DE19607367A1 - Herstellung von transgenem Geflügel durch Gentransfer mit p95-spezifischen Genfähren - Google Patents
Herstellung von transgenem Geflügel durch Gentransfer mit p95-spezifischen GenfährenInfo
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Description
Die vorliegende Erfindung betrifft neue Proteinkonjugate und
DNA-Protein-Komplexe, die als Gentransfersysteme geeignet
sind, sowie ein Verfahren zur Herstellung von transgenem Ge
flügel
Die Entwicklung von Techniken zur Erzeugung transgener Tiere,
die fremde und/oder manipulierte Gene in ihrer Keimbahn tra
gen, ist sowohl für die Grundlagenforschung als auch für kom
merzielle Zwecke von größter Bedeutung. Zahlreiche Experimente
zur Untersuchung der Expression und Funktion von Genen, zur
Wirksamkeit genetischer Kontrollelemente und zur Erzeugung von
Tiermodellen für menschliche Krankheiten wurden bisher an
transgenen Tieren, insbesondere an der Maus, durchgeführt.
Durch selektive Deletion bestimmter Gene und die Bestimmung
des resultierenden Phänotyps der Maus konnten wertvolle Er
kenntnisse hinsichtlich der Funktion von Genen gewonnen wer
den, die mit üblichen biochemischen oder molekularbiologischen
Techniken nicht erreichbar gewesen wären.
Zur Erzeugung transgener Säugetiere gibt es mehrere Methoden,
die heute in breitem Umfang angewandt werden:
- i) Mikroinjektion von DNA in den Pronucleus der Eizelle,
- ii) Transfektion embryonischer Stammzellen und deren Wieder einführung in Blastulae und
- iii) Infektion des Embryos durch retrovirale Vektoren, welche ein interessierendes Gen enthalten.
Die Manipulation der Keimbahn von Vögeln, insbesondere von
Hühnern, wäre sowohl für die Grundlagenforschung als auch für
die Geflügelindustrie von höchster Bedeutung. Auf diese Weise
könnte Geflügel erzeugt werden, das gegenüber Krankheiten
resistent ist oder eine verbesserte Nahrungsverwertung und
Wachstumsrate aufweist. Weiterhin könnten transgene Vögel als
Bioreaktoren verwendet werden, um Biomoleküle und Polypeptide
wie etwa Immunglobuline, Wachstumsfaktoren oder Enzyme zu
erzeugen, die dann auf einfache Weise aus den Eiern aufgerei
nigt werden können. Eine andere wichtige Anwendungsmöglichkeit
für transgenes Geflügel in der Lebensmittelindustrie ist die
Erzeugung von Eiern mit geringem Cholesteringehalt.
Trotz dieser großen potentiellen Anwendungsmöglichkeiten konn
ten bisher nur geringe Erfolge bei der Herstellung von trans
genem Geflügel erreicht werden. Der Gentransfer wurde nämlich
bisher sehr stark durch Probleme behindert, die mit der in
vitro-Manipulation und Kultivierung des frühen Hühnerembryos
in Zusammenhang stehen und auf das Reproduktions- und Embryo
nalentwicklungssystem bei Vögeln zurückzuführen sind. Das Dot
ter enthaltende Ei wird nämlich direkt nach der Ovulation be
fruchtet und die Embryonalentwicklung beginnt im Eileiter
während der Ausbildung des Eis. Der Vogelembryo wäre direkt
nach der Oviposition leicht zugänglich, doch zu diesem Zeit
punkt besteht das Blastoderm aus etwa 60.000 Zellen, die in
zwei Schichten organisiert sind (Stern (1990), Development
109, 667-682; Kochav et al. (1980) , Dev.Biol. 79, 296-308).
Dies hat zur Folge, daß die DNA-Mikroinjektion in männliche
Pronuklei in befruchteten Eiern im Einzellenstadium nur mit
größten Schwierigkeiten möglich ist. Dennoch wurde diese Pro
zedur vor kurzem erfolgreich zur Erzeugung transgener Vögel
durch Keimbahntransmission der fremden DNA angewendet (Love et
al. (1994), Bio Technology 12, 60-63). Für dieses Verfahren
muß jedoch ein kompliziertes ex vivo-System in Wirtsschalen
für die gesamte Dauer der embryonischen Entwicklung vor dem
Schlüpfen angewendet werden (Ono et al. (1994), Dev.Biol. 161,
126-130; Perry (1988), Nature 331, 70-72), wodurch es für eine
Anwendung in großem Umfang relativ ungeeignet ist. Weiterhin
muß dieses Verfahren auch noch erst in anderen Labors erfolg
reich reproduziert werden.
Vor kurzem wurde gezeigt, daß pluripotente Zellen, die aus
einem Blastoderm der Stufe X, das aus gelegten Eiern isoliert
wird, vereinzelt wurden, zu in der Keimbahn chimären Hühnern
führten, wenn sie in durch Gammastrahlung geschwächte Empfän
gerembryos injiziert wurden (Carsience et al. (1993), Develop
ment 117, 669-675). Dieses Verfahren wurde als geeignete Me
thode zur Manipulation des Hühnergenoms vorgeschlagen (Etches
et al. (1993), Poultry Sci. 72, 882-889). Jedoch wird erst die
zukünftige Entwicklung zeigen, ob das Verfahren tatsächlich
zur Erzeugung transgener Vögel geeignet ist.
Zur Zeit besteht die einzige praktisch durchführbare Möglich
keit zur Erzeugung transgener Vögel darin, das Vogelblastoderm
mittels Injektion rekombinanter Retroviren durch die Eier
schale zu infizieren (Salter et al. (1986), Virology 157, 236-
240; Bosselman et al. (1989), Science 243, 533-535) . Mit dieser
Technik werden jedoch retrovirale Sequenzen in das Vogelgenom
eingeführt, was aus mehreren Gründen von Nachteil ist. Erstens
können retrovirale Sequenzen das Expessionsmuster des trans
genen Organismus stark beeinflussen, wodurch die Erzeugung
transgener Tiere mit kontrollierter Expression des Fremdgens
erschwert wird. Zweitens beinhaltet die Einführung retrovira
ler Sequenzen das Risiko der Erzeugung rekombinanter Organis
men mit Wildtyp-Viren. Drittens dürfte die Verwendung von
Retroviren in der kommerziellen Geflügelhaltung von der Öf
fentlichkeit nur sehr schlecht akzeptiert werden, da gerade
sehr große Anstrengungen zur Eliminierung solcher Viren aus
kommerziell gehaltenem Geflügel unternommen werden (Perry und
Sang (1993), Transgenic Res. 2, 125-133).
Die der vorliegenden Erfindung zugrundeliegende Aufgabe be
stand somit darin, ein Gentransfersystem zur Erzeugung trans
gener Tiere, insbesondere transgener Vögel, bereitzustellen,
bei dem die Nachteile des Standes der Technik mindestens teil
weise vermieden werden. Insbesondere soll das Gentransfersy
stem die Erzeugung von transgenem Geflügel auf einfache Weise
mit hoher Effizienz ermöglichen.
Diese Aufgabe wird gelöst durch Bereitstellung eines Gentrans
fersystems, das auf dem Transfer von Nucleinsäuren in eine
Zielzelle mittels Rezeptor-vermittelter Endozytose beruht.
Dieses System eignet sich generell zum Transfer von Nuclein
säuren in Zellen und insbesondere zum Transfer von DNA in die
Eizellen von Hühnern und anderen eierlegenden Spezies, um
transgene Tiere herzustellen.
Ein Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist somit ein Kon
jugat, umfassend
- a) einen Liganden für einen Rezeptor der LDL-Rezeptorfamilie und
- b) einen Nucleinsäure-Carrier.
Das erfindungsgemäße Konjugat eignet sich hervorragend als
Genfähre zur Einschleusung von fremden Nucleinsäuren in eine
Zelle. Die Ligandenkomponente des Konjugats bindet dabei an
einen Rezeptor auf der Zielzelle, wodurch eine Rezeptor-ver
mittelte Endozytose des Konjugats sowie einer damit assoziier
ten Nucleinsäure in die Zielzelle bewirkt werden kann. Die
Nucleinsäure-Carrier-Komponente des Konjugats bildet mit einer
Nucleinsäure, insbesondere einem DNA-Molekül, welches in die
Zielzelle eingeführt werden soll, einen unter physiologischen
Bedingungen im wesentlichen stabilen Komplex. Mit Hilfe des
erfindungsgemäßen Konjugats gelingt insbesondere die Ein
schleusung fremder Nucleinsäuren in Eizellen von Vögeln und
insbesondere Hühnern, wodurch die Herstellung von keimbahn
transformierten transgenen Vögeln auf einfache Weise möglich
wird.
Die Ligandenkomponente des Konjugats wird vorzugsweise so
ausgewählt, daß sie an den Hühnereizellenrezeptor p95 bzw. an
ein Analogon dieses Rezeptors in anderen Vogelspezies bindefä
hig ist. Besonders bevorzugt wird ein möglichst selektiv an
p95 bzw. ein Analogon davon bindefähiger Ligand verwendet. p95
ist an der Oberfläche wachsender Hühnereizellen lokalisiert
und vermittelt die Aufnahme von VLDL und Vitellogenin (VTG)
aus dem Blutstrom, die mehr als zwei Drittel der Tromkenmasse
der vollständig entwickelten Eizelle bilden. Die Klonierung
und rekombinante Expression des Hühnereizellenrezeptors p95
ist in der internationalen Patentanmeldung WO95/15379
beschrieben, auf deren Offenbarung hier ausdrücklich Bezug
genommen wird.
Als Rezeptor-Liganden geeignet sind daher insbesondere Lipo
proteine, Eigelbvorläuferproteine, heterologe Rezeptor-binde
fähige Proteine oder Fragmente solcher Proteine, welche die
Fähigkeit zur Rezeptorbindung, insbesondere an p95, aufweisen.
Vorzugsweise ist die Ligandenkomponente des erfindungsgemäßen
Konjugats ein Lipoprotein, Protein oder Peptid, welches ausge
wählt ist aus der Gruppe umfassend VLDL, Apolipoprotein B,
Apolipoprotein E, Lipoproteinlipase, α₂-Macroglobulin, Preg
nancy Zone Protein, Vitellogenin, Plasminaktivator-Plasmin
aktivatorinhibitor 1-Komplex, Pseudomonas aeruginosa Exotoxin
A, 39 kD Rezeptor-assoziiertes Protein (RAP), Riboflavin-bin
dendes Protein, Rous-Sarcomavirus-Hüllprotein, Lactoferrin
Vesikular-Stomatitisvirus-Oberflächenepitop oder Rezeptor
bindende Fragmente der zuvor genannten Substanzen.
Besonders bevorzugt als Liganden sind einerseits die Eigelb-
Vorläuferproteine VLDL, Vitellogenin und Riboflavin-bindendes
Protein, die auf bekannte Weise aus mit Östrogen behandelten
Hähnen gewonnen werden können (George et al. (1987), J.Biol.
Chem. 262, 16838-16847; MacLachlan et al. (1994), J.Biol.Chem.
269, 24127-24132; Stifani et al. (1988), Biochem.J. 250, 467-
475). Andererseits können auch kleine Proteine mit hoher Affi
nität für p95 verwendet werden, insbesondere das Rezeptor
assoziierte Protein RAP (Hiesberger et al. (1995), J.Biol.
Chem. 270, 18219-18226), Lactoferrin (Hiesberger et al.
(1995), Supra) und Apolipoprotein-E (Steyrer et al. (1990),
J.Biol.Chem. 265, 19575-19581) . Diese Proteine können auf ein
fache Weise aus natürlichen Quellen, z. B. Kuhmilch für Lacto
ferrin, Kaninchen-β-VLDL für Apo E, oder als rekombinante
Proteine in Bakterien gewonnen werden. Weiterhin können auch
kleine Peptide verwendet werden, welche die Binderegionen der
oben genannten Proteine enthalten (Mahley (1988), Science 240,
622-630;
Warshawsky et al. (1994), J.Biol.Chem. 269, 3325-3330;
Hüttinger et al. (1988), Clin.Biochem. 21, 87-92).
Alternativ kann das erfindungsgemäße Konjugat als Ligandenkom
ponente auch einen mit dem Rezeptor bindefähigen Antikörper
bzw. ein Fragment eines solchen Antikörpers enthalten. Beson
ders bevorzugt sind einzelkettige Antikörperfragmente, welche
an die Ligandenbindedomäne von p95 mit hoher Affinität binden.
Ein derartiges Antikörperfragment, welches alle bekannten
physiologischen Liganden vom Rezeptor verdrängt und auf ein
fache Weise in großen Mengen durch rekombinante DNA-Technolo
gie, z. B. aus dem Überstand von Phagen-infizierten Bakterien
hergestellt werden kann, ist bei Hodits et al. (1995), J.Biol.
Chem. 270, 24078-24085 beschrieben.
Die Nucleinsäure-Carrier-Komponente des erfindungsgemäßen
Konjugats ist eine Substanz, welche in der Lage ist, mit einer
Nucleinsäure einen unter physiologischen Bedingungen im we
sentlichen stabilen Komplex zu bilden, der durch Rezeptor
vermittelte Endozytose in eine Zielzelle eingeschleust werden
kann. In einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung ist
der Nucleinsäure-Carrier ein Nucleinsäure-komplexierendes
Polykation, insbesondere ein Polypeptid, welches eine Vielzahl
von positiven Ladungen trägt. Besonders bevorzugt ist der
Nucleinsäure-Carrier in dieser Ausführungsform der Erfindung
ein Poly-L-Lysin.
In einer weiteren Ausführungsform der Erfindung kann auch ein
viraler Nucleinsäure-Carrier verwendet werden. Ein solcher
viraler Nucleinsäure-Carrier umfaßt vorzugsweise ein leeres
Viruspartikel, welches zur Aufnahme von Nucleinsäuren in der
Lage ist. Besonders bevorzugt umfaßt der Nucleinsäure-Carrier
ein leeres Viruspartikel von Adeno-assoziiertem Virus (AAV).
Das erfindungsgemäße Konjugat zwischen Rezeptorligand und
Nucleinsäure-Carrier kann einerseits durch chemische Kopplung
beider Komponenten hergestellt werden. Diese chemische Kopp
lung kann nach an sich bekannten Methoden, z. B. nach der Car
bodiimidmethode unter Verwendung von
1-Ethyl-3(3-dimethyl-aminopropyl)carbodiimid als Kopplungs
reagenz erfolgen. Andererseits kann der Ligand mit dem
Nucleinsäure-Carrier auch eine genetische Fusion bilden. Der
artige genetische Fusionen zwischen dem Rezeptorliganden und
dem Nucleinsäure-Carrier können beispielsweise durch rekom
binante DNA-Methoden, z. B. durch Verknüpfung einer für RAP,
Lactoferrin, Apolipoprotein E oder ein Rezeptor-bindefähiges
Antikörperfragment kodierenden DNA-Sequenz mit einer für Poly
lysin oder einem viralen Capsidprotein kodierenden DNA-Sequenz
und Expression des resultierenden Konstrukts in einer geeigne
ten Wirtszelle ohne weiteres hergestellt werden.
Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein
Komplex eines erfindungsgemäßen Konjugats aus Rezeptor-Ligand
und Nucleisäure-Carrier mit einer Nucleinsäure. Vorzugsweise
ist dieser Komplex unter physiologischen Bedingungen im we
sentlichen stabil. Die Nucleinsäure dieses Komplexes ist vor
zugsweise eine doppelsträngige DNA, die in linearer oder zir
kulärer Form vorliegen kann. Die Herstellung des Komplexes
kann durch Inkubation des Konjugats mit einer Nucleinsäure
unter solchen Bedingungen erfolgen, bei denen eine Komplexbil
dung zwischen der Nucleinsäure-Carrier-Komponente des Konju
gats und der Nucleinsäure stattfindet. Unter "Komplexbildung"
im Sinne der vorliegenden Erfindung kann entweder eine direk
te, z. B. ionische Wechselwirkung zwischen Carrier und Nuclein
säure wie im Falle eines Polylysin-Carriers oder eine Verkap
selung wie im Falle eines viralen Carriers zu verstehen sein.
Das Mengenverhältnis zwischen Konjugat und Nucleinsäure kann
in weiten Bereichen variiert werden. Der Fachmann kann das
optimale Verhältnis für eine bestimmte Nucleinsäure durch
einfache in vitro Versuche ermitteln. Die Nucleinsäure ist
vorzugsweise eine doppelsträngige DNA, die in linearer
oder/und zirkulärer Form vorliegen kann.
Das erfindungsgemäße Konjugat oder der erfindungsgemäße Kon
jugat-Nucleinsäure-Komplex kann als Genfähre zur Einschleusung
von Nucleinsäuren in eine Zelle verwendet werden, an deren
Oberfläche zweckmäßigerweise ein Rezeptor der LDL-Rezeptorfa
milie, vorzugsweise der p95-Rezeptor lokalisiert ist. Auf
diese Weise kann einerseits ein Gentransfer in in vitro kulti
vierte Zellen, z. B. in mit p95 transfizierten COS-Zellen (Bujo
et al. (1994), EMBO J. 13, 5165-5175) durchgeführt werden. Auf
diese Weise kann bei Verwendung von nachweisbaren Reporterge
nen wie etwa dem Beta-Galactosidasegen oder dem Luciferasegen
und bei Verwendung unterschiedlicher Mengenverhältnisse von
Konjugat und Nucleinsäure eine Optimierung der Gentransfer
effizienz erreicht werden.
Andererseits eignet sich das Verfahren auch natürlich zur
Herstellung transgener Tiere, z. B. transgener Vögel und ins
besondere transgener Hühner. Hierzu können die Konjugat-Nu
cleinsäure-Komplexe in den Blutkreislauf von Legehennen inji
ziert werden, von wo sie dann über Rezeptor-vermittelte Endo
zytose in die wachsende Eizelle gelangen. In frühen Stadien
der Embryonalentwicklung internalisieren die Zellen der Bla
stenschicht Eigelb direkt in ihr Zytoplasma. Noch dazu ist die
Eizelle die der Zirkulation am besten zugängliche Zelle im
Vogel. In späteren Stadien wird Eigelbmaterial in den Blut
strom des sich entwickelnden Embryos durch Zellen des Dotter
sackendoderms mobilisiert. Eine mit Eigelbkomponenten assozi
ierte DNA wird von den sich schnell teilenden Zellen des frü
hen Blastoderms aufgenommen und in das Genom von einigen die
ser Zellen stabil inkorporiert. Da manche dieser Zellen Vor
läufer von Keimzellen sind, können auf diese Weise chimäre
Tiere mit Gonaden erzeugt werden, die eine Mischung von trans
genen und normalen Zygoten enthalten. Wenn der Anteil der
transgenen Gameten hoch genug ist, gelingt die Ausbrütung
einer F1 Generationen von transgenen Tieren.
Ein Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist somit ein Ver
fahren zur Erzeugung transgener Zellen, wobei
- (a) man einen Konjugat-Nucleinsäure-Komplex mit Zellen, an deren Oberfläche ein Rezeptor der LDL-Rezeptorfamilie lokalisiert ist, unter solchen Bedingungen in Kontakt bringt, daß eine Internalisierung der Nucleinsäure in die Zellen erfolgt, und
- (b) solche Zellen identifiziert, in denen die eingeführte Nucleinsäure exprimiert wird.
Vorzugsweise ist an der Oberfläche der Zellen der Hühnerei
zellen Rezeptor p95 lokalisiert. Durch das erfindungsgemäße
Verfahren können fremde Nucleinsäuren in eine in vitro kulti
vierte Zelle oder auch in eine Embryonalzelle eines Tiers,
insbesondere in eine Embryonalzelle einer eierlegenden Spe
zies, z. B. in eine Hühnerembryonalzelle eingeschleust werden.
Schließlich betrifft die Erfindung auch eine transgene Zelle
bzw. ein transgenes Tier, die durch ein Verfahren wie zuvor
definiert erzeugt wurden. Auch Keimzellen dieses transgenen
Tieres bzw. die aus diesen Keimzellen erhältlichen Nachkommen
sind Gegenstand der vorliegenden Erfindung.
Das transgene Tier oder ein Nachkomme davon können als Biore
aktor zur Herstellung rekombinanter Polypeptide in Eiern ver
wendet werden. Außerdem kann das transgene Tier oder ein Nach
komme davon zur Erzeugung cholesterinarmer Eier verwendet
werden. Hierzu wird in die Keimbahn eine Nucleinsäure einge
schleust, deren Expression eine Reduzierung des Cholesterin
stoffwechsels oder/und eine Verringerung der Cholesterinauf
nahme in das Ei bewirken kann.
Die Steuerung des Cholesteringehalts von Eiern kann beispiels
weise dadurch erfolgen, daß transgene Hühner erzeugt werden,
die variante Formen von p95 enthalten, die eine geringere
Affinität für VLDL aufweisen und gegebenenfalls andere Ligan
den präferent erkennen. Auf diese Weise kann die VLDL-Endozy
those und somit der Cholesteringehalt des Eis reduziert wer
den. Geeignete Varianten von p95 weisen Mutationen insbeson
dere in einer oder mehreren der Ligandenbindedomänen (Lokali
sierung vgl. WO 95/15379) auf. Alternativ oder zusätzlich
können variante Formen von p95 erzeugt werden, die eine ver
ringerte Fähigkeit zur Internalisierung von Liganden, insbe
sondere VLDL, aufweisen.
Ein weiterer Aspekt der vorliegenden Erfindung betrifft die
Verwendung von RO-Hühnern (Bujo et al. (1995), Proc.Natl.Acad.
Sci. USA 92, 9905-9909) zur Herstellung transgener Hühner, die
Eier mit verringerten Cholesteringehalt erzeugen. RO-Hühner
("restricted ovulators"), sind Hühner, die keine Eier legen
und einen Defekt im p95-Rezeptor aufweisen. Die Zucht dieser
Hühner kann mittels heterozygoter Trägerhähne erfolgen. In
derartige RO-Hühner kann eine variante Form des p95-Gens ein
gebracht werden, durch welche die Eiablage wieder in Gang
kommt. Vorzugsweise wird hierbei eine solche variante Form von
p95 - wie zuvor erläutert - verwendet, die eine geringere
Cholesterinaufnahme als die native Form von p95 bewirkt. Die
Einführung des varianten p95-Gens erfolgt vorzugsweise als
Bolusinfektion einer Genfähre, die eine für einen varianten
p95 kodierende DNA enthält. Zur Keimbahntransformation ist
dabei nicht - wie in der bisher erläuterten Ausführungsform
der vorliegenden Erfindung - eine Rezeptor-vermittelte Endozy
tose von Nukleinsäuren erforderlich. Eine eventuell geringere
Transformationseffizienz kann durch die Selektion auf Eiablage
wieder ausgeglichen werden.
Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist somit
ein Verfahren zur Erzeugung transgener Zellen, dadurch gekenn
zeichnet, daß man in die Embryonalzelle einer eierlegenden
Spezies, die ein defektes Oocytenrezeptorgen enthält, ein
variantes Oocytenrezeptorgen einschleust, wobei des variante
Oocytenrezeptorgen für einen Oocytenrezeptor kodiert, der (a)
eine im Vergleich zum defekten Oocytenrezeptor höhere Aufnahme
von Lipoproteinen in die Zelle gestattet, so daß die Fähigkeit
zur Eiablage wieder hergestellt wird, und (b) eine im Ver
gleich zum Wildtyp-Rezeptor geringere Aufnahme von Lipoprotei
nen gestattet, so daß ein Ei mit verringertem Cholesteringe
halt resultiert.
Vorzugsweise wird das variante Oocytenrezeptorgen in die Em
bryonalzelle eines RO-Huhns eingeschleust.
Schließlich betrifft die Erfindung auch durch das Verfahren
erzeugte transgene Zellen und Tiere sowie die Keimzellen und
Nachkommen der transgenen Tiere. Die transgenen Tiere bzw.
deren Nachkommen können zur Erzeugung cholesterinarmer Eier
verwendet werden.
Weiterhin soll die vorliegende Erfindung durch nachfolgende
Beispiele näher erläutert werden.
Hühner VLDL, Vitellogenin und Riboflavin-bindendes Protein
wurden aus mit Östrogenen behandelten Hähnen gewonnen (George,
1987, Supra; MacLachlan, 1994, Supra; Stifani, 1988, Supra)
Lactoferrin wurde aus Kuhmilch, Apolipoprotein E aus Kanin
chen-β-VLDL und RAP aus rekombinanten Bakterienzellen gewon
nen.
Eine Inspektion durch SDS-PAGE identifizierte Proteine von 16
kD (Apoprotein-VLDL-II) und ca. 520 kD (Apoprotein B) in VLDL;
ein Triplet bei etwa 220 kDa (Vitellogenin); 27-29 kDa (Ribo
flavin-Bindungsprotein); ∼80kDa (Lactoferrin); 36 kDa (Apopro
tein E); und 39 kDa (RAP).
Die in Beispiel 1 isolierten Proteine und Lipoproteine wurden
an Poly-L-Lysin unter Verwendung von
1-Ethyl-3(3-dimethyl-aminopropyl)carbodiimid nach der von Wu
et al. (1989), J.Biol.Chem. 264, 16985-16987 beschriebenen
Methode gekoppelt. Die Kopplungsbedingungen wurden variiert,
um eine maximale DNA-Bindekapazität des resultierenden Pro
tein/Poly-L-Lysin-Komplexes ohne signifikante Verringerung der
Affinität an den Rezeptor zu erhalten.
Geeignete Kopplungsbedingungen waren die Verwendung von Poly-
L-Lysin mit einem Polymerisierungsgrad von weniger als 20 und
einem molaren Verhältnis von 10 : 1 bis 1 : 10 von Poly-L-Lysin zu
Ligandenprotein je nach der zu komplexierenden DNA.
Die in Beispiel 2 hergestellten Konjugate wurden mit DNA kom
plexiert. Die Komplexierung erfolgte bei einem molaren Ver
hältnis Phosphat- zu Aminogruppen von 1 : 2 bis 1 : 4 unter Ein
satz von 6 µg DNA oder Vielfachen davon in 250 mM Saccharose
bei Raumtemperatur oder 4°C. Als DNA wurde Beta-Galactosidase
Plasmid-DNA verwendet.
Es wurde die Aufnahme der in Beispiel 3 hergestellten Konju
gat-Nucleinsäure-Komplexe in mit p95 transformierte COS-Zellen
(Bujo et al. (1994), Supra) untersucht. Diese Zellen exprimie
ren signifikante Mengen des Hühnereizellenrezeptors p95.
Die Zellen wurden in Gegenwart von Konjugat-Nucleinsäure-Kom
plexen für zwei Tage bei 37°C inkubiert, um eine Endozytose
und Expression des Fremdgens zu ermöglichen. In Kontrollexpe
rimenten wurden die Nucleinsäure oder das Konjugat allein
zugegeben.
Die Analyse der Zellen erfolgte einerseits durch Verwendung
³²P- oder ¹²⁵I-markierter Protein/DNA-Komplexe und Messung der
von den Zellen aufgenommenen Radioaktivität. Weiterhin wurde
das Vorhandensein der Plasmide in den Zellen unter Verwendung
der PCR-Technik nachgewiesen.
Die Stärke der Expression der DNA in den transfizierten Zellen
wurde durch Anfärbung der Zellen mit X-Gal in Gegenwart von
Ferricyanid und Ferrocyanid gemessen. Diese Anfärbung ist spe
zifisch für exprimierte Beta-Galactosidase, so daß positive
Zellen auf einfache Weise durch ihre dunkelblauen Zellkerne
identifiziert werden konnten (Bonnerot et al. (1987), Proc.
Natl.Acad.Sci USA 84, 6795-6799).
Es wurden die in Tabelle 1 gezeigten Ergebnisse erhalten.
Die in Beispiel 3 hergestellten Konjugat-Nucleinsäure-Komplexe
wurden als einzelner Bolus von 100 µg Plasmid-DNA pro Henne in
den Blutkreislauf von Legehennen injiziert. Zum Nachweis wurde
³²P markierte DNA verwendet. Weiterhin erfolgte der Nachweis
der injizierten DNA durch PCR-Techniken.
Die der Injektion folgend gelegten Eier wurden über einen
Zeitraum von 2 Wochen gesammelt. Um den an unterschiedlichen
Tagen abgelegten Dotter zu markieren, wurden dem Futter jeden
Tag andere fettlösliche Farbstoffe zugesetzt. Die Eier wurden
unmittelbar nach dem Legen hartgekocht und der Eidotter ge
schnitten, fotografiert und autoradiographisch analysiert.
Nadelbiopsien des Dottermaterials aus Bereichen, die den farb
stoffmarkierten Ringen entsprachen, wurden für eine quantita
tive PCR-Analyse verwendet.
Die Analyse der Eier ergab eine zeitabhängige Verteilung der
DNA. Die am Tag nach der Injektion gelegten Eier zeigten die
DNA in einem peripheren Ring, in den folgenden 7-8 Tagen wan
derten die Ringe zentripetal, und ab dem 8. Tag zeigten die
Dier eine Ansammlung von Radioaktivität und PCR-amplifizier
barem Material in einer zentralen Region von etwa 5 mm Durch
messer.
Eier von Hennen, die gemäß dem in Beispiel 5 beschriebenen
Protokoll behandelt worden waren, wurden gesammelt und für bis
zu 72 Stunden inkubiert. Die Embryos wurden dann seziert und
zur Anfärbung fixiert. Um das Ausmaß der Transformation von
primordialen Keimzellen zu bestimmen, wurde eine doppelte
Anfärbung auf Gegenwart von Beta-Galactosidase im Zellkern und
mit einem Glycogen-spezifischen histochemischen Marker zum
Nachweis der großen Glycogen-positiven Zellen im Keimbogen
durchgeführt. Abhängig vom Entwicklungsstadium wurden die
Embryos entweder vollständig oder als Schnitte angefärbt. Die
Anzahl der Beta-Galactosidase-positiven, Glycogen-positiven
Zellen als Prozentsatz der Glycogen-positiven Zellen wurde als
Maß für die Wirksamkeit der Keimbahntransformation angenommen.
Aus den Eiern der gemäß dem Protokoll von Beispiel 5 behandel
ten Legehennen wurden Küken ausgebrütet. Von den männlichen
Küken wurden Blutproben entnommen und durch PCR auf das Vor
handensein des eingeführten Fremdgens getestet. Aus den posi
tiven Exemplaren wurden im Alter von 24 Wochen Samenproben
entnommen und der Prozentsatz der transgenen Samenzellen durch
in situ Hybridisierung an Schmierabstrichen von Samenzellen
nach der Methode von Lichter et al. (1990), Science 247, 64-69
bestimmt. Hähne mit dem größten Prozentanteil an transgenem
Sperma wurden zur Zucht verwendet. Die resultierende Nachkom
menschaft wurde auf das Vorhandensein des eingeführten Fremd
gens getestet.
Die Keimbahntransformation in männlichen Küken war mit einer
Rate von bis zu ca. 5/100 erfolgreich.
Claims (38)
1. Konjugat umfassend
- (a) einen Liganden für einen Rezeptor der LDL-Rezeptor familie und
- (b) einen Nucleinsäure-Carrier.
2. Konjugat nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet,
daß der Ligand ein Lipoprotein, Eigelb-Vorläuferprotein,
ein heterologes Rezeptor-bindefähiges Protein oder ein
Rezeptor-bindendes Fragment eines solchen Proteins ist.
3. Konjugat nach Anspruch 1 oder 2,
dadurch gekennzeichnet,
daß der Ligand ausgewählt ist aus der Gruppe umfassend
VLDL, Apolipoprotein B, Apolipoprotein E, Lipoproteinli
pase, α₂-Macroglobulin, Pregnancy Zone Protein, Vitelloge
nin, Plasminaktivator-Plasminaktivatorinhibitor 1-Kom
plex, Pseudomonas aeruginosa Exotoxin A, 39 kD Rezeptor
assoziiertes Protein (RAP), Riboflavin-bindendes Protein,
Rous-Sarcomavirus-Hüllprotein, Lactoferrin, Vesikular
Stomatitisvirus-Oberflächenepitop oder Rezeptor-bindende
Fragmente der zuvor genannten Substanzen.
4. Konjugat nach einem der Ansprüche 1-3,
dadurch gekennzeichnet,
daß der Ligand VLDL, Vitellogenin, Riboflavin-bindendes
Protein, Rezeptor-assoziiertes Protein, Lactoferrin,
Apolipoprotein E oder ein Rezeptor-bindendes Fragment der
zuvor genannten Substanzen ist.
5. Konjugat nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet,
daß der Ligand ein mit dem Rezeptor bindefähiger Antikör
per oder ein Antikörperfragment ist.
6. Konjugat nach Anspruch 5,
dadurch gekennzeichnet,
daß der Ligand ein einzelkettiges Antikörperfragment ist.
7. Konjugat nach einem der Ansprüche 1-6,
dadurch gekennzeichnet,
daß der Ligand an den Hühnereizellenrezeptor p95 bindefä
hig ist.
8. Konjugat nach einem der Ansprüche 1-7,
dadurch gekennzeichnet,
daß der Nucleinsäure-Carrier ein Nucleinsäure-komplexie
rendes Polykation ist.
9. Konjugat nach Anspruch 8,
dadurch gekennzeichnet,
daß das Polykation ein mehrfach positiv geladenes Poly
peptid, insbesondere Poly-L-Lysin, ist.
10. Konjugat nach einem der Ansprüche 1-7,
dadurch gekennzeichnet,
daß der Nucleinsäure-Carrier ein leeres Viruspartikel
umfaßt.
11. Konjugat nach Anspruch 10,
dadurch gekennzeichnet,
daß der Nucleinsäure-Carrier ein leeres Viruspartikel von
Adeno-assoziiertem Virus (AAV) umfaßt.
12. Konjugat nach einem der Ansprüche 1-11,
dadurch gekennzeichnet,
daß der Ligand mit dem Nucleinsäure-Carrier durch che
mische Kopplung verknüpft ist.
13. Konjugat nach einem der Ansprüche 1-12,
dadurch gekennzeichnet,
daß der Ligand mit dem Nucleinsäure-Carrier eine gene
tische Fusion bildet.
14. Komplex eines Konjugats nach einem der Ansprüche 1-13
und einer Nucleinsäure.
15. Verfahren zur Herstellung eines Komplexes nach Anspruch
14,
dadurch gekennzeichnet,
daß man ein Rezeptorligand-Nucleinsäure-Carrier Konjugat
nach einem der Ansprüche 1-13 mit einer Nucleinsäure
unter Bedingungen inkubiert, bei denen eine Komplexbil
dung zwischen der Nucleinsäure-Carrier-Komponente des
Konjugats und der Nucleinsäure stattfindet.
16. Verwendung eines Konjugats nach einem der Ansprüche 1-
13 oder eines Konjugat-Nucleinsäure-Komplexes nach An
spruch 14 als Genfähre zur Einschleusung von Nucleinsäu
ren in eine Zelle.
17. Verwendung nach Anspruch 16 zur Herstellung transgener
Tiere.
18. Verwendung nach Anspruch 17 zur Herstellung transgener
Vögel.
19. Verwendung nach Anspruch 18 zur Herstellung transgener
Hühner.
20. Verfahren zur Erzeugung transgener Zellen,
dadurch gekennzeichnet,
daß
- (a) man einen Konjugat-Nucleinsäure-Komplex mit Zellen, an deren Oberfläche ein Rezeptor der LDL-Rezeptorfa milie lokalisiert ist, unter solchen Bedingungen in Kontakt bringt, daß eine Internalisierung der Nucleinsäure in die Zellen erfolgt, und
- (b) solche Zellen identifiziert, in denen die einge führte Nucleinsäure exprimiert wird.
21. Verfahren nach Anspruch 20,
dadurch gekennzeichnet,
daß an der Oberfläche der Zellen der Hühnereizellenrezep
tor p95 lokalisiert ist.
22. Verfahren nach Anspruch 20 oder 21,
dadurch gekennzeichnet,
daß man die Nucleinsäure in eine in vitro kultivierte
Zelle einschleust.
23. Verfahren nach Anspruch 20 oder 21,
dadurch gekennzeichnet,
daß man die Nucleinsäure in eine Embryonalzelle einer
eierlegenden Spezies einschleust.
24. Verfahren nach Anspruch 23,
dadurch gekennzeichnet,
daß man die Nucleinsäure in eine Hühnerembryonalzelle
einschleust.
25. Verfahren nach Anspruch 23 oder 24,
dadurch gekennzeichnet,
daß man ein variantes p95-Gen einschleust.
26. Transgene Zelle, erzeugt durch ein Verfahren nach einem
der Ansprüche 20-25.
27. Transgenes Tier, erzeugt durch ein Verfahren nach einem
der Ansprüche 20-25.
28. Keimzelle eines transgenen Tiers nach Anspruch 27.
29. Nachkomme eines transgenen Tiers nach Anspruch 27.
30. Verwendung eines transgenen Tiers nach Anspruch 27 oder
eines Nachkommens davon als Bioreaktor zur Herstellung
rekombinanter Polypeptide in Eiern.
31. Verwendung eines transgenen Tiers nach Anspruch 27 oder
eines Nachkommens davon zur Erzeugung cholesterinarmer
Eier.
32. Verfahren zur Erzeugung transgener Zellen,
dadurch gekennzeichnet,
daß man in die Embryonalzelle einer eierlegenden Spezies,
die ein defektes Oocytenrezeptorgen enthält, ein varian
tes Oocytenrezeptorgen einschleust, wobei das variante
Oocytenrezeptorgen für einen Oocytenrezeptor kodiert, der
(a) eine im Vergleich zum defekten Oocytenrezeptor höhere
Aufnahme von Lipoproteinen in die Zelle gestattet, so daß
die Fähigkeit zur Eiablage wieder hergestellt wird, und
(b) eine im Vergleich zum Wildtyp-Rezeptor geringere
Aufnahme von Lipoproteinen gestattet, so daß ein Ei mit
verringertem Cholesteringehalt resultiert.
33. Verfahren nach Anspruch 32,
dadurch gekennzeichnet,
daß man das variante Oocytenrezeptorgen in die Embryonal
zelle eines RO-Huhns einschleust.
34. Transgene Zelle, erzeugt durch ein Verfahren nach An
spruch 32 oder 33.
35. Transgenes Tier, erzeugt durch ein Verfahren nach An
spruch 32 oder 33.
36. Keimzelle eines transgenen Tiers nach Anspruch 35.
37. Nachkomme eines transgenen Tiers nach Anspruch 35.
38. Verwendung eines transgenen Tiers nach Anspruch 35 oder
eines Nachkommens davon zur Erzeugung cholesterinarmer
Eier.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE1996107367 DE19607367A1 (de) | 1996-02-27 | 1996-02-27 | Herstellung von transgenem Geflügel durch Gentransfer mit p95-spezifischen Genfähren |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE1996107367 DE19607367A1 (de) | 1996-02-27 | 1996-02-27 | Herstellung von transgenem Geflügel durch Gentransfer mit p95-spezifischen Genfähren |
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---|---|
DE19607367A1 true DE19607367A1 (de) | 1997-08-28 |
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ID=7786575
Family Applications (1)
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DE1996107367 Withdrawn DE19607367A1 (de) | 1996-02-27 | 1996-02-27 | Herstellung von transgenem Geflügel durch Gentransfer mit p95-spezifischen Genfähren |
Country Status (1)
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---|---|
DE (1) | DE19607367A1 (de) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1999010505A2 (en) * | 1997-08-22 | 1999-03-04 | University Of Guelph | Production of proteins in eggs |
-
1996
- 1996-02-27 DE DE1996107367 patent/DE19607367A1/de not_active Withdrawn
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1999010505A2 (en) * | 1997-08-22 | 1999-03-04 | University Of Guelph | Production of proteins in eggs |
WO1999010505A3 (en) * | 1997-08-22 | 1999-05-20 | Univ Guelph | Production of proteins in eggs |
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