JP2008506666A - アルツハイマー病の予防および治療方法 - Google Patents
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Abstract
Description
X2は疎水性アミノ酸または正電荷を有するアミノ酸であって、好ましくはI、L、V、K、W、R、Y、F、またはAであり;
X3は負電荷を有するアミノ酸であって、好ましくはDまたはEであり;
X4は芳香族アミノ酸であって、好ましくはY、F、またはLであり;
X5はH、K、Y、F、またはRであって、好ましくはH、FまたはRであり;
X6はS、T、N、Q、D、E、R、I、K、Y、またはGであって、好ましくはT、N、D、R、I、またはGであり;
特にEIDYHR、ELDYHR、EVDYHR、DIDYHR、DLDYHR、DVDYHR、DIDYRR、DLDYRR、DVDYRR、DKELRI、DWELRI、YREFRI、YAEFRG、EAEFRG、DYEFRG、ELEFRG、DRELRI、DKELKI、DRELKI、GREFRN、EYEFRG、DWEFRDA、SWEFRT、DKELRまたはSFEFRGである。
X2はアミノ酸であってCを除外し、
X3はアミノ酸であってCを除外し、
X4はアミノ酸であってCを除外し、
X5はアミノ酸であってCを除外し、
X6は存在しないかまたは任意のアミノ酸であって、好ましくはCを除外し、
X7は存在しないかまたは任意のアミノ酸であって、好ましくはCを除外し、
また、X1X2X3X4X5X6はDAEFRHではなく、該ペプチドは天然のN末端Aβ42配列DAEFRHに特異的な抗体との結合能力を有し、そしてその5量体は天然のN末端Aβ42配列DAEFRHに特異的な当該抗体との結合能力を有する。)
アルツハイマー病ワクチンの製造用である。
好ましくは、本発明に従って使用される化合物はペプチドを包含しまたはペプチドより構成され、ここで
X1はGまたは水酸基を有する若しくは負電荷を負ったアミノ酸であって、好ましくはE、Y、S、またはDであり;
X2は疎水性のアミノ酸または正電荷を負ったアミノ酸であって、好ましくはI、L、V、K、W、R、Y、F、またはAであり;
X3は負電荷を負ったアミノ酸であって、好ましくはDまたはEであり;
X4は芳香族アミノ酸または疎水性アミノ酸であって、好ましくはY、F、またはLであり;
X5はH、K、Y、F、またはRであって、好ましくはH、F、またはRであり;
X6は任意のアミノ酸であって、P、またはX7が存在する場合はCを除外し、好ましくはS、T、N、Q、D、E、R、I、K、Y、またはGであって、特に好ましくはT、N、D、R、I、またはGである。
具体的には次の配列を含むペプチドが好ましい;DAEFRWP、DNEFRSP、GSEFRDY、GAEFRFT、SAEFRTQ、SAEFRAT、SWEFRNP、SWEFRLY、SWELRQA、SVEFRYH、SYEFRHH、SQEFRTP、SSEFRVS、DWEFRD、DAELRY、DWELRQ、SLEFRF、GPEFRW、GKEFRT、AYEFRH、DKE(NIe)R、DKE(NVa)R若しくはDKE(Cha)R、特にDAEFRWP、DNEFRSP、SAEFRTQ、SAEFRAT、SWEFRNP、SWEFRLY、SWELRQA、SVEFRYH、SYEFRHH、SQEFRTP、SSEFRVS、DWEFRD、DAELRY、DWELRQ、SLEFRF、GPEFRW若しくはGKEFRT。
そのような方法が、本発明に従ってAβミモトープを成功裏に提供できることが証明された。
該ライブラリーは天然に存在するAβ配列(例えば、DAEFRH)を除くように構成しなければならない。このような配列のワクチン化は明らかに本発明より除外される。
本発明に従ってエピトープを単離するためのさらに適切な技術はファージ-ペプチドライブラリーのスクリーニングであり例えばWO03/020750に記載がある。
6量体ペプチドDAEFRH(天然のN端Aβ42配列)をウシ血清アルブミンBSA(ハプテン担体効果を利用)と結合させ、CFA(初回の注射)およびIFA(ブースター注射)中に乳化してマウスをワクチン化する。DAEFRHペプチド特異的、抗体産生ハイブリドーマをELISA(DAEFRHペプチド被膜化ELISAプレート)で検出する。ペプチドSEVKMDAEFRH(天然N端延長配列、APP由来、Aβ42由来配列DAEFRHを含む)を陰性対照ペプチドとして使用する。N端にフリーのアスパラギン酸を有するAβ42由来ペプチドと、フリーのアスパラギン酸を持たないAPP由来ペプチドを区別しないので、延長したペプチドDAEFRHを認識するハイブリドーマは除外する。
Reinke 等、2000の方法を適用し、N端にフリーのアスパラギン酸を有しAβ種に特異的な抗体(好ましくはモノクローナル抗体)に結合するペプチドライブラリーをスクリーニングすることにより、本発明のミモトープを見出した。他の方法は市販品として入手できるMULTIPIN(商標)ペプチド技術である。
MULTIPIN(商標)ペプチド技術は、特別に調製されたポチエチレンのピン上における合成ペプチドを含む。当該ピンはブロック上に装着されフォーマットは多くの生物学的試験で使用される標準的な8x12のミクロチタープレートと互換性がある。ピン結合ペプチド(共有結合によりそのピンに結合したままの非切断ペプチド)および液相ペプチド(ピン表面から切断されたもの)の両ペプチドがこの方法で製造できる。マルチピン合成系に基づくペプセットは、多くのペプチドの合成と同時にスクリーニングすることを可能とする。
ペプセットペプチドは種々の化学修飾されたものが利用可能であり、アセチル化、ビオチン化、ホスホリル化、環状化等されたものを含む。液層(切断)のペプチドは凍結乾燥粉末として市場に出される。
系統的なペプチドのセットから得られる包括的な結果は、興味対象のペプチドを同定するのみならず、決定的な残基、置換可能性、および最適のペプチド長を示す。その結果として、関連するペプチドの範囲はそのような発見の結果として位置づけられる。L-アミノ酸をD-アミノ酸若しくは他の特殊アミノ酸で置換することはペプチドの構造と立体構造を操る強力な手法である。この方法はまた異なる薬理学的活性を有する同族体、例えば、拮抗剤や安定性の増大したペプチドを発見する素早い方法でもある。
本実施例では、実施例1に記載の抗体はペプチドライブラリーのスクリーニングに使用される。しかし、いずれの抗体もDAEFRH配列を特異的に認識するが、Aβ分子の天然N末端延長配列(例えば、MDAEFRH、KMDAEFRH、SEVKMDAEFRHまたは完全なアミロイド(前駆体)タンパク、APP)は認識せず、ジョンソン-ウッド等(Johnson-Wood et al.)、1997に記載のとおりである。
2.1:ライブラリー1
この6量体ライブラリーは以下の配列のペプチドを含む(アミノ酸1位−6位):
1位:D、KおよびCを除くすべての天然aa(17の可能性)
2位:A、KおよびCを除くすべての天然aa(17の可能性)
3位:E、KおよびCを除くすべての天然aa(17の可能性)
4位:F、KおよびCを除くすべての天然aa(17の可能性)
5位:R、KおよびCを除くすべての天然aa(17の可能性)
6位:H、K、CおよびPを除くすべての天然aa(16の可能性)
ライブラリー1はヘキサペプチドの混合物である。理論的には、17の異なるアミノ酸(下記参照)を含むすべての可能なペプチドが包含される。該混合物はリシンおよびシステイン残基は含まない。さらに該混合物は以下のものを含まない;
特異的な1位がアスパラギン酸、
特異的な2位がアラニン、
特異的な3位がグルタミン酸、
特異的な4位がフェニルアラニン、
特異的な5位がアルギニン、かつ
特異的な6位がヒスチジン
合成はすべての所望のアミノ酸(アミノ基および側鎖は保護済)1mmoleを秤量することから始まる。その後、Asn、Gln、Gly、Ile、Leu、Met、Pro、Ser、Thr、Trp、Tyr、およびValの混合物が作製された。それぞれの位置に特異的に、以下のアミノ酸が添加される;
Ala、Glu、Phe、Arg、His(位置/混合物 1)
Asp、Glu、Phe、Arg、His(位置/混合物 2)
Asp、Ala、Phe、Arg、His(位置/混合物 3)
Asp、Ala、Glu、Arg、His(位置/混合物 4)
Asp、Ala、Glu、Phe、His(位置/混合物 5)
Asp、Ala、Glu、Phe、Arg(位置/混合物 6、Proなし)
混合物6を用いて樹脂(2-クロロ-トリチルクロリド樹脂、1.49 mmole/g、Alexis Germany)を装着した。
アミノ酸残基混合物6 1 mmole
樹脂(反応基0.91mmole) 611 mmole
ジクロロメタン 15 ml
ジイソプロピルエチルアミン 5.5当量=5 mmole(871μl)
密度を定量するため、樹脂の一部5.66 mgを20%ピペリジン/DMF 1mlで30分間処理する。混合物を遠心分離し、上澄中の遊離したFmoc基を光度的に定量する(301nm、減衰係数7800 M(e-1))。樹脂の密度は0.49 mmol/gである。
他の混合物(5の異なるカートリッジに入れる)、および装着済み樹脂515 mg(0.25 mmole相当;アミノ酸混合物は4倍量過剰に使用)を用い、以下の工程はすべてシンセサイザーで行った。N端Fmoc保護基は合成後に切断する。エタノールで洗浄し終夜乾燥した後、ペプチドの樹脂からの切断はTFA/H2O(95:5、v:v)により行う。TFA溶液をSpeed Vacで1/5の体積にまで濃縮し沈殿させ、ジエチルエーテルで洗浄して凍結乾燥する。
6量体ペプチドEIDYHR、ELDYHR、およびEVDYHRは上記実施例1で作製したモノクローナル抗体により検出されるミモトープの例である。
この6量体ライブラリーは以下の配列のペプチドを含む(アミノ酸1位−6位):
1位:D(固定)
2位:A、KおよびCを除くすべての天然aa(17の可能性)
3位:E、KおよびCを除くすべての天然aa(17の可能性)
4位:F、KおよびCを除くすべての天然aa(17の可能性)
5位:R、KおよびCを除くすべての天然aa(17の可能性)
6位:H、K、CおよびPを除くすべての天然aa(16の可能性)
ペプチドライブラリー2は上記ライブラリー1について記載した方法(2.1)に従って構築した。
6量体ペプチドDIDYHR、DLDYHR、およびDVDYHRは上記実施例1で作製したモノクローナル抗体により検出されるミモトープの例である。
第三のペプチドライブラリーがミモトープ配列の解明のための追加的な手段として使用される。このライブラリーはオリジナルの配列を含み、原エピトープとより密接に関連したミモトープの検出を可能とする。
この6量体ライブラリーは以下の配列のペプチドを含む(アミノ酸1位−6位):
1位:KおよびCを除くすべての天然aa(18の可能性)
2位:KおよびCを除くすべての天然aa(18の可能性)
3位:KおよびCを除くすべての天然aa(18の可能性)
4位:KおよびCを除くすべての天然aa(18の可能性)
5位:KおよびCを除くすべての天然aa(18の可能性)
6位:K、CおよびPを除くすべての天然aa(17の可能性)
ペプチドライブラリー3は上記ライブラリー1について記載した方法(2.1)に従って構築した。
6量体ペプチドDIDYRR、DLDYRR、およびDVDYRRは上記実施例1で作製したモノクローナル抗体により検出されるミモトープの例である(1位のDおよび5位のRは原エピトープと同じである。)。
このペプチドライブラリー4は5 x 18 = 90ペプチドからなり、Mimotopes Ltd.(フランス国パリ;製造者のガイドライン参照)より市販品として購入でき、天然N末端Aβ42配列DAEFRHに従ってデザインされている。
1位:D(固定)
2位:KおよびCを除くすべての天然アミノ酸(18の可能性)
3位:KおよびCを除くすべての天然アミノ酸(18の可能性)
4位:KおよびCを除くすべての天然アミノ酸(18の可能性)
5位:KおよびCを除くすべての天然アミノ酸(18の可能性)
6位:KおよびCを除くすべての天然アミノ酸(18の可能性)
ライブラリー4の個別のペプチド構成物をFig1に示す。ペプチド番号1、24、48、56、および80はAβ42N末端配列の原配列である。他のすべてのペプチドは、DAEFRH結合抗体に対する結合能について試験する候補ペプチドである。
上記の通り、ペプチドライブラリー1、2および3をアプライドバイオシステムズ431Aペプチドシンセサイザーを用いて古典的Fmoc化学に従い作製する。市販品として入手できるペプチドライブラリー4は製造者の記述に従って作製する(上記並びにホームページwww.mimotopes.com参照)。90ペプチドのC末端はピンに結合している。
以下の標準的なプロトコールに従い、各ペプチドライブラリーについてELISAを実施する:
該ペプチドライブラリーを100%DMSOに溶解する(最終濃度10mg/ml)。
該ペプチド溶液をPBSでさらに希釈する。
ペプチド混合物をELISAプレート(Nunc Maxisorp、Germany)上に終夜(4℃)で被膜化し、500μg/ウェルから出発して滴定により100ng/ウェルとする。
該プレートをPBS/ツイーン20(0.1%v/v)で3回洗浄する。
該プレートをPBS/BSAでブロックする(室温で2時間)。
該プレートをPBS/ツイーンで3回洗浄する。
該プレートにビオチン化DAEFRH特異的mAb(PBS中10μg/ml)を加えて室温で4時間インキュベートする。
該プレートをPBS/ツイーンで3回洗浄する。
該プレートにストレプトアビジン-ホースラディシュ・ペルオキシダーゼを添加してインキュベートする(室温で30分間)。
該プレートをPBS/ツイーンで5回洗浄する。
該プレートをABTS+H2O2(0.1%w/v;10分間から45分間)とともにインキュベートし、クエン酸を添加して反応を停止させ、光学分析的な評価を実施する(波長405nm)。
3.1追加的ライブラリー
上記の4ライブラリー(2.1、2.2、2.3、および2.4参照)に加えて、ミモトープ配列を明らかにするため、第五のライブラリーを使用する。この6量体ライブラリーはEMCミクロコレクションズ(Tubingen Germany)より市販品として入手できるが、114の異なるヘキサペプチド混合物を包含し、混合物について一つの位置がCを除くすべての天然aaのひとつで定義され(19の可能性)、他の5つの位置は変数である。
混合物01-06(ひとつの位置がアラニンAで固定され残りの5つの位置は変数X)
混合物01:AXXXXX
混合物02:XAXXXX
混合物03:XXAXXX
混合物04:XXXAXX
混合物05:XXXXAX
混合物06:XXXXXA
混合物07-12(ひとつの位置がアルギニンRで固定され残りの5つの位置は変数X)
混合物07:RXXXXX
混合物08:XRXXXX
混合物09:XXRXXX
混合物10:XXXRXX
混合物11:XXXXRX
混合物12:XXXXXR
従って、混合物13から114はCを除くすべての天然aaを用いてデザインされる。
Fig.2およびFig.3は、上記の五つのライブラリーに包含され、かつ得られたミモトープペプチドについての阻害試験の結果を示す。該ミモトープペプチドはモノクローナル抗体による認識に際し、原エピトープと競合する。原エピトープおよびミモトープペプチドはタンパク質担体とのカップリングのためにC末端に追加的なC残基を含む(望ましいならば)。
下記のペプチドを使用する;
ペプチド 1737 DAEFRH
ペプチド 3001 DKELRI
ペプチド 3002 DWELRI
ペプチド 3003 YREFFI
ペプチド 3004 YREFRI
ペプチド 3005 YAEFRG
ペプチド 3006 EAEFRG
ペプチド 3007 DYEFRG
ペプチド 3008 ELEFRG
ペプチド 3009 SFEFRG
ペプチド 3010 DISFRG
ペプチド 3011 DIGWRG
ELISAプレート(Nunc Maxisorp)を、原ペプチドエピトープDAEFRH(C末端をCで延長し、ウシ血清アルブミンBSAと結合させた)を用いて濃度0.1μg/ml ペプチド-BSA(100μl/ウェル、12h、4℃)で被膜化する。PBS/BSA 1%(200μl/ウェル、12h、4℃)でブロックした後、プレートをPBS/ツイーンで3回洗浄する。その後、ビオチン化モノクローナル抗体(1:2000、50μl/ウェル)およびペプチド(50μl/ウェル) 50、5、0.5、0.05、0.005、および0.0005μg/mlを37℃、20分間で加える。プレートをPBS/ツイーンで3回洗浄し、ホースラディシュ・ペルオキシダーゼ(HRP)標識ストレプトアビジン(100μl/ウェル、30分間、RT)でインキュベートする。プレートをPBS/ツイーンで5回洗浄し、ABTS+H2O2(0.1%w/v、10分間から45分間)とともにインキュベートする。クエン酸を添加して反応を停止させ、光学分析的な評価を実施する(波長405nm)。
Fig.3に示されまたは予想されるように、ペプチド1737 DAEFRHは追加的に行った独立の試験でモノクローナル抗体による認識においてBSA縮合、プレート結合ペプチドDAEFRHと成功裏に競合することができる。更に、ペプチド3010および3011は試験した濃度では阻害作用を示さず、他方、ペプチド3008および3009はIC50が5μg/mlより小さな、(比較的)弱い阻害剤であることが示された。
阻害試験
Fig.4および5は、5つのライブラリー(記載のとおり)に含まれ、これらより得られたミモトープペプチドについての阻害試験結果を記載する。該ミモトープペプチドはモノクローナル抗体による認識について原エピトープと競合する。原エピトープおよびミモトープペプチドはC末端(7位)にタンパク質担体と結合(望むならば)するための追加的C残基を含む。
以下のペプチドが使用される:
ペプチド 1737 DAEFRH (原エピトープ+C)
ペプチド 1234 KKELRI
ペプチド 1235 DRELRI
ペプチド 1236 DKELKI
ペプチド 1237 DRELKI
ペプチド 1238 DKELR
ペプチド 1239 EYEFRG
ペプチド 1241 DWEFRDA
ペプチド 4002 SWEFRT
ペプチド 4003 GREFRN
ペプチド 4004 WHWSWR
ELISAプレート(Nunc Maxisorp)を原ペプチドエピトープDAEFRH(C末端をC残基で延長し、ウシ血清アルブミンBSAと結合させた)を用いて0.1μg/mlペプチド-BSAの濃度で被膜化する(100μl/ウェル、12H、4℃)。PBS/BSA 1%(200μl/ウェル、12h、4℃)でブロックした後、プレートをPBS/ツィーンで3回洗浄する。その後、ビオチン化モノクローナル抗体(1:2000、50μl/ウェル)と、異なる濃度のペプチド(50μl/ウェル)を20分間37℃で添加する。プレートをPBS/ツィーンで3回洗浄し、ホースラディシュ・ペルオキシダーゼ(HRP)標識ストレプトアビジン(100μl/ウェル、30分間、RT)でインキュベートする。プレートをPBS/ツイーンで5回洗浄し、ABTS+H2O2(0.1%w/v、10分間から45分間)とともにインキュベートする。クエン酸を添加して反応を停止させ、光学分析的な評価を実施する(波長405nm)。
Fig.5に示されまたは予測されるように、モノクローナル抗体の認識に関する、追加的になされた独立の実験において、ペプチド1737DAEFRHはBSA-結合、プレート結合ペプチドDAEFRHと成功裏に競合する。更に、ペプチド1234は試験濃度では殆ど阻害しないが、ペプチド1235、1236、1237、1238、1239、および1241はエピトープ認識をブロックする(異なる程度で)ことが示される。ペプチド1235、1238、および1241はIC50が0.5μg/mlより小さい強力な阻害剤であるが、ペプチド1236および1237は(比較的)弱い阻害剤でIC50が5μg/mlより大きい。ペプチド1239は中間的な阻害剤でIC50が0.5μg/mlより大きい。
ライブラリー
ミモトープはアミノ酸5から15の好ましい長さを有する。ミモトープ配列を定義するため二つの異なるライブラリーをELISA試験で使用する。
ライブラリー1:
この6量体ライブラリーは以下の配列のペプチドを含む(アミノ酸1位−6位):
1位:Cを除くすべての天然aa(19の可能性)
2位:Cを除くすべての天然aa(19の可能性)
3位:Cを除くすべての天然aa(19の可能性)
4位:Cを除くすべての天然aa(19の可能性)
5位:Cを除くすべての天然aa(19の可能性)
6位:Cを除くすべての天然aa(19の可能性)
ライブラリー2:
この6量体ライブラリーは以下の配列のペプチドを含む(アミノ酸1位−7位):
1位:Cを除くすべての天然aa(19の可能性)
2位:Cを除くすべての天然aa(19の可能性)
3位:Cを除くすべての天然aa(19の可能性)
4位:Cを除くすべての天然aa(19の可能性)
5位:Cを除くすべての天然aa(19の可能性)
6位:Cを除くすべての天然aa(19の可能性)
Fig.6から8は、2つのライブラリー(上記のとおり)に含まれ、これらより得られたミモトープペプチドについての阻害試験結果を記載する。該ミモトープペプチドはモノクローナル抗体による認識について原エピトープと競合する。原エピトープおよびミモトープペプチドはC末端(それぞれ7位と8位)にタンパク質担体と結合(望むならば)するための追加的C残基を含む。
以下のペプチドが使用される:
ペプチド1737 DAEFRH 原エピトープ
ペプチド4011 DAEFRWP 7量体 S
ペプチド4012 DNEFRSP 7量体 S
ペプチド4013 GSEFRDY 7量体 m
ペプチド4014 GAEFRFT 7量体 m
ペプチド4015 SAEFRTQ 7量体 S
ペプチド4016 SAEFRAT 7量体 S
ペプチド4017 SWEFRNP 7量体 S
ペプチド4018 SWEFRLY 7量体 S
ペプチド4019 SWFRNP 6量体 −
ペプチド4020 SWELRQA 7量体 S
ペプチド4021 SVEFRYH 7量体 S
ペプチド4022 SYEFRHH 7量体 S
ペプチド4023 SQEFRTP 7量体 S
ペプチド4024 SSEFRVS 7量体 S
ペプチド4025 DWEFRD 6量体 S
ペプチド4031 DAELRY 6量体 S
ペプチド4032 DWELRQ 6量体 S
ペプチド4033 SLEFRF 6量体 S
ペプチド4034 GPEFRW 6量体 S
ペプチド4035 GKEFRT 6量体 S
ペプチド4036 AYEFRH 6量体 m
ペプチド4037 VPTSALA 7量体 −
ペプチド4038 ATYAYWN 7量体 −
ペプチド4061 DKE(tBuGly)R 5量体 −
ペプチド4062 DKE(NIe)R 5量体 m
ペプチド4063 DKE(Nva)R 5量体 m
ペプチド4064 DKE(Cha)R 5量体 m
(S:強く阻害、m:中程度に阻害、−:阻害作用なし)
ELISAプレート(Nunc Maxisorp)を原ペプチドエピトープDAEFRH(C末端をC残基で延長し、ウシ血清アルブミンBSAと結合させた)を用いて0.1μg/mlペプチド-BSAの濃度で被膜化する(100μl/ウェル、12h、4℃)。PBS/BSA 1%(200μl/ウェル、12h、4℃)でブロックした後、プレートをPBS/ツィーンで3回洗浄する。その後、ビオチン化モノクローナル抗体(1:2000、50μl/ウェル)と、異なる濃度のペプチド(50μl/ウェル)を20分間37℃で添加する。プレートをPBS/ツィーンで3回洗浄し、ホースラディシュ・ペルオキシダーゼ(HRP)標識ストレプトアビジン(100μl/ウェル、30分間、RT)でインキュベートする。プレートをPBS/ツイーンで5回洗浄し、ABTS+H2O2(0.1%w/v、10分間から45分間)とともにインキュベートする。クエン酸を添加して反応を停止させ、光学分析的な評価を実施する(波長405nm)。
前に5量体ペプチド1238 DKELRがミモトープに基づくアルツハイマー病ワクチンのエピトープとして使用できることを示した(PCT/EP04/00162参照)。下記では、原5量体エピトープのアミノ酸を非天然アミノ酸で置き換える:Lを非天然アミノ酸、tBuGly、NIe、NvaまたはChaで置き換える。
Fig.9(ペプチド4061-4064)に示されまたは予測されるように、第4の独立した試験においてペプチド1737DAEFRHはBSA-結合、プレート結合ペプチドDAEFRHと競合し、モノクローナル抗体による認識を成功裏に阻害することができる。さらに、ペプチド4061 DKE(tBuGly)Rは試験濃度では阻害しないことが示された。興味深いことにペプチド4062 DKE(Nle)R、4063 DKE(Nva)R、および4064 DKE(Cha)Rはエピトープ認識を(異なる程度で)ブロックする。ペプチド4062、4063および4064は比較的弱い阻害剤でIC50は0.5μg/mlより大きい。
本発明は以下の実施例および図面によりさらに説明されるが、当然これらに限定されるものではない。
Claims (9)
- 該化合物が同ペプチドを含み、または同ペプチドより構成され、ここでX1はG、ヒドロキシル基を有するアミノ酸または負に荷電したアミノ酸であって、好ましくはG、E、Y、S若しくはDであり;X2は疎水性アミノ酸または正に荷電したアミノ酸であって、好ましくはN、I、L、V、K、W、R、Y、F若しくはAであり;X3は負に荷電したアミノ酸であって、好ましくはD若しくはEであり;X4は芳香族アミノ酸または疎水性アミノ酸であって、好ましくはY、F若しくはLであり;X5はH、K、Y、FまたはRであって、好ましくはH、F若しくはRであり;X6は任意のアミノ酸であって、Pを除くかまたはX7が存在する場合はCを除き、好ましくはS、T、N、Q、D、E、R、I、K、YまたはGであって、特にT、N、D、R、I若しくはGであり;とりわけDAEFRWP、DNEFRSP、GSEFRDY、GAEFRFT、SAEFRTQ、SAEFRAT、SWEFRNP、SWEFRLY、SWELRQA、SVEFRYH、SYEFRHH、SQEFRTP、SSEFRVS、DWEFRD、DAELRY、DWELRQ、SLEFRF、GPEFRW、GKEFRT、AYEFRH、DKE(NIe)R、DKE(Nva)RまたはDKE(Cha)Rである、請求項1の使用。
- 該化合物が5から15アミノ酸残基を含んでなるポリペプチドであることを特徴とする請求項1または2の使用。
- 該化合物が薬学的に許容される担体、好ましくはKLH、および任意で水酸化アルミニウムと結合していることを特徴とする、請求項1−3のいずれかの使用。
- 該化合物を0.1ngから10mg、好ましくは10ngから1mg、特に100ngから100μgを含むことを特徴とする、請求項1−4のいずれかの使用。
- 該ペプチドが当該ライブラリー中において個別の形態で、特に固体表面上に固定化されて提供されることを特徴とする、請求項6の方法。
- 当該抗体がライブラリーのペプチドと結合したときその単離または検出をさせるための適切な標識を含むことを特徴とする、請求項6または7の方法。
- DAEFRWP、DNEFRSP、GSEFRDY、GAEFRFT、SAEFRTQ、SAEFRAT、SWEFRNP、SWEFRLY、SWELRQA、SVEFRYH、SYEFRHH、SQEFRTP、SSEFRVS、DWEFRD、DAELRY、DWELRQ、SLEFRF、GPEFRW、GKEFRT、AYEFRH、DKE(NIe)R、DKE(Nva)RおよびDKE(Cha)Rから選択される少なくとも一つのペプチドを含む抗原を含んでなる、アルツハイマー病に対するワクチン。
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