EA000900B1 - Термически стабилизированный контрастный агент - Google Patents

Термически стабилизированный контрастный агент Download PDF

Info

Publication number
EA000900B1
EA000900B1 EA199800739A EA199800739A EA000900B1 EA 000900 B1 EA000900 B1 EA 000900B1 EA 199800739 A EA199800739 A EA 199800739A EA 199800739 A EA199800739 A EA 199800739A EA 000900 B1 EA000900 B1 EA 000900B1
Authority
EA
Eurasian Patent Office
Prior art keywords
stabilizer
agent
contrast agent
freeze
mixture
Prior art date
Application number
EA199800739A
Other languages
English (en)
Other versions
EA199800739A1 (ru
Inventor
Марит Сверд-Нордмо
Пер Хельге Гулликсен
Йорунн Ундхейм Бренден
Анне Кьерсти Фахльвик
Original Assignee
Никомед Имеджинг Ас
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from GBGB9603466.5A external-priority patent/GB9603466D0/en
Priority claimed from GBGB9611894.8A external-priority patent/GB9611894D0/en
Priority claimed from GBGB9624919.8A external-priority patent/GB9624919D0/en
Application filed by Никомед Имеджинг Ас filed Critical Никомед Имеджинг Ас
Publication of EA199800739A1 publication Critical patent/EA199800739A1/ru
Publication of EA000900B1 publication Critical patent/EA000900B1/ru

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K49/00Preparations for testing in vivo
    • A61K49/22Echographic preparations; Ultrasound imaging preparations ; Optoacoustic imaging preparations
    • A61K49/222Echographic preparations; Ultrasound imaging preparations ; Optoacoustic imaging preparations characterised by a special physical form, e.g. emulsions, liposomes
    • A61K49/223Microbubbles, hollow microspheres, free gas bubbles, gas microspheres
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K49/00Preparations for testing in vivo
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K49/00Preparations for testing in vivo
    • A61K49/22Echographic preparations; Ultrasound imaging preparations ; Optoacoustic imaging preparations
    • A61K49/222Echographic preparations; Ultrasound imaging preparations ; Optoacoustic imaging preparations characterised by a special physical form, e.g. emulsions, liposomes
    • A61K49/227Liposomes, lipoprotein vesicles, e.g. LDL or HDL lipoproteins, micelles, e.g. phospholipidic or polymeric

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Acoustics & Sound (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Radiology & Medical Imaging (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Light Receiving Elements (AREA)
  • Compositions Of Macromolecular Compounds (AREA)

Description

Настоящее изобретение относится к термически стабилизированным, высушенным вымораживанием контрастным агентам, содержащим везикулы и предназначенным для получения ультразвукового изображения, а также к способу получения указанных агентов.
Везикулы (термин используется здесь для обозначения однослойных и многослойных структур, например, структур, которые поразному называют липосомами, мицеллами, микропузырьками и микробаллонами) часто используют в качестве средства доставки агентов с терапевтической или диагностической активностью. В области контрастных сред для получения ультразвукового изображения материалы, содержащие везикулы (называемые далее везикулярными материалами), которые при температуре тела находятся в газообразном состоянии, могут применяться в качестве эхогенных контрастных агентов, в частности, для введения в сосудистую систему.
Везикулярную контрастную среду обычно вводят в форме водной дисперсии, содержащей низкую концентрацию везикул по отношению к среде водного носителя. В соответствии с этим хранение и транспортировка таких везикулярных контрастных агентов становятся значительно более эффективными, если окажется возможным хранение везикул в сухой форме.
Сушка везикулярных составов вымораживанием возможна, и для этого в указанные составы обычно включают определенные компоненты, обеспечивающие выполнение технологии сушки. Такие компоненты обычно выполняют одну из двух функций. Наполнители добавляют для повышения общего содержания твердого вещества с целью увеличения механической прочности продукта. Стабилизаторы, называемые иначе криопротекторами или лиопротекторами, добавляют для того, чтобы получить стеклообразное состояние при дегидратации и обеспечить физическую прочность сухого продукта. Примеры стабилизаторов, применяемых таким образом, включают маннит и глюкозу.
Благодаря уменьшенному объему, везикулярные контрастные агенты для ультразвукового изображения, высушенные вымораживанием, обладают преимуществом с точки зрения транспортировки и хранения по сравнению с водными дисперсиями, готовыми для применения, однако они создают дополнительные проблемы, поскольку продукт, высушенный вымораживанием, не является термоустойчивым в диапазоне обычных температур окружающей среды при транспортировке и хранении и, соответственно, до вторичной переработки требует поддержания пониженной температуры (например, от 5 до 10°С).
Неожиданно обнаружилось, что при соответствующем выборе стабилизатора, применяемого для сушки вымораживанием, можно получать везикулярные контрастные агенты для ультразвукового изображения, высушенные вымораживанием, термостойкие при комнатной и более высокой температуре, а также практически при любых температурах, которые обычно встречаются при транспортировке и хранении.
Термостойкий продукт, высушенный вымораживанием, можно хранить и транспортировать без регулирования окружающей его температуры, а также, в частности, поставлять в больницы и другие лечебные учреждения для приготовления на месте дисперсий для введения в организм, при этом от указанных потребителей не требуется специальных условий для хранения.
Таким образом, согласно одному из аспектов изобретение обеспечивает получение высушенного вымораживанием контрастного агента для ультразвукового изображения, содержащего везикулы и стабилизатор сушки вымораживанием, термостойкого при температуре более 20°С, предпочтительно - не менее 22°С, в частности, 22°С, по меньшей мере 25°С, более предпочтительно - по меньшей мере 30°С, и особенно предпочтительно - по меньшей мере 40°С, например, до 65°С или выше. В альтернативном варианте изобретение обеспечивает получение высушенного вымораживанием контрастного агента для ультразвукового изображения, содержащего везикулы и стабилизатор для сушки вымораживанием и имеющего температуру стеклования (Tg) более 20°С, предпочтительно 22°С, особенно предпочтительно - по меньшей мере 25°С, более предпочтительно - по меньшей мере 30°С, и наиболее предпочтительно - по меньшей мере 40°С, например, до 65°С или выше.
Другим аспектом изобретения является способ получения термостойкого, высушенного вымораживанием контрастного агента для ультразвукового изображения, содержащего везикулы, при этом указанный способ включает сушку вымораживанием водной дисперсии, содержащей везикулярный ультразвуковой контрастный агент и стабилизатор или смесь стабилизаторов сушки вымораживанием, и отличается тем, что указанные стабилизатор или смесь стабилизаторов имеют значение Tg не менее 20°С (предпочтительно - не менее 22°С, в частности, по меньшей мере 25°С, более предпочтительно - по меньшей мере 30°С, и особенно предпочтительно - по меньшей мере 40°С, например, до б5°С или выше), а значение Tg' -37°С или выше (предпочтительно - выше -36°С, особенно предпочтительно - выше -35°С, например, от -10 до -37°С).
Следующим аспектом изобретения является ультразвуковая контрастная среда, содержащая водный носитель, стабилизатор или смесь стабилизаторов для сушки вымораживанием и эхогенный везикулярный ультразвуковой контрастный агент, которая отличается тем, что указанные стабилизатор или смесь стабилизаторов имеют значение Tg не менее 20°С (предпочтительно - не менее 22°С, в частности, по меньшей мере 25°С, более предпочтительно - по меньшей мере 30°С, и особенно предпочтительно - по меньшей мере 40°С, например, до 65°С или выше), а значение Tg' -37°С или выше (предпочтительно - выше -36°С, особенно предпочтительно - выше -35° С, например, от -10 до -37°С).
Еще одним аспектом изобретения является применение стабилизатора или смеси стабилизаторов сушки вымораживанием, имеющих значение Tg не менее 20°С (предпочтительно - не менее 22°С, в частности, по меньшей мере 25°С, более предпочтительно - по меньшей мере 30°С, и особенно предпочтительно - по меньшей мере 40°С, например, до 65°С или выше), а значение Tg' -37°С или выше (предпочтительно - выше -36°С, особенно предпочтительно - выше -35°С, например, от -10 до -37°С) для получения ультразвуковой контрастной среды, содержащей везикулы, для использования в области диагностики с применением диагностического ультразвукового изображения.
Следующим аспектом изобретения является способ хранения или транспортировки везикулярного ультразвукового контрастного агента, который отличается тем, что указанный агент высушен вымораживанием, содержит стабилизатор сушки вымораживанием и имеет температуру стеклования (Tg) не менее 20°С (предпочтительно - не менее 22°С и т.п.), при этом указанные транспортировку и хранение осуществляют без охлаждения.
И, наконец, еще одним аспектом изобретения является способ получения ультразвуковой контрастной среды, содержащей везикулы, который включает диспергирование контрастного агента, высушенного вымораживанием, согласно изобретению, в физиологически приемлемой водной дисперсионной среде.
Для всех материалов Tg является температурой стеклования высушенного материала, а Tg' - температурой стеклования максимально концентрированного путем сушки вымораживанием чистого водного раствора материала.
Кроме улучшения термостойкости, везикулярные контрастные агенты, высушенные вымораживанием, согласно изобретению, неожиданно увеличивают способность везикул удерживать галоидзамещенные углеводородные газы и предшественники газов, которые обычно используют в составе ультразвуковых контрастных агентов.
Согласно изобретению, ультразвуковым контрастным агентом может являться любой физиологически приемлемый эхогенный везикулярный агент, однако предпочтительно, чтобы везикулы содержали газ или предшественник газов (например, соединение или смесь соединений, которые находятся в практически газообразной (в том числе в паровой) форме при нормальной температуре человеческого тела (37°С)). При этом можно применять любой биологически совместимый газ, предшественник газов или их смесь. Так, например, газ может включать воздух; азот; кислород; двуокись углерода; водород; закись азота; инертный газ, в частности, гелий, аргон, ксенон или криптон; фторид серы, в частности, гексафторид серы, тиодекафторид или трифторметилпентафторид серы; гексафторид селена; факультативно галогенированный силан, в частности, тетраметилсилан; углеводород с низкой молекулярной массой (например, содержащий до 7 атомов углерода), например, алкан, такой как метан, этан, пропан, бутан или пентан, циклоалкан, в частности, циклобутан или циклопентан, алкен, в частности, пропен или бутен, или алкин, в частности, ацетилен; простой эфир; кетон; сложный эфир; галогенированный углеводород с низкой молекулярной массой (например, содержащий до 7 атомов углерода); или смесь любых указанных выше компонентов. Предпочтительно, по меньшей мере, некоторые из атомов галогенов в галогенированных газах являются атомами фтора. При этом биологически совместимые галогенированные углеводородные газы можно выбрать, например, из ряда, содержащего бромхлордифторметан, хлордифторметан, дихлордифторметан, бромтрифторметан, хлортрифторметан, хлорпентафторэтан, дихлортетрафторэтан, и перфторуглероды, например перфторалканы, в частности, перфторметан, перфторэтан, перфторпропаны, перфторбутаны (например, перфтор-н-бутан, возможно в смеси с другими изомерами, в частности, с перфторизобутаном), перфторпентаны, перфторгексаны и перфторгептаны; перфторалкены, в частности, перфторпропен, перфторбутены (в частности, перфтор-2-бутен) и перфторбутадиен; перфторалкины, в частности, перфтор-2-бутин; и перфторциклоалканы, в частности, перфторциклобутан, перфторметилциклобутан, перфтордиметилциклобутаны, перфтортриметилциклобутаны, перфторциклопентан, перфторметилциклопентан, перфтордиметилциклопентаны, перфтортриметилциклопентаны, перфторциклогексан, перфторметилциклогексан и перфторметилциклогептан. Другие галогенированные газы включают фторированные, например, перфторированные кетоны, в частности, перфторацетон, и фторированные, например, перфторированные простые эфиры, в частности, перфтордиэтиловый эфир.
В особенности предпочтительно, чтобы везикулы содержали перфторалкан, в частности, перфторбутан, перфторпентан или перфторгексан, особенно - н-перфторбутан.
Мембрана везикул может быть сформирована любым физиологически приемлемым мембранообразующим материалом, в частности, фосфолипидами, и может содержать или не со5 держать поперечные связи. Предпочтительны мембраны, образованные смесью заряженных и незаряженных фосфолипидов, и в особенности предпочтительно, чтобы везикулы имели сетчатый поверхностный заряд, предпочтительно отрицательный заряд. Такие фосфолипидные везикулы обладают особенно благоприятным временем сохранения в крови.
Кроме того, везикулы могут содержать агент, продлевающий время их сохранения в крови, такой агент может иметь, например, сопряженные связи с мембраной или липофильной группой, закрепленной в мембране. Указанные агенты, продлевающие время сохранения в крови, например, полиалкиленоксиды, в частности, полиэтиленгликоль, могут действовать в качестве замедлителей опсонизации, задерживающих поглощение везикул ретикулоэндотелиальной системой из сосудистой системы.
Желательно, чтобы, по меньшей мере, 75%, а предпочтительно практически весь фосфолипидный материал в контрастных агентах согласно изобретению состоял из молекул, каждая из которых имеет сетчатый поверхностный заряд при условиях приготовления и/или получения, при этом указанный заряд может быть положительным или более предпочтительно отрицательным. Примеры представителей фосфолипидов с положительным зарядом включают сложные эфиры фосфатидных кислот, в частности, дипальмитоилфосфатидной кислоты или дистеароилфосфатидной кислоты с аминоспиртами, в частности, с гидроксиэтилендиамином. Примеры отрицательно заряженных фосфолипидов включают натуральные (в частности, производные соевых бобов или яичного желтка), полусинтетические (в частности, полностью или частично гидрогенизированные) и синтетические фосфатидилсерины, фосфатидилглицерины, фосфатидилиноситолы, фосфатидные кислоты и кардиолипины. Каждая из жирных ацильных групп таких фосфолипидов обычно содержит примерно от 14 до 22 атомов углерода, как, например, в пальмитоильной и стеароильной группах. Лизоформы таких заряженных фосфолипидов также можно использовать согласно изобретению, при этом термин лизо означает фосфолипиды, содержащие только одну жирную ацильную группу, которая предпочтительно соединена сложноэфирной связью с атомом углерода в положении 1 глицериновой группы. Такие лизоформы заряженных фосфолипидов можно хорошо использовать в смеси с заряженными фосфолипидами, содержащими две жирные ацильные группы.
Фосфатидилсерины представляют особенно предпочтительные фосфолипиды для применения в качестве контрастных агентов согласно изобретению и предпочтительно составляют существенную часть, например, не менее 80% от начального содержания фосфолипидов, в частности, 85-92%, хотя эта величина может быть несколько снижена, например, приблизительно до 70%, при последующей обработке, в частности, при термической стерилизации. Мы не хотим быть связанными теоретическими рассуждениями, однако, можем предположить, что ионные мостиковые связи между карбоксильными и аминогруппами соседних сериновых фрагментов вносят свой вклад в стабильность таких систем. Предпочтительные фосфатидилсерины включают насыщенный (например, гидрированный или синтетический) натуральный фосфатидилсерин и синтетические или полусинтетические диалканоилфосфатидилсерины, в частности, дистеароилфосфатидилсерин, дипальмитоилфосфатидилсерин и диарахидоилфосфатидилсерин.
Важным достоинством при использовании таких контрастных агентов на основе фосфатидилсерина является то, что организм распознает состарившиеся красные кровяные тельца и тромбоциты по высокой концентрации фосфатидилсерина на их поверхности и может, таким образом, выводить указанные контрастные агенты из системы кровообращения тем же способом, что и состарившиеся кровяные тельца. Кроме того, поскольку организм может регистрировать поверхность таких контрастных агентов как эндогенную, они могут не вызывать отрицательных соматических побочных эффектов, в частности, гемодинамических эффектов и других анафилактических реакций, которые могут сопровождать введение некоторых липосомных препаратов (см., например, WO-A-95/12386).
Липосомальные ультразвуковые контрастные агенты, пригодные для применения согласно изобретению, могут быть приготовлены в соответствии с описаниями, приведенными в литературе, см., например, WO-A-92/22247, WO^-94/28780, WO-A-93/05819, WO-A95/16467, PCT/GB 96/01361, и Unger et al. Invest. Radiol. 29 (Suppl. 2): S134-S136 (1994).
Стабилизатор, используемый согласно изобретению, может представлять собой физиологически приемлемый стабилизатор (или смесь стабилизаторов) сушки вымораживанием, имеющий температуру стеклования (Tg) более 20°С, например в диапазоне от 25 до 70°С, а значение Tg' -37°С или выше. Примеры пригодных стабилизаторов включают сахарозу, мальтозу U2O, трегалозу, рафинозу и стахиозу. Одним особенно удачным примером является сахароза, возможно, в смеси с небольшим количеством (например, до 20 мас.%, предпочтительно до 1 0 мас.%) других стабилизаторов.
В общем случае стабилизатор присутствует в составе, высушенном вымораживанием, в концентрации, значительно превышающей концентрацию везикулярного контрастного агента, например, при массовом соотношении, по меньшей мере, 1 0:1 , более предпочтительно, по меньшей мере, 20:1 , оптимально - 200:1 , например, до 5000:1 или даже выше. В соответствии с этим вклад высушенного продукта в температуру стеклования (Tg) является относительно независимым от везикулярного компонента, и по обычным методикам можно легко проверить, образуют ли при сушке потенциальные стабилизаторы в сочетании с другими эксципиентами, присутствующими в водном носителе, продукт с температурой стеклования (Tg), превышающей 20°С.
Удобно, если стабилизатор присутствует в составе, подлежащем сушке вымораживанием, в концентрации от 1 до 50 мас.%, предпочтительно от 5 до 30%, более предпочтительно от 10 до 20 мас.%. Концентрация стабилизатора при желании может значительно превышать изотонические концентрации, поскольку при восстановлении после сушки вымораживанием продукт можно разбавить. Везикулярный компонент предпочтительно присутствует в концентрации от 0,01 до 5 мас.%, предпочтительно от 0,1 до 3%, особенно предпочтительно примерно от 0,5 до 1,5 мас.% (считая, что его массу составляет только масса материала, образующего мембрану). Количество стабилизатора относительно разбавляющей жидкости, используемой для превращения продукта, высушенного вымораживанием, в дисперсию, которую можно вводить в организм, выбирают в зависимости от зоны организма или органа, изображение которых требуется получить, а также от способа введения в организм. Так, например, оно может не менее чем в два раза превышать содержание в составе, который подвергался сушке вымораживанием.
В ультразвуковых исследованиях, в частности, в эхокардиографии, для обеспечения свободного прохождения через легочную систему и получения резонанса на частотах, предпочтительных для формирования изображения, примерно 0,1-15 МГц, может оказаться удобным применение везикул со средним размером 0,1-10 мкм, например, 1-7 мкм. Везикулы можно получать с очень узким распределением размера в диапазоне, предпочтительном для эхокардиографии, что в значительной степени повышает их эхогеничность, а также их безопасность для живого организма, и придает контрастным агентам особое преимущество для применения в таких областях, как измерение кровяного давления, контроль кровообращения и ультразвуковая томография. Так, например, можно легко получить продукты, в которых более 90% (например, по меньшей мере, 95%, предпочтительно, по меньшей мере, 98%) везикул имеют диаметры в интервале 1-7 мкм, и менее 5% (например, не более 3%, предпочтительно не более 2%) везикул имеют диаметр более 7 мкм.
В ультразвуковых исследованиях контрастную среду можно вводить, например, такими дозами, чтобы количество мембранообразущего материала (например, фосфолипида) составляло в пределах 0,1-10 мкг/кг массы тела, более предпочтительно 1-5 мкг/кг. Применение мембранообразущего материала в таком малом количестве является важным достоинством для минимизации возможных токсических побочных эффектов.
Общее содержание мембранообразущего материала в готовых для применения составах, полученных с использованием высушенного продукта согласно изобретению, желательно составляет от 0,01 до 5 мас%., предпочтительно от 0,05 до 2,0 мас.% и особенно предпочтительно около 0,5 мас.%.
Состав, подлежащий сушке вымораживанием, предпочтительно содержит, по меньшей мере, один наполнитель, например, многоатомный спирт (например, многоатомный спирт С3, в частности, глицерин или пропиленгликоль) или полисахарид, в частности, декстран, или полигликоль, в частности, полиэтиленгликоль, или их смеси. Обычно наполнитель может быть использован в аналогичной или несколько меньшей концентрации по сравнению с концентрацией стабилизатора, например от 3 до 10 мас.%, предпочтительно около 5 мас.%. Наполнители должны обладать способностью к кристаллизации во время сушки вымораживанием, поскольку только в кристаллическом состоянии они не оказывают влияния на стабильность продукта. Тем самым они отличаются от стабилизаторов, которые должны присутствовать в аморфном состоянии во время сушки вымораживанием.
При желании другие эксципиенты могут присутствовать в составе, подлежащем сушке, или могут быть добавлены в готовый продукт перед введением в организм. Такие эксципиенты могут включать, например, регуляторы рН, осмотические регуляторы, усилители вязкости, эмульгаторы и т.п., и их можно использовать в обычных количествах.
Высушенный продукт обычно имеет форму порошка и легко может быть разбавлен водой, водным раствором, в частности, физиологическим раствором поваренной соли (который можно предпочтительно сбалансировать таким образом, чтобы конечный продукт для инъекций не был гипотоническим), или раствором, содержащим одно или несколько веществ, регулирующих тонус, в частности, соли (например, катионы плазмы с физиологически приемлемыми противоионами), или сахара, сахаристые спирты, гликоли и другие неионные многоатомные спирты (например, глюкоза, сахароза, сорбит, маннит, глицерин, полиэтиленгликоли, пропиленгликоли и т.п.). Обычно восстановление влагосодержания требует только минимального перемешивания, которое можно обеспечить, например, легким ручным встряхиванием. Размер везикул, получаемых при этом, является хорошо воспроизводимым, практически не зависит от величины прилагаемой энергии перемешивания и определяется размером везикул, полученных в исходной везикулярной диспер9 сии, при этом данный размерный параметр сохраняет удивительное постоянство в лиофилизованном и разбавленном продукте. Поскольку размер везикул в исходной дисперсии можно легко регулировать технологическими параметрами, в частности, способом, скоростью и продолжительностью перемешивания, конечный размер везикул можно также легко регулировать.
Объем и концентрацию разбавляющей жидкости при желании можно сбалансировать таким образом, чтобы сделать получаемые готовые к употреблению составы практически изотоническими. Таким образом, объем и концентрация выбранной разбавляющей жидкости зависят от типа и содержания стабилизатора (и других наполнителей), присутствующих в продукте, подлежащем сушке вымораживанием.
Лиофилизированные продукты согласно изобретению доказали свою стабильность при хранении в нормальных условиях в течение нескольких месяцев. Везикулярные дисперсии, получаемые путем разбавления водой (или другими разбавляющими жидкостями, как описано выше) могут быть стабильными в течение достаточно длительного периода, например, по меньшей мере, до 12 ч, что дает существенную гибкость с точки зрения времени разбавления продукта перед инъекцией.
Если разбавляющая жидкость содержит в качестве регулятора тонуса то же самое соединение, которое было использовано в качестве стабилизатора при лиофилизации, то количество стабилизатора, присутствующее в составе для сушки вымораживанием, должно быть достаточным только для оптимальной стабилизации во время сушки вымораживанием. Таким образом, изотоничность конечного продукта можно обеспечить за счет подбора адекватного количества и концентрации разбавляющей жидкости. В связи с этим допускается значительная гибкость относительно концентрации и типа соединения (соединений), применяемых в качестве стабилизатора (стабилизаторов) на операции сушки вымораживанием, а также относительно концентрации и типа соединения (соединений) в разбавляющей жидкости, при которых можно получать разбавленный продукт.
Сушка вымораживанием согласно изобретению может быть выполнена обычным образом, однако применение стабилизаторов согласно изобретению может давать дополнительное преимущество: поскольку перед сушкой составы обычно имеют более высокую температуру стеклования (Tg'), чем эквивалентные составы, содержащие криопротекторы, в частности, глюкозу или маннит, то можно использовать более короткие циклы сушки вымораживанием.
Изобретение описано выше на примере везикулярных ультразвуковых контрастных агентов. Однако изобретение применимо и к везикулярным контрастным агентам для других способов получения диагностического изображения (например, магнитный резонанс, рентгеноскопия, SPECT, PET, магнитография и т.п.).
Ниже приведены неограничивающие примеры, иллюстрирующие изобретение.
Пример 1 . Приготовление лиофилизированного продукта.
500,4 мг гидрированного яичного фосфатидилсерина добавили к 100 мл воды, содержащей 5,4 мас.% смеси пропиленгликоля и глицерина (3:10 по массе). Смесь перемешали встряхиванием и нагрели до 80°С в течение пяти минут, выдержали для охлаждения до комнатной температуры, снова перемешали встряхиванием и оставили на ночь перед использованием.
мл полученного раствора перенесли в круглодонную колбу с конической горловиной. Колба была снабжена стеклянной рубашкой, имеющей вход и выход для регулировки температуры, подключенные к водяной бане с температурой, поддерживаемой при 25°С. Ось роторного смесителя ввели в раствор, и во избежание утечки газа пространство между стенкой горловины и осью смесителя плотно закрыли специально изготовленной металлической пробкой, снабженной системой ввода/вывода газа для регулировки содержания газа и давления. Систему вывода газа подключили к вакуумному насосу и дегазировали раствор в течение одной минуты. Затем через систему ввода газа ввели газообразный перфтор-н-бутан.
Раствор гомогенизировали при 23000 об./мин в течение 10 мин, поддерживая ось смесителя в таком положении, чтобы отверстия находились несколько выше поверхности жидкости. Получили дисперсию белого цвета с консистенцией сливок, которую перенесли в герметичный контейнер и промыли перфтор-нбутаном. Затем дисперсию перенесли в разделительную воронку и центрифугировали при 12000 об./мин в течение 30 мин, получив кремовый слой с пузырьками на поверхности и мутный слой раствора. Мутный слой удалили, заменив его водой. Затем центрифугирование повторили дважды, но теперь при 1 2000 об./мин в течение 1 5 мин. После последнего центрифугирования верхний слой заменили 1 0% (мас.) раствором сахарозы. Полученную дисперсию разлили по 2 мл в 1 0 мл флаконы с плоским дном, специально разработанные для лиофилизации, охладили их до -47°С и подвергали лиофилизации примерно в течение 48 ч, получив белое легкое мелкокристаллическое вещество. Затем перенесли флаконы в вакуумную камеру, удалили с помощью вакуумного насоса воздух и заменили его газообразным перфтор-н-бутаном. Перед применением добавили воду и в течение нескольких секунд осторожно встряхивали флаконы вручную, получив дисперсии микропузырьков, пригодные в качестве ультразвуковых контрастных агентов.
Характеристики
Распределение размеров и объемную концентрацию микропузырьков измеряли с помощью прибора Coulter Counter Mark II с апертурой 50 мкм и пределами измерения 1-30 мкм. Образцы объемом 20 мкл разбавили 200 мл физиологического раствора, насыщенного воздухом при комнатной температуре, и выдерживали в течение 3 мин для приведения к равновесию перед измерением.
Ультразвуковое определение проводили на экспериментальном приборе, несколько модифицированном относительно описания de Jong, N. and Hoff, Ultrasonics, 31: 175-181 (1993). Этот
Характеристики in vitro пузырьковых дисперсий, полученных согласно примеру 1 . Численные и объемные взвешенные концентрации и средние объемные диаметры
Численная концентрация (106/мл) Объемная концентрация (%) Средний объемный диаметр (мкм) Ослабление при 3,5 МГц (дБ/см) Сохранение после снятия избыточного давления (%) Частота при макс. ослаблении (МГц)
10518 6,51 3,16 150,4 96 4,3
Акустические характеристики измеряли согласно приведенному выше описанию.
Пример 2.
Газ, содержащийся в пяти образцах, полученных согласно приведенному выше примеру 1, заменили воздухом, перфторбутаном, гексафторидом серы, трифторметилпентафторидом серы и тетраметилсиланом, соответственно, по следующей методике.
Два образца, содержащие лиофилизированный продукт из примера 1 поместили в эксикатор, имеющий ввод и вывод газа. Эксикатор подсоединили к вакуумно -дистилляторному контроллеру Buchi 168, который обеспечивал регулируемое откачивание образцов и подачу выбранного газа. Образцы откачивали примерно
Таблица 2
Характеристики in vitro микропузырьковых дисперсий, стабилизированных фосфатидилсерином, полученных согласно примеру 2. Численные и объемные взвешенные концентрации и средние объемные диаметры
Газ Численная концентрация (106/мл) Численный средний диаметр (мкм) Объемная концентрация (%) Средний объемный диаметр (мкм)
Перфторбутан 9756 1,8 4,9 5,8
Трифторметилпентафторид серы 10243 1,9 5,9 3,5
Гексафторид серы 9927 1,9 5,7 3,2
Т етраметилсилан 9947 1,9 6,1 3,7
Воздух 9909 1,9 6,4 4,0
Как видно из приведенных выше результатов, при замене газа существенных изменений в распределении размера не происходит. Это показывает, что заданный размер микропузырьков по существу сохраняется как во время лиофилизации, так и при разбавлении (восстановлении влагосодержания).
Результаты опытов in vivo
По одной партии, приготовленной с каждым из пяти газов, оценивали in vivo по усилеприбор позволяет измерять эффективность ультразвукового ослабления разбавленной суспензией контрастного агента в диапазоне частот 2-8 МГц. При измерении ослабления проводили испытание на устойчивость к давлению, выдерживая образец при избыточном давлении 1 20 мм рт.ст. в течение 90 с. Обычно до проведения анализа 2-3 мкл образца разбавляли 55 мл состава Isoton II и перемешивали разбавленную суспензию образца в течение трех минут. В качестве основного параметра чувствительности использовали ослабление при 3,5 МГц вместе с величиной восстановления ослабления при 3,5 МГц после снятия избыточного давления.
Таблица 1 при 1 0 мбар (1 кПа) в течение 5 мин, после чего повышали давление до атмосферного за счет напуска выбранного газа с последующим тщательным закупориванием флаконов. Процедуру повторяли со следующими парами образцов для каждого из выбранных газов.
мл дистиллированной воды добавляли в каждый флакон и осторожно перемешали содержимое флаконов легким встряхиванием вручную перед использованием. Полученные микропузырьковые дисперсии характеризовали с помощью измерения распределения по размерам, описанного в примере 1 . Обобщенные результаты приведены в табл. 2.
нию характеристик Доплера при 10 МГц. Дисперсии вводили кроликам породы шиншилла через ушную вену и проводили измерения по методике Доплера, при этом ультразвуковой датчик помещали непосредственно в каротидную артерию. Записывали интенсивность и продолжительность сигналов и рассчитывали интеграл кривой Доплера. Полученные результаты (см. ниже табл. 3) показывают, что микропузырьки, содержащие перфторбутан, дают наи13 большее усиление интенсивности по Доплеру. Микропузырьки, содержащие гексафторид серы, трифторметилпентафторид серы или тетраметилсилан, являются несколько менее эффективными усилителями характеристик Доплера, чем содержащие перфторбутан, и дают интегралы в пределах 60-80% от соответствующей кривой перфторбутана.
Таблица 3
Результаты внутривенных инъекций кроликам продукта из примера 2. Значения приведены с учетом смещения базовой линии. Единица Доплера определена как приращение сигнала Доплера по отношению к сигналу, получаемому от крови
Газ Интегральное усиление артериального сигнала Доплера (ед. Доплера.с)
Перфторбутан* 10361
Трифторметилпентафторид серы 8006
Тетраметилсилан 6370
Гексафторид серы 6297
Воздух 1024
* Среднее для двух инъекций
Пример 3.
Флакон, содержащий лиофилизированный материал в атмосфере перфторбутана, приготовили, как описано в примере 1. Непосредственно перед применением добавили воду для получения микропузырьковой суспензии.
200 мл жидкого состава Isoton II выдержали на воздухе в течение нескольких дней при комнатной температуре для получения полностью насыщенного воздухом раствора. Еще 200 мл жидкости дегазировали в вакуумной колбе при 60°С в течение одного часа и охладили до комнатной температуры при поддержании вакуума. Напуск воздуха в колбу произвели непосредственно перед использованием.
В каждую из жидкостей добавили по 10 мкл микропузырьковой суспензии и полученные смеси выдержали в термостате в течение 5 мин перед определением размерных характеристик (Coulter Multisizer Mark II).
В дегазированной среде, где ожидалось отсутствие диффузии газов из жидкости в микропузырьки, средний диаметр микропузырьков составил 1,77 мкм, и 0,25% микропузырьков превышали 5 мкм. В жидкости, насыщенной воздухом, соответствующие значения составляли 2,43 мкм и 0,67%; повторные измерения, проведенные через 5 мин, показали, что размеры микропузырьков достигли стабильного уровня.
Эти результаты показали, что средний диаметр микропузырьков увеличивается только на 37%, если на них воздействует насыщенная воздухом жидкость, аналогичная артериальной крови, при этом очень мало пузырьков достигает размера, который может вызывать закупорку капиллярных кровеносных сосудов. Это является существенным отличием от удвоенного размера микропузырьков, содержащих воздух/перфторгексан в аналогичной среде (т.е. сильно разбавленная дисперсия микропузырьков в воде, содержащей растворенный воздух), описанных в примере II заявки WO-A-95/03835.
Пример 4. Сравнение.
Повторили пример 1 , заменив верхний слой перед лиофилизацией на (a) 65 мг/мл сахарозы плюс 65 мг/мл маннита, (b) 1 00 мг/мл маннита плюс 50 мг/мл глюкозы, (c) 20 мг/мл сахарозы, 76 мг/мл маннита и 38 мг/мл глюкозы, и (d) 90 мг/мл сахарозы.
Для мокрых и высушенных составов определили значения Tg и Tg', которые представлены ниже в табл. 4.
Таблица 4
Состав Tg' Tg
(а) -38°С 19°С
(b) -43°С 14°С
(с) -42°С 12°С
(d) -32°С 66°С
Составы от (а) до (с) требуют более длительных циклов сушки вымораживанием, чем состав (d), и в отличие от состава (d) должны храниться при температуре ниже комнатной для поддержания их целостности.
Пример 5. Удержание газа.
Материал, полученный аналогично примеру 1, но с использованием (а) 10% (мас.) сахарозы, (b) 5% (мас.) ПЭГ 3000, (с) 2% (мас.) маннита и 1% (мас.) глюкозы и (d) 5% (мас.) трегалозы для замены верхнего слоя перед лиофилизацией, подвергали интенсивной промывке N2, действию повторных вакуумных циклов и размалыванию для испытания продукта на возможность удержания перфторбутана. После обработки под нагрузкой определили содержание остаточного перфторбутана. Результаты представлены ниже в табл. 5.
Таблица 5
Криопротектор мг ПФБ/г продукта
Сахароза 0,69 ±0,10
ПЭГ 3000 <0,05
Маннит+глюкоза 0,29 ±0,10
Трегалоза 1,24 ±0,38
В предыдущих примерах может быть использовано более высокое содержание стабилизатора (например, 20%, а не 1 0%) и другие жидкие разбавители, кроме воды, например, физиологический раствор или растворы многоатомных спиртов, как описано выше. Аналогичным образом могут быть увеличены лиофилизированные дозы (например, 4 мл вместо 2 мл) и флаконы для лиофилизации (например, 20 мл), а процесс лиофилизации может быть более длительным (например, 60 ч).

Claims (2)

ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ 1. Ультразвуковой контрастный агент, высушенный вымораживанием и содержащий ве15 зикулы, который содержит стабилизатор, стабилизирующий высушиваемый и высушенный вымораживанием контрастный агент при массовом отношении указанного стабилизатора и везикул в указанном агенте, по меньшей мере, 10:1, причем агент является термостабильным при температурах до 65°С и имеет температуру стеклования (Tg) более 20°С. 2. Контрастный агент по п.1, в котором указанный стабилизатор выбирают из группы, состоящей из сахарозы, мальтозы-Н2О, трегалозы, рафинозы и стахиозы, при этом указанный стабилизатор предпочтительно содержит сахарозу. 3. Контрастный агент по п.1 или 2, в котором массовое отношение указанного стабилизатора и везикул в указанном агенте составляет не менее 20:1. 4. Контрастный агент по любому из пп.1-3, в котором везикулы в указанном агенте содержат галоидзамещенный углеводородный газ или предшественник газа, при этом указанный галоидзамещенный углеводородный газ предпочтительно является перфторалканом, более предпочтительно указанный перфторалкан выбирают из перфторбутана и перфторпентана. 5. Контрастный агент по любому из пп.1-4, в котором мембрана везикул в указанном агенте содержит фосфолипид. 6. Способ получения термостойкого ультразвукового контрастного агента, включающий сушку вымораживанием водной дисперсии, содержащей везикулярный ультразвуковой контрастный агент и стабилизатор или смесь стабилизаторов, стабилизирующих высушиваемый и высушенный вымораживанием агент, отличающийся тем, что указанный стабилизатор или смесь стабилизаторов имеет значение Tg не менее 20°С и значение температуры стеклования максимально концентрированного вымораживанием чистого водного раствора указанного стабилизатора или смеси стабилизаторов (Tg') -37°С или выше, и указанный стабилизатор или смесь стабилизаторов присутствуют в указанной дисперсии при массовом отношением к указанному везикулярному ультразвуковому контрастному агенту не менее 1 0:1 . 7. Способ по п.6, в котором указанная водная дисперсия содержит от 1 до 50 мас.% указанного стабилизатора, указанный везикулярный контрастный агент предпочтительно содержит галоидзамещенный углеводородный газ или предшественник газа, более предпочтительно - указанный галоидзамещенный углеводородный газ выбирают из перфторбутана и перфторпентана. 8. Способ по п.6 или 7, в котором указанная водная дисперсия содержит также наполнитель, при этом указанный наполнитель предпочтительно является многоатомным спиртом С3, более предпочтительно - указанная водная дисперсия содержит от 3 до 10 мас.% указанного наполнителя. 9. Ультразвуковая контрастная среда, содержащая водный носитель, стабилизатор или смесь стабилизаторов, стабилизирующих высушиваемый и высушенный вымораживанием агент, и эхогенный везикулярный ультразвуковой контрастный агент, отличающаяся тем, что указанный стабилизатор или смесь стабилизаторов имеет значение Tg не менее 20°С, а значение Tg' -37°С или выше, и указанный стабилизатор или смесь стабилизаторов присутствуют в указанной среде при массовом отношении к указанному везикулярному ультразвуковому контрастному агенту не менее 1 0:1 . 1 0. Способ диагностики состояния млекопитающего с использованием диагностического ультразвукового изображения, включающий введение ультразвуковой контрастной среды, содержащей везикулы, которая содержит стабилизатор или смесь стабилизаторов, используемых при сушке вымораживанием, имеющих значение Tg не менее 20°С, а значение Tg' -37°С или выше, при массовом отношении к везикулам не менее 1 0:1 . 11. Способ хранения или транспортировки ультразвукового контрастного агента, содержащего везикулы, отличающийся тем, что в качестве ультразвукового контрастного агента используют агент по п.1, а хранение и транспортировку производят при температуре окружающей среды.
1
2. Способ получения ультразвуковой контрастной среды, содержащей везикулы, который включает диспергирование в физиологически приемлемой водной дисперсионной среде контрастного агента по любому из пп. 1 -1 2, высушенного вымораживанием.
EA199800739A 1996-02-19 1997-02-19 Термически стабилизированный контрастный агент EA000900B1 (ru)

Applications Claiming Priority (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GBGB9603466.5A GB9603466D0 (en) 1996-02-19 1996-02-19 Improvements in or relating to contrast agents
GBGB9611894.8A GB9611894D0 (en) 1996-06-07 1996-06-07 Improvements in or relating to contrast agents
GBGB9624919.8A GB9624919D0 (en) 1996-11-29 1996-11-29 Product
PCT/GB1997/000458 WO1997029782A1 (en) 1996-02-19 1997-02-19 Thermally stabilized contrast agent

Publications (2)

Publication Number Publication Date
EA199800739A1 EA199800739A1 (ru) 1999-02-25
EA000900B1 true EA000900B1 (ru) 2000-06-26

Family

ID=27268136

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
EA199800739A EA000900B1 (ru) 1996-02-19 1997-02-19 Термически стабилизированный контрастный агент

Country Status (18)

Country Link
EP (1) EP0885016B1 (ru)
JP (1) JP4250747B2 (ru)
KR (1) KR100501863B1 (ru)
CN (1) CN1092988C (ru)
AT (1) ATE237362T1 (ru)
AU (1) AU722735B2 (ru)
CA (1) CA2246778A1 (ru)
CZ (1) CZ262698A3 (ru)
DE (1) DE69720979T2 (ru)
EA (1) EA000900B1 (ru)
EE (1) EE9800248A (ru)
ES (1) ES2197331T3 (ru)
HU (1) HUP9900812A3 (ru)
IL (1) IL125800A0 (ru)
NO (1) NO313815B1 (ru)
NZ (1) NZ331372A (ru)
PL (1) PL328309A1 (ru)
WO (1) WO1997029782A1 (ru)

Families Citing this family (42)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
NZ334365A (en) * 1996-08-02 1999-10-28 Nycomed Imaging As Use of a contrast agent comprising microbubbles of biocompatible gas stabilised by opsonisable amphiphilic material for ultrasound imaging of the liver
GB9717542D0 (en) 1997-08-19 1997-10-22 Nycomed Imaging As Process
AU2001271037A1 (en) * 2000-07-13 2002-01-30 Daiichi Pharmaceutical Co., Ltd. Pharmaceutical compositions containing dds compounds
US6793626B2 (en) 2001-01-17 2004-09-21 Fuji Photo Film Co., Ltd. Ultrasonic scatterer, ultrasonic imaging method and ultrasonic imaging apparatus
DK1228770T3 (da) * 2001-01-31 2005-11-07 Bracco Int Bv Törret kontrastmiddel
WO2004049950A1 (en) 2002-11-29 2004-06-17 Amersham Health As Ultrasound triggering method
ATE480263T1 (de) 2003-02-04 2010-09-15 Bracco Suisse Sa Ultraschall kontrastmittel und verfahren zur erstellung
US9750821B2 (en) 2003-12-22 2017-09-05 Bracco Suisse S.A. Gas-filled microvesicle assembly for contrast imaging
EP1784228B1 (en) 2004-08-18 2016-10-05 Bracco Suisse SA Gas-filled microvesicles composition for contrast imaging
WO2006076826A1 (fr) * 2005-01-18 2006-07-27 Institute Of Pharmacology Toxicology, Academy Of Military Medical Sciences Composition de contraste pour ultrasons utilisant un phospholipide filmogene et procede de preparation de celle-ci
EP2061517B1 (en) 2006-09-05 2010-06-02 Bracco Research S.A. Gas-filled microvesicles with polymer-modified lipids
EP2117603A2 (en) 2006-12-19 2009-11-18 Bracco International B.V. Targeting and therapeutic compounds and gas-filled microvesicles comprising said compounds
WO2009046859A2 (en) 2007-09-11 2009-04-16 Mondobiotech Laboratories Ag Use of af12198 and dago as therapeutic agents
JP2010539007A (ja) 2007-09-11 2010-12-16 モンドバイオテック ラボラトリーズ アクチエンゲゼルシャフト 治療剤としてのペプチドの使用
RU2010114012A (ru) 2007-09-11 2011-10-20 Мондобайотек Лабораториз Аг (Li) ПРИМЕНЕНИЕ Tyr-W-Mif-1 И УРОКОРТИНА 2 В КАЧЕСТВЕ ТЕРАПЕВТИЧЕСКИХ СРЕДСТВ
WO2009033792A2 (en) 2007-09-11 2009-03-19 Mondobiotech Laboratories Ag Gamma 1 msh alone or in combination with pentagastrin as a therapeutic agent
WO2009040036A2 (en) 2007-09-11 2009-04-02 Mondobiotech Laboratories Ag Use of a peptide as a therapeutic agent
US20100210558A1 (en) 2007-09-11 2010-08-19 Dorian Bevec Minigastrin as a therapeutic agent
CA2698751A1 (en) 2007-09-11 2009-04-02 Dorian Bevec Use of a peptide as a therapeutic agent
CA2698783A1 (en) 2007-09-11 2009-03-19 Dorian Bevec Use of a peptide as a therapeutic agent
US20100184676A1 (en) 2007-09-11 2010-07-22 Dorian Bevec Use of a peptide as a therapeutic agent
WO2009039996A2 (en) 2007-09-11 2009-04-02 Mondobiotech Laboratories Ag Use of a peptide as a therapeutic agent
RU2010114058A (ru) 2007-09-11 2011-10-20 Мондобайотек Лабораториз Аг (Li) Применение пептида в качестве терапевтического средства
KR20100058554A (ko) 2007-09-11 2010-06-03 몬도바이오테크 래보래토리즈 아게 치료제로서의 망막 콜린성 뉴런을 위한 신경영양성 인자 (nfrcn) 및 융모성 고나도트로핀―베타 (109―145)의 용도
EP2090322A1 (en) 2008-02-18 2009-08-19 INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale) Use of fsh receptor ligands for diagnosis and therapy of cancer
AU2009301141B2 (en) 2008-10-07 2015-08-27 Bracco Suisse S.A. Targeting construct comprising anti-polymer antibody and liposomes or microvesicles binding to the same
CN101649293B (zh) * 2009-09-02 2012-07-18 中国农业大学 一种微生物冷冻干燥保护剂及其应用
AU2011288511B2 (en) 2010-08-09 2016-01-07 Bracco Suisse Sa Targeted gas-filled microvesicles
EP2426202A1 (en) 2010-09-03 2012-03-07 Max-Planck-Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V. Kinases as targets for anti-diabetic therapy
BR112013016244B1 (pt) 2010-12-24 2021-12-21 Bracco Suisse Sa Formulação farmacêutica compreendendo microvesículas cheias de gás e precursor da mesma
CN108853031A (zh) 2011-10-21 2018-11-23 切拉托尔制药公司 冻干脂质体
EP2589383A1 (en) 2011-11-06 2013-05-08 Max-Planck-Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V. Berlin FKBP subtype-specific rapamycin analogue for use in treatment of diseases
GB201405735D0 (en) * 2014-03-31 2014-05-14 Ge Healthcare As Ultrasound precursor preparation method
GB201411423D0 (en) * 2014-06-26 2014-08-13 Ge Healthcare As Lipid sterilisation method
EP3020813A1 (en) 2014-11-16 2016-05-18 Neurovision Pharma GmbH Antisense-oligonucleotides as inhibitors of TGF-R signaling
CN107206065A (zh) 2014-12-22 2017-09-26 博莱科瑞士股份有限公司 用作疫苗的气体填充的微囊
JP2021516684A (ja) 2018-03-07 2021-07-08 ブラッコ・スイス・ソシエテ・アノニム サイズが制御された微小胞の調製
WO2020260423A1 (en) * 2019-06-25 2020-12-30 Bracco Suisse Sa Freeze-dried composition for preparing calibrated gas-filled microvesicles
DK3990032T3 (da) 2019-06-25 2023-12-18 Bracco Suisse Sa Frysetørret sammensætning til fremstilling af kalibrerede gasfyldte mikrovesikler
US10953023B1 (en) 2020-01-28 2021-03-23 Applaud Medical, Inc. Phospholipid compounds and formulations
CN112891565A (zh) * 2021-04-09 2021-06-04 上海师范大学 锌-二甲基吡啶胺在制备诊断血栓性疾病药物中的应用
EP4105328A1 (en) 2021-06-15 2022-12-21 Max-Planck-Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V. Antisense-oligonucleotides for prevention of kidney dysfunction promoted by endothelial dysfunction by ephrin-b2 suppression

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4857319A (en) * 1985-01-11 1989-08-15 The Regents Of The University Of California Method for preserving liposomes
US4642903A (en) * 1985-03-26 1987-02-17 R. P. Scherer Corporation Freeze-dried foam dosage form
JPH06211645A (ja) * 1993-01-14 1994-08-02 Mitsubishi Kasei Corp リポソーム凍結乾燥製剤

Also Published As

Publication number Publication date
KR100501863B1 (ko) 2005-09-27
CN1092988C (zh) 2002-10-23
EP0885016A1 (en) 1998-12-23
NO983584L (no) 1998-10-16
ES2197331T3 (es) 2004-01-01
CZ262698A3 (cs) 1999-03-17
NO313815B1 (no) 2002-12-09
HUP9900812A2 (hu) 1999-07-28
CA2246778A1 (en) 1997-08-21
EA199800739A1 (ru) 1999-02-25
ATE237362T1 (de) 2003-05-15
JP4250747B2 (ja) 2009-04-08
IL125800A0 (en) 1999-04-11
KR19990082670A (ko) 1999-11-25
NO983584D0 (no) 1998-08-05
NZ331372A (en) 2000-01-28
PL328309A1 (en) 1999-01-18
DE69720979T2 (de) 2004-02-26
EE9800248A (et) 1999-02-15
AU722735B2 (en) 2000-08-10
AU1805197A (en) 1997-09-02
HUP9900812A3 (en) 1999-11-29
WO1997029782A1 (en) 1997-08-21
JP2000506122A (ja) 2000-05-23
CN1213971A (zh) 1999-04-14
DE69720979D1 (de) 2003-05-22
EP0885016B1 (en) 2003-04-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EA000900B1 (ru) Термически стабилизированный контрастный агент
KR100500334B1 (ko) 조영제또는그와관련된개선
KR100382811B1 (ko) 초음파가스현탁물의저장방법
KR100295173B1 (ko) 초음파콘트라스트매질로서유용한가스혼합물
US6165442A (en) Thermally stabilized ultrasound contrast agent
MXPA99001053A (es) Mejoramientos en o que se relacionan con agentes de contraste.
US20060257321A1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
US6217850B1 (en) Method of making lyophilized microbubble compositions useful as contrast agents
JP2001515055A (ja) 造影剤に関する改良
US20010008626A1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
MXPA98006655A (en) Thermally stabilized contrast agent
US20030194376A1 (en) Ultrasound contrast agents and methods of making and using them
NO318875B1 (no) Ultralydkontrastmiddel

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s)

Designated state(s): AM AZ BY KZ KG MD TJ TM RU