ES2277468B1

ES2277468B1 - Peptidos bioactivos y derivados, procedimiento de produccion, cepas de enterococcus faecalis productoras de dichos peptidos bioactivos y sus aplicaciones.

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Publication number: ES2277468B1
Application number: ES200301186A
Authority: ES
Inventors: Begoña Muguerza Marquinez; Marco Antonio Delgado Delgado; Ana Quiros Del Bosque; Isidra Recio Sanchez; Mercedes Ramos Gonzalez; Maria Amaya Aleixandre De Artiñano
Original assignee: GRUPO LECHE PASCUAL
Current assignee: CALIDAD PASCUAL, S.A.U.
Priority date: 2003-05-21
Filing date: 2003-05-21
Publication date: 2008-07-01
Anticipated expiration: 2023-05-21
Also published as: ES2277571A1; ES2277571B1; ES2277468A1; WO2004104182A1; EP1640447A1

Abstract

Péptidos bioactivos y derivados, procedimiento de producción, cepas de enterococcus faecalis productoras de dichos péptidos bioactivos y sus aplicaciones. Se describen unos péptidos bioactivos, en particular, péptidos con actividad inhibidora de la enzima convertidora de la angiotensina y/o con actividad antihipertensiva in vivo, los cuales pueden obtenerse por fermentación de un sustrato que comprende una o más proteínas, péptidos o fragmentos de los mismos que contienen la secuencia de aminoácidos de dichos péptidos bioactivos con la bacteria Enterococcus faecalis. Dicha bacteria y dichos péptidos bioactivos pueden ser utilizados en la industria farmacéutica y alimentaria, en la elaboración de composiciones farmacéuticas, productos alimentarios, productos alimentarios funcionales y suplementos alimentarios.

Description

Péptidos bioactivos y derivados, procedimiento de producción, cepas de Enterococcus faecalis productoras de dichos péptidos bioactivos y sus aplicaciones.

Campo de la invención

La invención se relaciona con la bacteria Enterococcus faecalis que tiene la capacidad de producir péptidos bioactivos, en particular, péptidos que muestran actividad Inhibidora de la Enzima Convertidora de la Angiotensina (actividad IECA) in vitro y/o actividad antihipertensiva, y a su empleo en la industria farmacéutica y alimentaria. La invención también se refiere a dichos péptidos bioactivos y a su empleo en la industria farmacéutica y alimentaria.

Antecedentes de la invención

La hipertensión arterial es un problema de gran importancia socio-sanitaria, cuya transcendencia está hoy día fuera de toda duda debido a razones de prevalencia, y debido también a que es uno de los principales factores de riesgo de enfermedades cardiovasculares. Hoy día entre el 15% y el 20% de los adultos de los países occidentales la padecen, y numerosos estudios han demostrado la estrecha relación entre la hipertensión arterial no tratada y la aparición de hipertrofia ventricular, insuficiencia cardíaca congestiva, accidentes cerebrovasculares, retinopatía, insuficiencia renal progresiva, aneurismas disecantes, enfermedad coronaria y enfermedades vasculares periféricas, por lo que su prevención y tratamiento constituye una de las estrategias más utilizadas para reducir el riesgo de enfermedades cardiovasculares (MacMahon S, Peto R, Cutler J y col. 1990. Lancet 335: 765-774). Todas estas enfermedades son también frecuentes en el mundo occidental. Estudios clásicos de epidemiología evidencian que la morbilidad cardiovascular aumenta significativamente a partir de unos determinados valores de presión arterial pero, además, las enfermedades cardiovasculares y cerebrovasculares son las principales causas de muerte en las sociedades industrializadas.

Por otra parte, aunque la detección y control de la hipertensión arterial es relativamente sencilla, la realidad es que muchos pacientes hipertensos no tienen conocimiento de su enfermedad, ya que no presentan ningún tipo de síntomas, y otros están diagnosticados pero reciben un tratamiento inadecuado. Es por todo ello obvio el interés que siguen teniendo los estudios que intentan establecer nuevas estrategias para el control de la hipertensión arterial.

Se han desarrollado muchas hipótesis para explicar la elevación de los niveles de presión arterial que presentan los pacientes hipertensos. Sin embargo, la etiopatogenia de la hipertensión arterial sigue sin esclarecerse definitivamente. Son múltiples los mecanismos por los que se puede producir una elevación de la presión arterial, y a menudo estos mecanismos interactúan. En cualquier caso, el sistema renina-angiotensina-aldosterona juega un papel importante en el mantenimiento de la tensión arterial y en el daño orgánico secundario a la elevación de esta variable, y su implicación en la modulación del tono arterial de algunos pacientes hipertensos puede ser importante. Uno de los componentes principales de este sistema es la Enzima Convertidora de la Angiotensina (ECA) [EC 3.4.15.1] (Ondetti MA, Rubin B, Cushman DW. 1977. Science 196: 441-444), que cataliza la conversión de angiotensina I, un decapéptido inactivo, en angiotensina II, un octapéptido con una potente actividad vasoconstrictora (Skeegs Lt, Kahn JE, Shumway NP. 1956. J Exp Med 103: 295-299). Además, la ECA cataliza la inactivación de la bradikinina, molécula que posee actividad vasodilatadora.

Por tanto, la ECA desempeña un papel muy importante en la regulación de la tensión arterial en el organismo, y su inhibición puede facilitar una vasodilatación y el control de la hipertensión arterial. De hecho, existe un grupo de fármacos inhibidores de la ECA, que se utilizan ampliamente como antihipertensivos. Entre ellos se incluyen Captopril, Enalapril y Lisinopril. La acción antihipertensiva de estos compuestos se potencia cuando se asocian con diuréticos. Aunque relativamente poco frecuentes, los efectos indeseables de los fármacos inhibidores de la ECA, pueden resultar un inconveniente para el tratamiento de algunos pacientes.

Por otro lado, las proteínas de la leche, además de su alto valor nutricional, pueden ser origen de péptidos bioactivos, es decir, péptidos capaces de modular actividades fisiológicas de importancia para la salud y bienestar de los consumidores. Estos péptidos o fragmentos proteicos son inactivos cuando se encuentran en el interior de la proteína nativa pero muestran su actividad biológica cuando son liberados por hidrólisis química o enzimática.

Existen diversos mecanismos para originar cortes en las proteínas lácteas con la consiguiente aparición de péptidos. Estos mecanismos pueden actuar de manera complementaria. Se pueden generar por hidrólisis producida por el propio procesado del producto (aumentos de temperatura, cambios de pH...), por el empleo de enzimas hidrolíticas comerciales o por el uso de microorganismos proteolíticos vivos, capaces de liberar péptidos bioactivos durante el propio proceso de fermentación de la leche, derivados lácteos o cualquier sustrato proteico.

Las investigaciones realizadas hasta este momento confirman diversas actividades biológicas encontradas en péptidos derivados de proteínas lácteas y sus aplicaciones potenciales (Kayser H, Meisel H. 1996. FEBS Letters 383: 18-20; Tome D, Debabbi H. 1998. Int Dairy J 8: 383-392; Gaucheron F, Mollé D, Briard V, Léonil J. 1999. Int Dairy J 9: 515-521; Cross ML, Gill HS. 2000. Br J Nutr 84: 81S-89S; Shah NP. 2000. Br J Nutr 84: 3S-10S). Ente las actividades biológicas descritas para estos péptidos destacan: actividad antihipertensiva, actividad opiácea, efecto inmunomodulador, actividad antimicrobiana, actividad antitrombótica y capacidad para unir minerales. Los péptidos con actividad antihipertensiva se han obtenido a partir de hidrolizados enzimáticos de distintas proteínas alimentarias de origen animal y vegetal, pero las proteínas lácteas, tanto caseínas como proteínas de suero, constituyen la principal fuente de péptidos con actividad antihipertensiva (Yamamoto N. 1997. Biopolymers 43: 129-134).

Dentro de las investigaciones sobre péptidos funcionales con actividad Inhibidora de la ECA (actividad IECA) y/o con actividad antihipertensiva, destacan los trabajos del grupo de Yamamoto y colaboradores (Nakamura Y, Yamamoto N, Sakai K y col. 1995. J Dairy Sci 78: 777-783; Nakamura Y, Yamamoto N, Sakai K y col. 1995. J Dairy Sci 78: 1253-1257). Estos investigadores estudiaron el efecto que sobre la presión arterial ejercía una leche fermentada por distintas cepas de Lactobacillus helveticus y Saccharomyces cerevisiae. Identificaron varios péptidos procedentes de la leche fermentada que mostraban actividad IECA in vitro, y observaron que después del proceso de fermentación, la leche fermentada disminuía la presión arterial de las ratas espontáneamente hipertensas (SHR). Por el contrario, la leche fermentada no modificaba la presión de las ratas Wistar-Kyoto (WKY), que son el control normotenso de las ratas SHR. Más adelante, dichos investigadores demostraron que la leche fermentada presentaba efectos antihipertensivos en humanos (Hata Y, Yamamoto N, Ohni M, Y y col. 1996. Am J Clin Nutr 64: 767-771).

Recientemente se ha descrito el efecto de una leche fermentada por Lactobacillus helveticus que disminuye la presión arterial en ratas SHR (Sipola M, Finckenberg P, Korpela R; Vapaatalo H, Nurminen Ml. 2002. J Dairy Res 69: 103-111) y en humanos hipertensos (Seppo LM, Kerojoki O, Suomalainen H, Korpela R. 2002. Milchwissenschaft 57: 124-127; Seppo LM, Jauhiainen T, Poussa T, Korpela R. 2003. Am J Clin Nutr 77: 326-330). Los resultados de estas investigaciones se han traducido en la comercialización de algunas leches fermentadas y productos lácteos fermentados tipo yogur que contienen péptidos antihipertensivos (Calpis®, Calpis Food Industry Co., Ltd, Tokio, Japón; Evolus®, Valio, Finlandia).

Adicionalmente, se han aislado y caracterizado péptidos con actividad IECA en leches fermentadas con Lactobacillus delbrueckii y Lactococcus lactis (Gobbetti M, Ferranti P, Smacchi E y col. 2000. Appl Environ Microbiol 66: 3898-3904) y también en quesos manchegos (Gómez-Ruiz JA, Ramos M, Recio 1. 2002. Int Dairy J 12: 697-706).

El péptido LHLPLP ha sido descrito como un péptido que presenta actividad IECA cuando dicha actividad se valora in vitro. Sin embargo, no se ha demostrado su actividad antihipertensiva (Kohmura M, Nio N, Kubo K y col. 1989. Agric Biol. Chem 53:2107-2114). En relación con esto, merece la pena destacar que muchos péptidos que in vitro se caracterizan como potentes inhibidores de la ECA, muestran, sin embargo, un efecto muy pequeño, o nulo, sobre esta enzima cuando se ensayan in vivo (Maruyama S, Mitachi H, Awaya J y col. 1987. Agric Biol Chem 51: 2557-2561; Maeno M, Yamamoto N, Takano T. 1996. J Dairy Sci 79: 1316-1321). Puede asimismo suceder el caso contrario; es decir, que péptidos que presentan in vitro poca actividad IECA sean capaces de adquirir in vivo esta actividad gracias a la actuación sobre ellos de las enzimas digestivas (Maeno M, Yamamoto N, Takano T. 1996. J Dairy Sci 79: 1316-1321). Todos estos resultados ponen de relieve la necesidad de probar la eficacia antihipertensiva de los péptidos que muestran actividad IECA in vitro, inicialmente se debe estudiar el efecto de estos péptidos sobre la presión arterial de animales hipertensos, y si procede, se intentará después corroborar su efecto antihipertensivo en humanos (Darragh AJ. 2002. Bull IDF 375:25-31).

Por otra parte, el potencial antihipertensivo de los péptidos administrados por vía oral depende de su capacidad para alcanzar sus lugares de actuación sin ser degradados, y consecuentemente inactivados, por las enzimas del tracto digestivo. Por tanto, la resistencia a dichas enzimas es un prerrequisito para un efecto antihipertensivo in vivo tras la ingestión oral de dichos péptidos.

Compendio de la invención

Aunque se conocen péptidos bioactivos procedentes de diferentes sustratos, y también procedimientos para producir tales péptidos bioactivos basados en la fermentación de un sustrato por determinados microorganismos, debido al creciente interés y demanda de productos alimentarios funcionales que incorporan péptidos bioactivos, resulta oportuna, conveniente, y casi necesaria, la búsqueda de nuevos péptidos bioactivos, así como el desarrollo de procedimientos alternativos para producir dichos péptidos. Ventajosamente, dichos péptidos bioactivos deben ser resistentes a la acción de las enzimas del tracto digestivo o bien precursores de formas activas (que posteriormente puedan ser liberados por acción de las enzimas gastrointestinales) con el fin de que puedan ser administrados por vía oral.

Esta invención proporciona unos péptidos bioactivos, en particular, unos péptidos que muestran actividad IECA in vitro y/o con actividad antihipertensiva cuando se administran mediante sonda intragástrica. Por ello, pueden ser administrados por vía oral y utilizarse en la elaboración de productos alimentarios funcionales y/o en la elaboración de composiciones farmacéuticas para el tratamiento y/o profilaxis de la hipertensión arterial. También se ha encontrado que la bacteria Enterococcus faecalis es capaz de producir dichos péptidos bioactivos por proteolisis de proteínas cuyas secuencias de aminoácidos contienen las secuencias de aminoácidos de dichos péptidos bioactivos.

Por tanto, un aspecto de esta invención se relaciona con la bacteria Enterococcus faecalis que tiene la capacidad de producir péptidos bioactivos, en particular, unos péptidos que muestran actividad TECA in vitro y/o con actividad antihipertensiva. En una realización particular, dicha bacteria es una cepa de E. faecalis depositada en la CECT (Colección Española de Cultivos Tipo) seleccionada entre la cepa identificada como E. faecalis CECT 5727 y la cepa identificada como E. faecalis CECT 5728. Dicha bacteria puede ser utilizada en la producción de péptidos bioactivos útiles en la industria alimentaria y farmacéutica.

En otro aspecto, la invención se relaciona con una preparación bacteriana que contiene E. faecalis CECT 5727 y/o E. faecalis CECT 5728 y, opcionalmente, uno o más microorganismos diferentes. En una realización particular, dicha preparación bacteriana puede encontrarse en forma de polvo liofilizado o en una cápsula.

En otro aspecto, la invención se relaciona con un procedimiento para producir un péptido bioactivo por fermentación de un sustrato que contiene una proteína, péptido o fragmento de los mismos que contiene dicho péptido bioactivo por E. faecalis. En una realización particular, dicho péptido bioactivo es un péptido que muestra actividad IECA in vitro y/o actividad antihipertensiva, seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la, SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados y sus mezclas, y dicha bacteria se selecciona entre E. faecalis CECT 5727, E. faecalis CECT 5728 y sus mezclas.

En otro aspecto, la invención se relaciona con el empleo de E. faecalis CECT 5727 y/o E. faecalis CECT 5728 en la industria alimentaria. En una realización particular, la invención se relaciona con el empleo de dichas cepas en la preparación de un producto alimentario, por ejemplo, un producto lácteo, opcionalmente fermentado y/o sometido a un tratamiento térmico, o una bebida. Los productos alimentarios que comprenden dicha bacteria o preparación bacteriana, o que han sido preparados utilizando dicha bacteria o preparación bacteriana, también constituyen un aspecto adicional de esta invención.

En otro aspecto, la invención se relaciona con el empleo de E. faecalis CECT 5727 y/o E. faecalis CECT 5728 como sustancia terapéutica, en particular, con el empleo de dichas bacterias en el tratamiento y/o la prevención de la hipertensión arterial en todas sus formas en un ser humano o en un animal, así como con su empleo en el tratamiento y/o la prevención de cualquier desorden asociado con la hipertensión arterial en un ser humano o en un animal.

En otro aspecto, la invención se relaciona con el empleo de E. faecalis CECT 5727 y/o E. faecalis CECT 5728 en la obtención de péptidos bioactivos, en particular, en la obtención de péptidos que muestran actividad IECA in vitro y/o actividad antihipertensiva. En una realización particular, dicho péptido bioactivo se selecciona del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables y sus mezclas.

En otro aspecto, la invención se relaciona con el empleo de E. faecalis CECT 5727 y/o E. faecalis CECT 5728 en la preparación de un producto antihipertensivo.

En otro aspecto, la invención se relaciona con un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la, SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados y sus sales farmacéuticamente aceptables.

En otro aspecto, la invención se relaciona con una composición que comprende un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas.

En otro aspecto, la invención se relaciona con una composición farmacéutica que comprende un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas. En una realización particular, dicha composición farmacéutica es una composición farmacéutica antihipertensiva.

En otro aspecto, la invención se relaciona con el empleo de un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas, en la elaboración de un medicamento para el tratamiento y/o la prevención de la hipertensión arterial en todas sus formas en un ser humano o en un animal, así como con su empleo en el tratamiento y/o la prevención de cualquier desorden asociado con la hipertensión arterial en un ser humano o en un animal.

En otro aspecto, la invención se relaciona con la obtención de alimentos funcionales con actividad antihipertensiva, por ejemplo, leches fermentadas, que contienen un péptido antihipertensivo.

En otro aspecto, la invención se relaciona con un producto alimentario funcional que comprende un producto alimentario y un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas.

En otro aspecto, la invención se relaciona con un aditivo alimentario o con un suplemento alimentario que comprende un péptido seleccionado entre los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas.

Finalmente, en otro aspecto, la invención se relaciona con un método para tratar y/o prevenir la hipertensión arterial en todas sus formas, o los desórdenes asociados con la hipertensión arterial, en un sujeto, tal como un ser humano o un animal, que comprende la administración a dicho sujeto de una cantidad efectiva de una composición farmacéutica antihipertensiva proporcionada por esta invención.

Otras características de la invención serán desarrolladas posteriormente en la descripción de la invención que se detallará más adelante.

Breve descripción de las figuras

La Figura 1 es una gráfica que representa el porcentaje de inhibición de la ECA que se obtiene según el volumen añadido de sobrenadante o suero de leche fermentada con E. faecalis CECT 5727 (\bullet) o con E. faecalis CECT 5728 (\blacktriangle).

La Figura 2A es una gráfica que muestra la evolución de la hidrólisis, medida por el método OPA y expresada como mg peptona/mL (o), y la actividad de la dilución de suero que produce un 50% de inhibición de la actividad de la enzima expresada en unidades de inhibición por volumen (UI/mL), (\bullet), según el tiempo de fermentación para la leche fermentada por E. faecalis CECT 5727.

La Figura 2B es una gráfica que muestra la evolución de la hidrólisis, medida por el método OPA y expresada como mg peptona/mL (\Delta), y la actividad de la dilución de suero que produce un 50% de inhibición de la actividad de la enzima expresada en unidades de inhibición por volumen (UI/mL), (\blacktriangle), según el tiempo de fermentación para la leche fermentada por E. faecalis CECT 5728.

La Figura 3 es un cromatograma de HPLC en fase reversa a escala semipreparativa del sobrenadante activo que se obtiene tras la centrifugación y ultrafiltración, a través de un membrana de 3.000 Da de tamaño de poro, de productos lácteos fermentados por E. faecalis CECT 5727 o por E. faecalis CECT 5728. Los péptidos con actividad IECA eluyen con tiempos de retención superiores a 47 minutos.

La Figura 4 es un cromatograma de HPLC en fase reversa a escala semipreparativa de la fracción activa que se obtiene de la primera separación mediante HPLC. Los péptidos con actividad IECA se recogieron en 7 fracciones que eluyen entre el minuto 12 y el minuto 42.

La Figura 5A es una gráfica que muestra la disminución de la presión arterial sistólica (PAS) obtenida en ratas espontáneamente hipertensas a las que se administra 1 mL de agua (X), 5 mL/kg de suero de leche fermentada con E. faecalis CECT 5727 (\bullet), 5 mL/kg de suero de leche fermentada con E. faecalis CECT 5728 (\blacktriangle) ó 50 mg/kg de Captopril (-), en función del tiempo pasado tras la administración. Los datos representan la media \pm ESM para un mínimo de 9 animales. Salvo indicación en contrario, todas las dosis indicadas en esta descripción se refieren al peso corporal del animal.

La Figura 5B es una gráfica que muestra la disminución de la presión arterial diastólica (PAD) obtenida en ratas espontáneamente hipertensas a las que se administra 1 mL de agua (X), 5 mL/kg de suero de leche fermentada con E. faecalis CECT 5727 (\bullet), 5 ml/kg de suero de leche fermentada con E. faecalis CECT 5728 (\blacktriangle) ó 50 mg/kg de Captopril (-), en función del tiempo pasado tras la administración. Los datos representan la media \pm ESM para un mínimo de 9 animales.

La Figura 6A es una gráfica que muestra la variación de la presión arterial sistólica (PAS) obtenida en ratas Wistar-Kyoto a las que se administra 1 mL de agua (X), 5 mL/kg de suero de leche fermentada con E. faecalis CECT 5727 (\bullet), 5 mL/kg de suero de leche fermentada con E. faecalis CECT 5728 (\blacktriangle) ó 50 mg/kg de Captopril (-), en función del tiempo pasado tras la administración. Los datos representan la media \pm ESM para un mínimo de 9 animales.

La Figura 6B es una gráfica que muestra la variación de la presión arterial diastólica (PAD) obtenida en ratas Wistar-Kyoto a las que se administra 1 mL de agua (X), 5 mL/kg de suero de leche fermentada con E. faecalis CECT 5727 (\bullet), 5 mL/kg de suero de leche fermentada con E. faecalis CECT 5728 (\blacktriangle) ó 50 mg/kg de Captopril (-), en función del tiempo pasado tras la administración. Los datos representan la media \pm ESM para un mínimo de 9 animales.

Descripción detallada de la invención

En un primer aspecto, la invención se relaciona con cepas de Enterococcus faecalis con actividad proteolítica y capacidad para producir péptidos bioactivos, en particular, péptidos que muestran actividad IECA in vitro y/o con actividad antihipertensiva. En una realización particular, la invención proporciona una cepa de E. faecalis depositada en la CECT seleccionada entre la cepa identificada como E. faecalis CECT 5727 y la cepa identificada como E. faecalis CECT 5728. Dichas cepas de E. faecalis han sido depositadas el 10 de octubre de 2002 en la CECT, correspondiéndoles el número de acceso indicado.

Las cepas E. faecalis CECT 5727 y E. faecalis CECT 5728 han sido seleccionadas a partir de microorganismos aislados de leche bovina cruda de diferentes procedencias, tras haber sido sometidas a un proceso de selección en base a la presencia de actividad IECA superior al 70% en los sobrenadantes tras centrifugación (suero) de leches fermentadas con dichos microorganismos. Las cepas fueron aisladas y caracterizadas posteriormente por su perfil fermentativo y bioquímico. En el Ejemplo 1 se describe de forma detallada el aislamiento y caracterización de dichas cepas E. faecalis CECT 5727 y E. faecalis CECT 5728.

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La cepa E. faecalis CECT 5727 presenta, entre otras, las siguientes características:

\bullet: Características de la colonia:

1): Crecimiento en M17, facultativamente en MRS

2): Forma: circular

3): Tamaño: 1 mm (en 24 horas)

4): Color: blanca

5): Aspecto: brillante

6): Elevación: lisa

7): Borde: irregular

\bullet: Características morfológicas:

1): Forma: coco

2): Motilidad: ninguna

3): Formación de esporas: no

4): Tinción GRAM: positiva

\bullet: Propiedades fisiológicas:

1): Producción de catalasa: negativo

2): Crecimiento aeróbico, anaerobiosis facultativa

3): Perfil bioquímico:

: Arginina Dihidrolasa: +

: \beta-Glucosidasa: +

: \beta-Glucuronidasa: -

: \alpha-Galactosidasa: -

: \beta-galactosidasa: -

: Fosfatasa Alcalina: -

: Ribosa (Acidificación): +

: Manitol (Acidificación): +

: D-sorbitol (Acidificación): +

: Lactosa (Acidificación): +

: Trehalosa (Acidificación): +

: Rafinosa (Acidificación): -

: Sacarosa (Acidificación): +

: L-arabinosa (Acidificación): -

: D-arabitol (Acidificación): -

: Ciclodextrina (Acidificación): +

: Producción de Acetoina: +

: Alanil-Fenilalanil-Prolina Arilamidasa: -

: Acido Piroglutámico Arilamidasa: +

: N-Acetil-beta Glucosaminidasa.: +

: Glicil- Triptófano Arilamidasa: +

: Hidrólisis Hipurato: -

: Glicógeno (Acidificación): -

: Pululano (Acidificación): -

: D-maltosa (Acidificación): +

: Melibiosa (Acidificación): -

: Melezitosa (Acidificación): +

: Metil \beta-D-glucopiranosido (Acidificación): +

: Tagatosa (Acidificación): +

: \beta-manosidasa: +

: Ureasa: -

La cepa E. faecalis CECT 5728 presenta un perfil fermentativo y bioquímico similar al de la cepa E. faecalis CECT 5727 con las excepciones siguientes:

: \beta-Glucosidasa: -

: N-Acetil-beta Glucosaminidasa.: -

: Metil \beta-D-glucopiranosido (Acidificación): -

: \beta-manosidasa: -

Las cepas E. faecalis CECT 5727 y E. faecalis CECT 5728 son cepas proteolíticas con capacidad para producir péptidos bioactivos, en particular, péptidos con actividad TECA y/o con actividad antihipertensiva, a partir de un sustrato apropiado que comprende una o más proteínas, péptidos o fragmentos de dichas proteínas y péptidos, que contienen la secuencia de aminoácidos de dichos péptidos bioactivos de interés, mediante digestión proteolítica. En general, dicho sustrato es una fuente de proteínas, péptidos o fragmentos de los mismos, de origen animal, vegetal, o procedentes de microorganismos, que comprende una o más proteínas, péptidos o fragmentos de los mismos que contienen la secuencia de aminoácidos de dichos péptidos bioactivos de interés. La actividad proteolítica de las cepas E. faecalis CECT 5727 y E. faecalis CECT 5728 ha sido ensayada por el método OPA (o-phtaldialdehído) usando peptona de caseína para la recta de calibrado (Church FC, Swaisgood HE, Porter DH, Catgnani L. 1983. J Dairy Sci 66: 1219-1227) [Ejemplo 2]. La actividad IECA de los sustratos fermentados con dichas cepas puede ser determinada mediante el método descrito en el Ejemplo 1.2.

En una realización particular, dichos péptidos bioactivos producidos por las cepas E. faecalis CECT 5727 y E. faecalis CECT 5728 son los péptidos identificados con las secuencias de aminoácidos mostradas en la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6 y SEQ. ID. Nº: 7, algunos de los cuales presentan actividad IECA y/o actividad antihipertensiva (Ejemplos 3 y 4).

Por tanto, en otro aspecto, la invención se relaciona con el empleo de una cepa de E. faecalis, en particular, una cepa de E. faecalis seleccionada entre E. faecalis CECT 5727, E. faecalis CECT 5728 y sus mezclas en la obtención de péptidos bioactivos, en particular, péptidos con actividad IECA y/o con actividad antihipertensiva, seleccionados del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables y sus mezclas.

Tal como se utiliza en esta descripción, el término "derivado" incluye cualquier derivado químico de dichos péptidos que contiene una modificación química que no afecta adversamente a su actividad biológica, por ejemplo, su actividad IECA y/o antihipertensiva; ventajosamente, dicha modificación química será una modificación tal que aumente su actividad biológica. En una realización particular, dicho derivado es un derivado peptídico que contiene una fosforilación o un grupo sulfhidrilo en el extremo amino terminal o cualquier otra modificación química que no disminuya la actividad biológica del péptido. Como es conocido, la presencia de un grupo sulfhidrilo o fosfórico aumenta, en general, la actividad de los péptidos inhibidores de la ECA (Ondetti MA, Rubín B, Cushman DW. 1977. Science 196: 441-444). Los derivados de los péptidos proporcionados por esta invención pueden obtenerse por métodos convencionales bien conocidos por los técnicos en la materia haciendo reaccionar el péptido proporcionado por la invención con un reactivo que proporciona la modificación química deseada.

El término "sales farmacéuticamente aceptables" incluye las sales habitualmente utilizadas para formar sales metálicas o sales de adición de ácidos. La naturaleza de la sal no es crítica siempre y cuando sea farmacéuticamente aceptable. Las sales farmacéuticamente aceptables de los péptidos proporcionados por esta invención pueden obtenerse a partir de ácidos o bases, orgánicos o inorgánicos. Dichas sales pueden obtenerse por métodos convencionales bien conocidos por los técnicos en la materia haciendo reaccionar el ácido o base apropiado con el péptido proporcionado por la invención.

De forma más concreta, la invención proporciona un procedimiento para producir un péptido bioactivo que comprende fermentar un sustrato que comprende una o más proteínas, péptidos o fragmentos de los mismos que contienen la secuencia de aminoácidos de dicho péptido bioactivo con una cepa de E. faecalis y, si se desea, aislar el péptido bioactivo y/o convertirlo en un derivado y/o en una sal farmacéuticamente aceptable.

En una realización particular, dicho péptido bioactivo es un péptido con actividad IECA y/o con actividad antihipertensiva, tal como un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables y sus mezclas.

En otra realización particular, dicha cepa de E. faecalis se selecciona del grupo formado por E. faecalis CECT 5727, E. faecalis CECT 5728 y sus mezclas. Dicha cepa puede utilizarse como un cultivo puro o sustancialmente puro o como un cultivo mixto, en forma de una preparación bacteriana que contiene E. faecalis CECT 5727 y/o E. faecalis CECT 5728, junto con, opcionalmente, uno o más microorganismos diferentes tales como Streptococcus thermophilus, Lactobacillus bulgaricus, Lactobacillus casei, Lactobacillus acidofilus, Lactobacillus helveticus o cualquier otra bacteria láctica. Dicha preparación bacteriana, en adelante preparación bacteriana de la invención, que contiene E. faecalis CECT 5727 y/o E. faecalis CECT 5728 y, opcionalmente, uno o más de dichos microorganismos diferentes, constituye un aspecto adicional de esta invención. La preparación bacteriana de la invención puede presentarse en cualquier forma apropiada; no obstante, en una realización particular, dicha preparación bacteriana se encuentra en forma deshidratada, de polvo liofilizado o en una cápsula.

En general, el sustrato a fermentar es una fuente de proteínas, péptidos o fragmentos de los mismos, que comprende una o más proteínas, péptidos o fragmentos de los mismos que contienen la secuencia de aminoácidos de dicho péptido bioactivo. Dicho sustrato puede ser de origen animal, por ejemplo, leche, huevos, músculos de aves, peces o mamíferos, etc., o bien de origen vegetal, por ejemplo, extractos proteicos de soja, maíz, trigo, frutos secos, etc., o, incluso, puede proceder de un microorganismo, por ejemplo, bacterias, levaduras, hongos, etc. En una realización particular, dicho sustrato comprende leche o un producto lácteo, opcionalmente fermentado, que contiene caseína, por ejemplo, \beta-caseína, tal como, leche cruda, leche entera, desnatada o semidesnatada, leche en polvo (previa reconstitución de la misma), yogur, mantequilla, queso, etc., o, alternativamente, un extracto proteico de soja. Cuando el sustrato es leche, ésta puede proceder de cualquier mamífero, por ejemplo, vaca, oveja, cabra, búfala, etc. La secuencia de los péptidos SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6 y SEQ. ID. Nº: 7, puede encontrarse en la secuencia de la (\beta-caseína bovina (véase la Tabla 3, Ejemplo 3).

Las condiciones para la fermentación de dicho sustrato por E. faecalis se seleccionan de manera que sean las adecuadas para que dicha bacteria pueda ejercer su actividad proteolítica sobre el sustrato, de manera que se produzcan los péptidos bioactivos. El proceso de fermentación se puede terminar por cualquier método apropiado, por ejemplo, modificando el pH del medio, aplicando un tratamiento térmico, etc. La selección de las condiciones apropiadas, tales como temperatura, pH y/o aireación, así como de las condiciones para terminar la fermentación, forman parte del conocimiento general de un experto en la materia. En general, cuando el sustrato es líquido, por ejemplo, leche, se adiciona al sustrato un inóculo bacteriano, con una densidad bacteriana apropiada, y se deja fermentar, durante un periodo de tiempo adecuado a la temperatura y pH apropiados. Cuando el sustrato es sólido o sustancialmente sólido, el sustrato se mezcla con un líquido apropiado, tal como agua esterilizada, se mezcla hasta obtener una mezcla homogénea, se añade el inóculo bacteriano y se deja fermentar en las condiciones apropiadas. El pH del medio de fermentación se ajusta para favorecer la actividad proteolítica bacteriana bien antes de iniciar la fermentación o bien durante la fermentación, por adición de un ácido o una base, dependiendo de lo que sea necesario. La fermentación puede repetirse un número variable de veces añadiendo inóculos bacterianos bien frescos o bien procedentes de las fermentaciones anteriores sobre el sustrato.

Tras la fermentación del sustrato se obtiene una mezcla de péptidos bioactivos. En una realización particular, dicho péptido bioactivo es un péptido con actividad IECA y/o con actividad antihipertensiva, tal como un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. 1 ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, y sus mezclas. La medida de la actividad IECA de los productos fermentados se puede realizar por métodos convencionales tal y como se describe en el Ejemplo 1.2. Si se desea, dichos péptidos bioactivos se pueden aislar y purificar por métodos convencionales y/o convertirlos en derivados y/o sales farmacéuticamente aceptables por métodos convencionales.

En una realización particular, la fermentación del sustrato con E. faecalis se realiza mediante un procedimiento que comprende una primera fermentación a una temperatura comprendida entre 10ºC y 50ºC, típicamente alrededor de 30ºC, durante un periodo de tiempo comprendido entre 5 y 72 horas, típicamente alrededor de 24 horas, con una carga de inóculo con una densidad bacteriana comprendida entre 10 y 10^{12}, preferentemente, entre 10^{7} y 10^{9}, bacterias por cada 100 mL de sustrato, seguida de una segunda fermentación a una temperatura comprendida entre 10ºC y 50ºC, típicamente alrededor de 30ºC, durante un periodo de tiempo comprendido entre 5 y 72 horas, típicamente alrededor de 48 horas, con una carga de inóculo procedente de la primera fermentación comprendida entre 0,01% y 90% en peso, típicamente, alrededor del 3% en peso. En el Ejemplo 3 se describe el aislamiento y caracterización de péptidos bioactivos con actividad IECA y/o con actividad antihipertensiva, seleccionados del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. M. Nº: 7, y sus mezclas, por fermentación de leche bovina con E. faecalis CECT 5727 o con E. faecalis
CECT 5728.

El sustrato fermentado, que contiene los péptidos bioactivos, en particular, el sustrato fermentado que contiene un péptido con actividad IECA y/o con actividad antihipertensiva seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas, puede ser utilizado como un agente antihipertensivo. Dicho producto fermentado, si se desea, puede ser pasteurizado, o bien puede ser secado y utilizado en forma de un polvo o de una preparación liofilizada, y puede ser utilizado en la elaboración de diversos productos, entre ellos, productos alimentarios, incluyendo productos alimentarios funcionales. El sustrato fermentado, opcionalmente, pasteurizado, constituye un aspecto adicional de esta invención.

Por tanto, en otro aspecto, la invención se relaciona con el empleo de una cepa de E. faecalis seleccionada entre E. faecalis CECT 5727, E. faecalis CECT 5728 y sus mezclas como sustancia terapéutica, en particular, como sustancia terapéutica para el tratamiento y/o prevención de la hipertensión arterial en todas sus formas en un ser humano o en un animal, y para el tratamiento y/o la prevención de cualquier desorden asociado con la hipertensión arterial en un ser humano o en un animal, tal como hipertrofia ventricular, insuficiencia cardiaca congestiva, accidentes cerebrovasculares, retinopatía, insuficiencia renal progresiva, aneurismas disecantes, enfermedad coronaria y enfermedades vasculares periféricas.

Asimismo, en otro aspecto, la invención se relaciona con el empleo de una cepa de E. faecalis, en particular, con una cepa de E. faecalis seleccionada entre E. faecalis CECT 5727, E. faecalis CECT 5728 y sus mezclas, o de una preparación bacteriana de la invención, en la industria alimentaria, por ejemplo, en la preparación de un producto alimentario. Por tanto, en otro aspecto, la invención proporciona un producto alimentario que comprende una cepa de E. faecalis, en particular, una cepa de E. faecalis seleccionada entre E. faecalis CECT 5727, E. faecalis CECT 5728 y sus mezclas, o bien una preparación bacteriana de la invención, o bien un producto alimentario que ha sido preparado utilizando dicha cepa de E. faecalis de la invención o dicha preparación bacteriana de la
invención.

El término "producto alimentario" se utiliza en esta descripción en su sentido más amplio, incluyendo todo tipo de producto, en cualquier forma de presentación, por ejemplo, en forma sólida, líquida o gelificada, que puede ser ingerido por un mamífero, por ejemplo, un alimento o una sustancia nutricional. El término "alimento", tal como se utiliza en esta descripción, incluye sustancias y composiciones que pueden ser utilizadas o preparadas para su empleo como alimento de seres humanos y animales, incluyendo sustancias que pueden ser utilizadas para su preparación, por ejemplo, aceites, ingredientes y aditivos alimentarios. A modo ilustrativo, el término "alimento" incluye bebidas (por ejemplo, refrescos, bebidas carbonatadas, etc.), alimentos en infusión (por ejemplo, vegetales, etc.), salsas, condimentos, aliños para ensaladas, zumos de frutas, jarabes o siropes, postres (por ejemplo, puddings, gelatinas, rellenos, productos cocinados, postres congelados, tales como helados, sorbetes, etc.), helados, productos congelados suaves, dulces (por ejemplo, caramelos, etc.), chicles, etc.

En una realización particular, dicho producto alimentario es un producto lácteo, opcionalmente fermentado y/o sometido a un tratamiento térmico, por ejemplo, pasteurizado, de manera que esté libre de microorganismos viables, por ejemplo, leche, yogures, etc. o una bebida, por ejemplo, una bebida con suero lácteo, una bebida de frutas, una cerveza, etc.

En otro aspecto, la invención se refiere a un péptido bioactivo seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados y sus sales farmacéuticamente aceptables. Los términos "derivados" y "sales farmacéuticamente aceptables" han sido definidos previamente.

Los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6 y SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados y sales farmacéuticamente aceptables, son productos nuevos y constituyen un aspecto adicional de esta invención. Por otra parte, y del mismo modo que péptidos con una potente actividad inhibitoria in vitro no siempre actúan como agentes antihipertensivos, también puede suceder el caso contrario, es decir que péptidos que in vitro no presentan gran actividad como inhibidores de la ECA, adquieran in vivo esa capacidad gracias a la actuación sobre ellos de las enzimas digestivas (Maeno M, Yamamoto N, Takano T. 1996. J Dairy Sci 79: 1316-1321). Todos estos resultados ponen de relieve la necesidad de probar in vivo la eficacia de péptidos con actividad IECA, inicialmente en un modelo animal para finalmente corroborar los resultados en humanos (Darragh AJ. 2002. Bull IDF 375:25-31).

Ahora se ha encontrado que los péptidos bioactivos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6 y SEQ. W. Nº: 7 tienen actividad IECA y/o actividad antihipertensiva, por lo que pueden ser utilizados, en particular, los péptidos antihipertensivos, en la elaboración de composiciones alimentarias o farmacéuticas con actividad IECA y/o actividad antihipertensiva. En otro aspecto, la invención se refiere a una composición que comprende un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas.

En otro aspecto, la invención proporciona una composición farmacéutica que comprende un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la, SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas, y un excipiente farmacéuticamente aceptable. En una realización particular, dicha composición farmacéutica es una composición farmacéutica antihipertensiva que comprende, al menos, un péptido antihipertensivo seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la, SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas, y un excipiente farmacéuticamente aceptable.

La composición farmacéutica proporcionada por esta invención comprende una cantidad terapéuticamente eficaz de un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables y sus mezclas. La cantidad de péptido, derivado o sal farmacéuticamente aceptable del mismo que puede estar presente en la composición farmacéutica proporcionada por esta invención puede variar dentro de un amplio intervalo, típicamente, entre 0,05% y 100% en peso, preferentemente, entre 0,16% y 99% en peso. Dicha composición farmacéutica es útil para su administración y/o aplicación en el cuerpo humano o animal, preferiblemente en el ser humano. La cantidad de péptido que debe administrarse así como su dosificación para tratar un estado patológico dependerá de numerosos factores, incluyendo la edad, estado del paciente, la severidad de la alteración o trastorno, la ruta y frecuencia de administración y del péptido concreto a utilizar.

Las composiciones farmacéuticas proporcionadas por esta invención pueden presentarse en cualquier forma de administración apropiada, por ejemplo, sólida o líquida, y pueden administrarse por cualquier vía apropiada, por ejemplo, por vía oral, sublingual, respiratoria, parenteral, rectal o tópica, para lo cual incluirán los excipientes farmacéuticamente aceptables necesarios para la formulación de la forma de administración deseada. En una realización particular, dicha forma farmacéutica de administración de dichos péptidos es una forma sólida o líquida diseñada para su administración por vía oral. Una revisión de las distintas formas farmacéuticas de administración de medicamentos y de los excipientes necesarios para la obtención de las mismas puede encontrarse, por ejemplo, en el "Tratado de Farmacia Galénica", C. Faulí i Trillo, 1993, Luzán 5, S.A. Ediciones, Madrid.

En otro aspecto, la invención se refiere al empleo de un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas, en la elaboración de un medicamento para el tratamiento y/o prevención de la hipertensión arterial en todas sus formas en un ser humano o en un animal, y para el tratamiento y/o la prevención de cualquier desorden asociado con la hipertensión arterial en un ser humano o en un animal, por ejemplo, la hipertrofia ventricular, la insuficiencia cardiaca congestiva, los accidentes cerebrovasculares, la retinopatía, la insuficiencia renal progresiva, los aneurismas disecantes, la enfermedad coronaria y las enfermedades vasculares periféricas.

La invención también proporciona un producto alimentario funcional que comprende un producto alimentario y un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas. Dicho producto alimentario funcional constituye un aspecto adicional de esta invención. En una realización particular, dicho producto alimentario funcional es un producto con actividad antihipertensiva y resulta útil como coadyuvante en el tratamiento y/o prevención de la hipertensión arterial en un mamífero, tal como el ser humano, o de estados derivados de la misma. Aunque prácticamente cualquier producto alimentario puede ser utilizado en la elaboración del producto alimentario funcional de la invención, en una realización particular dicho producto alimentario comprende bebidas (por ejemplo, refrescos, bebidas carbonatadas, etc.), alimentos en infusión (por ejemplo, vegetales, etc.), salsas, condimentos, aliños para ensaladas, zumos de frutas, jarabes o siropes, postres (por ejemplo, puddings, gelatinas, rellenos, productos cocinados, postres congelados, tales como helados, sorbetes, etc.), helados, productos congelados suaves, dulces (por ejemplo, caramelos, etc.), chicles, etc. La cantidad de péptido o péptidos presente en el producto alimentario funcional puede variar dentro de un amplio intervalo; no obstante, en una realización particular, la cantidad de péptido o péptidos presente en el producto alimentario funcional está comprendida entre 0,001% y 1% en peso respecto al total, preferentemente, entre 0,01% y 0,5%
en peso.

Los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas, también pueden ser ingeridos por los seres humanos y animales como un aditivo o suplemento alimentario contenido en alimentos y bebidas. Dichos péptidos pueden ser formulados junto con una o más sustancias nutricionales, por ejemplo, vitaminas y/o minerales, e incorporados en composiciones sustancialmente líquidas tales como bebidas nutritivas, leche, leche de soja, sopas, etc., o en composiciones sustancialmente sólidas; o en gelatinas. Alternativamente, dichos péptidos pueden ser preparados en forma de polvo e incorporados como tal en un alimento. La cantidad de péptido proporcionado por esta invención que puede estar presente en dichos alimentos o bebidas puede ser similar a la dosis contenida en un composición farmacéutica típica proporcionada por esta invención.

Los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6 y SEQ. ID. Nº: 7 pueden ser obtenidos por cualquier procedimiento adecuado, por ejemplo, por fermentación de un sustrato que comprende una o más proteínas, péptidos o fragmentos de los mismos que contienen la secuencia de aminoácidos de dichos péptidos con E. faecalis, por ejemplo, con E. faecalis CECT 5727 y/o E. faecalis CECT 5728, tal como se ha mencionado previamente, o bien por digestión enzimática de dicho sustrato utilizando una enzima con actividad proteolítica. Alternativamente, dichos péptidos pueden obtenerse por métodos recombinantes o, ventajosamente, por síntesis química de péptidos. Información sobre métodos de síntesis química de péptidos puede encontrarse, por ejemplo, en WO 01/68113. Los derivados y las sales farmacéuticamente aceptables de dichos péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6 y SEQ. ID. Nº: 7, pueden obtenerse por métodos convencionales tal como se ha mencionado previamente.

En general, cuando se desee obtener un producto alimentario funcional antihipertensivo, se realizarán todas las modificaciones necesarias en el proceso de fermentación previamente descrito para obtener una buena actividad IECA en el producto fermentado, pero controlando la producción de amargor, producido típicamente por la aparición de péptidos hidrófobos de bajo peso molecular, cuya incidencia es alta tras la hidrólisis de las caseínas, debido a que sus secuencias contienen una gran cantidad de aminoácidos hidrófobos. Por otra parte, en caso de que los péptidos antihipertensivos proporcionados por esta invención se utilicen como ingredientes de cualquier tipo de producto alimentario para convertirlo en un producto alimentario funcional con actividad antihipertensiva, la obtención de productos fermentados con buenas características organolépticas carecería de importancia ya que lo que se pretende es la obtención de la mayor cantidad posible del péptido antihipertensivo o de la máxima actividad IECA con el fin de obtenerlo en cantidad suficiente como para utilizarlo como ingrediente. Finalmente, en caso de utilizar uno de dichos péptidos, como fármaco antihipertensivo, la fermentación iría dirigida a la obtención de la mayor concentración posible del péptido para posteriormente proceder a su aislamiento y purificación por métodos convencionales, por ejemplo, mediante cromatografía líquida de alta resolución (HPLC).

Aunque, en general, los péptidos antihipertensivos proporcionados por esta invención no presentan una actividad IECA tan potente como la del fármaco Captopril (IC_{50} = 0,006 \muM, siendo IC_{50} la concentración del inhibidor que disminuye en un 50% la actividad enzimática), son péptidos naturales con los que cabe esperar pocos efectos secundarios y buena tolerancia. Serían por ello útiles como coadyuvantes en el tratamiento y/o la prevención de la hipertensión arterial y, en consecuencia, en la lucha contra la enfermedad cardiovascular.

Los siguientes ejemplos ilustran la invención pero no deben ser considerados como limitativos del alcance de la misma.

Ejemplo 1 Selección de cepas de microorganismos que producen leche fermentada con actividad IECA: Aislamiento de E. faecalis CECT 5727 y E. faecalis CECT 5728 1.1 Selección de cepas productoras de leche fermentada con elevada actividad IECA

Se ensayaron 231 microorganismos, aislados a partir de leche bovina cruda recogida de diferentes procedencias, comprobándose su capacidad para producir leches fermentadas con actividad IECA mediante el procedimiento que se describe a continuación.

Alícuotas de leche bovina cruda, de diferentes procedencias, se sembraron en placas conteniendo medio MRS (Oxoid Ltd, Basingstoke, UK) (selectivo para el género Lactobacillus) o medio M17 (Biokar Diagnostics, Beauvais, France) (selectivo para el género Streptococcus) y se incubaron durante 48 horas a 42ºC en atmósfera anaeróbica (AnaeroGen^{TM}, Oxoid Ltd, Basingstoke, UK), con una cantidad de oxígeno menor del 1% y un nivel de dióxido de carbono comprendido entre el 9% y el 13% (medio MRS) o bien a 30ºC y en condiciones de aerobiosis (medio M17). Cuando en una misma placa se observó crecimiento de más de una colonia diferente de microorganismos se procedió al aislamiento de las distintas colonias mediante resiembras consecutivas en los mismos medios.

Utilizando el protocolo descrito en el Ejemplo 2, se seleccionaron, entre los organismos aislados, aquéllos con capacidad de producir leches fermentadas con actividad IECA. Al finalizar la fermentación, las leches fermentadas se centrifugaron a 20.000 x g durante 10 minutos para obtener el suero en donde se ensayó la actividad IECA. El ensayo de la actividad enzimática se realizó inmediatamente o, en caso contrario, los sobrenadantes se mantuvieron congelados a -20ºC.

La actividad IECA de los sobrenadantes se determinó mediante el ensayo descrito en el Ejemplo 1.2. Se desecharon las bacterias cuyos sobrenadantes no mostraban actividades IECA o actividades IECA inferiores al 70%, cuando se ensayaba el sobrenadante diluido a la mitad. Se seleccionaron un total de 47 bacterias que fueron identificadas por su perfil fermentativo y bioquímico mediante el empleo de tiras API (BioMérieux SA, Marcy l'Etoile, Francia), e incorporadas a la Colección de Cultivos del Grupo Leche Pascual, S.A. (Tabla 1). Las cepas más prometedoras han sido depositadas el 10 de octubre de 2002 en la Colección Española de Cultivos Tipo (CECT), Burjasot, Valencia, y entre ellas las cepas de Enterococcus faecalis identificadas con los números de acceso CECT 5727 y CECT 5728. Estas cepas pueden crecer en medio M17 en aerobiosis a 30ºC.

Los resultados obtenidos con las bacterias seleccionadas por su capacidad de producir leche fermentada con actividad TECA superior al 70% medida en el sobrenadante diluido a la mitad e incorporadas a la Colección de Cultivos del Grupo Pascual, S.A. se recogen en la Tabla 1. En la mayoría de los casos aparecen dos valores de actividad IECA debido a que se hicieron repeticiones para confirmar los resultados. La ultima columna se refiere a la cantidad necesaria de sobrenadante para producir una disminución enzimática del 50% (IC_{50}) expresada en microgramos/mL. Para conocer la concentración de péptidos en las leches fermentadas se usó el método Kjeldhal (Norma FIL-DF 20B
1993).

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(Tabla pasa a página siguiente)

TABLA 1

1

2

1.2 Medida de la actividad Inhibitoria de la ECA (actividad IECA)

La medida de la actividad ECA se realizó según el método descrito por Cushman y Cheung (Cushman DW, Cheung HS. 1971. Biochem Pharmacol 20:1637-1648) y modificado posteriormente por Nakamura (Nakamura Y, Yamamoto N, Sakai K y col. 1995. J Dairy Sci 78:777-783). Este método se basa en el empleo de Hipuril-L-Histidil-L-Leucina (Hip-His-Leu) como sustrato ya que la actuación de la ECA sobre dicho sustrato produce la liberación del ácido hipúrico, fácilmente cuantificable mediante espectrofotometría por lectura de la absorbancia a 228 nm (A_{228}) tras su extracción con acetato de etilo. Si en el tubo de reacción además de la ECA y del sustrato se añade la muestra a ensayar, se puede determinar la actividad IECA de la muestra ensayada. Tal como se menciona en el Ejemplo 1.1, durante la selección de las bacterias, la muestra usada para medir la actividad IECA fue el sobrenadante de la leche fermentada, sometida a centrifugación a 20.000 x g durante 10 minutos, y posteriormente diluido a la mitad con agua destilada.

El ensayo se realiza pipeteando en tubos tipo Eppendorf los reactivos indicados en la Tabla 2.

TABLA 2

3

La solución de sustrato estaba formada por borato sódico 0,1 M, cloruro sódico 300 mM, Hip-His-Leu (Sigma, St. Louis, MO) 5 mM, pH 8,3 a 37ºC. La solución del enzima ECA (Sigma, St. Louis, MO) se ajustó a una actividad de 0,1 U/mL.

Las distintas mezclas de reacción se incubaron durante 30 minutos a 37ºC y, a continuación, a cada tubo de ensayo se añadieron 150 \muL de ácido clorhídrico 0,1 M con el fin de parar la reacción y, posteriormente, 1.000 \muL de acetato de etilo para extraer el ácido hipúrico. Las mezclas resultantes se agitaron vigorosamente durante 20 segundos y se centrifugaron a 1.500 x g durante 10 minutos, para separar y recoger de cada tubo la fase superior (acetato de etilo). 750 \muL de cada fase superior se pipetearon en tubos individuales, los cuales se introdujeron en un baño con agua en ebullición hasta evaporar el disolvente, bajo campana extractora. Una vez eliminado el acetato de etilo, se añadieron 800 \muL de agua destilada a cada uno de los tubos para disolver suavemente y sin agitación el residuo seco. Por último el contenido de cada tubo se transfirió a cubetas de cuarzo para leer su absorbancia a 228 nm. El porcentaje de inhibición (% Inhibición) se calculó aplicando la siguiente fórmula:

% \ Inhibición \ = \frac{(A)-(B)}{(C)-(D)}

donde (A), (B), (C) y (D) corresponden a las absorbancias a 228 nm de las soluciones indicadas en la tabla 2.

Ejemplo 2 Producción de leche fermentada con actividad IECA mediante el uso de E. faecalis CECT 5727 y/o E. faecalis CECT 5728

Para la realización de este ejemplo de fermentación se puede utilizar indistintamente E. faecalis CECT 5727 o E. faecalis CECT 5728. El sustrato es leche bovina desnatada en polvo reconstituida en agua al 10% y autoclavada (100ºC durante 20 minutos). En primer lugar se fabricó un starter liquido, inoculando el sustrato con un asa de cultivo de manera que la población inicial fuera 10^{5}-10^{7} UFC/mL e incubando durante 24 horas. Un 3% en peso de este cultivo se utilizó como inóculo de la segunda fermentación que se mantuvo durante 48 horas. Ambas fermentaciones se realizaron a 30ºC. El proceso de fermentación se paró mediante pasteurización de la leche fermentada [75ºC durante 1 minuto], y el producto final pasteurizado fue utilizado para medir la actividad IECA según el protocolo descrito en el Ejemplo 1.2 si bien en este caso las leches fermentadas habían sido sometidas al tratamiento de pasteurización mencionado antes de ser centrifugadas a 20.000 x g durante 10 minutos. La Figura 1 muestra el ensayo de la actividad IECA para diferentes volúmenes de sobrenadante, diluidos adecuadamente con agua destilada con el fin de mantener un volumen constante de reacción (en el Ejemplo 1 la dilución era a la mitad). Por lo tanto, el volumen final de reacción es siempre de 160 \muL [100 \muL de la solución de sustrato, 20 \muL de la solución de la ECA y 40 \muL de la muestra a ensayar (sobrenadante a la dilución correspondiente con agua destilada)]. Los resultados obtenidos muestran que las leches fermentadas producidas por ambos microorganismos presentan una potente actividad IECA, ya que con volúmenes de muestra pequeños se obtienen inhibiciones del 100% de la actividad.

Adicionalmente, se estudió la aparición en el tiempo de la actividad IECA en leches fermentadas con las cepas E. faecalis CECT 5727 y/o E. faecalis CECT 5728 así como el grado de hidrólisis de dichas cepas. Las fermentaciones se realizaron según el protocolo explicado en este mismo Ejemplo 2 pero extrayendo alícuotas de la segunda fermentación a diversos tiempos: 8, 12, 24 y 48 horas.

La actividad IECA se determinó siguiendo el protocolo previamente descrito y se representa como actividad de la dilución de suero que produce un 50% de inhibición de la actividad de la enzima expresada en unidades de inhibición por volumen (UI/mL), entendiendo por una unidad de inhibición a aquella capaz de inhibir el 50% de la actividad de la enzima ECA.

Para el estudio del grado de hidrólisis se realizó un análisis cuantitativo de los péptidos según el método OPA (Church FC, Swaisgood HE, Porter DH., Catigna GL. 1983. J Dairy Sci 66: 1219-1227). Para la curva de calibración se usó peptona de caseína (Fluka, Steinheim, Suiza).

Los resultados mostraron que la actividad IECA y la actividad proteolítica, medida mediante OPA, siguen un patrón típico de un metabolito primario, con un aumento inicial pronunciado, asociado al crecimiento exponencial del cultivo, hasta llegar a una meseta final (Figura 2).

Ejemplo 3 Identificación, aislamiento y síntesis de péptidos con actividad IECA

Para llevar a cabo este trabajo se utilizaron equipos de cromatografía líquida de alta eficacia (HPLC) analítica y preparativa, así como un equipo de espectrometría de masas (MS) en tándem que permitió la secuenciación de los péptidos. Se realizaron las etapas que se mencionan a continuación.

3.A Obtención de la fracción soluble de productos lácteos fermentados

Siguiendo el procedimiento descrito en el Ejemplo 2 se obtuvieron unos productos lácteos fermentados por las cepas de E. faecalis CECT 5727 y E. faecalis CECT 5728 (por separado). Brevemente, leche bovina en polvo reconstituida en agua al 10% y autoclavada (100ºC durante 20 minutos), se sometió a una primera fermentación de 24 horas con una cantidad de bacterias aproximada de 10^{7}-10^{9} por cada 100 mL de leche reconstituida, y una segunda fermentación de 48 horas con un inóculo de la primera fermentación del 3% en peso, realizando ambas fermentaciones a 30ºC y parando el proceso de fermentación mediante pasteurización de la leche fermentada a 75ºC durante 1 minuto. Los productos resultantes se centrifugaron a 20.000 x g durante 10 minutos. Los sobrenadantes obtenidos se ultrafiltraron a través de una membrana hidrofilica de 3.000 Da de tamaño de poro (Centripep, Amicon Inc, Beverly, MA, EEUU). Los permeados obtenidos se congelaron, liofilizaron y mantuvieron a -20ºC hasta su posterior
fraccionamiento.

3.B Fraccionamiento mediante HPLC en fase reversa a escala semipreparativa

El equipo empleado (Waters Series 600 HPLC; Waters Corp., Mildford, MA, EEUU) consta de una bomba (modelo delta 600), un controlador de gradiente (modelo 600), un inyector (modelo 717 plus), un detector de ultravioleta de longitud de onda variable (modelo 996), un colector de fracciones y un software de adquisición y procesado de datos (Millenium 3.2). La columna es una Prep Nova Pak® HR C_{18} (300 x 7,8 mm d.i., 6 \mum de tamaño de partícula, 60 \ring{A} de tamaño de poro) (Waters). El disolvente A es una mezcla de agua y ácido trifluoroacético (1000:1) y el disolvente B es una mezcla de acetonitrilo y ácido trifluoroacético (1000:0,8). Las muestras se eluyeron con un flujo de 4 mL/minuto con un gradiente lineal del 0% al 35% del disolvente B en A en 70 minutos. La absorbancia del disolvente se monitorizó a 214 nm y 280 nm.

Brevemente, cada permeado liofilizado [obtenido en 3.A] se disolvió en agua en una concentración de 100 mg/mL y, en cada separación, el volumen de muestra inyectado fue de 500 \muL. Las fracciones que se iban separando eran ensayadas para determinar la existencia de actividad IECA, según el protocolo descrito en el Ejemplo 1.2, observándose que los péptidos con actividad TECA eluían al final del cromatograma con tiempos de retención superiores a 47 minutos (Figura 3). Esta fracción se sometió a un segundo análisis mediante HPLC en fase reversa a escala preparativa utilizando el mismo equipo, columna y disolventes pero eluyendo la muestra con un gradiente lineal del 20% al 35% del disolvente B en A en 40 minutos (Figura 3). En esas condiciones, se observó actividad IECA en fracciones que eluían entre los minutos 12 y 42 (Figura 4, fracciones 1 a 7). Dichas fracciones, que contenían péptidos con actividad IECA, se recogieron, liofilizaron y se mantuvieron a -20ºC hasta su posterior identificación.

3.C Identificación de péptidos con actividad IECA mediante espectrometría de masas en tándem (MS/MS)

El análisis mediante espectrometría de masas se realizó en un equipo de trampa iónica Esquire3000 (Bruker Daltonik GmbH, Bremen, Alemania). Los péptidos recogidos de HPLC y liofilizados [procedentes de 3.B] se disolvieron en una concentración de 5-10 \mug/ml en una mezcla de 50% de acetonitrilo en agua conteniendo 0,3% de ácido fórmico. La muestra se inyectó en el nebulizador de electrospray a un flujo de 4 \muL/min utilizando una bomba de jeringa tipo 22 (Harvard Apparatus, South Natick, MA, EEUU). El equipo emplea nitrógeno como gas nebulizador y de secado y opera con una presión de helio de 5 x 10^{-3} bar. Los espectros de masas se adquieren en un intervalo de 50-1500 m/z y a una velocidad de 13.000 Da/segundo. La interpretación de los espectros de MS en tándem para la identificación de las secuencias peptídicas se realizó con el programa Biotools 2.1 (Bruker Daltonik GmbH, Bremen, Alemania). Se identificaron los péptidos que se recogen en la Tabla 3.

TABLA 3 Péptidos identificados en leche bovina fermentada con CECT 5727 y/o con CECT 5728

4

3.D Síntesis de los péptidos con actividad IECA

A continuación, se sintetizaron químicamente los péptidos con actividad IECA previamente identificados. La síntesis de dichos péptidos con actividad IECA se realizó mediante el método Fmoc en fase sólida con un sintetizador (modelo 431A; Applied Biosystems Inc., Überlingen, Alemania). La pureza de los péptidos sintéticos se verificó mediante HPLC en fase reversa a escala analítica y espectrometría de masas usando un equipo Esquire-LC (Bruker Daltonik GmbH, Bremen, Alemania). El equipo (serie 1100) constaba de una bomba cuaternaria, un inyector automático, un sistema de desgasificación de eluyentes y un detector de ultravioleta de longitud de onda variable (Agilent Technologies, Waldbronn, Alemania) acoplado en línea a un espectrómetro de masas de trampa iónica Esquire 3000 (Bruker Daltonik). La columna era una columna Hi-Pore C_{18} (250 x 4,6 mm d.i., 5 \mum de tamaño de partícula) (Bio-Rad Laboratories, Richmond, CA, EEUU). El disolvente A era una mezcla de agua y ácido trifluoroacético (1000:0,37) y el disolvente B una mezcla de acetonitrilo y ácido trifluoroacético (1000:0,27). Las muestras se eluyeron con un flujo de 0,8 mL/minuto con un gradiente lineal del 0% al 30% del disolvente B en A en 25 minutos. El eluyente se monitorizó a 214 nm, mediante espectrometría de masas, bajo las mismas condiciones que las indicadas en 3.C, salvo que el flujo de inyección de la muestra a través del nebulizador era de 60 \muL/min.

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En las leches fermentadas con E. faecalis CECT 5727 y/o con E. faecalis CECT 5728 y en los péptidos sintetizados (que se correspondían con los péptidos aislados en la leche fermentada) se determinó la concentración necesaria para producir una disminución de la actividad enzimática de la ECA del 50% (IC_{50}, expresado en \muM en el caso de los péptidos y en \mug/mL en el caso de las leches fermentadas). Los valores obtenidos se muestran en la
Tabla 4.

TABLA 4 Valores de IC50 de péptidos aislados de la leche fermentada por E. faecalis CECT 5727 y/o por E. faecalis CECT 5728

6

Los péptidos que presentaron actividad IECA por debajo de 700 \muM fueron seleccionados inicialmente para ensayar su actividad antihipertensiva en ratas espontáneamente hipertensas (SHR) y en ratas Wistar-Kyoto (WHY).

Ejemplo 4 Estudio de la actividad antihipertensiva de leche fermentada con E. faecalis CECT 5727, leche fermentada con E. faecalis CECT 5728, y péptidos con actividad IECA identificados en dichas leches

Debido a la elevada actividad IECA que mostraban la leche bovina fermentada con E. faecalis CECT 5727 y la leche bovina fermentada con E. faecalis CECT 5728, así como algunos de los péptidos identificados se procedió a estudiar el efecto de dichas leches fermentadas y de dichos péptidos (SEQ. ID. N^{os}: 2-7) sobre la presión arterial de ratas espontáneamente hipertensas (SHR) y de ratas Wistar-Kyoto (WKY), que son el control normotenso de las ratas SHR.

Las leches fermentadas se prepararon según el procedimiento descrito en el Ejemplo 2. Los péptidos ensayados se sintetizaron químicamente siguiendo el protocolo descrito en el Ejemplo 3.D.

Se utilizaron ratas macho SHR y WKY de 17-20 semanas de vida y peso comprendido entre 250 y 300 g, procedentes de Charles River Laboratories España S.A.. Las ratas permanecían con una temperatura ambiental estable de 23ºC, y con ciclos de luz-oscuridad de 12 horas, ingiriendo agua y comida a libre disposición. La medida de la presión arterial en estos animales se llevó a cabo mediante una modificación de la técnica del manguito en la cola (tail-cuff), originalmente descrita por Buñag (Buñag RD. 1973. J Appl Physiol 34:79). Habitualmente, esta técnica permite obtener únicamente medidas de la presión arterial sistólica (PAS); no obstante, el equipo utilizado en este estudio (modelo Le50001 Letica) permite diferenciar la PAS y la presión arterial distólica (PAD) de los animales, ya que facilita automáticamente el valor digital de ambos parámetros. Por este motivo, en este estudio, se evaluaron la modificación de la PAS y de la PAD producida por la administración aguda de las leches fermentadas y los péptidos. Antes de colocar el manguito en la cola de las ratas, éstas se exponían a una temperatura próxima a los 30ºC para facilitar la dilatación de la arteria caudal, y se anestesiaban suavemente con éter dietílico, según el procedimiento descrito por Dietz et al. (Dietz R, Schömig A, Haebara H y col. 1978. Circ Res 43:I98-I106), para minimizar el efecto del estrés sobre la medida. Además, para asegurar la fiabilidad de la medida, los animales se acostumbraban al procedimiento 2 semanas antes de llevar a cabo el ensayo en cuestión.

La administración de los productos a ensayar se realizó mediante sonda intragástrica en un margen de tiempo comprendido entre las 9 h y las 10 h de la mañana. Las ratas SHR utilizadas para el estudio tenían en ese momento valores de PAS y de PAD comprendidos respectivamente entre 240 y 290 mm Hg, y entre 200 y 250 mm Hg. Las ratas WKY utilizadas para el estudio tenían en ese momento valores de PAS y de PAD comprendidos respectivamente entre 160 y 200 mm Hg, y entre 100 y 140 mm Hg. Se tomaron medidas de la PAS y de la PAD en los animales periódicamente, cada 2 horas, hasta 8 horas post-administración de los productos a ensayar; adicionalmente se tomó una medida de ambas variables (PAS y PAD) 24 horas después de la administración de dichos productos.

En el caso de las leches fermentadas, como producto de administración se usó el sobrenadante (suero) obtenido por centrifugación a 20.000 x g durante 10 minutos de la leche fermentada y pasteurizada a 75ºC durante 1 minuto siguiendo el procedimiento descrito en el Ejemplo 2. Del correspondiente sobrenadante se llevó a cabo una administración única de 5 ml/kg de peso corporal del animal.

De los péptidos de SEQ. ID. N^{os}: 2-7 se administró una dosis única de 10 mg/kg. Los péptidos se disolvieron siempre en agua destilada, y la dosis correspondiente se administraba siempre a cada rata en un volumen de 1 mL, ya que dicho volumen era equiparable al volumen de leche fermentada que recibía cada animal.

Como control negativo (para establecer la variación circadiana de la PAS y de la PAD en ratas sondadas), se utilizaron las medidas de la PAS y de la PAD obtenidas en ratas a las que se les administraba mediante sonda intragástrica 1 mL de agua. Como control positivo (para establecer el efecto sobre la PAS y sobre la PAD de un fármaco IECA prototipo, tal como Captopril) se utilizaron las medidas de la PAS y de la PAD obtenidas en ratas a las que se les administraba mediante sonda intragástrica 50 mg /kg de Captopril. Esta dosis de Captopril se administraba a cada rata en un volumen de 1 mL.

Asimismo, se llevaron a cabo ensayos semejantes a los descritos anteriormente, en los que los animales se trataban por el mismo procedimiento con 1 mL de leche bovina (testigo). Dichos ensayos permitían establecer el efecto de la leche no fermentada sobre la presión arterial de los animales. Los resultados de estos ensayos no se representan en las figuras, ya que los valores de PAS y de PAD correspondientes fueron semejantes a los valores de PAS y de PAD de los animales a los que se administraba agua.

Los resultados obtenidos se agruparon y se obtuvo la media \pm el error estándar de la media (ESM) para un mínimo de 9 ensayos homogéneos. Los datos de los animales tratados se compararon siempre con los datos considerados como control negativo. Para compararlos y obtener la significación estadística se utilizó el test de la "t de Student" para datos no apareados, y se consideró significativa la diferencia para valores de p<0,05.

Las Figuras 5A y 5B muestran, respectivamente, la disminución de la PAS y de la PAD obtenida en ratas SHR a distintos tiempos, tras la administración de la leche fermentada con E. faecalis CECT 5727 y tras la administración de la leche fermentada con E. faecalis CECT 5728. Dichas figuras incluyen, además, la disminución de la PAS y de la PAD observada tras la administración de Captopril. Como era previsible, el Captopril produjo una pronunciada disminución de la PAS y de la PAD en las ratas SHR. La disminución de la PAS fue máxima 6 horas después de la administración del fármaco, mientras que la disminución de la PAD fue máxima 4 horas después de su administración. Los sueros de las leches fermentadas ocasionaron una disminución de la PAS y de la PAD en los animales que fue menor que la disminución producida por Captopril, pero que también fue significativa. Los valores menores de PAS después de administrar la leche fermentada con E. faecalis CECT 5727, se observaron 2 horas después de su administración. En ese momento también se obtuvieron valores muy bajos de PAD, y los valores de esta variable permanecieron bajos y sin modificar prácticamente hasta 6 horas después de la administración. Los valores menores de la PAS y de la PAD después de administrar la leche fermentada con E. faecalis CECT 5728, se observaron 4 horas después de su administración. Los valores de la PAS y de la PAD observados 24 horas después de las distintas administraciones eran semejantes a los que tenían los animales antes de las mismas.

Las Figuras 6A y 6B muestran respectivamente los cambios de la PAS y de la PAD obtenidos en ratas WKY a distintos tiempos, tras la administración del suero de la leche fermentada la leche fermentada con E. faecalis CECT 5727 y tras la administración del suero de leche fermentada con E. faecalis CECT 5728. También se incluyen los resultados obtenidos tras la administración de Captopril. Puede apreciarse que ni las leches fermentadas, ni el Captopril, modificaron la PAS o la PAD de los animales tratados. Estos resultados permiten descartar posibles efectos indeseables de los productos fermentados ensayados sobre la presión arterial de sujetos normotensos.

<110> Grupo Leche Pascual, S.A.

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<120> Cepas de Enterococcus faecalis productoras de péptidos bioactivos, péptidos bioactivos y sus aplicaciones

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<160> 7

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<170> PatentIn versión 3.0

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<210> 2

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<211> 10

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<212> PRT

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<213> Secuencia artificial

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<400> 2

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\sa{Val Leu Gly Pro Val Arg Gly Pro Phe Pro}

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<210> 3

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<211> 7

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<212> PRT

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<213> Secuencia artificial

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<400> 3

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\sa{Leu His Leu Pro Leu Pro Leu}

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<210> 4

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<211> 9

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<212> PRT

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<213> Secuencia artificial

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<400> 4

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\sa{Val Arg Gly Pro Phe Pro Ile Ile Val}

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<210> 5

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<211> 6

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<212> PRT

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<213> Secuencia artificial

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<400> 5

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\sa{Val Val Val Pro Pro Phe}

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<210> 6

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<211> 11

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<212> PRT

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<213> Secuencia artificial

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<400> 6

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\sa{Leu Thr Gln Thr Pro Val Val Val Pro Pro Phe}

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<210> 7

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<211> 13

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<212> PRT

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<213> Secuencia artificial

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<400> 7

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\sa{Val Leu Gly Pro Val Arg Gly Pro Phe Pro Ile Ile Val}

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Claims

1. Un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados y sus sales farmacéuticamente aceptables.

2. Un procedimiento para producir un péptido bioactivo o un derivado y/o una sal farmacéuticamente aceptable del mismo de acuerdo con la reivindicación 1, que comprende fermentar un sustrato que comprende una o más proteínas, péptidos o fragmentos de los mismos que contienen la secuencia de aminoácidos de dicho péptido bioactivo con una cepa de Enterococcus faecalis y, si se desea, aislar el péptido bioactivo y/o convertirlo en un derivado y/o en una sal farmacéuticamente aceptable.

3. Procedimiento según la reivindicación 2, en el que dicha cepa de E. faecalis se selecciona del grupo formado por E. faecalis CECT 5727, E. faecalis CECT 5728 y sus mezclas.

4. Procedimiento según la reivindicación 2, en el que dicho sustrato a fermentar es una fuente de proteínas, péptidos o fragmentos de los mismos, que comprende una o más proteínas, péptidos o fragmentos de los mismos que contienen la secuencia de aminoácidos de dicho péptido bioactivo.

5. Procedimiento según la reivindicación 4, en el que dicho sustrato es de origen animal, vegetal o procedente de un microorganismo.

6. Procedimiento según la reivindicación 5, en el que dicho sustrato comprende leche o un producto lácteo, opcionalmente fermentado, que contiene una o más proteínas lácteas, o un extracto proteico de soja.

7. Procedimiento según la reivindicación 6, en el que dicho sustrato comprende leche o un producto lácteo, opcionalmente fermentado, que contiene caseína.

8. Una cepa de Enterococcus faecalis depositada en la CECT seleccionada entre la cepa identificada como E. faecalis CECT 5727 y la cepa identificada como E. faecalis CECT 5728.

9. Una preparación bacteriana que contiene una cepa de E. faecalis de acuerdo con la reivindicación 8, seleccionada entre E. faecalis CECT 5727, E. faecalis CECT 5728 y sus mezclas.

10. Preparación bacteriana según la reivindicación 9, que contiene, además, uno o más microorganismos diferentes.

11. Preparación bacteriana según cualquiera de las reivindicaciones 9 ó 10, en forma de polvo liofilizado o en una cápsula.

12. Un producto alimentario que comprende una cepa de Enterococcus faecalis según la reivindicación 8, o una preparación bacteriana según cualquiera de las reivindicaciones 9 a 11, o preparado utilizando dicha cepa o preparación bacteriana.

13. Producto alimentario según la reivindicación 12, seleccionado entre un producto lácteo, opcionalmente fermentado y/o sometido a un tratamiento térmico, y una bebida.

14. Producto alimentario según la reivindicación 13, seleccionado entre un producto lácteo fermentado y pasteurizado, una bebida con suero lácteo, una bebida de frutas y una cerveza.

15. Una composición que comprende un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados y sus sales farmacéuticamente aceptables.

16. Una composición farmacéutica que comprende un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la, SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas, y un excipiente farmacéuticamente aceptable.

17. Una composición farmacéutica antihipertensiva que comprende, al menos, un péptido antihipertensivo seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la, SEQ. W. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas, y un excipiente farmacéuticamente aceptable.

18. Un producto alimentario funcional que comprende un producto alimentario y un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la, SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas.

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19. Producto alimentario funcional según la reivindicación 18, en el que dicho producto alimentario comprende bebidas, alimentos en infusión, salsas, condimentos, aliños para ensaladas, zumos de frutas, jarabes o siropes, postres, helados, productos congelados suaves, dulces o chicles.

20. Producto alimentario funcional según la reivindicación 18 ó 19, que comprende, además, una o más sustancias nutricionales.

21. Producto alimentario funcional según cualquiera de las reivindicaciones 18 a 20, en el que dicho producto alimentario funcional es sustancialmente líquido.

22. Producto alimentario funcional según cualquiera de las reivindicaciones 18 a 20, en el que dicho producto alimentario funcional es sustancialmente sólido.

23. Producto alimentario funcional según cualquiera de las reivindicaciones 18 a 20, en el que dicho producto alimentario funcional es una gelatina.

24. Producto alimentario funcional según cualquiera de las reivindicaciones 18 a 20, en el que dicho producto alimentario funcional es un producto lácteo.

25. Un aditivo alimentario que comprende un péptido seleccionado entre los péptidos identificados por la, SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas.

26. Un suplemento alimentario que comprende un péptido seleccionado entre los péptidos identificados por la, SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas.

27. Empleo de una cepa de E. faecalis según la reivindicación 8, seleccionada entre E. faecalis CECT 5727, E. faecalis CECT 5728 y sus mezclas, en la industria alimentaria.

28. El uso de una cepa de E. faecalis según la reivindicación 8, seleccionada entre E. faecalis CECT 5727, E. faecalis CECT 5728 y sus mezclas, para la fabricación de un medicamento.

29. El uso de una cepa de E. faecalis según la reivindicación 8, seleccionada entre E. faecalis CECT 5727, E. faecalis CECT 5728 y sus mezclas, para la fabricación de un medicamento para el tratamiento y/o prevención de la hipertensión arterial en todas sus formas en un ser humano o en un animal, y para el tratamiento y/o la prevención de cualquier desorden asociado con la hipertensión arterial en un ser humano o en un animal.

30. El uso según la reivindicación 29, en el que dicho desorden asociado con la hipertensión arterial se selecciona entre hipertrofia ventricular, insuficiencia cardiaca congestiva, accidentes cerebrovasculares, retinopatía, insuficiencia renal progresiva, aneurismas disecantes, enfermedad coronaria y enfermedades vasculares periféricas.

31. Empleo de una cepa de E. faecalis según la reivindicación 8, seleccionada entre E. faecalis CECT 5727, E. faecalis CECT 5728 y sus mezclas, en la obtención de péptidos bioactivos.

32. Empleo de una cepa de E. faecalis según la reivindicación 8, seleccionada entre E. faecalis CECT 5727, E. faecalis CECT 5728 y sus mezclas en la obtención de péptidos con actividad inhibitoria de la enzima convertidora de angiotensina y/o con actividad antihipertensiva.

33. Empleo según la reivindicación 31 ó 32, en el que dichos péptidos se seleccionan del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables y sus mezclas.

34. Empleo de un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas, en la elaboración de un medicamento para el tratamiento y/o prevención de la hipertensión arterial en todas sus formas en un ser humano o en un animal, y para el tratamiento y/o la prevención de cualquier desorden asociado con la hipertensión arterial en un ser humano o en un animal.

35. Empleo de un péptido seleccionado del grupo formado por los péptidos identificados por la, SEQ. ID. Nº: 2, SEQ. ID. Nº: 3, SEQ. ID. Nº: 4, SEQ. ID. Nº: 5, SEQ. ID. Nº: 6, SEQ. ID. Nº: 7, sus derivados, sus sales farmacéuticamente aceptables, y sus mezclas, en la elaboración de un medicamento para el tratamiento y/o prevención en un ser humano o en un animal de un desorden asociado con la hipertensión arterial seleccionado entre hipertrofia ventricular, insuficiencia cardiaca congestiva, accidentes cerebrovasculares, retinopatía, insuficiencia renal progresiva, aneurismas disecantes, enfermedad coronaria y enfermedades vasculares periféricas.

36. Empleo según cualquiera de las reivindicaciones 34 ó 35, en donde dicho medicamento se administra por vía oral.