HU203906B - Process for producing new antibioticum named mersacidin and salts and pharmaceutical composition containing them as active components - Google Patents

Process for producing new antibioticum named mersacidin and salts and pharmaceutical composition containing them as active components Download PDF

Info

Publication number
HU203906B
HU203906B HU894215A HU421589A HU203906B HU 203906 B HU203906 B HU 203906B HU 894215 A HU894215 A HU 894215A HU 421589 A HU421589 A HU 421589A HU 203906 B HU203906 B HU 203906B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
culture
aureus
mersacidin
mersacidine
staph
Prior art date
Application number
HU894215A
Other languages
English (en)
Other versions
HUT55054A (en
Inventor
Sukumar Chatterjee
Sugata Chatterjee
Bimal Naresh Ganguli
Deepak Kumar Chatterjee
Rajendra Kumar Hariprasad Jani
Richard Helmut Rupp
Hans-Wolfram Fehlhaber
Herbert Kogler
Gerhard Seibert
Volker Teetz
Original Assignee
Hoechst Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hoechst Ag filed Critical Hoechst Ag
Publication of HUT55054A publication Critical patent/HUT55054A/hu
Publication of HU203906B publication Critical patent/HU203906B/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K7/00Peptides having 5 to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K7/04Linear peptides containing only normal peptide links
    • C07K7/08Linear peptides containing only normal peptide links having 12 to 20 amino acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/02Preparation of peptides or proteins having a known sequence of two or more amino acids, e.g. glutathione
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K7/00Peptides having 5 to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K7/50Cyclic peptides containing at least one abnormal peptide link
    • C07K7/54Cyclic peptides containing at least one abnormal peptide link with at least one abnormal peptide link in the ring
    • C07K7/56Cyclic peptides containing at least one abnormal peptide link with at least one abnormal peptide link in the ring the cyclisation not occurring through 2,4-diamino-butanoic acid
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/832Bacillus
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S930/00Peptide or protein sequence
    • Y10S930/01Peptide or protein sequence
    • Y10S930/19Antibiotic

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Cephalosporin Compounds (AREA)

Description

A találmány tárgya eljárás a merszacidin nevű új antibiotikum előállítására, valamint eljárás hatóanyagként ezt az új antibiotikumot tartalmazó gyógyászati készítmények előállítására.
A merszacidint a német törzsgyűjteményben DSM 4584 számon letétbe helyezett eubaktérium Bacillus Y-85,54728 törzs (letétbe helyezés napja: 1988. 05. 06.), valamint annak mutánsai vagy variánsai fermentálásával állítjuk elő.
A merszacidin egy ciklikus polipeptid, amely az (I) képlettel jellemezhető. A királis szénatomok konfigurációja a (II) képleten látható.
A találmány szerinti eljárás nemcsak a merszacidin, hanem annak gyógyászatilag elfogadható sói előállítására is vonatkozik. A merszacidin különféle kémiai ekvivalensei is előállíthatók szakember számára ismert módon.
A ciklusos peptid-antibiotikumokat a CRC Handbook of Antibiotics (antibiotikum-kézikönyv) IV. kötetében a 263-424. oldalon a Ciklusos peptidek c. fejezetben ismertetik. A Bacillus nemzetségből izolált antibiotikumokat az „Antibiotics, origin, natúré and properties” (Antibiotikumok, származásuk, jellemzésük és tulajdonságaik) c. könyvben (szerkesztő Korzybski T. és munkatársai, 1978, ΙΠ. kötet, 1529-2078. oldal) is ismertetik. Az egyéb mikroorganizmusokból származó polipeptid-antibiotikumokat ugyanezen az irodalmi helyen ismertetik, az 1. kötet 311-491. oldalán.
A rendelkezésünkre álló adatok alapján azonban a merszacidin a fenti irodalmi helyeken ismertetett öszszes ciklikus polipeptid-antibiotikumtól egyértelműen különbözik. A Chemical Abstracts egyetlen olyan vegyületet sem ismertetett, amelynek móltömege és aminosav-ősszetétele a merszacitidinéval megegyezne.
A merszacitidin előállítására használt eubaktériumot - amelyet a Hoechst India Limited törzstenyészetében Y-85,54728 számon tartunk nyilván - egy sóbepárlóból nyert talajmintából (Maharashtra, India) izoláltuk, és Bacillus-fajtaként azonosítottuk.
A merszacidin gyógyászatilag elfogadható sóit ismert módon állíthatjuk elő, különféle vegyületekkel, például szerves aminokkal, így trietil-aminnal vagy tri(2-hidroxi-etil)-aminnal, alkálifémekkel és alkáliföldfémekkel, így nátriummal, káliummal, magnéziummal és kalciummal; szervetlen savakkal, így sósavval, kénsavval vagy foszforsavval és szerves savakkal, így ecetsavval, citromsavval, benzoesavval, maleinsavval, fumársavval, borkősavval vagy p-toluolszulfonsavval.
A találmány tárgya tehát eljárás egy új antibiotikum, a merszacidin előállítására, a Hoechst India Limited törzsgyűjteményében Y-85,54728 számon nyilvántartott törzs, valamint annak mutánsai és variánsai tenyészésével.
Az eljárás során az Y-85,54728 törzset, annak mutánsait és/vagy variánsait aerob körülmények között tenyésztjük, szén- és nitrogénforrást, szervetlen tápsókat és nyomelemeket tartalmazó tápközegben, majd a tenyészléből a fenti antibiotikumot izoláljuk és tisztítjuk.
Szénforrásként például galaktózt, glicerint, szacharózt, vagy glükózt használhatunk. A galaktóz előnyös szénfonást jelent. Nitrogénforrásként előnyösen élesztőkivonatot, marhahúskivonatot, kukoricalekvárt, kazein-hidrolizátumot, vagy szervetlen anyagokat, például ammóniumsókat használhatunk. Nitrogénforrásként különösen előnyös a kukoricalekvár. A szervetlen tápsók közül példaként a nátrium-hidrogén-foszfátot, kálium-hidrogén-foszfátot, kalcium-kloridot és magnézium-szulfátot említhetjük. A nyomelemek például vas-, mangán-, réz-, vagy cinksók vagy más fémsók lehetnek
Az Y-85,54728 törzset előnyösen 26 és 29 ’C közötti hőmérséklet-tartományban tenyésztjük, 6,5 és 7,2 közötti pH-értéken. Az Y-85,54728 törzset különösen előnyösen 28 'C (+1 ’C) hőmérsékleten, pH 7,2 értékén tenyésztjük
A tenyésztés ideje előnyösen 60-72 óra, ezalatt képződik a találmány szerinti eljárással előállított merszacidin optimális hozammal. A tenyésztést különösen előnyösen 66 órán keresztül folytatjuk, rázólombikos merített tenyészetben vagy laboratóriumi fermentorban. Kívánt esetben a fermentorban habzásgátló szert például Desmophen*-t (poliol, gyártó cég a Bayer AG, Leverkusen, NSZK) - használhatunk. A tenyésztés lefutását, és a kívánt merszacidin képződését a tenyészlé Staphylococcus aureus 35 209 P, Staphylococcus aureus R 85 és Alcaligenes faecalis elleni biológiai aktivitásával mérjük, agardiffúziós módszer segítségével (lásd pl. Oxoid-Handbuch 1972, 2. kiadás, kiadó: Oxoid Limited, London, England).
A kapott tenyészlében a merszacidin csak a tenyészet szűrletében található, ami a sejttömegtől centrifugálással választható el. A tenyészet szűrletéből a merszacidint ismert eljárásokkal, például polimer adszorpciós anyagokon, így Diaion* ΗΡ-20-οη (Mitsubishi Chemical Industries, Japán), vagy Amberlite® XAD2(R), XAD-7(R)-en (polisztirol mátrixból, akril-észterból vagy amin-oxidból álló polimer adszorbens, átlagos pórusátmérője (40-225)^10-10 m, Rohm and Haas Company, USA) végzett hidrofil kromatográfiás eljárással, vagy vízzel nem elegyedő oldószerekkel - például etil-acetáttal vagy butanollal - végzett extrahálással izoláljuk. Előnyösen úgy járunk el, hogy a merszacidint Diaion ΗΡ-20-οη adszorbeáljuk, majd megfelelő oldószerekkel - például metanollal, acetonitrillel vagy ezek vizes elegyeivel - eluáljuk. A merszacidin eluálására oldószerként előnyösen metanolt használunk.
Az aktív eluátumokból az oldószer, így a metanol eltávolítása után nyers merszacidint kapunk. A további tisztítást például szilikagélen, módosított szilikagélen, cellulózon vagy Sephadex* LH-20-οη (lipofil gélszűrő anyag, gyártja a Pharmacia Fine Chemicals AB, Svédország) végzett kromatografálással érhetjük el. Előnyösen szilikagélen kromatografálva tisztítjuk a nyers merszacidint, az eluálást acetonitril és víz elegyével végezzük, úgy, hogy a víz koncentrációját lépcsőzetesen 5-10%-kal növeljük. A biológiai vizsgálat szerint aktív eluátumot koncentrálva kapjuk a félig tiszta kívánt terméket.
HU 203 906 Β
Az így kapott, félig tiszta antibiotikumot lipofil gélszűrő anyagon, például Sephadex· LH-20-οη kromatografálva tisztítjuk tovább, eluálószerként például vizet, metanolt, kloroformot, hexánt vagy ezek megfelelő kombinációját alkalmazva, és adott esetben utólagos aktív szenes kezelést is végzünk, vagy preparatív nagynyomású folyadékkromatográfiás eljárással végezzük a tisztítást, szilikagél-oszlopon, eluálószerként például metanolt, acetonitrilt, vizet, vagy ezek megfelelő kombinációját alkalmazva. A tisztítást előnyösen oktadeciltriklór-szilán-csoportokat tartalmazó HPLC-anyaggal [például a Hypersil* (Shandon, USA)] töltött oszlopon nagynyomású folyadékkromatográfiás eljárással végezzük, acetonitril és víz 70:30 térfogatarányú elegyének alkalmazása mellett.
A biológiailag aktív eluátumokból a szerves oldószert például vákuumban végzett desztillálással eltávolítjuk, majd a vizet liofilizálással távolítjuk el.
A merszacidint fehér por formájában kapjuk.
A merszacidin antibakteriális hatása következtében (lásd hatástani példák) gyógyászati készítmények hatóanyagaként használható. A találmány tárgya ennek megfelelően eljárás gyógyászati készítmények előállítására, amelyek a merszacidinen, mint hatóanyagon kívül a gyógyszerkészítésben szokásosan használt hordozóanyagokat és/vagy egyéb segédanyagokat tartalmazzák.
A találmány szerinti eljárással előállított gyógyászati készítmények antibiotikumként és/vagy immunszupresszív hatású szerként használhatók.
A találmányt közelebbről az alábbi példák segítségével kívánjuk ismertetni.
1. példa
Y-85,54728 törzs izolálása talajból (a) Izolálásra használt tápközeg összetétele proteoz-pepton 20,0 g kálium-szulfát 1,5 g magnézium-szulfát-heptahidrát 1,5 g glicerin 10,0 g agar-por 15,0 g ionmentes víz 1 liter pH 6,8 (b) Talajelőkészítés és izolálás g talajmintához - amelyet egy sóbepárlóből (Mulundból) nyertünk - 90 ml steril, ioncserélt vizet adunk 250 ml-es Erlenmeyer-lombikban, és a lombikot körkörös rázógépen, 220 fordulat/perecel 2 órán keresztül rázatjuk. Az így kapott talajszuszpenziót sorozathígítással 10-10'3-szeresére hígítjuk. Az utolsó hígítással kapott szuszpenzióból 1 ml-t 153,4 mm átmérőjű steril Petricsésze közepébe mérünk, hozzáöntünk kb. 50 ml fenti összetételű, 45 ’C-ra lehűtött izoláló tápközeget, és a lemezt alaposan összerázzuk. A talajszuszpenzió és tápközeg elegyét hagyjuk megszilárdulni és 3 napon keresztül 28±1 ’C-on inkubáljuk A Petri-csészéket szabályos időközökben kiértékeljük és a szaporodó mikroorganizmusok közül az Y-85,54728 törzset izoláljuk.
2. példa
Y-85,54728 törzs fenntartása (a) Fenntartásra használt agaros tápközeg összetétele pepton 10 g marhahúskivonat 3 g élesztőkivonat 3 g agar-por 15 g ionmentes víz 1 liter pH 12 (b) Tenyészet fenntartása
Az (a) pontban megadott komponenseket a vízben melegítés közben feloldjuk, majd kémcsövekbe szétosztjuk és 121 ‘C-on 20 percen keresztül sterilizáljuk. A kémcsöveket ferde helyzetben hagyjuk lehűlni, így ferde szilárd tápközeget kapunk. A ferde agart drótkacs segítségével beoltjuk az Y-85,54728 törzzsel, és 28±1 ’C-on jól látható szaporodás eléréséig inkubáljuk. Az így nyert tenyészetet 8 ’C-on hűtőszekrényben tároljuk.
3. példa
Y-85,54728 törzs fermentálása rázott lombikban (a) Oltótenyészet tápközegének összetétele kazein-hidrolizátum 5 g kukoricalekvár 5 g glicerin 20 g galaktóz 10 g ionmentes víz 1 liter pH 7,2 (b) Oltótenyészet készítése
A fenti összetételű tápközeget 250 ml-es Erlenmeyerlombikokba osztjuk szét 25 ml-enként és 121 ‘C-on 20 percen keresztül autoklávban sterilizáljuk. A lombikokat lehűtjük és a 2. példa (b) lépése szerint kapott tenyészetből 1 kacsnyi baktériummal beoltjuk, majd 28±1 ’C-on 24 órán keresztül 220 fordulat/perc sebességgel rázatjuk. A kapott tenyészetet használjuk a fermentáló lombikok beoltására, az alábbiak szerint.
(c) Merszacidin antibiotikum előállítása rázott lombikban
A fermentálásra használt tápközeg összetétele a 3. példa (a) pontjában megadott. A tápközeget 100 ml-enként 500 ml-es Erlenmeyer-lombikokba mérjük, és 121 ’C-on 20 percen keresztül autoklávozzuk. A lombikokat lehűtjük, majd 1 térfogat%-nyi 3. példa (b) pontja szerint előállított oltőtenyészettel beoltjuk. A fermentálást körkörös rázógépen 220 fordulat/perc sebesség mellett 28±1 ’C-on 66 órán keresztül folytatjuk.
Az antibiotikum képződését agarlemez-diffüziós módszerrel ellenőrizzük, a biológiai aktivitást Staphylococcus aureus 209 P, Staphylococcus aureus R 85 és Alcaligenes faecalis törzs alkalmazásával mérjük. A fermentálás leállítása után a tenyészetet centrifugáljuk és a merszacidint a tenyészet felülúszójából az alábbiak szerint izoláljuk és tisztítjuk.
HU 203 906 Β
4. példa
Y-85,54728 tenyésztése fermentorban
1. lépés Oltótenyészet előállítása rázott lombikban A 3. példa (a) lépése szerinti összetételű tápközeg
100 ml-ét 500 ml-es Erlenmeyer-lombikba helyezzük, és pH-értékét a sterilezés előtt 6,8-ra állítjuk. A lombikot 121 ’C-on 20 percen keresztül autoklávban sterilezzük, lehűtjük és egy kacs 2. példa szerint előállított, jól szaporodó tenyészettel beoltjuk. A lombikokat 28±1 ’C-on 24 órán keresztül rázatjuk körkörös rázógéppel, 220 fordulat/perc sebességet alkalmazva. Az így kapott tenyészetet használjuk a kis fermentor beoltására, az alábbiakban ismertetett módon.
2. lépés Oltótenyészet előállítása kis fermentorban liter 3. példa (a) lépése szerinti tápkőzeg pH-értékét 6,8-ra állítjuk, és 0,04 térfogat% Desmophennel kiegészítve 15 literes rozsdamentes acél fermentorba helyezünk, és 121 ’C-on 36 percen keresztül autoklávban sterilizáljuk, majd lehűtjük, és 4 térfogat% 1. lépés szerint előállított oltótenyészettel aszeptikus körülmények között beoltjuk. A tenyésztést 24 órán keresztül folytatjuk az alábbi körülmények között:
hőmérséklet: 28±1 ’C keverési sebesség: 150 fordulat/perc levegőztetés: 6 liter/perc
A 24 órás tenyészetet használjuk a 3. lépésben a tápközeg leoltására.
3. lépés Merszacidin fermentálása
100 liter 3. példa (a) pontja szerinti összetételű tápközeget, amelynek pH-értékét sterilizálás előtt 6,8-ra állítjuk, 0,06% Desmophennel kiegészítve 1501-es fermentorba helyezünk, vagy 250 liter fenti tápközeget 0,06% Desmophennel 3901-es fermentorba helyezünk, és 28 percen keresztül 121 ‘C-on sterilezzük, majd beoltjuk 4% 4. példa 2. lépése szerint előállított oltótenyészettel.
A tenyésztést az alábbi körülmények között végezzük:
hőmérséklet: 28±1 'C keverési sebesség: 80-100 fordulat/perc levegőztetés: 501/óra (1501-es fermentorban)
125 1/óra (3901-es fermentorban) tenyésztési idő: 66 óra.
Az antibiotikum képződését Staphylococcus aureus 209 P, Staphylococcus aureus R 85 és Alcaligenes faecalis elleni aktivitásprofillal követjük nyomon. A tenyészlevet a fermentáció leállítása után centrifugáljuk, és az antibiotikumot a felülúszóból az alábbiakban ismertetett módon izoláljuk és tisztítjuk.
5. példa
Merszacidin izolálása és tisztítása
A kb. 100 liter fermentléből a micéliumot centrifugálással elválasztjuk. A kapott felülúszót (pH 6,87,0) 5 literes Diaion ΗΡ-20-oszlopra visszük. Az oszlopot ezután 501 ionmentes vízzel mossuk. Ezt követően egymás után 40 1 70% vizet tartalmazó metanollal, 50 1 50% vizet tartalmazó metanollal és 50 1 30% vizet tartalmazó metanollal mossuk és a mosófolyadékokat elöntjük. Az oszlopot ezután 101 metanollal eluáljuk. A biológiai aktivitást mutató eluátumokat csökkentett nyomáson bepároljuk. A kapott barna olajos anyagot 1 liter petroléterben (forráspontja 4060 ’C) felvesszük, szűrjük, és a szűfletet elöntjük. A fenti eljárást addig ismételjük, míg szűfési maradékként port kapunk. A fenti módon 12 g nyers merszacidint kapunk, bamássárga por formájában.
A nyers merszacidint 300 g szilikagéllel (0,0500,074 mm) töltött 5,5*53 cm-es üvegoszlopon közepes nyomású folyadékkromatográfiás eljárással tisztítjuk. Az oszlopot 1,5 1 acetonitrillel mossuk, majd 16 ml/perc átfolyási sebesség mellett 3 1 10%-os vizes acetonitrillel és 3 1 15 %-os vizes acetonitrillel eluáljuk. 250 ml-es frakciókat szedünk, és 210 nmen UV-abszorpcióval, valamint mikrobiológiai módszerrel vizsgáljuk. A 15%-os vizes acetonitrillel eluált frakciókból 6 frakció (15 liter) mutatott aktivitást, ezeket a frakciókat vákuumban 35 ‘C-on bepárolva eltávolítjuk az acetonitrilt, majd fagyasztva szárítjuk. 2 g féltiszta terméket kapunk, sárgás por formájában.
Az így kapott félig tiszta anyagot ismét közepes nyomású folyadékkromatográfiás eljárásnak vetjük alá, szilikagéllel (0,050-0,074 mm) töltött 4*54 cmes üvegoszlopon. Az oszlopot egymás után 1 liter 5%-os vizes acetonitrillel és 4,5 liter 10%-os vizes acetonitrillel eluáljuk, 30 ml/perc átfolyási sebesség mellett. 250 ml-es frakciókat szedünk, és 210 nm-en UV-abszorpcióval, valamint mikrobiológiai módszerrel vizsgáljuk. A merszacidint 750 ml 10%-os vizes acetonitriles eluátum tartalmazza, az eluátumot csökkentett nyomáson, 35 ‘C-on koncentráljuk, és fagyasztva szárítjuk. Ily módon 593 mg merszacidint kapunk, fehér - fehéres színű por formájában.
A merszacidin végső tisztítását nagynyomású folyadékkromatográfiás eljárással végezzük,
4*250 mm-es Hypersil (10 g)-oszlopon, eluálószerként 30%-os vizes acetonitrilt használtunk, az átfolyási sebesség 1,0 ml/perc. A frakciókat 210 nmen UV-abszorpció mérésével vizsgáljuk. A fenti körülmények között a merszacidin retenciós ideje kb. 35 perc. A megfelelő frakciókat összegyűjtjük, vákuumban 35 ‘C-on bepároljuk, majd végül liofilizáljuk. 275 mg antibiotikumot kapunk, fehér por formájában. A merszacidin tisztaságát 4*120 mm-es APS-Hypersil (5 p)-oszlopon vizsgáljuk, eluálószerként acetonitril és víz 70:30 térfogatarányú elegyét használjuk, az átfolyási sebesség 1 ml/perc, a papír sebessége 10 mm/perc, a detektálást 210 nm-en végezzük.
Az 1. ábrán látható a nagynyomású folyadékkromatográfiás eljárással kapott kromatogram.
A merszacidin fizikai-kémiai tulajdonságai
A merszacidin új vegyület, amelynek szerkezetére jellemző egy C-terminális vinil-amid-maradékot tartalmazó nonadekapepetid, és négy intramolekuláris szulfid-híd. A fizikai-kémiai állandókat az 1. táblázatban foglaljuk össze.
HU 203 906 Β
1. táblázat
Merszacidin fizikai-kémiai tulajdonságai
Megjelenés: fehér, amorf por
Jelleg: ciklusos polipeptid
Olvadáspont: kb. 240 ’C (bomlás közben) [a]/?: -9,4’ (c-0,3, metanol)
Összegképlet: C80H120N20O21S4
- nagyfelolvadású tömegspektrometriás eljárással meghatározva (FAB-ionizálás, mátrix: 3-nitro-benzil-alkohol)
- mért m/z: 1825,785 (M+H*-ion)
- számított m/z: 1825,790 a 12CW ‘Hm 14NM 16O2i 32S< képletre
Tömegspektrum (FAB, mátrix: 3-nitro-benzil-alkohol): 2. ábra ‘H-NMR-spektrum (270 MHz, CD3OD): 3. ábra 13C-NMR-spektrum (100 MHz, CDjOH): 2. táblázat
2. táblázat
Merszacidin 13C-NMR-spektruma (7%-os oldat CD3OH-ban, 310 K)
Kémiai eltolódás (ppm) Felhasadás Szerkezet- -hozzárendelés
10,42 q C-5 Ile (19)
15,97 q C-4’De (19)
18,51 q C-4 3-tio-Abu (2)
18,68 q C-4’Val (11)
19,77 q C-4 Val (11)
20,13 q C-4 3-tio-Abu (4+15)
21,28 q C-4 3-tio-Abu (13)
22,43 t C-3 Cys (1)
22,43 q C-5’Leu (5)
23,17 q C-5’Leu (14)
23,53 q C-5 Leu (5)
23,58 q C-5 Leu (14)
25,47 d C-4 Leu (5)
25,78 d C-4 Leu (14)
26,00 t C-4 Pro (6)
26,68 t C-4 Ile (19)
28,17 t C-3 Glu (18)
30,85 t C-3 Pro (6)
32,54 d C-3 Val (11)
33,58 t C-3 Cys (12)
35,21 d C-3 Ile (19)
35,59 t C-4 Glu (17)
37,14 t C-3 Cys (18)
37,34 t C-3 Phe (3)
39,39 d C-3 3-tio-Abu (2)
40,93 t C-3 Leu (14)
42,02 t C-3 Leu (5)
42,81 t C-2 Gly (10)
43,38 t C-2 Gly (9)
43,59 d C-3 3-tio-Abu (4)
44,10 t C-2 Gly (7)
44,62 t C-2 Gly (8)
45,50 d C-3 3-tio-Abu (13)
Kémiai eltolódás (ppm) Felhasadás Szerkezet- -hozzárendelés
48,67 t C-5 Pro (6)
49,46 d C-3 3-t (15)
50,42 d C-2 Leu (14)
52,71 d C-2 Leu (5)
55,25 d C-2 Cys (18)
55,72 d C-2 Cys (12)
56,72 d C-2 Glu (17)
57,42 d C-2 3-tio-Abu (15)
57,81 d C-2 Phe (3)
58,12 d C-2 Cys (1)
59,07 d C-2 3-tio-Abu (2)
59,08 d C-2 3-tio-Abu (4)
59,19 d C-2 3-tio-Abu (13)
61,60 d C-2 Pro (6)
62,64 d C-2 Ile (19)
63,14 d C-2 Val (11)
103,84 d C-2 Tio-vinil-amid (20)
112,41 t C-2 dehidro-Ala (16)
127,97 d C-7 Phe (3)
129,56 d C-l Tio-vinil-amid (20)
129,71 d C-6Phe(3)
130,22 d C-5 Phe (3)
136,96 s C-4 Phe (3)
138,15 s C-2 dehidró-Ala (16)
166,56 s C-l dehidro-Ala (16)
171,16 s C-l Ile (19)
171,38 s C-l Gly (10)
171,44 s C-l Cys (18)
171,62 s C-l 3-tio-Abu (4)
171,76 s C-l 3-tio-Abu (15)
171,82 s C-l Gly (9)
171,84 s C-l Leu (5)
171,86 s C-l 3-tio-Abu (13)
171,87 s C-l 3-tio-Abu (2)
172,59 s C-l Gly (8)
172,74 s C-l Leu (14)
173,06 s C-l Gly (7)
173,76 s C-l Cys (12)
174,00 s C-l Val (11)
174,25 s C-l Glu (17)
174,61 s C-l Cys (1)
174,81 s C-l Phe (3)
175,62 s C-l Pro (6)
181,31 s C-5 Glu (17)
Biológiai hatékonysági vizsgálatok (a) Merszacidin hatása in vitro
A merszacidin biológiai hatékonyságát a különböző mikroorganizmusok szaporodásának gátlásához szükséges minimális gáltó koncentráció (MIC) értékek meghatározásával jellemezzük. Az eredményeket a 3. táblázatban ismertetjük.
HU 203 906 Β
3. táblázat
Merszacidin antibakteriális hatása in vitro
Szám Tesztorganizmus MIC-érték (pg/ml)
1. Staph. aureus 209P 0,78-1,56
2. Staph. aureus E 88 6,25-12,50
3. Staph. aureus 3066 1240-25,00
4. Staph. aureus 20240 3,12-6,25
5. Staph. aureus 20424 146-3,12
6. Staph. aureus 503 0,78-1,56
7. Staph. aureus 789 0,78-1,56
8. Staph. aureus 722 3,12-6,25
9. Staph. aureus SG 511 0,39-0,78
10. Staph. aureus 20666 3,12-6,25
11. Staph. aureus E 712 3,12-6,25
12. Staph. aureus 285 0,78-1,56
13. Staph. aureus R 85 0,39-0,78
14. Staph. aureus 710 0,39-0,78
15. Micrococcus luteus 0,0975-0,195
16. Bacillus subtilis 0,39-0,78
17. Streptococcus faecalis 0,0975-0,195
18. Str.D 21777 1,56-3,12
19. S. epidermidis MRSE 04-16,0
20. S. epidermidis MSSE 04-16,0
21. Streptococcus A csoport 04-8,0
22. Streptococcus B csoport 1,0-8,0
23. Streptococcus C csoport 2,0-64
24. Streptococcus G csoport 2,0-8,0
25. Streptococci bovis 4,0-32,0
26. Streptococcus viridans 04-32,0
27. Streptococcus faecalis 64,0
28. Streptococcus pneumoniae 1,0-4,0
29. Corynebacterium JK 2,0-4,0
30. Listeria monocyctogenes 16,0-64,0
31. Clostridium species 04-16,0
32. Peptostreptococci species 04-8,0
33. Propionobacterium genes 1,0-16,0
(b) Merszacidin hatása in vivő
A merszacidin in vivő vizsgálatát egérben végezzük. A kísérletekben a merszacidin aktivitása jó. A Staphylococcus aureus SG 511 és S. aureus 710 (meticillin-rezisztens) törzzsel kísérletesen fertőzött egerek gyógyulása 100%-os 9,37, illetve 25 mg/kg szubkután adott merszacidin hatására. Ezenkívül a vegyület akut toxicitását is vizsgáltuk laboratóriumi egereken. 500 mg/kg szubkután dózisban (ez az eddig vizsgált legmagasabb koncentráció) nem tapasztalunk pusztulást az állatok között. Az eredményeket a 4. és 5. táblázatban foglaljuk össze.
A merszacidin hatását patkányokon is vizsgáljuk in vivő, S. aureus SG 511 okozta tályog ellen, vankomicinnel összehasonlítva.
A fertőzést 2-109 telepképző egység baktérium 5%os mucinos szuszpenziójának bőr alá injektálásával végezzük. A kezelést 50 mg/kg dózissal végezzük, 7 napon keresztül.
4. táblázat
Merszacidin hatása S. aureus SG 511-gyel fertőzött egéren, vankomicinnel összehasonlítva (fertőző dózis: 1,7540’ TKE/egér)
Vegyület Dózis/adagolás Gyógyult/kezelt egerek száma (%-os gyógyulás) Közelítő EDjo. ED90 mg/kg«3
mg/kg-3 s.c.
merszacidin 9,37 53/53 (100)
6,25 38/40 (95) 2,59
3,12 18/27 (67) 5,38
1,60 3/24(12)
0,80 0/27 (0)
vankomicin 18,75 71/71 (100)
12,5 59/61 (97) 7,20
9,37 48/53 (85) 9,37
6,25 13/44 (29)
3,12 2/41 (5)
5. táblázat
Merszacidin hatása S. aureus E 710 (MRSA) fertőzés ellen egéren, vankomicinnel összehasonlítva (fertőző dózis: 540’ TKE/egér) (1 MLD)
Vegyület Dózis/adagolás Gyógyult/kezelt Közeli tő
mg/kg«3 egerek száma ED50, ED90
s.c. (%-os gyógyulás) mg/kg-3
merszacidin 25,00 12/12 (100) 10,81
12,50 10/16 (63) 19,59
9,37 4/10 (40)
6,25 1/10 (10)
vankomicin 37,00 6/6 (100) 18,94
25,00 14/21 (67) 32,01
12,50 3/11 (27)
6,25 0/11 (0)
A merszacidin 1,4 logio TKE/ml-rel csökkenti a baktériumok számát, a vankomicin 0,79 logio TKE/ml-rel (TKE-telepképző egység, MLD-letális dózis egérben).
6. példa
Merszacidin vízoldható sóinak előállítása
A merszacidin alkálifémsói formájában vízoldható. Ezeket a sókat például úgy állíthatjuk elő, hogy a merszacidint egy ekvivalens megfelelő alkálifém-hidroxiddal reagáltatjuk, piridin jelenlétében.
Például 50 mg merszacidint 1 ml pirídinben oldunk, az oldatot 0 ’C-ra lehűtjük, és keverés közben hozzáadjuk 1,683 mg kálium-hidroxid 3 ml desztillált vízzel készült oldatát. Az elegyet 0 'C-on 1 órán keresztül keverjük, majd liofílizáljuk. 49 mg kálium-merszacidint kapunk, fehér por formájában.
A fenti kálium-merszacidin vízoldhatósága 160 mg/ml. A kálium- merszacidin in vitro és in vivő anti-61
HU 203 906 Β bakteriális tulajdonságai összehasonlíthatók a merszacidinével. A kísérleti eredményeket a 6. és 7. táblázat tartalmazza.
6. táblázat
Kálium-merszacidin MIC-értékei
Szám Tesztoiganizmus MIC-érték (pg/ml)
1. Staph. aureus 209P 2
2. Staph. aureus R 85 2
3. Staph. aureus 710 1
4. Staph. aureus 3066 10
5. Staph. aureus 25923 8
6. Staph. epidermidis 32965 6
7. Staph. epidermidis 823 50
8. Staph. haemolyticus 712 10
9. Staph. haemolyticus 809 4
10. Strepto. hominis ML 22 10
11, Strepto. faecalis 29212 15
12. Strepto. faecalis 21777 15
7. táblázat
Kálium-merszacidin in vivő hatása S. aureus és Strept pyogenes A 77 fertőzés ellen egéren
Tesztorganizmus e Fertőző dózis (telepképző gység/egér)*s.c. 50%-os hatásos dózis (ED») mg/kg-3
Staph. aureus SG 511 (meticillin-szenzitív) 1,75*10’ 2,85
Staph. aureus E 710 (meticillin-rezisztens) WO10 6,72
Staph. aureus C 31153 (meticillin- és cefalexin-rezisztens) 2· 10’ 15,35
Strept. pyogenes A 77 3,8-103 0,46
SZABADALMI IGÉNYPONTOK

Claims (6)

1. Eljárás a (Π) képletű vegyület és gyógyászatilag elfogadható sói előállítására, azzal jellemezve, hogy az eubaktérium Bacillus Y-85,54728 (letéti száma DSM 4584) törzset, annak variánsát és/vagy mutánsát szénés nitrogénforrást, szervetlen tápsókat és nyomelemeket tartalmazó tápközegben, aerob körülmények között tenyésztjük, majd a vegyületet a tenyészléből szokásos módon izoláljuk és tisztítjuk, és kívánt esetben savval vagy bázissal kezelve sóvá alakítjuk.
2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a tenyésztést 26 és 29 ’C közötti hőmérsékleten, 6,5 és 7(2 közötti pH-értéken végezzük.
3. Az 1. vagy 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a tenyésztést 28±1 'C hőmérsékleten és 7(2 pH-értéken végezzük.
4. Az 1-3. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a fermentálást több mint 60 órán keresztül végezzük.
5. Az 1-4. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a (Π) képletű vegyületet kromatográfiás eljárásokkal tisztítjuk.
6. Eljárás gyógyászati készítmények előállítására, azzal jellemezve, hogy az 1-5. igénypontok bármelyike szerinti eljárással előállított vegyületet vagy annak egy gyógyászatilag elfogadható sóját a gyógyszerkészítésben szokásosan használt hordozó- és/vagy egyéb segédanyagokkal összekeverjük, és megfelelő dózisformává alakítjuk.
HU894215A 1988-08-17 1989-08-16 Process for producing new antibioticum named mersacidin and salts and pharmaceutical composition containing them as active components HU203906B (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE3827868A DE3827868A1 (de) 1988-08-17 1988-08-17 Ein neues antibiotikum, mersacidin, ein verfahren zu seiner herstellung und seine verwendung als arzneimittel

Publications (2)

Publication Number Publication Date
HUT55054A HUT55054A (en) 1991-04-29
HU203906B true HU203906B (en) 1991-10-28

Family

ID=6361001

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU894215A HU203906B (en) 1988-08-17 1989-08-16 Process for producing new antibioticum named mersacidin and salts and pharmaceutical composition containing them as active components

Country Status (20)

Country Link
US (1) US5112806A (hu)
EP (1) EP0362520B1 (hu)
JP (1) JP2892699B2 (hu)
KR (1) KR0139628B1 (hu)
AT (1) ATE113296T1 (hu)
AU (1) AU613228B2 (hu)
CA (1) CA1338171C (hu)
DE (2) DE3827868A1 (hu)
DK (1) DK175121B1 (hu)
ES (1) ES2064398T3 (hu)
FI (1) FI94648C (hu)
HU (1) HU203906B (hu)
IE (1) IE64706B1 (hu)
IL (1) IL91317A0 (hu)
IN (1) IN167138B (hu)
NO (1) NO174517B (hu)
NZ (1) NZ230303A (hu)
PH (1) PH27179A (hu)
PT (1) PT91468B (hu)
ZA (1) ZA896245B (hu)

Families Citing this family (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE69433357T2 (de) * 1994-09-12 2004-09-09 Aventis Pharma Deutschland Gmbh Rekombinantes Mersacidin und Verfahren zu seiner Herstellung
US5910479A (en) * 1996-10-18 1999-06-08 Ambi Inc. Method for the treatment of Streptococcus pneumoniae infection
US6861236B2 (en) * 2002-05-24 2005-03-01 Applied Nanosystems B.V. Export and modification of (poly)peptides in the lantibiotic way
GB0406870D0 (en) 2004-03-26 2004-04-28 Novacta Biosystems Ltd Improvements relating to the production of lantibiotics
WO2007036706A1 (en) * 2005-09-27 2007-04-05 Novacta Biosystems Limited Variants of the lantibiotic mersacidin and their use
GB0600928D0 (en) 2006-01-17 2006-02-22 Novacta Biosystems Ltd Improvements relating to lantibiotics
GB0714029D0 (en) * 2007-07-18 2007-08-29 Novacta Biosystems Ltd Lantibiotic-based compounds having antimicrobial activity
GB0714030D0 (en) * 2007-07-18 2007-08-29 Novacta Biosystems Ltd The use of type-B lantibiotic-based compounds having antimicrobial activity
SG172944A1 (en) * 2009-01-14 2011-08-29 Novacta Biosystems Ltd Deoxyactagardine derivatives
CN102388060B (zh) 2009-02-04 2014-09-10 诺瓦克塔生物系统有限公司 阿肽加定衍生物
GB201001688D0 (en) 2010-02-02 2010-03-17 Novacta Biosystems Ltd Compounds
GB201013513D0 (en) 2010-08-11 2010-09-22 Novacta Biosystems Ltd Formulations
KR102582570B1 (ko) * 2021-03-19 2023-09-22 한국생명공학연구원 유박테리움 칼란데리, 이의 배양액 또는 이의 배양액 추출물을 유효성분으로 포함하는 암 예방 또는 치료용 조성물
EP4404946A1 (en) * 2021-09-22 2024-07-31 BiomEdit, LLC Methods of inhibiting diseases caused by respiratory viruses

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4493796A (en) * 1980-09-12 1985-01-15 Board Of Trustees, Univ. Of Ill. Didemnins A, B, C, and derivatives thereof, as antiviral agents
JPS61134398A (ja) * 1984-12-06 1986-06-21 Microbial Chem Res Found 新生理活性物質プリパスタチン及びその製造法

Also Published As

Publication number Publication date
PH27179A (en) 1993-04-02
IL91317A0 (en) 1990-03-19
PT91468A (pt) 1990-03-08
KR0139628B1 (ko) 1998-07-01
DK403789D0 (da) 1989-08-16
IN167138B (hu) 1990-09-01
IE64706B1 (en) 1995-08-23
DK175121B1 (da) 2004-06-07
FI893842A (fi) 1990-02-18
KR900003206A (ko) 1990-03-26
FI893842A0 (fi) 1989-08-15
FI94648B (fi) 1995-06-30
ATE113296T1 (de) 1994-11-15
NO174517C (hu) 1994-05-18
AU613228B2 (en) 1991-07-25
PT91468B (pt) 1995-05-04
JPH02142800A (ja) 1990-05-31
CA1338171C (en) 1996-03-19
EP0362520A3 (de) 1991-10-23
EP0362520A2 (de) 1990-04-11
DK403789A (da) 1990-02-18
JP2892699B2 (ja) 1999-05-17
DE58908558D1 (de) 1994-12-01
AU3996689A (en) 1990-02-22
ZA896245B (en) 1990-04-25
US5112806A (en) 1992-05-12
EP0362520B1 (de) 1994-10-26
IE892638L (en) 1990-02-17
NO893288L (no) 1990-02-19
NO893288D0 (no) 1989-08-16
DE3827868A1 (de) 1990-02-22
ES2064398T3 (es) 1995-02-01
NZ230303A (en) 1992-06-25
FI94648C (fi) 1995-10-10
HUT55054A (en) 1991-04-29
NO174517B (no) 1994-02-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HU203906B (en) Process for producing new antibioticum named mersacidin and salts and pharmaceutical composition containing them as active components
NZ509306A (en) Nocathiacin antibiotics
FI77690C (fi) Foerfarande foer framstaellning av en antibiot, aad 216-komplex med mikroben kibdelosporangium aridum shearer gen. nov., sp. nov. atcc 39323.
US4180564A (en) A-38533 Antibiotics and process for production thereof
KR20090036544A (ko) 신규한 항균성 화합물
FI101402B (fi) Menetelmä uuden antibiootin, balhimysiinin valmistamiseksi
AU2008255202A1 (en) Antibiotics GE 81112 factors A, B, B1, pharmaceutically acceptable salts and compositions, and use thereof
US5451570A (en) Antibiotic, balhimycin, a process for its production and its use as pharmaceutical
RU2795449C1 (ru) Новые депсипептидные соединения, обладающие антибактериальной активностью
US6586393B2 (en) Antibiotics GE 23077, pharmaceutically acceptable salts and compositions, and use thereof
EP0472186B1 (en) Antibiotics AB-023 and process for preparing them
EP0368949A1 (en) Novel antibiotic compounds
KR810000327B1 (ko) 항생물질 a-35512 구성요소 b 비당체의 제조방법
KR810000089B1 (ko) A-35512 항생물질의 제조방법
KR830001443B1 (ko) 항생물질 a/16686의 제법
NZ571636A (en) Novel antibacterial compounds comprising multiple thiazole rings isolated from Kocuria
EP0375448A2 (en) Antibiotic products
MXPA98008484A (en) New lantibiotic related with actagardine, procedure for its preparation and employment of the mi
CZ294370B6 (cs) Amycomycin, způsob jeho přípravy a farmaceutické prostředky, které ho obsahují
WO2008024285A2 (en) Antibiotic compound

Legal Events

Date Code Title Description
GB9A Succession in title

Owner name: SANOFI-AVENTIS DEUTSCHLAND GMBH, DE

Free format text: FORMER OWNER(S): HOECHST AG., DE