DE2236201A1 - Verfahren zur herstellung von reinem kristallinem leukoagglutinin - Google Patents
Verfahren zur herstellung von reinem kristallinem leukoagglutininInfo
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- A61K36/18—Magnoliophyta (angiosperms)
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- A61K36/48—Fabaceae or Leguminosae (Pea or Legume family); Caesalpiniaceae; Mimosaceae; Papilionaceae
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Description
DIPL.-IJNTG. HANS W. GROENING
DIPL.-CHEM. DR. ALFRED SCHÖN 223620 1
PATENTANWÄLTE
S/M 33-2 '■■■■'
Oy MEDIX Ab, Apollogatan 5 B, 00100 Helslngfors,
Finnland
Verfahren zur Herstellung von reinem kristallinem Leukoagglutinin
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von reinem kristallinem Leukoagglutinin.
Es ist "bekannt, 'dass die Sameza der Bohnenpflanze Pteaeolus
vulgaris Substanzen enthalten«, die Phytohämagglutlaia® (PHA)
genannt werden. Diese Substanzen "besitzess eine mitogesi© Aktivität,
d.h. sie vermögea das Wachstum sowie di© !Dellung von
Lymphozyten in G-ewebekultüren zu stimalieren, P%toliäfflagglutinin
enthält einige Komponenten mit wechselnder mitogeuer
Aktivität. Eine diaser Komponentea ist Iieuk;oagglutinin9 das
stark mitogen ist«, Die Leukoagglutisiinagglutinst© ait Blutzellen
(Leukozyten) vermögen jedooh nieht rote Blutzellen
(Erythrozyten) zu agglutinieran. Erytteoagglutinin iet eine
andere Komponente von Phytohämagglmtinisio Ferner köaaen kombinierte Lsukoerythroagglutinin© irox-liegera^ welch® sowohl
Leukozyten als auch Erythrozyten agglirtelnie-ren imä aueh eis©
Lymphosyteiiteiluag stimulieren, jedoch wahrscheinlich nieht
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- 2 so stark wie Leukoagglutinin.
Leukoagglutinin ist bereits in reiner Form isoliert worden, jedoch nur in kleinen Mengen sowie unter Verwendung von Verfahren,
die nicht für eine Durchführung in industriellem Maßstäbe geeignet sind (T. Weber (1969) Scand.J.Clin.Leb.Invest.
Suppl. 111, L.W. Allen et al (1969) Proc.Natc.Acad.Scie.63,
334). Reines Leukoagglutinin in kristalliner Form wurde bisher noch nicht isoliert.
Sie Phytohämagglutinin-Präparate, die im Handel erhältlich sind,
beispielsweise Bacto-Phytohämagglutinin M und Bacto-Phytohämagglutinin
P, vertrieben von der Difco Laboratories, USA, sowie die Zubereitungen, die unter der Bezeichnung Phytohämagglutinin
von der Wellcome Reagents Ltd., Grossbritannien, in den Handel gebracht werden, sind ziemlich unreine Mischungen,
welche offensichtlich neben Leukoagglutinin und Erythroagglutinin einige Komponenten enthalten, die das Lymphozyten-Wachstum
stimulieren.
Erfindungsgemäss ist es nunmehr möglich, das Leukoagglutinin
in reiner kristalliner Form zu isolieren. Reines Leukoagglutinin besitzt folgende charakteristische Eigenschaften:
Sei der Scheibenelektrophorese bei einem pH von 4*5 bewegt es
sich in Form einer einzigen Zone mit katodaler Beweglichkeit. Es agglutiniert menschliche Leukozyten in Konzentrationen von
nur 2 bis 3 mg/ml (beatimmt nach der Killman-Methode, modifiziert
von Weber et al, S.A. Killman (1960) Leukocyte Agglutinins, Blackwell Scientific Publications Oxford, Weber et al (1967)
Scand.J.Hematoi. 4f 77). Eine Erythrozyten-agglutinierende
Aktivität wurde bei kristallinem Leukoagglutinin in Konzentrationen von bis zu 3 mg/ml unter Anwendung der Methode von SaIk
(J.E. SaIk (1944) J.Immunol. 49t 87) nicht festgestellt. Das
2 0 3885/134b
Leukoagglutinin verursacht eine maximale Inkorporation von
125 I/üridin durch. Lymphozyten in einer Konzentration von
2,8 mg/ml. Die Stimulierung beginnt "bei einer Konzentration
von 0,087 mg/ml und endet bei einer Konzentration von 180 mg/ml.
Die Erfindung betrifft ein Verfahren, das sich für die industriel·
Ie Erzeugung eines reinen kristallinen Präparats von Leukoagglutinin
aus Extrakten von Ptaseolus vulgaris* eignet« Das
Verfahren sieht die Reinigung disircn. Ausfällung und Dialyse,
Adsorption, Eluierung und erneute Ausfällung des Proteins vor. Das erfindungsgemässe Verfahren besteht darin, eine Lösung
des gereinigten Proteinmaterials bei einem schwach sauren pH
mit einem chromatographiscb-en Material zur Abtrennung von
Leukoagglutinin von anderen Proteinen durch Verrühren zu vermischen
und anschliessend das ehromatographische Material abzutrennen
und gegebenenfalls au waschen, worauf das Leukoagglutinin mit einem Puffer mit einem schwach sauren pH eluiert
wird. Dann wird das eluierte Protein gesammelt, worauf das Leukoagglutinin ausgefällt wird«, Anschliessend wird die Salzkonzentration
in dem Leukoagglutinin-Uiederschlag solange vermindert,
bis das Leukoagglutinin kristallisiert, worauf die Leukoagglutinin-Kristalle gesammelt werden.
Eine geeignete Menge des chromatographischen Materials liegt bei ungefähr 1 g pro Gramm Protein. Ein chromatographisches
Material, das sich, für das erfindungsgemässe Verfahren eignet, wird von der Pharmacia AB, Schweden unter dem Warenzeichen
"SP-Sephadex C 50M verkauft. Vorzugsweise wird destilliertes
Wasser für die Dialyse des Leukoagglutinin-Niederschlags verwendet.
Vor der Zugabe des chromatographischen Materials wird die
Proteinlösung vorzugsweise solange dialysiert, bis ein Gleichgewichtszustand
erreicht worden ist, und zwar gegen eine
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Pufferlösung mit einem pH von ungefähr 5, beispielsweise einem 1/15 m-Natriumphosphatpuffer mit einem pH von 4,9.
Die Eluierung des Leukoagglutinins von dem chromatographiechen
Material kann unter Verwendung eines 1/15 m-Natriumphosphatpuffers mit einem pH von 5,6 - 6,0 durchgeführt werden.
1. Extraktion
1 kg feinrermahlene Phaseolus vulgaris-Bohnen werden hei 40C
Über Nacht unter Verwendung von 4 1 einer Lösung extrahiert, die 0,9 £ig an NaCl und 0,1 η an HCl ist. Sie Aufschlämmung
wird durch ein Gazetuch filtriert. Die Extrakt wird unter Verwendung Ton 1,5 i der gleichen Lösung wiederholt, worauf die
Extrakte vereinigt und während 10 Hinuten hei 7000 χ g zentrifugiert werden.
2. Ausfällung
Der überstehenden Flüssigkeit wird die Hälfte ihres Volumens an
94 tigern (Gewicht/Gewicht) Äthanol sugesetzt, wobei die Temperatur zwischen -5 und + 5°C gehalten wird. Der Niederschlag wird
durch Zentrifugieren hei 7000 χ g in der Kälte während 10 Minuten gesammelt, und anschliessend gegen Leitungswasser während
einer Zeltspanne von drei Tagen dlalyeiert.
3. Adsorption an Diäthylaminoäthyl-(DÄAÄ)-Zellulose und
Eluierung
1 1 durch Zugabe von 0,05 m tris-(Hydroxymethyl)-rtiinomethan- j
pH unter Verwendung von 2 m-tris auf 8,0 einreguliert wird. Die J;
209885/13^b i
Hauptmenge der DÄAÄ-Zellulose (DE-52, Whatman), aus welcher
die Hauptmenge des Puffers durch Filtration auf einem Büchner-Trichter
entfernt worden ist, wird in einer Menge von 10 g/1 g Proteinmaterial zugesetzt. Zuvor wird die DÄAÄ-Zellulose mit
0,05 m-tris-Puffer mit einem pH von 8,0 geeicht. Die Mischung
wird während einer Zeitspanne von wenigstens einer Stunde gerührt und zentrifugiert, worauf die Zellulose dreimal unter
Verwendung des gleichen Volumens an 0,05 m-tris-Puffer mit
einem pH von 8,0 gewaschen wird. Die gewaschene Zellulose wird in einer kleinen Menge des gleichen Puffers suspendiert. Der
gleiche 1 m-Puffer "bezüglich NaCl wird der Suspension in solchen
Mengen zugesetzt, dass ihre NaCl-Konzentration 70 niM
beträgt. Die Suspension wird während einer Zeitspanne von wenigstens
1 Stunde gerührt. Die Zellulose wird durch Zentrifugieren abgetrennt und zweimal unt^r Verwendung von 70 mM UaCl/
0,05 m-tris-Puffer mit einem pH von 8,0 gewaschen. Alle Eluate
werden vereinigt, worauf Ammoniumsulfat in einer Menge von 65 g/100 ml zugesetzt wird. Nach einer Wartezeit von wenigstens
1 Stunde wird der Niederschlag durch Zentrifugieren bei 7000 χ g während einer Zeitspanne von 20 Minuten gesammelt.
Der Niederschlag wird in gepufferter NaCl-Iösung gelöst (0,9 #
NaCl in 10 mM-Natriumphosphatpuffer mit einem pH von 7,4).
4. Adsorption an Sephadex und Eluierung
Der gelöste Ammoniumsulfat-Niederschlag wird gegen 1/15 m-Natriumphosphatpuffer
mit einem pH von 4,9 solange dialysiert,
bis das ionische Gleichgewicht erreicht ist, worauf zentrifugiert wird. Der überstehenden !Flüssigkeit wird Sulfopropyl-"Sephadex"
(SP-Sephadex C 50, Pharmacia AB), geeiöht mit dem
gleichen Puffer, in einer Menge von 1 g/g Protein zugesetzt.
Die Mischung wird während einer Zeitspanne tos wenigstens 1
Stunde gerührt und dracoh einen Büchner~fricht@r filtriert,
worauf die Hauptmenge des Sephadex zweimal mit 1/15 m-Iatrium-
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•»Ο "~
phoBphatpuffer mit einem pH von 4,9 gewaschen wird. Bas
Sephadex-Material wird in Form einer Säule mit einem Durchmesser
von 25 mm gepackt. Gegebenenfalls wird es mit dem gleichen Puffer solange gewaschen, bis die Extinktion bei 280 nm des
Eluats unterhalb 0,05 liegt. Bas Leukoagglutinin wird aus
der. Säule unter Verwendung von 1/15 m-Natriumphosphatpuffer
mit einem pH von 5,6 - 6,0 eluiert. Bie Proteinmenge wird
gesammelt, worauf 65 g/100 ml Ammoniumsulfat zur Ausfällung
des Proteins zugesetzt werden.
5. Kristallisation
Bor mit Ammoniumsulfat erhaltene Niederschlag wird gegen
destilliertes Wasser dialysiert. Zu Beginn löst sich der
Niederschlag auf. Nachdem die Ionenstärke in ausreichendem Maße vermindert worden ist, tritt eine Kristallisation auf.
Bie Ausbeute an kristallinem Leukoagglutinin schwankt zwischen 100 und 300 mg.
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Claims (5)
- - 7 Patentansprücheν i) Verfahren zur Herstellung von reinem kristallinem Leukoagglutinin aus Extrakten von Phaseolus vulgaris, bei dessen Durchführung der Extrakt durch Ausfällen, Dialyse, Adsorption, Eluierung und erneute Ausfällung des Proteinmaterials gereinigt wird, dadurch gekennzeichnet, dass eine Lösung des gereinigten Proteinmaterials unter Rühren bei einem schwach sauren pH-Wert mit einem chromatographischen Material zur Abtrennung von Leukoagglutinin von anderen Substanzen vermischt wird, das chromatographische Material von der Lösung abgetrennt und gegebenenfalls gewaschen wird, das Leukoagglutinin aus dem ohromatographlsch.en Material unter Verwendung einer Pufferlösung mit einem schwach, sauren pH-Wert elulert wird, das eluierte Protein gesammelt wird, und das Leukoagglutinin ausgefällt wird, worauf die Ionenstärke des Niederschlags solange reduziert wird, bis sich, das Leukoagglutinin auskristallisiert, worauf die Leukoagglutinin-Kristalle gesammelt werden,
- 2. Verfahren nach. Anspruch. 1, dadurch, gekennzeichnet, dass die Ionenstärke des Leukoagglutinin-Niedersehlags durch. Dialyse gegen destilliertes Wasser vermindert wird.
- 3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, dass chromatographisches Material in Mengen von ungefähr 1 g/g des Proteinmaterials zugesetzt wird.
- 4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, dass die Lösung des gereinigten Proteinmaterials vor ihrer Behandlung mit dem chromatographischen Material gegen eine Pufferlösung mit einem pH von ungefähr 5 dialysiert. wird.
- 5. Verfahren nach, einem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, dass Leukoagglutinin aus dem Chromatographiechen Material unter Verwendung eines Phosphatpuffers mit einem pH von 5,6 bis 6,0 eluiert wird. 209885/13 45
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SE951271 | 1971-07-23 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2236201A1 true DE2236201A1 (de) | 1973-02-01 |
Family
ID=20276855
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE19722236201 Pending DE2236201A1 (de) | 1971-07-23 | 1972-07-24 | Verfahren zur herstellung von reinem kristallinem leukoagglutinin |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
DE (1) | DE2236201A1 (de) |
FR (1) | FR2147150A1 (de) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US8959997B2 (en) | 2010-07-01 | 2015-02-24 | Endress + Hauser Conducta Gesellschaft für Mess- und Regeltechnik mbH + Co. KG | Method and apparatus for measuring volume flow rate of liquid flowing into a container and/or volume of liquid which has flowed into the container |
US10470459B2 (en) | 2014-05-28 | 2019-11-12 | Ipabc Ltd | Antimicrobial preparations, methods for preparing the same and uses thereof to combat microorganisms |
-
1972
- 1972-07-24 FR FR7226633A patent/FR2147150A1/fr active Pending
- 1972-07-24 DE DE19722236201 patent/DE2236201A1/de active Pending
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US8959997B2 (en) | 2010-07-01 | 2015-02-24 | Endress + Hauser Conducta Gesellschaft für Mess- und Regeltechnik mbH + Co. KG | Method and apparatus for measuring volume flow rate of liquid flowing into a container and/or volume of liquid which has flowed into the container |
US10470459B2 (en) | 2014-05-28 | 2019-11-12 | Ipabc Ltd | Antimicrobial preparations, methods for preparing the same and uses thereof to combat microorganisms |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
FR2147150A1 (en) | 1973-03-09 |
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