ES2268786T3 - Ensayo de union usando antigenos embebidos en termoplastico. - Google Patents

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Abstract

Un ensayo de unión para detectar la presencia de una pareja de unión que comprende: 1) poner en contacto una muestra que se sospecha que contiene una pareja de unión con un material sólido que contiene agente de unión durante un tiempo suficiente y en unas condiciones suficientes para permitir que una pareja de unión se una al agente de unión, donde el material sólido tiene un agente de unión disperso uniformemente en todo ello y embebido en su interior, donde el agente de unión no se acopla químicamente al material sólido y se une a una pareja de unión y donde el material sólido se obtiene solidificando un material fluido polimérico termoplástico que tiene un agente de unión sustancial disperso uniformemente en su interior y 2) detectar la presencia o ausencia de unión de la pareja de unión al agente de unión, donde el agente de unión se selecciona entre el grupo compuesto por: lípidos, fosfolípidos, ADN y ARN, y donde la pareja de unión es un componente que está libre en un líquido y se une al agente de unión embebido previamente para insolubilizarse.

Description

Ensayo de unión usando antígenos embebidos en termoplástico.
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Campo de la invención
La presente invención se refiere a la preparación de un antígeno inmovilizado y su uso en inmunoensayos así como otras aplicaciones biomédicas.
Antecedentes de la invención
Los inmunoensayos se han usado durante décadas como medio para ensayar la presencia cualitativa y cuantitativa de antígenos o anticuerpos en una muestra. Entre las técnicas de inmunoensayo más habituales se incluyen una matriz en fase sólida a la que se une un antígeno o anticuerpo. Aunque se conocen numerosos métodos de unión de antígeno o anticuerpo a la fase sólida y muchos se usan ampliamente, la técnica de unión sigue siendo una etapa importante en la preparación de un inmunoensayo. De hecho, la inmovilización de un anticuerpo o antígeno a la fase sólida es normalmente una de las primeras etapas en la preparación de un inmunoensayo.
Swan, et al. (BSI Corporation), Patente de Estados Unidos 5.414.075, describen el acoplamiento químico de una molécula diana, tal como fosfolípidos, a un soporte plástico tal como poliestireno, usando un agente de acoplamiento químico multifuncional.
Sharma, Patente de Estados Unidos Nº 4.360.358, describe la formación de una fase sólida inmunológicamente activa mediante la incorporación de un reactivo de bajo peso molecular, tal como un hapteno, en un material que forma un polímero sólido. Este polímero se recubre a su vez sobre una fase sólida. La base de la fase sólida puede ser poliestireno. El material que forma un polímero sólido incluye numerosos geles y similares.
Sterhan et al. (Biostar Medical Product, Inc.), Patente Mundial 90/10227, describen la absorción de cardiolipina, fosfolípidos y otros materiales sobre un soporte sólido, tal como una placa con pocillos de plástico, que se recubrió previamente con albúmina de suero bovino metilada.
Shah et al (Baxter Diagnostics Inc.), Patente Mundial 91/10138, describe la absorción pasiva o el acoplamiento químico de cardiolipina, fosfatidilcolina y/o colesterol a placas de poliestireno para los propósitos de un ELISA (ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas). Obsérvese que todo el recubrimiento y acoplamiento ocurre después de que se haya formado la placa de plástico.
Matsuura et al. (Yamasa Shoyu Kabushiki Kaisha), Patente de Estados Unidos 5.506.110, describen la unión de diversos fosfolípidos sobre una placa con pocillos de poliestireno para los propósitos de un ELISA. Los antígenos se absorben pasivamente sobre la fase sólida. Obsérvese la capacidad del ensayo para distinguir entre diversos anticuerpos antifosfolipídicos.
Lostia et al. (Snam Progetti S.p.A.), Patente de Estados Unidos Nº 4.031.201, describen la preparación de fibras que incorporan anticuerpos o antígenos. Estas fibras se usan con numerosos propósitos incluyendo como fase sólida en diversos inmunoensayos. La sustancia activa, que puede ser un hapteno, se mezcla con un polímero, y la mezcla se hace girar después en un baño de coagulación para producir la fase sólida en forma de fibras. Obsérvese que el polímero puede ser poliestireno. Las fibras son porosas y contienen microcavidades.
Peters, Jr. et al. (SmithKline Diagnostics, Inc.), Patente de Estados Unidos 5.013.669, describen un inmunoensayo en el que antígeno o hapteno se acopla químicamente a un polímero que forma un material sólido. Este material se recubre sobre otro soporte sólido. El polímero es soluble en agua de manera reversible y se une químicamente al antígeno/hapteno.
Sutton, (Eastman Kodak Company), Patente de Estados Unidos 5.234.841, describen el recubrimiento de una fase sólida, tal como poliestireno, con un antígeno/hapteno para usar en un inmunoensayo. El material biológicamente activo se disuelve en un disolvente y después se recubre sobre la fase sólida.
Bonacker, et al. (Behringwerke Aktiengesells-chaft), Patente de Estados Unidos 4.118.349 describen inmunoensayos en los que el anticuerpo o antígeno inmovilizado en la fase sólida se une químicamente a una fase sólida de poliestireno. El anticuerpo o antígeno se acopla químicamente al vehículo de poliestireno mediante un compuesto de acoplamiento químico.
Yabusaki (Hana Biologies, Inc.), Patente de Estados Unidos 4.459.362, describe un inmunoensayo para anticuerpos para diversos fosfolípidos usando fosfolípidos en suspensión.
Hartdegen, et al. (W.R. Grace & Co.), Patente de Estados Unidos 4.195.127, describen proteínas de inmovilización que incluyen anticuerpos o antígenos, en un producto espuma de poliuretano. El anticuerpo o antígeno se mezcla con un monómero o prepolímero y se hace reaccionar con el mismo. El conjugado químico del antígeno y prepolímero se polimeriza después para formar la espuma de poliuretano. Esta fase sólida puede usarse después para diversos usos. El anticuerpo o antígeno está acoplado químicamente a la molécula polimérica.
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Nowinski, et al. (Genetic Systems Corporation), Patentes de Estados Unidos 4.609.707 y 4.752.638, describen la formación de un material sólido polímero-anticuerpo o polímero-antígeno mediante la reacción química del anticuerpo o antígeno con un monómero directa o indirectamente para formar un conjugado monómero/anticuerpo o antígeno, seguido de la polimerización del monómero. El material puede usarse después como fase sólida en inmunoensayos. La fase sólida puede tomar cualquier forma.
Johnson, et al. (Miles Inc.), Patente de Estados Unidos 4.822.747, describen la inmovilización de un reactivo hapteno sobre una fase sólida y su uso en un inmunoensayo. La referencia muestra que el hapteno debe acoplarse químicamente a restos reactivos sobre la superficie externa del polímero. Es interesante observar que Johnson, et al. subrayan la necesidad de unión químicamente del hapteno a la fase sólida puesto que los haptenos que no están unidos específicamente pueden lavarse o lixiviarse lentamente de la fase sólida.
Walter, (Miles Laboratories, Inc.), Patente de Estados Unidos 4.390.343, describen elementos analíticos de tipo varilla de nivel donde el anticuerpo o antígeno/hapteno se incorporan en un gel, tal como agarosa, gelatina o PVP.
Jirikowski, (Cytech Biomedicals), documento WO-93/08471, se refiere a soportes poliméricos para ensayos de unión y, en particular, a la potenciación de las características de unión de los soportes poliméricos por tratamiento con disolventes o medios mecánicos. Los soportes poliméricos se fabrican típicamente a partir de un material hidrófobo tal como un copolímero de poliestireno y butadieno.
Fuisz, (Fuisz Technologies), documento WO-92/20329, describe productos enzimáticos que comprenden una matriz que lleva enzimas, que suspende la enzima para protección, suministro, dispersión y activación en el momento deseado y en las condiciones seleccionadas.
Hampp et al., Bayer, documento WO-92/04465 se refiere a un método para inmobilizar macromolélulas orgánicas o biopolímeros que comprende mezclarlos con una dispersión polimérica acuosa sin disolvente, aplicar esta mezcla en forma de una película cohesiva a un sustrato (tal como un biodetector) y secar cuidadosamente la película.
Ramanujam et al., (PHARMACIA), documento WO-9417106 y documento WO-96/17083 se refiere a reactivos proteicos purificados en vehículos de cera. Los reactivos proteicos pueden ser enzimas que modifican el ácido nucleico tales como polimerasas, ligasas y enzimas de restricción.
Avnir et al., (Yissum), documento EP-439318, se refiere a vidrios solgel dopados para métodos analíticos. En los ejemplos, se incorporan diversas proteínas realizando la polimerización de tetra-metoxisilano (TMOS) en su presencia.
Rubenstein, (Hybritech), documento EP-437287 y documento EP-200381 describe fases sólidas para usar en ensayos de unión que comprenden una matriz porosa en la que quedan atrapadas microesferas, llevando las microesferas una pareja de unión. Las matrices porosas dentro de las cuales pueden quedar atrapadas las microesferas incluyen membranas de filtros que comprenden fibras de vidrio, nylon o materiales cerámicos que tienen porosidad definida.
Los inmunoensayos para detectar sífilis se han usado ampliamente durante décadas. Cada unidad de sangre y pacientes de los que se sospecha que tienen cualquier enfermedad de transmisión sexual se evalúan rutinariamente para sífilis mediante inmunoensayo. Las técnicas para evaluar sangre para anticuerpos para sífilis han incluido VDRL (Laboratorio de Investigación de Enfermedades Venéreas), RPR (reagina rápida en plasma), fijación de complementos, inmovilización/adherencia de treponemal, FTA (anticuerpo treponemal fluorescente), ELISA y posiblemente también otros muchos formatos de inmunoensayos. El inmunoensayo más antiguo para fosfolípidos (PL) es la reacción de Wassermann (aprox. 1905) que es un ensayo de fijación de complemento.
Krilis y McNeil, "Thrombosis Research", Vol. 52, pág. 641 a 648 (1988), y Patente de Estados Unidos Nº 5.344.758 describen que los fosfolípidos están presentes o se añaden a una acrilamida antes de que se añada el agente de reticulación como se muestra en el método de Krilis en la columna 10, líneas 38-65 (estos son agentes de reticulación tales como persulfato amónico o riboflavina). En este caso, los fosfolípidos compiten con la química de reticulación del gel de acrilamida porque comparten grupos reactivos idénticos, es decir, C=O y NH_{2}. Por lo tanto, hay reticulación presente entre el agente de unión de Krilis, los fosfolípidos y el gel o matriz. El Ejemplo 1 de Krilis describe el proceso de preparación de una columna cromatográfica de intercambio de iones mediante la mezcla vigorosa de una mezcla lípido/acrilamida y la polimerización con persulfato amónico. El gel se homogeneizó posteriormente y se cargó en una columna de vidrio (véase columna 10, líneas 44-56). Por lo tanto, el ingrediente lipídico de Krilis se polimeriza y se une a un gel de poliacrilamida. Las estructuras químicas de acrilamida ("Gel Electrophoresis of Proteins, editado por B.D. Hames y D. Rick-wood") y la estructura de fosfolípidos, cardiolipina y fosfatidilserina se analizan en la Patente de Krilis y en la Publicación Thrombosis Research. La diacilfosfatida es la molécula estructural para todos los fosfolípidos (grupos de cabeza). Son importantes los dobles enlaces C=O que son los sitios reactivos (junto con los grupos NH_{2} (amino)).
Por lo tanto, en Krilis et al, está claro que el agente de unión interacciona con el material en fase sólida que puede afectar a los sitios de unión del agente de unión.
De acuerdo con la presente invención, el material polimérico se forma y reticula totalmente antes de la adición del agente de unión de manera que no hay oportunidad para la reticulación del material sólido con el agente de unión.
Todos los métodos de inmunoensayo dependen de la unión del anticuerpo al antígeno. El antígeno para la serología de la sífilis históricamente ha sido un extracto alcohólico de corazón de ternera mezclado con colesterol. El antígeno (cardiolipina) se adsorbía típicamente sobre partículas de carbono como fase sólida. Aunque el antígeno no es perfecto, se ha demostrado su eficacia en la protección del suministro sanguíneo.
Otras muchas enfermedades se han asociado también o se han identificado detectando anticuerpos para los mismos antígenos PL o para proteínas de unión a fosfolípidos. Los ejemplos incluyen pacientes con lupus sistémico eritematoso (SLE) y un subconjunto de pacientes identificados como que tienen síndrome antifosfolipídico. Los hallazgos clínicos incluyen trombosis venosa recurrente, trombosis arterial recurrente, absorción espontánea recurrente, trombocitopenia, corea, epilepsia, livedo, hipertensión pulmonar idiopática, demencia, amnesia, migrañas, y trombosis senoidal. Véase Levine, S.R. y Brey, R.L, Lupus, Vol. 5, pág. 347 (1996). Otras enfermedades reumatológicas y colagenosas están presentes también como anticuerpos característicos para PL en el suero del paciente. En el campo del transplante de órganos humanos, fundamentalmente el no funcionamiento del órgano puede aparecer asociado también con la presencia de un anticuerpo antifosfolipídico (aPA). Wagenknecht et al, Human Immunology, 49, pág. 27 (1996).
En consecuencia, hay una gran necesidad y numerosas aplicaciones para un inmunoensayo estandarizado para aPA.
Se han usado ELISA durante 25 años para detectar pequeñas cantidades de sustancias antigénicas. Hoy en día, muchos sistemas ELISA usan placas de 96 pocillos de plástico (poliestireno) (placas Microtiter) que se han adaptado y/o modificado para proporcionar unión óptima de la sustancia antigénica para la que se han producido los anticuerpos. Comenzando en los años 80, el ELISA se seleccionó para usarlo para la detección de anticuerpos para antígenos compuestos por PL y/o proteínas del plasma de unión a PL.
El término "anticuerpo antifosfolipídico" (aPA) se refieren al uso convencional de este término en el que muchos anticuerpos para PL son realmente anticuerpos para proteínas del plasma que se unen a fosfolípidos. Independientemente, los PL se consideran como antígeno. Aunque no se desea ceñirse a ninguna teoría, se cree que las proteínas de unión a fosfolípidos no se unen a aPA en ausencia de otro componente tal como PL a menos que los recipientes de plástico se traten específicamente, tal como superficies plásticas irradiadas, lo que aumenta la unión de ciertas proteínas de unión a fosfolípidos. Véase Mclntyre et al, American Journal of Reproductive Immunology, 37: pág. 101-110 (1997). Aunque la expresión "anticuerpo antifosfolipídico" puede llevar a confusión, se entiende bien en la técnica.
Desde su comienzo, los inmunoensayos usados para la detección de un anticuerpo antifosfolipídico (aPA) en la sangre de un paciente han tenido que vérselas con problemas relacionados con la reproducibilidad, sensibilidad y cuantificación. Las comparaciones interlaboratorio de cuantificación de aPA están particularmente en desacuerdo. Véase Wagenknecht et al, Clinical Immunology Newsletter, 15(2/3):28-38 (1995) para un artículo de revisión de este tema. Un problema fundamental con todos los sistemas ELISA y especialmente con el ELISA para aPA implica las dos primeras etapas importantes en el ensayo; 1. "recubrimiento" del material antigénico a la superficie de plástico de los pocillos de la placa de microtitulación, y 2. "bloqueo" con una sustancia proteica, a menudo albúmina de suero bovino. La etapa de bloqueo puede retirar PL de la placa debido a que la albúmina de suero y otras proteínas pueden unirse a PL y, por lo tanto, compiten con la placa de plástico recubierta con PL para la unión a PL. Adicionalmente, es difícil controlar la etapa de bloqueo para evitar esta pérdida.
En el ELISA para aPA, PL tal como cardiolipina, fosfatidilserina, fosfatidiletanolamina, fosfatidilglicerol, fosfatidildiglicerol, fosfatidilinositol, fosfatidilcolina y ácido fosfatídico se usan para recubrir los pocillos de las placas. Esta etapa de recubrimiento a menudo se realiza en presencia de disolventes orgánicos, tales como cloroformo, que son deseables por su capacidad para mantener los lípidos en disolución. Los disolventes orgánicos son indeseables debido a que atacan el plástico y pueden provocar una refracción de la luz no deseada cuando los contenidos de la placa se miden para cambios en la densidad óptica, es decir, en el color. También, se ha informado de que hasta el 64% del antígeno fosfolipídico se retiró de la superficie plástica durante el transcurso del ensayo. Véase Smolarsky, Journal of Immunological Methods, 38: pág. 85-93 (1980). Los disolventes orgánicos no son aceptables para ciertas sustancias proteicas que pueden desnaturalizarse e inactivar sus propiedades de unión.
Después de aplicar PL a los pocillos, un segundo problema puede ser la oxidación de los ácidos grasos que contienen PL. La oxidación de ácidos grasos insaturados provoca que se enrancien y/o reticulen. La reticulación por oxidación es el principio básico que ocurre en el "secado" de pinturas y barnices. Se ha demostrado que la oxidación altera las propiedades antigénicas de algunos PL. Para evitar este problema, las placas de ELISA para aPA a menudo se secan en atmósfera de nitrógeno o se almacenan en recipientes cerrados herméticamente.
Un tercer problema es la pérdida de antígeno recubierto debido al agente de bloqueo y a numerosas etapas de lavado requeridas durante el transcurso del ELISA. Históricamente, las múltiples etapas en una preparación de placa de ELISA para aPA generan otros problemas y gastos tales como el coste del trabajo intensivo de los procedimientos de puesta en marcha. Debido a la falta de consenso acerca del recubrimiento con PL de la placa entre laboratorios que realizan estos ensayos, la mala reproducibilidad intra- e interlaboratorio se ha considerado un problema.
Existen problemas similares con la inmovilización de otros antígenos y anticuerpos a superficies de plástico. Otros ensayos de unión y otras superficies tienen problemas similares. Independientemente del antígeno (o anticuerpo), proteína, fosfolípido, carbohidrato (tal como antígenos del grupo sanguíneo) o ácido nucleico, tienen todos ciertos problemas inherentes cuando se inmovilizan sobre una superficie de plástico, no siendo el menor de ellos la retención de sus propiedades de unión.
Muchos plásticos no tratados son hidrófobos. Si un agente de unión que se está inmovilizando tiene una proporción hidrófoba, esta porción tenderá a adherirse a la superficie de plástico si se usa un soluto vehículo acuoso. Dependiendo del soluto y de las superficies utilizadas, la porción complementaria del agente de unión tenderá a adherirse a la superficie de plástico. En los inmunoensayos, la unión a anticuerpo-antígeno ocurre sólo en una porción específica de cada molécula. Esto mismo es cierto para otros ensayos de unión receptor/ligando. Si esta porción está oscurecida por la superficie del plástico, se inhibirá la unión. Esto puede conducir a resultados irreproducibles menores que las concentraciones verdaderas e incluso negativos falsos.
Existen problemas similares con la inmovilización de cualquier ligando o receptor en un ensayo de unión, unión de afinidad o sistema cromatográfico, inmovilización de enzimas y para el recubrimiento de implantes médicos para hacerlos más aceptables para el receptor.
La presencia de niveles de anticuerpo, antígeno o ligando en una muestra biológica es indicativo de diversas afecciones y es diagnósticamente importante. Por ejemplo, el anticuerpo para PL en el suero puede ser indicativo de si una infección permanece o si es probable un estado de enfermedad autoinmune. Una exposición pasada al antígeno, tal como con una infección de sífilis ya tratada, sin una infección actual activa puede detectarse también aunque la valoración del anticuerpo finalmente sea menor según pasa el tiempo, particularmente valoraciones con IgM e IgA. Igualmente, los altos niveles de aPA se correlacionan con la aparición adicional de trombosis en pacientes con SLE. Para cuantificar el nivel de anticuerpo en la sangre, uno debe tener un ensayo convencional reproducible ya que hay una correlación entre el número de moléculas de antígeno sobre el soporte sólido y el número de moléculas de anticuerpo unidas resultante de la aplicación de la muestra.
Sumario de la invención
La presente invención proporciona un ensayo de unión para detectar la presencia de una pareja de unión de acuerdo con las reivindicaciones adjuntas y usa una preparación convencional y estable de parejas de unión que se reproduce fácilmente a gran escala sin depender del uso cuidadoso por parte del operador de un ensayo de unión en fase
sólida.
La presente invención usa un agente de unión inmovilizado uniforme capaz de unirse a e insolubilizar una pareja de unión en un líquido de muestra.
La presente invención usa materiales en los que el agente de unión se distribuye uniformemente a través de un material sólido de manera que la distribución de agentes de unión sobre la superficie sea de una cantidad predefinida.
La presente invención usa un agente de unión inmovilizado que no se lixivie o eluya de una fase sólida.
La presente invención usa un agente de unión inmovilizado donde una pareja de unión unida puede separarse y la fase sólida puede reutilizarse para el mismo u otros propósitos.
La presente invención usa un agente de unión inmovilizado para cromatografía de afinidad para separar una pareja de unión predefinida deseada de una muestra.
La presente invención usa un inmunoensayo que implica la unión de una pareja de unión al agente de unión inmovilizado.
La presente invención usa antígenos inmovilizados reutilizables o enzimas que se embeben en la fase sólida.
La invención usa una mezcla de uno de las dos sustancias de unión con un material plástico fluido que se endurece después en una fase sólida. El agente de unión se embebe en la fase sólida y la pareja de unión está inicialmente libre en un fluido. La fase sólida con un agente de unión embebido por todo ello puede usarse después en cualquier formato de inmunoensayo convencional donde un agente de unión se embebe en una fase sólida.
Aunque los métodos de la técnica anterior para recubrir superficies de plástico con antígenos PL no han sido completamente satisfactorios, la presente invención evita el uso de la etapa de recubrimiento que da como resultado variaciones en recubrimiento, estabilidad sobre la superficie y resultados inconsistentes. La pérdida de antígeno, como se ha observado anteriormente, se elimina cuando el antígeno se embebe en la matriz de fase polimérica. La presente invención mezcla el antígeno con un material termoplástico que se calienta hasta un estado fundido. La mezcla se usa después en inyección convencional y moldeo por soplado para formar la fase sólida. El proceso proporciona una distribución uniforme y una concentración constante de antígeno PL en el material plástico.
Breve descripción de los dibujos
La Fig. 1 es una vista en corte de un tubo de ensayo con un agente de unión disperso por todo ello.
La Fig. 2 es el mismo tubo de ensayo después de que un líquido de muestra que contiene una pareja de unión se añade y se deja un tiempo suficiente para que la pareja de unión se una al agente de unión.
La Fig. 3 es el mismo tubo de ensayo de la Fig. 2 después de lavarlo y añadir un agente de marcado (anticuerpo o proteína G marcados) que se une a la pareja de unión insolubilizada en el tubo de ensayo.
Las Fig. 4-8 son gráficos que muestran datos para detectar aPA usando tubos que contienen PL embebido en su interior.
Las figuras se dibujan para ilustrar ciertas características de la invención y no se dibujan a escala con respecto a los otros componentes. Además, ciertos componentes se dibujan esquemáticamente cuando son posibles numerosos diseños y formatos de ensayos diferentes para la realización práctica de la invención.
Descripción de la realización preferida
Una realización de la presente invención se refiere al uso en un ensayo de unión de agentes de unión incorporados en sustratos en fase sólida, particularmente materiales plásticos, los productos producidos por los mismos (tales como tubos, perlas y placas multi-pocillo). Aunque algunos ejemplos especificados implican un ELISA, la presente invención no se limita a ningún formato de inmunoensayo particular con la condición de que al menos uno de ligando, receptor, anticuerpo, antígeno o hapteno esté embebido en una fase sólida durante el inmunoensayo. De hecho, la presente invención puede usarse para otros ensayos de unión, algunos de los cuales se ejemplifican a continua-
ción.
El agente de unión se incorpora a un material plástico para preparar un agente de unión embebido en fase sólida para usar en un ensayo. En el sustrato en fase sólida 12, el agente de unión 11 se distribuye uniformemente por todo ello y se embebe en el sustrato en fase sólida 12. El sustrato en fase sólida 12 puede estar en la forma de un recipiente. Una muestra líquida 13 que contiene una pareja de unión 14 se añade al recipiente y la pareja de unión se une al agente de unión. Como se representa en la Fig. 2, la pareja de unión puede ser una molécula de anticuerpo que se ha ampliado para facilitar la visualización. La muestra líquida se decanta después, o se aspira y se lava. Un agente de marcado 15 se añade después al recipiente que se une a la pareja de unión 14. El recipiente se decanta de nuevo o se aspira y se lava para retirar cualquier agente de marcado no unido. El marcador 16 se detecta después de una manera apropiada para el marcador particular. Cuando se usa un marcador fluorescente, la presencia del marcador puede observarse directamente exponiéndolo a las longitudes de onda de luz apropiadas y observando la emisión de otras longitudes de onda correspondientes al marcador fluorescente. El marcador puede detectarse cualitativamente o medirse cuantitativamente y bien unirse al sustrato en fase sólida o bien en el líquido retirado que contiene agente de marcado sin unir.
Aunque el sustrato en fase sólida 12 en la forma de un recipiente se describe como que es de plástico, puede reconocerse que se pueden usar otros materiales. Igualmente, el agente de unión 11 se muestra como punteado simplemente para describir su distribución a través del sustrato en fase sólida. En realidad, el agente de unión puede ser una molécula que es relativamente mucho menor que los puntos mostrados. Igualmente, las moléculas de anticuerpo usadas para la pareja de unión y agente de marcado son realmente moléculas y se muestran mucho más grandes de lo que son en realidad. Aún adicionalmente, el agente de marcado puede ser más grande (en el ejemplo una perla) o más pequeño (en el ejemplo de un átomo radioactivo) que el asterisco mostrado.
Los términos anticuerpo, antígeno, hapteno, ligando y receptor se usan de manera intercambiable en toda esta memoria descriptiva dependiendo de la aplicación particular ilustrada. Todas estas se consideran sustancias de unión. Las expresiones "agente de unión" y "pareja de unión" se usan para incluir cualquiera de estos componentes. Para facilitar la descripción, la expresión "agente de unión" se refiere al componente que se embebe en la fase sólida y el término "pareja de unión" se refiere al componente que está libre en un líquido y que se une al agente de unión embebido previamente para insolubilizarlo. El agente de unión de la invención se selecciona entre lípidos, fosfolípidos, ADN y ARN.
No es necesario que todo el objeto tenga la composición de fase sólida usada en la presente invención, en lugar de ello, sólo es necesario preparar la porción de fase sólida en contacto con la muestra líquida de dicho material. Por ejemplo, los pocillos o una tira de pocillos de una placa multi-pocillo pueden prepararse a partir de la composición usada en la presente invención mientras que el resto de la placa multi-pocillo puede prepararse a partir de cualquier plástico convencional o incluso metal. Esta disposición permite retirar un pocillo individual para análisis posterior. También, como la composición usada en la presente invención es más cara que el material en fase sólida sin el agente de unión, se obtiene un beneficio económico resultante del uso de la combinación para preparar ciertas partes que están en contacto con el líquido que contiene la muestra.
Las etapas físicas implicas incluyen mezclar el agente de unión con un material que ha de convertirse en la fase sólida o sustrato. El material es un termoplástico y el agente de unión a embeber se mezcla con una pequeña reserva de gránulos de plástico y se calienta hasta que se funde o hasta que el agente de unión puede mezclarse con el propio plástico fundido. La uniformidad en la mezcla del agente de unión y los gránulos de plástico se potenció debido a la electricidad estática generada durante la mezcla que provocó un recubrimiento más uniforme sobre los gránulos de plástico y una distribución uniforme por toda la mezcla. El plástico fundido se forma después en un sustrato plástico de cualquier forma deseada. El agente de unión se distribuye por todo el sustrato plástico. No es necesario que ocurra reacción química entre el sustrato plástico y el agente de unión, ni es particularmente deseable una reacción química. Los ejemplos de polímeros termoplásticos adecuados incluyen poliestiereno, polietileno, polipropileno, policarbonato, polietilentereftalato, poliéster (por ejemplo Dracon), poliuretano, poliolefina, alcohol polivinílico, PVP y otros polímeros usados en contacto con tejidos o fluidos biológicos.
Pueden usarse otros materiales plásticos tales como polímeros termoestables. En una realización alternativa de esta invención, el agente de unión se mezcla con los monómeros u oligómeros que se calientan después para polimerizar o reticular la composición, atrapando de esta manera el agente de unión. El agente de unión se selecciona para que no participe en la reacción de polimerización por reticulación. En una realización preferida, el agente de unión se trata de manera que no participa en la reacción de unión por polimerización.
El sustrato plástico puede prepararse también mediante métodos de polimerización químicos, por luz ultravioleta u otros métodos de polimerización no térmicos. Pueden añadirse diversos endurecedores, clarificadores y plastificantes para dar al sustrato sus propiedades físicas deseadas. En dicha situación, el agente de unión puede mezclarse con un material formador de sustrato (por ejemplo monómeros) antes de o simultáneamente con la adición del agente de endurecimiento o el agente de polimerización. Los ejemplos incluyen epoxis y algunos de los mismos polímeros mostrados anteriormente como polímeros termoplásticos.
La fase sólida que contiene al agente de unión tiene una ventaja clara respecto a otros componentes insolubilizados en ensayos de unión convencionales. En la presente invención, cuando el ensayo se completa, se puede separar la pareja de unión unida usando ácido diluido, desnaturalización u otras técnicas más rigurosas que no podrían usarse si el agente de unión simplemente se adsorbiera a la fase sólida. Esto permite reutilizar la misma fase sólida, lo que ahorra tiempo y esfuerzo de calibración de una nueva fase sólida. La naturaleza única de embebido del agente de unión en una fase sólida usada de acuerdo con la presente invención permite exponer el agente de unión a condiciones químicas y/o físicas inaceptables de cualquier otra manera.
Dependiendo de las propiedades del agente de unión, el plástico y el molde u otro medio de formación, el agente de unión puede concentrarse de manera natural en la superficie del sustrato plástico formado. También, cuando el agente de unión tiene porciones diferentes con propiedades diferentes, el agente de unión puede mantenerse preferentemente en una configuración particular. Por ejemplo, en un plástico hidrófobo, tal como poliestireno, un sustrato de unión que tiene restos tanto hidrófilos como hidrófobos, tal como un receptor de unión a la membrana de la célula proteica, la porción hidrófila es más probable que se exponga a la superficie del sustrato plástico. Esta orientación puede potenciarse usando un molde más hidrófilo o fluido de refrigeración hidrófilo en contacto con el sustrato
plástico.
El agente de unión puede estar compuesto por un componente adicional distinto de un resto de unión. En otra realización de la presente invención, el agente de unión puede acoplarse en primer lugar químicamente a otro compuesto químico que se asocia fácilmente con el material que forma el sustrato de fase sólida. Por ejemplo, cuando se usa un sustrato hidrófobo y un presunto agente de unión muy hidrófilo, puede ser ventajoso hacer reaccionar primero químicamente un resto hidrófobo con el presunto agente de unión, de manera que una porción del agente de unión total se mezcle fácilmente con el sustrato hidrófobo. Como alternativa, se puede añadir un tensioactivo u otra composición al material para hacer que la fase sólida ayude en la adherencia, distribución y embebido del agente de unión del sustrato en fase sólida. También, puede embeberse sólo un compuesto hidrófobo que reaccione con y se una al agente posteriormente.
La cantidad de agente de unión presente en la fase sólida puede variar ampliamente; por ejemplo, de aproximadamente 0,00000001 a aproximadamente 500 partes en peso por 1000 partes en peso de material que forma la fase sólida. En una realización preferida, el agente de unión está en el intervalo de 1,0 \mug/ml a 100 mg/ml.
Aunque todos los agentes de unión tienen ciertas limitaciones de temperatura y químicas, el material que forma el sustrato plástico puede elegirse o modificarse cuidadosamente para acomodar esta temperatura y limitaciones químicas. Dependiendo del agente de unión empleado puede elegirse juiciosamente un material para que se convierta en sustrato sólido y las condiciones necesarias para hacerlo solidificar.
Por ejemplo, ciertos poliestirenos se funden a una temperatura relativamente baja. Estas temperaturas son compatibles con agentes de unión fabricados a partir de polinucleótidos y lípidos. De hecho, ciertos poliestirenos se funden a temperaturas que sólo son dos veces tan calientes como las usadas en la preparación de los antígenos antes de correrlos en un gel de poliacrilamida, particularmente en la etapa de desnaturalización por calor. La temperatura a la que el poliestireno termoplástico se funde puede disminuirse adicionalmente mediante la adición de diversos compuestos químicos. La modificación de las propiedades físicas y ópticas de materiales plásticos se conoce per se. La cantidad en peso del agente de unión que se añade es muy pequeña comparada con la cantidad en peso de plástico y, por lo tanto, es improbable que afecte significativamente a sus propiedades. Puede decirse lo mismo para usar otros materiales sustratos.
Puede usarse cualquiera de los formatos de ensayo de unión convencionales con la condición de que el agente de unión se embeba en primer lugar en una fase sólida antes de añadir una pareja de unión. La literatura de patentes está llena de docenas de formatos de unión diferentes en las técnicas de inmunoensayo, ensayo de hibridación de ácido nucleico y ensayo de unión bioespecífica. Los formatos de unión habituales incluyen ensayos intercalados que se muestran en las Figs. 2-3. Los ensayos de unión competitiva pueden usarse cuando una segunda pareja de unión, se añade antes, durante, o después de añadir la pareja de unión de manera que compiten para unirse al agente de unión. Como alternativa, puede usarse un agente de marcado para unirse a la pareja de unión en competición con el agente de unión. Normalmente, cualquiera de la pareja de unión o la segunda pareja de unión se marcan directa o indirectamente mediante un agente de marcado para facilitar la detección del marcador unido o libre.
Una muestra se refiere a una composición que contiene una pareja de unión que puede ser de cualquier fuente. La pareja de unión, y quizás otros componentes, en la muestra se solubilizan en un fluido antes de usar en un ensayo de unión de acuerdo con la presente invención. La muestra es preferiblemente una muestra biológica, más preferiblemente un fluido biológico.
Una de las sustancias de unión puede medirse directamente mediante actividad enzimática o similar basado únicamente en su presencia o su actividad potenciada o inhibida por el agente de unión que se une a la pareja de unión. Por ejemplo, si el agente de unión es una enzima y la pareja de unión es un inhibidor (o viceversa), puede medirse directamente la presencia de la pareja de unión en una muestra añadida. Igualmente, si una de las sustancias de unión es una enzima que necesita un sustrato, fuente de energía, cofactor o enzima o vitamina para su actividad, la presencia de cualquiera de estos como sustancia de unión en una muestra puede detectarse midiendo la actividad enzimática. Puede usarse también el ensayo inverso para la presencia de la enzima.
El agente de unión y la pareja de unión pueden tener una amplia variedad de estructuras químicas, con la condición de que se unan entre sí de una manera que no sea fácil de desunir mediante un simple lavado. La unión es preferiblemente una unión específica aunque puede ser de una naturaleza más general. Las fuerzas electrostáticas (por ejemplo, fuerzas de van der Waals), químicas (enlace covalente) y físicas (buen ajuste dimensional) pueden estar implicadas o constituir las propiedades de unión.
La afinidad de unión y la avidez pueden variar dependiendo de las necesidades requeridas para cada aplicación. Por ejemplo, para algunos ensayos, puede ser esencial una unión altamente específica. Para otras técnicas, puede necesitarse en lugar de ello una propiedad de unión más genérica. Por lo tanto, puede ser deseable un número grande de sustancias embebidas.
Estos componentes que pueden unirse pueden ser proteínas (incluyendo lipoproteínas, glicoproteínas, metaloproteínas, fragmentos y subunidades), más preferiblemente anticuerpos o fragmentos de los mismos (Fab, Fc, Fab2, etc.), antígenos, enzimas, hormonas, receptores celulares, microorganismos o partículas virales. Otras estructuras químicas tales como lípidos, polisacáridos (especialmente antígenos bacterianos, antígenos de grupo sanguíneo mayoritario y minoritario), vitaminas, sustratos enzimáticos, coenzimas, co-factores, iones metálicos unidos, polinucleótidos y otros compuestos orgánicos (tales como un metabolito, ciclodextrina, monosacárido o agente quelante) pueden usarse como pareja de unión. El agente de unión y/o pareja de unión puede ser una fracción de una molécula con la condición de que retenga las propiedades de unión.
Para la mayoría de formatos de ensayo de unión, es necesario un agente de marcado además del agente de unión y de la pareja de unión para determinar si las dos sustancias de unión realmente se unen entre sí. El agente de marcado es una composición, normalmente un compuesto químico conjugado que tiene dos propiedades. En primer lugar, el agente de marcado debe contener un marcador; en segundo lugar el agente de marcado debe unirse física o químicamente a la pareja de unión o al agente de unión. Típicamente, estas dos propiedades pertenecen a diferentes porciones del agente de marcado, donde las dos porciones están acopladas químicamente juntas.
Los ejemplos de marcadores adecuados incluyen: un resto radioactivo, una enzima o porción de la misma, un sustrato enzimático, un resto fluorescente, un resto quimioluminiscente, un inactivador, un resto que refleja o adsorbe luz u otra radiación electromagnética, una partícula magnética, paramagnética o supermagnética, un compuesto químico detectable por resonancia magnética, una partícula sólida porosa o lámina o cualquier resto que sea fácilmente detectable directamente o que interaccione con otra sustancia (tal como otro resto químico, un iniciador de polimerización, etc.) que da como resultado un cambio detectable.
Los ejemplos de la porción del agente de marcado que se unen a la pareja de unión incluyen: un anticuerpo, un antígeno, un hapteno, proteína A o G, ADN, un adsorbente de la pareja de unión o agente de unión, biotina, avidina/estreptavidina y restos que reaccionan químicamente con la pareja de unión o el agente de unión.
El agente de detección puede estar en varias porciones tales como anticuerpo IgG de conejo anti-ratón marcado con la enzima glucosa oxidasa y por separado libre en otra solución, la enzima glucosa sustrato, una segunda enzima peroxidasa, y 3,3',5,5'-tetrametilbencidina como cromógeno.
La fase sólida que contiene el agente de unión usada en el ensayo de la invención puede usarse como un adsorbente sin separación cromatográfica. En esta situación, es deseable retirar una pareja de unión de una muestra líquida porque es tóxico o indeseable de otra manera. Para dicha adsorción, la muestra líquida se pone en contacto con la fase sólida que contiene agente de unión en condiciones que permiten la unión, y después el sólido y el líquido se separan. Los ejemplos incluyen el uso de eritrocitos, plaquetas, células o líneas celulares, o versiones liofilizadas de las mimas como agente de unión para unirse y absorber sustancias de unión no específicas que pueden interferir con el ensayo. La fase sólida que contiene agentes de unión puede regenerarse después separando la pareja de unión unida usando extremos de pH, condiciones iónicas e incluso productos químicos y/o condiciones rigurosas.
En otra realización de la presente invención, el agente de unión embebido en la fase sólida puede usarse para detectar o separar partículas grandes.
De una manera similar, las pequeñas partículas sólidas que contienen el agente de unión pueden usarse en ensayos de aglutinación para una pareja de unión en una muestra. Sin embargo, en dicho ensayo, es preferible que la pareja de unión sea capaz de unirse a dos o más sitios de unión o puede añadirse otro reactivo capaz de unirse a dos o más parejas de unión o agentes de unión para inducir la aglutinación aparente de las partículas dependiendo de si la pareja de unión está presente o no en la muestra.
Aún otra realización de la presente invención implica numerosos ensayos de hibridación de polinucleótidos y técnicas para detectar o secuenciar polinucleótidos diana en una muestra. En este sistema, la fase sólida contiene un polinucleótido como agente de unión. La pareja de unión es el polinucleótido diana como una pareja de unión que puede unirse mediante hibridación al agente de unión. Las etapas de detección se conocen per se en el campo de ensayo de hibridación de ADN.
La fase sólida que constituye el sustrato plástico puede moldearse en cualquier forma tal como partículas, perlas, tubos, placas multi-pocillo, etc. La fase sólida puede ser monolítica o porosa dependiendo de la pareja de unión potencial y las cantidades de agente de unión y pareja de unión presentes que se van a unir. La fase sólida es, preferible y ventajosamente, ópticamente transparente.
Beneficios relacionados con la invención
La capacidad para impregnar satisfactoriamente artículos de plástico con un antígeno seleccionado entre el grupo compuesto por lípidos, fosfolípidos, ADN, y ARN puede conducir a muchas ventajas en la tecnología ELISA así como en otras aplicaciones biomédicas, tanto diagnósticas como clínicas. Con respecto a antígenos de PL, la impregnación en procesos plásticos puede mejorar el ELISA:
1) Proporcionando una distribución uniforme y concentraciones constantes de antígeno en los pocillos de la placa.
2) Eliminando la pérdida de antígeno durante los procedimientos de lavado.
3) Acortando el tiempo de ensayo y disminuyendo la cantidad de trabajo del tecnólogo.
4) Proporcionando mejoras en la consistencia y estandarización intra- e interlaboratorio.
5) Permitiendo la reutilización del artículo plástico para ensayos y/o procedimientos adicionales. Otros beneficios de esta tecnología son la fabricación de perlas de plástico impregnadas con antígeno para purificación de afinidad de anticuerpos específicos y proteínas o receptores de plasma de unión a PL. La inclusión de PL en plásticos usados para dispositivos médicos, por ejemplo, válvulas artificiales e injertos en vasos proporcionaría una superficie más natural o biológica, es decir, menos trombogénica, para el contacto con fluidos corporales.
Ejemplo 1
Cinco libras (2,27 kg) de perlas de poliestireno y 500 mg de cardiolipina liofilizada se mezclaron mediante una varilla de acero en un recipiente de acero inoxidable. Esta mezcla fue facilitada por electricidad estática mientras la cardiolipina se distribuía minuciosamente por toda la reserva de gránulos de poliestireno. La mezcla se extruyó en una hélice calentada que fundió el poliestireno y lo inyectó en un molde para tubos cónicos de 50 cc.
El material fundido solidificó por enfriamiento. El tubo cónico acabado se retiró después del molde y estaba preparado para el uso inmediato sin la adición de ningún recubrimiento antigénico.
Ejemplo 2
Los tubos producidos en el Ejemplo 1 se bloquearon después incubando una solución de albúmina de suero bovino al 10% en los tubos durante una hora a temperatura ambiente. Los tubos bloqueados se ensayaron para determinar si la cardiolipina retenía sus propiedades antigénicas y de unión a la proteína del plasma y funcionaba normalmente en condiciones adecuadas para ELISA. Las muestras de suero líquido que se sabe que contenían aPA y muestras de suero líquido que se sabe que no contenían aPA se diluyeron 1:20, 1:50, 1:100 y 1:400 y se añadieron a diferentes tubos y condiciones ajustadas que permiten la unión anticuerpo-antígeno durante 40, 80 y 120 minutos. El líquido se decantó del tubo y el interior de los tubos se lavó con cuidado cuatro veces para retirar cualquier anticuerpo unido. Un anticuerpo de cabra o de ratón monoclonal marcado con enzima (fosfatasa alcalina o peroxidasa de rábano picante) dirigido a IgG humana, A o M se añadió al tubo y se dejó que se uniera a cualquier anticuerpo humano presente durante una hora. El anticuerpo marcado se decantó después desde el tubo y el interior del tubo se lavó con cuidado cuatro veces para retirar cualquier anticuerpo marcado no unido. Se añadieron al tubo los reactivos de ensayo que contenían un sustrato apropiado para cada enzima. Después de hacer reaccionar con las enzimas, el sustrato formó directa o indirectamente un producto que es espectrofotométricamente detectable. Para las muestras que no contenían aPA, sólo el fondo fue espectrofotométricamente detectable. Los datos se muestran gráficamente en las
Figs. 4-7.
Ejemplo 3
Tubos de 50 cc de polipropileno que contenían antígeno de cardiolipina se prepararon también de la misma manera que en el Ejemplo 1 excepto que se sustituyó el poliestireno con polipropileno. Los tubos que contenían polipropileno se usaron después en un ELISA usando las mismas técnicas y reactivos que en el Ejemplo 2. Aunque los resultados fueron menores a aquellos usando poliestireno, el ensayo fue satisfactorio para la detección cualitativa y cuantitativa de aPA en muestras de suero.
Ejemplo 4
Después de realizar el inmunoensayo del Ejemplo 2 o 3, el contenido de anticuerpo de los tubos se separó lavando en un tampón de pH 2,5. Los tubos impregnados con cardiolipina se reutilizaron después y los resultados fueron esencialmente los mismos. Incluso después de usarlos una tercera vez, la variación fue menor del 5% respecto a los datos obtenidos usando tubos vírgenes. Por lo tanto, las propiedades antigénicas de TL no se vieron afectadas por la fabricación del artículo plástico y la posterior separación de los anticuerpos.
Ejemplo 6
Cinco libras (2,27 kg) de gránulos de reserva de poliestireno se mezclan con 50 ng de oligonucleótido liofilizado con una cola poli-T que tiene una longitud media mayor de aproximadamente 1,0 kb mediante una varilla de acero en un recipiente de acero inoxidable de una manera similar a la del Ejemplo 1 para distribuir uniformemente el oligonucleótido por todos los gránulos de poliestireno. La mezcla se extruye en una hélice calentada que funde el poliestireno e inyecta la mezcla en un molde para tubos cónicos de 50 cc.
El material fundido solidifica por enfriamiento. El tubo cónico acabado se retira después del molde y está listo para el uso inmediato sin la adición de ningún recubrimiento de polinucleótido.
Ejemplo 7
Los tubos producidos en el Ejemplo 6 se llenan después con tampón de hibridación que contiene 0,5 ng de ADN de muestra que tiene una longitud media de aproximadamente 600 pb y una secuencia complementaria al oligonucleótido embebido en el plástico. El ADN de muestra se tiene incorporado digoxigenen en aproximadamente el 10% de los TTP en la secuencia de muestra de ADN. Los tubos de control omiten la adición del ADN de muestra. Los tubos se sitúan en un baño de agua hirviendo hasta que la temperatura del tampón de hibridación permanece por encima de 90ºC durante dos minutos. Los tubos se retiran y se dejan enfriar a la temperatura de hibridación óptima para el oligonucleótido y permanecen a esta temperatura durante 60 minutos. El líquido se decanta de los tubos y se lava con una serie de tampones con alto contenido salido. Los tubos se bloquean con albúmina de suero bovino al 10%, un agente de bloqueo, durante 30 minutos a temperatura ambiente. Después, el agente de bloqueo se decanta, se añade el anticuerpo para digoxigenen marcado con fosfatasa alcalina que contiene tampón y se incuba a temperatura ambiente durante 60 minutos. Los tubos se lavan 3 veces con un tampón de solución salina. Se añade paranitro-fenilfosfato en tampón dietanolamina y los tubos se incuban en la oscuridad durante 60 minutos. La cantidad de color desarrollado se determina espectrofotométricamente y se compara con tubos de control en los que no se añade ADN de muestra para determinar la presencia de fosfatasa alcalina que indica que los tubos con ADN incorporado sirven eficazmente como fase sólida para un ensayo de unión a ADN.
Ventajosamente, el método de preparación del sustrato en fase sólida que contiene el agente de unión que tiene un agente de unión disperso uniformemente por todo un material sólido puede realizarse a temperaturas de fusión altas, preferiblemente temperaturas mayores de 100ºC. Por ejemplo, el proceso de la invención puede realizarse a 226ºC para poliestireno, 232ºC para propileno y 246ºC para policarbonato. El método de preparación del sustrato en fase sólida que contiene el agente de unión es preferiblemente un método de moldeo por inyección y preferiblemente el proceso de moldeo por inyección se realiza sustancialmente en ausencia de agua.

Claims (16)

1. Un ensayo de unión para detectar la presencia de una pareja de unión que comprende: 1) poner en contacto una muestra que se sospecha que contiene una pareja de unión con un material sólido que contiene agente de unión durante un tiempo suficiente y en unas condiciones suficientes para permitir que una pareja de unión se una al agente de unión, donde el material sólido tiene un agente de unión disperso uniformemente en todo ello y embebido en su interior,
donde el agente de unión no se acopla químicamente al material sólido y se une a una pareja de unión y donde el material sólido se obtiene solidificando un material fluido polimérico termoplástico que tiene un agente de unión sustancial disperso uniformemente en su interior y 2) detectar la presencia o ausencia de unión de la pareja de unión al agente de unión,
donde el agente de unión se selecciona entre el grupo compuesto por: lípidos, fosfolípidos, ADN y ARN, y donde la pareja de unión es un componente que está libre en un líquido y se une al agente de unión embebido previamente para insolubilizarse.
2. El ensayo de unión de la reivindicación 1, en el que el material sólido que contiene el agente de unión se obtiene mediante 1) mezclando un material fluido que se ha convertido en un material sólido con un agente de unión de manera que el agente de unión se distribuye uniformemente dentro del material fluido para formar una mezcla o, alternativamente, mezclar el agente de unión con un material termoplástico o sólido y después calentar hasta que se funda y 2) solidificar y conformar la mezcla para formar un material sólido que contiene agente de unión.
3. El ensayo de unión de acuerdo con la reivindicación 1 o 2 en el que el material fluido contiene un monómero u oligómero que forma un material sólido cuando se polimeriza o reticula y donde el agente de unión se selecciona o se trata de manera que no participa en dicha polimerización o reticulación.
4. El ensayo de unión de acuerdo con la reivindicación 3 en el que el monómero u oligómero se polimeriza o reticula por calor o mediante la adición de un compuesto químico.
5. El ensayo de unión de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4 en el que el material sólido se obtiene usando un proceso de moldeo por inyección.
6. El ensayo de unión de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 en el que la detección de la presencia o ausencia de unión de la pareja de unión al agente de unión comprende poner en contacto un agente de marcado con la muestra o con el material sólido que contiene la pareja de unión antes o después de que la muestra se ponga en contacto con el material sólido que contiene el agente de unión.
7. El ensayo de unión de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6 en el que las parejas de unión pueden separarse del material sólido mediante la aplicación de un ácido o mediante cambios en el pH o condiciones iónicas para preparar el material para reutilizarlo en ensayos de unión.
8. El ensayo de unión de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7 en el que el material sólido que contiene el agente de unión comprende uno o más polímeros termoplásticos seleccionados entre el grupo compuesto por poliestireno, polietileno, polipropileno, policarbonato, polietilentereftalato, poliéster, poliuretano, poliolefina, alcohol polivinílico y polivinilpirrolidona.
9. El ensayo de unión de acuerdo con la reivindicación 8, en el que el material sólido que contiene el agente de unión comprende poliestireno o polipropileno.
10. El ensayo de unión de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 9 en el que dicho material en fase sólida que contiene agente de unión comprende al menos parte de un recipiente diseñado para contener la muestra.
11. El ensayo de unión de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10, en el que el material sólido que contiene el agente de unión es un recipiente que se usa en sistemas ópticos de detección automática.
12. El ensayo de unión de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 11, en el que el material sólido está en una forma de perla, tubo, pocillo o placa multi-pocillo.
13. El ensayo de unión de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 12 en el que el agente de unión está liofilizado.
14. El ensayo de unión de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 13, en el que el ensayo se realiza para la detección de antígenos fosfolipídicos.
15. El ensayo de unión de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 14, en el que el ensayo se realiza para la detección de proteínas de unión a fosfolípidos.
16. El ensayo de unión de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 15, en el que el ensayo se realiza para la detección de anticuerpos asociados con un estado seleccionado entre el grupo compuesto por lupus sistémico eritematoso, trombosis venosa, trombosis arterial recurrente, absorción espontánea recurrente, trombocitopenia, corea, epilepsia, livedo, hipertensión pulmonar idiopática, afecciones reumatológicas y enfermedades colagenosas.
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