JP2001514005A

JP2001514005A - 卵中でのタンパク質の産生

Info

Publication number: JP2001514005A
Application number: JP2000507813A
Authority: JP
Inventors: ロバート・ジェイ・エッチーズ; マンスーア・モハメド; シェリー・モリソン; レティシア・アリス・ウィムズ; カム・エム・トリン; アラン・ジー・ワイルドマン
Original assignee: University of Guelph; University of California
Current assignee: University of Guelph; University of California
Priority date: 1997-08-22
Filing date: 1998-08-21
Publication date: 2001-09-11
Anticipated expiration: 2018-08-21
Also published as: HK1028623A1; IL134618A; JP4731683B2; ATE356878T1; WO1999010505A3; AU8848598A; WO1999010505A2; DE69837337D1; JP2011050393A; KR20010023179A; CA2311116A1; BR9811981A; IL134618A0; NZ503098A; EP1007697A2; AU750028B2; EP1007697B1; DE69837337T2

Abstract

(57)【要約】抗体などの組換えタンパク質を卵中で製造する方法を記載する。本方法は、組換えタンパク質の製造のための既存のシステムに対して高収率、低コストおよび動物保護規制との適合性を含む利点を提供する。さらに、卵は可食性の食物源であるので、組換えタンパク質は卵から単離する必要がない。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】（技術分野）本発明は、卵中での組換えタンパク質の製造方法；組換えタンパク質の卵中へ
の送達のための発現系；該組換えタンパク質を含有する卵および該組換えタンパ
ク質を産生するトランスジェニック非ヒト産卵性動物に関する。

【０００２】（背景技術）バイオテクノロジーは、疾患の診断や治療などの多くの重要な医学的適用性を
有するタンパク質の改良された産生を可能にしている。残念ながら、組換えタン
パク質の産生のためのこれまでの方法の多くは、タンパク質の大スケールでの産
生および精製のための高コストのために利用できないものである。

【０００３】抗体分子は、バイオテクノロジーを利用して製造されているタンパク質のタイ
プの一つである。抗体（または免疫グロブリン）は、種々の疾患および病原体の
治療および診断の両方で有用な極めて特異的な手段である。簡単に説明すると、
完全な抗体または免疫グロブリン分子は２本の重（Ｈ）鎖および２本の軽（Ｌ）
鎖からなり、それぞれカルボキシ末端側に定常領域およびアミノ末端側に可変領
域を有している。幾つかの定常領域アイソタイプ、すなわち、軽鎖に対して２つ
（カッパおよびラムダ）および重鎖に対して５つ（アルファ、ガンマ、デルタ、
イプシロンおよびミュー）のアイソタイプがヒト免疫グロブリンにおいて同定さ
れている。名前が示しているように、可変領域の配列は各免疫グロブリン分子で
変化する。可変領域は抗原結合部位を有し、それゆえ免疫グロブリン分子の抗原
特異性を決定する。

【０００４】ヒトに免疫を施すときは、免疫用の抗体に対する免疫応答を避けるためにヒト
抗体を用いるのが望ましい。しかしながら、実際的かつ倫理的な考慮から、ヒト
源から大量のヒト抗体を産生することは可能ではなかった。血清や母乳からのヒ
トＩｇが有効であることが示されているが、ヒト製品のコストが高いことと供給
が限られていることから広く応用することが阻まれている。非ヒト抗体調製物に
対する免疫応答を低下させるため、キメラ抗体やヒト化抗体が調製されている。
キメラ抗体は、抗体の定常領域がヒト抗体に由来し、可変領域が免疫した一般的
には非ヒトの宿主に由来するように遺伝子組換えにより製造される。可変領域は
、通常、所望の抗原で免疫した齧歯類から単離した抗体に由来する。

【０００５】抗体が有用な一つの領域は、腸内感染の治療である。下痢、赤痢または腸熱と
いう結果となる腸内感染は大きな公衆衛生問題となっており、開発途上国では１
０億以上の疾患の発現および数百万に及ぶ年間死者数となっている。ロタウイル
スは、開発国および開発途上国の両方で幼児や年少の子供での感染性胃腸炎の一
つの主要な原因である。腸管毒産生性の（enterotoxigenic）大腸菌（ＥＴＥＣ）は他の主要な病因であり、毎年６億以上の下痢のケースを引き起こしている。
ＥＴＥＣ疾患は、汚染された食物や水を摂取することにより開始される。細菌は
上部小腸に移動およびコロニー形成し、熱安定性および／または熱不安定性のエ
ンテロトキシンを産生する。両タイプの病原体は、粘膜表面を標的とした抗体処
置に対して感受性であるに違いない。

【０００６】（発明の要約）本発明は、卵中でのタンパク質の製造方法に関する。広く言及すれば、本発明
は卵中での組換えタンパク質の製造方法であって、該タンパク質の発現および卵
中への該タンパク質の送達に適した条件下で該タンパク質を産卵性哺乳動物で発
現させることを含む方法を提供する。

【０００７】組換えタンパク質は、該組換えタンパク質をコードするＤＮＡ配列および該組
換えタンパク質を発現するのに必要な制御領域のＤＮＡ配列を含む発現系を用い
て動物で発現させ、卵中に送達できる。組換えタンパク質が通常、卵中には蓄積
しない場合には、発現系はまた該タンパク質を産卵性動物の卵へ標的または送達
することのできる第二のＤＮＡ配列を含むであろう。

【０００８】この第二のＤＮＡは、組換えタンパク質の発現を卵へ標的しうる卵特異的な遺
伝子に由来する制御領域をコードしていてよい。または、この第二のＤＮＡ配列
は、卵上の受容体と結合しうるタンパク質またはペプチドをコードしていてよく
、その結果、組換えタンパク質の卵中への取り込みとなるものであってよい。本発明者らは、免疫グロブリンタンパク質が産卵性哺乳動物で発現され、卵中
へ移動しうることを示した。とりわけ、本発明者らは、ヒト免疫グロブリンタン
パク質からの定常領域がトリ卵母細胞に結合することができ、卵黄内に取り込ま
れ得ることを見出した。

【０００９】一つの態様において、本発明は家禽類の卵中での組換え抗体分子の製造に関す
る。好ましい態様において、本発明は鶏卵でのヒト化抗体の製造に関する。本明細書において使用する「ヒト化抗体」なる語は、ヒト定常領域を含む免疫
グロブリンまたは抗体分子を意味する。ヒト化抗体はキメラ抗体であってよく、
ニワトリやマウスなどの非ヒト種からの可変領域を含んでいてよい。この抗体は
また非キメラであってよく、ヒト可変領域を含んでいてよい。「抗体」および「
免疫グロブリン」なる語は、本明細書において相互に同じ意味で用いられる。

【００１０】従って、本発明は、（i）免疫グロブリンの定常領域をコードする第一のＤＮＡ配列、（ii）免疫グロブリンの可変領域をコードする第二のＤＮＡ配列および
（iii）抗体を発現させるのに充分な制御領域を含む、組換え抗体を卵中へ送達するための発現系を提供する。好ましくは、定常領域はヒト免疫グロブリンから
のものである。

【００１１】免疫グロブリンタンパク質を卵により結合および取り込ませることができると
いう本発明者らによる知見は、所定の組換えタンパク質（ｂ）に結合した、卵へ
の結合および卵中への取り込みを可能とする免疫グロブリンタンパク質の充分な
部分（ａ）を含む融合タンパク質を調製することにより、組換えタンパク質を卵
中に送達することを可能にする。従って、本発明は、卵に結合し、その結果組換
えタンパク質の取り込みとなるのに充分な免疫グロブリン分子の部分をコードす
る第二のＤＮＡ配列（ｂ）に作動可能に連結した、組換えタンパク質をコードす
る第一のＤＮＡ配列（ａ）を含む、組換えタンパク質を卵中に送達するための発
現系を提供する。特別の態様において、第二のＤＮＡ配列は免疫グロブリン定常
領域をコードする遺伝子からのものである。

【００１２】上記発現系は、種々の技術を用いて産卵性動物中に導入することができる。一
つの態様において、発現系を直接、産卵性動物中に導入し、そこで組換えタンパ
ク質を発現させ、卵中へ送達させる。他の態様では、発現系を培養中の宿主細胞へトランスフェクションする。この
宿主細胞を産卵性動物に注射することができ、そこで組換えタンパク質は分泌さ
れるであろう。宿主細胞は産卵性動物と同じ種のものであるのが好ましい。特別
の態様において、宿主細胞はトリ細胞株である。組換えタンパク質が抗体である
場合は、トリ細胞株はリンパ細胞株であるのが好ましく、さらに好ましくはＤＴ
４０やｖ−ｒｅｌ形質転換Ｂ細胞株などの不死化Ｂ細胞株である。

【００１３】他の態様において、組換えタンパク質を必要ならタンパク質を卵中へ送達させ
るタンパク質またはペプチドとの融合タンパク質として発現するトランスジェニ
ック産卵性動物を調製することにより、発現ベクターを卵中へ送達させることが
できる。好ましくは動物は家禽類であり、組換えタンパク質はヒト化抗体などの
抗体である。

【００１４】本発明は、組換えタンパク質を含有する卵調製物、並びに、たとえば種々の疾
患の診断、予防および治療などにおける、該卵調製物のすべての使用を包含する
。卵調製物は直接用いることができ、または組換えタンパク質をさらに卵から単
離および精製することができる。

【００１５】一つの態様において、抗体は腸内感染の予防および治療において有用である。
本発明はまた、動物の卵中に病原体に特異的な組換え抗体を調製することによ
り、病原体を含まない卵を調製するのに用いることができる。従って、本発明は
、特定の病原体を含まない卵の製造方法であって、（ａ）該病原体に特異的な抗体を産卵性動物中に導入し、ついで（ｂ）該動物に産卵させ、その際、該卵は実質的に該病原体を含まないことを含む方法を提供する。

【００１６】本発明の他の特性および利点は、下記の詳細な説明から明らかとなるであろう
。しかしながら、詳細な説明および特定の実施例は本発明の好ましい態様を示す
ものではあるが、この詳細な説明から当業者には種々の変更および修飾が本発明
の範囲内で明らかであろうから、説明のためにのみ提供されたものであることが
理解されるべきである。

【００１７】広く言及すれば、本発明は、組換えタンパク質の発現および卵中への送達に適
した条件下で該タンパク質を産卵性哺乳動物中で発現させることを含む、組換え
タンパク質を卵中で製造する方法を提供する。タンパク質はいかなるタンパク質であってもよいが、抗体、サイトカイン、ホ
ルモン、酵素、ワクチンおよび診断応用のための抗原、および治療用ペプチドを
含む。

【００１８】卵は、鳥類、両生類、爬虫類および魚類を含むあらゆる産卵性動物からのもの
であってよい。好ましくは、卵はニワトリ、七面鳥またはアヒルなどの家禽類か
らのものである。組換えタンパク質源として卵を使用することは、昨今の動物保
護規制との適合性、安価さ、便利さ、無菌性、卵黄の分画および抗体などのタン
パク質の精製の技術を利用できることを含む、相当の利点を提供する。１個の卵
からは約１００ｍｇの抗体を産生することができ、１年に２５０個の卵を生む１
羽のメンドリからは２５ｇのＩｇを産生することができ、１０,０００羽のメンドリからなる小集団からは毎年２５ｋｇの免疫グロブリンを産生することができ
る。卵は室温で数週間貯蔵できる。

【００１９】１．発現系（ａ）免疫グロブリン上記で言及したように、本発明者らは免疫グロブリンを産卵性動物中で発現さ
せ、卵中に移動させうることを示した。とりわけ、本発明者らは、ニワトリに直接注射したときか（実施例１）または
組換えＩｇＧまたはＩｇＡを発現する細胞株をニワトリに注射したとき（実施例
２および３）のいずれかのときに、ヒト免疫グロブリン（Ｉｇ）ＧおよびＩｇＡ
を鶏卵中に移動させうることを示した。さらに、本発明者らは、家禽類の卵中へ
のＩｇの結合および取り込みに関与する免疫グロブリンの部分が、免疫グロブリ
ンタンパク質のＦｃドメイン中のＣＨ２−ＣＨ３領域に存在することを決定した
。本発明者らはさらに、家禽類の卵上のＦｃ受容体は、マウスでの母胎関門（ma
ternofetal barrier）を通過するＩｇＧの輸送、母ＩｇＧのトランスサイトーシ
スおよび血清Ｉｇレベルの制御において何らかの役割を果たしている哺乳動物Ｆ
ｃ受容体ネオネート（Fc Receptor neonate）のホモログであると思われることを決定した（実施例４）。

【００２０】従って、本発明は、（i）免疫グロブリンの可変領域をコードする第一のＤＮＡ配列、（ii）免疫グロブリンの定常領域をコードする第二のＤＮＡ配列および
（iii）抗体を発現させるのに充分な制御領域を含む、組換え抗体を卵中へ送達するための発現系を提供する。

【００２１】好ましい態様において、本発明は鶏卵中でのヒト化抗体の製造に関する。本明
細書中での定義において、ヒト化抗体は少なくともヒト定常領域を含む。定常領
域は、カッパおよびラムダ軽鎖およびアルファ、ガンマ、デルタ、イプシロンお
よびミュー重鎖遺伝子を含むいかなる公知の定常領域からも選択することができ
る。可変領域は、ヒトのものであるか、または家禽類、ヒツジ、マウスまたはウ
シなどの非ヒトのものであってよい。可変領域と定常領域とが異なる種に由来す
るものであるならば、その抗体は「キメラ抗体」と呼ばれる。キメラ抗体は、Mo
rrisonら、Proc. Natl. Acad. Sci. 81: 6851-6859, 1984（参照のため本明細書
中に引用する）に記載されているような当該技術分野で知られた技術を用いて調
製できる。

【００２２】可変領域は、所望の抗原に対する特異性を有していてよい。所望の抗原は、細
菌、ウイルス、毒素、アレルゲン、並びに腫瘍結合抗原を含む疾患特異的抗原か
ら選択されてよい。所望の抗原特異性を有する可変領域をコードする可変領域遺
伝子は、所望の抗原特異性を有するモノクローナル抗体を産生するハイブリドー
マから得ることができる。所望の特異性を有する抗体を産生するハイブリドーマ
もまた、当該技術分野で知られた技術を用いて調製できる。簡単に説明すると、
動物（ニワトリ、マウスまたはウサギなど）を所望の抗原で免疫し、該抗体を産
生するリンパ球を得る。このリンパ球をミエローマ細胞などの不死化細胞と融合
させてハイブリドーマを調製することにより不死化する。所望の抗体を産生する
ハイブリドーマは、当該技術分野で知られた技術（たとえば、KohlerおよびMils
tein, Nature 256: 495-497, 1975を参照）を用いて選択することができる。ついで、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）などの知られた技術を用いてハイブリド
ーマから所望の可変領域遺伝子を単離することができる。

【００２３】２つの異なる抗原特異性を有する２つの異なる可変領域を含む２官能性抗体も
また調製できる。ヒト定常領域をコードするＤＮＡ配列は、利用できる入手源から得るか、また
はヒト定常領域を有する抗体を産生するハイブリドーマ細胞株から上記技術を用
いて単離することができる。

【００２４】ヒト定常領域をコードするＤＮＡ配列および所望の可変領域をコードするＤＮ
Ａ配列を含む組換え発現ベクターを調製することができる。これらベクターは、
さらに、プロモーター、エンハンサーおよび終止配列などの発現調節または制御
配列を含むであろう。好ましい制御配列は免疫グロブリン遺伝子からのものであ
るが、ウイルスからのものなどの別の制御領域を用いることもできる。ベクター
は、プラスミド、ウイルス、レトロウイルス、およびアデノウイルスを含む様々
なベクターから選択できる。

【００２５】定常領域をコードするＤＮＡ配列および必要な制御配列を含む、前以て生成し
た発現ベクターもまた調製できる。所望の抗原特異性を有する抗体を調製するた
め、所望の可変領域ＤＮＡ配列を該前以て生成したベクター中に挿入することが
できる。それゆえ、該前以て生成したベクターは、所望のヒト化抗体の調製を容
易にするものである。

【００２６】（ｂ）組換え融合タンパク質上記で言及したように、本発明らは、免疫グロブリンが家禽類の卵に結合し、
該卵中に輸送されることを示した。さらに、本発明者らは、鶏卵へのＩｇの結合
および取り込みに関与する免疫グロブリンの部分が、ＦｃドメインのＣＨ２−Ｃ
Ｈ３領域中に含まれることを決定した。本発明者らによるこの知見は、所望のタ
ンパク質を卵への結合に充分な免疫グロブリンの配列に結合させることにより、
いかなる組換えタンパク質をも卵中で製造することを可能にする。

【００２７】従って、一つの態様において、本発明は、卵に結合し、その結果組換えタンパ
ク質の取り込みとなるのに充分な免疫グロブリンタンパク質の部分をコードする
第二のＤＮＡ配列（ii）に作動可能に連結した、組換えタンパク質をコードする
第一のＤＮＡ配列（i）を含む、組換えタンパク質を卵中に送達するための発現系を提供する。

【００２８】「卵に結合するのに充分な免疫グロブリン分子の部分（「部分」と略する）」
なる語は、卵上の受容体に結合することができ、その結果、卵中に輸送されうる
、免疫グロブリンからのアミノ酸配列を含む。該「部分」は、卵上のＦｃ受容体
に結合するものが好ましく、さらに好ましくはトリのＦｃＲｎである。

【００２９】特別の態様において、第二のＤＮＡ配列は免疫グロブリンの定常領域からのも
のである。好ましくは、第二のＤＮＡ配列は、免疫グロブリンの定常領域ドメイ
ンのＣＨ２−ＣＨ３領域の部分をコードする。組換えタンパク質は、免疫グロブリンタンパク質との融合タンパク質として調
製されるであろう。組換えタンパク質は、当該技術分野で知られた技術を用いて
融合タンパク質から遊離させることができる。

【００３０】発現系はさらに、組換えタンパク質の発現を可能とするプロモーター、エンハ
ンサーおよび終止配列などの必要な制御配列を含むであろう。発現系はウイルス
系または非ウイルス系のベクターであってよく、当該技術分野で知られた技術を
用いて構築することができる。ファージミドは、プラスミドかまたはバクテリオ
ファージベクターのいずれとしても用いることができるので、有用なベクターの
一例である。他のベクターの例としては、バクテリオファージ、バキュロウイル
スおよびレトロウイルス、ＤＮＡウイルスなどのウイルス、リポソームおよび他
の組換えベクターが挙げられる。ベクターはまた、真核宿主系、好ましくはトリ
の宿主系で使用するための要素を含んでいてよい。当業者であれば、本発明が、ビテロゲニンやアポリポタンパク質Ｂなどの卵特
異的な受容体に結合しうる他のタンパク質またはペプチドを用いた組換えタンパ
ク質の製造方法を包含することを認識するであろう。

【００３１】２．卵への送達およびターゲティング本発明の上記発現系は、当該技術分野で知られた技術を用いて産卵性動物中に
導入することができる。一つの態様において、発現系を産卵性動物中に直接導入する。従って、本発明は、組換えタンパク質を卵中で製造する方法であって、（ａ）発現系を産卵性動物中に導入し、その際、該発現系は、動物の卵への該組
換えタンパク質の送達を容易にしうる第二のＤＮＡ配列（ii）に作動可能に連結
した、該組換えタンパク質をコードする第一のＤＮＡ配列（i）を含み、（ｂ）該動物に産卵させ、（ｃ）該組換えタンパク質を含有する卵を得、ついで任意に（ｄ）該組換えタンパク質を該卵から単離することを含む方法を提供する。

【００３２】好ましくは、第二のＤＮＡ配列は、卵に結合し、その結果、卵中への組換えタ
ンパク質の取り込みとなるに充分な免疫グロブリンタンパク質の部分をコードす
る。さらに好ましくは、第二のＤＮＡ配列は、免疫グロブリンの定常領域ドメイ
ンのＣＨ２−ＣＨ３領域の部分をコードする。

【００３３】一つの態様において、本発明は、組換え抗体を卵中で製造する方法であって、（ａ）発現ベクターを産卵性動物中に導入し、その際、該発現ベクターは、（i ）免疫グロブリンの定常領域をコードする第一のＤＮＡ配列、（ii）免疫グロブ
リンの可変領域をコードする第二のＤＮＡ配列および（iii）抗体を発現させるのに充分な制御領域を含み、（ｂ）該動物に産卵させ、（ｃ）該組換え抗体を含有する卵を得、ついで任意に（ｄ）該組換えタンパク質を該卵から単離することを含む方法を提供する。

【００３４】産卵性動物の細胞または組織中への発現系の導入は、当該技術分野で知られた
様々な方法のいずれによっても行うことができる。そのような方法は、一般に、
Sambrookら、Molecular Cloning: A Laboratory Manual, コールド・スプリング
ス・ハーバー・ラボラトリー、ニューヨーク（１９８９、１９９２）、Ausubel ら、Current Protocols in Molecular Biology,ジョン・ウィリー・アンド・サンズ、ボルチモア、メリーランド（１９８９）、Changら、Somatic Gene Therap
y,ＣＲＣプレス、アン・アーバー、ミシガン（１９９５）、Vegaら、Gene Targe
ting, ＣＲＣプレス、アン・アーバー、ミシガン（１９９５）、Vectors: A Sur
vey of Molecular Cloning Vectors and Their Uses,バターワース、ボストン、
マサチューセッツ（１９８８）およびGilboaら（１９８６）に記載されており、
たとえば、安定なまたは一過性のトランスフェクション、リポフェクチン、エレ
クトロポレーションおよび組換えウイルスベクターによる感染が挙げられる。

【００３５】感染によるベクターなどの発現系の導入は、幾つかの利点を提供する。その感
染特性のために一層高い効率が得られる。さらに、ウイルスは非常に特殊化され
ており、一般に特定の細胞型で感染および増殖する。それゆえ、その天然の特異
性を利用してベクターをインビボまたは組織内または細胞の混合培地で特定の細
胞型にターゲティングすることができる。ウイルスベクターはまた、特定の受容
体またはリガンドで修飾して、受容体を媒体にした事象により標的特異性を変え
ることもできる。

【００３６】安全性を確実にするためおよび／または効率を高めるため、追加の特性をベク
ターに付加することができる。そのような特性としては、たとえば、組換えウイ
ルスに感染した細胞に対して陰性選択するのに用いることのできるマーカーが挙
げられる。そのような陰性選択マーカーの例は、抗ウイルス剤ガンシクロビアに
対する感受性を付与する上記ＴＫ遺伝子である。それゆえ、陰性選択は感染を制
御しうる手段である、なぜなら陰性選択は抗生物質の添加により誘導性の自殺を
もたらすからである。そのような保護は、たとえば変化した形態のウイルスベク
ターまたは配列を生成する変異が生じたときに、細胞の形質転換が起こらないこ
とを確実にする。発現を特定の細胞型に限定する特性もまた、含めることができ
る。そのような特性としては、たとえば、所望の細胞型に特異的なプロモーター
や制御要素が挙げられる。

【００３７】組換えウイルスベクターは、所望の核酸のインビボ導入のために有用なベクタ
ーの他の例である、なぜなら、それは側方感染（lateral infection）やターゲティング特異性などの利点を提供するからである。側方感染は、たとえばレトロ
ウイルスのライフサイクルに内在するものであり、１個の感染細胞が多くの子孫
ウイルスが発芽分離し隣接細胞に感染していくプロセスである。その結果は、広
い領域が速やかに感染されることであり、その大部分は最初のウイルス粒子によ
って最初は感染されていなかったものである。このことは、感染因子が娘子孫を
通してのみ広がっていく垂直型の感染とは対照的である。側方的に（laterally ）広がっていけないウイルスベクターもまた製造することができる。この特徴は
、所望とする目的が特定遺伝子を局在化された数の標的細胞にのみ導入すること
である場合に有用である。

【００３８】レトロウイルスは、感染性粒子としてかまたは単一の初回感染のみを担うべく
機能するように構築することができる。前者の場合、ウイルスのゲノムがすべて
の必要な遺伝子、制御配列およびパッケージングシグナルを保持して新たなウイ
ルスタンパク質やＲＮＡを合成できるようにウイルスのゲノムを修飾させる。一
旦、これら分子が合成されたら宿主細胞はＲＮＡを新たなウイルス粒子にパッケ
ージングし、これら新たなウイルス粒子が次回の感染を担うことができる。ウイ
ルスのゲノムはまた、所望の組換え遺伝子をコードおよび発現するように操作さ
れる。非感染性ウイルスベクターの場合は、ウイルスのゲノムは通常、ＲＮＡを
ウイルス粒子中に被包するのに必要なウイルスパッケージングシグナルを破壊す
べく変異される。そのようなシグナルがなければ、形成された粒子はすべてゲノ
ムを含まず、それゆえその後の感染を進めることができない。特定のタイプのベ
クターは、意図した適用に依存するであろう。実際のベクターは、当該技術分野
で知られているか容易に入手可能であり、あるいはよく知られた方法を用いて当
業者により構築することが可能である。

【００３９】上記非感染性ベクターをレシピエント細胞中に接種領域内で導入するには、リ
ポソームなどのトランスフェクションビヒクルをも用いることができる。そのよ
うなトランスフェクションビヒクルは当業者により知られている。第二の態様において、本発明の発現系で形質転換した宿主細胞を産卵性動物中
に導入することにより組換えタンパク質を卵中に送達することができる。形質転
換した細胞株は、組換えタンパク質を分泌し、組換えタンパク質は卵中へ輸送さ
れるであろう。好ましくは、宿主細胞はトリの細胞株、とりわけ多分化能性の胚
細胞株、生殖細胞に運命付けされた（committed）細胞株または体細胞組織および生殖細胞に寄与しうる細胞株である。

【００４０】従って、本発明は、組換えタンパク質を卵中で製造する方法であって、（ａ）組換えタンパク質を分泌する形質転換したトリ細胞株を産卵性動物中に導
入し、その際、該トリ細胞株は、（i）該組換えタンパク質をコードする第一のＤＮＡ配列および（ii）該タンパク質を動物の卵へ送達するのを容易にする第二
のＤＮＡ配列を含み、（ｂ）該組換えタンパク質を含有する卵を得、ついで任意に（ｃ）該組換えタンパク質を該卵から単離することを含む方法を提供する。

【００４１】特別の態様において、トリ細胞株は組換え抗体、好ましくはヒト化抗体を分泌
する。トリ細胞株は産卵するメンドリに注射してよい。抗体はメンドリ中でイン
ビボで産生され、卵の卵黄に送達され、卵黄から得ることができるであろう。

【００４２】従って、本発明は、組換え抗体を家禽類の卵中で製造する方法であって、（ａ）組換え抗体を分泌する形質転換したトリ細胞株を産卵性家禽類に導入し、
その際、該トリ細胞株は、（i）免疫グロブリン定常領域をコードする第一のＤＮＡ配列、（ii）免疫グロブリン可変領域をコードする第二のＤＮＡ配列および
（iii）該抗体を発現させるのに充分な制御領域を含む発現系で形質転換されており、（ｂ）該組換え抗体を含有する卵を得、ついで任意に（ｃ）該組換え抗体を該卵から単離することを含む方法を提供する。

【００４３】第三の好ましい態様において、本発明の組換えタンパク質は、該組換えタンパ
ク質を分泌し、該組換えタンパク質が卵中に輸送されるトランスジェニック動物
を調製することにより、産卵性動物において製造することができる。従って、本
発明は、組換えタンパク質を産卵性動物の卵中で製造する方法であって、（ａ）その体細胞または生殖細胞が、該組換えタンパク質を卵中へ送達するのを
容易にする第二のＤＮＡ配列（ii）に作動可能に連結した、該組換えタンパク質
をコードする第一のＤＮＡ配列（i）を含む発現系を含有するトランスジェニック産卵性動物を調製し、（ｂ）該動物から卵を得、ついで（ｃ）任意に該組換えタンパク質を該卵から単離することを含む方法を提供する。

【００４４】好ましくは、第二のＤＮＡ配列は、組換えタンパク質を卵へターゲティングし
組換えタンパク質を卵中に取り込ませるのを可能にするに充分な免疫グロブリン
タンパク質の部分をコードする。さらに好ましくは、第二のＤＮＡ配列は、免疫
グロブリンの定常領域ドメインのＣＨ２−ＣＨ３領域の部分をコードする。

【００４５】好ましい態様において、組換え抗体は、該抗体、好ましくはヒト化抗体を分泌
するトランスジェニック家禽類を調製することにより、家禽類で調製できる。従
って、本発明は、組換え抗体を産卵性動物の卵中で製造する方法であって、（ａ）その体細胞または生殖細胞が、（i）免疫グロブリン定常領域をコードする第一のＤＮＡ配列、（ii）免疫グロブリン可変領域をコードする第二のＤＮＡ
配列および（iii）該抗体を発現させるのに充分な制御領域を含む発現系を含有するトランスジェニック産卵性動物を調製し、ついで（ｂ）該動物から卵を得ることを含む方法を提供する。

【００４６】トランスジェニック動物を調製するには、本発明の発現系を、マイクロインジ
ェクション、エレクトロポレーション、精子トランスフェクション、リポソーム
融合およびマイクロプロジェクタイルボンバードメント（microprojectile bomb
ardment）を含む、当該技術分野で知られた技術を用いて胚（家禽類の胚など）中に挿入することができる。ついで、発現系を含有する胚を代理卵殻（surrogat
e shell）に移す。トランスジーンを有する動物を性的成熟まで生育させ、組換えタンパク質の存在を成熟した動物の卵中で分析することができる。本発明はまた、本明細書に記載したトランスジェニック産卵性動物をも包含す
る。

【００４７】３．卵調製物本発明はまた、組換えタンパク質を含有する卵並びに該卵のすべての応用での
使用をも包含する。卵は可食性の食物源であるため、組換えタンパク質は該卵か
ら単離または精製する必要がない。組換えタンパク質を含有する卵は、直接摂食
することもできるし、または摂食前に調理したり調理法（オムレツ、ミルクセー
キ、焼き料理品など）の中に入れ込むこともできる。

【００４８】所望なら、組換えタンパク質を卵から単離し、投与前に医薬調合物中に配合す
ることができる。たとえば、ヒト化抗体を当該技術分野で知られた技術（たとえ
ば、米国特許第５,４２０,２５３号を参照）を用いて鶏卵から除去することがで
きる。抗体は一般に卵の卵黄中に含まれるので、抗体を得るために卵黄を卵の残
りから分離させる。抗体または他の組換えタンパク質を含有する卵黄調製物は、
貯蔵のために凍結乾燥することができる。凍結乾燥調製物は、使用のときに再構
成する。

【００４９】抗体は、その可変領域の特異性に依存して種々の疾患または病原体を治療また
は検出するために用いることができる。疾患の治療のためには、抗体を単独か、
他の化合物に結合させるか、または他の化合物ととともに投与する。抗体は、そ
れが結合したときに疾患状態または感染した細胞の破壊を容易にするために毒素
に結合してよい。そのような結合抗体はイムノトキシンとして知られており、当
該技術分野で知られた技術（Thorpeら、Monoclonal Antibodies in Clinical Me
dicine、アカデミックプレス、ｐ．１６８−１９０，１９８２）を用いて調製で
きる。

【００５０】組換えタンパク質または抗体は、インビボ投与に適した医薬組成物として調製
できる。医薬組成物は、タンパク質または抗体を生物学的に適合しうる担体また
は希釈剤中、またはリポソームなどの担体系中に含んでいてよい。タンパク質ま
たは抗体組成物は、注射、経口投与、吸入、経皮適用または直腸投与などの通常
の仕方で投与できる。投与経路に依存して、活性化合物を酵素、酸または抗体を
不活化する他の自然条件の作用から保護するために所定の物質にコーティングす
ることができる。組成物は、治療学的有効量のタンパク質または抗体を含み、所
望の結果を達成するのに必要な投与量および期間にて提供されるであろう。

【００５１】抗体は、疾患のインビボまたはインビトロ診断または検出のために用いること
ができる。インビボ診断では、抗体は上記の適当な医薬調合物中で調製されるで
あろう。抗体はまた、一般にその検出が可能となるように検出可能なマーカーで
標識する。使用できる検出可能なマーカーとしては、種々の酵素、蛍光物質、発
光物質および放射性物質が挙げられる。適当な酵素の例としては、西洋ワサビペ
ルオキシダーゼ、ビオチン、アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、
またはアセチルコリンエステラーゼが挙げられる。適当な蛍光物質の例としては
、ウンベリフェロン、フルオレセイン、フルオレセインイソチオシアネート、ロ
ーダミン、ジクロロトリアジニルアミンフルオレセイン、ダンシルクロライドま
たはフィコエリトリンが挙げられる。発光物質の例としては、ルミノールが挙げ
られる。適当な放射性物質の例としては、Ｓ−３５、Ｃｕ−６４、Ｇａ−６７、
Ｚｒ−８９、Ｒｕ−９７、Ｔｃ−９９ｍ、Ｒｈ−１０５、Ｐｄ−１０９、Ｉｎ−
１１１、Ｉ−１２３、Ｉ−１２５、Ｉ１３１、Ｒｅ−１８６、Ａｕ−１９８、Ａ
ｕ−１９９、Ｐｂ−２０３、Ａｔ−２１１、Ｐｂ−２１２およびＢｉ２１２が挙
げられる。抗体はまた、標識し、あるいはリガンド結合ペアの一方のパートナー
に結合させることができる。代表例としては、アビジン−ビオチンおよびリボフ
ラビン−リボフラビン結合タンパク質が挙げられる。上記抗体を上記代表的な標
識に結合または標識する方法は容易に利用できる。

【００５２】抗体はまた、当該技術分野で知られた技術を用いてインビトロで疾患または病
原体を検出するのに用いることができる。これら方法は、抗体と、病原体または
疾患に特異的なタンパク質の抗原決定基との間の結合相互作用に依存する。その
ような方法の例としては、ラジオイムノアッセイ、エンザイムイムノアッセイ（
たとえば、ＥＬＩＳＡ）、免疫蛍光、免疫沈降、ラテックス凝集、血球凝集、お
よび酵素結合抗体免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）などの組織化学的試験、およ
びウエスタンブロッティングが挙げられる。

【００５３】本発明の抗体は、ロタウイルスや腸管毒性産生性大腸菌（ＥＴＥＣ）（これら
は新生児や子供の疾患の主要な病因であるので）などの腸内感染を治療するのに
用いることができる。これら病原体またはその一部に特異的な可変領域を含む抗
体を調製できる。本発明はまた、病原体不含の卵を調製するのに用いることができる。たとえば
、特定の病原体に対して特異的な抗体を産卵性動物中で産生させ、卵へ輸送させ
ることができ、該抗体は卵中で該特定の病原体を中和するであろう。一つの態様
において、抗体は抗サルモネラ抗体であり、サルモネラ不含の卵を調製するのに
用いることができる。

【００５４】従って、他の側面において本発明は、特定の病原体を含まない卵の製造方法で
あって、（ａ）該病原体に特異的な抗体を産卵性動物中に導入し、ついで（ｂ）該動物に産卵させ、その際、卵は実質的に該病原体を含まないことを含む方法に関する。

【００５５】下記非限定実施例により本発明を説明する。実施例実施例１ヒト抗体の鶏卵中への取り込みヒトＩｇＧ（ｈＩｇＧ）が発生中のニワトリ卵胞中へ輸送されうるか否かを決
定するため、３羽のHyline SC^TMメンドリにそれぞれ１０μｇの精製ｈＩｇＧを注射し、卵黄および卵白中のその存在をＥＬＩＳＡにより評価した。ヒトＩｇＧ
はまず卵黄中に第２日目に検出され、８９ｎｇ／ｍｌまでのピークレベルが第５
日目に検出された（図１）。薄い卵白抽出物中ではｈＩｇＧは検出されず、その
濃度が３.１２ｎｇ／ｍｌ未満（ＥＬＩＳＡアッセイの検出限界）であることを示していた。

【００５６】１０μｇのヒトＩｇＡ（ｈＩｇＡ）をも３羽のHyline SC^TMメンドリに静脈内注射し、ｈＩｇＡもまた卵中に沈積しうるか否かを決定した。ヒトＩｇＡはまず
卵黄中に第２日目に検出され、３３ｎｇ／ｍｌまでのピークレベルが第５日目に
検出されたが（図２Ａ）、これはｈＩｇＧで記録したピークレベルよりも有意に
低かった（繰返し測定分析、Ｐ＜０.０１）。ｈＩｇＧは卵白で検出されなかったが、ｈＩｇＡは検出された。ヒトＩｇＡはまず卵白抽出物中で第１日目から検
出され、約８ｎｇ／ｍｌ卵白にて第２〜８日目に一定に保持された（図２Ｂ）。

【００５７】実施例２組換えＩｇＧの鶏卵中への取り込み材料および方法細胞株の培養およびトランスフェクション Hyline SC^TMニワトリ（Hyline International、ダラスセンター、アイオワ）からのニワトリＢリンパ芽球細胞株、ＤＴ４０をCraig Thompson博士から入手し
、ヒト／マウスキメラ抗体を産生するトランスフェクション細胞株を確立するの
に用いた。細胞を８％（v/v）ウシ胎仔血清（ＢＣＳ）および２％（v/v）ニワト
リ血清（ＣＳ）を含有するＩＭＤＭ^TM（Gibco BRL）中で１〜１０×１０⁶細胞／
ｍｌでの培養で維持した。細胞（１×１０⁷）を、最適エレクトロポレーション条件下（２００Ｖ、９６０μＦおよび１０００ミリ秒パルス）でのBio-Radエレクトロポレーターを用いたエレクトロポレーションにより、各２０μｇの線状化
重鎖（キメラ抗ダンシルガンマ１）および軽鎖（ヒトカッパを有するキメラ抗ダ
ンシル軽鎖）でトランスフェクションした。細胞を９６ウエルマイクロタイター
皿中、上記培地にて２日間維持し（２.５×１０⁴細胞／ウエル）、その後、３μ
ｇ／ｍｌのミコフェノール酸、７.５μｇ／ｍｌのヒポキサンチンおよび１２５ μｇ／ｍｌのキサンチンを含有する選択培地を加えた。生存したコロニーを、ダ
ンシル−ＢＳＡコーティングマイクロタイタープレートおよび検出試薬としての
アルカリホスファターゼ結合抗ヒトカッパを用いた酵素結合抗体免疫吸着アッセ
イ（ＥＬＩＳＡ）によりスクリーニングした。ついで、強い陽性のコロニーをさ
らに特徴付けるために一層大きな皿に移動させた。これら拡張されたコロニーか
らの細胞を、³⁵Ｓ−メチオニンの存在下で一夜増殖させて標識した。一夜増殖さ
せた後、培養上澄み液および細胞質溶解液を調製し、内容物をウサギ抗ヒトＩｇ
およびＳｔａｐｈＡ（ＩｇＳｏｒｂ）を用いて免疫沈降させた。試料を還元なし
で５％ポリアクリルアミドゲル上、および還元後に１２％ゲル上で分析した。バ
ンドの位置をオートラジオグラフィーにより決定した。ついで、所望のキメラ抗
体を産生したコロニーからの細胞を１〜１０⁶細胞／ｍｌにて培地に維持した。

【００５８】Hyline SCメンドリ中での腫瘍の産生キメラヒト抗ダンシルガンマ３を産生するトランスフェクションしたＤＴ４０
細胞株、ＴＡＯＤ７.４を、１０％ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）を含有するＯｐｔｉ −ＭＥＭ^TM（Gibco BRL，バーリントン）中で１×１０⁶細胞／ｍｌの濃度にて培
養維持した。細胞を３００×ｇで５分間遠心して回収し、培地を除去した。細胞
をダルベッコリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ、Gibco BRL、バーリントン、オンタリオ）中で５×１０⁷細胞／ｍｌの濃度で再浮遊させた。１００μｌのＰＢＳ中の合計５×１０⁶細胞をHyline SC^TMメンドリの太腿と体壁との間の領域に皮下注射
し、腫瘍の発生を毎日モニターした。注射前にメンドリの体重を測定し、ついで
体重の変動を１週間に２回モニターした。

【００５９】卵黄抗体の精製および分析注射したメンドリから卵を毎日回収した。卵黄を卵白から分離させ、卵黄から
抗体をガンマＹｏｌｋ^TM調製キット（Pharmacia Biotech、モーガン・ブールバード、ケベック）により精製した。精製した卵黄抗体を炭酸緩衝液、ｐＨ９.６に再懸濁し、キメラヒト抗ダンシルガンマ３の存在についてサンドイッチ抗体Ｅ
ＬＩＳＡにより分析した。Immulon^TM９６−ウエルマイクロタイタープレートを炭酸緩衝液、ｐＨ９.６中のヤギ抗ヒトＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）（Jackson Immunoresea
rch、ウエスト・グルーブ、ペンシルベニア、米国）の５μｇ／ｍｌ溶液（５０ μｌ）で４℃にて一夜コーティングした。一夜インキュベーション後、コーティ
ング混合物を廃棄し、プレートをＰＢＳで３回洗浄した。ついで、１００μｌの
ブロック緩衝液（３％（w/v）ウシ血清アルブミンを含有するＰＢＳ）を加えることによりプレートを室温にて１時間ブロックした。ついで、ブロック緩衝液を
廃棄し、プレートをＰＢＳで３回洗浄した。個々の卵黄抗体調製物または系列希
釈標準（Cromopure Human IgG、Jackson Immunoresearch、ウエスト・グルーブ、ペンシルベニア、米国）（５０μｌ）を各ウエルに分配し、プレートを４℃で
一夜インキュベートした。一夜インキュベーション後、試験溶液を廃棄し、プレ
ートをＰＢＳで３回洗浄した。ブロック緩衝液中で１２５ｎｇ／ｍｌの濃度の西
洋ワサビペルオキシダーゼ結合ヤギ抗ヒトＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）（Jackson Immunore
search、ウエスト・グルーブ、ペンシルベニア、米国）（５０ＵＬ）をプレート
のウエルに加え、室温で２時間インキュベートした。ついで、ペルオキシダーゼ
コンジュゲートを廃棄し、プレートをＰＢＳで３回洗浄した。ついで、西洋ワサ
ビペルオキシダーゼ基質（０.０５％（w/v）ｏ−フェニレンジアミン二塩酸塩お
よび０.０５％（v/v）３０％過酸化水素を含有する酢酸アンモニウム−クエン酸
緩衝液（ｐＨ５.０））を各ウエルに加え、プレートを暗所、室温にて３０分間インキュベートした。硫酸（５Ｍ溶液を５０μｌ）を各ウエルに加え、プレート
を卓上シェーカーで１０分間穏やかに振盪させた。ついで、４９２ｎｍを有する
Titertek Multiskan^TM PLUS ELISAプレートリーダーを用いて発色を評価した。

【００６０】結果卵黄中のヒト免疫グロブリンのアッセイの典型的な標準曲線を表１に示す。卵
黄の存在下での吸光度は緩衝液のみを含有する陰性対照ウエルの吸光度と異なる
ことはなく、卵黄がアッセイに干渉しないことを示していた。４９２ｎｍの吸光
度とヒト免疫グロブリン（ｈＩｇ）のｌｏｇ１０濃度との間の回帰係数は０.９９であり、式ｙ＝１.１６８３ｘ−０.０１８５が吸光度とｈＩｇの濃度との間の
関係を正確に記載していることを示していた。

【００６１】卵黄抽出物の存在下で標準曲線を構築することにより、アッセイにおける卵黄
の影響をさらに調べた。下記グラフに示すように、吸光度はアッセイの標準のす
べての濃度において卵黄の存在によって変わることはなかった。注射していない
メンドリからの卵黄抽出物の吸光度は１.５６ｎｇ／ｍｌ未満の標準の吸光度と等しく、１.５６ｎｇ／ｍｌ未満のヒトＩｇの濃度は検出できないことを示していた。

【００６２】メンドリ＃９１８５（ケージ＃２）からの卵中のヒト免疫グロブリンの濃度を
表２に示す。このメンドリは、第１日目にヒトＩｇＧ３（ＴＡＯＤ７.４）でトランスフェクションした５００万の細胞を注射していた。腫瘍は第１１日目まで
は小結節に留まっており、この時点で腫瘍の周辺領域で出血が生じた。第１３日
目および第１５日目に産まれた卵では卵黄中での沈積が顕著であったが、その後
の卵ではｈＩｇは検出できなかった。

【００６３】検討卵黄中でのヒト免疫グロブリンの検出のためのＥＬＩＳＡは、感度が１.５６ｎｇ／ｍｌであることが示され、ヒト免疫グロブリンに特異的であり、再現性が
あった。卵黄からのヒト免疫グロブリンの回収は約１５％であった（データは示
していない）。

【００６４】メンドリ＃９１８５での腫瘍の存在は、ＤＴ４０細胞が宿主ニワトリでコロニ
ー形成して体細胞キメラを生成するであろうことを示していた。このメンドリか
らの卵黄中のｈＩｇの濃度を調べたところ、ヒト免疫グロブリンが遺伝子操作し
たＤＴ４０細胞中でインビボで産生され、卵黄中に封鎖されることが示されてい
る。卵黄１個は約１０〜１５ｍｌであり、アッセイでのｈＩｇの回収は約１５％
であったので、約６２５ｎｇのｈＩｇがメンドリ＃９１８５によって第１３日目
に産まれた卵中に沈積することが予想される。これらのデータは、ヒト免疫グロブリンを鶏卵中で大スケールで産生する技術
を開発する理論的根拠を提供している。

【００６５】１０⁷のＤＴ４０−ｈＩｇＧ３細胞を８羽のHyline SC^TMメンドリに静脈内注射
した。ＤＴ４０−ＩｇＧ３細胞を注射した８羽のうち３羽は注射部位に腫瘍を生
成し、細胞のうちのいくつかまたはすべてが静脈内送達されるのではなく皮下注
射されたことを示していた。注射部位に腫瘍を生成したメンドリからの卵は、卵
黄中に非常にわずかのｒｈＩｇＧ３しか有せず、薄い卵白中では認められなかっ
た（データは示していない）。ｒｈＩｇＧ３はまず、残りの５羽のメンドリで第
７日目に卵黄中で検出された（図３Ａおよび３Ｂ）。これらメンドリのうちの４
羽でのｒｈＩｇＧ３の最大沈積は、卵１ｍｌ当たり３３ｎｇであり、第１０日目
に産まれた卵で認められた。これらメンドリの１羽（トリ６、図３Ｂ）は第１０
日目または第１１日目に卵を産まず、第１２日目に産まれた卵は０.３μｇ／ｍｌ卵黄のｒｈＩｇＧ３を含有していた。このメンドリは第１３日目および第１４
日目には卵を産まず、第１５日目および第１６日目に産まれた卵ではｒｈＩｇＧ
３は検出されなかった。

【００６６】ニワトリ抗ｒｈＩｇＧ３は、注射部位での腫瘍の存在または不在にかかわりな
く、ＤＴ４０−ＩｇＧ３細胞を注射したすべてのメンドリで第６日目までに卵黄
中で検出され、卵黄中での最大レベルのニワトリ抗ｒｈＩｇＧ３は第９日目まで
に観察された（データは示していない）。ＤＴ４０−ＩｇＧ３細胞を静脈内注射
したすべてのメンドリを第１７日目に安楽死させた。剖検では注射したいずれの
トリにも内部の腫瘍は観察されなかった。ＤＴ４０−ＩｇＧ３細胞が白血病とし
て維持されているか否かを決定するため、血液試料をトリから採取し、ＤＴ４０
−ＩｇＧ３細胞の存在の継続について光学顕微鏡および免疫蛍光染色の両方で評
価した。注射部位で腫瘍を生成したメンドリから採取した血液試料ではＤＴ４０
−ＩｇＧ３細胞は観察されなかったが、これら腫瘍からの細胞は培養で首尾良く
再確立され、ｒｈＩｇＧ３を産生し続けることが示された（データは示していな
い）。注射部位に腫瘍を生成しなかったメンドリでは、ＤＴ４０−ＩｇＧ３細胞
と形態的に類似する細胞のクラスターが希釈血液試料中に観察された（図４Ａ）
。これらは、細胞内ｈＩｇＧについての免疫組織化学染色によりＤＴ４０−Ｉｇ
Ｇ３細胞であることが確認された。

【００６７】実施例３組換えＩｇＡの鶏卵中への取り込みＤＴ４０−ＩｇＧ３細胞と同様に、マウス／ヒトキメラ抗ダンシルα抗体（ｒ
ｈＩｇＡ）を分泌する、トランスフェクションしたＤＴ４０細胞株、ＤＴ４０−
ｈＩｇＡを製造した。ｒｈＩｇＡを産生するトランスフェクションしたＢ細胞の
集団を有するメンドリがｒｈＩｇＡを卵中に輸送することを示すため、１０⁷のＤＴ４０−ｈＩｇＡ細胞を８羽のHyline SC^TMメンドリに静脈内注射した。ＤＴ４−ｈＩｇＡ細胞を注射したメンドリのうち５羽が注射部位に腫瘍を生成した。
卵白中へのｒｈＩｇＡの低レベルの沈積が注射したすべてのメンドリで検出され
たが、腫瘍を生成したメンドリの卵黄ではｒｈＩｇＡの非常にわずかの沈積しか
検出されなかった（データは示していない）。注射部位に腫瘍生成の兆候を示さ
なかった３羽のメンドリは、第９日目までに２０ｎｇ／ｍｌ卵黄までのｒｈＩｇ
Ａを沈積した。

【００６８】実施例４トリ卵上のＦｃ受容体の特徴付けこの研究では、発生中のトリの卵母細胞卵胞へのＩｇの取り込みに関与するＦ
ｃ配列を解明することを試みるため、修飾ｒｈＩｇＧのパネルを調製した。Ｉｇ
Ｇを卵黄中に輸送することを担う発生中のトリ卵母細胞の細胞膜上のＦｃ受容体
が哺乳動物のＦｃＲｎのホモログであると思われることを報告したのは本発明者
らが最初である。ＦｃＲｎは、マウスにおいて母胎関門を通過するＩｇＧの輸送
、母ＩｇＧのトランスサイトーシスおよび血清ＩｇＧレベルの制御において役割
を果たしている主要組織適合複合体（ＭＨＣ）クラスＩ関連受容体である。ホモ
ログがヒトにおいても見出されており、同じ役割を果たしていると思われる。

【００６９】材料および方法ｒｈＩｇＧに施した修飾の記載を容易にするため、野性型のＩｇＧ重鎖をＶ−
ＣＨ１−Ｈ−ＣＨ２−ＣＨ３として表すことにする。ここでＶは可変領域であり
、ＣＨは各重鎖ドメインであり、Ｈはヒンジ領域である。

【００７０】６つのｒｈＩｇＧ（下記）のパネルを、本質的に実施例１にすでに記載したよ
うにしてメンドリに注射した。１．野性型のＩｇＧは陽性対照として用いた。２．Ｖ−ＣＨ３（すなわち、ＣＨ１からＣＨ２まで（これを含む）を欠如）。３．Ｖ−ＣＨ１−Ｈ−ＣＨ３（すなわち、ＣＨ２ドメインを欠如）。４．Ｖ−ＣＨ１−Ｈ−ＣＨＪ２−^*ＣＨ３（すなわち、ＣＨ２−ＣＨ３境界での部位特異的変異であり、ｒｈＩｇＧのＦｃＲｎへの結合不能という結果となる）
。ＮＢ．検出せず。５．^**Ｖ−ＣＨ１−Ｈ−ＣＨ２−ＣＨ３^**（すなわち、補体を活性化できないか
または殆どの知られたＦｃ受容体と結合できないがＦｃＲｎへの結合能は維持し
ている脱グリコシル化ｒｈＩｇＧ）。ＮＢ．検出せず。６．Ｖ−αＣＨ１−Ｈ−ＣＨ２−ＣＨ３（すなわち、受容体への結合に影響を及
ぼすことなくＣＨ２−ＣＨ３境界から遠位の領域を交換することができることを
示すため、ＣＨ１定常ドメインをＩｇＡＣＨ１ドメインと交換した）。

【００７１】結果結果を表３に示す。Ｖ−ＣＨ３、Ｖ−ＣＨ１−Ｈ−ＣＨ３およびＶ−ＣＨ１−
Ｈ−ＣＨ２^*−ＣＨ３は卵黄試料で検出されなかった。^**Ｖ−ＣＨ１−Ｈ−ＣＨ２−ＣＨ３^**およびＶ−αＣＨ１−Ｈ−ＣＨ２−ＣＨ３は、対照の野性型ｈＩｇ
Ｇと同じくらい効率よく沈積した。

【００７２】この実施例は、ＣＨ２−ＣＨ３境界が欠失により破壊されるとｒｈＩｇＧがト
リ卵母細胞の細胞膜を通過できないことを示している。さらに、ＦｃＲｎと相互
作用することが知られているＣＨ２−ＣＨ３境界アミノ酸残基に部位特異的変異
が存在するときも、ｒｈＩｇＧはトリ卵母細胞の細胞膜を通過できない。しかし
ながら、ＣＨ２−ＣＨ３ドメイン間の境界は、ＦｃγＩ−ＩＩＩを含む他のＦｃ
受容体と結合することが示されている。脱グリコシル化ｒｈＩｇＧである^**Ｖ−
ＣＨ１−Ｈ−ＣＨ２−ＣＨ３^**は、卵母細胞受容体の性質を確認するために選択
した。なぜなら、ＩｇＧの脱グリコシル化は補体活性化および殆どのＦｃ受容体
への結合を妨げるが、ＦｃＲｎへの結合は妨げないからである。脱グリコシル化
ｒｈＩｇＧは野性型ｈＩｇＧと同じくらい効率的に卵黄中に沈積するので、これ
ら実験の他の知見とあわせてＦｃＲｎのトリホモログがトリ卵母細胞の細胞膜を
通過するＩｇＧの輸送を担っていると思われる。これら知見は、ＦｃＲｎへの結
合に必要な配列を含めることにより、トランスジェニックメンドリモデルで産生
するために治療用抗体の操作を最適化すること並びに所望のタンパク質を卵黄中
に沈積させることを可能にするに違いない。

【００７３】実施例５トランスジェニックニワトリの調製ヒト化抗体などの組換えタンパク質を産生するトランスジェニックニワトリを
調製することができる。トランスジェニックニワトリを製造するため、ステージ
Ｘ（４０ｂ）の胚をバードプリマスロック（Barred Plymouth Rock）メンドリに
より産まれたインキュベートしていない卵から得ることができる。胞胚葉細胞を
細胞間マトリックスの酵素消化により回収し、ＤＮＡをBrazolotらおよびFraser
らによって記載されているようにリポフェクチン試薬を用いて浮遊細胞中に導入
する。ついで、浮遊細胞は、Carscienceらによって記載されているように、ホワ
イトレグホンメンドリによって産まれた卵中の放射線照射した（irradiated）ス
テージＸのレシピエント胚中に注入されるであろう。注入の４日後、注入した胚
を代理の卵殻（１０９、１０９ｂ）に移し、これは孵化率を注入胚の約１０％か
ら注入胚の約４０％に上昇させる（CochranおよびEtches、未刊行）。孵化時にキメラは、ドナー（バードプリマスロック）由来の黒色綿毛およびレシピエント
（ホワイトレグホン）由来の黄色の綿毛の存在により認識することができる。ド
ナー細胞の導入の形跡を示さない幼鳥は破棄する。鶏冠組織および血液をそれぞ
れ孵化の日および４週齢で取り出し、組換えタンパク質（キメラ抗体など）の産
生をコードするＤＮＡ配列の存在がＰＣＲにより決定されるであろう。組換えタ
ンパク質の存在は、４週齢で取り出した血液試料で行うＥＬＩＳＡにより評価さ
れるであろう。トランスジーンを有するニワトリは、性的成熟まで生育されるで
あろう。発生中の卵中での組換えタンパク質の沈積は、メスキメラにより産まれ
た卵の卵黄からの抽出物で行うＥＬＩＳＡにより評価されるであろう。オスおよ
びメスの両キメラはつがわされ、その結果の子孫はＰＣＲによりスクリーニング
して構築物を含むものが同定されるであろう。

【００７４】キメラ抗体を卵中で産生するという目的は、トランスフェクションした細胞が
リンパ系でコロニー形成する場合にはキメラで達成されるであろうことに注意す
べきである。構築物が生殖細胞中に導入されている場合には、キメラ抗体の産生
をコードするＤＮＡ配列がメンデル遺伝特性として導入されているニワトリの株
が得られるであろう。しかしながら、生殖細胞の伝達が存在しない場合でも、本
発明者らはニワトリにおいて抗体産生に関する有意で新たな情報を得ることであ
ろう。

【００７５】本発明を現在のところ好ましい実施例と考えられるものに関連して記載したが
、本発明は開示した実施例に限られるものでないことが理解されねばならない。
それとは反対に、本発明は、添付の請求の範囲の範囲内に含まれる種々の変更お
よび等価な再編を包含することを意図するものである。

【００７６】すべての刊行物、特許および特許出願は、個々の刊行物、特許および特許出願
のそれぞれを特別かつ個別にその全体において参照のため本明細書中に引用され
るのと同程度にその全体が参照のため本明細書中に引用される。

【００７７】

【表１】

【００７８】

【表２】

【００７９】

【表３】

【図面の簡単な説明】

【図１】卵中の卵黄１ｍｌ当たりのｈＩｇＧの濃度を時間に対して示すグ
ラフである。

【図２】図２Ａは、卵黄１ｍｌ当たりのｈＩｇＡの濃度を時間に対して示
すグラフである。図２Ｂは、卵白１ｍｌ当たりのｈＩｇＡの濃度を時間に対して
示すグラフである。

【図３】図３Ａは、卵黄１ｍｌ当たりのｒｈＩｇＧの平均沈積を時間に対
して示すグラフである。図３Ｂは、卵黄１ｍｌ当たりのｒｈＩｇＧの最良の沈積
を時間に対して示す。

【図４】図４Ａは、メンドリから採取した血液試料中のｈＩｇＧ細胞の光
学顕微鏡像である。図４Ｂは、メンドリから採取した血液試料中のｈＩｇＧの免
疫組織染色を示す。

【図５】卵黄１ｍｌ当たりのｒｈＩｇＡの濃度を時間に対して示すグラフ
である。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ) ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＧＨ，ＧＭ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＷ (71)出願人ザ・リージェンツ・オブ・ザ・ユニバーシティ・オブ・カリフォルニアＴｈｅＲｅｇｅｎｔｓｏｆｔｈｅＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆＣａｌｉｆｏｒｎｉａアメリカ合衆国カリフォルニア州94607 −5200，オークランド，フランクリン・ストリート 1111，フィフスフロア 1111 ＦｒａｎｋｌｉｎＳｔｒｅｅｔ, 12ｔｈＦｌｏｏｒ，Ｏａｋｌａｎｄ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ 94607−5200，ＵｎｉｔｅｄＳｔａｔｅｓｏｆＡｍｅｒｉｃａ (72)発明者ロバート・ジェイ・エッチーズカナダ、エヌ１ジー・２ダブリュー１、オンタリオ、グエルフ、レイノルズ・ビルディング、ルーム214、ユニバーシティ・オブ・グエルフ内 (72)発明者マンスーア・モハメドカナダ、エヌ１ジー・２ダブリュー１、オンタリオ、グエルフ、レイノルズ・ビルディング、ルーム214、ユニバーシティ・オブ・グエルフ内 (72)発明者シェリー・モリソンアメリカ合衆国90095−1406カリフォルニア州ロサンゼルス、ユニバーシティ・オブ・カリフォルニア内 (72)発明者レティシア・アリス・ウィムズアメリカ合衆国90230カリフォルニア州カルバー・シティ、カンタベリー・ドライブ・ナンバー・ディ314、6000番 (72)発明者カム・エム・トリンアメリカ合衆国91754カリフォルニア州モンテレー・パーク、ノース・イネス・アベニュー611番 (72)発明者アラン・ジー・ワイルドマンカナダ、エヌ１エイチ・２エム７、オンタリオ、グエルフ、オックスフォード・ストリート142番Ｆターム(参考） 4B024 AA01 AA11 BA41 DA02 FA01 FA17 GA18 HA01 4B065 AA90X AA93Y AB01 AC14 AC15 BA01 CA25 CA44 CA46 4H045 AA11 BA10 BA41 CA40 DA75 EA50 FA74

Claims

【特許請求の範囲】

【請求項１】（i）組換えタンパク質をコードする第一のＤＮＡ配列および（ii）該タンパク質の動物の卵への送達を容易にしうる第二のＤＮＡ配列を含
む、組換えタンパク質を卵中へ送達するための発現系。
【請求項２】該第二のＤＮＡ配列が、卵へ結合しうるタンパク質またはペ
プチドをコードする、請求項１に記載の発現系。
【請求項３】該第二のＤＮＡ配列が、卵へ結合しうる免疫グロブリンタン
パク質の部分をコードする、請求項２に記載の発現系。
【請求項４】該免疫グロブリンの該部分が、免疫グロブリンのＦｃドメイ
ンのＣＨ２−ＣＨ３領域からのものである、請求項３に記載の発現系。
【請求項５】該免疫グロブリンの該部分が、該卵上のＦｃ受容体に結合す
る、請求項３に記載の発現系。
【請求項６】該Ｆｃ受容体がトリのＦｃ受容体ネオネートである、請求項
５に記載の発現系。
【請求項７】（i）免疫グロブリンの定常領域をコードする第一のＤＮＡ配列、（ii）免疫グロブリンの可変領域をコードする第二のＤＮＡ配列および（
iii）抗体を発現させるのに充分な制御領域を含む、組換え抗体を卵中へ送達するための発現系。
【請求項８】該定常領域がヒト免疫グロブリン遺伝子に由来するものであ
る、請求項７に記載の発現系。
【請求項９】組換えタンパク質を卵中で製造する方法であって、（ａ）請求項１ないし６のいずれか一つに記載の発現系を産卵性動物中に導入し
、（ｂ）該組換えタンパク質を含有する卵を得、ついで任意に（ｃ）該組換えタンパク質を該卵から単離することを含む方法。
【請求項１０】組換え抗体を卵中で製造するであって、（ａ）請求項７または８に記載の発現系を産卵性動物中に導入し、（ｂ）該組換え抗体を含有する卵を得、ついで任意に（ｃ）該組換えタンパク質を該卵から単離することを含む方法。
【請求項１１】組換えタンパク質を卵中で製造する方法であって、（ａ）組換えタンパク質を分泌する形質転換したトリ細胞株を産卵性動物中に導
入し、その際、該トリ細胞株は請求項１ないし６のいずれか一つに記載の発現系
で形質転換されており、（ｂ）該組換えタンパク質を含有する卵を得、ついで任意に（ｃ）該組換えタンパク質を該卵から単離することを含む方法。
【請求項１２】組換え抗体を家禽類の卵中で製造する方法であって、（ａ）組換え抗体を分泌する形質転換したトリ細胞株を産卵性の家禽類に導入し
、その際、該トリ細胞株は請求項７または８に記載の発現系で形質転換されてお
り、（ｂ）該組換え抗体を含有する卵を得、ついで任意に（ｃ）該組換え抗体を該卵から単離することを含む方法。
【請求項１３】病原体を含まない卵の製造であって、（ａ）該病原体に特異的な抗体を産卵性動物中に導入し、ついで（ｂ）該動物に産卵させ、その際、該卵は実質的に該病原体を含まないことを含む方法。
【請求項１４】組換えタンパク質を含有する卵。
【請求項１５】請求項９に記載の方法によって製造された組換えタンパク
質を含有する卵。
【請求項１６】組換え抗体を含有する卵。
【請求項１７】請求項１０に記載の方法によって製造された組換え抗体を
含有する卵。
【請求項１８】請求項１６または１７に記載の卵の治療学的有効量を投与
することを含む、動物の免疫方法。
【請求項１９】組換え抗体を分泌する形質転換したトリ細胞株。
【請求項２０】その生殖細胞および体細胞が、卵中への組換えタンパク質
の送達を容易にする第二のＤＮＡ配列（ii）に作動可能に連結した、該組換えタ
ンパク質をコードする第一のＤＮＡ配列（i）を含む発現系を含有する、トランスジェニック産卵性動物。
【請求項２１】その生殖細胞および体細胞が、（i）免疫グロブリンの定常領域をコードする第一のＤＮＡ配列および（ii）免疫グロブリンの可変領域を
コードする第二のＤＮＡ配列を含む発現系を含有する、トランスジェニック産卵
性動物。
【請求項２２】組換えタンパク質を産卵性動物の卵中で製造するであって
、（ａ）その体細胞および生殖細胞が、卵中への該組換えタンパク質の送達を容易
にする第二のＤＮＡ配列（ii）に作動可能に連結した、該組換えタンパク質をコ
ードする第一のＤＮＡ配列（i）を含む発現系を含有するトランスジェニック産卵性動物を調製し、（ｂ）該動物から卵を得、ついで（ｄ）任意に、該組換えタンパク質を該卵から単離することを含む方法。
【請求項２３】該第二のＤＮＡが、卵へ結合しうる免疫グロブリンの部分
をコードする、請求項２２に記載の方法。
【請求項２４】該免疫グロブリンの該部分が、免疫グロブリンの定常領域
ドメインのＣＨ２−ＣＨ３領域からのものである、請求項２３に記載の方法。
【請求項２５】該免疫グロブリンの該部分が、該卵上のＦｃ受容体に結合
する、請求項２３に記載の方法。
【請求項２６】該Ｆｃ受容体がトリのＦｃ受容体ネオネートである、請求
項２３に記載の方法。
【請求項２７】組換え抗体を産卵性動物の卵中で製造する方法であって、（ａ）その体細胞および生殖細胞が、（i）免疫グロブリンの定常領域をコードする第一のＤＮＡ配列、（ii）免疫グロブリンの可変領域をコードする第二のＤ
ＮＡ配列および（iii）抗体を発現させるのに充分な制御領域を含有するトランスジェニック産卵性動物を調製し、ついで（ｂ）該動物から卵を得ることを含む方法。
【請求項２８】該定常領域がヒト遺伝子に由来するものである、請求項２
７に記載の方法。