FI115953B - Stabiileja mikrokuplasuspensioita vahvistusaineiksi ultraäänikaikukuvausta varten - Google Patents

Stabiileja mikrokuplasuspensioita vahvistusaineiksi ultraäänikaikukuvausta varten Download PDF

Info

Publication number
FI115953B
FI115953B FI943167A FI943167A FI115953B FI 115953 B FI115953 B FI 115953B FI 943167 A FI943167 A FI 943167A FI 943167 A FI943167 A FI 943167A FI 115953 B FI115953 B FI 115953B
Authority
FI
Finland
Prior art keywords
gas
microbubbles
phospholipids
surfactant
microbubble
Prior art date
Application number
FI943167A
Other languages
English (en)
Swedish (sv)
Other versions
FI943167A0 (fi
FI943167A (fi
Inventor
Michel Schneider
Feng Yan
Jean Brochot
Jerome Puginier
Original Assignee
Bracco Int Bv
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=8212014&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=FI115953(B) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Bracco Int Bv filed Critical Bracco Int Bv
Publication of FI943167A0 publication Critical patent/FI943167A0/fi
Publication of FI943167A publication Critical patent/FI943167A/fi
Application granted granted Critical
Publication of FI115953B publication Critical patent/FI115953B/fi

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K49/00Preparations for testing in vivo
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K49/00Preparations for testing in vivo
    • A61K49/22Echographic preparations; Ultrasound imaging preparations ; Optoacoustic imaging preparations
    • A61K49/222Echographic preparations; Ultrasound imaging preparations ; Optoacoustic imaging preparations characterised by a special physical form, e.g. emulsions, liposomes
    • A61K49/225Microparticles, microcapsules
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K49/00Preparations for testing in vivo
    • A61K49/22Echographic preparations; Ultrasound imaging preparations ; Optoacoustic imaging preparations
    • A61K49/222Echographic preparations; Ultrasound imaging preparations ; Optoacoustic imaging preparations characterised by a special physical form, e.g. emulsions, liposomes
    • A61K49/223Microbubbles, hollow microspheres, free gas bubbles, gas microspheres

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Acoustics & Sound (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Radiology & Medical Imaging (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Surgical Instruments (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
  • Aeration Devices For Treatment Of Activated Polluted Sludge (AREA)
  • Physical Or Chemical Processes And Apparatus (AREA)
  • Ultra Sonic Daignosis Equipment (AREA)
  • Physical Water Treatments (AREA)
  • Manufacturing Of Micro-Capsules (AREA)
  • Apparatuses For Generation Of Mechanical Vibrations (AREA)
  • Colloid Chemistry (AREA)
  • Cosmetics (AREA)
  • Amplifiers (AREA)

Description

11E553
Stabiileja mikrokuplasuspensioita vahvistusaineiksi ultra-äänikaikukuvausta varten
Tekninen kenttä 5 Keksintö koskee injektoitavissa olevia suspensioi ta, jotka sisältävät kaasulla täytettyjä mikrokuplia vesipitoisessa kantajassa, joka käsittää amfipaattisia yhdisteitä, joista vähintään yksi on fosfolipidistabilointiai-ne, joka estää mikrokuplien kokoonpainumista ajan mittaan 10 ja paineen vaikutuksesta. Fosfolipidistabilointiaine voi olla lamellaarisessa tai laminaarisessa muodossa. Keksintö käsittää myös menetelmän stabiilien mikrokuplasuspensioi-den valmistamiseksi, jotka ovat käyttökelpoisia varjoaineina ultraäänikaikukuvauksessa.
15 Keksinnön tausta
On alalla hyvin tunnettua käyttää kaasumikrokuplien suspensioita kantajanesteessä tehokkaina ultraääntä heijastavina aineina. Mikrokuplasuspensioiden kehittäminen farmaseuttisiksi kaikuaineiksi ultraäänikuvauksen tehosta-20 miseksi seurasi varhaisia havaintoja, joiden mukaan nopeasti annetut laskimonsisäiset injektiot voivat aiheuttaa ; liuenneiden kaasujen poistumista liuoksesta ja kuplien muodostumista. Koska näiden verisuonten sisällä olevien * kaasukuplien akustinen impedanssi on olennaisesti erilai- ' « · 25 nen kuin veren, niiden havaitaan olevan erinomaisia ultraäänen heijastajia. Kantajanesteeseen valmistettujen kaasu-mikrokuplasuspensioiden injektointi elävien organismien •: verenkiertoon vahvistaa voimakkaasti ultraäänikaikukuvaa ja edistää siten sisäelinten visualisointia. Koska elinten : 30 ja syvällä olevien kudosten kuvantaminen voi olla ratkai-
I > t I
sevaa lääketieteellisen diagnoosin tekemisessä, on tehty paljon työtä stabiilien, pitoisuudeltaan suurten kaasumik-rokuplasuspensioiden kehittämiseksi, jotka olisivat saman-aikaisesti yksinkertaisia valmistaa ja antaa, sisältäisi-; 35 vät mahdollisimman vähän inaktiivisia spesieksiä ja olisi- 115953 2 vat pitkäaikaisesti säilyviä ja yksinkertaisesti toimitettavissa. On tehty monia yrityksiä nämä kriteerit täyttävän ratkaisun löytämiseksi, mutta yksikään ei ole antanut täysin tyydyttävää tulosta.
5 EP-hakemusjulkaisun 0 077 752 (Schering) perusteel la on tunnettua, että kaasumikrokuplasuspensioita voidaan valmistaa sekoittamalla pinta-aktiivisuusaineen vesiliuos stabilointiaineena toimivan viskositeettia parantavan aineen liuoksen kanssa. Kaasukuplat tuodaan liuokseen pakot-10 tantalla reagenssien ja ilman seos pienen aukon läpi. C02-mikrokuplasuspensio voidaan valmistaa lisäämällä happoa seokseen, joka saadaan pinta-aktiivisuusainetta ja nat-riumvetykarbonaattia sisältävästä liuoksesta ja viskositeettia parantavan aineen liuoksesta. Komponenttien se-15 koittaminen on kuitenkin tehtävä juuri ennen käyttöä ja liuos on käytettävä/injektoitava välittömästi valmistuksen jälkeen. Esitetyt pinta-aktiivisuusaineet (tensidit) käsittävät lesitiinejä; rasvahappojen ja rasva-alkoholien estereitä ja eettereitä polyoksieteenin ja polyoksietyloi-20 tujen polyolien, kuten sorbitolin, glykolien ja glyserolien ja kolesterolin, kanssa; ja polyoksieteeni-polyoksi-• ‘.(i propeenipolymeerej ä. Suspension esitetty tensidipitoisuus . ,·, on 0,01 - 10 paino-%, ja edullisen alueen väitetään olevan 0,5 - 5 %. Viskositeettia parantaviin ja stabiloiviin yh-... 25 disteisiin kuuluvat esimerkiksi mono- ja polysakkaridit (glukoosi, laktoosi, sakkaroosi, dekstraani, sorbitoli); • polyolit, esimerkiksi glyseroli ja polyglykolit; ja poly- ’·' * peptidit, kuten proteiinit, gelatiini, oksipolygelatiini, plasmaproteiini yms. Viskositeettia parantavan aineen ko-j 30 konaismäärä on rajoitettu alueelle 0,5 - 50 %. On myös : : esitetty polyoksipropeeni-polyoksieteenipolymeerien (esi- < merkiksi Pluronic* F-68) käyttöä viskositeettia parantavana I" aineena. Edullisessa esimerkissä ravistellaan yhtä suuria ;·’ tilavuuksia tensidiä, 0,5 paino-% PluronicR F-68:aa (poly- : ; ; 35 oksipropeeni-polyoksieteenikopolymeeri) sisältävää vesi- 3 115953 liuosta ja viskositeetin parantajaa (10-%:inen laktoosi-liuos) voimakkaasti keskenään steriileissä olosuhteissa, jolloin saadaan mikrokuplasuspensio. Saatu suspensio kesti yli 2 min ja sisälsi lähes 50 % kuplia, joiden koko oli 5 alle 50 pm. Kyseisen julkaisun mukaan voidaan käyttää korkeintaan 50 % pinta-aktiivisuusaineita ja/tai viskositeettia parantavia aineita; erityisesimerkeissä käytetään kuitenkin 1 - 4 % Pluronic" F-68:aa.
Helposti valmistettavia vesisuspensioita, jotka 10 ovat käyttökelpoisia kuvantamisaineina ultraäänikaikuku-vauksessa, esitetään julkaisussa WO-91/15 244 (Schneider et ai.). Nämä suspensiot sisältävät laminaarisessa ja/tai lamellaarisessa muodossa olevia kalvon muodostavia pinta-aktiivisuusaineita ja mahdollisesti hydrofiilisiä stabi-15 lointiaineita. Laminarisoidut pinta-aktiivisuusaineet voivat olla liposomien, ts. mikroskooppisten rakkuloiden muodossa, jotka ovat yleensä pallomaisia. Nämä rakkulat muodostuvat yleensä yhdestä tai useammasta samankeskisesti järjestyneestä kaksimolekyylikerroksesta, jotka koostuvat 20 amfipaattisista yhdisteistä, ts. hydrofiilisen ja hydrofobisen ryhmittymän sisältävistä yhdisteistä. Molekyylit ;·, ovat järjestyneinä kaksoiskerroksissa sillä tavalla, että * . hydrofobiset ryhmittymät ovat vastakkain ja hydrofiiliset ryhmittymät suuntautuvat vesifaasia kohden. Suspensioita ,, 25 saadaan saattamalla laminarisoidut pinta-aktiivisuusaineet * · · ilman tai kaasun vaikutuksen alaisiksi ennen sekoittamistaan vesifaasin kanssa tai sen jälkeen. Kalvon muodosta-ν’ ·' vien pinta-aktiivisuusaineiden muuttaminen lamellaariseen muotoon tehdään erilaisin liposominmuodostusmenetelmin, i :: 30 mukaan luettuna korkeapainehomogenointi tai äänikäsittely akustisilla tai ultraäänitaajuuksilla. Patenttivaatimusten mukainen fosfolipidipitoisuus on 0,01 - 20 % ja mikrokup-;;; lapitoisuus 108 - 109 kuplaa/ml. Nämä mikrokuplasuspensiot pysyivät stabiileina kuukausia. Fosfolipidipitoisuus on : 35 0,5 % esimerkissä 1.
4 1155-53
Julkaisussa WO-92/11 873 (Beller et ai. ) esitetään yksi yritys stabiilin, kaiun synnyttävän suspension aikaansaamiseksi. Vesivalmisteita, jotka on suunniteltu absorboimaan ja stabiloimaan kaikukuvausvarjoaineena käytet-5 täviksi tarkoitettuja mikrokuplia, valmistetaan käyttämällä polyoksieteeni-polyoksipropeenipolymeerejä ja negatiivisesti varautuneita fosfolipidejä, kuten fosfatidyyligly-serolia, fosfatidyyli-inositolia, fosfatidyylietanoliamii-nia, fosfatidyyliseriiniä samoin kuin niiden lysomuotoja. 10 Valmisteiden fosfolipidipitoisuus voi olla alueella 0,01 -5 til-% tai paino-%; erityisesti esitettyjä ja patenttivaatimusten mukaisia ovat kuitenkin valmisteet, jotka sisältävät 1 % dipalmitoyylifosfatidyyliglyserolia (DPPG). Negatiivisesti varautuneiden fosfolipidien lisäksi koostu-15 musten täytyy sisältää 0,1 - 10 % polymeeristä materiaalia (PluronicR F-68). Liuenneiden aineiden kokonaisosuus on näissä valmisteissa 5,1 - 10,4 %. Mikrokuplapitoisuutta ei ilmoiteta; annettujen tulosten mukaan sen voidaan kuitenkin arvioida olevan noin 107 kuplaa/ml. Suspensioiden sta-20 biiliuden ilmoitetaan olevan parempi kuin EP-hakemusjulkaisun 0 077 752 mukaisen suspension.
Vaikka tekniikan tasoa vastaavilla koostumuksilla , on etunsa, ne kärsivät silti muutamista epäkohdista, jotka haittavat niiden käyttöä. Joillakin tekniikan tasoa vas-25 taavilla koostumuksilla on ensinnäkin suhteellisen lyhyt : ·’ elinikä ja toiseksi niiden lähtökuplaluku on suhteellisen alhainen, esimerkiksi 104 - 105 kuplaa/ml. Tämä tekee mai-v : nitunlaisilla koostumuksilla tehtyjen kaikukuvaustestien toistamisen ja analysoinnin melko vaikeaksi. Lisäksi jot-: 30 kut menetelmät antavat tulokseksi kuplia, joiden läpimitta vaihtelee laajalla alueella (50 pm;iin asti), mikä estää niiden käytön kaikukuvausaineina tietyissä sovelluksissa (esimerkiksi sydämen vasemman puoliskon kaikukuvauksessa). *··* Tarvetta saada aikaan stabiileja mikrokuplaformu- 35 loita, jotka kestävät verenkierrossa esiintyviä paineen- 5 115953 vaihteluita ja joilla on hyvä säilyvyys, lisää edelleen joidenkin tekniikan tasoa vastaavien koostumusten heikko stabiilius. Mikrokuplaformulat, joiden jakelussa ja varastoinnissa ei esiintyisi ongelmia, ovat erityisen tärkeitä.
5 Yksi muu epäkohta on, että monet tähän asti tunne tuista koostumuksista sisältävät suuren määrän erilaisia liuenneita aineita, kuten polymeerejä, fosfolipidejä, elektrolyyttejä ja muita aineita, jotka tekevät koostumuksen käytöstä käytännössä yhä vaikeampaa. Tiedetään esimer-10 kiksi, että polyoksieteeni-polyoksipropeenikopolymeerien (PluronicR) käyttö voi määrätyillä potilailla aiheuttaa epämiellyttäviä sivuvaikutuksia [katso esimerkiksi G. M. Vercellotti et ai.. Blood 59 (1982) 1299]. Runsaasti fosfolipidejä sisältävät valmisteet voivat myös olla tietyis-15 sä tapauksissa epätoivottavia. Joka tapauksessa koostumuksia, jotka sisältävät runsaasti erilaisia liuenneita aineita, annetaan vastahakoisesti ja niiden laajaa käyttöä aletaan pitää epätoivottavana. Lääketeollisuuden piirissä on itse asiassa suuntauksena aktiivisten ja inaktiivisten 20 aineosien pitoisuuksien vähentäminen mahdollisimman pieniksi erilaisissa lääketieteellisissä tai farmaseuttisissa ;-i formuloissa ja kaiken sellaisen eliminointi valmisteista, joka ei ole välttämätöntä. Vaihtoehtoisten menetelmien löytäminen ja tehokkaampien koostumusten formulointi on 25 edelleen tärkeää. Tämä pätee erityisesti kaikukuvauksessa ·' .* käytettäviin mikrokuplasuspensioihin, sillä aineosilla ei ole niiden yhteydessä parantavaa vaikutusta, ja niiden tu-v lisi johtaa mahdollisimman vähäisiin jälkiseurauksiin. Ku ten edellä mainittiin, tekniikan tasoa vastaavat valmis-• 30 teet, joissa tyypilliset pitoisuudet ovat alueella 1 - 4 paino-%, ja niistä saadut kokemukset eivät kuitenkaan ·, rohkaise käyttämään pienennettyjä määriä fosfolipidejä ja muita ei-fosfolipidilisäaineita. Tähän on todennäköisimmin '··’ syynä se, että rutiininomaisten kokeiden edetessä aine- : 35 osien pitoisuuden pienentäminen edelleen ei ole milloin- 6 115953 kaan antanut tulokseksi suspensioita, jotka olisivat käytännössä kyllin stabiileja ollakseen käyttökelpoisia tai rohkaisisivat jatkamaan kokeiluja tunnetun alueen alapäässä.
5 Yhteenveto keksinnöstä Tämä keksintö perustuu siihen odottamattomaan havaintoon, että voidaan valmistaa kaasulla täytettyjen mik-rokuplien hyvin stabiileja suspensioita, jotka sisältävät vähintään 107 mikrokuplaa millilitraa kohden, käyttämällä 10 fosfolipidejä stabilointiaineina, vaikka niitä käytetään hyvin pieninä pitoisuuksina. Suspensioita, jotka ovat käyttökelpoisia varjoaineina ultraäänikaikukuvauksessa, saadaan suspendoimalla vesikantajaan vähintään yhtä fosfo-lipidiä stabilointiaineeksi ajan mittaan ja paineen vaiku-15 tuksesta tapahtuvaa mikrokuplien kokoonpainumista vastaan, kun fosfolipidipitoisuus on pienempi kuin 0,01 paino-%, mutta vähintään pitoisuus, jonka vallitessa fosfolipidimo-lekyylejä on läsnä vain mikrokuplan ja nesteen välisellä rajapinnalla.
20 Oli sangen odottamatonta havaita, että näin mität tömät määrät fosfolipidipinta-aktiivisuusaineita (käytet-tyinä yksinään tai yhdessä suhteellisen pienten osuuksien • * · kanssa muita amfifiileja) pystyvät niin tehokkaasti stabi-’·**’ loimaan mikrokuplia. Oletuksena on, että muiden amfipaat- 25 tisten yhdisteiden (kuten Pluronic*) läsnä ollessa stabi-: lointiainemolekyylien keskinäinen koheesio heikkenee ja fosfolipidiyksimolekyylikalvojen muodostuminen estyy. Kun : : läsnä ei ole suuria määriä muita amfifiilisia aineita, fosfolipidimolekyylien estämättömät molekyylienväliset • 30 sidosvoimat (sähköstaattinen vuorovaikutus ja vetysidosten muodostuminen) ovat kuitenkin riittäviä takaamaan stabii- * » lien kalvomaisten rakenteiden muodostumisen, jotka stabi-'···' loivat kuplia kokoonpainumista tai yhteensulautumista vas- •.,. taan.
* .
7 115953
Keksinnön mukaisesti voidaan valmistaa suspensioita, joissa mikrokuplapitoisuus on suuri ja jotka ovat hyvin stabiileja, pitkäaikaisesti säilyviä ja helppoja valmistaa, vaikka pinta-aktiivisuusaineiden ja muiden lisäai-5 neiden pitoisuudet suspensioissa pidetään selvästi tekniikan tasoa vastaavissa formuloissa käytettävien pitoisuuksien alapuolella. Keksinnön mukaisissa koostumuksissa käytettävä fosfolipidimäärä voi olla niinkin pieni kuin suunnilleen määrä, joka juuri riittää yhden pinta-aktiivisuus-10 aineyksimolekyylikerroksen muodostamiseen kaasumikrokup- lien ympärille, samalla kun kuplapitoisuus suspensiossa pidetään suurempana kuin 107 mikrokuplaa millilitraa kohden. Tämä keksinnön yhteydessä ei todennäköisesti esiinny eikä ole havaittu mikrokuplia, joilla on liposomimainen 15 pinta-aktiivisuusainekaksoiskerros (kaasulla täytettyjä liposomeja).
Suspensioita, joissa mikrokuplapitoisuudet ovat suuria, esimerkiksi 109 - 1010 kuplaa/ml, ja joilla on suhteellisen hyvä stabiilius ja säilyvyys, voidaan valmistaa, 20 vaikka fosfolipidipinta-aktiivisuusainepitoisuus pidetään selvästi alalla tunnettujen pitoisuuksien alapuolella. Suspensioita, jotka sisältävät niinkin vähän kuin 1 pg * I t fosfolipidejä millilitraa kohden, voidaan valmistaa, kun- * ' · ' \ hän käytettävä pinta-aktiivisuusainemäärä ei ole pienempi 25 kuin määrä, joka tarvitaan yhden lipidiyksimolekyyliker- ·' roksen muodostamiseen kaasumikrokuplien ympärille, ja sus- pensiot valmistetaan jollakin tässä esitetyistä menetel-: : mistä.
Laskelmat ovat osoittaneet, että kuplapitoisuuden ; 30 ollessa 108 kuplaa/ml tämä pitoisuus voi olla mikrokuplien kokojakautumasta riippuen niinkin pieni kuin 1 pg/ml eli 0,0001 %, mutta alueella 0,0002 - 0,01 % olevat fosfolipi-’··’·* dipitoisuudet ovat edullisia. Fosfolipidipitoisuus keksin- nön mukaisissa stabiileissa mikrokuplasuspensioissa on 35 edullisemmin 0,001 - 0,009 %. Vaikka suspensiossa olevan 8 115953 fosfolipidimäärän pienentäminen edelleen on mahdollista, suspensiot, jotka on valmistettu käyttämällä pienempää osuutta kuin 0,0001 paino-%, ovat epästabiileja, niiden kokonaiskuplamäärä on pieni, eikä niiden kaikukuvausvaste 5 injektoinnin jälkeen ole tyydyttävä. Toisaalta suspensiot, jotka on valmistettu käyttämällä yli 0,01 % fosfolipidejä, eivät injektoituina toimi paremmin, ts. niiden stabiilius ja kaikukuvausvaste eivät enää parane pitoisuuden myötä. Niinpä suuremmat pitoisuudet saattavat vain suurentaa tek-10 niikan tason käsittelyn yhteydessä esitettyjen epätoivottavien sivuvaikutusten todennäköisyyttä. Alustavasti otaksutaan, että vain ne pinta-aktiivisuusaineiden osat, jotka ovat lamellaarisessa tai laminaarisessa muodossa, voivat tehokkaasti vapauttaa kuplien stabiloimisen kannalta sopi-15 vasti järjestyneitä molekyylejä. Tämä saattaa selittää, miksi pinta-aktiivisuusainepitoisuus voi olla niin pieni kaasukuplien stabiiliuden heikentymättä.
Keksinnön mukaiset suspensiot eivät tarjoa tärkeitä etuja tekniikan tasoa vastaaviin koostumuksiin nähden pel-20 kästään alhaisen fosfolipidipitoisuuden ansiosta vaan myös siitä syystä, että injektoitavien liuenneiden aineiden, ts. lipidien ja/tai synteettisten polymeerien ja muiden * / lisäaineiden, kokonaismäärä on 1 000 - 50 000 kertaa pie- • » · nempi kuin tähän asti. Tämä saadaan aikaan ilman minkään-‘ ’ 25 laisia häviöitä mikrokuplapitoisuuden, ts. tuotteen eko- : '.· geenisyyden tai stabiiliuden, suhteen. Liuenneiden ainei- den hyvin pienen pitoisuuden lisäksi tämä keksintö tarjoaa ! : : käyttöön suspensioita, jotka voivat sisältää pelkästään mikrokuplia, joiden myötävaikutus kaikukuvaussignaaliin on 30 suhteellisen merkittävä, ts. suspensioita, jotka eivät si-··. säilä mikrokuplia, jotka eivät osallistu aktiivisesti ku- vannusprosessiin.
’·!·’ On tarpeetonta mainita, että liuenneiden aineiden pitoisuuksien ollessa näin pieniä keksinnön mukaisessa in-35 jektoitavissa olevassa koostumuksessa epätoivottavien si- 9 115953 vuvaikutusten todennäköisyys pienenee suuresti ja injektoidun aineen eliminoituminen paranee merkittävästi.
Keksinnön mukaisia mikrokuplasuspensioita, joiden fosfolipidipitoisuus on pieni, voidaan valmistaa kalvon 5 muodostavista fosfolipideistä, joiden rakennetta on muunnettu jollakin kätevällä tavalla, esimerkiksi kylmäkuivaa-malla tai suihkukuivaamalla raakafosfolipidien liuoksia sopivassa liuotteessa. Ennen suspension muodostamista tekemällä dispergointi vesipitoiseen kantajaan kylmäkuivatut 10 tai suihkukuivat fosfolipidijauheet saatetaan kosketukseen ilman tai jonkin muun kaasun kanssa. Saatettaessa jauhemaiset fosfolipidit, joiden rakenne on rikottu, kosketukseen vesipitoisen kantajan kanssa fosfolipidit muodostavat lamellarisoituneita tai laminarisoituneita osia, jotka 15 stabiloivat dispergoituja kaasumikrokuplia. Tämän keksinnön mukaisia suspensioita, joiden fosfolipidipitoisuus on pieni, voidaan valmistaa kätevästi myös käyttämällä fosfo-lipidejä, jotka on lamellarisoitu tai laminarisoitu ennen saattamistaan kosketukseen ilman tai muun kaasun kanssa.
20 Niinpä fosfolipidien saattaminen kosketukseen ilman tai muun kaasun kanssa voidaan toteuttaa fosfolipidien ollessa kuivan jauheen muodossa tai laminarisoitujen fosfolipidien • ** dispersiona vesipitoisessa kantajassa.
• * · '·!* Termi lamellaarinen tai laminaarinen muoto tarkoit- :* · 25 taa, että pinta-aktiivisuusaineet ovat ohuiden kalvojen 4 · * • ',· tai levyjen muodossa, joissa on yksi tai useampia molekyyli* likerroksia. Tässä muodossa ollessaan pinta-aktiivisuusai- ;T: nemolekyylit järjestyvät rakenteiksi, jotka ovat samankal taisia kuin liposomirakkuloissa esiintyvät. Kuten julkai- ; 30 sussa WO-A-91/15 244 kuvataan, kalvon muodostavien pinta- ··· aktiivisuusaineiden muuttaminen lamellaariseen muotoon
* I
voidaan tehdä helposti millä tahansa liposominmuodostusme-netelmällä, esimerkiksi korkeapainehomogenoinnilla tai akustisilla tai ultraäänitaajuuksilla tehtävällä äänikä-35 sittelyllä. Muuttaminen lamellaariseen muotoon voidaan 115953 10 tehdä myös päällystämällä vesiliukoisesta kiinteästä kantajasta (NaCl, sakkaroosi, laktoosi tai muut hiilihydraatit) koostuvat mikrohiukkaset (korkeintaan 10 pm) fosfoli-pidillä ja liuottamalla sitten päällystetty kantaja vesi-5 faasiin. Liukenemattomia hiukkasia, esimerkiksi lasi- tai hartsimikrohelmiä, voidaan samoin päällystää kostuttamalla ne orgaaniseen liuotteeseen valmistetussa fosfolipidi-liuoksessa, minkä jälkeen liuote haihdutetaan. Lipidipääl-lysteiset mikrohelmet saatetaan sen jälkeen kosketukseen 10 vesipitoisen kantajafaasin kanssa, jolloin kantajafaasiin muodostuu liposomirakkuloita. Fosfolipidejä voidaan lamel-larisoida myös kuumentamalla ne hieman kriittisen lämpötilan (Te) yläpuolelle ja sekoittamalla varovasti. Kriittinen lämpötila on fosfolipidien geeli-nestemuutoslämpötila. 15 Keksinnön mukaisten fosfolipidipitoisuudeltaan pienten suspensioiden tuottamiseksi voidaan käytännössä lähteä liposomisuspensioista tai -liuoksista, jotka on valmistettu millä tahansa tunnetulla menetelmällä, kunhan liposomirakkulat ovat "kuormittamattomia", ts. niihin ei 20 ole koteloituneena muuta vierasta materiaalia kuin itse liuoksen vesifaasia.
Ilman tai kaasun syöttäminen liposomiliuokseen voi-: '* daan tehdä tavanomaisin keinoin, injektoimalla, ts. pakot- tamalla ilmaa tai kaasua pienten aukkojen kautta liposomi-'“· 25 liuokseen, tai yksinkertaisesti liuottamalla kaasua liuok- • '_* seen paineen avulla ja vapauttamalla paine sitten äkilli- ;:· sesti. Yksi muu tapa on sekoittaa tai äänikäsiteliä lipo- somiliuosta ilman tai muun fysiologisesti hyväksyttävän kaasun läsnä ollessa. Voidaan myös muodostaa kaasua itse ; ,30 liposomiliuoksessa, esimerkiksi kemiallisella reaktiolla, ·« jossa vapautuu kaasua, esimerkiksi hajottamalla liuennutta karbonaattia tai vetykarbonaattia hapolla.
t
Otaksutaan, että kun laminarisoituja pinta-aktiivi- i i < suusaineita suspendoidaan vesipitoiseen nestemäiseen kan-, /, 35 tajaan ja syötetään ilmaa tai muuta kaasua mikrokuplien 11 1 15953 muodostamiseksi, mikrokuplat tulevat vähitellen ympäröidyiksi ja stabiloiduiksi pinta-aktiivisuusainemolekyyleis-tä koostuvalla yksimolekyylikerroksella eikä kaksoisker-roksella kuten liposomirakkuloiden ollessa kyseessä. Tämä 5 pinta-aktiivisuusainemolekyylien rakenteellinen uudelleen- järjestyminen voidaan aktivoida mekaanisesti (sekoittamalla) tai termisesti. Tarvittava energia on pienempi koheesiota vähentävien aineiden, kuten PluronicinR, läsnä ollessa. Toisaalta koheesiota vähentävien aineiden läsnäolo 10 mikrokuplaformuloissa heikentää fosfolipidimolekyylien välistä luontaista affiniteettia, minkä suorana seurauksena on mikrokuplien heikentynyt kyky kestää ulkopuolista painetta [esimerkiksi yli 2,7 - 4,0 kPa (20 - 30 torria)].
Kuten jo mainittiin, keksinnön mukaisten fosfolipi-15 dipitoisuudeltaan alhaisten suspensioiden valmistamiseksi voidaan fosfolipidiliuosten sijasta lähteä kuivista fosfo-lipideistä, jotka voivat olla lamellarisoituja tai lamel-larisoimattomia. Mainitunlaisia lamellarisoituja fosfoli-pidejä voidaan valmistaa esimerkiksi poistamalla vettä 20 liposomeista, ts. dehydratoimalla tavanomaisin keinoin liposomeja, joita on valmistettu tavanomaisin menetelmin vesiliuosten muodossa. Yksi menetelmistä liposomien dehyd-: '· ratoimiseksi on kylmäkuivaus (lyofilisointi), ts. edulli- sesti hydrofiilisiä yhdisteitä sisältävän liposomiliuoksen * i ‘'i 25 pakastaminen ja kuivaus haihduttamalla (sublimoimalla) alipaineessa.
Yhden toisen lähestymistavan mukaan voidaan valmis-\ taa lamellarisoimattomia tai laminarisoimattomia fosfoli- pidejä liuottamalla fosfolipidi orgaaniseen liuotteeseen . 30 ja kuivaamalla liuos käymättä läpi liposomien muodostusta.
W ‘ Tämä voidaan toisin sanoen tehdä liuottamalla fosfolipidit t t sopivaan orgaaniseen liuotteeseen yhdessä hydrofiilisen ' /. stabiloivan aineen, esimerkiksi polymeerin, kuten PVP:n, PVA:n, PEG:n jne., tai sekä orgaaniseen liuotteeseen että ’ 35 veteen liukenevan yhdisteen kanssa ja kylmäkuivaamalla tai 12 115553 suihkukuivaamalla liuos. Muita esimerkkejä veteen ja orgaaniseen liuotteeseen liukenevista hydrofiilisistä stabiloivista yhdisteistä ovat omenahappo, glykolihappo, maltoit yms. Mitä tahansa sopivaa orgaanista liuotetta voidaan 5 käyttää, kunhan sen kiehumispiste on riittävän alhainen ja sulamispiste riittävän korkea myöhemmän kuivauksen helpottamiseksi. Tyypillisiä orgaanisia liuotteita olisivat esimerkiksi dioksaani, sykloheksanoli, tertiaarinen butanoli, tetraklooridifluorieteeni (C2C14F2) tai 2-metyyli-2-butano-10 li; edullisia ovat kuitenkin tertiaarinen butanoli, 2-me-tyyli-2-butanoli ja C2C14F2. Tässä variaatiossa hydrofiili-sen stabilointiaineen valintakriteerinä on liukoisuus valittuun orgaaniseen liuotteeseen. Mainitunlaisista jauheista valmistetaan mikrokuplasuspensioita käyttämällä sa-15 moja vaiheita kuin laminarisoiduista fosfolipideistä koostuvien jauheiden yhteydessä.
Ennen ennalta lamellarisoidun tai laminarisoidun fosfolipidin liuoksen kylmäkuivausta liuotetaan siihen vastaavasti hydrofiilistä stabiloivaa yhdistettä. Hydro-20 fiilisten stabilointiaineiden valikoima on tällöin kuitenkin paljon suurempi, sillä voidaan käyttää hiilihydraattia, kuten laktoosia tai sakkaroosia, samoin kuin hydro-,·. fiilistä polymeeriä, kuten dekstraania, tärkkelystä, PVPrtä, PVA:ta. PEG:tä yms. Tämä on hyödyllistä tämän kek- , . 25 sinnön yhteydessä, sillä mainitunlaiset hydrofiiliset yh- » · * ' ; disteet auttavat myös mikrokuplien kokojakautuman homoge- ·;** noinnissa ja parantavat stabiiliutta varastoinnin aikana.
'·’ ‘ Itse asiassa kylmäkuivattujen fosfolipidien hyvin laimei den vesiliuosten (0,0001 - 0,01 paino-%) valmistaminen, ·,· 30 jotka on stabiloitu esimerkiksi polyeteeniglykolilla, jota : : käytetään painosuhteessa 10:1 - 1 000:1 lipidiin nähden, [ antaa mahdollisuuden valmistaa stabiileja mikrokuplavesi- suspensioita, jotka sisältävät 109 - 1010 kuplaa/ml (koko- I | *; jakautuma pääasiassa alueella 0,5 - 10 pm) ja joissa ei 35 tapahdu merkitsevää havaittavissa olevaa muutosta pitkään- 115953 13 kään säilytettäessä. Tämä saadaan aikaan yksinkertaisesti liuottamalla ilmassa säilytetyt kuivatut laminarisoidut fosfolipidit ilman ravistelua tai muuta voimakasta sekoitusta. Alipaineessa tehtävä kylmäkuivaus on hyvin käyttö-5 kelpoinen menetelmä, koska se mahdollistaa kuivattujen jauheiden yllä vallitsevan paineen palauttamisen käyttämällä mitä tahansa fysiologisesti hyväksyttävää kaasua, ts. typpeä, C02:a, argonia, metaania, freoneja, SF6:a, CF4:a jne., jolloin tällaisissa olosuhteissa käsiteltyjen 10 fosfolipidien uudelleendispergoinnin jälkeen saadaan edellä mainittuja kaasuja sisältäviä mikrokuplasuspensioita.
On havaittu, että tämän keksinnön yhteydessä kätevät pinta-aktiivisuusaineet voidaan valita amfapaattisten yhdisteiden joukosta, joilla on kyky muodostaa stabiileja 15 kalvoja veden ja kaasujen läsnä ollessa. Edullisiin pinta-aktiivisuusaineisiin kuuluvat lesitiinit (fosfatidyyliko-liini) ja muut fosfolipidit, mm. fosfatidiinihappo (PA), fosfatidyyli-inositoli, fosfatidyylietanoliamiini (PE), fosfatidyyliseriini (PS), fosfatidyyliglyseroli (PG), kar-20 diolipiini (CL) ja sfingomyeliinit. Esimerkkejä sopivista fosfolipideistä ovat luonnon tai synteettiset lesitiinit, kuten kananmuna- tai soiijapapulesitiini, tai tyydyttyneet ·, synteettiset lesitiinit, kuten dimyristoyylifosfatidyyli- \ koliini, dipalmitoyylifosfatidyylikoliini, distearoyyli- 25 fosfatidyylikoliini tai diarakidoyylifosfatidyylikoliini, ' tai tyydyttymättömät synteettiset lesitiinit, kuten diole- yylifosfatidyylikoliini tai dilinoleyylifosfatidyylikolii-’·’ * ni, joista edullisia ovat tyydyttyneet lesitiinit.
Lisäaineita, kuten kolesterolia ja muita aineita, ·,* ; 30 voidaan lisätä yhteen tai useampaan edellä mainituista * lipideistä osuudeksi 0-50 paino-%. Mainitunlaisiin lisä- ’· aineisiin voivat kuulua muut ei-fosfolipidipinta-aktiivi- .'!! suusaineet, joita voidaan käyttää seoksena kalvon muodos- ;· tavien pinta-aktiivisuusaineiden kanssa ja joista useimmat 35 ovat tunnettuja. Esimerkkejä ovat sellaiset yhdisteet kuin 115953 14 polyoksipropeeniglykoli ja polyoksieteeniglykoli samoin kuin niiden erilaiset kopolymeerit, fosfatidyyliglyseroli, fosfatidiinihappo, disetyylifosfaatti, rasvahapot, ergo-steroli, fytosteroli, sitosteroli, lanosteroli, tokofero-5 li, propyyligallaatti, askorbyylipalmitaatti ja butyloity hydroksitolueeni. Näiden kalvoa muodostamattomien pinta-aktiivisuusaineiden määrä on tavallisesti korkeintaan 50, mutta edullisesti 0-30 paino-% pinta-aktiivisuusaineiden kokonaismäärästä. Tämäkin merkitsee sitä, että erilaisten 10 lisäaineiden pitoisuus keksinnön mukaisissa vähän fosfoli-pidejä sisältävissä suspensioissa on alueella 0 - 0,05 %, mikä on yli sata kertaa vähemmän kuin tähän asti tunnetuissa koostumuksissa.
Tulisi myös mainita, että keksinnön mukaisten sus-15 pensioiden yhtenä muuna piirteenä on mikrokuplien suhteellisen "korkea" kaasunsitomiskapasiteetti, ts. pinta-aktii-visuusaineen määrän ja sisään suljetun kaasun kokonaismäärän edullinen suhde. Niinpä alustavasti arvioidaan, että sellaisten suspensioiden ollessa kyseessä, joissa mikro-20 kuplien koko on alueella 1-5 pm, kaasukuplan ja nesteen rajapinnalla olevien fosfolipidien painon suhde sisään :\ suljetun kaasun tilavuuteen on standardiolosuhteissa 0,1 - 100 mg/ml.
» » · Käytännössä kaikkien injektiokoostumusten tulisi 25 olla myös mahdollisimman isotonisia veren kanssa. Niinpä keksinnön mukaisiin suspensioihin voidaan ennen injektoin-.; tia lisätä pieniä määriä isotonisia aineita. Isotoniset ’ ’ aineet ovat lääketieteessä yleisesti käytettäviä fysio logisia liuoksia ja niihin kuuluvat ruokasuolan vesi-: : , 30 liuos (0,9 % NaCl:a), 2,6-%:inen glyseroliliuos, 5-%:inen dekstroosiliuos jne.
Keksintö koskee lisäksi menetelmää patenttivaati-;;; muksen 1 mukaisten stabiilien mikrokuplasuspensioiden val- mistamiseksi, jotka ovat käyttökelpoisia varjoaineina ult-: 35 raäänikaikukuvauksessa. Periaatteessa menetelmä käsittää 115953 15 fosfolipidipitoisuuden säätämisen mainituilla fosfolipi-deillä stabiloidussa mikrokuplasuspensiossa valittuun, patenttivaatimuksissa esitettyjen rajojen sisällä olevaan arvoon. Tavallisesti lähdetään mikrokuplasuspensiosta, jo-5 ka sisältää haluttua enemmän fosfolipidejä, ja pienennetään mainittujen fosfolipidien määrää suhteessa mikrokup-lien sisään suljetun kaasun tai ilman tilavuuteen pienentämättä olennaisesti kaiun synnyttävien kuplien lukumäärää. Tämä voidaan tehdä esimerkiksi poistamalla kantaja-10 nesteestä osia, jotka sisältävät fosfolipidejä, jotka eivät suoraan ole mukana ilman ja nesteen välisellä rajapinnalla, ja laimentamalla suspensiota tuoreella kantajanes-teellä. Tämän tekemiseksi suspensioon voidaan muodostaa alue (a), jolle kaiun synnyttävät kuplat kerääntyvät, ja 15 alue (b), joka on olennaisesti laimentunut mainittujen suhteen. Alueella (b) olevaa nestettä voidaan sitten poistaa tekemällä erotus tavanomaisin keinoin (dekantointi, juoksutus lapolla jne.), ja suspensioon lisätään täydennykseksi vertailukelpoinen määrä tuoretta kantajanestettä. 20 Tämä toimenpide voidaan toistaa kerran tai useammin, jolloin kuplien stabilointiin suoraan osallistumattomien fosfolipidien pitoisuus laskee progressiivisesti.
• ·
Yleensä ei ole toivottavaa saada aikaan niiden fos-folipidimolekyylien täydellistä poistumista, jotka eivät ,, 25 ole kuplan kaasu-nesterajapinnalla, koska tuloksena voi • ·’ olla jonkinasteinen poikkeaminen tasapainotilasta, ts. jos ·*.; poisto viedään liian pitkälle, voivat jotkut kaasu-neste- ·.* * rajapinnalla olevat pinta-aktiivisuusainemolekyylit irro ta, mistä on seurauksena kuplan destabiloituminen. Kokeet j :: 30 ovat osoittaneet, että kantajanesteen fosfolipidipitoisuus voidaan alentaa lähelle patenttivaatimuksissa esitettyä alarajaa ilman merkittäviä ominaisuusmuutoksia ja haitta-;;; vaikutuksia. Tämä tarkoittaa, että optimaalisen fosfolipi- ’···’ dipitoisuuden (annettujen rajojen sisällä) sanelee ennem- 35 minkin käytön tyyppi, ts. jos suhteellisen suuret fosfoli- 16 1 15953 pidipitoisuudet ovat hyväksyttäviä, ihanteellinen pitoisuus on lähellä alueen ylärajaa. Jos diagnosoitavan potilaan tilan mukaisesti fosfolipidien absoluuttista määrää täytyy toisaalta pienentää edelleen, tämä voidaan tehdä 5 ilman haittavaikutuksia mikrokuplien lukumäärään ja eko-geenisyystehoon.
Keksinnön yksi suoritusmuoto käsittää kalvon muodostavan pinta-aktiivisuusaineen valitsemisen ja sen muuttamisen lamellaariseen muotoon käyttämällä jotakin alalla 10 tunnetuista tai edellä esitetyistä menetelmistä. Pinta-ak-tiivisuusaine saatetaan sitten kosketukseen ilman tai muun kaasun kanssa ja sekoitetaan vesipitoisen nestemäisen kantajan kanssa suljetussa säiliössä, jolloin muodostuu mik-rokuplasuspensio. Suspension annetaan seistä hetki ja muo-15 dostuneita kaasun täyttämiä mikrokuplia sisältävän kerroksen annetaan nousta säiliön yläosaan. Sitten poistetaan alempi osa emäliuoksesta ja mikrokuplasupernatanttikerros pestään mikrokuplien valmistukseen käytetyllä kaasulla kyllästetyllä vesiliuoksella. Tämä pesu voidaan toistaa 20 muutamia kertoja, kunnes suurin piirtein kaikki käyttämättömät eli vapaat pinta-aktiivisuusainemolekyylit on pois-·, tettu. Käyttämättömät eli vapaat molekyylit tarkoittaa kaikkia pinta-aktiivisuusainemolekyylejä, jotka eivät osallistu stabiloivan yksimolekyylikerroksen muodostami-25 seen kaasumikrokuplien ympärille.
• ·' Sen lisäksi, että tällä pesumenetelmällä saadaan fosfolipidipitoisuudeltaan pieniä suspensioita, se tarjoaa v · sen lisäedun, että se mahdollistaa keksinnön mukaisten suspensioiden puhdistamiseen edelleen poistamalla kaikki i : : 30 tai lähes kaikki mikrokuplat, joiden myötävaikutus injek- toidun suspension kaikukuvausvasteeseen on suhteellisen merkityksetön. Puhdistus antaa siten tulokseksi suspen-;;; sioita, jotka käsittävät vain varta vasten valittuja mik- ·;*’ rokuplia, ts. mikrokuplia, jotka injektoinnin jälkeen : ! : 35 osallistuvat yhtä hyvin kaikukuvaussignaalien heijasta- 17 1 15953 miseen. Tämä johtaa suspensioihin, jotka eivät pelkästään sisällä hyvin pienenä pitoisuutena fosfolipidejä ja muita lisäaineita vaan ovat myös vapaita mahdollisista mikrokup-lista, jotka eivät aktiivisesti osallistu kuvantamispro-5 sessiin.
Tämä menetelmän yhdessä variaatiossa pinta-aktiivi-suusaine, joka voi mahdollisesti olla lamellaarisessa muodossa, sekoitetaan vesipitoisen nestemäisen kantajan kanssa ennen saattamistaan kosketukseen ilman tai muun kaasun 10 kanssa.
Piirustusten lyhyt kuvaus
Kuvio 1 on graafinen esitys kaikukuvausvasteista mikrokuplapitoisuuden funktiona juuri valmistetun keksinnön mukaisen suspension ollessa kyseessä.
15 Suspensioita ja menetelmää keksinnön mukaisten fos- folipidipitoisuudeltaan alhaisten suspensioiden valmistamiseksi valaistaan lisää seuraavin esimerkein.
Esimerkki 1
Valmistettiin multilamellaarisia rakkuloita (MLV; 20 multilamellar vesicle) liuottamalla 240 mg diarakidoyyli-fosfatidyylikoliinia (DAPC, Avanti Polar Lipids) ja 10 mg dipalmitoyylifosfatidiinihappoa (DPPA, happomuoto, Avanti Polar Lipids) 50 ml:aan heksaanin ja etanolin seosta (tilavuussuhteessa 8:2) ja haihduttamalla sitten liuotteet 25 kuiviin pyöreäpohjaisessa pullossa käyttämällä pyöröhaihdutinta. Jäljelle jäänyt lipidikalvo kuivattiin vakuumiek-sikkaattorissa. Kun oli lisätty vettä (5 ml), suspensiota v ·' inkuboitiin 30 min lämpötilassa 90 °C sekoittaen. Tulokse na olevat MLV:t suulakepuristettiin lämpötilassa 85 °C ; 30 0,8 pm polykarbonaattisuodattimen (NucleporeR) läpi . Li- sättiin 2,6 ml tuloksena olevaa MLV-valmistetta 47,4 ml:aan liuosta, joka sisälsi 167 mg/ml dekstraania (M = 10 000, Fluka) vedessä. Tuloksena oleva liuos sekoitettiin ’·»·* perusteellisesti, siirrettiin 500 ml:n pyöreäpohjäiseen : 35 pulloon, pakastettiin lämpötilassa -45 °C ja kylmäkuivat- 18 11E9E3 tiin paineen 13 Pa (0,1 torria) alaisena. Jään täydellinen sublimoituminen saatiin aikaan kuivaamalla yön yli. Sen jälkeen tyhjäksi imettyyn säiliöön palautettiin paine ilmalla. Erilaisia määriä tuloksena olevaa jauhetta laitet-5 tiin lasipulloihin (katso taulukko) ja pullot suljettiin kumitulpilla. Pulloista poistettiin ilma alipaineen avulla tulpan läpi työnnetyn neulan kautta. Ilman poistamisen jälkeen jauhe saatettiin rikkiheksafluoridikaasun, SF6, vaikutuksen alaiseksi.
10 Kuplasuspensioita valmistettiin injektoimalla ku hunkin pulloon (tulpan kautta) 10 ml liuosta, joka sisälsi 3 % glyserolia vedessä, minkä jälkeen tehtiin varovainen sekoitus. Tuloksena oleville mikrokuplasuspensioille tehtiin laskenta käyttämällä hemasytometriä. Keskimääräinen 15 kuplakoko (tilavuuden mukaan määritettynä) oli 2,2 pm.
Kuivapaino Fosfolipidipitoisuus Pitoisuus (mg/ml) (pg/ml) (kuplaa/ml) 20 0,5 8 9,0«106 1 16 1,3»107 5 81 7,0·107 10 161 1,4.10® 25 Valmisteita injektoitiin kaniineihin (kaulalaskimon kautta) samoin kuin pienikokoisiin sikoihin (korvalaskimon kautta) annostuksen ollessa 1 ml/5 kg. Tehtiin in vivo V ‘ -kaikukuvausmittauksia käyttämällä Acuson XP128 -ultraää ni järjestelmää (Acuson Corp., USA) ja 7 MHz:n sektoriantu-30 ria. Eläimet nukutettiin ja anturi sijoitettiin ja kiinnitettiin paikalleen rinnan vasemmalle puolelle, niin että saatiin kuva sydämen oikeasta ja vasemmasta kammiosta kaniinien ollessa kyseessä ja pituussuuntainen nelikammioku-va pienikokoisen sian ollessa kyseessä. Valmiste, jossa 35 kuiva-ainepitoisuus oli 0,5 mg/ml, antoi tulokseksi oikean 19 115953 samoin kuin vasemman kammion lievän opasiteetin kasvun kaniineissa ja pienikokoisissa sioissa. Opasiteetin kasvu oli kuitenkin parempi valmisteilla, joissa pitoisuudet olivat 1, 5 ja 10 mg/ml.
5 Esimerkki 2
Valmistettiin esimerkissä 1 kuvatulla tavalla lyo-filisaatteja käyttämällä ilmaa (SF6:n sijasta) kaasufaasissa. Lyofilisaatit suspendoitiin sitten 0,9-%:iseen keitto-suolaliuokseen (3-%risen glyseroliliuoksen sijasta). Saa-10 tiin samanlaisia kuplapitoisuuksia. Kaniiniin tai pienikokoiseen sikaan injektoinnin jälkeen vaikutuksen kesto oli kuitenkin lyhyempi, esimerkiksi 10 - 20 s 120 s:n sijasta. Lisäksi vasemman kammion opasiteetin kasvu oli pienikokoisessa siassa heikkoa jopa valmisteella, jossa pitoisuus 15 oli 10 mg/ml.
Esimerkki 3
Valmistettiin MLV-liposome ja esimerkissä 1 kuvatulla tavalla käyttämällä 240 mg DAPCrtä ja 10 mg DPPArta (moolisuhde 95:5). Lisättiin 1 ml tätä valmistetta 20 20 ml:aan polyeteeniglykoli (PEG 2000) -liuosta (82,5 mg/ml). Kun oli sekoitettu 10 min huoneenlämpötilassa, tuloksena oleva liuos pakastettiin pitämällä sitä 5 min lämpötilassa -45 °C ja kylmäkuivattiin 5 tuntia paineen 20 Pa (0,2 mbar) alaisena. Saatu jauhe (1,6 g) siirrettiin kumitul-25 palla varustettuun lasipulloon. Jauhe saatettiin SF6:n vaikutuksen alaiseksi (esimerkissä 1 kuvatulla tavalla) ja liuotettiin sitten 20 ml:aan tislattua vettä. Saadun sus-pension kuplapitoisuus oli 5·109 kuplaa/ml ja kuplien tila-vuusmediaaninen läpimitta oli 5,5 pm. Tämä suspensio lai-• 30 tettiin 20 ml:n ruiskuun, ruisku suljettiin ja jätettiin vaakasuoraan asentoon 24 tunniksi. Ruiskussa olevan liuoksen pinnalla oli nähtävissä valkoinen kuplakerros. Suurin osa nestefaasista (noin 16 - 18 ml) poistettiin pitäen '···’ ruisku vaaka-asennossa ja lisättiin vastaava määrä tuoret- 35 ta SF6:lla kyllästettyä vettä. Ruiskua ravistettiin sitten 20 1 15953 hetki kuplien homogenoimiseksi vesifaasiin. Tehtiin toinen dekantointi samoissa olosuhteissa 8 tunnin kuluttua, minkä jälkeen tehtiin vielä kolme dekantointia 4 tunnin välein. Lopullinen kuplafaasi (erä P145) suspendoitiin 3 ml:aan 5 tislattua vettä. Se sisälsi 1,8·109 kuplaa/ml, ja kuplien tilavuusmediaaninen läpimitta oli 6,2 pm. Annos tätä suspensiota (2 ml) kylmäkuivattiin 6 tunnissa paineen 20 Pa (0,2 mbar) alaisena. Tuloksena oleva jauhe liuotettiin 0,2 ml:aan tetrahydrofuraanin ja veden seosta (tilavuus-10 suhteessa 9:1) ja tässä liuoksessa olevat fosfolipidit analysoitiin HPLC:llä käyttämällä valonsirotusdetektoria. Tämä liuos sisälsi 0,7 mg/ml DAPC:tä, mikä vastaa fosfoli-pidimäärää 3,9 pg/108 kuplaa. Erän P145 todellisen kuplakoko j akautuman analysointi Coulter-laskurilla antoi koko-15 naispinta-alaksi 4,6·107 pm2/108 kuplaa. Kun oletetaan, että yhden DAPC-molekyylin viemä pinta-ala on 50 A2, voidaan laskea, että tarvittaisiin 1,3 pg DAPC:tä 108 kuplaa kohden fosfolipidiyksimolekyylikerroksen muodostamiseksi kunkin kuplan ympärille. P145-suspensio jätettiin sitten seiso-20 maan lämpötilassa 4 °C ja mitattiin kaasukuplapitoisuutta säännöllisesti. Tuote näytti 10 vuorokauden kuluttua yhtä hyvältä kuin valmistuksensa jälkeen ja sisälsi vielä , (1 - 1,2)·109 kuplaa/ml. Poikkeuksellinen stabiilius ha- *’ vaittiin hyvin yllättäväksi, kun otetaan huomioon fosfoli- 25 pidien äärimmäisen pieni määrä suspensiossa.
Edellä kuvattu koe toistettiin toisella mikrokupla-' * * erällä käyttämällä lyhyempää dekantointiaikaa ensisijai- : sesti suurempien kuplien saamiseksi talteen (erä P132).
Tilavuusmediaaninen läpimitta oli 8,8 pm ja Coulter-lasku-: 30 rilla määritetty kokonaispinta-ala 22· 10® pm2/108 kuplaa.
.·' . Laskelmat osoittivat, että tarvittaisiin 6 pg DAPC:tä 108 ^ kuplaa kohden tämän kuplapopulaation peittämiseksi DAPC- yksimolekyylikerroksella. Todellinen DAPC-määrä oli HPLC:llä määritettynä 20 pg/108 kuplaa. Kun otetaan huo-·'; 35 mioon, miten vaikea on saada tarkkoja arvioita kuplapopu- 21 1 15953 laation kokonaispinta-alasta, näyttää siltä, että saadut tulokset sopivat kokeellisen virheen puitteissa yhteen sen kanssa, että mikrokuplia peittää yksi fosfolipidikerros.
Erilaisilla pestyillä kuplavalmisteilla tehdyt kai-5 kukuvausmittaukset osoittivat, että alempi faasi antaa erotuksen jälkeen paljon heikomman kaikukuvaussignaalin kuin ylempi faasi tai juuri valmistettu näyte. Ensi silmäyksellä tämä näytti normaalilta, koska ruiskun yläosassa oleva valkea kerros sisälsi joka tapauksessa pääosan kaa-10 sumikrokuplista. Kuten kuvio 1 osoittaa, kuplamäärä osoitti kuitenkin yllättävän suuren mikrokuplapopulaation olemassaolon myös alemmassa kerroksessa. Vasta Coulter-mit-tauksessa kävi ilmi, että mikrokuplien koko oli alle 0,5 pm, mikä osoittaa, että pienten kuplien yhteydessä ei 15 tapahdu ultraäänisignaalin riittävää heijastusta, vaikka kuplapitoisuus olisi suurikin.
Valmistetta P132 injektoitiin nelinkertaisena laimennoksena 3-%:isessa glyseroliliuoksessa pienikokoiseen sikaan (0,2 ml/kg). Pestyjä kuplia käsittävä valmiste, jo-20 ka sisälsi 2,5·107 kuplaa/ml ja 5 pg/ml fosfolipidejä, antoi tulokseksi erinomaisen opasiteetin kasvun vasemmassa ja oikeassa kammiossa ja sydämensisäisten rajojen erinomaisen näkymisen. Hyvä opasiteetin kasvu saatiin aikaan myös injektoimalla pienoissikaan annos valmistetta P145 l| ' 25 (laimennettuna 3-%:isella glyseroliliuoksella), joka vas tasi fosfolipidimäärää 0,2 pg/kg. Kontrasti oli havaitta-vissa vasemmassa kammiossa jopa annoksen 0,02 pg/kg injek-; : toinnin jälkeen. Lisäksi kontrastivaikutuksen olemassaolo oli havaittavissa pulssi-Dopplerilla munuaisvaltimossa 30 niinkin pienillä fosfolipidiannoksilla kuin 0,005 pg/kg.
Voidaan päätellä, että kunhan laminarisoidut fosfo- t I i < lipidit ovat järjestyneinä yhdeksi yksimolekyylikerroksek- » » * ’si kaasumikrokuplien ympärille, saaduilla suspensioilla on ·... riittävä stabiilius. Siten saadaan selitys keksinnön mu- \ 35 kaiselle odottamattomalle havainnolle ja osoitetaan, ettei 22 1 15953 fosfolipidimäärän tarvitse olla suurempi kuin määrä, joka tarvitaan yksimolekyylikerroksen muodostamiseen suspensiossa olevien mikrokuplien ympärille.
Esimerkki 4 5 Valmistettiin liuos, joka sisälsi 48 mg DAPCrtä ja 2 mg DPPArta, heksaanin ja etanolin seokseen (tilavuussuhde 8:2) ja haihdutettiin liuote kuiviin (esimerkissä 1 kuvatulla tavalla). Liuotettiin 5 mg tuloksena olevaa jauhetta ja 375 mg polyeteeniglykolia 5 g:aan t-butanolia 10 lämpötilassa 60 °C. Kirkas liuos jäähdytettiin sitten nopeasti lämpötilaan -45 °C ja kylmäkuivattiin. 80 mg lyofi-lisaattia laitettiin lasipulloon ja jauhe saatettiin SF6:n vaikutuksen alaiseksi (katso esimerkki 1). Sitten pulloon lisättiin 3-%:ista glyseroliliuosta (10 ml) ja lyofili-15 saatti liuotettiin varovasti pyörittäen. Tuloksena olevassa suspensiossa oli 1,5·108 kuplaa/ml, ja kuplien tilavuus-mediaaninen läpimitta oli 9,5 pm. Tämä liuos injektoitiin kaniiniin, jolloin saatiin erinomaisia kuvia oikeasta ja vasemmasta kammiosta. Tämä suspensio paransi voimakkaasti 20 kontrastia jopa kymmenkertaisesti laimennettuna.
Esimerkki 5
Toistettiin esimerkin 4 mukainen menettely, paitsi '* että jätettiin pois alussa tehty fosfolipidien liuotus • ·’ heksaani-etanoliliuokseen. Raakafosfolipidit liuotettiin * ‘ 25 toisin sanoen yhdessä polyeteeniglykolin kanssa t-butano- liin ja liuos kylmäkuivattiin; jäännös suspendoitiin sen , J* jälkeen veteen. Näissä kokeissa tutkittiin muutamia fosfo- ; : lipidejä ja fosfolipidien yhdistelmiä muiden lipidien kanssa. Seuraavassa taulukossa esitettävien tulosten ol-30 lessa kyseessä fosfolipidit liuotettiin t-butanoliliuok-, , seen, joka sisälsi 100 mg/ml PEG 2000:a. Kylmäkuivausjään nökset kyllästettiin SF6:lla (katso esimerkki 1) ja liuo-' tettiin sitten tislattuun veteen siten, että kuiva-ainepi- ·...· toisuudeksi tuli 100 mg/ml.
115953 23
Lipidiseos Pitoisuus t- Kuplapi- Mediaani- (painosuhde) butanolissa toisuus läpimitta (mg/ml) (‘109/ml) (pm) 5 DSPC 2 1,3 10 DAPC/DPPC (100:4) 2 3,8 7 DSPC/kol. (2:1) 6 0,1 40 DAPC/Plur. F68 (2:1) 6 0,9 15 DAPC/palm.h. (60:1) 2 0,6 11 10 DAPC/DPPA (100:4) 1 2,6 8 DAPC/kol./DPPA (8:1:1) 8 1,2 19 DAPC/DPPA (100:4)* 5 2,4 18
Selitys: 15 DAPC = diarakidoyylifosfatidyylikoliini DSPC = distearoyylifosfatidyylikoliini DPPG = dipalmitoyylifosfatidyyliglyseroli (happomuoto) DPPA = dipalmitoyylifosfatidiinihappo kol. = kolesteroli 20 palm.h. = palmitiinihappo
Plur. F68 = PluronicR F-68 * Tässä kokeessa käytettiin CF4:a kaasuna SF6:n sijasta » · ·' Saatujen suspensioiden mikrokuplapitoisuus oli kai- • 25 kissa tapauksissa suuri, mikä osoittaa, ettei fosfolipi- dien muuttaminen alussa liposomeiksi ollut välttämätöntä. Nämä suspensiot laimennettiin NaCl-liuoksella (1,15 mol/1) ja niitä injektoitiin pienikokoisiin sikoihin esimerkissä 3 kuvatulla tavalla. Kaikissa tapauksissa saatiin aikaan : 30 erinomainen opasiteetin kasvu oikeassa ja vasemmassa kam miossa samoin kuin sydämensisäisten rajojen erinomainen näkyminen lipidiannoksen ollessa 10 - 50 pg/painokilo tai * > * ' : pienempi.
2i 1 ΐΓοκχ
Esimerkki 6 PEG 2000 (2 g), DAPC (9,6 mg) ja DPPA (0,4 mg) liuotettiin 20 ml:aan t-butanolia ja liuosta kylmäkuivat-tiin yön yli paineen 20 Pa (0,2 mbar) alaisena. Saatu jau-5 he saatettiin SF6:n vaikutuksen alaiseksi ja liuotettiin sitten 20 ml:aan tislattua vettä. Suspensio, joka sisälsi 1,4·109 kuplaa/ml (määritettynä hemasytometrisesti), laitettiin ruiskuun, joka suljettiin ja jätettiin vaaka-asentoon 16 tunniksi. Liuoksen pinnalla oli nähtävissä valkoi-10 nen kuplakerros. Alempi faasi (16 - 18 ml) poistettiin pitäen ruisku vaaka-asennossa. Ruiskuun imettiin yhtä suuri tilavuus tuoretta SF6:lla kyllästettyä tislattua vettä ja kuplat homogenoitiin vesifaasiin sekoittamalla. Saatiin kaksi erilaista mikrokuplapopulaatiota, ts. kooltaan suu-15 ria ja keskinkertaisia kuplia, toistettaessa dekantointeja lyhyen ajan kuluessa; suuria kuplia saatiin talteen vain 10 - 15 min:n kuluttua ja keskikokoisia kuplia 30 - 45 min:n kuluttua. Näitä dekantointeja toistettiin 10 kertaa näiden kahden populaatiotyypin kapeiden kuplakokojakautu- 20 mien aikaansaamiseksi ja kaikkien mikrokupliin liittymättömien fosfolipidien poistamiseksi. Kaikki suuria kuplia sisältävät faasit yhdistettiin ("suuret kuplat"). Vastaavasti yhdistettiin keskikokoisia kuplia sisältävät fraktiot ("keskikokoiset kuplat"). Osia näistä kahdesta kup-25 lapopulaatiosta kylmäkuivattiin ja analysoitiin sitten ; ' HPLC:llä kussakin fraktiossa läsnä olevien fosfolipidien määrän määrittämiseksi. Suuria kuplia käsittävä fraktio v : sisälsi 2,5·107 kuplaa/ml, joiden lukumediaaninen läpimitta 011 3,1 pm, ja 1,6 pg fosfolipidejä 107 kuplaa kohden. Vii- • ; : 30 meksi mainittu arvo sopii jälleen erinomaisesti yhteen : ; teoreettisen määrän, 1,35 pg 107 kuplaa kohden, kanssa.
Nämä tulokset osoittavat lisäksi, että tässä esitettyjen I > i mikrokuplasuspensioiden stabiilius johtuu todennäköisesti *··’ fosfolipidiyksimolekyylikerrosten muodostumisesta mikro- 35 kuplien ympärille.

Claims (22)

115953
1. Injektoitavissa oleva, kaasulla täytettyjä mik-rokuplia vesipitoisessa kantajanesteessä sisältävä suspen- 5 sio, joka on käyttökelpoinen varjoaineena ultraäänikaikuku-vauksessa ja käsittää vähintään 107 mikrokuplaa millilitraa kohden ja amfipaattisia yhdisteitä, joista vähintään yksi on mikrokuplien kokoonpainumista estävä fosfolipidistabi-lointiaine, tunnettu siitä, että kantajanesteen 10 fosfolipidipitoisuus on pienempi kuin 0,01 paino-% ja vähintään pitoisuus, jonka vallitessa fosfolipidimolekyylejä on läsnä vain kaasumikrokuplan ja nesteen välisellä rajapinnalla.
2. Patenttivaatimuksen 1 mukainen injektoitavissa 15 oleva suspensio, tunnettu siitä, että mikrokupla- pitoisuus on 108 - 1010 kuplaa millilitraa kohden.
3. Patenttivaatimuksen 1 mukainen injektoitavissa oleva suspensio, tunnettu siitä, että fosfolipidipitoisuus on yli 0,00013 paino-%.
4. Minkä tahansa edeltävän patenttivaatimuksen mu kainen injektoitavissa oleva suspensio, tunnettu : ·.. siitä, että nestemäinen kantaja käsittää lisäksi vesi- t : liukoisia poly- ja oligosakkarideja, sokereita ja hydrofii- lisiä polymeerejä, kuten polyeteeniglykoleja, stabilointi-25 aineina.
^ 5. Minkä tahansa edeltävän patenttivaatimuksen mu- ·;;; kainen injektoitavissa oleva suspensio, tunnettu • siitä, että fosfolipidit ovat ainakin osittain lamellaari-sessa tai laminaarisessa muodossa ja niinä tulevat kysee- • · i.i i 30 seen lesitiinit, kuten fosfatidiinihappo, fosfatidyyliko- • ♦ f liini, fosfatidyylietanoliamiini, fosfatidyyliseriini, fos-. fatidyyliglyseroli, fosfatidyyli-inositoli, kardiolipiini ,···, ja sfingomyeliini.
6. Patenttivaatimuksen 4 tai 5 mukainen injektoita-35 vissa oleva suspensio, tunnettu siitä, että se si- •*it/ sältää lisäksi aineita, jotka vaikuttavat fosfolipideihin 115953 ja joina tulevat kyseeseen fosfatidyyliglyseroli, fosfati-diinihappo, disetyylifosfaatti, kolesteroli, ergosteroli, fytosteroli, sitosteroli, lanosteroli, tokoferoli, propyy-ligallaatti, askorbyylipalmitaatti ja butyloitu hydroksito-5 lueeni.
7. Patenttivaatimuksen 1, 2 tai 3 mukainen injek toitavissa oleva suspensio, tunnettu siitä, että fosfolipidit ovat kylmäkuivauksella tai suihkukuivauksella saatujen jauheiden muodossa.
8. Patenttivaatimuksen 1 mukainen injektoitavissa oleva suspensio, tunnettu siitä, että se sisältää noin 108 - 109 mikrokuplaa millilitraa kohden ja mikrokup-lien koko on 0,5 - 10 pm ja muuttuu vähän tai ei muutu ollenkaan säilytyksen aikana.
9. Patenttivaatimuksen 1 mukainen injektoitavissa oleva suspensio, tunnettu siitä, että nestemäinen kantaja käsittää lisäksi korkeintaan 50 paino-% ei-laminaarisia pinta-aktiivisuusaineita, joina tulevat kyseeseen rasvahapot, rasvahappojen ja alkoholien esterit ja 20 eetterit polyolien, kuten polyalkeeniglykolien, polyalky- lenoitujen sokereiden ja muiden hiilihydraattien, kanssa ja polyalkylenoitu glyseroli.
10. Minkä tahansa edeltävän patenttivaatimuksen mu-...j kainen injektoitavissa oleva suspensio, tunnettu 25 siitä, että mikrokuplat täytetään SFörlla, CF^lla, freo- * · i!t neilla tai ilmalla.
'!)! 11. Menetelmä minkä tahansa patenttivaatimuksen 1 - * 10 mukaisien ilmalla tai kaasulla täytettyjä mikrokuplia sisältävien suspensioiden valmistamiseksi, jossa valitaan • · •M : 30 vähintään yksi kalvon muodostava pinta-aktiivisuusaine, :li(: muutetaan pinta-aktiivisuusaine jauheeksi, saatetaan jauhe . .·. kosketukseen ilman tai muun kaasun kanssa ja sekoitetaan jauhemainen pinta-aktiivisuusaine vesipitoisen nestemäisen kantajan kanssa, tunnettu siitä, että laitetaan 35 suspensio säiliöön, muodostetaan kaasulla täytettyjä mikro-• : kuplia käsittävä kerros säiliön yläosaan, erotetaan muodos- 115953 tettu mikrokuplakerros ja pestään mikrokuplat mikrokuplien sisältämällä kaasulla kyllästetyllä vesiliuoksella.
12. Patenttivaatimuksen 11 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että ennen muuttamistaan jauheeksi 5 kalvon muodostava pinta-aktiivisuusaine lamellarisoidaan ainakin osittain.
13. Patenttivaatimuksen 12 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että ennen saattamistaan kosketukseen ilman tai muun kaasun kanssa osittain lamellarisoitu 10 pinta-aktiivisuusaine sekoitetaan vesipitoisen nestemäisen kantajan kanssa.
14. Patenttivaatimuksen 12 tai 13 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että nestemäinen kantaja sisältää lisäksi stabiloivia yhdisteitä, joina tulevat kysee- 15 seen vesiliukoiset proteiinit, polypeptidit, sokerit, pölyjä oligosakkaridit ja hydrofiiliset polymeerit.
15. Patenttivaatimuksen 12 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että muuttaminen tehdään päällystämällä liukoisista tai liukenemattomista materiaaleista 20 koostuvat hiukkaset pinta-aktiivisuusaineella, jättämällä päällystetyt hiukkaset hetkeksi ilman tai kaasun vaikutuk-: ·.. sen alaisiksi ja sekoittamalla päällystetyt hiukkaset vesi- : pitoisen nestemäisen kantajan kanssa.
16. Patenttivaatimuksen 12 mukainen menetelmä, 25 tunnettu siitä, että muuttaminen tehdään äänikäsit- y telemällä tai homogenoimalla korkean paineen alaisena kal- von muodostavien lipidien vesiliuos, joka toimenpide johtaa • ainakin osittain liposomien muodostumiseen.
17. Patenttivaatimuksen 16 mukainen menetelmä, • · h: : 30 tunnettu siitä, että ennen ainakin osittain lamel- ·,,,' larisoidun pinta-aktiivisuusaineen saattamista kosketukseen . ilman tai muun kaasun kanssa liposomeja sisältävä liuos ,<»*, kylmäkuivataan.
18. Patenttivaatimusten 16 ja 17 mukainen menetel- 35 mä, tunnettu siitä, että kalvon muodostavien lipi- jj dien vesiliuos sisältää myös viskositeettia parantavia 115953 aineita tai stabilointiaineita, joina tulevat kyseeseen hydrofiiliset polymeerit ja hiilihydraatit ja joiden painosuhde lipideihin on 10:1 - 1 000:1.
19. Menetelmä minkä tahansa patenttivaatimuksen 1 -5 10 mukaisen ilmalla tai kaasulla täytettyjä mikrokuplia si sältävän suspension valmistamiseksi, joka suspensio käsittää kalvon muodostavaa pinta-aktiivisuusainetta, hydrofii-listä stabilointiainetta ja vesipitoista nestemäistä kantajaa, tunnettu siitä, että kalvon muodostava pinta-10 aktiivisuusaine ja hydrofiilinen stabilointiaine liuotetaan orgaaniseen liuotteeseen, kylmäkuivataan liuos, niin että muodostuu kuiva jauhe, saatetaan jauhe kosketukseen ilman tai muun kaasun kanssa ja sekoitetaan mainittu jauhe vesipitoisen kantajan kanssa.
20. Patenttivaatimuksen 19 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että hydrofiilinen stabilointiaine on polyeteeniglykoli, polyvinyylipyrrolidoni, polyvinyyli-alkoholi, glykolihappo, omenahappo tai maltoli.
21. Patenttivaatimuksen 19 tai 20 mukainen menetel-20 mä, tunnettu siitä, että orgaaninen liuote on ter- tiaarinen butanoli, 2-metyyli-2-butanoli tai C2C14F2.
22. Menetelmä patenttivaatimuksen 1 mukaisen, kaa- : sulia täytettyjä mikrokuplia sisältävän, injektoitavissa olevan suspension valmistamiseksi, tunnettu siitä, 25 että suspendoidaan vesipitoiseen nestemäiseen kantajaan la-minarisoidut fosfolipidit ja mahdollisesti muut lisäaineet, jotka mainitut fosfolipidit ovat olleet kosketuksessa mai-* ’ nitun kaasun kanssa ennen suspendointia tai sen jälkeen, sellaisissa olosuhteissa että suspensioon muodostuu mainit-: 30 tujen mikrokuplien pitoisuus, joka on riittävä kaikukuvaus- ί.,,·’ vasteen aikaansaantiin, annetaan osan mainituista fosfoli- . .·, pideistä muodostaa stabiloiva kerros mainittujen kuplien ... ympärille ja poistetaan sen jälkeen kanta j anesteestä yli- määräiset fosfolipidit, jotka eivät osallistu mikrokuplien ’·,·,· 35 stabilointiin. 29 1 15953
FI943167A 1992-11-02 1994-07-01 Stabiileja mikrokuplasuspensioita vahvistusaineiksi ultraäänikaikukuvausta varten FI115953B (fi)

Applications Claiming Priority (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP92810837 1992-11-02
EP92810837 1992-11-02
PCT/EP1993/002915 WO1994009829A1 (en) 1992-11-02 1993-10-21 Stable microbubble suspensions as enhancement agents for ultrasound echography
EP9302915 1993-10-21

Publications (3)

Publication Number Publication Date
FI943167A0 FI943167A0 (fi) 1994-07-01
FI943167A FI943167A (fi) 1994-07-01
FI115953B true FI115953B (fi) 2005-08-31

Family

ID=8212014

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FI943167A FI115953B (fi) 1992-11-02 1994-07-01 Stabiileja mikrokuplasuspensioita vahvistusaineiksi ultraäänikaikukuvausta varten

Country Status (22)

Country Link
US (7) US5445813A (fi)
EP (1) EP0619743B1 (fi)
JP (1) JP3135919B2 (fi)
KR (1) KR100216138B1 (fi)
CN (1) CN1069838C (fi)
AT (1) ATE146972T1 (fi)
AU (3) AU666238B2 (fi)
CA (1) CA2125027C (fi)
DE (2) DE69307124T2 (fi)
DK (1) DK0619743T3 (fi)
ES (1) ES2097548T3 (fi)
FI (1) FI115953B (fi)
GR (1) GR3022826T3 (fi)
HU (1) HU227043B1 (fi)
IL (1) IL107453A (fi)
IS (1) IS1625B (fi)
LU (1) LU90837I2 (fi)
NL (1) NL300061I2 (fi)
NO (1) NO308830B1 (fi)
NZ (2) NZ257115A (fi)
WO (1) WO1994009829A1 (fi)
ZA (1) ZA938117B (fi)

Families Citing this family (180)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6001335A (en) 1989-12-22 1999-12-14 Imarx Pharmaceutical Corp. Contrasting agents for ultrasonic imaging and methods for preparing the same
US5469854A (en) 1989-12-22 1995-11-28 Imarx Pharmaceutical Corp. Methods of preparing gas-filled liposomes
US6146657A (en) 1989-12-22 2000-11-14 Imarx Pharmaceutical Corp. Gas-filled lipid spheres for use in diagnostic and therapeutic applications
US5705187A (en) 1989-12-22 1998-01-06 Imarx Pharmaceutical Corp. Compositions of lipids and stabilizing materials
US5352435A (en) * 1989-12-22 1994-10-04 Unger Evan C Ionophore containing liposomes for ultrasound imaging
US5542935A (en) 1989-12-22 1996-08-06 Imarx Pharmaceutical Corp. Therapeutic delivery systems related applications
US5776429A (en) * 1989-12-22 1998-07-07 Imarx Pharmaceutical Corp. Method of preparing gas-filled microspheres using a lyophilized lipids
US5656211A (en) 1989-12-22 1997-08-12 Imarx Pharmaceutical Corp. Apparatus and method for making gas-filled vesicles of optimal size
US5733572A (en) 1989-12-22 1998-03-31 Imarx Pharmaceutical Corp. Gas and gaseous precursor filled microspheres as topical and subcutaneous delivery vehicles
US5585112A (en) 1989-12-22 1996-12-17 Imarx Pharmaceutical Corp. Method of preparing gas and gaseous precursor-filled microspheres
US6088613A (en) 1989-12-22 2000-07-11 Imarx Pharmaceutical Corp. Method of magnetic resonance focused surgical and therapeutic ultrasound
US5922304A (en) 1989-12-22 1999-07-13 Imarx Pharmaceutical Corp. Gaseous precursor filled microspheres as magnetic resonance imaging contrast agents
US5305757A (en) 1989-12-22 1994-04-26 Unger Evan C Gas filled liposomes and their use as ultrasonic contrast agents
US5773024A (en) 1989-12-22 1998-06-30 Imarx Pharmaceutical Corp. Container with multi-phase composition for use in diagnostic and therapeutic applications
US5580575A (en) 1989-12-22 1996-12-03 Imarx Pharmaceutical Corp. Therapeutic drug delivery systems
US6551576B1 (en) 1989-12-22 2003-04-22 Bristol-Myers Squibb Medical Imaging, Inc. Container with multi-phase composition for use in diagnostic and therapeutic applications
US7083778B2 (en) * 1991-05-03 2006-08-01 Bracco International B.V. Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
US5578292A (en) 1991-11-20 1996-11-26 Bracco International B.V. Long-lasting aqueous dispersions or suspensions of pressure-resistant gas-filled microvesicles and methods for the preparation thereof
US6613306B1 (en) 1990-04-02 2003-09-02 Bracco International B.V. Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
US6989141B2 (en) * 1990-05-18 2006-01-24 Bracco International B.V. Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
US20040208826A1 (en) * 1990-04-02 2004-10-21 Bracco International B.V. Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
US5445813A (en) * 1992-11-02 1995-08-29 Bracco International B.V. Stable microbubble suspensions as enhancement agents for ultrasound echography
US20010024638A1 (en) * 1992-11-02 2001-09-27 Michel Schneider Stable microbubble suspensions as enhancement agents for ultrasound echography and dry formulations thereof
IN172208B (fi) 1990-04-02 1993-05-01 Sint Sa
USRE39146E1 (en) 1990-04-02 2006-06-27 Bracco International B.V. Long-lasting aqueous dispersions or suspensions of pressure-resistant gas-filled microvesicles and methods for the preparation thereof
US20030194376A1 (en) * 1990-05-18 2003-10-16 Bracco International B.V. Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
AU636481B2 (en) * 1990-05-18 1993-04-29 Bracco International B.V. Polymeric gas or air filled microballoons usable as suspensions in liquid carriers for ultrasonic echography
GB9106686D0 (en) * 1991-03-28 1991-05-15 Hafslund Nycomed As Improvements in or relating to contrast agents
US5205290A (en) 1991-04-05 1993-04-27 Unger Evan C Low density microspheres and their use as contrast agents for computed tomography
US5874062A (en) 1991-04-05 1999-02-23 Imarx Pharmaceutical Corp. Methods of computed tomography using perfluorocarbon gaseous filled microspheres as contrast agents
US5409688A (en) * 1991-09-17 1995-04-25 Sonus Pharmaceuticals, Inc. Gaseous ultrasound contrast media
US6723303B1 (en) 1991-09-17 2004-04-20 Amersham Health, As Ultrasound contrast agents including protein stabilized microspheres of perfluoropropane, perfluorobutane or perfluoropentane
US6875420B1 (en) 1991-09-17 2005-04-05 Amersham Health As Method of ultrasound imaging
MX9205298A (es) 1991-09-17 1993-05-01 Steven Carl Quay Medios gaseosos de contraste de ultrasonido y metodo para seleccionar gases para usarse como medios de contraste de ultrasonido
GB9200388D0 (en) * 1992-01-09 1992-02-26 Nycomed As Improvements in or relating to contrast agents
IL104084A (en) 1992-01-24 1996-09-12 Bracco Int Bv Sustainable aqueous suspensions of pressure-resistant and gas-filled blisters, their preparation, and contrast agents containing them
IL108416A (en) 1993-01-25 1998-10-30 Sonus Pharma Inc Colloids with phase difference as contrast ultrasound agents
NZ262237A (en) * 1993-01-25 1997-06-24 Sonus Pharma Inc Ultrasound contrast agents comprising phase shift colloids having a boiling point below the body temperature of the animal it is used in
US5558855A (en) * 1993-01-25 1996-09-24 Sonus Pharmaceuticals Phase shift colloids as ultrasound contrast agents
US5695740A (en) * 1993-05-12 1997-12-09 The Board Of Regents Of The University Of Nebraska Perfluorocarbon ultrasound contrast agent comprising microbubbles containing a filmogenic protein and a saccharide
US5701899A (en) * 1993-05-12 1997-12-30 The Board Of Regents Of The University Of Nebraska Perfluorobutane ultrasound contrast agent and methods for its manufacture and use
US5798091A (en) * 1993-07-30 1998-08-25 Alliance Pharmaceutical Corp. Stabilized gas emulsion containing phospholipid for ultrasound contrast enhancement
PT711179E (pt) * 1993-07-30 2005-03-31 Imcor Pharmaceutical Company Composicoes de microbolhas estabilizadas para ultra-som
ES2192572T3 (es) * 1993-12-15 2003-10-16 Bracco Research Sa Medios de contraste de ultrasonidos, agentes de contraste que contienen los medios, y metodo.
DE4406474A1 (de) 1994-02-23 1995-08-24 Schering Ag Gas enthaltende Mikropartikel, diese enthaltende Mittel, deren Verwendung in der Ultraschalldiagnostik, sowie Verfahren zur Herstellung der Partikel und Mittel
US5736121A (en) 1994-05-23 1998-04-07 Imarx Pharmaceutical Corp. Stabilized homogenous suspensions as computed tomography contrast agents
US5540909A (en) * 1994-09-28 1996-07-30 Alliance Pharmaceutical Corp. Harmonic ultrasound imaging with microbubbles
US6743779B1 (en) 1994-11-29 2004-06-01 Imarx Pharmaceutical Corp. Methods for delivering compounds into a cell
US5830430A (en) 1995-02-21 1998-11-03 Imarx Pharmaceutical Corp. Cationic lipids and the use thereof
US5997898A (en) 1995-06-06 1999-12-07 Imarx Pharmaceutical Corp. Stabilized compositions of fluorinated amphiphiles for methods of therapeutic delivery
US6033645A (en) 1996-06-19 2000-03-07 Unger; Evan C. Methods for diagnostic imaging by regulating the administration rate of a contrast agent
US6231834B1 (en) 1995-06-07 2001-05-15 Imarx Pharmaceutical Corp. Methods for ultrasound imaging involving the use of a contrast agent and multiple images and processing of same
WO2004073750A1 (en) * 1995-06-07 2004-09-02 Harald Dugstad Improvements in or relating to contrast agents
US6521211B1 (en) 1995-06-07 2003-02-18 Bristol-Myers Squibb Medical Imaging, Inc. Methods of imaging and treatment with targeted compositions
US5897851A (en) * 1995-06-07 1999-04-27 Sonus Pharmaceuticals, Inc. Nucleation and activation of a liquid-in-liquid emulsion for use in ultrasound imaging
US5804162A (en) * 1995-06-07 1998-09-08 Alliance Pharmaceutical Corp. Gas emulsions stabilized with fluorinated ethers having low Ostwald coefficients
US6139819A (en) 1995-06-07 2000-10-31 Imarx Pharmaceutical Corp. Targeted contrast agents for diagnostic and therapeutic use
US5648098A (en) * 1995-10-17 1997-07-15 The Board Of Regents Of The University Of Nebraska Thrombolytic agents and methods of treatment for thrombosis
DE19602930A1 (de) * 1996-01-18 1997-07-24 Schering Ag Poröse Matrices aus niedermolekularen Substanzen zur Genierung stabiler Gasblasensuspensionen, deren Verwendung als Ultraschallkontrastmittel sowie Verfahren zu deren Herstellung
ES2197986T3 (es) * 1996-02-19 2004-01-16 Amersham Health As Mejoras introducidas en o relacionadas con agentes de contraste.
US5611344A (en) * 1996-03-05 1997-03-18 Acusphere, Inc. Microencapsulated fluorinated gases for use as imaging agents
CZ281298A3 (cs) * 1996-03-05 1999-01-13 Acusphere, Inc. Fluorované plyny v mikrokapslích jako zobrazující činidla pro ultrazvukové vyšetření
US6245747B1 (en) 1996-03-12 2001-06-12 The Board Of Regents Of The University Of Nebraska Targeted site specific antisense oligodeoxynucleotide delivery method
WO1997040679A1 (en) 1996-05-01 1997-11-06 Imarx Pharmaceutical Corp. Methods for delivering compounds into a cell
US5849727A (en) * 1996-06-28 1998-12-15 Board Of Regents Of The University Of Nebraska Compositions and methods for altering the biodistribution of biological agents
US5837221A (en) * 1996-07-29 1998-11-17 Acusphere, Inc. Polymer-lipid microencapsulated gases for use as imaging agents
ATE411055T1 (de) * 1996-08-02 2008-10-15 Ge Healthcare As Verbesserungen für oder in bezug auf kontrastmittel
US6414139B1 (en) 1996-09-03 2002-07-02 Imarx Therapeutics, Inc. Silicon amphiphilic compounds and the use thereof
US5846517A (en) 1996-09-11 1998-12-08 Imarx Pharmaceutical Corp. Methods for diagnostic imaging using a renal contrast agent and a vasodilator
ES2189974T3 (es) 1996-09-11 2003-07-16 Imarx Pharmaceutical Corp Procedimientos mejorados para la obtencion de imagenes de diagnostico usando un agente de contraste y un vasodilatador.
US6143276A (en) 1997-03-21 2000-11-07 Imarx Pharmaceutical Corp. Methods for delivering bioactive agents to regions of elevated temperatures
US6120751A (en) 1997-03-21 2000-09-19 Imarx Pharmaceutical Corp. Charged lipids and uses for the same
US6090800A (en) 1997-05-06 2000-07-18 Imarx Pharmaceutical Corp. Lipid soluble steroid prodrugs
US6537246B1 (en) 1997-06-18 2003-03-25 Imarx Therapeutics, Inc. Oxygen delivery agents and uses for the same
US5962015A (en) * 1997-05-02 1999-10-05 Kobo Products S.A.R.L. Stabilized liposomes
US6416740B1 (en) 1997-05-13 2002-07-09 Bristol-Myers Squibb Medical Imaging, Inc. Acoustically active drug delivery systems
GB9717588D0 (en) 1997-08-19 1997-10-22 Nycomed Imaging As Improvements in or relating to contrast agents
GB9717542D0 (en) 1997-08-19 1997-10-22 Nycomed Imaging As Process
US6548047B1 (en) 1997-09-15 2003-04-15 Bristol-Myers Squibb Medical Imaging, Inc. Thermal preactivation of gaseous precursor filled compositions
ZA9811087B (en) * 1997-12-04 1999-06-03 Bracco Research Sa Automatic liquid injection system and method
US6123923A (en) 1997-12-18 2000-09-26 Imarx Pharmaceutical Corp. Optoacoustic contrast agents and methods for their use
US20010003580A1 (en) 1998-01-14 2001-06-14 Poh K. Hui Preparation of a lipid blend and a phospholipid suspension containing the lipid blend
AU753196B2 (en) * 1998-02-09 2002-10-10 Bracco Research S.A. Targeted delivery of biologically active media
DE19840532A1 (de) 1998-08-28 2000-03-09 Schering Ag Mit Ultraschallkonstrastmittel gefüllte Spritze mit einer mechanischen Bewegungsvorrichtung
DE19840536A1 (de) 1998-08-28 2000-03-09 Schering Ag Mit Ultraschallkontrastmittel gefüllte Spritze mit einer magnetischen Bewegungsvorrichtung
US6187665B1 (en) * 1999-01-14 2001-02-13 Lucent Technologies, Inc. Process for deuterium passivation and hot carrier immunity
US6575930B1 (en) 1999-03-12 2003-06-10 Medrad, Inc. Agitation devices and dispensing systems incorporating such agitation devices
FR2791249B1 (fr) 1999-03-25 2001-06-15 Edap Technomed Milieu de couplage pour ultrasons de puissance
US6514209B1 (en) 1999-06-07 2003-02-04 Drexel University Method of enhancing ultrasonic techniques via measurement of ultraharmonic signals
US6210611B1 (en) * 1999-11-30 2001-04-03 Duke University Methods for producing gas microbubbles having lipid-containing shells formed thereon
EP2286843A3 (en) 2000-06-02 2011-08-03 Bracco Suisse SA Compounds for targeting endothelial cells
EP1387637B1 (en) * 2001-04-06 2007-10-31 Bracco Research S.A. Apparatus for measuring local physical parameters in a fluid filled cavity
US6855561B2 (en) * 2001-09-10 2005-02-15 Quidel Corporation Method for adding an apparent non-signal line to a lateral flow assay
US8623822B2 (en) 2002-03-01 2014-01-07 Bracco Suisse Sa KDR and VEGF/KDR binding peptides and their use in diagnosis and therapy
ES2506142T3 (es) 2002-03-01 2014-10-13 Dyax Corp. Péptidos de unión a KDR y a VEGF/KDR y su uso en diagnóstico
EP1587944A4 (en) 2002-03-01 2007-03-21 Dyax Corp KDR AND VEGF / KDR BINDING PEPTIDES AND THEIR USE FOR DIAGNOSTIC AND THERAPEUTIC PURPOSES
US7261876B2 (en) 2002-03-01 2007-08-28 Bracco International Bv Multivalent constructs for therapeutic and diagnostic applications
US7794693B2 (en) 2002-03-01 2010-09-14 Bracco International B.V. Targeting vector-phospholipid conjugates
US7211240B2 (en) 2002-03-01 2007-05-01 Bracco International B.V. Multivalent constructs for therapeutic and diagnostic applications
US20040126400A1 (en) * 2002-05-03 2004-07-01 Iversen Patrick L. Delivery of therapeutic compounds via microparticles or microbubbles
CA2532324A1 (en) * 2002-07-11 2004-01-22 Targeson, Llc Microbubble compositions, and methods for preparing and using same
US7931595B2 (en) 2002-11-29 2011-04-26 Ge Healthcare As Ultrasound triggering method to reduce cardiac arrhythmia
US20070128117A1 (en) * 2003-02-04 2007-06-07 Bracco International B.V. Ultrasound contrast agents and process for the preparation thereof
DE602004029010D1 (de) * 2003-02-04 2010-10-21 Bracco Suisse Sa Ultraschall kontrastmittel und verfahren zur erstellung
JP2006517558A (ja) 2003-02-13 2006-07-27 ブラッコ イメージング エッセ ピ ア コントラスト増強x線位相画像診断
DK2284180T3 (en) 2003-03-03 2015-12-21 Dyax Corp Uses of peptides that specifically bind to the HGF receptor (cMET)
ITFI20030077A1 (it) * 2003-03-26 2004-09-27 Actis Active Sensors S R L Metodo per l'indagine ecografica tramite mezzi di contrasto
US8021303B2 (en) 2003-06-12 2011-09-20 Bracco Research Sa System for extracting morphological information through a perfusion assessment process
WO2004110279A1 (en) 2003-06-12 2004-12-23 Bracco Research Sa Blood flow estimates through replenishment curve fitting in ultrasound contrast imaging
EP1701745B1 (en) * 2003-12-22 2014-12-10 Bracco Suisse S.A. Gas-filled microvesicle assembly for contrast imaging
AU2004308757B2 (en) * 2003-12-22 2010-06-17 Bracco Suisse S.A. Assembly of gas-filled microvesicle with active component for contrast imaging
US20080281205A1 (en) * 2004-01-16 2008-11-13 Morteza Naghavi Methods and Apparatuses For Medical Imaging
EP1715897B2 (en) 2004-01-20 2013-10-30 Sunnybrook and Women's College Health Sciences Centre High frequency ultrasound imaging using contrast agents
US8012457B2 (en) 2004-06-04 2011-09-06 Acusphere, Inc. Ultrasound contrast agent dosage formulation
GB2445322B (en) 2004-08-13 2008-08-06 Stichting Tech Wetenschapp Intravasular ultrasound techniques
US9248204B2 (en) 2004-08-18 2016-02-02 Bracco Suisse S.A. Gas-filled microvesicles composition for contrast imaging
EP1833373B1 (en) 2004-12-23 2015-12-16 Bracco Suisse SA A perfusion assessment method and system based on bolus administration
EP1853333A1 (en) * 2004-12-23 2007-11-14 Bracco Research S.A. Liquid transfer device for medical dispensing containers
US7846100B2 (en) 2005-03-03 2010-12-07 Bracco International Bv Medical imaging system based on a targeted contrast agent
EP1714642A1 (en) * 2005-04-18 2006-10-25 Bracco Research S.A. Pharmaceutical composition comprising gas-filled microcapsules for ultrasound mediated delivery
CA2624608C (en) 2005-11-10 2016-06-07 Bracco Research Sa Detection of immobilized contrast agent in medical imaging applications based on flow dynamics analysis
EP1952349B1 (en) 2005-11-10 2018-10-17 Bracco Suisse SA Instantaneous visualization of contrast agent concentration in imaging applications
CA2826960A1 (en) 2005-12-09 2007-06-14 Bracco Suisse Sa Targeting vector-phospholipid conjugates
EP1797919A1 (en) * 2005-12-16 2007-06-20 Bracco Research S.A. Liquid transfer device for medical dispensing containers
US7967753B2 (en) * 2006-08-01 2011-06-28 Stichting Voor de Technische Wetenschappen of Van Vollenhovenlaan Pulse inversion sequences for nonlinear imaging
ITBO20060593A1 (it) * 2006-08-04 2008-02-05 Francesca Cavalieri Microbolle realizzate in alcol polivinilico e relativo caricamento delle stesse con ossido di azoto
WO2008028917A1 (en) 2006-09-05 2008-03-13 Bracco Research Sa Gas-filled microvesicles with polymer-modified lipids
EP2117603A2 (en) * 2006-12-19 2009-11-18 Bracco International B.V. Targeting and therapeutic compounds and gas-filled microvesicles comprising said compounds
JP5313915B2 (ja) 2006-12-21 2013-10-09 ブラッコ・シュイス・ソシエテ・アノニム 医用画像用途における固定化された造影剤の脱離の検知
US10130342B2 (en) 2007-12-28 2018-11-20 Bracco Suisse Sa Initialization of fitting parameters for perfusion assessment based on bolus administration
CN101917908B (zh) 2007-12-28 2012-10-03 博莱科瑞士股份有限公司 医学成像应用中对固定造影剂的量化分析
EP2090322A1 (en) 2008-02-18 2009-08-19 INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale) Use of fsh receptor ligands for diagnosis and therapy of cancer
GB0811856D0 (en) * 2008-06-27 2008-07-30 Ucl Business Plc Magnetic microbubbles, methods of preparing them and their uses
CA2748995C (en) 2008-10-07 2018-01-16 Bracco Suisse Sa Targeting construct comprising anti-polymer antibody and liposomes or microvesicles binding to the same
EP2189112A1 (en) 2008-11-24 2010-05-26 Bracco Research S.A. Real-time perfusion imaging and quantification
EP2376145B1 (en) 2008-12-16 2013-10-16 Bracco Suisse SA Device for bolus administration
CA2761596C (en) 2009-06-08 2017-11-07 Bracco Suisse S.A. Auto-scaling of parametric images
TWI551343B (zh) * 2009-08-06 2016-10-01 Ligaric Co Ltd Composition and method for producing the same
AU2010291254B2 (en) 2009-09-01 2016-08-11 Bracco Suisse Sa Parametric images based on dynamic behavior over time
EP2335675B1 (de) 2009-12-10 2015-02-18 Neubourg Skin Care GmbH & Co. KG Emulgatorfreie, Polymer-stabilisierte Schaumformulierungen
EP2345732A1 (en) 2010-01-19 2011-07-20 Universite Paris Descartes Methods for intracellular delivery of nucleic acids
EP2544593B1 (en) 2010-03-09 2014-12-31 Bracco Suisse SA Initialization of fitting parameters for perfusion assessment based on bolus administration
CN103079599B (zh) 2010-08-09 2017-05-10 博莱科瑞士股份有限公司 靶向气体填充微囊
RU2013105016A (ru) 2010-08-09 2014-09-20 Инсэрм (Институт Насьональ Де Ла Сант Эт Де Ла Решерш Медикаль) Способы и фармацевтические композиции для лечения глазного заболевания у субъекта
WO2012085072A1 (en) 2010-12-24 2012-06-28 Bracco Suisse Sa Gas-filled microvesicles for use as vaccine
EP2474327A1 (en) 2011-01-07 2012-07-11 RWTH Aachen Microdosing of ultrasound contrast agents
CA2829791A1 (en) 2011-03-28 2012-10-04 Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem Ltd. Sustained-release injectable formulation
WO2012136813A2 (en) 2011-04-07 2012-10-11 Universitetet I Oslo Agents for medical radar diagnosis
EP2545908A1 (en) 2011-07-11 2013-01-16 RWTH Aachen Medium for microbubbles or microparticles and preparation thereof
EP2934740B1 (en) 2012-12-21 2019-12-11 Bracco Suisse SA Gas-filled microvesicles
US9734584B2 (en) 2012-12-21 2017-08-15 Bracco Suisse Sa Segmentation in diagnostic imaging applications based on statistical analysis over time
US20160030603A1 (en) 2013-03-15 2016-02-04 Westfaelische Wilhelms-Universitaet Muenster Detection of acute renal allograft rejection
WO2015000953A1 (en) 2013-07-03 2015-01-08 Bracco Suisse S.A. Devices and methods for the ultrasound treatment of ischemic stroke
WO2015155380A1 (en) 2014-04-07 2015-10-15 Bracco Suisse Sa Estimation of acoustic level in-situ with non-fundamental analysis
SG11201704165VA (en) 2014-12-18 2017-07-28 Bracco Suisse Sa Targeted gas-filled microvesicles formulation
WO2016102515A1 (en) 2014-12-22 2016-06-30 Bracco Suisse Sa Gas-filled microvesicles for use as vaccine
EP3240579B1 (en) 2014-12-31 2022-07-27 Lantheus Medical Imaging, Inc. Lipid-encapsulated gas microsphere compositions and related methods
JP7534839B2 (ja) 2015-12-09 2024-08-15 コーニンクレッカ フィリップス エヌ ヴェ 超音波血栓溶解用及び血管音響共振器を介した他の治療用のインターリーブビームパターン
CN108289654B (zh) 2015-12-10 2021-03-30 博莱科瑞士股份有限公司 通过动态阈值化来检测固定化造影剂
BR112018015143A2 (pt) 2016-02-09 2018-12-18 Bracco Suisse Sa proteína quimérica recombinante para direcionamento de selectinas
CN107233582B (zh) * 2016-03-29 2020-04-24 北京飞锐达医疗科技有限公司 一种基于叔丁醇/水混合溶剂制备超声造影剂的方法
CN107233583B (zh) * 2016-03-29 2020-04-24 北京飞锐达医疗科技有限公司 一种具有超长持续时间的超声造影剂及其制备方法
TWI832081B (zh) 2016-05-04 2024-02-11 美商藍瑟斯醫學影像公司 用於形成充氣微球體及成像個體之方法、震盪裝置及電腦可讀軟體
US9789210B1 (en) 2016-07-06 2017-10-17 Lantheus Medical Imaging, Inc. Methods for making ultrasound contrast agents
EP3817777A1 (en) * 2018-07-06 2021-05-12 Bracco Suisse SA Freeze-dried formulation for gas-filled microvesicles
US10335502B1 (en) 2019-01-29 2019-07-02 Bracco Suisse Sa Freeze-dried formulation for gas-filled microvesicles
US10232061B1 (en) 2018-07-06 2019-03-19 Bracco Suisse Sa Freeze-dried formulation for gas-filled microvesicles
US20210389320A1 (en) 2018-12-21 2021-12-16 Bracco Suisse Sa Gas-filled microvesicles with ligand
US11717570B2 (en) 2019-05-15 2023-08-08 Bracco Suisse Sa Gas-filled microvesicles
US20200360289A1 (en) 2019-05-15 2020-11-19 Bracco Suisse Sa Freeze-dried product and gas-filled microvesicles suspension
GB201908352D0 (en) 2019-06-11 2019-07-24 Innovation Ulster Ltd Sonodynamic therapy
US12005130B2 (en) 2019-10-16 2024-06-11 Agitated Solutions Inc. Generating microbubbles for bubble studies
JP6760630B1 (ja) * 2019-10-29 2020-09-23 学校法人 愛知医科大学 微小気泡含有電解質液の製造方法および微小気泡含有電解質液の調製に用いる微小気泡含有溶媒の製造方法
EP4103152A1 (en) 2020-02-11 2022-12-21 Bracco Suisse SA Gas-filled microvesicles for therapeutic use
GB202004629D0 (en) 2020-03-30 2020-05-13 Innovation Ulster Ltd Therapy
US11191888B1 (en) 2020-05-18 2021-12-07 Agitated Solutions Inc. Syringe-based microbubble generator
CN113440627B (zh) * 2021-07-30 2022-11-25 北京诺康达医药科技股份有限公司 一种冻干粉末及其制备方法与应用
CN114177317A (zh) * 2021-11-03 2022-03-15 深圳奥祺生物医药有限公司 一种用于超声造影的微泡冻干制剂、造影剂及制备方法
WO2024133827A1 (en) 2022-12-21 2024-06-27 Bracco Suisse Sa Gas-filled microvesicles with perfluoro olefin
US11833224B1 (en) 2023-02-08 2023-12-05 Leuvian Llc Lyoprotectant compositions and uses thereof

Family Cites Families (79)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3968203A (en) * 1965-10-01 1976-07-06 Jerome G. Spitzer Aerosol astringent composition
US3615972A (en) * 1967-04-28 1971-10-26 Dow Chemical Co Expansible thermoplastic polymer particles containing volatile fluid foaming agent and method of foaming the same
US3650831A (en) * 1969-03-10 1972-03-21 Armour Dial Inc Method of cleaning surfaces
US3900420A (en) * 1970-05-18 1975-08-19 Felix Sebba Microgas emulsions and method of forming same
US4027007A (en) * 1970-12-09 1977-05-31 Colgate-Palmolive Company Antiperspirants formulated with borax
GB1575343A (en) * 1977-05-10 1980-09-17 Ici Ltd Method for preparing liposome compositions containing biologically active compounds
CH624011A5 (fi) * 1977-08-05 1981-07-15 Battelle Memorial Institute
CH621479A5 (fi) * 1977-08-05 1981-02-13 Battelle Memorial Institute
US4235871A (en) * 1978-02-24 1980-11-25 Papahadjopoulos Demetrios P Method of encapsulating biologically active materials in lipid vesicles
US4256251A (en) * 1978-04-24 1981-03-17 Lawrence M. Smith Surgical staplers and staple
US4192859A (en) * 1978-09-29 1980-03-11 E. R. Squibb & Sons, Inc. Contrast media containing liposomes as carriers
US4587545A (en) * 1978-12-20 1986-05-06 At&T Bell Laboratories High voltage dielectrically isolated remote gate solid-state switch
US4276885A (en) * 1979-05-04 1981-07-07 Rasor Associates, Inc Ultrasonic image enhancement
US4265251A (en) * 1979-06-28 1981-05-05 Rasor Associates, Inc. Method of determining pressure within liquid containing vessel
US4316391A (en) * 1979-11-13 1982-02-23 Ultra Med, Inc. Flow rate measurement
US4442843A (en) * 1980-11-17 1984-04-17 Schering, Ag Microbubble precursors and methods for their production and use
US4657756A (en) * 1980-11-17 1987-04-14 Schering Aktiengesellschaft Microbubble precursors and apparatus for their production and use
US4681119A (en) * 1980-11-17 1987-07-21 Schering Aktiengesellschaft Method of production and use of microbubble precursors
DE3141641A1 (de) * 1981-10-16 1983-04-28 Schering Ag, 1000 Berlin Und 4619 Bergkamen Ultraschall-kontrastmittel und dessen herstellung
US4718433A (en) * 1983-01-27 1988-01-12 Feinstein Steven B Contrast agents for ultrasonic imaging
US4572203A (en) * 1983-01-27 1986-02-25 Feinstein Steven B Contact agents for ultrasonic imaging
GB2135647A (en) * 1983-02-15 1984-09-05 Squibb & Sons Inc Method of preparing liposomes and products produced thereby
DE3313946A1 (de) * 1983-04-15 1984-10-18 Schering AG, 1000 Berlin und 4709 Bergkamen Mikropartikel und gasblaeschen enthaltende ultraschall-kontrastmittel
US5141738A (en) * 1983-04-15 1992-08-25 Schering Aktiengesellschaft Ultrasonic contrast medium comprising gas bubbles and solid lipophilic surfactant-containing microparticles and use thereof
DE3313947A1 (de) * 1983-04-15 1984-10-18 Schering AG, 1000 Berlin und 4709 Bergkamen Mikropartikel und gasblaeschen enthaltende ultraschall-kontrastmittel
US4900540A (en) * 1983-06-20 1990-02-13 Trustees Of The University Of Massachusetts Lipisomes containing gas for ultrasound detection
US4544545A (en) * 1983-06-20 1985-10-01 Trustees University Of Massachusetts Liposomes containing modified cholesterol for organ targeting
DE3324754A1 (de) * 1983-07-06 1985-01-17 Schering AG, 1000 Berlin und 4709 Bergkamen Ultraschallkontrastmittel sowie dessen herstellung
US5618514A (en) * 1983-12-21 1997-04-08 Nycomed Imaging As Diagnostic and contrast agent
GB8504916D0 (en) * 1985-02-26 1985-03-27 Isc Chemicals Ltd Emulsions of perfluorocarbons in aqueous media
DE3529195A1 (de) * 1985-08-14 1987-02-26 Max Planck Gesellschaft Kontrastmittel fuer ultraschalluntersuchungen und verfahren zu seiner herstellung
US4684479A (en) * 1985-08-14 1987-08-04 Arrigo Joseph S D Surfactant mixtures, stable gas-in-liquid emulsions, and methods for the production of such emulsions from said mixtures
US4927623A (en) * 1986-01-14 1990-05-22 Alliance Pharmaceutical Corp. Dissolution of gas in a fluorocarbon liquid
DE3637926C1 (de) * 1986-11-05 1987-11-26 Schering Ag Ultraschall-Manometrieverfahren in einer Fluessigkeit mittels Mikroblaeschen
FR2608942B1 (fr) * 1986-12-31 1991-01-11 Centre Nat Rech Scient Procede de preparation de systemes colloidaux dispersibles d'une substance, sous forme de nanocapsules
US5283067A (en) * 1987-01-30 1994-02-01 Ciba-Geigy Corporation Parenteral suspensions
US5089181A (en) * 1987-02-24 1992-02-18 Vestar, Inc. Method of dehydrating vesicle preparations for long term storage
CH672733A5 (fi) * 1987-05-22 1989-12-29 Bracco Ind Chimica Spa
DE3741201A1 (de) * 1987-12-02 1989-06-15 Schering Ag Ultraschallarbeitsverfahren und mittel zu dessen durchfuehrung
US4844882A (en) * 1987-12-29 1989-07-04 Molecular Biosystems, Inc. Concentrated stabilized microbubble-type ultrasonic imaging agent
US5425366A (en) * 1988-02-05 1995-06-20 Schering Aktiengesellschaft Ultrasonic contrast agents for color Doppler imaging
EP0586875A1 (de) * 1988-02-05 1994-03-16 Schering Aktiengesellschaft Ultraschallkontrastmittel, Verfahren zu deren Herstellung und deren Verwendung als Diagnostika und Therapeutika
US5730954A (en) * 1988-08-23 1998-03-24 Schering Aktiengesellschaft Preparation comprising cavitate- or clathrate-forming host/guest complexes as contrast agent
DE3828905A1 (de) * 1988-08-23 1990-03-15 Schering Ag Mittel bestehend aus cavitate oder clathrate bildenden wirt/gast-komplexen als kontrastmittel
US4957656A (en) * 1988-09-14 1990-09-18 Molecular Biosystems, Inc. Continuous sonication method for preparing protein encapsulated microbubbles
DE3934656A1 (de) * 1989-10-13 1991-04-18 Schering Ag Verfahren zur herstellung von waessrigen dispersionen
US5776429A (en) * 1989-12-22 1998-07-07 Imarx Pharmaceutical Corp. Method of preparing gas-filled microspheres using a lyophilized lipids
US5088499A (en) * 1989-12-22 1992-02-18 Unger Evan C Liposomes as contrast agents for ultrasonic imaging and methods for preparing the same
US5209720A (en) * 1989-12-22 1993-05-11 Unger Evan C Methods for providing localized therapeutic heat to biological tissues and fluids using gas filled liposomes
US5123414A (en) * 1989-12-22 1992-06-23 Unger Evan C Liposomes as contrast agents for ultrasonic imaging and methods for preparing the same
US5149319A (en) * 1990-09-11 1992-09-22 Unger Evan C Methods for providing localized therapeutic heat to biological tissues and fluids
SE465300B (sv) * 1989-12-29 1991-08-26 Sjoeberg John Anitec Ab Anordning vid stickkniv foer urtagning av blod fraan slaktdjur
DE4004430A1 (de) * 1990-02-09 1991-08-14 Schering Ag Aus polyaldehyden aufgebaute kontrastmittel
GB9003821D0 (en) * 1990-02-20 1990-04-18 Danbiosyst Uk Diagnostic aid
EP0522081A4 (en) * 1990-03-30 1993-06-16 Smithkline Beecham Corporation Inhibition of disease associated with immunodeficiency virus infection
US5556610A (en) * 1992-01-24 1996-09-17 Bracco Research S.A. Gas mixtures useful as ultrasound contrast media, contrast agents containing the media and method
IN172208B (fi) * 1990-04-02 1993-05-01 Sint Sa
US5445813A (en) * 1992-11-02 1995-08-29 Bracco International B.V. Stable microbubble suspensions as enhancement agents for ultrasound echography
US5190982A (en) * 1990-04-26 1993-03-02 Hoechst Aktiengesellschaft Ultrasonic contrast agents, processes for their preparation and the use thereof as diagnostic and therapeutic agents
US5205287A (en) * 1990-04-26 1993-04-27 Hoechst Aktiengesellschaft Ultrasonic contrast agents, processes for their preparation and the use thereof as diagnostic and therapeutic agents
US5137928A (en) * 1990-04-26 1992-08-11 Hoechst Aktiengesellschaft Ultrasonic contrast agents, processes for their preparation and the use thereof as diagnostic and therapeutic agents
AU636481B2 (en) * 1990-05-18 1993-04-29 Bracco International B.V. Polymeric gas or air filled microballoons usable as suspensions in liquid carriers for ultrasonic echography
DE4100470A1 (de) * 1991-01-09 1992-07-16 Byk Gulden Lomberg Chem Fab Echokontrastmittel
GB9106686D0 (en) * 1991-03-28 1991-05-15 Hafslund Nycomed As Improvements in or relating to contrast agents
GB9106673D0 (en) * 1991-03-28 1991-05-15 Hafslund Nycomed As Improvements in or relating to contrast agents
US5874062A (en) * 1991-04-05 1999-02-23 Imarx Pharmaceutical Corp. Methods of computed tomography using perfluorocarbon gaseous filled microspheres as contrast agents
GB9107628D0 (en) * 1991-04-10 1991-05-29 Moonbrook Limited Preparation of diagnostic agents
US5147631A (en) * 1991-04-30 1992-09-15 Du Pont Merck Pharmaceutical Company Porous inorganic ultrasound contrast agents
US5364612A (en) * 1991-05-06 1994-11-15 Immunomedics, Inc. Detection of cardiovascular lesions
DE4127442C2 (de) * 1991-08-17 1996-08-22 Udo Dr Gros Wäßrige Dispersion Fluorcarbon enthaltender Phospholipid-Vesikel und ein Verfahren zu ihrer Herstellung
CZ286149B6 (cs) * 1991-09-17 2000-01-12 Sonus Pharmaceuticals, Inc. Plynná prostředí pro zvýšení kontrastnosti obrazu, získaného ultrazvukem a způsob výběru plynů pro toto použití
US5409688A (en) * 1991-09-17 1995-04-25 Sonus Pharmaceuticals, Inc. Gaseous ultrasound contrast media
GB9200388D0 (en) * 1992-01-09 1992-02-26 Nycomed As Improvements in or relating to contrast agents
IL104084A (en) * 1992-01-24 1996-09-12 Bracco Int Bv Sustainable aqueous suspensions of pressure-resistant and gas-filled blisters, their preparation, and contrast agents containing them
WO1994009703A1 (en) * 1992-11-02 1994-05-11 Drexel University Surfactant-stabilized microbubble mixtures, process for preparing and methods of using the same
US5716597A (en) * 1993-06-04 1998-02-10 Molecular Biosystems, Inc. Emulsions as contrast agents and method of use
IL110185A (en) * 1993-07-02 1999-05-09 Molecular Biosystems Inc Method for making encapsulated gas microspheres from heat denatured protein in the absence of oxygen gas
PT711179E (pt) * 1993-07-30 2005-03-31 Imcor Pharmaceutical Company Composicoes de microbolhas estabilizadas para ultra-som
US5601085A (en) * 1995-10-02 1997-02-11 Nycomed Imaging As Ultrasound imaging

Also Published As

Publication number Publication date
HU227043B1 (en) 2010-05-28
FI943167A0 (fi) 1994-07-01
LU90837I2 (fr) 2001-11-19
AU704954B2 (en) 1999-05-13
AU3431795A (en) 1996-01-04
AU681812B2 (en) 1997-09-04
IS1625B (is) 1996-10-18
GR3022826T3 (en) 1997-06-30
CN1069838C (zh) 2001-08-22
US5908610A (en) 1999-06-01
US5686060A (en) 1997-11-11
KR100216138B1 (ko) 1999-08-16
DE69307124D1 (de) 1997-02-13
AU666238B2 (en) 1996-02-01
NO942476D0 (no) 1994-06-30
IS4089A (is) 1994-05-03
HUT74561A (en) 1997-01-28
ZA938117B (en) 1994-06-23
NZ257115A (en) 1997-06-24
DK0619743T3 (da) 1997-01-20
CA2125027C (en) 1998-12-01
US6187288B1 (en) 2001-02-13
KR940703691A (ko) 1994-12-12
HU9401409D0 (en) 1994-08-29
IL107453A0 (en) 1994-02-27
EP0619743B1 (en) 1997-01-02
JP3135919B2 (ja) 2001-02-19
AU2618197A (en) 1997-12-18
NO308830B1 (no) 2000-11-06
NL300061I1 (nl) 2001-12-01
CN1088456A (zh) 1994-06-29
IL107453A (en) 1998-01-04
US20010001279A1 (en) 2001-05-17
FI943167A (fi) 1994-07-01
JPH07503254A (ja) 1995-04-06
NO942476L (no) 1994-06-30
EP0619743A1 (en) 1994-10-19
AU5336294A (en) 1994-05-24
US5445813A (en) 1995-08-29
ATE146972T1 (de) 1997-01-15
DE69307124T2 (de) 1997-07-17
ES2097548T3 (es) 1997-04-01
NL300061I2 (nl) 2002-02-01
NZ280615A (en) 1997-02-24
DE10199055I1 (de) 2002-08-14
DE10199055I2 (de) 2005-09-29
CA2125027A1 (en) 1994-05-11
US5597549A (en) 1997-01-28
WO1994009829A1 (en) 1994-05-11
US20030129137A1 (en) 2003-07-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
FI115953B (fi) Stabiileja mikrokuplasuspensioita vahvistusaineiksi ultraäänikaikukuvausta varten
US5531980A (en) Stable microbubbles suspensions injectable into living organisms
HU225495B1 (en) Gas mixtures useful as ultrasound contrast media
US20060257321A1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
US6613306B1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
US20040180004A1 (en) Stable microbubble suspensions as enhancement agents for ultrasound echography and dry formulations thereof
US20060034771A1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
US20010008626A1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
US20030185759A1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
US20030194376A1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
US20010012507A1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them

Legal Events

Date Code Title Description
FG Patent granted

Ref document number: 115953

Country of ref document: FI

SPCF Supplementary protection certificate application filed
SPCG Supplementary protection certificate granted

Spc suppl protection certif: 265

Extension date: 20160326

PC Transfer of assignment of patent

Owner name: BRACCO SUISSE S.A.

Free format text: BRACCO SUISSE S.A.

MA Patent expired