒性を分析した。ニューロンの性質を示すクロ
ーン化細胞株がラット中枢神経の腫瘍から確立されている(Schubert et al., 19
74)。ラット褐色細胞腫ＰＣ１２細胞 − ニューロン様クローン化腫瘍細胞株(
Green and Tischer, 1976) − インビトロでＰｒＰＳｃの複製を起こすことが
できることが示されている(Rubenstein et al., 1984)。そこで、ＰｒＰ原線維
誘導性の毒性を阻止する活性を有する分子の検出にこの細胞株を使用した。
【０２６１】 このモデルシステムの使用によって、Ｐｒｐ１０６−１２６がＰＣ１２細胞に
対し用量依存性の毒性を有し、その毒性がペプチドのコンホーメーション状態お
よび細胞の凝集ペプチドへの曝露時間に関連していることが見出された。細胞を
Ｐｒｐ１０６−１２６と共に５日間インキュベートすると、３日間の曝露に比べ
て細胞の生存率がかなり減少した(ＭＴＴアッセイによる検出)。更に、細胞に添
加する前にＰｒＰ１０６−１２６を３７℃でプレインキュベートすると、多分ア
ミロイド原線維を増加させることにより、その毒性が増加した。ペプチドを７日
間プレインキュベートすると、濃度依存性の、有意に高い毒性をもたらした(図
２９)。ＭＴＴアッセイで測定によれば、記述した条件下で１００μＭの濃度の
Ｐｒｐ１０６−１２６で細胞生存率が１０％に減少した。
【０２６２】 実施例２０ Ｐｒｐ１０６−１２６の神経毒性の阻止 ｍＡｂ３−１１および２−４０の細胞保護効果を図３１に示す。ｍＡｂ３−１
１および２−４０は１００μＭのＰｒＰ１０６−１２６で誘起される細胞死を阻
害した。いずれの抗体とペプチドとの混合物で処理した細胞の生存率は８５−９
０％であり、これに対してペプチドのみで処理した細胞では４０％の生存率であ
った(ペプチドなしの抗体のみでは細胞生存率に影響を及ぼさなかった)。このよ
うな保護はｍＡｂ３Ｆ４では示されなかった(生存率４４％)ことから、抗体の保
護効果はＰｒＰ分子上の特異的なエピトープと明らかに関連していた。 実施例２１
【０２６３】 ＴｈＴアッセイで測定したモノクローナル抗体の抗凝集性 ＰｒＰ１０６−１２６のアミロイド原線維形成をチオフラビン−Ｔ結合アッセ
イによって検出した。ｍＡｂ３−１１および２−４０ともＰｒｐ１０６−１２６
の原線維凝集を阻止し、そしてこのペプチドの凝集型を離解した。Ｐｒｐ１０６
−１２６をｍＡｂ３−１１および２−４０存在下に３７℃でインキュベートする
と、アミロイド原線維形成の有意な減少(約８０％阻止)が観察された。これらの
抗体を既に形成されているＰｒｐ１０６−１２６凝集物に添加したところ、原線
維の５０％超が離解した。これとコントロール的に、ｍＡｂ３Ｆ４はアミロイド
原線維形成阻害においても、そしてそれらの離解の誘導においても低い効率を示
した(図３２)。アミロイド原線維形成阻害および離解の誘導共に、抗体の濃度と
エピトープの部位に依存していた(図３２〜３３)。
【０２６４】 本発明のｍＡｂ３−１１および２−４０およびｍＡｂ３Ｆ４の保護効果は下の
式１に示す方法で計算した。
【数１】
【０２６５】 本発明はその具体的な実施態様との関連において記載したが、多数の代替法、
修飾および変更ができることは当業者には明らかである。したがって本発明は、
添付した請求範囲の精神および幅広い範囲に含まれるそのような全ての代替法、
修飾および変更を包含することを意図している。本明細書で引用した公表論文は
、全体として出典明示により本明細書の一部とする。
【０２６６】 （参考文献） Bessen, R.A. and Marsh, R.F. (1994)、“独特なＰｒＰの性質は伝染性ミンク
脳症における緊張変化の分子的基礎を示唆する”、J. Virol.68, 7859-7868. Blaney, J.M., Jorgensen, E.C., Connolly, M.L., Ferrin, T.E., Langridge,
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おけるコンピューターグラフィックス：甲状腺ホルモン−プレアルブミン相互作
用の分子モデル作製”、J. Med. Chem.25, 785-790 Blond, S. and Goldberg, M (1987)、“在来型エピトープはトリプトファン合成
酵素の折りたたみにおける早期中間体上にすでに部分的に存在する”、Proc. Na
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ないマウス皮質細胞は神経無毒性ＰｒＰ断片を有する培養液中で生存する”、 N
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トプリオンタンパク質のＮＭＲ溶液構造”、Proc Natl Acad Sci USA. 97, 145
−150
【配列表】
【図面の簡単な説明】
【図１】 図１ａはＩgＭ抗体の図式描写である。図１ｂは臭化エチジウム
で染色した１.５％アガロース・ゲルの写真であり、ＩgＭ５０８の軽鎖および重
鎖のｃＤＮＡ断片を示す。レーン１：Ｋｂ（ラダー）；レーン２および３：ＶＨ およびＶＬ断片であり、それぞれ矢印で示す。図１ｃは臭化エチジウムで染色し
た１.５％アガロース・ゲルの写真であり、抗体ＩgＭ５０８由来のｓｃＦｖＤＮ
Ａ断片を示す。レーン１：Ｋｂ（ラダー）；レーン２：ｓｃＦｖ５０８ＤＮＡ（
７５０ｂｐ）。図１ｄはｓｃＦｖを表示する繊維状ファージの図式描写である。
図１ｅは可溶性ｓｃＦｖの図式描写である。
【図２】 図２はｌａｃプロモーターの制御下にｓｃＦｖ−５０８−ＣＢＤ
融合タンパク質（本明細書では５０８（Ｆｖ）−ＣＢＤともいう）の産生に使用
するプラスミドｐＣＣ−５０８Ｆの物理的地図である。Ａmp res：β−ラクタマ
ーゼをコードする遺伝子；ＶＨおよびＶＬ：それぞれｓｃＦｖ−５０８の重鎖お
よび軽鎖の可変ドメインをコードする配列；Ｌin：可変ドメインＶＨおよびＶＬ 間に存在する（Ｇlｙ４Ｓｅｒ)３（配列番号２）リンカーをコードする遺伝子。
制限部位およびその位置も示す。
【図３】 図３はＴ７−プロモーターの制御下にｓｃＦｖ−５０８−ＣＢＤ
融合タンパク質の細胞質発現のために本発明により使用されるプラスミドｐｆＦ
ＥＫＣＡ−５０８の物理的地図である。Ａmp res：β−ラクタマーゼをコードす
る遺伝子；ＶＨおよびＶＬ：それぞれｓｃＦｖ−５０８の重鎖および軽鎖の可変
ドメインをコードする配列；Ｌin：可変ドメインＶＨおよびＶＬ間に存在する（
Ｇlｙ４Ｓｅｒ)３（配列番号２）リンカーをコードする遺伝子。Ｔ７−プロモー
ターおよびＴ７末端：それぞれＴ７プロモーターとＴ７ターミネーター。制限部
位およびその位置も示す。
【図４】 図４はＥＬＩＳＡアッセイにおいて抗体５０８（Ｆｖ）−ＣＢＤ
によるβＡＰ結合の分析を示す。分析した抗体をβＡＰ被覆ウエルに加えた。結
合した抗体はＨＲＰ接合第二抗体により検出した。親５０８ＩgＭ抗体を陽性コ
ントロールとして使用した。陰性コントロールとしては無関係の抗−β−ガラク
トシダーゼ抗体Ｇal６(Ｆｖ)−ＣＢＤを使用した。
【図５】 図５はファージＤＮＡ挿入片のＰＣＲ分析を示す。ｐＣＣ−５０
８(Ｆｖ）から単離したＤＮＡ（レーン２）およびｐＣＣ−Ｇal６(Ｆｖ)から単
離したＤＮＡをＰＣＲ増幅し、１.５％アガロース・ゲル上で分離した。臭化エ
チジウム染色およびＵＶ照射によりバンドを可視化した。レーン１はＤＮＡのサ
イズ・マーカーを含む。矢印は約７５０ｂｐに移動した未処理ｓｃＦｖの位置を
示す。
【図６】 図６は５０８（Ｆｖ）−ＣＢＤの発現と精製を示している。１４
％ＳＤＳポリアクリルアミド・ゲルの各レーンに５〜１０μｇのタンパク質を負
荷した。タンパク質はクマシー・ブリリアント・ブルー染色により可視化した。
矢印はｓｃＦｖ−ＣＢＤ融合タンパク質の位置を示す。レーン１：５０８（Ｆｖ
）−ＣＢＤ発現ベクターを担持する非誘発ＢＬ２１(ＤＥ３）細胞からの全細胞
抽出物。レーン２：ＩＰＴＧにより３時間誘発した５０８（Ｆｖ）−ＣＢＤ発現
ベクター担持非誘発ＢＬ２１(ＤＥ３）細胞からの全細胞抽出物。レーン３：洗
浄し、可溶化し、還元した、再生に用いた封入体。レーン４：セルロース補助再
生に際してセルロースに結合しなかったタンパク質。レーン５：ＴＢＳによりセ
ルロースから洗い出されたタンパク質。レーン６：蒸留水により結晶性セルロー
スから洗い出されたタンパク質。レーン７：高ｐＨ溶出および中和によりセルロ
ースから回収した可溶性５０８（Ｆｖ）−ＣＢＤ。
【図７】 図７は５０８（Ｆｖ）−ＣＢＤの安定性を示す。精製した５０８
（Ｆｖ）−ＣＢＤタンパク質を１日（黒四角）または１週間（黒丸）４℃で保存
し、次いで、図４の説明文に記載したとおりにＥＬＩＳＡアッセイによりβＡＰ
結合について分析した。無関係の抗体Ｇal６(Ｆｖ)−ＣＢＤを陰性コントロール
（白四角）とした。
【図８】 図８はＰＣＲによりアフィニティ濃厚化した５０８(Ｆｖ）変異
体の定量とＤＮＡ制限分析を示す。アフィニティ選択１サイクル前の１９種の５
０８(Ｆｖ）変異体マイクロライブラリー・クローンのＤＮＡ（図８ａ）と選択
１サイクル後に拾い上げた１１種のクローンのＤＮＡ（図８ｂ）を分析した。Ｄ
ＮＡをＰvuＩにより消化し、１.５％アガロース・ゲル上で分離した。非変異ｓ
ｃＦｖ−ＣＢＤは未変化１２５０ｂｐ断片（上方矢印）として現われた。変異し
たクローンは７００ｂｐ（中央矢印）および５５０ｂｐ（下方矢印）両方の出現
により示される。レーン１はＤＮＡサイズ・マーカーを示す。
【図９】 図９はＥＬＩＳＡアッセイにおける変異した５０８（Ｆｖ）誘導
体のβＡＰ結合（図９ａ）および安定性（図９ｂ）の分析を示す。分析した抗体
をβＡＰ被覆ウエルに添加した。１日または１週間４℃で保存した結合抗体を図
７の説明文に記載のとおりに検出した。５０８（Ｆｖ）野生型（白四角）、Ｃ９
６（黒四角）、Ｃ９６Ｙ（黒丸）、Ｃ９６Ｓ（黒三角）。無関係の抗−β−ガラ
クトシダーゼ抗体Ｇal６(Ｆｖ)−ＣＢＤを陰性コントロールとして用いた（白四
角）。
【図１０】 図１０は競合ＥＬＩＳＡアッセイにおける抗体５０８（Ｆｖ）
によりβＡＰ結合の特異的阻害の分析を示す。該抗体を競合するペプチドの様々
な濃度で前温置した：βＡＰ被覆ウエルに添加する前のβＡＰ（配列番号３の酸
１〜１６）（黒四角）または無関係ペプチドＷＶＬＤ（配列番号４）（白四角）
。結合した抗体は図７の説明文に記載のとおりに検出した。
【図１１】 図１１ａおよび１１ｂはｓｃＦｖ５０８Ｆ重鎖のヌクレオチド
（配列番号５）および推定アミノ酸（配列番号６）配列（図１１ａ）、および該
軽鎖のリンカーと可変領域（図１１ｂ）を示す。アミノ酸配列は３文字コードで
表す；ＣＤＲおよびリンカーには下線を付す。
【図１２】 図１２はＰＣ１２細胞に対するβＡＰ介在毒性作用の５０８（
Ｆｖ）による防御作用を示す。細胞は繊維性βＡのみにより、または指示された
抗体／βＡＰの異なるモル比で抗体とインキュベートした繊維性βＡによりイン
キュベートした。臭化３−（４，５−ジメチルチアゾール−２−イル）−２，５
−ジフェニルテトラゾリウム（ＭＴＴ）アッセイ法を細胞生存の評価に使用した
。
【図１３】 図１３は５０８（Ｆｖ）による繊維性βＡの離解を示す。前形
成原繊維の線維状態は指示された抗体／βＡＰの異なるモル比の抗体とインキュ
ベートした後またはインキュベートせずに測定した。原繊維βＡに比例するチオ
フラビン−Ｔ（ＴｈＴ）アッセイにおけるＴｈＴ試薬の蛍光を用い、原繊維の形
態学を評価した。
【図１４】 図１４ａ〜ｄは鼻腔内単回投与１日後の免疫蛍光による脳切片
の繊維状ファージ（ｆ８８−ＥＦＲＨ）の検出を示す。蛍光ウサギ抗ファージ抗
体を用いてのマウス嗅球と海馬切片における線維状ファージの出現（それぞれ図
１４ａおよび１４ｃ）は未処理マウス脳（それぞれ図１４ｂおよび１４ｄ）に比
較した通りである。切片は蛍光顕微鏡により１０倍の最終倍率で観察した。
【図１５】 図１５ａ〜ｄは単回鼻腔内投与２８日後のマウス脳から繊維状
ファージ（ｆ８８−ＥＦＲＨ）の消失したことを示す。マウス嗅球と海馬からの
繊維状ファージの消失は、未処理マウス脳（それぞれ図１５ｂおよび１５ｄ）に
比較するように、蛍光ウサギ抗ファージ抗体を用いて、これらの臓器の切片に証
明される（それぞれ図１４ａおよび１４ｃ）。切片は蛍光顕微鏡により１０倍の
最終倍率で観察した。
【図１６】 図１６ａ〜ｄはファージｆ８８−ＥＦＲＨクリアランス後のマ
ウス脳切片の組織所見を示す。ファージｆ８８−ＥＦＲＨ投与２８日後の嗅球臓
器（図１６ａ）と海馬（図１６ｃ）の脳切片をヘマトキシリンおよびエオシンで
染色し、未処理マウス脳切片（それぞれ図１６ｂおよび１６ｄ）に比較した。染
色した切片を試験し、最終倍率４０倍で写真撮影した。
【図１７】 図１７ａ〜ｄは単回鼻腔内投与後のマウス脳切片におけるビオ
チニル化βＡＰ（配列番号３の酸１〜１６）に結合したファージｐＣＣ−５０８
Ｆのビオチンの蛍光検出を示す。マウス嗅球と海馬切片にｓｃＦｖ５０８Ｆを示
す繊維状ファージに結合したβＡＰ（配列番号３の酸１〜１６）の出現（それぞ
れ図１７ａおよび１７ｃ）は、ＰＥに結合したストレプトアビジンを用い、未処
理マウス脳（それぞれ図１７ｂおよび１７ｄ）に比較した通りである。切片は蛍
光顕微鏡により２０倍の最終倍率で観察した。
【図１８】 図１８ａ〜ｄはビオチニル化βＡＰ（配列番号３の酸１〜１６
）に結合したファージｐＣＣ−５０８Ｆ投与後のマウス脳の組織所見を示す。フ
ァージ投与１日後に嗅球臓器（図１８ａ）と海馬（図１８ｂ）の切片をヘマトキ
シリンおよびエオシンで染色し、未処理マウス脳切片（それぞれ図１８ｃおよび
１８ｄ）に比較した。染色した切片を試験し、最終倍率４０倍で写真撮影した。
【図１９】 図１９はβ−アミロイド・ペプチドのＥＦＲＨ（配列番号１）
エピトープを表す繊維状ファージによる免疫化スケジュールの図式である。
【図２０】 図２０ａおよび２０ｂはファージ糖タンパク質III（ｇｐIII）
の融合物としてβ−アミロイド・ペプチドのＥＦＲＨ（配列番号１）エピトープ
を表すｆ３繊維状ファージによる免疫化を示す。野生型繊維状ファージ・コート
タンパク質（図２０ａ）およびβ−アミロイドのＮ末端エピトープ（配列番号３
の酸１〜１６）に対し、図１９のスケジュールに従ってＥＦＲＨファージにより
免疫したマウスからの異なる出血の血清ＩgＧ力価。
【図２１】 図２１はｆ３繊維状ファージによる長期持続免疫を示す。野生
型繊維状ファージ・コートタンパク質およびβ−アミロイドのＮ末端（配列番号
３の酸１〜１６）に対し、ＥＦＲＨファージにより免疫したマウスからの異なる
出血の血清ＩgＧ力価。
【図２２】 図２２はｆ８８ファージ・ライブラリーから選択されたペプチ
ド提示ファージに、抗凝集βＡＰモノクローナル抗体（ｍＡｂ １０Ｄ５）が結
合するのを示す。アセチルコリン・レセプターに対し作製した無関係ｍＡｂ５.
５を陰性コントロールとして使用した。抗体をファージ被覆ウエルに添加し、結
合の検出にＥＬＩＳＡを用いた。
【図２３】 図２３はＹＹＥＦＲＨ（配列番号７）ファージおよびＶＨＥＰ
ＨＥＦＲＨＶＡＬＮＰＶ（配列番号８）ファージに抗凝集βＡＰ ｍＡｂ（１０
Ｄ５）が結合するのを示す。１μｇ／ｍｌ濃度の抗体をファージ被覆ウエルに添
加し、結合をＥＬＩＳＡＳにより分析した。挿入片のない繊維状ファージをコン
トロールとして用いた。
【図２４】 図２４ａ〜ｂはファージ糖タンパク質ＶIII（ｇｐＶIII）の融
合体としてのβ−アミロイド・ペプチドＥＦＲＨ（配列番号１）エピトープを表
すｆ８８繊維状ファージによる免疫を示す。野生型繊維状ファージ・コートタン
パク質（図２４ａ）およびβ−アミロイド・ペプチドのＮ末端エピトープ（配列
番号３の酸１〜１６）（図２４ｂ）に対し、ＥＦＲＨファージにより免疫したマ
ウスからの異なる出血の血清ＩgＧ力価。
【図２５】 図２５はβ−アミロイド・ペプチドのＮ末端から誘導される合
成ペプチドによる、βＡＰへの結合における免疫マウスの血清阻害を示す。指示
どおりに、ウエル当たり種々濃度の種々ペプチドと反応させたｆ８８−ＥＦＲＨ
により３回免疫した後の血清を１：３０００に希釈してアッセイを実施した。ペ
プチドＷＶＬＤ（配列番号４）を陰性コントロールとして用いた。
【図２６】 図２６はｆ８８−ＥＦＲＨファージに対して作製した血清抗体
によるＰＣ１２細胞へのβＡＰ介在毒性作用の防御を示す。細胞を繊維性βＡの
みにより、または３回目の出血からの血清と種々濃度でインキュベートした繊維
性βＡによりインキュベートした。陰性コントロールは非免疫マウスからの血清
とした。ＭＴＴアッセイを用い、細胞生存を評価した。
【図２７】 図２７はｆ８８−ＥＦＲＨファージに対して作製した血清抗体
による繊維性β−アミロイド形成の干渉を示す。指示どおりに希釈した血清サン
プルの存在下に３７℃１週間インキュベーションした後に形成される繊維性β−
アミロイドの量と相関するＴｈＴ蛍光での評価。陰性コントロールは非免疫マウ
スからの血清とした。陽性コントロールは血清なしとした。原繊維形成はＴｈＴ
アッセイにより測定した。
【図２８】 図２８はヒト・プリオン・タンパク質１０６−１２６（配列番
号２５）およびそのマウス同族体に対応するアミノ酸配列を示す。
【図２９】 図２９はＭＴＴアッセイにより測定したＰｒＰペプチドの神経
毒性作用を示す。ＰＣ１２細胞を、２ｍＭインスリン、２μＭ−Ｌ−グルタミン
および１００単位のペニシリン／ストレプトマイシン追加ＤＭＥＭ培地を容れた
９６ウエルプレートに播種した。細胞生存度はＰｒＰ１０６−１２６との（異な
る濃度での）インキュベーション後にＭＴＴアッセイにより評価した。ＰｒＰ１
０６−１２６は３７℃で４日間前インキュベートし、次いで３日間細胞に加える
か（灰白色棒）、または３７℃で４日間前インキュベートし、次いで５日間細胞
に加えるか（白棒）、または３７℃で７日間前インキュベートし、次いで５日間
細胞に加える（黒棒）。
【図３０】 図３０はＴｈＴ結合アッセイによるＰｒＰペプチドの凝集度合
いを示す。ＰｒＰ１０６−１２６（０〜０.８ｍｇ／ｍｌ）を３７℃で７日間イ
ンキュベートし、４８２ｎｍでの発光を測定して、凝集度合いを定量した。
【図３１】 ＰｒＰペプチドの神経毒性に対するｍＡｂ３−１１、２−４０
の防御作用を示す。ＰＣ１２細胞を、２ｍＭインスリン、２ｍＭ−Ｌ−グルタミ
ンおよび１００単位のペニシリン／ストレプトマイシン追加ＤＭＥＭ培地を容れ
た９６ウエルプレートに播種し、３日間インキュベートした。以下の処理を実施
した：（１）陽性コントロール、未処理細胞；（２）３７℃７日間、前インキュ
ベートした１００μＭ−ＰｒＰ１０６−１２６；（３、４、５）１時間、前イン
キュベートした凝集ペプチドであって、その後にｍＡｂ３−１１（処理３）、２
−４０（処理４）および３Ｆ４（処理５）と共に細胞に露出した。細胞の生存度
はＭＴＴアッセイにより評価した。
【図３２】 図３２はｍＡｂによるＰｒＰコンホメーションの変調を示す。
ＰｒＰ１０６−１２６（０.３ｍｇ／ｍｌ）を３７℃で７日間（１）、およびｍ
Ａｂ２−４０、３−１１および３Ｆ４（それぞれ、処理２、３および４）とイン
キュベートする。抗体はＰｒＰインキュベーションに先立ち（灰白色棒）、また
は１週間のＰｒＰインキュベーションの後に（白棒）、２４時間、サンプルとイ
ンキュベートした。原繊維形成はＴｈＴ結合アッセイにより評価した。
【図３３】 図３３はＰｒＰ繊維状凝集形成に対するｍＡｂ３−１１の濃度
依存性防御作用を示す。ＰｒＰ１０６−１２６（０.３ｍｇ／ｍｌ）を、希釈し
たｍＡｂ３−１１（それぞれ処理１、２、および３に対応して１：１、１：１０
、１：５０）と３７℃で７日間インキュベートした。抗体はＰｒＰインキュベー
ションに先立ち（灰白色棒）、または１週間のＰｒＰインキュベーションの後に
（白棒）、２４時間、サンプルとインキュベートした。アミロイド原繊維形成を
ＴｈＴ結合アッセイにより評価した。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ａ６１Ｐ 19/08 Ａ６１Ｐ 35/00 25/28 43/00 35/00 １０５ 43/00 Ｃ０７Ｋ 16/18 １０５ Ｇ０１Ｎ 33/53 Ｓ Ｃ０７Ｋ 16/18 Ｃ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＣ Ｇ０１Ｎ 33/53 Ａ６１Ｋ 37/02 (31)優先権主張番号 ０９／６２９，９７１ (32)優先日 平成12年７月31日(2000．7．31) (33)優先権主張国 米国（ＵＳ） (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ， ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，Ｋ Ｅ，ＬＳ，ＭＷ，ＭＺ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＴＺ，ＵＧ ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ， ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＧ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ， ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＢＺ，Ｃ Ａ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＲ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＤＭ ，ＤＺ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＤ，ＧＥ，ＧＨ， ＧＭ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ，ＩＳ，ＪＰ，Ｋ Ｅ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＡ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ， ＭＷ，ＭＸ，ＭＺ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，Ｒ Ｕ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ ，ＴＲ，ＴＴ，ＴＺ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ， ＹＵ，ＺＡ，ＺＷ (71)出願人 ＲＡＭＯＴ ＵＮＩＶＥＲＳＩＴＹ ＡＵ ＴＨＯＲＩＴＹ ＦＯＲ ＡＰＰＬＩＥＤ ＲＥＳＥＡＲＣＨ ＆ ＩＮＤＵＳＴＲ ＩＡＬ ＤＥＶＥＬＯＰＭＥＮＴ ＬＴ Ｄ． (72)発明者 ベカ・ソロモン イスラエル46399ヘルズリア、イツハク・ ハナシ・ストリート120番 (72)発明者 ダン・フレンケル イスラエル76227レホボート、ゴロデス キ・ストリート32番 (72)発明者 エイラット・ハナン イスラエル67200テル・アビブ、モシェ・ ダヤン・ストリート111番 Ｆターム(参考） 4B024 AA01 AA11 BA43 BA58 CA04 DA05 EA02 EA03 EA04 GA03 GA11 HA08 HA09 HA15 4C084 AA02 BA44 CA62 DC50 NA20 ZB011 4C085 AA13 CC32 4C087 AA01 AA02 BC83 CA12 NA13 ZA16 ZA96 ZB21 ZB26 ZC52 ZC54 4H045 AA10 AA11 AA20 AA30 BA09 BA54 CA40 DA75 DA76 EA20 EA31 EA50 FA72 FA74

Claims (121)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項１】 プラーク形成疾患を処置するための方法であって、 （ａ）表示媒体上にポリペプチドを表示し、該ポリペプチドは、プラーク形成疾
    患におけるプラーク形成に関連する凝集タンパク質の少なくとも１つのエピトー
    プを提示し、この少なくとも１つのエピトープは、凝集タンパク質を離解し得る
    抗体および／または凝集タンパク質の凝集を防止し得る抗体を創生でき、 （ｂ）表示媒体をレシピエントの体内に導入して、凝集タンパク質を離解し得る
    抗体および／または凝集タンパク質の凝集を防止し得る抗体をつくる、 工程を含む方法。
  2. 【請求項２】 プラーク形成疾患が、早期発症アルツハイマー病、後期発症
    アルツハイマー病、症候的アルツハイマー病、ＳＡＡアミロイド症、遺伝的アイ
    スランド症候群、老化、多発性骨髄腫よりなる群から選ばれる、請求項１の方法
    。
  3. 【請求項３】 プラーク形成疾患が、スクレイピー、ウシ海綿状脳症（ＢＳ
    Ｅ）、クール(kuru)、クロイツフェルト・ヤコブ病（ＣＪＤ）、ゲルストマン・
    シュトロイスラー・シャインカ病（ＧＳＳ）、致死性家族性不眠症（ＦＦＩ）よ
    りなる群から選ばれる、請求項１の方法。
  4. 【請求項４】 該凝集タンパク質が、ベータ−アミロイド、血清アミロイド
    Ａ、シスタンチンＣ、ＩｇＧカッパ軽鎖、プリオンタンパク質よりなる群から選
    ばれる、請求項１の方法。
  5. 【請求項５】 該表示媒体が、ウイルス、細菌、ポリペプチド担体よりなる
    群から選ばれる、請求項１の方法。
  6. 【請求項６】 該ウイルスが、２本鎖ＤＮＡウイルス、１本鎖ＤＮＡウイル
    ス、ポジティブ鎖ＲＮＡウイルス、ネガティブ鎖ＲＮＡウイルスよりなる群から
    選ばれる、請求項５の方法。
  7. 【請求項７】 該ウイルスがバクテリアファージである、請求項５の方法。
  8. 【請求項８】 該バクテリアファージが糸状バクテリアファージである、請
    求項７の方法。
  9. 【請求項９】 該バクテリアファージがレシピエントの細菌相で増殖し得る
    、請求項７の方法。
  10. 【請求項１０】 該バクテリアファージが大腸菌内で増殖し得る、請求項７
    の方法。
  11. 【請求項１１】 該バクテリアファージがｆｄである、請求項７の方法。
  12. 【請求項１２】 該表示媒体がインビボで増殖し得ない粒子である、請求項
    １の方法。
  13. 【請求項１３】 該表示媒体を選択し、１０１０単位の３倍量の３０日間の
    レシピエントへの投与で、少なくとも１：５０,０００の抗体力価がＥＬＩＳＡ
    により測定されるようにする、請求項１の方法。
  14. 【請求項１４】 ポリペプチドを表示する表示媒体を含む、プラーク形成
    疾患を処置するための薬剤であって、該ポリペプチドは、プラーク形成疾患にお
    けるプラーク形成に関連する凝集タンパク質の少なくとも１つのエピトープを提
    示し、この少なくとも１つのエピトープは、凝集タンパク質を離解し得る抗体お
    よび／または凝集タンパク質の凝集を防止し得る抗体を創生できる、薬剤。
  15. 【請求項１５】 プラーク形成疾患が、早期発症アルツハイマー病、後期発
    症アルツハイマー病、症候的アルツハイマー病、ＳＡＡアミロイド症、遺伝的ア
    イスランド症候群、老化、多発性骨髄腫よりなる群から選ばれる、請求項１４の
    薬剤。
  16. 【請求項１６】 プラーク形成疾患が、スクレイピー、ウシ海綿状脳症（Ｂ
    ＳＥ）、クール(kuru)、クロイツフェルト・ヤコブ病（ＣＪＤ）、ゲルストマン
    ・シュトロイスラー・シャインカ病（ＧＳＳ）、致死性家族性不眠症（ＦＦＩ）
    よりなる群から選ばれる、請求項１４の薬剤。
  17. 【請求項１７】 該凝集タンパク質が、ベータ−アミロイド、血清アミロイ
    ドＡ、シスタンチンＣ、ＩｇＧカッパ軽鎖、プリオンタンパク質よりなる群から
    選ばれる、請求項１４の薬剤。
  18. 【請求項１８】 該表示媒体が、ウイルス、細菌、ポリペプチド担体よりな
    る群から選ばれる、請求項１４の薬剤。
  19. 【請求項１９】 該ウイルスが、２本鎖ＤＮＡウイルス、１本鎖ＤＮＡウイ
    ルス、ポジティブ鎖ＲＮＡウイルス、ネガティブ鎖ＲＮＡウイルスよりなる群か
    ら選ばれる、請求項１８の薬剤。
  20. 【請求項２０】 該ウイルスがバクテリアファージである、請求項１８の薬
    剤。
  21. 【請求項２１】 該バクテリアファージが糸状バクテリアファージである、
    請求項２０の薬剤。
  22. 【請求項２２】 該バクテリアファージがレシピエントの細菌相で増殖し得
    る、請求項２０の薬剤。
  23. 【請求項２３】 該バクテリアファージが大腸菌内で増殖し得る、請求項２
    ０の薬剤。
  24. 【請求項２４】 該バクテリアファージがＭ１３である、請求項２０の薬剤
    。
  25. 【請求項２５】 該表示媒体がインビボで増殖し得ない粒子である、請求項
    １４の薬剤。
  26. 【請求項２６】 該表示媒体を選択し、１０１０単位の３倍量の３０日間の
    レシピエントへの投与で、少なくとも１：５０,０００の抗体力価がＥＬＩＳＡ
    により測定されるようにする、請求項１４の薬剤。
  27. 【請求項２７】 ポリペプチドを表示する有効量の表示媒体を含んでなる、
    プラーク形成疾患を処置するための医薬組成物であって、該ポリペプチドは、プ
    ラーク形成疾患におけるプラーク形成に関連する凝集タンパク質の少なくとも１
    つのエピトープを提示し、この少なくとも１つのエピトープは、凝集タンパク質
    を離解し得る抗体および／または凝集タンパク質の凝集を防止し得る抗体を創生
    できる。この医薬組成物は薬学的に許容される担体をさらに含み得る、医薬組成
    物。
  28. 【請求項２８】 プラーク形成疾患が、早期発症アルツハイマー病、後期発
    症アルツハイマー病、症候的アルツハイマー病、ＳＡＡアミロイド症、遺伝的ア
    イスランド症候群、老化、多発性骨髄腫よりなる群から選ばれる、請求項２７の
    医薬組成物。
  29. 【請求項２９】 プラーク形成疾患が、スクレイピー、ウシ海綿状脳症（Ｂ
    ＳＥ）、クール(kuru)、クロイツフェルト・ヤコブ病（ＣＪＤ）、ゲルストマン
    ・シュトロイスラー・シャインカ病（ＧＳＳ）、致死性家族性不眠症（ＦＦＩ）
    よりなる群から選ばれる、請求項２７の医薬組成物。
  30. 【請求項３０】 該凝集タンパク質が、ベータ−アミロイド、血清アミロイ
    ドＡ、シスタンチンＣ、ＩｇＧカッパ軽鎖、プリオンタンパク質よりなる群から
    選ばれる、請求項２７の医薬組成物。
  31. 【請求項３１】 該表示媒体が、ウイルス、細菌、ポリペプチド担体よりな
    る群から選ばれる、請求項２７の医薬組成物。
  32. 【請求項３２】 該ウイルスが、２本鎖ＤＮＡウイルス、１本鎖ＤＮＡウイ
    ルス、ポジティブ鎖ＲＮＡウイルス、ネガティブ鎖ＲＮＡウイルスよりなる群か
    ら選ばれる、請求項３１の医薬組成物。
  33. 【請求項３３】 該ウイルスがバクテリアファージである、請求項３１の医
    薬組成物。
  34. 【請求項３４】 該バクテリアファージが糸状バクテリアファージである、
    請求項３３の医薬組成物。
  35. 【請求項３５】 該バクテリアファージがレシピエントの細菌相で増殖し得
    る、請求項３３の医薬組成物。
  36. 【請求項３６】 該バクテリアファージが大腸菌内で増殖し得る、請求項３
    ３の医薬組成物。
  37. 【請求項３７】 該バクテリアファージがｆｄである、請求項３３の医薬組
    成物。
  38. 【請求項３８】 該表示媒体がインビボで増殖し得ない粒子である、請求項
    ２７の医薬組成物。
  39. 【請求項３９】 該表示媒体を選択し、１０１０単位の３倍量の３０日間の
    レシピエントへの投与で、少なくとも１：５０,０００の抗体力価がＥＬＩＳＡ
    により測定されるようにする、請求項２７の医薬組成物。
  40. 【請求項４０】 プラーク形成疾患を処置するための表示媒体をつくる方法
    であって、表示媒体のゲノムを遺伝子的に改変する工程を含んでなり、プラーク
    形成疾患におけるプラーク形成に関連する凝集タンパク質の少なくとも１つのエ
    ピトープを提示するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を挿入する
    ことにより行い、この少なくとも１つのエピトープは、凝集タンパク質を離解し
    得る抗体および／または凝集タンパク質の凝集を防止し得る抗体を創生できるも
    のであり、表示媒体が増殖したときに、該ポリペプチドを表示媒体が表示する、
    方法。
  41. 【請求項４１】 プラーク形成疾患が、早期発症アルツハイマー病、後期発
    症アルツハイマー病、症候的アルツハイマー病、ＳＡＡアミロイド症、遺伝的ア
    イスランド症候群、老化、多発性骨髄腫よりなる群から選ばれる、請求項４０の
    方法。
  42. 【請求項４２】 プラーク形成疾患が、スクレイピー、ウシ海綿状脳症（Ｂ
    ＳＥ）、クール(kuru)、クロイツフェルト・ヤコブ病（ＣＪＤ）、ゲルストマン
    ・シュトロイスラー・シャインカ病（ＧＳＳ）、致死性家族性不眠症（ＦＦＩ）
    よりなる群から選ばれる、請求項４０の方法。
  43. 【請求項４３】 該凝集タンパク質が、ベータ−アミロイド、血清アミロイ
    ドＡ、シスタンチンＣ、ＩｇＧカッパ軽鎖、プリオンタンパク質よりなる群から
    選ばれる、請求項４０の方法。
  44. 【請求項４４】 該表示媒体が、ウイルス、細菌、ポリペプチド担体よりな
    る群から選ばれる、請求項４０の方法。
  45. 【請求項４５】 該ウイルスが、２本鎖ＤＮＡウイルス、１本鎖ＤＮＡウイ
    ルス、ポジティブ鎖ＲＮＡウイルス、ネガティブ鎖ＲＮＡウイルスよりなる群か
    ら選ばれる、請求項４４の方法。
  46. 【請求項４６】 該ウイルスがバクテリアファージである、請求項４４の方
    法。
  47. 【請求項４７】 該バクテリアファージが糸状バクテリアファージである、
    請求項４６の方法。
  48. 【請求項４８】 該バクテリアファージがレシピエントの細菌相で増殖し得
    る、請求項４６の方法。
  49. 【請求項４９】 該バクテリアファージが大腸菌内で増殖し得る、請求項４
    ６の方法。
  50. 【請求項５０】 該バクテリアファージがｆｄである、請求項４６の方法。
  51. 【請求項５１】 該表示媒体がインビボで増殖し得ない粒子である、請求項
    ４０の方法。
  52. 【請求項５２】 該表示媒体を選択し、１０１０単位の３倍量の３０日間の
    レシピエントへの投与で、少なくとも１：５０,０００の抗体力価がＥＬＩＳＡ
    により測定されるようにする、請求項４０の方法。
  53. 【請求項５３】 プラーク形成疾患を処置するための方法であって、 （ａ）表示媒体上にポリペプチドを表示し、該ポリペプチドは、プラーク形成疾
    患におけるプラーク形成に関連する凝集タンパク質の少なくとも１つのエピトー
    プに結合する抗体の少なくとも１つの免疫学的部分を提示し、該抗体の免疫学的
    部分は、凝集タンパク質を離解し得るか、および／または凝集タンパク質の凝集
    を防止し得、 （ｂ）該表示媒体をレシピエントの体内に導入して、凝集タンパク質を離解する
    か、および／または凝集タンパク質の凝集を防止する、 工程を含んでなる方法。
  54. 【請求項５４】 該表示媒体をレシピエントの体内に導入して、凝集タンパ
    ク質を離解するか、および／または凝集タンパク質の凝集を防止することが、表
    示媒体をレシピエントに経鼻的に投与することによる、請求項５３の方法。
  55. 【請求項５５】 プラーク形成疾患が、早期発症アルツハイマー病、後期発
    症アルツハイマー病、症候的アルツハイマー病、ＳＡＡアミロイド症、遺伝的ア
    イスランド症候群、老化、多発性骨髄腫よりなる群から選ばれる、請求項５３の
    方法。
  56. 【請求項５６】 プラーク形成疾患が、スクレイピー、ウシ海綿状脳症（Ｂ
    ＳＥ）、クール(kuru)、クロイツフェルト・ヤコブ病（ＣＪＤ）、ゲルストマン
    ・シュトロイスラー・シャインカ病（ＧＳＳ）、致死性家族性不眠症（ＦＦＩ）
    よりなる群から選ばれる、請求項５３の方法。
  57. 【請求項５７】 該凝集タンパク質が、ベータ−アミロイド、血清アミロイ
    ドＡ、シスタンチンＣ、ＩｇＧカッパ軽鎖、プリオンタンパク質よりなる群から
    選ばれる、請求項５３の方法。
  58. 【請求項５８】 該プリオンタンパク質の少なくとも１つのエピトープが、
    配列番号２５で規定されたアミノ酸配列の少なくとも部分により定義される、請
    求項５３の方法。
  59. 【請求項５９】 該表示媒体が、ウイルス、細菌、ポリペプチド担体よりな
    る群から選ばれる、請求項５３の方法。
  60. 【請求項６０】 該ウイルスが、２本鎖ＤＮＡウイルス、１本鎖ＤＮＡウイ
    ルス、ポジティブ鎖ＲＮＡウイルス、ネガティブ鎖ＲＮＡウイルスよりなる群か
    ら選ばれる、請求項５９の方法。
  61. 【請求項６１】 該ウイルスがバクテリアファージである、請求項５９の方
    法。
  62. 【請求項６２】 該バクテリアファージが糸状バクテリアファージである、
    請求項６１の方法。
  63. 【請求項６３】 該バクテリアファージがレシピエントの細菌相で増殖し得
    る、請求項６１の方法。
  64. 【請求項６４】 該バクテリアファージが大腸菌内で増殖し得る、請求項６
    １の方法。
  65. 【請求項６５】 該バクテリアファージがｆｄである、請求項６１の方法。
  66. 【請求項６６】 該表示媒体がインビボで増殖し得ない粒子である、請求項
    ５３の方法。
  67. 【請求項６７】 ポリペプチドを表示する表示媒体を含んでなる、プラーク
    形成疾患を処置するための薬剤であって、該ポリペプチドは、プラーク形成疾患
    におけるプラーク形成に関連する凝集タンパク質の少なくとも１つのエピトープ
    に結合し得る抗体の少なくとも１つの免疫学的部分を提示し、該抗体の免疫学的
    部分は、凝集タンパク質を離解し得るか、および／または凝集タンパク質の凝集
    を防止し得る、薬剤。
  68. 【請求項６８】 プラーク形成疾患が、早期発症アルツハイマー病、後期発
    症アルツハイマー病、症候的アルツハイマー病、ＳＡＡアミロイド症、遺伝的ア
    イスランド症候群、老化、多発性骨髄腫よりなる群から選ばれる、請求項６７の
    薬剤。
  69. 【請求項６９】 プラーク形成疾患が、スクレイピー、ウシ海綿状脳症（Ｂ
    ＳＥ）、クール(kuru)、クロイツフェルト・ヤコブ病（ＣＪＤ）、ゲルストマン
    ・シュトロイスラー・シャインカ病（ＧＳＳ）、致死性家族性不眠症（ＦＦＩ）
    よりなる群から選ばれる、請求項６７の薬剤。
  70. 【請求項７０】 該凝集タンパク質が、ベータ−アミロイド、血清アミロイ
    ドＡ、シスタンチンＣ、ＩｇＧカッパ軽鎖、プリオンタンパク質よりなる群から
    選ばれる、請求項６９の薬剤。
  71. 【請求項７１】 該プリオンタンパク質の少なくとも１つの該エピトープが
    、配列番号２５で規定するアミノ酸配列により形成される、請求項６９の薬剤。
  72. 【請求項７２】 該表示媒体が、ウイルス、細菌、ポリペプチド担体よりな
    る群から選ばれる、請求項６９の薬剤。
  73. 【請求項７３】 該ウイルスが、２本鎖ＤＮＡウイルス、１本鎖ＤＮＡウイ
    ルス、ポジティブ鎖ＲＮＡウイルス、ネガティブ鎖ＲＮＡウイルスよりなる群か
    ら選ばれる、請求項７２の薬剤。
  74. 【請求項７４】 該ウイルスがバクテリアファージである、請求項７２の薬
    剤。
  75. 【請求項７５】 該バクテリアファージが糸状バクテリアファージである、
    請求項７４の薬剤。
  76. 【請求項７６】 該バクテリアファージがレシピエントの細菌相で増殖し得
    る、請求項７４の薬剤。
  77. 【請求項７７】 該バクテリアファージが大腸菌内で増殖し得る、請求項７
    ４の薬剤。
  78. 【請求項７８】 該バクテリアファージがｆｄである、請求項７４の薬剤。
  79. 【請求項７９】 該表示媒体がインビボで増殖し得ない粒子である、請求項
    ６７の薬剤。
  80. 【請求項８０】 ポリペプチドを表示する有効量の表示媒体を含んでなる、
    プラーク形成疾患を処置するための医薬組成物であって、該ポリペプチドは、プ
    ラーク形成疾患におけるプラーク形成に関連する凝集タンパク質の少なくとも１
    つのエピトープに結合し得る抗体の少なくとも１つの免疫学的部分を提示し、該
    抗体の免疫学的部分は、凝集タンパク質を離解し得るか、および／または凝集タ
    ンパク質の凝集を防止し、さらに薬学的に許容される担体を含んでなる医薬組成
    物。
  81. 【請求項８１】 プラーク形成疾患が、早期発症アルツハイマー病、後期発
    症アルツハイマー病、症候的アルツハイマー病、ＳＡＡアミロイド症、遺伝的ア
    イスランド症候群、老化、多発性骨髄腫よりなる群から選ばれる、請求項８０の
    医薬組成物。
  82. 【請求項８２】 プラーク形成疾患が、スクレイピー、ウシ海綿状脳症（Ｂ
    ＳＥ）、クール(kuru)、クロイツフェルト・ヤコブ病（ＣＪＤ）、ゲルストマン
    ・シュトロイスラー・シャインカ病（ＧＳＳ）、致死性家族性不眠症（ＦＦＩ）
    よりなる群から選ばれる、請求項８０の医薬組成物。
  83. 【請求項８３】 該凝集タンパク質が、ベータ−アミロイド、血清アミロイ
    ドＡ、シスタンチンＣ、ＩｇＧカッパ軽鎖、プリオンタンパク質よりなる群から
    選ばれる、請求項８０の医薬組成物。
  84. 【請求項８４】 該表示媒体が、ウイルス、細菌、ポリペプチド担体よりな
    る群から選ばれる、請求項８０の医薬組成物。
  85. 【請求項８５】 該ウイルスが、２本鎖ＤＮＡウイルス、１本鎖ＤＮＡウイ
    ルス、ポジティブ鎖ＲＮＡウイルス、ネガティブ鎖ＲＮＡウイルスよりなる群か
    ら選ばれる、請求項８４の医薬組成物。
  86. 【請求項８６】 該ウイルスがバクテリアファージである、請求項８４の医
    薬組成物。
  87. 【請求項８７】 該バクテリアファージが糸状バクテリアファージである、
    請求項８６の医薬組成物。
  88. 【請求項８８】 該バクテリアファージがレシピエントの細菌相で増殖し得
    る、請求項８６の医薬組成物。
  89. 【請求項８９】 該バクテリアファージが大腸菌内で増殖し得る、請求項８
    ６の医薬組成物。
  90. 【請求項９０】 該バクテリアファージがｆｄである、請求項８４の医薬組
    成物。
  91. 【請求項９１】 該表示媒体がインビボで増殖し得ない粒子である、請求項
    ８０の方法。
  92. 【請求項９２】 プラーク形成疾患を処置するための表示媒体をつくる方法
    であって、表示媒体のゲノムを遺伝子的に改変する工程を含んでなり、プラーク
    形成疾患におけるプラーク形成に関連する凝集タンパク質の少なくとも１つのエ
    ピトープに結合し得る抗体の少なくとも１つの免疫学的部分をコードするポリヌ
    クレオチドを挿入することにより行い、該抗体の免疫学的部分は、凝集タンパク
    質を離解し得るか、抗体および／または凝集タンパク質の凝集を防止し得る、方
    法。
  93. 【請求項９３】 プラーク形成疾患が、早期発症アルツハイマー病、後期発
    症アルツハイマー病、症候的アルツハイマー病、ＳＡＡアミロイド症、遺伝的ア
    イスランド症候群、老化、多発性骨髄腫よりなる群から選ばれる、請求項９２の
    方法。
  94. 【請求項９４】 プラーク形成疾患が、スクレイピー、ウシ海綿状脳症（Ｂ
    ＳＥ）、クール(kuru)、クロイツフェルト・ヤコブ病（ＣＪＤ）、ゲルストマン
    ・シュトロイスラー・シャインカ病（ＧＳＳ）、致死性家族性不眠症（ＦＦＩ）
    よりなる群から選ばれる、請求項９２の方法。
  95. 【請求項９５】 該凝集タンパク質が、ベータ−アミロイド、血清アミロイ
    ドＡ、シスタンチンＣ、ＩｇＧカッパ軽鎖、プリオンタンパク質よりなる群から
    選ばれる、請求項９２の方法。
  96. 【請求項９６】 該表示媒体が、ウイルス、細菌、ポリペプチド担体よりな
    る群から選ばれる、請求項９２の方法。
  97. 【請求項９７】 該ウイルスが、２本鎖ＤＮＡウイルス、１本鎖ＤＮＡウイ
    ルス、ポジティブ鎖ＲＮＡウイルス、ネガティブ鎖ＲＮＡウイルスよりなる群か
    ら選ばれる、請求項９６の方法。
  98. 【請求項９８】 該ウイルスがバクテリアファージである、請求項９６の方
    法。
  99. 【請求項９９】 該バクテリアファージが糸状バクテリアファージである、
    請求項９８の方法。
  100. 【請求項１００】 該バクテリアファージがレシピエントの細菌相で増殖し
    得る、請求項９８の方法。
  101. 【請求項１０１】 該バクテリアファージが大腸菌内で増殖し得る、請求項
    ９８の方法。
  102. 【請求項１０２】 該バクテリアファージがｆｄである、請求項９８の方法
    。
  103. 【請求項１０３】 該表示媒体がインビボで増殖し得ない粒子である、請求
    項９２の方法。
  104. 【請求項１０４】 工学処理標的化部分を欠く表示媒体をレシピエントの脳
    に導入する方法であって、該表示媒体をレシピエントに経鼻的に投与する工程を
    含んでなる方法。
  105. 【請求項１０５】 該表示媒体が、ウイルス、細菌、ポリペプチド担体より
    なる群から選ばれる、請求項１０４の方法。
  106. 【請求項１０６】 該ウイルスが、２本鎖ＤＮＡウイルス、１本鎖ＤＮＡウ
    イルス、ポジティブ鎖ＲＮＡウイルス、ネガティブ鎖ＲＮＡウイルスよりなる群
    から選ばれる、請求項１０５の方法。
  107. 【請求項１０７】 該ウイルスがバクテリアファージである、請求項１０５
    の方法。
  108. 【請求項１０８】 該バクテリアファージが糸状バクテリアファージである
    、請求項１０７の方法。
  109. 【請求項１０９】 該バクテリアファージがレシピエントの細菌相で増殖し
    得る、請求項１０７の方法。
  110. 【請求項１１０】 該バクテリアファージが大腸菌内で増殖し得る、請求項
    １０７の方法。
  111. 【請求項１１１】 該バクテリアファージがｆｄである、請求項１０７の方
    法。
  112. 【請求項１１２】 該表示媒体がインビボで増殖し得ない粒子である、請求
    項１０４の方法。
  113. 【請求項１１３】 表示媒体が、抗体の免疫学的部分を少なくとも表示する
    、請求項１０４の方法。
  114. 【請求項１１４】 該抗体の免疫学的部分が、プラーク形成疾患におけるプ
    ラーク形成に関連する凝集タンパク質の少なくとも１つのエピトープに結合する
    のに働き、該抗体の免疫学的部分が、該凝集タンパク質を離解し得るか、および
    ／または該凝集タンパク質の凝集を防止し得る、請求項１０４の方法。
  115. 【請求項１１５】 プリオンタンパク質凝集体を離解し得るか、および／ま
    たは該プリオンタンパク質の凝集を防止し得る抗体の少なくとも１つの免疫学的
    部分を含んでなるポリヌクレオチド。
  116. 【請求項１１６】 ポリヌクレオチドが、配列番号２５で規定するアミノ酸
    配列により形成される少なくとも１つのエピトープに結合し得る、請求項１１５
    のポリペプチド。
  117. 【請求項１１７】 該プリオンタンパク質が、スクレイピー、ウシ海綿状脳
    症（ＢＳＥ）、クール(kuru)、クロイツフェルト・ヤコブ病（ＣＪＤ）、ゲルス
    トマン・シュトロイスラー・シャインカ病（ＧＳＳ）、致死性家族性不眠症（Ｆ
    ＦＩ）よりなる群から選ばれるプラーク形成疾患の形成に関連するスクレイピー
    ・イソ形態（ＰｒＰｓｃ）である、請求項１１６のポリペプチド。
  118. 【請求項１１８】 生物サンプル中のプリオンタンパク質の存在または不存
    在を検出する方法であって、 （ａ）抗プリオン抗体またはその免疫学的部分を生物サンプルとともにインキュ
    ベートし、 （ｂ）抗プリオン抗体またはその免疫学的部分で形成された抗原複合体の存在ま
    たは不存在を測定することにより、生物サンプル中のプリオンタンパク質の存在
    または不存在を決定する、 工程を含んでなる方法。
  119. 【請求項１１９】 プリオンタンパク質がプラーク形成に関連する凝集タン
    パク質である、請求項１１８の方法。
  120. 【請求項１２０】 該抗プリオン抗体または該その免疫学的部分が、配列番
    号２５で規定するアミノ酸配列により形成される少なくとも１つのエピトープに
    対する、請求項１１８の方法。
  121. 【請求項１２１】 生物サンプルが、ヒト、霊長類、サル、ブタ、ウシ、ヒ
    ツジ、シカ、エルフ、ネコ、イヌ、ニワトリから選ばれる哺乳類の組織および／
    または体液に由来する、請求項１１８の方法。
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