ES2346326T3 - Construccion acidos nucleicos que contiene genoma longitud completa del virus hepatitis c humana; celula replicante genoma longitud completa virus recombinante que tiene construccion acidos nucleicos transferida al anterior y procedimiento construir particulas viricas hepatitis c. - Google Patents
Construccion acidos nucleicos que contiene genoma longitud completa del virus hepatitis c humana; celula replicante genoma longitud completa virus recombinante que tiene construccion acidos nucleicos transferida al anterior y procedimiento construir particulas viricas hepatitis c. Download PDFInfo
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Abstract
Un replicón de ARN, que comprende una secuencia de nucleótidos que comprende una región 5' no traducida que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 1, una secuencia de codificación de una proteína núcleo que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 2, una secuencia de codificación de la proteína E1 que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 3, una secuencia de codificación de la proteína E2 que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 4, una secuencia de codificación de la proteína NS2 que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 5, una secuencia de codificación de la proteína NS3 que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 6, una secuencia de codificación de la proteína NS4A que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 7, una secuencia de codificación de la proteína NS4B que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 8, una secuencia de codificación de la proteína NS5A que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 9, una secuencia de codificación de la proteína NS5B que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 10, una región 3' no traducida que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 11, al menos un gen marcador seleccionable y/o al menos un gen indicador, y al menos una secuencia IRES, en el que dicho al menos un gen marcador seleccionable y/o al menos un gen indicador, y dicha al menos una secuencia IRES se colocan entre la región 5' no traducida y la secuencia de codificación de la proteína núcleo en este orden en la dirección 5' a 3', en el que dicho replicón de ARN tiene capacidad de replicación autónoma y capacidad de producción de partículas de virus.
Description
Construcción de ácidos nucleicos que contiene el
genoma de longitud completa del virus de la hepatitis C humana;
célula replicante del genoma de longitud completa de virus
recombinante que tiene la construcción de ácidos nucleicos
transferida al anterior y procedimiento para construir partículas
víricas de la hepatitis C.
La presente invención se refiere a un replicón
de ARN que comprende una secuencia de nucleótidos específica, al
menos un gen marcador y/o al menos un gen indicador seleccionables,
un procedimiento para producir una célula que replica un replicón
de ARN y produce una partícula de virus, una célula que replica un
replicón de ARN y produce una partícula de virus para cribar una
sustancia contra el virus de la hepatitis C, una vacuna de la
hepatitis C, un procedimiento para producir una vacuna de la
hepatitis C, un procedimiento in vitro para producir
partículas del virus de la hepatitis C y el uso de las partículas
del virus de la hepatitis C producidas.
El virus de la hepatitis C (VHC) pertenece a la
familia Flaviviridae y es un virus que tiene un genoma de ARN de
sentido directo (+) de cadena única y es conocido por producir la
hepatitis C.
El VHC produce hepatitis crónica por infección
persistente. Actualmente, la principal causa de hepatitis crónica
observada mundialmente es la infección persistente por VHC. En la
actualidad, alrededor del 50% de individuos con infección
persistente desarrolla hepatitis crónica. La hepatitis crónica en
aproximadamente un 20% de estos pacientes evoluciona a cirrosis
hepática en el curso de 10 a 20 años, y algunos de estos pacientes
experimentan adicionalmente condiciones patológicas letales
avanzadas tales como cáncer hepático.
La hepatitis C se trata actualmente
principalmente mediante terapia usando
interferón-\alpha o
interferón-\beta, o una terapia que usa una
combinación de interferón-\alpha y ribavirina, un
derivado nucleósido de purina. Sin embargo incluso cuando se llevan
a cabo estas terapias, se observan efectos terapéuticos en solo un
60% de los pacientes tratados. Cuando cesan las terapias después que
se observan los efectos, se recrudece la enfermedad en más de la
mitad de los pacientes.
Es una importante meta desarrollar agentes
terapéuticos o agentes profilácticos eficaces contra la hepatitis
C. La tasa de incidencia de la hepatitis C, que produce finalmente
graves consecuencias, es elevada en países industriales, y no está
actualmente disponible un tratamiento causal. Por tanto, se desea el
desarrollo de terapias específicas de VHC y terapias de vacunas. Un
objetivo para el desarrollo de un agente dirigido contra el VHC
puede ser la supresión de la replicación de VHC o la supresión de la
infección de las células con VHC.
Recientemente, se han preparado sistemas de
replicones de ARN subgenómico de VHC, en forma de ARN replicable
autónomamente derivado de VHC (véanse, los Documentos de Patente 1,2
y 3, los Documentos No de Patente 1-4). En los
sistemas de replicones de ARN subgenómico de VHC, el replicón de ARN
de VHC en el que se eliminan y sustituyen los genes estructurales
del genoma de VHC con un gen marcador seleccionable de fármaco, se
prepara e introduce en células cultivadas, y por tanto, el replicón
de ARN se replica autónomamente en las células. Usando estos
sistemas llega a ser posible analizar el mecanismo de replicación de
VHC. Sin embargo, este es un sistema experimental en el que
únicamente se evalúa la replicación del ARN vírico en el proceso de
la proliferación y la replicación del virus VHC, y no se puede
analizar el proceso de formación de las partículas del virus VHC en
las células infectadas y la liberación extracelular de la infección
en otras células.
En la actualidad, se puede evaluar únicamente el
proceso de formación de partículas del virus VHC y la liberación
extracelular así como la infección en otras células en los sistemas
experimentales que usan animales tales como chimpancés (Documento
No de Patente 5). Sin embargo, los sistemas experimentales que usan
organismos vivos tales como animales son complicados y muy
difíciles de analizar. Por tanto, con el fin de analizar el proceso
de formación de partículas del virus VHC y la liberación
extracelular, así como la infección en otras células, y para
producir un agente dirigido contra VHC que tendrá el mecanismo de
acción de inhibir este proceso, es necesario establecer un sistema
experimental muy simplificado que reproduzca este proceso, es decir,
un sistema de producción de partículas del virus VHC en sistemas
experimentales de cultivo celular.
Adicionalmente, una vez que se pueden
proporcionar de manera estable partículas del virus VHC usando el
sistema de cultivo celular, es posible atenuar el virus o producir
virus VHC no infeccioso usando técnicas de biología molecular, y se
pueden usar éstas en vacunas.
Documento de Patente 1: Publicación de patente
japonesa (kokai) Nº 2001-17187
Documento de Patente 2: Solicitud de Patente
Internacional PCT/JP03/15038
Documento de Patente 3: Solicitud de Patente
japonesa Nº 2003-329082
Documento No de Patente 1: Lohmann y
col., Science, (1999) 285, p.
110-113
Documento No de Patente 2: Blight y col.,
Science, (2000) 290, p 1972-1974
Documento No de Patente 3: Friebe y col.,
J. Virol., (2001) 75(24): p.
12047-12057
Documento No de Patente 4: Ikeda y col.,
Science, (1977) 277, p. 2997-3006
Documento No de Patente 5: Kolykhalov y
col., Science, (1977) 277, p.
570-574
Documento No de Patente 6: Kato y col.,
Gastroenterology, (2003) 125, p.
1808-1817
Documento No de Patente 7: Yanagi y col.,
Proc. Natl. Acad. Sci., (1997) 96(16): p.
8738-8743
Documento No de Patente 8: Okamoto y
col., J. Gen. Virol. (1991) 73, p.
2697-26704
Documento No de Patente 9: Aoyagi y col.,
J. Clin. Microbiol., (1999) 37(6); p.
1802-1808
El objetivo de la presente invención es
proporcionar un procedimiento para replicar eficazmente el ARN que
contiene las secuencias genómicas del VHC de longitud completa y un
procedimiento para producir partículas del virus VHC que contengan
el replicón de ARN del VHC de longitud completa o el ARN genómico
del VHC de longitud completa en un sistema de cultivo celular. El
objetivo de la presente invención no se ha conseguido nunca hasta
el momento.
Como resultado de intensos estudios para
conseguir el anterior objeto, los presentes inventores han
desarrollado un procedimiento para producir partículas del virus
VHC en un sistema de cultivo celular. Esto es, la presente
invención proporciona un replicón de ARN de acuerdo con las
reivindicaciones 1, 2 y 3. En las reivindicaciones 4 a 13 se
definen las materias sujeto de la presente invención.
- [1]
- Un replicón de ARN, que comprende una secuencia de nucleótidos que comprende una región 5' no traducida que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 1, una secuencia de codificación de una proteína núcleo que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 2, una secuencia de codificación de la proteína E1 que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 3, una secuencia de codificación de la proteína E2 que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 4, una secuencia de codificación de la proteína NS2 que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 5, una secuencia de codificación de la proteína NS3 que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 6, una secuencia de codificación de la proteína NS4A que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 7, una secuencia de codificación de la proteína NS4B que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 8, una secuencia de codificación de la proteína NS5A que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 9, una secuencia de codificación de la proteína NS5B que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 10, una región 3' no traducida que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 11, al menos un gen marcador seleccionable y/o al menos un gen indicador, y al menos una secuencia IRES, en el que dicho al menos un gen marcador seleccionable y/o al menos un gen indicador, y dicha al menos una secuencia IRES se colocan entre la región 5' no traducida y la secuencia de codificación de la proteína núcleo en este orden en la dirección 5' a 3', en el que dicho replicón de ARN tiene capacidad de replicación autónoma y capacidad de producción de partículas de virus,
- [2]
- En el replicón de ARN de acuerdo con [1], la secuencia de nucleótidos comprende la región 5' no traducida, el al menos un gen marcador seleccionable y/o el al menos un gen indicador, y la al menos una secuencia IRES, y la secuencia de codificación de la proteína núcleo, la secuencia de codificación de la proteína E1, la secuencia de codificación de la proteína E2, la secuencia de codificación de la proteína NS2, la secuencia de codificación de la proteína NS3, la secuencia de codificación de la proteína NS4A, la secuencia de codificación de la proteína NS4B, la secuencia de codificación de la proteína NS5A, la secuencia de codificación de la proteína NS5B, y la región 3' no traducida en este orden en la dirección 5' a 3'.
- \quad
- En un ejemplo de un replicón de ARN, el ARN genómico del virus de la hepatitis C de genotipo 2a es un ARN que comprende la secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 12.
- [3]
- El replicón de ARN de acuerdo con [1], que comprende el ARN (a) o (b) siguiente:
- (a)
- un ARN que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 13; o
- (b)
- un ARN que comprende una secuencia de nucleótidos derivada de la secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 13 mediante delección, sustitución o adición de 1 a 100 nucleótidos, en el que dicho replicón de ARN tiene capacidad de replicación autónoma y capacidad de producción de partículas de virus.
- [4]
- un procedimiento para producir una célula que replica un replicón de ARN y produce una partícula de virus, que comprende introducir el replicón de ARN de acuerdo con uno cualquiera de [1] a [3] en una célula.
- \quad
- Para este procedimiento la célula es preferiblemente una célula proliferativa. Para este procedimiento la célula es también o preferiblemente de otra manera una célula eucariota.
- [5]
- Una célula que replica un replicón de ARN y produce una partícula de virus, que comprende el replicón d ARN de acuerdo con uno cualquiera de [1] a [3].
- [6]
- La célula de acuerdo con [5], en la que la célula es una células derivada de hígado humano, una célula derivada de cuello uterino humano o una célula derivad de riñón fetal humano.
- [7]
- La célula de acuerdo con [5], en la que la célula es una célula Huh7, una célula hepG2, una célula IMY-N9, una célula HeLa o una célula 293.
- [8]
- Un procedimiento para producir una partícula del virus de la hepatitis C, que comprende cultivar la célula de acuerdo con uno cualquiera de [5] a [7] para dejar a la célula producir la partícula de virus.
- [9]
- Una partícula de virus de la hepatitis C que comprende el replicón de ARN de acuerdo con uno cualquiera de [1] a [3].
- [10]
- Un procedimiento par cribar una sustancia dirigida contra el virus de la hepatitis C, que comprende cultivar, en presencia de una sustancia de ensayo, al menos una seleccionada entre el grupo constituido por (a) y (b) siguientes:
- (a)
- la célula de acuerdo con [5] a [7], y
- (b)
- la partícula de virus de la hepatitis C de acuerdo con [9] y la célula permisiva al virus de la hepatitis C;
- \quad
- y detectar el replicón de ARN o las partículas de virus en el cultivo resultante.
- [11]
- Una vacuna de la hepatitis C, que comprende la partícula del virus de la hepatitis C de acuerdo con [9] o una pare de la misma.
- [12]
- Un procedimiento para producir una vacuna de la hepatitis C de acuerdo con [9] o una parte de la misma como un antígeno.
- [13]
- Uso del replicón de ARN de acuerdo con uno cualquiera [1] a [3] en la producción de partículas del virus de la hepatitis C en células cultivadas.
La Figura 1 es una vista esquemática que muestra
los procedimientos para construir una plantilla de ADN para
preparar el replicón de ARN del VHC de longitud completa o el ARN
genómico del VHC de longitud completa. La parte superior de la
Figura 1 muestra la estructura de un clon del plásmido pJFH1, que se
produce insertando el genoma del VHC de longitud completa en la
dirección 3' del promotor T7. La parte inferior de la Figura 1
muestra la estructura del clon del plásmido
pFGREP-JFH1 de acuerdo con la invención, que
comprende la secuencia genómica del VHC de longitud completa, en la
que se inserta un fragmento de ADN que contiene el gen de
resistencia a la neomicina y el IRES de EMCV en la dirección 3' del
promotor T7 de pJFH1 y en la región 5' no traducida. Los términos
que se muestran en la figura son como sigue. T7: promotor T7 del
ARN, 5' UTR: región 5' no traducida, C: proteína núcleo, E1, E2:
proteínas de la envoltura. NS2, NS3, NS4A, NS4B, 4A, 4B: proteínas
no estructurales. 3' UTR: región 3' no traducida AgeI, PmeI, XbaI:
emplazamientos de restricción de los enzimas de restricción AgeI,
PmeI y XbaI. GDD: El emplazamiento del motivo GDD de los aminoácidos
que corresponde al centro activo de la proteína NS5B. neo: el gen
resistente a la neomicina. IRES de EMCV: emplazamiento de entrada
ribosómica interna del virus de la encefalomiocarditis;
La Figura 2 es una fotografía que muestra el
resultado de un análisis de transferencia Northern que muestra la
replicación de rJFH-1 en células Huh7 en las que se
ha introducido rJFH-1, el ARN genómico del VHC de
longitud completa;
La Figura 3 muestra el resultado de la
cuantificación de la proteína núcleo de VHC en el medio de cultivo.
El círculo abierto representa las células en las que se ha
introducido rJFH1, y el círculo cerrado representa las células en
las que se ha introducido rJFH1/GND;
La Figura 4 es una gráfica que muestra las
cantidades de proteína núcleo de VHC y en ARN genómico de VHC de
longitud completa, y los pesos específicos de cada una de las
fracciones que se recogieron mediante fraccionamiento del
sobrenadante del cultivo de las células Huh7 introducidas en rJFH1
mediante el gradiente de densidad de la sacarosa. El círculo
cerrado, el círculo abierto y el círculo sombreado representan la
proteína del núcleo de VHC, el ARN genómico del VHC de longitud
completa y el peso específico, respectivamente;
La Figura 5 es un fotografía que muestra la
formación de colonias de células Huh7 en las que se transfectó
rFGREP-JFH1, el replicón de ARN de VHC de longitud
completa;
La Figura 6 es una fotografía que muestra la
replicación del replicón de ARN del VHC de longitud completa en el
clon de célula replicante del ARN del replicón de VHC de longitud
completa, que se ha establecido transfectando
rFGREP-JFH1 en células Huh7;
La Figura 7 es una fotografía que muestra el
resultado de la amplificación de la PCR usando el ADN genómico de
la células huésped como plantilla y los cebadores específicos para
el gen resistente a la neomicina, para confirmar la integración del
gen de resistencia a la neomicina en el ADN genómico. M: marcador de
tamaño del ADN, P: control positivo, N: células Huh7;
La Figura 8 es una fotografía que muestra el
resultado de un análisis de transferencia Western que demuestra la
expresión de la proteína núcleo en células Huh7 en las que se ha
introducido rFGREP-JFH1, el replicón de ARN del VHC
de longitud completa;
La Figura 9 es una fotografía que muestra el
resultado de un análisis de transferencia Western que demuestra la
expresión de la proteína NS3 en células Huh7 en las que se ha
introducido rFGREP-JFH1, el replicón de ARN del VHC
de longitud completa;
La Figura 10 es una fotografía que muestra el
resultado de un análisis de transferencia Western que demuestra la
expresión de la proteína NS5A en células Huh7 en las que se ha
introducido tFGREP-JFH1, el replicón de ARN del VHC
de longitud completa;
La Figura 11 es una gráfica que muestra las
cantidades de proteína núcleo de VHC y del replicón de ARN del VHC
de longitud completa, y los pesos específicos para cada una de las
fracciones que se recogieron mediante fraccionamiento del
sobrenadante del cultivo de células Huh7 introducido en
rFGREP-JFH1 mediante el gradiente de densidad de la
sacarosa. El círculo cerrado, el círculo abierto y el círculo
sombreado representan la proteína núcleo del VHC, el replicón de
ARN del VHC de longitud completa y el peso específico,
respectivamente; y
La Figura 12 es una fotografía que muestra la
formación de colonias de células Huh7 en las que se han añadido
partículas de virus en el sobrenadante del cultivo de la célula
replicante del replicón de ARN del VHC de longitud completa.
La presente invención se explica en detalle como
sigue.
El genoma del virus de la hepatitis C (VHC) es
un ARN de sentido directo (+) de cadena única que comprende
aproximadamente 9600 nucleótidos. Este ARN genómico comprende la
región 5' no traducida (denotada también como 5' NTR o 5' UTR), una
región traducida compuesta por una región estructural y una región
no estructural, y la región 3' no traducida (denotada también como
3' NTR o 3' UTR). Las proteínas estructurales de VHC están
codificadas en la región estructural y una pluralidad de proteínas
no estructurales está codificadas en la región no estructural.
Dichas proteínas estructurales de VHC (núcleo,
E1 y E2) y no estructurales (NS2, NS3, NS4A, NS4B, NS5A y NS5B) se
generan en primer lugar traduciendo la región traducida en una
poliproteína continua única y a continuación, liberando ésta
mediante escisión restringida de la poliproteína por las proteasas.
Entre estas proteínas estructurales y proteínas no estructurales
(esto es, proteínas víricas de VHC), el núcleo es una proteína
núcleo, E1 y E2 son proteínas de la envoltura. Las proteínas no
estructurales son proteínas implicadas en la propia replicación
vírica, y se sabe que NS2 tiene actividad metaloproteasa, y se sabe
que NS3 tiene actividad serina proteasa (en un tercio del N
terminal lateral) y actividad helicasa (en dos tercios del C
terminal lateral). Además NS4A es un cofactor para la actividad de
la proteasa de NS3, y se ha informado que NS5B tiene actividad ARN
polimerasa dependiente de ARN.
Los presentes inventores construyeron un
replicón de ARN que tenía capacidad de replicación autónoma y
capacidad de producción de partículas de virus, usando el ARN
genómico.
La capacidad de replicación autónoma que tiene
el ARN, que se ha producido modificando el ARN genómico de VHC se
denomina "ARN del replicón" o "replicón de ARN" en el
presente documento. En la presente memoria, el replicón de ARN
derivado de VHC puede denominarse también replicón de ARN de VHC. El
replicón de ARN de la presente invención que comprende el ARN
genómico del VHC de longitud completa se denomina "replicón de ARN
del VHC de longitud completa" en el presente documento. El
replicón de ARN del VHC de longitud completa de la presente
invención tiene capacidad de producir partículas de virus.
El replicón de ARN del VHC de longitud completa
en la presente invención, el virus de la hepatitis C es un virus de
la hepatitis C de genotipo 2a. En la presente invención, "el
virus de la hepatitis C de genotipo 2a" o el "genotipo 2a de
VJC" significa un virus de la hepatitis identificado como el
genotipo 2a de acuerdo con la clasificación internacional de
Simmonds y col. (véase Simmons, P. y col, Hepatology, (1994) 10, p.
1321-1324) En la presente invención, "genotipo 2a
del virus de la hepatitis C" o "genotipo 2a de VHC" incluye
no solo el virus que tiene el ARN genómico del VHC que se produce
naturalmente sino también el virus que tiene un ARN genómico en el
que la secuencia genómica del VHC que se produce naturalmente está
modificada artificialmente. Un ejemplo particular del genotipo 2a
de VHC incluye la cepa JFH-1 (véase la Publicación
de Patente Japonesa (kokai) Nº 2002-171978).
En la presente memoria, "el ARN genómico del
virus de la hepatitis C" significa el ARN que comprende la
secuencia de nucleótidos de la región completa del genoma de ARN de
sentido directo (+) de cadena única del virus de la hepatitis C, el
ARN genómico del virus de la hepatitis C de genotipo 2a es, pero sin
limitarse a, preferiblemente al ARN que comprende la secuencia de
nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 12.
Un ejemplo de replicón de ARN del VHC de
longitud completa es un replicón de ARN que comprende la secuencia
de nucleótidos que comprende una región 5' no traducida, una
secuencia de codificación de la proteína núcleo, una secuencia de
codificación de la proteína E1, una secuencia de codificación de la
proteína E2, una secuencia de codificación de la proteína NS2, una
secuencia de codificación de la proteína NS3, una secuencia de
codificación de la proteína NS4A, una secuencia de codificación de
la proteína NS4B, una secuencia de codificación de la proteína
NS5A, una secuencia de codificación de la proteína NS5B, y una
región 3' no traducida, al menos un gen marcador seleccionable o
gen indicador, y al menos una secuencia IRES.
Preferiblemente, el replicón de ARN del VHC de
longitud completa de acuerdo con la presente invención comprende:
la región 5' no traducida, al menos un gen marcador seleccionable o
gen indicador, al menos una secuencia IRES, la secuencia de
codificación de la proteína núcleo, la secuencia de codificación de
la proteína E1, la secuencia de codificación de la proteína E2, la
secuencia de codificación de la proteína NS2, la secuencia de
codificación de la proteína NS3, la secuencia de codificación de la
proteína NS4A, la secuencia de codificación de la proteína NS4B, la
secuencia de codificación de la proteína NS5A, la secuencia de
codificación de la proteína NS5B, y la región 3' no traducida, en
este orden en la dirección 5' a 3'.
En la memoria de la presente solicitud,
"región 5' no traducida" (5' NTR o 5' UTR), "secuencia de
codificación de la proteína núcleo" (región núcleo o región C),
"secuencia de codificación de la proteína E1" (región E1),
"secuencia de codificación de la proteína E2" (región E2),
"secuencia de codificación de la proteína NS2" (región NS2),
"secuencia de codificación de la proteína NS3" (región NS3),
"secuencia de codificación de la proteína NS4A" (región NS4A),
"secuencia de codificación de la proteína NS4B" (región NS4B),
"secuencia de codificación de la proteína NS5A" (región NS5A),
"secuencia de codificación de la proteína NS5B" (región NS5B)
y "región 3' no traducida" (3' NTR o 3' UTR), y otras regiones
o emplazamientos específicos tal como se definen basándose en el
ARN genómico de longitud completa (SEC DE ID Nº: 12) comprenden la
región completa del genoma de la cepa JFH-1
(Publicación de Patente Japonesa (kokai) Nº
2002-17978), que es un virus VHC de genotipo 2a.
Una región o emplazamiento parcial en el genoma
del virus de la hepatitis C (VHC) de acuerdo con la presente
invención, se define basándose en las secuencias que se muestran en
las SE DE ID N^{os}: 1-11 que son secuencias
parciales de nucleótidos del ARN genómico de la cepa
JFH-1 (SEC DE ID Nº: 12). La "región 5' no
traducida" del ARN genómico de longitud completa de la cepa
JFH-1 (derivada del clon JFH-1; SEC
DE ID Nº: 12) comprende la secuencia de nucleótidos que se muestra
en la SEC DE ID Nº: 1. La "secuencia de codificación de la
proteína núcleo" comprende la secuencia de nucleótidos que se
muestra en la SEC DE ID Nº: 2. La "secuencia de codificación de
la proteína E1" comprende la secuencia de nucleótidos que se
muestra en la SEC DE ID nº: 3. La "secuencia de codificación de
la proteína E2" comprende la secuencia de nucleótidos que se
muestra en la SEC DE ID Nº: 4. La "secuencia de codificación de
la proteína NS2" comprende la secuencia de nucleótidos que se
muestra en la SEC DE ID Nº: 5. La "secuencia de codificación de
la proteína NS3" comprende la secuencia de nucleótidos que se
muestra en la SEC DE ID Nº: 6. La "secuencia de codificación de la
proteína NS4A" comprende la secuencia de nucleótidos que se
muestra en la SEC DE ID Nº: 7. La "secuencia de codificación de la
proteína NS4B" comprende la secuencia de nucleótidos que se
muestra en la SEC DE ID Nº: 8. La "secuencia de codificación de la
proteína NS5A" comprende la secuencia de nucleótidos que se
muestra en la SEC DE ID Nº: 9. La "secuencia de codificación de
la proteína NS5B" comprende la secuencia de nucleótidos que se
muestra en la SEC DE ID Nº: 10. La "región 3' no traducida"
comprende la secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID
Nº: 11.
Se puede definir por ejemplo, una región o
emplazamiento de la secuencia de ARN derivada de VHC mediante los
números de nucleótidos en el interior de las secuencias de
nucleótidos de las SEC DE ID N^{os} 1-12 que se
determinan mediante la alineación de la secuencia de ARN y de las
secuencias de nucleótidos que se muestran en las SEC DE ID
N^{os} 1-12. En la alineación, puede estar
presente un hueco, adición, delección, sustitución y similar.
De acuerdo con la presente invención, la región
5' no traducida, la secuencia de codificación de la proteína
núcleo, la secuencia de codificación de la proteína E1, la secuencia
de codificación de la proteína E2, la secuencia de codificación de
la proteína NS2, la secuencia de codificación de la proteína NS3, la
secuencia de codificación de la proteína NS4A, la secuencia de
codificación de la proteína NS4B, la secuencia de codificación de
la proteína NS5A, la secuencia de codificación de la proteína NS5B,
y la región 3' no traducida, que están contenidas en el replicón de
ARN del VHC de longitud completa, comprende preferiblemente las
secuencias de nucleótidos que se muestran en las SEC DE ID N^{os}
1-11, respectivamente.
Un ejemplo de replicón de ARN del VHC de
longitud completa es un replicón de ARN que comprende las secuencias
de nucleótidos que se muestran en las SEC DE ID N^{os}
1-11, al menos un gen marcador y/o gen indicador, y
al menos una secuencia IRES.
"Gen marcador seleccionable" en la presente
invención significa un gen que confiere capacidad de selección a
una célula de tal manera que se puede seleccionar únicamente la
célula que expresa el gen. Los ejemplos de gen marcador
seleccionable preferidos en la presente invención incluyen un gen de
resistencia a la neomicina, un gen de la timidina quinasa, un gen
de resistencia a la kanamicina, un gen de resistencia a la
piritiamina, un gen de la adenilil transferasa, un gen de
resistencia a la Zeocina y un gen de resistencia a la puromicina.
Se prefieren el gen de resistencia a la neomicina y el gen de la
timidina quinasa, y se prefiere más el gen de resistencia a la
neomicina. Sin embargo, el gen marcador seleccionable en la presente
invención no se limita a estos genes.
Además, en la presente invención, "gen
indicador" significa un gen marcador que codifica un producto
génico que puede actuar como un indicador de la expresión del gen.
Los ejemplos generales de gen indicador incluyen genes
estructurales de enzimas que catalizan la reacción de emisión de luz
o la reacción de color. Los ejemplos preferidos del gen indicador
en la presente invención incluyen el gen de la cloranfenicol
acetiltransferasa derivado del transposón Tn9, el gen de la
\beta-glucuronidasa o el gen de la
\beta-galactosidasa derivado de Escherichia
coli, el gen de la luciferasa, un gen de la proteína
fluorescente verde, el gen de la aecuorina de medusa, y el gen de
la fosfatasa alcalina placental segregada (SEAP). Sin embargo, el
gen indicador en la presente invención no se limita a estos
genes.
Tanto uno únicamente como ambos del anterior gen
seleccionable y gen indicador puede estar contenido en un replicón
de ARN de longitud completa. Pueden estar presentes uno o más de
los genes marcadores seleccionables o genes indicadores en un
replicón de ARN del VHC de longitud completa.
En la presente invención, "secuencia IRES"
significa un emplazamiento interno de entrada al ribosoma que
permite que se inicie la traducción mediante la unión de los
ribosomas dentro del interior del ARN. Los ejemplos preferidos de
secuencia IRES en la presente invención incluyen, pero no se limitan
a, IRES de EMCV (el el emplazamiento interno de entrada al ribosoma
del virus de la encefalomiocarditis), el IRES de FMDV y el IRES DE
VHC. Se prefieren más el IRES de EMCV y el IRES de VHC, y la
secuencia más preferida es el IRES de EMCV.
Una forma de realización aún más preferida de un
replicón de ARN del VHC de longitud completa de acuerdo con la
presente invención es un ARN que comprende la secuencia de
nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 13. Además, un
replicón de ARN que comprende una secuencia de nucleótidos derivada
de la secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID nº:
13 mediante delección, sustitución o adición de
1-10, preferiblemente 1-30, más
preferiblemente 1-10, aún más preferiblemente
1-6, y los más preferible uno a algunos
(2-5) nucleótidos en la secuencia de nucleótidos
que se muestra en la SEC DE ID Nº: 13 y que tiene capacidad de
replicación autónoma y capacidad de producción de partículas de
virus, es una forma de realización del replicón de ARN del VHC de
longitud completa y está incluida también en el alcance de la
presente invención.
El replicón de ARN del VHC de longitud completa
de la presente invención puede contener también un ARN que codifica
un gen extraño opcional que se va a expresar en el interior de una
célula en la que se introduce el replicón de ARN de longitud
completa, El ARN que codifica el gen extraño, puede estar también
unido en la dirección 3' de la región 5' no traducida o unido en la
dirección 5' o en la dirección 3' de un gen marcador o un gen
indicador seleccionable, o unido en la dirección 5' de la región 3'
no traducida. Se puede insertar el ARN que codifica el gen extraño
en cualquier emplazamiento entre la secuencia de codificación de la
proteína núcleo, la secuencia de codificación de la proteína E1, la
secuencia de codificación de la proteína E2, la secuencia de
codificación de la proteína NS2, la secuencia de codificación de la
proteína NS3, la secuencia de codificación de la proteína NS4A, la
secuencia de codificación de la proteína NS4B, la secuencia de
codificación de la proteína NS5A y la secuencia de codificación de
la proteína NS5B.
El replicón de ARN del VHC de longitud completa
que contiene el ARN que codifica el gen extraño puede expresar un
producto génico codificado por el gen extraño cuando se traduce en
el interior de una célula en la que se introduce el ARN. De esta
manera, el replicón de ARN del VHC de longitud completa que contiene
el ARN que codifica el gen extraño se puede usar también
apropiadamente para producir un producto génico del gen extraño en
el interior de una célula.
El replicón de ARN del VHC de longitud completa
de acuerdo con la presente invención puede contener adicionalmente
una ribozima. Una ribozima se une en la dirección 3' de un gen
marcador y/o un gen marcador seleccionables de tal manera que el
gen marcador y/o el gen marcador seleccionables se pueden cortar
mediante la actividad de autoescisión de una ribozima a partir de
la secuencia IRES, la secuencia de codificación de la proteína
núcleo, la secuencia de codificación de la proteína E1, la secuencia
de codificación de la proteína E2, la secuencia de codificación de
la proteína NS2, la secuencia de codificación de la proteína NS3, la
secuencia de codificación de la proteína NS4A, la secuencia de
codificación de la proteína NS4B, la secuencia de codificación de
la proteína NS5A y la secuencia de codificación de la proteína NS5B,
y la región 3' no traducida.
En el replicón de ARN del VHC de longitud
completa de acuerdo con la presente invención, el gen marcador y/o
el gen indicador seleccionables anteriormente descritos, las
proteínas víricas que codifican las secuencias, y el gen extraño,
la ribozima o similar, se unen de tal manera que se traducen a
partir del ARN del replicón de VHC de longitud completa en el marco
de lectura correcto. Entre estas secuencias, las proteínas
codificadas por le replicón de ARN de longitud completa se conectan
preferiblemente a cada uno de los otros emplazamientos de escisión
mediante la proteasa y similares, de tal manera que, las proteínas
se traducen o expresan como una poliproteína, seguido por la
escisión mediante la proteasa en cada proteína.
La presente invención es también útil para
proporcionar un vector de ADN, preferiblemente un vector de
expresión, que codifica el replicón de ARN de la presente
invención.
En la presente invención "capacidad de
replicación autónoma" del ARN significa que el ARN es capaz de
crecer autónomamente cuando se introduce en la célula. Se puede
confirmar la capacidad de replicación autónoma del ARN mediante el
siguiente procedimiento aunque no está limitada. Se transfectan
células Huh7 con el ARN de interés y se cultivan. Se extrae el ARN
a partir de las células cultivadas resultantes y se somete a
hibridación de transferencia Northern usando una sonda capaz de
detectar específicamente el ARN introducido. La detección del ARN
de interés confirma la replicación autónoma. Se ilustran ejemplos
del procedimiento particular para confirmar la capacidad de
replicación autónoma en las descripciones acerca del ensayo de
capacidad de formación de colonias, confirmación de la expresión de
la proteína del VHC, detección del replicón de ARN y similares en
los Ejemplos de la presente memoria.
Además, en la presente invención, "capacidad
de producción de partículas de virus" del ARN significa que se
generan partículas de virus en una célula cuando se introduce el ARN
en la célula (por ejemplo, células cultivadas tales como células
Huh7). Se puede confirmar la capacidad de producción de las
partículas de virus, por ejemplo, aplicando la detección mediante
el procedimiento de la PCR-RT usando cebadores
específicos para el ARN en el sobrenadante del cultivo de las
células en las que se ha introducido el ARN. Se puede confirmar esto
también sometiendo el sobrenadante del cultivo al procedimiento del
gradiente de densidad de la sacarosa para separar las partículas de
virus y detectar la proteína del VHC. Se ilustran ejemplos del
procedimiento particular en las descripciones acerca del ensayo de
la capacidad de formación de colonias, confirmación de la expresión
de la proteína del VHC, detección del replicón de ARN y similares en
los Ejemplos de la presente memoria.
\vskip1.000000\baselineskip
Las personas expertas en la técnica pueden
preparar el replicón d ARN del VHC de longitud completa de acuerdo
con la presente invención usando técnicas de ingeniería genética. El
replicón de ARN del VHC de longitud completa se prepara usando la
cepa JFH-1 como virus de la hepatitis C de genotipo
2a mediante el siguiente procedimiento.
En primer lugar, se reconstruyó de manera
rutinaria el ADN que correspondía a la región completa del ARN
genómico de la cepa JFH-1 (SEC DE ID Nº: 12, se
registró esta secuencia en un banco de datos internacional de ADN
con el nº de acceso AB047639) y se insertó en la dirección 3' de un
promotor de ARN con el fin de preparar un clon de ADN. Tal como se
usa en el presente documento, "ADN que corresponde a ARN"
significa un ADN que tiene una secuencia de nucleótidos derivada de
la secuencia de nucleótidos del ARN sustituyendo U (uracilo) con T
(timina). El promotor de ARN anterior está contenido preferiblemente
en un clon de plásmido. Un ejemplo del promotor de ARN preferido no
se limita, pero incluye el promotor de ARN T7, el promotor de ARN
SP6 y el promotor de ARN SP3, y se prefiere particularmente el
promotor de ARN T7.
A continuación, el gen marcador y/o el gen
indicador seleccionables, y el ADN que codifica la secuencia IRES
se insertan en el clon de ADN descrito anteriormente. El gen
marcador y/o el gen indicador seleccionables en la dirección 3' de
la región no traducida 5' y la secuencia IRES adicionalmente en la
dirección 3'.
Posteriormente, usando el clon de ADN preparado
tal como anteriormente como plantilla, se sintetizó el ARN usando
ARN polimerasa. Se puede iniciar la síntesis del ARN mediante un
procedimiento normalizado a partir de la región 5' no traducida.
Cuando el clon de ADN es un clon de plásmido, se puede sintetizar el
ARN usando el fragmento de ADN escindido del clon de plásmido con
un enzima de restricción, tal como una plantilla. Adicionalmente,
es preferible que el término 3' del ARN que se va a sintetizar
tenga la misma secuencia que el término de la región 3' no
traducida del ARN genómico vírico, y no se añadan o eliminen otras
secuencias. El ARN sintetizado de esta manera es el replicón de ARN
del VHC de longitud completa de acuerdo con la presente
invención.
\vskip1.000000\baselineskip
Se puede obtener una célula recombinante que
puede replicar el replicón de ARN del VHC de longitud,
preferiblemente replicar continuamente (es decir, que tiene una
capacidad de replicación del replicón de ARN), introduciendo el
replicón de ARN del VHC de longitud completa descrito anteriormente
preparado tal como se ha descrito anteriormente en una célula. En
esta memoria, una célula recombinante que replica el replicón de ARN
del VHC de longitud completa se denomina como "célula que replica
el replicón de ARN del VHC de longitud completa".
La célula que replica el replicón de ARN del VHC
de longitud completa puede producir partículas de virus. Las
partículas de virus producidas contienen el replicón de ARN del VHC
de longitud completa en un armazón compuesto por las proteínas del
virus VHC. De esta manera, las partículas de virus producidas por la
célula que replica el replicón de ARN del VHC de longitud completa
de la presente invención son partículas de VHC. Esto es, en la
presente invención, se pueden preparar partículas de VHC en un
sistema de cultivo celular cultivando las células que replican el
replicón de ARN del VHC de longitud completa. Preferiblemente, se
pueden obtener las partículas de VHC cultivando las células que
replican el replicón de ARN del VHC de longitud completa y
recogiendo las partículas de virus generadas en el cultivo
(preferiblemente el sobrenadante del cultivo).
Como alternativa comparativa, se pueden producir
partículas de VHC por una célula recombinante que se obtiene
introduciendo el ARN genómico del VHC de longitud completa en una
célula. El ARN genómico del VHC de longitud completa se replica con
eficacia elevada en la célula, en la que se introduce el ARN
genómico del VHC de longitud completa de la presente invención (el
ARN genómico del VHC de longitud completa derivado del clon
JFH-1). En esta memoria, una célula que replica el
ARN genómico del VHC de longitud completa se denomina "célula que
replica el ARN genómico del VHC de longitud completa". Las
células que replican el ARN genómico del VHC de longitud completa
pueden producir partículas de virus. Las partículas de virus
producidas por las células que replican el ARN genómico del VHC de
longitud completa contienen el ARN genómico del VHC de longitud
completa en un armazón compuesto por las proteínas del virus VHC.
De esta manera, las partículas de virus producidas por la célula en
la que se introduce el ARN genómico del VHC de longitud completa de
la presente invención son partículas de VHC, No está limitado pero
se prefiere que se puedan preparar partículas de VHC en un sistema
de cultivo celular cultivando la célula en la que se introduce el
ARN genómico del VHC de longitud completa derivado del clon
JFH-1. Por ejemplo, se pueden obtener partículas de
VHC cultivando las células en las que se introduce el ARN genómico
del VHC de longitud completa y recogiendo las partículas de virus
generadas en el cultivo (preferiblemente el sobrenadante del
cultivo).
Para una célula en la que se ha introducido el
replicón de ARN del VHC de longitud completa o el ARN genómico del
VHC de longitud completa, descrito anteriormente, se puede usar
cualquier célula, siempre que se pueda subcultivar. Dicha célula es
preferiblemente una célula eucariota, más preferiblemente una célula
humana, y aún más preferiblemente una célula derivada de hígado,
una célula derivada de cuello uterino humano o una célula derivada
de riñón fetal humano. Se pueden usar preferiblemente células
proliferativas que incluyen líneas de célula cancerosas, líneas de
citoblastos y células similares, y se usan más preferiblemente
células Huh7, células HepG2, células HeLa y células 293 y
similares. Para estas células, se pueden usar células comercialmente
disponibles, se pueden obtener estas células de depositarios de
células, o se pueden usar también líneas celulares establecidas de
cualquier célula (por ejemplo, células cancerosas o
citoblastos).
Se puede conseguir la introducción del replicón
de ARN del VHC de longitud completa o el ARN genómico de longitud
completa en la células usando cualquier técnica conocida por las
personas expertas en la técnica. Los ejemplos de dicho
procedimiento de introducción incluyen electroporación,
procedimiento del cañón de partículas, procedimiento de
lipofección, procedimiento del fosfato de calcio, procedimiento de
microinyección, procedimiento de DEAE Sefarosa y similares. Se
prefiere particularmente el procedimiento que usa la
electroporación.
Se puede introducir el replicón de ARN del VHC
de longitud completa o el ARN genómico del VHC de longitud completa
solo, o se puede introducir tras mezclarse con otros ácidos
nucleicos. Para variar la cantidad del replicón de ARN del VHC de
longitud completa o el ARN genómico del VHC de longitud completa,
manteniendo a l vez la cantidad de ARN que se va a introducir, se
mezcla con el ARN celular total extraído de las células, en las
cuales se introduce el ARN, para llevar la cantidad total de ARN
hasta un determinado nivel, y a continuación se usa la mezcla para
la introducción en las células. Se puede determinar la cantidad de
replicón de ARN que se va a usar para introducir en las células de
acuerdo con el procedimiento de introducción empleado, y está
preferiblemente entre 1 picogramo y 100 microgramos, y más
preferiblemente entre 10 picogramos y 10 microgramos.
Se pueden seleccionar las células que replican
el replicón de ARN del VHC de longitud completa utilizando la
expresión del gen marcador o del gen indicador seleccionables en el
interior del replicón de ARN del VHC de longitud completa.
Específicamente, se pueden cultivar, por ejemplo, dichas células
sometidas al tratamiento de introducción celular del replicón de
ARN del VHC de longitud completa en un medio, en el que se pueden
seleccionar las células debido a la expresión del gen marcador
seleccionable. Alternativamente, tras cultivar las células
sometidas al tratamiento de introducción celular del replicón de ARN
del VHC de longitud completa, se puede detectar la expresión del
gen indicador (por ejemplo, la proteína fluorescente).
Como ejemplo, cuando el replicón de ARN del VHC
de longitud completa contiene un gen de resistencia a la neomicina
como gen marcador seleccionable, las células sometidas al
procedimiento de electroporación con el replicón de ARN del VHC de
longitud completa, se siembran en una placa de cultivo. Tras
cultivar 12 a 72 horas, preferiblemente 16 a 48 horas, se añade
G418 (neomicina) a la placa de cultivo a una concentración de 0,05
miligramos/mililitro a 3,0 miligramos/mililitro. Se cultivan las
células en continuo durante preferiblemente 10 días a 40 días y más
preferiblemente 14 días a 28 días tras la siembra, cambiando a la
vez el medio de cultivo dos veces a la semana, y se pueden
seleccionar las células que están replicando el replicón de ARN del
VHC de longitud completa como una colonia tiñendo las células
viables con cristal violeta.
\newpage
Se pueden clonar las células a partir de la
colonia formada mediante un procedimiento normalizado. El clon
celular obtenido de esta manera que replica el replicón de ARN del
VHC de longitud completa se denomina en esta memoria como "clon
celular que replica el replicón de ARN del VHC de longitud
completa". La célula que replica el replicón de ARN del VHC de
longitud completa de la presente invención incluye el clon celular
que replica el replicón de ARN del VHC de longitud completa.
Para la célula que replica el replicón de ARN
del VHC de longitud completa, se puede confirmar la replicación
real del replicón de ARN del VHC de longitud completa en la célula o
el clon celular detectando el replicón de ARN del VHC de longitud
completa, confirmando que el gen marcador o indicador seleccionable
del replicón de ARN del VHC de longitud completa no se integra en
el ADN genómico del huésped y detectando además las proteínas del
VHC.
Las personas expertas en la técnica pueden
detectar el replicón de ARN del VHC de longitud completa que se ha
replicado de acuerdo con cualquier procedimiento conocido de
detección del ARN. Por ejemplo, se puede detectar el replicón de
ARN del VHC de longitud completa en el ARN total extraído de la
célula mediante el procedimiento de hibridación Northern usando
como sonda un fragmento de ADN específico del replicón de ARN del
VHC de longitud completa.
Además, se puede confirmar la ausencia de un gen
marcador o gen indicador seleccionable integrado en el replicón de
ARN del VHC de longitud completa en el ADN genómico del huésped
mediante, pero sin limitarse a, por ejemplo, llevando a cabo la PCR
del ADN genómico extraído de la célula para amplificar al menos una
parte del gen marcador o el gen indicador seleccionable, y a
continuación confirmando la ausencia del producto amplificado.
Debido a que se considera que en la célula, para la cual se
confirma el producto amplificado, se puede haber integrado el gen
marcador o el gen indicador seleccionable en el genoma del huésped,
es posible que el replicón de ARN del VHC de longitud completa no
se replique por sí mismo. En este caso, se puede confirmar
adicionalmente la replicación del ARN del VHC de longitud completa
detectando las proteínas del VHC tal como se describe a
continuación.
Se puede detectar una proteína del VHC, por
ejemplo, haciendo reaccionar un anticuerpo frente a l proteína del
VHC que se va a expresar a partir del replicón de ARN del VHC de
longitud completa con las proteínas celulares extraídas. Las
personas expertas en la técnica pueden llevar a cabo este
procedimiento mediante cualquier procedimiento de detección
conocido. Específicamente, se puede detectar la proteína del VHC
mediante, por ejemplo, transferencia de una muestra de proteína
extraída de la célula sobre una membrana de nitrocelulosa, haciendo
reaccionar el anticuerpo dirigido contra la proteína del VHC (por
ejemplo, un anticuerpo o antisuero específico contra NS3 recogido
de un paciente con hepatitis C) con la membrana de nitrocelulosa y
detectando el anticuerpo contra la proteína del VHC. Si se detecta
la proteína del VHC entre las proteínas celulares extraídas, se
puede concluir que esta célula replica el replicón de ARN del VHC de
longitud completa y expresa la proteína del VHC.
Las personas expertas en la técnica pueden
confirmar la capacidad de producción de partículas de virus de las
células que replican el replicón de ARN del VHC de longitud completa
o de las células que replican el ARN genómico del VHC de longitud
completa mediante cualquier procedimiento conocido de detección. Por
ejemplo, el sobrenadante del cultivo de células que se sospecha que
producen las partículas de virus se fracciona mediante el gradiente
de densidad de la sacarosa, y se determinan la densidad de la
fracción, la concentración de la proteína núcleo del VHC, y la
cantidad del replicón de ARN del VHC de longitud completa para cada
fracción. Como resultado, si el pico de la proteína núcleo coincide
con el del replicón de ARN del VHC de longitud completa, y la
densidad de la fracción que muestra los picos detectados (por
ejemplo, 1,18-1,20 mg) es más pequeña que la
densidad de la fracción equivalente que la obtenida mediante el
fraccionamiento del sobrenadante del cultivo tratado con NP40 al
25% (polioxietileno (9) octilfenil éter) se puede considerar que las
células tienen una capacidad de producción de partículas de
virus.
Se pueden detectar las partículas de virus VHC
liberadas en el sobrenadante del cultivo, usando, por ejemplo,
frente a la proteína núcleo, la proteína E1 o la proteína E2.
También, se puede detectar la presencia de partículas de virus
indirectamente, amplificando y detectando el replicón de ARN del VHC
de longitud completa en el sobrenadante del cultivo mediante el
procedimiento de la PCR-RT usando cebadores
específicos.
Las partículas del virus del VHC de la presente
invención tienen capacidad para infectar una célula (preferiblemente
una célula permisiva a VHC). La presente invención es también útil
para proporcionar un procedimiento para producir una célula
infectada por el virus de la hepatitis C que comprende cultivar la
célula que replica el replicón de ARN del VHC de longitud completa
o la célula que replica el ARN genómico del VHC de longitud
completa, e infectar otra célula (preferiblemente una célula
permisiva a VHC) con partículas de virus en el cultivo obtenido de
esta manera (preferiblemente, el sobrenadante del cultivo) En la
presente invención, célula permisiva a VHC significa una célula que
es susceptible a VHC, y es preferiblemente, pero sin limitarse a,
célula hepática o una célula de linaje linfoide. En particular, la
célula hepática incluye un hepatocito primario, célula Huh7, célula
HepG2, célula IMY-N9, célula HeLa, célula 203 y
similares. La célula de linaje linfoide incluye, pero sin limitarse
a, célula Molt4, célula HPB-Ma, célula Daudi y
similar.
Cuando una célula (por ejemplo, una célula
permisiva a VHC) se infecta con partículas de VHC producidas por la
célula que replica el replicón de ARN del VHC de longitud completa
de la presente invención, el replicón de ARN del VHC de longitud
completa se replica y se forman también partículas de virus en la
célula infectada. Debido a que la célula infectada con partículas
de virus generadas en la célula que replica el replicón de ARN del
VHC de longitud completa expresa el gen marcador y/o el gen
indicador seleccionables, se puede seleccionar y/o detectarse la
célula infectada utilizando la expresión. Infectando una célula con
partículas de virus generadas en la célula que replica el replicón
de ARN del VHC de longitud completa de la presente invención, se
replica el replicón de ARN del VHC de longitud completa y además se
pueden producir partículas de virus.
Más adicionalmente al infectar una célula (por
ejemplo una célula permisiva a VHC9 con partículas de VHC generadas
en la célula que replica el replicón de ARN del VHC de longitud
completa de la presente invención, se replica el ARN genómico del
VHC de longitud completa y se forman también partículas de virus en
la célula infectada. Al infectar una célula con las partículas de
virus generadas en la célula que replica el replicón de ARN del VHC
de longitud completa de la presente invención, se replica el ARN
genómico del VHC de longitud completa en la célula y además, se
pueden producir partículas de virus.
Las partículas de virus VHC generadas en la
célula que replica el replicón de ARN del VHC de longitud completa
o en la célula que replica el ARN genómico del VHC de longitud
completa pueden infectar animales permisivos a VHC y similares e
inducir hepatitis producida por el VHC anterior.
\vskip1.000000\baselineskip
El replicón de ARN del VHC de longitud completa
se replica con una eficacia elevada en la célula que replica el
replicón de ARN del VHC de la presente invención. También se replica
el ARN genómico del VHC de longitud completa con una eficacia
elevada en la célula que replica el replicón de ARN del VHC de
longitud completa de la presente invención. De esta manera, se
puede producir el replicón de ARN del VHC de longitud completa o el
ARN genómico del VHC de longitud completa con una eficacia elevada
usando la célula que replica el replicón de ARN del VHC de longitud
completa de la presente invención o la célula que replica el ARN
genómico del VHC de longitud completa.
En la presente invención, se puede producir el
replicón de ARN del VHC de longitud completa cultivando la célula
que replica el replicón de ARN del VHC de longitud completa,
extrayendo ARN del cultivo (células cultivadas y/o medio de
cultivo), sometiendo al ARN al procedimiento de electroforesis, y
aislando y purificando el replicón de ARN del VHC de longitud
completa. Se puede producir también el ARN genómico del VHC de
longitud completa usando la célula que replica el ARN genómico del
VHC de longitud completa mediante procedimiento similar. El ARN
producido de dicha manera comprende la secuencia genómica de
longitud completa del virus de la hepatitis C. En este caso la
secuencia genómica de longitud completa del virus de la hepatitis C
está interrumpida por el gen marcador y/o el gen indicador
seleccionables y la secuencia IRES. Mediante el procedimiento que se
proporciona para producir el ARN que comprende la secuencia
genómica de longitud completa del virus de la hepatitis C, se
vuelve posible un análisis más detallado del genoma del virus de la
hepatitis C.
Además, se puede usar adecuadamente la célula
que replica el replicón de ARN del VHC de longitud completa o la
célula o la célula que replica el ARN genómico e longitud completa
para producir proteína de VHC. Las personas expertas en la técnica
pueden producir proteína de VHC mediante cualquier procedimiento
conocido. Por ejemplo, se puede producir proteína de VHC
introduciendo el replicón de ARN del VHC de longitud completa o el
ARN genómico del VHC de longitud completa en una célula, cultivando
la célula recombinante y recogiendo las proteínas del cultivo
obtenido de esta manera (células cultivadas y/o medio de cultivo)
mediante procedimiento conocido.
Además, las partículas del virus VHC de la
presente invención pueden poseer hepatotropismo. De esta manera, se
puede producir un vector de virus hepatotrópico usando el replicón
de ARN del VHC de longitud completa de la presente invención. Este
vector de virus se usa adecuadamente para la terapia génica. En la
presente invención, se puede introducir un gen extraño en una
célula, replicarse en la célula y expresarse, integrando un ARN que
codifica el gen extraño en el replicón de ARN del VHC de longitud
completa o el ARN genómico del VHC de longitud completa e
introduciendo el ARN integrado en la célula. Además. Además, al
preparar un ARN en el que se sustituyen la secuencia de
codificación de la proteína E1 y/o la secuencia de codificación de
la proteína E2 del replicón de ARN del VHC de longitud completa o el
ARN genómico del VHC de longitud completa con una secuencia de
codificación del armazón de la proteína externa del virus derivado
de otras especies biológicas, se vuelve posible infectar el ARN de
diversas especie biológicas En este caso también, se integra un gen
extraño en el replicón de ARN del VHC de longitud completa o el ARN
genómico del VHC de longitud completa y se puede usar éste como un
vector de virus hepatotrópico para expresar el gen extraño en
hepatocitos.
La presente invención es también útil para
proporcionar un procedimiento para producir un vector de virus que
trasporta un gen extraño, comprendiendo insertar un ARN que codifica
el gen extraño en el ARN que comprende la secuencia de nucleótidos
que se muestra en la SEC DE ID Nº: 12, introduciendo éste en una
célula y cultivando la célula para producir partículas de
virus.
La presente invención proporciona una vacuna de
la hepatitis C que comprende partículas del VHC de la presente
invención o una parte de las mismas y un procedimiento para producir
la vacuna de la hepatitis C que comprende partículas de VHC de la
presente invención o una parte de la mismas.
En particular, se pueden usar partículas de VHC
preparadas como anteriormente directamente como una vacuna o se
pueden usar después de atenuar o inactivar mediante el procedimiento
conocido en la técnica. Por ejemplo, se puede obtener una
disolución madre de vacuna de VHC purificando las partículas de VHC
usando cromatografía en columna, filtración, centrifugación y
similares. Se puede preparar una vacuna de VHC viva atenuada o una
vacuna de VHC inactivada a partir de esta disolución madre de vacuna
de VHC. Se puede llevar a cabo la inactivación del virus haciendo
reaccionar un agente de inactivación tal como formalina,
\beta-propiolactona, glutardialdehído, y similar
con el virus, añadiendo y mezclando a, por ejemplo, la suspensión de
virus (Appaiahgari y col., Vaccine, (2004)
22(27-28), p. 3669-3675).
Para la producción de la vacuna de la presente
invención, es posible usar el replicón de ARN del VHC en el que
está atenuada o perdida la patogenicidad mediante una mutación
introducida usando la técnica públicamente
conocida.
conocida.
Se prepara la vacuna de la presente invención
para la administración como una disolución o suspensión. Es también
posible que se prepare en forma de material sólido adecuado para
disolver o suspender en líquido. Se puede emulsionar la preparación
o encapsularla en el liposoma. El componente inmunógeno activo tal
como las partículas de VHC se mezcla a menudo con un excipiente que
es farmacéuticamente aceptable y apropiado para el ingrediente
activo. Un excipiente adecuado incluye, por ejemplo, agua, solución
salina fisiológica, dextrosa, glicerol, etanol y sus mezclas.
Además, si se desea, la vacuna puede contener una pequeña cantidad
de agente auxiliar (por ejemplo, humidificador o emulsificador),
tampón del pH y/o adyuvante para potenciar la eficacia de la vacuna
los ejemplos de adyuvantes eficaces incluyen, pero no se limitan a
las siguientes sustancias: hidróxido de aluminio,
N-acetil-muramil-L-treonil-D-isoglutamina
(thr-MDP),
N-acetil-nor-muramil-L-alanil-D-isoglutamina
(CGP11637, nor-MDP), N-acetil
muramil-L-alanil-D-isoglutaminil-L-alnina-2-(1'-2'-dipalmitoil-sn-glicero-3-hidroxifosforiloxi)-etilamina
(CGP19835A, denominado como MTP-PE) y RIBI. RIBI
contiene tres componentes extraídos de bacterias, esto es,
monofosforil lípido A, dimicolato de trehalosa y esqueleto de la
pared celular (HPL + TDN + CWS) en emulsión de escualeno/Tween® 80
al 2%. Se puede determinar la eficacia de un adyuvante midiendo la
cantidad de anticuerpo contra las partículas d VHC inmunógenas que
se producen administrando la vacuna compuesta por partículas de
VHC.
La presente vacuna se administra normalmente por
vía parenteral, por ejemplo, mediante inyección tal como inyección
subcutánea o intramuscular. Otras formas de dosificación adecuadas
para las diferentes rutas de administración incluyen supositorios
y, en algún caso, la formulación oral.
Si se desea, se pueden añadir uno o más de los
anteriores compuestos que tienen actividad adyuvante a la vacuna de
VHC. Los adyuvantes son factores de estimulación no específicos para
este sistema inmune y potencian la respuesta inmune a la vacuna de
VHC en el huésped. Los ejemplos particulares de adyuvantes conocidos
en esta técnica incluyen el adyuvante de Freund completo, el
adyuvante de Freund incompleto, vitamina E, polímero en bloque no
iónico, muramildipéptido, saponina, aceite mineral, aceite vegetal y
carbopol. Los adyuvantes especialmente adecuados para la aplicación
a la membrana mucosal incluyen, por ejemplo, toxina lábil al calor
de E. coli (LT) y toxina del cólera (CT). Otros adyuvantes
adecuados incluyen, por ejemplo, hidróxido de aluminio, fosfato de
aluminio u óxido de aluminio, emulsión de aceite (por ejemplo, Bayol
(Marca Comercial Registrada) o Marcol 52 (Marca Comercial
Registrada)), saponina o vitamina E solubilizada. En la forma de
realización preferida, la vacuna de la presente invención contiene
un adyuvante.
Con respecto a los ejemplos, para las
inyecciones que se van a administrar subcutánea, intradérmica,
intramuscular e intravenosamente, los ejemplos particulares de
vehículos y diluyentes farmacéuticamente aceptables, que se pueden
incluir en la vacuna de VHC de la presente invención incluyen
estabilizantes, carbohidratos (por ejemplo, sorbitol, manitol,
almidón, sacarosa, glucosa, dextrano), proteínas tales como albúmina
o caseína, materiales que contienen proteínas tales como albúmina
de suero bovino o leche desnatada, y tampones (por ejemplo, tampón
fosfato).
Los ligantes u vehículos convencionales usados
para un supositorio incluyen, por ejemplo, polialquilenglicol o
triglicéridos. Se puede formular el supositorio a partir de una
mezcla que contiene el ingrediente activo en el intervalo de 0,5% a
50%, preferiblemente 1% a 20%. Una formulación oral puede contener
normalmente los excipientes usados. Dichos excipientes incluyen,
por ejemplo, manitol, lactosa, almidón, estearato de magnesio,
sacarina sódica, celulosa, carbonato de magnesio y similares de
calidad farmacéutica.
Se puede producir la vacuna de la presente
invención en formas de dosificación de disoluciones, suspensiones,
comprimidos, píldoras, cápsulas, formulaciones o polvos de
liberación mantenida y que contienen el ingrediente activo
(partículas de virus o un parte de las mismas) a un
10-95%, preferiblemente 25-70%.
La vacuna de la presente invención se administra
mediante el procedimiento adecuado para las formas de dosificación
y en la cantidad efectiva para la prevención y/o el tratamiento. La
cantidad de dosificación está en el intervalo entre 0,01 \mug a
100.000 \mug y este es dependiente del paciente que se va a
tratar, la capacidad de formación de anticuerpos en el sistema
inmune del paciente, y el nivel deseado de protección. Es también
dependiente de la ruta de administración tal como subcutánea,
intradérmica, intramuscular, intravenosa y similar.
Se puede administrar esta vacuna mediante un
programa de administración único o preferiblemente mediante un
programa de administración complejo. En el programa de
administración complejo, se llevan a cabo 1-10
administraciones individuales al comienzo de la administración,
seguido por la administración a los intervalos requeridos para
mantener y/o potenciar la respuesta inmune. Por ejemplo, se puede
proporcionar otro tipo de administración como segunda
administración 1.4 meses más. Si es necesario, se puede continuar la
administración algunos meses más. El régimen de administración se
determina, al menos parcialmente, de acuerdo con las necesidades del
paciente individual y es dependiente del juicio del profesional
médico.
Además, se puede administrar simultáneamente la
vacuna que contiene las partículas de VHC inmunógenas con otro
agente del control inmune (por ejemplo, inmunoglobulina).
Se puede usar la vacuna de partículas de VHC
preventivamente frente a una posible nueva infección de VHC
administrándola a individuos sanos par inducir la respuesta inmune
al VHC. Se puede usar también la vacuna de partículas de VHC como
vacuna terapéutica para eliminar el VHC administrándola a pacientes
infectados con VHC e induciendo una fuerte respuesta inmune al VHC
en el cuerpo.
Se puede usar la célula que replica el replicón
de ARN del VHC de longitud completa o la célula que replica el ARN
genómico del VHC de longitud completa o la célula infectada con el
virus de la hepatitis C, que se infecta con partículas de virus
generadas en estas células, como un sistema de ensayo para cribar
una sustancia (sustancia contra el virus de la hepatitis C) que
promueve o inhibe, por ejemplo, la replicación del virus de la
hepatitis C, la reconstrucción de las partícula del virus y la
liberación de las partículas del virus. En particular, por ejemplo,
se puede cribar la sustancia que promueve o inhibe el crecimiento
del virus de la hepatitis C determinando si la sustancia de ensayo
promueve o inhibe la replicación del replicón de ARN del VHC de
longitud completa o el ARN genómico del VHC de longitud completa, o
la formación o la liberación de las partículas de virus, cultivando
estas células en presencia del replicón de ARN del VHC de longitud
completa o el ARN genómico del VHC de longitud completa en la
preparación de ARN extraído de las células descritas anteriormente.
Se puede llevar a cabo la detección de las partículas de virus en el
cultivo/principalmente del sobrenadante del cultivo) midiendo la
cantidad, la relación o la presencia de la proteína de VHC en el
sobrenadante del cultivo.
Además, se puede investigar si la
inmunoglobulina purificada a partir del suero de un paciente
infectado con VHC puede evitar la infección con partículas de VHC
de la presente invención, detectando las partículas de virus en
este cultivo En este ensayo, se pueden usar sueros de ratones,
ratas, conejos y similares, que se han inmunizado con las
partículas del virus VHC de la presente invención. Se puede utilizar
la inmunización por una parte de la proteína de VHC, el gen del VHC
y similar. Se puede llevar a cabo este ensayo con otras sustancias
preventivas de la infección de una manera similar.
Los anticuerpos que se generan contra las
partículas del virus VHC de la presente invención incluyen
anticuerpos policlonales y anticuerpos monoclonales. Cuando se
prefiere el anticuerpo policlonal, se inmunizan mamíferos
seleccionados (por ejemplo, ratón, conejo, cabra, oveja, caballo y
similares) con las partículas del VHC de la presente invención como
primera etapa. Se recogen los sueros de los animales inmunizados y
se procesan mediante procedimiento conocido. Si los sueros que
contienen los anticuerpos policlonales con los epítopos de VHC
contienen anticuerpos de otros antígenos, s pueden purificar estos
sueros mediante cromatografía de inmunoafinidad. Se conocen en la
técnica lo procedimientos para generar antisueros policlonales y los
procedimientos para el tratamiento de éstos. Se pueden aislar
anticuerpos policlonales de mamíferos ya infectados con VHC.
Las personas expertas en la técnica pueden
producir fácilmente anticuerpos monoclonales de epítopos de VHC Se
conoce el procedimiento común para producir el hibridoma que genera
anticuerpos monoclonales. Por ejemplo, se pueden usar los
procedimientos descritos en Current Protocols in Immunology (John
Wiley & Sons, Inc.).
Se pueden producir líneas celulares que generen
anticuerpos monoclonales mediante fusión celular, o mediante otro
procedimiento tal como transformación directa de linfocitos B con
ADN génico tumoral o transducción con el virus de
Epstein-Barr. Los anticuerpos monoclonales y
anticuerpos policlonales obtenidos mediante estos procedimientos
son útiles para el diagnóstico, tratamiento y prevención del
VHC.
Los anticuerpos producidos usando las partículas
del VHC de la presente invención se administran con un
solubilizante, aditivo, estabilizante, tampón y similar
farmacéuticamente aceptable. Se puede escoger cualquier ruta de
administración, pero se prefieren las administraciones subcutánea,
intradérmica e intramuscular y se prefiere más la administración
intravenosa.
Se pueden usar las partículas de VHC, generadas
en la célula que replica el replicón de ARN del VHC de longitud
completa de la presente invención o la célula que replica el ARN
genómico del VHC de longitud completa y la célula permisiva al VHC
como un sistema de ensayo para cribar una sustancia que pueda
estimular o inhibir la unión del VHC a las células. En particular,
se pueden cribar, por ejemplo, sustancias que pueden promover o
inhibir el crecimiento del virus de la hepatitis C cultivando la
partículas del VHC generadas en la células que replica el replicón
de ARN del VHC de longitud completa de la presente invención junto
con la célula permisiva a VHC en presencia de una sustancia de
ensayo, detectando el replicón de ARN del VHC de longitud completa
o las partículas del virus en el cultivo del virus y determinando si
esta sustancia promueve o inhibe la replicación del replicón de ARN
o la formación de las partículas de virus.
Se pueden llevar a cabo dichas detecciones del
replicón de ARN del VHC de longitud completa o del ARN genómico del
VHC de longitud completa o de las partículas de virus de acuerdo con
la técnica descrita anteriormente o los siguientes Ejemplos. Se
puede usar el sistema de ensayo descrito anteriormente para la
producción y evaluación de los agentes preventivos, terapéuticos o
diagnósticos de la infección por el virus de la hepatitis C.
En particular, los ejemplos de la utilización
del sistema de ensayo de la presente invención descrito
anteriormente incluyen los siguientes:
- (1)
- Cribar una sustancia que inhiba el crecimiento y la infección de VHC
- \quad
- Las sustancias que inhiben el crecimiento y la infección de VHC incluyen, por ejemplo, compuestos orgánicos que afectan el crecimiento y la infección de VHC directa o indirectamente, oligonucleótidos de sentido contrario o similares que afectan el crecimiento de VHC o la traducción de la proteína de VHC directa o indirectamente hibridándolos con la secuencia diana en el genoma de VHC o su cadena complementaria.
- (2)
- Evaluación de diversas sustancias que tienen actividad antivírica en el cultivo celular.
- \quad
- Las diversas sustancias anteriormente mencionadas incluyen sustancias obtenidas mediante diseño racional de fármacos o cribado de alto rendimiento (por ejemplo, enzima purificada y aislada).
- (3)
- Identificación de una nueva diana para el tratamiento de pacientes infectados con VHC
- \quad
- Se pueden usar, por ejemplo la célula que replica el replicón de ARN del VHC de longitud completa o las células que replican el ARN genómico del VHC de longitud completa para identificar una proteína celular del huésped que puede jugar un importante papel para el crecimiento del VHC.
- (4)
- Evaluación de la capacidad del VHC para adquirir resistencia a fármacos y similares, e identificación de la mutación relacionada con la resistencia.
- (5)
- Producción de proteína del virus como un antígeno utilizable para el desarrollo, la producción y la evaluación de agentes diagnósticos y terapéuticos para la infección del virus de la hepatitis C.
- (6)
- Producción de proteína del virus como un antígeno utilizable para el desarrollo, la producción y la evaluación de la vacuna para la infección del virus de la hepatitis C y producción de un VHC atenuado.
- (7)
- Producción de anticuerpos monoclonales o policlonales para el diagnóstico y tratamiento de la infección del virus de la hepatitis C.
\vskip1.000000\baselineskip
La presente invención se describirá más
específicamente basándose en los siguientes ejemplos y dibujos. Sin
embargo, el alcance técnico de la presente invención no se limita a
estos ejemplos.
\vskip1.000000\baselineskip
Se construyeron ADN plásmidos en los que los ADN
(clon JFH-1) que contenían el ADNc genómico de
longitud completa de la cepa JFH-1 del virus de la
hepatitis C (genotipo 2a) que se había aislado de un paciente con
insuficiencia hepática fulminante se insertaron en la dirección 3'
de la secuencia del promotor de ARN T7 en plásmidos
pUC19.
pUC19.
En particular, los fragmentos de la
PCR-RT obtenidos amplificando el ARN vírico de la
cepa JFH-1 se clonaron en vectores pGEM T EASY
(Promega) para obtener los plásmidos pGEM1-258,
pGEM44-486, pGEM317-849,
pGEM617-1323, pGEM1141-2367,
pGEM2285-3509, pGEM3471-4665,
pGEM4547-5970, pGEM5883-7003,
pGEM6950-8035, pGEM7984-8892,
pGEM8680-9283, pGEM9231-9634 y
pGEM9594-9678 (Véase documento no de patente 6). Los
ADNc derivados del ARN genómico vírico contenidos en dichos
plásmidos se ligaron conjuntamente usando el procedimiento de la PCR
y los enzimas de restricción para clonar el ARNc genómico vírico.
Se insertó la secuencia del promotor de ARN T7R en la dirección 5'
del ADNc genómico vírico de longitud completa. A partir de ahora en
el presente documento, el ADN plásmido construido de esta manera se
denomina como pJFH1 (parte superior de la Fig. 1). Se ha descrito
anteriormente la preparación del clon JFH-1 en el
Documento de Patente 1 y el Documento No de Patente 3.
Adicionalmente, se registró la secuencia de nucleótidos del ADNc de
longitud completa del clon JFH-1 en un banco de
datos internacional de ADN (DDBJ/EMBL/GenBank) con nº de Acceso
AB047639.
A continuación se construyó el ADN plásmido
pFGREP-JFH1 el EMCV-IRES
(emplazamiento de entrada interno al ribosoma del virus de la
encefalomiocarditis) y el gen resistente a la neomicina (neo;
denominado también como gen de la neomicina fosfotransferasa) entre
la región 5' no traducida y la región núcleo del ADN plásmido pJFH1
(parte inferior de la Figura 1). Este procedimiento de construcción
estaba de acuerdo con la publicación anterior (Documento No de
Patente 4). Adicionalmente, se prepararon los clones de los
plásmidos mutantes pJFH1/GND y PFGREP-JFH1/GND
introduciendo que cambió el motivo de aminoácidos GDD, que
corresponde al centro activo de la ARN polimerasa codificado por la
región NS5B en pJFH1 y pFGREP-JFH1, a GND. Debido a
que la secuencia de aminoácidos del emplazamiento activo de la
proteína NS5B codificada por los clones mutantes pJFH1/GND y
pFGREP-JFH1/GND cambió, la proteína NS5B activa que
se necesita para replicar el replicón de ARN no se puede expresar a
partir de los clones mutantes.
Adicionalmente, se preparó
pFGREP-JFH1/Luc como un vector de expresión
introducido en un gen indicador mediante la inserción del gen de la
luciferasa entre el emplazamiento MIuI de 415º a 420º y el
emplazamiento PmeI de 2075º a 2028º de pFGREP-JFH1
para sustituir el gen resistente a la neomicina de pFGREP_JFH1 con
el gen de la luciferasa. También, un mutante
PFGREP-JFH1/Luc/GND, en el que el motivo GDD del
centro activo de la ARN polimerasa de NS5b se cambió a GND, se
preparó mutando G a 10933º de pFGREP-JFH1/Luc a
A.
Se preparó pFGREP-JFH1/EGFP, en
el que el gen resistente a la neomicina de
pFGREP-JFH1 se sustituyó con el gen de la proteína
fluorescente verde, insertando el gen de la proteína fluorescente
verde entre el emplazamiento mutante MIuI de 415º a 420º y el
emplazamiento PmeI de 1142º a 1149º de pFGREP-JFH1.
También se preparó un mutante pFGREP-JFH1/EGP/GND,
en el que el motivo GDD del centro activo de la ARN polimerasa de
NS5b se cambió a GND, mutando G a 1000º de
pFGREP-JFH1/EGFP a A.
Se preparó pFGREP-JFH1/EGFP,
insertando el gen de la fosfatasa alcalina placental secretora entre
el emplazamiento MIuI de 415º a 420º y el emplazamiento PmeI de
1982º a 1989º de pFGREP-JFH1 para sustituir el gen
resistente a la neomicina de pFGREP-JFH1 con el gen
de la fosfatasa alcalina placental secretora. También, se preparó
un mutante PFGREP-JFH1/SEAP/GND, en el que el motivo
GDD del centro activo de la ARN polimerasa de NS5b se cambión a
GND, mutando G a 10840º de pFGREP-JFH1/SEAP a A.
\vskip1.000000\baselineskip
Se digirieron los vectores de expresión
construidos como anteriormente, pJFH1, PJFHI/GND,
pGREP-JFH1 y pFGREP-JFH1/GND con el
enzima de restricción XbaI para preparar las plantillas de ADN para
la síntesis del ARN genómico del VHC de longitud completa y el
replicón de ARN del VHC de longitud completa. Posteriormente, se
trataron 10-20 \mug de cada fragmento XbaI con 20
U de Nucleasa de Judía Mungo en 50 \mul de disolución de reacción
incubando a 30ºC durante 30 min. La Nucleasa de Judía Mungo es una
enzima que cataliza la reacción que implica digerir selectivamente
partes de la cadena única del ADN de doble cadena. Normalmente, si
se sintetiza el ARN usando los fragmentos XbaI anteriores como
plantillas, se sintetizan replicones de ARN que tienen 4 bases extra
de CUGA, que es una parte del emplazamiento de reconocimiento XbaI,
en el término 3'. Por tanto, en este ejemplo, se eliminaron 4 bases
de CUGA procedentes de los fragmentos XbaI tratando los fragmentos
XbaI con Nucleasa de Judía Mungo. Posteriormente, la disolución de
después del tratamiento de Nucleasa de Judía Mungo que contenía los
fragmentos XbaI se sometió al tratamiento normalizado de eliminación
de la proteína para obtener los fragmentos XbaI purificados sin las
4 bases, CUGA, como plantilla de ADN que se va a usar a
continuación.
A continuación, se sintetizó el ARN in
vitro a partir de esta plantilla de ADN usando ARN polimerasa
T7. Se usó un MEGAscript (Ambion Co.) para la síntesis del ARN, se
hicieron reaccionar 20 \mul de la mezcla de reacción que
contenían 0,5-1,0 microgramos de la plantilla de ADN
de acuerdo con las instrucciones del fabricante.
Después de la síntesis del ARN, se añadió DNasa
(2 U) a l mezcla de reacción y se hizo reaccionar a 37ºC durante 15
minutos, y a continuación se extrajo el ARN con tratamiento de
ácido-fenol para eliminar la plantilla de ADN. Se
sintetizaron los ARN de esta manera a partir de las anteriores
plantillas de ADN derivadas de pJFH1, pJFH1/GND,
pFGREP-JFH1 y pFGREP-JFH1/GND se
denominaron como rJFH1, rJFH1/GND, rFGREP-JFH1 y
rFGREP-JFH1/GND, respectivamente. Las secuencias de
nucleótidos de estos ARN se muestran en la SEC DE ID Nº: 12, 13, 14,
y 15 para rJFH1, rJFH1/GND, rFGREP-JFH1 y
rFGREP-JFH1/GND, respectivamente. rJFH1 es un
ejemplo de los ARN genómicos del VHC de longitud completa que
tienen la misma estructura de la secuencia que el genoma del VHC de
longitud completa de la cepa JFH-1.
rFGREP-JFH1 es un ejemplo del replicón de ARN del
VHC de longitud completa de la presente invención.
Posteriormente, rFGR-JFH1/Luc
(SEC DE ID Nº: 21), rFGR-JFH1/Luc/GND (SEC DE ID Nº:
22), rFGR-JFH1/
EGFP (SEC DE ID Nº: 23), rFGR-JFH1/EGFP/GND (SEC DE ID Nº: 24), rFGR-JFH1/SEAP (SEC DE ID Nº: 25) y rFGR-JFH1/SEAP/GND (SEC DE ID Nº: 26), que fueron replicones de ARN del VHC, se produjeron usando como plantilla las vectores de expresión preparados como anteriormente, pFGREP-JFH1/Luc, pFGREP-JFH1/Luc/GND, pFGREP-JFH1/EGFP, pFGREP-JFH1/EGFP/GND, pFGR-JFH1/SEAP y pFGR-JFH1/SEAP/GND, respectivamente.
EGFP (SEC DE ID Nº: 23), rFGR-JFH1/EGFP/GND (SEC DE ID Nº: 24), rFGR-JFH1/SEAP (SEC DE ID Nº: 25) y rFGR-JFH1/SEAP/GND (SEC DE ID Nº: 26), que fueron replicones de ARN del VHC, se produjeron usando como plantilla las vectores de expresión preparados como anteriormente, pFGREP-JFH1/Luc, pFGREP-JFH1/Luc/GND, pFGREP-JFH1/EGFP, pFGREP-JFH1/EGFP/GND, pFGR-JFH1/SEAP y pFGR-JFH1/SEAP/GND, respectivamente.
Se mezclaron diversas cantidades del ARN
genómico del VHC de longitud completa (rJFHI o rFHJ1/GND) como
anteriormente con el ARN total extraído de células Huh7 para llevar
la cantidad de ARN hasta 10 \mug. Posteriormente, el ARN mezclado
se introdujo en células Huh7 mediante el procedimiento de
electroporación. Se sembraron células Huh7 sometidas al tratamiento
de electroporación en placas de cultivo. Tras incubar durante 12,
24, 48 y 72 horas, se recogieron las células, se extrajo el ARN y
se analizó mediante el procedimiento de transferencia Northern. Se
llevó a cabo el análisis de transferencia Northern de acuerdo con
Molecular Cloning, A Laboratory Manual, 2ª edición, J. Sambrook, E.
F. Fristch, T. Maniatis, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989).
En particular, se sometió el ARN extraído de las células tras la
incubación a electroforesis desnaturalizante en gel de agarosa y se
transfirió el ARN a una membrana de nylon cargada positivamente
después de la electroforesis. Se hibridó una sonda de ADN o ARN
marcada con ^{32}P, preparada a partir de pJFH1 con el ARN
anteriormente mencionado transferido sobre la membrana. Se lavó la
membrana y se expuso a una película para detectar las bandas de ARN
específicas del ARN genómico del VHC de longitud completa del clon
JFH-1.
Tal como se muestra en la Figura 2, cuando se
transfectó rJFH1/GND en las células, se confirmó una banda del ARN
introducido como una señal débil a las 4 horas después de la
transfección, pero la señal se fue debilitando con el paso del
tiempo y la señal procedente de la banda fue casi indetectable a las
24 h después de la transfección. En contraste, cuando se transfectó
rJFH1, la intensidad de la señal de la banda del ARN introducido se
debilitó en un primer momento como fue el caso de rJFH1/GND entre
las 4-12 horas después de la transfección, pero se
confirmó una clara señal de la banda de ARN después de 24 horas de
la transfección. La señal confirmada era específica del ARN
genómico del VHC. Esto es, se consideró que algún ARN genómico del
VHC de longitud completa introducido se replicó y creció. No se
observó replicación de rJFH1/GND, en la que se mutó el motivo activo
de NS5B, esto es, el enzima del ARN replicativo, indicando que la
actividad de NS5B es importante para la replicación del ARN
genómico del VHC de longitud completa. Además, se llevaron a cabo
los mismos experimentos para el ARN genómico de longitud completa
derivado del virus de la hepatitis C tal como la cepa H77 (Documento
No de Patente 7), la cepa J6 (Documento No de Patente 8) y la cepa
JCH1 que los presentes inventores aislaron de la hepatitis crónica
(Documento No de Patente 6), todos los cuales se han aislado
anteriormente, pero no se confirmó la replicación del ARN genómico
del VHC de longitud completa de estas cepas.
\vskip1.000000\baselineskip
Se sembraron células Huh7 tratadas mediante
electroporación tal como se ha descrito anteriormente en placas de
cultivo y se cultivaron durante 12, 24, 48 y 72 horas y a
continuación se evaluó la proteína núcleo del VHC en el
sobrenadante del cultivo. Se llevó a cabo la evaluación de acuerdo
con el ensayo IRMA del antígeno Ortho del VHC (Documento No de
Patente 9). Tal como se muestra en la Figura 3, se detectó la
proteína núcleo en el sobrenadante del cultivo 48 y 72 horas
después de la transfección con rJFH1. Para examinar si esta proteína
núcleo se segregaba como partículas de virus, se fraccionó el medio
de cultivo 72 horas después de la transfección con rJFH1 mediante
el gradiente de densidad de la sacarosa. En un tubo de centrífuga,
se distribuyeron en capas 2 ml de disolución de sacarosa al 60%
(p/p) (disuelta en Tris 50 mM pH 7,5/ NaCl 1 M/EDTA 1 mM), 1 ml de
disolución de sacarosa al 50%, 1 ml de disolución de sacarosa al
40%, 1 ml de disolución al 30%, 1 ml de disolución de sacarosa al
20% y 1 ml de disolución de sacarosa al 10% y se superpusieron a la
anterior 4 ml del sobrenadante del cultivo de la muestra. Se
centrifugó ésta en un rotor SW41 de Beckman Ti a 400.000 RPM, a 4ºC
durante 16 horas. Tras la centrifugación, se recogió ésta en
fracciones de 0,5 ml cada una procedentes de la parte inferior del
tubo. Se determinaron la densidad, la concentración de la proteína
núcleo del VHC y la cantidad del ARN genómico del VHC de longitud
completa en cada fracción. Se llevó a cabo la detección del ARN
genómico del VHC de longitud completa con un procedimiento de
PCR-RT cuantitativo detectando el ARN de la región
5' no traducida del ARN genómico del VHC de longitud completa, de
acuerdo con Takeuchi T, Katsume A, Tanaka T, Abe A, Inoue K,
Tsukiyama-Kohara K, Kawaguchi R, Tanaka S, Kohara M,
"Real-Time detection system for quantification of
Hepatitis C virus genome", Gastroenterology 116:
636-642 (1999). En particular, se amplificó
mediante la PCR el ARN genómico del VHC de longitud completa
contenido en el ARN extraído de la célula, usando cebadores
sintéticos, R6-130-S17:
5'-CGGGAGAGCCATAGTGG-3' (SEC DE ID
Nº: 16), R6-290-R19:
5'-AGTACCACAAGGCCTTTCG-3' (SEC DE
ID Nº: 17 y Sonda TaqMan:
R6-148-S21FT,
5'-CTGCGGAACCGGTGAGTACAC-3' (SEC DE
ID Nº: 18) y el kit de la PCR del ARN EZ rTth, y a continuación se
detectó mediante el sistema detector de secuencias ABI Prism
7700.
Tal como se muestra en la Figura 4, el pico de
la proteína núcleo coincidió con el del ARN genómico del VHC de
longitud completa en la fracción 11. La densidad de esta fracción
fue aproximadamente de 1,18 mg/ml y esto indicó un peo específico
más bajo que el del conjugado de la proteína núcleo y del ácido
nucleico informado hasta el momento. Además, cuando se llevó a cabo
un fraccionamiento similar después de tratar el sobrenadante del
cultivo con NP40 al 0,25%, los picos de la proteína núcleo y del ARN
genómico del VHC de longitud completa cambiaron a un peso
específico de aproximadamente 1,28 mg/ml. Estos es, se consideró que
el tratamiento con NP40 arrastró la membrana superficial, que
contenía lípidos y a continuación tuvo un peso específico inferior,
procedente de las partículas de núcleo que dan como resultado
partículas de virus comprendidas solo por ácido nucleico y proteína
núcleo, y por tanto, aumentó el peso específico. Los anteriores
resultado mostraron que el ARN genómico del VHC de longitud
completa se replicó en la célula transfectando rJFH1 en células Huh7
y, como resultado, se formaron partículas de virus y se segregaron
en el sobrenadante del cultivo.
\vskip1.000000\baselineskip
Se prepararon las células que replicaban de
replicón de ARN del VHC de longitud completa transfectando
rFGREP-JFH1 y rFGREPJFH1/GND, que se prepararon en
el Ejemplo 1, en células Huh7 tal como se ha descrito en el Ejemplo
2, y a continuación se realizó un intento de establecer clones de
células que replicaban el replicón de ARN del VHC de longitud
completa.
En primer lugar, tras transfectar
rFGREP-JFH1 y rFGREP-JFH1/GND
respectivamente en células Huh7, se sembraron las células en placas
de cultivo Tras cultivar 16-24 horas, se añadió G418
a diversas concentraciones Se continuó el cultivo aunque cambiando
el medio dos veces a la semana. Tras cultivar durante 21 días, se
tiñeron las células sobrevivientes con cristal violeta Se
recontaron las colonias teñidas, y se calculó el número de colonias
resultantes por peso d ARN usado para la transfección se continuó
también el cultivo en alguna de las placas de cultivo para clonar
colonias de las células sobrevivientes. Se extrajeron el ARN, el ADN
genómico y las proteínas, respectivamente, de las células clonadas,
y a continuación se investigaron la detección del replicón de ARN
del VHC de longitud completa, la integración del gen resistente a la
neomicina en el ADN genómico y la expresión d la proteína de VHC.
Se muestran estos resultados a continuación en detalle.
Los resultados de la transfección anterior
indicaron que la capacidad de formación de colonias por 1 \mug de
replicón de ARN usado para la transfección fue de 368 UFC (Unidad
Formadora de Colonias)/\mug de ARN, para las célula Huh7
transfectadas con rFGREP-JFH1, a una concentración
de G418 de 1,0 mg/ml (la parte izquierda de la Figura 5). En
contraste, no se observó formación de colonias para las células Huh7
transfectadas con rFGREP-JFH1/GND (la parte derecha
de la Figura 5). Esto indica que la capacidad de formación de
colonias de las células Huh7 transfectadas con el replicón de ARN
de rFGREP-JFH1 depende de la actividad de NS5B (ARN
polimerasa) que se expresa a partir de rFGREP-JFH1.
Esto es, se consideró que en las células formadoras de colonias,
llegó a ser posible el crecimiento de las células como resultado del
mantenimiento de la resistencia a G418 debido a la expresión
continua del gen resistente a la neomicina producida por la
replicación autónoma del replicón de ARN de rFGREP_JFH1 por medio
de la acción de NS5B expresado a partir de
rFGREP-JFH1.
Se extrajo el ARN total mediante el
procedimiento de extracción con ácido-fenol de los
clones celulares que replicaban e replicón de ARN del VHC de
longitud completa, que se ha establecido transfectando
rFGREP-JFH1, en célula HUh7 de acuerdo con la
sección (E) anterior Posteriormente, se evaluó este ARN total
mediante el procedimiento de transferencia Northern. En el
procedimiento, se usó una sonda específica de
pFGREP-JFH1. Como controles, se extrajo el ARN
total de las células Huh7 no transfectadas de una manera similar (en
la Figura 6, se muestra como "Huh7") se usaron una muestra
sintetizada in vitro que contenía 10^{7} copias de
replicón de ARN adicionalmente al ARN extraído de las células Huh7
(en la Figura 6, se muestra como "10^{7}"), y una muestra
sintetizada in vitro que contenía 10^{8} copias del
replicón de ARN adicionalmente al ARN total extraído de las células
Huh7 (en la Figura 6, se muestra como "10^{8}"). En la Figura
6, 1-4 indica los números de clones celulares.
Como resultado, se detectó el ARN que tenía el
tamaño similar a rFGREP-JFH1 con una sonda
específica de rFGREP-JFH1 (Figura 6). A partir de
este resultado, se confirmó que el replicón de ARN del
rFGREP-JFH1 transfectado se replicaba y crecía en
el clon celular. Se demostró también que hubo diferencia en la
cantidad de replicón de ARN entre los clones celulares. Tal como se
muestra en la Figura 6, por ejemplo, la cantidad de replicón de ARN
en el clon 2 fue inferior a la de otros clones.
Se llevó a cabo la amplificación mediante la PCR
de los clones celulares 1-8 obtenidos de acuerdo con
(E) (se muestran como FG-JFH1/2-1 y
FGR-JFH1/2-8 en la Figura 7), usando
cebadores específicos del gen de resistencia a la neomicina
(cebador de sentido directo, NEO-S3:
5'-AACAAGATGGATTGCACGCA-3' (SEC DE
ID Nº: 19), cebador de sentido contrario, NEO-R:
5'-GCGTCAAGAAGGCGATAGAAG-3' (SEC DE
ID Nº: 20)) y el ADN genómico celular del huésped extraído de cada
uno de los clones celulares como plantilla, con el fin de confirmar
que la resistencia de cada uno de los clones celulares frente a
G418 no era debida a la integración del gen de resistencia a la
neomicina el genoma celular del huésped Como resultado, tal como se
muestra en la Figura 7, no se observó que los clones positivos
mostraran la amplificación del gen de la resistencia a la
neomicina.
El resultado de (H) confirmó que el replicón de
ARN del VHC de longitud completa se replicaba en los clones
celulares establecidos mediante transfección del replicón de ARN del
VHC de longitud completa de la presente invención.
Se extrajeron las proteína mediante un
procedimiento normalizado a partir de os clones celulares
establecidos mediante la transfección de
rFGREP-JFH1, y a continuación se analizaron mediante
SDS-PAGE y el procedimiento de transferencia
Western Los clones celulares examinados en este caso fueron los
mismos que los usados en la sección (G) anterior. El extracto
celular obtenido mediante transfección transitoria del ARN genómico
del VHC de longitud completa preparado en células Huh7 se usó como
control positivo (se muestra como JFH1 en las Figuras 8, 9 y 10).
El extracto celular procedente del clon obtenido transfectando el
replicón de ARN subgenómico del VHC (SGR_JFH1) se usó como control
negativo de la proteína núcleo y como control positivo de las
proteínas NS3 y NS5a (se muestra como SGR-JFH1 en
las Figuras 8, 9 y 10). Se usó el extracto celular de las células
Huh7 no transfectadas como control negativo de todas las proteínas
(se muestra como Huh7 en las Figuras 8, 9 y 10). Se transfirieron
las muestras de proteína extraídas de cada clon celular sobre
membranas PVDF (Immobilon-P, Millipore), y a
continuación se detectaron la proteína núcleo y la proteína NS3
codificadas por el replicón de ARN del VHC de longitud completa del
anterior usando un anticuerpo específico contra el núcleo y un
anticuerpo específico contra NS3 (proporcionado amablemente por el
Dr. Moradpour; Wolk B, y col. J. Virology, 2000, 74:
2293-2304). Tal como se muestra en las Figuras 8 y
9, se detectaron para cada proteína los clones celulares
1-4 que se establecieron transfectando la proteína
rFGREP-JFH1, del mismo tamaño que la del control
positivo. Debido a que no se detectaron ni la proteína del núcleo
ni la proteína NS3 para las células Huh7 no transfectadas, se
confirmó en los clones celulares 1-4 que se había
transfectado el replicón de ARN del VHC de longitud completa,
replicado autónomamente y que se expresaban la proteína núcleo y la
proteína NS3.
Adicionalmente, para cada clon celular, para el
cual se ha confirmado la expresión de la proteína NS3 tal como se
ha descrito anteriormente, se confirmó también la expresión de la
proteína NS5A a partir del replicón de ARN del VHC de longitud
completa usando como anticuerpo un suero procedente de un paciente
con hepatitis C (Figura
10).
10).
A partir de los resultados de (H) e (I)
descritos anteriormente, se confirmó que en los clones celulares,
que se han establecido transfectando el replicón de ARN del VHC de
longitud completa, el replicón de ARN del VHC de longitud completa
se replicaba y que se expresaban también las proteínas víricas.
Se transfectó rFGREP-JFH1 en
células Huh7 de acuerdo con la sección (E) anterior, se
establecieron los clones celulares 2 y 3
(FGR-JFH1/2-3) que replicaban el
replicón de ARN del VHC de longitud completa, y a continuación se
recuperaron sus sobrenadantes de los cultivos. Se evaluaron las
partículas del virus VHC en los sobrenadantes de los cultivos de
acuerdo con un procedimiento similar a (D) descrito anteriormente.
En la Figura 11 se muestra el resultado. En la Figura 11, un
círculo sombreado representa el peso específico (g/ml) de cada
fracción. Un círculo cerrado representa una cantidad de la proteína
núcleo (fmol/l). Un círculo abierto representa un título del
replicón de ARN del VHC de longitud completa (x 0,1 copias/ml).
Tal como se muestra en la Figura 11, el pico de
la proteína núcleo coincidió con el del replicón de ARN del VHC de
longitud completa en las fracciones que tenían pesos específicos de
aproximadamente 1,18-1,20 mg/ml. Se encontró
también un pequeño pico en la fracción más ligera. A partir de los
anteriores resultados se demuestra que el replicón de ARN del VHC
de longitud completa se replicó en células Huh7 transfectadas con
rFGREP-JFH11, y se formaron y segregaron partículas
de virus en el sobrenadante del cultivo del mismo.
Se infectaron células Huh7 con partículas de
virus en el sobrenadante del cultivo añadiendo cada sobrenadante
del cultivo de clones celulares 1-8 usados en (H)
(es decir, FGR-JFH1/2-1,
FGR-JFH1/2-2,
FGR-JFH1/2-3,
FGR-JFH1/2-4,
FGR-JFH1/2-5,
FGR-JFH1/2-6,
FGR-JFH1/2-7,
FGR-JFH1/2-8) a las células Huh7. Al
día siguiente, se añadió G418 a 0,3 mg/ml a los medio de cultivo de
las células Huh7 infectadas, y se cultivaron adicionalmente las
célula Huh7 durante 21 días. Tras la finalización del cultivo, se
fijaron las células y se tiñeron con cristal violeta. Se observo
formación de colonias par las células infectadas con los
sobrenadantes del cultivo de
FGR-JFH1/2-3,
FGR-JFH1/2-5 y
FGR-JFH1/2-6, respectivamente. Por
otra parte, no se observó formación de colonias para las células
infectadas con el sobrenadante del cultivo de
SGR-JFH1/4-1, usándose como control
células de replicón subgenómico (descritas en el Documento No de
patente 6). La Figura 12 muestra una fotografía de una placa de
cultivo teñida tras cultivar durante 21 días con los 4 ml u 8 ml
añadidos del sobrenadante del cultivo de
FGR-JFH1/2-3 o
SGR-JFH1/4-1. Se encontraron tres y
nueve colonias en la placa en la que se han sembrado las células
mezcladas con 4 ml y 8 ml del sobrenadante del cultivo de
FGR-JFH1/2-3. Sin embargo, no se
observaron colonias en la placa, en la que se han sembrado las
células mezcladas con el sobrenadante del cultivo de
SFR-JFH1/4-1.
Posteriormente, se clonaron las colonias
formadas mediante infección con el virus de la hepatitis C usando
el sobrenadante del cultivo de
FGR-JFH1/2-3 y
FGR-JFH1/2-5, respectivamente. Se
establecieron tres clones de
FGR-JFH1/C2-3-11,
FGR-JFH1/C2-3-12 y
FGR-JFH1/C2-3-13 a
partir de la placa de cultivo infectada con el sobrenadante del
cultivo de FGR-JFH1/2-3, y se
establecieron 2 clones de
FGR-JFH1/C2-5-11 y
FGR-JFH1/C2-5-12 a
partir de la placa de cultivo infectada con el sobrenadante del
cultivo de FGR-JFH1/C2-5.
Cuando se infectaron células Huh7 con el
sobrenadante del cultivo de cada clon celular de
FGR-JFH1/C2-3-11,
FGR-JFH1/C2-3-12,
FGR-JFH1/C2-3-13,
FGR-JFH1/C2-5-11 y
FGR-JFH1/C2-5-12, se
observó formación de colonias en las placas de cultivo infectadas
con el sobrenadante del cultivo de
FGR-JFH1/C2-3-12 y
JFH1/C2-5-12, respectivamente. A
partir de las células infectadas con el sobrenadante del cultivo de
FGR-JFH1/C2-3-12, se
establecieron 2 clones adicionales de
FGR-JFH1/C2-3-12-1
y de
FGR-JFH1/C2-3-12-2.
A partir de las células infectadas con el sobrenadante del cultivo
de FGR-JFH1/C2-5-12,
se establecieron 2 clones adicionales de
FGR-JFH1/C2-5-12-1
y
FGR-JFH1/C2-5-12-2.
Se extrajeron el ARN, la proteína y el ADN
genómico de estos clones celulares que se habían establecido a
partir de células infectadas con el sobrenadante del cultivo de las
células que replicaban el replicón de ARN del VHC de longitud
completa. El examen para la integración del gen resistente a la
neomicina en el ADN genómico de estos clones celulares mediante la
PCR usando el ADN genómico como plantilla dio como resultado
negativo en todos. Además, el replicón de ARN del VHC de longitud
completa que se replicaba en las células podría detectarse mediante
la PCR cuantitativa usando ARN como plantilla. Más adicionalmente,
podría detectarse la proteína núcleo en el sobrenadante del
cultivo. Estos resultados indican que las partículas del virus que
contienen el replicón de ARN del VHC de longitud completa que se
producen mediante las células que replican el replicón de ARN del
VHC de longitud completa de la presente invención pueden infectar
otra célula.
De acuerdo con el procedimiento de la presente
invención, se pueden preparar partículas del virus VHC en un
sistema de cultivo celular. Usando el replicón de ARN de la presente
invención, se puede producir eficazmente el ARN que contiene el ARN
genómico del VHC de longitud completa en un sistema de cultivo
celular. Además, usando las células, en las que se ha introducido
el replicón de ARN del VHC de longitud completa de acuerdo con la
presente invención o el ARN genómico del VHC de longitud completa,
se pueden replicar el replicón de ARN del VHC de longitud completa
o el ARN genómico del VHC de longitud completa, y se pueden producir
partículas del virus VHC de la presente invención de manera
continua en l sistema de cultivo celular. Las células en las que se
introduce el replicón de ARN del VHC de longitud completa o el ARN
genómico del VHC de longitud completa, se pueden usar también como
un sistema de ensayo para cribar diversas sustancias que influencian
el proceso de replicación del VHC, la formación de partículas de
virus y la liberación extracelular de partículas de virus. El
replicón de ARN del VHC de longitud completa de la presente
invención y el ARN genómico del VHC de longitud completa, y las
partículas de virus de la presente invención son también útiles como
vector vírico para un gen extraño. Se pueden incluir las partículas
de virus de la presente invención, o una parte de las mismas en una
vacuna como antígeno de la vacuna contra el virus de la hepatitis C.
Además, el sistema, en el que las partículas de virus de la
presente invención y otras células que se cultivan conjuntamente, se
pueden utilizar como un sistema de ensayo para cribar diversas
sustancias que tienen influencia en la infección de las células con
partículas de virus. El replicón de ARN del VHC de longitud completa
de la presente invención o el ARN genómico del VHC de longitud
completa es útil como plantilla que permite una reproducción
sencilla de la secuencia del genoma del VHC de longitud
completa.
La SEC DE ID Nº: 1 representa la secuencia de la
región 5' no traducida del ARN genómico del VHC derivada del clon
FJH-1.
La SEC DE ID Nº: 2 representa la secuencia de
codificación de la proteína núcleo del ARN genómico del VHC derivada
del clon JFH-1.
La SEC DE ID Nº: 3 representa la secuencia de
codificación de la proteína E1 del ARN genómico del VHC derivada del
clon JFH-1.
La SEC DE ID Nº: 4 representa la secuencia de
codificación de la proteína E2 del ARN genómico del VHC derivada del
clon JFH-1.
La SEC DE ID Nº: 5 representa la secuencia de
codificación de la proteína NS2 del ARN genómico del VHC derivada
del clon JFH-1.
La SEC DE ID Nº: 6 representa la secuencia de
codificación de la proteína NS3 del ARN genómico del VHC derivada
del clon JFH-1.
La SEC DE ID Nº: 7 representa la secuencia de
codificación de la proteína NS4A del ARN genómico del VHC derivada
del clon JFH-1.
La SEC DE ID Nº: 8 representa la secuencia de
codificación de la proteína NS4B del ARN genómico del VHC derivada
del clon JFH-1.
La SEC DE ID Nº: 9 representa la secuencia de
codificación de la proteína NS5A del ARN genómico del VHC derivada
del clon JFH-1.
La SEC DE ID Nº: 10 representa la secuencia de
codificación de la proteína NS5B del ARN genómico del VHC derivada
del clon JFH-1.
La SEC DE ID Nº: 11 representa la secuencia de
la región 3' no traducida del ARN genómico del VHC derivada del clon
JFH-1.
La SEC DE ID Nº: 12 representa la secuencia del
ARN genómico del VHC de longitud completa derivada del clon
JFH-1.
La SEC DE ID Nº: 13 representa la secuencia del
replicón de ARN que comprende el ARN genómico del VHC de longitud
completa derivada del clon JFH-1.
La SEC DE ID Nº: 14 representa la secuencia del
ARN genómico del VHC de longitud completa derivada del clon
JFH-1 en el que el motivo de aminoácidos GDD se ha
mutado en GND.
La SEC DE ID Nº: 15 representa la secuencia del
replicón de ARN que comprende el ARN genómico del VHC de longitud
completa derivada del clon JFH-1 en el que el motivo
de aminoácidos GDD se h mutado en GND.
LAS SEC DE ID N^{os}: 16-20
representan las secuencias de los cebadores.
La SEC DE ID Nº: 21 representa la secuencia del
replicón de ARN derivada de un vector de expresión
oFGREP-JFH1/Luc.
La SEC DE ID Nº: 22 representa la secuencia del
replicón de ARN derivada de un vector de expresión
pFGREP-JFH1/Luc/GND.
La SEC DE ID Nº: 23 representa la secuencia del
replicón de ARN derivada de un vector de expresión
pFGREP-JFH1/EGFP.
La SEC DE ID Nº: 24 representa la secuencia del
replicón de ARN derivada de un vector de expresión
pFGREP-JFH1/EGFP/GND.
La SEC DE ID Nº: 25 representa la secuencia del
replicón de ARN derivada de un vector de expresión
pFGREP_JFH1/SEAP.
LA SEC DE ID Nº: 26 representa la secuencia del
replicón d ARN derivada de un vector de expresión
pFGREP-JFH1/SEAP/GND.
<110> Tokyo Metropolitan Organization for
Medical Research Toray Industries Inc.
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Construcción de ácido nucleico que
contiene el genoma de longitud completa del virus de la hepatitis C
humana, células replicantes del genoma del virus recombinante de
longitud completa que tienen la construcción de ácido nucleico
transferida al anterior y procedimiento para producir partículas del
virus de la hepatitis C
\vskip0.400000\baselineskip
<130>
PH-2372-PCT
\vskip0.400000\baselineskip
<140> PCT/JP2005/003232
\vskip0.400000\baselineskip
<141>
21-02-2005
\vskip0.400000\baselineskip
<150> JP 2004-045489
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
20-02-2004
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 26
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn Ver. 2.1
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 340
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus de la hepatitis C
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> región 5' no traducida del ARN
genómico del virus de la hepatitis C derivado del clon
JFH-1
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Inventor: Wakita, Takaji
\hskip1cm Inventor: Kato, Takanobu
\hskip1cm Inventor: Date, Tomoko
\hskip1cm Inventor: Miyamoto, Michiko
\hskip1cm Inventor: Tanabe, Junichi
\hskip1cm Inventor: Sone, Saburo
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 573
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus de la hepatitis C
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de codificación de la
proteína núcleo del ARN genómico del virus de la hepatitis C
derivado del clon JFH-1
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 576
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus de la hepatitis C
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de codificación de la
proteína E1 del ARN genómico del virus de la hepatitis C derivado
del clon JFH-1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1290
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus de la hepatitis C
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de codificación de la
proteína E2 del ARN genómico derivado del clon
JFH-1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 651
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus de la hepatitis C
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de codificación de la
proteína NS2 del ARN genómico del virus de la hepatitis C derivado
del con JFH-1
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1893
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus de la hepatitis C
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de codificación de la
proteína NS3 del ARN genómico del virus de la hepatitis C derivado
del clon JFH-1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 162
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus de la hepatitis C
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de codificación de la
proteína NS4A del ARN genómico del virus de la hepatitis C derivado
del clon JFH-1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 783
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus de la hepatitis C
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de codificación de la
proteína NS4B del ARN genómico del virus de la hepatitis C derivado
del clon JFH-1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1398
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus de la hepatitis C
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de codificación de la
proteína NS5A del ARN genómico de virus de la hepatitis C derivado
del clon JFH-1
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1773
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus de la hepatitis C
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de codificación del ARN
genómico del virus de la hepatitis C derivado del clon
JFH-1
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 239
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus de la hepatitis C
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> región 3' no traducida del ARN
genómico del virus de la hepatitis C derivado del clon
JFH-1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9707
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus de la hepatitis C
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> ARN genómico del virus de la
hepatitis C de longitud completa derivado del clon
JFH-1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 11111
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia
Artificial: replicón de ARN que comprende el ARN genómico del virus
de la hepatitis C de longitud completa derivado del clon
JFH-1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 11111
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia
Artificial: ARN genómico del virus de la hepatitis C de longitud
completa derivado del clon JFH-1, en el que el
motivo GDD de aminoácidos se ha mutado en GND
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 14
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9707
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia
Artificial; replicón de ARN que comprende el ARN genómico del virus
de la hepatitis C de longitud completa derivado del clon
JFH-1, en el que un motivo GDD de aminoácidos se ha
mutado en GND
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> descripción de la Secuencia
Artificial: cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 16
\hskip1cm42
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia
Artificial: cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 17
\hskip1cm43
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia
Artificial: cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 18
\hskip1cm44
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia
Artificial: cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 19
\hskip1cm45
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia
Artificial: cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 20
\hskip1cm46
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 11969
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia
Artificial: replicón de ARN derivado del vector de expresión
rFGR-JFH1/Luc
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 11969
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
<220
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia
Artificial: replicón de ARN derivado del vector de expresión
rFGR-JFH1/Luc/GND
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 11036
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia
Artificial: replicón de ARN derivado del vector de expresión
rFGR-JFH1/EGP
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 11036
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia
Artificial: replicón de ARN derivado del vector de expresión
fFGR-JFH1/EGFP/GND
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 11876
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ARN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia
Artificial: replicón de ARN derivado del vector de expresión
rFGR-JFH1/SEAP
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<400> 25
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<210> 26
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<211> 11876
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<212> ARN
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia
Artificial: replicón d ARN derivado del vector de expresión
rFGR-JFH1/SEAP/GND
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 26
Claims (13)
1. Un replicón de ARN, que comprende una
secuencia de nucleótidos que comprende una región 5' no traducida
que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC
DE ID Nº: 1, una secuencia de codificación de una proteína núcleo
que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC
DE ID Nº: 2, una secuencia de codificación de la proteína E1 que
comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE
ID Nº: 3, una secuencia de codificación de la proteína E2 que
comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE
ID Nº: 4, una secuencia de codificación de la proteína NS2 que
comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE
ID Nº: 5, una secuencia de codificación de la proteína NS3 que
comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE
ID Nº: 6, una secuencia de codificación de la proteína NS4A que
comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE
ID Nº: 7, una secuencia de codificación de la proteína NS4B que
comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE
ID Nº: 8, una secuencia de codificación de la proteína NS5A que
comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE
ID Nº: 9, una secuencia de codificación de la proteína NS5B que
comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE
ID Nº: 10, una región 3' no traducida que comprende una secuencia
de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 11, al menos un
gen marcador seleccionable y/o al menos un gen indicador, y al
menos una secuencia IRES, en el que dicho al menos un gen marcador
seleccionable y/o al menos un gen indicador, y dicha al menos una
secuencia IRES se colocan entre la región 5' no traducida y la
secuencia de codificación de la proteína núcleo en este orden en la
dirección 5' a 3', en el que dicho replicón de ARN tiene capacidad
de replicación autónoma y capacidad de producción de partículas de
virus.
2. El replicón de ARN de acuerdo con la
reivindicación 1, en el que la secuencia de nucleótidos comprende
la región 5' no traducida, el al menos un gen marcador seleccionable
y/o el al menos un gen indicador, y la al menos una secuencia IRES,
y la secuencia de codificación de la proteína núcleo, la secuencia
de codificación de la proteína E1, la secuencia de codificación de
la proteína E2, la secuencia de codificación de la proteína NS2, la
secuencia de codificación de la proteína NS3, la secuencia de
codificación de la proteína NS4A, la secuencia de codificación de
la proteína NS4B, la secuencia de codificación de la proteína NS5A,
la secuencia de codificación de la proteína NS5B, y la región 3' no
traducida en este orden en la dirección 5' a 3'.
3. El replicón de ARN de acuerdo con la
reivindicación 1, que comprende el ARN (a) o (b) siguiente:
- (a)
- un ARN que comprende una secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 13; o
- (b)
- un ARN que comprende una secuencia de nucleótidos derivada de la secuencia de nucleótidos que se muestra en la SEC DE ID Nº: 13 mediante delección, sustitución o adición de 1 a 100 nucleótidos, en el que dicho replicón de ARN tiene capacidad de replicación autónoma y capacidad de producción de partículas de virus.
4. Un procedimiento para producir una célula que
replica un replicón de ARN y produce una partícula de virus, que
comprende introducir el replicón de ARN de acuerdo con una
cualquiera de de las reivindicaciones 1 a 3 en una célula.
5. Una célula que replica un replicón de ARN y
produce una partícula de virus, que comprende el replicón de ARN de
acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3.
6. La célula de acuerdo con la reivindicación 5,
en la que la célula es una célula derivada de hígado humano, una
célula derivada de cuello uterino humano o una célula derivada de
riñón fetal humano.
7. La célula de acuerdo con la reivindicación 5,
en la que la célula es una célula Huh7, una célula HepG2, una
célula IMY-N9, una célula HeLa o una célula 293.
8. Un procedimiento para producir una partícula
de virus de la hepatitis C, que comprende cultivar la célula de
acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 5 a 7 para
permitir a la célula producir la partícula de virus.
9. Una partícula de virus de la hepatitis C que
comprende el replicón de ARN de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3.
10. Un procedimiento para cribar una sustancia
contra el virus de la hepatitis C, que comprende cultivar, en
presencia de una sustancia de ensayo, al menos una seleccionada
entre el grupo constituido por (a), y (b) siguientes:
- (a)
- la célula de acuerdo con la reivindicación 5 a 7, y
- (b)
- la partícula de virus de la hepatitis C de acuerdo con la reivindicación 9 y la célula permisiva al virus de la hepatitis C;
y detectar el replicón de ARN o las partículas
de virus en el cultivo resultante.
11. Una vacuna de la hepatitis C, que comprende
la partícula de virus de la hepatitis C de acuerdo con la
reivindicación 9 o una parte de la misma.
12. Un procedimiento para producir una vacuna de
la hepatitis C usando la partícula de virus de la hepatitis C de
acuerdo con la reivindicación 9 o una parte de la misma como un
antígeno.
13. Uso del replicón de ARN de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3 en la producción de
partículas de virus de la hepatitis C en células cultivadas.
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