DE2621615C3 - Dihydromocimycin, seine Salze, Verfahren zu seiner Herstellung und seine Verwendung als Futtermittelzusatz - Google Patents
Dihydromocimycin, seine Salze, Verfahren zu seiner Herstellung und seine Verwendung als FuttermittelzusatzInfo
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Description
Die Erfindung betrifft den in den Ansprüchen gekennzeichneten Gegenstand
Aus der DE-OS 2140 674 ist ein Verfahren zur Herstellung von Mocimycin bekannt, das dadurch
gekennzeichnet ist, daß man Mikroorganismen des Stammes Streptomyces ramocissimus (CBS 190 69)
oder nach üblichen Methoden daraus erhaltene, das Antibiotikum bildende Mutanten oder Varianten in
einem wäßrigen, verwertbare Kohlenstoff- und Stickstoffquellen und anorganische Salze enthaltenden
Nährmedium züchtet und das entstandene Antibiotikum aus der Gärmaische durch Extraktion mit organischen
Lösungsmitteln bei pH-Werten von etwa 5 bis 8 isoliert und gewünschtenfalls weiter reinigt Die Struktur von
Mocimycin wurde von V ο s und V e r w i e 1, Tetrahedron Letters, Bd. 52 (1973), S. 5173 bis 5176, angegeben.
Es wurde erfindungsgemäß festgestellt, daß Mikroorganismen des Stammes Streptomyces nmocissimus
(CBS 190 69) oder nach üblichen Methoden daraus erhaltene, das Antibiotikum bildende Mutanten oder
Varianten bei der Züchtung in einem wäßrigen, verwertbare Kohlenstoff- und Stickstoffquellen und
anorganische Salze enthaltenden Nährmedium außer zur Bildung von Mocimycin auch zur Bildung von
Dihydromocimycin imstande sind.
Dihydromocimycin ist eine schwache Säure und bildet Salze, z. B. Alkalimetall-, Ammonium- und Aminsalze.
Es hat folgende physikalische und chemische Eigenschaften:
Löslichkeit:
Die Verbindung ist gut löslich in Chloroform, Methylisobutylketon, Essigsäureäthylester, Essigsäurebutylester.
Aceton, Dioxan, Methanol, Äthanol, Tetrahydrofuran und schwach alkalischen, wäßrigen Lösungen.
Sie ist mäßig löslich in Tetrachlorkohlenstoff und Benzol und unlöslich in Diäthyläther, Wasser, schwach
sauren wäßrigen Lösungen, Cyclohexan und Petroläther.
.to Optische Drehung:
[«]' = —85° (Iprozentige Lösung in Methanol).
Schmelzpunkt:
Schmelzpunkt:
Die Verbindung schmilzt nicht. Ab 123°C tritt -15 Zersetzung ein.
Elementaranalyse:
C43H62N2O1, ■ 2 H2O
Ber.:
Ber.:
C 61,8, H 8,0, N 3,3, O (Differenz) 26,8;
gef.:
C 61,8, H 7,5, N 3,4, O (Differenz) 27,2.
gef.:
C 61,8, H 7,5, N 3,4, O (Differenz) 27,2.
45
60
('S UV-Spektrum:
Das UV-Spektrum von Dihydromocimycin in einem 1 : 1-Gemisch aus Wasser und Methanol bei verschiedenen
pH-Werten ist in Fig. 1 wiedergegeben. Die Konzentration der Lösungen beträgt 18,3μg/ml. Das
UV-Spektrum ist vom pH-Wert abhängig. Es lassen sich folgende Maxima feststellen (der molare Extinktionskoeffizient
ist jeweils in runden Klammern angegeben):
Methanol — Wasser:
Methanol — Wasser:
233,5 nm (ε = 63 000); 267 nm (p = 23 000);
291 nm (ε = 19 000) und 333 nm (ε =18 000);
Kurve 1;
Methanol -0,5 n-NaOH:
Methanol -0,5 n-NaOH:
235 nm (ε=62 000); 277 nm (ε = 25 000) und
308 nm(8 = 29 000); Kurve 2;
Methanol-0,5 n-HCl:
Methanol-0,5 n-HCl:
233,5 nm (ε = 65 000); 268 nm (ε = 25 000) und
338 nm (ε = 14 000); Kurve 3.
IR-Spektrum:
Das IR-Spektrum von Dihydromocimycin in Chloroform und als Kaliumbromid-Preßling ist in F i g. 2 bzw. 3
wiedergegeben. Die wichtigsten Absorptionsmaxima in Chloroform liegen bei ±3445 (sh), 3430, 2979, 2941,
Testkeim
2886, 1662-1653, 1458, 1100, 1080, 1040, 998, 944, 893,
870 und 840 cm -'. Im Kaliumbromid-Preßling liegen die
Absorptionsmaxima bei ±3400-3320,2972,2935,2880,
1650, 1535, 1455, 1099, 1040, 990, 943, 860, 840 und 790 cm-'.
PMR-Spektrum:
Das PMR-Spektrum von Dihydromocimycin in Deuterochloroform unter Verwendung von Tetramethylsilan
als internem Standard ist in Fig.4 (60 iviHz)
wiedergegeben.
Dünnschichtchromatographie:
Das Dünnschichtchromatogramm von Dihydromocimycin wird an K ieselgel-F 254-Platten aufgenommen.
Nach dem Trocknen werden die Flecken durch Fluoreszenz, Extinktionsmessung oder Verkohlung
nach Besprühen mit einem Gemisch aus Diäthyläther und Schwefelsäure nachgewiesen. Auch hochgereinigte
Präparate von Dihydromocimycin ergeben neben einem Hauptflecken einen kleinen zusätzlichen Flecken. Dies
ist auf ein Tautomerie-Gleichgewicht zurückzuführen, wie durch ein zweidimensionales Chromatogramm
gezeigt werden kann.
Es ergeben sich folgende Ri-Werte für Dihydromocimycin
in verschiedenen Laufmitteln (in runden Klammern ist der R,-Wert für den zusätzlichen Flecken
angegeben):
50 :45 :5-Gemisch aus Methylisobutylketon, Aceton und Wasser: 0,44 (etwa 0,44);
70 :20:10 :0,5-Gemisch aus Essigsäureäthylester, Methanol, Wasser und 25prozentiger Ammoniaklösung: 0,29 (0,36);
70 :20:10 :0,5-Gemisch aus Essigsäureäthylester, Methanol, Wasser und 25prozentiger Ammoniaklösung: 0,29 (0,36);
65 :40 :9-Gemisch aus Benzol, lOOprozentigem
Äthanol und 33prozentiger Ammoniaklösung: 0,16 (0,22);
60 :42 :10-Gemisch aus Chloroform, 96prozentigem
Äthanol und ?5prozentiger Ammoniaklösung: 0,4.
Aufgrund folgender Tatsachen ergibt sich für
Dihydromocimycin die eingangs angegebene Struktur-
formel: Die PMR-Spektren (220 MHz) von Mocimycin Testkeim (vgl. Tetrahedron Letters, Bd. 52 [1973], S. 5173-5176,
wo die Strukturformel von Mocimycin angegeben ist) und Dihydromocimycin zeigen, daß beide Verbindungen
sehr ähnlich sinU, wobei zwei Dubletts bei 0 = 5,9 und
7,3 ppm (Tetramethylsilan wird als Standard verwendet) im Spektrum von Mocimycin auftreten und im
Spektrum von Dihydromocimycin nicht vorhanden sind. Diese Signale werden durch die Protonen des fünften
und sechsten Kohlenstoffatoms im Pyridonkern hervorgerufen. Im Spektrum von Dihydromocimycin treten
dagegen zwei Tripletts bei ö = 2,5 und 3,4 ppm auf. Dies ist ein Anzeichen dafür, daß die Bindung zwischen dem
fünften und sechsten Kohlenstoffatom im Pyridonkern von Dihydromocimycin gesättigt ist. Diese Interpretation
läßt sich durch 5minütige Ozonisierung einer wäßrigen Lösung von Dihydromocimycin bei 0°C und
einem pH-Wert von 12 bestätigen. Nach Reduktion des erhaltenen Reaktionsgemisches mit Wasserstoff unter
Verwendung von PtO2 ais Katalysator und nach
Hydrolyse mit konzentrierter Salzsäure läßt sich jS-Alanin nachweisen, was darauf schließen läßt, daß die
Bindung zwischen dem fünften und sechsten Kohlenstoffatom
des Pyridonkern: von Dihydromocimycin
gesättigt ist.
Dihydromocimycin ist in vielen Eigenschaften Mocimycin ähnlich. Ein wichtiger Unterschied zwischen
diesen beiden Verbindungen besteht jedoch darin, daß Mocimycin als Futterzusatz in geringen Mengen bei
Tieren, wie Hühnern und Schweinen eine Gewichtszunahme und eine Steigerung im Größenwachstum und in
der Futterverwertung bewirkt Demgegenüber bewirkt Dihydromocimycin bei diesen Tieren kein gesteigertes
Wachstum oder eine verbesserte Futterverwertung. Dies ist überraschend, da beide Verbindungen in vitro
gegen die gleichen Mikroorganismen wirksam sind. Dihydromocimycin ist in zahlreichen Fällen noch
wirksamer als Mocimycin. Die MHK-Werte der beiden Antibiotika gegenüber verschiedenen Keimen sind in
Tabelle I (Agar-Verdünnungstest) und Tabelle Il (Röhrchenverdünnu ngstest) zusammengefaßt
MHK,
Mocimycin Dihydromocimy cin
Staphylococcus aureus A 2000 > 100 > 100
Staphylococcus aureus A 2001 > 100 >100
Diplococcus pneumoniae L 54 1,5 < 0,75
Salmonella typhiniurium Rl 72 > 100 > 100
Escherichia coli U 20 > 100 100
Listeria monocytogenes A 2130 6 1,5
Listeria monocytogenes A 2131 6 6
Listeria mcnocytogenes A 2132 6 6
Clostridium perfringens A 738 >100 > 100
Clostridium septicum A 2152 10 10
-15 Streptococcus zooepidemicus 6 6
A 2144
R-Streptococcen A 2148 6 3
Brucella suis (smooth) A 2126 0,75 0,4
Pasteureüa haemolytica A 2136 3 1,5
Treponema spec. A 2275 30 10
MHK, <x&/m\
Mocimycin Dihydromocimy-
Bacillus subtilis ATCC 6633 100 50.
Bacillus subtilis ATCC 6051 100 50
Bacillus subtilis 6346 Dl 67 1,2 0,9
Bacillus subtilis 220 Dl 78 75 75
Bacillus subtilis TH 10 100 50
Bacillus ceraus Dl 66 0,6 0,6
Bacillus cereus D 261 0,9 0,6
Bacillus cereus D 220 1,2 0,9
Bacillus cereus B 569 2,5 1,2
Bacillus cereus TH 1 1,8 1,2
Bacillus thuringiensis W 11 1,2 0,9
Bacillus mesenterium D 169 100 50
Bacillus cereus var. mycoides 1,2 0,45
Streptococcus haemolyticus 0.45 0,45 A 266
Streptococcus haemolyticus 0,25 0,12 A 2182
Mycoplasma hyorhinus A 2230 1 0,3
Streptomyces viridochromogenes 2,5 0,9
Die Züchtung der Mikroorganismen kann in flüssigen Nährmedien, die übliche Quellen für Kohlenstoff,
Stickstoff, Phosphor, Calcium, Eisen, Schwefel, Magnesium, Kalium, Vitamine und Spurenelemente enthalten,
erfolgen. Beispielsweise können Medien verwendet werden, die Rübenmelasse, Malzpaste, Erdnußmehl,
Lactose, Kartoffelstärke, Maisquellwasserfeststoffe und Hefeextrakt enthalten. Die Züchtungstemperatur beträgt
20 bis 400C, vorzugsweise 26 bis 34°C, und der pH-Wert 5 bis 9, vorzugsweise 6,5 bis 8. ι ο
Überraschenderweise läßt sich die Ausbeute an Dihydromocimycin im Vergleich zur Ausbeute an
Mocimycin durch Erhöhung des Sauerstoffpartialdrucks im Nährmedium steigern, aus der Struktur von
Dihydromocimycin ist an sich anzunehmen, daß durch einen höheren Sauerstoffpartialdruck im Nährmedium
die Ausbeute an Dihydromocimycin im Vergleich zu Mocimycin abnimmt. Es tritt jedoch der vorerwähnte
Effekt auf, daß Dihydromocimycin im Vergleich zu Mocimycin durch eine bessere Belüftung des Nährmediums
in größeren Mengen gebildet wird. Die Belüftung kann in an sich bekannter Weise vorgenommen werden.
Beispielsweise wird die Belüftungsgeschwindigkeit (Volumteil Luft pro Volumteil Nährmedium pro
Zeiteinheit) oder die Rührgeschwindigkeit des Nährmediums
im Fermenter erhöht. Geeignete Belüftungsgeschwindigkeiten des Nährmediums, dessen Volumen
beispielsweise 2 Liter beträgt, liegen bei 1 bis 3 Liter Luft, vorzugsweise 1,5 bis 2,5 Liter Luft, pro Minute.
Eine weitere Verbesserung der Ausbeute an Dihydromocimycin läßt sich durch Zusatz von bestimmten
Metallsalzen in niedrigen Konzentrationen, beispielsweise durch Zusatz von Eisen-, Kobalt- oder Nickelsalzen,
zum Nährmedium erzielen.
Zur Trennung von Dihydromocimycin von Mocimyein
benützt man die Löslichkeitsunterschiede dieser Verbindungen in alkalischem Medium. Beim Einleiten
von gasförmigem Ammoniak in eine Lösung, die durch Extraktion einer auf einen pH-Wert von 5 bis 6
angesäuerten Kulturflüssigkeit mit Methylisobutylketon erhalten worden ist, fällt zunächst das Mocimycin
praktisch vollständig aus. Das Dihydromocymycin bleibt dabei praktisch vollständig in Lösung. Nach dem
Abtrennen, beispielsweise durch Abfiltrieren, des Mocimycinniederschlags aus der Lösung wird weiter
Ammoniak eingeleitet, bis das Dihydromocimycin praktisch vollständig ausgefällt ist. Das Dihydromocimycin
kann anschließend ebenfalls abgetrennt werden, beispielsweise durch Filtrieren. Ammoniak wird dabei
beispielsweise etwa 1 bis 4 Minuten mit einer Geschwindigkeit von 150 Liter pro Liter Lösung pro
Stunde (d.h. etwa 2,5 bis etwa 10 Liter gasförmiges Ammoniak pro Liter Lösung) bei einer Temperatur von
etwa —12 bis etwa +15° C, vorzugsweise -5 bis +80C,
eingeleitet Durch weiteres Einleiten von gasförmigem Ammoniak nimmt die Wasserstoffionenkonzentration
so weit ab, daß Dihydromocimycin unlöslich wird. Beispielsweise leitet man unter den vorgenannten
Bedingungen 10 bis 15 Minuten lang ein (entsprechend etwa 25 bis etwa 40 Liter gasförmiges Ammoniak).
Neben Ammoniak können allgemein alle alkalisch reagierenden Verbindungen zur Abtrennung von
Mocimycin und Dihydromocimycin verwendet werden. Als Beispiele seien Natriummethylat und Triäthylamin
genannt
Das auf diese Weise abgetrennte Dihydromocimycin kann von Verunreinigungen an Mocimycin weiter
gereinigt werden, indem man den Niederschlag in einer stark verdünnten ammoniakalischen Lösung vom
pH-Wert 9 löst und diese Lösung mit einem Lösungsmittel, wie Chloroform oder Methylenchlorid,
extrahiert. In derartigen Lösungsmitteln ist Mocimycin nur wenig löslich. Gießt man den dabei erhaltenen
Extrakt in ein im Überschuß vorhandenes unpolares Lösungsmittel, wie Petroläther, Cyclohexan oder
Pentan, so bildet sich ein Dihydromocimycinniederschlag, der weniger als 5% Mocimycin enthält.
Hochgereinigtes Dihydromocimycin erhält man durch Chromatographie an dreidimensional vernetztem
Dextran, wobei man sich der Adsorptionsunterschiede von Mocimycin und Dihydromocimycin bedient. Dabei
wird das Dextran in lOOprozentigem Methanol suspendiert und vorsichtig in die Säule geschüttet. Nach
Verdrängung des Methanols durch Chloroform wird der Dihydromocimycinniederschlag auf die Säule aufgebracht.
Als Elutionsmittel wird Chloroform verwendet. Dabei erhält man zunächst Dihydromocimycin und
anschließend Mocimycin. Beide Verbindungen können im Eluat nachgewiesen werden, da sie im UV-Bereich
bei 350 nm absorbieren. Die reinen Verbindungen können aus der Chloroformlösung durch Fällung mit
einem unpolaren Lösungsmittel, wie Cyclohexan oder Pentan, gewonnen werden.
Die Identität der Verbindungen läßt sich dünnschichtchromatographisch
bestätigen. Dazu werden Kieselgel-F 254-Platten der Abmessungen 20 χ 5 cm
verwendet. Als Laufmittel dient ein 60 :42 :10-Gemisch
aus Chloroform, Äthanol und 25prozentigem Ammoniak. Die Laufzeit beträgt 2 Stunden. Mocimycin zeigt
einen RrWert von 0,3 (Haupttautomeres) und Dihydromocimycin
von 0,4 (Haupitautomeres).
Aufgrund frührer Untersuchungen wurde angenommen, daß Mocimycin, das ein ähnliches antimikrobielles
Wirkungsspektrum wie Tylosin (vgl. Merck Index, 8. Aufl., S. 1089) aufweist, gegen Treponema hyodysenteriae,
den Erreger von Treponema-Dysentrie oder Vibrio Doyle, eine der häufigsten Krankheiten bei
Schweinen, wirksam ist. Untersuchungen haben jedoch ergeben, daß die Wirkung von Mocimycin nicht größer
ist als die von Tylosin.
Aus den Tabellen I und II ergibt sich, daß Dihydromocimycin gegenüber einer Reihe von Problemkeimen
wirksamer ist als Mocimycin. Bei Untersuchungen über die Wirksamkeit gegenüber dem Erreger
von Treponema-Dysenterie wurde festgestellt, daß Dihydromocimycin gegenüber diesem Mikroorganismus
wesentlich wirksamer als Tylosin ist und außerdem auch gegen Tylosin-resistente Stämme wirksam ist.
Somit ist Dihydromocimycin für die Behandlung von Treponema-Dysenterie Tylosin und somit auch Mocimycin
überlegen.
Die Erfindung betrifft somit auch die Verwendung von Dihydromocimycin oder dessen Salzen, beispielsweise
das Natriumsalz, als Futtermittelzusatz für Schweine. Das Antibiotikum oder dessen Alkalimetall-,
Ammonium- oder Aminsalz kann auch in einem entsprechenden inerten, physiologisch unbedenklichen
Träger oder Verdünnungsmittel, die an Schweine oral verabfolgt werden können, mit dem Antibiotikum nicht
reagieren und für Schweine bei oraler Verabfolgung unbedenklich sind, dispergiert oder vermischt werden.
Wirksame Mengen an Dihydromocimycin, die zur Prophylaxe oder Therapie von Treponema-Dysentrie
dem Futter beigemengt werden, liegen bei etwa 10 bis
etwa 200 T.p.M, vorzugsweise 20 bis 40 TIpAl, bezogen
auf das Futtergewicht
Das erfindungsgemäß erhaltene Dihydromocimycin ist ein feines, leicht stäubendes Pulver. Da dies unter
Umständen zu Schwierigkeiten beim Vermischen mit dem Futter führen kann, wird vorzugsweise ein
Vorgemisch mit einem oder mehreren Bestandteilen des Schweinefutters hergestellt. Dieses Vorgemisch enthält
beispielsweise das 9- bis 99fache der gewünschten Menge an Dihydromocimycin. Vorgemische können
beispielsweise mit Maismehl, Kartoffelmehl oder Sojamehl hergestellt werden. Untersuchungen haben
ergeben, daß Dihydromocimycin sich auch beim Pelletisieren, d. h. Granulieren unter hohem Druck und
hohen Temperaturen unter Verwendung von Wasserdampf, als stabil erweist.
Wenn Schweine so stark von Treponema- Dysenterie befallen sind, daß sie ihren Appetit verloren iiaben oder
von gesunden Tieren von der Futterstelle weggestoßen werden, wird Dihydromocimycin vorzugsweise mit dem
Trinkwasser verabfolgt, vorzugsweise zusammen mit einem geschmacksverbessernden Mittel. Dazu wird
Dihydromocimycin in wasserlöslicher Form, beispielsweise als Kalium-, Natrium- oder Aminsalz verwendet.
Sehr stark von Dysentrie befallene Schweine können mit Injektionen von Dihydromocimycin oder einem
entsprechenden wasserlöslichen Salz behandelt werden. Der Wirkstoff wird dabei in einer üblichen Injekiionsflüssigkeit,
beispielsweise einer Kochsalzlösung, Propylenglykol oder Gemischen aus Glycerin und Wasser,
suspendiert oder gelöst.
Die Beispiele erläutern die Erfindung.
Mikroorganismen des Stammes Streptomyces ramocissimus
(CBS 190 69) werden in 2000 Liter eines Nährmediums, das pro Liter 20 g Gerstenmalzpaste,
10 g Hefeextrakt und 5 g Maisquellwasserstoffe enthält, bei einem pH-Wert von etwa 7 unter Rühren und
Belüftung gezüchtet. Nach der Züchtung wird die Kulturflüssigkeit mit etwa 2% expandiertem Perlite als
Filtrierhilfe versetzt und filtriert. Das Filtrat wird mit 8 η-Schwefelsäure auf einen pH-Wert von 6,0 angesäuert
und zweimal mit einem Fünftel seines Volumens an Methylisobutylketon (MIBK) extrahiert. Die entstandenen
Emulsionen werden mit Diatomeenerde als Filtrierhilfe gebrochen. Die organischen Phasen werden
vereinigt und unter vermindertem Druck in einem Rotationsverdampfer auf ein Volumen von etwa 1 Liter
eingeengt. Das Konzentrat wird langsam zu 5 Liter Petroläther (Siedebereich 40 bis 600C) gegeben. Der
dabei entstandene Niederschlag wird mit einer Glasfilterfritte (G 3) abfiltriert. Der Filterrückstand wird mit
frischem Petroläther gewaschen und getrocknet. Man erhält ein gelbgefärbtes Pulver, das Mocimycin und
Dihydromocimycin enthält
Gereinigtes Dihydromocimycin mit einem Mocimycingehalt von höchstens 5 Prozent wird auf folgende
Weise erhalten: In das Konzentrat wird 1 Minute lang bei einer Temperatur von 2° C gasförmiges Ammoniak
mit einer Geschwindigkeit von 150 Liter/Liter Konzentrat/Stunde
eingeleitet. Dabei entsteht ein Niederschlag, der Mocimycin enthält Das nach dem Abfiltrieren des
Niederschlags erhaltene Filtrat wird weitere 10 bis 15
Minuten mit gasförmigem Ammoniak behandelt Der nunmehr gebildete Niederschlag wird abfiltriert und in
verdünnter Ammoniaklösung vom pH-Wert 9,0 gelöst. Die erhaltene Lösung wird mit dem gleichen Volumen
Methylenchlorid extrahiert Der Extrakt wird in die 3-bis 5fäehe Volumenmenge Cyclohexan gegossen. Der
erhaltene Niederschlag wird abfiltriert, getrocknet und pulverisiert.
Zur Herstellung des Natriumsalzes von Dihydromocimycin löst man Dihydromocimycin in Wasser und
s versetzt mit 0,1 η-Natronlauge auf den pH-Wert 9, wobei eine gesättigte Lösung entsteht. Die Lösung wird
abfiltriert und unter Zusatz von Butanol unter vermindertem Druck bei etwa 45°C unter azeotropen
Bedingungen eingedampft. Der Butanolrückstand wird
ίο in einer kleinen Menge wasserfreiem Butanol aufgenommen.
Sodann wird die Lösung unter Rühren tropfenweise mit Petroläther versetzt, bis das Salz
vollständig ausgefällt ist. Der Niederschlag wird abfiltriert, gewaschen und getrocknet. Man erhält das
Natriumsalz von Dihydromocimycin. Auf analoge Weise können auch das Ämmoniumsaiz und Aminsalze
von Dihydromocimycin hergestellt werden.
Eine lyophilisierte Kultur von Mikroorganismen des Stammes Streptomyces ramocissimus (CBS 190 69)
oder eine gut sporulierende Agar-Kultur dieser Mikroorganismen wird in einen 500-ml-Erlenmeyerkolben
überimpft, der 100 ml eines sterilisierten Nährmediums folgender Zusammensetzung enthält: 20 g Gerstenmalzpaste,
10 g Hefeextrakt und 5 g Maisquellwasser-Feststoffe pro Liter Leitungswasser (pH-Wert 7,0).
Nach 3tägiger Inkubation bei 300C auf einer Drehschüttelmaschine (300 U/min, Hub 2,5 cm) wird die erhaltene Kultur in kleine Fermenter überimpft, die 2000 ml des Nährmediums und zusätzlich 20 mg C0CI2 · 6 H2O pro Liter enthalten. Zur Verbesserung der Bildung von Dihydromocimycin wird diese Wachstumsphase bei 300C unter sehr guter Belüftung durchgeführt. Dazu werden mindestens 2 Liter sterilisierte Luft pro Minute bei einer Rührgeschwindigkeit von 1000 U/min eingeleitet. Die Bildung von Dihydromocimycin setzt etwa 12 Stunden nach Züchtigungsbeginn ein und erreicht nach etwa 120 Stunden das Maximum, Eine Züchtung in größerem Maßstab ist möglich, indem man eine 48 Stunden lang in den kleinen Fermentern gezüchtete Kultur als Inokulum für große Fermenter verwendet.
Nach 3tägiger Inkubation bei 300C auf einer Drehschüttelmaschine (300 U/min, Hub 2,5 cm) wird die erhaltene Kultur in kleine Fermenter überimpft, die 2000 ml des Nährmediums und zusätzlich 20 mg C0CI2 · 6 H2O pro Liter enthalten. Zur Verbesserung der Bildung von Dihydromocimycin wird diese Wachstumsphase bei 300C unter sehr guter Belüftung durchgeführt. Dazu werden mindestens 2 Liter sterilisierte Luft pro Minute bei einer Rührgeschwindigkeit von 1000 U/min eingeleitet. Die Bildung von Dihydromocimycin setzt etwa 12 Stunden nach Züchtigungsbeginn ein und erreicht nach etwa 120 Stunden das Maximum, Eine Züchtung in größerem Maßstab ist möglich, indem man eine 48 Stunden lang in den kleinen Fermentern gezüchtete Kultur als Inokulum für große Fermenter verwendet.
Aus der Kulturflüssigkeit wird Dihydromocimycin auf folgende Weise gewonnen: Nach Zusatz von 2%
Diatomeenerde als Filtrierhilfe wird die Kulturflüssigkeit abfiltriert Das Filtrat wird mit 8 n-Schwefelsäure
auf einen pH-Wert von 5 bis 6 angesäuert und zweimal mit einem Fünftel seines Volumens an MIBK extrahiert.
Eine gegebenenfalls entstandene Emulsion wird mit Diatomeenerde als Filtrierhilfe gebrochen. Die organischen
Phasen werden vereinigt und unter vermindertem Druck auf etwa ein Zehnte! des ursprünglichen
Volumens eingeengt Sodann wird in das Filtrat 1 Minute lang gasförmiges Ammoniak mit einer Geschwindigkeit
von 150 Liter/Liter Konzentrat/Stunde eingeleitet Der dabei entstandene Niederschlag wird
abfiltriert Das Filtrat wird weitere 10 bis 15 Minuten mit
gasförmigem Ammoniak behandelt Die dabei erhaltene Niederschlag wird in verdünnter Ammoniaklösung vom
pH-Wert 9,0 gelöst Durch Extraktion der Ammoniaklösung mit einem gleichen Volumen Methylenchlorid wird
gereinigtes Dihydromocimycin (mit einem Gehalt an Mocimycin von höchstens 5%) erhalten. Der Extrakt
wird in das 3- bis 5fache Volumen Cyclohexan gegossen. Der entstandene Niederschlag wird abfiltriert, getrocknet
und pulverisiert
Beispiel 3 Wirkung von Dihydromocimycin gegen Treponema-Dysentrie
20 Schweine im Alter von 3 Monaten werden mit dem Erreger der Treponema-Dysentrie infiziert, indem man
ihnen ein Futter gibt, dem ein homogenes Gemisch aus Darminhalt und Darmschleimhaut von 2 an dieser
Krankheit leidenden Tieren beigemischt ist. Die infizierten Schweine werden in 4 Gruppen von jeweils 5
Tieren eingeteilt. Die Tiere erhalten 1 Woche ein mit Wasser im Verhältnis 1 :1 verdünntes breiartiges
Futter. Die gesamte Futtermenge pro Tier und Tag beträgt 1,2 kg und wird in 2 Portionen gegeben.
Nach 5 Tagen treten die ersten Krankheitssymptome in Form von dünnem Kot auf. Die Krankheit läßt sich
durch eine mikrobiologische Untersuchung der Faeces bestätigen. Nach 1 Woche werden die Tiere folgendermaßen
behandelt:
Gruppe 1:
Gruppe 1:
Kein Zusatz von Antibiotikum zum Futter; Gruppe 2:
Zusatz von 100 ppm Tylosin zum Futter;
Gruppe 3:
Zusatz von 25 ppm Dihydromocimycin zum Futter; Gruppe 4:
Zusatz von 50 ppm Dihydromocimycin zum Futter. Das gegebenenfalls mit Antibiotikum angereicherte
Futter wird I Woche verfüttert. Anschließend wird wieder normales Futter ohne Zusatz von Antibiotikum
gegeben. Um festzustellen, ob sich die Tiere von der Infektion erholt haben, wird das Körpergewicht
festgestellt und der Kot makroskopisch auf seine
ίο Beschaffenheit und mikroskopisch nach einem speziellen
Immunofluoreszenzverfahren untersucht.
Während der Untersuchung stirbt jeweils 1 Tier der Gruppen 1, 3 und 4. Die Versuchsergebnisse sind in
Tabelle III zusammengefaßt. Die Gewichtsangaben sind
i_s Durchschnittsgewichte der zum jeweiligen Zeitpunkt
lebenden Tiere. Die Beschaffenheit des Kots wird folgendermaßen bewertet:
+ Dünnflüssig; ± dickflüssig; - normal.
Bei der Immunofluoreszenzuntersuchung wird die Treponema-Anzahl im Gesichtsfeld folgendermaßen angegeben:
5: sehr dicht,
4: zahlreich,
3: etwa lOTreponemen,
+ Dünnflüssig; ± dickflüssig; - normal.
Bei der Immunofluoreszenzuntersuchung wird die Treponema-Anzahl im Gesichtsfeld folgendermaßen angegeben:
5: sehr dicht,
4: zahlreich,
3: etwa lOTreponemen,
2.S 2: 1 oder2Treponemen,
1: mehrere Gesichtsfelder sind notwendig, um 1
Treponema zu finden,
—: negativ.
—: negativ.
Unmittelbar vor
der Infektion
der Infektion
Nach 1 Woche1)
Nach 2 Wochen
Nach 3 Wochen
Nach 2 Wochen
Nach 3 Wochen
Nach 1 Woche
Nach 2 Wochen
Nach 3 Wochen
Nach 2 Wochen
Nach 3 Wochen
Gruppe 1 Gewicht in kg
Gruppe 2
Gruppe 3
Gruppe 4
24,6
23,7
20,9
19,8
20,9
19,8
Kotbeschaffenheit
24,4 24,2 23,4
22,2 21,3 21,6
21,4 20,2 21,2
23,2 24,0 23,0
Nach 1 Woche
Nach 2 Wochen
Nach 3 Wochen
Nach 2 Wochen
Nach 3 Wochen
Immunofluoreszenz | 4 | 4 | 4 | 5 | 4 | 4 | 3 | 4 | - 5 | 4 | 5 | 5 | X 5 | - 5 | 3 | 3 |
4 | 4 | 4 | - | 4 | 4 | 4 | 2 | 2 | - 4 | 4 | 3 | 1 | 2 | - X | 4 | 1 |
4 | 2 | 2 | 2 | X | 3 | _ | _ | 2 | _ _ | _ | _ | 1 | _ | — | _ | |
2 |
'): Beginn der Behandlung mit den Antibiotika.
X : Ein Tier geht ein.
Aus der Kotbeschaffenheit und aus der Immunofluoreszenzuntersuchung
ergibt sich, daß die mit Dihydromocimycin behandelten Tiere wesentlich schneller'
gesund werden als mit Tylosin behandelte Tiere. Berücksichtigt man auch die Menge des verabreichten
Antibiotikums, so kann daraus angenommen werden, daß Dihydromocimycin mindestens 4mal so wirksam
wie Tylosin ist.
Wirkung von Dihydromocimycin gegen
Treponema-Dysentrie
Treponema-Dysentrie
Unter tierärztlicher Aufsicht werden Schweine in einer Zuchtanstalt, in der die Schweine an schwerem
Durchfall litten, behandelt. Die Schweine werden in 4
Gruppen eingeteilt und 4 Tage auf folgende Weise behandelt:
Gruppe 1:
66 Schweine erhalten Futter mit 100 ppmTylosin;
Gruppe 2:
34 Schweine erhalten Futter mit 25 ppm Dihydro-
mocimycin;
Gruppe 3:
Gruppe 3:
40 Schweine erhalten Futter mit 50 ppm Dihydro-
mocimycin; n>
Gruppe 4:
40 Schweine erhalten Futter mit 100 ppm Dihydromocimycin.
Der Kot sämtlicher Tiere vor Behandlungsbeginn ist dünn oder sehr dünn. Kotproben erweisen sich als is
Treponema-positiv und Salmonella-negativ. Gelegentlich
werden Wurmeier festgestellt.
1 Tag nach Behandlungsbeginn ist der Kot der Schweine von Gruppe 4 normal. Die Tiere von Gruppe
1 sind erst nach 3 bis 4 Tagen geheilt. Bei den Tieren der Gruppen 2 und 3 tritt der Behandlungserfolg nach einer
Zeit ein, die zwischen den entsprechenden Zeiten von Gruppe 1 und Gruppe 4 liegt. Die mit Dihydromocimycin
behandelten Tiere machen einen lebhafteren Eindruck als vor der Behandlung. Die Tiere zeigen keine
Abneigung gegen Futter mit einem Gehalt an Dihydromocimycin. Insgesamt läßt sich feststellen, daß
zur Behandlung von Treponena-Dysentrie eine Dosis von 25 ppm Dihydromocimycin günstiger ist als eine
Dosis von 100 ppm Tylosin.
Hierzu 3 Blatt Zeichnungen
Claims (4)
1. Dihydromocimycin der Formel
und dessen Salze.
2. Verfahren zur Herstellung von Dihydromocimycin
nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man Mikroorganismen des Stammes Streptomyces
rarnocissimus (CBS 19069) oder nach üblichen Methoden daraus erhaltene, das Antibiotikum
bildende Mutanten oder Varianten in einem wäßrigen, verwertbare Kohlenstoff- und Stickstoffquellen
und anorganische Salze enthaltenden Nährmedium in an sich bekannter Weise züchtet, die
Kulturbrühe abfiltriert, das Filtrat auf einen pH-Wert von 5 bis 6 ansäuert, das angesäuerte
OH
Filtrat mit Methylisobutylketon extrahiert, den Extrakt mit einer Base behandelt, das dabei
ausgefällte Mocimycin abtrennt und die Mutterlauge auf Dihydromocimycin aufarbeitet und gewünschtenfalls
in ein Salz überführt
3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet,
daß man den Extrakt mit Hilfe von Ammoniak, Natriummethylat oder Triethylamin als
Base behandelt
4. Verwendung des Dihydromocimycins gemäß Anspruch 1 als Futtermittelzusatz.
Applications Claiming Priority (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GB2092675 | 1975-05-16 | ||
GB20926/75A GB1545474A (en) | 1975-05-16 | 1975-05-16 | Mocimycin derivatives |
GB3064675 | 1975-07-22 | ||
GB3064675 | 1975-07-22 |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2621615A1 DE2621615A1 (de) | 1976-11-25 |
DE2621615B2 DE2621615B2 (de) | 1977-07-07 |
DE2621615C3 true DE2621615C3 (de) | 1978-02-16 |
Family
ID=
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