ES2342922T3 - Procedimiento de manipulacion de muestras de un citometro de flujo. - Google Patents
Procedimiento de manipulacion de muestras de un citometro de flujo. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2342922T3 ES2342922T3 ES00991511T ES00991511T ES2342922T3 ES 2342922 T3 ES2342922 T3 ES 2342922T3 ES 00991511 T ES00991511 T ES 00991511T ES 00991511 T ES00991511 T ES 00991511T ES 2342922 T3 ES2342922 T3 ES 2342922T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- sample
- sperm
- procedure
- flow cytometry
- nozzle
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 66
- 230000001133 acceleration Effects 0.000 claims abstract description 52
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 claims abstract description 13
- 239000012530 fluid Substances 0.000 claims description 49
- 238000000684 flow cytometry Methods 0.000 claims description 41
- 238000002347 injection Methods 0.000 claims description 41
- 239000007924 injection Substances 0.000 claims description 41
- 238000012545 processing Methods 0.000 claims description 37
- 230000007704 transition Effects 0.000 claims description 22
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 claims description 15
- 241000283073 Equus caballus Species 0.000 claims description 11
- 230000008569 process Effects 0.000 abstract description 3
- 241000283086 Equidae Species 0.000 abstract description 2
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 109
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 37
- 230000008859 change Effects 0.000 description 19
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 17
- 238000013461 design Methods 0.000 description 11
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 6
- 238000004163 cytometry Methods 0.000 description 6
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 5
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 4
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 4
- 230000035899 viability Effects 0.000 description 4
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 3
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 3
- 239000000975 dye Substances 0.000 description 3
- 239000010437 gem Substances 0.000 description 3
- 229910001751 gemstone Inorganic materials 0.000 description 3
- 230000009027 insemination Effects 0.000 description 3
- 238000012423 maintenance Methods 0.000 description 3
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 3
- 238000011160 research Methods 0.000 description 3
- 210000001766 X chromosome Anatomy 0.000 description 2
- 210000002593 Y chromosome Anatomy 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 2
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 2
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 230000006870 function Effects 0.000 description 2
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 description 1
- 241001417935 Platycephalidae Species 0.000 description 1
- 241000282887 Suidae Species 0.000 description 1
- 230000009471 action Effects 0.000 description 1
- 238000009395 breeding Methods 0.000 description 1
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 1
- 230000003833 cell viability Effects 0.000 description 1
- 229910010293 ceramic material Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- 210000003743 erythrocyte Anatomy 0.000 description 1
- 230000005284 excitation Effects 0.000 description 1
- 230000035558 fertility Effects 0.000 description 1
- 230000006872 improvement Effects 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 230000010355 oscillation Effects 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 1
- 230000002195 synergetic effect Effects 0.000 description 1
- 230000009466 transformation Effects 0.000 description 1
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials
- G01N15/10—Investigating individual particles
- G01N15/14—Optical investigation techniques, e.g. flow cytometry
- G01N15/1404—Handling flow, e.g. hydrodynamic focusing
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials
- G01N15/01—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials specially adapted for biological cells, e.g. blood cells
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials
- G01N15/10—Investigating individual particles
- G01N15/14—Optical investigation techniques, e.g. flow cytometry
- G01N15/1404—Handling flow, e.g. hydrodynamic focusing
- G01N15/1409—Handling samples, e.g. injecting samples
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials
- G01N15/10—Investigating individual particles
- G01N15/14—Optical investigation techniques, e.g. flow cytometry
- G01N15/149—Optical investigation techniques, e.g. flow cytometry specially adapted for sorting particles, e.g. by their size or optical properties
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials
- G01N15/10—Investigating individual particles
- G01N2015/1006—Investigating individual particles for cytology
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials
- G01N15/10—Investigating individual particles
- G01N15/14—Optical investigation techniques, e.g. flow cytometry
- G01N15/1404—Handling flow, e.g. hydrodynamic focusing
- G01N2015/1413—Hydrodynamic focussing
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials
- G01N15/10—Investigating individual particles
- G01N15/14—Optical investigation techniques, e.g. flow cytometry
- G01N15/1404—Handling flow, e.g. hydrodynamic focusing
- G01N2015/1415—Control of particle position
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10T—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER US CLASSIFICATION
- Y10T436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
- Y10T436/10—Composition for standardization, calibration, simulation, stabilization, preparation or preservation; processes of use in preparation for chemical testing
- Y10T436/101666—Particle count or volume standard or control [e.g., platelet count standards, etc.]
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Dispersion Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Pathology (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Sampling And Sample Adjustment (AREA)
Abstract
Una disposición de boquilla mejorada para un citómetro de flujo para la orientación altamente eficiente y proceso de clasificación en una muestra plana e ítem dedicados tales como células de esperma de equinos o de bovinos. La disposición de boquilla mejorada comprende una boquilla con una geometría de superficie interior novedosa que puede acelerar gentimente las células e incluso incluir un elemento de superficie interior de torsión individual tipo elíptica puede tener una superficie de flujo laminar y puede producir el paso de flujo más simple para aplicar fuerzas mímimas las cuales actúan en naturaleza de acelaración o fuerzas hidrodinámicas de orientación, es decir, de torsión.
Description
Procedimiento de manipulación de muestras de un
citómetro de flujo.
La presente invención versa acerca de un
procedimiento que utiliza una boquilla mejorada para un
procesamiento de muestras de un citómetro de flujo.
Específicamente, la presente invención versa acerca de un diseño
novedoso de una geometría de una superficie interior de una
boquilla que manipula con cuidado y orienta una muestra en una
dirección radial apropiada para un análisis y una clasificación
eficaz. La presente invención también se centra en un procedimiento
para clasificar células delicadas, especialmente espermatozoides
vivos.
Los citómetros de flujo han tenido un uso
clínico y de investigación durante muchos años y sus aplicaciones
en la industria animal, tal como en la industria de cría de animales
han aumentado rápidamente. Un citómetro de flujo disponible
comercialmente utiliza normalmente una geometría cilíndrica de
fluido en su boquilla. Este tipo de sistema de citómetro de flujo
tiene un recorrido de flujo que se centra con una simetría de
revolución, como se describe en algunas patentes US (n^{os} de
patente 5.602.039, 5.483.469, 4.660.971, 4.988.619 y 5.466.572).
Este tipo de diseño, según la ley de similitud, no produce muestras
orientadas de forma radial. En los campos clínico, de cría de
animales, y de investigación biológica, cuando se clasifican células
tales como espermatozoides, pueden ser tincionadas previamente con
un tinte que produce fluorescencia cuando se expone a una fuente de
luz de excitación. Como se explicó en la patente US nº 5.135.759 de
Lawrence Johnson, se puede utilizar un citómetro de flujo que
detecta la fluorescencia emitida perpendicular al eje de flujo con
gran precisión en la medición y en la discriminación del contenido
de ADN de las células. Sin embargo, como otros han señalado,
incluso esta precisión en la medición del contenido de ADN solo
puede conseguirse de forma más eficaz cuando las células de interés
son esféricas o cilíndricas (Dean et al., 1978, Biophys. J.
23: 1-5). En cuanto a los espermatozoides -que
tienen cabezas planas- la intensidad observada de fluorescencia
depende en gran parte de la orientación apropiada de las cabezas con
respecto al detector. Los espermatozoides emiten una señal
fluorescente más fuerte desde el borde que la superficie plana. Por
lo tanto, la intensidad de la señal fluorescente depende de la
orientación de la cabeza del espermatozoide según pasa por el
detector. Debido a que el contenido de ADN se determina por medio
de fluorescencia y debido a que la intensidad fluorescente se ve
afectada por la orientación, la determinación del contenido de ADN
puede complicarse por la falta de orientación en una boquilla. Por
esta razón, sin una orientación radial, la distribución de
intensidad de fluorescencia resultante obtenida para cabezas
normales de espermatozoide orientadas de forma aleatoria refleja
tanto el contenido de ADN como la orientación de las cabezas. Debido
a que las células emiten una señal de fluorescencia más brillante
desde el borde de la cabeza (Gledhill et al., 1976, J. Cell
Physiol. 87: 367-376; Pinkel et al, 1982,
Cytometry 7: 268-273) la precisión de la
determinación del contenido de ADN (que puede diferir en tan solo
el 3,5%) se ve muy afectada por la orientación de las células. Por
esta razón, el citómetro convencional de flujo ha sufrido
limitaciones, especialmente cuando se clasifican espermatozoides
aplanados u otras células no esféricas o no cilíndricas y
similares.
Además, ciertas células pueden exhibir una
funcionalidad reducida como resultado del procedimiento de
clasificación. Esto puede ser particularmente cierto para células
tales como espermatozoides de mamíferos que no son solo delicados
mecánicamente, sino que también se vuelven funcionalmente
incapacitados (como quizás se puede ver por de una fertilidad
reducida) o incluso heridos mortalmente como resultado de alguna
incidencia en el proceso de clasificación. Ha habido limitaciones
significativas en las tentativas de citometría de flujo con células
delicadas acerca de las capacidades. Esto es más grave en el campo
altamente especializado de clasificación de espermatozoides no solo
porque las propias células son excepcionalmente delicadas, sino
también porque existe la necesidad de tasas extremadamente elevadas
de clasificación por razones fisiológicas y prácticas. Ha sucedido
que estas dos necesidades contrapuestas suponen retos sumamente
críticos en el campo excepcional de clasificación de esperma con
fines comerciales de cría. Por lo tanto, aunque estos dos aspectos
-una manipulación y una orientación con cuidado- son quizás
aplicables de forma independiente en una variedad de casos, en
muchos casos pueden actuar de forma sinérgica. Tanto sus caracteres
como sus interrelaciones sinérgicos son quizás más críticas en el
campo comercial de clasificación de esperma. De modo interesante,
parece que esta sinergia e interrelación potencial no han sido
apreciadas completamente antes de la presente invención.
Vistos por separado, el aspecto de una
orientación apropiada de una muestra que contiene partículas o
células puede ser vista por lo tanto que desempeña un papel
importante en la intensidad y en la calidad de la señal del
citómetro de flujo y en la eficacia de clasificación. Se han
realizado esfuerzos para orientar la muestra de forma hidrodinámica
y se ha explorado en las últimas décadas el uso de la orientación
hidrodinámica de la muestra en flujo a través de sistemas y
citómetros de flujo (Fulwyler, 1977, J. Histochem. Cytochem. 25:
781-783; Karbel et al., 1977, J. Histochem.
Cytochem. 25: 774-780; Dean et al.,
supra). La orientación hidrodinámica de la muestra dentro
del citómetro de flujo puede mejorar la medición precisa del
contenido relativo de tinción del ADN y también puede proporcionar
una medición potencialmente útil de parámetros morfológicos tal como
grosor de las células y grado de curvatura de la cara plana. Para
algunas aplicaciones, esta orientación es sencilla. No obstante,
cuando hay implicadas células delicadas (tal como espermatozoides) u
otras partículas, ha sido necesaria, sin embargo, una técnica más
cuidadosa. Por ejemplo, incluso se ha utilizado un tubo de
inyección de muestras con una punta con forma de cuña en algunos
intentos por aumentar el porcentaje de las células orientadas (Dean
et al., 1978, Biophys. J. 23: 1-5; Fulwyler,
1977, J. Histochem. Cytochem. 25: 781-783; Johnson
et al., 1986, Cytometry 7: 268-273; Pinkel
et al., 1982, Cytometry 3: 1-9; Welch et
al., 1994, Cytometry 17 (supl. 7): 74). Debido a esta punta con
forma de cuña del tubo de inyección de muestras, la corriente de
muestras tendía a ser aspirada en una banda delgada por el fluido
envolvente a diferencia de lo que ocurre en una corriente
cilíndrica. Las células con cabezas planas tal como espermatozoides
de mamíferos, encontraron a menudo el fluido envolvente a una mayor
velocidad (100 mm/seg), y fueron giradas de forma que sus lados
planos se encontraban en el plano de la banda. Por desgracia, la
separación del evento de orientación y el evento de análisis final
pueden provocar resultados que no llegan a ser óptimos. Por lo
tanto, esta técnica no ha mostrado ser prácticamente tan ventajosa
como se desea.
En una aplicación distinta, Kachel y sus colegas
(Kachel et al., supra) demostraron la ley de similitud
y expusieron tres tipos de recorridos de flujo que influyen en las
partículas en movimiento. Concluyeron que, para conseguir una
orientación radial uniforme con fuerzas hidrodinámicas para
partículas planas tales como hematíes aplanados, el recorrido
preferente de flujo sería aquel en mediante el cual se obtuviese una
constricción unilateral. El recorrido de flujo más sencillo que
exhibe una mayor constricción unilateral en uso con un sistema de
flujo a través del mismo se haría de un tubo con un corte
transversal elipsoidal, y también terminaría en una salida
elipsoidal. En una disposición, el eje largo de esta salida
elipsoidal estaría ubicado con un ángulo recto al eje largo en el
corte transversal del tubo elíptico de constricción. Sin embargo,
dado que la salida elíptica no produce el tipo de gotitas deseado
para un citómetro de flujo de alta velocidad clasificador de
células, no se prevé que esta disposición sea utilizada en un
citómetro de flujo, y por lo visto no ha sido aplicada a uno.
En un intento similar, Rens y sus colegas
diseñaron una punta de boquilla que tenía un interior elíptico y un
orificio elíptico de salida (Rens et al., 1998, Publicación
PCT nº PCT/US98/15403; Rens et al., 1998, Cytometry 33:
476-481; Rens et al., 1999, Mol. Reprod. Dev.
52: 50-56). Este interior contenía una primera zona
elipsoidal y una segunda zona elipsoidal que estaban separadas por
una zona de transición. Todas las zonas tenían cada una un eje
largo y un eje corto. El eje largo de la segunda zona elipsoidal
estaba orientado 90º al de la primera zona elipsoidal. Había un
orificio cilíndrico, taladrado a través de una piedra preciosa,
ubicado en el extremo del orificio elipsoidal de salida y sirve
como la salida final. Este dispositivo solucionó parcialmente el
problema de la orientación aleatoria como la que existía en un
citómetro convencional de flujo y podía orientar aproximadamente el
60% del total de los espermatozoides aplanados de un cerdo cada vez
a través del citómetro de flujo. No obstante, cuando se toman en
consideración las fuerzas hidrodinámicas en un recorrido de flujo,
las partículas planas que pasan a través de la boquilla diseñada por
Rens y sus colegas han recibido tensiones innecesarias. Para
células delicadas, y especialmente para los espermatozoides quizás
más delicados tales como los espermatozoides equinos o bovinos,
este enfoque, simplemente, no parece que produzca la eficacia
deseada ni en la orientación ni en la viabilidad celular.
El documento EP 0 288 029 versa acerca de un
dispositivo de flujo de células de tipo flujo envolvente adecuado
para su uso en un análisis celular de cuerpos vivos.
Johnson et al., 1999, Theriogenology 52,
1323-1341, hace referencia a un procedimiento
citométrico de flujo de alta velocidad de clasificación de
espermatozoides X e Y y acerca de cómo se puede maximizar la
eficacia de dicho procedimiento.
Por lo tanto, existía una necesidad percibida
desde hace tiempo, pero no satisfecha, de la invención, aunque las
técnicas y los elementos de aplicación necesarios habían estado
disponibles desde hace mucho. Esta necesidad tenía que ver con la
capacidad para manipular con cuidado y quizás orientar las
partículas o las células que van a ser analizadas, la capacidad
para analizar de forma apropiada y clasificar de forma eficaz, y la
capacidad para minimizar la situación potencialmente estresante que
el citómetro de flujo provoca para las partículas o células.
Además, aunque existían problemas en los citómetros de flujo, una
comprensión completa de que existía un problema y qué problema
resultaba invisible hasta entonces para los expertos en la técnica.
Se habían llevado a cabo intentos sustanciales por los expertos en
la técnica para cubrir la necesidad o para afrontar las dificultades
pero no habían tenido un éxito completo, probablemente debido a un
fracaso para comprender cuáles eran exactamente los problemas y
quizás cómo se interrelacionaban. Algunos esfuerzos realizados por
los expertos en la técnica incluso se desarrollaron en patentes que
parecía que habían mencionado los problemas pero, de hecho, tendían
en algunos aspectos a enseñar algo que se aleja de la dirección
técnica en la que se dirigieron los presentes inventores.
Por lo tanto, es un objetivo presentar un
procedimiento utilizando una geometría mejorada de la superficie
interior de una boquilla que produce el recorrido más sencillo de
flujo para aplicar fuerzas hidrodinámicas necesarias para acelerar
y quizás orientar una muestra en una dirección apropiada con fines
de análisis y de clasificación eficaz. Esta geometría mejorada de
la superficie interior de una boquilla puede comprender una o ambas
de: una característica de fuerza de aceleración configurada de forma
apropiada y/o un elemento de torsión única de la superficie
inferior con forma elíptica dentro de una boquilla de orientación de
torsión única que produce las fuerzas hidrodinámicas especiales, es
decir, las fuerzas de orientación de torsión única.
Como muestra ahora la presente invención, los
problemas de una tensión no deseable de las células podían ser
vistos, al menos en parte, debidos bien a fuerzas no apropiadas de
manipulación, específicamente: fuerzas no apropiadas de
aceleración, o bien a la existencia de una segunda fuerza de torsión
creada por la segunda zona elipsoidal. En cuanto a las fuerzas
aplicadas de aceleración, los dispositivos utilizaron a menudo
transiciones bruscas internas en la boquilla y provocaron de esta
manera una aceleración extrema durante distancias cortas. En cuanto
al aspecto de la orientación, por ejemplo, enfoques tales como el de
Ren (mencionado anteriormente) mostraron, que después de que se
orientaron las células por medio de una primera fuerza de torsión
creada por una primera zona elipsoidal, se aplicó una tensión
adicional -quizás duplicándola-. Específicamente, las partículas
planas ya se encontraban en una posición orientada después de que
fueron orientadas desde una posición aleatoria por la primera zona
elipsoidal. Estaban listas para salir en posiciones orientadas. Sin
embargo, en este momento, los dispositivos de Rens y otros
retorcían sin necesidad estas partículas planas orientadas una
segunda vez por medio de las fuerzas hidrodinámicas creadas por una
segunda zona elipsoidal. Como muestra la presente invención, estos
diseños no son del todo eficaces en un citómetro de flujo de alta
velocidad. Cuando se orientan los espermatozoides planos con colas
a través de este tipo de boquilla, aparte de su ineficacia, la
geometría en este tipo de boquilla aparentemente impacta dos veces
en las fuerzas de torsión. Esto parece que fatiga muchísimo, sin
necesidad, o daña los espermatozoides de cola larga antes de que
salen de la boquilla. Además, en algunos diseños en los que el
orificio está fabricado en una piedra preciosa que está separada
del interior principal, también puede verse afectado en algún grado
un flujo laminar homogéneo. Esto podría provocar una aceleración
casi instantánea y, por lo tanto, podría fatigar sin necesidad a las
células y podría afectar a la orientación de los espermatozoides ya
orientados. Por lo tanto, los enfoques de Rens y otras tentativas
más recientes realmente enseñan algo que se aleja de la superficie
interior laminar homogénea más eficaz, menos aceleratriz y menos
torsional de la presente invención.
El objetivo de la presente invención es
proporcionar un procedimiento para mejorar la orientación y la
eficacia de clasificación de la muestra, especialmente los
espermatozoides en la citometría de flujo para un uso en la
investigación y clínico y en la industria de la inseminación
animal.
La Figura 1 es una vista en corte transversal de
una porción de un citómetro de flujo que muestra un recipiente de
fluido envolvente, un tubo de inyección de muestras y una boquilla
de la presente invención. Esta figura también muestra una ubicación
relativa del tubo de muestras dentro de la boquilla.
La Figura 2 es una vista tridimensional de una
punta de la boquilla y su posición relativa con el recipiente de
fluido envolvente (el cuerpo de la boquilla aquí) con un tubo de
inyección de muestras y una punta de boquilla. La Figura 2A es un
dibujo esquemático del tubo de inyección de muestras que tiene una
punta biselada y una boca circular.
Las Figuras 3A, 3B y 3C son dibujos esquemáticos
de una de las presentes realizaciones de la boquilla. La Figura 3A
es una vista tridimensional de la punta de la boquilla que muestra
la primera zona de elipticidad creciente, la ubicación de
demarcación de elipse deseada, la zona de elipticidad decreciente,
la zona cónica, la zona cilíndrica, y el orificio circular de
salida. La Figura 3B es una vista esquemática en corte transversal
que muestra la superficie interior ahusada de la boquilla en un
diseño unitario. La Figura 3C es una vista en corte transversal de
la zona cilíndrica y del orificio circular de salida.
La Figura 4A es una vista desde abajo de la
región de la punta de la boquilla que muestra específicamente el
orificio circular de salida. La Figura 4B es una vista desde arriba
del diseño interior de la boquilla que muestra la boca circular más
grande, la ubicación de demarcación de elipse deseada, la boca
circular más grande de la zona cónica y la boca circular más
pequeña de la zona cilíndrica. El diámetro de la boca más pequeña
es también el del orificio circular de salida.
La Figura 5 muestra cómo funciona la boquilla de
orientación de torsión única para orientar partículas planas.
La Figura 6 es un diagrama esquemático de un
ejemplo de una boquilla que tiene superficies de movimiento axial
como pueden haber existido en la técnica anterior.
Las Figuras 7a, 7b y 7c son gráficos de la
velocidad, la aceleración y la tasa de cambio de movimientos de
aceleración axiales teóricas con respecto a la ubicación como las
que pueden existir para una boquilla, tal como la mostrada de forma
esquemática en la Figura 6.
La Figura 8 es un diagrama esquemático de un
ejemplo de una boquilla que tiene superficies de movimiento axial
según una realización de la presente invención.
Las Figuras 9a, 9b y 9c son gráficos de la
velocidad, aceleración y tasa de cambio de movimientos de
aceleración axiales teóricas con respecto a la ubicación como las
que pueden existir para una boquilla, tal como la mostrada de forma
esquemática en la Figura 8.
Se podría conseguir el objetivo de la presente
invención por medio del procedimiento según la reivindicación
1.
Como puede verse en las ilustraciones y en
consonancia con el objetivo de la presente invención, se pueden
implementar los conceptos básicos de la presente invención de
distintas formas. Con referencia a la Figura 1, muestra una porción
de un sistema de citómetro de flujo en el que se procesa una muestra
en gotitas individuales antes de ser analizadas y clasificadas.
Como comprenderán bien las personas con un nivel normal de dominio
de la técnica, desde la vista esquemática en corte transversal, un
recipiente (1) de fluido envolvente puede contener algo de fluido
envolvente (2) importado a través de la vía (no mostrada) de acceso
de fluido envolvente. Un sistema de inyección de muestras comprende
un tubo (3) de inyección de muestras conectado a un depósito de
muestras. En general, el sistema de inyección de muestras actúa para
proporcionar un flujo apropiado de parte del material de la muestra
a un sistema de boquilla. Al mismo tiempo, el recipiente de fluido
envolvente introduce un fluido envolvente dentro del sistema de
boquilla. La muestra puede estar rodeada por el fluido envolvente
para formar un fluido que contiene una muestra y puede luego salir
del sistema de boquilla a través de un mecanismo de formación de
gotas a través del cual el fluido que contiene una muestra forma
gotitas pequeñas. Estas gotitas pequeñas pueden pasar a través de
un área de caída libre a una velocidad elevada de más de 20 metros
por segundo por medio de la combinación de la oscilación por medio
de un oscilador y una presión elevada del sistema de citómetro de
flujo. Subsiguientemente, se pueden analizar estas gotitas pequeñas,
es decir, las gotas que contienen la muestra, por medio de un
sistema analítico (no mostrado) en el área de caída libre. Si se
introducen células vivas tales como espermatozoides planos como el
material de la muestra, pueden ser tincionadas con uno o más tintes
fluorescentes. Estos espermatozoides pueden ser transportados en una
única hilera en la corriente de fluido envolvente por el sistema
analítico (no mostrado). El sistema analítico puede incluir un
láser enfocado cuya longitud de onda se ajusta para excitar un tinte
fluorescente que puede haber presente. Entonces, se puede detectar
la señal de fluorescencia recogida de cada célula por medio de un
sistema (no mostrado) de detección. Entonces, este procedimiento
puede incluir un procedimiento de clasificación por medio de un
dispositivo de clasificación o similar, dependiendo de la propiedad
física individual tal como el contenido de ADN de cada célula
introducida, mediante la aplicación diferencial de carga a las
diversas gotitas como comprenderán los expertos en la técnica.
Subsiguientemente, se clasifica cada célula dependiendo de su
carga. Como se ha mencionado anteriormente, estos aspectos generales
de la citometría de flujo son bien conocidos y están expuestos en
las referencias mencionadas anteriormente (incorporadas en el
presente documento por referencia).
En relación con la manipulación de la muestra
para las funciones del citómetro de flujo y la viabilidad de la
muestra, dos aspectos pueden ser importantes: la alineación
torsional y el movimiento axial de la muestra. Se expone cada uno
de estos por separado, sin embargo, se debería comprender que no son
mutuamente exclusivos y pueden tener efectos de forma sinérgica.
Esto es especialmente cierto en relación con la viabilidad de la
muestra, es decir, la capacidad de la muestra para llevar a cabo sus
funciones con eficacias esperadas y que no se vea sustancialmente
afectada por el procesamiento de la citometría de flujo. Se expone
en primer lugar el primero de estos dos aspectos, la alineación
torsional.
Los aspectos ilustrados en la Figura 1 también
pueden verse en la vista tridimensional mostrada en la Figura 2.
Esta vista tridimensional muestra una porción del recipiente (1) de
flujo envolvente, el tubo (3) de inyección de muestras y el sistema
de boquilla que tiene una boquilla (6). El tubo (3) de inyección de
muestras, como se muestra en la Figura 2A en detalle, tiene una
punta biselada (4) y una boca circular (5). La boquilla (6)
especialmente diseñada se denomina una boquilla de orientación de
torsión única en la presente invención y será presentada en detalle
a continuación.
Como se conoce, el tubo de inyección de muestras
sirve para introducir el material de muestra en un flujo delgado
dentro del sistema de boquilla en el que la muestra está rodeada por
el fluido envolvente. Como es bien conocido por las personas con un
nivel normal de dominio de la técnica, el tubo convencional de
inyección de muestras tiene a menudo una forma cilíndrica. Sin
embargo, dado que este tipo de tubo de inyección de muestras puede
no ayudar a controlar la orientación de la muestra, la muestra que
sale de este tipo de tubo de inyección de muestras tiene
normalmente un estado no orientado. En las últimas dos décadas, se
produjo un tubo modificado de inyección de muestras (Dean et
al., 1978, supra; Fulwyler, 1977, supra; Johnson
et al., 1986, Cytometry 7: 268-273; Pinkel
et al., 1982, supra). Este tubo modificado de
inyección de muestras puede tener una punta biselada y puede
ayudar, hasta cierto punto, en la orientación del material de
muestra que sale de su punta. Debido a la forma biselada en la
punta del tubo de inyección de muestras, se puede aspirar la
corriente de muestra en una banda delgada por medio del fluido
envolvente. El cambio resultante en la condición del flujo puede
provocar una orientación correspondiente del material
de muestra.
de muestra.
En el presente diseño, basado en el concepto del
mecanismo de la punta biselada, se mantiene el tubo de inyección de
muestras con el tipo de punta biselada pero el tamaño interior
específico es único. Lo más importante es que está especialmente
fijada la ubicación de la punta biselada dentro de la boquilla. Como
se muestra en la Figura 2A, el tubo (3) de inyección de muestras,
denominado en el presente documento un tubo de inyección de
muestras de mejora de la orientación, comprende una punta biselada
(4) y una boca circular (5) en su corte transversal. La punta
biselada es más o menos una forma rectangular en su corte
transversal. Esta tiene un eje largo y un eje corto. Aunque
naturalmente esto puede variar para adecuarse a la aplicación o a
las partículas que estén siendo clasificadas, en una realización
preferente el ángulo de la punta biselada es de aproximadamente 4º,
el diámetro externo del tubo es de aproximadamente 1,5 mm y el
diámetro de la boca circular es de aproximadamente 0,25 mm.
Hasta ahora, solo se ha expuesto el papel que
desempeña un tubo de inyección de muestras en la orientación de la
muestra. Sin embargo, se puede comprender que como comprenderán los
expertos en la técnica, las fuerzas de orientación proporcionadas
de esta forma están muy limitadas. Por ejemplo, si esta
característica por sí sola hubiese solucionado los problemas de
orientación, las tentativas a partir de entonces para una
orientación de un porcentaje elevado no hubiesen sido necesarias.
En cambio, como comprenderán los expertos en la técnica, para
obtener una muestra muy orientada, especialmente cuando la muestra
contiene células planas, no esféricas o delicadas tales como
espermatozoides para un fin de inseminación o similar, es necesario
un enfoque adicional. Como muestra la presente invención, la
mayoría de las fuerzas de orientación deberían provenir de la
superficie interior de la boquilla. Por lo tanto, la boquilla sirve
como un elemento fundamental para la producción de fuerzas de
orientación funcionales y debidamente potentes y, pese a ello,
delicadas.
Con esta comprensión, se puede ver ahora cómo
difiere el presente diseño con respecto a la técnica anterior. Como
puede verse de forma óptima en las Figuras 1 y 2, y como se destaca
en particular en las Figuras 3A, 3B y 3C, el sistema de citómetro
de flujo comprende la boquilla (6) de orientación de torsión única
diseñada de forma única. La boquilla (6) de orientación de torsión
única puede estar fabricada de algunos materiales selectos tal como
un material cerámico y similares. Aunque puede variar el tamaño de
la boquilla, por ejemplo, la altura y el diámetro, etc.,
preferentemente debe caber dentro de un citómetro convencional de
flujo y al mismo tiempo proporcionar las fuerzas deseadas de
orientación como se ha descrito en la presente invención. Además,
aunque en una realización preferente la boquilla está fabricada de
una única pieza, en aras de una mejor ilustración, puede estar
dividida en dos porciones, es decir, una porción cilíndrica superior
(a) y una porción cónica inferior (b). En una de las realizaciones
preferentes, la altura de la porción cilíndrica superior (a) puede
ser de aproximadamente 8 mm y el diámetro externo puede ser de
aproximadamente 6 mm. La altura de la porción cónica (b) puede ser
de aproximadamente 4,5 mm y el diámetro externo en el orificio puede
ser inferior a aproximadamente 1 mm. Por lo tanto, la altura total
de la boquilla puede ser de aproximadamente 12,5. El uso de una
boquilla unitaria también ayuda a fijar todos los factores de
orientación y de movimiento axial en una disposición óptima. Por lo
tanto, también puede aumentar la facilidad de uso, la repetibilidad,
y otras cuestiones prácticas.
La Figura 3A es una vista tridimensional y las
Figuras 3B y 3C son vistas esquemáticas en corte transversal de una
boquilla de orientación de torsión única de la presente invención.
Como mejor se ilustra en las Figuras 3A y 3B, la boquilla (6) de
orientación de torsión única comprende un volumen de boquilla
rodeado por un elemento de superficie interior. El elemento de
superficie interior de la boquilla de orientación de torsión única
constituye su geometría interior. El elemento de superficie interior
comprende un elemento de torsión única de superficie interior que
tiene una superficie interior de torsión única. Este elemento de
superficie interior de torsión única tiene la capacidad para
generar fuerzas hidrodinámicas de torsión única que tienen un eje
hidrodinámico cuando un flujo que contiene la muestra pasa a través
del mismo. El elemento de superficie interior de torsión única
también tiene una característica de aceleración de la velocidad que
puede producir una velocidad acelerante sobre la muestra. Cuando la
muestra pasa a través de este elemento de torsión única de
superficie interior, se orienta la muestra por medio de las fuerzas
hidrodinámicas de torsión única y se alinea de forma radial con
respecto al eje hidrodinámico. También se puede acelerar para que
salga para el análisis y el procedimiento de clasificación
subsiguientes. Estas fuerzas hidrodinámicas de torsión única pueden
ser denominadas como fuerzas de orientación de torsión única.
La forma global de la superficie interior de
torsión única está ahusada gradualmente corriente abajo, de forma
que puede denominarse un elemento de superficie interior de torsión
única ahusada gradualmente. Desde la vista de sección longitudinal
como se muestra en la Fig. 3B, este elemento de superficie interior
de torsión única ahusada gradualmente puede ser visto en dos
dimensiones con una forma "similar a un abanico" que se abre de
abajo arriba. El grado de ahusamiento del elemento de superficie
interior de torsión única ahusada gradualmente puede variar pero
preferentemente puede ser de aproximadamente 23º desde la parte
inferior de la forma "similar a un abanico" hasta la parte
superior, de forma que se puede generar la fuerza deseada de
aceleración para actuar sobre la muestra. Además, el elemento de
superficie interior de torsión única ahusada gradualmente puede
estar dividido en algunas zonas en base a su geometría interior y
cada zona puede tener una superficie de flujo laminar. Básicamente,
el elemento de superficie interior de torsión única ahusada
gradualmente está fabricado de una zona interior ahusada (c)
similar a una elipse, una superficie interior de torsión única y
una zona interior cilíndrica (d) en la vista tridimensional. Esta
superficie interior de torsión única similar a una elipse puede
incluir distintas formas en sus cortes transversales. Por ejemplo,
además de tener forma de elipse, puede tener forma oval, o incluso
casi una forma rectangular. Cualquiera de las formas puede darse en
cualquier ubicación a lo largo de la superficie interior de torsión
única similar a una elipse justo encima y debajo de una ubicación
de demarcación en la que su elipticidad, ovalidad o incluso
rectangularidad alcanza un grado máximo o deseado. Como se debería
comprender, se pretende que cada una de estas formas esté abarcada
por la expresión "similar a una elipse" aunque no hay presente
una elipse matemática verdadera en un corte transversal dado.
Por supuesto, la zona interior ahusada similar a
una elipse puede tener un eje mayor y un eje menor en sus cortes
transversales y la elipticidad puede estar controlada de forma
homogénea. Por lo tanto, dependiendo de su variación de
elipticidad, esta zona interior ahusada similar a una elipse puede
estar dividida en las siguientes zonas corriente abajo desde la
parte superior hasta la parte inferior:
- 1)
- una zona (8) de elipticidad creciente con una boca circular (7) en la parte superior en la que aumenta la relación del eje mayor con respecto al eje menor en los cortes transversales;
- 2)
- una ubicación deseada (9) de demarcación de elipse corriente abajo de la zona (8) de elipticidad creciente en la que la relación del eje mayor con respecto al eje menor alcanza una relación óptima que puede ser una relación máxima para una muestra, como mejor se ilustra en la Figura 3A; y
- 3)
- una zona (10) de elipticidad decreciente en la que la relación del eje mayor con respecto al eje menor en las secciones transversales decrece.
\vskip1.000000\baselineskip
En base a la geometría descrita anteriormente,
las formas bidimensionales de la vista de corte transversal de
arriba abajo de la zona interior ahusada similar a una elipse pueden
experimentar cambios de transición desde un círculo en la región de
la boca, a formas similares a una elipse (que pueden incluso ser
elipses reales) con una elipticidad creciente gradualmente (que es
la relación entre los ejes mayor y menor -con independencia de la
forma implicada), a la elipse deseada o similar, a formas similares
a una elipse con una elipticidad decreciente gradualmente, y
finalmente a un círculo de nuevo en la región en la que la zona
interior ahusada similar a una elipse se une a la zona cilíndrica.
Dado que toda la zona interior similar a una elipse está ahusada,
las áreas de corte transversal de toda la zona interior similar a
una elipse se volverán gradualmente más pequeñas desde la parte
superior a la parte inferior. Por lo tanto, se puede ajustar la
elipticidad al cambiar la relación entre los ejes mayor y menor. La
relación entre los ejes mayor y menor puede cambiar gradualmente
desde la parte superior de 1 a más de 1, o quizás incluso una
relación óptima para la muestra. La relación óptima puede ser una
relación máxima. Subsiguientemente, la relación puede cambiar de
nuevo gradualmente desde la relación máxima a una relación menor
que la máxima y luego a 1. Como seguramente sabrán los expertos en
la técnica, cuando la relación se vuelve 1 la forma en corte
transversal puede ser un círculo. La relación máxima como se ha
hecho referencia anteriormente puede variar hasta cierto grado. En
una realización preferente, la longitud del eje mayor puede ser de
2,2 mm y la del eje menor puede ser de 1,0 mm. Por lo tanto, la
relación máxima está diseñada para que sea de aproximadamente 2,2
para esta realización preferente. Naturalmente, puede variar en
base a la aplicación o similar.
En una realización, la ubicación deseada (9) de
demarcación de elipse corriente abajo de la zona (8) de elipticidad
creciente dentro de la boquilla puede ser el lugar en el que está
ubicada la punta biselada del tubo de inyección de muestras. Este
también puede ser el lugar en el que la muestra en la banda de flujo
recibe las fuerzas deseadas de orientación que son completamente
funcionales, en el que la muestra está sometida mínimamente a un
par por medio de las fuerzas deseadas de orientación o las fuerzas
de par, cuando el tiempo requerido para que la célula salga es
mínimo, o cuando, después de que sale la muestra del orificio de la
boquilla, puede seguir manteniendo bien su estado orientado, de
forma que el análisis y la clasificación subsiguientes pueden
llevarse a cabo de forma eficaz. Esta ubicación puede denominarse
como un punto de inyección. Para el citómetro de flujo de alta
velocidad de clasificación del estado actual de la técnica operado
ahora, esta ubicación o el punto de inyección, en base a los
descubrimientos de la presente invención, puede ser de
aproximadamente 6 mm desde el orificio de salida. Por lo tanto, si
una distancia de mantenimiento de la orientación está definida como
la distancia que indica lo lejos que una partícula de muestra puede
mantener su estado orientado desde el punto en el que está
orientada hasta un punto en el que pierde estadísticamente su grado
de estado orientado, la distancia desde la punta biselada del tubo
de inyección de muestras hasta el orificio de salida de la boquilla
y la distancia desde el orificio de salida hasta la intersección con
el haz láser o el sensor a lo largo del recorrido de flujo en la
zona de caída cae perfectamente dentro de esta distancia de
mantenimiento de la orientación. Por ejemplo, puede haber menos de
10 mm desde la punta biselada hasta la intersección con el haz
láser, como describieron Dean y sus colegas (Dean et al.,
supra). Por lo tanto, cualquier partícula de muestra que esté
orientada, sin importar en qué punto dentro de la distancia desde
la punta biselada hasta la intersección con el haz láser o el
sensor, mantendrá su estado orientado antes de que sea analizada. En
teoría, esta distancia de mantenimiento de la orientación podría
incluso ser mayor de 10 mm cuando hay un citómetro de flujo equipado
con la boquilla diseñada especialmente de la presente invención y
el tubo de inyección de muestras con la punta biselada. Además,
para todos los beneficios de la orientación, el eje largo de la
punta biselada puede estar alineado con el eje mayor de la
ubicación deseada de demarcación de la elipse y el eje corto es el
eje menor, como se muestra.
Corriente abajo desde la zona interior ahusada
similar a una elipse (c) es una zona interior cilíndrica (d). Esta
zona interior cilíndrica (d), como puede verse en las Figuras 3A, 3B
y 3C puede estar dividida además en una zona cónica (12) que está
ahusada y en una zona cilíndrica (14). La zona cónica (12) tiene una
boca circular más grande (11) en la parte superior que se une con
la zona interior ahusada similar a una elipse (c) y tiene un
orificio circular más pequeño (13) en conexión con la zona
cilíndrica (14). La boca circular más grande (11) en la parte
superior de la zona cónica puede tener un diámetro de
aproximadamente 0,19 mm y la abertura circular puede ser de
aproximadamente 0,07 mm en una realización preferente. La altura de
la zona cónica puede ser de aproximadamente 0,3 mm. La zona
cilíndrica (14) también puede tener una boca con el mismo diámetro
que la abertura menor de la zona cónica en todo su orificio circular
(15) de salida y puede tener una altura de aproximadamente 0,15
mm.
La Figura 4A ilustra una vista desde abajo de la
boquilla de orientación de torsión única que muestra el orificio
circular. El orificio circular debería ser lo suficientemente
pequeño como para que se formen las gotitas minúsculas que
contienen partículas de la muestra. El diámetro en una de las
realizaciones preferentes puede ser de aproximadamente 0,07 mm. La
Figura 4B muestra una vista desde arriba de la boquilla de
orientación de torsión única. Como puede verse claramente, la boca
puede tener una forma circular con un diámetro de aproximadamente
5,25 mm.
Con referencia a la Figura 5, puede verse cómo
se produce la orientación. Como puede observarse, esta figura es un
dibujo modificado de Kachel y sus colegas (Figura 3, Kachel et
al., 1977, J. Histochem. Cytochem. 25:
774-780). Este dibujo, un corte transversal en torno
a la ubicación deseada (9) de demarcación de la elipse, muestra, en
primer lugar, las distribuciones de las fuerzas de orientación
generadas desde la superficie interior de torsión única similar a
una elipse. Como se muestra, la transformación distinta de la
superficie interior de torsión única similar a una elipse puede
hacer que fuerzas laterales preferentes generen componentes
adicionales de flujo a lo largo del eje mayor y puede reducir las
fuerzas generadas a lo largo del eje menor. Por lo tanto, las
fuerzas generadas a lo largo del eje mayor pueden ser vistas como
más fuertes que las fuerzas generadas a lo largo del eje menor para
orientar de esta manera una partícula plana (16) como se muestra. El
diseño único de la presente invención muestra su superioridad en el
sentido de que la zona interior ahusada similar a una elipse (c)
está conectada directamente a la zona interior cilíndrica (d) y al
orificio circular (15) de salida. Esta geometría diseñada
especialmente evita con éxito la ley de similitud y, por lo tanto,
las partículas de la muestra que han sido orientadas podrán salir
de forma individual del orificio circular de salida y mantendrán
aún su estado alineado de forma orientada.
Además de lo anterior, se puede ver que todo el
elemento de superficie interior ahusada de torsión única comprende
una superficie de flujo laminar. Por medio de un flujo laminar y de
las fuerzas de orientación de torsión única generadas por la
superficie de flujo laminar, se puede orientar de forma radial y
alinear la muestra a lo largo del eje hidrodinámico. La muestra
alineada de forma orientada se mantiene de esta manera en el estado
alineado de forma orientada cuando sale del orificio circular de
salida en el que se separa la muestra en partículas individuales y
similares, está rodeada por una gota de fluido envolvente, y es
analizada. Por lo tanto, la muestra finalmente orientada puede ser
debida a los esfuerzos combinados de la punta biselada del tubo de
inyección de muestras y de la superficie interior de orientación de
torsión única que, debido a la geometría única, genera las fuerzas
de orientación de torsión única y produce un flujo laminar.
Se debe señalar que toda la superficie interior
de la boquilla de orientación de torsión única puede ser unitaria.
La forma de dividir toda la superficie interior en la zona interior
ahusada similar a una elipse (c), la zona interior cilíndrica (d) y
sus propias zonas subsiguientes como se han descrito anteriormente
es simplemente en aras de una explicación clara.
La industria de cría de animales ha estado
aprovechando cada vez más los principios de la citometría de flujo
y utilizando los beneficios que puede proporcionar un citómetro de
flujo de alta velocidad. Ahora se pueden discriminar con éxito los
especímenes sexados de esperma por medio de los mecanismos de
clasificación que emplea el citómetro de flujo. Con esta boquilla
de orientación de torsión única de diseño único, se pueden
clasificar los espermatozoides que tienen cromosomas X e Y de forma
más eficaz y con un mayor porcentaje, como se ha descrito
anteriormente. Los espermatozoides sexados pueden ser sometidos a
tampón en el tampón de los inventores preparado especialmente
compatible con esperma como se describe en la publicación PCT nº WO
99/05504 (LoDo PCT). Los espermatozoides sometidos a tampón pueden
ser inyectados en la ubicación de demarcación dentro del elemento
de superficie interior de torsión única similar a una elipse de la
boquilla de orientación de torsión única donde pueden ser rodeados
por el fluido envolvente para formar un esperma rodeado por fluido
envolvente. Subsiguientemente, se pueden producir las gotas que
contienen esperma por medio de un mecanismo de formación de gotas y
ser analizadas en el área de caída libre. Entonces, se cargan las
gotas que contienen esperma y son clasificadas por medio del
dispositivo de clasificación y son recogidas por un sistema de
recogida compatible con esperma que contiene un fluido de recogida
de esperma fabricado especialmente. Este procedimiento completo
puede minimizar las tensiones sobre el esperma creadas por medio del
procedimiento de clasificación. Entonces, se puede utilizar el
esperma que tiene el cromosoma X o Y para la inseminación y la
producción de un mamífero de un género deseado.
Por lo tanto, es al menos el diseño único de una
geometría de la superficie interior de la boquilla de orientación
de torsión única lo que hace que la invención sea superior a otras
boquillas convencionales. Como esperarán las personas con un nivel
normal de dominio de la técnica, esta boquilla de orientación de
torsión única, cuando se combina especialmente con el tubo biselado
de inyección de muestras ubicado en una ubicación apropiada con
respecto a una región específica de la superficie interior de la
boquilla de orientación de torsión única, puede proporcionar
resultados que pueden ser aún más satisfactorios.
Como se ha mencionado anteriormente, lo anterior
ha expuesto el aspecto de alineamiento de torsión de la invención.
Un segundo aspecto importante es el del movimiento axial de la
muestra. Este aspecto abarca no solo el movimiento de la muestra
según atraviesa la boquilla hacia abajo por el eje central, sino
también las tensiones que recibe la muestra durante su recorrido.
Estos movimientos pueden ser caracterizados quizás más fácilmente
por tres valores, derivadas los tres de la distancia con respecto a
la ubicación a lo largo de la muestra. Estas derivadas pueden ser
resumidas como sigue:
Como se puede comprender de la figuras
6-9c, la boquilla puede presentar cualquier número
de superficies de movimiento axial, es decir, superficies que
tienen influencia sobre la muestra, o quizás que solo la limitan,
según pasa a través de la boquilla. Como se muestra en la figura 6,
las superficies de movimiento axial pueden ser pares simétricos y
también pueden ser tan sencillas como una primera superficie (21) de
movimiento axial y una segunda superficie (22) de movimiento axial.
Según pasa la muestra hacia abajo por la boquilla (6), estas
superficies de movimiento axial pueden actuar de maneras que tienen
influencia sobre la muestra o su viabilidad. Por lo tanto, la
muestra está sometida (normalmente hidrodinámicamente) a una primera
superficie (21) de movimiento axial. Entonces, puede pasar a una
ubicación (23) de transición para ser influida por una segunda
superficie (22) de movimiento axial. Después de la ubicación (23) de
transición, la muestra está sometida entonces a la segunda
superficie (22) de movimiento axial. Entonces, puede salir de la
boquilla, tal como por el orificio circular (15) de salida.
Se debería comprender que las superficies de
movimiento axial pueden tener cualquier forma. En un sistema, tal
como uno que puede tener una velocidad constante, pueden tener una
forma tubular. Como se muestra en las figuras 6 y 8, en un sistema
tal como uno que consigue una aceleración de la muestra según pasa a
través de la boquilla (6), pueden estar configuradas como
superficies de aceleración tal como las superficies cónicas
mostradas. Por supuesto, la superficie de aceleración también podría
decelerar la muestra. Al provocar una aceleración o una
deceleración, la superficie actuaría de forma que cambiaría la
velocidad de la muestra según pasa a través de la boquilla (6). Por
lo tanto, se puede comprender que la muestra (6), tal como se
muestra en la figura 8 puede incluir una primera superficie (24) de
aceleración axial y una segunda superficie (25) de aceleración
axial. La primera superficie (24) de aceleración axial hace que la
muestra experimente un primer valor (que puede ser constante o no)
de aceleración y la segunda superficie (25) de aceleración axial
puede hacer que la muestra experimente un segundo valor de
aceleración. Este segundo valor de aceleración puede ser distinto o
no del primero. Como se muestra en la figura 8, dado que la segunda
superficie (25) de aceleración converge a una tasa distinta,
probablemente indicaría un valor distinto
de aceleración.
de aceleración.
Naturalmente, siempre que hay una aceleración,
la muestra puede experimentar una tensión. Esta tensión puede tener
un impacto sobre la viabilidad y la funcionalidad de las muestras.
Un aspecto particular para algunas muestras, tal como células más
largas, puede ser el hecho de que cuando hay un cambio en la
velocidad, puede haber diferencias en la tendencia de la velocidad
desde un extremo de la muestra hasta el siguiente. Esto puede
comprenderse más fácilmente con referencia a una muestra tal como un
espermatozoide. Los espermatozoides viables tienen cabezas y colas.
Cuando se hace que la cabeza acelere de forma diferencial con
respecto a la aceleración de la cola, o cuando se hace que se mueva
la velocidad a una velocidad distinta que la de la cola, se puede
crear un diferencial desde la cabeza a la cola. Este diferencial
puede provocar tensión en la célula. En casos extremos, puede
incluso separar la cola de la cabeza. Obviamente, esto destruiría la
eficacia de la muestra. La presente invención proporciona un
sistema mediante el cual se puede minimizar esto y se pueden evitar
o reducir los efectos no deseables. Esto se lleva a cabo al someter
a la muestra a un grado "bajo" de cambios en la aceleración o
la velocidad por la longitud de la muestra. Como los expertos en la
técnica podrán comprender, "bajo" puede ser un término
relativo que puede depender de la célula y del entorno. Se puede
determinar de forma teórica o empírica como un valor que se muestra
que consigue porcentajes prácticos de eficacia en la muestra para
su aplicación específica. Estas probabilidades puede ser tales como
al menos el 70%, 80%, 90% o similar. También se puede aplicar de
forma afirmativa la aceleración o la tasa "baja" de cambio en
aceleración.
Los cambios en la aceleración o la velocidad
pueden producirse cuando cambian las superficies de movimiento
axial. Estos cambios pueden ser bruscos o delicados. Naturalmente,
algunas realizaciones de la presente invención prefieren éstos. Con
referencia a la figura 6, puede verse cómo un cambio brusco en la
superficie de movimiento axial a lo largo del eje puede fatigar a
la muestra. La primera superficie (21) de movimiento axial cambia
de forma discontinua en la ubicación (23) de transición. Por
ejemplo, cuando se crea la segunda superficie (22) de movimiento
axial por un elemento separado, tal como mediante la inserción de
una piedra preciosa, puede existir una discontinuidad en la
boquilla (6). En tal punto, se puede someter entonces a la muestra
a un cambio extremo en la velocidad casi de forma instantánea. Se
hará notar que dicho cambio discontinuo puede existir de forma
involuntaria, debido a defectos de alineación casi imperceptibles.
Independientemente, aspectos como estos pueden tender a separar la
muestra. Al proporcionar transiciones que pueden no ser
discontinuas, la presente invención puede evitar o minimizar las
tensiones creadas de esta manera. La transición puede ser una
transición continua como en un área curvada, al tener una cantidad
limitada de "discontinuidad" o de defectos de alineación, o
puede evitar simplemente la posibilidad de un cambio discontinuo al
tener una superficie interior en la boquilla (6) que es unitaria.
De esta forma, la boquilla puede tener de forma efectiva una
superficie unitaria. En tal disposición, la boquilla (6) puede estar
diseñada de manera afirmativa, de forma que presente una transición
con una diferenciación máxima de la aceleración. Como se muestra en
la figura 8, esto se puede llevar a cabo mediante el diseño en un
área limitada (26) de transición de máxima diferenciación de la
aceleración, tal como la mostrada entre la primera superficie de
movimiento axial y la segunda. También se puede llevar a cabo
utilizando un orificio unitario de salida. Entonces, el área
limitada de transición de máxima diferenciación de la aceleración
puede encontrarse en el orificio unitario de salida, o ser un
resultado
del mismo.
del mismo.
En términos de las tres derivadas de la
distancia con respecto a la ubicación mencionada anteriormente, se
pueden comprender los anteriores conceptos mediante referencia a las
figuras 7 a-c, y 9 a-c. Como se
muestra, estas figuras son representaciones gráficas de los tres
valores de derivada en ubicaciones respectivas en sus boquillas
adyacentes mostradas en las figuras 6 y 8. Las Figuras 7a y 9a
representan la primera derivada de distancia con respecto a la
ubicación, un concepto similar a la velocidad. Dado que la boquilla
en la figura 6 tiene un cambio discontinuo en la ubicación (23) de
transición, puede verse que dl/dl cambia de forma discontinua en la
ubicación (23) de transición. Para la boquilla (23) en la figura 8,
el valor dl/dl no cambia de forma discontinua. Así, la muestra
puede ser tratada con menos tensión solo por esta razón. En las
figuras 7b y 9b, se puede ver que los valores dl^{2}/dl^{2}
para sus boquillas respectivas también son distintos. En la figura
7b, la segunda derivada de la distancia con respecto al valor de la
ubicación (o quizás visto más fácilmente como la aceleración) tiene
un momento de cambio extremo. De nuevo, esto no está tan presente en
la figura 9b. Finalmente, la tercera derivada de la distancia con
respecto a los valores de ubicación, dl^{3}/dl^{3} (o quizás
vistos más fácilmente como la tasa de cambio de la aceleración)
también difieren. En la figura 7c, el valor primero se vuelve
positivo y luego negativo. En los valores mostrados en la figura 9c,
los valores nunca cambian de signo, son bien cero o bien positivos,
pero nunca negativos. De forma conveniente, se puede construir cada
uno de estos conceptos mediante los cuales comprender y caracterizar
la boquilla según está diseñada para evitar o minimizar las
tensiones sobre la muestra.
Otro aspecto que puede ser un factor para
algunas muestras es el aspecto de la duración de la velocidad, la
aceleración o la tasa de cambio de la aceleración según es
experimentada por la muestra. Esto también puede ser denominado el
tiempo de permanencia para la muestra. En la citometría de flujo, a
menudo existe una necesidad de que se depositen muestras únicas en
gotas únicas. Los aspectos tales como este pueden provocar un deseo
de transición del fluido en el último momento posible. En los
sistemas que intentan hacer esto, puede ser importante prestar
atención en particular a las áreas en el entorno desde
aproximadamente 100 um desde el punto (27) de salida, áreas más
alejadas que 300 um desde el punto (27) de salida, áreas en el
entorno del punto (27) de salida, o incluso áreas alejadas del
punto (27) de salida. Además, en algunos sistemas puede ser
aceptable someter solo momentáneamente a la muestra a los valores no
deseados. Por lo tanto, se pueden establecer límites en la boquilla
(6) o en ubicaciones específicas dentro de la boquilla (6). Algunos
de los límites que pueden aplicarse se exponen en las tablas 1 y
2.
\vskip1.000000\baselineskip
Al coordinar de manera afirmativa dichos
aspectos con muestras específicas, los valores también pueden
establecerse en la longitud efectiva de la célula/muestra. Estas
longitudes pueden ser determinadas tanto de forma teórica, medidas
como la longitud real de la muestra, o incluso determinadas de forma
empírica como una longitud efectiva de la muestra. De nuevo, estas
acciones afirmativas o coordinadas tienen como resultado dejar las
cosas al azar y pueden dar certidumbre a los usuarios. En las
determinaciones empíricas, entre otras, se debería comprender que
se pueden escoger los valores conseguidos, de forma que no superen
las capacidades prácticas de la muestra en su longitud, eso es para
que la muestra retenga una probabilidad suficientemente aceptable de
funcionalidad después de que sea procesada. De esta forma, al
coordinar la máxima diferenciación de la aceleración, al limitar de
manera afirmativa la máxima diferenciación de la aceleración, y al
escoger de manera afirmativa valores (determinados o no), de forma
que no superen las capacidades prácticas de la muestra, la presente
invención puede conseguir sus propósitos.
Como se ha mencionado anteriormente, puede
existir sinergia entre este aspecto y el aspecto de alineamiento
hidrodinámico de la invención. El giro y la tracción combinados
pueden provocar tensión, y aparentemente lo provocan, en algunas
muestras, especialmente en espermatozoides. Por lo tanto, la
posibilidad de combinar las fuerzas hidrodinámicas de torsión y la
máxima diferenciación de la aceleración o los valores similares,
estos aspectos también pueden combinarse para minimizar la tensión.
También se puede considerar el aspecto de combinar los anteriores
valores y conceptos con otros parámetros que son probablemente la
causa de tensión en un contexto de un citómetro de flujo. Dichos
parámetros pueden incluir la operación a tasas de clasificación de
al menos 500 clasificaciones por segundo, al menos 1000
clasificaciones por segundo, y al menos 1500 clasificaciones por
segundo. De forma similar, esto también puede incluir operaciones a
344,7 kPa y similares. Finalmente, como se ha señalado
anteriormente, ciertas muestras pueden ser particularmente
susceptibles a la tensión, a los aspectos mencionados
anteriormente, o a los valores expuestos anteriormente. Esto puede
ser particularmente cierto para espermatozoides, sistemas de
recogida de esperma, espermatozoides bovinos, espermatozoides
equinos, espermatozoides que han sido tincionados y clasificados
por su contenido de ADN (tal como en espermatozoides sexados),
espermatozoides bovinos clasificados machos o hembras, e incluso
espermatozoides equinos clasificados machos o hembras.
Claims (40)
1. Un procedimiento de procesamiento de muestras
de citometría de flujo, que comprende las etapas de:
- a.
- establecer un fluido envolvente (2);
- b.
- inyectar una muestra dentro de dicho fluido envolvente (2) en un punto de inyección;
- c.
- establecer una superficie de torsión única en una boquilla (6) que tiene un eje central en torno al que se aplica un par al utilizar un elemento de superficie interior de torsión única ahusada gradualmente que está dividido en una zona interior ahusada similar a una elipse (c) y una zona interior cilíndrica (d) y en el que la zona interior ahusada similar a una elipse (c) está conectada directamente a la zona interior cilíndrica (d) y un orificio circular (15) de salida de la boquilla (6);
- d.
- generar fuerzas hidrodinámicas de torsión única desde dicha superficie de torsión única, en el que dichas fuerzas hidrodinámicas de torsión única tienen un eje hidrodinámico;
- e.
- orientar dicha muestra con dichas fuerzas hidrodinámicas de torsión única;
- f.
- alinear de forma radial dicha muestra con respecto a dicho eje hidrodinámico;
- g.
- hacer salir dicha muestra de dicha boquilla (6);
- h.
- analizar dicha muestra.
\vskip1.000000\baselineskip
2. Un procedimiento de procesamiento de muestras
de citometría de flujo como se describe en la reivindicación 1, en
el que dicha superficie interior de torsión única similar a una
elipse (c) tiene una elipticidad que varía a lo largo de su
longitud y que comprende, además, la etapa de variar de manera
homogénea dicha elipticidad de dicha superficie interior de torsión
única similar a una elipse (c).
3. Un procedimiento de procesamiento de muestras
de citometría de flujo como se describe en la reivindicación 1, y
que comprende, además, las etapas de:
- a.
- someter dicha muestra a una primera superficie (21) de movimiento axial en una boquilla (6);
- b.
- pasar hasta una segunda superficie (22) de movimiento axial en dicha boquilla (6);
- c.
- someter dicha muestra a dicha segunda superficie (22) de movimiento axial en dicha boquilla (6) en la que se producen una transición en dichas superficies primera y segunda (21/22) de movimiento axial con una máxima diferenciación de la aceleración;
- d.
- coordinar dicha máxima diferenciación de la aceleración, de forma que no supere las capacidades prácticas de dicha muestra en su longitud; y
- e.
- limitar de forma afirmativa dicha máxima diferenciación de la aceleración, de forma que no supere las capacidades prácticas de dicha muestra en su longitud.
\vskip1.000000\baselineskip
4. Un procedimiento de procesamiento de muestras
de citometría de flujo como se describe en la reivindicación 3, en
el que dicha etapa de sometimiento de dicha muestra a una primera
superficie (21) de movimiento axial en una boquilla (6) comprende
la etapa de sometimiento de dicha muestra a una primera superficie
(24) de aceleración axial en dicha boquilla (6) y en el que dicha
etapa de sometimiento de dicha muestra a dicha segunda superficie
(22) de movimiento axial en dicha boquilla (6) comprende la etapa de
sometimiento de dicha muestra a una segunda superficie (25) de
aceleración axial, en el que se produce una transición en dichas
superficies primera y segunda (21/22) de movimiento axial de máxima
diferenciación de la aceleración.
5. Un procedimiento de procesamiento de muestras
de citometría de flujo como se describe en la reivindicación 3, en
el que se combinan dichas fuerzas hidrodinámicas de torsión única y
dicha máxima diferenciación de la aceleración y están escogidas de
manera afirmativa de forma que no superen las capacidades prácticas
de dicha muestra en su longitud.
6. Un procedimiento de procesamiento de muestras
de citometría de flujo como se describe en la reivindicación 5, en
el que dicha etapa de transición a una segunda superficie (22) de
movimiento axial en dicha boquilla (6) comprende la etapa de
sometimiento de dicha muestra a una superficie unitaria.
\newpage
7. Un procedimiento de procesamiento de muestras
de citometría de flujo como se describe en la reivindicación 6, en
el que dicha etapa de transición a una segunda superficie (22) de
movimiento axial en dicha boquilla (6) comprende la etapa de
sometimiento de dicha muestra a un orificio unitario (15) de
salida.
8. Un procedimiento de procesamiento de muestras
de citometría de flujo como se describe en la reivindicación 3, y
que comprende, además, las etapas de:
- a.
- formar gotas en torno a dicha muestra después de que ha salido de dicha boquilla (6); y
- b.
- clasificar dichas gotas a una tasa seleccionada del grupo constituido por al menos 500 clasificaciones por segundo, al menos 1000 clasificaciones por segundo, y al menos 1500 clasificaciones por segundo.
\vskip1.000000\baselineskip
9. Un procedimiento de procesamiento de muestras
de citometría de flujo como se describe en la reivindicación 3, y
que comprende, además, la etapa de presurizar dicha boquilla (6)
hasta una presión de al menos 344,7 kPa.
10. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 8, en el que dicha etapa de inyectar una muestra
dentro de dicho fluido envolvente (2) en un punto de inyección
comprende la etapa de inyectar espermatozoides no humanos dentro de
dicho fluido envolvente (2).
11. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 9, en el que dicha etapa de inyectar una muestra
dentro de dicho fluido envolvente (2) en un punto de inyección
comprende la etapa de inyectar espermatozoides no humanos dentro de
dicho fluido envolvente (2).
12. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 3, 6, 7, 8 o 9, en el que dicha etapa de inyectar
una muestra dentro de dicho fluido envolvente (2) en un punto de
inyección comprende la etapa de inyectar espermatozoides
seleccionados del grupo constituido por espermatozoides bovinos y
espermatozoides equinos dentro de dicho fluido envolvente (2).
13. Un procedimiento como se describe en la
reivindicación 10 u 11, en el que se procesan espermatozoides no
humanos.
14. Un procedimiento como se describe en la
reivindicación 13, en el que se procesan espermatozoides bovinos o
espermatozoides equinos.
15. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 1, en el que dicha etapa de establecer una
superficie interior de torsión única ahusada similar a una elipse
(c) en dicha boquilla (6) comprende la etapa de ahusar gradualmente
dicha superficie interior de torsión única similar a una elipse
(c).
16. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 15, en el que dicha etapa de ahusar gradualmente
dicha superficie interior de torsión única similar a una elipse (c)
comprende la etapa de establecer un ahusamiento a aproximadamente
23º.
17. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 1, en el que dicha etapa de orientar dicha muestra
con dichas fuerzas hidrodinámicas de torsión única comprende la
etapa de someter mínimamente a un par dicha muestra.
18. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 17, en el que dicha muestra recorre una distancia
después de llevar a cabo dicha etapa de generar fuerzas
hidrodinámicas de torsión única desde dicha superficie de torsión
única y antes de llevar a cabo dicha etapa de hacer salir dicha
muestra de dicha boquilla (6) y comprende, además, la etapa de
minimizar dicha distancia.
19. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 18, en el que dicha etapa de hacer salir dicha
muestra de dicha boquilla (6) se produce en un orificio (15) de
salida y en el que dicha etapa de minimizar dicha distancia
comprende establecer la distancia desde dicho punto de inyección
hasta dicho orificio (15) de salida a aproximadamente 6 mm.
20. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 8, en el que dicha muestra está orientada como se
describe en la reivindicación 19.
21. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 1, en el que dicha etapa de inyectar una muestra
dentro de dicho fluido envolvente (2) en un punto de inyección
comprende la etapa de inyectar espermatozoides en un tampón
compatible con esperma dentro de dicho fluido envolvente (2).
22. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 21, y que comprende, además, las etapas de:
- a.
- formar gotas en torno a dichos espermatozoides después de que han salido de dicha boquilla (6); y
- b.
- clasificar dichas gotas.
\vskip1.000000\baselineskip
23. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 21, y que comprende, además, la etapa de recoger
dichos espermatozoides después de llevar a cabo dicha etapa de
clasificación de dichas gotas.
24. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 22, en el que dicha etapa de inyectar
espermatozoides en un tampón compatible con esperma dentro de dicho
fluido envolvente (2) comprende la etapa de inyectar espermatozoides
en un tampón compatible con esperma dentro de dicho fluido
envolvente seleccionado del grupo constituido por espermatozoides
equinos y espermatozoides bovinos.
25. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 24, en el que dicha muestra está orientada como se
describe en la reivindicación 19.
26. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 16 o 19, y que comprende, además, las etapas de:
- a.
- someter dicha muestra a una primera superficie (21) de movimiento axial en una boquilla (6);
- b.
- pasar a una segunda superficie (22) de movimiento axial en dicha boquilla (6);
- c.
- someter dicha muestra a dicha segunda superficie (22) de movimiento axial en dicha boquilla (6), en el que se produce una transición en dichas superficies primera y segunda (21/22) de movimiento axial con una máxima diferenciación de la aceleración;
- d.
- coordinar dicha máxima diferenciación de la aceleración de forma que no se superen las capacidades prácticas de dicha muestra en su longitud; y
- e.
- limitar de manera afirmativa dicha máxima diferenciación de la aceleración, de forma que no se superen las capacidades prácticas de dicha muestra en su longitud.
\vskip1.000000\baselineskip
27. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 26, en el que se combinan dichas fuerzas
hidrodinámicas de torsión única y dicha máxima diferenciación de la
aceleración y están escogidas de manera afirmativa, de forma que no
se superen las capacidades prácticas de dicha muestra en su
longitud.
28. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 27, en el que dicha etapa de transición a una
segunda superficie (22) de movimiento axial en dicha boquilla (6)
comprende la etapa de sometimiento de dicha muestra a una superficie
unitaria.
29. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 28, en el que dicha etapa de transición a una
segunda superficie (22) de movimiento axial en dicha boquilla (6)
comprende la etapa de sometimiento de dicha muestra a un orificio
unitario (15) de salida.
30. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 26, y que comprende, además, las etapas de:
- a.
- formar gotas en torno a dicha muestra después de que ha salido de dicha boquilla (6); y
- b.
- clasificar dichas gotas a una tasa seleccionada del grupo constituido por al menos 500 clasificaciones por segundo, al menos 1000 clasificaciones por segundo, y al menos 1500 clasificaciones por segundo.
\vskip1.000000\baselineskip
31. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 26, y que comprende, además, la etapa de presurizar
dicha boquilla (6) a una presión de al menos 344,7 kPa.
32. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 30, en el que dicha etapa de inyectar una muestra
dentro de dicho fluido envolvente (2) en un punto de inyección
comprende la etapa de inyectar espermatozoides dentro de dicho
fluido envolvente (2).
33. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 31, en el que dicha etapa de inyectar una muestra
dentro de dicho fluido envolvente (2) en un punto de inyección
comprende la etapa de inyectar espermatozoides dentro de dicho
fluido envolvente (2).
34. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 26, en el que dicha etapa de inyectar una muestra
dentro de dicho fluido envolvente (2) en un punto de inyección
comprende la etapa de inyectar espermatozoides seleccionados del
grupo constituido por espermatozoides bovinos y espermatozoides
equinos dentro de dicho fluido envolvente (2).
35. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 29, en el que dicha etapa de inyectar una muestra
dentro de dicho fluido envolvente (2) en un punto de inyección
comprende la etapa de inyectar espermatozoides seleccionados del
grupo constituido por espermatozoides bovinos y espermatozoides
equinos dentro de dicho fluido envolvente (2).
36. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 30, en el que dicha etapa de inyectar una muestra
dentro de dicho fluido envolvente (2) en un punto de inyección
comprende la etapa de inyectar espermatozoides seleccionados del
grupo constituido por espermatozoides bovinos y espermatozoides
equinos dentro de dicho fluido envolvente (2).
37. Un procedimiento de procesamiento de
muestras de citometría de flujo como se describe en la
reivindicación 31, en el que dicha etapa de inyectar una muestra
dentro de dicho fluido envolvente (2) en un punto de inyección
comprende la etapa de inyectar espermatozoides seleccionados del
grupo constituido por espermatozoides bovinos y espermatozoides
equinos dentro de dicho fluido envolvente (2).
38. Un procedimiento de creación de un espécimen
sexado de esperma que comprende la etapa de producir un espécimen
sexado de esperma como se describe en la reivindicación 32, y en el
que dicha etapa de inyectar una muestra dentro de dicho fluido
envolvente (2) en un punto de inyección comprende la etapa de
inyectar espermatozoides dentro de dicho fluido envolvente (2).
39. Un procedimiento de creación de un espécimen
sexado de esperma que comprende la etapa de producir un espécimen
sexado de esperma como se describe en la reivindicación 36, y en el
que dicha etapa de inyectar espermatozoides dentro de dicho fluido
envolvente (2) comprende la etapa de inyectar espermatozoides
seleccionados del grupo constituido por espermatozoides bovinos y
espermatozoides equinos dentro de dicho fluido envolvente (2).
40. Un procedimiento como se describe en la
reivindicación 36, en el que se procesan espermatozoides bovinos o
espermatozoides equinos.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US454488 | 1999-12-03 | ||
US09/454,488 US6263745B1 (en) | 1999-12-03 | 1999-12-03 | Flow cytometer nozzle and flow cytometer sample handling methods |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2342922T3 true ES2342922T3 (es) | 2010-07-19 |
Family
ID=23804813
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES00991511T Expired - Lifetime ES2342922T3 (es) | 1999-12-03 | 2000-11-29 | Procedimiento de manipulacion de muestras de un citometro de flujo. |
ES10001278.0T Expired - Lifetime ES2445520T3 (es) | 1999-12-03 | 2000-11-29 | Boquilla de citómetro de flujo |
Family Applications After (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES10001278.0T Expired - Lifetime ES2445520T3 (es) | 1999-12-03 | 2000-11-29 | Boquilla de citómetro de flujo |
Country Status (25)
Country | Link |
---|---|
US (4) | US6263745B1 (es) |
EP (3) | EP2264430B1 (es) |
JP (2) | JP5019497B2 (es) |
KR (3) | KR20020063584A (es) |
CN (1) | CN1402831A (es) |
AR (4) | AR026683A1 (es) |
AT (1) | ATE467113T1 (es) |
AU (1) | AU783000B2 (es) |
BR (1) | BRPI0016121B1 (es) |
CA (3) | CA2739572C (es) |
DE (1) | DE60044373D1 (es) |
DK (3) | DK2264430T3 (es) |
ES (2) | ES2342922T3 (es) |
GB (1) | GB2372466A (es) |
HK (1) | HK1143860A1 (es) |
HU (1) | HUP0300587A2 (es) |
IL (1) | IL149936A0 (es) |
MX (1) | MXPA02005488A (es) |
NO (1) | NO20022536L (es) |
NZ (1) | NZ519275A (es) |
PL (1) | PL355812A1 (es) |
RU (1) | RU2002117447A (es) |
TW (1) | TW538243B (es) |
UY (1) | UY26469A1 (es) |
WO (1) | WO2001040765A2 (es) |
Families Citing this family (102)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6861265B1 (en) * | 1994-10-14 | 2005-03-01 | University Of Washington | Flow cytometer droplet formation system |
JP4323571B2 (ja) * | 1997-01-31 | 2009-09-02 | エックスワイ, インコーポレイテッド | 光学装置 |
US6149867A (en) | 1997-12-31 | 2000-11-21 | Xy, Inc. | Sheath fluids and collection systems for sex-specific cytometer sorting of sperm |
BR9912539A (pt) | 1998-07-30 | 2001-05-02 | Xy Inc | Sistema equino para inseminação artificial não-cirúrgica |
US7208265B1 (en) | 1999-11-24 | 2007-04-24 | Xy, Inc. | Method of cryopreserving selected sperm cells |
US6263745B1 (en) | 1999-12-03 | 2001-07-24 | Xy, Inc. | Flow cytometer nozzle and flow cytometer sample handling methods |
EP2258172B1 (en) * | 2000-05-09 | 2017-04-19 | Xy, Llc | Flow cytometer for diffentiating x-chromosome bearing and y-chromosome bearing populations of spermatozoa |
HUP0303158A2 (hu) * | 2000-06-12 | 2003-12-29 | Colorado State University | Izolált X-, illetve Y-kromoszómákat hordozó spermium-populációk alkalmazásán alapuló integrált állattenyésztési rendszer |
US20020118402A1 (en) * | 2000-09-19 | 2002-08-29 | Shaw Timothy C. | Film bridge for digital film scanning system |
US7713687B2 (en) | 2000-11-29 | 2010-05-11 | Xy, Inc. | System to separate frozen-thawed spermatozoa into x-chromosome bearing and y-chromosome bearing populations |
CA2822983C (en) | 2000-11-29 | 2017-05-09 | Xy, Llc | System to separate frozen-thawed spermatozoa into x-chromosome bearing and y-chromosome bearing populations |
ES2405320T3 (es) * | 2001-05-17 | 2013-05-30 | Beckman Coulter, Inc. | Citómetro de flujo con un sistema de alienación óptica automatizado activo |
US7475853B2 (en) * | 2002-06-21 | 2009-01-13 | Darko Segota | Method and system for regulating external fluid flow over an object's surface, and particularly a wing and diffuser |
US20050098685A1 (en) * | 2002-06-21 | 2005-05-12 | Darko Segota | Method and system for regulating pressure and optimizing fluid flow about a fuselage similar body |
US7048505B2 (en) * | 2002-06-21 | 2006-05-23 | Darko Segota | Method and system for regulating fluid flow over an airfoil or a hydrofoil |
US7296411B2 (en) * | 2002-06-21 | 2007-11-20 | Darko Segota | Method and system for regulating internal fluid flow within an enclosed or semi-enclosed environment |
US8486618B2 (en) | 2002-08-01 | 2013-07-16 | Xy, Llc | Heterogeneous inseminate system |
JP4595067B2 (ja) | 2002-08-01 | 2010-12-08 | エックスワイ,エルエルシー | 低圧精子細胞分離システム |
CN100570360C (zh) * | 2002-08-15 | 2009-12-16 | Xy公司 | 一种流式细胞仪及流式细胞计数方法 |
US7169548B2 (en) | 2002-09-13 | 2007-01-30 | Xy, Inc. | Sperm cell processing and preservation systems |
US7201875B2 (en) * | 2002-09-27 | 2007-04-10 | Becton Dickinson And Company | Fixed mounted sorting cuvette with user replaceable nozzle |
WO2004074814A2 (en) * | 2003-02-18 | 2004-09-02 | Board Of Regents - The University Of Texas System | Dielectric particle focusing |
BRPI0408852A (pt) * | 2003-03-28 | 2006-04-04 | Monsanto Technology Llc | processo para a coloração de espermatozóide |
AU2012200711B2 (en) * | 2003-03-28 | 2012-09-20 | Inguran, Llc | "Method and apparatus for orientating sperm in a fluid stream" |
DK2305171T3 (da) | 2003-03-28 | 2022-03-21 | Inguran Llc | Apparat og fremgangsmåder til tilvejebringelse af kønssorteret dyresæd |
ES2541121T3 (es) | 2003-05-15 | 2015-07-16 | Xy, Llc | Clasificación eficiente de células haploides por sistemas de citometría de flujo |
NZ530972A (en) * | 2004-02-05 | 2005-04-29 | Embrionics Ltd | A method and apparatus for orientating and selecting cells |
AU2005228046B2 (en) * | 2004-03-29 | 2011-01-20 | Inguran, Llc | Use of a composition which regulates regulates oxidation/reduction reactions intracellularly and/or extracellularly in a staining or sorting process of spermatozoa |
US7892725B2 (en) * | 2004-03-29 | 2011-02-22 | Inguran, Llc | Process for storing a sperm dispersion |
DE102005052752A1 (de) * | 2005-11-04 | 2007-05-10 | Clondiag Chip Technologies Gmbh | Vorrichtung und Verfahren zum Nachweis von molekularen Wechselwirkungen |
AU2005266930B2 (en) | 2004-07-22 | 2010-09-16 | Inguran, Llc | Process for enriching a population of sperm cells |
US7340957B2 (en) | 2004-07-29 | 2008-03-11 | Los Alamos National Security, Llc | Ultrasonic analyte concentration and application in flow cytometry |
US7355696B2 (en) | 2005-02-01 | 2008-04-08 | Arryx, Inc | Method and apparatus for sorting cells |
FR2883973B1 (fr) * | 2005-03-31 | 2007-11-16 | C2 Diagnostics Sa | Cuve pour dispositif optique d'analyse sanguine, appareil d'analyse equipe d'une telle cuve |
US20070025879A1 (en) * | 2005-07-27 | 2007-02-01 | Dakocytomation Denmark A/S | Method and apparatus for syringe-based sample introduction within a flow cytometer |
US7618770B2 (en) * | 2005-07-29 | 2009-11-17 | Xy, Inc. | Methods and apparatus for reducing protein content in sperm cell extenders |
US7835000B2 (en) | 2006-11-03 | 2010-11-16 | Los Alamos National Security, Llc | System and method for measuring particles in a sample stream of a flow cytometer or the like |
EP2156178B1 (en) | 2007-04-02 | 2011-12-21 | Acoustic Cytometry Systems, Inc. | Methods for enhanced analysis of acoustic field focused cells and particles |
US8083068B2 (en) | 2007-04-09 | 2011-12-27 | Los Alamos National Security, Llc | Apparatus for separating particles utilizing engineered acoustic contrast capture particles |
US7837040B2 (en) * | 2007-04-09 | 2010-11-23 | Los Alamos National Security, Llc | Acoustic concentration of particles in fluid flow |
US8263407B2 (en) | 2007-10-24 | 2012-09-11 | Los Alamos National Security, Llc | Method for non-contact particle manipulation and control of particle spacing along an axis |
US8528406B2 (en) | 2007-10-24 | 2013-09-10 | Los Alamos National Security, LLP | Method for non-contact particle manipulation and control of particle spacing along an axis |
AU2008338530A1 (en) | 2007-12-14 | 2009-06-25 | Minitube Of America, Inc. | Gender-specific separation of sperm cells and embryos |
US8266951B2 (en) | 2007-12-19 | 2012-09-18 | Los Alamos National Security, Llc | Particle analysis in an acoustic cytometer |
US8714014B2 (en) | 2008-01-16 | 2014-05-06 | Life Technologies Corporation | System and method for acoustic focusing hardware and implementations |
JP4661942B2 (ja) * | 2008-05-13 | 2011-03-30 | ソニー株式会社 | マイクロチップとその流路構造 |
US20110076712A1 (en) * | 2008-06-13 | 2011-03-31 | Xy, Llc. | Lubricious microfludic flow path system |
US20100009333A1 (en) * | 2008-07-08 | 2010-01-14 | Beckman Coulter, Inc. | Methods for Acoustic Particle Focusing in Biological Sample Analyzers |
DE102008064667B4 (de) * | 2008-07-15 | 2011-06-09 | Lzh Laserzentrum Hannover E.V. | Verfahren zur Herstellung eines Detektionskonjugats |
JP5487638B2 (ja) | 2009-02-17 | 2014-05-07 | ソニー株式会社 | 微小粒子分取のための装置及びマイクロチップ |
EP2507639B1 (en) * | 2009-12-04 | 2020-04-01 | Life Technologies Corporation | Apparatuses, systems, methods, and computer readable media for acoustic flow cytometry |
US20110236923A1 (en) * | 2010-03-23 | 2011-09-29 | Genetics & Ivf Institute | Method for staining and sorting of a small volume of sperm |
US20130011825A1 (en) | 2010-04-01 | 2013-01-10 | Inguran, Llc | Methods and systems for reducing dna fragmentation in a processed sperm sample |
US8705031B2 (en) | 2011-02-04 | 2014-04-22 | Cytonome/St, Llc | Particle sorting apparatus and method |
DE102011006080B4 (de) | 2011-03-24 | 2015-06-18 | Masterrind Gmbh | Vorrichtung und Verfahren zur Fraktionierung von Säugerspermatozoen |
DE102011006081A1 (de) | 2011-03-24 | 2012-09-27 | Masterrind Gmbh | Düse zur Ausrichtung eines Flüssigkeitsteilstroms |
DE102011075711A1 (de) | 2011-05-12 | 2012-11-15 | Masterrind Gmbh | Düse zur Partikelausrichtung im Flüssigkeitsstrom |
US8502976B2 (en) | 2011-05-12 | 2013-08-06 | Inguran, Llc | UV diode laser excitation in flow cytometry |
JP2013024629A (ja) * | 2011-07-19 | 2013-02-04 | Sysmex Corp | フローサイトメータ |
CN103013811A (zh) * | 2011-09-20 | 2013-04-03 | 北京富通华投资有限公司 | 精子分选仪 |
US9433195B2 (en) | 2012-06-06 | 2016-09-06 | Inguran, Llc | Methods for increasing genetic progress in a line or breed of swine using sex-selected sperm cells |
US9888990B2 (en) | 2012-06-06 | 2018-02-13 | Inguran, Llc | Methods for use of sex sorted semen to improve genetic management in swine |
CN102795668B (zh) * | 2012-09-12 | 2014-07-09 | 西南大学 | 一种vo2的制备方法 |
WO2014047206A1 (en) * | 2012-09-18 | 2014-03-27 | Cytonome/St, Llc | Flow cell for particle sorting |
ES2928128T3 (es) * | 2012-09-19 | 2022-11-15 | Inguran Llc | Sistema de citómetro de flujo con punta de boquilla achaflanada |
CN104662421B (zh) * | 2012-09-19 | 2018-01-02 | 英格朗公司 | 用于流式细胞仪的喷嘴组件和制造方法 |
US11668640B2 (en) | 2015-03-06 | 2023-06-06 | Inguran, Llc | Nozzle assembly for a flow cytometry system and methods of manufacture |
US10620213B2 (en) | 2012-10-05 | 2020-04-14 | Inguran, Llc | High pressure sperm sorting and flow cytometer methods |
WO2014055112A1 (en) | 2012-10-05 | 2014-04-10 | Inguran, Llc | High efficiency methods of sex sorting sperm |
DE202012105015U1 (de) | 2012-12-21 | 2013-03-05 | Laser Zentrum Hannover E.V. | Einrichtung mit einem inneren und einem äußeren Funktionselement |
JP2014174139A (ja) * | 2013-03-13 | 2014-09-22 | Sony Corp | 流路デバイス、粒子分取装置、粒子流出方法、及び粒子分取方法 |
US9757726B2 (en) | 2013-03-14 | 2017-09-12 | Inguran, Llc | System for high throughput sperm sorting |
US10662408B2 (en) | 2013-03-14 | 2020-05-26 | Inguran, Llc | Methods for high throughput sperm sorting |
AU2013202635B2 (en) * | 2013-03-14 | 2015-10-29 | Inguran, Llc | Apparatus and methods for high throughput sperm sorting |
US10371622B2 (en) | 2013-03-14 | 2019-08-06 | Inguran, Llc | Device for high throughput sperm sorting |
DE102013208584A1 (de) | 2013-05-08 | 2014-11-13 | Masterrind Gmbh | Düse und Verfahren für die Durchflusszytometrie |
US10870175B2 (en) * | 2013-09-18 | 2020-12-22 | Cytonome/St, Llc | Microfluidic flow-through elements and methods of manufacture of same |
CN103555662B (zh) * | 2013-10-31 | 2015-09-16 | 大连金弘基种畜有限公司 | 将四溴化1,1,2,2-四-[4-(2-三乙基乙氧基胺基)]苯乙烯应用于精子分离 |
JP2015222202A (ja) * | 2014-05-22 | 2015-12-10 | ソニー株式会社 | 粒子分析装置 |
CA2905670A1 (en) | 2014-09-26 | 2016-03-26 | Inguran, Llc | Sex sorted sperm demonstrating a dose response and methods of producing sex sorted sperm demonstrating a dose response |
EP3227661A4 (en) | 2014-12-05 | 2019-01-09 | Inguran, LLC | TREATMENT OF CELLS USING MAGNETIC PARTICLES |
US20180058987A1 (en) * | 2015-03-23 | 2018-03-01 | New York University | Systems and methods for selecting cellular strains |
US11839876B2 (en) | 2016-05-24 | 2023-12-12 | Cellix Limited | Apparatus for microfluidic flow cytometry analysis of a particulate containing fluid |
USD869676S1 (en) | 2017-03-28 | 2019-12-10 | Becton, Dickinson And Company | Particle sorting module |
USD868991S1 (en) | 2017-03-28 | 2019-12-03 | Becton, Dickinson And Company | Register block |
FR3068469B1 (fr) * | 2017-06-28 | 2020-09-11 | Diagdev | Cuve de mesure pour le denombrement et/ou la caracterisation de cellules |
AR112611A1 (es) | 2017-07-19 | 2019-11-20 | Inguran Llc | Método y sistema que incorporan ópticas de conformación de haz y estabilización de haz |
USD876668S1 (en) | 2018-01-30 | 2020-02-25 | Becton, Dickinson And Company | Particle sorting module mount |
USD872296S1 (en) | 2018-01-30 | 2020-01-07 | Becton, Dickinson And Company | Particle sorting module |
USD864415S1 (en) | 2018-01-30 | 2019-10-22 | Becton, Dickinson And Company | Particle sorting system |
USD882817S1 (en) | 2018-01-30 | 2020-04-28 | Becton, Dickinson And Company | Sample container |
CA3096539A1 (en) | 2018-04-09 | 2019-10-17 | Inguran, Llc | Methods and compositions for determining the presence or absence of dna aberrations |
CA3098299A1 (en) * | 2018-04-25 | 2020-01-16 | Engender Technologies Ltd. | Systems, devices and methods associated with microfluidic systems |
WO2020191064A1 (en) | 2019-03-19 | 2020-09-24 | Inguran, Llc | Method for improved sperm cell populations |
WO2020206439A1 (en) * | 2019-04-05 | 2020-10-08 | Nanocytomics, LLC | Consumable components in fluidic sample dispensing systems and methods |
US20210033521A1 (en) * | 2019-07-30 | 2021-02-04 | Diatron MI PLC | Flow cytometer and method of analysis |
CN111521549B (zh) * | 2020-05-13 | 2021-01-01 | 洹仪科技(上海)有限公司 | 一种颗粒分选装置及方法 |
US20230236173A1 (en) | 2020-06-22 | 2023-07-27 | Westfaelische Wilhelms-Universitaet Muenster | Sperm stratification |
WO2022204600A1 (en) | 2021-03-26 | 2022-09-29 | Cytonome/St, Llc | Systems and methods for particle sorting with automated adjustment of operational parameters |
US20230311134A1 (en) * | 2022-03-29 | 2023-10-05 | A. Raymond Et Cie | Blended jet spray nozzle |
WO2023186905A1 (en) | 2022-03-29 | 2023-10-05 | LAVA Therapeutics N.V. | A method of treating a hematological cancer following screening for cd1d positive tumor cells |
WO2024195948A1 (ko) * | 2023-03-22 | 2024-09-26 | 엠비디 주식회사 | 바이오 시료용 고속분주스폿터 및 고속분주스폿터의 세포 분주 방법 |
Family Cites Families (33)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3661460A (en) * | 1970-08-28 | 1972-05-09 | Technicon Instr | Method and apparatus for optical analysis of the contents of a sheathed stream |
US3893766A (en) * | 1973-06-14 | 1975-07-08 | Coulter Electronics | Apparatus for orienting generally flat particles for slit-scan photometry |
JPS5157484A (en) * | 1974-09-20 | 1976-05-19 | Coulter Electronics | Ryushihokozukesochi |
US4362246A (en) | 1980-07-14 | 1982-12-07 | Adair Edwin Lloyd | Method of treating collected mammal semen and separating sperm into X Y components |
US4660971A (en) | 1984-05-03 | 1987-04-28 | Becton, Dickinson And Company | Optical features of flow cytometry apparatus |
NO156916C (no) * | 1985-07-10 | 1987-12-16 | Harald B Steen | Stroemningskammer for vaeskestroemsfotometer. |
US5346990A (en) | 1987-04-08 | 1994-09-13 | Cytogam, Inc. | Sex-associated membrane proteins and methods for increasing the probability that offspring will be of a desired sex |
JPS63262565A (ja) * | 1987-04-20 | 1988-10-28 | Hitachi Ltd | フロ−セル |
US4988619A (en) | 1987-11-30 | 1991-01-29 | United States Department Of Energy | Flow cytometry apparatus |
JPH0618275Y2 (ja) * | 1989-03-09 | 1994-05-11 | 東亜医用電子株式会社 | フローセル |
JP2552582B2 (ja) | 1989-05-10 | 1996-11-13 | アメリカ合衆国 | 子の性の前選択の方法 |
JP2808321B2 (ja) * | 1989-09-19 | 1998-10-08 | 東亜医用電子株式会社 | 細胞分析方法及び装置 |
JPH0692931B2 (ja) * | 1991-03-26 | 1994-11-16 | 工業技術院長 | 液体中繊維状粒子分析計 |
JP3075370B2 (ja) * | 1991-07-26 | 2000-08-14 | シスメックス株式会社 | 粒子分析用のサンプル扁平流形成装置 |
JP3117751B2 (ja) * | 1991-07-26 | 2000-12-18 | シスメックス株式会社 | 粒子分析用のサンプル扁平流形成装置 |
US5466572A (en) | 1992-09-03 | 1995-11-14 | Systemix, Inc. | High speed flow cytometric separation of viable cells |
US5311290A (en) * | 1992-09-30 | 1994-05-10 | Pulp And Paper Research Institute Of Canada | Imaging apparatus and method of fiber analysis |
US5371585A (en) | 1992-11-10 | 1994-12-06 | Pacific Scientific Company | Particle detecting instrument with sapphire detecting cell defining a rectangular flow path |
JP3052665B2 (ja) | 1993-01-26 | 2000-06-19 | 株式会社日立製作所 | フローセル装置 |
JP3376662B2 (ja) * | 1993-01-26 | 2003-02-10 | 株式会社日立製作所 | フローセル装置 |
US5483469A (en) | 1993-08-02 | 1996-01-09 | The Regents Of The University Of California | Multiple sort flow cytometer |
US5601234A (en) * | 1994-08-01 | 1997-02-11 | Abbott Laboratories | Fluid nozzle and method of introducing a fluid |
US5700692A (en) | 1994-09-27 | 1997-12-23 | Becton Dickinson And Company | Flow sorter with video-regulated droplet spacing |
US5602349A (en) | 1994-10-14 | 1997-02-11 | The University Of Washington | Sample introduction system for a flow cytometer |
US5602039A (en) | 1994-10-14 | 1997-02-11 | The University Of Washington | Flow cytometer jet monitor system |
EP0786078B1 (en) | 1994-10-14 | 2004-01-07 | University of Washington | System and method for high speed flow cytometer droplet formation |
DE755576T1 (de) | 1994-10-18 | 2003-01-09 | California Institute Of Technology, Pasadena | Organische brennstoffzelle, verfahren zum betrieb der zelle und herstellung einer elektrode dafür |
GB9707096D0 (en) * | 1997-04-08 | 1997-05-28 | Smithkline Beecham Plc | Novel device |
US5985216A (en) | 1997-07-24 | 1999-11-16 | The United States Of America, As Represented By The Secretary Of Agriculture | Flow cytometry nozzle for high efficiency cell sorting |
US6149867A (en) | 1997-12-31 | 2000-11-21 | Xy, Inc. | Sheath fluids and collection systems for sex-specific cytometer sorting of sperm |
FR2777351B1 (fr) * | 1998-04-08 | 2000-06-23 | Hycel Diagnostics | Procede et dispositif de mesure de particules en suspension dans un liquide |
US6263745B1 (en) | 1999-12-03 | 2001-07-24 | Xy, Inc. | Flow cytometer nozzle and flow cytometer sample handling methods |
US9815403B2 (en) | 2016-01-13 | 2017-11-14 | Si-En Technology (Xiamen) Limited | LED driver chip for car reading light and state control method thereof |
-
1999
- 1999-12-03 US US09/454,488 patent/US6263745B1/en not_active Expired - Lifetime
-
2000
- 2000-11-29 EP EP10182264.1A patent/EP2264430B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-11-29 AU AU32728/01A patent/AU783000B2/en not_active Expired
- 2000-11-29 EP EP10001278.0A patent/EP2180307B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-11-29 PL PL00355812A patent/PL355812A1/xx unknown
- 2000-11-29 WO PCT/US2000/042350 patent/WO2001040765A2/en not_active Application Discontinuation
- 2000-11-29 DK DK10182264.1T patent/DK2264430T3/en active
- 2000-11-29 DK DK10001278.0T patent/DK2180307T3/en active
- 2000-11-29 MX MXPA02005488A patent/MXPA02005488A/es active IP Right Grant
- 2000-11-29 KR KR1020027007131A patent/KR20020063584A/ko not_active Application Discontinuation
- 2000-11-29 RU RU2002117447/28A patent/RU2002117447A/ru not_active Application Discontinuation
- 2000-11-29 CA CA2739572A patent/CA2739572C/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-11-29 CN CN00816624A patent/CN1402831A/zh active Pending
- 2000-11-29 KR KR1020077011095A patent/KR100909862B1/ko not_active IP Right Cessation
- 2000-11-29 IL IL14993600A patent/IL149936A0/xx unknown
- 2000-11-29 HU HU0300587A patent/HUP0300587A2/hu unknown
- 2000-11-29 GB GB0213051A patent/GB2372466A/en not_active Withdrawn
- 2000-11-29 DK DK00991511.7T patent/DK1238261T3/da active
- 2000-11-29 JP JP2001542181A patent/JP5019497B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 2000-11-29 EP EP00991511A patent/EP1238261B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-11-29 DE DE60044373T patent/DE60044373D1/de not_active Expired - Lifetime
- 2000-11-29 ES ES00991511T patent/ES2342922T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2000-11-29 CA CA2822851A patent/CA2822851C/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-11-29 ES ES10001278.0T patent/ES2445520T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2000-11-29 KR KR1020077011096A patent/KR20070058711A/ko not_active Application Discontinuation
- 2000-11-29 AT AT00991511T patent/ATE467113T1/de active
- 2000-11-29 CA CA2393121A patent/CA2393121C/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-11-29 NZ NZ519275A patent/NZ519275A/en not_active IP Right Cessation
- 2000-11-29 BR BRPI0016121A patent/BRPI0016121B1/pt active IP Right Grant
- 2000-11-30 TW TW089125453A patent/TW538243B/zh not_active IP Right Cessation
- 2000-12-01 AR ARP000106346A patent/AR026683A1/es active IP Right Grant
- 2000-12-04 UY UY26469A patent/UY26469A1/es not_active IP Right Cessation
-
2001
- 2001-07-20 US US09/909,483 patent/US6357307B2/en not_active Expired - Lifetime
-
2002
- 2002-03-13 US US10/098,036 patent/US6604435B2/en not_active Expired - Lifetime
- 2002-05-28 NO NO20022536A patent/NO20022536L/no not_active Application Discontinuation
- 2002-09-02 AR ARP020103317A patent/AR036412A2/es active IP Right Grant
-
2003
- 2003-08-12 US US10/640,337 patent/US6782768B2/en not_active Expired - Lifetime
-
2006
- 2006-05-29 AR ARP060102227A patent/AR053879A2/es active IP Right Grant
- 2006-05-29 AR ARP060102226A patent/AR053878A2/es active IP Right Grant
-
2010
- 2010-10-25 HK HK10110051.3A patent/HK1143860A1/xx not_active IP Right Cessation
-
2011
- 2011-12-05 JP JP2011265651A patent/JP5762939B2/ja not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
ES2342922T3 (es) | Procedimiento de manipulacion de muestras de un citometro de flujo. | |
US12084678B2 (en) | Methods for high throughput sperm sorting | |
US11299698B2 (en) | Delivery of materials to anucleate cells | |
WO1999005504A2 (en) | Flow cytometry nozzle for high efficiency cell sorting | |
BR112015023155B1 (pt) | Dispositivo e métodos de triagem de elevado rendimento de espermatozóides | |
ES2733531T3 (es) | Procedimientos de tratamiento del esperma para la clasificación del sexo | |
JP3075370B2 (ja) | 粒子分析用のサンプル扁平流形成装置 | |
BRPI0017624B1 (pt) | método de processamento de amostra para citômetro de fluxo | |
JP2018138027A (ja) | 高スループット精子選別用の装置及び方法 | |
RU2727679C2 (ru) | Установка и способы для высокопроизводительной сортировки спермы | |
Kachel | Rens et al.[45] Date of Patent: Nov. 16, 1999 | |
Su et al. | Scuticociliatosis (Philasterides dicentrarchi) in central nervous system of zebra shark (Stegostoma fasciatum) |