HRP20030975A2 - Lipid-polymer-conjugates - Google Patents

Lipid-polymer-conjugates Download PDF

Info

Publication number
HRP20030975A2
HRP20030975A2 HR20030975A HRP20030975A HRP20030975A2 HR P20030975 A2 HRP20030975 A2 HR P20030975A2 HR 20030975 A HR20030975 A HR 20030975A HR P20030975 A HRP20030975 A HR P20030975A HR P20030975 A2 HRP20030975 A2 HR P20030975A2
Authority
HR
Croatia
Prior art keywords
polymer
poly
lipid
dodasuc
conjugate according
Prior art date
Application number
HR20030975A
Other languages
English (en)
Inventor
Josbert
Wilhelmus
De Vringer Tom
Leonardus
Oussoren Christien
Storm Gerrit
Bruin Peter
Original Assignee
Yamanouchi Europe B.V.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Yamanouchi Europe B.V. filed Critical Yamanouchi Europe B.V.
Publication of HRP20030975A2 publication Critical patent/HRP20030975A2/hr

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08GMACROMOLECULAR COMPOUNDS OBTAINED OTHERWISE THAN BY REACTIONS ONLY INVOLVING UNSATURATED CARBON-TO-CARBON BONDS
    • C08G69/00Macromolecular compounds obtained by reactions forming a carboxylic amide link in the main chain of the macromolecule
    • C08G69/02Polyamides derived from amino-carboxylic acids or from polyamines and polycarboxylic acids
    • C08G69/08Polyamides derived from amino-carboxylic acids or from polyamines and polycarboxylic acids derived from amino-carboxylic acids
    • C08G69/10Alpha-amino-carboxylic acids
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/10Dispersions; Emulsions
    • A61K9/127Liposomes
    • A61K9/1271Non-conventional liposomes, e.g. PEGylated liposomes, liposomes coated with polymers

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • General Preparation And Processing Of Foods (AREA)
  • Polyamides (AREA)
  • Compositions Of Macromolecular Compounds (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Biological Depolymerization Polymers (AREA)
  • Cosmetics (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Addition Polymer Or Copolymer, Post-Treatments, Or Chemical Modifications (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)

Description

Prisutno otkriće odnosi se na lipid-polimer konjugate, njihovu pripravu i na njihove primjene.
Pozadina otkrića
Dobro poznati lipid-polimer konjugati koriste se u nizu različitih primjena. Jedna od njih je uključivanje u pripravke koloidnog nosača kao što su sustavi mjehurića s lipidnim dvoslojem-liposomi, niosomi i obrnuti lipidni mjehurići, sustavi micela, nanokapsule, nanosfere itd. Dobro poznati primjer takvih pripravaka koloidnog nosača formiran je pomoću liposoma. Izuzev spomenutih liposoma, čitatelj bi trebao imati na umu da se rasprava, zaključci i tehnike odnose i na druge pripravke koloidnog nosača.
Liposomi, koji pripadaju skupini čestica koloidnog nosača su mali lipidni mjehurići koji se sastoje od jednog ili više koncentričnih lipidnih dvosloja okruženih vodenim medijem. Brzo je uočen njihov značaj kao sustava isporuke lijekova zbog njihove strukturne svestranosti vezane uz veličinu, površinski naboj, lipidni sastav, dvoslojnu propusnost i zbog njihove sposobnost da enkapsuliraju gotovo bilo koji lijek. Intravenoznim injektiranjem liposoma, mononuklearni fagocitni sustav (MPS) ih prepoznaje kao strane čestice, te ih uklanja iz cirkulacije u organima bogatim fagocitnim stanicama kao što su jetra, slezena i koštana srž. Identificirano je nekoliko mogućnosti za smanjenje takvog učinka, kao što su povećanje veličine čestica liposoma i mijenjanje površinskog naboja liposoma. Još jedna mogućnost odnosi se na površinsku modifikaciju liposoma uvođenjem specifičnih polimernih komponenta na površinu liposoma čije skupine smanjuju proteinsku adsorpciju na površinu čestice. Prema tome, takve liposome ne prepoznaju stanica MPS-a, te imaju produženo vrijeme otpornosti u općoj cirkulaciji. Dobro poznati primjer modifikacije liposomske površine je inkorporiranje tijekom priprave liposomskih pripravaka lipidnog derivata hidrofilnog polimera polietilen-glikola (PEG). Uobičajeno je terminus tog polimera modificiran hidrofobnim dijelom koji je ostatak derivata fosfatidiletanolamina ili dugolančane masne kiseline. Polietilen-glikol per se je prilično stabilan polimer koji odbija proteinsku adheziju i koji u fiziološkim uvjetima nije podložan enzimskoj ili hidrolitičkoj razgradnji. Dobiveni su dobri rezultati praćenjem intravenozne primjene liposoma koji sadrže PEG-cijepljenu površinu s obzirom na produljeno vrijeme poluraspada plazme i smanjeno nakupljanje u organima koji su bogati fagocitnim stanicama kod animalnih vrsta i ljudi (Storm G., Belliot S. O., Daemen T. i Lasic D. D.: Površinska modifikacija nanočestica nasuprot mononuklearnog fagocitnog sustava u Adv. Drug Delivery Rev. 17, 31-48, (1995); Moghimi S. M., Hunter A. C. i Murray J. C.: Dugocirkulirajuće i ciljno specifične nanočestice, teorija u praksi u Pharmacol. Rev. 53, 283-318, (2001); Boerman O. C., Dams E. T., Oyen W. J. G., Corstens F. H. M. I Storm G.: Radiofarmaceutici za scintigrafske prikaze infekcija i upala u Inflamm. Res. 50, 55-64, (2001)). Tržište odobrava takve liposomske preparate koji sadrže doksorubicin.
Međutim, nađeno je nekoliko štetnosti primjene polimernog polietilen-glikola u dugocirkulirajućim liposomima. Značajno je nakupljanje PEG-cijepljenih liposoma u makrofagima i koži usljed nebiorazgradnje. Drugi put je opažen gubitak dugocirkulirajućih svojstava (brzo ukljanjanje) injektiranjem PEG-liposoma (Dams E. T., Laverman P., Oijen W. J., Storm G., Scherphof G. L., Van der Meer J. W., Corstens F. H. i Boerman O. C.: Ubrzano pročišćavanje krvi i preinaka biodistribucije ponavljanih ubrizgavanja sterički stabiliziranih liposoma u J. Pharmacol. Exp. Ther. 292, 1071-1079 (2000)). Nedavna istraživanja pokazuju da PEG-liposomi u pacijenata mogu potaknuti akutne nuspojave (crvenilo lica, stezanje u prsima, skraćivanje daha, promjene u krvnom tlaku) koje se povlače odmah po završetku primjene (infuzije) PEG-liposomskih formulacija. Nedavni podaci ukazuju da u nastanku nuspojava ulogu igra komplementarna aktivacija (Szebeni J., Barany L., Savay S., Lutz H., Jelezarova E., Bunger R. i Alving C. R.: Uloga komplementarne aktivacije u hipersenzitivnosti na PEG-liposomski doksorubicin (Doxil) u J. Liposome Res. 10, 467-481, (2000)). Do sada su preparati bazirani na PEG-liposomima komercijalno bili dostupni u obliku vodenih suspenzija. Dobro je poznato da je rok trajanja preparata liposomskih vodenih suspenzija općenito i PEG-liposoma, prilično ograničen. Poznato je nekoliko tehnika kojima je moguće ukloniti prenosnika ili kontinuiranu fazu takvih preparata kao što su sušenje raspršivanjem, dijafiltracija, rotacijska evaporacija itd. i preferirano sušenje smrzavanjem. Nedavno je predložena metoda sušenja smrzavanjem kojom se produžuje rok trajanja PEG-liposoma koji sadrže tehnicijev kelat, hidrazin-nikotinamid (Laverman P., van Bloois L., Boerman O. C., Oyen W. J. G., Corstenes F. H. M. i Storm G.: Liofilizacija Tc-99m-HYNIC označenih PEG-liposoma u J. Liposome Res. 10(2&3), stranica 117-129 (2000)), no potrebno je izvršiti daljnja ispitivanja rezultata i primjenjivosti te tehnike na liposomske preparate.
Određene štetnosti vezane uz upotrebu polietilen-glikola potiću istraživaće da pronađu alternativne polimere. Mnogi su polimeri predloženi kao prikladni kanditati za derivatiziranje s lipidima (koji stvaraju mjehuriće) za ugrađivanje u liposome (vidi npr. EP-0688207). Hidrofilni polimeri topljivi u vodi (poli(vinilpirolidin), poli(akriloilmorfolin), poli(2-(m)etil-2-oksazolin, poliakrilamid i poliglicerol) do određenog stupnja pokazuju produživanje cirkulacijskog vremena liposoma nakon intravenozne primjene. Do sada takvi lipid-polimer konjugati nisu bili primjenjivani u komercijalno dostupnim preparatima, uglavnom zbog toga što ne pokazuju nikakvu prednost od poznatih lipid-PEG konjugata. Zato je još uvijek potrebno naći polimer koji se može derivatizirati s lipidom i inkorporirati u pripravke koloidnog nosača, kao što su liposomi, takav polimer treba imati dugocirkulirajuća svojstva uz prednosti nad polietilen-glikolom, kao što je biorazgradivost.
Sažetak otkrića
Pripravljeni su lipid-polimer konjugati koji se mogu dobiti iz amfifilnog lipida koji se sastoji od najmanje jednog hidrofobnog, nepolarnog dijela i hidrofilne, polarne glave, te od njegovog polimernog ili monomernog prekursora koji ima N- i C-terminalne krajnje skupine, pri čemu je polimer poli-(aminokiselina), poli-(derivat aminokiseline) i poli-(analog aminokiseline) i pri čemu je lipid kovalentno vezan s N- ili C-terminalnom krajnjom skupinom polimera koji ima slijedeću formulu:
-[NHCHR(CH2)mCO]n-, pri čemu je R: -H, -CH3, -CHCH3OR1, -(CH2)xOR1, -(CH2)x-CO-NHR1, -(CH2)x-NH-CO-R1, -(CH2)x-SOyCH3, ili -(CH2)xCOOH; -R1 je H ili (C1-C4)alkil supstituiran s jednom ili više hidroksilnih skupina ili jednom di(C1-C4)alkilaminskom skupinom; x je 0-4; m=1 ili 0 i y=1 ili 2. Također su osigurane metode priprave takvih konjugata, te njihove primjene.
Legende slika
Slika 1 je grafički opis srednjih vrijednosti za izračunati postotak injektirane doze u krvnim uzorcima u odnosu na vrijeme za liposomske preparate koji sadrže PEG-DSP i koji imaju različitu količinu ukupnog lipida (primjer 22).
Slika 2 je grafički opis srednjih vrijednosti za izračunati postotak injektirane doze u krvnim uzorcima u odnosu na vrijeme za liposomske preparate koji sadrže PHEA-DODASuc i koji imaju različitu količinu ukupnog lipida (primjer 22).
Slika 3 je grafički opis postotka enkapsuliranog prednizolon-fosfata u liposomskim preparatima koji sadrže PEG-DSPE, odnosno PHEA-DODASuc, u odnosu na vrijeme (primjer 23).
Slika 4 je grafički opis koncentracije prednizolon-fosfata koji je enkapsuliran u liposomima koji sadrže PEG-DSPE i PHEA-DODASuc u krvi u odnosu na vrijeme (primjer 24).
Slika 5 je grafički opis rezultata upale šape u odnosu na vrijeme, prije i nakon primjene intravenozne injekcije liposoma (ovijenih s PEG-DSPE, odnosno PHEA-DODASuc) koji sadrže salin i prednizol-fosfat (primjer 24).
Slika 6 je grafički opis postotka injektirane doze liposoma nađenih u jetri, slezeni i jetri+slezeni, nakom intravenozne primjene liposoma kao lipid-polimer konjugata koji sadrže PEG-DSPE, PHEG-diaminobutan, DODASuc, PHPG-diaminobutan-DODASuc, PHBG-diaminobutan-DODASuc, odnosno PHEA-DODASuc i uobičajenih liposoma (bez dodataka) (primjer 21).
Detaljan opis otkrića
Amfifilne lipid-polimer konjugate u pripravcima prisutnog otkrića moguće je dobiti iz amfifilnog lipida i njegovog polimernog ili monomernog prekursora.
Da bi amfifilni lipidi bili upotrebljeni u lipid-polimer konjugatima prema otkriću, mogu biti odabrani iz skupine različitih prirodnih ili sintetskih lipida, koji se sastoje od najmanje jednog hidrofobnog, nepolarnog dijela i hidrofilne, polarne glave, kao što su lipidi koji formiraju lipidne mjehuriće i membranski lipidi.
Da bi amfifilni lipidi bili upotrijebljeni u lipid-polimer konjugatima, lipid mora na polarnoj glavi sadržavati funkcionalnu skupinu koja je prikladna za kovalentno vezanje s polimernim lancem. Skupina polarne glave je na primjer primarna ili sekundarna aminska skupina, hidroksilna skupina, aldehidna skupina, halidna ili karboksilna skupina. Hidrofobni dio lipida, omogućuje inkorporiranje lipid-polimer konjugata u dvoslojne strukture kao što su liposomi i igra ulogu sidra.
Primjeri amfifilnih lipida su fosfolipidi, glikolipidi, ceramidi, kolesterol i derivati, zasićeni ili djelomično nezasićeni, razgranati ili ravnolančani C8-C50 mono- ili di- alkilamini, arilalkilamini, cikloalkilamini, alkanoli, aldehidi, karbohalidi ili alkanske kiseline i njihovi anhidridi, pri čemu je ukupni broj C-atoma preferirano 25 ili veći.
Točnije, primjeri prikladnih amfifilnih lipida su fosfatidilkolin, fosfatidiletanolamin, fosfatidilinozitol, sfingomijelin, stearilamin, miristilalkohol i palmitinska kiselina.
Preferirani amfifilni lipid u lipid-polimer konjugatima je lipid koji ima dva hidrofobna lanca, uobičajeno alkilna lanca, te polarnu glavu koja sadrži fukcionalnu skupinu, kao što je opisano. Derivati fosfatidiletanolamina, a pogotovo distearilfosfatidiletanolamin preferirani su fosfolipidi jer sadrže reaktivnu amino skupinu.
Nadalje preferirani amfifilni lipidi imaju na hidrofilnoj, polarnoj glavi primarnu ili sekundarnu aminsku skupinu i dva zasićena ili nezasićena C8-C50 razgranata ili ravnolančana hidrofobna, nepolarna dijela. Njihovi primjeri su 1-heptadeciloktadecilamin i spojevi koji sadrže distearilamin, kao što su distearilamin i N-sukcinil-dioktadecilamin (DODASuc).
Polimerni dio lipid-polimer konjugata prisutnog otkrića formiran je pomoću poli-(aminokiseline), poli-(derivata aminokiseline) ili poli-(analoga aminokiseline). Poli-(derivat aminokiseline) je polimer koji se sastoji od aminokiselinskih monomera, na koje je vezan jedan ili više supstituenata. Njihov primjer je poli(2-hidroksietil)-1-glutamin. Poli-(analog aminokiseline) je polimer u kojem je duljina lanca atoma ugljika aminokiselinskih monomera reducirana ili prolongirana. Njihovi primjeri su poli(-homoserin) i poli(pentahomoserin).
Polimer je homo-polimer, koji se sastoji od istovrsnih monomera duž polimernog lanca. Također je moguće da se polimerni dio sastoji od blok kopolimera koji su odabrani iz skupine koja se sastoji od poli-(aminokiseline), poli-(derivata aminokiseline) i poli-(analoga aminokiseline) ili je polimerni dio formiran pomoću serije alternirajućih monomera, kontroliranog niza monomera ili pak slučajnom polimerizacijom prikladnih monomera odabranih iz skupine koja se sastoji od jedne ili više aminokiselina, derivata aminokiseline i analoga aminokiseline. Polimeri mogu biti linearni ili razgranati i uključuju cijepljene polimere, no preferirani su linearni.
Korisne aminokiseline su prirodne α-aminokiseline. No, zanimljive su i β-aminokiseline, kao i neproteinske molekule ili aminokiseline koje se ne pojavljuju u prirodi. Može se upotrijebiti i L- i D-konfiguracija aminokiselina i derivata. Kada je aminokiselinski slijed polimera u lipid-polimer konjugatu formiran ostatkom L-aminokiseline, nastali polimer biti će podložan enzimskoj razgradnji. S druge strane, kada je aminokiselinski slijed polimera u lipid-polimer konjugatu ovog otkrića formiran D-aminokiselinom, nastali će polimer vjerovatno biti stabilniji prema djelovanju enzima koji razgrađuju peptide. Smjesa L- i D-aminokiselina također može biti upotrebljena. Uzimajući u obzir različita svojstva polimera, površinska modifikacija čestica koloidnih nosača, u koje su inkorporirani lipid-polimer konjugati otkrića, može biti prilagođena selektivnom upotrebom L- i/ili D-oblika početnih tvari za pripravu konjugata.
Važno svojstvo spojeva poli-(aminokiseline), poli-(derivata aminokiseline) ili poli-(analoga aminokiseline), koji su prikladni za inkorporaciju u lipid-polimer konjugate prisutnog otkrića, je to što su oni topljivi u vodi (najmanje 1 dio u 100 dijelova vode, preferirano 1 dio u 30 dijelova vode, najviše preferirano 1 dio u 10 dijelova vode ili manje). Polimeri također mogu biti okarakterizirani svojim χ-parametrom u vodi. Taj parametar interakcije polimer-otapalo može biti određen npr. membranskom osmometrijom. Polimeri koji mogu biti korisno upotrebljeni u lipid-polimer konjugatima prema otkriću posjeduju vrijednosti χ-parametra ≤0,65, a preferirano ≤0,5 u vodi.
Nadalje, važno je obilježje polimera i to što oni sadrže neznatnu količinu nabijenih skupina unutar (fiziološkog) pH raspona 4-8. Preferirani monomeri neutralnih aminokiselina ili monomeri analoga aminokiselina upotrebljavaju se u pripravi polimera ili monomera derivata aminokiselina, koji su neutralni ili se neutraliziraju. Nabijene skupine mogu biti prisutne u malom postotku bez da narušavaju dugocirkulirajuća svojstva pripravaka koloidnog nosača prema prisutnom otkriću. Kao što je pokazano za kopolimere 2-hidroksietil-1-glutamina i nabijene monomere, pozitivno nabijene skupine mogu biti prisutne u većem postotku od negativno nabijenih skupina.
Prikladni monomeri za pripravu polimera su među ostalim alanin, treonin, valin, sarkosin, α-aminoadipinska kiselina, derivati α,γ-diaminobutirinske kiseline, ornitin, glutamin i derivati, uključujući glutaminsku kiselinu, asparagin i derivati, uključujući asparaginsku kiselinu, derivati lizina, metionin i derivati, serin, njegovi derivati i analozi s dodatnim CH2 skupinama kao što su homoserin i pentahomoserin. Prikladne bočne skupine uključuju (C1-C4)-alkil, hidroksialkil, dihidroksialkil, kiselinske amide i arilne skupine ili njihove kombinacije, koje osiguravaju da polimer ostaje topljiv u vodi. Primjeri tih skupina su 2-hidroksietil, 3-hidroksipropil, 4-hidroksibutil i 2,3-dihidroksipropil. Polimeri koji mogu biti upotrebljeni su npr. poli(D,L-serin) (PDLS), poli(2-hidroksietil)-D,L-glutamin (PDLHEG), poli(2-hidroksibutil)-1-glutamin (PHBG) i kopolimer poli(HEG-co-glutaminska kiselina) 1% glutaminske kiseline (PHEG1%GA). Preferirani polimeri su poli(D,L-glutamin) (PDLG), poli(D,L-asparagin) (PDLA), poli(hidroksipropil)-1-glutamin (PHPG), poli(2-hidroksipropil)-1-glutamin (P2HPG) i kopolimeri beta-alanina i 2-hidroksi-1-glutamina (PbAHEG), poli(HEG-co-dimetilaminoetil-glutamin) koji sadrži 5 i 1% dimetilaminoetilnih bočnih skupina (PHEG5%DG) i (PHEG1%DG). Više preferirani polimeri su homopolimeri poli-[N-(2-hidroksietil)-1-glutamin] (PHEG), poli(2-hidroksietil)-1-asparagin (PHEA) i poli(D,L-metioninsulfoksid) (PDLMS).
Polimerni lanac sadrži između 5 i 500 monomerskih podjedinica, preferirano između 20 i 100. Prosječna molekulska masa polimera varira od 500 do 75 000, preferirano od 2 000 do 15 000. Prosječna molekulska masa može biti određena na različite načine koji su poznati u struci. U primjerima prisutne prijave procjena molekulske mase bazirana je na NMR-podacima.
Za pripravu lipid-polimer konjugata inkorporiranih u pripravke prisutnog otkrića preferirano su upotrebljene manufakturne metode, pri čemu su reaktivne skupine u bočnom lancu aminokiselinskog monomera zaštićene prije polimerizacije i spajanja lipida.
Lipid-polimer konjugati mogu se pripraviti prema metodama poznatim u struci.
Dobro poznata metoda priprave aminokiselinskih polimera obuhvaća polimerizaciju uz otvaranje prstena odgovarajućih aminokiselinskih N-karboksi-anhidrida (NCA), koja je izborno osigurana s jednom ili više zaštitnih skupina i koja je inicirana nukleofilima kao što su (C1-C4)-alkilni, primarni amini. Druga metoda za dobivanje lipid-polimer konjugata obuhvaća upotrebu amina s zaštićenom funkcionalnom skupinom, na primjer N-Boc-1,4-diaminobutana, kao inicijatora polimerizacije uz otvaranje prstena NCA. Iako taj postupak zahtjeva dva dodatna koraka-deprotekciju funkcionalne skupine i naknadno spajanje s lipidom koji sadrži reaktivne skupine, lipid-polimer konjugati pripravljeni tom metodom su također prikladni za inkorporiranje u pripravke koloidnog nosača ovog otkrića. Ako je amfifilni lipid C8-C50 razgranati ili ravnolančani mono- ili di-alkilni, -hidroalkilni ili -alkilenski amid, alkanol ili ceramid, može biti korisno upotrebljen kao inicijator u postupku polimerizacije uz otvaranje prstena. To znači da je tijekom polimerizacije amfifilni lipid spojen s polimerom u jednom koraku. Molekulska masa poliaminokiseline jako ovisi o otapalu ili kombinaciji otapala, o čistoći korištenih kemikalija i o omjeru monomer/inicijator polimerizacije. Općenito, što je veći omjer monomer/inicijator polimerizacije, to će biti veća molekulska masa polimera.
Za pripravu polimera prethodno definiranog pripravka, preferirano se upotrebljava metoda sinteze krute faze peptida.
Zaštitne skupine prisutne u ponavljajućim jedinicama polimera mogu se ukloniti aminolizom uz upotrebu amino-alkohola kao što su 2-aminoetanol, 3-aminopropanol ili 2,3-dihidroksipropilamin.
Lipid-polimer konjugati prisutnog otkrića mogu biti prikladno inkorporirani u pripravke koloidnog nosača otkrića, kao što su sustavi mjehurića s lipidnim dvoslojem-liposomi, niosomi i obrnuti lipidni mjehurići, sustavi micela, nanokapsule, nanosfere itd. Preferirani sustavi koloidnog nosača su sustavi mjehurića s lipidnim dvoslojem.
U pripravi liposoma, lipid-polimer konjugat u skladu s otkrićem pomiješan je s komponentama koje se uobičajeno koriste u preparaciji liposoma, kao što su lipidi koji tvore lipidni mjehurić, stabilizatori itd. Konjugat je uključen pri molarnoj koncentraciji koja je dovoljna da produži cirkulacijsko vrijeme liposoma u krvi nekolika puta u odnosu na odgovarajuće liposome koji nemaju lipid-polimer konjugat. Polimerni konjugat je uobičajeno uključen pri 1-15 molarnom postotku, preferirano pri 3-10 molarnom postotku i najviše preferirano pri 5-7,5 molarnom postotku.
Prosječna veličina liposoma za određivanje tehnikama dinamičnog raspršenja svjetlosti (DLS) je ispod 200 nm, preferirano ispod 150 nm i najviše preferirano ispod 100 nm. Niža granica za tu vrstu čestica koloidnog nosača je 20 nm.
Polimer-lipid konjugati, inkorporirani u nabijene liposome, smanjuju zeta-potencijal što pokazuje da cijepljenje polimera zasijenjuje površinski naboj.
Pripravci mogu biti primjenjeni na nekoliko načina, no preferirana je parenteralna primjena. Ovisno o aktivnom sastojku i medicinskoj indikaciji ili poremećaju koji se treba liječiti, primjena može uključivati intravenozne, potkožne, intramuskularne, intraperitonealne, intra-artikularne itd. injekcije.
Nakon intravenozne primjene liposomskog preparata štakorima prema prisutnom otkriću, cirkulacijsko vrijeme liposoma u krvi može ovisiti o željenom cilju. Cirkulacijsko vrijeme u krvi ovisi o upotrebljenom lipid-polimer konjugatu, posebno o izboru kombinacije lipid/polimer, o molekulskoj masi polimera i o gustoći cijepljenja. Rezultati slični onima dobivenim s odgovarajućim PEG-cijepljenim liposomima opaženi su npr. za lipid-PEG konjugate, lipid-PHEA konjugate i lipid-PDLMS konjugate, pri čemu amfifilni lipid sadrži dvostruki hidrofobni rep (PHEG-diaminobutan-DODASuc, PHEA-DOSASuc i PDLMS-DODASuc).
Stabilnost liposomskih preparata, pripravljenih s lipid-polimer konjugatima prema prisutnom otkriću, općenito je poboljšana u usporedbi s uobičajenim liposomskim preparatima. Osim toga, stabilnost liposomskih preparata može se poboljšati i odgovarajućim odabirom lipid-polimer konjugata. Smatra se da taj odabir ovisi o izboru aktivnog agensa. Npr. enkapsulacija kortikosteroidnih derivata topljivih u vodi umjesto kortikosteroida per se u liposomske preparate rezultirat će povećanom stabilnošću liposomskih preparata. Enkapsulacija prednizol-fosfata u liposom koji sadrži polihidroksietilasparagin-DODASuc konjugat daje malo bolji rezultat nego inkorporacija u liposom koji sadrži poli(2-hidroksietil)-1-glutamin-diaminobutan-DODASuc konjugat. Dalje poboljšanje stabilnosti može se postići uklanjanjem vodenog prenosnika iz liposomskog pripravka metodama poznatim u struci, kao što su sušenje smrzavanjem, sušenje raspršivanjem, rotacijska evaporacija itd.
Lipid-polimer konjugati, inkorporirani u pripravke koloidnog nosača prema prisutnom otkriću, osiguravaju dugocirkulirajuća svojstva tih pripravaka. Pod dugocirkulirajućim svojstvima smatra se povećanje cirkulacijskog vremena pripravka koloidnog nosača u krvi, u odnosu na pripravke koji ne sadrže lipid-polimer konjugate. Dugocirkulirajuća svojstva mogu se odrediti pomoću metoda koje su poznate u struci (Torchilin VP, Shtilman MI, Trubetskoy VS, Whiteman K, Milstein AM: Amfifilni vinil-polimeri djelotvorno produžuju cirkulacijsko vrijeme liposoma in vivo. Biochimica et Biophysica Acta (1994) 1195: 181-184; Torchilin VP, Trubetskoy VS, Whiteman KR, Caliceti P, Ferruti P, Verones FM:
Novi sintetički amfifilni lipidi za steričku protekciju liposoma in vivo. Journal of pharmaceutical sciences (1995) 84 (9): 1049-1053). Metoda za liposome dana je u primjerima. Zato takvi pripravci, pogotovo oni koji koji se sastoje od mjehurića, mogu biti upotrebljeni u nizu primjena. Osim kao rezervoar cirkulirajućeg lijeka, mogu biti upotrebljeni za pasivno ciljanje patoloških područja (tumori, infekcija, upala) i za aktivno ciljanje stanica u krvotoku, endotelija (npr. receptora povezanih s angiogenezom), npr. spajanjem do sredstava za obilježavanje kao što su monoklonalna antitijela. Nadalje, primjene mogu biti umjetan sustav dostave kisika, neinvazivna ispitivanja u kojima se upotrebljavaju radioaktivni markeri za prikazivanje srčanih šupljina i glavnih žila, te prevlake kojima se omogućuje prohodnost biomaterijala, kao što su kateteri i umjetni nadomjesci za krvne žile.
Pored toga, lipid-polimer konjugati su biorazgradivi i zato omogućuju niz prednosti, pogotovo s obzirom na činjenicu da ne postoji rizik od nakupljanja u stanicama ljudskog ili životinjskog tijela.
Nadalje, lipid-polimer konjugati pokazuju smanjenu ovisnost doze lipida u usporedbi s PEG-liposomima.
Druga dodatna, ali vrlo važna prednost može biti to što nije opaženo pojačano uklanjanje nakon druge injekcije pripravka u skladu s otkrićem i što je smanjenje cirkulacijskog vremena u krvi umjereno.
Pripravci koloidnog nosača prema prisutnom otkriću omogućuju različite mogućnosti primjene u terapiji, dijagnostici, preventivnoj medicini itd. Zbog multifunkcionalnosti lipid-polimer konjugata, čije komponente mogu biti odabrane s obzirom na svrhu i raznolikošću sustava koloidnog nosača iz kojeg mogu biti izabrani, pojavit će se mogućnost osmišljavanja svakog aktivnog agensa kao prikladnog pripravka koloidnog nosača. Ako se u prvom stupnju nakon intravenozne primjene pripravka prema otkriću, ne opazi ili se opazi slabi učinak na vrijeme cirkulacije u krvi, stručnjak može promijeniti niz različitih parametara u lipid-polimer konjugatu (npr. molekulsaka masa, izabrana gustoća, polimer, lipid itd.) i u pripravku koloidnog nosača za povećavanje cirkulacijskog vremena u skladu sa standardom. Vrlo zanimljiv učinak u skladu s otkrićem uočava se kada pripravci kao aktivni agens sadrže kortikosteroid topljiv u vodi. U in vivo eksperimentalnom artritisnom modelu, pokazalo se da je jedna jedina intravenozna injekcija takvog pripravka jednako djelotvorna kao i ponavljane injekcije neenkapsulipanog kortikosteroidnog spoja ili kada je isti enkapsuliran u uobičajene liposome. Zanimljivi kortikosteroidi topljivi u vodi su budezonid-fosfat, te derivati flunizolid-propionata i flutikason-propionata, topljivi u vodi. Korisni učinci mogu biti potpuno i dugotrajno smanjenje simptoma koji su povezani s artritisom, dok će nuspojave povezane s terapijom koja je bazirana na kortikosteroidima biti smanjeni, zbog smanjenja količine kortikosteroida koji moraju biti propisani i zato što se sada mogu upotrijebiti kortikosteroidi koji se uobičajeno brzo ukljanjaju iz krvi. Korisni učinci pripravaka u skladu s prisutnim otkrićem biti će brzo prepoznati i kod liječenja drugih bolesti u kojima su kortikosteroidi izborni lijek ili su upotrebljeni kao koterapija. I ostali aktivni agensi također pokazuju zanimljive učinke u pripravcima otkrića.
Iako je prethodno otkriće opisano u nekim detaljima pomoću objašnjenja i primjera u svrhu razumjevanja i jasnoće, stručnjacima će se odmah činiti da u smislu podučavanja ovog otkrića, mogu biti učinjenje određene promjene i modifikacije bez odvajanja od područja dodatnih zahtjeva.
Slijedeći primjeri nadalje objašnjavaju otkriće.
Primjeri
Primjer 1
Poli(γ-benzil-1-glutamat) koji sadrži heptadeciloktadecilaminsku krajnju skupinu (PBLG-
heptadeciloktadecilamin)
0,94 g (3,6 mmola) N-karboksianhidrida (NCA) γ-benzil-1-glutamata otopljeno je u 5 mL suhog DMF, pod atmosferom dušika. Zatim je odjednom dodana otopina 25 mg (0.05 mmola) 1-heptadecil-oktadecilamina (Sigma Aldrich) u 1 mL suhog kloroforma. Gotovo odmah su nastali mjehurići CO2. Otopina je miješana 1 dan pri sobnoj temperaturi i zatim je istaložila u suvišku vode od 10-20 puta. Bijeli talog je sakupljen, te je osušen in vacuo. Dobiveno je 0,75 g produkta.
Karakterizacija:
1H-NMR u CDCl3 (δ u ppm u odnosu na maksimum otapala):
Benzilglutamat: 7,2 (C6H5 ), 5,0 (benzilni CH2), 3,9 (α-CH), 2,8 i 2,2 (β i γ CH2),
Alkilni lanac: 1,2 (CH2 alkilni lanac), 0,85 (CH3)
Primjer 2
Poli[N-(2-hidroksietil)-1-glutamin] koji sadrži heptadeciloktadecilaminsku krajnju skupinu (PHEG-
heptadeciloktadecilamin)
Otopini 0,60 g PBLG-heptadeciloktadecilamina (vidi prije) u 5 mL suhog DMF dodano je 0,15 g 2-hidroksipiridina i 0,80 mL etanolamina. Otopina je miješana 3 dana pri sobnoj temperaturi i pod atmosferom dušika. Otopina je istaložila u suvišku dietiletera od 10-20 puta.
Produkt je sakupljen, te je osušen in vacuo. Polimerni produkt koji je topljiv u vodi dijalizom je odvojen od vode u cjevčicama za dijalizu s celuloznim esterom (MCWO 500) 2 dana. Pročišćeni PHEG koji sadrži heptadecilokta decil aminsku krajnju skupinu dobiven je nakon sušenja smrzavanjem. Dobiveno je 0,30 g produkta.
Karakterizacija:
1H-NMR u CDCl3 (δ u ppm u odnosu na maksimum otapala):
Hidroksietilglutamin: 4,1 (α-CH), 2,2 i 1,8-1,9 (β i γ CH2), 3,4 (CH2-OH), 3,1 (CH2-NH2),
Alkilni lanac: 1,2 (CH2 alkilni lanac), 0,8 (CH3)
Iz omjera integrala stearilnih signala i α-CH signala, PHEG molekulska masa je procijenjena na 12 000.
Primjer 3
Poli-[N-(2-hidroksietil)-1-glutamin] koji sadrži distearilaminsku krajnju skupinu koja je uvedena pomoću N-Boc-1,4-diaminobutana kao inicijatora (PHEG-diaminobutan-DODASuc)
2,5 g (9,5 mmola) N-karboksianhidrida γ-benzil-1-glutamata otopljeno je u smjesi 2,5 mL suhog etilacetata i 12,5 mL suhog diklormetana, te je zatim dodano 0,95 mL (0,95 mmola) 1 molarne otopine N-Boc-1,4-diaminobutana u diklormetanu kao inicijatora. Smjesa je miješana 3 dana pod atmosferom dušika i pri sobnoj temperaturi, te zatim je istaložila u metanolu. Dobiveno je 1,48 g PBLG-N-Boc-diaminobutana.
1H-NMR (CDCl3) spektar pokazao je N-Boc-1,4-diaminobutanske signale pri δ 1,4-1,3.
Maldi TOF ms:
Masa ponavljajuće jedinice benzilglutaminske kiseline: n x 219.
m/z 1417 (n=5), 1636 (n=6), 1855 (n=7), 2074 (n=8), što odgovara masama natrijevog adukta s N-Boc-diaminobutanskom (187 Da) skupinom i krajnjom skupinom cikličkog peptida (112 Da).
m/z 1433 (n=5), 1652 (n=6), 1872 (n=7), što odgovara masama kalijevog adukta s N-Boc-diaminobutanskom (187 Da) skupinom i krajnjom skupinom cikličkog peptida (112 Da).
Deprotekcija PBLG-N-Boc-diaminobutana.
738 mg PBLG-N-Boc-diaminobutana miješano je tijekom 3,5 h u 5 mL otopine 4N HCl u dioksanu. Zatim je reakcijska smjesa uparena rotavapom. Ostatak je otopljen u 5 mL tetrahidrofurana, te je kap po kap dodan u 80 mL otopine NaHCO3 (6,5 g u vodi). Produkt je profiltriran, ispran vodom i osušen in vacuo. Dobiveno je 677 mg PBLG-diaminobutana.
1H-NMR (CDCl3) pokazao je da je zaštitna skupina uspješno uklonjena.
Maldi TOF masena analiza pokazala je željene molmase.
Masa ponavljajuće jedinice benzilglutaminske kiseline: n x 219.
m/z 1318 (n=5), 1537 (n=6), 1756 (n=7), 1976 (n=8), što odgovara masama natrijevog adukta s N-Boc-diaminobutanskom (87 Da) skupinom i krajnjom skupinom cikličkog peptida (112 Da).
Spajanje s DODASuc:
62 mg (0,1 mmola) N-sukcinil-dioktadecilamina (DODASuc, Schmitt i ostali, J. Am. Chem. Soc. 1994, 116, 19, 8485-8491), 13,7 mg (0,12 mmola) N-hidroksisukcinimida i 0,66 mg dimetilaminopiridina (DMAP) otopljeno je u 2 mL diklormetana. Nakon hlađenja do 0 °C dodano je 24,6 mg (0,12 mmola) N,N'-dicikloheksilkarbodiimida (DCC). Otopina je miješana 1 sat pri 0 °C i preko noći pri sobnoj temperaturi. Zatim je profiltrirana netopljiva dicikloheksilurea i filtrat je dodan u otopinu 200 mg PBLG-diaminobutana u 3 mL diklormetana i 14 μL trietilamina. Nakon miješanja preko noći pri sobnoj temperaturi, otopina je kap po kap dodana u metanol, profiltrirana je i osušena. Dobiveno je 135 mg produkta. 1H-NMR (CDCl3) spektar pokazao je prisutnost distearila, CH2 signale pri δ 1,4-1,2 i CH3 signale pri δ 0,9-0,8.
Maldi TOF masena analiza pokazala je željene molmase, što ukazuje da je DODASuc vezan s PBLG-diaminobutanom.
m/z 1922 (n=5), 2141 (n=6), 2360 (n=7), 2580 (n=8), 2799 (n=9), 3018 (n=10), što odgovara masama natrijevog adukta PBLG-diaminobutan-DODASuc s krajnjom skupinom cikličkog peptida (112 Da).
Struktura:
[image]
Aminoliza.
120 mg PBLG-diaminobutan-DODASuc i 10,8 mg 2-HP otopljeno je u 1,3 mL dimetilformamida i zatim je dodano 0,68 mL 2-aminoetanola. Nakon 24 sata miješanja pri 40 °C, pod atmosferom dušika, otopina je kap po kap dodana u kloroform. Produkt je profiltriran i osušen u vakuumu. Dobiveno je 83 mg PHEG-diaminobutan-DODASuc.
1H-NMR (DMSO) pokazao je distearilne signale pri δ 1,2-1,4 (CH2) i δ 0,9-0,8 (CH3).
Iz omjera integrala stearilnih signala i α-CH signala, PHEG molekulska masa je procijenjena na 4 000.
Struktura:
[image]
Primjer 4
Poli-[N-(2-hidroksietil)-1-glutamin] koji sadrži aminsku krajnju skupinu koja je uvedena pomoću distearilamina kao inicijatora (PHEG-distearilamin)
1,0 g (3,8 mmola) N-karboksianhidrida γ-benzil-1-glutamata otopljeno je u smjesi 1 mL suhog etilacetata i 5 mL suhog kloroforma. Zatim je dodano 2 mL (0,19 mmola) otopine 163 g distearilamina u 3,26 mL kloroforma. Na tikvicu je stavljena CaCl2 cjevčica i smjesa je miješana četri dana pod dušikom i pri sobnoj temperaturi. Smjesa je zatim kap po kap dodana metanolu, polimer je izoliran filtracijom i osušen in vacuo. Dobiveno je 757 mg PBLG-distearilamina.
Reakcija:
[image]
1H-NMR (CDCl3) analiza pokazala je distearilne signale u produktu: CH3 signal pri δ 0,9 (t) i CH2 signal pri δ 1,3-1,2.
Maldi TOF ms:
Masa ponavljajuće jedinice benzilglutaminske kiseline: n x 219.
m/z 1971 (n=6), 2190 (n=7), 2410 (n=8), 2629 (n=9), 2848 (n=10), što odgovara masama natrijevog adukta s distearilaminskom (521 Da) skupinom i krajnjom skupinom cikličkog peptida (112 Da).
m/z 2206 (n=7), 2427 (n=8), što odgovara masama kalijevog adukta s distearilaminskom (521 Da) skupinom i krajnjom skupinom cikličkog peptida (112 Da).
Aminoliza
Aminoliza prethodno pripravljenog PBLG-distearilamina (600 mg) s aminoetanolom i 2-hidroksipiridinom kao katalizatorom u dimetilformamidu dala je 430 mg PHEG-distearilamina.
1H-NMR (d6-DMSO) je pokazao distearilaminske signale.
Struktura:
[image]
Primjer 5
Poli-[N-(hidroksialkil)-1-glutamin] koji kao krajnju skupinu sadrži diaminobutan-DODASuc
PBLG-diaminobutanBOC:
U otopinu 3 g N-karboksianhidrida γ-benzil-1-glutamata u 8 mL suhog DMF dodana je otopina 0,1 g N-BOC-1,4-diaminobutana u 1 mL kloroforma. Tijekom prvog sata uočeno je razvijanje plina (ugljični dioksid). Otopina je miješana 1 dan pod atmosferom dušika i pri sobnoj temperaturi. Nakon taloženja u otprilike 100 mL metanola, polimer je profiltriran i osušen, pri čemu je dobiveno 2 g PBLG koji sadrži BOC-zaštićenu amino-skupinu.
1H-NMR (CDCl3)(δ u odnosu na maksimum otapala):
BOC: 1,4 (CH3)
PBLG: 2,2 i 2,6 (β,γ-CH2), 4,0 (α-CH), 5,0 (benzilna CH2), 7,3 (fenil)
PBLG-diaminobutan (uklanjanje zaštitne BOC-skupine):
Otopina 1,1 g PBLG-diaminobutanBOC u 5 mL 4N smjese HCl/dioksan miješana je 3-4 sata i zatim je dodana kap po kap u oko 80 mL otopine NaHCO3 (6,5 g u vodi). Produkt je profiltriran, ispran vodom i osušen in vacuo. Dobiveno je 1 g PBLG-diaminobutana.
1H-NMR (CDCl3) (δ u odnosu na maksimum otapala):
PBLG: 2,2 i 2,6 (β,γ-CH2), 4,0 (α-CH), 5,0 (benzilna CH2), 7,3 (fenil)
Odsutnost BOC signala
PBLG-diaminobutan-DODASuc (DCC spajanje):
170 mg N-sukcinil-dioktadecilamina (DODASuc), 90 mg DCC i 10 mg 4-(dimetilamino)- piridinij 4-toluen sulfonata (DPTS) otopljeno je u 4 mL diklormetana. Otopina je miješana 1 sat pri sobnoj temperaturi. Zatim je dodana otopina 0,73 g PBLG-diaminobutana i 40 μL trietilamina u 3 mL kloroforma. Nakon miješanja preko noći pri sobnoj temperaturi, otopina (koja sadrži talog dicikloheksiluree) dodana je kap po kap u suvišak metanola (otprilike 100 mL). Polimerni produkt je profiltriran i osušen. Dobiveno je 0,5 g produkta.
1H-NMR (CDCl3)(δ u odnosu na maksimum otapala):
distearilni signali pri 0,8-0,9 (CH3) i 1,2-1,4 (metilenski protoni)
PBLG: 2,2 i 2,6 (β,γ-CH2), 4,0 (α-CH), 5,0 (benzilna CH2), 7,3 (fenil)
5.1 PHEG-diaminobutan-DODASuc
PHEG-diaminobutan-DODASuc dobiven je aminolizom PBLG-diaminobutan-DODASuc s etanolaminom na slijedeći način:
0,5 g PHEG-diaminobutan-DODASuc i 15 mg 2-hidroksipiridina otopljeno je u 4 mL DMF. Zatim je dodano 2 mL etanolamina. Nakon 24 sata miješanja pri 40 °C i pod atmosferom dušika, otopina je istaložila u otprilike 100 mL dietiletera. PHEG-diaminobutan-DODASuc je otopljen u vodi, dijaliziran (MWCO 500), te je uz sušenje smrzavanjem dobiveno 0,35 g pročišćenog PHEG-diaminobutan-DODASuc konjugata.
1H-NMR (d6-DMSO) (δ u odnosu na maksimum otapala):
distearilni signali pri 0,8-0,85 (CH3) i 1,2-1,5 (metilenski protoni)
PHEG: 1,7 i 2,2 (β,γ-CH2), 3,1 i 3,3 (hidroksietil), 4,2 (α-CH), 4,7 (OH), 7,8 i 8,2 (NH)
Iz omjera integrala stearilnih signala i α-CH signala, PHEG molekulska masa je procijenjena na oko 4 000.
Maldi-TOF potvrđuje molekulsku strukturu PHEG-diaminobutana-DODASuc konjugata.
Na+-adukt: m/z 3064,5 (n=13), 3236,1 (n=14), 3408,7 (n=15), 3580,6 (n=16), 3752,9 (n=17), 3924,7 (n=18), 4096,7 (n=19), 4268,4 (n=20), 4441,1 (n=21), 4613,3 (n=22), 4785,1 (n=23), itd.
5.2 Poli-[(2-hidroksipropil)-1-glutamin]-diaminobutan-DODASuc
Poli-[(2-hidroksipropil)-1-glutamin]-diaminobutan-DODASuc dobiven je aminolizom PBLG-diaminobutan-DODASuc s 2-propanolaminom (izopropanolaminom) na slijedeći način:
0,15 g PBLG-diaminobutan-DODASuc i 0,05 g 2-hidroksipiridina otopljeno je u 4 mL DMF. Zatim je dodan 1 mL 2-propanolamina. Nakon 24 sata miješanja pri 40 °C i pod atmosferom dušika, otopina je istaložila u otprilike 100 mL dietiletera. Nakon sušenja dobiveno je 0,1 g PHisoPG-diaminobutan-DODASuc. Polimer je otopljen u vodi, dijaliziran (MWCO 500), te je uz sušenje smrzavanjem dobiven pročišćeni poli-[(2-hidroksipropil)-1-glutamin]-diaminobutan-DODASuc.
1H-NMR (d6-DMSO) (δ u odnosu na maksimum otapala):
distearilni signali pri 0,8-0,85 (CH3) i 1,2-1,5 (metilenski protoni)
PHPG: 1,7-2,2 (β,γ-CH2), 1,0 (CH3) i 3,0 i 3,3 i 3,7 (hidroksipropil), 4,2 (α-CH), 4,7 (OH), 7,8 i 8,2 (NH)
Izračunata molekulska masa: oko 4 000.
5.3 Poli-[(3-hidroksipropil)-1-glutamin]-diaminobutan-DODASuc
Poli-[(3-hidroksipropil)-1-glutamin]-diaminobutan-DODASuc dobiven je aminolizom PBLG-diaminobutan-DODASuc s 3-propanolaminom:
0,3 g PBLG-diaminobutan-DODASuc i 0,1 g 2-hidroksipiridina otopljeno je u 4 mL DMF. Zatim su dodana 2 mL 3-propanolamina. Nakon 24 sata miješanja pri 40 °C i pod atmosferom dušika, otopina je istaložila u otprilike 100 mL dietiletera. Nakon sušenja dobiveno je 0,25 g PHPG5000-diaminobutan-DODASuc. Polimer je otopljen u vodi, dijaliziran (MWCO 500), te je uz sušenje smrzavanjem dobiven pročišćeni poli-[(3-hidroksipropil)-1-glutamin]-diaminobutan-DODASuc.
1H-NMR (d6-DMSO) (δ u odnosu na maksimum otapala):
distearilni signali pri 0,8-0,85 (CH3) i 1,2-1,5 (metilenski protoni)
PHPG: 1,7-2,2 (β,γ-CH2), 1,5 i 3,1 i 3,3 (hidroksipropil), 4,2 (α-CH), 4,6 (OH), 7,8 i 8,2 (NH).
Molekulska masa: oko 5 000
Maldi-TOF:
Na+-adukt: m/z 3623 (n=15), 3810 (n=16), 3996 (n=17), 4182 (n=18), 4368 (n=19), 4555 (n=20), itd.
5.4 Poli-[(4-hidroksibutil)-1-glutamin]-diaminobutan-DODASuc
Poli-[(4-hidroksibutil)-1-glutamin]-diaminobutan-DODASuc dobiven je aminolizom PBLG-diaminobutan-DODASuc s 4-butanolaminom:
0,3 g PBLG-diaminobutan-DODASuc i 0,1 g 2-hidroksipiridina otopljeno je u 4 mL DMF. Zatim su dodana 2 mL 4-butanolamina. Nakon 48 sati miješanja pri 40 °C i pod atmosferom dušika, otopina je istaložila u otprilike 100 mL dietiletera. Polimer je otopljen u vodi, dijaliziran (MWCO 500), te je uz sušenje smrzavanjem dobiveno 0,2 g pročišćenog poli-[(4-hidroksibutil)-1-glutamin]-diaminobutan-DODASuc.
1H-NMR (d6-DMSO) (δ u odnosu na maksimum otapala):
distearilni signali pri 0,8-0,85 (CH3) i 1,2-1,5 (metilenski protoni)
PHBG: 1,7-2,2 (β,γ-CH2), 1,4 i 3,1 i 3,3 (hidroksibutil), 4,2 (α-CH), 4,5 (OH), 7,8 i 8,2 (NH).
Molekulska masa: oko 4 000
5.5 Poli-[(2,3-dihidroksipropil)-1-glutamin]-diaminobutan-DODASuc
Poli-[(2,3-dihidroksipropil)-1-glutamin]-diaminobutan-DODASuc dobiven je aminolizom PBLG-diaminobutan-DODASuc s 2,3-dihidroksipropilaminom:
0,15 g PBLG-diaminobutan-DODASuc i 0,06 g 2-hidroksipiridina otopljeno je u 3 mL DMF. Zatim je dodan 1 mL 2,3-dihidroksipropilamina. Nakon 1 dan miješanja pri 40 °C i pod atmosferom dušika, otopina je istaložila u otprilike 100 mL dietiletera. Polimer je otopljen u vodi, dijaliziran (MWCO 500), te je uz sušenje smrzavanjem dobiveno 0,1 g pročišćenog poli-[(2,3-dihidroksipropil)-1-glutamin]-diaminobutan-DODASuc.
1H-NMR (d6-DMSO) (δ u odnosu na maksimum otapala):
distearilni signali pri 0,8-0,85 (CH3) i 1,2-1,5 (metilenski protoni)
Poli(dihidroksipropil)G: 1,7-2,2 (β,γ-CH2), 3,1 i 3,3-3,6 (dihidroksipropil), 4,2 (α-CH), 4,6 i 4,8 (OH), 7,8 i 8,2 (NH).
Molekulska masa: oko 4 000.
Primjer 6
Kolesteril-PHEG
U otopinu 0,2 g PBLG-NH2 i 20 μL trietilamina u 2 mL kloroforma dodana je otopina 0,07 g kolesteril-kloroformata u 1 mL kloroforma. Otopina je miješana oko jedan sat pri sobnoj temperaturi, te je istaložila u dietileteru. Nakon sakupljanja i sušenja dobiveno je 0,13 g polimernog produkta.
Aminolizom s etanolaminom (2-hidroksipiridin u ulozi katalizatora) 1 dan pri 40 °C dobiven je kolesteril-PHEG. Polimerni produkt pročišćen je dijalizom (MWCO 500).
1H-NMR (d6-DMSO) (δ u odnosu na maksimum otapala):
PHEG: 1,7 i 2,2 (β,γ-CH2), 3,1 i 3,3 (hidroksietil), 4,2 (α-CH), 4,7 (OH), 7,8 i 8,2 (NH)
kolesteril: 0,6-1,6.
Molekulska masa: oko 4 000.
Maldi TOF potvrđuje molekulsku strukturu kolesteril-PHEG konjugata.
Na+-adukt: m/z 3046 (n=14), 3218 (n=15), 3390 (n=16), 3562 (n=17), 3735 (n=18), 3907 (n=19), 4080 (n=20), itd.
Primjer 7
Poli(2-hidroksietil)-DL-glutamin-diaminobutan-DODASuc
Sinteza je analogna onoj za poli(2-hidroksietil)-1-glutamin-diaminobutan-DODASuc (primjer 8) uz nekoliko razlika:
γ-benzil-DL-glutaminski NCA sintetiziran je iz smjese 1:1 γ-benzil-1- i γ-benzil-D-glutamata i kristalizirao je iz smjese etilacetat/heksan (otprilike 1:5) (vidi primjer 1).
Poli(benzil-DL-glutamin)-diaminobutan-BOC istaložio je u vodi, a ne u metanolu.
Poli(benzil-DL-glutamin)-diaminobutan-DODASuc istaložio je u metanolu.
NMR spektar je identičan spektru poli(2-hidroksietil)-1-glutamin-diaminobutan-DODASuc (primjer 8.1).
Molekulska masa: oko 3 000.
Primjer 8
PHEG kopolimeri: poli(HEG-ko-glutaminska kiselina)-diaminobutan-DODASuc; 5% glutaminske kiseline
Otopina 0,14 g PBLG-diaminobutan-DODASuc, 0,05 g 2-hidroksipiridina i otprilike 1 mL etanolamina u 1,5 mL DMF miješana je pod atmosferom dušika i pri sobnoj temperaturi jedan dan. Zatim je otopina istaložila u dietileteru. Produkt, djelomično etanolaminom aminolizirani PBLG-diaminobutan-DODASuc (PHEG s 5% bočnih skupina benzilnog estera), sakupljen je i osušen. NMR snimljen u DMSO pokazao je prisutnost 5% benzilnih skupina koje nisu izreagirale.
Navedeni polimer je otopljen u 8,5 mL 1M NaOH i miješan je 4 sata. Otopina je neutralizirana s 1N HCl i zatim je dijalizirana (MWCO 500) nekoliko dana. Negativno nabijeni (pri fiziološkom pH) kopolimer-lipid konjugat (0,1 g) dobiven je nakon sušenja smrzavanjem dijalizirane otopine.
NMR u DMSO pokazao je potpunu konverziju benzil-skupina.
MaldiTOF je upotrebljen za potvrđivanje prisutnosti ponavljajućih jedinica glutaminske kiseline i hidroksietilglutamina.
Molekulska masa: oko 3 500.
Primjer 9
PHEG kopolimer: poli(HEG-ko-dimetilaminoetilglutamin)-diaminobutan-DODASuc; 5% dimetilaminoetilnih bočnih skupina
Otopina 0,25 g PBLG-diaminobutan-DODASuc, 0,08 g 2-hidroksipiridina i 1 mL etanolamina u 2,5 mL DMF miješana je pod atmosferom dušika i pri sobnoj temperaturi jedan dan. Nastala otopina je istaložila u dietileteru. Produkt, djelomično etanolaminom aminolizirani PBLG-diaminobutan-DODASuc (PHEG s 5% bočnih skupina benzilnog estera), je sakupljen i osušen. NMR snimljen u DMSO pokazao je prisutnost 5% benzilnih skupina koje nisu izreagirale.
Otopina 0,16 g PBLG-diaminobutan-DODASuc, djelomično aminoliziranog etanolaminom, 0,06 g 2-hidroksipiridina i 1 mL N,N'-dimetiletilendiamina u 2,5 mL DMF miješana je 1 dan pod atmosferom dušika i pri 40 °C. Taloženje u dietileteru dalo je prašak koji je sakupljen i osušen in vacuo. NMR u DMSO pokazao je potpunu konverziju preostalih benzilnih skupina. Produkt je otopljen u vodi i dijaliziran (MWCO 500) nekoliko dana, a zatim je osušen smrzavanjem. Dobiveno je 0,1 g pozitivno nabijenog PHEG-kopolimer-lipid konjugata.
Molekulska masa: oko 4 000.
Primjer 10
Poli(2-hidroksietil)-1-asparagin (PHEA) koji sadrži stearilaminsku, odnosno hepta-deciloktadecilaminsku krajnju skupinu
N-karboksianhidrid (NCA) β-benzil-1-aspartata:
Suspenzija 5 g β-benzil-1-aspartata u 50 mL destiliranog THF uz oko 16 mL 20 % otopine fosgena u toluenu zagrijavana je pri 60-65 °C (protok dušika nad otopinom). Nakon otprilike 10 minuta dobivena je bistra otopina. Nakon otprilike 1,5 h otopina je polagano dodana u oko 140 mL n-heksana. Gotovo odmah su nastali kristali. Nakon daljnje kristalizacije tijekom noći pri -20 °C izoliran je kristalični produkt. Daljnjim kristalizacijama iz smjese THF/heksan i iz vrućeg kloroforma dobiveno je 4,3 g sitnih, igličastih kristala. (Biopolymers 1976, 15(9) 1869-71).
1H-NMR (CDCl3)(δ u odnosu na maksimum otapala):
benzilna skupina: 7,3 (fenil), 5,1 (CH2)
aspartatni NCA: 2,8 i 3,0 (β-CH2), 4,5 (α-CH), 6,4 (NH)
stearil-PBLA:
U otopinu 0,95 g β-benzil-1-aspartatnog NCA u 2 mL DMF dodana je otopina 0,04 g stearilamina u 0,5 mL kloroforma. Nakon nekoliko sati miješanja pri 60 °C, mutna otopina je istaložila u metanolu. Nakon sušenja dobiveno je 0,56 g poli(benzil-1-aspartat)-stearilamina.
heptadecil-oktadecil-PBLA:
U otopinu 0,5 g β-benzil-1-aspartatnog NCA u 2 mL DMF dodano je 0,1 g 1-heptadecil-oktadecilamina u oko 1 mL kloroforma. Nakon 3 dana miješanja pri sobnoj temperaturi, mutna otopina je istaložila u metanolu. Dobiveno je 0,2 g polimernog produkta PBLA-heptadecil-oktadecilamina.
stearil-/heptadecil-oktadecil-PHEA:
Aminolizom prethodnog PBLA konjugata upotrebom etanolamina i 2-hidroksipiridina kao katalizatora pri 40 °C 1 dan, a zatim taloženjem u dietil-eteru, dobije se poli(hidroksietil)-1-asparagin (PHEA) koji je topljiv u vodi i koji sadrži stearilni, odnosno heptadecil-oktadecilni rep. Lipid-polimer konjugati su pročišćeni dijalizom (MWCO 500).
stearil-PHEA:
Maldi TOF: Na+-adukt: m/z 2823 (n=16), 2981 (n=17), 3139 (n=18), 3297 (n=19), 3455 (n=20), 3613 (n=21), itd.
Podaci dobiveni iz Maldi TOF doveli su do zaključka da svaki PHEA lanac sadrži slobodnu krajnju amino-skupinu.
heptadecil-oktadecil-PHEA:
NMR (d6-DMSO) (δ u odnosu na maksimum otapala):
heptadecil-oktadecil: 0,8 i 1,2.
PHEA: 2,2-2,6 (β-CH2), 3,1 i 3,4 (hidroksietil), 4,5 (α-CH + OH), 7,8 i 8,3 (NH)
Molekulska masa: oko 6 000.
Primjer 11
Poli(2-hidroksietil)-1-asparagin-DODASuc
PBLA-DODASuc:
U otopinu 1,7 g N-karboksianhidrida (NCA) β-benzil-1-aspartata u 5 mL DMF dodano je 0,2 mL 2M otopine metilamina u THF. Bistra otopina je miješana jedan dan i zatim je istaložila u smjesi metanola (oko 100 mL) i vode (oko 250 mL). Dobiveno je 1,3 g PBLA koji sadrži metil-amidnu i krajnju amino-skupinu.
Otopina 0,4 g PBLA, 30 mg DCC, 10 mg DPTS i 100 mg N-sukcinil-distearilamina u 5 mL DMSO i 1 mL kloroforma miješana je jedan dan i zatim je istaložila u vodi. Polimerni produkt je miješan/ispran dietil-eterom i osušen.
PHEA-DODASuc:
Aminolizom PBLA-DODASuc s etanolaminom (upotrebom 2-hidroksipiridina kao katalizatora) u otopini DMF pri 40 °C 1 dan, dobiven je PHEA-DODASuc (0,2 g nakon dijalize i sušenja smrzavanjem).
1H-NMR (d6-DMSO) (δ u odnosu na maksimum otapala):
distearil: 0,8 (CH3), 1,2 (CH2), 1,4 (CH2-N)
PHEA: 2,4-2,8 (β- CH2), 3,2 i 3,4 (hidroksietil), 4,6 (α-CH + OH), 7,8-8,5 (NH)
Izračunata molekulska masa: oko 3 000.
Maldi TOF potvrđuje molekulsku strukturu PHEA-DODASuc konjugata:
Na+-adukt: m/z 2084 (n=9), 2243 (n=10), 2401 (n=11), 2559 (n=12), 2718 (n=13), 2876 (n=14), itd.
[image]
Primjer 12
Poli(2-hidroksietil)-1-asparagin-DSPESuc konjugat
PHEA koji završava amino-skupinom dobiven je nakon aminolize PBLA (polibenzil-1-asparatata) dobivenog polimerizacijom benzil-1-aspartatnog NCA uz metilamin kao inicijator. Sukciniliran DSPE (sinteza analogna onoj koja je opisana za DPPE u JACS, 116, 8485 (1994)) prvo je pretvoren u svoj NHS-ester in situ upotrebom DCC (dicikloheksilkarbodiimida):
Otopina 70 mg sukciniliranog DSP, 20 mg NHS (N-hidroksisukcinimida), 5 mg DMAP i 30 mg DCC (dicikloheksilkarbodiimida) u 2 mL diklormetana miješana je otprilike 3-4 sata. Toj smjesi je dodana otopina 0,13 g PHEA koji završava amino-skupinom (molekulske mase oko 4 000) u 2 mL DMSO. Nakon miješanja preko noći smjesa je istaložila u eteru. Talog je sakupljen i otopljen u vodi, te dijaliziran (MWCO 500) nekoliko dana. Nakon sušenja smrzavanjem dobiveno je oko 80 mg PHEA-DSPE.
1H-NMR (d6-DMSO) (δ u odnosu na maksimum otapala):
DSPE: 0,8 (CH3), 1,2 (CH2), 1,4 (CH2-N)
PHEA: 2,4-2,8 (β- CH2), 3,2 i 3,4 (hidroksietil), 4,6 (α-CH + OH), 7,8-8,4 (NH)
Izračunata molekulska masa: oko 4 000
Primjer 13
Poli(DL-serin)-DODASuc
N-karboksianhidrid (NCA) o-benzil-DL-serin:
Suspenzija 2,5 g o-benzil-DL-serina u 30 mL destiliranog (suhog) THF uz oko 10 mL 20 % otopine fosgena u toluenu zagrijavana je pri 60-65 °C (protok dušika nad otopinom). Nakon otprilike 5 minuta dobivena je bistra otopina. Nakon otprilike 1,5 h otopina je polagano dodana u oko 100 mL n-heksana. Produkt je odijeljen u obliku ulja. Otapalo je dekantirano, a ulje je otopljeno u oko 25 mL etilacetata kojem je zatim polagano dodano 100 mL heksana. Nakon snažnog mućkanja tikvice i hlađenja pri -20 °C počeo je kristalizirati produkt. Sličnom prekristalizacijom iz smjese etilacetat/heksan i/ili iz smjese kloroform/heksan dobiveno je 2 g kristalične tvari. (Biopolymers 1976, 15(9) 1869-71).
1H-NMR (CDCl3) (δ u odnosu na maksimum otapala):
benzil-skupina: 4,5 (CH2), 7,2 (fenil)
serinski NCA: 3,7 (β-CH2), 4,4 (α-CH), 5,8 (NH)
Poli(o-benzil-DL-serin):
U otopinu 0,9 g o-benzil-DL-serinskog NCA u 2,5 mL DMF dodano je 0,08 mL otopine 2M metilamina u THF. Nakon nekoliko sati miješanja pri sobnoj temperaturi, otopina je postala mutna i viskozna. Nakon jednog dana viskozna, "kristalizirana" otopina je pomiješana sa smjesom metanol/voda da potpuno ustaloži polimerni produkt. Dobiveno je 0,6 g polimernog produkta poli(o-benzil-DL-serina).
1H-NMR u d6-DMSO (δ u odnosu na maksimum otapala):
benzil-skupina: 4,4 (CH2), 7,2 (fenil)
poliserin: 3,5 (β-CH2), 4,7 (α-CH), 8,2 (NH)
Poli(o-benzil-DL-serin)-DODASuc:
150 mg N-sukcinil-dioktadecilamina (DODASuc), 80 mg DCC i 5 mg DPTS otopljeno je u 4 mL kloroforma. Otopina je miješana 1 sat pri sobnoj temperaturi. Zatim je dodana otopina 0,6 g poli(o-benzil-DL-serina) i oko 50 μL trietilamina u 5 mL kloroforma. Nakon miješanja preko noći pri sobnoj temperaturi, otopina (koja sadrži talog dicikloheksiluree) dodana je kap po kap u suvišak metanola (oko 100 mL). Polimerni produkt je profiltriran i osušen. Dobiveno je 0,4 g produkta.
1H-NMR u d6-DMSO (δ u odnosu na maksimum otapala):
distearil: 0,8 (CH3), 1,2 (CH2), 1,6 (CH2-N)
benzilna skupina: 4,4 (CH2), 7,2 (fenil)
poliserin: 3,5 (β-CH2), 4,7 (α-CH), 8,2 (NH)
Poli(DL-serin)-DODASuc:
0,1 g poli(o-benzil-DL-serin)-DODASuc otopljeno je u oko 4 mL 33 % HBr/AcOH otopine i miješano 1 sat. Otopina je zatim istaložila u vodi. Polimerni talog je profiltriran, ispran vodom, te zatim otopljen (1-2 sata) u 4 mL NaOH. Nastala otopina je neutralizirana s otopinom 1N HCl, te je zatim dijalizirana (MWCO 500) nekoliko dana. Dijalizirana otopina je osušena smrzavanjem. Dobiveno je 20 mg poli(DL-serin)-DODASuc.
1H-NMR u d6-DMSO (δ u odnosu na maksimum otapala):
distearil: 0,8 (CH3), 1,2 (CH2), 1,6 (CH2-N)
poliserin: 3,6 (β-CH2), 4,3 (OH), 5,0 (α-CH), 8,0 (NH)
Iz omjera integrala distearilnih signala i α-CH signala, molekulska masa poliserina je procijenjena na oko 1 500.
[image]
Primjer 14
Poli-1-treonin-DODASuc
Sinteza je analogna sintezi poli(D,L-serin)-DODASuc i učinjena je preko N-karboksi- anhidrida (NCA) o-benzil-1-treonina, počevši od o-benzil-1-treonina, HCl i fosgena.
Poli-1-treonin-DODASuc (M=oko 2 000):
1H-NMR u d6-DMSO (δ u odnosu na maksimum otapala):
distearil: 0,8 (CH3), 1,2 (CH2), 1,6 (CH2-N)
politreonin: 1,0 (CH3), 4,0 (β-CH), 4,3 (α-CH), 5,0 (OH), 7,8 (NH)
Primjer 15
Poli(D,L-metioin-sulfoksid)-DODASuc
N-karboksianhidrid (NCA) DL-metionina:
Suspenzija 2,5 g DL-metionina u 40 mL destiliranog (suhog) THF s oko 15 mL 20 % otopine fosgena u toluenu zagrijavana je pri 60-65 °C. (Protok dušika nad otopinom). Gotovo odmah je nastala bistra otopina. Nakon otprilike jednog sata, otopina je polagano dodana u oko 140 mL n-heksana. DL-metioninski NCA je kristalizirao pri -20 °C (nekoliko dana). Prekristalizacijom iz smjese etilacetat/heksan dobiveno je oko 0,7 g kristalične tvari. (Biopolymers 1796, 15(9) 1869-71).
1H-NMR (CDCl3) (δ u odnosu na maksimum otapala):
metioninski NCA: 2,0-2,4 (β-CH2 + CH3), 4,5 (α-CH), 6,8 (NH)
Poli(DL-metionin):
U otopinu 0,7 g DL-metioninskog NCA u 2,5 mL DMF dodano je 0,1 mL otopine 2M metilamina u THF. Nakon jednog dana, mutna otopina je istaložila u oko 100 mL metanola i zatim je talog osušen. Dobiveno je 0,33 g polimernog produkta poli(DL-metionina).
1H-NMR u CDCl3/TF-d (δ u odnosu na maksimum otapala):
polimetionin: 2,0-2,3 (CH2 i CH3), 4,7 (α-CH).
Poli(DL-metionin)-DODASuc:
80 mg N-sukcinil-dioktadecilamina (DODASuc), 45 mg DCC i 5 mg DPTS otopljeno je u oko 2 mL kloroforma. Otopina je miješana 1 sat pri sobnoj temperaturi. Zatim je dodana otopina 0,33 g poli(DL-metionina) i oko 20 mL trietilamina u oko 2,5 mL DMSO. Nakon miješanja preko noći pri sobnoj temperaturi, otopina (koja sadrži talog dicikloheksiluree) je dodana, kap po kap, u suvišak metanola (oko 100 mL). Polimerni produkt je profiltriran i osušen. Dobiveno je 0,22 g produkta.
1H-NMR u d6-DMSO (δ u odnosu na maksimum otapala):
distearil: 0,8 (CH3), 1,2 (CH2), 1,4 (CH2-N)
polimetionin: 1,8 (β-CH2), 2,0 (CH3), 2,4 (γ-CH2), 4,4 (α-CH), 8,1 (NH)
Poli(DL-metionin-sulfoksid)-DODASuc:
mono-oksidacija poli(DL-metionin)-DODASuc:
Otopina 0,3 g natrijevog periodata u 2 mL vode polagano je dodana suspenziji 0,22 g poli(DL-metionin)-diaminobutan-DODASuc u oko 6 mL acetatne kiseline. Dobivena narančasto/crvena otopina (nastala nakon nekoliko sati) miješana je jednu noć. Zatim je dodano oko 15 mL vode i dobivena narančasto/crvena otopina je dijalizirana (MWCO 500) nekoliko dana. Nakon sušenja smrzavanjem dobiveno je 0,25 mg produkta.
1H-NMR u D2O (δ u odnosu na maksimum otapala):
distearil: 0,7 (CH3), 1,2 (CH2) (široki maksimum)
polimetionin-sulfoksid: 2,0 (β-CH2), 2,5 (CH3), 2,8 (γ-CH2), 4,3 (α-CH), 8,5 (NH)
Izračunata molekulska masa: oko 4 000.
[image]
Primjer 16
Poli(DL-glutamin)-DODASuc
Poli(DL-glutamin)-DODASuc konjugat sintetiziran je po Ansynth Service B.V. upotrebom metode sinteze krute faze peptida (oko 50 mg). Poli(DL-glutamin) (n=20) vezan je na smolu koja je načinjena korak po korak upotrebom Fmoc-zaštićenih aminokiselina. N-terminus je spojen s N-sukcinil-distearilaminom. C-terminus je pretvoren u amid. 1H-NMR spektar potvrdio je strukturu.
1H-NMR u d6-DMSO (δ u odnosu na maksimum otapala):
distearil: 0,8 (CH3), 1,2 (CH2), 1,4 (CH2-N)
poliglutamin: 1,7-2,2 (β, γ -CH2), 4,2 (CH), 6,8 i 7,3 (NH2), 8,2 (NH)
[image]
Primjer 17
Poli(DL-asparagin)-DODASuc
Poli(DL-asparagin)-DODASuc konjugat sintetiziran je po Ansynth Service B.V. upotrebom metode sinteze krute faze peptida (oko 50 mg). Poli(DL-asparagin) (n=20) vezan je na smolu koja je načinjena korak po korak upotrebom Fmoc-zaštićenih aminokiselina. N-terminus je spojen s N-sukcinil-distearilaminom. C-terminus je pretvoren u amid. 1H-NMR spektar snimljen u DMSO potvrdio je strukturu.
1H-NMR u d6-DMSO (δ u odnosu na maksimum otapala):
distearil: 0,8 (CH3), 1,2 (CH2), 1,4 (CH2-N)
poliasparagin: 2,5 (CH2), 4,5 (CH), 7,0 i 7,4 (NH2), 8,1 (NH)
[image]
Primjer 18
Poli-(D,L-alanin)-DODASuc
95 mg poli-DL-alanina (Sigma, Mr: oko 2 000) otopljeno je u 4 mL DMSO. Otopini je dodano 4 μL trietilamina. Zatim je otopina dodana otopini 0,1 g DODASuc, 70 mg DCC i 5 mg DPTS u 2 mL kloroforma koja je miješana 1 sat. Nakon jednog dana miješanja smjesa je istaložila u smjesi metanol/dietileter. Talog je profiltriran i osušen.
1H-NMR spektar snimljen u DMSO:
distearil: 0,8 (CH3), 1,2 (CH2), 1,4 (CH2-N)
polialanin: 1,2 (CH3), 4,2 (CH), 8,0 (NH).
Primjer 19
Kopolipeptid β-alanina i hidroksietil-1-glutamina
DODASuc-(β-Ala)3-Glu(OBzl)-(β-Ala)4-Glu(OBzl)-(β-Ala)3-Glu(OBzl)-(β-Ala)2-NH2:
Kopolipeprid β-alanina i hidroksietil-1-glutamina sintetiziran je metodom krute faze po Ansynth Service B.V., počevši od Fmoc-zaštićenih monomera.
C-terminus: amid; N-terminus: DODASuc
Kasnije su benzil-glutamatne jedinice prevedene u hidroksietil-glutaminske (HEG) aminolizom (etanolamin) provedenom u DMF.
1H-NMR snimljen u DMSO pokazao je odsutnost/konverziju benzilnih skupina.
Primjer 20
Priprava liposoma koji sadrže PHEG-stearilamin
Odvagano je 33,8 mg fosfatidilkolina iz jajeta (EPC) (Lipoid Ludwigshafen), 9,67 mg kolesterola (Sigma Aldrich) i 30,0 mg poli-[N-(2-hidroksietil)-1-glutamin]-stearilamina (PHEG-stearilamin) (sintetiziranog) i prebačeno u okruglu tikvicu od 50 mL. Dodano je 500 kBq kolesteriloliletera obilježenog tricijem kao lipidnog markera. Lipidi i oznaka su otopljeni u otprilike 10 mL etanola. Nakon uparivanja do suhog u rotavaporu tijekom 1 sata pod vakumom pri 40 °C, slijedilo je ispiranje dušikom tijekom 1 sata.
Suhom lipidnom filmu dodan je PBS, uz mućkanje tijekom 1 sata u prisutnosti staklenih kuglica da se tako omogući potpuna hidracija lipidnog filma.
Liposomska suspenzija je prebačena u uređaj za razdvajanje (Avestin, maksimalan volumen 15 mL) i razdvajana je pod tlakom, upotrebom dušika, 6 puta preko 2 polikarbonatna filtera koji su smješteni jedan iznad drugog i koji imaju veličinu pora od 200 nm, odnosno 100 nm, te 18 puta preko filtera koji imaju pore veličine 100 nm, odnosno 50 nm. Zatim je liposomska suspenzija dijalizirana dva puta u odijeljenom prostoru za dijalizu (Slide-A-Lyzer, 10 000 MWCO) tijekom 24 sata od 1 litre steriliziranog PBS.
Prosječna veličina čestica određena je pomoću raspršenja svijetlosti (Malvern Zeta-sizer) i iznosila je 93,6 ± 0,9 nm, indeks polidisperznosti iznosio je 0,099 ± 0,02. Lipidni gubitak tijekom priprave liposoma iznosio je 25%, te je određen uspoređivanjem konačne radioaktivnosti preparata s aktivnošću prije postupka razdvajanja. Suspenzija liposoma pohranjena je u atmosferi dušika pri 4 °C.
Primjer 21
Priprava liposoma koji sadrže lipid-polimer konjugate
Liposomi su pripravljeni upotrebom metode filma kao što je opisano u primjeru 20. Umjesto fosfatidilkolina iz jajeta upotrebljen je dipalmitoil-fosfatidilkolin. Suhom lipidnom filmu dodano je 5 mL HEPES pufera, uz mućkanje tijekom 5 minuta u prisutnosti staklenih kuglica da se tako omogući potpuna hidracija lipidnog filma. Liposomima je određena veličina razdvajanjem 12 puta preko dvije PC membrane koje imaju pore veličine 100 nm i 200 nm. Dobivena liposomska disperzija je dijalizirana (MWCO 10 000), a prosječna veličina čestica određena je upotrebom tehnike dinamičnog raspršenja svjetlosti. Vidi tablicu 1 o svojstvima liposomskih preparata.
Primjer 22
Usporedna kinetika tricijem označenihlipid-polimer konjugata inkorporiranih u liposome nakon jednostruke intravenozne injekcije štakorima
Ženke štakora (Wistar, Crl: (WI) BR (koje nisu skotne, SPF-svojstvo) (Charles River, Sulzfeld, Njemačka)) imale su slobodan pristup standardnoj, granuliranoj, laboratorijskoj vrsti prehrane (Altronim, kod VRF 1, Lage, Njemačka) i cjevčici za vodu. Intravenozna injekcija jednostruke doze liposomskih preparata, od kojih je svaki sadržavao kolesteriloleileter označen tricijem (Amersham) radioaktivnosti 40-50 kBq (pripravci od 50 μmola lipida prikazani su u tablici 1) dana je u repnu venu. Dano je 5 μmola ukupnog lipida, izuzev u indiciranim slučajevima.
Uzorci krvi sakupljeni su iz repne vene svakog štakora u slijedećim vremenskim intervalima nakon primjene: 5 minuta, 4 sata, 24 sata i 48 sati. Volumen sakupljenog uzorka bio je približno 300 μL po sakupljanju.
Uzorak krvi je prenesen u heparinizirane cjevčice i pohranjen pri -20 °C.
Pojedinačni alikvot od 100 μL razrijeđen je na slijedeći način:
100 μL je premješteno u scintilacijsku posudicu (20 mL).
Dodano je 100 μL sredstva Solvable, uz inkubaciju najmanje 1 sat.
Dodano je 100 μL 1 mM EDTA i 200 μL 30 % H2O2. Smjesa je inkubirana 24 sata pri sobnoj temperaturi i zatim preko noći pri 50 °C.
Dodana je Ultima Gold (10 mL) kao scintilacijska tekućina.
Radioaktivnost je izmjerena LSC-om.
Sva radioaktivna mjerenja izvedena su upotrebom Packard scintilacijskog brojača (1900TR). Brojanje vremena bilo je do statističke točnosti od ± 0,2 % ili maksimuma od 5 minuta, koje god se prvo postigne. Packard 1900TR je programiran tako da automatski oduzima pozadinu i pretvara broj impulsa po minuti (CPM) u broj raspada po minuti (DPM).
Za neke spomenute preparate, jetra i slezena štakora su secirane 48 sati nakon primjene i lokalizacija liposoma je određena prema slijedećoj metodi:
Organi su homogenizirani i homogenati su razrijeđeni do 25 mL (jetra) ili do 5 mL (slezena). 1 mL homogenata je prenesen u scintilacijsku posudicu u koju je zatim dodano:
200 mL sredstva Solvable (pomiješanog i uzorak je inkubiran pri 50 ° preko noći)
200 mL 0,5M otopine EDTA
250 mL otopine H2O2 (30 %) (inkubirano pri 50 °C preko noći)
10 mL scintilacijske tekućine Ultima Gold (promućkane i uzorak je inkubiran 24 sata).
Zatim su uzorci izmjereni beta-scintilacijskim brojačem 10 minuta. Rezultati nekih liposomskih preparata prikazani su na slici 6.
Pripravci liposomskih preparata, pripravljeni po primjeru 21 i rezultati, dobiveni in vivo ispitivanjem tog primjera, prikazani su u tablici 1. Određeno je povećanje cirkulacijskog vremena u krvi, pri čemu:
Dobro znači učinak na cirkulacijsko vrijeme, usporediv s onim koji pokazuju liposomi koji sadrže PEG-DSPE.
Umjereno znači učinak na cirkulacijsko vrijeme među onima koje pokazuju liposomi koji sadrže PEG-DSPE i liposomi bez dodataka, koji nisu ovijeni polimerom.
Slabo znači učinak na cirkulacijsko vrijeme pod gotovo sličnim uvjetima sa onim koji pokazuju liposomi bez dodataka.
Tablica 1
Pripravci liposoma po 50 μmola lipida i svojstva
[image]
* : primjenjeno je 0,5 μmola ukupnog lipida (vidi slike 1 i 2)
** : primjenjeno je 0,05 μmola ukupnog lipida (vidi slike 1 i 2)
*** : primjenjeno je 0,005 μmola ukupnog lipida (vidi slike 1 i 2)
§: kada je nakon 1 tjedan dana druga injekcija (TL 1 μmola), uočeno je smanjenje cirkulacijskog vremena liposoma koji sadrže lipid-polimer konjugat iz primjera 5.1. Liposomi koji sadrže konjugat iz primjera 11, također su pokazali takvo smanjenje, no za dvije životinje taj je učinak bio umjeren.
Primjer 23
Priprava liposoma koji sadrže lipid-polimer konjugat i prednizolon-fosfat
Odvagano je 750 mg dipalmitoil-fosfatidilkolina (DPPC) (Lipoid Ludwigshafen), 220,0 mg kolesterola (Sigma Aldrich) i 270,0 mg lipid-polimer konjugata iz primjera 11, odnosno 750 mg dipalmitoli-fosfatidilkolina, 250,8 mg kolesterola i 267,6 mg PEG-distearilfosfatililetanolamina (PEG-DSPE) (Avanti Polar Lipids), te je pomiješano u okrugloj tikvici od 100 mL. Lipidi su otopljeni u oko 30 mL smjese 1:1 metanola i kloroforma (lipid-polimer konjugat iz primjera 14) ili etanola (PEG-DSPE). Nakon uparivanja do suhog u rotavaporu tijekom 1 sata pod vakumom pri 40 °C, slijedilo je ispiranje dušikom tijekom 1 sata.
Odvagano je 1 200 mg prednizolon-dinatrijevog fosfata (PLP) (OPG Nieuwegein) i otopljeno u 12 mL steriliziranog PBS. Otopina je dodana suhim lipidnim filmovima i mućkana tijekom jednog sata u prisutnosti staklenih kuglica da se tako omogući potpuna hidracija lipidnih filmova.
Liposomske suspenzije su premještene u uređaj za razdvajanje (Avestin, maksimalan volumen 15 mL), te su razdvajane pod tlakom, upotrebom dušika, 6 puta preko 2 filtera sa porama koji su smješteni jedan iznad drugog i koji imaju veličinu pora od 200, odnosno 100 nm, od 100, odnosno 50 nm i od 50, odnosno 50 nm. Zatim su liposomske suspenzije dijalizirane dva puta u odijeljenom prostoru za dijalizu (Slide-A-Lyzer, 10 000 MWCO) tijekom 24 sata od 1 litre steriliziranog PBS.
Prosječna veličina čestica određena je pomoću raspršenja svijetlosti (Malvern Zeta-sizer) i iznosila je oko 85, odnosno 90 nm, indeks polidisperznosti iznosio je < 0,1. Enkapsulacijska sposobnost prednizolon-fosfata određena je pomoću metode HPLC i iznosila je 2,6 %. Suspenzije liposoma su pohranjene u dušikovoj atmosferi pri 4 °C, te je uočeno da su pri tim uvjetima stabilne najmanje 5 tjedana. Liposomski preparati koji sadrže lipid-polimer konjugate iz primjera 14 nešto su stabilniji od liposomskih preparata koji sadrže referentni lipid-polimer konjugat PEG-DSPE (vidi sliku 3).
Primjer 24
Određivanje cirkulacijskog vremena i terapeutske djelotvornosti liposomskih formulacija koje sadrže
prednizolon-fosfat u adjuvantnom modelu artritisa kod štakora
Lewisovi štakori potkožno su imunizirani u područje repa u Freundovom adjuvantu s Mycobacterium tuberculosis koja je inaktivirana toplinom. Upala šape započela je između devetog i dvanaestog dana nakon imunizacije, dosegla je maksimum jačine približno nakon dvadesetog dana i zatim je postepeno slabila.
Određivanje bolesti izvedeno je vizualnim bilježenjem jačine upale šape od 10 do 35 dana nakon imunizacije. Kada su rezultati upale šape otprilike dosezali polovičnu vrijednost maksimalnog rezultata (14-15 dan), svi su štakori podijeljeni u skupine (5 štakora po skupini) s jednakim prosječnim rezultatom i tretirani samo s jednom intravenoznom injekcijom:
10 mg/kg PLP u PHEA-DODASuc liposomima, pripravljenim prema primjeru 23 ili
10 mg/kg PLP u PEG-DSPE liposomima, pripravljenim prema primjeru 23 (referenca)
ili
PBS (kontrola)
Pri t=0, 24 i 48 sati sakupljeni su uzorci krvi, te su ispitani na plazma koncentraciju liposomskog PLP.
Cirkulacijsko ponašanje PHEA- i PEG-liposoma u krvi prikazano je profilima plazma koncentracije PLP, koji su prikazani na slici 4. Oba tipa liposoma ponašaju se jednako dobro s obzirom na cirkulacijski poluraspad.
Slika 5 prikazuje terapeutsku aktivnost 10 mg/kg PLP-PHEA- i 10 mg/kg PLP-PEG-liposoma u adjuvantnom artritisu kod štakora, u odnosu na štakore tretirane salinom kao kontrolama.

Claims (13)

1. Lipid-polimer konjugat, koji se može dobiti iz amfifilnog lipida, koji se sastoji od najmanje jednog hidrofobnog, nepolarnog dijela i hidrofilne, polarne glave, te od njegovog polimernog ili monomernog prekursora koji ima N- i C-terminalnu krajnju skupinu, naznačen time da je pri čemu je polimer poli-(aminokiselina), poli-(derivat aminokiseline) ili poli-(analog aminokiseline) i da je lipid vezan s N- ili C-terminalnom krajnjom skupinom polimera koji ima slijedeću formulu: -[NHCHR(CH2)mCO]n- naznačen time: -R je definiran kao: -H, -CH3, -CHCH3OR1, -(CH2)xOR1, -(CH2)x-CO-NHR1, -(CH2)x-NH-CO-R1, - (CH2)x-SOyCH3 ili -(CH2)xCOOH; -R1 je H ili (C1-C4)alkil supstituiran s jednom ili više hidroksilnih skupina ili jednom di(C1-C4)alkilaminskom skupinom; x je 0-4; m=1 ili 0 i y=1 ili 2.
2. Konjugat prema zahtjevu 1, naznačen time da je amfifilni lipid odabran iz skupine koja se sastoji od fosfolipida, glikolipida, ceramida, kolesterola i derivata, zasićenih ili djelomično nezasićenih, razgranatih ili ravnolančanih C8-C100 mono- ili di- alkilamina, arilalkilamina, cikloalkilamina, alkanola, aldehida, karbohalida ili alkanskih kiselina i njihovih anhidrida i naznačen time da je ukupan broj C-atoma preferirano 25 ili veći.
3. Konjugat prema zahtjevu 2, naznačen time da amfifilni lipid sadrži najmanje dva hidrofobna, nepolarna dijela.
4. Konjugat prema zahtjevu 3, naznačen time da je amfifilni lipid odabran iz skupine koja se sastoji od 1-heptadeciloktadecilamina, N-sukcinildioktadecilamina i distearilfosfatidiletanolamina.
5. Konjugat prema bilo kojem od prethodnih zahtjeva, naznačen time da polimer ima χ-parametar ≤ 0,65, preferirano ≤ 0,5 u vodi.
6. Konjugat prema bilo kojem od prethodnih zahtjeva, naznačen time da se polimer sastoji od α-aminokiselina i njihovih derivata ili analoga.
7. Konjugat prema bilo kojem od prethodnih zahtjeva, naznačen time da polimer sadrži neznatnu količinu nabijenih skupina unutar fiziološkog pH od 4-8.
8. Konjugat prema zahtjevu 7, naznačen time da se polimer sastoji od aminokiselinskih monomera, monomera aminokiselinskog analoga ili monomera aminokiselinskog derivata, koji su neutralni ili se neutraliziraju pri fiziološkom pH od 4-8.
9. Konjugat prema bilo kojem od prethodnih zahtjeva, naznačen time da polimer ima molekulsku masu između 500 i 75 000, preferirano između 2 000 i 15 000.
10. Konjugat prema bilo kojem od prethodnih zahtjeva, naznačen time da je polimer biorazgradiv.
11. Konjugat prema zahtjevu 1, naznačen time da je polimer poli[N-(2-hidroksietil)]-1-glutamin.
12. Konjugat prema zahtjevu 1, naznačen time da je polimer poli(2-hidroksietil)-1-asparagin.
13. Konjugat prema zahtjevu 1, naznačen time da je polimer poli(D,L-metionin-sulfoksid).
HR20030975A 2001-06-01 2003-11-24 Lipid-polymer-conjugates HRP20030975A2 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP01202107 2001-06-01
PCT/EP2002/006432 WO2002098951A2 (en) 2001-06-01 2002-06-03 Lipid-polymer-conjugates

Publications (1)

Publication Number Publication Date
HRP20030975A2 true HRP20030975A2 (en) 2005-08-31

Family

ID=8180408

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HR20030975A HRP20030975A2 (en) 2001-06-01 2003-11-24 Lipid-polymer-conjugates
HR20030976A HRP20030976A2 (en) 2001-06-01 2003-11-24 Lipid-polymer-conjugates compositions

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HR20030976A HRP20030976A2 (en) 2001-06-01 2003-11-24 Lipid-polymer-conjugates compositions

Country Status (20)

Country Link
US (3) US20040254352A1 (hr)
EP (2) EP1392755B1 (hr)
JP (2) JP2004527586A (hr)
KR (2) KR100874847B1 (hr)
CN (2) CN1308375C (hr)
AT (2) ATE416214T1 (hr)
BR (2) BR0209695A (hr)
CA (2) CA2448856A1 (hr)
CZ (2) CZ20033479A3 (hr)
DE (2) DE60230137D1 (hr)
EE (2) EE200300598A (hr)
ES (2) ES2318027T3 (hr)
HR (2) HRP20030975A2 (hr)
HU (2) HUP0400171A2 (hr)
MX (2) MXPA03011050A (hr)
NO (2) NO20035264D0 (hr)
PL (2) PL369455A1 (hr)
SK (2) SK15982003A3 (hr)
WO (2) WO2002098951A2 (hr)
ZA (2) ZA200308938B (hr)

Families Citing this family (18)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR100874847B1 (ko) * 2001-06-01 2008-12-19 아스텔라스 파마 유럽 비.브이. 지질-폴리머-접합체
FR2840614B1 (fr) 2002-06-07 2004-08-27 Flamel Tech Sa Polyaminoacides fonctionnalises par de l'alpha-tocopherol et leurs applications notamment therapeutiques
EP1393720A1 (en) * 2002-08-27 2004-03-03 Universiteit Utrecht Vesicle-encapsulated corticosteroids for treatment of cancer
SG113442A1 (en) * 2002-11-29 2005-08-29 Agency Science Tech & Res Improved temperature sensitive micelles
FR2855521B1 (fr) 2003-05-28 2005-08-05 Flamel Tech Sa Polyaminoacides fonctionnalises par au moins un groupement h ydrophobe et leurs applications notamment therapeutiques.
EP1481683A1 (en) 2003-05-30 2004-12-01 Yamanouchi Pharmaceutical Co. Ltd. P-selectin targeting ligand and compositions thereof
SE527505C2 (sv) * 2003-06-10 2006-03-28 Anna Imberg Komposita material och partiklar
FR2860516B1 (fr) * 2003-10-03 2006-01-13 Flamel Tech Sa Homopolyaminoacides telecheliques fonctionnalises par des groupements hydrophobes et leurs applications notamment therapeutiques
WO2007129746A1 (ja) * 2006-05-09 2007-11-15 Osaka University コレステロールアミン導入ポリ-γ-グルタミン酸誘導体
JP4936312B2 (ja) * 2006-07-20 2012-05-23 株式会社島津製作所 新規な両親媒性物質、それを用いた薬剤搬送システム及び分子イメージングシステム
JP5258189B2 (ja) * 2006-11-09 2013-08-07 学校法人 関西大学 柔軟性生分解性ポリマー
ITRM20070327A1 (it) * 2007-06-11 2008-12-12 Univ Palermo Vettori colloidali a struttura poliamminoacidica per il rilascio orale di peptidi e proteine e relativo metodo di produzione.
WO2009131672A1 (en) * 2008-04-22 2009-10-29 University Of Massachusetts Stabilized liposome compositions and related methods of use
KR101695836B1 (ko) * 2010-04-13 2017-01-16 (주)아모레퍼시픽 경피흡수용 고분자-리포좀 나노복합체 조성물 및 그 제조방법
ES2385995B2 (es) * 2011-01-10 2013-05-21 Universidade De Santiago De Compostela Nanocápsulas con cubierta polimérica
US9993427B2 (en) * 2013-03-14 2018-06-12 Biorest Ltd. Liposome formulation and manufacture
JPWO2019172362A1 (ja) * 2018-03-07 2021-03-11 公益財団法人川崎市産業振興財団 刺激応答性ポリマー
JPWO2023282296A1 (hr) * 2021-07-07 2023-01-12

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0657722B2 (ja) * 1986-05-27 1994-08-03 三菱化成株式会社 水溶性ポリマ−組成物
US5149794A (en) * 1990-11-01 1992-09-22 State Of Oregon Covalent lipid-drug conjugates for drug targeting
US5395619A (en) * 1993-03-03 1995-03-07 Liposome Technology, Inc. Lipid-polymer conjugates and liposomes
US6333021B1 (en) * 1994-11-22 2001-12-25 Bracco Research S.A. Microcapsules, method of making and their use
US5972379A (en) * 1995-02-14 1999-10-26 Sequus Pharmaceuticals, Inc. Liposome composition and method for administering a quinolone
US6197332B1 (en) * 1997-08-13 2001-03-06 Chiron Corporation Lipid-conjugated polyamide compounds and related compositions and methods thereof
GB9811059D0 (en) * 1998-05-23 1998-07-22 Univ Strathclyde Polyamino acid vesicles
KR100874847B1 (ko) * 2001-06-01 2008-12-19 아스텔라스 파마 유럽 비.브이. 지질-폴리머-접합체

Also Published As

Publication number Publication date
NO20035264D0 (no) 2003-11-27
EP1392756B1 (en) 2007-02-14
EP1392755A1 (en) 2004-03-03
KR20040027512A (ko) 2004-04-01
ZA200308937B (en) 2004-11-17
HUP0400174A2 (en) 2007-02-28
CN1520435A (zh) 2004-08-11
EE200300596A (et) 2004-02-16
DE60218154D1 (de) 2007-03-29
DE60230137D1 (de) 2009-01-15
CN1271116C (zh) 2006-08-23
CZ20033479A3 (cs) 2004-07-14
CN1308375C (zh) 2007-04-04
PL369455A1 (en) 2005-04-18
WO2002098951A3 (en) 2003-02-20
CA2448856A1 (en) 2002-12-12
ES2318027T3 (es) 2009-05-01
WO2002098952A1 (en) 2002-12-12
EP1392756A2 (en) 2004-03-03
JP2004527586A (ja) 2004-09-09
BR0209695A (pt) 2005-01-11
ES2282439T3 (es) 2007-10-16
JP2004527585A (ja) 2004-09-09
KR100894852B1 (ko) 2009-04-24
MXPA03011049A (es) 2004-06-25
DE60218154T2 (de) 2007-10-31
CN1602326A (zh) 2005-03-30
EE200300598A (et) 2004-02-16
KR100874847B1 (ko) 2008-12-19
ATE416214T1 (de) 2008-12-15
SK15982003A3 (sk) 2004-06-08
HUP0400171A2 (en) 2007-02-28
US20100145018A1 (en) 2010-06-10
WO2002098951A2 (en) 2002-12-12
MXPA03011050A (es) 2004-06-25
ZA200308938B (en) 2004-11-17
NO20035263D0 (no) 2003-11-27
CA2448858A1 (en) 2002-12-12
HRP20030976A2 (en) 2005-08-31
KR20040027513A (ko) 2004-04-01
EP1392755B1 (en) 2008-12-03
CZ20033480A3 (cs) 2004-07-14
US20040254352A1 (en) 2004-12-16
US20040241222A1 (en) 2004-12-02
PL367479A1 (en) 2005-02-21
SK15972003A3 (sk) 2004-06-08
ATE353927T1 (de) 2007-03-15
BR0209699A (pt) 2005-02-01

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US20100145018A1 (en) Lipid-Polymer-Conjugates
Kono et al. Preparation and cytotoxic activity of poly (ethylene glycol)-modified poly (amidoamine) dendrimers bearing adriamycin
US5720950A (en) Polymers containing antifibrotic agents, compositions containing such polymers, and methods of preparation and use
JP2010526183A5 (hr)
JP2020522534A (ja) カルニチン由来材料に関する方法および組成物
WO2006003731A1 (ja) 高分子ミセル型mri造影剤
EP3318282A1 (en) Drug delivery carrier, and composition containing same
JP2009519211A (ja) ヒスチジン誘導体および疎水基で官能化されたポリグルタミン酸類、ならびに特に治療目的のためのそれらの使用
WO2018038166A1 (ja) ポリマー、ポリマーの製造方法、及び薬物複合体
TW201737946A (zh) 藥物複合化嵌段共聚合體、嵌段共聚合體及藥物複合化嵌段共聚合體之製造方法
KR100567397B1 (ko) 온도 감응성과 생체 적합성을 갖는 양친성 고리형포스파젠 삼합체 및 그 제조 방법
CA3193244A1 (en) Compositions and methods of manufacturing amphiphilic block copolymers that form nanoparticles in situ
JP7100457B2 (ja) ブロックコポリマー、ミセル組成物、及び医薬組成物
AU2002319248A1 (en) Lipid-polymer-conjugates compositions
AU2002320851A1 (en) Lipid-polymer-conjugates
JP6924191B2 (ja) 新規な高分子誘導体、及びそれらを用いた新規な高分子誘導体イメージングプローブ
WO2023227724A1 (en) Star-shaped graft copolymers
JP2019143083A (ja) ポリマー、ポリマーの製造方法、薬物複合体及びミセル
TW201039844A (en) Biodegradable metal-chelating polymers and vaccines

Legal Events

Date Code Title Description
A1OB Publication of a patent application
OBST Application withdrawn
PNAN Change of the applicant name, address/residence

Owner name: ASTELLAS PHARMA EUROPE B.V., NL