DE19726824C1 - Verfahren zur Identifizierung kanzerogener Agenzien - Google Patents
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Description
Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Identifizierung kanzerogener
Agenzien.
In Nahrungsmitteln, Kosmetika, Textilien, Werkstoffen, Chemikalien sowie
anderen künstlichen Erzeugnissen, aber auch in der Natur, kommen eine Vielzahl
bisher unbekannter Substanzen mit kanzerogenem Gefährdungspotential vor,
deren Zahl sich durch ständige Neuentwicklungen erhöht. Darüber hinaus kön
nen auch physikalische Agenzien (z. B. Röntgenstrahlen, UV-Strahlung) Krebs
auslösen.
Zur Identifikation dieser Stoffe und Abschätzung ihres kanzerogenen
Potentials wurden bisher verschiedene in-vivo und in-vitro Tests durchgeführt.
Der sehr weit verbreitete Ames-Test, auch Salmonella-typhimurium-Test ge
nannt, beruht auf der Mutagenität von Substanzen in Bakterien (Clonfero et al.,
Med. Lav. 81, S. 3-10 (1990)). Ein ebenso bekannter in-vitro Test ist der SOS-
Chromotest (Quillardet et al., Mutat. Res. 297, S. 235-279 (1993)), der auf der
Induktion des bakteriellen SOS-Systems durch genotoxische Agenzien beruht.
Beide Tests sind in ihrer Sensitivität vergleichbar, haben aber den grundsätzli
chen Nachteil, daß die genotoxische Wirkungen von Substanzen in Bakterien und
höheren Organismen unterschiedlich sein können und somit die Ergebnisse nicht
auf den Säugetierorganismus übertragbar sind. Daher wurden vor wenigen
Jahren der Micronucleus-Test (Miller et al., Environ. Mol. Mutagen. 26, S. 240-247
(1995)), der Einzel-Zell-Geltest (SCG-Test, auch Kometen-Assay genannt)
und der Test auf Schwester-Chromosomen-Austausch (Hartmann et al., Mutat.
Res. 346, S. 49-56 (1995) entwickelt, die alle auf eukaryontischen Zellsyste
men basieren.
Zur Untersuchung der mutagenen Wirkung von Substanzen oder physikalischen
Agenzien in lebenden Organismen (in vivo) wurden Assays entwickelt, die auf
der Mutation bakterieller Reportergene (Lacl- oder lac Z-Gen) beruhen, welche
als Transgen in Mäuse eingebracht wurden (Gossen et al., Mutat. Res. 307, S.
451-459 (1994). Daraus entstanden die sog. Muta-Maus sowie die Big-Blue-
Maus.
Da die Tumorentstehung ein multifaktorieller und in allen Einzelheiten bisher
nicht aufgeklärter Vorgang ist, sind Verfahren unzureichend, die nur einzelne
Aspekte (z. B. Mutationserzeugung) der Tumorentstehung analysieren. Im Falle
eines negativen Ergebnisses kann damit a priori die Kanzerogenität eines Stoffes
oder physikalischen Agens nicht ausgeschlossen werden. Zudem sind die für den
Genotoxizitätsnachweis von chemischen und physikalischen Agenzien zumeist
verwendeten bakteriellen Systeme nur mit Einschränkungen auf höhere Organis
men übertragbar. Es gilt daher festzuhalten, daß nach heutigem Stand der
Technik nur die Tumorentstehung selbst ein sicherer Parameter ist, um das
kanzerogene Gefährdungspotential eines chemischen oder physikalischen Agens
zu ermitteln. Aus diesem Grund wurden schon vor vielen Jahren direkte Kanze
rogenitäts-Tests an Nagetieren eingeführt. Bei diesen in vielen Ländern für die
Zulassung neuer Substanzen vorgeschriebenen Tests müssen jedoch oft sehr
hohe Dosen der betreffenden Substanz appliziert werden, um keine falsch
negativen Ergebnisse zu erhalten. Es wurde daher der wichtige Einwand erho
ben, daß die erzielten positiven Ergebisse nicht durch eine echte Kanzerogenität
der Substanzen ausgelöst werden, sondern daß lediglich eine unspezifische
Stimulierung der Zellteilung infolge der Überdosierung vorliegt. Erst durch diese
mitogene Aktivierung würden Mutationen und in der Folge Krebs entstehen, so
daß auch mit diesen Tests, die falsch positive Ergebnisse liefern, keine verläss
lichen Ergebnisse über die Kanzerogenität von Substanzen erhalten werden.
Die Aufgabe der vorliegenden Erfindung besteht deshalb darin, ein Verfahren
bereitzustellen, mit dem kanzerogene Agenzien zuverlässig identifiziert werden
können.
Gelöst wird diese Aufgabe durch die Gegenstände der Patentansprüche.
Das erfindungsgemäße Verfahren wird unter Verwendung eines Säugetiers,
bevorzugt eines Nagetiers, besonders bevorzugt unter Verwendung einer Maus,
durchgeführt, bei welchem eine Störung in der DNA-Reparatur vorliegt. Die
Störung in der DNA-Reparatur basiert auf der trans-dominanten Hemmung der
Poly(ADP-Ribose)-Polymerase (abgekürzt PARP), einem an DNA-Reparaturvor
gängen beteiligten Enzym: (DE 44 33 130 A1; Chemical Abstracts 125: 54956j, Vol. 125, Nr. 5, 1996). Die Hemmung der PARP beruht bevorzugt auf Expres
sion einer dominant negativen Mutante der Poly(ADP-Ribose)-Polymerase,
bevorzugt der transgenen Expression einer solchen Mutante in einem Säugetier,
wodurch ein transgenes Tier entsteht, das auch Gegenstand der vorliegenden
Erfindung ist. Die PARP besitzt eine DNA-Bindungsdomäne (abgekürzt DBD),
welche die Bindung an DNA-Strangbrüche ermöglicht und zu einer Enzymaktivi
tät der PARP führt, wodurch eine Reparatur der Strangbrüche ermöglicht wird.
Bei der dominant negativen PARP-Mutante liegt jedoch eine Deletion vor, so daß
nur die DNA-Bindungsdomäne der PARP exprimiert wird. Dies bewirkt eine Hem
mung der PARP-Enzymfunktion und damit der DNA-Reparatur. Die Expression
dieser PARP-Mutante hat keinen Einfluß auf Zellteilung und Zellvitalität in Ab
wesenheit von genotoxischem Stress. Werden aber genotoxische (chemische
oder physikalische) Agenzien appliziert, führt die PARP-Hemmung zu einer
erheblichen Steigerung der Sensitivität der Zellen gegen diese Behandlungen. Die
Anwesenheit der PARP-Mutante führt dann zu einer gesteigerten genetischen
Instabilität nach Kanzerogenbehandlung, die sich in erhöhter Rekombination
sowie verstärkter Genamplifikation äußert. Außerdem führt die Störung der
PARP-Funktion zu einer gesteigerten Mutagenität genotoxischer Agentien. Damit
führt die Störung der zellulären PARP-Funktion zu einer erhöhten Rate verschie
dener genetischer Veränderungen (Mutationen, Rekombinationen, Genamplifika
tion) nach Behandlung mit einem Kanzerogen. Diese verschiedenen genetischen
Veränderungen lassen, in Abhängigkeit von der Natur des kanzerogenen Agens
und der Art seiner Applikation, verschiedene Wege der Tumorentstehung zu
(z. B. Onkogenamplifikation, Tumorsuppressorgen-Mutation oder Kombinationen
davon).
Das bei dem erfindungsgemäßen Verfahren eingesetzte Säugetier, bevorzugt die
transgene Maus, hat vorteilhafterweise eine Haut-spezifische Expression der
dominant negativen PARP-Mutante, wobei selbstverständlich auch jede andere
organspezifische Expression möglich ist. Die Haut ist aber wegen der guten Er
reichbarkeit und Kontrollierbarkeit das bevorzugte Organ für Kanzerogenese-
Untersuchungen. Zur Steuerung des Transgens kann jeder dem Fachmann
bekannte Promotor, der eine gewebespezifische Expression, bevorzugt in der
Haut, erlaubt, verwendet werden; bevorzugt wird der Zytokeratin-14-Promotor
verwendet, der eine Expression in der zellteilungsaktiven Basalschicht gestattet,
aus welcher bevorzugt Hauttumoren entstehen (Vassar et al., Proc. Natl. Acad.
Sci USA 86, S. 1563-1567 (1989)).
In bevorzugter Weise wird zur Herstellung des transgenen Säugetiers ein Frag
ment verwendet, das folgenden Aufbau hat (s. Fig. 1):
- - 1,946 kB Aval-Fragment des humanen Zytokeratinpromotors (Vas sar et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86, S. 1563-1567 (1989))
- - 1,156 kB DBD-Fragment von Position -29 bis zur internen Nla IV- Stelle bei 1127 der humanen Poly (ADP-Ribose)-Polymerase (Cher ney et al., Proc. natl. Acad. Sci. USA 84, S. 8370-8374 (1987))
- - 0,486 kB des Polyadenylierungssignals des humanen Zytokeratin promotors (Vassar et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86, S. 1563-1567 (1989))
Ein dieses Fragment enthaltender Vektor (pKDinoDBD) wurde am 11. Juni 1997
unter der Nummer DSM 11594 bei der DSMZ (Deutsche Sammlung von Mikroor
ganismen und Zellkulturen, Braunschweig) hinterlegt.
Das transgene Säugetier wird nach der von Hogan et al. ("Manipulating the
mouse embryo: A laboratory manual", Cold Spring Habor Laboratory, New York
(1986)) allgemein beschriebenen Methode hergestellt. Dazu eignet sich beson
ders die Mikroinjektion eines entsprechenden DNA-Fragments in befruchtete
Maus-Oozyten und nachfolgende Implantation in scheinträchtige Weibchen. Es
entstehen Nachkommen, die das Transgen enthalten und an ihre Nachkommen
weitergegeben (DBD-Linie).
Das erfindungsgemäße Verfahren wird in Form eines in-vivo-Assays durchge
führt. Es werden 10-15 Wochen alte transgene Tiere der DBD-Linie ausgesucht
und für den Test entsprechend akklimatisiert. Für jede Behandlung werden 10-
15 Tiere (weiblich oder männlich) benötigt. Da ein wichtiges Zielorgan der
Kanzerogenesestudien die Haut ist, werden die potentiell kanzerogenen chemi
schen Agenzien in jeweils 50-200 µl Lösungsmittel, z. B. Wasser, physiologische
Kochsalzlösung, Aceton oder Ethanol) zweimal pro Woche topisch aufgetragen.
Zur Untersuchung von potentiell karzinogenen physikalischen Agenzien werden
entsprechende Applikationen ebenfalls zweimal pro Woche durchgeführt. Diese
Behandlungen können bis zu 20 Wochen dauern. Um Tumorwachstum zu
ermöglichen, wird eine zusätzliche Zeit von bis zu 40-80 Wochen nach der
fetzten Applikation veranschlagt. Als Positivkontrolle für die Tumorerzeugung
kann 5-50 µg 7,12-Dimethylbenzanthracen (DMBA) in derselben Versuchsanord
nung verwendet werden. Als Negativkontrolle kann das entsprechende Lösungs
mittel, das auch zur Auflösung der Testsubstanz verwendet worden war, aufge
tragen werden. Die Tiere werden während der gesamten Versuchszeit regelmä
ßig gewogen und die Applikationsstelle untersucht. Entstehende Papillome bzw.
andere Hauttumoren werden einmal pro Woche makroskopisch untersucht und
ggf. vermessen. Wenn Tumore eine kritische Größe erreicht haben (hängt von
Tierart, Lage des Tumors und den nationalen Tierschutzbedingungen ab), werden
die Tiere getötet und Tumorgewebe wird zur histologischen und molekularbiolo
gischen Charakterisierung entnommen. Außerdem können Primärkulturen der
Tumoren angelegt werden. Die Ergebnisse des Kanzerogenitätsversuche werden
statistisch ausgewertet, wobei Dosis-Wirkungs-Beziehungen ermittelt werden
können. Zur weiteren Analyse können Unterschiede der Turmorentstehung in
den Geschlechtern sowie zu Wildtyp-Mäusen ermittelt werden. Weitere Einzel
heiten zu in-vivo Kanzerogenitätsassays finden sich in Tennant et al., Environ.
Health Perspect. 103, S. 942-950 (1995).
Im Vergleich zu allen in-vitro-Modellen, welche einzelne Vorgänge der Tumorent
stehung herausgreifen (z. B. DNA-Schädigung, Mutationserzeugung) ist ein in-
vivo-Assay aussagekräftiger, dessen biologischer Endpunkt die Tumorentstehung
selbst ist. Im Vergleich zu dem oben beschriebenen direkten Kanzerogenitäts-
Modell mit Nagetieren kann mit dem erfindungsgemäßen Verfahren unter Ver
wendung des transgenen Säugetiers, das eine Störung in der DNA-Reparatur
durch trans-dominante Hemmung der PARP-Aktivität aufweist, ein Sensitivitäts
gewinn erzielt werden, wodurch das Problem der Überdosierung und Erzeugung
falsch positiver Ergebnisse verringert wird. Im Gegensatz zu den bekannten
transgenen Mausmodellen umgeht das Verfahren der vorliegenden Erfindung das
Problem der Bahnung in Richtung einer vorgegebenen Tumorgenese. Die PARP-
Hemmung führt zu einer grundlegenden Störung der DNA-Reparatur mit der
Konsequenz einer Verstärkung der genetischen Instabilität (Mutations-, Rekom
binations-, Genamplifikationsrate) nach Kanzerogenbehandlung, wodurch dann
über verschiedene Wege die Tumorentstehung begünstigt wird.
Die Erfindung wird weiter anhand der Figuren beschrieben.
Fig. 1 zeigt das Expressionsfragment aus pKDinoDBD
K14-Prom. = Promotor des humanen Zytokeratin-14- Gens
DBD = kodierende Sequenz der DNA-Bindungs domäne der humanen Poly(ADP-Ribose)- Polymerase (EC 2.4.2.30)
p-A = Polyadenylierungssignal des humanen Zytokeratin-14-Gens
K14-Prom. = Promotor des humanen Zytokeratin-14- Gens
DBD = kodierende Sequenz der DNA-Bindungs domäne der humanen Poly(ADP-Ribose)- Polymerase (EC 2.4.2.30)
p-A = Polyadenylierungssignal des humanen Zytokeratin-14-Gens
Die Erfindung wird weiter anhand der nachfolgenden Beispiele beschrieben.
Das Plasmid pKDinoDBD (s. Fig. 1) wurde mit dem Restriktionsenzym Not l ge
schnitten. Nach Auftrennung der Restriktionsfragmente auf einem 1%igen
Agarosegel wurde ein 3,6 kB großes Fragment, welches die Expressionskassette
von pKDinoDBD enthielt, isoliert und mittels eines kommerziell erhältlichen Kits
(z. B. "Gene Clean"R; Dianova, Hamburg) nach den Angaben des Herstellers
präpariert. Dieses Fragment wurde auf eine Konzentration von 2 ng/µl in 10 mM
Tris-HCl (pH 7,6), 0,25 mM EDTA eingestellt. F1-Weibchen aus der Kreuzung
der Mäusestämme C57BL/6 × DBA2 wurden durch Hormongaben einer Supero
vulation unterzogen. Nach der Verpaarung mit F1-Männchen (ebenfalls durch
Kreuzung von C57BL/6 × DBA2) wurden befruchtete Eizellen aus den Weibchen
präpariert, in die das vorstehend beschriebene DNA-Fragment mikroinjiziert
wurde. Die Embryonen wurden in die Eileiter scheinträchtiger NMRI-Mäuse
(Ammenmütter; zuvor verpaart mit vasektomierten Männchen) implantiert. Die
nach ca. 21 Tagen geborenen Tiere wurden anhand von DNA-Material aus
Schwanz-Biopsien auf Anwesenheit des Transgens überprüft. Dazu wurde die
Technik der Polymerase-Kettenreaktion (PCR) mit folgenden Primern aus der
kodierenden Sequenz der humanen PARP (Cherney et al., Proc. Natl. Acad. Sci.
USA 84, S. 8370-8374 (1987)) eingesetzt:
Es wurden 22 PCR-Zyklen mit jeweils 200 ng genomischer DNA durchgeführt,
wobei jeweils 300 sec. bei 95°C denaturiert, 60 sec. bei 60°C angelagert und
120 sec. bei 72°C polymerisiert wurde.
Ein positives Weibchen (Ohrmarke #354) wurde identifiziert. Aus der Schwanz-
Biopsie dieses Tieres wurde Protein-Material gewonnen und mittels Western Blot
auf Expression des Transgens untersucht. Dabei wurden sowohl der monoklona
le anti-DBD-Antikörper CII10 (Lamarre et al., Biochim. Biophys. Acta 950, S.
147-160 (1988)) als auch das gegen die DBD gerichtete anti-FII-Kaninchenserum
(Küpper et al., J. Biol. Chem. 265, S. 18721-18724 (1990)) eingesetzt. Mit
beiden Antikörpern war die 45 kDa große DNA-Bindungsdomäne (DBD) im
Western Blot nachweisbar, so daß der Beweis für die Expression des Transgens
erbracht wurde. Die Founder-DBD-Maus #354 wurde mit DBA2-Männchen
verpaart und die Nachkommenschaft analysiert. Das Transgen wird an die
Nachkommen weitergegeben, so daß die Linie DBD #354 stabil vorhanden ist.
12 Wochen alte Tiere der in Beispiel 1 beschriebenen Maus-DBD-Linie #354
werden über drei Wochen einer Akklimatisation an den Versuchsort unterzogen.
Weibliche Tiere werden in Gruppen zu jeweils 5 Tieren/Käfig, männliche Tiere
werden einzeln unter spezifisch pathogenfreien (SPF)-Bedingungen gehalten. Die
Ernährung der Tiere erfolgt nach Standard (#D10010 Futter von Research Diets,
New Brunswick, New Jersey, USA sowie Wasser ad libitum). Für jede Behand
lung werden 10-15 Tiere (männlich oder weiblich) benötigt. Die zu testenden
putativ karzinogenen Chemikalien werden in mehreren Verdünnungsstufen in
physiologischer Kochsalzlösung bzw. Aceton aufgenommen und 100 µl jeder
Verdünnung jeweils zweimal pro Woche topisch aufgetragen. Als Positivkontrolle
werden 20 µg 7,12-Dimethylbenzanthracen (DMBA) in 100 µl Aceton verwen
det. Als Negativkontrolle wird Aceton appliziert. Die Behandlung wird für 15
Wochen durchgeführt. Die Tiere werden wöchentlich gewogen und an der
Applikationsstelle untersucht. 12 Wochen nach Ende der Behandlungen kann in
der Gruppe der Positivkontrolle mit einem sichtbaren Tumorwachstum gerechnet
werden, wobei erfahrungsgemäß die Tumoren rasch (innerhalb weiterer 12
Wochen) an Größe zunehmen. Nach Erreichen einer kritischen Tumorgröße
werden die Tiere jeweils durch zervikale Dislokation getötet und der Tumor
entnommen. Erwartungsgemäß zeigt sich in der Gruppe der mit Lösungsmittel
behandelten Tiere auch nach 60 Wochen kein Tumorwachstum.
Alternativ kann ein sogenanntes Initiations-Promotionsprotokoll zur Anwendung
kommen. Im Prinzip wird hierbei einmalig eine sehr niedrige Dosis eines initiieren
den (zumeist DNA-schädigenden) Karzinogens verabreicht, gefolgt von wie
derholten Anwendungen eines für sich allein nicht-karzinogenen Tumorpromotors
(Becker et al., Cancer Res. 56, S. 3244-3249, 1996). Hier wird als Positiv
kontrolle beispielsweise Methylnitrosoharnstoff (20 µmol in 100 µl Aceton;
einmalig topisch appliziert) verwendet. Sieben Tage später wird dann mit dem
Tumorpromotor Tetradecanoyl-Phorbol-Acetat (TPA) zweimal wöchentlich über
einen Zeitraum von 22 Wochen weiterbehandelt (je 10 mmol in 100 µl Aceton).
Negativkontrollen sind hier Tiere, die anstelle des Methylnitrosoharnstoff le
diglich Aceton erhalten haben, dann jedoch gefolgt von der üblichen TPA-Be
handlung. Die auf Kanzerogenität zu testenden Chemikalien werden ebenfalls
anstelle des Methylnitrosoharnstoffs appliziert, wiederum gefolgt von der übli
chen TPA-Behandlung. Bei diesem Protokoll ist bei der Positivkontrolle nach
spätestens 9 Wochen mit einem sichtbaren Tumorwachstum bei in Beispiel 1 be
schriebenen Maus der DBD-Linie #354 zu rechnen.
Claims (9)
1. Verfahren zur Identifizierung kanzerogener Agenzien, wobei die potentiell
karizerogenen Agenzien einem Säugetier, das eine Störung in der DNA-
Reparatur durch Hemmung der Poly(ADP-Ribose)-Polymerase aufweist,
verabreicht werden.
2. Verfahren nach Anspruch 1, wobei die Hemmung der Poly(ADP-Ribose)-
Polymerase durch Expression einer dominant negativen Poly (ADP-Ribo
se)-Polymerase verursacht wird.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, wobei die Hemmung der Poly(ADP-
Ribose)-Polymerase durch einen transgenen Eingriff vorgenommen wird.
4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3, wobei als Säugetier eine
transgene Maus verwendet wird.
5. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 4, wobei die Verabreichung
der potentiell kanzerogenen Agentien durch topische Applikation erfolgt.
6. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5, wobei das Säugetier das in
Fig. 1 gezeigte DNA-Konstrukt transgen exprimiert.
7. Verwendung eines Säugetiers, das eine Störung in der DNA-Reparatur
durch Hemmung der Poly(ADP-Ribose)-Polymerase aufweist, zur Durch
führung des Verfahrens nach einem der Ansprüche 1 bis 6.
8. Verwendung nach Anspruch 7, wobei die Hemmung der Poly(ADP-Ribo
se)-Polymerase durch Expression einer dominant negativen Poly (ADP-
Ribose)-Polymerase verursacht wird.
9. Verwendung nach Anspruch 7 oder 8, wobei es sich bei dem Säugetier
um eine transgene Maus handelt.
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Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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Non-Patent Citations (1)
Title |
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Chemical Abstracts 125 (1996) 54956j, Küpper J.-H.et al., Cancer Res. 56 (1996) 2715-2717 * |
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