DE2510868B2 - Nanaomycin A und Verfahren zur Herstellung der Antibiotica Nanaomycin A und Nanaomycin B - Google Patents
Nanaomycin A und Verfahren zur Herstellung der Antibiotica Nanaomycin A und Nanaomycin BInfo
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Description
2. Verfahren zur Herstellung der Antibiotica Nanaomycin A und Nanaomycin B, dadurch
gekennzeichnet, daß man den Mikroorganismus Streptomyces rosa van notoensis FERM-P No. 2209
in einem üblichen Nährmedium, das assimilierbare Kohlenstoff- und Stickstoffqueüen enthält, unter
aeroben Bedingungen bei einer Temperatur von 15—40°C und einem pH von 6—10 züchtet und
anschließend die gebildeten Antibiotica aus der Kultur abtrennt.
H O
H H
20
25
Die Erfindung betrifft das Antibioticum Nanaomycin A der Formel
CH3 H
HO θ'
COOH
H H
und ein Verfahren zur Herstellung der Antibiotica Nanaomycin A und Nanaomycin B.
Nanaomycin A ist eine Verbindung vom Chinontyp und ist auf Mycoplasma, gram-positive Bakterien und
Trichophyton aktiv. Die akute Toxizität (LD50, ip) dieser Verbindung auf Mäuse beträgt 28,2 mg/kg. Die Verbindung
wird durch Fermentation gewonnen, indem ein die Nanaomycine A und B erzeugender Stamm unter
seroben Bedingungen in einem Medium gezüchtet wird, um die Nanaomycine A und B in der Kulturbrühe
anzusammeln, von welcher die Nanaomycine A und B gewonnen werden. Dieser Stamm gehört zum Genus
Streptomyces. Nanaomycin A ergibt therapeutische Wirkungen bei einigen Infektionskrankheiten, welche
durch einen Trichophyton- oder Mycoplasmaparasiten und dergleichen verursacht werden.
Das Nanaomycin A wird auch als OS-3966-A oder als Rosanomycin A bezeichnet
Nanaomycin A ist von bekannten Antibiotica des Chinontyps, wie Frenolicin (Journal of the American
Chemical Society, 90 [1968] 1325-1332), Deoxyfrenolicin (US-PS 34 52 051), Kalafungin bzw. Kalamycin
(US-PS 36 32 607, US-PS 33 00 382) und Äthylkalafunginat bzw. Äthylkalamycinat (US-PS 35 24 868) in den
Eigenschaften stark unterschieden.
Nanaomycin A hemmt das Wachstum von gram-positiven Bakterien wie beispielsweise Staphylococcus
aureus bei einer Konzentration von 2,0 bis 8,0 μg/ml und
bei einer Konzentration von nicht mehr als 3,1 μg/mI
das Wachstum verschiedener Pilze einiger Spezies, wiche zum Genus Trichophyton gehören. Außerdem
hat Nanaomycin A eine starke Aktivität auf Mycoplasma; beispielsweise wurde das Wachstum von Mycoplasma
gallisepticum durch Nanaomycin A be«, einer Konzentration von nicht mehr als 0,1 pg/ml verzögert.
Außerdem wurde eine starke antimikrobiell Aktivität von Nanaomycin A auf ein Spiramycin-resistentes
Mycoplasma gallisepticum beobachtet.
Eine ausgezeichnete therapeutische Wirkung wird durch Nanaomycin A bei verschiedenen Infektionskrankheiten
erreicht, welche durch das Vorhandensein eines Parasiten des Genus Trichophyton im Körper von
Tieren verursacht v-ird. Wenn durch Trichophyton metagrophytes verursachte Dermatomycosis am Rükken
von Guineaschweinen mit einer Lösung von 0,01 — 1% Nanaomycin A gelöst in Propylen Glycol-Äthanol
(3:1, v/v) einmal täglich 8 Tage hintereinander behandelt wird, zeigt sich eine ausgezeichnete therapeutische
Wirkung bei der Hautrötung und den Schuppen. Nanaomycin A hat außerdem eine therapeutische
Wirkung bei verschiedenen Erkrankungen des Menschen und der Tiere; es wurde seine therapeutische
Wirkung bei einer chronischen Erkrankung der Atmungswege bei Küken, verursacht durch Mycoplasma
gallisepticum, festgestellt.
Die Wirkung von Nanaomycin A wurde gegenüber Dermatomycose, die bei Rindern durch Masseninfektion
von Trichophyton veruucosum verursacht worden war, geprüft. Das Nanaomycin A wurde in Olivenöl
suspendiert und direkt auf die befallenen Stellen aufgetragen, wobei die Schuppen entfernt werden
können oder auch belassen bleiben können. Als therapeutisches Kontrollmittel wurde ein zur Bekämpfung
der Dermatomycose bei Rindern bekanntes, besonders wirkungsvolles handelsübliches Lösungspräparat
(mit 2% Methylenblau als Aktivwirkstoff) verwendet. Die therapeutische Wirkung wurde 4
Wochen hindurch geprüft. Die nach Bestreichen der befallenen Stellen mit den Testsubstanzen nach
einmaliger Anwendung bzw. nach einer ersten und einer zweiten, eine Woche später erfolgten Anwendung
erhaltenen Ergebnisse sind in der nachstehenden Tabelle I bzw. 2 angegeben.
Geprüfte Verbindung
I Nanaomycin Λ
Nanaomycin A
Nanaomycin A
0,1
Konz. Probe Ergebnis nach
mg/ml I Woche 2 Wochen .1 Wochen 4 Wochen
Fortsetzung
Geprüfte Verbindung
Konz. Probe Ergebnis nach
mg/ml I Woche 2 Wochen 3 Wochen 4 Wochen
Nanaomycin A Kontrollmittel (handelsüblich) Nanaomycin A
Nanaomycin A Nanaomycin A Kontrollmittel (handelsüblich)
10 0,3
0,1
1 10
Geprüfte Verbindung | Konz. F |
mg/ml | |
Nanaomycin A | 0,1 1 |
Nanaomycin A | 1 1 |
Nanaomycin A | 10 1 |
Kontrollmittel | 0,3 1 |
(handelsüblich) | |
Nanaomycin A | 0,1 I |
Nanaomycin A | 1 1 |
Nanaomycin A | 10 I |
Kontrollmittel | 0,3 |
(handelsüblich) |
Probe Ergebnis nach
1 Woche 2 Wochen
3 Wochen
4 Wochen
In den obigen Tabellen bedeuten:
I = direkter Auftrag auf die befallene Stelle
II = Auftrag nach Entfernung der Schuppen von der befallenen Stelle
Konz. = Konzentration des Wirkstoffes
+++ = vollständige Entfernung der Schuppen und Gesundung
++ = noch geringe Schuppenbildung
+ = Entfernung eines Teiles der Schuppen
- = keine Schuppenentfernung und keine Gesundung
Das Ergebnis über die Wirkung des Nanaomycins A gegenüber verschiedenen Mikroorganismen ist in der
nachfolgenden Tabelle 3 zusammengestellt.
Tcsl-Organismcn
Medium*)
Minimale llemmkon/entrationcn
('g/ml) Test-Organismen
Bacillus subtilis PCI 219 N 7,8
Sliiphylococcus aurcus N 3,9
FDA 209 P(JCI)
Sliiphylococcus aurcus N 2,0
FDA 209
Sarcina lutca PCI I(XIi N 2,(!
Myconaclcrium smegmiit'1» N 62,5
r.scherichiii cnli NIIIJ N 31,3
f'schcrichia coli NIHJ (JC-2)
Klebsiclla pneumorvac PCI 602
Salmonella typhimurium Shigella flcxneri
Xiinthomonas oryzae N-5824 Pscudomonab nerughosa Candida albicans
Sacehuromyces sake Aspergillus nigcr ATCC 6275 Aspergillus fumigatur IAM 2612
Piricularia oryzae
Mycrosporum gypseum 704
Xiinthomonas oryzae N-5824 Pscudomonab nerughosa Candida albicans
Sacehuromyces sake Aspergillus nigcr ATCC 6275 Aspergillus fumigatur IAM 2612
Piricularia oryzae
Mycrosporum gypseum 704
Medium*) | Minimale |
Hemm· | |
kon/cntra | |
tioncn | |
(!ig/ml) | |
N | 250 |
N | 31.3 |
N | 62,5 |
N | 3 1,3 |
N | 62,5 |
N | 500 |
P | .'1,2 |
P | 31,2 |
P | 62,5 |
P | 12,5 |
P | 7,8 |
P | 0.8 |
Fortsetzung
Test-Organismen
Test-Organismen
Medium*)
Minimale Hcmmkonzcnlra- tionen
Trichophyton
Trichophyton
Trichophyton
Trichophyton
Trichophyton
Trichophyton
Trichophyton
Trichophyton
Trichophyton
Trichophyton
Trichophyton
Trichophyton
Trichophyton
Trichophyton
Trichophyton
Trichophyton
asteroides
ferrugineuni
interdigitalc
mentagrophytes
pedis 804
purpureum
roseum
rubrum
schoenleini
Mycoplasina gallisepticum KP-13
Mycoplasma gallisepticum S-6
Mycoplasma gallisepticum 333P (Spiramycin resistant) Mycoplasma gallinarum
Mycoplasma iners
Mycoplasma pneumoniae Acholeplasma laidlawii (Λ) PG 8
Mycoplasma pneumoniae Acholeplasma laidlawii (Λ) PG 8
Acholeplasma laidlawii (B) BmI
P P P P P P P P
Il E II E II E H H E H E II E
1,6
1.6 1,6 0,8 0,2 3,1 0,4 <0,l 0,2
η
< 0,013 0,05
< 0,013 0,10
< 0,013
< 0,013 1,56 3,12 0,013
>25
>25
25
>25
*) Die Abkürzungen bedeuten: N, Nähr-Agar (pH 7,0, 2 Tage. 37 C); P, KartofTel-Agar (pH 6,4, 4 Tage, 27 C); H. Hokken
PPLO-Agar (pH 7,8, 8 Tage, 37 C); E, Eiken PPLO-Agar (pH 7,8, 8 Tage, 37 C).
In weiteren Vergleichsversuchen wurde die fungizide Aktivität und die Antimycoplasma-Aktivität von Nanaomycin
A gegenüber dem bekannten Deoxyfrenolicin und Äthylkalafunginat (Äthylkalamycinat) geprüft. Die
erhaltenen Ergebnisse sind in der nachfolgenden Tabelle 4 bzw. 5 zusammengestellt.
Tabelle 4
Fungizide Aktivität
Fungizide Aktivität
Test-Organismen
Minimale Hemmkonzentration ■jg/ml
Nanomycin AY Z
Candida albicans | 50 | 50 | >100 |
Saccharomyces sake | 12,5 | 6,3 | >100 |
Aspergillus fumigatus | 6,3 | 6,3 | >100 |
Aspergillus niger | 25 | >100 | >100 |
Microsporum | 0,8 | <C,2 | >100 |
gypseum | |||
Trichophyton | 0,8 | <0,2 | >100 |
asteroides | |||
Trichophyton | 0,8 | 3,1 | >100 |
ferrugineum | |||
Trichophyton | ! 6 | 0,4 | >!00 |
interdigitale | |||
Trichophyton | <0,2 | <0,2 | >100 |
rubrum |
Minimale llemmkon/cnlralion
yg/ml
yg/ml
Nanomycin AY /.
Trichophyton
schoenleini
Trichophyton
violaseum
schoenleini
Trichophyton
violaseum
<0,2
3,1
3,1
<0,2 >100
0,8 >100
0,8 >100
Anmerkung:
Die minimale Hemm-Konzentratkin wurde durch die Agar-Dilutionsmethodc
(KartofTelagar, pH 6,4, 27 C, 4 Tage) geprüfl.
i'i Y = Dco.xyfrcnolicin.
i'i Y = Dco.xyfrcnolicin.
/ Äthylkalafunginal (Äthylkalamycinat).
T;:bei!e S
Antimycoplasma-Aktivität
Antimycoplasma-Aktivität
Antibioticum | Konzentration | llemmbereich |
(;/.g/ml) | (mm) | |
Nanaomycin A | 10 100 |
20,4 28,7 |
Deoxyii'enolicin | 10 100 |
14,6 21,8 |
in Athylkalafunginat | 10 100 |
0 0 |
Anmerkung:
Der llemmbereich wurde durch die Papierscheiben-Methode
(Eiken PPLO-Agar, pH 7.8. .17 C. 1 Tag) geprüft.
Im Vergleich zu Deoxyfrenolicin besitzt Nanaomycin A etwa die gleiche fungizide Aktivität und ist hierin dem
Äthylkalafunginat überlegen.
Das Nanaomycin A stellt ein hellgelbes Pulver mit folgenden physikalischen und chemischen Charakteristiken
dar:
1. Gewichtsanalyse in % I
gefunden: C - 63.35; H - 4.47
berechnet: C - 63.57: H - 4,66.
gefunden: C - 63.35; H - 4.47
berechnet: C - 63.57: H - 4,66.
2. Molekulargewicht:
m/e. durch Massespektrum bestimmt, ist 302 084. und der theoretische Wert von m/e für C^HmO6 ist
302 079.
3. Schmelzpunkt: !78-1800C.
4. Spez. Rotation:[«.]? -27,5° (C= 1,0in Methanol).
5. Ultraviolett-Absorptions-Spektrum:
λ £<"' nm (ε): 250 (0385 χ ΙΟ4), 274 (1.22 χ ΙΟ4).
423(0,404 χ ΙΟ4) (Fig. \\
6. Infrarot-Absorptions-Spektnim:
Relativ starke Absorption bei 3150, 2960, 2910, 1725, 1640, 1610, 1450, 1370, 1320, 1270, 1220,
1160 cm-' (durch KBr-Methode)(Fi g. 2).
7. Löslichkeit:
Leicht löslich in Methanol, Äthanol, Äthylacetat. Chloroform, Aceton und Äther, Unlöslich in
η-Hexan, Petroläther und Wasser.
8. Farb-Reaktion:
Positiv in den Reaktionen mit Ferrichlorid und
Reduktions-Katalysator ( Fe ig I, N., Anal. Chem.,
28, 397 [1956]). Negativ in Ninhydrin-Reaktion, Sakaguchi-Reaktion, Ehrlich-Reaktion, Fchling-Reaktion
und Molish-Reaktion.
Der aus einer Bodenprobe in Nanao-shi auf der Halbinsel Noto, Japan, isolierte Mikroorganismus
Strejj'.omyces rosa var. notoensis, der uneingeschränkt
beim Fermentation Research Institute in Chiba-shi, Japan, unter FERM-P No. 2209 (und bei der American
Type ("ubture Collection in Rockville, Maryland, USA. unter ATCC No. 31135) hinterlegt worden ist, besitzt
folgende biologische Eigenschaften:
in
1. Morphologische Charakteristiken:
Bildung von Mycel vollständig an der Luft sowohl auf einem synthetischen als auch auf einem
natürlichen Agar-Agar-Medium, deren Beendigung unter Bildung einer massiven oder unregelmäßigen
Spirale erfolgt. Konidienträger, gebildet auf dem belüfteten Mycel. Die Konidiensporen sind oval
(0,6—1,0 μ) und in einer Kette von IO oder mehr. Die Sporen haben glatte Oberflächen.
2. Kultur-Charakteristiken:
Die Kultur-Charakteristiken sind in der nachfolgenden
Tabelle 6 wiedergegeben:
Kultur-Charaklcrisliken von S. rosa var. notoensis FERM-P No. 2709
Warhstum
Sacchamscnitrat-Agar
(ilukoscnitrat-Agar
Glycerin-Asparagin-A
gar
Anorganische Salze
Stärk.-Agar
Stärk.-Agar
Tyrosin-Agar
gut, leicht clfenbcin bis leicht melonengclh
gut, stäubig gelb bis goldbraun
gut. leicht melonengclb bis orangerostfarben
mittelmäßig, leicht mclonengelb
gut, leicht weizenbis bernstein-topasfarben
Nährstoff-Agar mittelmäßig, farblos
bis perl rosafarben
Glukose-Pepton-Agar mittelmäßig, farblos
bis goldbraun
Hefe-Extrakt-Malz- gut, farblos bis
Extrakt-Agar goldbraun
Hafcrmehl-Agar mittelmäßig, farblos
bis leicht melonenfarbig
Pepton-Hefe-Extrakt- mittelmäßig, creme
Eisen-Agar bis leicht weizen-
farben
Trypton-Hefe-Extrakt-Oberflächenwachs-Brühe turn, mittelmäßig,
schwach elfenbeinfarben
Milch
Gelatine
Gelatine
Nitratbrühe
Cellulose
leicht melonengelb bis apricotfarben
goldbraun bis schokoladenbraun
apricotfarben
perl rosafarben bis goldbraun
leicht melonengelb bis lohfarben
fruchtsaftgelb bis hellgelb
goldbraun bis sepiabraun
goldbraun bis orange-rostfarben
leicht melonengelb bis lohfarben
kolonialgelb
schwach elfenbeinfarben leicht apricotfarben
weiß bis perlrosa
leicht apricotfarben
leicht apricotfarben
weiß bis fleischrosa
leicht melonengelb
bis perlrosa
bis perlrosa
weiß, schwach
weiß
weiß
leicht melonengelb
bis leicht apricotfarben
bis leicht apricotfarben
leicht melonengelb
bis leicht apricotfarben
bis leicht apricotfarben
kärglich, weiß bis
kolonialgelb
kolonialgelb
weiß
perlrosa bis leicht melonengelb
leicht weizen- bis sepiabraun
melonengelb bis apricotfarben
dunkel kofferlohfarben bis sepiabraun
leicht weizen- bis melonengelb
nichts
efeu- bis dunkellorbeerfarben
efeufarben
schwach lohfarben
nichts
nichts
perlrosafarben | perlrosafarben bis | nichts | leicht apricotfarben |
CiiärtrCüSciärbCil | bis perlrosa | ||
Oberflächenwachs- | schwach elfenbein | weiß bis meergrün | lorbeerfarben |
iiirn, giii | farben | grau | |
Oberflächenwachs | nichts | weiß | nichts |
tum, mittelmäßig | |||
nichts | nichts | nichts | |
3. Physiologische Charakteristiken: Wachstumstemperatur: 15—45°C,
Verflüssigung der Gelatinierung: positiv, Hydrolysierung der Stärke: positiv.
Coagulierung von Magermilch: positiv,
Peptonisierung von Magermilch: positiv,
Bildung von Melanoid-Pigment: negativ.
Bildung von Tyrosinase: negativ,
Bildung von Melanoid-Pigment: negativ.
Bildung von Tyrosinase: negativ,
Reduktion von Nitrat: positiv,
Bildung von Schwefelwasserstoff: negativ,
Zersetzung von Cellulose: negativ.
4. Verwendbarkeit von verschiedenen
Kohlenstoffqnellen:
Kohlenstoffqnellen:
Arabinose, Xylose, Glukose, Fruktose, Rhamnose, Mannit, Glycerin, Maltose und Mannose können
brauchbar sein, während Saccharose, Innosit und Raffinose unbrauchbar sein können.
Die mikrobiologischen Charakteristiken dieses Stammes sind zusammengefaßt die folgenden:
Conidiophore sind spiralförmig und Conidiospore sind glatt. Das Wachstum auf synthetischem Medium ist
gefärbt in gelblichgrau oder orangegrau oder rötlichbraun, und das gebildete belüftete Mycel ist in weiß oder
orangegrau oder rosa gefärbt. Es ist ein lösliches Pigment gebildet, das in gelblichbraun oder stark
röthchbraun gefärbt ist. Wenn ein organisches Medium verwendet wird, ist der Zuwachs im allgemeinen farblos
oder in orangegrau oder braun gefärbt, und das gebildete Mycel ist in weiß oder orangegrau oder rosa
gefärbt. Oftmals wird das lösliche Pigment nicht gebildet, während ein grünlich graues oder gräulich
schwarzes Pigment in einigen Medien gebildet wird. Dieser Stamm ist nicht chromogen und hat eine relativ
hohe Aktivität in Hinsicht auf die Zersetzung von Protein und Stärke.
Eine Untersuchung an Stämmen, die analoge Charakteristiken zu dem verwendeten Stamm haben
[vergl. S. A. Waksman »The Actinomycetes«. Bd. 2 (1961) und E. B. Shirling.D. Gottlieb »Cooperative
Description of Type Strains of Streptomyces« in »International Journal of Systematic Bacteriology«, Bd.
18, No. 2, S. 69-189 (1968); Bd. 18, No. 4, S. 279-392
(1969); Bd. 19, No. 4, S. 391 -512 (1969) und Bd. 22. No. 4,
S. 265-394 (1972)], hat einige Spezies ergeben, die als
»fradiae« bezeichnet wurden, z. B. Streptomyces fradiae, Streptomyces luridus, Streptomyces roseus, Streptomyces
fuscus, Streptomyces roseoluteus und Streptomyces rosa. Unter diesen sind Streptomyces roseoluteus
und Streptomyces rosa fast analog. Jedoch ist einerseits Streptomyces roseoluteus von dem Nanaomycin-produzierenden
Stamm unterscheidbar, weil die Farbe an der Rückseite von der Streptomyces roseoluteus-Kolonie
gelblichorange bis gelb wird, z. B. in Medien, die aus
Hefeextrakt-Malzextrakt, Hafermehl-Agar, sowohl anorganischem Stärke-Agar, als auch Glycerin-Asparagin-Agar
bestehen, unter gleichzeitiger Bildung eines gelblichen, löslichen Pigmentes. Andererseits ist Sirentomyces
rosa im allgemeinen gleich dem Nanaomycinproduzierenden Stamm mit der Abweichung, daß die
Produktion an löslichem Pigment in Medien, die z. B. aus Hefe-Extrakt-Malz-Extrakt-Agar, Glukose-Pepton-Agar
bestehen, eintritt und daß die Reduktion des Nitrats im Falle von Streptomyces rosa nicht zu
beobachten ist. Der Nanaomycin-produzierende Stamm ist für eine Variante von Strcptornyces rosa zu halten.
Dieser Stamm wird daher als Streptomyces rosa var. notoensis bezeichnet.
Das erfindungsgemäße Verfahren zur Herstellung der Antibiotica Nanaomycin A und Nanaomycin B ist
dadurch gekennzeichnet, daß man den Mikroorganismus Streptomyces rosa var. notoensis FERM-P No.
2209 in einem üblichen Nährmedium, das assimilierbare Kohlenstoff- und Stickstoffquellen enthält, un'er aeroben
Bedingungen bei einer Temperatur von 15—400C
und einer-, r>H von 6—10 züchtet und anschließend die
gebildeten AntibioMca aus der Kultur abtrennt.
Bei dem erfindungsgemäßen Verfahren wird gleichzeitig das Nanaomycin A der oben angegebenen Formel
und das Nanaomycin B der Formel
ί ί ti Λ ,,,,
COOH
gebildet. Dieses Nanaomycin B. welches einen Schmelzpunkt von 84 —86°C und eine akute Toxizität (LD*», ip)
auf Mäuse von 169 mg/kg besitzt, wird aufgrund seiner
im übrigen dem Nanaomycin A sehr ähnlichen
Eigenschaften zu demselben Zweck wie das Nanaomycin A verwendet.
Für das erfindungsgemäße Verfahren kann ein zum Züchten eines Mikroorganismus übliches Kulturmedium
verwendet werden. Vorzugsweise wird ein flüssiges Medium verwendet, aber auch ein festes Medium ist
verwendbar. Die Fermentierung wird aerob unter Schütteln und/oder getauchten Bedingungen bei einer
Temperatur zwischen 15 und 40°C und einem dargestellten pH-Wert von 6— IO etwa 2 — 8 Tage lang
durchgeführt. Als Nährmedium eignet sich ein übliches synthetisches oder organisches Medium mit üblichen als
Kohlenstoffquelle und .Stickstoffquelle zu verwendenden
Stoffen und üblichen anorganischen Nährstoffen. Als Kohlenstoffquellen eignen sich z. B. Glukose.
Glycerine, Fruktose, Maltose, Mannit, Xylose, Galaktose, Laktose. Ribose, Stärke und Stärke-hydrolysat. Die
Konzentration der Kohlenstoffquelle ist vorzugsweise 0.5 — 5,0% (wenn als Glukose berechnet), bezogen auf
das Medium. Auch organische Säuren, wie Glukonsäure. Brenztraubensäure. Milchsäure, Essigsäure und Aminosäuren,
wie Glykokoll. Glutaminosäurc, Alan η können verwendet werden. Als Stickstoffquelle eignen sich z. B.
Ammoniak, verschiedene anorganische und organische Ammonsalze. wie Ammonchlorid. Ammonphosphat.
Ammonsulfat. Ammonnitrat: stickstoffhaltige organische Materialien, wie Harnstoff, Pepton. Fleischextrakt.
Trockenhefe. Hefeextrakt. Maiswasser. Caseinhydrolysat. Fischmehl, ein daraus extrahiertes Produkt.
Sojabohnenmehl, daraus digerierte Produkte, entfettete Sojabohnen, deren digerierte Produkte, insektenlarven-Hydrolysat:
und Aminosäuren, wie Glykokoll. Glutaminsäure. Alanin.
Dem Nährmedium können als anorganische Substanzen z. B. verschiedene Phosphate, Magnesiumsulfat
zugegeben werden. Falls gewünscht, können Spuren eines Schwennetallsalzes zugesetzt werden, jedoch ist
das nicht immer wesentlich, sofern das verwendete Medium natürliche Materialien enthält.
Man arbeitet im allgemeinen wie nachstehend beschrieben.
Ein entsprechendes Kulturmedium (100 ml) wird in eine 500ml Sakaguchi-Flasche eingefüllt und bei einer
Temperatur von 1200C 15 Minuten sterilisiert. Anschließend
wird das sterilisierte Medium mit Sporen und/oder iem Mycel von Streptomyces rosa var. notoensis
FERM-P No. 2209 geimpft und die Fermentierung unter Schütteln (110 U/Min.) bei einer Temperatur von 27"C
während einer ausreichenden Zeitspanne von beispiels-
weise 3 Tagen durchgeführt, wobei sich große Mengen von Nanaomycin A und B in der Kulturbrühe bilden.
Man kann auch ein entsprechendes Kulturmedium (20 I) in einen 30-l-Fermenter einfüllen und bei einer
Temperatur von 1200C 15 Minuten lang sterilisieren.
Anschließend wird mit dem betreffenden Mikroorganismus beimpft und die Fermentierung bei einer Temperatur
von 27°C 3 Tage unter Schütteln (300 U/Min.) und Belüftung (10 l/Min.) durchgeführt. Bevorzugt wird auch
ein entsprechendes Kulturmedium (2001) in einem Tank-Fermenter (Fassungsvermögen 4001) bei einer
Temperatur von 27"C 3 Tilge unter Schütteln
(200 U/Min.) und Belüftung (100 l/Min.) fermenliert. Gute Resuliate können in allen Fällen erzielt werden,
wenn als Kohlenstoff bzw. Stickstoffquelle Glycerin und Sojabohnenmehl verwendet werden. Besonders vorteilhaft
ist ein Medium mit 2,0% Glycerin, 2,0% Sojabohnenmehl und 0,3% NaCl mit einem pH-Wert
y ei wci'iuiii'ig cii'tcS SuiCmcm ivicuiümS
wurde nach einer 70stündigen Züchtung bei einer Temperatur \on 27"C in einem Tank-Fermenter bei
einer Probe der obenstehenden Flüssigkeit, die einen pH-Wert von 5,2 aufwies, eine Hemmzone von 30 mm
Durchmesser gegenüber dem Mikroorganismus Mycoplasma gallisepticum KP-13 festgestellt. Sowohl in den
fermentierten Flüssigkeiten als auch in den fermentierten Feststoffen sind Nanaotrnnn A und B zu finden,
jedoch enthält die fermentierte Flüssigkeit gewöhnlich größere Mengen an Nanaomycn A und B als die
fe-mentierten Feststoffe.
Testverfahren für Nanaomycin A und B
Das in der Fermentationsflüssigkeit gebildete Nanaomycin A und B wird beispielsweise durch die
Papierscheiben-Methode geprüft, welche von Itoh und Mitarbeitern im journal of Antibiotics, 24, Seite
885-859(l97l)beschriebenwird.
Zur Isolierung von Nanaomycin A und B nach beendeter Fermentierung aus der Kulturbrühe wird die
Brühe in die feste und die flüssige Phase in üblicher Weise z. B. durch Fillrierung, Zentrifugierung getrennt.
Die flüssige Phase, d. h. das Filtrat wird z. B. mit Salzsäure auf einen sauren pH-Wert von vorzugsweise
2 bis 4 eingestellt, welches dann der Extraktion mit einem organischen Lösungsmittel wie Äthylacetat oder
Butylacetat unterworfen wird. Danach werden Nanaomycin A und B durch Reinigung der extrahierten
Substanz auf übliche Weise erhalten. Man kann auch Nanaomycin A und B von der extrahierten Lösung in
alkalischem Zustande isolieren, jedoch soll ein übermäßig hoher pH-Wert vermieden werden, da Nanaomycin
B in Nanaomycin A in alkalischem Zustande umgewandelt wird. Um aus dem Extrakt sehr schnell Nanaomycin
A und B zu eluieren, wird beispielsweise eine l%ige wäßrige Natriumbicarbonatlösung verwendet. Unmittelbar
danach wird das Nanaomycin A und B enthaltende Eluat beispielsweise mit Salzsäure auf einen
sauren pH-Wert eingestellt und dann die wäßrige Lösung mit einem organischen Lösungsmittel, wie
Äthylacetat oder Butylacetat, extrahiert. Der erhaltene Extrakt wird zur Trockne konzentriert, wobei Nanaomycin
A und B als Rohpulver erhalten wird, welches dann der Säulen-Chromatographie unter Verwendung
von Silikagel unterworfen wird. Das Rohpulver wird zuerst mit einem Lösungsmittelgemisch von Benzol-Äthylacetat
(4:1, v/v) entwickelt, wobei die das Nanaomycin A enthaltenden Fraktionen eluiert werden,
und dann wird mit einem l.ösungsmittelgemisch von Benzol-Äthylacetat (3 :1, v/v) entwickelt, wobei die das
Nanaomycin B enthaltenden Fraktionen eluiert werden. Die jeweils erhaltenen Fraktionen werden vereinigt und
zur Trockne konzentriert. Das Nanaomycin A enthal- > tende Trockenmaterial wird in Äthanol gelöst, dem
dann eine geringe Menge an Wasser zugesetzt wird, wobei Kristallnadeln von Nanaomycin A ausfallen. Das
Nanaomycin B kann auch in gleicher Weise aus den das Nanaomycin B enthaltenden Fraktionen erhalten
ίο werden, wobei das entsprechende Trockenmaterial durch Silikagel-Säulenchromatographie gereinigt wird,
und bei der in gleicher Weise wie vorstehend beschrieben unter Verwendung von Benzol-Äthylacetat
(2 : 1. v/v) als Elutionsmittel gearbeitet wird.
Beispiel I
Auf einer schrägen Kultur wurde mit Hilfe einer
Auf einer schrägen Kultur wurde mit Hilfe einer
r liiuFiCSc CiWäS VoH uCiTi οιαΓΠΓΠ otrCpiGiTiyCCS rOSu VSr.
:n notoensis FERM-P No. 2209 entnommen und damit ein
Saatmedium beimpft, welches 2,0% Glycerol, 2,0% Sojabohnenmehl und 0,3% NaCl enthielt und auf einen
pH-Wert von 7,0 eingestellt sowie 15 Minuten bei 1200C
sterilisiert worden war. Das beimpfte Saatmedium
_'ΐ wurde dann 2 Tage bei 27"C und einem pH von 7
gezüchtet. Die anfallende Saatkultur wurde weiter in einer Menge von 1% auf ein Medium (201) geimpft,
welches sich in einem 30-1-Fermenter-Gefäß befand und ebenfalls 2,0% Glycerol, 2,0% Sojabohnenmehl und
0,3% NaCI enthielt und auf einen pH-Wert von 7,0 eingestellt sowie 15 Minuten bei 120"C sterilisiert
worden war. Dann wurde der Mikroorganismus 4 Tage bei 27°C unter Belüftung (10 l/Min.) und Rühren
(300 U/Min.) gezüchtet. Nach Abschluß der Fermentierung betrug der pH-Wert der Kulturbrühe 4,8. Eine
Probe der obenstehenden Schicht der Brühe ergab bei der Prüfung gegen Mycoplasma gallisepticum eine
Hemmzone von 30 mm Durchmesser. Die Brühe (20 1) wurde zur Entfernung de? Mycel zentrifugiert, das
Filtrat mit 6 η HCI auf einen pH-Wert von 2,0 eingestellt und dann mit 4 I Butylacetat extrahiert. Der Butylacetatextrakt
wurde nun mit 800 ml l%iger wäßriger Natriumbicarbonatlösung extrahiert. Die wäßrire Lösung
wurde dann mit 6 η HCI auf einen pH-Wert von 2,0 eingestellt und mit 160 ml Äthylacetat extrahiert. Dieser
Extrakt wurde konzentriert und mit 30 m! Petroläther versetzt, wobei ein gelbbraunes Pulver (1,09 g) ausfiel.
Das erhaltene Pulver wurde anschließend auf folgende Weise gereinigt.
Das Rohpulver, das Nanaomycin A und B enthielt, wurde in Äthylacetat (15 ml) gelöst, mit Silikagel (4 g)
versetzt und im Vacuum getrocknet. Dann wurde das getrocknete Material in eine mit SÜikagel (55 g)
vollgepackte Säule eingegeben und mit einem l.ösungsmittelgemisch aus Benzol-Äthylacetat (4 : 1, v/v)entwikkelt.
Das Eluat wurde in einzelne Fraktionen von jeweils 15 ml aufgeteilt Jede Fraktion wurde nach der bereits
erwähnten Papierscheibenmethode unter Verwendung von Mycoplasma gallisepticum KP-13 als Test Mikroorganismus
geprüft. Der erste Teil des Eluats, und /war die Proben 8 bis 22 der Fraktionen enthielten Nanaomycin
A, wobei die Probe 14 Aktivität gegen den Test-Mikroorganisinus
aufwies. Für die Fraktionen nach der Probe 30 wurde als Lösungsmittelgemisch zur Edition
ein solches von Benzol-Äthylacetat (3:1, v/v) verwendet. Die Fraktionen 32 bis 60 enthielten das Nanaomycin
B, wobei die Aktivität der Nummer 46 gegenüber dem Tesi-Mikroorsanismus am höchsten war.
Die Fraktionen 8 bis 22 wurden vereinigt und im Vacuum getrocknet Der erhaltene Rückstand wurde in
Äthanol gelöst und dann mit einer geringen Menge Wasser versetzt, wobei gelbe Kristallnadeln (31,7 mg)
erhalten wurden. Die Kristalle wurden aus Äthanol unter Zugabe einer geringen Menge an Wasser
umkristallisiert Man erhielt 253 mg gereinigtes Nanaomycin A mit einem Reinheitsgrad von über 99% und
einem Schmelzpunkt von 178—1800C
Das UV-Absorptions-Spektrum der Verbindung ist in F i g. 1 dargestellt
λ iü,\OH nm: 250,274 und 423
Das IR-Absorpt'.ons-Spektrum (KBr-Methode) der
Verbindung ist in F i g. 2 dargestellt
Charakteristisch starke Absorption bei
1725.1640 und 1610 cm-'
1725.1640 und 1610 cm-'
Die Fraktionen 32 bis 60 wurden vereinigt und im Vacuum getrocknet, wobei ein blaßgelbes Pulver
(450 mg) erhalten wurde. Das Pulver wurde weiter mittels Säulenchiomatographie an Silikage! i.nd unter
Verwendung von Benzol-Äthylacetat (3:1, v/v) als Elütionsmiuel gereinigt Man erhielt 270 mg gereinigtes
Nanaomycin B als Pulver mit einem Reinheitsgrad von 99% und einem Schmelzpunkt von 84-86°C.
UV-Absorptions-Spektrum der Verbindung:
λ UL'.0" nm: 23} und 352
λ UL'.0" nm: 23} und 352
IR-Absorptions-Spektrum (KBr-Methode) der Verbindung:
Charakteristich starke Absorption bei
1705,1648 und 1605 cm-'.
1705,1648 und 1605 cm-'.
ίο Dem gemäß Beispiel 1 durch Zentrifugieren der
Kulturbrühe erhaltenen Mycel wurden 5 Liter Äthylacetat unter Rühren zugesetzt Der erhaltene Extrakt
wurde mit 2 Liter 1 %iger wäßriger Natriumbicarbonatlösung (21) versetzt die wäßrige Schicht abgetrennt und
diese mit Salzsäure auf einen pH-Wert von 2,C eingestellt Dann wurde sie mit 500 ml Äthylacetai
extrahiert und der Extrakt im Vacuum getrocknet Mar erhielt 521 mg eines gelbbraunen pulvrigen Rohproduktes,
das wie im Beispiel 1 der Silikagel-Säulenchromatographie
unterworfen wurde. Man erhielt die folgender Ergebnisse:
Ausbeute Schmelzpunkt Reinheitsgrad
Nanaomycin
Nanaomycin B
Nanaomycin B
13 mg
85 mg
173-175 C
82- 84 C
82- 84 C
95%
92%
Hierzu 1 Blatt Zeichnungen
Claims (1)
- Patentansprüche;
1. Nanaomycin A der Formel
CH3 HIOCOOHH OH HH H15
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19752510868 DE2510868C3 (de) | 1975-03-13 | 1975-03-13 | Nanaomycin A und Verfahren zur Herstellung der Antibiorica Nanaomycin A und Nanaomycin B |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19752510868 DE2510868C3 (de) | 1975-03-13 | 1975-03-13 | Nanaomycin A und Verfahren zur Herstellung der Antibiorica Nanaomycin A und Nanaomycin B |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2510868A1 DE2510868A1 (de) | 1976-09-23 |
DE2510868B2 true DE2510868B2 (de) | 1979-06-21 |
DE2510868C3 DE2510868C3 (de) | 1980-02-14 |
Family
ID=5941210
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE19752510868 Expired DE2510868C3 (de) | 1975-03-13 | 1975-03-13 | Nanaomycin A und Verfahren zur Herstellung der Antibiorica Nanaomycin A und Nanaomycin B |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DE (1) | DE2510868C3 (de) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS61152668A (ja) * | 1984-12-27 | 1986-07-11 | Yamanouchi Pharmaceut Co Ltd | 新抗生物質YS−02931K−β物質およびその製造法 |
-
1975
- 1975-03-13 DE DE19752510868 patent/DE2510868C3/de not_active Expired
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DE2510868C3 (de) | 1980-02-14 |
DE2510868A1 (de) | 1976-09-23 |
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Legal Events
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---|---|---|---|
C3 | Grant after two publication steps (3rd publication) |