DE2330159C3 - Radioaktiv markierte Sterofdderivate, Verfahren zu deren Herstellung und diese enthaltendes Diagnostikum - Google Patents
Radioaktiv markierte Sterofdderivate, Verfahren zu deren Herstellung und diese enthaltendes DiagnostikumInfo
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Description
D-
worin A, B — C, D — E, R4, R5, R6 und R7 sowie
Z und X die oben angegebene Bedeutung haben, gegebenenfalls nach überführung in die entsprechenden Säurechloride, -azide, -azolide, -anhydride ocjer
©der Ester, mit einer Verbindung der allgemeinen
Rs— O
E-D
Formel VI
H-N
worin
R1
R-R1
(Vl)
Rs—O
2S B—C d'e Gruppierung
— N
die oben angegebene Bedeutung hat. umsetzt.
oder
Die Erfindung betrifft Steroidderivate der allgemeinen Formel I
40
O-R8
R1"
CH2-R" CO
R1
(D
Z ein Sauerstoffatom, zwei Wasserstoffatome oder die
Gruppierung H, OH. E—D eine Einfach- oder eine
Doppelbindung. F—G die Gruppierung
-CH7-CH,- -CH=CH-
-CH2-CH(CH,)'
-CH = C(CH3)-
-X-N
R1
R2
55 oder
-CH CH
CH,
sich bevorzugt in den Stellungen 6, 7. 11 oder 12 6o D, .. „ . ,„,, . ,,_ .
befindet ^ "le Gruppierung — (C H2Jn — CO — und η eine
, ganze Zahl zwischen O und 4 bedeutet, R4 ein Wasser-
, stoffatom oder eine Methylgruppe, R5 eine Methyl-
' oder Älhylgruppe, R'1 ein Wasserstoff-. Fluor- oder
N, 65 Chloralom. R ein Wasserstoff-, Fluor- oder Chlor-
^2 atom oder eine Methylgruppe, RK ein Wasserstoffatom
___ oder eine Alkanoylgruppe mit bis /u 15 Kohlenstoff-
Jen lritium- oder l4C-markiertcn Rest eines Amins atomen. R9 ein Wasserstoff;iiom. eine Methvl- oder
inc Älhinylgruppc, R10 ein Wasserstoffatom, cine
viethylgruppc oder die Gruppierung —O — R8.
iu ein Wasserstoff- oder ein Halogenatom oder die
jruppicrung — O — R8. R12 ein Wassersloffatom
)der die Gruppierung — O — R8, Rg und R10 oder
I10 und R12 gemeinsam die Gruppierung
-O
— O
1.1
R1
R13, R1* ein Wasserstoffatom oder eine Alkylgruppc
mit bis zu 5 Kohlenstoffatomen bedeuten.
Die Erfindung betrifft ferner ein Verfahren zur Herstellung der Steroiddcrivatc 1 sowie diese enthaltende
Diagnostika.
Es besteht ein stetes Bedürfnis nach genauen und hochempfindlichen Analysenmethoden für Wirkstoffe.
die in äußerst kleinen Mengen vorhanden sein können, z. B. für Steroide in Körperflüssigkeiten, wie
Blut, Harn usw. Die Analyse soll dabei möglichst allein auf den Wirkstoff, z. B. das Steroid, ansprechen, sie soll
also monospezifisch sein, d. h. durch andere Substanzen, die in der Körperflüssigkeit vorhanden sein
können, nicht verfälscht werden.
Es gibt eine Vielzahl von Analysenmethoden, die auf den verschiedensten physikalisch-chemischen Verfahren
beruhen, gekannt seien beispielsweise Speklrometrie,
Titrimctric, Chromatographie usw. Infolge der geringen Mengen, die nachzuweisen sind oder nachgewiesen
werden können, haben sich nun immunologische Testmethoden bei der Bestimmung von
Wirkstoffen, z. B. von Steroiden, immer mehr durchgesetzt, weil immunologische Testmethoden, speziell
radioimmunologischc Tests, auf Grund ihrer Empfindlichkeit und Spezifität anderen Testmethoden bei
der Bestimmung von körpereigenen oder ähnlichen Wirkstoffen im allgemeinen überlegen sind.
Voraussetzung Tür einen radioimmunologischen Test ist, daß ein ausreichend spezifisches Antiserum
zur Verfügung steht und daß die zu bestimmende Verbindung oder ein geeignetes Derivat in möglichst
hoch radioaktiv markierter Form als Tracer zugänglich ist.
Die Herstellung eines spezifischen Antiserums kann relativ leicht erreicht werden, wenn das zu bestimmende
Antigen selbst in der Lage ist. die Bildung von Antikörpern zu stimulieren, d. h. wenn es gleichzeitig ein Immunogen ist. Dies trifft unter anderem
für alle Proteohormone zu. die in höchstgereinigter Form zur Produktion geeigneter Antiseren direkt eingesetzt werden können. Schwieriger ist es, wenn das
Antigen eine niedermolekulare Verbindung, so z. B. ein Steroid, ist. das selbst nicht eine Immunantwort
provoziert, also nicht immunogen ist.
In derartigen Fällen hat sich die Verknüpfung des
niedermolekularen Antigens, das häufig auch als Hapten bezeichnet wird. z. B. eines Steroids, mit einem
hochmolekularen Träger und die Verwendung dieses »!Conjugates« als Immunogen bewährt. Ein prinzipieller Nachteil dieses Verfahrens ist jedoch, daß
die Verknüpfung des Haptens mit dem hochmolekularen Träger zu einer Verringerung der Spezifität
der erhaltenen Antikörper führt, wie dies bei der Mehrzahl der zur Zeit zugänglichen Antisera der Fall
ist. Die Verringerung der Spezifität äußert sich in den
Kreuzreaktionen der Antiseren mit Wirkstoffen, z. B. Steroiden, die ähnliche charakteristische funktionelle
Gruppen aufweisen wie die nachzuweisenden (Steroide). Dies beruht darauf, daß die charakteristischen
funktionellen Gruppen zur Verknüpfung des Haptens mit dem hochmolekularen Träger herangezogen werden,
so daß die funktionellen Gruppen nicht als Determinanten bei der Stimulierung der Antikörpersynthese
beteiligt sind und daher auch nicht zu der Spezifität der gebildeten Antikörper beitragen.
Auch die oben angeführte zweite Voraussetzung, die Zugänglichkeit ausreichend hoch radioaktiv markierter
Tracer, ist in vielen Fällen, besonders bei den als Wirkstoffen verwendeten Steroiden, nicht erfüllt, so
daß trotz einer möglichen Herstellung der Antiseren eine radioimmunologische Bestimmung dieser Steroide
nicht möglich ist.
Daher bedeuten hochradioaktiv markierte Steroidderivate, die leicht zugänglich und als Tracer zu verwenden
sind, einen wesentlichen Fortschritt unter den Diagnostika.
Die vorliegende Erfindung stellt nun insbesondere radioaktiv markierte Steroidderivate bereit, die den
Nachteil einer geringen Aktivität nicht aufweisen, sondern eine ausreichende Aktivität besitzen. Ferner
ist das Verfahren zur Herstellung der Steroidderivate in der Erfindung inbegriffen.
Die Gruppierung
R1
-X-N
R2
kann sowohl an die Ringe A, B. C und D des Steroids als auch an die gegebenenfalls vorhandene 17-ständige
Seitenkette gebunden sein. Da im allgemeinen die Steroide, zu deren Nachweis die erfindungsgemäßen
Steroide dienen sollen, mindestens funktionelle Gruppen und'oder Substituenten an den Ringen A, D und
oder der gegebenenfalls vorhandenen Seitenkette aufweisen, wird die Gruppierung
R1
-X-N
vorzugsweise an den Ring B in 6- oder 7-Stellung oder an den Ring C in 11- oder 12-Stellung gebunden
sein. Sollte der Ring B bzw. C ebenfalls eine funktionelle Gruppe oder einen Substituenten aufweisen,
so wird die Gruppierung
R1
-X-N
vorzugsweise an die angegebene Stellung des Rings C bzw. B gebunden sein.
Als mögliche funktionelle Gruppen oder Substi tuenten seien beispielsweise genannt: Ketogruppen π
3-, 6-, 11- und/oder 17-Stellung; freie, veresterte ode
verätherte Hydroxygruppen in 1-, 3-, 6-. 11-, 16- und
oder 17-Stellung; eine Alkylgruppe mit 1 bis 5 Kohlen
stoflatomen. vorzugsweise eine Methyl- oder Äthyl gruppe, in 1-. 2-. 6-, 7-, 10-, 13- und oder 16-Stellung
609 647 301
eine Methylengruppe in 1,2-, 6,7-, 15,16- und oder 16 17-Stellung oder Halogenatome, vorzugsweise ein
Fluor- oder Chloratom, in 2-, 4-, 6-, 7-, 9-, 11-
und oder 16-Stellung.
Die Ringe A, B, C und D können gesättigt oder ungesättigt sein, wobei sich anwesende Doppelbindungen,
z.B. in 1(2)-, 3(4)-, 4(5)-, 5(6)-, 6(7)-, 5(10)-, 9(11)- und'oder 16(17)-Stellung befinden können.
Bevorzugte Steroide sind unter anderem Steroidderivate
der allgemeinen Formel II Weitere bevorzugte Steroide sind Steroidderivate
der allgemeinen Formel 111
CH1-R"
R1
(H) R4I
F\
G'
OH
R"
vvo π η CO
Rr-
I ] ' R1
-X-N
X-N
R-
R1
-X-N
R1
R2
in der oben angegebenen Bedeutung sich bevorzugt in der Stellung 6 und 7 befindet. F'—G' eine Einfach-
oder Doppelbindung darstellt und R4. R\ R'\ R10. R"
Ri: und Z die oben angegebene Bedeutung haben.
Ferner sind bevorzugte Steroide Steroidderivate dei allgemeinen Formel IV
die oben angegebene Bedeutung hat und sich bevorzugt in 6-, 7-. 11- oder 12-Stellung befindet. A' die
Gruppierung
R-O-I
und B'—C die Gruppierung
CO
Q η
R1"
XN
—X — N
R1
R:
s° sich bevorzugt in 11- oder 12-Stellune befindet un(
ebenso wie R\ R8 und R10 die oben aneeeebene Be
deulung hat.
Die Herstellung der erfindungsgemäßen Steroid der allgemeinen Formel I erfolgt in"an sich bekannte Weise aus entsprechenden Steroiden der allgemeine] Formel V
Z R5
darstellt, in denen R4, R5, R8, R9 und R10 die oben
angegebene Bedeutung haben.
—X-OH
worin A. B — C. D - E, R\ R5. R* und R7 sowie ;
und X die oben angegebene Bedeutung haben,
gegebenenfalls nach überführung in die entsprechenden Säurechloride, -azide, -azolidc, -anhydride oder
Ester durch Umsetzung mit einer Verbindung der allgemeinen Formel VI
R1
H-N
(Vl)
R2
worin
— N
die oben angegebene Bedeutung hat.
Die Umsetzung der Steroide der allgemeinen Formel V mit den Verbindungen der allgemeinen Formel
Vl kann nach Methoden erfolgen, wie sie dem Fachmann allgemein, z. B. aus der Peptidchemie,
bekannt sind. Genannt seien beispielsweise folgende Verfahren:
Methode der gemischten Anhydride, die Carbodiimid-Methode,
die Azid-Methode oder die Methode der aktivierten Ester. Eine allgemeine Beschreibung
dieser Methoden findet sich unter anderem in H. Beyer, Lehrbuch der organischen Chemie.
S. Hirzel-Verlag, Leipzig (1968).
Als Aminogruppe(n) tragende Verbindungen kommen unter anderem primäre Amine in Frage, so daß
R1 ein Wasserstoffatom und R2 einen gegebenenfalls, z. B. durch eine Hydroxylfunktion oder durch heterocyclische
Reste, substituierten Alkylrcst bedeutet, beispielsweise genannt seien Methyl-. Äthyl-, Benzylamin-,
Tyramin, Tryptamin, Serotonin, Histamin usw.
Als Aminoverbindungen seien ferner sekundäre Amine genannt, so daß R1 und R2 einen gegebenenfalls
substituierten Alkylrest bedeuten, oder cyclische Amine, so daß R1 und R2 zusammen eine gegebenenfalls
noch durch ein Heteroatom, wie ein Sauerstoff-. Stickstoff- oder Schwefelatom, unterbrochene Alky'enbrücke
mit 4 bis 7 Atomen bedeuten, beispielsweise seien genannt: Dimethyl-, Diäthyl-, Dibutylamin,
Piperidin, Piperazin. Morpholin usw.
Als Aminoverbindungen kommen auch aliphatische oder aromatische Aminosäuren in Betracht, so daß
R1 ein Wasserstoffatom und R2 den übrigen Rest der
Aminosäure bedeutet, beispielsweise seien genannt: Glycin, Alanin, Valin, Leucin, Phenylalanin, Tyrosin,
Thyrocin, L-Dopa usw.
Als Aminoverbindungen kommen auch heterocyclische Aminosäuren in Frage, so daß
R1
—N
R2
den Rest einer heterocyclischen Aminosäure, wie z. B.
Prolin, Tryptophan, Histidin usw. bedeutet
Die Ammogruppe(n) tragenden Verbindungen der Formel VI sind in hoch aktivierter Form ausreichend
käuflich oder bequem herstellbar, so daß die aktivierten Steroiddcrivate der Formell leicht und kurzfristig
erhalten werden können. Im allgemeinen werden die Steroidderivalc der Formel 1 nicht isoliert, sondern
in Form ihrer Lösungen in den Test eingesetzt werden. Die beschriebenen Tracer der allgemeinen Formel I
s sind in analoger Weise substituiert wie zur Antikörpererzeugung verwendete Steroidkonjugate. Sie
können als solche bei radio-immunologischen Tests eingesetzt werden, stellen also Diagnostika dar. Im
Gegensatz zu literaturbekannten Verfahren, die als
ίο Tracer das gesamte Immunogen (also ein Konjugat:
Steroid - hochpolymerer Träger) verwenden und die Radioaktivität durch Jodierung einführen, haben die
hier beschriebenen Tracer der allgemeinen Formel I den Vorteil, daß solche Antikörper, die gegen antigene
Determinanten des Trägers gerichtet sind, keinen Einfluß auf das Testergebnis haben. Die Spezifität des
Tests wird also dadurch weiter erhöht. Sie sind somit zum Nachweis und zur Bestimmung von äußerst
geringen Mengen der Steroide bis zu einem Bereich von Picogramm ml geeignet.
Die Ausgangssteroide der allgemeinen Formel V können nach Verfahren, wie sie dem Fachmann
allgemein bekannt sind, erhalten werden. So können beispielsweise die Verbindungen der Formel V. in
denen X eine —O — CO—R3- oder— NH-CO—R3-Gruppierung
darstellt, durch Umsetzung des entsprechenden Hydroxy- oder Aminosteroids mit dem
cyclischen Anhydrid einer Dicarbonsäure, wie z. B. Bernsteinsäure-, Glutarsäure-, Adipinsäureanhydrid,
hergestellt werden.
Beispielsmäßig sei die Herstellung der Ausgangssteroide der Formel V an Hand der folgenden neuen
Verbindungen beschrieben:
A, 21.3g 6-Ketoöstradiol-diacetat -- hergestellt aus o-Ketoöstradiol-H-acetat (belgische Patentschrift 7 85 448) durch übliche Acetylierung — werden unter Reformatzky-Bedingungen mit 29 ml Bromessigsäureäthylester umgesetzt. Das Rohprodukt wird mit Silicagel gemischt, auf eine Silicagelsäule gebracht und mit Hexan — Essigestergemisch eluiert. Die nach Dünnschichtchromatographie einheitlichen Fraktionen werden eingedampft. Der Rückstand wird mit 450 ml Alkohol nach Zugabe einer Mischung von 40 m! Alkohol und 4,5 ml konz. Schwefelsäure 4 Stun-
A, 21.3g 6-Ketoöstradiol-diacetat -- hergestellt aus o-Ketoöstradiol-H-acetat (belgische Patentschrift 7 85 448) durch übliche Acetylierung — werden unter Reformatzky-Bedingungen mit 29 ml Bromessigsäureäthylester umgesetzt. Das Rohprodukt wird mit Silicagel gemischt, auf eine Silicagelsäule gebracht und mit Hexan — Essigestergemisch eluiert. Die nach Dünnschichtchromatographie einheitlichen Fraktionen werden eingedampft. Der Rückstand wird mit 450 ml Alkohol nach Zugabe einer Mischung von 40 m! Alkohol und 4,5 ml konz. Schwefelsäure 4 Stun-
4s den unter Rückfluß gekocht. Nach Einengen wird in
Eiswasser gefällt, abfiltriert und neutral gewaschen. Nach fraktionierter Kristallisation des (9,1 g) Rohproduktes
aus Essigester und Mutterlaugenchromatographie werden 4,0 g 6-Äthoxycarbonylmethyl-1.3,
5( 10).6-östratetraen-3,l 7/>-diol vom Schmelzpunkt 178
179 bis 180.5 C und 1,2 g 6-Äthoxycarbonylmethylen l,3,5(10)-östratrien-3,17/?-diol vom Schmelzpunkt
181 182 bis 183,50C erhalten.
20 g 6 - Äthoxycarbonylmethyi - l,3,5(10),6 - östratetraen
- 3.17,-;-diol werden in 280 ml Tetrahydrofuran und 280 ml Methanol in Gegenwart von 2 s
Pd CaCO3 (10%ig) bis zur Aufnahme von 1 mMol
Wasserstoff je Millimol Substanz hydriert. Man erhall 6/< - Äthoxycarbonylmethyi - 1,3,5(10} - östratrien- 3,170-diol als schaumartige Masse. Die gleiche Verbin
dung wird auch durch analoge Hydrierung vor 6 - Äthoxycarbonylmethylen - 13,5(10) - östratrien
3,17,-i-diol erhalten. Die Herstellung von 6/i-Äthoxy
carbonylmethyl-1,3,5(10)-östratrien-3,170-diol laß
6s sich dadurch vereinfachen, daß das Rohprodukt de
Reformatzky-Reaktion hydrolysiert, das erhalten« Hydrolysat durch fraktionierte Filtration über Silica
gel von Nebenprodukten befreit und das anfallend
Gemisch von 6-Äthoxycarbonylmethyl- 1,3,5(1O)-6-östratetraen-3,17/i-diol
und 6-Äthoxycarbonylmethyien-l,3,5(10)-östratrien-3,17/y-diol
wie oben angegeben hydriert wird.
8,0 g 6(i - Äthoxycarbonylmethyl - 1,3,5(10) - östratrien-3,17/i-diol
werden mit 180 ml n/2 Kalilauge 3 Stunden unter Rückfluß gekocht. Dann wird in
Eiswasser gefallt, neutralisiert und wiederholt mit Äther ausgeschüttelt. Die Ätherauszüge werden mit
verdünnter Sodalösung wiederholt ausgezogen und die Sodaauszüge mit Salzsäure angesäuert. Der Niederschlag
wird abfiltriert und neutral gewaschen. Man erhält 4,14g 6/<-Carboxymethyl-l,3,5(l0)-östratrien-3,17/y-diol.
Schmelzpunkt 220,5 bis 222°C (Aceton).
A2 1,4 g 6/i-Äthoxycarbonylmethyl-1,3,5(10)-öslratrien-3,17/i-diol
— hergestellt gemäß A1 — werden mit Cyclohexanon und Aluminiumisopropylat einer
Oppenauer-Oxydation unterworfen. Nach Chromatographie an Silicagel erhält man 1,0 g 3-Hydroxy-6/f-äthoxycarbonylmethyl-l,3,5(10)-östratrien-17-on
(Schmelzpunkt 137,5 bis 138° C), das durch alkalische
Verseifung mit Kalilauge analog A1 in 3-Hydroxy-6/i
- carboxymethyl -1,3,5( 10) - östratrien -17 - on vom
Schmelzpunkt 240 bis 242' C (Aceton) übergeführt wird.
Die gleiche Verbindung wird auch bei Durchführung der Oxydation mit Jones-Reagenz und analoger Aufarbeitung
erhalten.
A3 (a) 10,0 g S-Hydroxy-o/f-äthoxycarbonylmethyl-1,3,5(10)-östratrien-17-on
hergestellt gemäß A2 — werden mit 20 ml Acetanhydrid 20 Stunden bei Raumtemperatur
in 20 ml Pyridin acetyliert. Nach Fällen in Eiswasser, Abfiltrieren und Aufnehmen des Niederschlags
in Methylenchlorid. Trocknen und Eindampfen werden 11,8 g S-Acetoxy-o/i-äthoxycarbonylmethyl-1,3.
5(10)-östratrien-17-on erhalten, die mit 140 ml Essigsäure-isopropenylester
in Gegenwart von 1,4 g Toluolsulfonsäure zum Sieden erhitzt und dann einer langsamen
Destillation unterworfen werden. Das erkaltete Reaktionsgut wird mit Methylenchlorid verdünnt und
mit Natriumhydrogencarbonatlösung und Wasser gewaschen, getrocknet, eingedampft und ergibt 13.3 g
Rohprodukt. Nach Chromatographie an Silicagel erhält man reines 3,17-Diacetoxy-6/y-äthoxycarbonylmethyl-1.3,5(10),16-östratetraen
als fast farbloses öl.
5 g 3,17 - Diacetoxy - 6ft - äthoxycarbonylmcthyll,3,5(10),16-östratetraen
werden in 75 ml Benzol gelöst und nach Zugabe von 3,2 g m-Chlorperbenzoesäure ·
90 Minuten unter Stickstoff bei Raumtemperatur gerührt. Dann wird mit Benzol verdünnt, wiederholt
mit verdünnter Sodalösung ausgeschüttelt und mit Wasser neutral gewaschen. Nach dem Trocknen der
Lösung und Verdampfen des Lösungsmittels erhält man 3,17fi - Diacetoxy - 16«,17 - epoxy - bfi - äthoxycarbonylmethyl
- 1,3,5(10) - östratrien. das ohne Reinigung mit 2,0 ml Perchlorsäure (70%ig) in Eisessig
30 Minuten bei Raumtemperatur behandelt wird. Nach Verdünnen mit Methylenchlorid wird
nacheinander mit Wasser, verdünnter Sodalösung und Wasser gewaschen, getrocknet und eingedampft. Anschließende
Chromatographie an Silicagel ergibt 1,95 g 3,16« - Diacetoxy - 6/i - äthoxycarbonylmethyl - 1.3.
5(10)-östratrien-17-on als öl.
300mg 3,16n - Diacetoxy - 6// - äthoxycarbonylmethyl-
l,3,5(10)-östratrien-17-on werden in 11 ml Methanol gelöst und bei +5"C mit 0,17 g NaBH4
in 9 ml Methanol allmählich versetzt. Nach 20 Stunden Stehenlassen bei Raumtemperatur wird eingeengt und
in salzsäurehaltiges Wasser eingerührt. Das Reduk tionsprodukt wird in Essigester aufgenommen, dii
Lösung neutral gewaschen, getrocknet und einge dampft. Aus 330 mg Rohprodukt werden durch prii
parativc Düiinschichtchromatographie 16«-Acctoxy
6/1 - äthoxycarbonylmethyl - 1,3,5(10) - östratrien
3,17/.'-diol vom Schmelzpunkt 170,5 bis 171.5 C um
6/i - Äthoxycarbonylmethyl - 1,3,5(10) - östratrien
3,16«.17/i-triol vom" Schmelzpunkt 192.5 bis 193 C
ίο erhalten.
100 mg des vorstehenden Rohproduktes werder mit 4 ml η 2 Kalilauge 2 Stunden unter Rückfiul.
erhitzt. Dann wird in Eiswasser gegeben, neutralisier
und mit Äther ausgeschüttelt. Die Ätherauszüge wer den mit verdünnter Sodalösung ausgezogen und dii
Sodaauszüge mit Salzsäure angesäuert. Nach Filtration und Neutralwaschen werden 25 mg 6/i-Caiboxy
methyl - 1.3.5(1O)- östratrien - 3,16α, 17/»' - triol erhalten
(b) 2 g 6-Ketoöstriolacetat — hergestellt nach Bio
ehem. J., 74 (1960), 430 — werden analog A1 untei
Reformatzky-Bedingungen mit 3 ml Bromessigsaure
äthylcster umgesetzt und aufgearbeitet. Das Roh produkt wird hydrolysiert, das Hydrolysat von Neben
produkten getrennt und hydriert. Anschließende Vor seifung mit Kalilauge und Aufarbeitung liefert 300 mi
6/i-Carboxymelhyl-1.3,5( 10)-östratricn-3,16.;, 17,-Mrioi
A4 2.0 g 3 - Hydroxy - 6/i - äthoxycarbonylmelhyl-
1.3.5(10)-östralrien-17-on -- hergestellt gemäß A2
werden in eine Suspension von 1,1 g Kalium-tertiär butylat in 20 ml Tetrahydrofuran, in welche zuvoi
1 Stunde lang bei -5 C Acetylen eingeleitet wurde eingetragen. Man leitet bei -5 C weitere 3 Stundei
lang Acetylen ein, zersetzt dann das Rcaktionsgemisc!
durch Zugabe von 65 ml 20%iger Schwefelsäure und 35 ml Wasser, saugt vom Kaliumsulfat ab, engt das
Filtrat im Vakuum ein, nimmt in Methylcnchlorid auf. wäscht die Methylenchloridphasc neutral und
engt sie zur Trockne ein. Der Rückstand wird au? Methylenchlorid umkristallisiert und ergibt 1.4 g
17'/-Äthinyl-6/i -carboxymethyl-1.3,5(10)- östratricn"-3,17/i-diol.
A, Ein Gemisch von 2.24 g 3.17/i-Dihydroxy-17(j-äthinyl-1.3.5(10)-östratrien-6-on
hergestellt gemäßbelgischer Patentschrift 7 85 448 -.3.0 ε Natrium-
4s acetat. 1,96 g Carboxymethoxylaminheminydrochlond
sicc., 54.0 ml Äthanol und 6 ml Wasser wird 1 Stunde zum Sieden erhitzt. In der Kälte werden
360 ml Äther zugegeben, dann wird dreimal mit je 60 ml an Natriumhydrogencarbonat gesättigter 5%icer
so Sodalösung extrahiert. Die wäßrige Phase wird mit
30 ml konz. Salzsäure angesäuert und die ausgefällte,
schmierige Substanz in Essigester aufgenommen; die wäßrige Phase wird noch zweimal mit Essigester
ausgeschüttelt. Die Essigesterphasen werden dreimal
mit Wasser gewaschen, getrocknet und eingedampft. Der Rückstand wird aus Essigester umkristallisiert
Man erhält 3,1g ö-Carboxymethoxyimino-nn-äthinyl-l,3,5(10)-östratrien-3,17/i-diol(mit
1 Mol Kristallessigester) vom Schmelzpunkt 80 bis 880C (Zers.).
Die gleiche Verbindung wird aus 17-Hydroxy-3
- acetoxy -17„ - äthinyl - 1,3,5(10) - östratnen - 6 - on.
Schmelzpunkt 181,5 bis 185rC — hergestellt aus der
3,17-Dihydroxy-Verbindung durch partielle Acetylierung
— durch analoge Umsetzung erhalten.
A„ 4,4g 17/<-Acetoxy-6-oximino-1.3.5(10)-östratrien-3-ο!.
Schmelzpunkt 252°C (Zers.) - hergestellt aus 6-Ketoöstradiol-diacetat gemäß Ann. 692 (66).
180 . werden mit Natrium in Isopropanol zur ent-
sprechenden Aminoverbindung reduziert. Die methanolische Lösung der Rohbase wird mit ätherischem
Chlorwasserstoff versetzt. Aus dem Hydrochlorid-Rohprodukt wird nach wiederholtem Umlösen aus
Methanol reines (3,17^-Dihydroxy-1,3,5(10)-östratrien-6/i-yl)-ammoniumchlorid
vom Schmelzpunkt 251°C (Zers.) erhalten, von dem 100mg mit 40mg Bernsteinsäureanhydrid und 0,77 ml N-Äthylmorpholin
(als 1 %ige Pyridinlösung) 20 Stunden bei Raumlemperatur umgesetzt werden. Man erhält 100 mg
6(i - 3' - Carboxypropionylamino -1,3,5( 10) - östratrien-3,17/f-diol
vom Schmelzpunkt 157° C (Zers.).
A7 3,5 g 16«,17/i - Diacetoxy - 6 - oximinol,3,5(10)-östratrien-3-ol
— hergestellt aus 6-Keto östriol-triacetat gemäß Biochem. J. 74 (1960), 430,
und A6 — werden wie unter A6 beschrieben reduziert
und zum (3,16«,17,<-Trihydroxy-l,3,5(10)-östratrien-6/<-yl)-ammoniumchlorid
umgesetzt, von dem 100 mg mit 40 mg Bernsteinsäureanhydrid und 0,77 ml N-Äthylmorpholin zur Reaktion gebracht werden.
Man erhält 85 mg 6/i-3'-Carboxypropionylamino·
1,3,5( 10)-östratrien-3,16«, 17/i-triol.
A8 2 g 6«-Hydroxyprogesteron werden in 20 ml
Pyridin mit 4 g Bernsteinsäureanhydrid 1 Stunde unter Rückfluß erhitzt. Nach Abkühlung wird die Lösung
in Eiswasser eingerührt und mit 1 η-Salzsäure angesäuert. Das schmierige Fällungsprodukt wird abgetrennt
und in Methylenchlorid gelöst, die Lösung wird mit Salzsäure und Wasser gewaschen und im
Vakuum eingedampft. Der Rückstand (2,57 g Schaum) wird in Methanol gelöst, mit Kohle versetzt, filtriert
und das Filtrat im Vakuum eingeengt. Durch Verreiben des Rückstandes mit Pentan werden 2,1 g amorphes
(3,20 - Dioxo - 4 - pregnen - 6« - yl) - hydrogensuccinat erhalten. UV: f2M = 14 100.
A9 2,82 g Ha- Hydroxy- 17α - äthinyl - 19- nortestosteron
werden mit 18 ml Pyridin und 1,35 g Bernsteinsäureanhydrid 20 Stunden auf dem Dampfbad
erwärmt. Das Gemisch wird in V/asser gegossen und mit Methylenchlorid ausgeschüttelt. Die Methylenchloridauszüge
werden erschöpfend mit Sodalösung (5%ig) ausgezogen und die vereinigten Sodaauszüge
mit Salzsäure angesäuert, das ausgeschiedene Produkt in Methylenchlorid aufgenommen und neutral gewaschen.
Nach Verdampfen des Lösungsmittels verbleibt das Rohhemisuccinat als Schaum. Zur Nachreinigung
wird in Methylenchlorid gelöst und wiederholt mit Sodalösung ausgezogen. Die vereinigten Sodaauszüge
werden angesäuert und das schmierige ausgeschiedene Produkt in Methylenchlorid aufgenommen und neutral
gewaschen. Man erhält 1,9 g (17/i-Hydroxy-3-oxo-17«
- äthinyl - 4 - östren - 1 In - yl) - hydrogensuccina.t.
UVIf239 = 15 700.
A10 720 mg 6fi,17/, - Dihydroxy - 18 - methyl-Πα
- äthinyl - 4 - östren - 3 - on ·■- hergestellt aus n/i-Hydroxy-lS-methyl-na-äthinyM-östren^-on
durch mikrobiologische Hydroxylierung wie im folgenden Absatz beschrieben — werden analog A4 mit
Bernsteinsäureanhydrid umgesetzt und aufgearbeitet, wobei die Reaktionsdauer auf 5 Stunden verkürzt
wird. Das über das Natriumsalz gereinigte Hydrogc-nsuccinat
wird mit Äther/Hexan verrieben. Nach Verdunsten des Lösungsmittels werden 430 mg (17/f-Hydroxy
- 3 - oxo - 18 - methyl - 17α - äthinyl - 4 - östren-6/*-yl)-hydroGensuccinat
vom Schmelzpunkt 111 bis 143°C (Zers.") erhalten. UV: ,2}5 = 11 900.
Ein 50-1-Glasfermenter wird mit 29 1 eines flüssigen,
sterilen Nährmediums folgender Zusammensetzung gefüllt: 3% Glukose, 1% corn steep, 0,2% NaNO3,
0,1% KH2PO4,0,2% K2HPO4,0,05% MgSO4,0,002%
FeSO4 und 0,05% KCl. Anschließend wird der Fermenter mit 11 einer 2V2 Tage gewachsenen Vorkultur
des Stammes Mucor griseocyanus i[ATCC 1207 b) beimpft.
Nach einer Anwachszeit von 12 Stunden werden 6 g 17/i- Hydroxy -18 - methyl -17α - äthinyl - 4 - östren-3-on,
gelöst in 75 ml Dimethylformamid, hinzugegeben. Nach weiterer 60stündigei Inkubation wird
ίο der Fermenterinhalt geerntet, filtiriert, mit Methylisobutylketon
extrahiert, der Extrakt zur Trockne eingedampft und der Rückstand an Kieselgel chromatographisch
gereinigt. Nach Kristallisation aus Essigester/lsopropyläther
erhält man 6/<,17/i-Dihydroxy-18-methyl-17a-äthinyl-4-östren-3-on
vom Schmelzpunkt 194 bis 195°C.
An 0,433g 6-Chlor-11«-hydroxy-17-acetoxy-1
«,2« - methylen - 4,6 - pregnadien - 3,20 - dion — hergestellt aus 6 - Chlor -17 - acetoxy -1 «,2« - methyien-4,6-pregnadien-3,20-dion
durch mikrobiologische Hydroxylierung wie im folgenden Abschnitt beschrieben — werden analog A9 mit Bernsteinsäureanhydrid
umgesetzt und aulgearbeitet. Nach Reinigung über das Natriumsalz erhält man 230 mg (6-Chlor-n-acetoxy
- 3,20 - dioxo -1 «,2« - methylen - 4,6 - pregnadienlla
- yl) - hydrogensuccinat als Schaum. UV: t280 = 15 500.
Ein 50-1-Glasfermenter wird mit 29 1 eines flüssigen, sterilen Nährmediums folgender Zusammensetzung
gefüllt: 3% Glukose, 1% corn steep. 0,2% NaNO1. 0,1% KH2PO4,0,2% K2HPO4,0,0.'i% MgSO4,0,002%
FeSO4, 0,05% KCl. Danach wird der Ansatz mil 1 1
einer 72stündigen Vorkultur von Glomerel'.a cingulata (ATCC 10 534) beimpft und nach einer 12stündigen
Anwachsphase das Substrat in Form einer steril filtrierten Lösung von 6g 6-Chlor-17-acetoxy-lu,
2«,methylen-4,6-pregnadien-3,20-dion in 150 ml Dimethylformamid hinzugegeben. Nach 37 Stunden wird
die Kulturbrühe filtriert, das Filtrat mit Methylisobutylketon extrahiert, der Extrakt im Vakuum zur
Trockne eingedampft und der verbliebene Rückstand an einer Kieselgelsäule chromatographisch gereinigt.
Man erhält 6 - Chlor -11«- hydroxy - 17 - acetoxy-1«,2«
- methylen - 4,6 - pregnadien - 3,20 - dion vom Schmelzpunkt 133 bis 1360C.
A12 2 g 7« - Hydroxy - 4 - androsten - 3,17 - dion
— hergestellt aus4-Androsten-3,17-dion durch mikrobiologische
Hydroxylierung wie im folgenden Abschnitt beschrieben — werden analog A4 äthinyliert.
Das erhaltene 7α,17β - Dihydroxy - 17« - äthinyl-4-androsten-3-on
wird analog A9 mit 0,8 g Bernsteinsäureanhydrid umgesetzt und aufgearbeitet. Man
erhält (17/i - Hydroxy - 3 - oxo - 17α - äthinyl - 4 - androsten
- 7« - yl) - hydrogensuccinat als Schaum.
UV: ^240 = 16 800 (Methanol).
Vier 50-1-Glasfermenter werden mit jeweils 291
eines flüssigen Nährmediums, bestehend aus 10% flüssigem Stärkezucker und 2% corn steep, gefüllt
und mit Wasserdampf sterilisiert. Anschließend werden die Fermenter mit 1 1 einer 34 Stunden gewachsenen
Vorkultur des Stammes Absidia orchidis (ATCC Nr. 6811) beimpft. Nach einer Anwachszeit von
12 Stunden wird jeder Fermenter mit einer steril filtrierten
Lösung von 6 g 4-Androslen-3,17-dion in 200 ml Dimethylformamid versetzt. Nach 36 Stunden
Kontaktzeit wird die Fermentation abgebrochen, die Kulturbrühe filtriert, das Kulturfiltrat mit Mcthylisobutylketon
erschöpft und extrahiert. Die vereinig-
ten organischen Phasen werden im Vakuum zur Trockne eingedampft. Der verbliebene Rückstand wird
zweimal aus Aceton kristallisiert, wodurch mitentstandenes 6/i-Hydroxy-androstendion in der Mutterlauge
verbleibt und dadurch abgetrennt werden kann. Man erhält 7«-Hydroxy-4-androsten-3,l 7-dion (3,12 g)
vom Schmelzpunkt 239,8° C.
A13 5 g 6a - Fluor -11&21 - dihydroxy -16« - methyll,4-pregnadien-3,20-dion
werden in 25 ml Pyridin mit 5 g Bernsteinsäureanhydrid 2 Stunden unter Rückfluß
erhitzt. Nach Abkühlen auf 20° C wird die Lösung in Eiswasser eingerührt, mit Salzsäure angesäuert und
das ausgefallene Produkt abgesaugt, mit Wasser gewaschen und getrocknet. Durch Umkristallisation
aus Essigester werden 4,85 g (oa-Fluor-ll/i-hydroxy-3,20-dioxo-16«-methyl~
l,4-pregnadien-21 -yl)-hydrogensuccinat vom Schmelzpunkt 212 bis 214° C erhalten.
Aw 8,9 g l-Methyl-17/i-hydroxy-5r,(-androst-l-en-3-on
werden in 53 ml Pyridin gelöst und nach Zugabe von 8,9 g Bernsteinsäureanhydrid 3,5 Stunden unter
Rückfluß erhitzt. Nach Aufarbeitung, wie in A13
beschrieben, wird (1 - Methyl - 3 - oxo - 5« - androst-1
- en-17/i-yI)-hydrogensuccinat vom Schmelzpunkt
149 bis 150° C (Essigester —Hexan) erhalten. Ausbeute:
85% der Theorie.
A15 Eine Lösung von 2 g 3/i-Heptanoyloxy-5-androsten-7,17-dion-17-äthylenketal
in 240 ml Methanol und 100 ml THF wird bei Raumtemperatur langsam mit 600 mg NaBH4 versetzt und 30 Minuten unter N2
bei Raumtemperatur gerührt. Der Ansatz wird mit Eisessig neutralisiert, eingeengt, in Äther aufgenommen,
mit gesättigter NaCl-Lösung neutral gewaschen, getrocknet und eingedampft. Der Rückstand wird zur
Ketalspaltung in der Wärme mit Essigsäure behandelt. Das erhaltene 3ß - Heptanoyloxy - 7a - hydroxy-5-androsten-17-on
wird analog A, in (3/f-Heptanoyloxy
-17 - oxo - 5 - androsten - 7« - yl)- hydrogensuccinat
übergeführt. Ausbeute: 450 mg.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen nnden als Diagnostika Verwendung, wobei sie üblicherweise in
Lösung eingesetzt werden. Zweckmäßigerweise werden sie in den Lösungen benutzt, in denen sie bei der
Herstellung anfallen. Das schließt jedoch nicht aus, daß die Lösungen mit anderen Lösungsmitteln gemischt
werden oder daß die erfindungsgemäßen Verbindungen nach Isolierung in anderen Lösungsmitteln
aufgenommen und eingesetzt werden.
Die folgenden Beispiele dienen zur Erläuterung der Erfindung.
50 Beispiel 1
1,0 μΜοΙ 6,1-Carboxymethyl-1,3,5(10)-östratrien-3,17/i-diol
und Ι,ΟμΜοΙ N-Äthylmorpholin werden
bei -15 bis -200C in 2 ml peroxydfreiem Tetrahydrofuran
gelöst. Zu dieser Lösung werden 1,1 μΜοΙ Isobutylchlorcarbonat gegeben und die Lösung danach
15 bis 20Minuten bei -5 bis -100C gehalten.
0,1 μΜοΙ [3,5-3H2]-L-Tyrosin-Hydrochlorid und
0,2 μΜοΙ N-Äthylmorpholin werden in 150 μΐ Wasser
aufgenommen und zu dem oben angegebenen Substanzgemisch gegeben. Das Reaktionsgut wird 2 bis
3 Stunden bei (FC gehalten. Anschließend wird die Reaktionslösung auf eine Kieselgelsäule gegeben und
mit einem Essigester/Methanol-Gradienten eluieri. Das Eluat wird in Fraktionen zu 2 ml gesammelt. Die
Identifizierung der Fraktionen, die das gebildete N - [(3,17p - Dihydroxy -1,3,5(10) - östratrien - 6/i - yl)-acetyl]-L-tyrosin-[3,5-JH2]
enthalten, erfolgt durch Messung der Radioaktivität und der UV-Absorption.
Analog Beispiel 1 erhält man aus 17«-Äthinyl-6/i-carboxymethyl-1,3,5(
10)-östratrien-3,17,,-diol und
[3,5-3H,]-L-Tyrosin-Hydrochlorid N-[(17«-Äthinyl-3,17/i
- dihydroxy -1,3,5( 10) - östratrien - 6/i - yl)-acetyl].
L-tyrosin-[3,5-3H2j.
Analog Beispiel 1 erhält man aus (17,;-Hydroxy-3
- oxo -17«- äthinyl - 4 - östren - 11 « - yl) - hydrogensuccinat
und [3,5-3H2]-L-Tyrosin-Hydrochlorid
N - [17« - Äthinyl - 17/i - hydroxy - 3 - oxo - 4 - östren-11
«-yloxy-succinyO-L-tyrosin-[3,5-3H2].
Analog Beispiel 1 erhält man aus (6-Chlor-17-aceloxy
- 3,20 - dioxo - U,2« - methylen - 4,6 - pregnadienll«-yl)-hydrogensuccinat
und [3.5-'H2]-L-Tyrosin-Hydrochlorid
N - [ 17« - Acetoxy - 6 - chlor -1 .,.2·, - methylen
- 3,20 - dioxo - 4,6 - pregnadien - 11«- yloxysuccinyl]-L-tyrosin-[3,5-3H2].
2 μΜοΙ 6/ί - (3 - Carboxypropionyl - umino)-1,3,5(10)-östratrien-3,17,;-diol
und 2 μΜοΙ N-Äthylmorpholin werden bei -10 bis -15 C in 3 ml
Dimethylformamid gelöst. Zu dieser Lösung werden 2,2 μΜοΙ Äthylchlorcarbonat gegeben und die Lösung
danach 10 bis 15 Minuten bei -5°C gehalten. 0.2 μΜοΙ
[2,3-3H2]-L-Phenylalanin werden in 220 ;Λ 10~3η-NaOH
aufgenommen und zu dem oben angegebenen Substanzgemisch gegeben. Das Reaktionsgut wird
über Nacht bei etwa +40C gehalten, und das gebildet
N - [(3,17/i - Dihydroxy -1,3,5(10) - östratrien - 6,; - y])-aminosuccinyl]
- L - phenylalanin - [2,3 - 3H2] wird
durch Chromatographie auf einer Kieselgelsäulc mit einem Essigester/Methanol-Gradienten eluiert. Die
entsprechenden Fraktionen werden durch UV-Absorption und Messung der Radioaktivität identifiziert.
Analog Beispiel 5 erhält man aus (l-Methyl-3-oxo-5«
- androst - 1 - en - 1 7/i - yl) - hydrogensuccinat und [2,3 - 3H2] - L - Phenylalanin N-[I- Methyl - 3 - oxo-5a
- androst - 1 - en - 17/i - yloxysuccinyl] - l - phenylalanin-[2.3-3H2].
1,5 μΜο! 3 - Hydroxy - 6/i - carboxymcthyll,3,5(10)-östratrien-17-on
und 1,6 μΜοΙ Triäthylamin werden bei -15 bis -20° C in 3 ml peroxydfreiem
Tetrahydrofuran gelöst. Zu dieser Lösung werden 1,6 μΜοΙ Isobutylchlorcarbonat gegeben und die
Lösung danach 5 Minuten bei —5 bis -60C gehalten.
0,2 μΜοΙ [2,5-3H2]-Histamin-Dihydrochlorid und
0,4 μΜοΙ Triäthylamin werden in 200 μΐ Wasser aufgenommen
und zu dem oben angegebenen Substanzgemisch gegeben. Das Reaktionsgut wird 2 Stunden
bei 0 bis -50C gehalten. Anschließend wird das gebildete N-[(3-Hydroxy- 17-oxo-1,3,5(10)-östratrien-6/i-yl)-acetyl]-histamin-[2,5-3H2],
wie vorstehend beschrieben, durch Chromatographie über eine Kieselgelsäule in Lösung erhalten.
Analog Beispiel 7 erhält man aus (17/i-Hydroxy-3
- oxo -18 - methyl - 17« - äthinyl - 4 - östren - 6/i - yl)-hydrogensuccinat
und [2,5-3H2]-Histamin-Dihydrochlorid
N - [ 17« - Äthinyl -1 Iß - hydroxy -18 - methy 1-
3 - oxo - 4 - östren - 6ß - yloxy - succinyl] - histamin-[2,5-3H2].
1 μΜοΙ 6/f - Carboxymethyl - 1,3,5(10) - östratrien-3,16u,17/i-triol
und 1 μΜοΙ N-Äthylmorpholin werden bei -15 bis -200C in 2 ml Dimethylsulfoxid gelöst.
Zu dieser Lösung werden 1 μΜοΙ Isobutylchlorcarbonat
gegeben und die Lösung danach 5 Minuten bei -5° C gehalten. 0,1 μΜο1[υ-14σ]-ΡΓθΗηΜΐα0,1 μΜοΙ
N-Äthylmorpholin werden in 100 μΐ Wasser aufgenommen
und zu dem oben angegebenen Substanzgemisch gegeben. Das Reaktionsgut wird über Nacht
bei 00C gehalten. Das gebildete N-[(3,16fi,17/i-Trihydroxy
-1,3,5(10) - östratrien - 6ß - yl) - acetyl] - prolin-[U-14C]
wird anschließend, wie oben beschrieben, in Lösung erhalten.
Analog Beispiel 9 erhält man aus (3,20-Dioxo-
4 - pregnen - 6a - yl) - hydrogensuccinat und [U-14C]-Prolin
N - [3,20 - Dioxo - 4 - pregnen - 6<<
- yloxy - succinyl]-prolin-[u-14C].
Analog Beispiel 9 erhält man aus (3/i-Heptanoyloxy-17
- oxo - 5 - androsten - Ta · yl) - hydrogensuccinat und [u - 14C] - Prolin N - [3β - Heptanoyloxy - 17 - oxo-5-androsten-7«-yloxy-succinyl]-prolin-[u-14C].
2 μΜοΙ 6 - Carboxymethoxyimino - 17« - äthinyll,3,5(10)-östratrien-3,17/>-diol
und 2 μΜοΙ N-Äthylmorpholin werden bei — 20 bis — 25° C in 3 ml
peroxydfreiem Tetrahydrofuran gelöst. Zu dieser Lösung werden 1,9 μΜοΙ Isobutylchlorcarbonat gegeben
und die Lösung danach 5 bis 8 Minuten bei -5°C gehalten. 0,3 μΜοΙ [1,2-3H2]-Dopamin-Hydrochlorid
und 0,3 Mol N-Äthylmorpholin werden in 200 μΐ Wasser aufgenommen und zu dem oben
angegebenen Substanzgemisch gegeben. Das Reaktionsgut wird 4 Stunden bei -5° C gehalten und
anschließend das gebildete N-[(17«-Äthinyl-3,17/i-dihydroxy
-1,3,5(10) - östratrien - 6 - yliden) - aminooxyacetyl]-dopamin-[l,2-3H2],
wie in den verangehenden Beispielen beschrieben, erhalten.
Analog Beispiel 12 erhält man aus (6«-Fluor-l 1/i-hydroxy-3,20-dioxo-16u-methyl-1,4-pregnadien
-21 -yl)-hydrogensuccinat und [1,2-3H2]-Dopamin-Hydrochiorid
N - [6a - Fluor - 1 Iß - hydroxy - 16α - raethyl-3,20
- dioxo -1,4 - pregnadien - 21 - yl - oxysuccinyl]-dopamin-[ 1,2-3H2].
Ι,ΟμΜοΙ 6ß - (3 - Carboxypropionyl) - amino-1,3,5(10)
- östratrien - 3,16a,17/? - triol und 1,1 μΜοΙ
N-Äthylmorpholin werden bei —15 bis —20° C in
2 ml peroxydfreiem Tetrahydrofuran gelöst. Zu dieser Lösung werden 1,0 μΜοΙ Isobutylchlorcarbonat gegeben
und die Lösung danach 5 bis 10 Minuten bei -50C gehalten. 0,1 μΜοΙ [4,5-3H2]-L-Leucin und
0,1 μΜοΙ N-Äthylmorpholin werden in 100 μΐ Wasser
aufgenommen and zu dem oben angegebenen Substanzgemisch gegeben. Das Reaktionsgut wird 5 bis
6 Stunden bei 0 bis -50C gehalten. Anschließend wird das gebildete N-[(3,16a,17/*-Trihydroxy-1,3,5
(10) - östratrien - 6ß - yl) - aminosucciny 1] - L - leucin-[4,5-3H2]
durch Chromatographie an einer Kieselgelsäule, wie oben beschrieben, in Lösung erhalten.
Analog Beispiel 14 erhält man aus (17/i-Hydroxy-
3 - oxo -1 Ta - äthinyl - 4 - androsten - la - yl) - hydrogensuccinat
und [3,5-3H2]-L-Leucin N-[17<-.-Äthinyl-
17β - hydroxy - 3 - oxo - 4- androsten - 7α - y loxysuccinyl]-L-leucin-[3,5-3H2].
Beispiel | Spezifische | Ausbeute | Radioaktne |
Aklhi'at | Konzentralion | ||
1 | 40 Ci/mMol | 30% | 0,20 mCi/ml |
2 | 40Ci, mMol | 32% | 0,21 mCi/ml |
3 | 40 Ci/mMol | 41% | 0,27 mCi/ml |
4 | 40 Ci/mMol | 39% | 0,26 mCi/ml |
5 | 15 Ci/mMol | 52% | 0,20 mCi/ml |
6 | 15 Ci/mMol | 48% | 0,!8mCi/ml |
7 | 18 Ci/mMol | 40% | 0,18mCi/ml |
8 | 18 Ci/mMol | 38% | 0,17mCi/ml |
9 | 225 mCi/mMol | 20% | 0,56 μα/ίτι! |
10 | 225 mCi/mMol | 31% | 1,16 μα/ml |
11 | 225 mCi/mMol | 34% | 1,28 μΟ/πιΙ |
12 | 12 Ci/mMol | 10% | 0,05 mCi/ml |
13 | 12 Ci/mMol | 12% | 0,07 mCi/ml |
14 | 44 Ci/mMol | 34% | 0,19mCi/ml |
15 | 44 Ci/mMol | 39% | 0,29 mCi/ml |
Claims (19)
1. Radioaktiv markierte S'eroidderivate der allgemeinen
Formel I
Rs
R1
X-N
J
\
\
(D
R2
worin
-X-N
R1
R2
sich bevorzugt in den Stellungen 6, 7, 11 oder 12
befindet, X R-\ — O—CO—R3, =N—O—R3
oder —NH-CO—R3, A die Gruppierung
befindet, X R-\ — O—CO—R3, =N—O—R3
oder —NH-CO—R3, A die Gruppierung
R8—O
D—
Ε —D
—N
R1
R2
den Tritium- oder 14C-markierten Rest eines Amins
oder einer Aminosäure, B—C die Gruppierung
oder einer Aminosäure, B—C die Gruppierung
oder
Z ein Sauerstoffatom, zwei Wasserstoffatome oder die Gruppierung H. OH, E—D eine Einfach- oder
eine Doppelbindung, F-G die Gruppierung
-CH2-CH2- -CH=CH-
-CH2-CH(CH3)- -CH=C(CH3)-
oder
-CH2-CH(CH3)- -CH=C(CH3)-
oder
-CH
CH-
CH2
R3 die Gruppierung — (CH2)„ — CO — und η eine
ganze Zahl zwischen O und 4, R4 ein Wasserstoffatom oder eine Methylgruppe, R5 eine Methyloder
Äthylgruppe, R6 ein Wasserstoff-, Fluor- oder Chloratom, R7 ein Wasserstoff-, Fluor- oder Chloratom
oder eine Methylgruppe, R8 ein Wasserstcffatom oder eine Alkanoylgruppe mit bis zu 15 Kohlenstoffatomen,
R9 ein Wasserstoffatom, eine Methyl- oder eine Äthinylgruppe, R10 ein Wasserstoffatom,
eine Methylgruppe oder die Gruppierung — O—R8, R11 ein Wasserstoff- oder ein
Halogenatom oder die Gruppierung — O — R8,
R12 ein Wasserstoffatom oder die Gruppierung — O —R8, R9 und R10 oder R10 und R12 gemeinsam
die Gruppierung
-O
-O
R1
1-1
Ru, R14 ein Wasserstoffatom oder eine Alkylgruppe
mit bis zu 5 Kohlenstoffatomen bedeuten.
2. Verbindungen nach Anspruch 1, gekennzeichnet
durch die allgemeine Formel II
R1
worin
R1
-X-N
die oben angegebene Bedeutung hat und sich bevor-
ugt in 6-, 7-, 11- oder 12-Stellung befindet. A' die
3ruppierung
R4
R8—O
R8—O-
und B'—C die Gruppierung
"(O
darstellt, in denen R4, R5, R8, R9 und R10 die oben 4o
angegebene Bedeutung haben.
3. Verbindungen nach Anspruch 1, gekennzeichnet durch die allgemeine Formel 111
45
R2
—X—N
R1
R2
5 S
to
in der oben angegebenen Bedeutung sich bevorzugt in der Stellung 6 oder 7 befindet, F'—G' eine
Einfach- oder Doppelbindung darstellt und R4, R5, Rh, R10, R11, R12 und Z die oben angegebene Bedeutung
haben.
4. Verbindungen nach Anspruch !,gekennzeichnet
durch die allgemeine Formel IV
X-N
R1
R2
(IV)
— X —N
R1
R2
sich bevorzugt in 11- oder 12-Stellung befindet und ebenso wie R7, R8 und R10 die oben angegebene
Bedeutung hat.
5. N - [(3,17/i - Dihydroxy -1,3,5(10) ·■ östratrien-6/i-yl)-acetyl]-L-tyrosin-[3,5-3H2]
6. N - [(17a - Äthinyl - 3,17/ΐ - dihydroxy - 1,3.
5(10) - östratrien - 6ß - yl) - acetyl] - ι. - tyrosin-[3,5-3H2].
7. N -[17α - Äthinyl - Π β - hydroxy - 3 - oxo-4
- östren - 11α - yloxy - succinyl] - L - tyrosin-[3,5-3H2].
8. N-[17H-AcCtOXy-O-ChIOr- la,2«-methylen-3,20
- dioxo - 4,6 - pregnadien -\\<i- yloxy - succinyl] L-tyrosin-[3,5-3H2].
9. N - [(3,17β - Dihydroxy -1,3,5( 10) - östratrien-6/i-yl)-aminosuccinyl]-L-phenylalanin-[2,3-3H2].
10. N-[I- Methyl - 3 - oxo - 5a - androst -1 - en-17/i-yloxysuccinyl]-L-phenylalanin-[2,3-3H2].
11. N - [(3 - Hydroxy -17 - oxo -1,3,5( 10) - östratrien-6/*-yl)-acetyl]-histamin-[2,5-3H2].
12. N-[17u-Äthinyl-170-hydroxy-18-methyl·
3 - oxo - 4 - östren - 6ß - yloxysuccinyl] - histamin-[2,5-1H2].
13. N-[(3,16«, 17/i-Trihydroxy-1,3,5(10)-östratrien-6/i-yl)-acetyl]-prolin-[u-uC].
14. N - [3,20 - Dioxo - 4 - pregnen - 6n - yloxysuccinyl]-prolin-[u-14C].
15. N-[3/i-Heptanoyloxy-17-oxo-5-androsten-7«-yloxysuccinyl]-prolin-[u-14C].
16. N - [(3,16a, 1Ίβ - Trihydroxy -1,3,5( 10) - östratrien
-6^- ylj-aminosuccinyl]- L- leucin -[4,5 -3H2].
17. N - [17<i - Äthinyl - 17/i - hydroxy - 3 - oxo-4-androsten-7a-yloxysuccinyl]-L-leucin-[3,5-JH2].
18. Diagnostikum, enthaltend eine Verbindung gemäß Anspruch 1 bis 17 als Reagens.
19. Verfahren zur Herstellung der Steroidderivate der allgemeinen Formel I, dadurch gekennzeichnet,
daß man in an sich bekannter Weise
entsprechende Steroide der allgemeinen Forme! V oder einer Aminosäure, X eine der folgenden
Gruppen:
R R3 _o —CO-R\ =N —O —R1 oder
— NH — CO — R3, A die Gruppierung
X-OH
(V)
Priority Applications (11)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19732330159 DE2330159C3 (de) | 1973-06-08 | Radioaktiv markierte Sterofdderivate, Verfahren zu deren Herstellung und diese enthaltendes Diagnostikum | |
DK290774A DK290774A (de) | 1973-06-08 | 1974-05-29 | |
GB2444774A GB1476179A (en) | 1973-06-08 | 1974-06-03 | Radioactively marked steroid derivatives |
US05/476,279 US3935245A (en) | 1973-06-08 | 1974-06-04 | Radioactively labeled steroid derivatives |
CH768874A CH608188A5 (de) | 1973-06-08 | 1974-06-05 | |
DD178994A DD113963A5 (de) | 1973-06-08 | 1974-06-06 | |
BE145181A BE816046A (fr) | 1973-06-08 | 1974-06-07 | Derives de steroides marques par voie radio-active et leur procede de preparation |
IT23736/74A IT1014867B (it) | 1973-06-08 | 1974-06-07 | Derivati di steroidi marcati radioattivamente |
JP49064881A JPS5032157A (de) | 1973-06-08 | 1974-06-07 | |
NL7407706A NL7407706A (de) | 1973-06-08 | 1974-06-07 | |
FR7419991A FR2233301B1 (de) | 1973-06-08 | 1974-06-10 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19732330159 DE2330159C3 (de) | 1973-06-08 | Radioaktiv markierte Sterofdderivate, Verfahren zu deren Herstellung und diese enthaltendes Diagnostikum |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2330159A1 DE2330159A1 (de) | 1975-01-02 |
DE2330159B2 DE2330159B2 (de) | 1976-04-01 |
DE2330159C3 true DE2330159C3 (de) | 1976-11-18 |
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ID=
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