JP2000159685A - シイタケ菌糸体抽出物由来のlak活性増強物質 - Google Patents

シイタケ菌糸体抽出物由来のlak活性増強物質

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JP2000159685A
JP2000159685A JP10353927A JP35392798A JP2000159685A JP 2000159685 A JP2000159685 A JP 2000159685A JP 10353927 A JP10353927 A JP 10353927A JP 35392798 A JP35392798 A JP 35392798A JP 2000159685 A JP2000159685 A JP 2000159685A
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lak
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Kenji Asano
健治 淺野
Yukiko Matsuda
由紀子 松田
Yutaka Tajima
裕 田島
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Kobayashi Pharmaceutical Co Ltd
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Abstract

(57)【要約】 【課題】 副作用が無くて安価に入手可能な抗腫瘍剤も
しくは抗癌剤、特にLAK療法に使用可能な免疫療法剤
を提供する。 【解決手段】 シイタケ菌糸体抽出物をIL−2に代え
て用いる。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【発明の属する技術分野】本発明は、腫瘍免疫学の分野
に関する。特定すれば、本発明は、抗腫瘍活性および/
または抗癌活性を有する免疫療法剤に関する。さらに特
定すれば、本発明は、LAK細胞(Lymphokine Activat
ed Killer Cell:リンホカイン活性化キラー細胞)の誘
導に有用な免疫療法剤に関する。
【0002】
【従来の技術】腫瘍免疫学における基本的概念は、腫瘍
細胞が腫瘍抗原を有するということである。即ち、腫瘍
細胞に特異な抗原(TSA:Tumor Specific Antigen)、
または正常細胞にもごく微量存在するが細胞の癌化に伴
いその発現が増強される腫瘍関連抗原(TAA:Tumor Ass
ociated Antigen)の存在がわかっている。このような
腫瘍抗原は自己の細胞の変異に伴って生じる遺伝子自体
またはその発現の変化により発現される。抗原性が異常
な腫瘍細胞の治療法としては、免疫療法がもっとも一般
的であり、腫瘍抗原で免疫したり、免疫機能を増強する
薬剤が用いられる。一般に、腫瘍細胞を破壊する活性は
正常細胞よりもNK(ナチュラルキラー)細胞の方が高
く、またNK細胞の活性も免疫療法により増強されるこ
とが知られている。NK細胞は正常個体中にも存在する
細胞障害性リンパ系細胞であり、腫瘍細胞、ウイルス感
染細胞等に対してMHC抗原に拘束されずに障害活性を
示すことが知られているが、NK細胞でも殺傷し得ない
腫瘍細胞の存在も明らかとなった。
【0003】米国NCIのS.Rosenbergは、リンパ球
をインターロイキン2(IL−2)と共に培養すると、
広い範囲の腫瘍細胞に細胞障害性を示す、NK細胞でも
殺傷不可能な腫瘍細胞を殺傷するキラー細胞が誘導され
ることを発見した(特開昭62-116518号参照)。このキ
ラー細胞はLAK細胞(Lymphokine Activated KillerC
ell:リンホカイン活性化キラー細胞)と命名された。
LAK細胞は、細胞学上は均一な集団ではなく、NK細
胞系やキラーT細胞系の細胞集団であることが知られて
いる。近年は、LAK細胞を用いた養子免疫が試みられ
ており(LAK療法)、LAK細胞の繰り返し投与によ
り末期癌の縮小あるいは増殖抑制例が報告されている。
しかしながら、LAK療法には多量の白血球分離に対す
る肉体的負担や高濃度のIL−2投与による重篤な副作
用があり、大量培養に関する経済的負担も大きい。具体
的には、IL−2を用いたLAK養子免疫療法はIL−
2を単独で用いた場合よりも副作用が強く、全身倦怠、
悪寒、発熱、低アルブミン、貧血、好酸球増加などの症
状は必発である。さらに注目すべきは、重大ないくつか
の副作用の発現にLAK細胞の正常細胞に対する傷害活
性が関与している可能性が高いことで、造血幹細胞傷害
による貧血や血小板現象のほか、リンパ球、マクロファ
ージや血管内皮細胞に対するインビトロ傷害も報告され
ている。
【0004】そこで、このような欠点を補う制癌剤の開
発が望まれている。抗癌剤は一般に癌細胞の異常な増殖
性を標的としており、阻害対象により分類すれば、核酸
合成阻害剤として、例えばアルキル化剤、核酸合成基質
アナログ、抗生物質、ステロイドホルモン等があり、有
糸分裂阻害剤として植物アルカロイド等がある。しかし
ながら、これらの抗癌剤は、同時に増殖性の正常細胞で
ある骨髄、胃腸管上皮、毛嚢に対して著しい副作用を示
す。即ち、一般的な症状として、悪心、嘔吐、口腔およ
び小腸の潰瘍、下痢、脱毛、血液の有効成分産生の低下
をきたす骨髄抑制等を引き起こす。そこで、これらの抗
癌剤に代わる物質として、古くから抗癌作用を有するこ
とがわかっている安全な細菌類あるいは食品等に含まれ
る抗癌作用物質が模索されている。例えば、細菌により
癌を制圧しようとする試みは既に1900年代から始められ
ており、セラチア菌と溶連菌の培養濾液を用いたColey'
sトキシン(1964)、BCGによる白血病治療(Mathe,
G., Adv.Cancer Res., 14, 1, 1971)およびモルモット
における癌腫瘤の退縮(Zbar, B.,et al., J. Natl. Ca
ncer Inst., 48, 831, 1971)、および酵母壁多糖体の
投与によるサルコーマ180等の移植癌に対する有効性等
が報告されている。
【0005】特に、多糖体に関しては、酵母グルカン、
酵母マンナン、その他の菌体の多糖体、地衣類および担
子菌類の多糖体における抗癌効果の追求に多大な労力が
注がれてきた。しかしながら、これらのうちで制癌免疫
増強薬として現在市販されているのは、担子菌類のサル
ノコシカケ科のカワラタケ培養菌糸体由来のクレスチン
(呉羽化学、三共製薬:宿主の免疫機能賦活剤)および
シイタケ多糖体のレンチナン並びにスエヒロタケ多糖体
などがあるにすぎない。
【0006】とりわけ、シイタケ(Lentinus edodes)
は日本並びに中国を代表する食用キノコであって日本で
は約300年も前から人工栽培が行われてきたが、その薬
理効果並びに薬効成分が解明され始めたのはごく最近の
ことである。例えば、ラット・マウスにおける大腸およ
び肝臓等の移植腫瘍細胞の増殖抑制効果(Sugano, N,et
al., Cancer Letter, 27: 1, 1985;鈴木康将ら、日本
大腸肛門病会誌、43:178、 1990)およびマイトジェン効
果(Tabata, T. et al., Immunopharmacology, 24: 57,
1992;Hibino, et al., Immunopharmacology, 28: 77,
1994)などが報告されている。
【0007】
【発明が解決しようとする課題】本発明者らは、副作用
がなくて安価に入手可能な抗腫瘍剤もしくは抗癌剤、特
にLAK療法用の免疫療法剤を提供すべく、シイタケの
持つ抗腫瘍活性および/または抗癌活性に着目した。
【0008】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、シイタケ
の食用形態である子実体の前の形態である菌糸から抽出
された成分中に、子実体をはるかに凌ぐ免疫賦活活性並
びに抗腫瘍活性および/または抗癌活性があることを見
いだして、本発明を完成するに至った。
【0009】
【発明の実施の形態】本発明による、LAK療法用の免
疫療法剤用のシイタケ菌体抽出物とは、シイタケ菌を固
体培地上で培養して得られる菌糸体、好ましくは菌糸体
を含む固体培地を水および酵素の存在下で粉砕、分解し
て得られる抽出物を言う。
【0010】シイタケ菌糸体抽出物は、好ましくは以下
の方法により得られたものを使用するが、これに限定さ
れない。即ち、バカス(サトウキビ濃度がしぼりかす)
と脱脂米糠を基材とする固体培地上にシイタケ菌を接種
し、次に菌糸体を増殖させて得られる菌糸体を含む固体
培地を12メッシュ通過分が30重量%以下となるよう
に解束し、この解束された固体培地に水およびセルラー
ゼ、プロテアーゼまたはグルコシダーゼから選択される
酵素1種またはそれ以上を30−35℃の温度に保ちな
がら、前記固体培地に添加すると共に、前記固体培地を
前記酵素の存在下で粉砕、擂潰してバカス繊維少なくと
も70重量%以上が12メッシュ通過分であるようにし
て、次に95℃までの温度に加熱することにより酵素を
失活させると共に滅菌し、得られた懸濁状液体を濾過す
ることによりシイタケ菌糸体抽出物を得る。シイタケ菌
糸体抽出物はそのまま本発明の免疫療法剤に用いてよい
が、これを濃縮、凍結乾燥して粉末として保存して、使
用時に種々の形態で使用するのが便利である。凍結乾燥
して得られる粉末は褐色粉末であり、吸湿性があり、特
異な味と匂いを有する。
【0011】このようにして得られるシイタケ菌糸体抽
出物はフェノール−硫酸法による糖質分析により糖質を
25.3%(重量/重量)、ローリー法によるタンパク
質分析によりタンパク質を19.7%(重量/重量)、
没食子酸を規準とするFolon-Denis法によりポリフェノ
ールを2.6%(重量/重量)含んでいた。シイタケ菌
糸体抽出物には、その他に粗脂肪8%、粗灰分22%、
糖質以外の可溶性無窒素物を約20%含んでいた。
【0012】また、シイタケ菌糸体抽出物の構成糖組成
(5)は以下のとおりであった。 Xyl:15.2;Ara:8.2;Man:8.4;
Gul:39.4;Gal:5.4;GlcN:12.
0GLuUA:11.3。
【0013】本発明のシイタケ菌糸体抽出物は、ヒト患
者の腫瘍免疫活性増強のために、LAK療法においてI
L−2の代わりに使用することができる。
【0014】LAK療法は、一般には、癌患者から得た
リンパ球をIL−2と共に組織培養してLAK細胞を誘
導し、そして患者の体内に戻す工程からなるが、患者に
戻す工程においてIL−2を併用投与する場合もある。
【0015】本発明のシイタケ菌糸体抽出物は、末梢血
に対して直接添加することができるが、添加の前にアセ
トンによる無菌処理を行うことが好ましい。本発明のシ
イタケ菌糸体抽出物を直接添加する際の濃度は、好まし
くは1μg/ml〜1mg/mlであり、さらに好まし
くは10μg/ml〜100μg/mlであり、特に好
ましくは10μg/ml〜50μg/mlである。
【0016】本発明のシイタケ菌糸体抽出物のLAK活
性増強は、高木らの方法に従い(臨床免疫、19:24
5−249,1987)、次のとおりに実施することが
できるが、これに限定されない。
【0017】被験者から採血した末梢血にヘパリンを加
え、Ficoll-Conary液(s.g.=1.077)を用いた比重遠心
分離法により界面の単核球を分離する。分離された単核
球をPBS(pH7.4、CaおよびMgを含まず)に
より2〜3回洗浄したのち、1×106/mlになるよ
うに10%FBS(非働化血清)を加えたRPMI 164
0培地(Gibco)に懸濁する。自己血清(血漿)を37℃
15分処理してコートしたペトリ皿に移し、37℃1時
間培養する。非付着性細胞を回収して、リンパ球分画と
する。
【0018】エフェクター細胞を1ウエルあたりの最終
個数が100μlになるように濃度を調節して培養液に
浮遊させる。最終培養細胞濃度が1×106/mlを越
えないようにする。該浮遊液に、シイタケ菌糸体抽出物
を最終濃度1〜100μg/mlになるように加える。
96穴U底マイクロテストプレートにエフェクター細胞
と抽出物含有培養液100μlずつを入れ、炭酸ガス培
養器で培養するこの際、自然解離用と最大解離用のウエ
ルを用意して全体がプレートの中央にまとまるようにす
る。自然解離用のウエルには培養液のみを200μl入
れる。培養は、3日間室温において静置する。対照は何
も加えない。培養細胞を再び新鮮な10%FBS添加R
PMI 1640培地に懸濁する(1×106/ml)。
【0019】標的細胞である継代培養細胞、好ましくは
DaudiあるいはRajiを遠心分離により集菌し、100〜150
μCiの51Cr−クロム酸ナトリウムを添加する。5%C
2培養器にて37℃において1時間培養する。培養細
胞をPBSにより3回洗浄後、1×106/mlになる
ように10%FBS添加RPMI 1640培地に懸濁す
る。
【0020】上記マイクロテストプレートの各ウエルに
ついて、最大解離群には1N−HClを分注し、自然解
離群(対照)には10%FBS添加RPMI 1640培地
を分注し、そして実験解離群にはエフェクター細胞(5
0μl(1×104/ウエル)ずつ)を分注する。プレ
ート遠心分離機により800rpmにおいて5分間遠心分離し
て、5%CO2培養器にて37℃において3.5時間培
養する。
【0021】培養したプレートからSOKEN-PET Σ-96に
て各ウエルの培養上清を採取し、γ−シンチレーション
カウンターにより放射活性を測定する。
【0022】LAK療法の効果は、以下の表に従って算
出したLAK活性値を比較することにより評価した。
【0023】
【0024】本発明を以下の実施例によりさらに詳細に
説明するが、これらはあくまで例示であって、本発明の
範囲を限定するためのものではない。本発明の精神から
逸脱することなく、本発明に対する様々な変更あるいは
修飾がなされてよいことは、当業者には理解される。
【0025】
【実施例】実施例1:シイタケ菌糸体抽出物の調製 バカス90重量部、米糠10重量部からなる固体培地に
純水を適度に含ませた後に、シイタケ種菌を接種し、温
度および湿度を調節した培養室内に放置し、菌糸体を増
殖させた。菌糸体が固体培地に密集した後、バカス基材
の繊維素を解束し、12メッシュ通過分が24重量%以
下となるようにした。この解束された培地1.0kg
に、純水3.5lおよび精製シルラーゼ2.0gを、固
体培地を40℃にた持ちながら加えて培地含有混合物と
した。
【0026】次いで、培地含有混合物を変速付ギヤーポ
ンプにより循環させながら、固体培地にギヤー部分にお
いて粉砕および擂潰作用を200分間程度加えて、バカ
ス繊維の約80重量%が12メッシュ通過分となるよう
にした。培地含有混合物の粉砕および擂潰は、該混合物
の温度を徐々に上昇させながら実施した。その後、培地
含有混合物をさらに90℃まで加熱して酵素を失活せし
めると同時に滅菌して、90℃に30分間放置した。得
られた培地含有混合液を60メッシュ濾布を用いて濾過
してシイタケ菌糸体抽出物とし、濃縮した後、凍結乾燥
粉末を得た。 実施例2:シイタケ菌糸体抽出物対IL−2のLAK活
性の比較 被験者Aから採血した末梢血にヘパリンを加え、Ficoll
-Conary液(s.g.=1.077)を用いた比重遠心分離法によ
り界面の単核球を分離した。分離された単核球をPBS
(pH7.4、CaおよびMgを含まず)により2回洗
浄したのち、1×106/mlになるように10%FB
S(非働化血清)を加えたRPMI 1640培地(Gibco)
に懸濁した。自己血清(血漿)を37℃5分処理してコ
ートしたペトリ皿に移し、37℃1時間培養した。非付
着性細胞を回収して、リンパ球分画とした。
【0027】エフェクター細胞を1ウエルあたりの最終
個数が100μlになるように濃度を調節して培養液に
浮遊させた。該浮遊液に、IL−2を最終濃度25U/
ml、シイタケ菌糸体抽出物を最終濃度1、10、10
0および1000μg/mlになるように加えた。96
穴U底マイクロテストプレートにエフェクター細胞と抽
出物含有培養液100μlずつを入れ、炭酸ガス培養器
で培養した。この際、自然解離用と最大解離用のウエル
を用意した。自然解離用のウエルには培養液のみを20
0μl入れた。培養は、3日間室温において静置した。
尚、対照は何も加えなかった。培養細胞を再び新鮮な1
0%FBS添加RPMI 1640培地に懸濁した(1×1
6/ml)。
【0028】標的細胞である継代培養細胞(Daudi)を
遠心分離により集菌し、100〜150μCiの51Cr−クロム
酸ナトリウム(New England Nuclear)を添加した。5
%CO2培養器にて37℃において1時間培養した。培
養細胞をPBSにより3回洗浄後、1×106/mlに
なるように10%FBS添加RPMI 1640培地に懸濁
した。
【0029】上記マイクロテストプレートの各ウエルに
ついて、最大解離群には1N−HClを分注し、自然解
離群(対照)には10%FBS添加RPMI 1640培地
を分注し、そして実験解離群にはエフェクター細胞(5
0μl(1×104/ウエル)ずつ)を分注した。プレ
ート遠心分離機により800rpmにおいて5分間遠心分離し
て、5%CO2培養器にて37℃において3.5時間培
養した。
【0030】培養したプレートからSOKEN-PET Σ-96に
て各ウエルの培養上清を採取し、γ−シンチレーション
カウンターにより放射活性を測定した。
【0031】LAK活性は以下の表に従って算出した。
【0032】結果を表1並びに図1に示す。
【0033】
【表1】実験番号 誘導物質 LAK活性 1 なし 11% 2 IL−2(最終濃度:25U/ml) 55% 3 本発明抽出物(最終濃度:1μg/ml) 14% 4 本発明抽出物(最終濃度:10μg/ml) 20% 5 本発明抽出物(最終濃度:100μg/ml) 14%
【0034】実施例3:シイタケ菌糸体抽出物のLAK
活性至適濃度 被験者BおよびCから採血した末梢血を用いて、抽出物
の最終濃度を1、5、10および100μg/mlとし
た以外は、実施例2の方法に従い、LAK活性を算出し
た。
【0035】結果を表2並びに図2に示す。
【0036】
【表2】 実験番号 誘導物質 LAK活性 被験者B 被験者C 1 なし 13% 27% 2 本発明抽出物(最終濃度:1μg/ml) 18% 28% 3 本発明抽出物(最終濃度:5μg/ml) 19% 29% 4 本発明抽出物(最終濃度:10μg/ml) 21% 34% 5 本発明抽出物(最終濃度:50μg/ml) 19% 36% 6 本発明抽出物(最終濃度:100μg/ml)15% 30%
【0037】比較例1:クレスチンのLAK活性 被験者Dから採血した末梢血を用いてLAK細胞誘導に
際してクレスチンを最終濃度1mg/mlにて用いた以
外は、実施例1の方法に従い、LAK活性を算出した。
この濃度は、クレスチンを用いた場合に、最も効果的で
あると言われて居る濃度である。
【0038】結果を表3並びに図3に示す。
【0039】
【表3】実験番号 誘導物質 LAK活性 1 なし 14% 2 クレスチン(最終濃度:1mg/ml) 13%
【0040】
【発明の効果】本発明のシイタケ菌糸体抽出物は、1m
g/mlの用量においてもリンパ球がほぼ100%生存
していた(顕微鏡観察;結果は示さず)。よって、リン
パ球に対する直接の毒性はないと言える。
【0041】本発明のシイタケ菌糸体抽出物は、最終濃
度10μg/mlあるいは50μg/mlにおいてもっ
とも高いLAK活性を示すことがわかった。これに対し
て、同様な抗腫瘍免疫活性を有するクレスチンは1mg
/mlの濃度であっても対照より活性が低かった。
【0042】本発明のシイタケ菌糸体抽出物は、副作用
が強いIL−2に代えてLAK療法に使用することがで
きる。
【0043】
【図面の簡単な説明】
【図1】図1は、本発明のシイタケ菌糸体抽出物対IL
−2のLAK活性%を示す表1のデータを棒グラフによ
り表す。
【図2】図2は、本発明のシイタケ菌糸体抽出物の濃度
変化によるLAK活性の変化を示す表2のデータを棒グ
ラフにより表す。
【図3】図3は、比較例であるクレスチンのLAK活性
を示す表3のデータを棒グラフにより表す。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 松田 由紀子 大阪府大阪市淀川区三津屋南3−13−35 小林製薬株式会社内 (72)発明者 田島 裕 佐賀県佐賀市八戸溝3丁目10番511号 Fターム(参考) 4C088 AA08 AC17 BA04 BA11 BA12 BA16 NA14 ZB09 ZB26

Claims (3)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 シイタケ菌糸体抽出物を含有するLAK
    活性増強物質。
  2. 【請求項2】 末梢血由来のリンパ球に直接作用させる
    ことによりLAK活性を増強させる、請求項1記載のL
    AK活性増強物質。
  3. 【請求項3】 シイタケ菌糸体抽出物の濃度が1μg/
    ml以上である、請求項2記載のLAK活性増強物質。
JP10353927A 1998-11-27 1998-11-27 シイタケ菌糸体抽出物由来のlak活性増強物質 Withdrawn JP2000159685A (ja)

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HK02104331.8A HK1042651B (zh) 1998-11-27 2002-06-08 從香菇菌絲體的提取物來源的lak活性增強劑和含有此提取物的lak活性增強配方

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