JP2000038301A - 植物の土壌病の感染抑制方法 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 【課題】 植物に病気を引き起こす病原微生物が土壌を
介して植物に侵入することを防止するための方法。 【解決手段】 【化１】 〔式中、Ｒはベンジル基または置換されたベンジル基、
Ｃ₁〜Ｃ₁₈のアルキル基、アルケニル基、アリル基、ア
ルキニル基またはアリール基、Ｘはハロゲン原子〕で示
されるピリジニウム基を構造単位として含む高分子、オ
リゴマーまたは低分子化合物である感染抑制剤を土壌に
散布することにより、解決される。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【発明の属する技術分野】本発明は、土壌を介して植物
に病害を引き起こす病原性微生物に植物が感染すること
を抑制する方法に関する。

【０００２】

【従来の技術】果樹、穀物、野菜、観賞植物、街路樹、
芝生などの植物に病気を引き起こす病原微生物が土壌を
介して植物に進入することを防止するため、従来から種
々の殺菌剤や防除剤が使われている。

【０００３】最も一般的な方法は、殺菌剤を用いて土壌
を殺菌する方法である。しかしながら、殺菌剤として用
いられる薬剤の約半分を占めているメチルブロミドには
オゾン層を破壊する性質があるため、２０１０年までに
使用を全面的に禁止する方針が国際条約によって既に決
められている。残りの約半分を占めているクロロピクリ
ンは極めて毒性の強い化学物質であり、人体や植物自体
に悪い影響を及ぼすため、休耕期間中に限定して使用さ
れる薬剤であり、植物の栽培期間中は使用することはで
きない。土壌殺菌法に代わる新しい方法の開発が緊急を
要する重要課題となっている。

【０００４】土壌殺菌剤の他に種々の防除剤が使われて
いるが、これらの防除剤は特定の植物の特定の病害にし
か効果がないものが多く、汎用性に乏しい。分解性に乏
しく土壌に蓄積して汚染するものもあり、改善が望まれ
ている。

【０００５】

【発明が解決しようとする課題】本発明は上記の従来技
術の欠点を解消すべくなされたものである。本発明の
「植物の土壌病の感染抑制剤」を用いる方法には以下の
ような利点が期待される。 １)本発明に用いる「土壌病の感染抑制剤」は殺菌作用の
ような強い毒性を示さないので、人体や植物に対して安
全性が高い。 ２)本発明の方法では、病原微生物を殺すことなく病害
を抑制するので、生態系を破壊する危険性が少ない。 ３)本発明に用いる「土壌病の感染抑制剤」は作物等の
被処置植物および病原微生物の種類に関係なく用いるこ
とができるので汎用性がある。 ４)本発明で「土壌病の感染抑制剤」として用いるピリ
ジニウム基を構造単位として含む分子は微生物によって
容易に分解されるので、土壌に散布しても土壌中で速や
かに分解され、プラスチック類のように分解されずに土
壌中に残留して環境を汚染する心配がない。

【０００６】

【課題を解決するための手段】請求項１に記載の発明
は、請求項２〜６に記載する「土壌病の感染抑制剤」を
植物の周囲の土壌に散布することを特徴とする、植物の
土壌病の感染抑制方法を提供するものである。

【０００７】請求項２に記載の「土壌病の感染抑制剤」
は、請求項１に記載の発明において、植物が病原性微生
物に感染することを抑制する薬剤が

【化３】 〔式中、Ｒはベンジル基または置換されたベンジル基、
Ｃ₁〜Ｃ₁₈のアルキル基、アルケニル基、アリル基、ア
ルキニル基またはアリール基、Ｘはハロゲン原子〕で示
される構造単位を含む分子(即ち、ピリジニウム基を含
む分子)であることを特徴とする、土壌病害の抑制方法
に属する。

【０００８】本発明に使用するピリジニウム基を構造単
位として含む分子は、微生物に対する強い親和性および
微生物によって容易に分解される性質により、植物が病
原菌に感染する頻度を減少させ、病害の発生を抑制する
方法であり、水に可溶性であっても不溶性であってもよ
い。水に可溶性であれば、感染抑制効果に即効性があ
り、水に不溶性であれば感染抑制効果に持続性がある。

【０００９】本発明に使用するピリジニウム基を含む分
子は低重合度あるいは高重合度のビニル系重合体として
用いてもよく、ビニル系重合体としては２−または４−
ビニルピリジンとビニルモノマーを共重合した後にハロ
ゲン化物を作用させて得られる、下記の一般式で表され
るビニル系重合体あるいは共重合体を使用することがで
きる。これらのピリジニウム基を含む分子の分子量は、
２００〜１０,０００,０００の範囲で用いるが、好まし
くは５,０００〜３００,０００である。

【００１０】本発明に使用するピリジニウム基を構造単
位として含む分子は、微生物に対する強い親和性および
微生物によって容易に分解される性質があればよく、例
えば水溶性を低くするためにスチレン、アクリル酸エス
テル、メタクリル酸エステル等との共重合体として、疎
水性を高くして使用してもよく、水に不溶性とするため
にジビニルベンゼン等の架橋性のジビニルモノマーとの
共重合体として使用してもよいが、微生物によって分解
される性質を弱めることは好ましくない。

【００１１】

【化４】 〔式中、Ｒ₁はベンジル基または置換されたベンジル
基、Ｃ₁〜Ｃ₁₈のアルキル基、アルケニル基、アリル
基、アルキニル基またはアリール基、Ｘはハロゲン原
子、Ｒ₂は水素原子またはＣ₁〜Ｃ₃のアルキル基、アル
ケニル基、アルキニル基、ベンジル基、置換ベンジル
基、エーテル基、カルボキシル基、カルボン酸エステル
基、アリール基またはハロゲン原子である。ｍ：ｎの割
合は５：９５〜９５：５の範囲である〕。

【００１２】本発明の製剤は、一般に粉剤、乳剤、水和
剤等の形を取り得る。粉剤は、８０％以上の固体希釈
剤、０.５〜５％の有効成分から成り、所望により補助
剤を含んでもよい。固体希釈成分の例は硅藻土、タル
ク、クレー、酸性白土、石英粉末、ベントナイトおよび
これらの混合物を含むが、これらに限定されない。補助
剤の例は吸油剤(含水珪酸、硅藻土)、滑剤(ステアリン
酸塩、固形パラフィン)、安定剤(トール油、リン酸、非
イオン界面活性剤)を含むが、これらに限定されない。
粉剤は水田等での使用に適している。

【００１３】乳剤とする場合、有効成分を２０〜５０
％、乳化剤を５０〜８０％含み、所望により補助剤を含
む濃縮乳剤を調製し、これを用事希釈して用いる。乳化
剤の例としてはアニオン界面活性剤、非イオン界面活性
剤およびこれらの混合物を含むが、これらに限定されな
い。所望により希釈乳剤として当初から製剤することも
可能である。

【００１４】水和剤は、１０〜７０％の有効成分を含
み、所望により補助剤を含み得る。使用前に大量の水と
混合して、懸濁液として散布する、補助剤の例は非イオ
ンまたはアニオン界面活性剤を含むが、これらに限定さ
れない。

【００１５】液剤(乳剤、水和剤等)の散布は、一般に噴
霧器、ミスト機等を使用して噴霧する。一般に１平方メ
ートル当り、０.０１〜０.１ｇの有効成分を散布する。

【００１６】粉剤の散布は散布機を使用して行い、水田
に適している。ヘリコプター等を使用した空中散布も可
能である。また粉剤、液剤等を土壌中に混入や注入する
ことも可能である。

【００１７】本発明の製剤は、水溶性を増大(低下)させ
るために、ポリエチレンやポリスチレン等の疎水性材料
の微細な粉末を混合して用いてもよく、水溶性を増大さ
せるために、澱粉、ポリビニルアルコール、ポリアクリ
ル酸などの水溶液を混合して用いてもよく、セルロー
ス、澱粉、ポリビニルアルコール、ポリアクリル酸など
の親水性材料の微細な粉末を混合して用いてもよい。

【００１８】

【実施例】以下、本発明を実施例によって詳細に説明す
る。 実施例１〜６の実験で使用する感染抑制剤の製造法 ５リットルの三ツ口フラスコにスチレン(３１２ｇ、３.
０モル)、４−ビニルピリジン(３１５ｇ、３.０モル)、
２,２'−アゾビスイソブチロニトリル(４.４ｇ、２６.
８ミりモル)およびエタノール(１.５リットル)を入れ
て、窒素雰囲気下で攪拌しながら８０℃で６時間重合を
行った。重合反応が終了した後に室温まで冷却し、塩化
ベンジル(３８０ｇ、３.０モル)を加え、攪拌しながら
８０℃で５時間反応を行った。塩化ベンジルとの反応が
終了した後に、反応混合物を酢酸エチルに注いでスチレ
ンとＮ−ベンジル−４−ビニルピリジニウムクロリドと
のモル比５０：５０の共重合体を沈殿させ、濾過して分
離した後に、減圧下に室温で恒量になるまで乾燥させ
た。本物質の推定分子量は１８６,０００である。

【００１９】実施例７および８の実験で使用する感染抑
制剤の製造方法 １リットルの三ツ口フラスコにメタクリル酸メチル(２
７.０ｇ、０.２７モル)、４−ビニルピリジン(２８.４
ｇ、０.２７モル)、２,２'−アゾビスイソブチロニトリ
ル(０.４４ｇ、２.６８ミリモル)およびエタノール(１
５０ミリリットル)を入れて、窒素雰囲気下で攪拌しな
がら８０℃で６時間反応を行った。重合反応が終了した
後に室温まで冷却し、塩化ベンジル(３４.２ｇ、０.２
７モル)を加え、攪拌しながら８０℃で５時間反応を行
った。塩化ベンジルとの反応が終了した後に、反応混合
物を酢酸エチルに注いでメタクリル酸メチルとＮ−ベン
ジル−４−ビニルピリジニウムクロリドとのモル比５
０：５０の共重合体を沈殿させ、濾過して分離した後
に、減圧下に室温で恒量になるまで乾燥させた。本物質
の推定分子量は２３１,０００である。

【００２０】発病指数を下記の５段階に分け、それぞれ
の苗の本数をＡ〜Ｅ株とし、式(１)を用いて発病指数を
算出した。 発病段階０：症状が全く現れていない(株数Ａ） 発病段階１：先端部分の葉が萎れているが、他に症状が
認められない（株数Ｂ) 発病段階２：見た目は緑色で苗は直立しているが、苗全
体が萎れている(株数Ｃ) 発病段階３：見た目は緑色であるが、苗が倒れている
(株数Ｄ) 発病段階４：苗が枯れている(株数Ｅ) 発病指数＝[Ｂ＋２Ｃ＋３Ｄ＋４Ｅ]／４[Ａ＋Ｂ＋Ｃ＋
Ｄ＋Ｅ]×１００ 全ての苗について症状が全く認められなければ発病指数
は０となり、全部の苗が枯れた場合は発病指数は１００
となる。

【００２１】

【実施例１】植物としてキュウリを選び、病原菌として
キュウリのつる割れ病を引き起こすフザリウム・オキシ
スポルムを選んだ。滅菌土壌にフザリウム・オキシスポ
ルムを混合してモデル汚染土壌を調製した。この土壌中
のフザリウム・オキシスポルムの濃度は、土壌１ｇ当り
２.０×１０⁵cfu/gであった。このモデル汚染土壌に第
２葉期のキュウリの苗を１５株移植し、人工気象器に移
して２５℃で育成を行った。６週間経過した段階で苗を
引き抜き、根の内部のフザリウム・オキシスポルムの濃
度を測定したところ、以下の結果が得られた。発病段階
０の苗が３株で、根の中のフザリウム菌の濃度は１.０
×１０⁶cfu/gであった。発病段階１の苗が１株で、根の
中のフザリウム菌の濃度は９.６×１０⁵cfu/gであっ
た。発病段階２の苗が１株で、根の中のフザリウム菌の
濃度は１.１×１０⁶cfu/gであった。発病段階４の苗が
１０株で、根の中のフザリウム菌の濃度は２.６×１０⁷
cfu/gであった。以上の結果を平均すると、根の内部の
フザリウム・オキシスポルムの濃度は１.７７×１０⁷cf
u/gであった。この場合、発病指数は７２であった。

【００２２】滅菌土壌にフザリウム・オキシスポルムを
混合してモデル汚染土壌を調製した。この土壌中のフザ
リウム・オキシスポルムの濃度は土壌１ｇ当り３.０×
１０⁵cfu/gであった。上記の「植物の土壌病の感染抑制
剤」を土壌１kg当り５mg配合して、感染抑制剤配合モデ
ル汚染土壌を調製した。この土壌に第２葉期のキュウリ
の苗を１５株移植し、人工気象器に移して２５℃で育成
を行った。６週間経過した段階で苗を引き抜き、根の内
部のフザリウム・オキシスポルムの濃度を測定したとこ
ろ、以下の結果が得られた。発病段階０の苗が３株で、
根の中のフザリウム菌の濃度は７.５×１０⁵cfu/gであ
った。発病段階１の苗が３株で、根の中のフザリウム菌
の濃度は７.２×１０⁵cfu/gであった。発病段階２の苗
が２株で、根の中のフザリウム菌の濃度は８.９×１０⁵
cfu/gであった。発病段階３の苗が１株で、根の中のフ
ザリウム菌の濃度は１.８×１０⁷cfu/gであった。発病
段階４の苗が６株で、根の中のフザリウム菌の濃度は
２.１×１０⁷cfu/gであった。以上の結果を平均する
と、根の内部のフザリウム・オキシスポルムの濃度は
１.００×１０⁷cfu/gであった。この場合、発病指数は
５７であった。これらの結果から、土壌１ｇ当り１０⁵c
fu/gのフザリウム・オキシスポルムを含むモデル汚染土
壌に対して、上記の「植物の土壌病の感染抑制剤」を土
壌１kg当り５mg配合すると、根の内部に侵入するフザリ
ウム菌の濃度が４４％減少し、発病指数は２１％低下し
た。

【００２３】

【実施例２】滅菌土壌にフザリウム・オキシスポルムを
配合してモデル汚染土壌を調製した。この土壌中のフザ
リウム・オキシスポルムの濃度は、土壌１ｇ当り２.１
×１０⁵cfu/gであった。このモデル汚染土壌に第２葉期
のキュウリの苗を６株移植し、人工気象器に移して２５
℃で育成を行った。６週間経過した段階で６株の苗が全
て枯死し、根の内部のフザリウム・オキシスポルムの濃
度を測定したところ、２.８×１０⁷cfu/gであった。こ
の場合、発病指数は１００であった。

【００２４】滅菌土壌にフザリウム・オキシスポルムを
混合してモデル汚染土壌を調製した・この土壌中のフザ
リウム・オキシスポルムの濃度は土壌１ｇ当り１.２×
１０⁵cfu/gであった。上記の「植物の土壌病の感染抑制
剤」を土壌１kg当り５０mg配合し、感染抑制配合モデル
汚染土壌を調製した。この土壌に第２葉期のキュウリの
苗を６株移植し、人工気象器に移して、２５℃で育成を
行った。６週間経過した段階で苗を引き抜き、根の内部
の病原菌の濃度を測定したところ、以下の結果が得られ
た。発病段階０の苗が３株で、根の中のフザリウム菌の
濃度は７.３×１０⁵cfu/gであった。発病段階１の苗が
１株で、根の中のフザリウム菌の濃度は７.３×１０⁵cf
u/gであった。発病段階２の苗が１株で、根の中のフザ
リウム菌の濃度は８.７×１０⁵cfu/gであった。発病段
階４の苗が１株で、根の中のフザリウム菌の濃度は２.
２×１０⁷cfu/gであった。以上の結果を平均すると、根
の内部のフザリウム・オキシスポルムの濃度は４.３×
１０⁶cfu/gであった。この場合、発病指数は２９であっ
た。これらの結果から、土壌１ｇ当り１０⁵cfu/gのフザ
リウム・オキシスポルムを含むモデル汚染土壌に対し
て、上記の「植物の土壌病の感染抑制剤」を土壌１kg当
り５０mg配合すると、根の内部に侵入するフザリウム菌
の濃度が８５％減少し、発病指数は７１％低下した。

【００２５】

【実施例３】植物としてトマトを選び、病原菌としてト
マト青枯病を引き起こすシュードモナス・ソラナセアル
ムを選んだ。滅菌土壌にシュードモナス・ソラナセアル
ムを混合してモデル汚染土壌を調製した。この土壌中の
シュードモナス・ソラナセアルムの濃度は、土壌１ｇ当
り２.０×１０⁶cfu/gであった。このモデル汚染土壌に
第２葉期のトマトの苗を９１株移植し、人工気象器に移
して２５℃で育成を行った。６週間経過した段階で苗を
引き抜き、根の内部のシュードモナス・ソラナセアルム
の濃度を測定したところ、以下の結果が得られた。発病
段階０の苗が２３株で、根の中のシュードモナス菌の濃
度は１.１×１０⁷cfu/gであった。発病段階１の苗が１
４株で、根の中のシュードモナス菌の濃度は１.０×１
０⁸cfu/gであった。発病段階２の苗が１０株で、根の中
のシュードモナス菌の濃度は１.２×１０⁹cfu/gであっ
た。発病段階３の苗が７株で、根の中のシュードモナス
菌の濃度は１.８×１０⁹cfu/gであった。発病段階４の
苗が３７株で、根の中のシュードモナス菌の濃度は３.
３×１０⁹cfu/gであった。以上の結果を平均すると、根
の内部のシュードモナス・ソラナセアルムの濃度は１.
６３×１０⁹cfu/gであった。この場合、発病指数は５６
であった。

【００２６】滅菌土壌にシュードモナス・ソラナセアル
ムを混合してモデル汚染土壌を調製した。この土壌中の
シュードモナス・ソラナセアルムの濃度は土壌１ｇ当り
２.０×１０⁶cfu/gであった。上記の「植物の土壌病の
感染抑制剤」を土壌１kg当り５０mg配合して、感染抑制
剤配合モデル汚染土壌を調製した。この土壌に第２葉期
のトマトの苗を２１株移植し、人工気象器に移して２５
℃で育成を行った。６週間経過した段階で苗を引き抜
き、根の内部のシュードモナス・ソラナセアルムの濃度
を測定したところ、以下の結果が得られた。発病段階０
の苗が４株で、根の中のシュードモナス菌の濃度は８.
０×１０⁶cfu/gであった。発病段階１の苗が１３株で、
根の中のシュードモナス菌の濃度は８.２×１０⁷cfu/g
であった。発病段階２の苗が１株で、根の中のシュード
モナス菌の濃度は８.５×１０⁸cfu/gであった。発病段
階４の苗が３株で、根の中のシュードモナス菌の濃度は
２.６×１０⁹cfu/gであった。以上の結果を平均する
と、根の内部のシュードモナス・ソラナセアルムの濃度
は４.６４×１０⁸cfu/gであった。この場合、発病指数
は３０であった。これらの結果から、土壌１ｇ当り１０
⁶cfu/gのシュードモナス・ソラナセアルムを含むモデル
汚染土壌に対して、上記の「植物の土壌病の感染抑制
剤」を土壌１kg当り５０mg配合すると、根の内部に侵入
するシュードモナス菌の濃度が７２％減少し、発病指数
は４７％低下した。

【００２７】

【実施例４】Ｎ−ベンジル−４−ビニルピリジニウムク
ロリドとスチレンのモル比５０：５０の共重合体が土壌
中で生分解を受けることを以下の実験によって確認し
た。この共重合体の極限粘度数を１０ｇ／ｌのＭｇＣｌ
₂・６Ｈ₂Ｏを含むエタノールを溶媒として２５℃で測定
したところ０.２２dl／ｇであった。この共重合体１０
ｇを湿重量で１４.２ｇの活性汚泥と共に滅菌した土壌
１kgに混合し、室温で２８日間静置した後に回収すると
重量が２０％減少していた。回収した共重合体の極限濃
度粘度数は０.１０dl／ｇに低下していた。この共重合
体は土壌中では３〜６ヶ月で消失すると推測される。

【００２８】

【実施例５】Ｎ−ベンジル−４−ビニルピリジニウムク
ロリドとスチレンのモル比５０：５０の共重合体に殺菌
作用がなく、土壌中に散布しても病原菌の濃度に殆ど影
響を与えないことを以下の実験によって確認した。滅菌
した土壌にフザリウム・オキシスポルムを混合して調製
したモデル土壌中のフザリウム・オキシスポルムの濃度
を測定すると３.７×１０⁵cfu／ｇであった。このモデ
ル汚染土壌１kgに対して、Ｎ−ベンジル−４−ビニルピ
リジニウムクロリドとスチレンのモル比５０：５０の共
重合体を５０mg配合し、室温で２８日間静置した後に、
フザリウム・オキシスポルムの濃度を測定したところ、
４.４×１０⁵cfu／ｇであった。

【００２９】

【実施例６】Ｎ−ベンジル−４−ビニルピリジニウムク
ロリドとスチレンのモル比５０：５０の共重合体に殺菌
作用がなく、土壌中に散布しても病原菌の濃度に殆ど影
響を与えないことを以下の実験によって確認した。滅菌
した土壌にシュードモナス・ソラナセアルムを混合して
調製したモデル土壌中のシュードモナス・ソラナセアル
ムの濃度を測定すると８.３×１０⁵cfu／ｇであった。
このモデル汚染土壌１kgに対して、Ｎ−ベンジル−４−
ビニルピリジニウムクロリドとスチレンのモル比５０：
５０の共重合体を５０mg配合し、室温で３０日間静置し
た後に、シュードモナス・ソラナセアルムの濃度を測定
したところ、１.０×１０⁶cfu／ｇであった。

【００３０】

【実施例７】「植物の土壌病の感染抑制剤」としてＮ−
ベンジル−４−ビニルピリジニウムクロリドとメタクリ
ル酸メチルのモル比５０：５０の共重合体を用いて以下
の実験を行った。植物としてキュウリを用い、病原菌と
してキュウリのつる割れ病を引き起こすフザリウム・オ
キシスポルムを用いた。滅菌土壌にフザリウム・オキシ
スポルムを混合してモデル汚染土壌を調製した。この土
壌中のフザリウム・オキシスポルムの濃度は、土壌１ｇ
当たり４.０×１０⁶cfu／ｇであった。このモデル汚染
土壌に第２葉期のキュウリの苗を６株移植し、人工気象
器に移して２５℃で育成を行った。４週間経過した段階
で苗を引き抜き、根の内部のフザリウム・オキシスポル
ムの濃度を測定したところ、以下の結果が得られた。発
病段階３の苗が２株で、根の中のフザリウム菌の濃度は
１.５×１０⁷cfu／ｇであった。発病段階４の苗が４株
で、根の中のフザリウム菌の濃度は２.５×１０⁷cfu／
ｇであった。以上の結果を平均すると、根の内部のフザ
リウム・オキシスポルムの濃度は２.２×１０⁷cfu／ｇ
であった。この場合、発病指数は９２であった。

【００３１】滅菌土壌にフザリウム・オキシスポルムを
混合してモデル汚染土壌を調製した。この土壌中のフザ
リウム・オキシスポルムの濃度は土壌１ｇ当たり３.６
×１０⁶cfu／ｇであった。Ｎ−ベンジル−４−ビニルピ
リジニウムクロリドとメタクリル酸メチルのモル比５
０：５０の共重合体を土壌１kg当たり５mg配合して感染
抑制剤配合モデルを調製した。この土壌に第２葉期のキ
ュウリの苗を６株移植し、人工気象器に移して２５℃で
育成を行った。４週間経過した段階で苗を引き抜き、根
の内部のフザリウム・オキシスポルムの濃度を測定した
ところ、以下の結果が得られた。発病段階０の苗が２株
で、根の中のフザリウム菌の濃度は７.２×１０⁵cfu／
ｇであった。発病段階１の苗が３株で、根の中のフザリ
ウム菌の濃度は７.９×１０⁵cfu／ｇであった。発病段
階２の苗が１株で、根の中のフザリウム菌の濃度は９.
５×１０⁵cfu／ｇであった。以上の結果を平均すると、
根の内部のフザリウム・オキシスポルムの濃度は７.９
×１０⁵cfu／ｇであった。この場合、発病指数は２１で
あった。

【００３２】滅菌土壌にフザリウム・オキシスポルムを
混合してモデル汚染土壌を調製した。この土壌中のフザ
リウム・オキシスポルムの濃度は土壌１ｇ当たり４.２
×１０⁶cfu／ｇであった。Ｎ−ベンジル−４−ビニルピ
リジニウムクロリドとメタクリル酸メチルのモル比５
０：５０の共重合体を土壌１kg当たり５０mg配合して感
染抑制剤配合モデルを調製した。この土壌に第２葉期の
キュウリの苗を６株移植し、人工気象器に移して２５℃
で育成を行った。４週間経過した段階で苗を引き抜き、
根の内部のフザリウム・オキシスポルムの濃度を測定し
たところ、以下の結果が得られた。発病段階０の苗が４
株で、根の中のフザリウム菌の濃度は７.０×１０⁵cfu
／ｇであった。発病段階１の苗が２株で、根の中のフザ
リウム菌の濃度は７.５×１０⁵cfu／ｇであった。以上
の結果を平均すると、根の内部のフザリウム・オキシス
ポルムの濃度は７.２×１０⁵cfu／ｇであった。この場
合、発病指数は８であった。

【００３３】これらの結果から、土壌１ｇ当たり１０⁶c
fu／ｇのフザリウム・オキシスポルムを含むモデル汚染
土壌に対して、Ｎ−ベンジル−４−ビニルピリジニウム
クロリドとメタクリル酸メチルのモル比５０：５０の共
重合体を土壌１kg当たり５mg配合すると、根の内部に侵
入するフザリウム菌の濃度が９６％減少し、発病指数は
７７％低下した。Ｎ−ベンジル−４−ビニルピリジニウ
ムクロリドとメタクリル酸メチルのモル比５０：５０の
共重合体を土壌１kg当たり５０mg配合すると、根の内部
に侵入するフザリウム菌の濃度が９７％減少し、発病指
数は９２％低下した。

【００３４】

【実施例８】「植物の土壌病の感染抑制剤」としてＮ−
ベンジル−４−ビニルピリジニウムクロリドとメタクリ
ル酸メチルのモル比５０：５０の共重合体を用い、植物
としてトマトを用い、病原菌としてトマト青枯病を引き
起こすシュードモナス・ソラナセアルムを用いて以下の
実験を行った。滅菌土壌にシュードモナス・ソラナセア
ルムを混合してモデル汚染土壌を調製した。この土壌中
のシュードモナス・ソラナセアルムの濃度は、土壌１ｇ
当たり２.５×１０⁶cfu／ｇであった。このモデル汚染
土壌に第２葉期のトマトの苗を６株移植し、人工気象器
に移して２５℃で育成を行った。４週間経過した段階で
苗を引き抜き、根の内部のシュードモナス・ソラナセア
ルムの濃度を測定したところ、以下の結果が得られた。
発病段階０の苗が２株で、根の中のシュードモナス菌の
濃度は１.０×１０⁷cfu／ｇであった。発病段階１の苗
が１株で、根の中のシュードモナス菌の濃度は９.５×
１０⁷cfu／ｇであった。発病段階４の苗が３株で、根の
中のシュードモナス菌の濃度は３.５×１０⁹cfu／ｇで
あった。以上の結果を平均すると、根の内部のシュード
モナス・ソラナセアルムの濃度は１.８×１０⁹cfu／ｇ
であった。この場合、発病指数は５４であった。

【００３５】滅菌土壌にシュードモナス・ソラナセアル
ムを混合してモデル汚染土壌を調製した。この土壌中の
シュードモナス・ソラナセアルムの濃度は土壌１ｇ当た
り３.０×１０⁶cfu／ｇであった。Ｎ−ベンジル−４−
ビニルピリジニウムクロリドとメタクリル酸メチルのモ
ル比５０：５０の共重合体を土壌1kg当たり５０mg配合
して感染抑制剤配合モデルを調製した。この土壌に第２
葉期のトマトの苗を６株移植し、人工気象器に移して２
５℃で育成を行った。６週間経過した段階で苗を引き抜
き、根の内部のシュードモナス・ソラナセアルムの濃度
を測定したところ、以下の結果が得られた。発病段階０
の苗が３株で、根の中のシュードモナス菌の濃度は１.
１×１０⁷cfu／ｇであった。発病段階１の苗が１株で、
根の中のシュードモナス菌の濃度は１.７×１０⁸cfu／
ｇであった。発病段階２の苗が１株で、根の中のシュー
ドモナス菌の濃度は１.１×１０⁹cfu／ｇであった。発
病段階４の苗が１株で、根の中のシュードモナス菌の濃
度は３.２×１０⁹cfu／ｇであった。以上の結果を平均
すると、根の内部のシュードモナス・ソラナセアルムの
濃度は７.５×１０⁸cfu／ｇであった。この場合、発病
指数は２９であった。これらの結果から、土壌１ｇ当た
り１０⁶cfu／ｇのシュードモナス・ソラナセアルムを含
むモデル汚染土壌に対して、Ｎ−ベンジル−４−ビニル
ピリジニウムクロリドとメタクリル酸メチルのモル比５
０：５０の共重合体を土壌１kg当たり５０mg配合する
と、根の内部に侵入するシュードモナス菌の濃度が５８
％減少し、発病指数は４６％低下した。

Claims (6)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 土壌病の感染抑制剤を植物の周囲の土壌
   に散布することを特徴とする、植物の土壌病の感染抑制
   方法。
2. 【請求項２】 土壌病の感染抑制剤が 【化１】 〔式中、Ｒはベンジル基または置換されたベンジル基、
   Ｃ₁〜Ｃ₁₈のアルキル基、アルケニル基、アリル基、ア
   ルキニル基またはアリール基、Ｘはハロゲン原子〕で示
   されるピリジニウム基を構造単位として含む化合物であ
   る、請求項１記載の方法。
3. 【請求項３】 土壌病の感染抑制剤が式 【化２】 〔式中、Ｒ₁はベンジル基または置換されたベンジル
   基、Ｃ₁〜Ｃ₁₈のアルキル基、アルケニル基、アリル
   基、アルキニル基またはアリール基、Ｘはハロゲン原
   子、Ｒ₂は水素原子またはＣ₁〜Ｃ₃のアルキル基、アル
   ケニル基、アルキニル基、ベンジル基、置換ベンジル
   基、エーテル基、カルボキシル基、カルボン酸エステル
   基、アリール基またはハロゲン原子である。ｍ：ｎの割
   合は５：９５〜９５：５の範囲である〕のピリジニウム
   型化合物である、請求項２記載の方法。
4. 【請求項４】 ピリジニウム型化合物の分子量が２００
   〜１０,０００,０００である、請求項１〜３のいずれか
   に記載の方法。
5. 【請求項５】 ピリジニウム型化合物の分子量が５,０
   ００から３００,０００である、請求項１〜３のいずれ
   かに記載の方法。
6. 【請求項６】 ピリジニウム型化合物のｍ：ｎの割合が
   １０：９０〜８０：２０である、請求項１〜３のいずれ
   かに記載の方法。