EA031449B1 - Бактериальный штамм-акцептор, экспрессирующий рекомбинантный dsbc - Google Patents

Бактериальный штамм-акцептор, экспрессирующий рекомбинантный dsbc Download PDF

Info

Publication number
EA031449B1
EA031449B1 EA201490274A EA201490274A EA031449B1 EA 031449 B1 EA031449 B1 EA 031449B1 EA 201490274 A EA201490274 A EA 201490274A EA 201490274 A EA201490274 A EA 201490274A EA 031449 B1 EA031449 B1 EA 031449B1
Authority
EA
Eurasian Patent Office
Prior art keywords
antibody
seq
protein
dsbc
sequence
Prior art date
Application number
EA201490274A
Other languages
English (en)
Other versions
EA201490274A1 (ru
Inventor
Марк Эллис
Дэвид Пол Хамфриз
Original Assignee
Юсб Фарма, С.А.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Юсб Фарма, С.А. filed Critical Юсб Фарма, С.А.
Publication of EA201490274A1 publication Critical patent/EA201490274A1/ru
Publication of EA031449B1 publication Critical patent/EA031449B1/ru

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/28Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • C07K16/2875Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against the NGF/TNF superfamily, e.g. CD70, CD95L, CD153, CD154
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/28Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/70Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/90Isomerases (5.)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2317/00Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/10Immunoglobulins specific features characterized by their source of isolation or production
    • C07K2317/14Specific host cells or culture conditions, e.g. components, pH or temperature
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2317/00Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/50Immunoglobulins specific features characterized by immunoglobulin fragments
    • C07K2317/55Fab or Fab'

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)

Abstract

Изобретение относится к рекомбинантной грамотрицательной бактериальной клетке, содержащей мутантные протеазы, экспрессирующий вектор, содержащий рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий DsbC, и один или несколько полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154.

Description

Изобретение относится к рекомбинантной грамотрицательной бактериальной клетке, содержащей мутантные протеазы, экспрессирующий вектор, содержащий рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий DsbC, и один или несколько полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD 154.
Изобретение относится к рекомбинантному бактериальному штамму-акцептору, в частности Е. coli. Изобретение также относится к способу получения в таких клетках интересующего белка.
Предпосылки изобретения
Бактериальные клетки, такие как Е. coli, общеупотребительны для получения рекомбинантных белков, не требующих гликозилирования. Существует множество преимуществ использования бактериальных клеток, таких как Е. coli, для получения рекомбинантных белков, в частности, по причине универсальности бактериальных клеток как клеток-хозяев, делающей возможным встраивание генов с помощью плазмид. Е. coli используют для получения многих рекомбинантных белков, включая инсулин человека.
Несмотря на множество преимуществ использования бактериальных клеток для получения рекомбинантных белков, все равно существуют ограничения, включая неудовлетворительный фенотип состояния клеток.
Таким образом, все еще существует потребность в получении новых бактериальных штаммов, представляющих удобные средства получения рекомбинантных белков.
Генерацию гуморального и клеточного иммунитета регулирует взаимодействие активированных Тхелперных клеток с антигенпредставляющими клетками (АПК) и эффекторными Т-клетками. Активация Т-хелперных клеток зависит не только от взаимодействия антиген-специфичного Т-клеточного рецептора (TCR) с соответствующим лигандом пептид-МНС, но также требует координированного связывания и активации ряда молекул клеточной адгезии и костимуляторных молекул.
В природе рецептор CD40 связывается с лигандом CD40 (CD40-L=CD154), ключевой костимуляторной молекулой, экспрессирующейся на поверхности CD4+ Т-клеток ограниченно по времени в зависимости от активации. После активации CD154 также экспрессируется на субпопуляции CD8+ Т-клеток, базофилах, тучных клетках, эозинофилах, естественных киллерах, В-клетках, макрофагах, дендритных клетках и тромбоцитах. CD40 конститутивно и обширно экспрессируется на поверхности многих типов клеток, включая В-клетки и другие антигенпредставляющие клетки.
Передача сигнала через CD40 после взаимодействия с CD154 инициирует каскад клеточных явлений, приводящих к активации несущих рецептор CD40 клеток и оптимальному примированию CD4+ Тклеток. Более конкретно, связывание CD154 с CD40 стимулирует дифференцировку В-клеток в антителосекретирующие клетки и В-клетки памяти.
Ключевая роль CD154 в регуляции функции и гуморального, и клеточно-опосредованного иммунного ответа способствует большому интересу к использованию ингибиторов этого пути в терапевтической иммуномодуляции. В связи с этим, показано, что антитела против CD154 являлись полезными в широком спектре моделей иммунного ответа на другие терапевтические белки или генотерапию, аллергены, аутоиммунность и трансплантацию (см., например, патент США № 5474771 и WO 2008/118356, включенные в настоящее описание в качестве ссылки в полном объеме).
В этой области существует необходимость эффективно и с оптимальными затратами продуцировать большие количества антител или фрагментов антител, препятствующих взаимодействию CD40 и CD154 и подходящих для терапевтического применения.
Сущность изобретения
Настоящее изобретение относится к рекомбинантной грамотрицательной бактериальной клетке, содержащей:
a) рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий DsbC; и
b) один или несколько полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154.
Более конкретно, настоящее изобретение относится к рекомбинантной грамотрицательной бактериальной клетке, отличающейся тем, что клетка:
a) содержит рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий DsbC;
b) имеет сниженную активность белка Tsp по сравнению с клеткой дикого типа; и
c) один или несколько полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154.
В одном из вариантов осуществления клетка содержит ген spr дикого типа или мутантный ген spr, например, способный супрессировать сниженную активность фенотипа Tsp.
Грамотрицательная бактериальная клетка по настоящему изобретению демонстрирует предпочтительные фенотипы роста и продукции белка.
Более конкретно, настоящее изобретение относится к рекомбинантной грамотрицательной бактериальной клетке, содержащей рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий полипептид DsbC, содержащий гистидиновую (His) метку, предпочтительно, где полипептид DsbC содержит последовательность his-his-his-his-his-his (6 остатков гистидина).
Более конкретно настоящее изобретение относится к рекомбинантной грамотрицательной бактериальной клетке, содержащей рекомбинантный полинуклеотид, содержащий полинуклеотид с последовательностью, соответствующей SEQ ID NO: 45 или SEQ ID NO: 51.
Настоящее изобретение также относится к экспрессирующему вектору, содержащему рекомби
- 1 031449 нантный полинуклеотид, кодирующий DsbC и антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154.
Более конкретно, настоящее изобретение относится к экспрессирующему вектору, содержащему рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий полипептид DsbC, содержащий гистидиновую (His) метку, предпочтительно, где полипептид DsbC содержит последовательность his-his-his-his-his-his (6 остатков гистидина).
Более конкретно, настоящее изобретение относится к экспрессирующему вектору, содержащему рекомбинантный полинуклеотид, содержащий полинуклеотид с последовательностью, соответствующей SEQ ID NO: 45 или SEQ ID NO: 51.
Настоящее изобретение также относится к способу получения антитела или его антигенсвязывающего фрагмента, специфически связывающегося с CD154, включающему:
a) культивирование рекомбинантной грамотрицательной бактериальной клетки, определенной выше, в среде для культивирования в условиях, эффективных для экспрессии антитела или его антигенсвязывающего фрагмента, специфически связывающегося с CD 154, и рекомбинантного полинуклеотида, кодирующего DsbC; и
b) выделение антитела или его антигенсвязывающего фрагмента, специфически связывающегося с CD154, из периплазмы рекомбинантной грамотрицательной бактериальной клетки и/или среды для культивирования.
Краткое описание чертежей
На фиг. 1 показана конструкция вектора для использования в получении клетки по варианту осуществления настоящего изобретения.
На фиг. 2 показана структура соединения, содержащего модифицированный Fab'-фрагмент, ковалентно связанный через остаток цистеина с лизил-малеимидным линкером, где каждая аминогруппа на лизиловом остатке ковалентно связана с метокси-PEG остатком, где n составляет приблизительно от 420 до 450.
На фиг. 3 показан профиль роста штамма W3110, экспрессирующего Fab' против CD154, и профиль роста штамма МХЕ016, экспрессирующего Fab' против CD154 и рекомбинантный DsbC (W3110 ATsp, spr C94A). Можно видеть, что штамм МХЕ016, экспрессирующий рекомбинантный DsbC, проявляет улучшенный профиль роста и скорость роста в начальную фазу роста периодической культуры по сравнению со штаммом W3110.
На фиг. 4 показан общий выход Fab' (г/л) из периплазмы (закрашенные символы) и супернатанта (незакрашенные символы) штамма МХЕ016, экспрессирующего рекомбинантный DsbC, по сравнению с контрольным штаммом W3110. Штамм, экспрессирующий DsbC, демонстрирует более высокую периплазматическую экспрессию Fab' по сравнению с W3110. Кроме того, штамм МХЕ016, экспрессирующий DsbC, демонстрирует аналогичные уровни внеклеточных Fab' по сравнению со штаммом W3110.
На фиг. 5 показаны результаты анализа продуктов ферментации с помощью обращенно-фазовой ВЭЖХ. Штамм W3110 дикого типа, экспрессирующий Fab' против CD154, демонстрирует высокий уровень деградировавших легких каппа-цепей (фрагменты легкой цепи [LC]). В отличие от этого, штамм МХЕ016 (W3110 ATsp, spr C94A), экспрессирующий рекомбинантный DsbC и Fab' против CD154, в результате отсутствия активности протеазы Tsp слабо демонстрирует какие-либо фрагменты легкой цепи.
На фиг. 6 показан выход Fab' против CD154 (г/л) при сборе после ферментации в штамме W3110 и в штамме МХЕ016 (W3110 ATsp, spr C94A), экспрессирующем рекомбинантный DsbC. Выход при сборе из штамма МХЕ016 (W3110 ATsp, spr C94A), экспрессирующего рекомбинантный DsbC, существенно выше, и обнаруживают существенно меньше внеклеточных Fab', что является благоприятным, т.к. внеклеточные Fab' являются маркером риска лизиса клеток, и внеклеточные Fab трудно выделять с использованием того же способа, который используют для периплазматических Fab'.
На фиг. 7 показана жизнеспособность (а) клеток штамма W3110 и (b) клеток штамма МХЕ016 (W3110 ATsp, spr C94A), экспрессирующих рекомбинантный DsbC, в обоих случаях (а) и (b) экспрессирующих Fab' против CD154 (г/л). Клетки штамма МХЕ016 (W3110 ATsp, spr C94A), экспрессирующие рекомбинантный DsbC, проявляют более высокую жизнеспособность.
На фиг. 8 показан общий выход Fab' (г/л) при ферментациях штаммов МХЕ016, экспрессирующих Fab' против CD154. Правый столбик представляет штамм МХЕ016, дополнительно экспрессирующий рекомбинантный DsbC. Штамм МХЕ016, экспрессирующий рекомбинантный DsbC, демонстрирует более высокий выход.
На фиг. 9 показан полинуклеотид и аминокислотные последовательности области в гене ptr, являвшейся мутантной.
На фиг. 10 показан полинуклеотид и аминокислотные последовательности области в гене Tsp, являвшейся мутантной.
На фиг. 11 показан полинуклеотид и аминокислотные последовательности области в гене DegP, являвшейся мутантной.
- 2 031449
SEQ ID NO: 1 CD154.
SEQ ID NO: 2 CD154.
SEQ ID NO: 3 CD154.
SEQ
CD154.
SEQ
CD154.
SEQ
CD154.
ID
ID
ID
NO:
NO:
NO:
представляет
Краткое описание последовательностей собой аминокислотную последовательность
CDRH1 антитела против представляет представляет представляет представляет представляет собой собой собой собой собой аминокислотную аминокислотную аминокислотную аминокислотную аминокислотную последовательность последовательность последовательность последовательность последовательность
CDRH2
CDRH3
CDRL1
CDRL2
CDRL3 антитела антитела антитела антитела антитела против против против против против
SEQ ID NO: 7 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность вариабельной области легкой цепи (gL4) антитела против CD154 (342).
SEQ ID NO: 8 представляет собой аминокислотную последовательность вариабельной области легкой цепи (gL4) антитела против CD154 (342).
SEQ ID NO: 9 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность вариабельной области тяжелой цепи (gH1) антитела против CD154 (342).
SEQ ID NO: 10 представляет собой аминокислотную последовательность вариабельной области тяжелой цепи (gH1) антитела против CD154 (342).
SEQ ID NO: 11 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность, содержащую вариабельную и константную области легкой цепи (gL4) фрагмента антитела против CD154.
SEQ ID NO: 12 представляет собой аминокислотную последовательность, содержащую вариабельную и константную области легкой цепи (gL4) фрагмента антитела против CD154.
SEQ ID NO: 13 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность фрагмента тяжелой цепи антитела против CD154, содержащего вариабельную область и область CH1 с делециями в шарнирной области.
SEQ ID NO: 14 представляет собой аминокислотную последовательность фрагмента тяжелой цепи антитела против CD 154, содержащего вариабельную область и область CH1 с делециями в шарнирной области.
SEQ ID NO: 15 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность фрагмента тяжелой цепи антитела против CD154, содержащего вариабельную область, область CH1 и шарнирную область.
SEQ ID NO: 16 представляет собой аминокислотную последовательность фрагмента тяжелой цепи антитела против CD154, содержащего вариабельную область, область CH1 и шарнирную область.
SEQ ID NO: 17 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность легкой каппа-цепи антитела против CD154 (342), включающей сигнальный пептид (аминокислоты 1-22).
SEQ ID NO: 18 представляет собой аминокислотную последовательность легкой каппа-цепи антитела против CD154 (342), включающей сигнальный пептид (аминокислоты 1-22).
SEQ ID NO: 19 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность полной тяжелой цепи агликозилированного антитела IgG4 против CD154.
SEQ ID NO: 20 представляет собой аминокислотную последовательность полной тяжелой цепи агликозилированного антитела IgG4 против CD154.
SEQ ID NO: 21 представляет собой полинуклеотидную последовательность, кодирующую gL4 и gH1 (без шарнирной области).
SEQ ID NO: 22 представляет собой полинуклеотидную последовательность, кодирующую gL4 и gH1.
SEQ ID NO: 23 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность spr Е. coli дикого типа (регистрационный номер GenBank D86610).
SEQ ID NO: 24 представляет собой аминокислотную последовательность spr E. coli дикого типа (регистрационный номер GenBank D86610).
SEQ ID NO: 25 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность Tsp E. coli дикого типа с сигнальной последовательностью (регистрационный номер GenBank M75634).
SEQ ID NO: 26 представляет собой аминокислотную последовательность Tsp E. coli дикого типа с сигнальным пептидом (регистрационный номер GenBank M75634).
SEQ ID NO: 27 представляет собой аминокислотную последовательность DsbC E. coli дикого типа (референсная последовательность NCBI АР 003452).
SEQ ID NO: 28 представляет собой полинуклеотидную последовательность подвергнутого нокауту
- 3 031449 мутантного гена Tsp.
SEQ ID NO: 29 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность DegP E. coli дикого типа.
SEQ ID NO: 30 представляет собой аминокислотную последовательность DegP E. coli дикого типа.
SEQ ID NO: 31 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность DegP, содержащего точечную мутацию S210A и рестрикционный маркер AseI.
SEQ ID NO: 32 представляет собой аминокислотную последовательность DegP, содержащего точечную мутацию S210A и рестрикционный маркер AseI.
SEQ ID NO: 33-36 представляют собой двухцистронные межгенные последовательности (IGS) IGS1, IGS2, IGS3 и IGS4 соответственно.
SEQ ID NO: 37 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность OmpT E. coli дикого типа.
SEQ ID NO: 38 представляет собой аминокислотную последовательность OmpT Е. coli дикого типа.
SEQ ID NO: 39 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность подвергнутого нокауту мутантного OmpT E. coli.
SEQ ID NO: 40 представляет собой аминокислотную последовательность подвергнутого нокауту мутантного OmpT E. coli.
SEQ ID NO: 41 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность мутантного OmpT E. coli, содержащего точечные мутации D210A и Н212А.
SEQ ID NO: 42 представляет собой аминокислотную последовательность OmpT E. coli, содержащего точечные мутации D210A и Н212А.
SEQ ID NO: 43 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность DsbC E. coli дикого типа.
SEQ ID NO: 44 представляет собой аминокислотную последовательность DsbC E. coli дикого типа.
SEQ ID NO: 45 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность DsbC E. coli без участка рестрикции EcoRI с гистидиновой меткой.
SEQ ID NO: 46 представляет собой аминокислотную последовательность DsbC E. coli без участка рестрикции EcoRI с гистидиновой меткой.
SEQ ID NO: 47 представляет собой полинуклеотидную последовательность праймера 6283 Tsp 3'.
SEQ ID NO: 48 представляет собой полинуклеотидную последовательность праймера 6283 Tsp 5'.
SEQ ID NO: 49 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность ptr E. coli дикого типа (протеазы III согласно регистрационному номеру Genbank X06227).
SEQ ID NO: 50 представляет собой аминокислотную последовательность ptr E. coli дикого типа (протеазы III, согласно регистрационному номеру Genbank X06227).
SEQ ID NO: 51 представляет собой полинуклеотидную последовательность и аминокислотную последовательность DsbC E. coli дикого типа с гистидиновой меткой.
SEQ ID NO: 52 представляет собой аминокислотную последовательность DsbC E. coli дикого типа с гистидиновой меткой.
Подробное описание изобретения
Tsp (также известный как Prc) является периплазматической протеазой массой 60 кДа. Первым известным субстратом Tsp являлся пенициллинсвязывающий белок-3 (PBP3) (Determination of the cleavage site involved in C-terminal processing of penicillin-binding protein 3 of Escherichia coli (Hara et al., 4799-813; Nagasawa et al., 5890-93)), но позднее открыли, что Tsp также способна расщеплять белки отростка фага и, таким образом, ее переименовали в протеазу, специфичную для белков хвоста (Tsp). В Silber, Keiler, and Sauer 295-99; Silber and Sauer 237-40 описывают штамм с делецией prc (KS1000), в котором получали мутацию, заменяя сегмент гена prc фрагментом, содержащим маркер Kanr.
Снижение активности Tsp (prc) является желательным для снижения протеолиза интересующих белков. Протеолиз Fab может проявляться наличием примесей, таких как фрагмент, который можно обозначать как примесь легких цепей.
Однако обнаружено, что клетки без протеазы prc демонстрируют термочувствительный рост при низкой осмоляльности. Hara et al., выделяли термостабильные ревертанты, содержащие мутации экстрагенного супрессора (spr) (Hara et al., 63-72). Spr является мембраносвязанной периплазматической протеазой массой 18 кДа, и субстратами spr являются Tsp и пептидогликаны наружной мембраны, участвующие в гидролизе клеточной стенки при делении клетки. Ген spr обозначают как UniProtKB/Swiss-Prot P0AFV4 (SPR ECOLI).
Протеиндисульфидизомераза является ферментом, катализирующим образование и разрыв дисульфидных связей между остатками цистеина в белках при их фолдинге. Для коэкспрессирующихся белков, катализирующих образование дисульфидных связей, известно улучшение экспрессии белков в клеткехозяине. В WO 98/56930 описывают способ получения гетерологичных содержащих дисульфидную связь полипептидов в бактериальных клетках, где прокариотическая дисульфидизомераза, такая как DsbC или DsbG, коэкспрессируется с эукариотическим полипептидом. В патенте США № 6673569 описывают ис
- 4 031449 кусственный оперон, содержащий полинуклеотиды, кодирующие каждый из DsbA, DsbB, DsbC и DsbD, для применения в получении чужеродного белка. В EP0786009 описывают способ получения гетерологичного полипептида в бактериях, где индуцируют экспрессию нуклеиновой кислоты, кодирующей DsbA или DsbC, перед индукцией экспрессии нуклеиновой кислоты, кодирующей гетерологичный полипептид.
DsbC является прокариотическим белком, обнаруживаемым в периплазме Е. coli и катализирующим образование дисульфидных связей у Е. coli. DsbC имеет длину аминокислотной последовательности 23 6 аминокислот (включая сигнальный пептид) и молекулярную массу 25,6 КДа (UniProt № P0AEG6). Впервые DsbC идентифицировали в 1994 г. (Missiakas, Georgopoulos, and Raina 2013-20; Shevchik, Condemine, and Robert-Baudouy, 2007-12).
Неожиданно обнаружили, что гиперэкспрессия DsbC в грамотрицательной бактериальной клетке снижает лизис при культивировании клеток без протеазы Tsp. Таким образом, авторы настоящего изобретения представляют новый штамм, имеющий полезные свойства для получения интересующего белка.
Грамотрицательная бактериальная клетка, имеющая указанную выше конкретную комбинацию генетических модификаций, демонстрирует предпочтительные фенотипы роста и продукции белка.
В одном из вариантов осуществления геном клетки предпочтительно является изогенным по отношению к бактериальной клетке дикого типа, за исключением модификации, необходимой для снижения активности белка Tsp по сравнению с клеткой дикого типа.
В дополнительном варианте осуществления клетка по настоящему изобретению имеет сниженную активность белка Tsp по сравнению с клеткой дикого типа и содержит рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий DsbC и измененный белок spr. В этом варианте осуществления геном клетки предпочтительно является изогенным по отношению к бактериальной клетке дикого типа, за исключением мутантного гена spr и модификации, приводящей к снижению или отсутствию экспрессии белка Tsp по сравнению с клеткой дикого типа.
В настоящем описании термины белок и полипептид используют взаимозаменяемо, если иное не следует из контекста. Термин пептид предназначен для обозначения 20 или менее аминокислот.
Термин полинуклеотид включает ген, ДНК, кДНК, РНК, мРНК и их аналоги, включая, в качестве неограничивающих примеров, замкнутую нуклеиновую кислоту (ЗНК), пептидо-нуклеиновую кислоту (ПНК), морфолино-нуклеиновую кислоту, гликоль-нуклеиновую кислоту (GNA) и треозо-нуклеиновую кислоту (TNA) и т.д., если иное не следует из контекста.
Как применяют в настоящем описании, термин содержащий в контексте настоящего описания необходимо интерпретировать как включающий.
В контексте настоящего изобретения термины немутантная клетка или контрольная клетка означают клетку того же типа, что и рекомбинантная грамотрицательная клетка по изобретению, где клетку не модифицируют так, что она несет рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий DsbC, и один или несколько полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154. Например, немутантная клетка может являться клеткой дикого типа, и ее можно получать из той же популяции клеток-хозяев, что и клетки по изобретению, перед модификацией для встраивания любых рекомбинантных полинуклеотидов.
Выражения клетка, клеточная линия, культура клеток и штамм используют взаимозаменяемо.
В контексте настоящего изобретения термин изогенный означает, что клетка содержит те же или, по существу, те же последовательности нуклеиновой кислоты, что и клетка дикого типа, за исключением встраиваемых в нее элементов, по которым изобретение отличается, например рекомбинантного полинуклеотида, кодирующего DsbC, и одного или нескольких полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154, и, необязательно, модификации, приводящей к снижению или отсутствию экспрессии белка Tsp, и, необязательно, мутантного гена spr. В этом варианте осуществления клетка по настоящему изобретению не содержит дополнительных неприродных или генетически введенных изменений в своем геноме.
В одном из вариантов осуществления, где в геном клетки встраивают полинуклеотид, кодирующий DsbC, и/или один или несколько полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, клетка по настоящему изобретению может иметь, по существу, ту же геномную последовательность, что и клетка дикого типа, за исключением полинуклеотида, кодирующего DsbC, и/или одного или нескольких полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, и, необязательно, модификации, приводящей к снижению или отсутствию экспрессии белка Tsp или экспрессии белка Tsp со сниженной протеазной активностью, и, необязательно, мутантного гена spr, кодирующего белок со сниженной активностью по сравнению с диким типом с учетом любых природных мутаций, которые могут произойти. В одном из вариантов осуществления, где в геном клетки встраивают полинуклеотид, кодирующий DsbC, и/или один или несколько полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, клетка по настоящему изобретению может иметь точно такую же геномную последовательность, что и клетка дикого типа, за исключением полинуклеотида, кодирую
- 5 031449 щего DsbC, и/или одного или нескольких полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент.
Полинуклеотид, кодирующий DsbC, может присутствовать в подходящем экспрессирующем векторе, с помощью которого трансформируют клетки и/или который встраивают в геном клетки-хозяина. В варианте осуществления, в котором полинуклеотид, кодирующий DsbC, встраивают в геном клеткихозяина, клетка по настоящему изобретению отличается от клетки дикого типа благодаря встраиваемому полинуклеотиду, кодирующему DsbC. В этом варианте осуществления геном клетки-хозяина может являться изогенным по отношению к геному клетки дикого типа, за исключением рекомбинантного полинуклеотида, кодирующего DsbC.
Предпочтительно полинуклеотид, кодирующий DsbC, находится в экспрессирующем векторе в клетке, таким образом, вызывая минимальное повреждение генома клетки-хозяина.
Один или несколько полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154, могут содержаться в подходящем экспрессирующем векторе, с помощью которого трансформируют клетки и/или который встраивают в геном клетки-хозяина. В варианте осуществления, где полинуклеотид, кодирующий антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD 154, встраивают в геном хозяина, клетка по настоящему изобретению отличается от клетки дикого типа благодаря встроенным полинуклеотидам, кодирующим антитело или его антигенсвязывающий фрагмент. В этом варианте осуществления геном клетки-хозяина может являться изогенным по отношению к геному клетки дикого типа, за исключением полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент. Предпочтительно полинуклеотид, кодирующий интересующий белок, находится в экспрессирующем векторе в клетке, таким образом, вызывая минимальное повреждение генома клетки-хозяина.
В одном из вариантов осуществления рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий DsbC, и полинуклеотид, кодирующий антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154, встраивают в геном хозяина. В этом варианте осуществления клетка по настоящему изобретению отличается от клетки дикого типа благодаря встраиваемому рекомбинантному полинуклеотиду, кодирующему DsbC, и одному или нескольким полинуклеотидам, кодирующим антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, и, необязательно, модификации, приводящей к снижению или отсутствию экспрессии белка Tsp или экспрессии белка Tsp со сниженной протеазной активностью, и, необязательно, мутантному гену spr, кодирующему белок со сниженной активностью по сравнению с диким типом. В этом варианте осуществления геном клетки-хозяина может являться изогенным по отношению к геному клетки дикого типа, за исключением рекомбинантного полинуклеотида, кодирующего DsbC, и одного или нескольких полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент.
В предпочтительном варианте осуществления рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий DsbC, и полинуклеотид, кодирующий антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154, присутствуют в одинаковых или разных экспрессирующих векторах в клетке, таким образом, вызывая минимальное повреждение генома клетки-хозяина. В этом варианте осуществления геном клетки может являться, по существу, таким же или точно таким же, что и геном клетки дикого типа.
Один из вариантов осуществления относится к рекомбинантной клетке Е. coli, имеющей сниженную активность Tsp и, необязательно, ген spr или его мутантную форму, где модификации активности Tsp и любую мутацию в гене spr осуществляют через изменения генома клеток. Клетку по этому варианту осуществления можно трансформировать с использованием вектора, такого как плазмида, кодирующая вектор DsbC и антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154. В одном из вариантов осуществления вектор или плазмида не встраивается в геном клетки.
Термин дикий тип в контексте настоящего изобретения означает штамм грамотрицательных бактериальных клеток в таком виде, в котором они могут существовать в природе или их можно выделять из окружающей среды, не несущий какой-либо рекомбинантный полинуклеотид или генетически введенные мутации. Примером штамма Е. coli дикого типа является штамм K-12 и родственный ему штамм W3110. Штамм Е. coli K-12 к настоящему моменту культивируют уже в течение 90 лет (Bachmann, 52557). Штамм Е. coli K-12 и родственные ему штаммы, такие как W3110, хорошо известны в этой области. Штамм W3110 доступен, например, в American Tissue Culture Collection (ATCC) под регистрационным номером 27325. W3110 имеет генотип: F-, λ-, IN(rrnD-rrnE)1, rph-1.
Авторы настоящего изобретения предоставляют рекомбинантную грамотрицательную бактериальную клетку, подходящую для экспрессии антитела или его антигенсвязывающего фрагмента, специфически связывающегося с CD154, содержащую рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий DsbC. Клетки по настоящему изобретению содержат рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий DsbC. Как применяют в настоящем описании, рекомбинантный полипептид относится к белку, сконструированному или продуцируемому с использованием технологии рекомбинантных ДНК. Полинуклеотид, кодирующий DsbC, может являться идентичным эндогенному полинуклеотиду, кодирующему DsbC, обнаруживаемому в бактериальных клетках дикого типа. Альтернативно, рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий DsbC, является мутантной версией полинуклеотида DsbC дикого типа, например, измененным таким об
- 6 031449 разом, что из белка DsbC удален участок рестрикции, такой как участок EcoRI, и/или гистидиновая метка. Пример модифицированного полинуклеотида DsbC для использования в настоящем изобретении представлен в SEQ ID NO: 45, кодирующей последовательность DsbC с гистидиновой меткой, представленную в SEQ ID NO: 46.
DsbC отличается наличием активного центра, содержащего аминокислоты -СХХС-, где XX представляет собой аминокислоты GY. Варианты DsbC включают, где каждый X представляет собой независимо выбранную аминокислоту (при условии, что XX не представляет собой GY). Примеры XX включают NY, SF, TF, MF, GF, HH, VH, SH, RF, FA, GA, MA, GI или AV.
В одном из вариантов осуществления клетка-хозяин по изобретению содержит вариант DsbC, например, в котором изменяют активный центр, в частности, как описано выше.
В одном из вариантов осуществления вариант DsbC обладает, по меньшей мере, биологической активностью белка дикого типа, например, измеряемую с помощью анализа in vitro.
В одном из вариантов осуществления вариант DsbC имеет большую биологическую активность, чем белок дикого типа, например, измеряемую с помощью анализа in vitro.
В одном из вариантов осуществления вариант DsbC содержит изменение в активном центре СХХС-, где XX представляет собой NY, SF, TF, MF, GF, HH, VH, SH.
В одном из вариантов осуществления DsbC представляет собой дикий тип.
Авторы настоящего изобретения определяли, что выбор экспрессии рекомбинантного полинуклеотида, кодирующего DsbC, в бактериальной клетке, обеспечивал получение улучшенной клетки-хозяина для экспрессии антитела или его антигенсвязывающего фрагмента, специфически связывающегося с CD154. Клетки по настоящему изобретению обладают улучшенным фенотипом состояния клеток и роста по сравнению с бактериальными клетками дикого типа.
Как применяют в настоящем описании, термин улучшенное состояние клеток предназначен для обозначения одного или нескольких улучшенных свойств по сравнению с клетками, не несущими характерные черты настоящего изобретения, например меньшую склонность к лизису клеток в фазу роста или после индукции экспрессии гетерологичного белка в клетке или другое благоприятное свойство, известное специалистам в этой области.
Клетки по настоящему изобретению демонстрируют улучшенный выход продукции белка, такого как антитело или фрагмент антитела, по сравнению с бактериальными клетками дикого типа. Улучшенный выход белка может являться скоростью продукции белка и/или продолжительностью продукции белка в клетке. Улучшенный выход белка может являться выходом периплазматического белка и/или выходом белка в супернатанте. Рекомбинантные бактериальные клетки могут быть способны к более быстрой скорости продукции белка, такого как антитело или его фрагмент, и, таким образом, одинаковое количество интересующего белка можно получать за более короткое время по сравнению с немутантной бактериальной клеткой. Более высокая скорость продукции интересующего белка может являться особенно значимой в начальный период роста клеток, например в первые 5, 10, 20 или 30 ч после индукции экспрессии белка.
Клетки по настоящему изобретению предпочтительно демонстрируют выход в периплазме и/или среде приблизительно 1,0, 1,5, 1,8, 2,0, 2,4, 2,5, 3,0, 3,5 или 4,0 г/л антитела.
Преимущественно сниженная активность белка Tsp и/или коэкспрессия DsbC приводит к снижению получения нежелательных примесей, обозначаемых в настоящем описании как фрагмент легкой цепи (LC), см., например, фиг. 5.
Специалист в этой области легко сможет тестировать предполагаемый клон клетки для определения того, имеет ли он желаемый выход интересующего белка, с использованием способов, хорошо известных в этой области, включая способ ферментации, ELISA и ВЭЖХ с протеином G. Подходящие способы ферментации описывают в Humphreys et al., 193-202; Backlund et al., 358-65, включенных в настоящее описание в качестве ссылки в полном объеме. Специалист в этой области также легко может тестировать секретируемый белок для определения того, правильно ли сворачивается белок, с использованием x хорошо известных в этой области способов, таких как ВЭЖХ с протеином G, определение кругового дихроизма, ЯМР, рентгеноструктурная кристаллография и способы измерения аффинности к эпитопу.
В одном из вариантов осуществления клетка по настоящему изобретению по сравнению с соответствующей клеткой дикого типа, такой как, например, штамм Е. coli W3110 K-12, также экспрессирует или гиперэкспрессирует один или несколько следующих дополнительных белков:
один или несколько белков, способных облегчать фолдинг белка, таких как FkpA, Skp, SurA, PPiA и PPiD; и/или один или несколько белков, способных облегчать секрецию или транслокацию белка, таких как SecY, SecE, SecG, SecYEG, SecA, SecB, FtsY и Lep; и/или один или несколько белков, способных облегчать образование дисульфидной связи, таких как DsbA, DsbB, DsbD, DsbG.
Один или несколько полинуклеотидов, кодирующих указанные выше белки, можно встраивать в геном клетки и/или экспрессирующий вектор.
В одном из вариантов осуществления клетка по настоящему изобретению не экспрессирует или
- 7 031449 экспрессирует на низком уровне, являющемся по меньшей мере на 50, 75 или 90% более низким, чем уровень в соответствующей клетке дикого типа, такой как, например, штамм Е. coli W3110 K-12, один или несколько следующих дополнительных белков:
один или несколько белков, способных облегчать фолдинг белка, таких как FkpA, Skp, SurA, PPiA и PPiD;
один или несколько белков, способных облегчать секрецию или транслокацию белка, таких как SecY, SecE, SecG, SecYEG, SecA, SecB, FtsY и Lep; и один или несколько белков, способных облегчать образование дисульфидной связи, таких как DsbA, DsbB, DsbD, DsbG.
В одном из вариантов осуществления клетка по настоящему изобретению также экспрессирует один или несколько дополнительных белков, выбранных из FkpA, Skp и их комбинации.
В одном из вариантов осуществления клетка дополнительно содержит один или несколько из следующих мутантных генов:
a) мутантный ген spr;
b) мутантный ген Tsp, где мутантный ген Tsp кодирует белок Tsp, имеющий сниженную протеазную активность, или является подвергнутым нокауту мутантным геном Tsp;
c) мутантный ген DegP, кодирующий белок DegP, имеющий шаперонную активность и сниженную протеазную активность;
d) мутантный ген ptr, где мутантный ген ptr кодирует белок протеазу III, имеющий сниженную протеазную активность, или является подвергнутым нокауту мутантным геном ptr; и
e) мутантный ген OmpT, где мутантный ген OmpT кодирует белок OmpT, имеющий сниженную протеазную активность, например, как представлено в SEQ ID NO: 42, или является подвергнутым нокауту мутантным геном OmpT, например, как представлено в SEQ ID NO: 40.
В основном варианте осуществления изобретения грамотрицательная бактериальная клетка не несет подвергнутый нокауту мутантный ген Tsp, такой как, дефектный хромосомный Tsp.
Последняя мутация, в частности, важна в продукции антител и их фрагментов, специфически связывающихся с CD154, т.к. активность протеазы Tsp может приводить к расщеплению антитела-продукта в областях изгибов, таким образом, приводя к получению побочного продукта в значительных количествах и снижению выхода желаемого продукта.
Таким образом, в одном из вариантов осуществления клетка по настоящему изобретению содержит мутантный ген Tsp, где мутантный ген Tsp кодирует белок Tsp, имеющий сниженную протеазную активность, или является подвергнутым нокауту мутантным геном Tsp, а также кодирует белок DsbC в дополнение к антителу или его фрагменту, специфически связывающемуся с CD154.
В вариантах осуществления настоящего изобретения клетка дополнительно содержит мутантный ген spr. Белок spr является мембраносвязанной периплазматической протеазой E.coli.
Аминокислотная последовательность белка Spr дикого типа представлена в SEQ ID NO: 24 с сигнальной последовательностью на N-конце (аминокислоты 1-26 согласно записи с регистрационным номером UniProt P0AFV4). Нумерация аминокислот в последовательности белка Spr в настоящем изобретении включает сигнальную последовательность. Таким образом, аминокислота 1 белка Spr является первой аминокислотой (Met), представленной в SEQ ID NO: 24.
В вариантах осуществления, где клетка по настоящему изобретению содержит мутантный ген spr, мутантный ген spr предпочтительно является хромосомным геном spr клетки. Мутантный ген spr кодирует белок Spr, способный супрессировать неблагоприятный фенотип, ассоциированный с клеткой, содержащей мутантный ген Tsp. Клетки, несущие мутантный ген Tsp, могут иметь хорошую скорость роста клеток, но одним из ограничений для таких клеток является их склонность к лизису, особенно при высокой плотности клеток. Таким образом, фенотип клетки, содержащей мутантный ген Tsp, проявляется в склонности к лизису, особенно при высокой плотности клеток.
Клетки, несущие мутантный ген Tsp, демонстрируют термочувствительный рост при низкой осмоляльности. Однако мутации spr, который несут клетки по настоящему изобретению, при встраивании в клетку, имеющую сниженную активность Tsp, супрессируют этот фенотип термочувствительного роста при низкой осмоляльности, и клетка демонстрирует снижение лизиса, в частности, при высокой плотности клеток. Специалист в этой области легко может измерять этот фенотип термочувствительного роста клетки при ферментации во встряхиваемой колбе или ферментации культур с высокой плотностью клеток. Супрессия лизиса клеток очевидна из улучшенной скорости роста и/или продукции рекомбинантного белка, в частности, в периплазме, демонстрируемых клеткой, несущей мутантный spr и имеющей сниженную активность Tsp, по сравнению с клеткой, несущей мутантный Tsp и spr дикого типа.
Клетки по настоящему изобретению предпочтительно содержат мутантный ген spr, кодирующий белок spr, содержащий замену одной или нескольких аминокислот, выбранных из N31, R62, I70, Q73, С94, S95, V98, Q99, R100, L108, Y115, D133, V135, L136, G140, R144, Н145, G147, Н157 и W174, более предпочтительно - одной или нескольких аминокислот, выбранных из С94, S95, V98, Y115, D133, V135, Н145, G147, Н157 и W174. Предпочтительно мутантный ген spr кодирует белок spr, содержащий замену одной или нескольких аминокислот, выбранных из N31, R62, I70, Q73, С94, S95, V98, Q99, R100, L108,
- 8 031449
Y115, D133, V135, L136, G140, R144, Н145, G147 и Н157, более предпочтительно одной или нескольких аминокислот, выбранных из С94, S95, V98, Y115, D133, V135, Н145, G147 и Н157. В этом варианте осуществления белок spr предпочтительно не содержит любые дополнительные замены аминокислот. Предпочтительно мутантный ген spr кодирует белок spr, содержащий замену одной или нескольких аминокислот, выбранных из N31, R62, I70, Q73, S95, V98, Q99, R100, L108, Y115, D133, V135, L136, G140, R144 и G147, более предпочтительно одной или несколько аминокислот, выбранных из S95, V98, Y115, D133, V135 и G147. В этом варианте осуществления белок spr предпочтительно не содержит любые дополнительные замены аминокислот.
Авторы настоящего изобретения идентифицировали изменения в spr, способный супрессировать фенотип роста клетки, содержащей мутантный ген Tsp.
Авторы настоящего изобретения также неожиданно обнаруживали, что клетки, несущие рекомбинантный ген DsbC, мутантный ген spr и имеющие сниженную активность белка Tsp по сравнению с клеткой дикого типа, проявляют повышенную скорость роста клеток и повышенную продолжительность выживания клеток по сравнению с клеткой, содержащей мутантный ген Tsp. В частности, клетки, несущие рекомбинантный ген DsbC, изменение в белке spr и имеющие сниженную активность белка Tsp, демонстрируют снижение лизиса клеток при культивировании по сравнению с клетками, несущими мутантный ген Tsp.
Замена одной или нескольких из указанных выше аминокислот в spr может являться результатом любой подходящей миссенс-мутации в одном, двух или трех нуклеотидах, кодирующих аминокислоту. Мутация приводит к замене аминокислотного остатка любой подходящей аминокислотой, что приводит к образованию мутантного белка spr, способного супрессировать фенотип клетки, содержащей мутантный ген Tsp. Миссенс-мутация может приводить к замене аминокислоты аминокислотой, имеющей другой размер и/или другие химические свойства по сравнению с аминокислотой в белке дикого типа.
В одном из вариантов осуществления замена относится к одной, двум или трем из каталитических триад аминокислотных остатков C94, Н145 и Н157 (Aramini et al., 9715-17).
Таким образом, мутантный ген spr может содержать мутацию, затрагивающую аминокислоту С94; или мутацию, затрагивающую аминокислоту H145; или мутацию, затрагивающую аминокислоту H157; или мутацию, затрагивающую аминокислоты С94 и H145; или мутацию, затрагивающую аминокислоты С94 и H157; или мутацию, затрагивающую аминокислоты H145 и H157; или мутацию, затрагивающую аминокислоты С94, H145 и H157.
В этом варианте осуществления белок spr предпочтительно не содержит любых других замен аминокислот.
Одну, две или три из С94, H145 и H157 можно заменять любой подходящей аминокислотой, что приводит к образованию белка spr, способного супрессировать фенотип клеток, содержащих мутантный ген Tsp. Например, одну, две или три из С94, Н145 и Н157 можно заменять небольшой аминокислотой, такой как Gly или Ala. Таким образом, ген spr может содержать одну, две или три мутации, приводящие к заменам С94А (т.е. цистеин в положении 94 заменяют аланином), Н14 5А (т.е. гистидин в положении 145 заменяют аланином) и Н157А (т.е. гистидин в положении 157 заменяют аланином). Предпочтительно ген spr содержит миссенс-мутацию, приводящую к замене Н145А, которая, как обнаружено, приводит к образованию белка spr, способного супрессировать фенотип клетки, содержащей мутантный ген Tsp.
В настоящем описании обозначение замены состоит из буквы, за которой следует число, за которым следует буква. Первой буквой обозначают аминокислоту в белке дикого типа. Число относится к положению аминокислоты, в котором осуществляют замену аминокислоты, и второй буквой обозначают аминокислоту, используемую для замены аминокислоты дикого типа.
В предпочтительном варианте осуществления мутантный белок spr содержит замену одной или нескольких аминокислот, выбранных из N31, R62, I70, Q73, S95, V98, Q99, R100, L108, Y115, D133, V135, L136, G140, R144 и G147, предпочтительно - замену одной или нескольких аминокислот, выбранных из S95, V98, Y115, D133, V135 и G147. В этом варианте осуществления белок spr предпочтительно не содержит любые дополнительные мутации. Таким образом, мутантный ген spr может содержать мутацию, затрагивающую аминокислоту N31; или мутацию, затрагивающую аминокислоту R62; или мутацию, затрагивающую аминокислоту I70; или мутацию, затрагивающую аминокислоту Q73; или мутацию, затрагивающую аминокислоту S95; или мутацию, затрагивающую аминокислоту V98; или мутацию, затрагивающую аминокислоту Q99; или мутацию, затрагивающую аминокислоту R100; или мутацию, затрагивающую аминокислоту L108; или мутацию, затрагивающую аминокислоту Y115; или
- 9 031449 мутацию, затрагивающую аминокислоту D133; или мутацию, затрагивающую аминокислоту VI35; или мутацию, затрагивающую аминокислоту L136; или мутацию, затрагивающую аминокислоту G140; или мутацию, затрагивающую аминокислоту R144; или мутацию, затрагивающую аминокислоту G147.
В одном из вариантов осуществления мутантный ген spr содержит многочисленные мутации, затрагивающие аминокислоты:
S95 и Y115; или
N31, Q73, R100 и G140; или
Q73, R100 и G140; или
R100 и G140; или
Q73 и G140; или
Q73 и R100; или
R62, Q99 и R144 или
Q99 и R144.
Одну или несколько из аминокислот N31, R62, I70, Q73, S95, V98, Q99, R100, L108, Y115, D133, V135, L136, G140, R144 и G147 можно заменять любой подходящей аминокислотой, что приводит к образованию белка spr, способного супрессировать фенотип клетки, содержащей мутантный ген Tsp. Например, одну или несколько из N31, R62, I70, Q73, S95, V98, Q99, R100, L108, Y115, D133, V135, L136, G140 и R144 можно заменять небольшой аминокислотой, такой как Gly или Ala.
В предпочтительном варианте осуществления белок spr содержит одну или несколько из следующих замен: N31Y, R62C, I70T, Q73R, S95F, V98E, Q99P, R100G, L108S, Y115F, D133A, V135D или V135G, L136P, G140C, R144C и G147C. Предпочтительно белок spr содержит одну или несколько из следующих замен: S95F, V98E, Y115F, D133A, V135D или V135G и G147C. В этом варианте осуществления белок spr предпочтительно не содержит любые дополнительные замены аминокислот.
В одном из вариантов осуществления белок spr содержит только одну замену аминокислоты, выбранную из N31Y, R62C, I70T, Q73R, С94А, S95F, V98E, Q99P, R100G, L108S, Y115F, D133A, V135D или V135G, L136P, G140C, R144C и G147C, в частности С94А. В этом варианте осуществления белок spr предпочтительно не содержит любые дополнительные замены аминокислот.
В дополнительном варианте осуществления белок spr содержит многочисленные замены, выбранные из:
S95F и Y115F;
N31Y, Q73R, R100G и G140C;
Q73R, R100G и G140C;
R100G и G140C;
Q73R и G140C;
Q73R и R100G;
R62C, Q99P и R144C или
Q99P и R144C.
Предпочтительно мутантный ген spr кодирует белок spr, содержащий замены аминокислот, выбранные из С94А, D133A, Н145А и Н157А, в частности С94А.
В дополнительном варианте осуществления мутантный ген spr кодирует белок spr, содержащий замену аминокислоты W174R. В альтернативном варианте осуществления белок spr не содержит замену аминокислоты W174R.
Клетка по настоящему изобретению имеет сниженную активность белка Tsp по сравнению с клеткой дикого типа.
Выражение сниженная активность белка Tsp по сравнению с клеткой дикого типа означает, что активность Tsp в клетке снижена по сравнению с активностью Tsp в клетке дикого типа. Клетку можно модифицировать любыми подходящими средствами для снижения активности Tsp.
В одном из вариантов осуществления сниженная активность Tsp является результатом модификации эндогенного полинуклеотида, кодирующего Tsp и/или соответствующих регулирующих экспрессию последовательностей. Модификация может снижать или останавливать транскрипцию и трансляцию гена Tsp или может обеспечивать экспрессию белка Tsp, имеющего сниженную протеазную активность по сравнению с белком Tsp дикого типа.
В одном из вариантов осуществления соответствующую регулирующую экспрессию последовательность модифицируют для снижения экспрессии Tsp. Например, промотор гена Tsp можно подвергать мутагенезу для предотвращения экспрессии гена.
В предпочтительном варианте осуществления клетка по настоящему изобретению несет мутантный ген Tsp, кодирующий белок Tsp, имеющий сниженную протеазную активность, или подвергнутый нокауту мутантный ген Tsp. Предпочтительно хромосомный ген Tsp является мутантным.
Как применяют в настоящем описании, термин ген Tsp означает ген, кодирующий протеазу Tsp
- 10 031449 (также известную как Prc), являющуюся периплазматической протеазой, способной действовать на пенициллинсвязывающий белок-3 (PBP3) и белки отростка фага. Последовательность гена Tsp дикого типа представлена в SEQ ID NO: 25, а последовательность белка Tsp дикого типа представлена в SEQ ID NO: 26.
Ссылка на мутантный ген Tsp или мутантный ген Tsp, кодирующий Tsp, если не указано иначе, относится к мутантному гену Tsp, кодирующему белок Tsp, имеющий сниженную протеазную активность, или подвергнутому нокауту мутантному гену Tsp.
В контексте настоящего изобретения выражение мутантный ген Tsp, кодирующий белок Tsp, имеющий сниженную протеазную активность означает, что белок, кодируемый мутантным геном Tsp, не имеет полную протеазную активность по сравнению с белком, кодируемым немутантным геном Tsp дикого типа.
Предпочтительно мутантный ген Tsp кодирует белок Tsp, имеющий 50 или менее, 40 или менее, 30 или менее, 20 или менее, 10 или менее или 5% или менее протеазной активности немутантного белка Tsp дикого типа. Более предпочтительно мутантный ген Tsp кодирует белок Tsp, не имеющий протеазной активности. В этом варианте осуществления клетка не является дефектной по хромосомному гену Tsp, т.е. последовательность гена Tsp не подвергают делеции или мутагенезу для предотвращения экспрессии любой формы белка Tsp.
Для получения белка, имеющего сниженную протеазную активность, в ген Tsp можно вносить любую подходящую мутацию. Специалист в этой области легко может тестировать протеазную активность белка Tsp, экспрессируемого грамотрицательной бактерией, любым подходящим способом, известным в этой области, таким как способ, описываемый в Keiler et al. (Keiler and Sauer, 28864-68), включенной в настоящее описание в полном объеме в качестве ссылки, где тестировали протеазную активность Tsp.
В Keiler et al. (см. выше) описано, что Tsp имеет активный центр, содержащий остатки S430, D441 и K455, а остатки G375, G37 6, Е433 и Т452 важны для поддержания структуры Tsp. В Keiler et al. (см. выше) приведены данные о том, что гены Tsp с мутациями, приводящими к заменам аминокислот S430A, D441A, 1<455А. K455B, K455R, G375A, G376A, Е433А и Т452А, кодируют белки, у которых не обнаруживали протеазную активность. Также сообщали, что ген Tsp с мутациями, приводящими к замене S430C, кодирует белок, проявляющий приблизительно 5-10% активности белка дикого типа. Таким образом, мутация в гене Tsp для получения белка, имеющего сниженную протеазную активность, может включать мутацию, такую как миссенс-мутация, приводящая к замене одного или нескольких из остатков S430, D441, 455, G375, G376, Е433 и Т452. Предпочтительно мутация в гене Tsp для получения белка, имеющего сниженную протеазную активность, может включать мутацию, такую как миссенсмутация, затрагивающая один, два или все три остатка S430, D441 и K455 в активном центре.
Таким образом, мутантный ген Tsp может содержать мутацию, затрагивающую аминокислоту S430; или мутацию, затрагивающую аминокислоту D441; или мутацию, затрагивающую аминокислоту K455; или мутацию, затрагивающую аминокислоты S430 и D441; или мутацию, затрагивающую аминокислоты S430 и K455; или мутацию, затрагивающую аминокислоты D441 и K455; или мутацию, затрагивающую аминокислоты S430, D441 и K455.
Один или несколько из остатков S430, D441, K455, G375, G376, Е433 и Т452 можно заменять любой подходящей аминокислотой, приводящей к образованию белка, имеющего сниженную протеазную активность. Примерами подходящих замен являются S430A, S430C, D441A, 1<455А, K455n, K455R, G375A, G376A, Е433А и Т452А. Мутантный ген Tsp может содержать одну, две или три мутации, приводящие к заменам остатков в активном центре, например ген может содержать мутации, приводящие к заменам:
S430A или S430C; и/или
D441A; и/или
455А или K455B или K455R.
Предпочтительно ген Tsp содержит мутацию, приводящую к замене S430A или S430C.
В контексте настоящего изобретения выражение подвергнутый нокауту мутантный ген Tsp означает, что ген Tsp содержит одну или несколько мутаций, предотвращающих экспрессию белка Tsp, кодируемого геном дикого типа, для получения клетки, дефектной по белку Tsp. Подвергнутый нокауту ген может транскрибироваться частично или полностью, но не транслироваться в кодируемый белок. Подвергнутый нокауту мутантный ген Tsp можно подвергать мутагенезу любым подходящим способом, например, с помощью одной или нескольких делеций, инсерций, точечных мутаций, миссенс-мутаций, нонсенс-мутаций и мутаций со сдвигом рамки считывания для предотвращения экспрессии белка. Например, ген можно подвергать нокауту с помощью инсерции чужеродной последовательности ДНК, такой как маркер устойчивости к антибиотику, в кодирующую последовательность гена.
В предпочтительном варианте осуществления ген Tsp не подвергают мутагенезу с помощью инсерции чужеродной последовательности ДНК, такой как маркер устойчивости к антибиотику, в кодирую
- 11 031449 щую последовательность гена. В одном из вариантов осуществления ген Tsp содержит мутацию в инициаторном кодоне гена и/или в одном или нескольких стоп-кодонах, расположенных ниже в 5'-3' направлении от инициаторного кодона гена и выше в 3'-5' направлении от стоп-кодона гена, таким образом, предотвращая экспрессию белка Tsp. Мутация в инициаторном кодоне может являться миссенсмутацией одного, двух или всех трех нуклеотидов инициаторного кодона. Альтернативно или дополнительно, инициаторный кодон можно подвергать мутагенезу с помощью инсерционной или делетационной мутации со сдвигом рамки считывания. Ген Tsp содержит два кодона ATG на 5'-конце кодирующей последовательности, один или оба кодона ATG можно подвергать мутагенезу с помощью миссенсмутации. Ген Tsp можно подвергать мутагенезу по второму кодону ATG (кодону 3) с заменой его на TCG, как показано на фиг. 10. Альтернативно или дополнительно, ген Tsp может содержать один или несколько стоп-кодонов, расположенных ниже в 5'-3' направлении от инициаторного кодона гена и выше в 3'-5' направлении от стоп-кодона гена. Предпочтительно подвергнутый нокауту мутантный ген Tsp содержит и миссенс-мутацию в инициаторном кодоне, и один или несколько встроенных стоп-кодонов. В предпочтительном варианте осуществления ген Tsp подвергают мутагенезу для делеции Т из пятого кодона, таким образом, вызывая сдвиг рамки считывания, приводящий к образованию стоп-кодонов в кодонах 11 и 16, как показано на фиг. 10. В предпочтительном варианте осуществления ген Tsp подвергают мутагенезу для инсерции участка рестрикции AseI для создания третьего стоп-кодона в рамке считывания в кодоне 21, как показано на фиг. 10.
В предпочтительном варианте осуществления подвергнутый нокауту мутантный ген Tsp имеет последовательность ДНК SEQ ID NO: 25, включающую 6 нуклеотидов ATGAAT выше в 3'-5' направлении от инициаторного кодона. Мутации, осуществленные в подвергнутой нокауту мутантной последовательности Tsp SEQ ID NO: 25, представлены на фиг. 10. В одном из вариантов осуществления мутантный ген Tsp имеет последовательность ДНК нуклеотидов 7-2048 из SEQ ID NO: 25.
В вариантах осуществления настоящего изобретения клетка содержит мутантный ген DegP. Как применяют в настоящем описании, DegP означает ген, кодирующий белок DegP (также известный как HtrA), выполняющий двойную функцию шаперона и протеазы. Последовательность гена DegP дикого типа представлена в SEQ ID NO: 29, а последовательность немутантного белка DegP представлена в SEQ ID NO: 30.
При низких температурах DegP функционирует как шаперон, а при высоких температурах DegP предпочтительно функционирует как протеаза.
В вариантах осуществления, в которых клетка содержит мутацию в DegP, мутация DegP в клетке приводит к образованию мутантного гена DegP, кодирующего белок DegP, имеющий шаперонную активность, но не полную протеазную активность.
В контексте настоящего изобретения выражение имеющий шаперонную активность означает, что мутантный белок DegP имеет ту же или, по существу, ту же шаперонную активность, что и немутантный белок DegP дикого типа. Предпочтительно мутантный ген DegP кодирует белок DegP, имеющий 50 или более, 60 или более, 70 или более, 80 или более, 90 или более или 95% или более шаперонной активности немутантного белка DegP дикого типа. Более предпочтительно мутантный ген DegP кодирует белок DegP, имеющий ту же шаперонную активность, что и DegP дикого типа.
В контексте настоящего изобретения выражение имеющий сниженную протеазную активность означает, что мутантный белок DegP не имеет полную протеазную активность относительно немутантного белка DegP дикого типа. Предпочтительно мутантный ген DegP кодирует белок DegP, имеющий 50 или менее, 40 или менее, 30 или менее, 20 или менее, 10 или менее или 5% или менее протеазной активности немутантного белка DegP дикого типа. Более предпочтительно мутантный ген DegP кодирует белок DegP, не имеющий протеазной активности. Клетка не является дефектной по хромосомному гену DegP, т.е. последовательности гена DegP не подвергают делеции или мутагенезу для предотвращения экспрессии любой формы белка DegP.
Для получения белка, имеющего шаперонную активность и сниженную протеазную активность, в ген DegP можно вносить любую подходящую мутацию. Специалист в этой области легко может тестировать протеазную и шаперонную активности белка DegP, экспрессируемого грамотрицательной бактерией, любым подходящим способом, например, в котором протеазную и шаперонную активности DegP тестируют с использованием MalS, природного субстрата DegP.
DegP является сериновой протеазой и имеет активный центр, состоящий из каталитической триады аминокислотных остатков His105, Asp135 и Ser210. Мутация в гене DegP для получения белка, имеющего шаперонную активность и сниженную протеазную активность, может включать мутацию, такую как миссенс-мутация, затрагивающая одну, две или три из His105, Asp135 и Ser210.
Таким образом, мутантный ген DegP может содержать мутацию, затрагивающую аминокислоту His105; или мутацию, затрагивающую аминокислоту Asp135; или мутацию, затрагивающую аминокислоту Ser210; или мутацию, затрагивающую аминокислоты His105 и Asp135; или мутацию, затрагивающую аминокислоты His105 и Ser210; или
- 12 031449 мутацию, затрагивающую аминокислоты Asp135 и Ser210; или мутацию, затрагивающую аминокислоты His105, Asp135 и Ser210.
Одну, две или три из His105, Asp135 и Ser210 можно заменять любой подходящей аминокислотой, что приводит к образованию белка, имеющего шаперонную активность и сниженную протеазную активность. Например, одну, две или три из His105, Asp135 и Ser210 можно заменять небольшой аминокислотой, такой как Gly или Ala. Дополнительной подходящей мутацией является замена одной, двух или трех из His105, Asp135 и Ser210 аминокислотой, имеющей свойства, противоположные свойствам Asp135, заменяемой на Lys или Arg, полярную His105 заменяют неполярной аминокислотой, такой как Gly, Ala, Val или Leu, и небольшую гидрофильную Ser210 заменяют большим или гидрофобным остатком, таким как Val, Leu, Phe или Tyr. Предпочтительно ген DegP содержит мутацию, приводящую к замене S210A, как показано на фиг. 11, которая, как обнаруживали, приводит к образованию белка, имеющего шаперонную активность, но не протеазную активность.
DegP имеет два домена PDZ, PDZ1 (остатки 260-358) и PDZ2 (остатки 359-448), опосредующих белок-белковое взаимодействие. В одном из вариантов осуществления настоящего изобретения ген degP подвергают мутагенезу для делеции домена PDZ1 и/или домена PDZ2. Делеция PDZ1 и PDZ2 приводит к полной утрате протеазной активности белка DegP и более низкой шаперонной активности по сравнению с белком DegP дикого типа, в то время как делеция любого из PDZ1 или PDZ2 приводит к уровню 5% протеазной активности и аналогичной шаперонной активности относительно белка DegP дикого типа.
Мутантный ген DegP также может содержать молчащий неприродный участок рестрикции, такой как AseI, для облегчения осуществления способов идентификации и скрининга, например, как показано на фиг. 11.
Предпочтительная последовательность мутантного гена DegP, содержащего точечную мутацию, приводящую к замене S210A, и маркерный участок рестрикции AseI, представлена в SEQ ID NO: 31, и последовательность кодируемого белка представлена в SEQ ID NO: 27. Мутации, осуществляемые в последовательности мутантного DegP SEQ ID NO: 32, представлены на фиг. 11.
В вариантах осуществления настоящего изобретения, где клетка содержит мутантный ген DegP, кодирующий белок DegP, имеющий шаперонную активность и сниженную протеазную активность, одна или несколько клеток, к которым относится настоящее изобретение, могут обеспечивать улучшенный выход продукции правильно свернутых белков относительно мутантных клеток, где ген DegP подвергали мутагенезу для нокаута DegP, предотвращая экспрессию DegP, такого как дефектный хромосомный DegP. В клетке, содержащей подвергнутый нокауту мутантный ген DegP, предотвращающий экспрессию DegP, шаперонная активность DegP полностью утрачивается, в то время как в клетке по настоящему изобретению шаперонная активность DegP сохраняется при полной утрате протеазной активности. В этих вариантах осуществления одна или несколько клеток по настоящему изобретению имеют меньшую протеазную активность для предотвращения протеолиза белка при сохранении шаперонной активности для осуществления правильного фолдинга и транспорта белка в клетке-хозяине.
В одном из вариантов осуществления грамотрицательная бактериальная клетка по настоящему изобретению не несет подвергнутый нокауту мутантный ген OmpT, например, являясь дефектной по хромосомному OmpT SEQ ID NO: 39.
В одном из вариантов осуществления грамотрицательная бактериальная клетка по настоящему изобретению не несет подвергнутый нокауту мутантный ген DegP, например, являясь дефектной по хромосомному degP. В одном из вариантов осуществления грамотрицательная бактериальная клетка по настоящему изобретению не несет мутантный ген DegP.
В одном из вариантов осуществления грамотрицательная бактериальная клетка по настоящему изобретению не несет в подвергнутый нокауту мутантный ген ptr, например, являясь дефектной по хромосомному ptr.
В одном из вариантов осуществления грамотрицательная бактериальная клетка по настоящему изобретению не несет мутантный ген spr.
Для получения рекомбинантной клетки по настоящему изобретению в качестве родительской клетки можно использовать любую подходящую грамотрицательную бактерию. Подходящая грамотрицательная бактерия включает Salmonella typhiinurium, Pseudomonas fluorescens, Erwinia carotovora, Shigella, Klebsiella pneumoniae, Legionella pneumophila, Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter baumannii и E. coli. Предпочтительно родительской клеткой является E. coli. В настоящем изобретении можно использовать любой подходящий штамм Е. coli, но предпочтительно используют штамм W3110 дикого типа, такой как K-12 W3110.
Недостаток, ассоциированный со штаммами, полученными ранее и используемыми для экспрессии рекомбинантных белков, включает использование мутаций в генах, вовлеченных в метаболизм клетки и репликацию ДНК, таких как, например phoA, fhuA, lac, тес, gal, ara, arg, thi и pro в штаммах Е. coli. Эти мутации могут оказывать многочисленные вредные воздействия на клетку-хозяина, включая эффекты в отношении роста клеток, стабильности, просачивания белков из периплазматического пространства, выхода экспрессии рекомбинантного белка и токсичности. Штаммы, имеющие одну или несколько из этих геномных мутаций, в частности штаммы, имеющие большое количество этих мутаций, могут демонстри
- 13 031449 ровать утрату формы, что снижает скорость роста бактерий до уровня, не подходящего для промышленной продукции белка. Кроме того, любая из указанных выше геномных мутаций может затрагивать другие гены в цис- и/или транс-положении непредсказуемым неблагоприятным образом, таким образом, изменяя фенотип штамма, форму клеток и белковый профиль. Кроме того, использование в значительной степени мутантных клеток, как правило, не подходит для получения рекомбинантных белков для коммерческого использования, в частности, в терапевтических средствах, т.к. такие штаммы, как правило, имеют дефектные метаболические пути и, таким образом, могут плохо расти или не расти в минимальной или химически определенной среде.
В предпочтительном варианте осуществления клетки несут только минимальные мутации для встраивания рекомбинантного полинуклеотида, кодирующего DsbC, и одного или нескольких полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, и, необязательно, мутацию, приводящую к сниженной протеазной активности Tsp, и, необязательно, ген spr или его мутантную форму.
В одном из вариантов осуществления, где полинуклеотид, кодирующий DsbC, и/или один или несколько полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, встраивают в геном клетки, осуществляют только минимальные мутации в геноме клетки для встраивания рекомбинантного полинуклеотида, кодирующего DsbC и/или антитело. В дополнительном варианте осуществления, где рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий DsbC, и полинуклеотид, кодирующий антитело, присутствуют в одном и том же или разных экспрессирующих векторах, геном предпочтительно является изогенным относительно генома клетки дикого типа.
В одном из вариантов осуществления клетки не несут любые другие мутации, которые могут оказывать вредные воздействия на рост клеток и/или способность экспрессировать интересующий белок. Таким образом, одна или несколько рекомбинантных клеток-хозяев по настоящему изобретению могут проявлять улучшенную экспрессию белка и/или улучшенные характеристики роста по сравнению с клетками, содержащими генетически введенные мутации в последовательности генома. Клетки по настоящему изобретению также являются более пригодными для использования в получении терапевтических белков по сравнению с клетками, имеющими повреждения генома клетки.
В предпочтительном варианте осуществления клетка является изогенной относительно клетки Е. coli дикого типа, за исключением рекомбинантного полинуклеотида, кодирующего DsbC, и одного или нескольких полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD 154, и, необязательно, мутацию, приводящую к сниженной протеазной активности Tsp, и, необязательно, ген spr или его мутантную форму.
Один из вариантов осуществления относится к клетке, изогенной штамму W3110 Е. coli, за исключением сниженной активности Tsp и гена spr или его мутантной формы, для использования вместе с плазмидой, подходящей для экспрессии DsbC и антитела или его антигенсвязывающего фрагмента, специфически связывающегося с CD154.
Более предпочтительно клетка по настоящему изобретению является изогенной штамму W3110 Е. coli за исключением рекомбинантного полинуклеотида, кодирующего DsbC, и одного или нескольких полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154.
Клетка по настоящему изобретению содержит один или несколько полинуклеотидов, кодирующих антигенсвязывающий фрагмент антитела со специфичностью к CD154.
Как применяют в настоящем описании, термин клетка, содержащая предназначен для обозначения того, куда указанный объект встраивают в геном клетки, или где клетка содержит содержащий его вектор, такой как плазмида, как правило, для экспрессии объекта.
Антитело или фрагмент антитела может являться мультивалентным, полиспецифичным, гуманизированным, полностью человеческим или химерным. Антитело или фрагмент антитела может принадлежать любому виду, но предпочтительно его получают из моноклонального антитела, антитела человека или гуманизированного фрагмента. Фрагмент антитела можно получать из любого класса (например, IgG, IgE, IgM, IgD или IgA) или подкласса иммуноглобулиновых молекул, и его можно получать из любого вида, включая, например, мышь, крысу, акулу, кролика, свинью, хомяка, верблюда, ламу, козу или человека. Части фрагмента антитела можно получать из нескольких видов, например фрагменты антител могут являться химерными. В одном примере константные области получают из одного вида, а вариабельные области - из другого.
Фрагмент антитела может являться VH, VL, VHH, Fab-, модифицированным Fab-, Fab'-, F(ab')2- или Fv-фрагментом; мономером или димером легкой цепи или тяжелой цепи; а также диателом; триотелом; тетрателом; миниантителом; доменным антителом или одноцепочечным антителом, например одноцепочечным Fv, в котором вариабельные домены тяжелых и легких цепей соединяют пептидным линкером, Fab-Fv, или антителом с двойной специфичностью, таким как Fab-dAb, как описано в WO 2009/040562. Аналогично, вариабельные области тяжелой и легкой цепи при необходимости можно комбинировать с другими доменами антитела. В этой области известны фрагменты антител (Holliger and Hudson, 1126-36).
Антитело, специфически связывающееся с CD154, предпочтительно является антителом 342, опи
- 14 031449 сываемым в WO 2008/118356 (содержание которой включено в настоящее описание в качестве ссылки) или содержит CDR или вариабельные области тяжелой и легкой цепи антитела 342, описываемого в WO 2008/118356. Фрагмент антитела, специфически связывающийся с CD154, предпочтительно получают из антитела 342, описываемого в WO 2008/118356 и/или содержащего CDR или вариабельные области тяжелой и легкой цепи указанного антитела.
В одном из вариантов осуществления антитело или фрагмент антитела, специфически связывающийся с CD154, содержит тяжелую цепь, где вариабельный домен содержит три CDR, где CDR выбраны из SEQ ID NO: 1 для CDRH1, SEQ ID NO: 2 для CDRH2 и SEQ ID NO: 3 для CDRH3.
В одном из вариантов осуществления антитело или фрагмент антитела, специфически связывающийся с CD154, содержит легкую цепь, где вариабельный домен содержит три CDR, где CDR выбраны из SEQ ID NO: 4 для CDRL1, SEQ ID NO: 5 для CDRL2 и SEQ ID NO: 6 для CDRL3.
В одном из вариантов осуществления антитело или фрагмент антитела, специфически связывающийся с CD154, содержит тяжелую цепь, содержащую последовательность SEQ ID NO: 1 для CDRH1, последовательность SEQ ID NO: 2 для CDRH2 и последовательность SEQ ID NO: 3 для CDRH3.
В одном из вариантов осуществления антитело или фрагмент антитела, специфически связывающийся с CD154, содержит легкую цепь, содержащую последовательность SEQ ID NO: 4 для CDRL1, последовательность SEQ ID NO: 5 для CDRL2 и последовательность SEQ ID NO: 6 для CDRL3.
В одном из вариантов осуществления антитело или фрагмент антитела, специфически связывающийся с CD154, содержит тяжелую цепь, содержащую последовательность SEQ ID NO: 1 для CDRH1, последовательность SEQ ID NO: 2 для CDRH2 и последовательность SEQ ID NO: 3 для CDRH3, и легкую цепь, содержащую последовательность SEQ ID NO: 4 для CDRL1, последовательность SEQ ID NO: 5 для CDRL2 и последовательность SEQ ID NO: 6 для CDRL3.
Антитело предпочтительно является молекулой антитела с пересаженными CDR, и, как правило, вариабельный домен содержит акцепторные каркасные области человека и донорную не принадлежащую человеку CDR.
Предпочтительно антитело содержит вариабельный домен легкой цепи (SEQ ID NO: 7) и вариабельный домен тяжелой цепи (SEQ ID NO: 9).
Предпочтительно антитело является Fab-фрагментом.
Предпочтительно Fab-фрагмент содержит тяжелую цепь, содержащую последовательность, указанную как SEQ ID NO: 14 или состоящую из нее, и легкую цепь, содержащую последовательность, указанную как SEQ ID NO: 12, или состоящую из нее. Аминокислотные последовательности, приведенные в SEQ ID NO: 14 и SEQ ID NO: 12, предпочтительно кодируют нуклеотидные последовательности, приведенные в SEQ ID NO: 13 и SEQ ID NO: 11 соответственно.
Альтернативно, предпочтительно фрагмент антитела является модифицированным Fabфрагментом, где модификацией является добавление на С-конец его тяжелой цепи одной или нескольких аминокислот для возможности прикрепления эффекторной или репортерной молекулы. Предпочтительно дополнительные аминокислоты образуют модифицированную шарнирную область, содержащую один или два остатка цистеина, к которым можно прикреплять эффекторную или репортерную молекулу, как известно в этой области (см., например, WO 98/25971, который в полном объеме включен в настоящее описание в качестве ссылки).
Клетка по настоящему изобретению содержит последовательность ДНК, кодирующую антитело. Предпочтительно последовательность ДНК кодирует тяжелую и легкую цепь антитела.
В одном из предпочтительных вариантов осуществления последовательность ДНК кодирует легкую цепь и содержит последовательность, представленную в настоящем описании.
Последовательность ДНК может содержать синтетическую ДНК, например, получаемую химической обработкой, кДНК, геномную ДНК или любую их комбинацию.
Домены константной области антитела, при наличии, можно выбирать с учетом предполагаемой функции молекулы антитела и, в частности, эффекторных функций, которые могут являться необходимыми. Например, домены константной области могут являться доменами IgA, IgD, IgE, IgG или IgM человека. В частности, можно использовать домены константной области IgG человека, особенно изотипов IgG1 и IgG3, если молекула антитела предназначена для терапевтического использования и необходимы эффекторные функции антитела. Альтернативно, можно использовать изотипы IgG2 и IgG4, если молекула антитела предназначена для терапевтических целей, и эффекторные функции антитела не являются необходимыми, например, просто для блокирования активности CD154.
Антитело можно применять в лечении заболеваний или нарушений, включая воспалительные заболевания и нарушения, иммунные заболевания и нарушения, фиброзные нарушения и злокачественные новообразования.
Термин воспалительное заболевание или аутоиммунное нарушение и иммунное заболевание или нарушение включает ревматоидный артрит, псориатический артрит, анкилозирующий спондилит, ювенильный артрит, болезнь Стилла, тиреоидит Хашимото, болезнь Грейвса, синдром Шегрена, синдром Гудпасчера, болезнь Аддисона, васкулит, включая ANCA-ассоциированный васкулит и гранулематоз Вегенера, первичный биллиарный цирроз, склерозирующий холангит, аутоиммунный гепатит, ревмати
- 15 031449 ческую полимиалгию, синдром Гийена-Барре, антифосфолипидный синдром, идиопатическую тромбоцитопению, аутоиммунную гемолитическую анемию, пернициозную анемию, обыкновенную пузырчатку, дерматомиозит, буллезный пемфигоид, болезнь Шенлейна-Геноха, болезнь Макла-Уэллса, псориаз, болезнь Крона, язвенный колит, SLE (системную красную волчанку), глютеиновую болезнь, астму, аллергический ринит, атопический дерматит, рассеянный склероз, сахарный диабет I типа, трансплантацию и реакцию трансплантат против хозяина.
Как применяют в настоящем описании, термин фиброзное нарушение относится к нарушению, отличающемуся образованием или развитием избыточной фиброзной соединительной ткани в органе или ткани, часто, в качестве репаративного или реактивного процесса. Фиброзное нарушение может затрагивать отдельные органы, такие как легкие (в качестве неограничивающих примеров, идиопатический легочный фиброз, интерстициальную болезнь легких), печень, кишечник, почки, сердце или кожу, или затрагивать многие органы, в качестве неограничивающих примеров, при системном склерозе. Термин фиброзное нарушение также относится к рубцеванию кожи. Рубцы кожи включают, в качестве неограничивающих примеров, келоидные рубцы, контрактурные рубцы, развивающиеся, в качестве неограничивающих примеров, после ожогов кожи, гипертрофические рубцы и постугревые рубцы.
Клетка-хозяин по изобретению также может содержать дополнительный полинуклеотид, кодирующий один или несколько дополнительных интересующих белков.
Рекомбинантную грамотрицательную бактериальную клетку по настоящему изобретению можно получать любыми подходящими средствами.
Специалисту в этой области известны подходящие способы, которые можно использовать для встраивания рекомбинантного полинуклеотида, кодирующего DsbC, и полинуклеотида, кодирующего антитело. Рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий DsbC, и/или полинуклеотид, кодирующий антитело, можно встраивать в геном клетки с использованием подходящего вектора, такого как pKO3, описываемого в Link et al., включенной в настоящее описание в качестве ссылки в полном объеме (Link, Phillips, and Church, 6228-37).
Альтернативно или дополнительно, рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий DsbC, и/или полинуклеотид, кодирующий антитело, можно не встраивать в рекомбинантную экспрессирующую кассету. В одном из вариантов осуществления в настоящем изобретении используют экспрессирующую кассету, несущую полинуклеотид, кодирующий DsbC, и/или полинуклеотид, кодирующий антитело, как правило, содержащий кодирующую белок последовательность, кодирующую DsbC, одну или несколько кодирующих белок последовательностей, кодирующих антитело, и одну или несколько регулирующих экспрессию последовательностей. Одна или несколько регулирующих экспрессию последовательностей могут включать промотор. Одна или несколько регулирующих экспрессию последовательностей также могут включать 3'-нетранслируемую область, такую как терминирующая последовательность. Подходящие промоторы более подробно описаны ниже.
В одном из вариантов осуществления ген, кодирующий DsbC и/или антитело или его фрагмент, встраивают в геном клетки-хозяина для получения стабильной клеточной линии.
В одном из вариантов осуществления клетка по настоящему изобретению содержит один или несколько экспрессирующих векторов, таких как плазмида. Предпочтительно вектор содержит одну или несколько экспрессирующих кассет, определенных выше. Предпочтительно клетка-хозяин содержит экспрессирующий вектор, содержащий ДНК, кодирующую антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD 154, как описано выше. Предпочтительно экспрессирующий вектор содержит полинуклеотидную последовательность, кодирующую легкую цепь, и полинуклеотидную последовательность, кодирующую тяжелую цепь антитела или его антигенсвязывающего фрагмента, специфически связывающегося с CD154.
В предпочтительном варианте осуществления экспрессирующий вектор является экспрессирующим вектором Е. coli.
В одном из вариантов осуществления полинуклеотидную последовательность, кодирующую антитело, и полинуклеотид, кодирующий DsbC, встраивают в отдельные экспрессирующие векторы.
Для получения продуктов, содержащих тяжелые и легкие цепи, клеточную линию можно трансформировать с использованием двух векторов, первого вектора, кодирующего полипептид легкой цепи, и второго вектора, кодирующего полипептид тяжелой цепи. Альтернативно, можно использовать один вектор, вектор, включающий последовательности, кодирующие полипептиды легкой цепи и тяжелой цепи.
Альтернативно, полинуклеотидную последовательность, кодирующую антитело, и полинуклеотид, кодирующий DsbC, встраивают в один вектор. Предпочтительно вектор содержит последовательности, кодирующие полипептиды легкой и тяжелой цепи антитела.
Настоящее изобретение также относится к экспрессирующему вектору, содержащему рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий DsbC и антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154. Экспрессирующий вектор является полицистронным вектором, содержащим полинуклеотидную последовательность, кодирующую DsbC, и полинуклеотидную последовательность, кодирующую антитело.
- 16 031449
Полицистронный вектор можно получать предпочтительным способом клонирования, делающим возможной повторное последовательное клонирование полинуклеотидных последовательностей в вектор. В способе используют совместимые липкие концы пары участков рестрикции, такие как концы AT участков рестрикции AseI и NdeI. Полинуклеотид, содержащий кодирующую последовательность и имеющий совместимые липкие концы, такие как фрагмент AseI-NdeI, можно клонировать по участкам рестрикции в векторе, таким как NdeI. Инсерция полинуклеотидной последовательности разрушает 5'участок рестрикции, но приводит к образованию нового 3'-участка рестрикции, такого как NdeI, который затем можно использовать для инсерции дополнительной полинуклеотидной последовательности, содержащей совместимые липкие концы. Затем способ можно повторять для встраивания дополнительных последовательностей. Каждая полинуклеотидная последовательность, встраиваемая в вектор, содержит 3'-некодирующую последовательность до стоп-кодона, которая может содержать участок SspI для скрининга, последовательность связывания рибосом Шайна-Дальгарно, А-богатый спейсер и участок NdeI, кодирующий инициаторный кодон.
Схематическое изображение получения вектора, содержащего полинуклеотидную последовательность, кодирующую легкую цепь антитела (LC), тяжелую цепь антитела (НС), полинуклеотидную последовательность DsbC и дополнительную полинуклеотидную последовательность, представлено на фиг. 1.
Предпочтительно клетка по настоящему изобретению содержит экспрессирующий вектор, определенный выше.
В варианте осуществления, где клетка также экспрессирует один или несколько дополнительных белков из следующих:
один или несколько белков, способных облегчать фолдинг белка, таких как FkpA, Skp, SurA, PPiA и PPiD; и/или один или несколько белков, способных облегчать секрецию или транслокацию белка, таких как SecY, SecE, SecG, SecYEG, SecA, SecB, FtsY и Lep; и/или один или несколько белков, способных облегчать образование дисульфидной связи, таких как DsbA, DsbB, DsbD, DsbG;
один или несколько дополнительных белков можно экспрессировать с одного или нескольких полинуклеотидов, встроенных в тот же вектор, что и полинуклеотид, кодирующий DsbC, и или одного или нескольких полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154. Альтернативно, один или несколько полинуклеотидов можно встраивать в отдельные векторы.
Можно получать экспрессирующий вектор с помощью инсерции одной или нескольких экспрессирующих кассет, определенных выше, в подходящий вектор. Альтернативно, регулирующие экспрессию последовательности для регуляции экспрессии полинуклеотидной последовательности могут содержаться в экспрессирующем векторе, и, таким образом, для завершения экспрессирующего вектора может потребоваться только кодирующая область полинуклеотида.
Полинуклеотид, кодирующий DsbC, и/или полинуклеотид, кодирующий антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154, соответствующим образом встраивают в реплицирующийся вектор, как правило, автономно реплицирующийся экспрессирующий вектор, для экспрессии в клетке под контролем подходящего для клетки промотора. В этой области известно множество векторов для этой цели и выбор подходящего вектора может зависеть от размера нуклеиновой кислоты и, в частности, типа клеток.
Примеры экспрессирующих векторов, которые можно использовать для трансформации клеткихозяина с помощью полинуклеотида по изобретению, включают плазмиду, такую как pBR322 или pACYC184, и/или вирусный вектор, такой как бактериофаг, мобильный генетический элемент, такой как транспозон.
Такие экспрессирующие векторы, как правило, содержат точку начала репликации плазмиды, селективный маркер устойчивости к антибиотику, промотор и терминатор транскрипции, разделенные участком множественного клонирования (экспрессирующая кассета), и последовательность ДНК, кодирующую участок связывания рибосомы.
Используемые в настоящем изобретении промоторы можно соединять с соответствующим полинуклеотидом напрямую или, альтернативно, помещать в соответствующее положение, например в вектор, таким образом, что при встраивании соответствующего полипептида соответствующий промотор может на него действовать. В одном из вариантов осуществления промотор помещают перед кодирующей частью полинуклеотида, на который он действует, например соответствующий промотор помещают перед каждой кодирующей частью полинуклеотида. Как применяют в настоящем описании, перед предназначен для обозначения того, что промотор локализуется на 5'-конце относительно кодирующей части полинуклеотида.
Промоторы могут являться эндогенными или экзогенными относительно клеток-хозяев. Подходящие промоторы включают lac, tac, trp, phoA, Ipp, Arab, tet и T7.
Один или несколько используемых промоторов могут являться индуцибельными промоторами. В
- 17 031449 варианте осуществления, где полинуклеотид, кодирующий DsbC, и полинуклеотид, кодирующий антитело, встраивают в один вектор, нуклеотидные последовательности, кодирующие DsbC и антитело, могут находиться под контролем одного промотора или отдельных промоторов. В варианте осуществления, где нуклеотидные последовательности, кодирующие DsbC и антитело, находятся под контролем отдельных промоторов, промотор может являться независимым индуцибельным промотором.
Промоторы для применения в бактериальных системах, как правило, также содержат последовательность Шайна-Дальгарно (S.D.), функционально связанную с ДНК, кодирующей интересующий полипептид. Промотор можно выделять из ДНК бактериального происхождения посредством расщепления рестрикционными ферментами и встраивать в вектор, содержащий желаемую ДНК.
Предпочтительно экспрессирующий вектор также содержит бицистронную последовательность для получения антитела или его антигенсвязывающего фрагмента, как описано в WO 03/048208 или WO 2007/039714 (содержание которых включено в настоящее описание в качестве ссылки в полном объеме). Предпочтительно цистрон, расположенный выше в 3'-5' направлении, содержит ДНК, кодирующую легкую цепь антитела, и цистрон, расположенный ниже в 5'-3' направлении, содержит ДНК, кодирующую соответствующую тяжелую цепь, и бицистронная межгенная последовательность (IGS) предпочтительно содержит последовательность, выбранную из IGS1 (SEQ ID NO: 33), IGS2 (SEQ ID NO: 34), IGS3 (SEQ ID NO: 35) и IGS4 (SEQ ID NO: 36).
Предпочтительно экспрессирующий вектор содержит трицистронную последовательность для получения легкой цепи и тяжелой цепи антитела или его антигенсвязывающего фрагмента, как описано выше, и последовательность для получения рекомбинантного DsbC, предпочтительно содержащего гистидиновую метку.
Терминаторы могут являться эндогенными или экзогенными по отношению к клеткам-хозяевам. Подходящим терминатором является rrnB.
Дополнительные подходящие регуляторы транскрипции, включая промоторы и терминаторы, и способы воздействия на транспорт белка можно найти в Makrides et al., включенном в настоящее описание в качестве ссылки в полном объеме (Makrides, 512-38).
Полинуклеотид DsbC, встраиваемый в экспрессирующий вектор, предпочтительно содержит нуклеиновую кислоту, кодирующую сигнальную последовательность DsbC и кодирующую последовательность DsbC. Белок DsbC также можно направлять в периплазму посредством генетического слияния с другими сигнальными пептидами, например, такими как сигнальные пептиды из белков: OmpA, MalB, PelB, PhoA, PhoS, LppA, DsbA. Предпочтительно вектор содержит последовательность нуклеиновой кислоты, позволяющую вектору реплицироваться в одной или нескольких выбранных клетках-хозяевах, предпочтительно реплицироваться независимо от хромосомы хозяина. Такие последовательности хорошо известны для многих бактерий.
В одном из вариантов осуществления DsbC и/или интересующий белок содержит гистидиновую метку на N-конце и/или С-конце.
Молекула антитела может секретироваться из клетки или транспортироваться в периплазму с помощью подходящих сигнальных последовательностей. Альтернативно, молекулы антител могут накапливаться внутри цитоплазмы клетки. Предпочтительно молекула антитела транспортируется в периплазму.
Полинуклеотид, кодирующий антитело, может экспрессироваться как продукт слияния с другим полипептидом, предпочтительно сигнальной последовательностью или другим полипептидом, имеющим конкретный участок расщепления на N-конце зрелого полипептида. Выбранная гетерологичная сигнальная последовательность должна распознаваться и процессироваться клеткой-хозяином. В случае прокариотических клеток-хозяев, не распознающих и не процессирующих сигнальную последовательность нативного или эукариотического полипептида, сигнальную последовательность заменяют прокариотической сигнальной последовательностью. Подходящие сигнальные последовательности включают OmpA, PhoA, LamB, PelB, DsbA и DsbC. В варианте осуществления, где клетка содержит полинуклеотид, кодирующий тяжелую цепь антитела, и полинуклеотид, кодирующий легкую цепь антитела, каждый полинуклеотид может содержать сигнальную последовательность, такую как OmpA.
В конструировании подходящих векторов, содержащих один или несколько из указанных выше компонентов, используют стандартные способы лигирования. Выделенные плазмиды или фрагменты ДНК расщепляют, адаптируют и заново лигируют в форме, желательной для получения необходимых плазмид. Общие способы, с помощью которых можно конструировать векторы, способы трансфекции и способы культивирования хорошо известны специалистам в этой области.
Для получения последовательности ДНК, кодирующей антитело, можно использовать стандартные способы молекулярной биологии. Желаемые последовательности ДНК можно синтезировать полностью или частично с использованием способов синтеза олигонуклеотидов. При необходимости можно использовать способы сайт-специфического мутагенеза и полимеразной цепной реакции (ПЦР).
Варианты осуществления изобретения, представленные в настоящем описании со ссылкой на полинуклеотид, в равной степени относятся к альтернативным вариантам осуществления изобретения, например векторам, экспрессирующим кассетам и/или клеткам-хозяевам, содержащим используемые в на
- 18 031449 стоящем изобретении компоненты, настолько, насколько соответствующий аспект можно к ним отнести.
Настоящее изобретение также относится к способу получения антитела или его антигенсвязывающего фрагмента, специфически связывающегося с CD154, включающему культивирование рекомбинантной грамотрицательной бактериальной клетки, определенной выше, в среде для культивирования в условиях, эффективных для экспрессии антитела или его антигенсвязывающего фрагмента, специфически связывающегося с CD 154, и рекомбинантного полинуклеотида, кодирующего DsbC; и выделения антитела или его антигенсвязывающего фрагмента, специфически связывающегося с CD154, из периплазмы рекомбинантной грамотрицательной бактериальной клетки и/или среды для культивирования.
Грамотрицательная бактериальная клетка и антитело, предпочтительно используемые в способе по настоящему изобретению, подробно описаны выше.
Рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий DsbC, и полинуклеотид, кодирующий антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154, можно встраивать в клеткухозяина с использованием любых подходящих способов, известных в этой области. Как указано выше, как правило, полинуклеотид, кодирующий DsbC, и полинуклеотид, кодирующий антитело, встраивают как часть одного вектора или отдельных экспрессирующих векторов, с помощью которого трансформируют клетки.
Клетки можно трансформировать с помощью полинуклеотида, кодирующего DsbC, и полинуклеотида, кодирующего антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154, с использованием стандартных способов, например, используя хлорид рубидия, PEG или электропорацию.
В способе по настоящему изобретению также можно использовать систему селекции для облегчения селекции стабильных клеток, успешно трансформированных с использованием полинуклеотида, кодирующего интересующий белок. В системе селекции, как правило, используют котрансформацию с использованием полинуклеотида, кодирующего селективный маркер. В одном из вариантов осуществления каждый полинуклеотид, с помощью которого трансформируют клетки, дополнительно содержит полинуклеотид, кодирующий один или несколько селективных маркеров. Таким образом, трансформацию с использованием полинуклеотидов, кодирующих DsbC и антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154, и одного или нескольких полинуклеотидов, кодирующих маркер, осуществляют совместно, и для селекции тех клеток, которые продуцируют желаемые белки, можно использовать систему селекции.
Клетки, способные экспрессировать один или несколько маркеров, способны выживать/расти/делиться в конкретных искусственно созданных условиях, например, при добавлении токсина или антибиотика, благодаря свойствам, придаваемым полипептидом/геном или полипептидным компонентом встроенной в них системы селекции (например, устойчивости к антибиотику). Те клетки, которые не могут экспрессировать один или несколько маркеров, не способны выживать/расти/делиться в этих искусственно созданных условиях. При необходимости можно выбирать более или менее жесткие искусственно созданные условия.
В настоящем изобретении можно использовать любую подходящую систему селекции. Как правило, система селекции может основываться на включении в вектор одного или нескольких генов, обеспечивающих устойчивость к известному антибиотику, например ген устойчивости к тетрациклину, хлорамфениколу, канамицину или ампициллину. Клетки, растущие в присутствие соответствующего антибиотика, можно подвергать селекции, т.к. они экспрессируют и ген, придающий устойчивость к антибиотику, и ген, кодирующий желаемый белок.
Для экспрессии антитела и/или DsbC в настоящем изобретении можно использовать систему индуцируемой экспрессии или конститутивный промотор. Подходящие системы индуцируемой экспрессии и конститутивные промоторы хорошо известны в этой области.
В одном из вариантов осуществления, где полинуклеотид, кодирующий DsbC, и полинуклеотид, кодирующий антитело, находятся под контролем одного или отдельных индуцибельных промоторов, экспрессию полинуклеотидов, кодирующих антитело, и рекомбинантного полинуклеотида, кодирующего DsbC, индуцируют добавлением индуктора в среду для культивирования.
Для культивирования трансформированной клетки можно использовать любую подходящую среду. Среду можно адаптировать для конкретной системы селекции, например среда может содержать антибиотик, что позволяет расти в среде только тем клеткам, которые успешно трансформировали.
При необходимости клетки, получаемые из среды, можно подвергать дополнительному скринингу и/или очистке. При необходимости способ дополнительно может включать один или несколько этапов экстракции и очистки интересующего белка.
Антитело или его антигенсвязывающий фрагмент можно выделять из клеток штамма, включая цитоплазму, периплазму или супернатант. Подходящие способы включают фракционирование на иммуноаффинных или ионообменных колонках, осаждение этанолом, обращенно-фазовую ВЭЖХ, хроматографию с гидрофобным взаимодействием, хроматографию на силикагеле, хроматографию на ионообменной
- 19 031449 смоле, такой как S-SEPHAROSE и DEAE, хроматофокусирование, осаждение сульфатом аммония и гельфильтрацию.
В одном из вариантов осуществления способ дополнительно включает отделение антитела или его антигенсвязывающего фрагмента от DsbC.
Антитела или их антигенсвязывающие фрагменты можно соответствующим образом выделять из среды для культивирования и/или экстракта цитоплазмы и/или экстракта периплазмы общепринятыми способами очистки антител, такими как, например, хроматография на протеин А-сефарозе, хроматография с протеином G, хроматография с протеином L, тиофильная хроматография, хроматография на смешанных смолах, с гистидиновой меткой, FLAGTag, хроматография на гидроксиапатите, электрофорез в геле, диализ, аффинная хроматография, фракционирование/осаждение сульфатом аммония, этанолом или PEG, хроматография на ионообменных мембранах, хроматография с адсорбцией на слой вспученного адсорбента (ЕВА) или хроматография с псевдодвижущимся слоем.
Способ также может включать дополнительный этап измерения величины экспрессии интересующего белка и селекции клеток, имеющих высокие уровни экспрессии интересующего белка.
Один или несколько этапов способа, представленного в настоящем описании, можно осуществлять в комбинации в подходящем контейнере, таком как биореактор.
После экспрессии антитело можно дополнительно обрабатывать, например, посредством конъюгации с другой молекулой, такой как эффекторная молекула. Таким образом, способ по настоящему изобретению может включать дополнительный этап прикрепления эффекторной молекулы к антителу.
Как применяют в настоящем описании, термин эффекторная молекула включает, например, противоопухолевое средство, лекарственные средства, токсины (такие как ферментативно активный токсины бактериального или растительного происхождения и их фрагменты, например рицин и его фрагменты), биологически активные белки, например, ферменты, другое антитело или фрагменты антител, синтетические или природные полимеры, нуклеиновые кислоты и их фрагменты, например ДНК, РНК и их фрагменты, радионуклиды, в частности радиоактивный йод, радиоактивные изотопы, комплексообразующие металлы, наночастицы и репортерные группы, такие как флуоресцентные соединения или соединения, которые можно определять с помощью ЯМР- или ЭПР-спектроскопии. Эффекторную молекулу можно прикреплять к антителу или его фрагменту любым подходящим способом, например фрагмент антитела можно модифицировать для прикрепления по меньшей мере одной эффекторной молекулы, как описано в WO 2005/003171 или WO 2005/003170 (содержание которых включено в настоящее описание в качестве ссылки в полном объеме). В WO 2005/003171 или WO 2005/003170 также описывают подходящие эффекторные молекулы.
Антитело может содержать макроцикл для образования комплекса с атомом тяжелого металла или токсином, таким как рицин, прикрепленным к нему с помощью ковалентной мостиковой структуры. Альтернативно, можно использовать способы рекомбинантных ДНК для получения молекулы антитела, в которой Fc-фрагмент (домены СН2, CH3 и шарнирные домены), домены СН2 и CH3 или домен CH3 полной молекулы иммуноглобулина заменяют или соединяют пептидной связью, функциональным неиммуноглобулиновым белком, таким как молекула фермента или токсина. В варианте осуществления, где антитело является модифицированным Fab-фрагментом, имеющим на С-конце своей тяжелой цепи одну или несколько аминокислот, позволяющих прикреплять эффекторную или репортерную молекулу, дополнительные аминокислоты предпочтительно образуют модифицированную шарнирную область, содержащую один или два остатка цистеина, к которым можно прикреплять эффекторную или репортерную молекулу.
Предпочтительная эффекторная группа является молекулой полимера, которую можно прикреплять к модифицированному Fab-фрагменту для повышения его времени полужизни in vivo.
В основном молекула полимера может являться синтетическим или природным полимером, например необязательно замещенным неразветвленным или разветвленным полиалкиленом, полиалкениленовым или полиоксиалкиленовым полимером или разветвленным или неразветвленным полисахаридом, например гомо- или гетерополисахаридом.
Конкретные необязательные заместители, которые могут присутствовать в указанных выше синтетических полимерах, включают одну или несколько гидроксигрупп, метиловых групп или метоксигрупп. Конкретные примеры синтетических полимеров включают необязательно замещенный неразветвленный или разветвленный поли(этиленгликоль), поли(пропиленгликоль) поли(виниловый спирт) или их производные, в частности необязательно замещенный поли(этиленгликоль), такой как метоксиполи(этиленгликоль) или его производные. Конкретные природные полимеры включают лактозу, амилозу, декстран, гликоген или его производные. Как применяют в настоящем описании, термин производные предназначен для включения реакционноспособных производных, например тиол-селективных реакционноспособных групп, таких как малеимиды и т.п. Реакционноспособную группу можно соединять с полимером напрямую или через линкерный сегмент. Следует понимать, что остаток такой группы в некоторых случаях будет образовывать часть продукта в качестве линкерной группы между фрагментом антитела и полимером.
При желании можно варьировать размер полимера, но, как правило, он будет находиться в среднем
- 20 031449 в диапазоне молекулярной массы от 500 до 50000 Да, предпочтительно от 5000 до 40000 Да и более предпочтительно от 25000 до 40000 Да. В частности, размер полимера можно выбирать с учетом предполагаемого применения продукта. Таким образом, например, если продукт предназначен для выхода из кровотока и проникновения в ткань, например, для применения в лечении воспаления, предпочтительным может являться использование низкомолекулярного полимера, например, с молекулярной массой приблизительно 5000 Да. Для областей применения, в которых продукт остается в кровотоке, предпочтительным может являться использование высокомолекулярного полимера, например, имеющего молекулярную массу в диапазоне от 25000 до 40000 Да.
Особенно предпочтительные полимеры включают полиалкилен, полимер, такой как поли(этиленгликоль) или, в частности, метоксиполи(этиленгликоль) или его производное, и в частности, с молекулярной массой в диапазоне от приблизительно 25000 до приблизительно 40000 Да.
Каждую молекулу полимера, прикрепленную к модифицированному фрагменту антитела, можно ковалентно связывать с атомом серы на остатке цистеина, находящемся во фрагменте. Как правило, ковалентная связь будет являться дисульфидной связью или, в частности, сероуглеродной связью.
При желании к фрагменту антитела можно прикреплять одну или несколько эффекторных или репортерных молекул. Эффекторные или репортерные молекулы можно прикреплять к фрагменту антитела через любую доступную боковую цепь аминокислоты или функциональную группу концевой аминокислоты, находящейся во фрагменте, например любую свободную амино-, имино-, гидрокси- или карбоксигруппу. Одну или несколько эффекторных или репортерных молекул можно прикреплять к аминокислоте на С-конце или по направлению к С-концу тяжелой цепи и/или легкой цепи антитела.
В качестве исходного материала в получении полимер-модифицированных фрагментов антител, как описано выше, можно использовать активированный полимер. Активированный полимер может являться любым полимером, содержащим тиольную реакционноспособную группу, такую как агалогенкарбоновая кислота или сложный эфир, например йодацетамид, имид, например малеимид, винилсульфон или дисульфид. Такие исходные материалы можно получать коммерческим путем (например, из Shearwater Polymers Inc., Huntsville, AL, USA) или их можно получать из коммерчески доступных исходных материалов с использованием общепринятых химических способов.
Если желательно получать фрагмент антитела, соединенный с эффекторной или репортерной молекулой, его можно получать стандартными химическими способами или способами рекомбинантной ДНК, в которых, при необходимости, фрагмент антитела соединяют с эффекторной или репортерной молекулой напрямую или через связующее средство до или после реакции с активированным полимером. Конкретные химические способы включают, например, описываемые в WO 93/62331 и WO 92/22583. Альтернативно, если эффекторная или репортерная молекула является белком или полипептидом, соединение можно осуществлять с использованием способов рекомбинантной ДНК, например, как описано в WO 86/01533 и EP-A-0392745.
Предпочтительно модифицированный Fab-фрагмент, получаемый способом по настоящему изобретению, пегилируют (т.е. он содержит ковалентно присоединенный к нему PEG (поли(этиленгликоль))) способом, описываемым в EP-A-0948544. Предпочтительно антитело является пегилированным модифицированным Fab-фрагментом, как показано на фиг. 2. Как показано на фиг. 2, модифицированный Fabфрагмент содержит прикрепленную к одному из остатков цистеина на С-конце модифицированной шарнирной области тяжелой цепи лизил-малеимидную группу, где каждая из двух аминогрупп лизилового остатка ковалентно связана с остатком метоксиполи(этиленгликоля), имеющим молекулярную массу приблизительно 20000 Да, таким образом, что общая средняя молекулярная масса остатков метоксиполи(этиленгликоля) составляет приблизительно 40000 Да, более предпочтительно лизил-малеимидная группа является [ 1 - [ [ [2- [ [3 -(2,5 -диоксо-1 -пирролидинил)-1 -ооксопропил] амино] этил] амино]карбонил]1,5-пентандиил]-бис-(иминокарбонилом). Остаток лизина ковалентно связывают с малеимидной группой. К каждой из аминогрупп на остатке лизина прикрепляют полимер метоксиполи(этиленгликоль), имеющий молекулярную массу приблизительно 20000 Да. Таким образом, общая молекулярная масса всей эффекторной молекулы составляет приблизительно 40000 Да.
Таким образом, способ по настоящему изобретению предпочтительно включает прикрепление к одному из остатков цистеина на С-конце тяжелой цепи лизил-малеимидной группы, где каждую аминогруппу лизилового остатка ковалентно связывают с остатком метоксиполи(этиленгликоля), имеющим молекулярную массу приблизительно 20000 Да.
В одном из вариантов осуществления физическое свойство примесного белка хозяина изменяют добавлением аминокислотной метки на С-конец или N-конец. В предпочтительном варианте осуществления изменяемое физическое свойство является изоэлектрической точкой, и аминокислотная метка является полиаспартатной меткой, прикрепленной на С-конец. В одном из вариантов осуществления белками Е. coli, изменяемыми добавлением указанной метки, являются дипептид-связывающий белок (DppA), мальтозо-связывающий белок (МВР), тиоредоксин и фосфат-связывающий белок (PhoS/PstS). В одном конкретном варианте осуществления pI фосфат-связывающего белка Е.отН (PhoS/PstS) снижают с 7,2 до 5,1 посредством добавления полиаспартатной метки (polyD), содержащей 6 остатков аспарагиновой кислоты на С-конце.
- 21 031449
Также предпочтительной является модификация конкретных остатков примесного белка B.coli для изменения его физических свойств в отдельности или в комбинации с добавлением N- или С-концевых меток. Такие изменения могут включать инсерции или делеции для изменения размера белка или замены аминокислот для изменения pI или гидрофобности. В одном из вариантов осуществления эти остатки локализуются на поверхности белка. В предпочтительном варианте осуществления поверхностные остатки белка PhoS изменяют для снижения pI белка. Предпочтительно для сохранения функционального белка PhoS избегают остатков, важных для связывания фосфата (US 5304472).
Примеры
Клеточные линии.
Для всех экспериментов использовали клеточную линию W3110 B. coli в качестве родительской клеточной линии дикого типа.
Получали клеточные линии, несущие следующие мутации:
a) мутантный ген Tsp;
b) мутантный ген Tsp и рекомбинантный DsbC;
c) мутантный ген Tsp и мутантный ген spr;
d) мутантный ген Tsp и мутантный ген spr и рекомбинантный DsbC.
Пример 1. Получение клеточной линии, несущей мутантный ген.
Tsp MXE001 (ATsp).
Штамм МХВ001 получали следующим образом.
Кассету Tsp перемещали в виде фрагментов, рестрицированных SalI, NotI, в аналогично рестрицированные плазмиды pKO3. В плазмиде pKO3 используют чувствительный к температуре мутантный участок начала репликации pSC101 (RepA) вместе с маркером хлорамфеникола для усиления и селекции явлений встраивания в хромосому. Ген sacB, кодирующий левансахаразу, является летальным для В. coli, выращиваемых на сахарозе, и, таким образом, его (вместе с маркером хлорамфеникола и точкой начала репликации pSC101) используют для усиления и селекции явлений разрывов и сшивания плазмид. Этот способ описывали ранее (Hamilton et al., 4617-22; Blomfield et al., 1447-57). В системе pKO3 из генома хозяина удаляют все селективные маркеры за исключением встраиваемого гена.
Конструировали следующие плазмиды.
рМХВ191, содержащую подвергнутый нокауту мутантный ген Tsp, представленный в SEQ ID NO: 28, содержащую рестрикционные маркеры EcoRI и AseI.
Затем с использованием плазмиды трансформировали электрокомпетентные клетки В. coli W3110, получаемые с помощью способа, описываемого в статье Miller и Nickoloff, включенной в настоящее описание в качестве ссылки в полном объеме (Miller and Nickoloff, 105-13).
День 1. 40 мкл клеток E. coli смешивали с (10 пг) 1 мкл ДНК pKO3 в охлажденной кювете для электропорации BioRad 0,2 см перед электропорацией при 2500 В, 25 мкФ и 200 Ω. Сразу после этого добавляли 1000 мкл 2xPY, клетки восстанавливали встряхиванием при 250 об/мин в инкубаторе при 30°C в течение 1 ч. Получали серийные разведения клеток 1/10 в 2xPY перед тем, как аликвоты по 100 мкл помещали на предварительно нагретые до 30 и 43°C чашки с агаром 2xPY, содержащим хлорамфеникол в концентрации 20 мкг/мл. Чашки инкубировали в течение ночи при 30 и 43°C.
День 2. С помощью подсчета количества колоний, выросших при 30°C, определяют приблизительную эффективность электропорации, в то время как количество колоний, выросших при 43°C, представляет собой потенциальные явления встраивания. Собирали отдельные колонии с чашки, инкубируемой при 43°C, и ресуспендировали в 10 мл 2xPY. 100 мкл этой суспензии помещали на предварительно нагретые до 30°C чашки с агаром 2xPY, содержащим 5% (мас./об.) сахарозы, для получения отдельных колоний. Чашки инкубировали в течение ночи при 30°C.
День 3. Колонии на этой чашке представляли потенциальные одновременные явления разрывов и сшивания плазмид. Всли явления разрывов и сшивания происходят на ранних этапах роста, то общая совокупность массы колоний будет клональной. Собирали отдельные колонии и реплики переносили на агар 2xPY, содержащий хлорамфеникол в концентрации 20 мкг/мл или 5% (мас./об.) сахарозу. Чашки инкубировали в течение ночи при 30°C.
День 4. Колонии, выращенные на сахарозе и погибающие в присутствие хлорамфеникола, представляют потенциальные явления хромосомных замен и сшивания плазмид. Эти колонии собирали и подвергали скринингу с помощью ПЦР со специфичным для мутации олигонуклеотидом. Колонии, для которых при ПЦР получали положительную полосу правильного размера, для получения отдельных колоний перепечатывали на агар 2xPY, содержащий 5% (мас./об.) сахарозы, и инкубировали чашки в течение ночи при 30°C.
День 5. Отдельные колонии ПЦР-положительных, чувствительных к хлорамфениколу и устойчивых к сахарозе В. coli использовали для получения стоков в глицерине, химически компетентных клеток и матриц для реакции ПЦР с 5'- и 3'-фланкирующими олигонуклеотидными праймерами для получения продукта ПЦР для прямого секвенирования ДНК с использованием Taq-полимеразы.
Для подтверждения успешного модифицирования геномной ДНК, несущей мутантный ген Tsp
- 22 031449 клетки штамма МХЕ001 тестировали с помощью ПЦР-амплификации области гена Tsp, содержащей неприродный участок рестрикции AseI (SEQ ID NO: 28), с использованием олигонуклеотидных праймеров. Затем амплифицированные области ДНК анализировали с помощью электрофореза в геле до и после инкубации с рестриктазой AseI для подтверждения наличия неприродного участка рестрикции AseI в мутантных генах. Этот способ осуществляют следующим образом:
Для амплификации геномной ДНК из полученных лизатов клеток Е. coli MXE001 и W3110 с использованием ПЦР использовали следующие олигонуклеотиды:
6284 Tsp 3' 5'-GCATCATAATTTCTTTTTACCTC-3' (SEQ ID NO: 47)
6283 Tsp 5' 5'-GGGAAATGAACCTGAGCAAAACGC-3' (SEQ ID NO: 48)
Лизаты получали нагреванием отдельной колонии клеток в течение 10 мин при 95°C в 20 мкл 1кратного буфера для ПЦР. Смеси позволяли охлаждаться до комнатной температуры, а затем центрифугировали при 13200 об/мин в течение 10 мин. Удаляли супернатант и помечали как лизаты клеток.
ДНК из клеток каждого штамма амплифицировали с использованием пары олигонуклеотидов Tsp.
ДНК амплифицировали с использованием стандартного способа ПЦР:
мкл 10-кратного буфера (Roche), мкл смеси dNTP (Roche, 10 мМ смесь),
1,5 мкл 5'-олигонуклеотида (5 пмоль),
1.5 мкл 3'-олигонуклеотида (5 пмоль), мкл лизата клеток,
0,5 мкл ДНК-полимеразы Taq (Roche 5 Ед./мкл),
38.5 мкл H2O, цикл ПЦР,
94°C 1 мин,
94°C 1 мин,
55°C 1 мин (повторяют в течение 30 циклов),
72°C 1 мин,
72°C 10 мин.
При завершении реакции 25 мкл реакционной смеси переносили в новую микроцентрифужную пробирку для обработки AseI. К 25 мкл реакционной смеси для ПЦР добавляли 19 мкл Н2О, 5 мкл буфера 3 (New England Biolabs®), 1 мкл AseI (New England Biolabs®), смешивали и инкубировали при 37°C в течение 2 ч.
К оставшейся реакционной смеси для ПЦР добавляли 5 мкл буфера для внесения (6-кратного) и 20 мкл наносили на 200 мл агарозного геля с 0,8% ТАЕ (Invitrogen®) вместе с бромистым этидием (5 мкл стока с концентрацией 10 мг/мл) и осуществляли электрофорез при 100 В в течение 1 ч. На последнюю дорожку наносили 10 мкл маркера для определения размера фрагментов ДНК (Perfect DNA marker 0,1-12 т.п.н., Novagen®).
При завершении обработки AseI добавляли 10 мкл буфера для внесения (6-кратного) и 20 мкл наносили на агарозный гель с 0,8% ТАЕ (Invitrogen®) вместе с бромистым этидием (5 мкл стока с концентрацией 10мг/мл) и осуществляли электрофорез при 100 В в течение 1 ч. На последнюю дорожку наносили 10 мкл маркера для определения размера фрагментов ДНК (Perfect DNA marker 0,1-12 т.п.н., Novagen®). Оба геля визуализировали с использованием УФ-трансиллюминатора.
Амплифицированный фрагмент генома демонстрировал полосу правильного размера 2,8 т.п.н. для Tsp. После обработки AseI подтверждали наличие встроенных участков AseI в Tsp-дефектном штамме МХЕ001, но не в контрольном W3110.
МХЕ001: геномную ДНК, амплифицированную с использованием набора праймеров Tsp, и полученную ДНК обрабатывали AseI для получения полос, соответствующих размеру 2,2 и 0,6 т.п.н.
Амплифицированная с помощью ПЦР ДНК W3110 не расщеплялась рестриктазой AseI.
Пример 2. Получение клеточных линий, несущих мутантный ген spr, и клеточных линий, несущих мутантный ген Tsp и мутантный ген spr.
Получали мутации spr и подвергали селекции для использования в комплементационном анализе.
Ген spr (SEQ ID NO: 23) подвергали мутагенезу с использованием набора для случайного мутагенеза Diversify PCR random mutagenesis kit от Clontech®, с помощью которого встраивали от 1 до 2 мутаций на 1000 п.н. Полученную с помощью ПЦР ДНК мутантного spr клонировали в индуцибельный экспрессирующий вектор [рТТО CDP870], экспрессирующий Fab' CDP870 (как описано в WO 01/94585) вместе с мутантным spr. Затем этот продукт лигирования использовали для электротрансформации клеток штамма E.coli, содержащих вариант делеции Tsp (ATsp) (обозначаемый как МХЕ001), получаемых с использованием способа, обнаруженного в Miller et al. (Miller and Nickoloff, 105-13). Использовали следующий протокол, 40 мкл электрокомпетентных МХЕ001, 2,5 мкл продукта лигирования (100 пг ДНК) добавляли в кювету для электропорации размером 0,2 см, осуществляли электротрансформацию с использованием BioRad® Genepulser Xcell® со следующими настройками, 2500 В, 25 мкФ и 200 Ω. После электротрансформации добавляли 1 мл среды SOC (Invitrogen® кат. № 18045-088) (предварительно нагретой до
- 23 031449
37°C) и клетки оставляли для восстановления при 37°C в течение 1 ч с осторожным встряхиванием.
Клетки помещали на гипотонический агар [5 г/л дрожжевого экстракта, 2,5 г/л триптона, 15 г/л агара (все Difco®)] и инкубировали при 40°C. Клетки, образовывавшие колонии, переносили в HLB при 43°C для подтверждения восстановления способности вырастать в низкоосмотических условиях при высокой температуре в штамм МХЕ001. Из выбранных клонов получали плазмидную ДНК и секвенировали для идентификации мутаций в spr. С использованием этого способа выделяли следующие восемь одиночных мутаций, одну двойную мутацию и две тройные мутации в белке spr, соответствующих фенотипу ATsp:
1) V98E,
2) D133A,
3) V135D,
4) V135G,
5) G147C,
6) S95F и Y115F,
7) I70T,
8) N31T, Q73R, R100G, G140C,
9) R62C, Q99P, R144C,
10) L108S,
11) L136P.
Отдельные мутации 1-5, указанные выше, и три мутации каталитических триад spr (C94A, Н145А, Н157А) и W174R использовали для получения новых штаммов с помощью штамма Е. coli W3110 дикого типа (генотип: F-LAM-IN (rmD-rrnE)1 rph 1 (регистрационный № 27325 АТСС) для получения мутантных по spr штаммов или штамма МХЕ001 из примера 1 для получения комбинированных штаммов с ATsp/мутантным spr.
Следующие мутантные штаммы клеток Е. coli получали с помощью векторной системы замены генов с использованием плазмиды pKO3 для гомологичной рекомбинации/замены (Link et al., выше), как описано в примере 1 для получения МХЕ001.____________________________________
Мутантный штамм Е. coli Генотип Векторы Spr
МХЕ001 ATsp -
МХЕ008 ATsp, spr D133A pMXE339, pK03 spr D133A (-Sall)
МХЕ009 ATsp, spr H157A pMXE345, pK03 spr H157A (-Sall)
МХЕ010 spr G147C pMXE338, pK03 spr G147C (-Sall)
МХЕ011 spr C94A pMXE343, pK03 spr C94A (-Sall)
МХЕ012 spr H145A pMXE344, pK03 spr H145A (-Sall)
МХЕ013 spr W174R pMXE346, pK03 spr W174R (-Sall)
МХЕ014 ATsp, spr V135D pMXE340, pK03 spr V135D (-Sall)
МХЕ015 ATsp, spr V98E pMXE342, pK03 spr V98E (-Sall)
МХЕ016 ATsp, spr C94A pMXE343, pK03 spr C94A (-Sall)
МХЕ017 ATsp, spr H145A pMXE344, pK03 spr H145A (-Sall)
МХЕ018 ATsp, spr V135G pMXE341, pK03 spr V135G (-Sall)
Встраиваемые кассеты с мутантным spr перемещали в виде рестрицированных SalI, NotI в анало- 24 031449 гично рестрицированные плазмиды pKO3.
Во всех экспериментах в качестве клеточной линии дикого типа использовали клеточную линию E. coli W3110, а также клеточную линию E. coli W3110 ATsp, spr C94A (МХ016).
Пример 3. Получение плазмиды для Fab' против CD154 и экспрессии DsbC.
Конструировали плазмиду, содержащую последовательности тяжелой и легкой цепи Fab против CD154 (SEQ ID NO: 13 и 11 соответственно) и последовательность, кодирующую DsbC (SEQ ID NO: 27).
Плазмиду рМХЕ351 (pTTOD DsbC), экспрессирующий вектор для Fab против CD154 и DsbC (периплазматического полипептида) конструировали с использованием общепринятых способов клонирования с рестрикцией. Плазмида рМХЕ351 содержала следующие элементы: сильный промотор tac и последовательность оператора lac. Как показано на фиг. 1, плазмида содержала уникальный участок рестрикции EcoRI после кодирующей области тяжелой цепи Fab', за которой следовала некодирующая последовательность, а затем уникальный участок рестрикции NdeI. Ген DsbC клонировали посредством ПЦР с использованием неочищенной хромосомной ДНК W3110 в качестве матрицы. Участок EcoRI удаляли из последовательности DsbC дикого типа с помощью ПЦР с удлинением перекрывающихся фрагментов таким образом, что за продуктом ПЦР, кодирующим 5'-участок EcoRI, следовал сильный участок связывания рибосомы, за ним - нативный инициаторный кодон, сигнальная последовательность и зрелая последовательность DsbC, заканчиваясь С-концевой гистидиновой меткой и, в конечном итоге, некодирующим участок NdeI. ПЦР-фрагмент EcoRI-NdeI рестрицировали и лигировали в экспрессирующий вектор таким образом, что все три полипептида, легкую цепь Fab', тяжелую цепь Fab' и DsbC, кодирует одна полицистронная мРНК.
Гены легкой цепи, тяжелой цепи Fab и ген DsbC транскрибируются как одна полицистронная последовательность. ДНК, кодирующую сигнальный пептид из белка OmpA Е. coli, подвергали слиянию с 5'-концом последовательностей генов легкой и тяжелой цепи, что направляло транслокацию полипептидов в периплазму Е. coli. Транскрипцию терминировали с использованием двойного терминатора транскрипции rrnB tlt2. Ген lacIq кодировал конститутивно экспрессирующийся репрессорный белок Lac I. Он подавляет транскрипцию с промотора tac до индукции дерепрессии присутствием аллолактозы или IPTG. Использовали участок начала репликации р15А, поддерживающий низкую копийность. Плазмида содержала ген устойчивости к тетрациклину для селекции с использованием антибиотиков.
Пример 4. Экспрессия Fab' против CD154 и DsbC в клетках E. coli W3110 и МХЕ016 (E. coli W3110 ATsp, spr C94A).
Экспрессия Fab' против CD154 и DsbC в клетках Е. coli W3110 ATsp, spr C94A.
Клетки E. coli штамма W3110 ATsp, spr C94A (MXE016) трансформировали с использованием плазмиды рМХЕ351, полученной в примере 3. Трансформацию штаммов осуществляли с использованием способа, обнаруженного в Chung C.T et al. (Chung, Niemela, and Miller, 2172-75).
Экспрессия Fab' против CD154 в клетках Е. coli W3110.
Клетки E. coli штамма W3110 трансформировали с использованием плазмиды pTTOD, экспрессирующего вектора для Fab' против CD154, сконструированного с использованием общепринятых способов клонирования с рестрикцией. Плазмида pTTOD содержала следующие элементы: сильный промотор tac и последовательность оператора lac. Гены легкой и тяжелой цепи Fab транскрибировались как одна бицистронная последовательность. ДНК, кодирующую сигнальный пептид из белка OmpA E. coli, подвергали слиянию с 5'-концом последовательностей генов легкой и тяжелой цепи, что направляло транслокацию полипептидов в периплазму Е. coli. Транскрипцию терминировали с использованием двойного терминатора транскрипции rrnB tlt2. Ген lacIq кодировал конститутивно экспрессирующийся репрессорный белок Lac I. Он подавляет транскрипцию с промотора tac до индукции дерепрессии присутствием аллолактозы или IPTG. Использовали участок начала репликации р15А, поддерживающий низкую копийность. Плазмида содержала ген устойчивости к тетрациклину для селекции с использованием антибиотиков. Трансформацию штаммов осуществляли с использованием способа, обнаруженного в Chung C.T et al. (Chung, Niemela, and Miller, 2172-75).
Пример 5. Рост мутантных штаммов Е. coli и экспрессия Fab' против CD154 в мутантных штаммах Е. coli с использованием ферментации культур с высокой плотностью клеток.
Полученные в примере 4 штаммы тестировали в экспериментах по ферментации, сравнивая рост и экспрессию Fab' против CD154.
Среда для выращивания, этапы инокуляции и ферментации.
Ферментацию начинают, получая посевной материал из сосуда из банка клеток и амплифицируя посредством нескольких этапов прекультивирования (флаконы и реакторы) перед посевом в производственный ферментатор. В производственном ферментаторе клетки выращивают в определенных средах до достижения высокой плотности периодическим способом и способом с подпиткой. При достижении желаемой плотности клеток экспрессию Fab' индуцируют добавлением IPTG. Экспрессия Fab' направлена в периплазматическое пространство Е. coli, где Fab' накапливаются на всем протяжении фазы индукции. Для контроля экспрессии и роста клеток в течение фазы индукции использовали подпитку источником углерода. Контролируют температуру, растворенный кислород (pO2) и pH для поддержания культуры в
- 25 031449 условиях оптимального культивирования.
Измерения концентрации биомассы и скорости роста.
Концентрацию биомассы определяли, измеряя оптическую плотность культур при 600 нм.
Периплазматическая экстракция.
Клетки собирали из образцов культур посредством центрифугирования. Фракции супернатанта сохраняли (при -20°C) для дальнейшего анализа. Фракцию клеточного осадка ресуспендировали в буфере для экстракции до объема исходной культуры (100 мМ Трис-HCl, 10 мМ ЭДТА; рН 7,4). После инкубации при 60°C в течение приблизительно от 10 до 16 ч экстракт очищали посредством центрифугирования и использовали свежую фракцию супернатанта или сохраняли ее (при -20°C) для анализа.
Количественный анализ Fab'.
Концентрацию Fab' в периплазматических экстрактах и супернатантах культур определяли с использованием ВЭЖХ с протеином G. Колонку HiTrap® с протеином G HP 1 мл (GE-Healthcare® или равнозначную) нагружали аналитом (приблизительно нейтральный рН, 30°C, фильтрованный через фильтр 0,2 мкм) при 2 мл/мин, колонку промывали 20 мМ фосфатом, 50 мМ NaCl с рН 7,4 и затем элюировали Fab' с использованием инъекции 50 мМ глицина/HCl с рН 2,7. Элюированный Fab' измеряли с помощью А280 посредством системы для ВЭЖХ Agilent® 1100 или 1200 и количественно анализировали с учетом стандартной кривой для очищенного белка Fab' с известной концентрацией.
Пример 6. Уровень фрагментов легкой цепи в полученных ферментацией экстрактах мутантных штаммов Е. coli.
Продукты ферментации, представленные в примере 2, тестировали на уровень фрагментов легкой цепи Fab' против CD154 в периплазматических экстрактах.
Количественный анализ фрагментов легкой цепи.
Количественную оценку уровня Fab' и протеолитических фрагментов Fab' осуществляли с помощью обращенно-фазовой ВЭЖХ при высокой температуре. Разделение осуществляли на колонках для обращенно-фазовой хроматографии Poroshell® 300SB-C8 (Agilent Technologies®, кат. № 660750-906) при температуре 80°C. Равновесным растворителем являлась вода для ВЭЖХ, 0,1% (об./об.) TFA, а растворителем для элюции являлся 80:20 (об./об.) 1-пропанолацетонитрил, 0,03% (об./об.) TFA. Разделение осуществляли при скорости потока 2,0 мл/мин при линейном градиенте 16-38% растворителя В в 4,4 мин. Определение осуществляли по поглощению УФ при 214 нм. Данные обрабатывали посредством ручного интегрирования, и количество протеолитических фрагментов Fab выражали как % площади под пиком относительно пика интактного Fab.
Настоящее изобретение также относится к терапевтической или диагностической композиции, содержащей антитело, получаемое способом по настоящему изобретению, в комбинации с фармацевтически приемлемым эксципиентом, разбавителем или носителем.
Настоящее изобретение также относится к способу получения терапевтической или диагностической композиции, включающему смешивание антитела, получаемого способом по настоящему изобретению, в комбинации с фармацевтически приемлемым эксципиентом, разбавителем или носителем.
Несмотря на то что настоящее изобретение, в частности, представлено и описано со ссылкой на предпочтительные варианты осуществления, специалистам в этой области будет понятно, что можно осуществлять различные изменения формы и деталей изобретения без отклонения от объема изобретения, как определено в формуле изобретения.
- 26 031449
Список ссылок
Aramini, J. М., et al. Solution NMR structure of the NlpC/P60 domain of lipoprotein Spr from Escherichia coli: structural evidence for a novel cysteine peptidase catalytic triad. Biochemistry. 47.37 (2008): 9715-17.
Bachmann, B. J. Pedigrees of some mutant strains of Escherichia coli K-12. Bacteriol.Rev. 36.4 (1972): 525-57.
Backlund, E., et al. Fedbatch design for periplasmic product retention in Escherichia coli. J.Biotechnol, 135.4 (2008): 358-65.
Blomfield, I. C., et al. Allelic exchange in Escherichia coli using the Bacillus subtilis sacB gene and a temperature-sensitive pSClOl replicon. Mol,Microbiol. 5.6 (1991): 1447-57.
Chung, С. T., S. L. Niemela, and R. H. Miller. One-step preparation of competent Escherichia coli: transformation and storage of bacterial cells in the same solution.
Proc.Natl. Acad. Sci. U.S.A, 86.7 (1989): 2172-75.
Hamilton, С. M., et al. New method for generating deletions and gene replacements in Escherichia coli. J.Bacteriol, 171.9 (1989): 4617-22.
Hara, H., et al. Overproduction of penicillin-binding protein 7 suppresses thermosensitive growth defect at low osmolarity due to an spr mutation of Escherichia coli. Microb.Drug Resist. 2.1 (1996): 63-72.
Hara, H., et al. Cloning, mapping, and characterization of the Escherichia coli pre gene, which is involved in C-terminal processing of penicillin-binding protein 3. J.Bacteriol. 173.15 (1991): 4799-813.
- 27 031449
Holliger, P. and P. J. Hudson. Engineered antibody fragments and the rise of single domains.
Nat Biotechnol 23.9 (2005): 1126-36.
Humphreys, D. P., et al. Formation of dimeric Fabs in Escherichia coli: effect of hinge size and isotype, presence of interchain disulphide bond, Fab' expression levels, tail piece sequences and growth conditions. J.Immunol.Methods. 209.2 (1997): 193-202.
Keiler, К. C. and R. T. Sauer. Identification of active site residues of the Tsp protease. J.Biol.Chem, 270.48 (1995): 28864-68.
Link, A. J., D. Phillips, and G. M. Church. Methods for generating precise deletions and insertions in the genome of wild-type Escherichia coli: application to open reading frame characterization. J.Bacteriol, 179.20 (1997): 6228-37.
Makrides, S. C. Strategies for achieving high-level expression of genes in Escherichia coli.
Microbiol.Rev. 60.3 (1996): 512-38.
Miller, E. M. and J. A. Nickoloff Escherichia coli electrotransformation. Methods Mol,Biol, 47:105-13. (1995): 105-13.
Missiakas, D., C. Georgopoulos, and S. Raina. The Escherichia coli dsbC (xprA) gene encodes a periplasmic protein involved in disulfide bond formation. EMBO J, 13.8 (1994): 2013-20.
Nagasawa, H., et al. Determination of the cleavage site involved in C-terminal processing of penicillin-binding protein 3 of Escherichia coli. J.Bacteriol. 171.11 (1989): 5890-93.
Shevchik, V. E., G. Condemine, and J. Robert-Baudouy. Characterization of DsbC, a periplasmic protein of Erwinia chrysanthemi and Escherichia coli with disulfide isomerase activity. EMBO J, 13.8 (1994): 2007-12.
Silber, K. R., К. C. Keiler, and R. T. Sauer. Tsp: a tail-specific proteasethat selectively degrades proteins with nonpolar C termini. Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A, 89.1 (1992): 295-99.
Silber, K. R. and R. T. Sauer. Deletion of the pre (tsp) gene provides evidence for additional tail-specific proteolytic activity in Escherichia coli K-12. Mol,Gen.Genet. 242.2 (1994): 23740.
СПИСОК ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЕЙ <110> UCB Pharma, S.A.
<120> БАКТЕРИАЛЬНЫЙ ШТАММ-АКЦЕПТОР, ЭКСПРЕССИРУЮЩИЙ ФРАГМЕНТ <130> G0157 WO <150> EP11173880.3 <151> 2011-07-13 <160> 52 <170> PatentIn version 3.5 <210> 1 <211> 10 <212> БЕЛОК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Описание искусственной последовательности: 342 CDR-H1 <400> 1
АНТИТЕЛА
- 28 031449
Gly Phe Ser Ser Thr Asn Tyr His Val His
5 10 <210> 2 <211> 16 <212> БЕЛОК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Описание искусственной последовательности: 342 CDR-H2 <400>2
Val Ile Trp Gly Asp Gly Asp Thr Ser Tyr Asn Ser Val Leu Lys Ser 1 5 1015
<210> <211> <212> <213> 3 10 БЕЛОК Искусственная последовательность
<220>
<223> Описание искусственной последовательности: 342 CDR-H3 <400>3
Gln Leu Thr His Tyr Tyr Val Leu Ala Ala
510
<210> 4
<211> 11
<212> БЕЛОК
<213> Искусственная последовательность
<220>
<223> Описание искусственной последовательности: 342 CDR-L1
<400> 4
Arg Ala Ser Glu Asp Leu Tyr Tyr Asn Leu Ala
1 5 10
<210> 5
<211> 7
<212> БЕЛОК
<213> Искусственная последовательность
<220>
<223> Описание искусственной последовательности: 342 CDR-L2
<400> 5
Asp Thr Tyr Arg Leu Ala Asp
1 5
<210> 6 <211>9
- 29 031449 <212> БЕЛОК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Описание искусственной последовательности: 342 CDR-L3 <400>6
Gln Gln Tyr Tyr Lys Phe Pro Phe Thr <210>7 <211>384 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Описание искусственной последовательности: 342 вариабельная область легкой цепи (gL4) <220>
<221> сигнальный пептид <222> (1)..(63) <220>
<221> CDS <222> (64)..(384) <400> 7 atgaaaaaga cagctatcgc aattgcagtg gccttggctg gtttcgctac cgtagcgcaa 60
gct gat Asp 1 atc Ile cag Gln atg Met acc Thr 5 cag Gln agt Ser cca Pro agc Ser agt Ser 10 ctc Leu tcc Ser gcc Ala agc Ser gta Val 15 108
ggc gat cgt gtg act att acc tgt cgt gcc agt gag gac ctc tat tac 156
Gly Asp Arg Val Thr Ile Thr Cys Arg Ala Ser Glu Asp Leu Tyr Tyr
20 25 30
aac ctg gcc tgg tat cag cgt aaa ccg ggc aaa gcc ccg aag ctg ctc 204
Asn Leu Ala Trp Tyr Gln Arg Lys Pro Gly Lys Ala Pro Lys Leu Leu
35 40 45
atc tat gat acg tac cgc ctg gct gac ggt gtg cca agc cgt ttc agt 252
Ile Tyr Asp Thr Tyr Arg Leu Ala Asp Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser
50 55 60
ggc agt ggc agc ggt act gac tat acc ctc aca att tcg tct ctc cag 300
Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Tyr Thr Leu Thr Ile Ser Ser Leu Gln
65 70 75
ccg gaa gat ttc gcc tct tac tat tgt cag caa tat tac aag ttc cct 348
Pro Glu Asp Phe Ala Ser Tyr Tyr Cys Gln Gln Tyr Tyr Lys Phe Pro
80 85 90 95
ttc acc ttc ggt cag ggc act aaa gta gaa atc aaa 384
Phe Thr Phe Gly Gln Gly Thr Lys Val Glu Ile Lys
100 105
- 30 031449 <210> 8 <211> 107 <212> БЕЛОК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Синтетическая конструкция <400>8
Asp 1 Ile Gln Met Thr 5 Gln Ser Pro Ser Ser 10 Leu Ser Ala Ser Val 15 Gly
Asp Arg Val Thr Ile Thr Cys Arg Ala Ser Glu Asp Leu Tyr Tyr Asn
20 25 30
Leu Ala Trp Tyr Gln Arg Lys Pro Gly Lys Ala Pro Lys Leu Leu Ile
35 40 45
Tyr Asp Thr Tyr Arg Leu Ala Asp Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly
50 55 60
Ser Gly Ser Gly Thr Asp Tyr Thr Leu Thr Ile Ser Ser Leu Gln Pro
65 70 75 80
Glu Asp Phe Ala Ser Tyr Tyr Cys Gln Gln Tyr Tyr Lys Phe Pro Phe
85 90 95
Thr Phe Gly Gln Gly Thr Lys Val Glu Ile Lys
100 105
<210>9 <211>351 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Описание искусственной последовательности: 342 вариабельная область тяжелой цепи (gH1) <220>
<221> CDS <222> (1)..(351) <400> 9
gag Glu 1 gtg Val cag Gln ctg Leu gtc Val 5 gag Glu tct Ser gga Gly ggc Gly ggg Gly 10 ctt Leu gtc Val cag Gln cct Pro ggt Gly 15 ggg Gly 48
agc ctg cgt ctc tct tgt gca gtg agc ggc ttc agc tct acc aat tac 96
Ser Leu Arg Leu Ser Cys Ala Val Ser Gly Phe Ser Ser Thr Asn Tyr
20 25 30
cat gtg cac tgg gtg cgt cag gca cct ggg aag ggc ctg gag tgg atg 144
His Val His Trp Val Arg Gln Ala Pro Gly Lys Gly Leu Glu Trp Met
- 31 031449
35 40 45
ggt gtt att tgg ggc gac ggc gat aca tcc tac aac tcc gtc ctg aag 192
Gly Val Ile Trp Gly Asp Gly Asp Thr Ser Tyr Asn Ser Val Leu Lys
50 55 60
agc cgt ttc acc att tcc cgt gac acc tca aag aat acc gtt tac ctc 240
Ser Arg Phe Thr Ile Ser Arg Asp Thr Ser Lys Asn Thr Val Tyr Leu
65 70 75 80
cag atg aac tct ctc cgc gca gag gac aca gca gtc tat tac tgt gca 288
Gln Met Asn Ser Leu Arg Ala Glu Asp Thr Ala Val Tyr Tyr Cys Ala
85 90 95
cgt caa ctg acc cac tat tac gtt ttg gca gcc tgg ggt caa ggg act 336
Arg Gln Leu Thr His Tyr Tyr Val Leu Ala Ala Trp Gly Gln Gly Thr
100 105 110
ctg gtc aca gtc tcg 351
Leu Val Thr Val Ser
115 <210> 10 <211> 117 <212> БЕЛОК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Синтетическая конструкция <400> 10
Glu Val 1 Ser Leu Gln Arg His 35 Leu Val Glu Cys Arg Ser Gly Gly Gly Leu 10 Val Ser Gly Gln Pro Gly Gly
Leu 20 Trp 5 Ser Val Ser Thr 15
Ala Val Ser Gly 25 Pro Gly Phe Lys Asn Trp Tyr Met
Leu 45 30 Glu
His Val Gln Ala 40
Gly Val Ile Trp Gly Asp Gly Asp Thr Ser Tyr Asn Ser Val Leu Lys
50 55 60
Ser Arg Phe Thr Ile Ser Arg Asp Thr Ser Lys Asn Thr Val Tyr Leu
65 70 75 80
Gln Met Asn Ser Leu Arg Ala Glu Asp Thr Ala Val Tyr Tyr Cys Ala
85 90 95
Arg Gln Leu Thr His Tyr Tyr Val Leu Ala Ala Trp Gly Gln Gly Thr
100 105 110
Leu Val Thr Val Ser
- 32 031449
115 <210> 11 <211> 705 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Описание искусственной последовательности: 342 gL4 (V+C) <220>
<221> CDS <222> (64)..(705) <400> 11 atgaaaaaga cagctatcgc aattgcagtg gccttggctg gtttcgctac cgtagcgcaa 60
gct gat Asp 1 atc Ile cag Gln atg Met acc Thr 5 cag Gln agt Ser cca Pro agc Ser agt Ser 10 ctc Leu tcc Ser gcc Ala agc Ser gta Val 15 108
ggc gat cgt gtg act att acc tgt cgt gcc agt gag gac ctc tat tac 156
Gly Asp Arg Val Thr Ile Thr Cys Arg Ala Ser Glu Asp Leu Tyr Tyr
20 25 30
aac ctg gcc tgg tat cag cgt aaa ccg ggc aaa gcc ccg aag ctg ctc 204
Asn Leu Ala Trp Tyr Gln Arg Lys Pro Gly Lys Ala Pro Lys Leu Leu
35 40 45
atc tat gat acg tac cgc ctg gct gac ggt gtg cca agc cgt ttc agt 252
Ile Tyr Asp Thr Tyr Arg Leu Ala Asp Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser
50 55 60
ggc agt ggc agc ggt act gac tat acc ctc aca att tcg tct ctc cag 300
Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Tyr Thr Leu Thr Ile Ser Ser Leu Gln
65 70 75
ccg gaa gat ttc gcc tct tac tat tgt cag caa tat tac aag ttc cct 348
Pro Glu Asp Phe Ala Ser Tyr Tyr Cys Gln Gln Tyr Tyr Lys Phe Pro
80 85 90 95
ttc acc ttc ggt cag ggc act aaa gta gaa atc aaa cgt acg gta gcg 396
Phe Thr Phe Gly Gln Gly Thr Lys Val Glu Ile Lys Arg Thr Val Ala
100 105 110
gcc cca tct gtc ttc atc ttc ccg cca tct gat gag cag ttg aaa tct 444
Ala Pro Ser Val Phe Ile Phe Pro Pro Ser Asp Glu Gln Leu Lys Ser
115 120 125
gga act gcc tct gtt gtg tgc ctg ctg aat aac ttc tat ccc aga gag 492
Gly Thr Ala Ser Val Val Cys Leu Leu Asn Asn Phe Tyr Pro Arg Glu
130 135 140
gcc aaa gta cag tgg aag gtg gat aac gcc ctc caa tcg ggt aac tcc 540
Ala Lys Val Gln Trp Lys Val Asp Asn Ala Leu Gln Ser Gly Asn Ser
145 150 155
cag gag agt gtc aca gag cag gac agc aag gac agc acc tac agc ctc 588
Gln Glu Ser Val Thr Glu Gln Asp Ser Lys Asp Ser Thr Tyr Ser Leu
160 165 170 175
- 33 031449
agc Ser agc Ser acc Thr ctg Leu acg Thr 180 ctg Leu agc Ser aaa Lys gca Ala gac Asp 185 tac Tyr gag Glu aaa Lys cac His aaa Lys 190 gtc Val 636
tac gcc tgc gaa gtc acc cat cag ggc ctg agc tca cca gta aca aaa 684
Tyr Ala Cys Glu Val Thr His Gln Gly Leu Ser Ser Pro Val Thr Lys
195 200 205
agt ttt aat aga ggg gag tgt 705
Ser Phe Asn Arg Gly Glu Cys
210
<210> 12
<211> 214
<212> БЕЛОК
<213> Искусственная последовательность
<220>
<223> Синтетическая конструкция
<400> 12
Asp 1 Ile Gln Met Thr 5 Gln Ser Pro Ser Ser 10 Leu Ser Ala Ser Val 15 Gly
Asp Arg Val Thr Ile Thr Cys Arg Ala Ser Glu Asp Leu Tyr Tyr Asn
20 25 30
Leu Ala Trp Tyr Gln Arg Lys Pro Gly Lys Ala Pro Lys Leu Leu Ile
35 40 45
Tyr Asp Thr Tyr Arg Leu Ala Asp Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly
50 55 60
Ser Gly Ser Gly Thr Asp Tyr Thr Leu Thr Ile Ser Ser Leu Gln Pro
65 70 75 80
Glu Asp Phe Ala Ser Tyr Tyr Cys Gln Gln Tyr Tyr Lys Phe Pro Phe
85 90 95
Thr Phe Gly Gln Gly Thr Lys Val Glu Ile Lys Arg Thr Val Ala Ala
100 105 110
Pro Ser Val Phe Ile Phe Pro Pro Ser Asp Glu Gln Leu Lys Ser Gly
115 120 125
Thr Ala Ser Val Val Cys Leu Leu Asn Asn Phe Tyr Pro Arg Glu Ala
130 135 140
Lys Val Gln Trp Lys Val Asp Asn Ala Leu Gln Ser Gly Asn Ser Gln
145 150 155 160
- 34 031449
Glu Ser Val Thr Glu 165 Gln Asp Ser Lys Asp 170 Ser Thr Tyr Ser Leu 175 Ser
Ser Thr Leu Thr Leu Ser Lys Ala Asp Tyr Glu Lys His Lys Val Tyr
180 185 190
Ala Cys Glu Val Thr His Gln Gly Leu Ser Ser Pro Val Thr Lys Ser
195 200 205
Phe Asn Arg Gly Glu Cys
210 <210> 13 <211> 726 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Описание искусственной последовательности: 342 gH1 HC Fab (без шарнирной области) с константной областью <220>
<221> CDS <222> (64)..(726) <400> 13 atgaagaaga ctgctatagc aattgcagtg gcgctagctg gtttcgccac cgtggcgcaa 60
gct gag Glu 1 gtt Val cag Gln ctg Leu gtc Val 5 gag Glu tct Ser gga Gly ggc Gly ggg Gly 10 ctt Leu gtc Val cag Gln cct Pro ggt Gly 15 108
ggg agc ctg cgt ctc tct tgt gca gtg agc ggc ttc agc tct acc aat 156
Gly Ser Leu Arg Leu Ser Cys Ala Val Ser Gly Phe Ser Ser Thr Asn
20 25 30
tac cat gtg cac tgg gtg cgt cag gca cct ggg aag ggc ctg gag tgg 204
Tyr His Val His Trp Val Arg Gln Ala Pro Gly Lys Gly Leu Glu Trp
35 40 45
atg ggt gtt att tgg ggc gac ggc gat aca tcc tac aac tcc gtc ctg 252
Met Gly Val Ile Trp Gly Asp Gly Asp Thr Ser Tyr Asn Ser Val Leu
50 55 60
aag agc cgt ttc acc att tcc cgt gac acc tca aag aat acc gtt tac 300
Lys Ser Arg Phe Thr Ile Ser Arg Asp Thr Ser Lys Asn Thr Val Tyr
65 70 75
ctc cag atg aac tct ctc cgc gca gag gac aca gca gtc tat tac tgt 348
Leu Gln Met Asn Ser Leu Arg Ala Glu Asp Thr Ala Val Tyr Tyr Cys
80 85 90 95
gca cgt caa ctg acc cac tat tac gtt ttg gca gcc tgg ggt caa ggg 396
Ala Arg Gln Leu Thr His Tyr Tyr Val Leu Ala Ala Trp Gly Gln Gly
100 105 110
act ctg gtc aca gtc tcg agc gct tct aca aag ggc cca tcg gtc ttc 444
- 35 031449
Thr Leu Val Thr 115 Val Ser Ser Ala Ser 120 Thr Lys Gly Pro Ser 125 Val Phe
ccc ctg gca ccc tcc tcc aag agc acc tct ggg ggc aca gcg gcc ctg 492
Pro Leu Ala Pro Ser Ser Lys Ser Thr Ser Gly Gly Thr Ala Ala Leu
130 135 140
ggc tgc ctg gtc aag gac tac ttc ccc gaa ccg gtg acg gtg tcg tgg 540
Gly Cys Leu Val Lys Asp Tyr Phe Pro Glu Pro Val Thr Val Ser Trp
145 150 155
aac tca ggc gcc ctg acc agc ggc gtg cac acc ttc ccg gct gtc cta 588
Asn Ser Gly Ala Leu Thr Ser Gly Val His Thr Phe Pro Ala Val Leu
160 165 170 175
cag tcc tca gga ctc tac tcc ctc agc agc gtg gtg acc gtg ccc tcc 636
Gln Ser Ser Gly Leu Tyr Ser Leu Ser Ser Val Val Thr Val Pro Ser
180 185 190
agc agc ttg ggc acc cag acc tac atc tgc aac gtg aat cac aag ccc 684
Ser Ser Leu Gly Thr Gln Thr Tyr Ile Cys Asn Val Asn His Lys Pro
195 200 205
agc aac acc aag gtc gac aag aaa gtt gag ccc aaa tct tgt 726
Ser Asn Thr Lys Val Asp Lys Lys Val Glu Pro Lys Ser Cys
210 215 220
<210> 14 <211> 221 <212> БЕЛОК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Синтетическая конструкция <400> 14
Glu 1 Val Gln Leu Val 5 Glu Ser Gly Gly Gly Leu 10 Val Gln Pro Gly Gly 15
Ser Leu Arg Leu Ser Cys Ala Val Ser Gly Phe Ser Ser Thr Asn Tyr
20 25 30
His Val His Trp Val Arg Gln Ala Pro Gly Lys Gly Leu Glu Trp Met
35 40 45
Gly Val Ile Trp Gly Asp Gly Asp Thr Ser Tyr Asn Ser Val Leu Lys
50 55 60
Ser Arg Phe Thr Ile Ser Arg Asp Thr Ser Lys Asn Thr Val Tyr Leu
65 70 75 80
Gln Met Asn Ser Leu Arg Ala Glu Asp Thr Ala Val Tyr Tyr Cys Ala
85 90 95
Arg Gln Leu Thr His Tyr Tyr Val Leu Ala Ala Trp Gly Gln Gly Thr
- 36 031449
100 105 110
Leu Val Thr 115 Val Ser Ser Ala Ser 120 Thr Lys Gly Pro Ser 125 Val Phe Pro
Leu Ala Pro Ser Ser Lys Ser Thr Ser Gly Gly Thr Ala Ala Leu Gly
130 135 140
Cys Leu Val Lys Asp Tyr Phe Pro Glu Pro Val Thr Val Ser Trp Asn
145 150 155 160
Ser Gly Ala Leu Thr Ser Gly Val His Thr Phe Pro Ala Val Leu Gln
165 170 175
Ser Ser Gly Leu Tyr Ser Leu Ser Ser Val Val Thr Val Pro Ser Ser
180 185 190
Ser Leu Gly Thr Gln Thr Tyr Ile Cys Asn Val Asn His Lys Pro Ser
195 200 205
Asn Thr Lys Val Asp Lys Lys Val Glu Pro Lys Ser Cys
210 215 220
<210> 15 <211> 750 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Описание искусственной последовательности: 342 gH1 HC Fab' с константной областью <220>
<221> CDS <222> (64)..(750) <400> 15 atgaagaaga ctgctatagc aattgcagtg gcgctagctg gtttcgccac cgtggcgcaa 60
gct gag Glu 1 gtt Val cag Gln ctg Leu gtc Val 5 gag Glu tct Ser gga Gly ggc Gly ggg Gly 10 ctt Leu gtc Val cag Gln cct Pro ggt Gly 15 108
ggg agc ctg cgt ctc tct tgt gca gtg agc ggc ttc agc tct acc aat 156
Gly Ser Leu Arg Leu Ser Cys Ala Val Ser Gly Phe Ser Ser Thr Asn
20 25 30
tac cat gtg cac tgg gtg cgt cag gca cct ggg aag ggc ctg gag tgg 204
Tyr His Val His Trp Val Arg Gln Ala Pro Gly Lys Gly Leu Glu Trp
35 40 45
atg ggt gtt att tgg ggc gac ggc gat aca tcc tac aac tcc gtc ctg 252
Met Gly Val Ile Trp Gly Asp Gly Asp Thr Ser Tyr Asn Ser Val Leu
- 37 031449
aag Lys agc Ser 65 cgt Arg ttc Phe acc Thr att Ile tcc Ser 70 cgt Arg gac Asp acc Thr tca Ser aag Lys 75 aat Asn acc Thr gtt Val tac Tyr 300
ctc cag atg aac tct ctc cgc gca gag gac aca gca gtc tat tac tgt 348
Leu Gln Met Asn Ser Leu Arg Ala Glu Asp Thr Ala Val Tyr Tyr Cys
80 85 90 95
gca cgt caa ctg acc cac tat tac gtt ttg gca gcc tgg ggt caa ggg 396
Ala Arg Gln Leu Thr His Tyr Tyr Val Leu Ala Ala Trp Gly Gln Gly
100 105 110
act ctg gtc aca gtc tcg agc gct tct aca aag ggc cca tcg gtc ttc 444
Thr Leu Val Thr Val Ser Ser Ala Ser Thr Lys Gly Pro Ser Val Phe
115 120 125
ccc ctg gca ccc tcc tcc aag agc acc tct ggg ggc aca gcg gcc ctg 492
Pro Leu Ala Pro Ser Ser Lys Ser Thr Ser Gly Gly Thr Ala Ala Leu
130 135 140
ggc tgc ctg gtc aag gac tac ttc ccc gaa ccg gtg acg gtg tcg tgg 540
Gly Cys Leu Val Lys Asp Tyr Phe Pro Glu Pro Val Thr Val Ser Trp
145 150 155
aac tca ggc gcc ctg acc agc ggc gtg cac acc ttc ccg gct gtc cta 588
Asn Ser Gly Ala Leu Thr Ser Gly Val His Thr Phe Pro Ala Val Leu
160 165 170 175
cag tcc tca gga ctc tac tcc ctc agc agc gtg gtg acc gtg ccc tcc 636
Gln Ser Ser Gly Leu Tyr Ser Leu Ser Ser Val Val Thr Val Pro Ser
180 185 190
agc agc ttg ggc acc cag acc tac atc tgc aac gtg aat cac aag ccc 684
Ser Ser Leu Gly Thr Gln Thr Tyr Ile Cys Asn Val Asn His Lys Pro
195 200 205
agc aac acc aag gtc gac aag aaa gtt gag ccc aaa tct tgt gac aaa 732
Ser Asn Thr Lys Val Asp Lys Lys Val Glu Pro Lys Ser Cys Asp Lys
210 215 220
act cac aca tgc gcc gcg 750
Thr His Thr Cys Ala Ala
225 <210> 16 <211> 229 <212> БЕЛОК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Синтетическая конструкция <400> 16
Glu Val Gln Leu Val Glu Ser Gly Gly Gly Leu Val Gln Pro Gly Gly
1 5 10 15
Ser Leu Arg Leu Ser Cys Ala Val Ser Gly Phe Ser Ser Thr Asn Tyr
20 25 30
- 38 031449
His Val His 35 Trp Val Arg Gln Ala 40 Pro Gly Lys Gly Leu 45 Glu Trp Met
Gly Val Ile Trp Gly Asp Gly Asp Thr Ser Tyr Asn Ser Val Leu Lys
50 55 60
Ser Arg Phe Thr Ile Ser Arg Asp Thr Ser Lys Asn Thr Val Tyr Leu
65 70 75 80
Gln Met Asn Ser Leu Arg Ala Glu Asp Thr Ala Val Tyr Tyr Cys Ala
85 90 95
Arg Gln Leu Thr His Tyr Tyr Val Leu Ala Ala Trp Gly Gln Gly Thr
100 105 110
Leu Val Thr Val Ser Ser Ala Ser Thr Lys Gly Pro Ser Val Phe Pro
115 120 125
Leu Ala Pro Ser Ser Lys Ser Thr Ser Gly Gly Thr Ala Ala Leu Gly
130 135 140
Cys Leu Val Lys Asp Tyr Phe Pro Glu Pro Val Thr Val Ser Trp Asn
145 150 155 160
Ser Gly Ala Leu Thr Ser Gly Val His Thr Phe Pro Ala Val Leu Gln
165 170 175
Ser Ser Gly Leu Tyr Ser Leu Ser Ser Val Val Thr Val Pro Ser Ser
180 185 190
Ser Leu Gly Thr Gln Thr Tyr Ile Cys Asn Val Asn His Lys Pro Ser
195 200 205
Asn Thr Lys Val Asp Lys Lys Val Glu Pro Lys Ser Cys Asp Lys Thr
210 215 220
His Thr Cys Ala Ala
225 <210> 17 <211> 711 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Описание искусственной последовательности: hu342 каппа LC
- 39 031449
<220>
<221> CDS
<222> (1)..(711
<400> 17
atg Met 1 gac Asp atg Met agg Arg gtc Val 5 ccc Pro gct Ala cag Gln ctc Leu ctg Leu 10 ggg Gly ctc Leu ctg Leu cta Leu ctc Leu 15 tgg Trp 48
ctc cga ggt gcc aga tgt gat atc cag atg acc cag agt cca agc agt 96
Leu Arg Gly Ala Arg Cys Asp Ile Gln Met Thr Gln Ser Pro Ser Ser
20 25 30
ctc tcc gcc agc gta ggc gat cgt gtg act att acc tgt cgt gcc agt 144
Leu Ser Ala Ser Val Gly Asp Arg Val Thr Ile Thr Cys Arg Ala Ser
35 40 45
gag gac ctc tat tac aac ctg gcc tgg tat cag cgt aaa ccg ggc aaa 192
Glu Asp Leu Tyr Tyr Asn Leu Ala Trp Tyr Gln Arg Lys Pro Gly Lys
50 55 60
gcc ccg aag ctg ctc atc tat gat acg tac cgc ctg gct gac ggt gtg 240
Ala Pro Lys Leu Leu Ile Tyr Asp Thr Tyr Arg Leu Ala Asp Gly Val
65 70 75 80
cca agc cgt ttc agt ggc agt ggc agc ggt act gac tat acc ctc aca 288
Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Tyr Thr Leu Thr
85 90 95
att tcg tct ctc cag ccg gaa gat ttc gcc tct tac tat tgt cag caa 336
Ile Ser Ser Leu Gln Pro Glu Asp Phe Ala Ser Tyr Tyr Cys Gln Gln
100 105 110
tat tac aag ttc cct ttc acc ttc ggt cag ggc act aaa gta gaa atc 384
Tyr Tyr Lys Phe Pro Phe Thr Phe Gly Gln Gly Thr Lys Val Glu Ile
115 120 125
aaa cgt acg gtg gct gca cca tct gtc ttc atc ttc ccg cca tct gat 432
Lys Arg Thr Val Ala Ala Pro Ser Val Phe Ile Phe Pro Pro Ser Asp
130 135 140
gag cag ttg aaa tct gga act gcc tct gtt gtg tgc ctg ctg aat aac 480
Glu Gln Leu Lys Ser Gly Thr Ala Ser Val Val Cys Leu Leu Asn Asn
145 150 155 160
ttc tat ccc aga gag gcc aaa gta cag tgg aag gtg gat aac gcc ctc 528
Phe Tyr Pro Arg Glu Ala Lys Val Gln Trp Lys Val Asp Asn Ala Leu
165 170 175
caa tcg ggt aac tcc cag gag agt gtc aca gag cag gac agc aag gac 576
Gln Ser Gly Asn Ser Gln Glu Ser Val Thr Glu Gln Asp Ser Lys Asp
180 185 190
agc acc tac agc ctc agc agc acc ctg acg ctg agc aaa gca gac tac 624
Ser Thr Tyr Ser Leu Ser Ser Thr Leu Thr Leu Ser Lys Ala Asp Tyr
195 200 205
gag aaa cac aaa gtc tac gcc tgc gaa gtc acc cat cag ggc ctg agc 672
Glu Lys His Lys Val Tyr Ala Cys Glu Val Thr His Gln Gly Leu Ser
210 215 220
- 40 031449
tcg ccc gtc aca aag agc ttc aac agg gga gag tgt tag 711
Ser Pro Val Thr Lys Ser Phe Asn Arg Gly Glu Cys
225 230 235
<210> 18 <211> 236 <212> БЕЛОК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Синтетическая конструкция <400> 18
Met 1 Asp Met Arg Val 5 Pro Ala Gln Leu Leu Gly 10 Leu Leu Leu Leu 15 Trp
Leu Arg Gly Ala Arg Cys Asp Ile Gln Met Thr Gln Ser Pro Ser Ser
20 25 30
Leu Ser Ala Ser Val Gly Asp Arg Val Thr Ile Thr Cys Arg Ala Ser
35 40 45
Glu Asp Leu Tyr Tyr Asn Leu Ala Trp Tyr Gln Arg Lys Pro Gly Lys
50 55 60
Ala Pro Lys Leu Leu Ile Tyr Asp Thr Tyr Arg Leu Ala Asp Gly Val
65 70 75 80
Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Tyr Thr Leu Thr
85 90 95
Ile Ser Ser Leu Gln Pro Glu Asp Phe Ala Ser Tyr Tyr Cys Gln Gln
100 105 110
Tyr Tyr Lys Phe Pro Phe Thr Phe Gly Gln Gly Thr Lys Val Glu Ile
115 120 125
Lys Arg Thr Val Ala Ala Pro Ser Val Phe Ile Phe Pro Pro Ser Asp
130 135 140
Glu Gln Leu Lys Ser Gly Thr Ala Ser Val Val Cys Leu Leu Asn Asn
145 150 155 160
Phe Tyr Pro Arg Glu Ala Lys Val Gln Trp Lys Val Asp Asn Ala Leu
165 170 175
Gln Ser Gly Asn Ser Gln Glu Ser Val Thr Glu Gln Asp Ser Lys Asp
180 185 190
- 41 031449
Ser Thr Tyr 195 Ser Leu Ser Ser Thr 200 Leu Thr Leu Ser Lys 205 Ala Asp Tyr
Glu Lys His Lys Val Tyr Ala Cys Glu Val Thr His Gln Gly Leu Ser
210 215 220
Ser Pro Val Thr Lys Ser Phe Asn Arg Gly Glu Cys
225 230 235
<210> 19 <211> 1392 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Описание искусственной последовательности: hu342 aglyP-huIgG4 HC <220>
<221> CDS <222> (1)..(1392)
<400> 19
atg Met 1 gac Asp tgg Trp acc Thr tgg Trp 5 agg Arg gtc Val ttc Phe tgc Cys ttg Leu 10 ctg Leu gct Ala gta Val gca Ala cca Pro 15 ggt Gly 48
gcc cac tcc gaa gta caa ttg gtc gag tct gga ggc ggg ctt gtc cag 96
Ala His Ser Glu Val Gln Leu Val Glu Ser Gly Gly Gly Leu Val Gln
20 25 30
cct ggt ggg agc ctg cgt ctc tct tgt gca gtg agc ggc ttc agc tct 144
Pro Gly Gly Ser Leu Arg Leu Ser Cys Ala Val Ser Gly Phe Ser Ser
35 40 45
acc aat tac cat gtg cac tgg gtg cgt cag gca cct ggg aag ggc ctg 192
Thr Asn Tyr His Val His Trp Val Arg Gln Ala Pro Gly Lys Gly Leu
50 55 60
gag tgg atg ggt gtt att tgg ggc gac ggc gat aca tcc tac aac tcc 240
Glu Trp Met Gly Val Ile Trp Gly Asp Gly Asp Thr Ser Tyr Asn Ser
65 70 75 80
gtc ctg aag agc cgt ttc acc att tcc cgt gac acc tca aag aat acc 288
Val Leu Lys Ser Arg Phe Thr Ile Ser Arg Asp Thr Ser Lys Asn Thr
85 90 95
gtt tac ctc cag atg aac tct ctc cgc gca gag gac aca gca gtc tat 336
Val Tyr Leu Gln Met Asn Ser Leu Arg Ala Glu Asp Thr Ala Val Tyr
100 105 110
tac tgt gca cgt caa ctg acc cac tat tac gtt ttg gca gcc tgg ggt 384
Tyr Cys Ala Arg Gln Leu Thr His Tyr Tyr Val Leu Ala Ala Trp Gly
115 120 125
caa ggg act ctg gtc aca gtc tcg agc gct tca acc aag ggc cca tcc 432
Gln Gly Thr Leu Val Thr Val Ser Ser Ala Ser Thr Lys Gly Pro Ser
- 42 031449
130
135
140
gtc Val 145 ttc Phe ccc Pro ctg Leu gcg Ala ccc Pro 150 tgc Cys tcc Ser aga Arg tct Ser acc Thr 155 tcc Ser gag Glu agc Ser aca Thr gcc Ala 160 480
gcc ctg ggc tgc ctg gtc aag gac tac ttc ccc gaa ccg gtg acg gtg 528
Ala Leu Gly Cys Leu Val Lys Asp Tyr Phe Pro Glu Pro Val Thr Val
165 170 175
tcg tgg aac tca ggc gcc ctg acc agc ggc gtg cac acc ttc ccg gct 576
Ser Trp Asn Ser Gly Ala Leu Thr Ser Gly Val His Thr Phe Pro Ala
180 185 190
gtc cta cag tcc tca gga ctc tac tcc ctc agc agc gtg gtg acc gtg 624
Val Leu Gln Ser Ser Gly Leu Tyr Ser Leu Ser Ser Val Val Thr Val
195 200 205
ccc tcc agc agc ttg ggc acg aag acc tac acc tgc aac gta gat cac 672
Pro Ser Ser Ser Leu Gly Thr Lys Thr Tyr Thr Cys Asn Val Asp His
210 215 220
aag ccc agc aac acc aag gtg gac aag aga gtt gag tcc aaa tat ggt 720
Lys Pro Ser Asn Thr Lys Val Asp Lys Arg Val Glu Ser Lys Tyr Gly
225 230 235 240
ccc cca tgc cca ccg tgc cca gca cct gag ttc ctg ggg gga cca tca 768
Pro Pro Cys Pro Pro Cys Pro Ala Pro Glu Phe Leu Gly Gly Pro Ser
245 250 255
gtc ttc ctg ttc ccc cca aaa ccc aag gac act ctc atg atc tcc cgg 816
Val Phe Leu Phe Pro Pro Lys Pro Lys Asp Thr Leu Met Ile Ser Arg
260 265 270
acc cct gag gtc acg tgc gtg gtg gtg gac gtg agc cag gaa gac ccc 864
Thr Pro Glu Val Thr Cys Val Val Val Asp Val Ser Gln Glu Asp Pro
275 280 285
gag gtc cag ttc aac tgg tac gtg gat ggc gtg gag gtg cat aat gcc 912
Glu Val Gln Phe Asn Trp Tyr Val Asp Gly Val Glu Val His Asn Ala
290 295 300
aag aca aag ccg cgg gag gag cag ttc aac agc gcg tac cgt gtg gtc 960
Lys Thr Lys Pro Arg Glu Glu Gln Phe Asn Ser Ala Tyr Arg Val Val
305 310 315 320
agc gtc ctc acc gtc ctg cac cag gac tgg ctg aac ggc aag gag tac 1008
Ser Val Leu Thr Val Leu His Gln Asp Trp Leu Asn Gly Lys Glu Tyr
325 330 335
aag tgc aag gtc tcc aac aaa ggc ctc ccg tcc tcc atc gag aaa acc 1056
Lys Cys Lys Val Ser Asn Lys Gly Leu Pro Ser Ser Ile Glu Lys Thr
340 345 350
atc tcc aaa gcc aaa ggg cag ccc cga gag cca caa gtg tac acc ctg 1104
Ile Ser Lys Ala Lys Gly Gln Pro Arg Glu Pro Gln Val Tyr Thr Leu
355 360 365
ccc cca tcc cag gag gag atg acc aag aac cag gtc agc ctg acc tgc 1152
Pro Pro Ser Gln Glu Glu Met Thr Lys Asn Gln Val Ser Leu Thr Cys
370 375 380
- 43 031449
ctg Leu 385 gtc Val aaa Lys ggc Gly ttc Phe tac Tyr 390 ccc Pro agc Ser gac Asp atc Ile gcc Ala 395 gtg Val gag Glu tgg Trp gag Glu agc Ser 400 1200
aat ggg cag ccg gag aac aac tac aag acc acg cct ccc gtc ctc gat 1248
Asn Gly Gln Pro Glu Asn Asn Tyr Lys Thr Thr Pro Pro Val Leu Asp
405 410 415
tcc gac ggc tcc ttc ttc ctc tac agc agg cta acc gtg gac aag agc 1296
Ser Asp Gly Ser Phe Phe Leu Tyr Ser Arg Leu Thr Val Asp Lys Ser
420 425 430
agg tgg cag gag ggg aat gtc ttc tca tgc tcc gtg atg cat gag gct 1344
Arg Trp Gln Glu Gly Asn Val Phe Ser Cys Ser Val Met His Glu Ala
435 440 445
ctg cac aac cac tac aca cag aag agc ctc tcc ctg tct ctg ggt tga 1392
Leu His Asn His Tyr Thr Gln Lys Ser Leu Ser Leu Ser Leu Gly
450 455 460
<210> 20 <211> 463 <212> БЕЛОК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Синтетическая конструкция <400> 20
Met Asp 1 Trp Thr Trp Arg 5 Val Phe Cys Leu 10 Leu Ala Val Ala Pro 15 Gly
Ala His Ser Glu Val Gln Leu Val Glu Ser Gly Gly Gly Leu Val Gln
20 25 30
Pro Gly Gly Ser Leu Arg Leu Ser Cys Ala Val Ser Gly Phe Ser Ser
35 40 45
Thr Asn Tyr His Val His Trp Val Arg Gln Ala Pro Gly Lys Gly Leu
50 55 60
Glu Trp Met Gly Val Ile Trp Gly Asp Gly Asp Thr Ser Tyr Asn Ser
65 70 75 80
Val Leu Lys Ser Arg Phe Thr Ile Ser Arg Asp Thr Ser Lys Asn Thr
85 90 95
Val Tyr Leu Gln Met Asn Ser Leu Arg Ala Glu Asp Thr Ala Val Tyr
100 105 110
Tyr Cys Ala Arg Gln Leu Thr His Tyr Tyr Val Leu Ala Ala Trp Gly
115 120 125
- 44 031449
Gln Gly Thr Leu Val Thr Val 135 Ser Ser Ala Ser Thr 140 Lys Gly Pro Ser
130
Val Phe Pro Leu Ala Pro Cys Ser Arg Ser Thr Ser Glu Ser Thr Ala
145 150 155 160
Ala Leu Gly Cys Leu Val Lys Asp Tyr Phe Pro Glu Pro Val Thr Val
165 170 175
Ser Trp Asn Ser Gly Ala Leu Thr Ser Gly Val His Thr Phe Pro Ala
180 185 190
Val Leu Gln Ser Ser Gly Leu Tyr Ser Leu Ser Ser Val Val Thr Val
195 200 205
Pro Ser Ser Ser Leu Gly Thr Lys Thr Tyr Thr Cys Asn Val Asp His
210 215 220
Lys Pro Ser Asn Thr Lys Val Asp Lys Arg Val Glu Ser Lys Tyr Gly
225 230 235 240
Pro Pro Cys Pro Pro Cys Pro Ala Pro Glu Phe Leu Gly Gly Pro Ser
245 250 255
Val Phe Leu Phe Pro Pro Lys Pro Lys Asp Thr Leu Met Ile Ser Arg
260 265 270
Thr Pro Glu Val Thr Cys Val Val Val Asp Val Ser Gln Glu Asp Pro
275 280 285
Glu Val Gln Phe Asn Trp Tyr Val Asp Gly Val Glu Val His Asn Ala
290 295 300
Lys Thr Lys Pro Arg Glu Glu Gln Phe Asn Ser Ala Tyr Arg Val Val
305 310 315 320
Ser Val Leu Thr Val Leu His Gln Asp Trp Leu Asn Gly Lys Glu Tyr
325 330 335
Lys Cys Lys Val Ser Asn Lys Gly Leu Pro Ser Ser Ile Glu Lys Thr
340 345 350
Ile Ser Lys Ala Lys Gly Gln Pro Arg Glu Pro Gln Val Tyr Thr Leu
355 360 365
- 45 031449
Pro Pro 370 Ser Gln Glu Glu Met 375 Thr Lys Asn Gln Val 380 Ser Leu Thr Cys
Leu Val Lys Gly Phe Tyr Pro Ser Asp Ile Ala Val Glu Trp Glu Ser
385 390 395 400
Asn Gly Gln Pro Glu Asn Asn Tyr Lys Thr Thr Pro Pro Val Leu Asp
405 410 415
Ser Asp Gly Ser Phe Phe Leu Tyr Ser Arg Leu Thr Val Asp Lys Ser
420 425 430
Arg Trp Gln Glu Gly Asn Val Phe Ser Cys Ser Val Met His Glu Ala
435 440 445
Leu His Asn His Tyr Thr Gln Lys Ser Leu Ser Leu Ser Leu Gly
450 455 460
<210> 21 <211> 1438 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Описание искусственной последовательности: 342 gL4gH1 векторная ДНК VH3 (V+C) Fab (без шарнирной области) <400> 21
atgaaaaaga cagctatcgc aattgcagtg gccttggctg gtttcgctac cgtagcgcaa 60
gctgatatcc agatgaccca gagtccaagc agtctctccg ccagcgtagg cgatcgtgtg 120
actattacct gtcgtgccag tgaggacctc tattacaacc tggcctggta tcagcgtaaa 180
ccgggcaaag ccccgaagct gctcatctat gatacgtacc gcctggctga cggtgtgcca 240
agccgtttca gtggcagtgg cagcggtact gactataccc tcacaatttc gtctctccag 300
ccggaagatt tcgcctctta ctattgtcag caatattaca agttcccttt caccttcggt 360
cagggcacta aagtagaaat caaacgtacg gtagcggccc catctgtctt catcttcccg 420
ccatctgatg agcagttgaa atctggaact gcctctgttg tgtgcctgct gaataacttc 480
tatcccagag aggccaaagt acagtggaag gtggataacg ccctccaatc gggtaactcc 540
caggagagtg tcacagagca ggacagcaag gacagcacct acagcctcag cagcaccctg 600
acgctgagca aagcagacta cgagaaacac aaagtctacg cctgcgaagt cacccatcag 660
ggcctgagct caccagtaac aaaaagtttt aatagagggg agtgttaaaa tgaagaagac 720
tgctatagca attgcagtgg cgctagctgg tttcgccacc gtggcgcaag ctgaggttca 780
gctggtcgag tctggaggcg ggcttgtcca gcctggtggg agcctgcgtc tctcttgtgc 840
agtgagcggc ttcagctcta ccaattacca tgtgcactgg gtgcgtcagg cacctgggaa 900
- 46 031449
gggcctggag tggatgggtg ttatttgggg cgacggcgat acatcctaca actccgtcct 960
gaagagccgt ttcaccattt cccgtgacac ctcaaagaat accgtttacc tccagatgaa 1020
ctctctccgc gcagaggaca cagcagtcta ttactgtgca cgtcaactga cccactatta 1080
cgttttggca gcctggggtc aagggactct ggtcacagtc tcgagcgctt ctacaaaggg 1140
cccatcggtc ttccccctgg caccctcctc caagagcacc tctgggggca cagcggccct 1200
gggctgcctg gtcaaggact acttccccga accggtgacg gtgtcgtgga actcaggcgc 1260
cctgaccagc ggcgtgcaca ccttcccggc tgtcctacag tcctcaggac tctactccct 1320
cagcagcgtg gtgaccgtgc cctccagcag cttgggcacc cagacctaca tctgcaacgt 1380
gaatcacaag cccagcaaca ccaaggtcga caagaaagtt gagcccaaat cttgttaa 1438
<210> 22 <211> 1459 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Описание искусственной последовательности: 342 gL4gH1 векторная ДНК
VH3 (V+C) Fab'
<400> 22
atgaaaaaga cagctatcgc aattgcagtg gccttggctg gtttcgctac cgtagcgcaa 60
gctgatatcc agatgaccca gagtccaagc agtctctccg ccagcgtagg cgatcgtgtg 120
actattacct gtcgtgccag tgaggacctc tattacaacc tggcctggta tcagcgtaaa 180
ccgggcaaag ccccgaagct gctcatctat gatacgtacc gcctggctga cggtgtgcca 240
agccgtttca gtggcagtgg cagcggtact gactataccc tcacaatttc gtctctccag 300
ccggaagatt tcgcctctta ctattgtcag caatattaca agttcccttt caccttcggt 360
cagggcacta aagtagaaat caaacgtacg gtagcggccc catctgtctt catcttcccg 420
ccatctgatg agcagttgaa atctggaact gcctctgttg tgtgcctgct gaataacttc 480
tatcccagag aggccaaagt acagtggaag gtggataacg ccctccaatc gggtaactcc 540
caggagagtg tcacagagca ggacagcaag gacagcacct acagcctcag cagcaccctg 600
acgctgagca aagcagacta cgagaaacac aaagtctacg cctgcgaagt cacccatcag 660
ggcctgagct caccagtaac aaaaagtttt aatagagggg agtgttaaaa tgaagaagac 720
tgctatagca attgcagtgg cgctagctgg tttcgccacc gtggcgcaag ctgaggttca 780
gctggtcgag tctggaggcg ggcttgtcca gcctggtggg agcctgcgtc tctcttgtgc 840
agtgagcggc ttcagctcta ccaattacca tgtgcactgg gtgcgtcagg cacctgggaa 900
gggcctggag tggatgggtg ttatttgggg cgacggcgat acatcctaca actccgtcct 960
- 47 031449
gaagagccgt ttcaccattt cccgtgacac ctcaaagaat accgtttacc tccagatgaa 1020
ctctctccgc gcagaggaca cagcagtcta ttactgtgca cgtcaactga cccactatta 1080
cgttttggca gcctggggtc aagggactct ggtcacagtc tcgagcgctt ctacaaaggg 1140
cccatcggtc ttccccctgg caccctcctc caagagcacc tctgggggca cagcggccct 1200
gggctgcctg gtcaaggact acttccccga accggtgacg gtgtcgtgga actcaggcgc 1260
cctgaccagc ggcgtgcaca ccttcccggc tgtcctacag tcctcaggac tctactccct 1320
cagcagcgtg gtgaccgtgc cctccagcag cttgggcacc cagacctaca tctgcaacgt 1380
gaatcacaag cccagcaaca ccaaggtcga caagaaagtt gagcccaaat cttgtgacaa 1440
aactcacaca tgcgccgcg 1459
<210> 23 <211> 986 <212> ДНК <213> Escherichia coli <220>
<221> CDS <222> (379)..(945) <300>
<308> GenBank/D86610 <309> 2009-01-10 <313> (1)..(986) <400> 23
atagtgagga taatcctgat gatgcgcacc gtgctttcat ctatcgaacg caaaaatcat 60
tctctaagta aatgaatgga ttgcatgcgt ttcactcaat tgtactttaa ttgaccaacc 120
ccgcttatta actttctgta tcactttttc ttataaaaaa tcatgtaaaa ccgctcgcca 180
agaccgcacc aatcgggtaa tctcgaactc gttttgcctc ggcggtagat tatcctcaca 240
gcatataatt ttgtgcgtta gtccacagat ttggccttaa ggaattgttt caacatgccc 300
aggtaattag tctcgtgtcg cttggcattt ttttataacg atatttgtcg ttaaggactt 360
caagggaaaa caaacaac atg Met 1 gtc Val aaa Lys tct Ser caa Gln 5 ccg att ttg aga Leu Arg tat Tyr 10 atc Ile 411
Pro Ile
ttg cgc ggg att ccc gcg att gca gta gcg gtt ctg ctt tct gca tgt 459
Leu Arg Gly Ile Pro Ala Ile Ala Val Ala Val Leu Leu Ser Ala Cys
15 20 25
agt gca aat aac acc gca aag aat atg cat cct gag aca cgt gca gtg 507
Ser Ala Asn Asn Thr Ala Lys Asn Met His Pro Glu Thr Arg Ala Val
30 35 40
ggt agt gaa aca tca tca ctg caa gct tct cag gat gaa ttt gaa aac 555
Gly Ser Glu Thr Ser Ser Leu Gln Ala Ser Gln Asp Glu Phe Glu Asn
45 50 55
- 48 031449
ctg Leu 60 gtt Val cgt Arg aat Asn gtc Val gac Asp 65 gta Val aaa Lys tcg Ser cga Arg att Ile 70 atg Met gat Asp cag Gln tat Tyr gct Ala 75 603
gac tgg aaa ggc gta cgt tat cgt ctg ggc ggc agc act aaa aaa ggt 651
Asp Trp Lys Gly Val Arg Tyr Arg Leu Gly Gly Ser Thr Lys Lys Gly
80 85 90
atc gat tgt tct ggt ttc gta cag cgt aca ttc cgt gag caa ttt ggc 699
Ile Asp Cys Ser Gly Phe Val Gln Arg Thr Phe Arg Glu Gln Phe Gly
95 100 105
tta gaa ctt ccg cgt tcg act tac gaa cag cag gaa atg ggt aaa tct 747
Leu Glu Leu Pro Arg Ser Thr Tyr Glu Gln Gln Glu Met Gly Lys Ser
110 115 120
gtt tcc cgc agt aat ttg cgt acg ggt gat tta gtt ctg ttc cgt gcc 795
Val Ser Arg Ser Asn Leu Arg Thr Gly Asp Leu Val Leu Phe Arg Ala
125 130 135
ggt tca acg gga cgc cat gtc ggt att tat atc ggc aac aat cag ttt 843
Gly Ser Thr Gly Arg His Val Gly Ile Tyr Ile Gly Asn Asn Gln Phe
140 145 150 155
gtc cat gct tcc acc agc agt ggt gtt att att tcc agc atg aat gaa 891
Val His Ala Ser Thr Ser Ser Gly Val Ile Ile Ser Ser Met Asn Glu
160 165 170
ccg tac tgg aag aag cgt tac aac gaa gca cgc cgg gtt ctc agc cgc 939
Pro Tyr Trp Lys Lys Arg Tyr Asn Glu Ala Arg Arg Val Leu Ser Arg
175 180 185
agc taa taaaccgttt ggatgcaatc ccttggctat cctgacgagt t
986
Ser
<210> <211> <212> <213> 24 188 БЕЛОК Escherichia coli
<400> 24
Met 1 Val Lys Ser Gln 5 Pro Ile Leu Arg Tyr 10 Ile Leu Arg Gly Ile 15 Pro
Ala Ile Ala Val Ala Val Leu Leu Ser Ala Cys Ser Ala Asn Asn Thr
20 25 30
Ala Lys Asn Met His Pro Glu Thr Arg Ala Val Gly Ser Glu Thr Ser
35 40 45
Ser Leu Gln Ala Ser Gln Asp Glu Phe Glu Asn Leu Val Arg Asn Val
50 55 60
Asp Val Lys Ser Arg Ile Met Asp Gln Tyr Ala Asp Trp Lys Gly Val
70 75 80
- 49 031449
Arg Tyr Arg Leu Gly 85 Gly Ser Thr Lys Lys 90 Gly Ile Asp Cys Ser 95 Gly
Phe Val Gln Arg Thr Phe Arg Glu Gln Phe Gly Leu Glu Leu Pro Arg
100 105 110
Ser Thr Tyr Glu Gln Gln Glu Met Gly Lys Ser Val Ser Arg Ser Asn
115 120 125
Leu Arg Thr Gly Asp Leu Val Leu Phe Arg Ala Gly Ser Thr Gly Arg
130 135 140
His Val Gly Ile Tyr Ile Gly Asn Asn Gln Phe Val His Ala Ser Thr
145 150 155 160
Ser Ser Gly Val Ile Ile Ser Ser Met Asn Glu Pro Tyr Trp Lys Lys
165 170 175
Arg Tyr Asn Glu Ala Arg Arg Val Leu Ser Arg Ser
180 185
<210> 25 <211> 2196 <212> ДНК <213> Escherichia coli <220>
<221> CDS <222> (69)..(2117) <220>
<221> сигнальный пептид <222> (69)..(134) <300>
<308> GenBank/M75634 <309> 1993-04-26 <313> (1)..(2196) <400> 25
gaattcgggt atgtctttga ttgtgcgcgc agaacacctg gtgttctgaa acggaggccg 60
ggccaggc atg aac atg ttt ttt agg ctt acc gcg tta gct ggc ctg ctt Met Asn Met Phe Phe Arg Leu Thr Ala Leu Ala Gly Leu Leu 1 5 10 110
gca ata gca ggc cag acc ttc gct gta gaa gat atc acg cgt gct gat 158
Ala Ile Ala Gly Gln Thr Phe Ala Val Glu Asp Ile Thr Arg Ala Asp 15 20 25 30
caa att ccg gta tta aag gaa gag acg cag cat gcg acg gta agt gag 206
- 50 031449
Gln Ile Pro Val Leu 35 Lys Glu Glu Thr Gln His 40 Ala Thr Val Ser 45 Glu
cgc gta acg tcg cgc ttc acc cgt tct cat tat cgc cag ttc gac ctc 254
Arg Val Thr Ser Arg Phe Thr Arg Ser His Tyr Arg Gln Phe Asp Leu
50 55 60
gat cag gca ttt tcg gcc aaa atc ttt gac cgc tac ctg aat ctg ctc 302
Asp Gln Ala Phe Ser Ala Lys Ile Phe Asp Arg Tyr Leu Asn Leu Leu
65 70 75
gat tac agc cac aac gtg ctg ctg gca agc gat gtt gaa cag ttc gcg 350
Asp Tyr Ser His Asn Val Leu Leu Ala Ser Asp Val Glu Gln Phe Ala
80 85 90
aaa aag aaa acc gag tta ggc gat gaa ctg cgt tca ggc aaa ctc gac 398
Lys Lys Lys Thr Glu Leu Gly Asp Glu Leu Arg Ser Gly Lys Leu Asp
95 100 105 110
gtt ttc tac gat ctc tac aat ctg gcg caa aag cgc cgt ttt gag cgt 446
Val Phe Tyr Asp Leu Tyr Asn Leu Ala Gln Lys Arg Arg Phe Glu Arg
115 120 125
tac cag tac gct ttg tcg gta ctg gaa aag ccg atg gat ttc acc ggc 494
Tyr Gln Tyr Ala Leu Ser Val Leu Glu Lys Pro Met Asp Phe Thr Gly
130 135 140
aac gac act tat aac ctt gac cgc agc aaa gcg ccc tgg ccg aaa aac 542
Asn Asp Thr Tyr Asn Leu Asp Arg Ser Lys Ala Pro Trp Pro Lys Asn
145 150 155
gag gct gag ttg aac gcg ctg tgg gac agt aaa gtc aaa ttc gac gag 590
Glu Ala Glu Leu Asn Ala Leu Trp Asp Ser Lys Val Lys Phe Asp Glu
160 165 170
tta agc ctg aag ctg aca gga aaa acg gat aaa gaa att cgt gaa acc 638
Leu Ser Leu Lys Leu Thr Gly Lys Thr Asp Lys Glu Ile Arg Glu Thr
175 180 185 190
ctg act cgc cgc tac aaa ttt gcc att cgt cgt ctg gcg caa acc aac 686
Leu Thr Arg Arg Tyr Lys Phe Ala Ile Arg Arg Leu Ala Gln Thr Asn
195 200 205
agc gaa gat gtt ttc tcg ctg gca atg acg gcg ttt gcg cgt gaa atc 734
Ser Glu Asp Val Phe Ser Leu Ala Met Thr Ala Phe Ala Arg Glu Ile
210 215 220
gac ccg cat acc aac tat ctt tcc ccg cgt aat acc gaa cag ttc aac 782
Asp Pro His Thr Asn Tyr Leu Ser Pro Arg Asn Thr Glu Gln Phe Asn
225 230 235
act gaa atg agt ttg tcg ctg gaa ggt att ggc gca gtg ctg caa atg 830
Thr Glu Met Ser Leu Ser Leu Glu Gly Ile Gly Ala Val Leu Gln Met
240 245 250
gat gat gac tac acc gtt atc aat tcg atg gtg gca ggt ggt ccg gca 878
Asp Asp Asp Tyr Thr Val Ile Asn Ser Met Val Ala Gly Gly Pro Ala
255 260 265 270
gcg aag agt aaa gct atc agc gtt ggt gac aaa att gtc ggt gtt ggt 926
Ala Lys Ser Lys Ala Ile Ser Val Gly Asp Lys Ile Val Gly Val Gly
275 280 285
- 51 031449
caa Gln aca Thr ggc Gly aag Lys 290 ccg Pro atg Met gtt Val gac Asp gtg Val 295 att Ile ggc Gly tgg Trp cgt Arg ctt Leu 300 gat Asp gat Asp 974
gtg gtt gcc tta att aaa ggg ccg aag ggc agt aaa gtt cgt ctg gaa 1022
Val Val Ala Leu Ile Lys Gly Pro Lys Gly Ser Lys Val Arg Leu Glu
305 310 315
att tta cct gct ggt aaa ggg acc aag acc cgt act gta acg ttg acc 1070
Ile Leu Pro Ala Gly Lys Gly Thr Lys Thr Arg Thr Val Thr Leu Thr
320 325 330
cgt gaa cgt att cgt ctc gaa gac cgc gcg gtt aaa atg tcg gtg aag 1118
Arg Glu Arg Ile Arg Leu Glu Asp Arg Ala Val Lys Met Ser Val Lys
335 340 345 350
acc gtc ggt aaa gag aaa gtc ggc gtg ctg gat att ccg ggc ttc tat 1166
Thr Val Gly Lys Glu Lys Val Gly Val Leu Asp Ile Pro Gly Phe Tyr
355 360 365
gtg ggt ttg aca gac gat gtc aaa gtg caa ctg cag aaa ctg gaa aaa 1214
Val Gly Leu Thr Asp Asp Val Lys Val Gln Leu Gln Lys Leu Glu Lys
370 375 380
cag aat gtc agc agc gtc atc atc gac ctg cgt agc aat ggc ggt ggg 1262
Gln Asn Val Ser Ser Val Ile Ile Asp Leu Arg Ser Asn Gly Gly Gly
385 390 395
gcg tta act gaa gcc gta tcg ctc tcc ggt ctg ttt att cct gcg ggt 1310
Ala Leu Thr Glu Ala Val Ser Leu Ser Gly Leu Phe Ile Pro Ala Gly
400 405 410
ccc att gtt cag gtc cgc gat aac aac ggc aag gtt cgt gaa gat agc 1358
Pro Ile Val Gln Val Arg Asp Asn Asn Gly Lys Val Arg Glu Asp Ser
415 420 425 430
gat acc gac gga cag gtt ttc tat aaa ggc ccg ctg gtg gtg ctg gtt 1406
Asp Thr Asp Gly Gln Val Phe Tyr Lys Gly Pro Leu Val Val Leu Val
435 440 445
gac cgc ttc agt gct tcg gct tca gaa atc ttt gcc gcg gca atg cag 1454
Asp Arg Phe Ser Ala Ser Ala Ser Glu Ile Phe Ala Ala Ala Met Gln
450 455 460
gat tac ggt cgt gcg ctg gtt gtg ggt gaa ccg acg ttt ggt aaa ggc 1502
Asp Tyr Gly Arg Ala Leu Val Val Gly Glu Pro Thr Phe Gly Lys Gly
465 470 475
acc gtt cag caa tac cgt tca ttg aac cgt att tac gat cag atg tta 1550
Thr Val Gln Gln Tyr Arg Ser Leu Asn Arg Ile Tyr Asp Gln Met Leu
480 485 490
cgt cct gaa tgg cca gcg ctg ggt tct gtg cag tac acg atc cag aaa 1598
Arg Pro Glu Trp Pro Ala Leu Gly Ser Val Gln Tyr Thr Ile Gln Lys
495 500 505 510
ttc tat cgc gtt aac ggc ggc agt acg caa cgt aaa ggc gta acg cca 1646
Phe Tyr Arg Val Asn Gly Gly Ser Thr Gln Arg Lys Gly Val Thr Pro
515 520 525
gac atc atc atg ccg acg ggt aat gaa gaa acg gaa acg ggt gag aaa 1694
Asp Ile Ile Met Pro Thr Gly Asn Glu Glu Thr Glu Thr Gly Glu Lys
530 535 540
- 52 031449
ttc Phe gaa Glu gat Asp 545 aac Asn gcg Ala ctg Leu ccg Pro tgg Trp 550 gat Asp agc Ser att Ile gat Asp gcc Ala 555 gcg Ala act Thr tat Tyr 1742
gtg aaa tca gga gat tta acg gcc ttt gaa ccg gag ctg ctg aag gaa 1790
Val Lys Ser Gly Asp Leu Thr Ala Phe Glu Pro Glu Leu Leu Lys Glu
560 565 570
cat aat gcg cgt atc gcg aaa gat cct gag ttc cag aac atc atg aag 1838
His Asn Ala Arg Ile Ala Lys Asp Pro Glu Phe Gln Asn Ile Met Lys
575 580 585 590
gat atc gcg cgc ttc aac gct atg aag gac aag cgc aat atc gtt tct 1886
Asp Ile Ala Arg Phe Asn Ala Met Lys Asp Lys Arg Asn Ile Val Ser
595 600 605
ctg aat tac gct gtg cgt gag aaa gag aat aat gaa gat gat gcg acg 1934
Leu Asn Tyr Ala Val Arg Glu Lys Glu Asn Asn Glu Asp Asp Ala Thr
610 615 620
cgt ctg gcg cgt ttg aac gaa cgc ttt aaa cgc gaa ggt aaa ccg gag 1982
Arg Leu Ala Arg Leu Asn Glu Arg Phe Lys Arg Glu Gly Lys Pro Glu
625 630 635
ttg aag aaa ctg gat gat cta ccg aaa gat tac cag gag ccg gat cct 2030
Leu Lys Lys Leu Asp Asp Leu Pro Lys Asp Tyr Gln Glu Pro Asp Pro
640 645 650
tat ctg gat gag acg gtg aat atc gca ctc gat ctg gcg aag ctt gaa 2078
Tyr Leu Asp Glu Thr Val Asn Ile Ala Leu Asp Leu Ala Lys Leu Glu
655 660 665 670
aaa gcc aga ccc gcg gaa caa ccc gct ccc gtc aag taa tatcaatcag 2127
Lys Ala Arg Pro Ala Glu Gln Pro Ala Pro Val Lys
675 680
gcacaagaaa ttgtgcctga ttttttaaca gcgacaagat gccgtaaatc agatgctaca
2187 aaatgtaaa
2196
<210> <211> <212> <213> 26 682 БЕЛОК Escherichia coli
<400> 26
Met 1 Asn Met Phe Phe 5 Arg Leu Thr Ala Leu Ala Gly Leu 10 Leu Ala 15 Ile
Ala Gly Gln Thr Phe Ala Val Glu Asp Ile Thr Arg Ala Asp Gln Ile
20 25 30
Pro Val Leu Lys Glu Glu Thr Gln His Ala Thr Val Ser Glu Arg Val
35 40 45
Thr Ser Arg Phe Thr Arg Ser His Tyr Arg Gln Phe Asp Leu Asp Gln
55 60
- 53 031449
Ala 65 Phe Ser Ala Lys Ile 70 Phe Asp Arg Tyr Leu Asn 75 Leu Leu Asp Tyr 80
Ser His Asn Val Leu Leu Ala Ser Asp Val Glu Gln Phe Ala Lys Lys
85 90 95
Lys Thr Glu Leu Gly Asp Glu Leu Arg Ser Gly Lys Leu Asp Val Phe
100 105 110
Tyr Asp Leu Tyr Asn Leu Ala Gln Lys Arg Arg Phe Glu Arg Tyr Gln
115 120 125
Tyr Ala Leu Ser Val Leu Glu Lys Pro Met Asp Phe Thr Gly Asn Asp
130 135 140
Thr Tyr Asn Leu Asp Arg Ser Lys Ala Pro Trp Pro Lys Asn Glu Ala
145 150 155 160
Glu Leu Asn Ala Leu Trp Asp Ser Lys Val Lys Phe Asp Glu Leu Ser
165 170 175
Leu Lys Leu Thr Gly Lys Thr Asp Lys Glu Ile Arg Glu Thr Leu Thr
180 185 190
Arg Arg Tyr Lys Phe Ala Ile Arg Arg Leu Ala Gln Thr Asn Ser Glu
195 200 205
Asp Val Phe Ser Leu Ala Met Thr Ala Phe Ala Arg Glu Ile Asp Pro
210 215 220
His Thr Asn Tyr Leu Ser Pro Arg Asn Thr Glu Gln Phe Asn Thr Glu
225 230 235 240
Met Ser Leu Ser Leu Glu Gly Ile Gly Ala Val Leu Gln Met Asp Asp
245 250 255
Asp Tyr Thr Val Ile Asn Ser Met Val Ala Gly Gly Pro Ala Ala Lys
260 265 270
Ser Lys Ala Ile Ser Val Gly Asp Lys Ile Val Gly Val Gly Gln Thr
275 280 285
Gly Lys Pro Met Val Asp Val Ile Gly Trp Arg Leu Asp Asp Val Val
290 295 300
Ala Leu Ile Lys Gly Pro Lys Gly Ser Lys Val Arg Leu Glu Ile Leu
- 54 031449
305
310
315
320
Pro Ala Gly Lys Gly Thr 325 Lys Thr Arg Thr Val 330 Thr Leu Thr Arg 335 Glu
Arg Ile Arg Leu Glu Asp Arg Ala Val Lys Met Ser Val Lys Thr Val
340 345 350
Gly Lys Glu Lys Val Gly Val Leu Asp Ile Pro Gly Phe Tyr Val Gly
355 360 365
Leu Thr Asp Asp Val Lys Val Gln Leu Gln Lys Leu Glu Lys Gln Asn
370 375 380
Val Ser Ser Val Ile Ile Asp Leu Arg Ser Asn Gly Gly Gly Ala Leu
385 390 395 400
Thr Glu Ala Val Ser Leu Ser Gly Leu Phe Ile Pro Ala Gly Pro Ile
405 410 415
Val Gln Val Arg Asp Asn Asn Gly Lys Val Arg Glu Asp Ser Asp Thr
420 425 430
Asp Gly Gln Val Phe Tyr Lys Gly Pro Leu Val Val Leu Val Asp Arg
435 440 445
Phe Ser Ala Ser Ala Ser Glu Ile Phe Ala Ala Ala Met Gln Asp Tyr
450 455 460
Gly Arg Ala Leu Val Val Gly Glu Pro Thr Phe Gly Lys Gly Thr Val
465 470 475 480
Gln Gln Tyr Arg Ser Leu Asn Arg Ile Tyr Asp Gln Met Leu Arg Pro
485 490 495
Glu Trp Pro Ala Leu Gly Ser Val Gln Tyr Thr Ile Gln Lys Phe Tyr
500 505 510
Arg Val Asn Gly Gly Ser Thr Gln Arg Lys Gly Val Thr Pro Asp Ile
515 520 525
Ile Met Pro Thr Gly Asn Glu Glu Thr Glu Thr Gly Glu Lys Phe Glu
530 535 540
Asp Asn Ala Leu Pro Trp Asp Ser Ile Asp Ala Ala Thr Tyr Val Lys
545 550 555 560
- 55 031449
Ser Gly Asp Leu Thr 565 Ala Phe Glu Pro Glu 570 Leu Leu Lys Glu His 575 Asn
Ala Arg Ile Ala Lys Asp Pro Glu Phe Gln Asn Ile Met Lys Asp Ile
580 585 590
Ala Arg Phe Asn Ala Met Lys Asp Lys Arg Asn Ile Val Ser Leu Asn
595 600 605
Tyr Ala Val Arg Glu Lys Glu Asn Asn Glu Asp Asp Ala Thr Arg Leu
610 615 620
Ala Arg Leu Asn Glu Arg Phe Lys Arg Glu Gly Lys Pro Glu Leu Lys
625 630 635 640
Lys Leu Asp Asp Leu Pro Lys Asp Tyr Gln Glu Pro Asp Pro Tyr Leu
645 650 655
Asp Glu Thr Val Asn Ile Ala Leu Asp Leu Ala Lys Leu Glu Lys Ala
660 665 670
Arg Pro Ala Glu Gln Pro Ala Pro Val Lys
675 680
<210> 27
<211> 236
<212> БЕЛОК
<213> Escherichia coli
<300>
<308> Референсная последовательность NCBI/AP_003452
<309> 2011-06-21
<313> (1)..(236)
<400> 27
Met 1 Lys Lys Gly Phe Met 5 Leu Phe Thr Leu 10 Leu Ala Ala Phe Ser Gly 15
Phe Ala Gln Ala Asp Asp Ala Ala Ile Gln Gln Thr Leu Ala Lys Met
20 25 30
Gly Ile Lys Ser Ser Asp Ile Gln Pro Ala Pro Val Ala Gly Met Lys
35 40 45
Thr Val Leu Thr Asn Ser Gly Val Leu Tyr Ile Thr Asp Asp Gly Lys
50 55 60
His Ile Ile Gln Gly Pro Met Tyr Asp Val Ser Gly Thr Ala Pro Val
70 75 80
- 56 031449
Asn Val Thr Asn Lys 85 Met Leu Leu Lys Gln 90 Leu Asn Ala Leu Glu 95 Lys
Glu Met Ile Val Tyr Lys Ala Pro Gln Glu Lys His Val Ile Thr Val
100 105 110
Phe Thr Asp Ile Thr Cys Gly Tyr Cys His Lys Leu His Glu Gln Met
115 120 125
Ala Asp Tyr Asn Ala Leu Gly Ile Thr Val Arg Tyr Leu Ala Phe Pro
130 135 140
Arg Gln Gly Leu Asp Ser Asp Ala Glu Lys Glu Met Lys Ala Ile Trp
145 150 155 160
Cys Ala Lys Asp Lys Asn Lys Ala Phe Asp Asp Val Met Ala Gly Lys
165 170 175
Ser Val Ala Pro Ala Ser Cys Asp Val Asp Ile Ala Asp His Tyr Ala
180 185 190
Leu Gly Val Gln Leu Gly Val Ser Gly Thr Pro Ala Val Val Leu Ser
195 200 205
Asn Gly Thr Leu Val Pro Gly Tyr Gln Pro Pro Lys Glu Met Lys Glu
210 215 220
Phe Leu Asp Glu His Gln Lys Met Thr Ser Gly Lys
225 230 235
<210> 28 <211> 2048 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> подвергнутый нокауту мутантный ген Tsp <400> 28
atgaattcgt ttttaggctt accgcgttag ctggcctgct tgcaatagca ggccagacat 60
taattgtaga agatatcacg cgtgctgatc aaattccggt attaaaggaa gagacgcagc 120
atgcgacggt aagtgagcgc gtaacgtcgc gcttcacccg ttctcattat cgccagttcg 180
acctcgatca ggcattttcg gccaaaatct ttgaccgcta cctgaatctg ctcgattaca 240
gccacaacgt gctgctggca agcgatgttg aacagttcgc gaaaaagaaa accgagttag 300
gcgatgaact gcgttcaggc aaactcgacg ttttctacga tctctacaat ctggcgcaaa 360
- 57 031449
agcgccgttt tgagcgttac cagtacgctt tgtcggtact ggaaaagccg atggatttca 420
ccggcaacga cacttataac cttgaccgca gcaaagcgcc ctggccgaaa aacgaggctg 480
agttgaacgc gctgtgggac agtaaagtca aattcgacga gttaagcctg aagctgacag 540
gaaaaacgga taaagaaatt cgtgaaaccc tgactcgccg ctacaaattt gccattcgtc 600
gtctggcgca aaccaacagc gaagatgttt tctcgctggc aatgacggcg tttgcgcgtg 660
aaatcgaccc gcataccaac tatctttccc cgcgtaatac cgaacagttc aacactgaaa 720
tgagtttgtc gctggaaggt attggcgcag tgctgcaaat ggatgatgac tacaccgtta 780
tcaattcgat ggtggcaggt ggtccggcag cgaagagtaa agctatcagc gttggtgaca 840
aaattgtcgg tgttggtcaa acaggcaagc cgatggttga cgtgattggc tggcgtcttg 900
atgatgtggt tgccttaatt aaagggccga agggcagtaa agttcgtctg gaaattttac 960
ctgctggtaa agggaccaag acccgtactg taacgttgac ccgtgaacgt attcgtctcg 1020
aagaccgcgc ggttaaaatg tcggtgaaga ccgtcggtaa agagaaagtc ggcgtgctgg 1080
atattccggg cttctatgtg ggtttgacag acgatgtcaa agtgcaactg cagaaactgg 1140
aaaaacagaa tgtcagcagc gtcatcatcg acctgcgtag caatggcggt ggggcgttaa 1200
ctgaagccgt atcgctctcc ggtctgttta ttcctgcggg tcccattgtt caggtccgcg 1260
ataacaacgg caaggttcgt gaagatagcg ataccgacgg acaggttttc tataaaggcc 1320
cgctggtggt gctggttgac cgcttcagtg cttcggcttc agaaatcttt gccgcggcaa 1380
tgcaggatta cggtcgtgcg ctggttgtgg gtgaaccgac gtttggtaaa ggcaccgttc 1440
agcaataccg ttcattgaac cgtatttacg atcagatgtt acgtcctgaa tggccagcgc 1500
tgggttctgt gcagtacacg atccagaaat tctatcgcgt taacggcggc agtacgcaac 1560
gtaaaggcgt aacgccagac atcatcatgc cgacgggtaa tgaagaaacg gaaacgggtg 1620
agaaattcga agataacgcg ctgccgtggg atagcattga tgccgcgact tatgtgaaat 1680
caggagattt aacggccttt gaaccggagc tgctgaagga acataatgcg cgtatcgcga 1740
aagatcctga gttccagaac atcatgaagg atatcgcgcg cttcaacgct atgaaggaca 1800
agcgcaatat cgtttctctg aattacgctg tgcgtgagaa agagaataat gaagatgatg 1860
cgacgcgtct ggcgcgtttg aacgaacgct ttaaacgcga aggtaaaccg gagttgaaga 1920
aactggatga tctaccgaaa gattaccagg agccggatcc ttatctggat gagacggtga 1980
atatcgcact cgatctggcg aagcttgaaa aagccagacc cgcggaacaa cccgctcccg 2040
tcaagtaa
2048 <210> 29 <211> 1425
- 58 031449 <212> ДНК <213> Escherichia coli <220>
<221> CDS <222> (1)..(1425)
<400> 29
atg Met 1 aaa Lys aaa Lys acc Thr aca Thr 5 tta Leu gca Ala ctg Leu agt Ser gca Ala 10 ctg Leu gct Ala ctg Leu agt Ser tta Leu 15 ggt Gly 48
ttg gcg tta tct ccg ctc tct gca acg gcg gct gag act tct tca gca 96
Leu Ala Leu Ser Pro Leu Ser Ala Thr Ala Ala Glu Thr Ser Ser Ala
20 25 30
acg aca gcc cag cag atg cca agc ctt gca ccg atg ctc gaa aag gtg 144
Thr Thr Ala Gln Gln Met Pro Ser Leu Ala Pro Met Leu Glu Lys Val
35 40 45
atg cct tca gtg gtc agc att aac gta gaa ggt agc aca acc gtt aat 192
Met Pro Ser Val Val Ser Ile Asn Val Glu Gly Ser Thr Thr Val Asn
50 55 60
acg ccg cgt atg ccg cgt aat ttc cag cag ttc ttc ggt gat gat tct 240
Thr Pro Arg Met Pro Arg Asn Phe Gln Gln Phe Phe Gly Asp Asp Ser
65 70 75 80
ccg ttc tgc cag gaa ggt tct ccg ttc cag agc tct ccg ttc tgc cag 288
Pro Phe Cys Gln Glu Gly Ser Pro Phe Gln Ser Ser Pro Phe Cys Gln
85 90 95
ggt ggc cag ggc ggt aat ggt ggc ggc cag caa cag aaa ttc atg gcg 336
Gly Gly Gln Gly Gly Asn Gly Gly Gly Gln Gln Gln Lys Phe Met Ala
100 105 110
ctg ggt tcc ggc gtc atc att gat gcc gat aaa ggc tat gtc gtc acc 384
Leu Gly Ser Gly Val Ile Ile Asp Ala Asp Lys Gly Tyr Val Val Thr
115 120 125
aac aac cac gtt gtt gat aac gcg acg gtc att aaa gtt caa ctg agc 432
Asn Asn His Val Val Asp Asn Ala Thr Val Ile Lys Val Gln Leu Ser
130 135 140
gat ggc cgt aag ttc gac gcg aag atg gtt ggc aaa gat ccg cgc tct 480
Asp Gly Arg Lys Phe Asp Ala Lys Met Val Gly Lys Asp Pro Arg Ser
145 150 155 160
gat atc gcg ctg atc caa atc cag aac ccg aaa aac ctg acc gca att 528
Asp Ile Ala Leu Ile Gln Ile Gln Asn Pro Lys Asn Leu Thr Ala Ile
165 170 175
aag atg gcg gat tct gat gca ctg cgc gtg ggt gat tac acc gta gcg 576
Lys Met Ala Asp Ser Asp Ala Leu Arg Val Gly Asp Tyr Thr Val Ala
180 185 190
att ggt aac ccg ttt ggt ctg ggc gag acg gta act tcc ggg att gtc 624
Ile Gly Asn Pro Phe Gly Leu Gly Glu Thr Val Thr Ser Gly Ile Val
195 200 205
tct gcg ctg ggg cgt agc ggc ctg aat gcc gaa aac tac gaa aac ttc 672
- 59 031449
Ser Ala Leu Gly Arg Ser Gly 215 Leu Asn Ala Glu Asn Tyr 220 Glu Asn Phe
210
atc cag acc gat gca gcg atc aac cgt ggt aac tcc ggt ggt gcg ctg 720
Ile Gln Thr Asp Ala Ala Ile Asn Arg Gly Asn Ser Gly Gly Ala Leu
225 230 235 240
gtt aac ctg aac ggc gaa ctg atc ggt atc aac acc gcg atc ctc gca 768
Val Asn Leu Asn Gly Glu Leu Ile Gly Ile Asn Thr Ala Ile Leu Ala
245 250 255
ccg gac ggc ggc aac atc ggt atc ggt ttt gct atc ccg agt aac atg 816
Pro Asp Gly Gly Asn Ile Gly Ile Gly Phe Ala Ile Pro Ser Asn Met
260 265 270
gtg aaa aac ctg acc tcg cag atg gtg gaa tac ggc cag gtg aaa cgc 864
Val Lys Asn Leu Thr Ser Gln Met Val Glu Tyr Gly Gln Val Lys Arg
275 280 285
ggt gag ctg ggt att atg ggg act gag ctg aac tcc gaa ctg gcg aaa 912
Gly Glu Leu Gly Ile Met Gly Thr Glu Leu Asn Ser Glu Leu Ala Lys
290 295 300
gcg atg aaa gtt gac gcc cag cgc ggt gct ttc gta agc cag gtt ctg 960
Ala Met Lys Val Asp Ala Gln Arg Gly Ala Phe Val Ser Gln Val Leu
305 310 315 320
cct aat tcc tcc gct gca aaa gcg ggc att aaa gcg ggt gat gtg atc 1008
Pro Asn Ser Ser Ala Ala Lys Ala Gly Ile Lys Ala Gly Asp Val Ile
325 330 335
acc tca ctg aac ggt aag ccg atc agc agc ttt gcc gca ctg cgt gct 1056
Thr Ser Leu Asn Gly Lys Pro Ile Ser Ser Phe Ala Ala Leu Arg Ala
340 345 350
cag gtg ggt act atg ccg gta ggc agc aaa ctg acc ctg ggc tta ctg 1104
Gln Val Gly Thr Met Pro Val Gly Ser Lys Leu Thr Leu Gly Leu Leu
355 360 365
cgc gac ggt aag cag gtt aac gtg aac ctg gaa ctg cag cag agc agc 1152
Arg Asp Gly Lys Gln Val Asn Val Asn Leu Glu Leu Gln Gln Ser Ser
370 375 380
cag aat cag gtt gat tcc agc tcc atc ttc aac ggc att gaa ggc gct 1200
Gln Asn Gln Val Asp Ser Ser Ser Ile Phe Asn Gly Ile Glu Gly Ala
385 390 395 400
gag atg agc aac aaa ggc aaa gat cag ggc gtg gta gtg aac aac gtg 1248
Glu Met Ser Asn Lys Gly Lys Asp Gln Gly Val Val Val Asn Asn Val
405 410 415
aaa acg ggc act ccg gct gcg cag atc ggc ctg aag aaa ggt gat gtg 1296
Lys Thr Gly Thr Pro Ala Ala Gln Ile Gly Leu Lys Lys Gly Asp Val
420 425 430
att att ggc gcg aac cag cag gca gtg aaa aac atc gct gaa ctg cgt 1344
Ile Ile Gly Ala Asn Gln Gln Ala Val Lys Asn Ile Ala Glu Leu Arg
435 440 445
aaa gtt ctc gac agc aaa ccg tct gtg ctg gca ctc aac att cag cgc 1392
Lys Val Leu Asp Ser Lys Pro Ser Val Leu Ala Leu Asn Ile Gln Arg
450 455 460
- 60 031449 ggc gac agc acc atc tac ctg tta atg cag taa Gly Asp Ser Thr Ile Tyr Leu Leu Met Gln
465470
1425 <210>30 <211>474 <212> БЕЛОК <213> Escherichia coli <400> 30
Met 1 Lys Lys Thr Thr 5 Leu Ala Leu Ser Ala 10 Leu Ala Leu Ser Leu 15 Gly
Leu Ala Leu Ser Pro Leu Ser Ala Thr Ala Ala Glu Thr Ser Ser Ala
20 25 30
Thr Thr Ala Gln Gln Met Pro Ser Leu Ala Pro Met Leu Glu Lys Val
35 40 45
Met Pro Ser Val Val Ser Ile Asn Val Glu Gly Ser Thr Thr Val Asn
50 55 60
Thr Pro Arg Met Pro Arg Asn Phe Gln Gln Phe Phe Gly Asp Asp Ser
65 70 75 80
Pro Phe Cys Gln Glu Gly Ser Pro Phe Gln Ser Ser Pro Phe Cys Gln
85 90 95
Gly Gly Gln Gly Gly Asn Gly Gly Gly Gln Gln Gln Lys Phe Met Ala
100 105 110
Leu Gly Ser Gly Val Ile Ile Asp Ala Asp Lys Gly Tyr Val Val Thr
115 120 125
Asn Asn His Val Val Asp Asn Ala Thr Val Ile Lys Val Gln Leu Ser
130 135 140
Asp Gly Arg Lys Phe Asp Ala Lys Met Val Gly Lys Asp Pro Arg Ser
145 150 155 160
Asp Ile Ala Leu Ile Gln Ile Gln Asn Pro Lys Asn Leu Thr Ala Ile
165 170 175
Lys Met Ala Asp Ser Asp Ala Leu Arg Val Gly Asp Tyr Thr Val Ala
180 185 190
Ile Gly Asn Pro Phe Gly Leu Gly Glu Thr Val Thr Ser Gly Ile Val
- 61 031449
195
200
205
Ser Ala 210 Leu Gly Arg Ser Gly 215 Leu Asn Ala Glu Asn 220 Tyr Glu Asn Phe
Ile Gln Thr Asp Ala Ala Ile Asn Arg Gly Asn Ser Gly Gly Ala Leu
225 230 235 240
Val Asn Leu Asn Gly Glu Leu Ile Gly Ile Asn Thr Ala Ile Leu Ala
245 250 255
Pro Asp Gly Gly Asn Ile Gly Ile Gly Phe Ala Ile Pro Ser Asn Met
260 265 270
Val Lys Asn Leu Thr Ser Gln Met Val Glu Tyr Gly Gln Val Lys Arg
275 280 285
Gly Glu Leu Gly Ile Met Gly Thr Glu Leu Asn Ser Glu Leu Ala Lys
290 295 300
Ala Met Lys Val Asp Ala Gln Arg Gly Ala Phe Val Ser Gln Val Leu
305 310 315 320
Pro Asn Ser Ser Ala Ala Lys Ala Gly Ile Lys Ala Gly Asp Val Ile
325 330 335
Thr Ser Leu Asn Gly Lys Pro Ile Ser Ser Phe Ala Ala Leu Arg Ala
340 345 350
Gln Val Gly Thr Met Pro Val Gly Ser Lys Leu Thr Leu Gly Leu Leu
355 360 365
Arg Asp Gly Lys Gln Val Asn Val Asn Leu Glu Leu Gln Gln Ser Ser
370 375 380
Gln Asn Gln Val Asp Ser Ser Ser Ile Phe Asn Gly Ile Glu Gly Ala
385 390 395 400
Glu Met Ser Asn Lys Gly Lys Asp Gln Gly Val Val Val Asn Asn Val
405 410 415
Lys Thr Gly Thr Pro Ala Ala Gln Ile Gly Leu Lys Lys Gly Asp Val
420 425 430
Ile Ile Gly Ala Asn Gln Gln Ala Val Lys Asn Ile Ala Glu Leu Arg
435 440 445
- 62 031449
Lys Val
450
Leu Asp Ser Lys Pro Ser Val Leu Ala Leu Asn Ile Gln Arg 455460
Gly Asp Ser Thr Ile Tyr Leu Leu Met Gln
465470 <210>31 <211>1425 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> мутантный ген DegP, содержащий мутацию, приводящую к замене S210A, и рестрикционный маркер AseI <220>
<221> CDS <222> (1)..(1425) <400> 31
atg Met 1 aaa Lys aaa Lys acc Thr aca Thr 5 tta Leu gca Ala ctg Leu agt Ser gca Ala 10 ctg Leu gct Ala ctg Leu agt Ser tta Leu 15 ggt Gly 48
ttg gcg tta tct ccg ctc tct gca acg gcg gct gag act tct tca gca 96
Leu Ala Leu Ser Pro Leu Ser Ala Thr Ala Ala Glu Thr Ser Ser Ala
20 25 30
acg aca gcc cag cag atg cca agc ctt gca ccg atg ctc gaa aag gtg 144
Thr Thr Ala Gln Gln Met Pro Ser Leu Ala Pro Met Leu Glu Lys Val
35 40 45
atg cct tca gtg gtc agc att aac gta gaa ggt agc aca acc gtt aat 192
Met Pro Ser Val Val Ser Ile Asn Val Glu Gly Ser Thr Thr Val Asn
50 55 60
acg ccg cgt atg ccg cgt aat ttc cag cag ttc ttc ggt gat gat tct 240
Thr Pro Arg Met Pro Arg Asn Phe Gln Gln Phe Phe Gly Asp Asp Ser
65 70 75 80
ccg ttc tgc cag gaa ggt tct ccg ttc cag agc tct ccg ttc tgc cag 288
Pro Phe Cys Gln Glu Gly Ser Pro Phe Gln Ser Ser Pro Phe Cys Gln
85 90 95
ggt ggc cag ggc ggt aat ggt ggc ggc cag caa cag aaa ttc atg gcg 336
Gly Gly Gln Gly Gly Asn Gly Gly Gly Gln Gln Gln Lys Phe Met Ala
100 105 110
ctg ggt tcc ggc gtc atc att gat gcc gat aaa ggc tat gtc gtc acc 384
Leu Gly Ser Gly Val Ile Ile Asp Ala Asp Lys Gly Tyr Val Val Thr
115 120 125
aac aac cac gtt gtt gat aac gcg acg gtc att aaa gtt caa ctg agc 432
Asn Asn His Val Val Asp Asn Ala Thr Val Ile Lys Val Gln Leu Ser
130 135 140
gat ggc cgt aag ttc gac gcg aag atg gtt ggc aaa gat ccg cgc tct 480
Asp Gly Arg Lys Phe Asp Ala Lys Met Val Gly Lys Asp Pro Arg Ser
145 150 155 160
- 63 031449
gat Asp atc Ile gcg Ala ctg Leu atc Ile 165 caa Gln atc Ile cag Gln aac Asn ccg Pro 170 aaa Lys aac Asn ctg Leu acc Thr gca Ala 175 att Ile 528
aag atg gcg gat tct gat gca ctg cgc gtg ggt gat tac acc gta gcg 576
Lys Met Ala Asp Ser Asp Ala Leu Arg Val Gly Asp Tyr Thr Val Ala
180 185 190
att ggt aac ccg ttt ggt ctg ggc gag acg gta act tcc ggg att gtc 624
Ile Gly Asn Pro Phe Gly Leu Gly Glu Thr Val Thr Ser Gly Ile Val
195 200 205
tct gcg ctg ggg cgt agc ggc ctg aat gcc gaa aac tac gaa aac ttc 672
Ser Ala Leu Gly Arg Ser Gly Leu Asn Ala Glu Asn Tyr Glu Asn Phe
210 215 220
atc cag acc gat gca gcg att aat cgt ggt aac gcc ggt ggt gcg ctg 720
Ile Gln Thr Asp Ala Ala Ile Asn Arg Gly Asn Ala Gly Gly Ala Leu
225 230 235 240
gtt aac ctg aac ggc gaa ctg atc ggt atc aac acc gcg atc ctc gca 768
Val Asn Leu Asn Gly Glu Leu Ile Gly Ile Asn Thr Ala Ile Leu Ala
245 250 255
ccg gac ggc ggc aac atc ggt atc ggt ttt gct atc ccg agt aac atg 816
Pro Asp Gly Gly Asn Ile Gly Ile Gly Phe Ala Ile Pro Ser Asn Met
260 265 270
gtg aaa aac ctg acc tcg cag atg gtg gaa tac ggc cag gtg aaa cgc 864
Val Lys Asn Leu Thr Ser Gln Met Val Glu Tyr Gly Gln Val Lys Arg
275 280 285
ggt gag ctg ggt att atg ggg act gag ctg aac tcc gaa ctg gcg aaa 912
Gly Glu Leu Gly Ile Met Gly Thr Glu Leu Asn Ser Glu Leu Ala Lys
290 295 300
gcg atg aaa gtt gac gcc cag cgc ggt gct ttc gta agc cag gtt ctg 960
Ala Met Lys Val Asp Ala Gln Arg Gly Ala Phe Val Ser Gln Val Leu
305 310 315 320
cct aat tcc tcc gct gca aaa gcg ggc att aaa gcg ggt gat gtg atc 1008
Pro Asn Ser Ser Ala Ala Lys Ala Gly Ile Lys Ala Gly Asp Val Ile
325 330 335
acc tca ctg aac ggt aag ccg atc agc agc ttt gcc gca ctg cgt gct 1056
Thr Ser Leu Asn Gly Lys Pro Ile Ser Ser Phe Ala Ala Leu Arg Ala
340 345 350
cag gtg ggt act atg ccg gta ggc agc aaa ctg acc ctg ggc tta ctg 1104
Gln Val Gly Thr Met Pro Val Gly Ser Lys Leu Thr Leu Gly Leu Leu
355 360 365
cgc gac ggt aag cag gtt aac gtg aac ctg gaa ctg cag cag agc agc 1152
Arg Asp Gly Lys Gln Val Asn Val Asn Leu Glu Leu Gln Gln Ser Ser
370 375 380
cag aat cag gtt gat tcc agc tcc atc ttc aac ggc att gaa ggc gct 1200
Gln Asn Gln Val Asp Ser Ser Ser Ile Phe Asn Gly Ile Glu Gly Ala
385 390 395 400
gag atg agc aac aaa ggc aaa gat cag ggc gtg gta gtg aac aac gtg 1248
Glu Met Ser Asn Lys Gly Lys Asp Gln Gly Val Val Val Asn Asn Val
- 64 031449
405 410 415
aaa Lys acg Thr ggc Gly act Thr 420 ccg Pro gct Ala gcg Ala cag Gln atc Ile 425 ggc Gly ctg Leu aag Lys aaa Lys ggt Gly 430 gat Asp gtg Val 1296
att att ggc gcg aac cag cag gca gtg aaa aac atc gct gaa ctg cgt 1344
Ile Ile Gly Ala Asn Gln Gln Ala Val Lys Asn Ile Ala Glu Leu Arg
435 440 445
aaa gtt ctc gac agc aaa ccg tct gtg ctg gca ctc aac att cag cgc 1392
Lys Val Leu Asp Ser Lys Pro Ser Val Leu Ala Leu Asn Ile Gln Arg
450 455 460
ggc gac agc acc atc tac ctg tta atg cag taa 1425
Gly Asp Ser Thr Ile Tyr Leu Leu Met Gln
465 470
<210> 32 <211> 474 <212> БЕЛОК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Синтетическая конструкция <400> 32
Met 1 Lys Lys Thr Thr 5 Leu Ala Leu Ser Ala 10 Leu Ala Leu Ser Leu 15 Gly
Leu Ala Leu Ser Pro Leu Ser Ala Thr Ala Ala Glu Thr Ser Ser Ala
20 25 30
Thr Thr Ala Gln Gln Met Pro Ser Leu Ala Pro Met Leu Glu Lys Val
35 40 45
Met Pro Ser Val Val Ser Ile Asn Val Glu Gly Ser Thr Thr Val Asn
50 55 60
Thr Pro Arg Met Pro Arg Asn Phe Gln Gln Phe Phe Gly Asp Asp Ser
65 70 75 80
Pro Phe Cys Gln Glu Gly Ser Pro Phe Gln Ser Ser Pro Phe Cys Gln
85 90 95
Gly Gly Gln Gly Gly Asn Gly Gly Gly Gln Gln Gln Lys Phe Met Ala
100 105 110
Leu Gly Ser Gly Val Ile Ile Asp Ala Asp Lys Gly Tyr Val Val Thr
115 120 125
Asn Asn His Val Val Asp Asn Ala Thr Val Ile Lys Val Gln Leu Ser
- 65 031449
130
135
140
Asp 145 Gly Arg Lys Phe Asp 150 Ala Lys Met Val Gly 155 Lys Asp Pro Arg Ser 160
Asp Ile Ala Leu Ile Gln Ile Gln Asn Pro Lys Asn Leu Thr Ala Ile
165 170 175
Lys Met Ala Asp Ser Asp Ala Leu Arg Val Gly Asp Tyr Thr Val Ala
180 185 190
Ile Gly Asn Pro Phe Gly Leu Gly Glu Thr Val Thr Ser Gly Ile Val
195 200 205
Ser Ala Leu Gly Arg Ser Gly Leu Asn Ala Glu Asn Tyr Glu Asn Phe
210 215 220
Ile Gln Thr Asp Ala Ala Ile Asn Arg Gly Asn Ala Gly Gly Ala Leu
225 230 235 240
Val Asn Leu Asn Gly Glu Leu Ile Gly Ile Asn Thr Ala Ile Leu Ala
245 250 255
Pro Asp Gly Gly Asn Ile Gly Ile Gly Phe Ala Ile Pro Ser Asn Met
260 265 270
Val Lys Asn Leu Thr Ser Gln Met Val Glu Tyr Gly Gln Val Lys Arg
275 280 285
Gly Glu Leu Gly Ile Met Gly Thr Glu Leu Asn Ser Glu Leu Ala Lys
290 295 300
Ala Met Lys Val Asp Ala Gln Arg Gly Ala Phe Val Ser Gln Val Leu
305 310 315 320
Pro Asn Ser Ser Ala Ala Lys Ala Gly Ile Lys Ala Gly Asp Val Ile
325 330 335
Thr Ser Leu Asn Gly Lys Pro Ile Ser Ser Phe Ala Ala Leu Arg Ala
340 345 350
Gln Val Gly Thr Met Pro Val Gly Ser Lys Leu Thr Leu Gly Leu Leu
355 360 365
Arg Asp Gly Lys Gln Val Asn Val Asn Leu Glu Leu Gln Gln Ser Ser
370 375 380
- 66 031449
Gln Asn 385 Gln Val Asp Ser 390 Ser Ser Ile Phe Asn Gly 395 Ile Glu Gly Ala 400
Glu Met Ser Asn Lys Gly Lys Asp Gln Gly Val Val Val Asn Asn Val
405 410 415
Lys Thr Gly Thr Pro Ala Ala Gln Ile Gly Leu Lys Lys Gly Asp Val
420 425 430
Ile Ile Gly Ala Asn Gln Gln Ala Val Lys Asn Ile Ala Glu Leu Arg
435 440 445
Lys Val Leu Asp Ser Lys Pro Ser Val Leu Ala Leu Asn Ile Gln Arg
450 455 460
Gly Asp Ser Thr Ile Tyr Leu Leu Met Gln
465 470
<210> 33
<211> 67
<212> ДНК
<213> Искусственная последовательность
<220>
<223> IGS-кассета-1
<400> 33 gagctcacca gtaacaaaaa gttttaatag aggagagtgt taatgaagaa gactgctata gcaattg
<210> 34
<211> 69
<212> ДНК
<213> Искусственная последовательность
<220>
<223> IGS-кассета-2
<400> 34
gagctcacca gtaacaaaaa gttttaatag aggggagtgt taaaatgaag aagactgcta 60
tagcaattg 69
<210> 35
<211> 81
<212> ДНК
<213> Искусственная последовательность
<220>
<223> IGS-кассета-3
<400> 35
gagctcacca gtaacaaaaa gctttaatag aggagagtgt tgaggaggaa aaaaaaatga 60
- 67 031449 agaaaactgc tatagcaatt g
<210> 36
<211> 81
<212> ДНК
<213> Искусственная последовательность
<220>
<223> IGS-кассета-4
<400> 36
gagctcacca gtaacaaaaa gttttaatag aggagagtgt tgacgaggat tatataatga 60
agaaaactgc tatagcaatt g <210> 37 <211> 954 <212> ДНК <213> Escherichia coli <220>
<221> CDS <222> (1)..(954) <400> 37
atg Met 1 cgg Arg gcg Ala aaa Lys ctt Leu 5 ctg Leu gga Gly ata Ile gtc Val ctg Leu 10 aca Thr acc Thr cct Pro att Ile gcg Ala 15 atc Ile 48
agc tct ttt gct tct acc gag act tta tcg ttt act cct gac aac ata 96
Ser Ser Phe Ala Ser Thr Glu Thr Leu Ser Phe Thr Pro Asp Asn Ile
20 25 30
aat gcg gac att agt ctt gga act ctg agc gga aaa aca aaa gag cgt 144
Asn Ala Asp Ile Ser Leu Gly Thr Leu Ser Gly Lys Thr Lys Glu Arg
35 40 45
gtt tat cta gcc gaa gaa gga ggc cga aaa gtc agt caa ctc gac tgg 192
Val Tyr Leu Ala Glu Glu Gly Gly Arg Lys Val Ser Gln Leu Asp Trp
50 55 60
aaa ttc aat aac gct gca att att aaa ggt gca att aat tgg gat ttg 240
Lys Phe Asn Asn Ala Ala Ile Ile Lys Gly Ala Ile Asn Trp Asp Leu
65 70 75 80
atg ccc cag ata tct atc ggg gct gct ggc tgg aca act ctc ggc agc 288
Met Pro Gln Ile Ser Ile Gly Ala Ala Gly Trp Thr Thr Leu Gly Ser
85 90 95
cga ggt ggc aat atg gtc gat cag gac tgg atg gat tcc agt aac ccc 336
Arg Gly Gly Asn Met Val Asp Gln Asp Trp Met Asp Ser Ser Asn Pro
100 105 110
gga acc tgg acg gat gaa agt aga cac cct gat aca caa ctc aat tat 384
Gly Thr Trp Thr Asp Glu Ser Arg His Pro Asp Thr Gln Leu Asn Tyr
115 120 125
gcc aac gaa ttt gat ctg aat atc aaa ggc tgg ctc ctc aac gaa ccc 432
Ala Asn Glu Phe Asp Leu Asn Ile Lys Gly Trp Leu Leu Asn Glu Pro
- 68 031449
130
135
140
aat Asn 145 tac Tyr cgc Arg ctg Leu gga Gly ctc Leu 150 atg Met gcc Ala gga Gly tat Tyr cag Gln 155 gaa Glu agc Ser cgt Arg tat Tyr agc Ser 160 480
ttt aca gcc aga ggt ggt tcc tat atc tac agt tct gag gag gga ttc 528
Phe Thr Ala Arg Gly Gly Ser Tyr Ile Tyr Ser Ser Glu Glu Gly Phe
165 170 175
aga gat gat atc ggc tcc ttc ccg aat gga gaa aga gca atc ggc tac 576
Arg Asp Asp Ile Gly Ser Phe Pro Asn Gly Glu Arg Ala Ile Gly Tyr
180 185 190
aaa caa cgt ttt aaa atg ccc tac att ggc ttg act gga agt tat cgt 624
Lys Gln Arg Phe Lys Met Pro Tyr Ile Gly Leu Thr Gly Ser Tyr Arg
195 200 205
tat gaa gat ttt gaa ctc ggt ggc aca ttt aaa tac agc ggc tgg gtg 672
Tyr Glu Asp Phe Glu Leu Gly Gly Thr Phe Lys Tyr Ser Gly Trp Val
210 215 220
gaa tca tct gat aac gat gaa cac tat gac ccg gga aaa aga atc act 720
Glu Ser Ser Asp Asn Asp Glu His Tyr Asp Pro Gly Lys Arg Ile Thr
225 230 235 240
tat cgc agt aag gtc aaa gac caa aat tac tat tct gtt gca gtc aat 768
Tyr Arg Ser Lys Val Lys Asp Gln Asn Tyr Tyr Ser Val Ala Val Asn
245 250 255
gca ggt tat tac gtc aca cct aac gca aaa gtt tat gtt gaa ggc gca 816
Ala Gly Tyr Tyr Val Thr Pro Asn Ala Lys Val Tyr Val Glu Gly Ala
260 265 270
tgg aat cgg gtt acg aat aaa aaa ggt aat act tca ctt tat gat cac 864
Trp Asn Arg Val Thr Asn Lys Lys Gly Asn Thr Ser Leu Tyr Asp His
275 280 285
aat aat aac act tca gac tac agc aaa aat gga gca ggt ata gaa aac 912
Asn Asn Asn Thr Ser Asp Tyr Ser Lys Asn Gly Ala Gly Ile Glu Asn
290 295 300
tat aac ttc atc act act gct ggt ctt aag tac aca ttt taa 954
Tyr Asn Phe Ile Thr Thr Ala Gly Leu Lys Tyr Thr Phe
305 310 315
<210> <211> <212> <213> 38 317 БЕЛОК Escherichia coli
<400> 38
Met 1 Arg Ala Lys Leu 5 Leu Gly Ile Val Leu 10 Thr Thr Pro Ile Ala 15 Ile
Ser Ser Phe Ala Ser Thr Glu Thr Leu Ser Phe Thr Pro Asp Asn Ile
20 25 30
Asn Ala Asp Ile Ser Leu Gly Thr Leu Ser Gly Lys Thr Lys Glu Arg
- 69 031449
Val Tyr 50 Leu Ala Glu Glu Gly 55 Gly Arg Lys Val Ser 60 Gln Leu Asp Trp
Lys Phe Asn Asn Ala Ala Ile Ile Lys Gly Ala Ile Asn Trp Asp Leu
65 70 75 80
Met Pro Gln Ile Ser Ile Gly Ala Ala Gly Trp Thr Thr Leu Gly Ser
85 90 95
Arg Gly Gly Asn Met Val Asp Gln Asp Trp Met Asp Ser Ser Asn Pro
100 105 110
Gly Thr Trp Thr Asp Glu Ser Arg His Pro Asp Thr Gln Leu Asn Tyr
115 120 125
Ala Asn Glu Phe Asp Leu Asn Ile Lys Gly Trp Leu Leu Asn Glu Pro
130 135 140
Asn Tyr Arg Leu Gly Leu Met Ala Gly Tyr Gln Glu Ser Arg Tyr Ser
145 150 155 160
Phe Thr Ala Arg Gly Gly Ser Tyr Ile Tyr Ser Ser Glu Glu Gly Phe
165 170 175
Arg Asp Asp Ile Gly Ser Phe Pro Asn Gly Glu Arg Ala Ile Gly Tyr
180 185 190
Lys Gln Arg Phe Lys Met Pro Tyr Ile Gly Leu Thr Gly Ser Tyr Arg
195 200 205
Tyr Glu Asp Phe Glu Leu Gly Gly Thr Phe Lys Tyr Ser Gly Trp Val
210 215 220
Glu Ser Ser Asp Asn Asp Glu His Tyr Asp Pro Gly Lys Arg Ile Thr
225 230 235 240
Tyr Arg Ser Lys Val Lys Asp Gln Asn Tyr Tyr Ser Val Ala Val Asn
245 250 255
Ala Gly Tyr Tyr Val Thr Pro Asn Ala Lys Val Tyr Val Glu Gly Ala
260 265 270
Trp Asn Arg Val Thr Asn Lys Lys Gly Asn Thr Ser Leu Tyr Asp His
275 280 285
- 70 031449
Asn Asn Asn 290 Thr Ser Asp Tyr 295 Ser Lys Asn Gly Ala 300 Gly Ile Glu Asn
Tyr Asn Phe Ile Thr Thr Ala Gly Leu Lys Tyr Thr Phe
305 310 315 <210> 39 <211> 954 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> подвергнутый нокауту мутантный ген Ompl <220>
<221> CDS <222> (1)..(954) <400> 39
att Ile 1 cgg Arg gcg Ala aaa Lys ctt Leu 5 ctg Leu gga Gly ata Ile gtc Val ctg Leu 10 aca Thr acc Thr cct Pro att Ile gcg Ala 15 atc Ile 48
agc tct ttt gct tct acc gag act tta tcg ttt act cct gac aac ata 96
Ser Ser Phe Ala Ser Thr Glu Thr Leu Ser Phe Thr Pro Asp Asn Ile
20 25 30
aat gcg gac att agt ctt gga act ctg agc gga aaa aca aaa gag cgt 144
Asn Ala Asp Ile Ser Leu Gly Thr Leu Ser Gly Lys Thr Lys Glu Arg
35 40 45
gtt tat cta gcc gaa gaa gga ggc cga aaa gtc agt caa ctc gac tgg 192
Val Tyr Leu Ala Glu Glu Gly Gly Arg Lys Val Ser Gln Leu Asp Trp
50 55 60
aaa ttc aat aac gct gca att att aaa ggt gca att aat tgg gat ttg 240
Lys Phe Asn Asn Ala Ala Ile Ile Lys Gly Ala Ile Asn Trp Asp Leu
65 70 75 80
atg ccc cag ata tct atc ggg gct gct ggc tgg aca act ctc ggc agc 288
Met Pro Gln Ile Ser Ile Gly Ala Ala Gly Trp Thr Thr Leu Gly Ser
85 90 95
cga ggt ggc aat atg gtc gat cag gac tgg atg gat tcc agt aac ccc 336
Arg Gly Gly Asn Met Val Asp Gln Asp Trp Met Asp Ser Ser Asn Pro
100 105 110
gga acc tgg acg gat gaa agt aga cac cct gat aca caa ctc aat tat 384
Gly Thr Trp Thr Asp Glu Ser Arg His Pro Asp Thr Gln Leu Asn Tyr
115 120 125
gcc aac gaa ttt gat ctg aat atc aaa ggc tgg ctc ctc aac gaa ccc 432
Ala Asn Glu Phe Asp Leu Asn Ile Lys Gly Trp Leu Leu Asn Glu Pro
130 135 140
aat tac cgc ctg gga ctc atg gcc gga tat cag gaa agc cgt tat agc 480
Asn Tyr Arg Leu Gly Leu Met Ala Gly Tyr Gln Glu Ser Arg Tyr Ser
145 150 155 160
- 71 031449
ttt Phe aca Thr gcc Ala aga Arg ggt Gly 165 ggt Gly tcc Ser tat Tyr atc Ile tac Tyr 170 agt Ser tct Ser gag Glu gag Glu gga Gly 175 ttc Phe 528
aga gat gat atc ggc tcc ttc ccg aat gga gaa aga gca atc ggc tac 576
Arg Asp Asp Ile Gly Ser Phe Pro Asn Gly Glu Arg Ala Ile Gly Tyr
180 185 190
aaa caa cgt ttt aaa atg ccc tac att ggc ttg act gga agt tat cgt 624
Lys Gln Arg Phe Lys Met Pro Tyr Ile Gly Leu Thr Gly Ser Tyr Arg
195 200 205
tat gaa gat ttt gaa ctc ggt ggc aca ttt aaa tac agc ggc tgg gtg 672
Tyr Glu Asp Phe Glu Leu Gly Gly Thr Phe Lys Tyr Ser Gly Trp Val
210 215 220
gaa tca tct gat aac gat gaa cac tat gac ccg gga aaa aga atc act 720
Glu Ser Ser Asp Asn Asp Glu His Tyr Asp Pro Gly Lys Arg Ile Thr
225 230 235 240
tat cgc agt aag gtc aaa gac caa aat tac tat tct gtt gca gtc aat 768
Tyr Arg Ser Lys Val Lys Asp Gln Asn Tyr Tyr Ser Val Ala Val Asn
245 250 255
gca ggt tat tac gtc aca cct aac gca aaa gtt tat gtt gaa ggc gca 816
Ala Gly Tyr Tyr Val Thr Pro Asn Ala Lys Val Tyr Val Glu Gly Ala
260 265 270
tgg aat cgg gtt acg aat aaa aaa ggt aat act tca ctt tat gat cac 864
Trp Asn Arg Val Thr Asn Lys Lys Gly Asn Thr Ser Leu Tyr Asp His
275 280 285
aat aat aac act tca gac tac agc aaa aat gga gca ggt ata gaa aac 912
Asn Asn Asn Thr Ser Asp Tyr Ser Lys Asn Gly Ala Gly Ile Glu Asn
290 295 300
tat aac ttc atc act act gct ggt ctt aag tac aca ttt taa 954
Tyr Asn Phe Ile Thr Thr Ala Gly Leu Lys Tyr Thr Phe
305 310 315
<210> 40
<211> 317
<212> БЕЛОК
<213> Искусственная последовательность
<220>
<223> Синтетическая конструкция
<400> 40
Ile Arg 1 Ala Lys Leu 5 Leu Gly Ile Val Leu 10 Thr Thr Pro Ile Ala 15 Ile
Ser Ser Phe Ala Ser Thr Glu Thr Leu Ser Phe Thr Pro Asp Asn Ile
20 25 30
Asn Ala Asp Ile Ser Leu Gly Thr Leu Ser Gly Lys Thr Lys Glu Arg
- 72 031449
Val Tyr 50 Leu Ala Glu Glu Gly 55 Gly Arg Lys Val Ser 60 Gln Leu Asp Trp
Lys Phe Asn Asn Ala Ala Ile Ile Lys Gly Ala Ile Asn Trp Asp Leu
65 70 75 80
Met Pro Gln Ile Ser Ile Gly Ala Ala Gly Trp Thr Thr Leu Gly Ser
85 90 95
Arg Gly Gly Asn Met Val Asp Gln Asp Trp Met Asp Ser Ser Asn Pro
100 105 110
Gly Thr Trp Thr Asp Glu Ser Arg His Pro Asp Thr Gln Leu Asn Tyr
115 120 125
Ala Asn Glu Phe Asp Leu Asn Ile Lys Gly Trp Leu Leu Asn Glu Pro
130 135 140
Asn Tyr Arg Leu Gly Leu Met Ala Gly Tyr Gln Glu Ser Arg Tyr Ser
145 150 155 160
Phe Thr Ala Arg Gly Gly Ser Tyr Ile Tyr Ser Ser Glu Glu Gly Phe
165 170 175
Arg Asp Asp Ile Gly Ser Phe Pro Asn Gly Glu Arg Ala Ile Gly Tyr
180 185 190
Lys Gln Arg Phe Lys Met Pro Tyr Ile Gly Leu Thr Gly Ser Tyr Arg
195 200 205
Tyr Glu Asp Phe Glu Leu Gly Gly Thr Phe Lys Tyr Ser Gly Trp Val
210 215 220
Glu Ser Ser Asp Asn Asp Glu His Tyr Asp Pro Gly Lys Arg Ile Thr
225 230 235 240
Tyr Arg Ser Lys Val Lys Asp Gln Asn Tyr Tyr Ser Val Ala Val Asn
245 250 255
Ala Gly Tyr Tyr Val Thr Pro Asn Ala Lys Val Tyr Val Glu Gly Ala
260 265 270
Trp Asn Arg Val Thr Asn Lys Lys Gly Asn Thr Ser Leu Tyr Asp His
275 280 285
- 73 031449
Asn Asn Asn Thr Ser Asp Tyr Ser
290 295
Lys
Asn Gly Ala Gly Ile
300
Glu Asn
Tyr Asn Phe Ile Thr Thr Ala Gly Leu Lys
305310
Tyr Thr Phe
315 <210>41 <211>954 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> мутантный ген OmpT, кодирующий белок с точечными мутациями
D210A и H212A
<220>
<221> CDS
<222> (1)..(954
<400> 41
atg Met 1 cgg Arg gcg Ala aaa Lys ctt Leu 5 ctg Leu gga Gly ata Ile gtc Val ctg Leu 10 aca Thr acc Thr cct Pro att Ile gcg Ala 15 atc Ile 48
agc tct ttt gct tct acc gag act tta tcg ttt act cct gac aac ata 96
Ser Ser Phe Ala Ser Thr Glu Thr Leu Ser Phe Thr Pro Asp Asn Ile
20 25 30
aat gcg gac att agt ctt gga act ctg agc gga aaa aca aaa gag cgt 144
Asn Ala Asp Ile Ser Leu Gly Thr Leu Ser Gly Lys Thr Lys Glu Arg
35 40 45
gtt tat cta gcc gaa gaa gga ggc cga aaa gtc agt caa ctc gac tgg 192
Val Tyr Leu Ala Glu Glu Gly Gly Arg Lys Val Ser Gln Leu Asp Trp
50 55 60
aaa ttc aat aac gct gca att att aaa ggt gca att aat tgg gat ttg 240
Lys Phe Asn Asn Ala Ala Ile Ile Lys Gly Ala Ile Asn Trp Asp Leu
65 70 75 80
atg ccc cag ata tct atc ggg gct gct ggc tgg aca act ctc ggc agc 288
Met Pro Gln Ile Ser Ile Gly Ala Ala Gly Trp Thr Thr Leu Gly Ser
85 90 95
cga ggt ggc aat atg gtc gat cag gac tgg atg gat tcc agt aac ccc 336
Arg Gly Gly Asn Met Val Asp Gln Asp Trp Met Asp Ser Ser Asn Pro
100 105 110
gga acc tgg acg gat gaa agt aga cac cct gat aca caa ctc aat tat 384
Gly Thr Trp Thr Asp Glu Ser Arg His Pro Asp Thr Gln Leu Asn Tyr
115 120 125
gcc aac gaa ttt gat ctg aat atc aaa ggc tgg ctc ctc aac gaa ccc 432
Ala Asn Glu Phe Asp Leu Asn Ile Lys Gly Trp Leu Leu Asn Glu Pro
130 135 140
- 74 031449
aat Asn 145 tac Tyr cgc Arg ctg Leu gga Gly ctc Leu 150 atg Met gcc Ala gga Gly tat Tyr cag Gln 155 gaa Glu agc Ser cgt Arg tat Tyr agc Ser 160 480
ttt aca gcc aga ggt ggt tcc tat atc tac agt tct gag gag gga ttc 528
Phe Thr Ala Arg Gly Gly Ser Tyr Ile Tyr Ser Ser Glu Glu Gly Phe
165 170 175
aga gat gat atc ggc tcc ttc ccg aat gga gaa aga gca atc ggc tac 576
Arg Asp Asp Ile Gly Ser Phe Pro Asn Gly Glu Arg Ala Ile Gly Tyr
180 185 190
aaa caa cgt ttt aaa atg ccc tac att ggc ttg act gga agt tat cgt 624
Lys Gln Arg Phe Lys Met Pro Tyr Ile Gly Leu Thr Gly Ser Tyr Arg
195 200 205
tat gaa gat ttt gaa ctc ggt ggc aca ttt aaa tac agc ggc tgg gtg 672
Tyr Glu Asp Phe Glu Leu Gly Gly Thr Phe Lys Tyr Ser Gly Trp Val
210 215 220
gaa tca tct gat aac gct gaa gct tat gac ccg gga aaa aga atc act 720
Glu Ser Ser Asp Asn Ala Glu Ala Tyr Asp Pro Gly Lys Arg Ile Thr
225 230 235 240
tat cgc agt aag gtc aaa gac caa aat tac tat tct gtt gca gtc aat 768
Tyr Arg Ser Lys Val Lys Asp Gln Asn Tyr Tyr Ser Val Ala Val Asn
245 250 255
gca ggt tat tac gtc aca cct aac gca aaa gtt tat gtt gaa ggc gca 816
Ala Gly Tyr Tyr Val Thr Pro Asn Ala Lys Val Tyr Val Glu Gly Ala
260 265 270
tgg aat cgg gtt acg aat aaa aaa ggt aat act tca ctt tat gat cac 864
Trp Asn Arg Val Thr Asn Lys Lys Gly Asn Thr Ser Leu Tyr Asp His
275 280 285
aat aat aac act tca gac tac agc aaa aat gga gca ggt ata gaa aac 912
Asn Asn Asn Thr Ser Asp Tyr Ser Lys Asn Gly Ala Gly Ile Glu Asn
290 295 300
tat aac ttc atc act act gct ggt ctt aag tac aca ttt taa 954
Tyr Asn Phe Ile Thr Thr Ala Gly Leu Lys Tyr Thr Phe
305 310 315
<210> 42 <211> 317 <212> БЕЛОК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Синтетическая конструкция <400> 42
Met Arg Ala Lys
Leu Leu Gly Ile Val
Leu Thr Thr Pro
Ile Ala Ile
Ser Ser Phe Ala Ser Thr Glu Thr Leu Ser Phe
25
Thr Pro Asp Asn Ile
- 75 031449
Asn Ala Asp Ile Ser Leu Gly Thr Leu 40 Ser Gly Lys Thr 45 Lys Glu Arg
35
Val Tyr Leu Ala Glu Glu Gly Gly Arg Lys Val Ser Gln Leu Asp Trp
50 55 60
Lys Phe Asn Asn Ala Ala Ile Ile Lys Gly Ala Ile Asn Trp Asp Leu
65 70 75 80
Met Pro Gln Ile Ser Ile Gly Ala Ala Gly Trp Thr Thr Leu Gly Ser
85 90 95
Arg Gly Gly Asn Met Val Asp Gln Asp Trp Met Asp Ser Ser Asn Pro
100 105 110
Gly Thr Trp Thr Asp Glu Ser Arg His Pro Asp Thr Gln Leu Asn Tyr
115 120 125
Ala Asn Glu Phe Asp Leu Asn Ile Lys Gly Trp Leu Leu Asn Glu Pro
130 135 140
Asn Tyr Arg Leu Gly Leu Met Ala Gly Tyr Gln Glu Ser Arg Tyr Ser
145 150 155 160
Phe Thr Ala Arg Gly Gly Ser Tyr Ile Tyr Ser Ser Glu Glu Gly Phe
165 170 175
Arg Asp Asp Ile Gly Ser Phe Pro Asn Gly Glu Arg Ala Ile Gly Tyr
180 185 190
Lys Gln Arg Phe Lys Met Pro Tyr Ile Gly Leu Thr Gly Ser Tyr Arg
195 200 205
Tyr Glu Asp Phe Glu Leu Gly Gly Thr Phe Lys Tyr Ser Gly Trp Val
210 215 220
Glu Ser Ser Asp Asn Ala Glu Ala Tyr Asp Pro Gly Lys Arg Ile Thr
225 230 235 240
Tyr Arg Ser Lys Val Lys Asp Gln Asn Tyr Tyr Ser Val Ala Val Asn
245 250 255
Ala Gly Tyr Tyr Val Thr Pro Asn Ala Lys Val Tyr Val Glu Gly Ala
260 265 270
Trp Asn Arg Val Thr Asn Lys Lys Gly Asn Thr Ser Leu Tyr Asp His
- 76 031449
275
280
285
Asn Asn Asn Thr 290 Ser Asp Tyr 295 Ser Lys Asn Gly Ala 300 Gly Ile Glu Asn
Tyr Asn Phe Ile Thr Thr Ala Gly Leu Lys Tyr Thr Phe
305 310 315
<210> 43 <211> 711 <212> ДНК <213> Escherichia coli <220>
<221> CDS <222> (1)..(711) <400> 43
atg Met 1 aag Lys aaa Lys ggt Gly ttt Phe 5 atg Met ttg Leu ttt Phe act Thr ttg Leu 10 tta Leu gcg Ala gcg Ala ttt Phe tca Ser 15 ggc Gly 48
ttt gct cag gct gat gac gcg gca att caa caa acg tta gcc aaa atg 96
Phe Ala Gln Ala Asp Asp Ala Ala Ile Gln Gln Thr Leu Ala Lys Met
20 25 30
ggc atc aaa agc agc gat att cag ccc gcg cct gta gct ggc atg aag 144
Gly Ile Lys Ser Ser Asp Ile Gln Pro Ala Pro Val Ala Gly Met Lys
35 40 45
aca gtt ctg act aac agc ggc gtg ttg tac atc acc gat gat ggt aaa 192
Thr Val Leu Thr Asn Ser Gly Val Leu Tyr Ile Thr Asp Asp Gly Lys
50 55 60
cat atc att cag ggg cca atg tat gac gtt agt ggc acg gct ccg gtc 240
His Ile Ile Gln Gly Pro Met Tyr Asp Val Ser Gly Thr Ala Pro Val
65 70 75 80
aat gtc acc aat aag atg ctg tta aag cag ttg aat gcg ctt gaa aaa 288
Asn Val Thr Asn Lys Met Leu Leu Lys Gln Leu Asn Ala Leu Glu Lys
85 90 95
gag atg atc gtt tat aaa gcg ccg cag gaa aaa cac gtc atc acc gtg 336
Glu Met Ile Val Tyr Lys Ala Pro Gln Glu Lys His Val Ile Thr Val
100 105 110
ttt act gat att acc tgt ggt tac tgc cac aaa ctg cat gag caa atg 384
Phe Thr Asp Ile Thr Cys Gly Tyr Cys His Lys Leu His Glu Gln Met
115 120 125
gca gac tac aac gcg ctg ggg atc acc gtg cgt tat ctt gct ttc ccg 432
Ala Asp Tyr Asn Ala Leu Gly Ile Thr Val Arg Tyr Leu Ala Phe Pro
130 135 140
cgc cag ggg ctg gac agc gat gca gag aaa gaa atg aaa gct atc tgg 480
Arg Gln Gly Leu Asp Ser Asp Ala Glu Lys Glu Met Lys Ala Ile Trp
145 150 155 160
- 77 031449
tgt Cys gcg Ala aaa Lys gat Asp aaa Lys 165 aac Asn aaa Lys gcg Ala ttt Phe gat Asp 170 gat Asp gtg Val atg Met gca Ala ggt Gly 175 aaa Lys 528
agc gtc gca cca gcc agt tgc gac gtg gat att gcc gac cat tac gca 576
Ser Val Ala Pro Ala Ser Cys Asp Val Asp Ile Ala Asp His Tyr Ala
180 185 190
ctt ggc gtc cag ctt ggc gtt agc ggt act ccg gca gtt gtg ctg agc 624
Leu Gly Val Gln Leu Gly Val Ser Gly Thr Pro Ala Val Val Leu Ser
195 200 205
aat ggc aca ctt gtt ccg ggt tac cag ccg ccg aaa gag atg aaa gaa 672
Asn Gly Thr Leu Val Pro Gly Tyr Gln Pro Pro Lys Glu Met Lys Glu
210 215 220
ttt ctc gac gaa cac caa aaa atg acc agc ggt aaa taa 711
Phe Leu Asp Glu His Gln Lys Met Thr Ser Gly Lys
225 230 235
<210> . 44
<211> 236
<212> БЕЛОК
<213> Escherichia coli
<400> 44
Met Lys Lys Gly Phe Met Leu Phe Thr Leu Leu Ala Ala Phe Ser Gly
1 5 10 15
Phe Ala Gln Ala Asp Asp Ala Ala Ile Gln Gln Thr Leu Ala Lys Met
20 25 30
Gly Ile Lys Ser Ser Asp Ile Gln Pro Ala Pro Val Ala Gly Met Lys
35 40 45
Thr Val Leu Thr Asn Ser Gly Val Leu Tyr Ile Thr Asp Asp Gly Lys
50 55 60
His Ile Ile Gln Gly Pro Met Tyr Asp Val Ser Gly Thr Ala Pro Val
65 70 75 80
Asn Val Thr Asn Lys Met Leu Leu Lys Gln Leu Asn Ala Leu Glu Lys
85 90 95
Glu Met Ile Val Tyr Lys Ala Pro Gln Glu Lys His Val Ile Thr Val
100 105 110
Phe Thr Asp Ile Thr Cys Gly Tyr Cys His Lys Leu His Glu Gln Met
115 120 125
Ala Asp Tyr Asn Ala Leu Gly Ile Thr Val Arg Tyr Leu Ala Phe Pro
130 135 140
- 78 031449
Arg 145 Gln Gly Leu Asp Ser 150 Asp Ala Glu Lys Glu 155 Met Lys Ala Ile Trp 160
Cys Ala Lys Asp Lys Asn Lys Ala Phe Asp Asp Val Met Ala Gly Lys
165 170 175
Ser Val Ala Pro Ala Ser Cys Asp Val Asp Ile Ala Asp His Tyr Ala
180 185 190
Leu Gly Val Gln Leu Gly Val Ser Gly Thr Pro Ala Val Val Leu Ser
195 200 205
Asn Gly Thr Leu Val Pro Gly Tyr Gln Pro Pro Lys Glu Met Lys Glu
210 215 220
Phe Leu Asp Glu His Gln Lys Met Thr Ser Gly Lys
225 230 235
<210> 45 <211> 729 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> DsbC, содержащий гистидиновую метку и без участка рестрикции EcoRI <220>
<221> CDS <222> (1)..(729) <400> 45
atg Met 1 aag Lys aaa Lys ggt Gly ttt Phe 5 atg Met ttg Leu ttt Phe act Thr ttg Leu 10 tta Leu gcg Ala gcg Ala ttt Phe tca Ser 15 ggc Gly 48
ttt gct cag gct gat gac gcg gca att caa caa acg tta gcc aaa atg 96
Phe Ala Gln Ala Asp Asp Ala Ala Ile Gln Gln Thr Leu Ala Lys Met
20 25 30
ggc atc aaa agc agc gat att cag ccc gcg cct gta gct ggc atg aag 144
Gly Ile Lys Ser Ser Asp Ile Gln Pro Ala Pro Val Ala Gly Met Lys
35 40 45
aca gtt ctg act aac agc ggc gtg ttg tac atc acc gat gat ggt aaa 192
Thr Val Leu Thr Asn Ser Gly Val Leu Tyr Ile Thr Asp Asp Gly Lys
50 55 60
cat atc att cag ggg cca atg tat gac gtt agt ggc acg gct ccg gtc 240
His Ile Ile Gln Gly Pro Met Tyr Asp Val Ser Gly Thr Ala Pro Val
65 70 75 80
aat gtc acc aat aag atg ctg tta aag cag ttg aat gcg ctt gaa aaa 288
Asn Val Thr Asn Lys Met Leu Leu Lys Gln Leu Asn Ala Leu Glu Lys
- 79 031449
gag Glu atg Met atc Ile gtt Val 100 tat Tyr aaa Lys gcg Ala ccg Pro cag Gln 105 gaa Glu aaa Lys cac His gtc Val atc Ile 110 acc Thr gtg Val 336
ttt act gat att acc tgt ggt tac tgc cac aaa ctg cat gag caa atg 384
Phe Thr Asp Ile Thr Cys Gly Tyr Cys His Lys Leu His Glu Gln Met
115 120 125
gca gac tac aac gcg ctg ggg atc acc gtg cgt tat ctt gct ttc ccg 432
Ala Asp Tyr Asn Ala Leu Gly Ile Thr Val Arg Tyr Leu Ala Phe Pro
130 135 140
cgc cag ggg ctg gac agc gat gca gag aaa gaa atg aaa gct atc tgg 480
Arg Gln Gly Leu Asp Ser Asp Ala Glu Lys Glu Met Lys Ala Ile Trp
145 150 155 160
tgt gcg aaa gat aaa aac aaa gcg ttt gat gat gtg atg gca ggt aaa 528
Cys Ala Lys Asp Lys Asn Lys Ala Phe Asp Asp Val Met Ala Gly Lys
165 170 175
agc gtc gca cca gcc agt tgc gac gtg gat att gcc gac cat tac gca 576
Ser Val Ala Pro Ala Ser Cys Asp Val Asp Ile Ala Asp His Tyr Ala
180 185 190
ctt ggc gtc cag ctt ggc gtt agc ggt act ccg gca gtt gtg ctg agc 624
Leu Gly Val Gln Leu Gly Val Ser Gly Thr Pro Ala Val Val Leu Ser
195 200 205
aat ggc aca ctt gtt ccg ggt tac cag ccg ccg aaa gag atg aaa gaa 672
Asn Gly Thr Leu Val Pro Gly Tyr Gln Pro Pro Lys Glu Met Lys Glu
210 215 220
ttt ctc gac gaa cac caa aaa atg acc agc ggt aaa cac cat cac cat 720
Phe Leu Asp Glu His Gln Lys Met Thr Ser Gly Lys His His His His
225 230 235 240
729 cac cac taa
His His <210> 46 <211> 242 <212> БЕЛОК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Синтетическая конструкция <400> 46
Met 1 Lys Lys Gly Phe Met 5 Leu Phe Thr Leu 10 Leu Ala Ala Phe Ser Gly 15
Phe Ala Gln Ala Asp Asp Ala Ala Ile Gln Gln Thr Leu Ala Lys Met
20 25 30
Gly Ile Lys Ser Ser Asp Ile Gln Pro Ala Pro Val Ala Gly Met Lys
- 80 031449
Thr Val 50 Leu Thr Asn Ser Gly 55 Val Leu Tyr Ile Thr Asp 60 Asp Gly Lys
His Ile Ile Gln Gly Pro Met Tyr Asp Val Ser Gly Thr Ala Pro Val
65 70 75 80
Asn Val Thr Asn Lys Met Leu Leu Lys Gln Leu Asn Ala Leu Glu Lys
85 90 95
Glu Met Ile Val Tyr Lys Ala Pro Gln Glu Lys His Val Ile Thr Val
100 105 110
Phe Thr Asp Ile Thr Cys Gly Tyr Cys His Lys Leu His Glu Gln Met
115 120 125
Ala Asp Tyr Asn Ala Leu Gly Ile Thr Val Arg Tyr Leu Ala Phe Pro
130 135 140
Arg Gln Gly Leu Asp Ser Asp Ala Glu Lys Glu Met Lys Ala Ile Trp
145 150 155 160
Cys Ala Lys Asp Lys Asn Lys Ala Phe Asp Asp Val Met Ala Gly Lys
165 170 175
Ser Val Ala Pro Ala Ser Cys Asp Val Asp Ile Ala Asp His Tyr Ala
180 185 190
Leu Gly Val Gln Leu Gly Val Ser Gly Thr Pro Ala Val Val Leu Ser
195 200 205
Asn Gly Thr Leu Val Pro Gly Tyr Gln Pro Pro Lys Glu Met Lys Glu
210 215 220
Phe Leu Asp Glu His Gln Lys Met Thr Ser Gly Lys His His His His
225 230 235 240
His His <210> 47 <211> 24 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Праймер 6283 Tsp 3'
- 81 031449 <400>47 gcatcataat tttcttttta cctc
<210> 48
<211> 24
<212> ДНК
<213> Искусственная последовательность
<220>
<223> Праймер 6283 Tsp 5'
<400> 48
gggaaatgaa cctgagcaaa acgc 24
<210>49 <211>3120 <212> ДНК <213> Escherichia coli <220>
<221> CDS <222> (206)..(3091) <223> прeпротеаза III (AA -23 - 939) <220>
<221> сигнальный пептид <222> (206)..(274) <220>
<221> зрелый пептид <222> (275)..(3091) <223> протеаза III (AA 1-939) <300>
<308> GenBank/X06227 <309> 2005-04-18 <313> (1)..(3120) <400>49 ttaccgctgt ttcgctttaa tcagtcatga gtgctgtata aaaattgcgc aatctatccg60 cttactttat gatgcgcacc agtcacggac tgatggttat ataaacatag gctgactcct120 gcagcacaag attaaattct ggcagatgat ttgcgttaac gtgttgaatc tggacagaaa180
attaagttga ttatgaggtc cgtga atg ccc Pro cgc Arg agc Ser -20 acc Thr tgg Trp ttc Phe aaa gca 232
Met Lys Ala -15
tta ttg ttg tta gtt gcc ctt tgg gca ccc tta agt cag gca gaa acg 280
Leu Leu Leu Leu Val Ala Leu Trp Ala Pro Leu Ser Gln Ala Glu Thr
-10 -5 -1 1
gga tgg cag ccg att cag gaa acc atc cgt aaa agt gat aaa gat aac 328
Gly Trp Gln Pro Ile Gln Glu Thr Ile Arg Lys Ser Asp Lys Asp Asn
5 10 15
cgc cag tat cag gct ata cgt ctg gat aac ggt atg gtg gtc ttg ctg 376
Arg Gln Tyr Gln Ala Ile Arg Leu Asp Asn Gly Met Val Val Leu Leu
25 30
- 82 031449
gtt Val 35 tct Ser gat Asp ccg Pro cag Gln gca Ala 40 gtt Val aaa Lys tcg Ser ctc Leu tcg Ser 45 gcg Ala ctg Leu gtg Val gtg Val ccc Pro 50 424
gtt ggg tcg ctg gaa gat ccc gag gcg tac cag ggg ctg gca cat tac 472
Val Gly Ser Leu Glu Asp Pro Glu Ala Tyr Gln Gly Leu Ala His Tyr
55 60 65
ctt gaa cat atg agt ctg atg ggg tcg aaa aag tac ccg cag gct gac 520
Leu Glu His Met Ser Leu Met Gly Ser Lys Lys Tyr Pro Gln Ala Asp
70 75 80
agt ctg gcc gaa tat ctc aaa atg cac ggc ggt agt cac aat gcc agc 568
Ser Leu Ala Glu Tyr Leu Lys Met His Gly Gly Ser His Asn Ala Ser
85 90 95
act gcg ccg tat cgc acg gct ttc tat ctg gaa gtt gag aac gac gcc 616
Thr Ala Pro Tyr Arg Thr Ala Phe Tyr Leu Glu Val Glu Asn Asp Ala
100 105 110
ttg cct ggt gcg gta gac cgc ctg gcc gat gct att gct gaa cct ttg 664
Leu Pro Gly Ala Val Asp Arg Leu Ala Asp Ala Ile Ala Glu Pro Leu
115 120 125 130
ctc gac aag aaa tat gcc gaa cgt gag cgt aat gcg gtg aac gct gaa 712
Leu Asp Lys Lys Tyr Ala Glu Arg Glu Arg Asn Ala Val Asn Ala Glu
135 140 145
tta acc atg gcg cgt acg cgt gac ggg atg cgc atg gca cag gtc agc 760
Leu Thr Met Ala Arg Thr Arg Asp Gly Met Arg Met Ala Gln Val Ser
150 155 160
gca gaa acc att aac ccg gca cac ccc ggt tca aag ttt tct ggt ggt 808
Ala Glu Thr Ile Asn Pro Ala His Pro Gly Ser Lys Phe Ser Gly Gly
165 170 175
aac ctc gaa act tta agc gac aaa cct ggt aat ccg gtg cag cag gcg 856
Asn Leu Glu Thr Leu Ser Asp Lys Pro Gly Asn Pro Val Gln Gln Ala
180 185 190
ctg aaa gat ttc cac gag aag tac tat tcc gcc aat ttg atg aag gcg 904
Leu Lys Asp Phe His Glu Lys Tyr Tyr Ser Ala Asn Leu Met Lys Ala
195 200 205 210
gtt att tac agt aat aaa ccg ctg ccg gag ttg gca aaa atg gcg gcg 952
Val Ile Tyr Ser Asn Lys Pro Leu Pro Glu Leu Ala Lys Met Ala Ala
215 220 225
gac acc ttt ggt cgc gtg ccg aac aaa gag agc aaa aaa ccg gaa atc 1000
Asp Thr Phe Gly Arg Val Pro Asn Lys Glu Ser Lys Lys Pro Glu Ile
230 235 240
acc gtg ccg gta gtc acc gac gcg caa aag ggc att atc att cat tac 1048
Thr Val Pro Val Val Thr Asp Ala Gln Lys Gly Ile Ile Ile His Tyr
245 250 255
gtc cct gcg ctg ccg cgt aaa gtg ttg cgc gtt gag ttt cgc atc gat 1096
Val Pro Ala Leu Pro Arg Lys Val Leu Arg Val Glu Phe Arg Ile Asp
260 265 270
aac aac tca gcg aag ttc cgt agt aaa acc gat gaa ttg att acc tat 1144
Asn Asn Ser Ala Lys Phe Arg Ser Lys Thr Asp Glu Leu Ile Thr Tyr
- 83 031449
275
280
285
290
ctg Leu att Ile ggc Gly aat Asn cgc Arg 295 agc Ser cca Pro ggt Gly aca Thr ctt Leu 300 tct Ser gac Asp tgg Trp ctg Leu caa Gln 305 aag Lys 1192
cag gga tta gtt gag ggc att agc gcc aac tcc gat cct atc gtc aac 1240
Gln Gly Leu Val Glu Gly Ile Ser Ala Asn Ser Asp Pro Ile Val Asn
310 315 320
ggc aac agc ggc gta tta gcg atc tct gcg tct tta acc gat aaa ggc 1288
Gly Asn Ser Gly Val Leu Ala Ile Ser Ala Ser Leu Thr Asp Lys Gly
325 330 335
ctg gct aat cgc gat cag gtt gtg gcg gca att ttt agc tat ctc aat 1336
Leu Ala Asn Arg Asp Gln Val Val Ala Ala Ile Phe Ser Tyr Leu Asn
340 345 350
ctg tta cgt gaa aaa ggc att gat aaa caa tac ttc gat gaa ctg gcg 1384
Leu Leu Arg Glu Lys Gly Ile Asp Lys Gln Tyr Phe Asp Glu Leu Ala
355 360 365 370
aat gtg ctg gat atc gac ttc cgt tat ccg tcg atc acc cgt gat atg 1432
Asn Val Leu Asp Ile Asp Phe Arg Tyr Pro Ser Ile Thr Arg Asp Met
375 380 385
gat tac gtc gaa tgg ctg gca gat acc atg att cgc gtt cct gtt gag 1480
Asp Tyr Val Glu Trp Leu Ala Asp Thr Met Ile Arg Val Pro Val Glu
390 395 400
cat acg ctg gat gca gtc aat att gcc gat cgg tac gat gct aaa gca 1528
His Thr Leu Asp Ala Val Asn Ile Ala Asp Arg Tyr Asp Ala Lys Ala
405 410 415
gta aag gaa cgt ctg gcg atg atg acg ccg cag aat gcg cgt atc tgg 1576
Val Lys Glu Arg Leu Ala Met Met Thr Pro Gln Asn Ala Arg Ile Trp
420 425 430
tat atc agc ccg aaa gag ccg cac aac aaa acg gct tac ttt gtc gat 1624
Tyr Ile Ser Pro Lys Glu Pro His Asn Lys Thr Ala Tyr Phe Val Asp
435 440 445 450
gcg ccg tat cag gtc gat aaa atc agc gca caa act ttc gcc gac tgg 1672
Ala Pro Tyr Gln Val Asp Lys Ile Ser Ala Gln Thr Phe Ala Asp Trp
455 460 465
cag aaa aaa gcc gcc gac att gcg ctc tct ttg cca gag ctt aac cct 1720
Gln Lys Lys Ala Ala Asp Ile Ala Leu Ser Leu Pro Glu Leu Asn Pro
470 475 480
tat att cct gat gat ttc tcg ctg att aag tca gag aag aaa tac gac 1768
Tyr Ile Pro Asp Asp Phe Ser Leu Ile Lys Ser Glu Lys Lys Tyr Asp
485 490 495
cat cca gag ctg att gtt gat gag tcg aat ctg cgc gtg gtg tat gcg 1816
His Pro Glu Leu Ile Val Asp Glu Ser Asn Leu Arg Val Val Tyr Ala
500 505 510
cca agc cgt tat ttt gcc agc gag ccc aaa gct gat gtc agc ctg att 1864
Pro Ser Arg Tyr Phe Ala Ser Glu Pro Lys Ala Asp Val Ser Leu Ile
515 520 525 530
ttg cgt aat ccg aaa gcc atg gac agc gcc cgc aat cag gtg atg ttt 1912
- 84 031449
Leu Arg Asn Pro Lys 535 Ala Met Asp Ser Ala 540 Arg Asn Gln Val Met 545 Phe
gcg ctc aat gat tat ctc gca ggg ctg gcg ctt gat cag tta agc aac 1960
Ala Leu Asn Asp Tyr Leu Ala Gly Leu Ala Leu Asp Gln Leu Ser Asn
550 555 560
cag gcg tcg gtt ggt ggc ata agt ttt tcc acc aac gct aac aac ggc 2008
Gln Ala Ser Val Gly Gly Ile Ser Phe Ser Thr Asn Ala Asn Asn Gly
565 570 575
ctt atg gtt aat gct aat ggt tac acc cag cgt ctg ccg cag ctg ttc 2056
Leu Met Val Asn Ala Asn Gly Tyr Thr Gln Arg Leu Pro Gln Leu Phe
580 585 590
cag gca ttg ctc gag ggg tac ttt agc tat acc gct acg gaa gat cag 2104
Gln Ala Leu Leu Glu Gly Tyr Phe Ser Tyr Thr Ala Thr Glu Asp Gln
595 600 605 610
ctt gag cag gcg aag tcc tgg tat aac cag atg atg gat tcc gca gaa 2152
Leu Glu Gln Ala Lys Ser Trp Tyr Asn Gln Met Met Asp Ser Ala Glu
615 620 625
aag ggt aaa gcg ttt gag cag gcg att atg ccc gcg cag atg ctc tcg 2200
Lys Gly Lys Ala Phe Glu Gln Ala Ile Met Pro Ala Gln Met Leu Ser
630 635 640
caa gtg ccg tac ttc tcg cga gat gaa cgg cgt aaa att ttg ccc tcc 2248
Gln Val Pro Tyr Phe Ser Arg Asp Glu Arg Arg Lys Ile Leu Pro Ser
645 650 655
att acg ttg aaa gag gtg ctg gcc tat cgc gac gcc tta aaa tca ggg 2296
Ile Thr Leu Lys Glu Val Leu Ala Tyr Arg Asp Ala Leu Lys Ser Gly
660 665 670
gct cga cca gag ttt atg gtt atc ggc aac atg acc gag gcc cag gca 2344
Ala Arg Pro Glu Phe Met Val Ile Gly Asn Met Thr Glu Ala Gln Ala
675 680 685 690
aca acg ctg gca cgc gat gtg caa aaa cag ttg ggc gct gat ggt tca 2392
Thr Thr Leu Ala Arg Asp Val Gln Lys Gln Leu Gly Ala Asp Gly Ser
695 700 705
gag tgg tgt cga aac aaa gat gta gtg gtc gat aaa aaa caa tcc gtc 2440
Glu Trp Cys Arg Asn Lys Asp Val Val Val Asp Lys Lys Gln Ser Val
710 715 720
atc ttt gaa aaa gcc ggt aac agc acc gac tcc gca ctg gca gcg gta 2488
Ile Phe Glu Lys Ala Gly Asn Ser Thr Asp Ser Ala Leu Ala Ala Val
725 730 735
ttt gta ccg act ggc tac gat gaa tac acc agc tca gcc tat agc tct 2536
Phe Val Pro Thr Gly Tyr Asp Glu Tyr Thr Ser Ser Ala Tyr Ser Ser
740 745 750
ctg ttg ggg cag atc gta cag ccg tgg ttc tac aat cag ttg cgt acc 2584
Leu Leu Gly Gln Ile Val Gln Pro Trp Phe Tyr Asn Gln Leu Arg Thr
755 760 765 770
gaa gaa caa ttg ggc tat gcc gtg ttt gcg ttt cca atg agc gtg ggg 2632
Glu Glu Gln Leu Gly Tyr Ala Val Phe Ala Phe Pro Met Ser Val Gly
775 780 785
- 85 031449
cgt Arg cag Gln tgg Trp ggc Gly 790 atg Met ggc Gly ttc Phe ctt Leu ttg Leu 795 caa Gln agc Ser aat Asn gat Asp aaa Lys 800 cag Gln cct Pro 2680
tca ttc ttg tgg gag cgt tac aag gcg ttt ttc cca acc gca gag gca 2728
Ser Phe Leu Trp Glu Arg Tyr Lys Ala Phe Phe Pro Thr Ala Glu Ala
805 810 815
aaa ttg cga gcg atg aag cca gat gag ttt gcg caa atc cag cag gcg 2776
Lys Leu Arg Ala Met Lys Pro Asp Glu Phe Ala Gln Ile Gln Gln Ala
820 825 830
gta att acc cag atg ctg cag gca ccg caa acg ctc ggc gaa gaa gca 2824
Val Ile Thr Gln Met Leu Gln Ala Pro Gln Thr Leu Gly Glu Glu Ala
835 840 845 850
tcg aag tta agt aaa gat ttc gat cgc ggc aat atg cgc ttc gat tcg 2872
Ser Lys Leu Ser Lys Asp Phe Asp Arg Gly Asn Met Arg Phe Asp Ser
855 860 865
cgt gat aaa atc gtg gcc cag ata aaa ctg ctg acg ccg caa aaa ctt 2920
Arg Asp Lys Ile Val Ala Gln Ile Lys Leu Leu Thr Pro Gln Lys Leu
870 875 880
gct gat ttc ttc cat cag gcg gtg gtc gag ccg caa ggc atg gct att 2968
Ala Asp Phe Phe His Gln Ala Val Val Glu Pro Gln Gly Met Ala Ile
885 890 895
ctg tcg cag att tcc ggc agc cag aac ggg aaa gcc gaa tat gta cac 3016
Leu Ser Gln Ile Ser Gly Ser Gln Asn Gly Lys Ala Glu Tyr Val His
900 905 910
cct gaa ggc tgg aaa gtg tgg gag aac gtc agc gcg ttg cag caa aca 3064
Pro Glu Gly Trp Lys Val Trp Glu Asn Val Ser Ala Leu Gln Gln Thr
915 920 925 930
atg ccc ctg atg agt gaa aag aat gag tgatgtcgcc gagacactag 3111
Met Pro Leu Met Ser Glu Lys Asn Glu
935 atcctttgc
3120 <210> 50 <211> 962 <212> БЕЛОК <213> Escherichia coli <400> 50
Met Pro Arg Ser -20 Thr Trp Phe Lys Ala -15 Leu Leu Leu Leu Val -10 Ala Leu
Trp Ala Pro Leu Ser Gln Ala Glu Thr Gly Trp Gln Pro Ile Gln Glu
-5 -1 1 5
Thr Ile Arg Lys Ser Asp Lys Asp Asn Arg Gln Tyr Gln Ala Ile Arg
10 15 20 25
- 86 031449
Leu Asp Asn Gly Met 30 Val Val Leu Leu Val 35 Ser Asp Pro Gln Ala 40 Val
Lys Ser Leu Ser Ala Leu Val Val Pro Val Gly Ser Leu Glu Asp Pro
45 50 55
Glu Ala Tyr Gln Gly Leu Ala His Tyr Leu Glu His Met Ser Leu Met
60 65 70
Gly Ser Lys Lys Tyr Pro Gln Ala Asp Ser Leu Ala Glu Tyr Leu Lys
75 80 85
Met His Gly Gly Ser His Asn Ala Ser Thr Ala Pro Tyr Arg Thr Ala
90 95 100 105
Phe Tyr Leu Glu Val Glu Asn Asp Ala Leu Pro Gly Ala Val Asp Arg
110 115 120
Leu Ala Asp Ala Ile Ala Glu Pro Leu Leu Asp Lys Lys Tyr Ala Glu
125 130 135
Arg Glu Arg Asn Ala Val Asn Ala Glu Leu Thr Met Ala Arg Thr Arg
140 145 150
Asp Gly Met Arg Met Ala Gln Val Ser Ala Glu Thr Ile Asn Pro Ala
155 160 165
His Pro Gly Ser Lys Phe Ser Gly Gly Asn Leu Glu Thr Leu Ser Asp
170 175 180 185
Lys Pro Gly Asn Pro Val Gln Gln Ala Leu Lys Asp Phe His Glu Lys
190 195 200
Tyr Tyr Ser Ala Asn Leu Met Lys Ala Val Ile Tyr Ser Asn Lys Pro
205 210 215
Leu Pro Glu Leu Ala Lys Met Ala Ala Asp Thr Phe Gly Arg Val Pro
220 225 230
Asn Lys Glu Ser Lys Lys Pro Glu Ile Thr Val Pro Val Val Thr Asp
235 240 245
Ala Gln Lys Gly Ile Ile Ile His Tyr Val Pro Ala Leu Pro Arg Lys
250 255 260 265
Val Leu Arg Val Glu Phe Arg Ile Asp Asn Asn Ser Ala Lys Phe Arg
270 275 280
- 87 031449
Ser Lys Thr Asp 285 Glu Leu Ile Thr Tyr 290 Leu Ile Gly Asn Arg 295 Ser Pro
Gly Thr Leu Ser Asp Trp Leu Gln Lys Gln Gly Leu Val Glu Gly Ile
300 305 310
Ser Ala Asn Ser Asp Pro Ile Val Asn Gly Asn Ser Gly Val Leu Ala
315 320 325
Ile Ser Ala Ser Leu Thr Asp Lys Gly Leu Ala Asn Arg Asp Gln Val
330 335 340 345
Val Ala Ala Ile Phe Ser Tyr Leu Asn Leu Leu Arg Glu Lys Gly Ile
350 355 360
Asp Lys Gln Tyr Phe Asp Glu Leu Ala Asn Val Leu Asp Ile Asp Phe
365 370 375
Arg Tyr Pro Ser Ile Thr Arg Asp Met Asp Tyr Val Glu Trp Leu Ala
380 385 390
Asp Thr Met Ile Arg Val Pro Val Glu His Thr Leu Asp Ala Val Asn
395 400 405
Ile Ala Asp Arg Tyr Asp Ala Lys Ala Val Lys Glu Arg Leu Ala Met
410 415 420 425
Met Thr Pro Gln Asn Ala Arg Ile Trp Tyr Ile Ser Pro Lys Glu Pro
430 435 440
His Asn Lys Thr Ala Tyr Phe Val Asp Ala Pro Tyr Gln Val Asp Lys
445 450 455
Ile Ser Ala Gln Thr Phe Ala Asp Trp Gln Lys Lys Ala Ala Asp Ile
460 465 470
Ala Leu Ser Leu Pro Glu Leu Asn Pro Tyr Ile Pro Asp Asp Phe Ser
475 480 485
Leu Ile Lys Ser Glu Lys Lys Tyr Asp His Pro Glu Leu Ile Val Asp
490 495 500 505
Glu Ser Asn Leu Arg Val Val Tyr Ala Pro Ser Arg Tyr Phe Ala Ser
510 515 520
Glu Pro Lys Ala Asp Val Ser Leu Ile Leu Arg Asn Pro Lys Ala Met
- 88 031449
525
530
535
Asp Ser Ala Arg 540 Asn Gln Val Met 545 Phe Ala Leu Asn Asp 550 Tyr Leu Ala
Gly Leu Ala Leu Asp Gln Leu Ser Asn Gln Ala Ser Val Gly Gly Ile
555 560 565
Ser Phe Ser Thr Asn Ala Asn Asn Gly Leu Met Val Asn Ala Asn Gly
570 575 580 585
Tyr Thr Gln Arg Leu Pro Gln Leu Phe Gln Ala Leu Leu Glu Gly Tyr
590 595 600
Phe Ser Tyr Thr Ala Thr Glu Asp Gln Leu Glu Gln Ala Lys Ser Trp
605 610 615
Tyr Asn Gln Met Met Asp Ser Ala Glu Lys Gly Lys Ala Phe Glu Gln
620 625 630
Ala Ile Met Pro Ala Gln Met Leu Ser Gln Val Pro Tyr Phe Ser Arg
635 640 645
Asp Glu Arg Arg Lys Ile Leu Pro Ser Ile Thr Leu Lys Glu Val Leu
650 655 660 665
Ala Tyr Arg Asp Ala Leu Lys Ser Gly Ala Arg Pro Glu Phe Met Val
670 675 680
Ile Gly Asn Met Thr Glu Ala Gln Ala Thr Thr Leu Ala Arg Asp Val
685 690 695
Gln Lys Gln Leu Gly Ala Asp Gly Ser Glu Trp Cys Arg Asn Lys Asp
700 705 710
Val Val Val Asp Lys Lys Gln Ser Val Ile Phe Glu Lys Ala Gly Asn
715 720 725
Ser Thr Asp Ser Ala Leu Ala Ala Val Phe Val Pro Thr Gly Tyr Asp
730 735 740 745
Glu Tyr Thr Ser Ser Ala Tyr Ser Ser Leu Leu Gly Gln Ile Val Gln
750 755 760
Pro Trp Phe Tyr Asn Gln Leu Arg Thr Glu Glu Gln Leu Gly Tyr Ala
765 770 775
- 89 031449
Val Phe Ala 780 Phe Pro Met Ser Val 785 Gly Arg Gln Trp Gly 790 Met Gly Phe
Leu Leu Gln Ser Asn Asp Lys Gln Pro Ser Phe Leu Trp Glu Arg Tyr
795 800 805
Lys Ala Phe Phe Pro Thr Ala Glu Ala Lys Leu Arg Ala Met Lys Pro
810 815 820 825
Asp Glu Phe Ala Gln Ile Gln Gln Ala Val Ile Thr Gln Met Leu Gln
830 835 840
Ala Pro Gln Thr Leu Gly Glu Glu Ala Ser Lys Leu Ser Lys Asp Phe
845 850 855
Asp Arg Gly Asn Met Arg Phe Asp Ser Arg Asp Lys Ile Val Ala Gln
860 865 870
Ile Lys Leu Leu Thr Pro Gln Lys Leu Ala Asp Phe Phe His Gln Ala
875 880 885
Val Val Glu Pro Gln Gly Met Ala Ile Leu Ser Gln Ile Ser Gly Ser
890 895 900 905
Gln Asn Gly Lys Ala Glu Tyr Val His Pro Glu Gly Trp Lys Val Trp
910 915 920
Glu Asn Val Ser Ala Leu Gln Gln Thr Met Pro Leu Met Ser Glu Lys
925 930 935
Asn Glu <210> 51 <211> 729 <212> ДНК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> DsbC дикого типа, содержащий гистидиновую метку <220>
<221> CDS <222> (1)..(729) <400> 51 atg aag aaa ggt ttt atg ttg ttt act ttg tta gcg gcg ttt tca ggc Met Lys Lys Gly Phe Met Leu Phe Thr Leu Leu Ala Ala Phe Ser Gly 1 5 10 15
- 90 031449
ttt Phe gct Ala cag Gln gct Ala 20 gat Asp gac Asp gcg Ala gca Ala att Ile 25 caa Gln caa Gln acg Thr tta Leu gcc Ala 30 aaa Lys atg Met 96
ggc atc aaa agc agc gat att cag ccc gcg cct gta gct ggc atg aag 144
Gly Ile Lys Ser Ser Asp Ile Gln Pro Ala Pro Val Ala Gly Met Lys
35 40 45
aca gtt ctg act aac agc ggc gtg ttg tac atc acc gat gat ggt aaa 192
Thr Val Leu Thr Asn Ser Gly Val Leu Tyr Ile Thr Asp Asp Gly Lys
50 55 60
cat atc att cag ggg cca atg tat gac gtt agt ggc acg gct ccg gtc 240
His Ile Ile Gln Gly Pro Met Tyr Asp Val Ser Gly Thr Ala Pro Val
65 70 75 80
aat gtc acc aat aag atg ctg tta aag cag ttg aat gcg ctt gaa aaa 288
Asn Val Thr Asn Lys Met Leu Leu Lys Gln Leu Asn Ala Leu Glu Lys
85 90 95
gag atg atc gtt tat aaa gcg ccg cag gaa aaa cac gtc atc acc gtg 336
Glu Met Ile Val Tyr Lys Ala Pro Gln Glu Lys His Val Ile Thr Val
100 105 110
ttt act gat att acc tgt ggt tac tgc cac aaa ctg cat gag caa atg 384
Phe Thr Asp Ile Thr Cys Gly Tyr Cys His Lys Leu His Glu Gln Met
115 120 125
gca gac tac aac gcg ctg ggg atc acc gtg cgt tat ctt gct ttc ccg 432
Ala Asp Tyr Asn Ala Leu Gly Ile Thr Val Arg Tyr Leu Ala Phe Pro
130 135 140
cgc cag ggg ctg gac agc gat gca gag aaa gaa atg aaa gct atc tgg 480
Arg Gln Gly Leu Asp Ser Asp Ala Glu Lys Glu Met Lys Ala Ile Trp
145 150 155 160
tgt gcg aaa gat aaa aac aaa gcg ttt gat gat gtg atg gca ggt aaa 528
Cys Ala Lys Asp Lys Asn Lys Ala Phe Asp Asp Val Met Ala Gly Lys
165 170 175
agc gtc gca cca gcc agt tgc gac gtg gat att gcc gac cat tac gca 576
Ser Val Ala Pro Ala Ser Cys Asp Val Asp Ile Ala Asp His Tyr Ala
180 185 190
ctt ggc gtc cag ctt ggc gtt agc ggt act ccg gca gtt gtg ctg agc 624
Leu Gly Val Gln Leu Gly Val Ser Gly Thr Pro Ala Val Val Leu Ser
195 200 205
aat ggc aca ctt gtt ccg ggt tac cag ccg ccg aaa gag atg aaa gaa 672
Asn Gly Thr Leu Val Pro Gly Tyr Gln Pro Pro Lys Glu Met Lys Glu
210 215 220
ttc ctc gac gaa cac caa aaa atg acc agc ggt aaa cac cat cac cat 720
Phe Leu Asp Glu His Gln Lys Met Thr Ser Gly Lys His His His His
225 230 235 240
cac cac taa
His His <210> 52 <211> 242
729
- 91 031449 <212> БЕЛОК <213> Искусственная последовательность <220>
<223> Синтетическая конструкция <400> 52
Met 1 Lys Lys Gly Phe 5 Met Leu Phe Thr Leu 10 Leu Ala Ala Phe Ser 15 Gly
Phe Ala Gln Ala Asp Asp Ala Ala Ile Gln Gln Thr Leu Ala Lys Met
20 25 30
Gly Ile Lys Ser Ser Asp Ile Gln Pro Ala Pro Val Ala Gly Met Lys
35 40 45
Thr Val Leu Thr Asn Ser Gly Val Leu Tyr Ile Thr Asp Asp Gly Lys
50 55 60
His Ile Ile Gln Gly Pro Met Tyr Asp Val Ser Gly Thr Ala Pro Val
65 70 75 80
Asn Val Thr Asn Lys Met Leu Leu Lys Gln Leu Asn Ala Leu Glu Lys
85 90 95
Glu Met Ile Val Tyr Lys Ala Pro Gln Glu Lys His Val Ile Thr Val
100 105 110
Phe Thr Asp Ile Thr Cys Gly Tyr Cys His Lys Leu His Glu Gln Met
115 120 125
Ala Asp Tyr Asn Ala Leu Gly Ile Thr Val Arg Tyr Leu Ala Phe Pro
130 135 140
Arg Gln Gly Leu Asp Ser Asp Ala Glu Lys Glu Met Lys Ala Ile Trp
145 150 155 160
Cys Ala Lys Asp Lys Asn Lys Ala Phe Asp Asp Val Met Ala Gly Lys
165 170 175
Ser Val Ala Pro Ala Ser Cys Asp Val Asp Ile Ala Asp His Tyr Ala
180 185 190
Leu Gly Val Gln Leu Gly Val Ser Gly Thr Pro Ala Val Val Leu Ser
195 200 205
Asn Gly Thr Leu Val Pro Gly Tyr Gln Pro Pro Lys Glu Met Lys Glu
210 215 220
- 92 031449
Phe
225
Leu Asp Glu His Gln Lys Met Thr Ser Gly Lys His His His His
230 235 240
His
His

Claims (17)

  1. ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ
    1. Рекомбинантная грамотрицательная бактериальная клетка для получения антитела или его антигенсвязывающего фрагмента, специфически связывающегося с CD154, содержащая:
    a) экспрессирующий вектор, содержащий рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий белок дисульфидного обмена (DsbC), и один или несколько полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154;
    b) мутантный ген Tsp, кодирующий белок Tsp, имеющий сниженную на 50% или менее протеазную активность немутантного белка Tsp дикого типа; и
    c) мутантный ген spr, кодирующий белок spr, чья последовательность дикого типа представлена в SEQ ID NO: 24, содержащей мутацию, которая приводит к замене аминокислоты цистеин на аланин в положении 94 (С94А).
  2. 2. Грамотрицательная бактериальная клетка по п.1, где DsbC содержит гистидиновую метку на Nконце или С-конце.
  3. 3. Грамотрицательная бактериальная клетка по п.1 или 2, где экспрессирующий вектор содержит полинуклеотид, имеющий последовательность, представленную в SEQ ID NO: 45 или SEQ ID NO: 51.
  4. 4. Грамотрицательная бактериальная клетка по любому из пп.1-3, где антитело или его антигенсвязывающий фрагмент содержит вариабельный домен тяжелой цепи, содержащий три CDR, имеющих последовательность, представленную SEQ ID NO: 1 для CDRH1, SEQ ID NO: 2 для CDRH2 и SEQ ID NO: 3 для CDRH3, и вариабельный домен легкой цепи, содержащий три CDR, имеющих последовательность, представленную в SEQ ID NO: 4 для CDRL1, SEQ ID NO: 5 для CDRL2 и SEQ ID NO: 6 для CDRL3.
  5. 5. Грамотрицательная бактериальная клетка по п.4, где один или несколько полинуклеотидов кодируют антитело, содержащее последовательность вариабельной области легкой цепи, представленную в SEQ ID NO: 8, и вариабельной области тяжелой цепи, представленную в SEQ ID NO: 10.
  6. 6. Грамотрицательная бактериальная клетка по любому из пп.1-5, где антигенсвязывающим фрагментом антитела является Fab или Fab'.
  7. 7. Грамотрицательная бактериальная клетка по п.6, где Fab- или Fab'-фрагмент содержит легкую цепь, имеющую последовательность, представленную в SEQ ID NO: 12, и тяжелую цепь, имеющую последовательность, представленную в SEQ ID NO: 14 или 16.
  8. 8. Грамотрицательная бактериальная клетка по любому из пп.1-7, где мутантный ген Tsp представляет собой подвергнутый нокауту ген Tsp.
  9. 9. Грамотрицательная бактериальная клетка по любому из пп.1-8, где клетка является изогенной для бактериальной клетки дикого типа, за исключением рекомбинантного полинуклеотида, кодирующего DsbC, и одного или нескольких полинуклеотидов, кодирующих антитело или его антигенсвязывающий фрагмент, специфически связывающийся с CD154.
  10. 10. Грамотрицательная бактериальная клетка по любому из пп.1-9, где клетка является Е. coli.
  11. 11. Экспрессирующий вектор, содержащий рекомбинантный полинуклеотид, кодирующий DsbC, и бицистронную последовательность для получения антитела или его антигенсвязывающего фрагмента, специфически связывающегося с CD154, как определено в любом из пп.4-7, в которой выше в 3'-5' направлении цистрон содержит ДНК, кодирующую легкую цепь антитела, и ниже в 5'-3' направлении цистрон содержит ДНК, кодирующую соответствующую тяжелую цепь, отличающийся тем, что бицистронная последовательность содержит последовательность, выбранную из IGS1 (SEQ ID NO: 33), IGS2 (SEQ ID NO: 34), IGS3 (SEQ ID NO: 35) и IGS4 (SEQ ID NO: 36).
  12. 12. Экспрессирующий вектор по п.11, где DsbC определен в п.2 или кодирован полинуклеотидом, определенным в п.3.
  13. 13. Грамотрицательная бактериальная клетка по любому из пп.1-10, содержащая экспрессирующий вектор по любому из пп.11 и 12.
  14. 14. Способ получения антитела или его антигенсвязывающего фрагмента, специфически связывающегося с CD154, включающий:
    a) культивирование рекомбинантной грамотрицательной бактериальной клетки по любому из пп.110 или 13 в среде для культивирования в условиях, эффективных для экспрессии антитела или его антигенсвязывающего фрагмента, специфически связывающегося с CD154, и рекомбинантного полинуклео
    - 93 031449 тида, кодирующего DsbC; и
    b) выделение антитела или его антигенсвязывающего фрагмента, специфически связывающегося с CD154, из периплазмы рекомбинантной грамотрицательной бактериальной клетки и/или среды для культивирования.
  15. 15. Способ по п.14, где способ дополнительно включает прикрепление эффекторной молекулы к аминокислоте на С-конце или по направлению к С-концу тяжелой цепи и/или легкой цепи антитела.
  16. 16. Способ по п.15, где эффекторная молекула содержит поли(этиленгликоль) или метоксиполи(этиленгликоль).
  17. 17. Способ по п.16, где способ включает прикрепление к одному из остатков цистеина на С-конце тяжелой цепи лизил-малеимидной группы, где каждую аминогруппу лизилового остатка ковалентно связывают с остатком метоксиполи(этиленгликоля), имеющим молекулярную массу приблизительно 20000 Да.
    EcoRl
    Ndel
    HlUCl , ( □НМаЕШ-ЬЯЯХ. L=
    + ня
    EcoRl DsbC Ndel
EA201490274A 2011-07-13 2012-07-13 Бактериальный штамм-акцептор, экспрессирующий рекомбинантный dsbc EA031449B1 (ru)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP11173880 2011-07-13
PCT/EP2012/002945 WO2013007388A1 (en) 2011-07-13 2012-07-13 Bacterial host strain expressing recombinant dsbc

Publications (2)

Publication Number Publication Date
EA201490274A1 EA201490274A1 (ru) 2014-05-30
EA031449B1 true EA031449B1 (ru) 2019-01-31

Family

ID=46545736

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
EA201490274A EA031449B1 (ru) 2011-07-13 2012-07-13 Бактериальный штамм-акцептор, экспрессирующий рекомбинантный dsbc

Country Status (27)

Country Link
US (2) US9725516B2 (ru)
EP (2) EP3339325A1 (ru)
JP (3) JP6431370B2 (ru)
KR (1) KR102023786B1 (ru)
CN (1) CN103649124B (ru)
AU (1) AU2012283388B2 (ru)
BR (1) BR112013032871B1 (ru)
CA (1) CA2841824C (ru)
CY (1) CY1119985T1 (ru)
DK (1) DK2731973T3 (ru)
EA (1) EA031449B1 (ru)
ES (1) ES2659155T3 (ru)
HK (1) HK1194393A1 (ru)
HR (1) HRP20180226T1 (ru)
HU (1) HUE035674T2 (ru)
IL (1) IL229947B (ru)
IN (1) IN2014DN00202A (ru)
LT (1) LT2731973T (ru)
ME (1) ME02957B (ru)
MX (1) MX348738B (ru)
NO (1) NO2731973T3 (ru)
PL (1) PL2731973T3 (ru)
PT (1) PT2731973T (ru)
RS (1) RS56926B1 (ru)
SG (1) SG10201807560XA (ru)
SI (1) SI2731973T1 (ru)
WO (1) WO2013007388A1 (ru)

Families Citing this family (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP5721951B2 (ja) * 2007-03-22 2015-05-20 バイオジェン アイデック マサチューセッツ インコーポレイテッド 抗体、抗体誘導体、および抗体断片を含む、cd154に特異的に結合する結合タンパク質ならびにその使用
JP6132551B2 (ja) 2009-09-24 2017-05-24 ユセベ ファルマ ソシエテ アノニム シャペロン活性を保持するプロテアーゼ欠損DegP並びにノックアウトTsp及びptr遺伝子を持つ、組換えタンパク質発現のための細菌株
GB201000591D0 (en) 2010-01-14 2010-03-03 Ucb Pharma Sa Bacterial hoist strain
GB201000590D0 (en) 2010-01-14 2010-03-03 Ucb Pharma Sa Bacterial host strain
GB201000587D0 (en) 2010-01-14 2010-03-03 Ucb Pharma Sa Bacterial hoist strain
GB201012599D0 (en) 2010-07-27 2010-09-08 Ucb Pharma Sa Process for purifying proteins
KR102023786B1 (ko) * 2011-07-13 2019-09-20 유씨비 파마, 에스.에이. 재조합 dsbc를 발현하는 세균 숙주 균주
GB201208367D0 (en) 2012-05-14 2012-06-27 Ucb Pharma Sa Biological product
GB201223276D0 (en) * 2012-12-21 2013-02-06 Ucb Pharma Sa Antibodies and methods of producing same
EP3237432B1 (en) 2014-12-22 2023-09-06 UCB Biopharma SRL Protein manufacture
KR101810778B1 (ko) * 2015-06-23 2017-12-20 서울대학교산학협력단 Cd154 결합 폴리펩타이드 및 그 용도
WO2017132298A1 (en) 2016-01-27 2017-08-03 Medimmune, Llc Methods for preparing antibodies with a defined glycosylation pattern
CN113260626B (zh) * 2018-11-05 2024-09-13 豪夫迈·罗氏有限公司 在原核宿主细胞中产生双链蛋白质的方法
CN109371049A (zh) * 2018-11-14 2019-02-22 天津大学 分子伴侣在促进单克隆抗体的形成和/或提高单克隆抗体的表达量中的应用
JP2022525775A (ja) 2019-03-18 2022-05-19 バイオ-ラッド エービーディー セロテック ゲーエムベーハー SpyTag含有ペリプラズム融合タンパク質のプロテアーゼTSP及びOMPT分解からの保護
JP7259131B2 (ja) * 2019-08-05 2023-04-17 ワッカー ケミー アクチエンゲゼルシャフト 発酵法で組換えタンパク質を放出する細菌株

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2002061090A2 (en) * 2000-12-14 2002-08-08 Genentech, Inc. Prokaryotically produced antibodies and uses thereof
US20060204493A1 (en) * 2004-09-02 2006-09-14 Genentech, Inc. Heteromultimeric molecules
WO2008118356A2 (en) * 2007-03-22 2008-10-02 Biogen Idec Ma Inc. Binding proteins, including antibodies, antibody derivatives and antibody fragments, that specifically bind cd154 and uses thereof
WO2011086141A1 (en) * 2010-01-14 2011-07-21 Ucb Pharma S.A. Bacterial host strain expressing recombinant dsbc

Family Cites Families (52)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB8422238D0 (en) 1984-09-03 1984-10-10 Neuberger M S Chimeric proteins
GB8907617D0 (en) 1989-04-05 1989-05-17 Celltech Ltd Drug delivery system
US5508192A (en) 1990-11-09 1996-04-16 Board Of Regents, The University Of Texas System Bacterial host strains for producing proteolytically sensitive polypeptides
US5264365A (en) 1990-11-09 1993-11-23 Board Of Regents, The University Of Texas System Protease-deficient bacterial strains for production of proteolytically sensitive polypeptides
GB9112536D0 (en) 1991-06-11 1991-07-31 Celltech Ltd Chemical compounds
US5474771A (en) 1991-11-15 1995-12-12 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Murine monoclonal antibody (5c8) recognizes a human glycoprotein on the surface of T-lymphocytes, compositions containing same
EP0640093A4 (en) 1992-04-28 1996-06-05 Univ Michigan HUMAN CRABP-I AND CRABP-II.
GB9215540D0 (en) 1992-07-22 1992-09-02 Celltech Ltd Protein expression system
US5304472A (en) 1992-11-20 1994-04-19 Genentech, Inc. Method of controlling polypeptide production in bacterial cells
US5639635A (en) 1994-11-03 1997-06-17 Genentech, Inc. Process for bacterial production of polypeptides
WO1997038123A1 (en) 1996-04-05 1997-10-16 Board Of Regents, The University Of Texas System Methods for producing soluble, biologically-active disulfide bond-containing eukaryotic proteins in bacterial cells
GB9625640D0 (en) 1996-12-10 1997-01-29 Celltech Therapeutics Ltd Biological products
US6083715A (en) 1997-06-09 2000-07-04 Board Of Regents, The University Of Texas System Methods for producing heterologous disulfide bond-containing polypeptides in bacterial cells
JP2000083670A (ja) 1998-09-09 2000-03-28 Hsp Kenkyusho:Kk DsbA/DsbB/DsbC/DsbD発現プラスミド
CA2377491C (en) 1999-06-29 2008-01-29 Siga Technologies, Inc. Assay for degp protease inhibitors
GB0006398D0 (en) 2000-03-16 2000-05-03 Novartis Ag Organic compounds
GB0013810D0 (en) 2000-06-06 2000-07-26 Celltech Chiroscience Ltd Biological products
EP1314037A2 (en) 2000-09-01 2003-05-28 Biogen, Inc. Methods of designing and producing compounds having improved binding affinity for cd154 or other trimeric proteins
AU8867501A (en) 2000-09-01 2002-03-13 Biogen Inc Co-crystal structure of monoclonal antibody 5c8 and cd154, and use thereof in drug design
US7041479B2 (en) 2000-09-06 2006-05-09 The Board Of Trustess Of The Leland Stanford Junior University Enhanced in vitro synthesis of active proteins containing disulfide bonds
DK1341899T3 (da) * 2000-12-14 2006-04-10 Genentech Inc Bakterieværtsstammer
TWI327597B (en) 2001-08-01 2010-07-21 Centocor Inc Anti-tnf antibodies, compositions, methods and uses
MXPA04001566A (es) * 2001-08-27 2004-05-17 Genentech Inc Un sistema para expresion y ensamblado de anticuerpos.
GB0124317D0 (en) 2001-10-10 2001-11-28 Celltech R&D Ltd Biological products
WO2003048306A2 (en) 2001-11-16 2003-06-12 Idec Pharmaceuticals Corporation Polycistronic expression of antibodies
GB0129105D0 (en) 2001-12-05 2002-01-23 Celltech R&D Ltd Expression control using variable intergenic sequences
EP2135879A3 (en) 2002-06-28 2010-06-23 Domantis Limited Ligand
WO2004042017A2 (en) 2002-10-31 2004-05-21 Genentech, Inc. Methods and compositions for increasing antibody production
ES2374068T3 (es) 2002-12-03 2012-02-13 Ucb Pharma, S.A. Ensayo para identificar células productoras de anticuerpos.
GB0303337D0 (en) 2003-02-13 2003-03-19 Celltech R&D Ltd Biological products
DE602004029252D1 (de) 2003-06-13 2010-11-04 Biogen Idec Inc Aglycosyl-anti-cd154 (cd40-ligand) antikörper und deren verwendungen
DK1639011T3 (da) 2003-06-30 2009-02-16 Domantis Ltd Pegylerede enkelt-domæne antistoffer (dAb)
GB0315450D0 (en) 2003-07-01 2003-08-06 Celltech R&D Ltd Biological products
GB0315457D0 (en) 2003-07-01 2003-08-06 Celltech R&D Ltd Biological products
JP4944608B2 (ja) 2003-07-26 2012-06-06 バイオジェン・アイデック・エムエイ・インコーポレイテッド 改良された抗原結合親和性を有する、変更された抗体
GEP20105059B (en) 2004-07-26 2010-08-10 Biogen Idec Inc Anti-cd154 antibodies
US7563443B2 (en) 2004-09-17 2009-07-21 Domantis Limited Monovalent anti-CD40L antibody polypeptides and compositions thereof
GB0425534D0 (en) 2004-11-19 2004-12-22 Celltech R&D Ltd Process for obtaining antibodies
GB0520169D0 (en) 2005-10-04 2005-11-09 Celltech R&D Ltd Biological products
ES2667729T3 (es) 2007-09-26 2018-05-14 Ucb Biopharma Sprl Fusiones de anticuerpos con doble especificidad
US7662587B1 (en) 2009-03-05 2010-02-16 E. I. Du Pont De Nemours And Company Gene knockout mutations that increase peptide production
JP6132551B2 (ja) 2009-09-24 2017-05-24 ユセベ ファルマ ソシエテ アノニム シャペロン活性を保持するプロテアーゼ欠損DegP並びにノックアウトTsp及びptr遺伝子を持つ、組換えタンパク質発現のための細菌株
US8470552B2 (en) 2009-10-12 2013-06-25 Keck Graduate Institute Strategy to reduce lactic acid production and control PH in animal cell culture
SI2496601T1 (sl) * 2009-11-05 2017-09-29 F. Hoffmann-La Roche Ag Tehnike in sestavek za sekrecijo heterolognih polipeptidov
GB201000587D0 (en) 2010-01-14 2010-03-03 Ucb Pharma Sa Bacterial hoist strain
GB201000590D0 (en) 2010-01-14 2010-03-03 Ucb Pharma Sa Bacterial host strain
GB201000591D0 (en) 2010-01-14 2010-03-03 Ucb Pharma Sa Bacterial hoist strain
GB201001791D0 (en) 2010-02-03 2010-03-24 Ucb Pharma Sa Process for obtaining antibodies
GB201012599D0 (en) 2010-07-27 2010-09-08 Ucb Pharma Sa Process for purifying proteins
EP2546267A1 (en) 2011-07-13 2013-01-16 UCB Pharma S.A. Bacterial host strain expressing recombinant DsbC
KR102023786B1 (ko) 2011-07-13 2019-09-20 유씨비 파마, 에스.에이. 재조합 dsbc를 발현하는 세균 숙주 균주
GB201208367D0 (en) 2012-05-14 2012-06-27 Ucb Pharma Sa Biological product

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2002061090A2 (en) * 2000-12-14 2002-08-08 Genentech, Inc. Prokaryotically produced antibodies and uses thereof
US20060204493A1 (en) * 2004-09-02 2006-09-14 Genentech, Inc. Heteromultimeric molecules
WO2008118356A2 (en) * 2007-03-22 2008-10-02 Biogen Idec Ma Inc. Binding proteins, including antibodies, antibody derivatives and antibody fragments, that specifically bind cd154 and uses thereof
WO2011086141A1 (en) * 2010-01-14 2011-07-21 Ucb Pharma S.A. Bacterial host strain expressing recombinant dsbc

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
HARA H, ET AL.: "OVERPRODUCTION OF PENICILLIN-BINDING PROTEIN 7 SUPPRESSES THERMOSENSITIVE GROWTH DEFECT AT LOW OSMOLARITY DUE TO AN SPR MUATION OF ESCHERICHIA COLI", MICROBIAL DRUG RESISTANCE., LIEBERT., US, vol. 02, no. 01, 1 January 1996 (1996-01-01), US, pages 63 - 72, XP008015427, ISSN: 1076-6294 *
HU, X. O'HARA, L. WHITE, S. MAGNER, E. KANE, M. GERARD WALL, J.: "Optimisation of production of a domoic acid-binding scFv antibody fragment in Escherichia coli using molecular chaperones and functional immobilisation on a mesoporous silicate support", PROTEIN EXPRESSION AND PURIFICATION., ACADEMIC PRESS, SAN DIEGO, CA., vol. 52, no. 1, 8 January 2007 (2007-01-08), SAN DIEGO, CA., pages 194 - 201, XP005758623, ISSN: 1046-5928, DOI: 10.1016/j.pep.2006.08.009 *
JAMES M. ARAMINI, PAOLO ROSSI, YUANPENG J. HUANG, LI ZHAO, MEI JIANG, MELISSA MAGLAQUI, RONG XIAO, JESSICA LOCKE, RAJESH NAIR, BUR: "Solution NMR structure of the NlpC/P60 domain of lipoprotein Spr from Escherichia coli: Structural evidence for a novel cysteine peptidase catalytic triad", BIOCHEMISTRY, AMERICAN CHEMICAL SOCIETY, US, vol. 47, no. 37, 1 September 2008 (2008-09-01), US, pages 9715 - 9717, XP002630320, ISSN: 0006-2960, DOI: 10.1021/bi8010779 *
MASKOS, K. ; HUBER-WUNDERLICH, M. ; GLOCKSHUBER, R.: "DsbA and DsbC-catalyzed Oxidative Folding of Proteins with Complex Disulfide Bridge Patterns In Vitro and In Vivo", JOURNAL OF MOLECULAR BIOLOGY, ACADEMIC PRESS, UNITED KINGDOM, vol. 325, no. 3, 17 January 2003 (2003-01-17), United Kingdom, pages 495 - 513, XP027180830, ISSN: 0022-2836, DOI: 10.1016/S0022-2836(02)01248-2 *

Also Published As

Publication number Publication date
CA2841824A1 (en) 2013-01-17
HUE035674T2 (en) 2018-05-28
WO2013007388A1 (en) 2013-01-17
IN2014DN00202A (ru) 2015-06-05
LT2731973T (lt) 2018-02-26
SI2731973T1 (en) 2018-04-30
US20140141468A1 (en) 2014-05-22
CN103649124A (zh) 2014-03-19
JP2020028299A (ja) 2020-02-27
PL2731973T3 (pl) 2018-04-30
EP3339325A1 (en) 2018-06-27
CA2841824C (en) 2021-07-13
KR102023786B1 (ko) 2019-09-20
NO2731973T3 (ru) 2018-04-14
KR20140039240A (ko) 2014-04-01
JP7062626B2 (ja) 2022-05-17
CN103649124B (zh) 2016-04-13
CY1119985T1 (el) 2018-12-12
ES2659155T3 (es) 2018-03-14
JP2014521313A (ja) 2014-08-28
MX2014000302A (es) 2014-02-17
JP6431370B2 (ja) 2018-11-28
DK2731973T3 (da) 2018-01-29
AU2012283388B2 (en) 2017-04-20
ME02957B (me) 2018-07-20
BR112013032871A2 (pt) 2017-01-24
JP2018019719A (ja) 2018-02-08
HK1194393A1 (zh) 2014-10-17
BR112013032871A8 (pt) 2022-08-23
RS56926B1 (sr) 2018-05-31
EA201490274A1 (ru) 2014-05-30
US9725516B2 (en) 2017-08-08
AU2012283388A1 (en) 2014-01-09
EP2731973A1 (en) 2014-05-21
HRP20180226T1 (hr) 2018-03-09
EP2731973B1 (en) 2017-11-15
US9957328B2 (en) 2018-05-01
SG10201807560XA (en) 2018-10-30
PT2731973T (pt) 2018-02-22
US20170335003A1 (en) 2017-11-23
IL229947B (en) 2019-10-31
MX348738B (es) 2017-06-27
BR112013032871B1 (pt) 2022-09-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP7062626B2 (ja) 組換えDsbCを発現する細菌宿主系統
AU2017200545B2 (en) Bacterial host strain comprising a mutant spr gene and a wild-type Tsp gene
US9493559B2 (en) Bacterial host strain expressing recombinant DsbC and having reduced Tsp activity
US8969039B2 (en) Bacterial host strain comprising a mutant SPR gene and having reduced TSP activity
KR102036399B1 (ko) 단백질 발현용 재조합 박테리아 숙주 세포
JP6132551B2 (ja) シャペロン活性を保持するプロテアーゼ欠損DegP並びにノックアウトTsp及びptr遺伝子を持つ、組換えタンパク質発現のための細菌株

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s)

Designated state(s): AM AZ BY KZ KG TJ TM