DE2057401B2 - Verfahren zur isolierung von nativem, hochgereinigtem plasminogen - Google Patents
Verfahren zur isolierung von nativem, hochgereinigtem plasminogenInfo
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Description
Es sind bereits Verfahren bekannt, mit denen man Plasminogen durch Alkoholfällung des Serums und
Extraktion des Niederschlages mit Mineralsäuren isolieren kann. Dabei ist auch schon die Chromatographie
an Carboxymethylcellulose als Verfahrensschritt angewandt worden. Diese Verfahren sind jedoch
zeitraubend, umständlich und teuer. Wegen der schlechten Ausbeuten sind sie für eine gewerbliche
Anwendung ungeeignet.
Es ist an.ch schon bekannt, daß ε-Aminocapronsäure,
p-Aminomethylbenzoesäure und 4-Aminomethyl-cyclohexancarbonsäure-(l)
eine antifibrinolytische Aktivität besitzen, weil sie die Aktivierung des Plasminogen
durch Streptokinase oder Urokinase hemmen.
Gegenstand der vorliegenden Anmeldung ist ein Verfahren zur Isolierung von nativem hochgereinigtem
Plasminogen, das dadurch gekennzeichnet ist, daß man Plasminogen aus Plasma oder Serum oder einer
Plasminogen enthaltenden Plasma- oder Serumfraktion an einen wasserunlöslichen Träger, der eine Aminocarbonsäure
mit einer in ε-Stellung zur Carboxylgruppe befindlichen Aminogruppe kovalent gewunden enthält,
absorbiert, unspezifische Begleitproteine durch Wa- so sehen mit einer wäßrigen Pufferlösung vom pH 5,5 bis
6,5 und einer Molarität von 0,05 bis 0,15 entfernt, anschließend das Plasminogen mit einer Pufferlösung
vom pH-Wert 2,0 bis 3,5 oder 9,0 bis 10,2 und einer Molarität von 0,05 bis 0,15, welche außerdem eine
Aminocarbonsäure der oben beschriebenen Art in einer Molarität von 0,05 bis 0,1 enthält, elutiert und danach
gegebenenfalls durch Ausfällen mit Ammopiumsulfat anreichert, anschließend in an sich bekannter Weise,
zum Beispiel durch Dialysieren entsalzt und lyophil trocknet.
Als Ausgangsmaterial für das Plasminogen dient Plasma, Serum oder eine Plasminogen enthaltende
Plasma- oder Serumfraktion menschlichen oder tierischen Ursprungs.
Als wasserunlöslichen Träger verwendet man ein Kopolymerisat aus Styrol oder Äthylen oder Butylen
oder vorzugsweise Propylen und Maleinsäureanhydrid im Verhältnis 1 :1. welches in Gegenwart einer
Aminocarbonsäure mit einem ahphaischen oder aromatischen
Diamin, beispielsweise Pentamethylendiamin, Hexamethylendiamin oder o-Phenyldiamin, querver
netzt ist Im Falle des Styrols kann mit Divmylbenzol
vernetzt werden. _
Die Umsetzung der Ammocarbonsaure mit dem
Träger erfolgt über die Reaktion eines- Aminogruppe mit%weils einem Maleinsäureanhydridrest, wobei eine
neptidartige Bindung entsteht Unter »Aminocarbonsäuren« sind dabei solche zu verstehen, die eine
Aminogruppe in ε-Stellung zur Carboxylgruppe enthalten wie dies beispielsweise bei der ε-Aminocapronsäure
der4-Aminomethyl-benzoesäure oder der 4-Aminomethyl-cyclohexancarbonsäure
der Fall ist; ebenso kommen natürlich auch andere Aminocarbonsäuren in
Frage bei denen der sterische Abstand zwischen der Aminogruppe und der Carboxylgruppe ein ähnlicher ist
wie bei den obengenannten. Am besten geeignet sind
jedoch bei den obengenannten. Am besten geeignet sind jedoch Aminocarbonsäuren, die außer der Aminogruppe
noch eine weitere reaktionsfähige Gruppe, die für die Bindung an die als Adsorbens vorgesehene Verbindung
geeignet ist beispielsweise eine Amino- oder Hydroxylgruppe in α-, β-, Y- oder ό-Stellung der aliphatischen
Kette bzw. in ortho- oder meta-Stellung des Ringes enthalten. Dieser Fall liegt beispielsweise beim Lysin
vor Ein unter Verwendung einer solchen Aminocarbonsäure hergestellter Träger enthält sowohl freie Carboxyl-
als auch freie Amino- bzw. Hydroxylgruppen; die mit seiner Hilfe erzielten Ausbeuten an Plasminogen
sind höher und die Spezifität ist größer.
Mit Hilfe des beschriebenen wasserunlöslichen Trägers läßt sich Plasminogen aus wäßrigen Lösungen
vom pH-Wert 5,0 bis 7,8 in guten Ausbeuten adsorbieren. Die Adsorption wird vorzugsweise im
Batch-Verfahren durchgeführt jedoch kommt auch das Säulenverfahren in Betracht.
Zur Entfernung unspezifischer Proteine verwendet man beispielsweise Dinatriumhydrogenphosphat-citronensäurepuffer,
Phosphatpuffer oder Citratpuffer.
Als saure Eluentien für die Elution des Plasminogen eignen sich beispielsweise die Puffergemische Glycin-Salzsäure
und Natriumcitrat-Salzsäure; verwendet man ein alkalisches Elutionsmittel, so kommen beispielsweise
Ammoniaklösung, Tris-(hydroxymethyl)-aminomethanlösung oder Dinatriumhydrogenphosphatlösung in
Frage. Die Molarität der Elutionsmittel liegt im allgemeinen bei 0,05 bis 0,15 und vorzugsweise bei 0,1;
höhere Konzentrationen lassen sich zwar ebenfalls verwenden, doch ist dies nicht sinnvoll, da die Eluentien
anschließend wieder entfernt werden müssen. Als Verdrängungsmittel enthalten die Eluentien außerdem
eine der obengenannten Aminocarbonsäuren, vorzugsweise Lysin, und zwar in einer Molarität von 0,05 bis 0.1.
Das Plasminogen enthaltende Eluat wird vor der Aufarbeitung vorteilhafter Weise einer Vorkonzentration
unterzogen. Dazu stellt man es neutral und fällt das Plasminogen mit Ammonsulfat, vorzugsweise durch
Dialyse gegen eine gesättigte Ammonsulfatlösung. Durch eine nachfolgende Dialyse gegen eine Salzlösung
vom pH-Wert 8-9 und der Molarität 0,1 vorzugsweise Dinatriumhydrogenphosphatlösung, lassen sich die bei
der Elution verwendeten Aminocarbonsäuren entfernen. Abschließend wird die so gereinigte Plasminogenlösung
durch Dialyse gegen eine physiologische Lösung, beispielsweise 0,9%ige Natriumchloridlösung, Ringerlösung
oder Natriumphosphatlösung, vom pH-Wert 6,5
bis 7,5 und einer Molarität von etwa 0,05 bis 0,15 auf
physiologische Bedingungen eingestellt
Das erfinöungsgemäße Verfahren ermöglicht eine
reitsparende Herstellung von Plasminogen in guten Ausbeuten. Das derart gewonnene Plasminogen ist rein,
wie in der Immunelektrophorese nachgewiesen wurde. Die Wirksamkeit wird in Christensen-Einheiten (Chr-E)
gemessen (vgL J. din. Invest 28,1963 (1949).
Das erfindungsgemäße Verfahren gestattet es, ausgehend von einem nicht vorgereinigten Plasminogen oder
sogar von einer Plasminogen enthaltenden Plasmaoder Serumfraktion ein reines natives (d. h. unverändertes)
Plasminogen zu erhalten. Die Verwendung eines vorgereinigten Ausgangsmaterials ist nicht erforderlich.
100 mg Copolymerisat aus Propylen und Maleinsäureanhydrid werden in 0,15-m Kaliumphosphatpuffer
vom pH-Wert 7,5 angeteigt und mit 0,15-m Kaliumphosphatpuffer
vom pH-Wert 7,5 in einem Gesamtvolumen vom 5 ml fein suspendiert. Dann setzt man unter Rühren
10 mg Hexamethylendiamin zu, die in 1 ml des oben angegebenen Phosphatpuffers gelöst werden. Anschließend
werden 5 ml einer 2,5%igen Kaliumphosphatgepufferten Lysinlösung vom pH 7,5 dazu pipettiert und
der Ansatz 24 Stunden lang bei +40C gerührt. Dann wird das unlösöiche Vernetzungsprodukt durch Zentrifugation
gewonnen, mit physiologischer Kochsalzlösung Lysinfrei gewaschen, mit destilliertem Wasser
gespült und lyophil getrocknet.
100 mg des lyophilisierten Vernetzungsproduktes werden nach Anteigen mit einigen ml Humanplasma in
70 ml Humanplasma suspendiert, der pH-Wert mit verdünnter Salzsäure auf 7,0 eingestellt und der Ansatz
30 Minuten bei 37° C gerührt. Das Adsorbens wird dann in der Zentrifuge abgeschleudert und mit 0,15 m
Natriumphosphatpuffer vom pH-Wert 6,4 so lange gewaschen, bis die Waschwasser proteinfrei sind. Die
Elution des Plasminogens erfolgt mit 25 ml einer 0,1-m Tris-(hydroxymethyl)-aminomethanlösung vom
pH-Wert 10,0, die 0,05 m Lysin enthält. Das Eluat wird
mit normaler Salzsäure neutralisiert und unter Rühren gegen das gleiche Volumen gesättigter Ammonsulfatlösung
dialysiert. Die Fällung wird abzentrifugiert, in 2—3 ml 0,1-m Dinatriumhydrogenphosphat-Lösung
aufgenommen, zweimal 12 Stunden gegen jeweils das lOOfache Volumen der gleichen Lösung und anschließend
gegen 0,1-m Natriumphosphatpuffer vom pH-Wert 7,5 dialysiert.
Als Endprodukt erhält man 3 ml einer 0,31%igen Plasminogenlösung mit 37 300 Christensen-Einheiten
(Chr-E)/ml und 12 000 Chr-E/mg Protein. Das Ausgangsmaterial besitzt einen Plasminogentiter von 4000
Chr-E/ml und 53 Chr-E/mg Protein.
Insgesamt wird von 280 000 Chr-E/ml ausgegangen und es werden 112 000 Chr-E/ml zurückgewonnen, was
einer Ausbeute von 40% entspricht.
Aus den angegebenen Zahlen ergibt sich eine Anreicherung um den Faktor 1 :200 durch das
erfindungsgemäße Verfahren. Nach der Adsorption sind im Ausgangsplasma noch 99 Chr-E/ml enthalten, das
sind 2,2% des Ausgangswertes.
4 Liter Humanplasma werden mit verdünnte-Salzsäure auf einen pH-Wert von 7,0 eingestellt und mit
5,7 g eines lyophilisierten, nach Beispiel 1 hergestellten Copolymerisates aus Propylen und Maleinsäureanhydrid,
das kovalent gebundenes Lysin enthält und mit Hexamethylendiamin vernetzt wurde, 30 Minuten lang
unter Rühren bei 37° C inkubiert. Das plasminogenhaltige Adsorbens wird durch Zentrifugation abgetrennt, mit
0,15-m Natriumphosphatpuffer pH 6,4 proteinfrei gewaschen und anschließend mit 1100 ml einer 0,1-m
Ammoniaklösung, die 0,05-m Lyson enthält, eluiert. Durch Neutralisation mit verdünnter Salzsäure, Konzentrieren
des Eluates über eine 50% Ammonsulfatsättigung, Auflösung des Ammonsulfatrückstandes in 90 ml
einer 0,1-m Dinatriumhydrogenphosphat-Lösung, Dialysieren gegen die gleiche Lösung und anschließend
gegen 0,15-m Natriumphosphatpuffer vom pH-Wert 7,5 erhält man 100 ml einer 0,4%igen Plasminogenlösung
mit 47 000 Chr-E/ml. Die Ausbeute beträgt 29%, bezogen auf 4 Liter Plasma mit einer Aktivität von
4000 E/ml. Die spezifische Aktivität des so isolierten Plasminogens beträgt 11 800 Chr-E/mg. Die Plasminogen-Aktivität
des adsorbierten Plasmas beträgt 70
ίο 70 Chr-E/ml.
70 ml Rinderplasma werden unter Rühren bei 37° C mit 100 mg des nach Beispiel 1 hergestellten Lysin-vernetzten
Copolymeren 30 Minuten lang inkubiert. Das durch Zentrifugation zurückgewonnene Adsorbens
wird mit 0,15-m Natriumphosphatpuffer vom pH-Wert
6,4 proteinfrei gewaschen und dann mit 25 ml einer 0,15-m Dinatriumhydrogenphosphat-Lösung, die 0,05-m
ε-Aminocapronsäure enthält, eluiert. Das Eluat wird gegen 0,1-molare Tris-Lösung und nach Entfernen der
ε-Aminocapronsäure gegen 0,1-m Natriumphosphatpuffer vom pH-Wert 7,5 dialysiert. Dabei werden 22 ml
einer 0.1%igen Lösung gewonnen, die pro ml die dreifache Aktivität vom Rinderplasma hat, somit 94°'ü
der Aktivität des eingesetzten Rinderplasmas enthält. Die vergleichende Aktivitätsbestimmung wurde nach
optimaler Aktivierung ies Plasminogens durch Urokinase, eines Plasminogenaktivators aus menschlichem
Harn, an plasminogenfreiem Rinderfibrinogen durchgeführt.
100 mg eines Copolymeren, aus Propylen und Maleinsäureanhydrid im Verhältnis 1 :1 werden in 5 ml
0,15-m Kaliumphosphatpuffer vom pH-Wert 7.5 fein suspendiert. Im Abstand von 2 Minuten werden 10 mg
Hexamethylendiamin in 1 ml und 94 mg ε-Aminocapronsäure in 5 ml Kaliumphosphatpuffer dazupipettiert.
Nachdem der Ansatz 12 Stunden bei +4°C gerührt
wurde, wird das unlösliche Gel abzentrifugiert, mit physiologischer Kochsalzlösung gewaschen, bis es keine
ungebundene ε-Aminocaptonsäure mehr enthält, anschließend mit Wasser gewaschen und lyophilisiert.
100 mg des lyophilisierten ε-Aminocapronsäure-haltigen
Copolymeren werden mit 70 ml Humanplasma bei einem pH-Wert von 7,0 und 37°C unter Rühren 30
Minuten lang inkubiert. Das plasminogenhaltige Copolymere wird durch Zentrifugation zurückgewonnen, mit
0,15-m Nalriumphosphatpuffer vom pH-Wert 6,4 proteinfrei gewaschen und das Plasminogen mit 25 ml
einer 0,05-m Ammoniaklösung, die 0,05 m ε-Aminocapronsäure enthält, eluiert. Das neutralisierte Eluat
wurde durch 50% Ammonsulfat-Sättigung konzentriert und gegen 0,1-m Dinatriumhydrogenphosphat-Lösung
dialysiert. Nach Entfernung der für die Elution verwendeten ε-Aminocapronsäure wird eine weitere
Dialyse gegen 0,1-m Natriumphosphatpuffer vom
pH-Wert 7,5 angeschlossen. Auf diese Weise erhält man
3,5 ml einer 0,2%igen Plasminogenlösung mit 12 000 Chr-E/ml bzw. 6100 Chr-E/mg Substanz. Die Ausbeute
beträgt 16%, bezogen auf das Aus^angsmaterial von 70 ml mit 3800 Chr-E/ml.
100 mg Copolymeres aus Propylen und Maleinsäureanhydrid werden in 5 ml 0,15-m Kaliumphosphatpuff«·,
pH 7,5, fein suspendiert. Anschließend werden 1 ml einer l%igen Hexamethylendiaminlcsung und 2 bis 3
Minuten später 5 ml einer 2%igen Lösung 4-Aminomethylcyclohexancanbonsäure-(l)
in die Suspension eingerührt Der Ansatz wird 12 Stunden bei +40C gerührt
und das entstandene Gel durch Zentrifugation isoliert, ij
mit physiologischer Kochsalzlösung gewaschen, bis es keine freie 4-AminomethyIcyclohexancarbonsäure-(l)
mehr enthält, darauf mit Wasser salzfrei gespült und lyophilisiert
70 ml Humanplasma werden mit verdünnter Salzsäure auf einen pH-Wert von 5,5 titriert und mit 100 mg ties
nach obiger Vorschrift hergestellten Adsorbens 30 Minuten lang bei 37° C unter Rühren inkubiert. Das
Adsorbens wird anschließend abzentrifugiert und mit 0,15-m Natriumphosphatpuffer vom pH-Wert 6,4
gewaschen, bis im Waschwasyer kein Protein mehr nachgewiesen werden kann. Dann wird das Plasminogen
mit 25 ml einer 0,1-m Tris-(hydroxymethyl)-aminomethanlösung,
die 0,05-m Lysin enthält, eluiert. Das Lysin wird durch Dialyse gegen eine 0,1-m Tris-Lösung
entfernt und danach die erhaltene Lösung gegen einen 0,1-m Natriumphosphatpuffer vom pH-Wert 7,5, dialysiert.
Als Endprodukt erhält man 20 ml einer 0,25%igen Lösung mit 6700 Chr-E/ml. Bezogen auf das Ausgangsplasma
mit 4800 Chr-E/ml beträgt die Ausbeute 134 00ö Chr-E = 39%.
Claims (1)
- Patentanspruch:Verfahren zur Isolierung von negativem hochgereinigtem Plasminogen, dadurch gekennzeichnet, daß man Plasminogen aus Plasma oder Serum oder einer Plasminogen enthaltenden Plasma- oder Serumfraktion an einen wasserunlöslichen Träger, der eine Aminocarbonsäure mit einer ε-Stellung zur Carboxylgruppe befindlichen Amino- ίο gruppe kovalent gebunden enthält absorbiert, unspezifische Begleitproteine durch Waschen mit einer wäßrigen Pufferlösung vom pH 5,5 bis 6,5 und einer Molarität von 0,05 bis 0,15 entfernt anschließend das Plasminogen mit einer Pufferlösung vom pH-Wert 2,0 bis 3,5 oder 9,0 bb 10,2 und einer Molarität von 0,05 bis 0,15, welche außerdem eine Aminocarbonsäure der oben beschriebenen Art in einer Molarität von 0,05 bis 0,1 enthält, eluiert und danach gegebenenfalls durch Ausfällen mit Ammoniumsulfat anreichert, anschließend in an sich bekannter Weise, zum Beispiel durch Dialysieren, entsalzt und lyophil trocknet.
Priority Applications (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19702057401 DE2057401C3 (de) | 1970-11-21 | Verfahren zur Isolierung von nativem, hochgereinigtem Plasminogen | |
GB1385071A GB1305504A (de) | 1970-11-21 | 1971-05-07 | |
CA112,884A CA988421A (en) | 1970-11-21 | 1971-05-13 | Process for the isolation of native, highly purified plasminogen |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19702057401 DE2057401C3 (de) | 1970-11-21 | Verfahren zur Isolierung von nativem, hochgereinigtem Plasminogen |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2057401A1 DE2057401A1 (de) | 1972-05-31 |
DE2057401B2 true DE2057401B2 (de) | 1977-04-21 |
DE2057401C3 DE2057401C3 (de) | 1977-12-08 |
Family
ID=
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
GB1305504A (de) | 1973-02-07 |
CA988421A (en) | 1976-05-04 |
DE2057401A1 (de) | 1972-05-31 |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C3 | Grant after two publication steps (3rd publication) | ||
E77 | Valid patent as to the heymanns-index 1977 |