DE3222779C2 - - Google Patents
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Description
Die Erfindung betrifft den Gegenstand der Ansprüche.
Verbindungen der allgemeinen Formel
worin R eine Benzoyl-, Acetyl-, t-Butyloxycarbonylgruppe oder
Cyclopentancarbonylgruppe und A ein Rest eine L-α-Aminosäure
ist, sind aus der GB-A 20 50 359 bzw. der EP-A 9 898 bekannt.
Verbindungen dieser Formel, worin R eine Benzoyl- und A
eine D-Phenylalanylgruppe ist, sind aus der EP-A 35 383 bekannt.
Verbindungen dieser Formel, worin R eine Acetal- oder
Benzoylgruppe und A z. B. eine L-Prolyl-, L-Tryptophyl- oder L-Isoleucylgruppe
ist, sind aus der DE-OS 30 18 467 bekannt. Bekannte
Verbindungen der vorstehend erwähnten Formel werden als
ACE-Inhibitoren und als Mittel zur Behandlung von Hypertonie
eingesetzt.
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, Verbindungen bereitzustellen,
die als Mittel zur Behandlung der Angiotensin II zuzuschreibenden
Hypertonie und zur Behandlung der Herzmuskelinsuffizienz
geeignet sind und deren Aktivität länger andauert
als die Aktivität bekannter Verbindungen mit einer ähnlichen Aktivität.
Diese Aufgabe wird durch die Verbindung der Formel (I) gemäß Anspruch
1 und deren pharmazeutisch verträgliche Salze gelöst.
Die Gruppe
in der Formel (I) enthält ein asymmetrisches
Kohlenstoffatom, so daß diese Gruppe in der D-Form
vorliegt.
Zu Beispielen für pharmazeutisch verträgliche Salze der Verbindung
der Formel (I) gehören Salze mit Alkalimetallen wie Natrium
und Kalium, Salze mit Erdalkalimetallen wie Calcium und Magnesium
und Salze mit basischen Aminosäuren wie Arginin und Lysin.
Calciumsalze und Lysinsalze werden bevorzugt.
Wenn R′ in der Verbindung der Formel (III), die bei dem Verfahren
gemäß Anspruch 2 eingesetzt wird, eine Carboxyl-Schutzgruppe
ist, kann R′ eine t-Butylgruppe oder eine durch niedere Alkylgruppen
substituierte Silylgruppe sein und durch Behandlung
mit Fluorwasserstoff, Trifluoressigsäure, Chlorwasserstoff oder
Wasser entfernt werden.
Bei dem reaktiven Derivat der Verbindung der Formel (II),
die bei dem Verfahren gemäß
Anspruch 2 eingesetzt wird, ist
die an der Reaktion teilnehmende Carboxylgruppe aktiviert.
Die Carboxylgruppe kann in einer der auf dem Gebiet
der Peptidsynthese üblicherweise angewandten Formen, beispielsweise
in Form von aktivierten Amiden, Säurehalogeniden,
aktivierten Estern und gemischten Säureanhydriden,
aktiviert sein. Von diesen Formen werden aktivierte Ester
mit N-Hydroxysuccinimid, gemischte Säureanhydride mit
Kohlensäuremonoestern und aktivierte Amide mit Carbonyldimidazol
bevorzugt. Carbodiimide wie Dicyclohexylcarbodiimid
können als Kondensationsmittel zur Bildung einer
Amidbindung zwischen der Carboxylgruppe und der Iminogruppe
eingesetzt werden.
Bei dem reaktiven Derivat der Verbindung der Formel (III)
ist die Iminogruppe der erwähnten Verbindung aktiviert.
Die Iminogruppe kann durch eines der auf dem Gebiet der
Peptidsynthese üblicherweise angewandten Verfahren, beispielsweise
durch das Verfahren der Einführung einer Silylgruppe,
z. B. der Trimethylsilylgruppe, das "Phosphazo-Verfahren"
unter Verwendung einer Phosphorverbindung wie
Phosphortrichlorid [Ann. Chem., 572,96 (1951)], das Verfahren,
bei dem ein Ester der phosphorigen Säure, beispielsweise
der Tetraethylester der pyrosphosphorigen Säure,
eingesetzt wird, oder das "N-Carboxyanhydrid-Verfahren"
(NCA-Verfahren), aktiviert werden.
Die Reaktion kann in einem inerten organischen Lösungsmittel
wie Tetrahydrofuran, Dioxan, Dimethylformamid,
Hexamethylphosphorsäuretriamid, Chloroform, Dichlormethan
oder Acetonitril durchgeführt werden. Die Reaktion wird
im allgemeinen unter Kühlen oder bei Raumtemperatur (-50
bis 20°C), vorzugsweise zwischen -30 und 10°C, durchgeführt.
Die Reaktionsdauer variiert in Abhängigkeit von
der Reaktionstemperatur, der umzusetzenden Verbindungen
und dem Lösungsmittel und liegt im allgemeinen zwischen
0,5 und 48 Stunden, vorzugsweise zwischen 1 und 6 Stunden.
Nach der Amidbildungsreaktion wird jede gegebenenfalls in dem Reaktionsprodukt
vorhandene Schutzgruppe durch eines der vorstehend
für die entsprechenden Schutzgruppen angegebenen
Verfahren entfernt.
Die Verbindung der Formel (I) kann durch irgendein übliches Verfahren,
beispielsweise durch verschiedene Typen der Chromatographie
unter Verwendung von Kieselsäuregel, mit Dextran
vernetztem Polymer oder porösen Polymeren wie Styrol/Divi
nylbenzol-Polymeren oder Acrylsäureester-Polymeren, von
der Reaktionsmischung abgetrennt und gereinigt werden.
Ein geeignetes Entwicklungs-Lösungsmittel kann aus Chloroform,
Ethylacetat, Methanol, Ethanol, Tetrahydrofuran,
Benzol, Wasser und Acetonitril ausgewählt werden. Die
Verbindung der Formel (I) kann alternativ erhalten werden, indem man
das Reaktionsprodukt erst in Form eines organischen Salzes,
beispielsweise eines Dicyclohexylamin-Salzes, isoliert,
worauf das Salz mit einer Säure wie Salzsäure oder
Kaliumhydrogensulfat behandelt wird.
Die auf diese Weise erhaltene Verbindung der Formel (I)
weist an dem heterocyclischen Ring des Prolins eine Carboxylgruppe
auf, so daß sie dazu befähigt ist,
Salze mit pharmazeutisch verträglichen
basischen Materialien zu bilden. Solche Salze
können durch ein übliches Verfahren hergestellt werden,
d. h. indem man die Carboxylgruppe mit einer äquimolaren
Menge einer der vorstehend erwähnten Basen (z. B. mit Alkalimetallen,
Erdalkalimetallen oder basischen Aminosäuren)
behandelt.
Die bei dem Verfahren gemäß Anspruch 2
eingesetzte Verbindung der Formel (II) kann leicht nach
dem folgenden Verfahren hergestellt werden:
Die Verbindung der Formel (VI)
oder ein reaktives Derivat davon
wird mit einer Verbindung der allgemeinen
Formel (VII)
worin R″
ein Wasserstoffatom oder eine Carboxyl-Schutzgruppe
ist oder einem reaktiven Derivat davon, umgesetzt,
worauf R″ entfernt wird, falls R″ eine Schutzgruppe ist,
um die Verbindung der Formel (VIIII)
zu bilden. Anschließend wird die Verbindung
der Formel (VIII) oder ein reaktives Derivat davon mit
einer Verbindung der allgemeinen Formel (IX)
worin R″′ ein Wasserstoffatom oder eine
Carboxyl-Schutzgruppe umgesetzt, worauf R″′ entfernt
wird, falls R″′ eine Schutzgruppe ist.
Zu Beispielen für die reaktiven Derivate
der Verbindung der Formel (VI) gehören die auf dem
Gebiet der Peptidsynthese üblicherweise eingesetzten Derivate
wie z. B. aktivierte Amide, Säurehalogenide, aktivierte
Ester und gemischte Säureanhydride.
Wenn R″ in der Verbindung der Formel (VII) eine Schutzgruppe
ist, sind eine t-Butylgruppe, die mittels Fluorwasserstoff,
Trifluoressigsäure oder Chlorwasserstoff entfernt
werden kann, eine Benzylgruppe, die beispielsweise
durch katalytische Reduktion mit Palladium entfernt werden
kann und niedere Alkylgruppen wie eine Methyl- oder
Ethylgruppe, die durch Hydrolyse unter alkalischen Bedingungen
entfernt werden können, vorteilhafte Beispiele
für R″.
Bei dem reaktiven Derivat der Verbindung der Formel (VII)
ist die Aminogruppe aktiviert. Ein solches Derivat wird
durch eines der auf dem Gebiet der Peptidsynthese üblicherweise
angewandten Aktivierungsverfahren, beispielsweise
die Einführung einer Silylgruppe (z. B. einer Trimethylsilylgruppe),
das "Phosphazo-Verfahren", das Verfahren,
bei dem ein Ester der phosphorigen Säure verwendet wird,
oder das N-Carboxyanhydrid-Verfahren, hergestellt.
Als Kondensationsmittel zur Bildung einer Amidbindung
zwischen der Verbindung der Formel (VI) und der Verbindung
der Formel (VII) kann ein Carbodiimid wie Dicyclohexylcarbodiimid
eingesetzt werden.
Die Reaktion kann in einem inerten organischen Lösungsmittel
wie Tetrahydrofuran, Dioxan, Dimethylformamid,
Hexamethylphosphorsäuretriamid, Chloroform, Dichlormethan
oder Acetonitril durchgeführt werden. Die Reaktion wird
im allgemeinen unter Kühlen oder bei Raumtemperatur
(-50 bis 20°C), vorzugsweise zwischen -30 und 10°C, durchgeführt.
Die Reaktionsdauer variiert in Abhängigkeit von
der Reaktionstemperatur, den umzusetzenden Verbindungen
und dem Lösungsmittel und liegt im allgemeinen zwischen
0,5 und 48 Stunden, vorzugweise zwischen 1 und 6 Stunden.
Wenn R″ in Formel (VII) eine Schutzgruppe ist, kann R″
durch eines der vorstehend beschriebenen, üblichen Verfahren
aus dem Reaktionsprodukt entfernt werden.
Die Verbindung der Formel (VIII) kann durch irgendein
übliches Verfahren, beispielsweise durch Umkristallisieren
aus Ethylacetat, n-Hexan, Aceton oder Wasser oder durch
verschiedene Typen der Chromatographie, wie sie im Zusammenhang
mit der Abtrennung und Reinigung der Verbindung
der Formel (I) beschrieben wurden, oder durch Zersetzung
eines organischen Salzes des Reaktionsprodukts mit einer
Säure, von der Reaktionsmischung abgetrennt und gereinigt
werden.
Die Verbindung der Formel (VIII) kann mit der Verbindung
der Formel (IX) umgesetzt werden, indem die Carboxylgruppe
in der Verbindung der Formel (VIII) mit der Mercaptogruppe
in der Verbindung der Formel (IX) in Gegenwart eines Kondensationsmittels
(d. h. von Carbodiimiden wie Dicyclohexylcarbodiimid)
umgesetzt wird. Mit der Verbindung der
Formel (IX) kann ein reaktives Derivat der Verbindung
der Formel (VIII) umgesetzt werden. Zu Beispielen für
das reaktive Derivat der Verbindung der Formel (VIII)
gehören aktivierte Amide, Säurehalogenide, aktivierte
Ester und gemischte Säureanhydride. Aktivierte Amide mit
Carbonyldiimidazol werden bevorzugt.
Die Carboxylgruppe in der Verbindung der Formel (IX) kann
geschützt sein; es ist jedoch auch möglich, daß diese
Carboxylgruppe nicht geschützt ist. Bevorzugte Schutzgruppen
sind die t-Butylgruppe und andere Gruppen, die unter
sauren Bedingungen entfernt werden können.
Die zur Bildung des Thiolesters führende Reaktion wird
in einem inerten organischen Lösungsmittel wie Tetrahydrofuran,
Dioxan, Dimethylformamid, Hexamethylphosphorsäuretriamid,
Chloroform, Dichlormethan oder Acetonitril
ausgeführt. Die Reaktion läuft im allgemeinen unter Kühlen
oder bei Raumtemperatur (-50 bis 20°C) ab,
vorzugsweise zwischen -30° und 10°C, wenn die Verbindung
der Formel (VIII) in Form eines aktivierten Amids
oder eines Säurehalogenids eingesetzt wird, während
sie vorzugsweise zwischen -10 und 10°C durchgeführt
wird, wenn die Verbindung der Formel (VIII) in Form eines
Säureanhydrids eingesetzt wird. Die Reaktionsdauer variiert
in Abhängigkeit von der Reaktionstemperatur, den
umzusetzenden Verbindungen und dem Lösungsmittel und liegt
im allgemeinen zwischen 0,5 und 48 Stunden, vorzugsweise zwischen
1 und 6 Stunden. Nach der zur Bildung des Thiolesters
führenden Reaktion wird R″′ aus dem Reaktionsprodukt entfernt,
wenn R″′ eine Schutzgruppe ist. Wenn die Schutzgruppe
eine t-Butylgruppe ist, kann sie durch ein übliches
Verfahren, d. h. durch Umsetzung mit Fluorwasserstoff,
Trifluoressigsäure oder Chlorwasserstoff, entfernt werden.
Die Verbindung der Formel (II) kann durch irgendein übliches Verfahren,
beispielsweise durch Umkristallisieren aus einem organischen
Lösungsmittel wie Ethylacetat oder n-Hexan, verschiedene
Typen der Chromatographie, wie sie in Verbindung
mit der Abtrennung und Reinigung der Verbindung der Formel
(I) beschrieben wurden, oder Zersetzen eines organischen
Salzes des Reaktionsproduktes mit einer Säure, von der
Reaktionsmischung abgetrennt und gereinigt werden.
Wenn R′ in
der Verbindung der Formel (V), die bei dem Verfahren
gemäß Anspruch 3 eingesetzt wird, eine Carboxyl-Schutzgruppe ist, kann
R′ eine t-Butylgruppe oder eine durch niedere Alkylgruppen
substituierte Silylgruppe sein und durch Behandlung mit
Fluorwasserstoff, Trifluoressigsäure, Chlorwasserstoff
oder Wasser entfernt werden.
Bei dem reaktiven Derivat der Verbindung der Formel (IV),
die bei dem Verfahren gemäß Anspruch 3 eingesetzt wird, ist
die an der Reaktion teilnehmende Carboxylgruppe aktiviert.
Die Carboxylgruppe kann in einer geeigneten Form,
beispielsweise in Form von aktivierten Amiden, Säurehalogeniden,
aktivierten Estern oder gemischten Säureanhydriden,
aktiviert sein. Aktivierte Amide mit Carbonyldiimidazol
werden bevorzugt. Carbodiimide wie Dicyclohexylcarbodiimid
können als Kondensationsmittel zur Bildung einer
Thiolesterbindung aus der Carboxylgruppe und der Mercaptogruppe
eingesetzt werden.
Die Reaktion zwischen der Verbindung der Formel (IV) oder
ihrem reaktiven Derivat und der Verbindung der Formel (V)
wird in einem inerten organischen Lösungsmittel wie
Tetrahydrofuran, Dioxan, Dimethylformamid, Hexamethylphosphorsäuretriamid,
Chloroform, Dichlormethan oder Acetonitril
durchgeführt. Die Reaktion wird im allgemeinen unter
Kühlen oder bei Raumtemperatur (-50 bis 20°C) durchgeführt,
und sie wird vorzugsweise zwischen -30 und 10°C durchgeführt,
wenn die Verbindung der Formel (IV) in Form eines
aktivierten Amids oder eines Säurehalogenids eingesetzt
wird, während sie vorzugsweise zwischen -10 und 10°C
durchgeführt wird, wenn die Verbindung der Formel (IV)
in Form eines Säureanhydrids eingesetzt wird. Die Reaktionsdauer
variiert in Abhängigkeit von der Reaktionstemperatur,
der umzusetzenden Verbindungen und dem Lösungsmittel
und liegt im allgemeinen zwischen 0,5 und 48 Stunden,
vorzugsweise zwischen 1 und 6 Stunden. Nach der zur Bildung des
Thiolesters führenden Reaktion wird von dem Reaktionsprodukt
jede gegebenenfalls vorhandene Schutzgruppe nach einem der
für die entsprechenden Schutzgruppen angegebenen Verfahren
entfernt.
Die Verbindung der Formel (I) kann durch eines der vorstehend beschriebenen,
üblichen Verfahren, beispielsweise durch verschiedene
Typen der Chromatographie unter Verwendung von
Kieselsäuregel, mit Dextran vernetztem Polymer oder porösen
Polymeren wie Styrol/Divinylbenzol-Polymeren oder
Acrylsäureester-Polymeren, von der Reaktionsmischung abgetrennt
und gereinigt werden. Ein geeignetes Entwicklungs-Lösungsmittel
kann aus Chloroform, Ethylacetat, Methanol,
Ethanol, Tetrahydrofuran, Benzol, Wasser und Acetonitril
ausgewählt werden. Die Verbindung der Formel (I) kann alternativ erhalten
werden, indem man das reaktionsprodukt erst in Form
eines organischen Salzes, beispielsweise eines Dicyclohexylamin-Salzes,
isoliert, worauf das Salz mit einer Säure
wie Salzsäure oder Kaliumhydrogensulfat behandelt wird.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen, nämlich die
Verbindung der Formel (I) und ihre pharmazeutisch verträglichen
Salze, verhindern die Bildung von Angiotensin II
aus Angiotensin I, indem sie die Aktivität des Angiotensin-
Umwandlungsenzyms ("converting enzyme") inhibieren,
und sind deshalb zur Behandlung der Angiotensin II zuzuschreibenden
Hypertonie und als Mittel zur Behandlung der
Herzmuskelinsuffizienz geeignet.
Ein Angiotensin-Umwandlungsenzym wurde aus Kaninchenlunge
extrahiert. Eine 0,111 m Borsäure-Na₂CO₃-Pufferlösung
(pH 8,3; 0,6 ml), 0,2 ml einer 0,111 m Borsäure-
Na₂CO₃-Pufferlösung (pH 8,3), die 25 mmol/l Benzoylglycylhistidylleucin
(Substrat) enthielten, und 0,1 ml einer 0,111 m Borsäure-
Na₂CO₃-Pufferlösung (pH 8,3), die 10-8 bis 10-3 mol/l der
in Tabelle 1 angegebenen Testverbindungen
enthielten, wurden in Reagenzgläser eingefüllt und 5
bis 10 Minuten bei 37°C vorbebrütet. Dann wurden
zu jedem Reagenzglas 0,1 ml einer Lösung des Enzyms
(Aceton-Pulver) hinzugegeben, und jede Mischung wurde
30 Minuten lang bei 37°C bebrütet. Das mittels des Enzyms
gebildete Benzoylglycin wurde mit Ethylacetat in Gegenwart
von Salzsäure extrahiert, und die Menge des Benzoylglycins
wurde durch UV-Absorption bei 228 nm bestimmt. Die Enzymaktivität
in Gegenwart der Testverbindung wurde relativ
zu der Enzymaktivität in Abwesenheit der Testverbindung,
(100) bestimmt. Die Konzentration jeder Testverbindung,
bei der die relative Aktivität des Enzyms 50% betrug,
wurde herangezogen, um die Aktivität der jeweiligen Testverbindung
bezüglich der Inhibierung der Aktivität des Enzyms
auszudrücken, und als I₅₀-Wert angegeben.
Als Versuchstiere wurden männliche Ratten vom SD-Stamm mit einer Körpermasse von jeweils
350 g, die 24 Stunden ohne Nahrungszufuhr gehalten
worden waren, durch intraperitoneale Verabreichung
von Natriumpentobarbital in einer Dosis von 65 ml/kg
anästhesiert. Die Luftröhre, die Speiseröhre, die Oberschenkelarterie
und die Oberschenkelvene jedes Versuchstiers
wurden freigelegt. Eine Kanüle für die orale Verabreichung,
eine Kanüle zur Messung des Blutdrucks und eine Kanüle
zur intravenösen Verabreichung wurden in die Speiseröhre,
die Oberschenkelarterie bzw. die Oberschenkelvene eingeführt.
Natriumbarbital (20 mg/kg) wurde subkutan
zu einem geeigneten Zeitpunkt verabreicht, um die Nachanästhesiebedingungen
und den Blutdruck der Versuchstiere
bei einem festgelegten Niveau zu halten. Für die orale
Verabreichung wurde 1 ml einer Lösung einer Testverbindung
in den Verdauungstrakt jedes Versuchstieres 10 Sekunden
verabreicht, und die Verabreichung wurde mit 0,5 ml einer
0,9%igen physiologischen Kochsalzlösung vollendet. Für
die intravenöse Verabreichung wurden 0,1 ml einer Lösung der aktiven
Verbindung über einen Zeitraum von 10 Sekunden in die
Oberschenkelvene eingeleitet. Der Blutdruck und der
Herzschlag wurden durch ein Druckmeßgerät bzw. einen
Kardiographen bestimmt und auf dem Oszillographen eines
Aufzeichnungsgerätes aufgezeichnet.
Etwa 10 Minuten nach Einführung der Kanüle und nach der
Bestätigung, daß der Körperblutdruck und der Herzschlag
sich auf einem festgelegten Niveau bei den 36 Versuchstieren
stabilisiert hatten (14,44±0,61 kPa bzw. 366,6±26,8
Schläge/Minute) wurde Angiotensin-I intravenös
in einer Dosis von 0,3 µg/kg verabreicht, und der Blutdruck
wurde zeitweilig um 5,68±0,99 kPa erhöht. Nachdem
die Verabreichung von Angiotensin-I zweimal wiederholt
worden war und nach Bestätigung, daß das Ansprechen auf
die Blutdruckerhöhung durch Angiotensin-I sich nicht
änderte, wurde die Testverbindung
in einer Dosis von 0,4 µmol/kg
oral verabreicht. Nach der Verabreichung der Testverbindung
wurde Angiotensin-I intravenös verabreicht, und der Blutdruck
wurde 60, 90, 120 und 180 min nach der Verabreichung
des Angiotensins-I gemessen, um die prozentuale
Inhibierung der durch Angiotensin-I induzierten Blutdruckerhöhung
zu bestimmen.
Die Testergebnisse der Versuche I und II sind in Tabelle 1
zusammengestellt.
Aus den vorstehenden Vergleichsversuchen ergibt sich,
daß die erfindungsgemäße Verbindung beim Versuch I im wesentlichen
keine Unterschiede zu der EP-A 1 00 09 898 bekannten
Verbindung und den Vergleichsverbindungen A und B zeigt.
Andererseits ist
jedoch die In-vivo-Aktivität
der erfindungsgemäßen Verbindung beim Versuch II der
In-vivo-Aktivität der bekannten Verbindungen deutlich überlegen.
Die erfindungsgemäße
Verbindung zeigt unerwartet gute Effekte als Arzneimittel.
Aus den vorstehenden Untersuchungsergebnissen ergibt
sich, daß die erfindungsgemäße Verbindung den gut wirkenden
Vergleichsverbindungen des Standes der Technik überlegen
ist, und zwar im Hinblick darauf, daß kaum freie Mercaptogruppen
gebildet werden, selbst wenn die Verbindung Hydrolysebedingungen
ausgesetzt wird und daß die Aktivität
der erfindungsgemäßen Verbindung auf einem hohen Niveau
lange Zeit beibehalten wird.
Die Aktivität der erfindungsgemäßen Verbindungen dauert
länger an als die Aktivität bekannter Verbindungen mit
einer ähnlichen Aktivität wie z. B. 3-Mercapto-2-D-methyl-
propionoyl-L-prolin (üblicherweise als Captopril bezeichnet),
so daß die gewünschte Regulierung des Blutdrucks
durch eine geringere Anzahl von Verabreichungen pro Tag
erzielt werden kann. Captopril und andere bekannte Verbindungen
führen in der Anfangsperiode der Verabreichung
zu einer plötzlichen Senkung des Blutdrucks, woraus sich
eine orthostatische, hypotonische Asthenie [Lancet, Bd.
1, Nr. 8, 115, S. 557 (10. März 1979)] entwickeln kann, während
die erfindungsgemäßen Verbindungen in der Anfangsperiode
der Verabreichung nur eine mäßige, blutdrucksenkende
Wirkung haben, so daß das Risiko der Entwicklung
zu einer orthostatischen, hypotonischen Asthenie gering
ist. Arzneimittel wie Captopril, die eine freie Mercaptogruppe
enthalten, führen zu verschiedenen Nebenwirkungen,
die der Mercaptogruppe zuzuschreiben sind. Einige Beispiele
für solche Nebenwirkungen sind Störungen des Geschmackssinns,
Bildung von Albumin im Urin, Agranulocytose und
mit Fieber verbundene Hautkrankheiten, von denen in Lancet,
Bd. 1, Nr. 8160, S. 150 (19. Januar 1980), Lancet, Bd. 2,
Nr. 8186, S. 129 (19. Juli 1980) und South African Medical
Journal, Bd. 58, 172 (1980) berichtet worden ist. Im Gegensatz
dazu ist die Thiolesterverbindung in den erfindungsgemäßen
Verbindungen in vivo nicht hydrolyseempfindlich,
weshalb die Bildung einer Mercaptogruppe aus
der Thiolesterbindung wenig wahrscheinlich ist. Aus diesem
Grund ist die Wahrscheinlichkeit gering, daß die erfindungsgemäßen
Verbindungen die vorstehend erwähnten,
der Mercaptogruppe zuzuschreibenden Nebenwirkungen verursachen.
Aus der Verbindung der Formel (I) und ihren pharmazeutisch
verträglichen Salzen können Arzneimittel
für die orale Verabreichung wie Tabletten, Kapseln,
Granula, Pulver, Sirupe und Elixiere oder sterile
Lösungen oder Suspensionen für die parenterale Verabreichung
formuliert werden. Zu diesem Zweck können aus einer
oder mehr als einer erfindungsgemäßen Verbindung (als
aktivem Bestandteil) und pharmazeutisch verträglichen Adjuvantien
wie Bindemitteln bzw. Hüllen, Trägern, Stabilisierungsmitteln
und Geschmacksstoffen Arzneimittel
hergestellt werden. Die Tagesdosis der erfindungsgemäßen
Verbindungen für Erwachsene beträgt bei der oralen
Verabreichung 0,5 mg bis 2 g, vorzugsweise etwa 1 bis 500 mg,
und bei der parenteralen Verabreichung 0,1 bis 600 mg,
vorzugsweise etwa 0,3 bis 300 mg.
Das Verfahren zur Herstellung der erfindungsgemäßen
Verbindungen wird durch die nachstehenden Beispiele näher
erläutert.
4,5 g D-Alanin wurden unter Rühren in 230 ml wäßrigem
1 n Na₂CO₃ aufgelöst. Zu der Lösung wurden bei 5 bis
10°C 100 ml Tetrahydrofuran, das 9,0 g Cyclohexancarbonylchlorid
enthielt, zugetropft. Die Mischung wurde bei dieser
Temperatur 30 Minuten gerührt und dann 1,5 Stunden
bei Raumtemperatur gerührt. Danach wurde zu der Reaktionsmischung
2 n HCl hinzugegeben, um den pH der Reaktionsmischung
auf einen Wert zwischen 1 und 2 einzustellen. Die
Reaktionsmischung wurde mit Ethylacetat extrahiert, und
die organische Schicht wurde mit gesättigter NaCl-Lösung
gewaschen und über Magnesiumsulfat getrocknet. Das Filtrat
wurde unter Vakuum eingedampft, wobei eine rohe Verbindung
erhalten wurde. Umkristallisieren aus Ethylacetat/n-Hexan
ergab 4,65 g N-Cyclohexancarbonyl-D-alanin. [α]D=+26,6°.
5,97 g N-Cyclohexancarbonyl-D-alanin wurden in 100 ml
trockenem Tetrahydrofuran aufgelöst. Zu der Lösung wurden
zwischen -20 und -15°C 5,84 g Carbonyldiimidazol hinzugegeben,
und die Mischung wurde eine Stunde bei dieser Temperatur
gerührt. Danach wurden 3,60 g 3-Mercapto-2-D-methylpropionsäure
hinzugegeben, und die Mischung wurde eine Stunde
zwischen -15 und -10°C und dann wieder eine Stunde bei Raumtemperatur
gerührt. Die Mischung wurde zur Entfernung des
Lösungsmittels unter Vakuum eingedampft. Zu dem Rückstand
wurden 40 ml Wasser gegeben, und zu der Mischung wurde
2 n HCl gegeben, um den pH der Mischung auf einen
Wert zwischen 1 und 2 einzustellen. Die Mischung wurde
mit Ethylacetat extrahiert, und die organische Schicht wurde
zweimal mit einer gesättigten NaCl-Lösung gewaschen
und über Magnesiumsulfat getrocknet. Das Filtrat wurde
unter Vakuum eingedampft, wobei eine rohe Verbindung erhalten
wurde. Umkristallisieren aus Ethylacetat/n-Hexan
ergab farblose, prismatische Kristalle der gewünschten
Verbindung (7,50 g; 83%).
F. 149-152°C
[α]D=+46,4° (C=1,07, MeOH)
NMR (CD₃OD, δ): 1,20 (3H, d), 1,35 (3H, d),
1,20-2,0 (11H, m), 2,40-2,80 (1H, m),
3,05 (2H, m), 4,50 (1H, m)
[α]D=+46,4° (C=1,07, MeOH)
NMR (CD₃OD, δ): 1,20 (3H, d), 1,35 (3H, d),
1,20-2,0 (11H, m), 2,40-2,80 (1H, m),
3,05 (2H, m), 4,50 (1H, m)
(a)1,51 g 3-(N-Cyclohexancarbonyl-D-alanylthio)-2-D-methylpropionsäure
wurden in 40 ml trockenem Tetrahydrofuran aufgelöst. Zu
der Lösung wurden bei -5°C unter Rühren 0,61 g Triethylamin
und 0,65 g Chlorameisensäureethylester hinzugegeben.
Nach 5 Minuten wurde eine Lösung von 0,58 g L-Prolin und 0,61 g
Triethylamin in 5 ml Wasser hinzugegeben und die Mischung
wurde eine Stunde bei 0°C und dann 30 Minuten bei
Raumtemperatur gerührt. Die Mischung wurde zur Entfernung
des Lösungsmittels unter Vakuum eingedampft. Nach der Zugabe
von Wasser zu dem Rückstand wurde zu der Mischung
2 n HCl hinzugegeben, um den pH der Mischung auf einen
Wert zwischen 1 und 2 einzustellen. Die Reaktionsmischung
wurde mit Ethylacetat extrahiert, und die organische
Schicht wurde zweimal mit einer gesättigten NaCl-Lösung
gewaschen und über Magnesiumsulfat getrocknet. Das Filtrat
wurde zur Entfernung des Ethylacetats unter Vakuum eingeengt,
und der Rückstand wurde einer chromatographischen
Trennung auf bzw. mit Kieselsäuregel unter Verwendung einer
Mischung von Chloroform und Methanol (100 : 1 bis 100 : 2)
als Elutionsmittel unterzogen. Die Fraktionen, die die
gewünschte Endverbindung enthielten, wurden gesammelt und
unter Vakuum eingedampft, wobei eine gummiartige Probe
(0,3 g) der Titelverbindung erhalten wurde.
(b) 6,03 g 3-(N-Cyclohexancarbonyl-D-alanylthio)-2-D-methylpropionsäure
und 2,3 g N-Hydroxysuccinimid wurden in 50 ml
trockenem Tetrahydrofuran aufgelöst. Zu der Lösung wurden
zwischen 0 und 5°C 4,3 g Dicyclohexylcarbodiimid hinzugegeben,
und die Mischung wurde über Nacht bei dieser
Temperatur gerührt. Nach der Reaktion wurde der Niederschlag
abfiltriert, und das unlösliche Material wurde mit
einer kleinen Menge Tetrahydrofuran gewaschen. Das Filtrat
und die Waschflüssigkeiten wurden vereinigt und unter Vakuum
eingedampft. Zu dem Rückstand wurde Ethylacetat hinzugegeben,
und die Mischung wurde filtriert. Die Ethylacetatlösung
wurde mit 0,5 n HCl, Wasser, wäßrigem Na₂CO₃
und gesättigter NaCl-Lösung in der erwähnten Reihenfolge
gewaschen. Die Lösung wurde über Magnesiumsulfat getrocknet
und unter Vakuum eingedampft, und der Rückstand verfestigte
sich bei der Zugabe einer Mischung von Ethylacetat
und Hexan (1 : 10). Die Ausbeute des festen Produktes betrug
6,90 g (87%).
F. 113-116°C
[α]D=+14,2° (C=1,05, MeOH)
NMR (CDCl₃, δ): 1,38 (6H, d), 1,20-2,20 (11H, m),
2,82 (4H, s), 2,8-3,30 (3H, m), 4,75 (1H, m),
6,30 (1H, breites d)
[α]D=+14,2° (C=1,05, MeOH)
NMR (CDCl₃, δ): 1,38 (6H, d), 1,20-2,20 (11H, m),
2,82 (4H, s), 2,8-3,30 (3H, m), 4,75 (1H, m),
6,30 (1H, breites d)
3,98 g des aktivierten Esters wurden in 40 ml Tetrahydrofuran
aufgelöst. Zu der Lösung wurden 5 ml Wasser, in dem
1,15 g L-Prolin aufgelöst waren, und 1,26 ml N-Ethylmorpholin
hinzugegeben, und die Mischung wurde über Nacht gerührt.
Die Mischung wurde zur Entfernung der Lösungsmittel
unter Vakuum eingedampft, und zu dem Rückstand wurde Wasser
hinzugegeben. Zu der Mischung wurde 2 n HCl hinzugegeben,
um den pH der Mischung auf einen Wert zwischen 1 und 2
einzustellen. Die Reaktionsmischung wurde mit Ethylacetat
extrahiert, und die organische Schicht wurde mit einer gesättigten
NaCl-Lösung gewaschen und über Magnesiumsulfat
getrocknet. Das Filtrat wurde unter Vakuum eingedampft.
Der Rückstand wurde einer säulenchromatographischen Trennung
auf bzw. mit Kieselsäuregel unter Verwendung einer
Mischung von Chloroform und Methanol (100 : 1 bis 100 : 2)
als Elutionsmittel unterzogen. Das durch Eindampfen des
Eluats unter Vakuum erhaltene Produkt (1,45 g) wurde durch
NMR analysiert, wobei festgestellt wurde, daß es mit der
gewünschten Titelverbindung identisch war.
(c) 4,52 g 3-(N-Cyclohexancarbonyl-D-alanylthio)-2-D-methylpropionsäure
wurden in 5 ml Thionylchlorid aufgelöst. Zu
der Lösung wurde ein Tropfen Dimethylformamid hinzugegeben,
um die Mischung wurde über Nacht bei Raumtemperatur
gerührt. Die Mischung wurde zur Entfernung der Lösungsmittel
unter Vakuum eingedampft, und zu dem Rückstand wurden
2 ml trockenes Toluol hinzugegeben, und die Mischung
wurde zur Entfernung des Lösungsmittels wieder unter Vakuum
eingedampft. Zu dem Rückstand wurden unter Rühren
10 ml trockenes Tetrahydrofuran hinzugegeben. Die das Säurechlorid
enthaltende Tetrahydrofuranlösung wurde bei einer
Temperatur zwischen 5 und 10°C unter Rühren zu 25 ml
Wasser, in dem 2,3 g L-Prolin und 2,5 g Na₂CO₃ aufgelöst
waren, zugetropft. Die Mischung wurde eine Stunde lang bei dieser
Temperatur gerührt und weitere 2 Stunden bei Raumtemperatur
gerührt. Die Reaktionsmischung wurde mit Chloroform extrahiert.
Zu der wäßrigen Schicht wurde 2 n HCl zugegeben,
um den pH der wäßrigen Schicht auf einen Wert zwischen
1 und 2 einzustellen. Nach dem Extrahieren mit Chloroform
wurde die Chloroformschicht zweimal mit einer gesättigten
NaCl-Lösung gewaschen und über Magnesiumsulfat getrocknet.
Nach der Entfernung des Chloroforms wurde der Rückstand
einer säulenchromatographischen Trennung auf bzw. mit
Kieselsäuregel unter Verwendung einer Mischung von Chloroform
und Methanol (100 : 1 bis 100 : 2) als Elutionsmittel
unterzogen. Durch Eindampfen unter Vakuum wurde eine
gummiartige Substanz (1,6 g) erhalten. Durch NMR-Analyse
wurde festgestellt, daß die Substanz mit der gewünschten
Titelverbindung
identisch war.
(d) 3,01 g 3-(N-Cyclohexancarbonyl-D-alanylthio)-2-D-methylpropionsäure
und 1,71 g des t-Butylesters von L-Prolin wurden
in 50 ml trockenem Dichlormethan aufgelöst, und zu der
Lösung wurden unter Rühren und Eiskühlung 2,15 g Dicyclohexylcarbodiimid
hinzugegeben. Die Mischung wurde eine halbe Stunde
bei der gleichen Temperatur gerührt und über Nacht
bei 5°C stehengelassen. Die Reaktionsmischung wurde filtriert
und das unlösliche Material wurde mit Dichlormethan
gewaschen. Das Filtrat und die Waschflüssigkeiten wurden
vereinigt und mit 1 n HCl Wasser, 1 n NaHCO₃ und einer
gesättigten NaCl-Lösung in der erwähnten Reihenfolge
gewaschen, über MgSO₄ getrocknet und unter Vakuum eingedampft,
wobei eine gummiartige Probe des t-Butylesters
von N-[3-(N-Cyclohexancarbonyl-D-alanylthio)-2-D-methylpropionyl]-
L-prolin (4,3 g) erhalten wurde. Eine Probe
von 4,0 g des Esters wurde in 30 ml Anisol aufgelöst,
und zu der Lösung wurden 10 ml Trifluoressigsäure hinzugegeben.
Die Mischung wurde eine Stunde bei Raumtemperatur
gerührt und zur Entfernung von überschüssiger Trifluoressigsäure
unter Vakuum eingedampft. Der Rückstand wurde
einer säulenchromatographischen Trennung auf bzw. mit
Kieselsäuregel (Säule: 2×35 cm) unter Verwendung einer
Mischung von Methanol und Chloroform (1 : 100 bis 3 : 100)
als Eluationsmittel unterzogen. Die Fraktionen, die
die gewünschte Endverbindung enthielten, wurden gesammelt
und unter Vakuum eingedampft, wobei eine gummiartige
Substanz (3,4 g) erhalten wurde. Durch NMR-Analyse und
Dünnschichtchromatographie wurde festgestellt, daß diese
Substanz mit der gewünschten Titelverbindung identisch war.
In Tabelle 2 sind die Reaktionsteilnehmer,
die Reaktions-Lösungsmittel und die für die Herstellung
der in Beispiel 1 angewandten
Verfahren zusammen mit Werten der physikalischen Eigenschaften
der Verbindung angegeben.
In Tabelle 2 bedeuten die Zahlen nach den Nummern (1)
und (2) in der Spalte "Rf-Wert" die Rf-Werte, die bei
der Dünnschichtchromatographie unter Verwendung von
CHCl₃/MeOH/AcOH (2 : 1 : 0,003) bzw. n-BuOH/AcOH/H₂O (4 : 1 : 1)
als Elutionsmittel erhalten wurden.
Eine Probe von 3,98 g der in Beispiel 1 oder 3 hergestellten
Verbindung wurde in 40 ml Methanol aufgelöst. Zu
der Lösung wurden 0,84 g Calciumacetat-Hydrat hinzugegeben,
und die Mischung wurde eine Stunde unter Rückfluß erhitzt.
Das unlösliche Material wurde abfiltriert, und
das Filtrat wurde unter Vakuum eingedampf. Zu dem Rückstand
wurde Chloroform hinzugegeben, und die Mischung
wurde filtriert und unter Vakuum eingedampft. Zu dem
Rückstand wurde Diethylether hinzugegeben, und die Mischung
wurde filtriert und mit Luft getrocknet, wobei das Calciumsalz
(3,40 g)
erhalten wurde.
[α]D=-47,2° (C=1,0; MeOH)
Das vorstehend beschriebene Verfahren von Beispiel 2
(a) wurde unter Verwendung von 3,09 g der in Beispiel
1 oder 3 hergestellten Verbindung und 0,772 g Magnesiumacetat-
Tetrahydrat wiederholt, wobei das Magnesiumsalz
erhalten wurde
(2,42 g).
[α]D=-46,6° (C=1,0; MeOH)
1,19 g der in Beispiel 1 oder 3 hergestellten Verbindung
wurden in 22 ml Methanol aufgelöst. Zu der Lösung wurden
0,416 g Lysin hinzugegeben, und die Mischung wurde eine Stunde
bei Raumtemperatur gerührt und unter Vakuum eingedampft.
Zu dem Rückstand wurde Chloroform hinzugegeben,
und die Mischung wurde filtriert und unter Vakuum eingedampft.
Zu dem Rückstand wurde Dimethylether hinzugegeben,
und das Produkt wurde mit einem Saugfilter filtriert,
wobei das Lysin-Salz
(1,54 g) erhalten wurde.
[α]D=-23,1° (C=1,0; MeOH)
Eine Probe von 2,27 g der in Beispiel 1 oder 3 hergestellten
Verbindung wurde in 25 ml Methanol aufgelöst. Zu
der Lösung wurden 0,514 g Natriumacetat hinzugegeben,
und die Mischung wurde 30 Minuten bei Raumtemperatur
gerührt und unter Vakuum eingedampft. Zu dem Rückstand
wurden 200 ml einer Mischung von Methanol und Chloroform
(3 : 100; Vol./Vol.) hinzugegeben, und die erhaltene Mischung
wurde filtriert und unter Vakuum eingedampft. Der Rückstand
wurde in Methanol aufgelöst, und die Lösung wurde
filtriert und unter Vakuum eingedampft. Zu dem Rückstand
wurde Ethylacetat hinzugegeben, und das Produkt wurde
mit einem Saugfilter filtriert, wobei das Natrium-Salz
(1,85 g) erhalten wurde.
[α]D=-26,7° (C=1,0; MeOH)
Eine Probe von 13,1 g der Verbindung von Beispiel 1 oder
3 wurde in 120 ml Acetonitril aufgelöst. Zu der Lösung
wurden unter Rühren 6 ml Dicyclohexylamin hinzugegeben.
Die Mischung wurde 30 Minuten weiter gerührt und dann
über Nacht stehengelassen. Der Niederschlag wurde mit
einem Saugfilter filtriert und an der Luft getrocknet.
Die erhaltenen, rohen Kristalle wurden in 300 ml Acetonitril
suspendiert, und die Suspension wurde 30 Minuten
unter Rückfluß erhitzt. Die Suspension wurde abgekühlt,
und die Kristalle wurden mit einem Saugfilter filtriert
und an der Luft getrocknet, wobei das Dicyclohexylamin-Salz
(12,2 g) erhalten
wurde.
[α]D=-24,5° (C=1,0; MeOH)
5,98 g N-Cyclohexancarbonyl-D-alanin wurden in 80 ml
trockenem Tetrahydrofuran aufgelöst. Zu der Lösung wurden
bei -18°C unter Rühren 5,84 g Carbonyldiimidazol hinzugegeben,
während die Mischung mit Eis gekühlt wurde. Die
Mischung wurde eine Stunde bei dieser Temperatur gerührt,
und danach wurden zu der Mischung 6,29 g N-[3-Mercapto-2-
D-methylpropionyl]-L-prolin hinzugegeben, worauf 30 Minuten
bei -18°C und dann eine Stunde bei Raumtemperatur
gerührt wurde. Nach der Beendigung der Reaktion wurde
die Mischung zur Entfernung des Lösungsmittels unter
Vakuum eingedampft. Zu dem Rückstand wurden 50 ml Wasser
hinzugegeben, und zu der Mischung wurde 2 n HCl hinzugegeben,
um den pH der Mischung auf einen Wert zwischen 1
und 2 einzustellen. Die Mischung wurde mit Ethylacetat
extrahiert, und die Ethylacetatschicht wurde mit einer
gesättigten NaCl-Lösung gewaschen, über MgSO₄ getrocknet
und unter Vakuum eingedampft. Zu dem Rückstand wurden
120 ml Acetonitril und dann 6 ml Dicyclohexylamin (DCHA)
hinzugegeben. Die Mischung wurde eine Stunde bei Raumtemperatur
gerührt. Die Mischung wurde über Nacht stehengelassen,
und dann wurde der Niederschlag filtriert und an der
Luft getrocknet, wobei ein rohes DCHA-Salz (14,35 g)
erhalten wurde. Das rohe Salz wurde in 300 ml Acetonitril
suspendiert, und die Suspension wurde 30 Minuten unter
Rückfluß erhitzt. Nach dem Abkühlen wurde der Niederschlag
durch Absaugen gesammelt und an der Luft getrocknet,
wobei ein weißes DCHA-Salz (12,20 g) erhalten wurde.
Das DCHA-Salz (12,20 g) wurde in 90 ml Ethylacetat suspendiert,
und zu der Suspension wurden 60 ml einer 0,5 n
wäßrigen KHSO₄-Lösung hinzugegeben, und die Mischung
wurde geschüttelt. Die organische Schicht wurde mit destilliertem
Wasser gewaschen, auf bzw. über MgSO₄ getrocknet
und unter Vakuum eingedampft, wobei eine gummiartige
Substanz (8,64 g) erhalten wurde. Durch NMR-Analyse und
Dünschichtchromatographie wurde festgestellt, daß diese
Substanz mit der Titelverbindung identisch war.
(1) 341 g 3-(N-Cyclohexancarbonyl-D-alanylthio)-2-D-methylpropionsäure
wurden in 1,3 l trocknem Dichlormethan
suspendiert. Zu der Suspension wurden unter Rühren bei
-15°C 117 ml Triethylamin zugetropft. Dann wurden unter
Rühren bei einer Temperatur von weniger als -5°C 104 ml
Pivaloylchlorid zugetropft, und die Mischung wurde
30 Minuten weiter gerührt.
(2) 101 g L-Prolin wurden in 1,2 l trockenem Dichlormethan
suspendiert. Zu der Suspension wurden unter Rühren bei
-15°C 112 ml Trimethylsilylchlorid zugetropft. Dann wurden
unter Rühren bei einer Temperatur von weniger als -5°C
122 ml Triethylamin zugetropft, und die Mischung wurde
30 Minuten bei -15°C weiter gerührt. Zu der erhaltenen
Mischung wurde die in Beispiel 4 (1) hergestellte Lösung
hinzugegeben, und die Mischung wurde 15 Minuten unter
Kühlen und dann eine Stunde bei Raumtemperatur gerührt.
Nach der Beendigung der Reaktion wurde zu der Reaktionsmischung
unter Kühlen ein Liter kaltes, destilliertes Wasser
hinzugegeben, und dann wurden 90 ml konzentrierte Salzsäure
zugetropft. Die Mischung wurde 10 Minuten gerührt, und
die organische Schicht wurde abgetrennt, zweimal mit
einer gesättigten NaCl-Lösung gewaschen und über Magnesiumsulfat
getrocknet. Zu dem Filtrat wurden 326 ml Dicyclohexylamin
und 800 ml Acetonitril hinzugegeben, und die
Mischung wurde 30 Minuten gerührt. Danach wurden in
Abständen von 10 Minuten vier Anteile von jeweils 800 ml
Acetonitril hinzugegeben, und die erhaltene Mischung
wurde über Nacht bei 5°C stehengelassen. Der Niederschlag
wurde mit einem Saugfilter filtriert und an der Luft
getrocknet, wobei eine rohe Probe der gewünschten Verbindung
erhalten wurde. Die rohe Probe wurde in der Hitze
in 3 Liter Dichlormethan aufgelöst und filtriert. Das Filtrat
wurde 30 Minuten bei Raumtemperatur gerührt, und in
Abständen von 10 Minuten wurden weitere vier Anteile von
jeweils 750 ml Acetonitril hinzugegeben. Die erhaltene
Mischung wurde über Nacht bei 5°C stehengelassen. Der
Niederschlag wurde filtriert und an der Luft getrocknet,
wobei eine farblose Probe des Dicyclohexylamin-Salzes der Titelverbindung
(404 g) erhalten wurde.
F. 190-191°C, [α]D=-24,5° (C=1,0; MeOH)
Eine Probe von 404 g des in Beispiels 4 hergestellten
Dicyclohexylamin-Salzes wurde in 2 Liter Ethylacetat suspendiert,
und zu der Suspension wurden 2,5 l 0,5 n KHSO₄
hinzugegeben, und die Mischung wurde 10 Minuten gerührt.
Die organische Schicht wurde abgetrennt, mit destilliertem
Wasser getrocknet und auf bzw. über Magnesiumsulfat getrocknet.
Das Filtrat wurde unter Vakuum eingedampft,
und der Rückstand wurde in 1,2 Liter Aceton aufgelöst. Zu
der Acetonlösung wurden 1,2 Liter destilliertes Wasser und
36,6 g Calciumcarbonat hinzugegeben, und die Mischung
wurde eine Stunde bei 40°C heftig gerührt. Nach dem Abkühlen
wurde die Mischung filtriert, und das Filtrat wurde unter
Vakuum eingedampft. Der erhaltene Sirup wurde in einem Liter
Aceton suspendiert, und die Suspension bzw. Lösung wurde
5 Stunden gerührt. Der Niederschlag wurde mit einem Saugfilter
filtriert, an der Luft getrocknet und dann unter
Vakuum getrocknet, wobei das gewünschte Calciumsalz der Titelverbindung in
Form eines weißen Pulvers (212 g) erhalten wurde.
[α]D=-47,2° (C=1,0; MeOH).
Claims (3)
1. N-[3-(N-Cyclohexancarbonyl-D-alanylthio)-2-D-methylpropionyl]-L-prol-in
der Formel (I)
oder ein pharmazeutisch verträgliches Salz davon.
2. Verfahren zur Herstellung einer Verbindung nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet, daß man in an sich bekannter Weise die
Verbindung der Formel (II)
oder ein reaktives Derivat davon mit einer Verbindung der allgemeinen
Formel (III)
worin R′ ein Wasserstoffatom oder eine Carboxyl-Schutzgruppe bedeutet,
oder einem reaktiven Derivat davon in einem inerten organischen
Lösungsmittel zwischen -50 und 20°C umsetzt, aus dem
Reaktionsprodukt die gegebenenfalls vorhandene Schutzgruppe entfernt
und das Reaktionsprodukt gegebenenfalls in ein pharmazeutisch
verträgliches Salz überführt.
3. Verfahren zur Herstellung einer Verbindung nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet, daß man in an sich bekannter Weise die
Verbindung der Formel (IV)
oder ein reaktives Derivat davon mit einer Verbindung der allgemeinen
Formel (V)
worin R′ ein Waserstoffatom oder eine Carboxyl-Schutzgruppe bedeutet,
oder einem reaktiven Derivat davon in einem inerten organischen
Lösungsmittel zwischen -50 und 20°C umsetzt, aus dem
Reaktionsprodukt die gegebenenfalls vorhandene Schutzgruppe entfernt
und das Reaktionsprodukt gegebenenfalls in ein pharmazeutisch
verträgliches Salz überführt.
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