ES2850973T3 - Formulaciones estables de antígenos rLP2086 de Neisseria meningitidis - Google Patents

Formulaciones estables de antígenos rLP2086 de Neisseria meningitidis Download PDF

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Abstract

Un procedimiento para estabilizar la potencia de un polipéptido LP2086 (fHBP) de la subfamilia B en una composición inmunogénica, comprendiendo dicho método la etapa de (a) formular el polipéptido LP2086 (fHBP) de la subfamilia B en una composición con una proporción molar entre el detergente y la proteína de entre aproximadamente 0,5:1 y aproximadamente 10:1 en la que la composición comprende además aluminio a una concentración de entre aproximadamente 0,1 mg/ml y aproximadamente 1 mg/ml.

Description

DESCRIPCIÓN
Formulaciones estables de antígenos rLP2086 de Neisseria meningitidis
Campo de la invención
La presente invención se refiere a formulaciones de antígenos rLP2086 de la subfamilia B de de Neisseria meningitidis en composiciones inmunogénicas tal como se ha descrito en el presente documento. La presente invención también se refiere a procedimientos de conservar la conformación de antígenos rLP2086 de Neisseria meningitidis y al procedimientos para determinar la potencia de los antígenos rLP2086 de Neisseria meningitidis.
Antecedentes de la invención
rLP2086 es una lipoproteína recombinante de 28 kDa que induce anticuerpos bacterianos de reacción cruzada contra una serie de cepas de Neisseria meningitidis. En base a una homología de secuencia de aminoácidos deducida se identificaron dos subfamilias diferentes de rLP2086, A y B. Estas dos subfamilias se usaron en la formulación de las muestras de vacuna MnB-rLP2086 que contienen 20, 60,120, y 200 pg/ml cada una de histidina 10 mM (pH 6,0), NaCl 150 mM y 0,5 mg/ml de aluminio con niveles variables de polisorbato 80 (PS-80). El polisorbato 80, también conocido como TWEEN 80, es un tensioactivo no iónico y emulsionante derivado de sorbitol y con frecuencia se usa en formulaciones farmacéuticas como emulsionante, solubilizante y estabilizante. Se cree que la presencia de polisorbato 80 en la composición inmunogénica MnB rLP2086 previene la agregación durante la formulación, procesamiento, filtración, carga y envío, reduce la absorción con filtro de membrana y reduce la absorción en tubos.
En algunas realizaciones, la presente invención proporciona una composición inmunogénica, en la que la potencia de un polipéptido LP2086 de la subfamilia B se conserva durante al menos aproximadamente 1-12 meses, aproximadamente 6-18 meses, aproximadamente 12-24 meses, aproximadamente 24-36 meses o aproximadamente 36-48 meses. En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende además un polipéptido LP2086 de la subfamilia A.
En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende además un detergente. En algunas realizaciones, la proporción molar entre el detergente y la proteína está entre aproximadamente 0,5:1 y aproximadamente 10:1, entre aproximadamente 1:1 y aproximadamente 5:1 o entre aproximadamente 1,4:1 y 4,2:1. En algunas realizaciones, la proporción molar entre el detergente y la proteína es aproximadamente 2,8:1. En algunas realizaciones, la cantidad de detergente es suficiente para reducir la unión del polipéptido al silicio en un contenedor, tal como una jeringa o un vial. En algunas realizaciones, el detergente es un detergente no iónico, tal como un detergente de polisorbato. En algunas realizaciones, el detergente es polisorbato-80.
En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende además un catión multivalente. En algunas realizaciones, el catión multivalente es calcio o aluminio. En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende fosfato de calcio. En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende aluminio como fosfato de aluminio, hidróxido de aluminio, sulfato de aluminio o alumbre. En algunas realizaciones, la concentración de aluminio está entre aproximadamente 0,1 mg/ml y 1,0 mg/ml. En algunas realizaciones, la concentración de aluminio es de aproximadamente 0,5 mg/ml.
En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende además histidina. En algunas realizaciones, la concentración de histidina está entre aproximadamente 2 mM y aproximadamente 20 mM, o entre aproximadamente 5 mM y aproximadamente 15 mM. En algunas realizaciones, la concentración de histidina es de aproximadamente 10 mM. En algunas realizaciones, el pH de la histidina está entre aproximadamente 5,0 y aproximadamente 8,0 o entre aproximadamente 5,8 y aproximadamente 6,0. En algunas realizaciones, la concentración de histidina es de 10mM, pH 6,0.
En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende además succinato. En algunas realizaciones, la concentración de succinato está entre aproximadamente 2 mM y aproximadamente 10 mM, o entre aproximadamente 3 mM y aproximadamente 7 mM. En algunas realizaciones, la concentración de succinato es de aproximadamente 5 mM. En algunas realizaciones, el pH del succinato está entre aproximadamente 5,0 y aproximadamente 8,0 o entre aproximadamente 5,8 y aproximadamente 6,0. En algunas realizaciones, la concentración de succinato es de 5 mM. pH 6,0.
En algunas realizaciones, la composición inmunogénica está liofilizada. En algunas realizaciones, la composición liofilizada se resuspende en un tampón que comprende aluminio. En algunas realizaciones, el aluminio está presente como fosfato de aluminio, hidróxido de aluminio, sulfato de aluminio o alumbre.
En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende una proporción molar entre polisorbato 80 y la proteína de aproximadamente 2,8:1. 0,5 mg/ml de aluminio como AlPO4, histidina 10 mM a pH 6,0 y NaCl 150 mM. n algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende esencialmente 200ug/ml del polipéptido LP2086 (fHBP) de la subfamilia B, una proporción molar entre polisorbato 80 y la proteína de aproximadamente 2,8:1, 0,5 mg/ml de aluminio como AlPO4, histidina 10 mM a pH 6,0 y NaCl 150 mM. En algunas realizaciones, la composición inmunogénica consisten esencialmente en 200 |ig/ml del polipéptido rLP2086 (fHBP) de la subfamilia A, 200 ug/ml del polipéptido LP2086 (fHBP) de la subfamilia B, una proporción molar entre polisorbato 80 y la proteína de aproximadamente 2,8:1, 0,5 mg/ml de aluminio como AlPO4, histidina 10 mM a pH 6,0 y NaCl 150 mM.
En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende una proporción molar entre polisorbato 80 y la proteína de aproximadamente 2,8:1. 0,5 mg/ml de aluminio como AlPO4, succinato 5 mM a pH 6,0 y NaCl 150 mM. En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende esencialmente 200 |ig/ml del polipéptido LP2086 (fHBP) de la subfamilia B, una proporción molar entre polisorbato 80 y la proteína de aproximadamente 2,8:1, 0,5 mg/ml de aluminio como AlPO4, succinato 5 mM a pH 6,0 y NaCl 150 mM. En algunas realizaciones, la composición inmunogénica consisten esencialmente en 200 ug/ml del polipéptido rLP2086 (fHBP) de la subfamilia A, 200 ug/ml del polipéptido LP2086 (fHBP) de la subfamilia B, una proporción molar entre polisorbato 80 y la proteína de aproximadamente 2,8:1, 0,5 mg/ml de aluminio como AlPO4, succinato 5 mM a pH 6,0 y NaCl 150 mM.
En otro aspecto, la invención proporciona un procedimiento de estabilizar la potencia de un polipéptido LP2086 de la subfamilia B en una composición inmunogénica almacenando el polipéptido LP2086 de la subfamilia B en un tampón con una proporción molar entre el detergente y la proteína entre aproximadamente 0,5:1 y 10:1, entre aproximadamente 1:1 y aproximadamente 5:1 o entre aproximadamente 1,4:1 y aproximadamente 4,2:1. En algunas realizaciones, la proporción molar entre el detergente y la proteína es aproximadamente 2,8:1. En algunas realizaciones, la cantidad de detergente es suficiente para reducir la unión del polipéptido al silicio en un contenedor, tal como una jeringa o un vial. En algunas realizaciones, el detergente es un detergente no iónico, tal como un detergente de polisorbato. En algunas realizaciones, el detergente es polisorbato-80.
En algunas realizaciones, el tampón comprende además un catión multivalente. En algunas realizaciones, el catión multivalente es calcio o aluminio. En algunas realizaciones, el tampón comprende fosfato de calcio. En algunas realizaciones, el tampón comprende aluminio como fosfato de aluminio, hidróxido de aluminio, sulfato de aluminio o alumbre. En algunas realizaciones, la concentración de aluminio está entre aproximadamente 0,1 mg/ml y 1,0 mg/ml. En algunas realizaciones, la concentración de aluminio es de aproximadamente 0,5 mg/ml.
En algunas realizaciones, el tampón comprende además histidina. En algunas realizaciones, la concentración de histidina está entre aproximadamente 2mM y aproximadamente 20 mM, o entre aproximadamente 5 mM y aproximadamente 15 mM. En algunas realizaciones, la concentración de histidina es de aproximadamente 10mM. En algunas realizaciones, el pH de la histidina está entre aproximadamente 5,0 y aproximadamente 8,0 o entre aproximadamente 5,8 y aproximadamente 6,0. En algunas realizaciones, la concentración de histidina es de 10mM, pH 6,0.
En algunas realizaciones, el tampón comprende además succinato. En algunas realizaciones, la concentración de succinato está entre aproximadamente 2 mM y aproximadamente 10 mM, o entre aproximadamente 3 mM y aproximadamente 7 mM. En algunas realizaciones, la concentración de succinato es de aproximadamente 5 mM. En algunas realizaciones, el pH del succinato está entre aproximadamente 5,0 y aproximadamente 8,0 o entre aproximadamente 5,8 y aproximadamente 6,0. En algunas realizaciones, la concentración de succinato es de 10 mM, pH 6,0.
En algunas realizaciones, la composición inmunogénica está liofilizada. En algunas realizaciones, la composición liofilizada se resuspende en un tampón que comprende aluminio. En algunas realizaciones, el aluminio está presente como fosfato de aluminio, hidróxido de aluminio, sulfato de aluminio o alumbre.
En algunas realizaciones, el tampón consiste esencialmente en una proporción molar entre polisorbato 80 y la proteína de aproximadamente 2,8:1. 0,5 mg/ml de aluminio como AlPO4, histidina 10 mM a pH 6,0 y NaCl 150 mM. En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende esencialmente 200ug/ml del polipéptido LP2086 (fHBP) de la subfamilia B, una proporción molar entre polisorbato 80 y la proteína de aproximadamente 2,8:1,0,5 mg/ml de aluminio como AlPO4, histidina 10 mM a pH 6,0 y NaCl 150 mM.
En algunas realizaciones, el tampón consiste esencialmente en una proporción molar entre polisorbato 80 y la proteína de aproximadamente 2,8:1. 0,5 mg/ml de aluminio como AlPO4, succinato 5 mM a pH 6,0 y NaCl 150 mM. En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende esencialmente 200 |ig/ml del polipéptido LP2086 (fHBP) de la subfamilia B, una proporción molar entre polisorbato 80 y la proteína de aproximadamente 2,8:1, 0,5 mg/ml de aluminio como AlPO4, succinato 5 mM a pH 6,0 y NaCl 150 mM.
En otro aspecto, la invención proporciona un procedimiento de estabilizar la potencia de un polipéptido LP2086 de la subfamilia A y un polipéptido LP2086 de la subfamilia B en una composición inmunogénica almacenando el polipéptido LP2086 de la subfamilia A y el polipéptido LP2086 de la subfamilia B en un tampón con entre aproximadamente 0,1 mg/ml y aproximadamente 10 mg/ml de aluminio y una proporción molar entre el detergente y la proteína entre aproximadamente 0,5:1 y 10:1. En algunas realizaciones, la proporción molar entre el detergente y la proteína está entre aproximadamente 1:1 y aproximadamente 5:1 o entre aproximadamente 1,4:1 y aproximadamente 4,2:1. En algunas realizaciones, la proporción molar entre el detergente y la proteína es de aproximadamente 2,8:1. En algunas realizaciones, la cantidad de detergente es suficiente para reducir la unión del polipéptido al silicio en un contenedor, tal como una jeringa o un vial. En algunas realizaciones, el detergente es un detergente no iónico, tal como un detergente de polisorbato. En algunas realizaciones, el detergente es polisorbato-80.
En algunas realizaciones, el aluminio está presente como fosfato de aluminio, hidróxido de aluminio, sulfato de aluminio o alumbre. En algunas realizaciones, la concentración de aluminio es de aproximadamente 0,5 mg/ml.
En algunas realizaciones, el tampón comprende además histidina. En algunas realizaciones, la concentración de histidina está entre aproximadamente 2 mM y aproximadamente 20 mM, o entre aproximadamente 5 mM y aproximadamente 15 mM. En algunas realizaciones, la concentración de histidina es de aproximadamente 10mM. En algunas realizaciones, el pH de la histidina está entre aproximadamente 5,0 y aproximadamente 8,0 o entre aproximadamente 5,8 y aproximadamente 6,0. En algunas realizaciones, la concentración de histidina es de 10 mM, pH 6,0.
En algunas realizaciones, el tampón comprende además succinato. En algunas realizaciones, la concentración de succinato está entre aproximadamente 2mM y aproximadamente 10 mM, o entre aproximadamente 3 mM y aproximadamente 7 mM. En algunas realizaciones, la concentración de succinato es de aproximadamente 5 mM. En algunas realizaciones, el pH del succinato está entre aproximadamente 5,0 y aproximadamente 8,0 o entre aproximadamente 5,8 y aproximadamente 6,0. En algunas realizaciones, la concentración de succinato es de 10 mM, pH 6,0.
En algunas realizaciones, la composición inmunogénica está liofilizada. En algunas realizaciones, la composición liofilizada se resuspende en un tampón que comprende aluminio. En algunas realizaciones, el aluminio está presente como fosfato de aluminio, hidróxido de aluminio, sulfato de aluminio o alumbre.
En algunas realizaciones, el tampón consiste esencialmente en una proporción molar entre polisorbato 80 y la proteína de aproximadamente 2,8:1. 0,5 mg/ml de aluminio como AlPO4, histidina 10 mM a pH 6,0 y NaCl 150 mM. En algunas realizaciones, la composición inmunogénica consiste esencialmente en 200 ug/ml del polipéptido LP2086 (fHBP) de la subfamilia A, 200 ug/ml del polipéptido LP2086 (fHBP) de la subfamilia B, una proporción molar entre polisorbato 80 y la proteína de aproximadamente 2,8:1, 0,5 mg/ml de aluminio como AlPO4, histidina 10 mM a pH 6,0 y NaCl 150 mM.
En algunas realizaciones, el tampón consiste esencialmente en una proporción molar entre polisorbato 80 y la proteína de aproximadamente 2,8:1. 0,5 mg/ml de aluminio como AlPO4, succinato 5 mM a pH 6,0 y NaCl 150 mM. En algunas realizaciones, la composición inmunogénica consiste esencialmente en 200 ug/ml del polipéptido LP2086 (fHBP) de la subfamilia A, 200 ug/ml del polipéptido LP2086 (fHBP) de la subfamilia B, una proporción molar entre polisorbato 80 y la proteína de aproximadamente 2,8:1, 0,5 mg/ml de aluminio como AlPO4, succinato 5 mM a pH 6,0 y NaCl 150 mM.
En otro aspecto, la invención proporciona un procedimiento para determinar la potencia de un polipéptido rLP2086 de la subfamilia A y/o un polipéptido rLP2086 de la subfamilia B, que comprende las etapas de: (a) unir un primero y un segundo anticuerpo monoclonal funcional que reconoce epítopos conformacionales en las proteínas de cada subfamilia con la composición inmunogénica y (b) cuantificar la unión del anticuerpo a los polipéptidos. En algunas realizaciones, la cuantificación se realiza mediante electroquimioluminiscencia. En algunas realizaciones, se cuantifican los polipéptidos que exhiben epítopos reconocidos por ambos anticuerpos. En algunas formas de realización, el primer anticuerpo está conjugado c un indicador, tal como biotina. En algunas realizaciones, el primer anticuerpo se aísla mediante un compuesto que se une al indicador conjugado, tal como perlas de estreptavidina o una columna de estreptavidina. En algunas realizaciones, el segundo anticuerpo se une mediante un indicador cuantitativo. En algunas realizaciones, la potencia de la composición inmunogénica se compara con la potencia de un material de referencia.
Breve descripción de los dibujos
Figura 1: Estabilidad de la subfamilia B en formulaciones con varias concentraciones de polisorbato 80.
Figura 2: Estabilidad acelerada de la subfamilia B con varias concentraciones de polisorbato 80.
Figura 3: Potencia de la subfamilia B a 200 pg/ml durante 28 días
Figura 4: Potencia de la subfamilia B a 20 pg/ml durante 28 días
Figura 5: Resultados de potencia para 200 pg/ml con diferentes proporciones molares
Figura 6: Resultados de potencia para 20 pg/ml con diferentes proporciones molares
Figura 7: Unión de la proteína al fosfato de aluminio a pH 6,5
Figura 8: Unión de MnB rLP2086 de la subfamilia A y B como una función del pH.
Figura 9: Efecto del pH, tampón y la concentración de proteínas sobre la unión de rLP2086 de la subfamilia A y B. Figura 10: Aspecto visual de las formulaciones de rLP2086 sin fosfato de aluminio.
Figura 11: Mediciones de la DO de las muestras a 2-8°C.
Figura 12: Resultados de potencia para la subfamilia a para formulación con y sin AlPO4.
Figura 13: Resultados de potencia para la subfamilia B para formulación con y sin AlPO4
Figura 14: Resultados de polisorbato 80 en rLP2086 Placebo con 0,5 mg/ml de aluminio
Figura 15: Resultados de Polisorbato 80 para la subfamilia A
Figura 16: Resultados de polisorbato 80 para la subfamilia B
Figura 17: Correlación entre la potencia y la proporción molar de unidos para la subfamilia B
Figura 18: Resultados de la proporción molar para la subfamilia A
Figura 19: Resultados de la proporción molar para la subfamilia B
Figura 20: Resultados de la proporción molar para formulaciones de rLP2086 a 400 |jg/ml.
Figura 21: Resultados de polisorbato 80 para el producto farmacológico rLP2086 a diferentes puntos de tiempo. Figura 22: Resultados de la proporción molar para el producto farmacológico rLP2086 a diferentes puntos de tiempo.
Figura 23: Resultados de la potencia y la proporción molar de unidos para la subfamilia A.
Figura 24: Resultados de la potencia y la proporción molar de unidos para la subfamilia B.
Figura 25: Unión de la subfamilia A con APO4 en tampones de succinato y de histidina.
Figura 26: Unión de la subfamilia B con APO4 en tampones de succinato y de histidina.
Figura 27: Comparación de la unión en tampones de succinato, histidina y fosfato.
Figura 28: Unión dependiente de pH de la subfamilia A con APO4..
Figura 29: Unión dependiente de pH de la subfamilia B con APO4
Descripción detallada de la invención
A menos que se defina otra cosa, todos los términos técnicos y científicos usados en el presente documento tienen el mismo significado que un experto en la técnica a la que esta invención pertenece entiende habitualmente. Aunque en la práctica o análisis de la presente invención se pueden usar procedimientos y materiales similares o equivalentes a los descritos en la presente memoria descriptiva, a continuación se describen procedimientos y materiales adecuados.
A lo largo de esta memoria descriptiva, se entiende que la palabra "comprenden" o variaciones tales como “comprende” o “que comprende” implica la inclusión de un número entero o grupo de números enteros indicados, pero no la exclusión de ningún otro número entero o grupo de números enteros.
Definiciones
Como se usa en el presente documento, las formas del singular “un”, “uno” y “el/la” incluyen referencias al plural a menos que el contexto indique claramente lo contrario. Por tanto, por ejemplo, referencias al “procedimiento” incluye uno o más procedimientos y/o etapas del tipo descrito en el presente documento y/o que serán evidentes para el experto en la técnica tras la lectura de esta divulgación, y así sucesivamente.
Como se usa en el presente documento, las formas en plural incluyen referencias en singular, a menos que el contexto dicte claramente otra cosa. Por tanto, por ejemplo, referencias a “los procedimientos” incluyen uno o más procedimientos y/o etapas del tipo descrito en el presente documento y/o que serán evidentes para el experto en la técnica tras la lectura de esta divulgación, y así sucesivamente.
Como se usa en el presente documento, “aproximadamente” significa un intervalo estadísticamente significativo de un valor tal como un intervalo de concentración indicado, de un marco de tiempo, de peso molecular, de temperatura o de pH. Dicho intervalo puede estar dentro de un orden de magnitud, normalmente, dentro del 20 %, más normalmente todavía dentro del 10 % e incluso más normalmente dentro del 5 % de un valor o intervalo dado. La variación permitida abarcada por el término “aproximadamente” dependerá del sistema en concreto en estudio y un experto en la técnica lo apreciará fácilmente. Siempre que se cite un intervalo en esta solicitud, cada número entero dentro del intervalo también se contempla como una realización de la invención.
El término “adyuvante” se refiere a un compuesto o mezcla que potencia la respuesta inmunitaria a un antígeno, como se describe y pone de ejemplo más adelante en el presente documento. Ejemplos no limitantes de adyuvantes que se pueden usar en la vacuna de la presente invención incluyen el sistema adyuvante RIBI (Ribi Inc., Hamilton, Mont.), alumbre, geles minerales tales como gel de hidróxido de aluminio, emulsiones de aceite en agua, emulsiones de agua en aceite, tales como, por ejemplo, adyuvantes completos o incompletos de Freund, copolímero de bloque (CytRx, Atlanta Ga.), QS-21 (Cambridge Biotech Inc., Cambridge Mass.), SAF-M (Chiron, Emeryville Calif ), adyuvante AMPHIGEN®, saponina, Quil A u otra fracción de saponina, monofosforil lípido A y adyuvante de lípido avridina-amina.
La expresión “unión del aluminio a proteína” se refiere al porcentaje de moléculas de proteína en una composición que se unen a aluminio. La unión del aluminio a la proteína se puede determinar usando procedimientos divulgados en el presente documento o conocidos en la técnica.
La expresión "cantidad inmunogénica eficaz”, como se usa en el presente documento, se refiere a una cantidad de un polipéptido o composición que comprende un polipéptido que es eficaz en la producción de una respuesta inmunitaria en un huésped vertebrado. Por ejemplo, una cantidad inmunogénica eficaz de una proteína rLP2086 de la presente invención es una cantidad que es eficaz en la producción de una respuesta inmunitaria en un huésped vertebrado. La “dosis o cantidad inmunogénica eficaz” concreta dependerá de la edad, el peso y el estado médico del huésped, así como del procedimiento de administración. Los expertos en la técnica determinarán fácilmente dosis adecuadas.
La expresión “proporción molar”, como se usa en el presente documento, se refiere a la proporción del número de moles de dos elementos diferentes en una composición. En algunas realizaciones, la proporción molar es la proporción de moles del detergente y moles de la proteína. En algunas realizaciones, la proporción molar es la proporción entre los moles de polisorbato y los moles de la proteína. En base a las concentraciones de proteína y de polisorbato 80, la proporción molar se calcula usando la ecuación siguiente:
%PS80
Proporción Molar = x216
mg/ml de proteína
Por ejemplo, una composición que comprende 0,01 % de polisorbato 80 y 200 |jg tiene una proporción molar detergente:proteína de 10,8:1 [(0,01/0,2) x 216]. Una proporción de 3 moles de polisorbato 80 y 2 moles de proteína se expresaría como una proporción molar entre PS80 y proteína de 3:2. Además, su una proporción molar se cita como un número sencillo, se refiere a una proporción entre dicho número sencillo y 1. Por ejemplo, proporciones molares entre polisorbato y proteína de 0,5, 0,2 y 10 se refiere a proporciones de 0,5:1, 2:1 y 10:1, respectivamente. Como se usa en el presente documento, las expresiones proporción molar “detergente-proteína” y “polisorbato 80-proteína” se refieren, en general, a la proporción molar entre el detergente (o polisorbato 80) y los antígenos proteicos, particularmente los antígenos P2086. En función de las enseñanzas divulgadas en el presente documento, un experto en la técnica sería capaz de determinar cómo calcular proporciones molares para otros detergentes y la proporción molar óptima para formulaciones con otros detergentes. Como se usa en el presente documento, una proporción molar “baja” se refiere, en general, a una proporción molar entre el detergente y el antígeno proteico en la composición inmunogénica que es inferior a una proporción molar “alta”. Una proporción molar “alta” se refiere, en general, a una proporción molar entre el detergente y el antígeno proteico en la composición inmunogénica que es superior a una proporción molar “baja”. En algunas realizaciones, una “proporción molar alta” entre el detergente y la proteína se refiere a una proporción molar superior a 10:1. En algunas realizaciones, una “proporción molar baja” entre el detergente y la proteína se refiere a una proporción molar entre 0,5:1 y 10:1.
El término "ORF2086" como se usa en el presente documento, se refiere al marco de lectura abierto 2086 de una bacteria de la especie Neisseria. El ORF2086 de Neisseria, proteínas codificadas por el mismo, fragmentos de dichas proteínas y composiciones inmunogénicas que comprenden dichas proteínas se conocen en la técnica y se describen en, por ejemplo, las publicaciones de solicitud de patente de EE.UU. n° US 20060257413 y US 20090202593. El término “P2086” se refiere, en general, a la proteína codificada por ORF2086. Las proteínas P2086 de la invención pueden ser lapidadas o no lipidadas. “LP2086” y “P2086” se refieren, normalmente, a formas lipidadas y no lipidadas de una proteína 2086, respectivamente. La proteína P2086 de la invención puede ser recombinante. “rLP2086” y “rP2086” se refieren, normalmente, a formas lipidadas y no lipidadas de una proteína 2086 recombinante, respectivamente.
Como se usa en el presente documento, se pretende que la expresión “transportador farmacéuticamente aceptable” incluya todos y cada uno de los disolventes, medios de dispersión, recubrimientos, agentes antibacterianos y antifúngicos, agentes isotónicos y retardantes de la absorción, y similares, compatibles con la administración a seres humanos u otros huéspedes vertebrados. Normalmente, un transportador farmacéuticamente aceptable es un transportador autorizado por una agencia reguladora de un gobierno federal o estatal, u otra agencia reguladora o indicada en la Farmacopea de EE.UU. o en otra farmacopea reconocida generalmente para uso en animales, incluidos seres humanos, además de mamíferos no humanos. El término “transportador” refiere a un diluyente, adyuvante, excipiente, conservante y/o vehículo con el que se administra una composición farmacéutica. Dichos transportadores farmacéuticos pueden ser líquidos estériles, tales como agua y aceites, incluidos los de origen en petróleo, animal, vegetal o sintético. Como transportadores líquidos se pueden emplear agua, soluciones dalias y soluciones acuosas de dextrosa y glicerol, particularmente para soluciones inyectables. Excipientes farmacéuticos adecuados incluyen almidón, glucosa, lactosa, sacarosa, gelatina, malta, arroz, harina, tiza, gel de sílice, estearato de sodio, monoestearato de glicerol, talco, cloruro sódico, leche desnatada desecada, glicerol, propileno, glicol, agua, etanol y similares. La composición, si se desea, puede también contener cantidades minoritarias de agentes humectantes, de volumen, emulsionantes o tamponadores del pH. Estas composiciones pueden tomar la forma de soluciones, suspensiones, emulsiones, formulaciones de liberación sostenida y similares. Ejemplos de vehículos farmacéuticos adecuados se describen "Remington's Pharmaceutical Sciences" de E.W.Martin. La formulación deberá adaptarse al modo de administración. El vehículo adecuado será evidente para los expertos en la técnica y dependerá en gran parte de la vía de administración.
El término “potencia” se refiere a la capacidad de un antígeno para producir una repuesta inmunogénica. En algunas realizaciones, la potencia se mide por la capacidad de un epítopo para unirse a un anticuerpo. La potencia se puede perder o reducir en el tiempo debido a la pérdida de antígeno o de la integridad del epítopo o un cambio en la conformación del antígeno o el epítopo. La potencia se puede perder o reducir debido a factores que incluyen, entre otros, la luz, la temperatura, los ciclos de congelación/descongelación, la agitación y el pH. La potencia se puede medir mediante los procedimientos divulgados en el presente documento y mediante ensayos conocidos en la técnica. Dichos ensayos de determinación de potencia incluyen, entre otros, modelos de vacunación animal, ensayos de bactericidas en suero (EBS), citometría de flujo y ensayos de potencia in vitro. Los procedimientos preferidos para determinar la potencia son EBS y ensayos de potencia in vitro. Un procedimiento más preferido para determinar la potencia es el EBS. En algunas realizaciones, la potencia se puede determinar usando al menos un anticuerpo monoclonal dirigido contra al menos un epítopo implicado en la respuesta inmunitaria. En algunas realizaciones, la potencia de una muestra de ensayo se compara con la potencia de un patrón de referencia. En algunas realizaciones, el patrón de referencia es la muestra de ensayo a To. En algunas realizaciones, el patrón de referencia es una composición inmunogénica sin detergente. En algunas realizaciones, el patrón de referencia es una composición inmunogénica con una proporción molar detergente-proteína superior a 10:1.
Una respuesta inmunológica "protectora" se refiere a la capacidad de una composición inmunogénica para provocar una respuesta inmunológica, humoral o celular, que sirve para proteger al sujeto de una infección. La protección proporcionada no tiene que ser absoluta, es decir, no se tiene que prevenir o erradicar totalmente la infección, si hay una mejora estadísticamente significativa en comparación con una población control de sujetos, por ejemplo animales infectados a los que no se ha administrado la vacuna o la composición inmunogénica. La protección se puede limitar a mitigar la gravedad o la rapidez del inicio de los síntomas de la infección. En general, una “respuesta inmunitaria protectora” incluiría la inducción de un incremento de los niveles de anticuerpos específicos de un antígeno concreto en al menos el 50 % de los sujetos, incluido algún nivel de respuestas de anticuerpos funcionales medibles a cada antígeno. En situaciones concretas, una “respuesta inmunitaria protectora” podría incluir la inducción de un incremento por dos de los niveles de anticuerpos o un incremento por cuatro de los niveles de anticuerpos específicos para un antígeno concreto en al menos el 50 % de los sujetos, incluido algún nivel de respuestas de anticuerpos funcionales medibles a cada antígeno. En ciertas realizaciones, los anticuerpos opsonizantes se correlacionan con una respuesta inmunitaria protectora. Por tanto, la respuesta inmunitaria protectora se puede analizar midiendo la disminución en porcentaje del recuento bacteriano en un ensayo de opsonofagocitosis, por ejemplo como lo descrito más adelante. En algunas realizaciones existe una disminución del recuento bacteriano de al menos 10 %, 25 %, 50 %, 65 %, 75 %, 80 %, 85 %, 90 %, 95 % o más, en comparación con el recuento bacteriano en ausencia de la composición inmunogénica.
Los términos “proteína”, “polipéptido” y “péptido” se refieren a un polímero de residuos de aminoácido y no están limitados a una longitud mínima del producto. Por tanto, péptidos, oligopéptidos, dímeros, multímeros y similares están incluidos dentro de la definición. Tanto las proteínas de longitud completa como fragmentos de las mimas están dentro de la definición. Los términos también incluyen modificaciones, tales como deleciones, adiciones y sustituciones (en general de naturaleza conservadora, pero que pueden ser no conservadoras), en una secuencia nativa, preferentemente tal que la proteína mantiene la capacidad de provocar una respuesta inmunológica dentro de un animal al que se administra la proteína. También se incluyen las modificaciones postexpresión, por ejemplo glicosilación, acetilación, lapidación, fosforilación y similares.
El término “recombinante", como se usa en el presente documento, se refiere a cualquier proteína polipéptido o célula que expresa un gen de interés producido por procedimientos de ingeniería genética. El término “recombinante”, como se usa con respecto a una proteína o polipéptido quiere decir un polipéptido producido mediante la expresión de un polinucleótido recombinante. Las proteínas de la presente invención se pueden aislar de una fuente natural o producirse mediante procedimientos de ingeniería genética. “Recombinante”, como se usa en el presente documento, describe además una molécula de ácido nucleico que, en virtud de su origen o manipulación, no está asociada con nada o una porción del polinucleótido con el que está asociada en la naturaleza. El término “recombinante”, como se usa con respecto a una célula huésped quiere decir una célula huésped que incluye un polinucleótido recombinante.
Los términos “estable” y “estabilidad” se refieren a la capacidad de un antígeno para permanecer inmunogénico durante un periodo de tiempo. La estabilidad se puede medir en potencia en el tiempo. Los términos “estable” y “estabilidad” se refieren también a la estabilidad física, química y conformaciones de la composición inmunogénica. La inestabilidad de una composición proteica puede deberse a la degradación química o agregación de las moléculas proteicas para formar polímeros de orden superior, mediante disociación de los heterodímeros en monómeros, desglucosilación, modificación de la glucosilación o cualquier otra modificación estructural que reduzca al menos una actividad biológica de la composición proteica incluida en la presente invención. La estabilidad se puede evaluar mediante procedimientos bien conocidos en la técnica, que incluyen la medición de la dispersión de la luz en una muestra, la atenuación aparente de la luz (absorbancia o densidad óptica), el tamaño (p. ej., cromatografía de exclusión por tamaño), la actividad biológica in vitro o in vivo y/o propiedades mediante calorimetría diferencial de barrido (CDB) En la técnica se conocen otros procedimientos para evaluar la estabilidad y también se pueden usar de acuerdo con la presente invención.
En algunas realizaciones, un antígeno en una formulación estable de la invención puede mantener al menos un 50 %, 60 %, 70 %, 75 %, 80 %, 85 %, 90 %, 95 %, 96 %, 97 %, 98 %, 99 % o 100 % de potencia, en comparación con un patrón de referencia, durante al menos 1 mes, 2 meses, 3 meses, 4 meses, 5 meses, 6 meses, 9 meses, 12 meses, 18 meses, 24 meses, 30 meses, 36 meses, 42 meses, 48 meses, 54 meses o 60 meses. En algunas realizaciones, un antígeno en una formulación estable de la invención puede mantener al menos un 50 % de potencia, en comparación con un patrón de referencia, durante al menos 1 año, 2 años, 3 años, 4 años o 5 años. Los términos “estable” y “estabilidad” también se refieren a la capacidad de un antígeno para mantener epítopos o inmunorreactividad durante un periodo de tiempo. Por ejemplo, un antígeno en una formulación estable de la invención puede mantener al menos un 50 %, 0,60 %, 70 %, 75 %, 80 %, 85 %, 90 %, 95 %, 96 %, 97 %, 98 %, 99 % o 100 % de sus epítopos o inmunorreactividad, en comparación con un patrón de referencia, durante al menos 1 mes, 2 meses, 3 meses, 4 meses, 5 meses, 6 meses, 9 meses, 12 meses, 18 meses, 24 meses, 30 meses, 36 meses, 42 meses, 48 meses, 54 meses o 60 meses. En algunas realizaciones, la estabilidad se mide con respecto a una condición ambiental. Ejemplos no limitantes de condiciones ambientales incluyen la luz, la temperatura, los ciclos de congelación/descongelación, la agitación y el pH. Un experto en la técnica podría determinar la presencia de epítopos antigénicos o inmunorreactividad usando los procedimientos divulgados en el presente documento u otros procedimientos conocidos en la técnica. Véase, por ejemplo, McNeil y col. Vaccine, 27: 3417-3421 (2009). En algunas realizaciones, la estabilidad de un antígeno se mide desde la fecha de su formulación. En algunas realizaciones, la estabilidad de un antígeno se mide desde la fecha de un cambio en sus condiciones de almacenamiento. Ejemplos no limitantes de cambios en las condiciones de almacenamiento incluyen cambios de congelado a refrigerado, cambios de congelado a temperatura ambiente, cambios de refrigerado a temperatura ambiente, cambios de refrigerado a congelado, cambios de temperatura ambiente a congelado, cambios de temperatura ambiente a refrigerado, cambios de luz a oscuridad o introducción de agitación.
El término “estabilizante” se refiere a un compuesto que se une a un antígeno y mantiene los epítopos o inmunorreactividad del antígeno durante un periodo de tiempo. Los estabilizantes se conocen en la técnica. Ejemplos de estabilizantes incluyen cationes multivalentes, por ejemplo de calcio o aluminio.
El término "sujeto" se refiere a un mamífero, ave, pez, reptil o cualquier otro animal. El término “sujeto” también incluye seres humanos. El término “sujeto” también incluye mascotas domésticas. Ejemplos no limitantes de mascotas domésticas incluyen: Perros, gatos, cerdos, conejos, ratas, ratones, jerbos, hámster, cobayas, hurones, aves, serpientes, lagartijas, peces, tortugas y ranas. El término “sujeto” también incluye animales de ganado. Ejemplos no limitantes de animales de ganado incluyen: alpacas, bisontes, camellos, ganado vacuno, ciervos, cerdos, caballos, llamas, mulas, burros, ovejas, cabras, conejos, renos, yak, pollos, gansos y pavos.
Los términos "vacuna" o "composición de vacuna", que se usan de forma intercambiable, se refieren a composiciones farmacéuticas que comprenden al menos una composición inmunogénica que induce una respuesta inmunitaria en un sujeto.
Descripción general
La presente invención surge del nuevo descubrimiento de que los antígenos rLP2086 de la subfamilia B, pero no los antígenos rLP2086 de la subfamilia A, pierden potencia en el tiempo en una formulación de vacuna bivalente y, por tanto, son inestables. Variando los componentes de la formulación bivalente se determinó que proporciones molares altas entre detergente y proteína en la formulación de vacuna bivalente tenía como resultado inestabilidad específica del antígeno rLP2086 de la subfamilia B. Reduciendo la proporción molar entre detergente y proteína en las formulaciones bivalentes y monovalentes se tuvo como resultado un incremento de la estabilidad, determinado por el mantenimiento de la potencia en el tiempo, del antígeno rLP2086 de la subfamilia B sin afectar a la estabilidad del antígeno rLP2086 de la subfamilia A. Este resultado es sorprendente porque las lipoproteínas normalmente se purifican y almacenan usando concentraciones de detergente altas para prevenir la agregación de sus restos lipídicos hidrófobos. En consecuencia, en algunas realizaciones, la invención proporciona una composición inmunogénica que comprende un antígeno rLP2086 de la subfamilia B y una proporción molar detergente-proteína baja. En algunas realizaciones, la invención proporciona un procedimiento de mantener la estabilidad de un antígeno rLP2086 de la subfamilia B en una composición inmunogénica que comprende la etapa de almacenar el antígeno rLP2086 de la subfamilia B en un tampón que comprende una proporción molar detergente-proteína baja.
En estudios adicionales se reveló que las formulaciones de proporción molar baja tenían como resultado la agregación de los antígenos rLP2086 de las subfamilias A y B tras agitación de las composiciones inmunogénicas de proporción molar baja. No obstante, el incremento de la concentración de aluminio en las composiciones de proporción molar baja previno la agregación de los antígenos rLP2086 de las subfamilias A y B, incluso con agitación. Además, los antígenos rLP2086 de la subfamilias A son más sensibles a los efectos de las proporciones molares del detergente bajas en ausencia de aluminio. En consecuencia, en algunas realizaciones, la invención proporciona una composición inmunogénica que comprende un antígeno rLP2086 de la subfamilia A, un antígeno rLP2086 de la subfamilia B, una concentración alta de aluminio y una proporción molar detergente-proteína baja. En algunas realizaciones, la invención proporciona un procedimiento de mantener la estabilidad de un antígeno rLP2086 de la subfamilia A y de de un antígeno rLP2086 de la subfamilia B en una composición inmunogénica que comprende la etapa de almacenar el antígeno rLP2086 de la subfamilia A y el antígeno rLP2086 de la subfamilia B en un tampón que comprende una concentración alta de aluminio y una proporción molar detergente-proteína baja.
Composiciones inmunogénicas
En la técnica se conocen composiciones inmunogénicas que incluyen una proteína codificada por una secuencia de nucleótidos del ORF2086 de Neisseria meningitidis. Ejemplos de composiciones inmunogénicas incluyen las descritas en las publicaciones de solicitud de patente de EE.UU. n° US 20060257413 y US 20090202593. Dichas composiciones inmunogénicas descritas en ellas incluyen una proteína que exhibe actividad bactericida identificada como proteína ORF2086, porciones inmunogénicas de la misma y/o equivalentes biológicos de la misma. La proteína ORF2086 se refiere a una proteína codificada por el marco de lectura abierto 2086 de especies de Neisseria.
La proteína puede ser una proteína recombinante o una proteína aislada de especies de Neisseria nativas. Por ejemplo, las proteínas ORF2086 de Neisseria se pueden aislar de cepas bacterianas, tales como de las especies de Neisseria, incluidas las cepas de Neisseria meningitidis (serogrupos A, B, C, D, W-135, X, Y, Z y 29E), Neisseria gonorrhoeae y Neisseria lactamica, así como porciones inmunogénicas y/o equivalentes biológicos de dichas proteínas.
Las proteínas ORF2086 incluyen las proteínas 2086 de la subfamilia A y las proteínas de la subfamilia B, porciones inmunogénicas de las mismas y/o equivalentes biológicos de las mismas. Las proteínas ORF2086 o equivalentes de las mismas pueden estar lipidadas o no lipidadas. Preferentemente, la proteína ORF2086 de Neisseria está lipidada.
En una realización, la composición inmunogénica incluye una proteína aislada que tiene una identidad de secuencia de aminoácidos de al menos un 95 % con una proteína codificada por una secuencia de nucleótidos de ORF2086 de Neisseria.
En una realización, la composición inmunogénica incluye una proteína aislada que tiene una identidad de secuencia de aminoácidos de al menos un 95 % con una proteína de la subfamilia A codificada por una secuencia de nucleótidos de ORF2086 de Neisseria. Preferentemente, la composición inmunogénica incluye una proteína aislada de la subfamilia A codificada por una secuencia de nucleótidos de ORF2086 de Neisseria.
En otra realización, la composición inmunogénica incluye una proteína aislada que tiene una identidad de secuencia de aminoácidos de al menos un 95 % con una proteína de la subfamilia B codificada por una secuencia de nucleótidos de ORF2086 de Neisseria. Preferentemente, la composición inmunogénica incluye una proteína aislada de la subfamilia B codificada por una secuencia de nucleótidos de ORF2086 de Neisseria. En algunas realizaciones, la proteína ORF2086 de la subfamilia B es una variante B01.
En otra realización más, la composición inmunogénica incluye una proteína aislada que tiene una identidad de secuencia de aminoácidos de al menos un 95 % con una proteína de la subfamilia A codificada por una secuencia de nucleótidos de ORF2086 de Neisseria y una proteína aislada que tiene una identidad de secuencia de aminoácidos de al menos un 95 % con una proteína de la subfamilia B codificada por una secuencia de nucleótidos de ORF2086 de Neisseria. Preferentemente, la composición inmunogénica incluye una proteína aislada de la subfamilia A codificada por una secuencia de nucleótidos de ORF2086 de Neisseria y una proteína aislada de la subfamilia B codificada por una secuencia de nucleótidos de ORF2086 de Neisseria.
En una realización, la composición inmunogénica incluye una proporción 1:1 entre una proteína de la subfamilia A y una proteína de la subfamilia B.
La composición inmunogénica puede incluir una proteína codificada por una secuencia de nucleótidos de ORF2086 de Neisseria, polinucleótidos o equivalentes de la misma, como único inmunógeno activo en la composición inmunogénica. Como alternativa, la composición inmunogénica puede incluir además inmunógenos activos, incluidos polipéptidos inmunogénicos de Neisseria sp., o proteínas inmunológicamente activas de uno o más patógenos microbianos distintos (p. ej., virus, prión, bacteria u hongo, sin limitaciones) o polisacárido capsular. Las composiciones pueden comprender una o más proteínas, fragmentos o compuestos farmacéuticos deseados, según se desee para una indicación escogida.
En la presente invención se contempla cualquier composición inmunogénica multiantígeno o multivalente. Por ejemplo, la composición inmunogénica puede incluir combinaciones de dos o más proteínas ORF2086, una combinación de una proteína ORF2086 con una o más proteínas Por A, una combinación de una proteína ORF2086 con polisacáridos y/o conjugados polisacáridos del serogrupo A, C, Y y W135 de meningococcus, una combinación de una proteína ORF2086 con combinaciones de meningococcus y pneumococcus o una combinación de cualquiera de los anteriores en una forma adecuada para una administración deseada, por ejemplo para liberación en la mucosa. Los expertos en la técnica podrán formular fácilmente dichas composiciones multiantígeno o multivalentes.
La presente invención también contempla regímenes multi-inmunización en los que cualquier composición útil contra un patógeno se puede combinar en o con las composiciones de la presente invención. Por ejemplo, sin limitaciones, se puede administrar a un paciente la composición inmunogénica de la presente invención y otra composición inmunológica para inmunizar contra el papilomavirus humano (PVH), tal como la vacuna contra el PVH GARDASIL®, como parte de una régimen de multi-inmunización. Los expertos en la técnica podrán seleccionar fácilmente composiciones inmunogénicas para usar junto con las composiciones inmunogénicas de la presente invención para los fines de desarrollar e implementar regímenes de multi-inmunización.
Los polipéptidos ORF2086, fragmentos y equivalentes se pueden usar como parte de una composición inmunogénica conjugada; en la que una o más proteínas o polipéptidos se conjugan con un vehículo con el fin de generar una composición que tenga propiedades inmunogénicos contra varios serotipos y/o contra varias enfermedades. Como alternativa, uno de los polipéptidos ORF2086 se puede usar como proteína vehículo para otros polipéptidos inmunogénicos. La formulación de dichas composiciones inmunogénicas es bien conocida para los expertos en este campo.
Las composiciones inmunogénicas de la invención incluyen, preferentemente, un vehículo farmacéuticamente aceptable. Vehículos y/o diluyentes farmacéuticamente aceptables incluyen todos y cada uno de los disolventes, medios de dispersión, cargas, vehículos sólidos, soluciones acuosas, recubrimientos, agentes antibacterianos y antifúngicos, agentes isotónicos y retardantes de la absorción, y similares. Transportadores farmacéuticamente aceptables incluyen, por ejemplo, uno o más de agua, solución salina, solución salina tamponada con fosfato, dextrosa, glicerol, etanol y similares, así como combinaciones de los mismos.
Vehículos farmacéuticamente aceptables pueden también incluir cantidades minoritarias de sustancias auxiliares, tales como agentes humectantes o emulsionantes, conservantes o tampones, que potencian la vida de almacenamiento o la eficacia del anticuerpo. La preparación y uso de los vehículos farmacéuticamente aceptables se conocen bien en la técnica. Excepto cuando alguno de los medios o agentes convencional sea incompatible con el principio, se contempla el uso de los mismos en las composiciones inmunogénicas de la presente invención.
Las composiciones inmunogénicas se pueden administrar por vía parenteral, por ejemplo mediante inyección, bien subcutánea o intramuscular, además de por vía oral o intranasal. Procedimientos para inmunización intramuscular se describen en Wolff y col. Biotechniques;11(4):474-85, (1991). y por Sedegah y col. PNAS Vol. 91, pp. 9866-9870, (1994). Otros modos de administración emplean formulaciones orales, formulaciones pulmonares, supositorios y aplicaciones transdérmicas, por ejemplo, sin limitaciones. Por ejemplo, las formulaciones orales incluyen dichos excipientes empleados habitualmente, por ejemplo calidades farmacéuticas de manitol, lactosa, almidón, estearato de magnesio, sacarina sódica, celulosa, carbonato de magnesio y similares, sin limitaciones. Preferentemente, la composición inmunogénica se administra por vía intramuscular.
Las composiciones inmunogénicas pueden puede incluir uno o más adyuvantes. Ejemplos de adyuvantes incluyen, entre otros, hidróxido de aluminio, fosfato de aluminio; STIMULON™ QS-21 (Aquila Biopharmaceuticals, Inc., Framingham, Mass.); MPL™ (3-O-desacilado monofosforilo lípido A; Corixa, Hamilton, Mont.), 529 (un compuesto de aminoalquilglucosamina fosfatos, Corixa, Hamilton, Mont.), IL-12 (Genetics Institute, Cambridge, Mass.); GM-CSF (Immunex Corp., Seattle, Wash.); N-acetil-muramil-L-treonil-D-isoglutamina (thr-MDP); N-acetil-no-muramil-L-alanil-D-isoglutamina (CGP 11637, denominada nor-MDP); N-acetilmuramil-L-alanil-D-isoglutaminil-L-alanina-2-(1'-2 -dipalmitoil-sn-glicero-3-hidroxifos-foriloxi-etilamina) (CGP 19835A, denominado MTP-PE); y toxina del cólera. En ciertas realizaciones preferidas, el adyuvante es QS-21.
Ejemplos de adyuvantes adicionales incluyen derivados no tóxicos de la toxina del cólera, incluida su subunidad A y/o conjugados o fusiones de ingeniería genética del polipéptido de N. meningitidis con la toxina del cólera o su subunidad B (“CTB”), procoleragenoide, polisacáridos fúngicos, incluidos esquizofilano, dipéptido muramilo, derivados del dipéptido muramilo (“MDP”), ésteres de forbol, la toxina termolábil de E. coli, copolímeros de bloque o saponinas.
Se ha usado fosfato de aluminio como adyuvante en un ensayo clínico de fase I hasta una concentración de 0,125 mg/dosis, mucho menor que el límite de 0,85 mg/ dosis especificada por el Código de Reglamentos Federales de EE.UU. [610(a)]. Los adyuvantes que contienen aluminio son muy usados en seres humanos para potenciar la respuesta inmunológica de antígenos cuando se administran por vía intramuscular o subcutánea.
En ciertas realizaciones, las proteínas de la presente invención se usan en una composición inmunogénica para administración oral, que incluye un adyuvante y se usa para el tratamiento o prevención de la infección de N. meningitidis en un huésped humano. El adyuvante mucoso puede ser una toxina del cólera; no obstante, preferentemente los adyuvantes mucosos distintos de la toxina del cólera que se pueden usar de acuerdo con la presente invención incluyen derivados no tóxicos de una holotoxina del cólera, en los que la subunidad A es una toxina del cólera mutageneizada, químicamente modificada, o proteínas relacionadas producidas mediante modificación de la secuencia de aminoácidos de la toxina del cólera. Para una toxina del cólera específica que puede ser particularmente útil en la preparación de composiciones inmunogénicas de la presente invención, véase la holotoxina del cólera mutante E29H, tal como se divulga en la solicitud internacional publicada WO 00/18434. Estas se pueden añadir os polipéptidos de la presente invención o conjugar con ellos. Las mismas técnicas se pueden aplicar a otras moléculas con propiedades de adyuvante mucoso o de liberación, tal como la toxina termolábil (TL) de Escherichia coli. Se pueden usar otros compuestos con actividad de adyuvante mucoso o de liberación, tales como bilis; policationes tales como DEAE-dextrano y poliornitina; detergentes tales como dodecilsulfato sódico; materiales conjugados con lípidos; antibióticos tales como estreptomicina; vitamina A; y otros compuestos que alteran la integridad estructural y funcional de las superficies mucosas. Otros compuestos activos en la mucosa incluyen derivados de estructuras microbianas, tales como MDP; acridina y cimetidina. Se pueden usar STIMULON™ QS-21, MPL e IL-12, tal como se han descrito anteriormente.
Las composiciones inmunogénicas de la presente invención se pueden administrar en forma de ISCOMS (complejos estimulantes del sistema inmunitario), CTB que contienen ISCOMS liposomas o encapsuladas en compuestos tales como acrilatos o poli(DL-lactida-co-glicósido) para formar microesferas de un tamaño adecuado para adsorción. Las proteínas de la presente invención pueden también incorporarse en emulsiones oleosas.
Una cantidad (es decir, dosis) de composición inmunógena que se administra al paciente se puede determinar de acuerdo con técnicas estándar conocidas para los expertos en la técnica, teniendo en cuenta factores tales como el antígeno concreto, el adyuvante (si está presente), la edad, el sexo, el peso, la especie, el estado del paciente concreto y la vía de administración.
Por ejemplo, una dosis para un paciente adolescente humano puede incluir al menos 0,1,1|jg, 1 |jg, 10 |jg o 50 |jg de una proteína ORF2086 de Neisseria y como máximo 80 jig, 100 jig, 150 jig, o 200 jig de una proteína ORF2086 de Neisseria. Cualquier valor mínimo y cualquier valor máximo se pueden combinar para definir un intervalo adecuado.
Ensayos de potencia in vitro
La potencia se determina mediante cuantificación de los epítopos funcionales en las proteínas de la subfamilia A y la subfamilia B en una composición inmunogénica usando anticuerpos monoclonales específicos de conformación contra un material de referencia rLP2086. La potencia se determina mediante medida cuantitativa de los epítopos funcionales en las proteínas rLP2086 de la subfamilia A y la subfamilia B que provocarán una respuesta inmunitaria in vivo para generar anticuerpos bactericidas. La tecnología cuantitativa se usa para el ensayo de potencia con determinados anticuerpos monoclonales (AcMo). Para cada subfamilia de proteína rLP2086 en las composiciones inmunogénicas se seleccionan dos anticuerpos monoclonales funcionales conformacionales y no solapantes. Entre los dos anticuerpos monoclonales purificados, el primer anticuerpo se conjuga con un primer marcador, en el que el primer marcador se usa para capturar la molécula proteica rLP2086. En algunas realizaciones, el primer marcador es biotina, glutatión-S-transferasa (GST), un marcador de 6 His o perlas (p. ej., perlas de poliestireno carboxiladas o perlas paramagnéticas). En algunas realizaciones, el primer marcador se captura con perlas de estreptavidina, una columna de estreptavidina, perlas de níquel, una columna de níquel, centrifugación o con un campo magnético. El segundo anticuerpo se conjuga con un segundo marcador, en el que el segundo marcador es cuantificable. En algunas realizaciones, el segundo marcador es biotina, peroxidasa de rábano (HRP), un fluróforo o un radiomarcador. En algunas realizaciones, el segundo marcador se detecta con estreptavidina conjugada con un fluoróforo o HRP, mediante electroquimioluminiscencia, detección de fluorescencia o detección de radioactividad. Solo se medirán las proteínas que exhiben ambos epítopos reconocidos por los dos AcMo en cada composición inmunogénica. Se reflejarán los cambios en uno cualquiera o ambos epítopos de la proteína. La potencia de la muestra se comunica con respecto a la potencia del material de referencia.
En algunas realizaciones, la invención abarca un procedimiento para determinar la potencia de una proteína 2086. En algunas realizaciones, el procedimiento comprende las etapas de: (1) incubar un primer Ac monoclonal y un segundo AcMo con una composición inmunogénica que comprende una proteína 2086, en el que el primer AcMo se conjuga con un primer marcador que se usa para capturar el AcMo y el segundo AcMo se conjuga con un segundo marcador que es detectable y en el que los AcMo primero y segundo están dirigidos a diferentes epítopos conformacionales sobre una proteína 2086 de referencia; (2) capturar el primer AcMo unido a la proteína 2086 usando el primer marcador; y (3) detectar y cuantificar la cantidad de segundo AcMo unido a la proteína 2086 usando el segundo marcador. En algunas realizaciones, la proteína 2086 es una proteína de la subfamilia A. En algunas realizaciones, la proteína 2086 es una proteína de la subfamilia B. En algunas realizaciones, la proteína 2086 está lipidada. En algunas realizaciones, la proteína 2086 no está lipidada. En algunas realizaciones, la proteína 2086 es recombinante. En algunas realizaciones, el primer marcador es biotina, un marcador de 6 His o perlas (p. ej., perlas de poliestireno carboxiladas o perlas paramagnéticas). En algunas realizaciones, el primer marcador se captura con perlas de estreptavidina, una columna de estreptavidina, perlas de glutatión, perlas de níquel, una columna de níquel, centrifugación o con un campo magnético. En algunas realizaciones, el segundo marcador es biotina, HRP, un fluróforo o un radiomarcador. En algunas realizaciones, el segundo marcador se detecta con estreptavidina conjugada con un fluoróforo o HRP, mediante electroquimioluminiscencia, detección de fluorescencia o detección de radioactividad. En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende múltiples variantes de proteínas 2086.
Estabilidad de la potencia del antígeno rLP2086 de la subfamilia B
En algunas realizaciones, la invención proporciona una composición inmunogénica para estabilizar antígenos rLP2086 de la subfamilia B en el tiempo, que comprende un tampón con una proporción molar detergente-proteína baja.
En algunas realizaciones, la proporción molar detergente-proteína en la composición inmunogénica está entre aproximadamente 0,5 y aproximadamente 10. En algunas realizaciones, la proporción molar detergente-proteína en la composición inmunogénica está entre aproximadamente 1 y aproximadamente 5. En algunas realizaciones, la proporción molar detergente-proteína en la composición inmunogénica está entre aproximadamente 1,4 y aproximadamente 4,2. En algunas realizaciones, la proporción molar detergente-proteína en la composición inmunogénica es de aproximadamente 0,5, aproximadamente 0,6, aproximadamente 0,7, aproximadamente 0,8, aproximadamente 0,9, aproximadamente 1,0, aproximadamente 1,1, aproximadamente 1,2, aproximadamente 1,3, aproximadamente 1,4, aproximadamente 1,5, aproximadamente 1,6, aproximadamente 1,7, aproximadamente 1,8, aproximadamente 1,9, aproximadamente 2,0, aproximadamente 2,1, aproximadamente 2,2, aproximadamente 2,3, aproximadamente 2,4, aproximadamente 2,5, aproximadamente 2,6, aproximadamente 2,7, aproximadamente 2,8, aproximadamente 2,9, aproximadamente 3,0, aproximadamente 3,1, aproximadamente 3,2, aproximadamente 3,3, aproximadamente 3,4, aproximadamente 3,5, aproximadamente 3,6, aproximadamente 3,7, aproximadamente 3,8, aproximadamente 3,9, aproximadamente 4,0, aproximadamente 4,1, aproximadamente 4,2, aproximadamente 4,3, aproximadamente 4,4, aproximadamente 4,5, aproximadamente 4,6, aproximadamente 4,7, aproximadamente 4,8, aproximadamente 4,9, aproximadamente 5,0, aproximadamente 5,5, aproximadamente 6,0, aproximadamente 6,5, aproximadamente 7,0, aproximadamente 7,5, aproximadamente 8,0, aproximadamente 8,5, aproximadamente 9,0, aproximadamente 9,5, o aproximadamente 10. En algunas realizaciones, el detergente es un detergente no iónico. En algunas realizaciones, el detergente es un detergente de polisorbato. En algunas realizaciones, el detergente es polisorbato 80.
En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende además un catión multivalente. En algunas realizaciones, el catión multivalente es calcio o aluminio. En algunas realizaciones, el aluminio está presente como uno o más de AIPO4, Al(OH)3, Ah(SO4)3 y alumbre. En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende entre aproximadamente 0,1 mg/ml y aproximadamente 1 mg/ml, entre aproximadamente 0,25 mg/ml y aproximadamente 0,75 mg/ml o entre aproximadamente 0,4 mg/ml y aproximadamente 0,6 mg/ml de aluminio. En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende aproximadamente 0,1 mg/ml, aproximadamente 0,15 mg/ml; aproximadamente 0,2 mg/ml, aproximadamente 0,25 mg/ml, aproximadamente 0,3 mg/ml, aproximadamente 0,35 mg/ml, aproximadamente 0,4 mg/ml, aproximadamente 0,45 mg/ml, aproximadamente 0,5 mg/ml, aproximadamente 0,55 mg/ml, aproximadamente 0,6 mg/ml, aproximadamente 0,65 mg/ml, aproximadamente 0,7 mg/ml, aproximadamente 0,75 mg/ml, aproximadamente 0,8 mg/ml, aproximadamente 0,85 mg/ml, 0,9 mg/ml, aproximadamente 0,95 mg/ml, o aproximadamente 1 mg/ml de aluminio. En algunas realizaciones, hay al menos 90 %, al menos 95 %, al menos 96 %, al menos 97 %, al menos 98 %, al menos 99 % o 100 % de unión de aluminio a la proteína.
En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende además tampón que comprende histidina. En algunas realizaciones, la concentración de histidina está entre aproximadamente 2mM y aproximadamente 20 mM, entre aproximadamente 5 mM y aproximadamente 15 mM o entre aproximadamente 8 mM y 12 mM. En algunas realizaciones, la concentración de histidina es aproximadamente 2 mM, aproximadamente 3 mM, aproximadamente 4 mM, aproximadamente 5 mM, aproximadamente 6 mM, aproximadamente 7 mM, aproximadamente 8 mM, aproximadamente 9 mM, aproximadamente 10 mM, aproximadamente 11 mM, aproximadamente 12 mM, aproximadamente 13 mM, aproximadamente 14 mM, aproximadamente 15 mM, aproximadamente 16 mM, aproximadamente 17 mM, aproximadamente 18 mM, aproximadamente 19 mM o aproximadamente 20 mM.
En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende además tampón que comprende succinato. En algunas realizaciones, la concentración de succinato está entre aproximadamente 2mM y aproximadamente 20 mM, entre aproximadamente 2 mM y aproximadamente 10 mM o entre aproximadamente 3 mM y 7 mM. En algunas realizaciones, la concentración de succinato es aproximadamente 2 mM, aproximadamente 3 mM, aproximadamente 4 mM, aproximadamente 5 mM, aproximadamente 6 mM, aproximadamente 7 mM, aproximadamente 8 mM, aproximadamente 9 mM, aproximadamente 10 mM, aproximadamente 11 mM, aproximadamente 12 mM, aproximadamente 13 mM, aproximadamente 14 mM, aproximadamente 15 mM, aproximadamente 16 mM, aproximadamente 17 mM, aproximadamente 18 mM, aproximadamente 19 mM o aproximadamente 20 mM.
En algunas realizaciones, el pH de la composición inmunogénica tiene un pH de entre aproximadamente 5,0 y aproximadamente 8,0 o entre aproximadamente 5,5 y aproximadamente 7,0; o entre aproximadamente 5,8 y aproximadamente 6,0. En algunas realizaciones, el pH de la composición inmunogénica tiene un pH de aproximadamente 5,0, aproximadamente 5,1, aproximadamente 5,2, aproximadamente 5,3, aproximadamente 5,4, aproximadamente 5,5, aproximadamente 5,6, aproximadamente 5,7, aproximadamente 5,8, aproximadamente 5,9, aproximadamente 6,0, aproximadamente 6,1, aproximadamente 6,2, aproximadamente 6,3, aproximadamente 6,4 o aproximadamente 6,5.
En algunas realizaciones, la formulación de la composición inmunogénica del antígeno proteico MnB rLP2086 de la subfamilia B es solución salina tamponada con histidina 10 mM, a pH 6,0, que contiene 0,5 mg/ml de aluminio como fosfato se aluminio y una proporción polisorbato 80-proteína de 2,8.
En algunas realizaciones, la formulación de la composición inmunogénica del antígeno proteico MnB rLP2086 de la subfamilia B es solución salina tamponada con succinato 5 mM, a pH 6,0, que contiene 0,5 mg/ml de aluminio como fosfato se aluminio y una proporción polisorbato 80-proteína de 2,8.
En algunas realizaciones, la invención proporciona un procedimiento de estabilizar antígenos rLP2086 de la subfamilia B en el tiempo, que comprende almacenar los antígenos en un tampón con una proporción molar detergente-proteína baja.
En algunas realizaciones, la proporción molar detergente-proteína en el tampón está entre aproximadamente 0,5 y aproximadamente 10. En algunas realizaciones, la proporción molar detergente-proteína en el tampón está entre aproximadamente 1 y aproximadamente 5. En algunas realizaciones, la proporción molar detergente-proteína en el tampón está entre aproximadamente 1,4 y aproximadamente 4,2. En algunas realizaciones, la proporción molar detergente-proteína en el tampón es de aproximadamente 0,5,aproximadamente 0,6, aproximadamente 0,7, aproximadamente 0,8, aproximadamente 0,9, aproximadamente 1,0, aproximadamente 1,1, aproximadamente 1,2, aproximadamente 1,3, aproximadamente 1,4, aproximadamente 1,5, aproximadamente 1,6, aproximadamente 1,7, aproximadamente 1,8, aproximadamente 1,9, aproximadamente 2,0, aproximadamente 2,1, aproximadamente 2,2, aproximadamente 2,3, aproximadamente 2,4, aproximadamente 2,5, aproximadamente 2,6, aproximadamente 2,7, aproximadamente 2,8, aproximadamente 2,9, aproximadamente 3,0, aproximadamente 3,1, aproximadamente 3,2, aproximadamente 3,3, aproximadamente 3,4, aproximadamente 3,5, aproximadamente 3,6, aproximadamente 3,7, aproximadamente 3,8, aproximadamente 3,9, aproximadamente 4,0, aproximadamente 4,1, aproximadamente 4,2, aproximadamente 4,3, aproximadamente 4,4, aproximadamente 4,5, aproximadamente 4,6, aproximadamente 4,7, aproximadamente 4,8, aproximadamente 4,9, aproximadamente 5,0, aproximadamente 5,5, aproximadamente 6,0, aproximadamente 6,5, aproximadamente 7,0, aproximadamente 7,5, aproximadamente 8,0, aproximadamente 8,5, aproximadamente 9,0, aproximadamente 9,5, o aproximadamente 10. En algunas realizaciones, el detergente es un detergente no iónico. En algunas realizaciones, el detergente es un detergente de polisorbato. En algunas realizaciones, el detergente es polisorbato-80.
En algunas realizaciones, el tampón comprende además un catión multivalente. En algunas realizaciones, el catión multivalente es calcio o aluminio. En algunas realizaciones, el aluminio está presente como uno o más de APO4, Al(OH)3, Ah(SO4)3 y alumbre. En algunas realizaciones, el estabilizante en el tampón está entre aproximadamente 0,1 mg/ml y aproximadamente 1 mg/ml, entre aproximadamente 0,25 mg/ml y aproximadamente 0,75 mg/ml o entre aproximadamente 0,4 mg/ml y aproximadamente 0,6 mg/ml de aluminio. En algunas realizaciones, el estabilizante en el tampón es aproximadamente 0,1 mg/ml, aproximadamente 0,15 mg/ml; aproximadamente 0,2 mg/ml, aproximadamente 0,25 mg/ml, aproximadamente 0,3 mg/ml, aproximadamente 0,35 mg/ml, aproximadamente 0,4 mg/ml, aproximadamente 0,45 mg/ml, aproximadamente 0,5 mg/ml, aproximadamente 0,55 mg/ml, aproximadamente 0,6 mg/ml, aproximadamente 0,65 mg/ml, aproximadamente 0,7 mg/ml, aproximadamente 0,75 mg/ml, aproximadamente 0,8 mg/ml, aproximadamente 0,85 mg/ml, 0,9 mg/ml, aproximadamente 0,95 mg/ml, o aproximadamente 1 mg/ml de aluminio. En algunas realizaciones, hay al menos 90 %, al menos 95 %, al menos 96 %, al menos 97 %, al menos 98 %, al menos 99 % o 100 % de unión de aluminio a la proteína.
En algunas realizaciones, el tampón comprende además histidina. En algunas realizaciones, la concentración de histidina está entre aproximadamente 2mM y aproximadamente 20 mM, entre aproximadamente 5 mM y aproximadamente 15 mM o entre aproximadamente 8 mM y 12 mM. En algunas realizaciones, la concentración de histidina es aproximadamente 2 mM, aproximadamente 3 mM, aproximadamente 4 mM, aproximadamente 5 mM, aproximadamente 6 mM, aproximadamente 7 mM, aproximadamente 8 mM, aproximadamente 9 mM, aproximadamente 10 mM, aproximadamente 11 mM, aproximadamente 12 mM, aproximadamente 13 mM, aproximadamente 14 mM, aproximadamente 15 mM, aproximadamente 16 mM, aproximadamente 17 mM, aproximadamente 18 mM, aproximadamente 19 mM o aproximadamente 20 mM.
En algunas realizaciones, el tampón comprende además succinato. En algunas realizaciones, la concentración de succinato está entre aproximadamente 2mM y aproximadamente 20 mM, entre aproximadamente 2 mM y aproximadamente 10 mM o entre aproximadamente 3 mM y 7 mM. En algunas realizaciones, la concentración de succinato es aproximadamente 2 mM, aproximadamente 3 mM, aproximadamente 4 mM, aproximadamente 5 mM, aproximadamente 6 mM, aproximadamente 7 mM, aproximadamente 8 mM, aproximadamente 9 mM, aproximadamente 10 mM, aproximadamente 11 mM, aproximadamente 12 mM, aproximadamente 13 mM, aproximadamente 14 mM, aproximadamente 15 mM, aproximadamente 16 mM, aproximadamente 17 mM, aproximadamente 18 mM, aproximadamente 19 mM o aproximadamente 20 mM.
En algunas realizaciones, el tampón tiene un pH de entre aproximadamente 5,0 y aproximadamente 8,0 o entre aproximadamente 5,5 y aproximadamente 7,0; o entre aproximadamente 5,8 y aproximadamente 6,0. En algunas realizaciones, el tampón tiene un pH de aproximadamente 5,0, aproximadamente 5,1, aproximadamente 5,2, aproximadamente 5,3, aproximadamente 5,4, aproximadamente 5,5, aproximadamente 5,6, aproximadamente 5,7, aproximadamente 5,8, aproximadamente 5,9, aproximadamente 6,0, aproximadamente 6,1, aproximadamente 6,2, aproximadamente 6,3, aproximadamente 6,4 o aproximadamente 6,5.
En algunas realizaciones, el tampón en el que se almacena el antígeno proteico MnB rLP2086 de la subfamilia B es solución salina tamponada con histidina 10 mM, a pH 6,0, que contiene 0,5 mg/ml de aluminio como fosfato se aluminio y una proporción polisorbato 80-proteína de 2,8.
En algunas realizaciones, el tampón en el que se almacena el antígeno proteico MnB rLP2086 de la subfamilia B es solución salina tamponada con succinato 5 mM, a pH 6,0, que contiene 0,5 mg/ml de aluminio como fosfato se aluminio y una proporción polisorbato 80-proteína de 2,8.
Estabilidad de la potencia del antígeno rLP2086 de la subfamilia A y B
En algunas realizaciones, la invención proporciona una composición inmunogénica para estabilizar antígenos rLP2086 de la subfamilia A y/o los antígenos rLP2086 de la subfamilia B en el tiempo, que comprende un tampón con una concentración de estabilizante alta y una proporción molar detergente-proteína baja.
En algunas realizaciones, la proporción molar detergente-proteína en la composición inmunogénica está entre aproximadamente 0,5 y aproximadamente 10. En algunas realizaciones, la proporción molar detergente-proteína en la composición inmunogénica está entre aproximadamente 1 y aproximadamente 5. En algunas realizaciones, la proporción molar detergente-proteína en la composición inmunogénica está entre aproximadamente 1,4 y aproximadamente 4,2. En algunas realizaciones, la proporción molar detergente-proteína en la composición inmunogénica es de aproximadamente 0,5,aproximadamente 0,6, aproximadamente 0,7, aproximadamente 0,8, aproximadamente 0,9, aproximadamente 1,0, aproximadamente 1,1, aproximadamente 1,2, aproximadamente 1,3, aproximadamente 1,4, aproximadamente 1,5, aproximadamente 1,6, aproximadamente 1,7, aproximadamente 1,8, aproximadamente 1,9, aproximadamente 2,0, aproximadamente 2,1, aproximadamente 2,2, aproximadamente 2,3, aproximadamente 2,4, aproximadamente 2,5, aproximadamente 2,6, aproximadamente 2,7, aproximadamente 2,8, aproximadamente 2,9, aproximadamente 3,0, aproximadamente 3,1, aproximadamente 3,2, aproximadamente 3,3, aproximadamente 3,4, aproximadamente 3,5, aproximadamente 3,6, aproximadamente 3,7, aproximadamente 3,8, aproximadamente 3,9, aproximadamente 4,0, aproximadamente 4,1, aproximadamente 4,2, aproximadamente 4,3, aproximadamente 4,4, aproximadamente 4,5, aproximadamente 4,6, aproximadamente 4,7, aproximadamente 4,8, aproximadamente 4,9, aproximadamente 5,0, aproximadamente 5,5, aproximadamente 6,0, aproximadamente 6,5, aproximadamente 7,0, aproximadamente 7,5, aproximadamente 8,0, aproximadamente 8,5, aproximadamente 9,0, aproximadamente 9,5, o aproximadamente 10. En algunas realizaciones, el detergente es un detergente no iónico. En algunas realizaciones, el detergente es un detergente de polisorbato. En algunas realizaciones, el detergente es polisorbato80.
En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende además un catión multivalente. En algunas realizaciones, el catión multivalente es calcio o aluminio. En algunas realizaciones, el aluminio está presente como uno o más de APO4, Al(OH)3, Ah(SO4)3 y alumbre. En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende entre aproximadamente 0,1 mg/ml y aproximadamente 1 mg/ml, entre aproximadamente 0,25 mg/ml y aproximadamente 0,75 mg/ml o entre aproximadamente 0,4 mg/ml y aproximadamente 0,6 mg/ml de aluminio. En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende aproximadamente 0,1 mg/ml, aproximadamente 0,15 mg/ml; aproximadamente 0,2 mg/ml, aproximadamente 0,25 mg/ml, aproximadamente 0,3 mg/ml, aproximadamente 0,35 mg/ml, aproximadamente 0,4 mg/ml, aproximadamente 0,45 mg/ml, aproximadamente 0,5 mg/ml, aproximadamente 0,55 mg/ml, aproximadamente 0,6 mg/ml, aproximadamente 0,65 mg/ml, aproximadamente 0,7 mg/ml, aproximadamente 0,75 mg/ml, aproximadamente 0,8 mg/ml, aproximadamente 0,85 mg/ml, 0,9 mg/ml, aproximadamente 0,95 mg/ml, o aproximadamente 1 mg/ml de aluminio. En algunas realizaciones, hay al menos 90 %, al menos 95 %, al menos 96 %, al menos 97 %, al menos 98 %, al menos 99 % o 100 % de unión de aluminio a la proteína.
En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende además tampón que comprende histidina. En algunas realizaciones, la concentración de histidina está entre aproximadamente 2mM y aproximadamente 20 mM, entre aproximadamente 5 mM y aproximadamente 15 mM o entre aproximadamente 8 mM y 12 mM. En algunas realizaciones, la concentración de histidina es aproximadamente 2 mM, aproximadamente 3 mM, aproximadamente 4 mM, aproximadamente 5 mM, aproximadamente 6 mM, aproximadamente 7 mM, aproximadamente 8 mM, aproximadamente 9 mM, aproximadamente 10 mM, aproximadamente 11 mM, aproximadamente 12 mM, aproximadamente 13 mM, aproximadamente 14 mM, aproximadamente 15 mM, aproximadamente 16 mM, aproximadamente 17 mM, aproximadamente 18 mM, aproximadamente 19 mM o aproximadamente 20 mM.
En algunas realizaciones, la composición inmunogénica comprende además tampón que comprende succinato. En algunas realizaciones, la concentración de succinato está entre aproximadamente 2mM y aproximadamente 20 mM, entre aproximadamente 2 mM y aproximadamente 10 mM o entre aproximadamente 3 mM y 7 mM. En algunas realizaciones, la concentración de succinato es aproximadamente 2 mM, aproximadamente 3 mM, aproximadamente 4 mM, aproximadamente 5 mM, aproximadamente 6 mM, aproximadamente 7 mM, aproximadamente 8 mM, aproximadamente 9 mM, aproximadamente 10 mM, aproximadamente 11 mM, aproximadamente 12 mM, aproximadamente 13 mM, aproximadamente 14 mM, aproximadamente 15 mM, aproximadamente 16 mM, aproximadamente 17 mM, aproximadamente 18 mM, aproximadamente 19 mM o aproximadamente 20 mM.
En algunas realizaciones, la composición inmunogénica tiene un pH de entre aproximadamente 5,0 y aproximadamente 8,0 o entre aproximadamente 5,5 y aproximadamente 7,0; o entre aproximadamente 5,8 y aproximadamente 6,0. En algunas realizaciones, la composición inmunogénica tiene un pH de aproximadamente 5,0, aproximadamente 5,1, aproximadamente 5,2, aproximadamente 5,3, aproximadamente 5,4, aproximadamente 5,5, aproximadamente 5,6, aproximadamente 5,7, aproximadamente 5,8, aproximadamente 5,9, aproximadamente 6,0, aproximadamente 6,1, aproximadamente 6,2, aproximadamente 6,3, aproximadamente 6,4 o aproximadamente 6,5.
En algunas realizaciones, la formulación de los antígenos proteicos MnB rLP2086 de las subfamilias A y B es solución salina tamponada con histidina 10 mM, a pH 6,0, que contiene 0,5 mg/ml de aluminio como fosfato se aluminio y una proporción polisorbato 80-proteína de 2,8.
En algunas realizaciones, la formulación de la composición inmunogénica del antígeno proteico MnB rLP2086 de la subfamilia B es solución salina tamponada con succinato 5 mM, a pH 6,0, que contiene 0,5 mg/ml de aluminio como fosfato se aluminio y una proporción polisorbato 80-proteína de 2,8.
En algunas realizaciones, la invención proporciona un procedimiento de estabilizar los antígenos rLP2086 de la subfamilia A y/o los antígenos rLP2086 de la subfamilia B en el tiempo, que comprende almacenar los antígenos en un tampón con una concentración de estabilizante alta y una proporción molar detergente-proteína baja.
En algunas realizaciones, la proporción molar detergente-proteína es inferior a 10:1. En el tampón algunas realizaciones, la proporción molar detergente-proteína en el tampón está entre aproximadamente 0,5 y aproximadamente 10. En algunas realizaciones, la proporción molar detergente-proteína en el tampón está entre aproximadamente 1 y aproximadamente 5. En algunas realizaciones, la proporción molar detergente-proteína en el tampón está entre aproximadamente 1,4 y aproximadamente 4,2. En algunas realizaciones, la proporción molar detergente-proteína en el tampón es de aproximadamente 0,5,aproximadamente 0,6, aproximadamente 0,7, aproximadamente 0,8, aproximadamente 0,9, aproximadamente 1,0, aproximadamente 1,1, aproximadamente 1,2, aproximadamente 1,3, aproximadamente 1,4, aproximadamente 1,5, aproximadamente 1,6, aproximadamente 1,7, aproximadamente 1,8, aproximadamente 1,9, aproximadamente 2,0, aproximadamente 2,1, aproximadamente 2,2, aproximadamente 2,3, aproximadamente 2,4, aproximadamente 2,5, aproximadamente 2,6, aproximadamente 2,7, aproximadamente 2,8, aproximadamente 2,9, aproximadamente 3,0, aproximadamente 3,1, aproximadamente 3,2, aproximadamente 3,3, aproximadamente 3,4, aproximadamente 3,5, aproximadamente 3,6, aproximadamente 3,7, aproximadamente 3,8, aproximadamente 3,9, aproximadamente 4,0, aproximadamente 4,1, aproximadamente 4,2, aproximadamente 4,3, aproximadamente 4,4, aproximadamente 4,5, aproximadamente 4,6, aproximadamente 4,7, aproximadamente 4,8, aproximadamente 4,9, aproximadamente 5,0, aproximadamente 5,5, aproximadamente 6,0, aproximadamente 6,5, aproximadamente 7,0, aproximadamente 7,5, aproximadamente 8,0, aproximadamente 8,5, aproximadamente 9,0, aproximadamente 9,5, o aproximadamente 10. En algunas realizaciones, el detergente es un detergente no iónico. En algunas realizaciones, el detergente es un detergente de polisorbato. En algunas realizaciones, el detergente es polisorbato80.
En algunas realizaciones, el estabilizante en el tampón es un catión multivalente. En algunas realizaciones, el catión multivalente es calcio o aluminio. En algunas realizaciones, el aluminio está presente como uno o más de APO4, Al(OH)3, Ah(SO4)3 y alumbre. En algunas realizaciones, el estabilizante en el tampón está entre aproximadamente 0,1 mg/ml y aproximadamente 1 mg/ml, entre aproximadamente 0,25 mg/ml y aproximadamente 0,75 mg/ml o entre aproximadamente 0,4 mg/ml y aproximadamente 0,6 mg/ml de aluminio. En algunas realizaciones, el estabilizante en el tampón es aproximadamente 0,1 mg/ml, aproximadamente 0,15 mg/ml; aproximadamente 0,2 mg/ml, aproximadamente 0,25 mg/ml, aproximadamente 0,3 mg/ml, aproximadamente 0,35 mg/ml, aproximadamente 0,4 mg/ml, aproximadamente 0,45 mg/ml, aproximadamente 0,5 mg/ml, aproximadamente 0,55 mg/ml, aproximadamente 0,6 mg/ml, aproximadamente 0,65 mg/ml, aproximadamente 0,7 mg/ml, aproximadamente 0,75 mg/ml, aproximadamente 0,8 mg/ml, aproximadamente 0,85 mg/ml, 0,9 mg/ml, aproximadamente 0,95 mg/ml, o aproximadamente 1 mg/ml de aluminio. En algunas realizaciones, hay al menos 90 %, al menos 95 %, al menos 96 %, al menos 97 %, al menos 98 %, al menos 99 % o 100 % de unión de aluminio a la proteína.
En algunas realizaciones, el tampón comprende además histidina. En algunas realizaciones, la concentración de histidina está entre aproximadamente 2mM y aproximadamente 20 mM, entre aproximadamente 5 mM y aproximadamente 15 mM o entre aproximadamente 8 mM y 12 mM. En algunas realizaciones, la concentración de histidina es aproximadamente 2 mM, aproximadamente 3 mM, aproximadamente 4 mM, aproximadamente 5 mM, aproximadamente 6 mM, aproximadamente 7 mM, aproximadamente 8 mM, aproximadamente 9 mM, aproximadamente 10 mM, aproximadamente 11 mM, aproximadamente 12 mM, aproximadamente 13 mM, aproximadamente 14 mM, aproximadamente 15 mM, aproximadamente 16 mM, aproximadamente 17 mM, aproximadamente 18 mM, aproximadamente 19 mM o aproximadamente 20 mM.
En algunas realizaciones, el tampón comprende además succinato. En algunas realizaciones, la concentración de succinato está entre aproximadamente 2mM y aproximadamente 20 mM, entre aproximadamente 2 mM y aproximadamente 10 mM o entre aproximadamente 3 mM y 7 mM. En algunas realizaciones, la concentración de succinato es aproximadamente 2 mM, aproximadamente 3 mM, aproximadamente 4 mM, aproximadamente 5 mM, aproximadamente 6 mM, aproximadamente 7 mM, aproximadamente 8 mM, aproximadamente 9 mM, aproximadamente 10 mM, aproximadamente 11 mM, aproximadamente 12 mM, aproximadamente 13 mM, aproximadamente 14 mM, aproximadamente 15 mM, aproximadamente 16 mM, aproximadamente 17 mM, aproximadamente 18 mM, aproximadamente 19 mM o aproximadamente 20 mM.
En algunas realizaciones, el tampón tiene un pH de entre aproximadamente 5,0 y aproximadamente 8,0 o entre aproximadamente 5,5 y aproximadamente 7,0; o entre aproximadamente 5,8 y aproximadamente 6,0. En algunas realizaciones, el tampón tiene un pH de aproximadamente 5,0, aproximadamente 5,1, aproximadamente 5,2, aproximadamente 5,3, aproximadamente 5,4, aproximadamente 5,5, aproximadamente 5,6, aproximadamente 5,7, aproximadamente 5,8, aproximadamente 5,9, aproximadamente 6,0, aproximadamente 6,1, aproximadamente 6,2, aproximadamente 6,3, aproximadamente 6,4 o aproximadamente 6,5.
En algunas realizaciones, el tampón en el que se almacenan los antígenos proteicos MnB rLP2086 de las subfamilias A y B es solución salina tamponada con histidina 10 mM, a pH 6,0, que contiene 0,5 mg/ml de aluminio como fosfato se aluminio y una proporción polisorbato 80-proteína de 2,8.
En algunas realizaciones, el tampón en el que se almacenan los antígenos proteicos MnB rLP2086 de las subfamilias A y B es solución salina tamponada con succinato 5 mM, a pH 6,0, que contiene 0,5 mg/ml de aluminio como fosfato se aluminio y una proporción polisorbato 80-proteína de 2,8.
Con el fin de que esta invención se entienda mejor, se exponen los ejemplos siguientes. Los ejemplos son con fines ilustrativos únicamente y no deben interpretarse como limitantes del ámbito de la invención.
Ejemplos
Ejemplo 1: Procedimientos experimentales
Determinación de la unión a aluminio
Una composición que comprende aluminio y al menos un antígeno proteico se centrifugó de modo que sedimentó el aluminio. La centrifugación de las proteínas adsorbidas en aluminio se conoce en la técnica. Véase, por ejemplo, Egan y col., Vaccine, Vol. 27(24):3175-3180 (2009). La proteína unida a aluminio también sedimentó, mientras que la proteína no unida a aluminio permaneció en el sobrenadante. La proteína total en el sobrenadante y en el sedimento se determinó mediante el ensayo de Lowry. El porcentaje de proteína unida se calculó dividiendo la proteína total en el sobrenadante por la proteína total añadida a la composición, y multiplicando por 100 %. De forma similar, el porcentaje de proteína no unida se calculó dividiendo la proteína total en el sobrenadante por la proteína total añadida a la composición, y multiplicando por 100 %.
Para las composiciones que comprenden antígenos de las dos subfamilias, A y B, las concentraciones individuales de proteína de las subfamilias A y B en el sobrenadante se determinaron mediante cromatografía de intercambio iónico. La separación y la elución de las proteínas de las subfamilias A y B se llevaron a cabo usando una columna de aniones fuertes y un eluyente de concentración alta de sales. Las proteínas de las dos subfamilias A y B se detectaron y cuantificaron usando un equipo detector de fluorescencia a Excitación= 280 por ciclo y Emisión = 310 por ciclo. Las proteínas de la subfamilia A y de la subfamilia B eluyen a distintos tiempos de retención y se cuantificaron usando una curva estándar generada contra un material de referencia proteico B rLP2086. El porcentaje de proteína no unida se calculó dividiendo la proteína total en el sobrenadante por la proteína total añadida a la composición, y multiplicando por 100 %. El porcentaje de proteína unida se calculó restando el porcentaje de proteína no unida del 100 %.
Ensayo de potencia in vitro
El ensayo de potencia de rLP2086 es un ensayo de captura homogénea o ensayo de tipo sándwich que depende de dos anticuerpos monoclonales funcionales que reconocen epítopos conformacionales y no solapantes sobre una molécula proteica sencilla de la sustancia farmacológica rLP2086. Un anticuerpo monoclonal purificado sirve como anticuerpo de captura (AcMo) y está químicamente conjugado a perlas de poliestireno carboxiladas que tienen un identificador único codificado por colores. El segundo anticuerpo está biotinilado y sirve como anticuerpo de detección que se une posteriormente a estreptavidina conjugada con el fluróforo R-ficoeritrina (SA-PE). Las características de fluido de un instrumento de detección Bio-Plex cuantifican microesferas individuales y su señal SA-PE asociada. Una señal de fluorescencia de R-ficoeritrina asociada con la microesfera solo se detectará mediante la formación de un complejo ternario entre el anticuerpo conjugado con las perla, el antígeno y el anticuerpo de detección, y será proporcional al número funcional de epítopos en las muestras rLP2086. Un cambio en uno o ambos epítopos que tiene como resultado una pérdida de fluorescencia con respecto al patrón de referencia indicará una pérdida de potencia.
Reactivos
• Microesferas conjugadas con anticuerpo monoclonal (conjugado a la región 12 de la esfera o a la región 66 de la espera de Luminex MicroPlex Microsphere)
• Anticuerpo monoclonal biotinilado.
• Materiales de referencia rLP2086, subfamilias a y B, 2 mg/ml. Almacenar a 70 °C
• rLP2086 Subfamilia A y B, catión bivalente
• Estreptavidina, conjugado con R-ficoeritrina, liofilizado
Tampones
• Histidina 10 mM, NaCl 150 mM, pH 6,0
• Polisorbato 80 al 5 % p/v (PS-80) en solución salina al 0,85 % p/v.
• Tampón de la matriz (Histidina 10 mM, polisorbato 80 al 0,02 %, NaCl 150 mM, pH 6,0).
• Tampón de ensayo (PBS, pH 7,4 con BSA al 0,1 %, polisorbato 80 al 0,02 %, azida al 0,1 %).
• 100x Estreptavidina, conjugado con R-ficoeritrina(SA-PE) - Vial abierto de estreptavidina, R-ficoeritrina liofilizada, y añada 1 ml de agua destilada. Se agita hasta su disolución completa.
Procedimiento
A 600 |jl del tampón de la matriz se añadieron 200 j l de la proteína de la subfamilia A y 200 j l de la proteína de la subfamilia B, hasta una concentración de 400 jg/m l de cada subfamilia. Se generó una curva estándar de ocho concentraciones (3333-1,5 ng/ml) mediante dilución de la solución madre en tampón de ensayo.
A 800 j l del tampón de la matriz se añadieron 200 j l del control bivalente, hasta una concentración de 400 jg/m l de cada subfamilia. La solución madre de 400 jg/m l para fabricar concentraciones de trabajo de 100, 50 y 12,5 ng/ml se diluyó en tampón de ensayo. Las concentraciones de 100 y 12,5 ng/ml representaron los controles alto y bajo (CH) y (CL), respectivamente.
Las muestras de ensayo se diluyeron em tampón de matriz hasta una concentración de 400 pg/ml. Se prepararon soluciones de trabajo de 100, 50 y 12,5 ng/ml a partir de la solución madre de 400 pg/ml.
Se preparó una mezcla de ensayo homogénea usando una concentración de perlas conjugadas de 2 x 105 perlas/ml y una concentración del anticuerpo de detección de 30 pg/ml en un tampón de ensayo. Se preparó una placa muestra mediante la adición de 0,4 ml de estándar, un control, muestra o blanco a una placa de 96 pocillos hondos de 2 ml. Los filtros de una placa de filtros MultiScreenHTs-BV de 6 pocillos se prehumidificaron mediante la adición de 100 pl de tampón de ensayo, que después se pasó por el filtro mediante succión al vacío. A la placa de 96 pocillos se añadieron 25 pl de la mezcla de ensayo homogénea preparada. A cada pocillo de la placa de filtros de 96 pocillos se añadieron 25 pl de cada solución estándar, control, muestra o blanco. Las placas se incubaron a temperatura ambiente durante una hora con agitación.
Tras la incubación con antígeno-anticuerpo el tampón se retiró mediante aspiración al vacío a través del filtro. El filtro de cada pocillo se lavó tres veces con 100 pl de tampón de ensayo, seguido de aspiración al vacío. Después del lavado final, a cada pocillo se añadieron 50 pl de 1x SA-PE. La placa se incubó 10 minutos a temperatura ambiente con agitación en un título en oscuridad.
Tras la incubación con SA-PE, a cada pocillo se añadieron 75 pl del tampón de ensayo para un volumen total de 125 pl. La placa se leyó inmediatamente en un sistema Bio-Plex 200 System.
Ensayo de bactericida en suero
Conejos hembra New Zealand White de 2,5-3,0 kg, obtenidos de Charles River Canada (St. Constant, QC, Canadá), se sometieron a detección selectiva mediante ELISA de sangre entera para identificar los que tenían baja reactividad contra dos cepas diferentes de meningococos (una de cada subfamilia de P2086). En general, los conejos tenían antecedentes de reactividad muy baja, por lo que se seleccionaron aquéllos con los valores menores. Se vacunó a los conejos por vía intramuscular las semanas 0, 4 y 9, con rLP2086-A05 monovalente, rLP2086-B01 monovalente o con una vacuna rLP2086-A05 B01 bivalente. Cada dosis contenía 100 pg de proteína para las vacunas monovalentes y 100 pg de cada proteína para la vacuna bivalente, formuladas en tampón de histidina 10 mM a pH 6,0, NaCl 150 mM, polisorbato 80 al 0,02 % y 250 pg de APO4. La vacuna se inyectó por vía intramuscular en la pata trasera derecha (0,5 ml/dosis). Como control, se vacunó a un grupo de conejos con el tampón de formulación solo. Se obtuvieron muestras de suero para análisis antes de la inmunización (semana 0) y después de la inmunización (semana 10). Todos los protocolos con animales cumplieron las guías establecidas por el Comité Institucional de Uso y Cuidados de Animales.
Los anticuerpos bactericidas en el suero de los conejos inmunizados con la vacuna con rLP2086 se determinaron usando EBS con complemento humano. Los sueros de conejo inmune se inactivaron con calor para eliminar la actividad del complemento intrínseca y, después, se diluyó en serie a 1:2 en PBS de Dulbecco con Ca2+ y Mg2+ (D-PBS) en una placa de microtitulación de 96 pocillos para analizar la actividad bactericida en suero contra cepas de N. meningitidis. Las bacterias usadas en el ensayo se cultivaron en medio GC suplementado con suplemento de Kelloggs (GCK) y se controló mediante densidad óptica a 650 nm. Se recolectaron bacterias para usar en el ensayo final a una DO650 de 0,50-0,55, se diluyeron en D-PBS y se añadieron 1000-3000 UFC en la mezcla de ensayo con 20 % de complemento humano.
Como fuente de complemento exógena se usó suero humano sin actividad bactericida detectable. Las fuentes del complemento se analizaron para determinar su idoneidad contra cada cepa de ensayo individual. Una fuente de complemento solo se usó si el número de bacterias supervivientes en controles sin suero inmunitario añadido era > 75 %. Para realizar los EBS descritos en este estudio se necesitaron diez fuentes de complemento únicas.
Tras una incubación de 30 minutos a 37oC con CO2 al 5 %, se añadió D-PBS a la mezcla de reacción y se transfirieron alícuotas a las placas de microtitulación cargadas con medio GCK al 50 %. Las placas de microtitulación se filtraron, se incubaron durante la noche a 37 °C con CO2 al 5 % y las microcolonias se tiñeron y cuantificaron. Los títulos de bactericida en suero se definieron como la dilución de suero recíproca interpolada que dio una reducción del 50 % de las UFC en comparación con las UFC en los pocillos control sin suero inmunitario. El título de EBS se define como el recíproco de la dilución interpolada del suero de ensayo que produce una reducción del 50 % de los recuentos de bacterias tras una incubación de 30 minutos a 37 °C. La susceptibilidad a la muerte con suero inmunológico P2086 se estableció si había un incremento de cuatro veces o mayor del título de EBS para el suero inmunológico P2086 en comparación con el correspondiente suero preinmunización. El límite de detección fue de 8 para los sueros de conejos. A los sueros negativos contra la cepa del ensayo a la dilución de partida se les asignó un título de la mitad del límite de detección para el ensayo (es decir, 4 para los conejos).
Citometría de flujo
Células MnB se cultivaron a una DO650 de 0,45-0,55 y luego se fijaron en paraformaldehído al 1 % (v/v) en 1 x PBS durante 10 minutos. Cien microlitros/pocillo de bacterias se sembraron en placas de poliestireno de 96 pocillo de fondo en U, se centrifugaron y se lavaron una vez en BSA al 1 % (p/v) en 1 x p Bs . Se añadieron anticuerpos monoclonales anti-LP2086 a los sedimentos bacterianos, se resuspendieron e incubaron en hielo durante 30 minutos. Después de dos lavados en BSA al 1 %/PBS se añadió a los sedimentos celulares IgG biotinilada de cabra anti-ratón (subclases 1 + 2a 2b 3) (Jackson Immunoresearch), se resuspendieron y se incubaron en hielo durante 30 minutos. Las células se lavaron dos veces y se resuspendieron en estreptavidina-PE (BD Biosciences) y se incubaron en hielo durante 30 minutos. Después de dos lavados en BSA al 1 %/PBS, los sedimentos celulares se resuspendieron en paraformaldehído al 1 %. Como control negativo se incluyó IgG de ratón. En u citómetro de flujo BD LSR II se adquirieron veinte mil (20.000) sucesos por pocillo y se analizaron usando el software FlowJo v7 (Treestar, Ashland, Oregón). La intensidad media de la fluorescencia (IMF) del canal PE se determinó para cada muestra después de acotar en células bacterianas en la representación logarítmica por puntos de FSC frente a SSC. Una IMF se consideró positiva si la IMF era tres veces la IMF de IgG control de ratón.
Ejemplo 2: Unión de polisorbato 80 a proteínas rLP2086
Para entender la estabilidad de la unión del polisorbato 80 a cada proteína rLP2086 A y B, una muestra de rLP2086 formulada con 200 pg/ml de la subfamilia A con aluminio (Al) y otra muestra de rLP2086 formulada con 200 pg/ml de la subfamilia B, almacenadas a 2-8°C y 25°C se analizaron 5 meses después para determinar su contenido de proteínas y polisorbato 80. También se analizó un placebo (tampón A1 sin proteína). La distribución del polisorbato 80 en el placebo se muestra en la Figura 14, mientras que las distribuciones del polisorbato 80 para las proteínas de las subfamilias A y B se muestran en la Figura 15 y la Figura 16, respectivamente. La proporción molar total y la proporción molar de unidos para las subfamilias A y B se muestran en la Figura 15 y la Figura 16, respectivamente. La potencia relativa (%) para la subfamilia B se comparó con la proporción molar de unidos, tal como se muestra en la Figura 17.
Resultados
Como se muestra en la Figura 14, el % total de polisorbato 80 y el % de polisorbato 80 en el sobrenadante fueron iguales (0,017 %), lo que indica que el polisorbato 80 no se unió al aluminio o quedó atrapado en el sedimento. Además, el polisorbato 80 era estable tras 5 meses tanto a 2-8 °C como a 25 °C.
La distribución del polisorbato 80 en forma unida (sedimento), sin unir (sobrenadante) y total de las muestras de rLP2086 de la subfamilia A y la subfamilia B se muestra en la Figura 15 y la Figura 16, respectivamente. Aunque el % de polisorbato 80 en el sobrenadante y el sedimento para la subfamilia A a 2-8 °C y a 25 °C al punto de tiempo de 5 meses no cambió. No obstante, se observó más polisorbato 80 en el sedimento para la muestra de la subfamilia B a 25 °C al punto de tiempo de 5 meses. A pesar de las diferentes concentraciones de polisorbato 80 en el sobrenadante y en el sedimento a 2-8 °C y a 25 °C, se consiguió un equilibrio de masas preciso para ambas subfamilias. Dado que las proteínas rLP2086 se unen el 100 % al fosfato de aluminio en esta matriz, el polisorbato 80 asociado en el sedimento estaba muy probablemente unido a las moléculas de proteína.
Aunque tanto la proteína A como la B se unieron al polisorbato 80, la unión de la proteína A fue igual para las muestras almacenadas a 2-8°C y a 25°C, y la unión de la proteína B fue caso el doble para las muestras almacenadas a 25°C en comparación con las muestras almacenadas a 2-8°C. La potencia relativa para la subfamilia B se determinó tanto a 2-8 °C como a 25 °C a los puntos de tiempo To y 5 meses y se encontró que se comportaba de forma inversa a la proporción molar de unidos descrita en la Figura 17. El % de la potencia disminuyó desde 120 a T0 a 16 % a 5M/25 °C, mientras que la proporción molar de unidos aumentó desde 5,3 a 13,9 en el mismo periodo de tiempo.
Ejemplo 3: Estudio de la proporción molar crítica
Para determinar la concentración crítica del polisorbato 80 requerida para la estabilidad de rLP2086, se prepararon cuarenta (40) formulaciones de rLP2086 que contenían subfamilia A solo, subfamilia B solo y las subfamilias A y B a 200 pg/ml y 400 pg/ml con diferentes concentraciones de polisorbato 80 tal como se describe en la Tabla 1. Se determinaron las proteínas totales y unidas para cada muestra, así como el % de polisorbato 80 en el total, el sobrenadante y el sedimento a tiempo cero (T0), a los 14 días y a 1 mes tanto a 2-8°C como a 25°C. Los resultados de este estudio se muestran en la Figura 18 a la Figura 24.
Tabla 1
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Resultados
Se determinaron las concentraciones de polisorbato 80 en el sobrenadante, el sedimento y en el total para las 40 muestras de formulación de rLP2086 con fosfato de aluminio. Las proporciones molares total y de unidos se determinaron para la subfamilia A y B y parecen ser similares para ambas subfamilias a 200 pg/ml que contienen polisorbato 80 al 0,005 % (proporción molar 5,4) o menor, como se muestra en la Figura 18 y la Figura 19, respectivamente. No obstante, la proporción molar total para la subfamilia Bfue mucho mayor que la proporción molar de unidos para las muestras que contienen polisorbato 80 al 0,0065 % (proporción molar 7,0) o más. Los datos para las proporciones molares total y de unidos para la subfamilia A, la subfamilia y la subfamilia A B a 400 pg/ml cada una también eran cercanas para las formulaciones que contienen polisorbato 80 al 0,008 % (proporción molar 8,6) o menor, no obstante, la proporción molar total fue mucho mayor que la proporción molar de unidos para las formulaciones que contienen polisorbato 80 al 0,017 % (proporción molar 18,4) como se ha descrito en la Figura 20.
Ejemplo 4: Unión de polisorbato 80 en el tiempo
El porcentaje (%) de polisorbato 80 en el sobrenadante y el sedimento para las muestras de formulación con la subfamilia A y B con AlPO4 se determinó a T0, a 14 Días/25 °C, 1 Mes/4 °C y 1 Mes/25 °C. El % de polisorbato 80 en el sobrenadante para las muestras de formulación de las subfamilias A y B fue relativamente igual para las muestras almacenadas a 2-8 °C. No obstante, el % de polisorbato 80 en el sobrenadante disminuyó espectacularmente para las muestras almacenadas a 25 °C, incluso después de únicamente 14 días. El % de polisorbato 80 en el sedimento para las subfamilias A y B fue relativamente similar a Tü/5°C y a 1 Mes/5oC. No obstante, el % de polisorbato 80 en el sobrenadante aumentó significativamente para las muestras almacenadas a 25 °C, especialmente para la subfamilia B que contiene 0,008 % de polisorbato 80 (proporción molar 8,6) o mayor. El % de polisorbato 80 también se determinó en el sobrenadante y el sedimento para las formulaciones de rLP2086 de las subfamilias A y B con APO4 a T0, 14 días/25 °C, 1 mes/4 °C y 1 mes/25 °C. Como se muestra en la Figura 21, las concentraciones de polisorbato 80 para las muestras que contenían 0,008 % fueron aproximadamente iguales para los 4 puntos de tiempo. No obstante, las concentraciones de polisorbato 80 aumentaron para la muestra que contenía 0,017 % de polisorbato 80 almacenadas a 25 °C. No se encontró polisorbato 80 en el sobrenadante de las muestras que contenían 0,008 % de polisorbato 80 o menos. Como se muestra en la Figura 22, la proporción molar de unidos fue estable para las muestras que contenían 0,008 % de polisorbato 80 o menos en los 4 puntos de tiempo. No obstante, la proporción molar de unidos aumentó para la muestra que contenía 0,0017 % de polisorbato 80 almacenada a 25 °C.
La potencia para las muestras de formulación de las subfamilias A y B con APO4 se determinó a T0 y 14 Días/25 °C (Figura 22 y Figura 25, respectivamente). Como se ha descrito en la Figura 23, la potencia para la subfamilia A a diferentes proporciones molares totales varió de 91 a 102 tanto a 5 °C como a 25 °C. Aunque los resultados de la proporción molar de unidos también fueron relativamente iguales a cualquiera de las temperaturas, se observó un ligero incremento de la potencia a medida que aumentaba la proporción molar total/de unidos.
La potencia para la subfamilia B para las muestras a 5 °C fue de aproximadamente 95 % para proporciones molares totales de hasta 9,0. No obstante, la potencia de la subfamilia B disminuyó a un 79 % a medida que la proporción molar aumentaba a 18,1. Además, la muestra con la proporción molar total a 18,1 tenía una proporción molar de unidos mayor en comparación con la otra muestra. A 25 °C, la potencia de la subfamilia B exhibió un descenso significativo del 83 % al 5 % a medida que la proporción molar total aumentaba de 5,3 a 18,1. Los valores de la proporción molar de unidos para las muestras a 25 °C aumentaron de 5,3 a 13,8 a medida que la proporción molar total aumentaba. Por tanto, la potencia de la subfamilia B es inversamente proporcional a la proporción molar de unidos.
Las proteínas tanto de la subfamilia A como de la subfamilia B se unían al polisorbato 80. La unión de la subfamilia A fue la misma para las muestras almacenadas a 2-8°C y a 25°C, pero la unión de la subfamilia B fue casi el doble para las muestras almacenadas a 25°C. Además, el estudio de la proporción molar crítica indicó que las muestras de formulación a 200 pg/ml eran estables cuando contenían 0,008 % de polisorbato o menos, lo que es equivalente a una proporción molar total de 4,2 o menor.
Ejemplo 5: Concentración del detergente y potencia del antígeno rLP2086 de la subfamilia B
Estudios de estabilidad adicionales con concentraciones variables de polisorbato 80 corroboraron la calidad de crítica de la proporción molar entre el polisorbato 80 y la proteína para mantener la potencia. En un experimento, la composición inmunogénica se formuló a la dosis de 200 pg (concentración de proteína total 400 pg/ ml)a pH 6,3 en solución salina tamponada con histidina 10 mM (HBS) con 0,5 mg/ml de aluminio (como fosfato de aluminio) y con picos de 0,01 %, 0,02 %, 0,05 % o 0,1 % de polisorbato 80 (proporción molar correspondiente entre polisorbato 80 y la proteína rLP2086 a 5,3, 10,7, 26,7 y 53,4). Las muestras formuladas se incubaron a 25 °C y las muestras control se almacenaron a 2-8°C. No se observó ningún cambio significativo de la potencia a tiempo “0” a concentraciones de polisorbato de hasta 0,1 %. No obstante, para periodos más prolongados de 2-8 °C, se observó una reducción de la potencia como una función de la temperatura y la concentración de polisorbato 80. A medida que la concentración de polisorbato 80 aumentaba de 0,01 % a 0,1 % en la composición inmunogénica, el punto de estabilidad a 3 meses demostró una reducción de la potencia de la proteína de la subfamilia B a menos del 10 % y del 25 % a 25 °C y a 2-8 °C, respectivamente (Figura 1).
Se realizó un estudio de estabilidad adicional (Figura 2) en el que se evaluó la proteína de la subfamilia B a una concentración de 4 mg/ml en HBS y con picos de polisorbato 80 hasta una concentración final de 0,06, 0,5 y 1 % (proporciones molares correspondientes de 3,3, 26,7 y 53,4). El control contenía 0,09 % de polisorbato 80. La proteína de la subfamilia B en 0,06 % de polisorbato 80 (proporción molar de 3,3) era estable. Las mismas muestras que contenían una concentración mayor de polisorbato 80 a 0,5 % y 1 % (proporciones molares de 26,7 y 53.4, respectivamente) eran inestables. Para las formulaciones de las composiciones inmunogénicas a 400 pg/ml, se observó inestabilidad de la proteína de la subfamilia B en todas las formulaciones que contenían una concentración de polisorbato 80 de 0,01 % (proporción molar 5,3) o mayor. No obstante, a concentraciones de 4 mg/ml de proteína y de 0,06 % de polisorbato 80 no se observó reducción de la potencia porque la proporción entre el polisorbato 80 y la proteína (3,3) es mejor que a concentraciones de 400 pg/ml de proteína más 0,01 % de polisorbato 80 (proporción molar 5,3). Por tanto, la reducción de la potencia de la proteína de la subfamilia B por el polisorbato 80 se correlaciona con la proporción molar entre el detergente polisorbato 80 y la proteína y no con la concentración absoluta del polisorbato 80 en la matriz.
De acuerdo con esto, la concentración de polisorbato 80 debe reducirse en la composición inmunogénica con el fin de mantener la estabilidad de la proteína de la subfamilia B en la vacuna y durante el posterior almacenamiento a 2--8°C. Se diseñó un estudio de estabilidad acelerada a 28 días para la composición inmunogénica con varias proporciones molares de polisorbato 80 (0,1, 0,1, 0,2 y 5,3) a dosis de 20 y 200 pg (Figura 3 y Figura 4). Se preparó una formulación bivalente (subfamilia A y subfamilia B) en solución salina tamponada con histidina 10 mM a pH 6,0, 0,05 mg/ml de aluminio en forma de fosfato de aluminio con varias concentraciones de polisorbato 80. Las muestras se incubaron a 25 °C junto con un grupo control a 2-8 °C. En las muestras se analizó la potencia a 0, 7, 14, 28 y 8 días. Las proteínas tanto de la subfamilia A (datos no mostrados) como de la subfamilia B eran estables para todos los grupos que contenían una proporción molar inferior a 5,3 entre el polisorbato 80 y la proteína. Un valor de potencia superior al 80 % se considera dentro de la variabilidad del ensayo. A la proporción molar de 5,3 se observó una tendencia descendente para la potencia de la proteína de la subfamilia B para las muestras a 25 °C.
En un estudio exhaustivo se evaluó todas las posibles dosificaciones clínicas (20, 60, 120 y 200 pg) formuladas con varias proporciones molares entre el polisorbato 80 y la proteína en condiciones de estabilidad de almacenamiento acelerado para investigar los efectos de las proporciones molares entre el polisorbato 80 y la proteína sobre la estabilidad de las proteínas MnB rLP2086. Se usaron composiciones inmunogénicas bivalentes de MnB rLP2086 formuladas a proporciones molares entre el polisorbato 80 y la proteína que varían de aproximadamente 1,4 a 10,7. Para generar composiciones inmunogénicas formuladas a proporciones molares entre el polisorbato 80 y la proteína crecientes (1,4, 2,4, 3,4, 3,9, 4,3, 4,7 y 10,7), los antígenos se ajustaron a proporciones molares variables añadiendo polisorbato 80 de modo que, durante la formulación de la composición inmunogénica, no fuera necesario polisorbato 80 adicional. En este estudio se usaron dos grupos de lotes de antígenos. Un grupo de lotes de la subfamilia A y la subfamilia B se generó con una proporción molar entre el polisorbato 80 y la proteína de 1,4 y el otro grupo de 2,4. El grupo de proteínas con una proporción molar de 2,4 se usó para ajustar las proporciones molares de 3,4, 3,9, 4,3 y 10,7 con adiciones de polisorbato adicional. La matriz final de la composición inmunogénica fue histidina 10 mM, NaCl 150 mM, a pH 6,0, 0,5 mg/ml de fosfato de aluminio con las proporciones molares entre el polisorbato 80 y la proteína mencionadas anteriormente. Tras almacenamiento a 2-8 °C o a 25 °C durante intervalos específicos se aplicó mezclado suave con un agitador 24 horas antes del ensayo. Se analizaron la proteína total mediante IEX-HPLC, la potencia, el aspecto, la densidad óptica a 320 nm de la fracción sobrenadante y el pH.
Los resultados de potencia de las dosis de 200 y 20 pg se muestran en la Figura 5 y la Figura 6, respectivamente. El ensayo de potencia fue más sensible que otras pruebas usadas en el estudio. En general, no se observó una reducción significativa de la potencia para los antígenos ni de la subfamilia A ni de la subfamilia B, en comparación con el punto de tiempo inicial para todas las dosificaciones con proporciones molares de 4,3 y menores. Las formulaciones con una proporción molar de 4,7 se consideraron en el mínimo debido a una ligera reducción de la potencia para las proteínas de la subfamilia B almacenadas a 25 °C. Los resultados de potencia para el antígeno de la subfamilia B para formulaciones con una proporción molar de 10,7 fueron significativamente menores para las muestra almacenadas a 25 °C respecto a las almacenadas a 2-8 °C.
Ejemplo 6: Concentración de aluminio y potencia del antígeno rLP2086 de la subfamilia A y B
Se realizó una serie de experimentos para determinar el nivel óptimo de fosfato de aluminio para asegurar más de un 95 % de unión de las proteínas de la subfamilia A y B. Los estudios iniciales se centraron en la optimización de la formulación a pH 6,5. Las formulaciones se prepararon con una dosificación diana de 200 pg/ml de cada proteína de las proteínas de las subfamilias A y B en tampón de histidina 10 mM a pH 6,5 con 0,02 % de polisorbato 80 y 0,25 o 0,5 mg/ml de aluminio (como fosfato de aluminio). La proteína de la subfamilia B se unió al fosfato de aluminio en menor medida que la proteína de la subfamilia A (Figura 7). Aumentar el contenido de aluminio de 0,25 mg/ml a 0,5 mg/ml aumentó la unión de la proteína de la subfamilia B a > 80 %. Dado que el mecanismo de unión entre la proteína y la suspensión de aluminio es, principalmente, una interacción iónica, el pH de la suspensión es un factor que influye sobre la unión.
El pH de la formulación se optimizó para asegurar una unión superior al 90-95 % de la proteína de la subfamilia B. Se analizaron múltiples formulaciones a 200 pg/ml de cada una de las proteínas a y B con un pH variable de 5,6 a 6,5 con lotes diferentes de composiciones inmunogénicas (Figura 8). En las formulaciones con un pH que varía de 5,6 a 6,4 se produjeron uniones de más del 90-95 % de ambas proteínas. A medida que el pH de las formulaciones aumentaba a valores de 6,5 y mayores, la unión de la proteína de la subfamilia B se reducía significativamente. El pH diana recomendado es de 6,0 para asegurar una unión superior al 90 % de las proteínas de las subfamilias A y B.
También se evaluó la solidez de la formulación bajo variables y/o límites de formulación variando el pH, el tampón, la proteína y las concentraciones de polisorbato 80 (Figura 9). Aunque la unión de la proteína de la subfamilia A fue alta de un modo consistente (>95 %) con la concentración de proteína hasta 500 pg/ml (250 pg/ml cada proteína), la unión de la proteína de la subfamilia B era más sensible a la concentración proteica y al pH. Dado que se usan formulaciones comerciales a una dosis de 200 pg, los resultados de este experimento avalaron también la formulación recomendada a un pH de 6,0 con 0,5 mg/ml de fosfato de aluminio.
Las formulaciones con y sin fosfato de aluminio se evaluaron para investigar la viabilidad de proporcionar una formulación estable sin fosfato de aluminio a concentraciones de polisorbato 80 lo suficientemente bajas para la estabilidad de la proteína de la subfamilia B. Las composiciones inmunogénicas se formularon a dosis de 20 y 200 pg de tampón de solución salina tamponada con histidina con una concentración de polisorbato 80 que varía de 0 a 5,3 proporciones molares. La mitad de las muestras se sometieron a agitación con un agitador de tipo vórtex multitubos digital a 500 rpm en modo de pulsos (2 segundos con y 1 segundo sin) durante 24 horas antes del análisis. Esta condición se adoptó para simular las pruebas ISTA (International Safe Transit Association) que normalmente se realizan en la última etapa de envío de la composición inmunogénica para imitar las vibraciones extremas durante las condiciones de envío.
Con agitación, las formulaciones sin fosfato de aluminio precipitaron, lo que, en última instancia, llevaron a la pérdida de potencia de los antígenos de la subfamilia A y la subfamilia B. Una prueba de aspecto (Figura 10) y las mediciones de la absorbancia a A = 320 nm (Figura 11) demostraron la formación de agregados y/o precipitados cuando se agitaron las formulaciones sin fosfato de aluminio. El análisis de la potencia de estas muestras (Figura 12 y Figura 13) demostró una pérdida significativa de potencia para ambas proteínas de la subfamilia A y la subfamilia B en todos los puntos de tiempo analizados. La pérdida de potencia fue más pronunciada en las formulaciones que contienen cantidades bajas de polisorbato 80. Dado que son necesarias cantidades bajas de polisorbato 80 para mantener la estabilización de la proteína de la subfamilia B, la inclusión de fosfato de aluminio en la formulación es necesaria para conservar la estabilidad. Las composiciones inmunogénicas de rLP2086 se pueden formular con fosfato de aluminio, que funcionará reforzando la estabilidad de la potencia, medida mediante el ensayo de potencia in vitro.
Ejemplo 7: Succinato e histidina como tampones
Se preparó una serie de formulaciones para comparar la unión de las proteínas rLP2086 de las subfamilias A y B en succinato e histidina, así como los efectos del pH, el polisorbato 80 y el MgCh sobre la unión (Tabla 2). Se evaluó la solidez de la formulación bajo variables y/o límites de formulación variando el pH, el tampón, la proteína y las concentraciones de polisorbato 80 (Figuras 25 y 26). La unión de aluminio a la proteína de la subfamilia A y la subfamilia B fue similar, con independencia del tampón usado (histidina o succinato).
Tabla 2: Formulaciones para evaluar los tampones de histidina y succinato, MgCl 2 , Polisorbato y el pH 5,6 -6,0 sobre la unión de rLP2086 con AlPO41
rLP2086 rLP2086 Histidina Succinato PS 80 Solución
salina MgCl2 pH diana
A (pg/ml) B (pg/ml) (mM) (mM) (%) (mM)
(%)
200 200 0 5 0,020 0,9 0 6,0
200 200 0 5 0,020 0,9 0 5,8
200 200 0 5 0,020 0,9 0 5,6
(continuación)
Solución
rLP2086 rLP2086 Histidina Succinato PS 80
salina MgCl2 pH diana
A (Mg/ml) B (Mg/ml) (mM) (mM) (%) (mM)
(%)
200 200 0 5 0,010 0,9 0 6,0
200 200 0 5 0,005 0,9 0 6,0
250 250 0 5 0,020 0,9 0 6,0
250 250 0 5 0,020 0,9 0 5,8
250 250 0 5 0,020 0,9 0 5,6
200 200 0 10 0,020 0,9 0 6,0
200 200 0 20 0,020 0,9 0 6,0
200 200 0 5 0,020 0,9 10 6,0
200 200 10 0 0,020 0,9 0 6,0
200 200 10 0 0,020 0,9 0 5,8
200 200 10 0 0,020 0,9 0 5,6
200 200 10 0 0,010 0,9 0 6,0
200 200 10 0 0,005 0,9 0 6,0
250 250 10 0 0,020 0,9 0 6,0
250 250 10 0 0,020 0,9 0 5,8
250 250 10 0 0,020 0,9 0 5,6
200 200 5 0 0,020 0,9 0 6,0
200 200 20 0 0,020 0,9 0 6,0
200 200 10 0 0,020 0,9 10 6,0
1Todas las formulaciones descritas en la Tabla 2 contienen 0,5 mg Al/ml.
El efecto de la sal tampón y el tiempo de mezclado sobre la unión a aluminio se evaluó con tres sales tampón de uso habitual, escogidas porque sus pKa están dentro del intervalo fisiológico y porque estas sales se consideran, en general, seguras. Las proteínas rLP2086 de las subfamilias A y B se formularon con una de las tres sales tampón: succinato 5 mM, histidina 10 mM o fosfato 10 mM a un pH adecuado para la pKa de cada sal para determinar la unión en cada condición. El tiempo requerido para la finalización de la unión se evaluó dejando que las muestras se mezclaran durante 5 o 120 minutos antes de medir la cantidad de proteína unida.
Como se muestra en la Figura 27, la proteína de la subfamilia B exhibió una unión reducida a un pH 6,8 en tampón fosfato, mientras que la proteína de la subfamilia A no se vio significativamente afectada a las mismas condiciones. La cantidad de proteína unida a aluminio fue similar en las muestras formuladas con histidina o succinato. Por tanto, estas dos sales tampón se escogieron para su posterior evaluación. Aunque sin desear quedar ligado a teoría alguna, es posible que la menor unión en el tampón fosfato es el resultado de la competición por los sitios de unión en AlPO4 con los iones fosfato añadidos.
En estas condiciones y concentraciones de proteína y APO4, la unión se completó tras 5 minutos de mezcla a temperatura ambiente, ya que se obtuvieron resultados similares tras mezclar durante 2 horas.
Para analizar después si la menor unión de la proteína de la subfamilia B en tampón fosfato a pH 6,8 se debía al pH o a diferencias entre las sales tampón, se midió la unión en un intervalo de pH de 5,3 a 7,0 en formulaciones tamponados con histidina o con succinato. Se prepararon formulaciones bivalentes que contenían 0,2 mg/ml de las proteínas de cada subfamilia (0,4 mg/ml de proteína total), 0,02 % de PS80, 0,5 mg Al/ml y NaCl 150 mM. Las muestras se formularon en histidina 10 mM o succinato 5 mM para comparar el efecto de la sal tampón. Tras la formulación, el pH de cada muestra se verificó de forma individual.
El perfil de la unión del pH 5,3 a 7,0 se muestra en la proteína de la subfamilia A en la Figura 28 y para la proteína de la subfamilia B en la Figura 28. La proteína de la subfamilia A exhibieron pocos cambios en la cantidad de la proteína unida, permaneciendo la unión por encima del 95 % en el intervalo de pH analizado. Una formulación que contiene histidina con un pH 7,0 diana tuvo como resultado un pH de 6,8. El pH no se ajustó a 7,0 (p. ej., mediante la adición de base) para evitar los posibles efectos sobre la proteína o AlPO4 y, por tanto, los resultados para estos puntos de datos no están disponibles.
El perfil de unión de la proteína de la subfamilia B (mostrado en la Figura 29) exhibió una tendencia dependiente del pH. No obstante se realizará la unión en formulaciones tamponadas con histidina o con succinato, la cantidad de proteína unida al aluminio fue similar. La unión dependía del pH de la formulación en lugar de de la sal tampón. La unión permaneció en un 95 % hasta un pH de 6,5 (94 % en histidina, 95 % en succinato), pero disminuyó cuando el pH era superior a 6,5. A pH 7,0, la unión disminuyó a aproximadamente 82 %, con diferencias pequeñas entre las sales tampón.
Para obtener una unión sólida de la proteína de la subfamilia B con AlPO4 a estas concentraciones se prefiere un pH de 6,5 o menor.
Ejemplo 8: Estudio de seguridad, tolerabilidad e inmunogenicidad
Se realiza un estuido para evaluar la seguridad, toerabilidad e inmunogenicidad de la vacuna de rLP2086 administrada en una población de adolescentes sanos conforme a reg'menes de 0 y 2 meses; 0, 2 y 6 meses; 0 y 2 meses, seguido de una dosis de refuerzo de 12 meses.
La composición inmuogénica es una vacuna contra rLP2086 (lipidada recombinante). La composición inmunogénica incluye una proteína ORF2086 recombinante del serogrupo B de N. meningitidis que se expresó en Escherichia coli y se formuló en una vacuna bivalente compuesta por una cepa de la subfamilia A y una cepa de la subfamilia B de rLP2086. En particular, la composición inmunogénica es una dosis de 0,5 ml formulada para contener 60 |jg, 120 |jg o 200 jg cada uno de una subfamilia A purificada y una proteína rLP2086 de la subfamilia B purificada, una relación molar de 2,8 del polisorbato 80 y 0,25 mg de Al3+ como AlPO4, solución salina tamponada con histidina 10 mM de a pH 6,0. Una composición de control incluye una solución salina normal (cloruro de sodio al 0,9 %) en una dosis de 0,5 ml.
Los sujetos son asignados aleatoriamente a 5 grupos. Véase la Tabla 3. Los sujetos se clasifican en dos grupos de edad, >11 a <14 y >14 a <19 años de edad.
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La solución salina se usa como placebo porque no existe una vacuna segura, inmunogénica y efectiva probada contra MnB que pueda servir como un control activo.
Los sujetos reciben una dosis de la vacuna de rLP2086 o solución salina en cada una de las visitas de vacunación (por ejemplo, las visitas 1, 2, 4 y 6) de acuerdo con la Tabla 3. Se observan las prácticas estándar de vacunación y la vacuna no se inyecta en los vasos sanguíneos. La vacuna de rLP2086 se administra por vía intramuscular inyectando 0,5 ml en el músculo deltoides superior. La solución salina se administra por vía intramuscular en el músculo deltoides superior.
A. Visita 1
En la visita 1, día 1, vacunación 1, primero se extrae la sangre del sujeto y luego recibe una vacunación.. La extracción de sangre de la visita 1 y la vacunación 1 ocurren el mismo día. Antes de la vacunación, se recoge una muestra de sangre (aproximadamente 20 ml) del sujeto. Para los sujetos asignados al azar al grupo 1, 2, 3 y 4, se administra una sola inyección intramuscular de 0,5 ml de la vacuna de rLP2086 en el músculo deltoides superior. Para los sujetos del grupo 5, se administra una sola inyección intramuscular de 0,5 ml de solución salina al músculo deltoides superior. B. Visita 2 (de 42 a 70 días después de la Visita 1), vacunación 2
Para los grupos 1, 2 y 3, se administra una sola inyección intramuscular de 0,5 ml de la vacuna de rLP2086 en el músculo deltoides superior. Para los grupos 4 y 5, se administra una sola inyección intramuscular de 0,5 ml de solución salina al músculo deltoides superior.
C. Visita 3 (de 28 a 42 días después de la visita 2), extracción de sangre posvacunación 2
Se recoge una muestra de sangre (aproximadamente 20 ml) del sujeto.
D. Visita 4 (de 105 a 126 días después de la Visita 2), vacunación 3
Para los grupos 2, 4 y 5, se administra una sola inyección intramuscular de 0,5 ml de la vacuna de rLP2086 en el músculo deltoides superior. Para los grupos 1 y 3, se administra una sola inyección intramuscular de 0,5 ml de solución salina al músculo deltoides superior.
E. Visita 5 (de 28 a 42 días después de la visita 4), extracción de sangre posvacunación 3
Se recoge una muestra de sangre (aproximadamente 20 ml) del sujeto.
F. Visita 6 (de 161 a 175 días después de la Visita 4), vacunación 4
En la visita 6, primero se extrae sangre del sujeto y luego recibe una vacunación.. La extracción de sangre de la visita 6 y la vacunación 4 ocurren el mismo día. Antes de la vacunación, se recoge una muestra de sangre (aproximadamente 20 ml) del sujeto. Para los grupos 3 y 5, se administra una sola inyección intramuscular de 0,5 ml de la vacuna de rLP2086 en el músculo deltoides superior. Para los sujetos de los grupos 1, 2 y 4 se administra una sola inyección intramuscular de 0,5 ml de solución salina al músculo deltoides superior.
G. Visita 7 (de 28 a 42 días después de la visita 6), extracción de sangre posvacunación 4
Se recoge una muestra de sangre (aproximadamente 20 ml) del sujeto.
Resultados de inmunogenicidad
El objetivo principal de este estudio era evaluar la inmunogenicidad de 60 |jg, 120 |jg y 200 |jg de la vacuna de rLP2086, medida mediante SBA realizada con cepas de MnB que expresan las proteínas LP2086 de la subfamilia A y B.
El objetivo secundario de este estudio era evaluar la inmunogenicidad de 60 jg , 120 jg y 200 jg de la vacuna de rLP2086 determinada mediante cuantificación de la unión de Ig a las proteínas de la vacuna rLP2086 de la subfamilia A y B.
La actividad de SBA se evaluó usando 3 cepas de subfamilia A y 3 de la subfamilia B como se muestra en la Tabla 4.
Tabla 4: Análisis de los sujetos que alcanzaron el título de SBA de elevación de >4 veces con respecto a antes de la dosis 2- Población d mITT (Estudio 6108A1-2001-WW / B1971005) Cepa Grupo de vacunas aleatorizado Na nb(%) (IC del 95 %c) Valor pd 1 mes después de la
dosis 2
Cepa 1 subfamilia A Control 80 1 (1,3) (0,0, 6,8) >0,9999
60 |jg de la vacuna de rLP2086 18 16 (88,9) (65,3, 98,6) 0,0007 120 jg de la vacuna de rLP2086 115 96 (83,5) (75,4, 89,7) <0,0001 200 jg de la vacuna de rLP2086 106 93 (87,7) (79,9, 93,3) <0,0001 Cepa 1 subfamilia B Control 84 0(0,0) (0,0, 4,3) >0,9999
60 jg de la vacuna de rLP2086 21 15 (71,4) (47,8, 88,7) 0,0392 120 jg de la vacuna de rLP2086 121 72 (59,5) (50,2, 68,3) 0,0225 200 jg de la vacuna de rLP2086 114 68 (59,6) (50,1, 68,7) 0,0244 1 mes después de la
dosis 3
Cepa 1 subfamilia A Control 73 4 (5,5) (1,5, 13,4) >0,9999
60 jg de la vacuna de rLP2086 19 17 (89,5) (66,9, 98,7) 0,0004 120 jg de la vacuna de rLP2086 111 103 (92,8) (86,3, 96,8) <0,0001 200 jg de la vacuna de rLP2086 100 94 (94,0) (87,4, 97,8) <0,0001 Cepa 1 subfamilia B Control 79 1 (1,3) (0,0, 6,9) >0,9999
60 jg de la vacuna de rLP2086 21 17 (81,0) (58,1, 94,6) 0,0036 120 jg de la vacuna de rLP2086 112 97 (86,6) (78,9, 92,3) <0,0001 200 jg de la vacuna de rLP2086 105 89 (84,8) (76,4, 91,0) <0,0001 (continuación)
Abreviatura: IC= intervalo de confianza; SBA = ensayo bactericida en suero,
Nota: La validación del ensayo soporta un límite inferior de cuantificación (LLOQ) de la subfamilia A cepa 1 = 9 y subfamilia B cepa 1 = 10, Los títulos de SBA por encima del LLOQ se consideran precisos y sus valores cuantitativos se notificarán, Los valores por debajo de LLOQ o denotados por debajo del LLOQ se establecerán en 0,5 * LLOQ para el análisis,_______________________________________________________
Las proporciones de los sujetos con títulos que alcanzan un nivel definido se presentan en la Tabla 5. Para ambas subfamilias, las proporciones de sujetos que alcanzaron títulos de títulos de SBA definidos fueron mayores en la posdosis 3 que en la posdosis 2.
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Los datos de inmunogenicidad muestran que la vacuna puede generar anticuerpos con actividad SBA significativa contra cepas de la subfamilia A y cepas de la subfamilia B de MnB. Para la cepa 2 de la subfamilia A, después de la dosis 2, las tasas de respuesta de la SBA variaron de 88,9 % a 90,9 % y, después de la dosis 3, las tasas de respuesta de la SBA variaron de 90,0 % a 97,4 %. Para la variante de la cepa 1 de la subfamilia A, después de la dosis 2 y la dosis 3, el 100,0 % de los sujetos tuvieron respuestas de SBA a esta variante en los niveles de dosis de 60 |jg y 120 |jg. En el nivel de dosis de 200 jg , el 96,5 % y el 99,0 % de los sujetos tuvieron respuestas de SBA después de la dosis 2 y la dosis 3, respectivamente. Para la variante de la cepa 1 de la subfamilia A, las tasas de respuesta de la SBA variaron de 85,0 % a 96,3 % después de la dosis 2 y de 95,2 % a 97,4 % después de la dosis 3.
Para la variante de la cepa 1 de la subfamilia B, después de la dosis 2, las tasas de respuesta de la SBA variaron de 76,2 % a 81,0 % y, después de la dosis 3, las tasas de respuesta de la SBA variaron de 89,5 % a 92,0 %. Para la variante de la cepa 2 de la subfamilia B después de la dosis 2, el porcentaje de sujetos con tasas de respuesta de SBA osciló de 21,1 % a 33,3 %. Sin embargo, después de la tercera dosis, el 53,3 %, 75,6 % y 67,9 % de los sujetos tuvieron respuestas SBA a los niveles de dosis de 60 jg , 120 jg y 200 jg , respectivamente. Para la variante de la cepa 3 de la subfamilia B, las tasas de respuesta de la SBA variaron de 61,9 % a 70,8 % después de la dosis 2 y de 76,2 % a 88,7 % después de la dosis 3.
En general, una alta proporción de sujetos respondieron con un título SBA > LLOQ independientemente de la cepa de la subfamilia A o la subfamilia B analizada. Los datos de la hSBA mostraron respuestas inmunes sólidas a dosis de 60 jg a 200 jg sin una clara relación dosis-respuesta. La frecuencia de respuesta, independientemente del análisis examinado, fue la más alta numéricamente en el grupo de 120 jg . El grupo de 200 |jg no tenía respuestas inmunitarias mejoradas sobre el nivel de dosis de 120 jg .

Claims (21)

REIVINDICACIONES
1. Un procedimiento para estabilizar la potencia de un polipéptido LP2086 (fHBP) de la subfamilia B en una composición inmunogénica, comprendiendo dicho método la etapa de (a) formular el polipéptido LP2086 (fHBP) de la subfamilia B en una composición con una proporción molar entre el detergente y la proteína de entre aproximadamente 0,5:1 y aproximadamente 10:1 en la que la composición comprende además aluminio a una concentración de entre aproximadamente 0,1 mg/ml y aproximadamente 1 mg/ml.
2. El procedimiento de acuerdo con la reivindicación 1, en el que la proporción molar entre el detergente y la proteína está entre aproximadamente 1:1 y aproximadamente 5:1.
3. El procedimiento de acuerdo con la reivindicación 2, en el que la proporción molar entre el detergente y la proteína está entre aproximadamente 1,4:1 y aproximadamente 4,2:1.
4. El procedimiento de acuerdo con la reivindicación 2, en la que la proporción molar entre el detergente y la proteína es de aproximadamente 2,8:1.
5. El procedimiento de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1-4, en el que la cantidad de detergente es suficiente para reducir la unión del polipéptido a silicio en un recipiente.
6. El procedimiento de acuerdo con la reivindicación 5, en el que el recipiente es una jeringa o un vial.
7. El procedimiento de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1-6, en el que el detergente es un detergente no iónico.
8. El procedimiento de acuerdo con la reivindicación 7, en el que el detergente es un detergente de polisorbato Polisorbato 80.
9. El procedimiento de acuerdo con la reivindicación 8, en el que el detergente es Polisorbato 80.
10. El procedimiento de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1-9, en el que la concentración de aluminio es de aproximadamente 0,5 mg/ml.
11. El procedimiento de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1-10, en el que la composición comprende AlPO4, Al(OH)a, Al2(SO4)3 o alumbre.
12. El procedimiento de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1-11, en el que la composición comprende además histidina.
13. El procedimiento de acuerdo con la reivindicación 12, en el que la concentración de histidina está entre aproximadamente 2 mM y aproximadamente 20 mM o está entre aproximadamente 5 mM y aproximadamente 15 mM.
14. El procedimiento de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1-13, en el que la composición comprende además succinato.
15. El procedimiento de acuerdo con la reivindicación 14, en el que la concentración de succinato está entre aproximadamente 2 mM y aproximadamente 10 mM o está entre aproximadamente 3 mM y aproximadamente 7 mM.
16. El procedimiento de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1-15, en el que el pH está entre aproximadamente 5,0 y aproximadamente 8,0 o está entre aproximadamente 5,8 y 6,0.
17. El procedimiento de acuerdo con la reivindicación 16, en el que la concentración de histidina es de aproximadamente 10 mM, pH 6,0.
18. El procedimiento de acuerdo con la reivindicación 16, en el que la concentración de succinato es de aproximadamente 5 mM, pH 6,0.
19. El procedimiento de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1-18, que comprende además la etapa de (b) liofilizar la composición inmunogénica.
20. El procedimiento de acuerdo con la reivindicación 1, en el que la proteína de la subfamilia B se formula en una composición que consiste esencialmente en aproximadamente una proporción molar entre Polisorbato 80 y la proteína de 2,8:1, 0,5 mg/ml de aluminio como AlPO4, histidina 10 mM a pH 6,0 y NaCl 150 mM.
21. El procedimiento de acuerdo con la reivindicación 1, en el que la proteína de la subfamilia B se formula en una composición que consiste esencialmente en aproximadamente una proporción molar entre Polisorbato 80 y la proteína de 2,8:1, 0,5 mg/ml de aluminio como AlPO4, succinato 5 mM a pH 6,0 y NaCl 150 mM.
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