DE1567331A1 - Verfahren zur Herstellung von Produkten mit hohem Maltosegehalt und die dadurch hergestellten Produkte - Google Patents
Verfahren zur Herstellung von Produkten mit hohem Maltosegehalt und die dadurch hergestellten ProdukteInfo
- Publication number
- DE1567331A1 DE1567331A1 DE1967C0044245 DEC0044245A DE1567331A1 DE 1567331 A1 DE1567331 A1 DE 1567331A1 DE 1967C0044245 DE1967C0044245 DE 1967C0044245 DE C0044245 A DEC0044245 A DE C0044245A DE 1567331 A1 DE1567331 A1 DE 1567331A1
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- enzyme
- conversion
- starch
- maltose
- content
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- OWEGMIWEEQEYGQ-UHFFFAOYSA-N 100676-05-9 Natural products OC1C(O)C(O)C(CO)OC1OCC1C(O)C(O)C(O)C(OC2C(OC(O)C(O)C2O)CO)O1 OWEGMIWEEQEYGQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 title claims description 73
- GUBGYTABKSRVRQ-PICCSMPSSA-N Maltose Natural products O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)OC(O)[C@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-PICCSMPSSA-N 0.000 title claims description 73
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 46
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title claims description 32
- 230000008569 process Effects 0.000 title claims description 20
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 claims description 104
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 claims description 104
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 claims description 103
- 229920002472 Starch Polymers 0.000 claims description 64
- 235000019698 starch Nutrition 0.000 claims description 64
- 239000008107 starch Substances 0.000 claims description 58
- 108090000637 alpha-Amylases Proteins 0.000 claims description 42
- 239000012084 conversion product Substances 0.000 claims description 34
- 239000006188 syrup Substances 0.000 claims description 34
- 235000020357 syrup Nutrition 0.000 claims description 34
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 claims description 31
- GXCLVBGFBYZDAG-UHFFFAOYSA-N N-[2-(1H-indol-3-yl)ethyl]-N-methylprop-2-en-1-amine Chemical compound CN(CCC1=CNC2=C1C=CC=C2)CC=C GXCLVBGFBYZDAG-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 20
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims description 16
- 108010065511 Amylases Proteins 0.000 claims description 8
- 102000013142 Amylases Human genes 0.000 claims description 8
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims description 8
- 241000194105 Paenibacillus polymyxa Species 0.000 claims description 7
- 239000000047 product Substances 0.000 claims description 7
- 239000002253 acid Substances 0.000 claims description 6
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 claims description 6
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 claims description 6
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 4
- 235000019418 amylase Nutrition 0.000 claims description 4
- 239000004382 Amylase Substances 0.000 claims description 3
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 claims description 3
- 229940111205 diastase Drugs 0.000 claims description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims description 2
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 claims 3
- 239000012265 solid product Substances 0.000 claims 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 15
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 13
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 description 13
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 12
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 12
- 239000008121 dextrose Substances 0.000 description 11
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 10
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 235000011389 fruit/vegetable juice Nutrition 0.000 description 8
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 7
- 230000007062 hydrolysis Effects 0.000 description 6
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 description 6
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 6
- 229920002261 Corn starch Polymers 0.000 description 5
- 239000004373 Pullulan Substances 0.000 description 5
- 229920001218 Pullulan Polymers 0.000 description 5
- 240000008042 Zea mays Species 0.000 description 5
- 235000002017 Zea mays subsp mays Nutrition 0.000 description 5
- 239000008120 corn starch Substances 0.000 description 5
- 235000019423 pullulan Nutrition 0.000 description 5
- 241000588915 Klebsiella aerogenes Species 0.000 description 4
- 235000005824 Zea mays ssp. parviglumis Nutrition 0.000 description 4
- 235000005822 corn Nutrition 0.000 description 4
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 4
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 4
- 241000132152 Polymyxa Species 0.000 description 3
- YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N Toluene Chemical compound CC1=CC=CC=C1 YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 3
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 3
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 description 3
- 235000013339 cereals Nutrition 0.000 description 3
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 3
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 3
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 3
- -1 potassium ferricyanide Chemical compound 0.000 description 3
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 3
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 3
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 3
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 description 3
- CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N Acetone Chemical compound CC(C)=O CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- VTYYLEPIZMXCLO-UHFFFAOYSA-L Calcium carbonate Chemical compound [Ca+2].[O-]C([O-])=O VTYYLEPIZMXCLO-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 229920000742 Cotton Polymers 0.000 description 2
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 description 2
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 description 2
- WCUXLLCKKVVCTQ-UHFFFAOYSA-M Potassium chloride Chemical compound [Cl-].[K+] WCUXLLCKKVVCTQ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 244000062793 Sorghum vulgare Species 0.000 description 2
- 235000021307 Triticum Nutrition 0.000 description 2
- 241000209140 Triticum Species 0.000 description 2
- 238000005903 acid hydrolysis reaction Methods 0.000 description 2
- 235000015278 beef Nutrition 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000013078 crystal Substances 0.000 description 2
- ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L dipotassium hydrogen phosphate Chemical compound [K+].[K+].OP([O-])([O-])=O ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 2
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 2
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 2
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 2
- 239000012065 filter cake Substances 0.000 description 2
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 2
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 2
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 2
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 2
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 2
- 235000019713 millet Nutrition 0.000 description 2
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 2
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 description 2
- KJFMBFZCATUALV-UHFFFAOYSA-N phenolphthalein Chemical compound C1=CC(O)=CC=C1C1(C=2C=CC(O)=CC=2)C2=CC=CC=C2C(=O)O1 KJFMBFZCATUALV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 description 2
- 229920001592 potato starch Polymers 0.000 description 2
- 230000003014 reinforcing effect Effects 0.000 description 2
- VWDWKYIASSYTQR-UHFFFAOYSA-N sodium nitrate Chemical compound [Na+].[O-][N+]([O-])=O VWDWKYIASSYTQR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000012086 standard solution Substances 0.000 description 2
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 2
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 2
- XINQFOMFQFGGCQ-UHFFFAOYSA-L (2-dodecoxy-2-oxoethyl)-[6-[(2-dodecoxy-2-oxoethyl)-dimethylazaniumyl]hexyl]-dimethylazanium;dichloride Chemical compound [Cl-].[Cl-].CCCCCCCCCCCCOC(=O)C[N+](C)(C)CCCCCC[N+](C)(C)CC(=O)OCCCCCCCCCCCC XINQFOMFQFGGCQ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 241000223678 Aureobasidium pullulans Species 0.000 description 1
- 241000193830 Bacillus <bacterium> Species 0.000 description 1
- 108010023063 Bacto-peptone Proteins 0.000 description 1
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920002245 Dextrose equivalent Polymers 0.000 description 1
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 1
- 244000068988 Glycine max Species 0.000 description 1
- 235000010469 Glycine max Nutrition 0.000 description 1
- 240000005979 Hordeum vulgare Species 0.000 description 1
- 235000007340 Hordeum vulgare Nutrition 0.000 description 1
- 239000005909 Kieselgur Substances 0.000 description 1
- 240000003183 Manihot esculenta Species 0.000 description 1
- 235000016735 Manihot esculenta subsp esculenta Nutrition 0.000 description 1
- 229920000881 Modified starch Polymers 0.000 description 1
- 239000004368 Modified starch Substances 0.000 description 1
- ZLMJMSJWJFRBEC-UHFFFAOYSA-N Potassium Chemical compound [K] ZLMJMSJWJFRBEC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N Silicium dioxide Chemical compound O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- CDBYLPFSWZWCQE-UHFFFAOYSA-L Sodium Carbonate Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]C([O-])=O CDBYLPFSWZWCQE-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 240000006394 Sorghum bicolor Species 0.000 description 1
- 235000011684 Sorghum saccharatum Nutrition 0.000 description 1
- 235000009430 Thespesia populnea Nutrition 0.000 description 1
- 235000016383 Zea mays subsp huehuetenangensis Nutrition 0.000 description 1
- 150000007513 acids Chemical class 0.000 description 1
- 230000006978 adaptation Effects 0.000 description 1
- GZCGUPFRVQAUEE-SLPGGIOYSA-N aldehydo-D-glucose Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)C=O GZCGUPFRVQAUEE-SLPGGIOYSA-N 0.000 description 1
- 102000004139 alpha-Amylases Human genes 0.000 description 1
- 229940024171 alpha-amylase Drugs 0.000 description 1
- 150000003863 ammonium salts Chemical class 0.000 description 1
- 229940025131 amylases Drugs 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 229940089206 anhydrous dextrose Drugs 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- 230000033228 biological regulation Effects 0.000 description 1
- 238000009835 boiling Methods 0.000 description 1
- 229910000019 calcium carbonate Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000004364 calculation method Methods 0.000 description 1
- 238000011088 calibration curve Methods 0.000 description 1
- 150000001720 carbohydrates Chemical class 0.000 description 1
- 235000014633 carbohydrates Nutrition 0.000 description 1
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 239000003245 coal Substances 0.000 description 1
- 235000009508 confectionery Nutrition 0.000 description 1
- 239000000470 constituent Substances 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 239000012809 cooling fluid Substances 0.000 description 1
- 238000002425 crystallisation Methods 0.000 description 1
- 239000012531 culture fluid Substances 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 235000021185 dessert Nutrition 0.000 description 1
- 235000011850 desserts Nutrition 0.000 description 1
- 229940111685 dibasic potassium phosphate Drugs 0.000 description 1
- 229940079919 digestives enzyme preparation Drugs 0.000 description 1
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 1
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 1
- 229910000396 dipotassium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000019797 dipotassium phosphate Nutrition 0.000 description 1
- 150000002016 disaccharides Chemical class 0.000 description 1
- 239000006185 dispersion Substances 0.000 description 1
- 229940092559 enterobacter aerogenes Drugs 0.000 description 1
- 230000007071 enzymatic hydrolysis Effects 0.000 description 1
- 238000006047 enzymatic hydrolysis reaction Methods 0.000 description 1
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 description 1
- 235000013312 flour Nutrition 0.000 description 1
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 230000002538 fungal effect Effects 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 description 1
- 230000003301 hydrolyzing effect Effects 0.000 description 1
- 230000001965 increasing effect Effects 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 238000009776 industrial production Methods 0.000 description 1
- 238000005342 ion exchange Methods 0.000 description 1
- SURQXAFEQWPFPV-UHFFFAOYSA-L iron(2+) sulfate heptahydrate Chemical compound O.O.O.O.O.O.O.[Fe+2].[O-]S([O-])(=O)=O SURQXAFEQWPFPV-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 235000009973 maize Nutrition 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 235000019426 modified starch Nutrition 0.000 description 1
- 150000002772 monosaccharides Chemical class 0.000 description 1
- 210000003097 mucus Anatomy 0.000 description 1
- 230000000869 mutational effect Effects 0.000 description 1
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 description 1
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 description 1
- 239000011591 potassium Substances 0.000 description 1
- 229910052700 potassium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001103 potassium chloride Substances 0.000 description 1
- 235000011164 potassium chloride Nutrition 0.000 description 1
- 239000000276 potassium ferrocyanide Substances 0.000 description 1
- LWIHDJKSTIGBAC-UHFFFAOYSA-K potassium phosphate Substances [K+].[K+].[K+].[O-]P([O-])([O-])=O LWIHDJKSTIGBAC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 239000013587 production medium Substances 0.000 description 1
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 1
- 230000035484 reaction time Effects 0.000 description 1
- 239000012088 reference solution Substances 0.000 description 1
- 238000007670 refining Methods 0.000 description 1
- 230000000284 resting effect Effects 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 235000010344 sodium nitrate Nutrition 0.000 description 1
- 239000004317 sodium nitrate Substances 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 239000007858 starting material Substances 0.000 description 1
- 238000005728 strengthening Methods 0.000 description 1
- 239000008399 tap water Substances 0.000 description 1
- 235000020679 tap water Nutrition 0.000 description 1
- 239000012085 test solution Substances 0.000 description 1
- XOGGUFAVLNCTRS-UHFFFAOYSA-N tetrapotassium;iron(2+);hexacyanide Chemical compound [K+].[K+].[K+].[K+].[Fe+2].N#[C-].N#[C-].N#[C-].N#[C-].N#[C-].N#[C-] XOGGUFAVLNCTRS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000007704 transition Effects 0.000 description 1
- 230000001960 triggered effect Effects 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
- C12P19/22—Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of a beta-amylase, e.g. maltose
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
- C12P19/16—Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of an alpha-1, 6-glucosidase, e.g. amylose, debranched amylopectin
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/8215—Microorganisms
- Y10S435/822—Microorganisms using bacteria or actinomycetales
- Y10S435/828—Aerobacter
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/8215—Microorganisms
- Y10S435/822—Microorganisms using bacteria or actinomycetales
- Y10S435/832—Bacillus
- Y10S435/838—Bacillus polymyxa
Landscapes
- Organic Chemistry (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
Verfahren zur Herstellung von Produkten mit hohem Maltosegehalt und die dadurch hergestellten Produkte.
Priorität: USA-Patentanmeldung Nr. 6O4 559
vom 27.Dezember I966
Die Erfindung befasst sich mit einem verbesserten Verfahren zur Konversion einer partiell hydrolysieren
Stärke mit dem ^iel, Konversionsprodukte mit einem
hohen Gehalt an Maltose zu erhalten· Insbesondere befasst $ich die Erfindung mit einem Verfahren zur Herstellung
von Konversionsprodukten mit hohem Maltosegehalt aus einer partiell hydrolysieren Stärke unter
Anwendung äax kombinierten hydrolyaierenden Wirkung von
(ν, maltogenen (=maltosebildenden) Enzymen und Enzymen,
welche die Verzweigungen der Stärke abbauen.
Maltose ist ein süß-achmeckendes Disaccharide während
Dextrose ein süßes Monosaccharid ist. Maltose und Dextrosf sind reduzierende Zucker. Ihre Sirupe enthalten unvermeid
lieh aiidere Zucker. Sirupe mit hohem Gehalt an Maltose
sind wertvoll in vielen Anwendungen, weil sie im
/
Vergleich mit Maisstärke-Sirupen mit hohem Gehalt an Dextrose eine verminderte Neigung zur Kristallisation sseigen und nicht zur Feuchtigkeitsaufnahme neigen.
Vergleich mit Maisstärke-Sirupen mit hohem Gehalt an Dextrose eine verminderte Neigung zur Kristallisation sseigen und nicht zur Feuchtigkeitsaufnahme neigen.
Die Sirupe, welche einen hohen Maltosegehalt aufweisen, wurden bisher industriell durch Verzuckerung von Stärke
und Stärkehydrolysaten mit Malz-Enzymen hergestellt.
Die konvertierende Wirkung von Malz.Enzymen führt zur Bildung eines Konversionsproduktes, in welchem
Maltose der mengenmässig überwiegende Zucker ist. Ein typisches bekanntes Verfahren zur Herstellung eines
maltosereichen Sirups umfasst Verflüssigung der Stärke mit nachfolgender Behandlung mit Malz-Enzymen mit dem
Ziel, die löslich gemachte Stärke zu verzuckern und ein Stärkehydrolysat mit hohem Maltosegehalt zu erhalten.
Geeignete Enzyme für diesen Verzuckerungsprozess waren primär auf Malz-Enzyme begrenzt. Die Verzuckerung oder
Konversion des Stärkehydrolysates wurde im allgemeinen
mit Malz-Enzymen bis zu einer DE zwiwchen 35 und " durchgeführt, je nach dem, welcher Konversionsgrad
gewünscht wurde. D.E. ist die Abkürzung für Dextrose-Äquivalent
und gibt den Gesamtgehalt an reduzierenden Zuckern wieder, ausgedrückt in Prozenten Dextrose
bezogen auf die Trockensubstanz.
Die obere Grenze zur wirtschaftlichen Malz-Verzuckerung wird im allgemeinen mit 50-55 DE angesehen· Solch ein
Konversions-Saft wird im allgemeinen 6O-65?C Maltose
enthalten. Die Verzuckerung bis zu diesem Grad ist abhängig
von dem Stärke-verflüssigenden Schritt, welcher angewendet wurde. Wenn Maltose'Sirupe mit einer DE
109886/0335
höher als 55 angestrebt wurden, wurden andere verzuckernde Enzyme, wie zum Beispiel Pilz-Amylasen, zur weiteren
Verzuckerung eingesetzte Solche verzuckernden Enzyme ■bilden eine "beträchtliche Menge Dextrose aus den vorhandenen
Zuckern· So führt ein zweiter verzuckernder Schritt im allgemeinen zu einem geringen Abfall im
Gesamt.oehalt der vorhandenen Maltose+ jedoch bilden
sich Sirupe mit verhältnismässig hohem Gehalt an Maltose, welche süßer sein können und im allgemeinen
einen höheren Gehalt an Fermentierbarem enthalten als die herkömmlichen Malz-Konversionssirupe.
Sirupe mit hohem Maltosegehalt sind in wachsendem Maße bedeutungsvoll in kommerziellen Anwendungen gewordene
Sirup-Zusammensetzungen mit hohem Maltosegehalt versehen "Hard candles" mit den wünschenswerten nichthygroskopischen Eigenschaftenο Sie sind ausserdem zur
Kontrolle der Kristallbildung in Rezepten für gefrorene Desserts nützliche Ähnlich ist der hohe Gehalt an
Permentierbarem der Sirupe mit hohem Maltosegehalt wertvoll
in der Bäckerei- und Brauerei-Industrie. Obwohl Malz-Enzyme schon sehr lange bekannt und allein in
Gebrauch sind und es erwartet wird, dass sie ihre Bedeutung in der Industrie behalten, ist es wünschenswert,
dass ein Ersatzverfahren gefunden wird für das Malz-Enzym-Verfahren zur Herstellung von ^tärke-Konversionsprodukten
mit hohem Maltose-Gehalt, mit dem Ziel,
Sirupe zu erhalten, welche einen hohen Gehalt an Maltose besitzen und gleiche oder bessere Eigenschaften besitzen
als jene, welche mittels Malz-Enzym allein erhalten wurden. -,Q9886/0335
Demgemäß besteht der Torteil der vorliegenden Erfindung
darin, ein neues Verfahren zur Herstellung von ^tärke-Konversionsprodukten
mit hohem Gehalt an Maltose verfügbar zu machen mxAm anstelle der bekannten Verfahren,
in welchem Malz allein gebraucht wurde.
Ein anderer Vorteil der vorliegenden Erfindung besteht
in der Bereitstellung eines neuen Verfahrene zur Herstellung von Sirupen mit hohem Maltosegehalt, welcher
verbesserte Eigenschaften hinsichtlich Ulchtkristallisierens
besitzt.
Ein weiterer Vorteil der Erfindung ist die Schaffung eines
praktischen Verfahrens zur Herstellung von Sirupen mit hohem Maltosegehalt, basierend auf dem Gebrauch von
maltogenen Enzymen in Kombination mit einem Pullulanase-Enzym-Präparat·
Noch ein anderer Vorteil der Erfindung ist die Schaffung
eines neuen Verfahrens zur praktischen Herstellung von Sirupen mit hohem Maltosegehalt, welcher wissenschaftlich
begründeten Verbesserungen leicht zugänglich ist, ' um die Wirtschaftlichkeit der Herstellung zu entwickeln.
Ein weiterer Vorteil der Erfindung ist die Schaffung
eines neuen Verfahrens zur Herstellung von Sirupen mit hohem Maltosegehalt, welche im wesentlichen nichtkristallisierende
und nicht-hygroskopische Kennzeichen haben.
Ein anderer Vorteil der Erfindung ist die Herstellung
von Sirupen mit höheren Gehalten an Maltose und Fermentierbarem als solche, welohe bisher hergestellt wurden.
109886/0335
Es ist ein anderer Vorteil der Erfindung, eiranc
praktisches Verfahren zur Herstellung von ^tärke-Konversionsprodukten
mit hohem Maltosegehalt zu schaffen, welche nützlich zur Herstellung von Lebensmitteln
sind, wie zum Beispiel gefrorene Süßspeisen, welche keine Kristallbildung unter niedrig-Temperaturb
e d ingung en auf we i s en ·
Andere Vorteile der Erfindung werden aus der folgenden Beschreibung und den Ansprüchen offenbar. Alle Teile
und Prozente, welche nachstehend genannt sind, beziehen
sieh auf Gewicht und Trockensubstanz, sofern nichts anderes ausdrück/fclieh erwähnt ist.
Die vorliegende Erfindung bezieht sich auf ein Verfahren zur Herstellung von ütärkekonversionsprodukten mit hohem
Maltosegehalt, welches darin besteht, dass partiell hydrolysiertβ Stärke, welche einen DE-Wert nicht über
20 hat, einer Konversion mit maltogenem Enzym-Präparat und PulluiLanase-Enzym-Präparat unterworfen wird, wobei
ein Konversionsprodukt erhalten wird, welches mindestens ein BE von etwa 45, einen Maltosegehalt von mindestens
5056 und durch Hefe fermentierbare Anteile von mindestens
8Ο96 besitzt. Dieses Konversionsprodukt kann konzentriert
und raffiniert werden, wenn es gewünscht wird, um einen nicht-kristallisierenden Sirup mit hohem Maltosegehalt
zu erhalten. Dieser öirup kann eingesetzt werden zur
Herstellung von Sirup-Feststoffen mit hohem Maltosegehalt
durch Konzentrieren und Trocknen des Sirups mit hohem Maltosegehalt bis auf Peuxhtigkeitswerfte unter
109886/0335
Die Erfindung umfasst auch Sirup mit hohem Maltosegehalt,
hergestellt durch Konzentrieren von Stärke-Konversionsprodukten mit hohem Maltosegehalt.
Die Erfindung sieht weiter ein festes Stärke-Konversionsprodukt
mit hohem Maltosegehalt in Form der Sirupfeststoffe vor, welche durch Konzentrieren und Trocknen
des Stärke-Konversionsproduktes oder des Sirups mit hohem Maltosegahixalt entstehen.
Maltogene Enzyme sind in der Natur weit verbreitet. !Für diese Enzyme stellen gemälzte Getreide, wie z.B.
Gerste, Hirse und Weizen, gute Rohstoffe dar. Andere Quellen umschliessen Mikroorganismen; so werden z.B.
maltogene Enzyme durch Submers-Kultur-Fermentation der
Stämme von BacillUB polymyxa erhalten·
Das Enzym Pullulanase, auch Dextrin-alpha-1,6-glukosidase
genannt, wird erzeugt während der Submers-Kultur-Fermentation durch Stämme des Bakteriums Aerobacter
aerogenes.
Dae Verfahren der Erfindung soll nun im einzelnen ι beschrieben werden«
Die partiell hydrolysierte Stärke, welche ale Ausgangsmaterial
in der vorliegenden Erfindung benutzt wird, wird durch Hydrolyse mit Säuren oder Enzymen aus irgendeiner
Stärke herkömmlicher ftrt erhalten. Geeignete Stärken sind: Cerealien-Stärken wie Mais, Getreide,
Hirse und Weizen,· wachsige Stärken wie waxy MiIo und waxy Mais, Wurzelstärken wie Kartoffelstärke und
Tapiokastärke. Auoh können roh» Stärken als Eohetoffe
1098Ö6/0335
eingesetzt werden, wie z.B. gemahlene Oerialien, zerriebene Knollen oder die daraus hergestellten
f parjttiell gereinigten Stärken.
Vor der Hydrolyse erfolgt die Verflüssigung der Stärke durch Verkleisterung. Diese wird durchgeführt durch
Erhitzen der Stärke auf eine Semperatur von über 60 C
in G-egenwart von feuchtigkeit « .
- Die Säurehydrolyse der Stärke wird durchgeführt in
üblicher Weise bis zu einer DE nicht über etwa 20, vorzugsweise zwischen etwa 10 und etwa 20.
Die enzymatisch^ Hydrolyse der Stärke wird ausgeführt
durch Einsatz passender verflüssigender Enzyme, wobei ein DE*-Wert erreicht wird, der etwa 20 nicht überschreitet
und vorzugsweise zwischen etwa 5 und etwa liegt»
Der Ausdruck "partiell hydrolysierte Stärke", wie er
im folgenden benutzt wird, bezieht sich auf mit Säure oder Enzym behandelte löslich gemachte Stärke, welche
eine DE von unter etwa 20 aufweist.
Die maltogenen Enzyme, die in der vorliegenden Erfindung
benutzt werden, sind wohlbekannt. Ihre Herstellung ist ebenfalls bekannt·
Das Enzym, welches die Verzweigungen abspaltet,
dem
Pullulanase, und in ίίκββΛ Verfahren der Erfindung
Pullulanase, und in ίίκββΛ Verfahren der Erfindung
^ benutzt wird, wird von Gliedern der Bakterien Species
co Aerobaoter aerogenes durch geeignete Inkubierung bei
σ>
*>" aeroben Kulturbedingungen gebildet. Die Charaktaristika,
ο
£* durch welche sich die Glieder der Species Aerobacter
aerogenes unterscheiden lassen, sind beschrieben
von M.W. Yale, E.S.Breed et al. in "Bergey's Manual
of Determinative Bacteriology", 7.Ausgabe, üeite 341-42,
1957 (Williams and Wilkins Co.Baltimore ), obgleich
es dem Erfahrenen in der Wissenschaft wohlbekannt ist, dass· Mutations-Stämme von Zeit zu Zeit isoliert werden
können, welche nicht vollständig mit der Identifizierungsbeschreibung übereinstimmen.
Das Herstellungsverfahren für das Enzym Pullulanase ist beschrieben von Hans Bender und Kurt Wallenfels in einem
^ Artikel "Spezifischer Abbau durch, ein Bakterienenzym".
Der Artikel erschien in "Biochemische Zeitschrift" 2M»79-95 (1961).
Die Bezugsquelle für die Aerobacter aerogenes Kultur, wie sie in der Erfindung beschrieben wird, war die
"American Type Culture Collection", 12301 Parklawn DriveyiRockville,Maryland. Die Bezeichnung der Kultur
war Enterobacter aerogenes AICO 8724· Eine Methode zur
Gewinnung des Enzyms aus der Kultur verläuft wie folgt:
Ein Nährmedium, enthaltend
0,8Ji Difoo Bacto-Pepton
0,556 Maltose
O,3# Natriumnitrat
0,05# zweibasisches Kaliumphosphat
0,0596 Kaliumchlorid
0,001$ Eisen-II-sulfat-heptahydrat
pH eingestellt auf 7,2
wird in 1000 ml Erlenmeyer Kolben verteilt, sodass in jedem Kolben 200 ml enthalten sind. Die Kolben werden mit
Baumwollwattepfropfen verschlossen und sterilisiert. 109886/0335
Die Impfkultur wird durch aseptische Überführung von Zellen einer reinen Kultur des«Mikroorganismus
Aerobaoter aerogenes ATGC 8724 in einen sterilisierten Kolben mit dem obigen Nährmedium erhalten. Der Kolben
wird dann in einer Schüttelmaschine in einem Kaum mit
konstanter !Temperatur von 29 C bewegte Der Kolben
wird 6 Stunden geschüttelt} danach ist die Kultur in starkem Maße gewa/tansen und ist nun fertig zur Beimpfung
von Kolben mit dem oben näher beschriebenen Medium. Dazu werden 10 ml aseptisch zu jedeaw der Enzym-Produktions
'Ge fass β überführt. Diese Gefässe werden dann in eine
Schüttelmaschine in einem Baum mit konstanter temperatur
von 29'0O gestellt· Sie werden eine zeitlang zwischen
66 end 72 Stunden geschüttelt. Am Schluß der Fermentation
werden die Gefässe aus der Schüttelmaschine herausgenommen»
ihr Inhalt zusammengegossen und die darin enthaltenen Zellen durch Zentrifugieren aus der Kulturflüssigkeit
entfernt. Die überstehende Flüssigkeit wird dann auf einen pH-wert von 6,2 eingestellt und
durch. Hinzufügen von Toluol konserviert. Ein aliquoter Teil der überstehenden Flüssigkeit wird dann auf
Enzymaktivität untersucht. Die Menge an gebildetem Pullulanase Enzym kann von etwa 0,05 bis 0,15 Einheiten
pro Millilijoter schwanken.
Eine konzentrierte Präparation des Pullulanase-Enzym
kann gemäss folgender Verfahrensweise erhalten werden:
1500 ml auf 40O gekühltes Aceton werden in 1 liter co
auf 4 0 gekühlte zellfreie KuItürflüssigkeit, welche ^:
10 g Diatomäen—^rde enthalten, gegebem. Nach völliger '^
Mischung wird die Suspension mittels Vakuum/filtriert, o
tm das unlöslich gemachte Enzym zu gewinnen. Nach
Beendigung der Filtration wird der filterkuchen gewonnen, ausgebreitet und über Nacht bei Raumtemperatur getrocknet.
Wenn der Filterkuchen getrocknet ist, wird er auf Pullulanase-Enzym-Aktivität untersucht. Präparate,"
die nach diesem Verfahren hergestellt wurden, haben eine Aktivität von 3-10 Einheiten pro Gramm, je nachdem,
wie groß die Aktivität der Kulturflüssigkeit und die Wirksamkeit der Isolierung war·
Die Höhe der Pullulanase-Enzym-Aktivität kann wie folgt bestimmt werden:
Ein aliquoter Teil wird auf einen pH-Wert von 5»5 eingestellt
und 1,0 ml einer Substratmischung,bestehendaus 2 ml einer 5# Pullulan-Lösung und 7 ml eines
1/50 m Phosphatpuffers von pH 5,5» zugegeben. Die Reaktion wird in Reagensgläsern durchgeführt, welche
in einem Wasserbad von 40 C stehenj sie dauert 1 Stunde.
Am Schluß der Abbauperiode wird die Reaktion durch Zugabe von Salzsäure gestoppt, wobei der pH-Mert auf 3>0
absinkt, ^er Gehalt der abgebauten Mischung an reduzierenden
Zuckern wird bestimmt, ebenso der der Kulturflüssigkeit und des eingesetzten Pullulans, wobei eine Modifikati«
on der Methode mit alkalischer Kaliumferrοcyanid benutzt
wird, die unten beschrieben wirdj er wird ausgedrückt
als Gamma-Äquivalente von Dextrose. Die Pullulanase-Aktivität
berechnet sich wie folgt:
180 χ 60
dabei bedeutet:
A =» Pullulanase-Enzym-Aktivität in Einheiten pro Millimeter
oder Gramm Enzympräparat
109886/0335
T = Gesamtreduzierende Zucker in der Mischung, in Gamma G = Rest reduzierender Zucker in der Kulturflüssigkeit,
in Gamma
P = Reduktionswert der Pullulan-Polysaccharide in der
P = Reduktionswert der Pullulan-Polysaccharide in der
Mischung, ausgedrückt in Gamma D = Verdünnungsfaktor der Enzym-Präparation
180 = Reduktionswert von 1 Mikromol Dextrose . 60 = Reaktionszeit in Minuten«,
Eine Pullulanase-Einheit ist definiert als diejenige Menge Enzym, welche notwendig ist, um 180 Gamma an
reduzierenden Muckern, ausgedrückt als Dextrose, pro Minute aus Pullulan unter den oben angegebenen Bedingungen
freizusetzen« ^as Polysaccharid Pullulan, welches
ein Polymer aus Maltotriose-Einheiten, die untereinander
durch c^'-1,6—Bindungen verknüpft sind, ist, lässt sich
gewinnen aus Pullularia pullulans ATOC 9348 unter Anwendung der Methode von Ueda, Sj Fujita,K; Komatsu,K und
Nakashima.S Z, die in "Applied Micobiology" JM,211-215
(1963) veröffentlicht wurde· Die modifizierte Methode mit Kaliumferricyanid, die zur Bestimmung der reduzierenden
Zucker verwendet wurde, wird zur Ermittlung der Enzym-Präparationen wie folgt durchgeführt:
Alkalische Kaliumferricyan&dt-Lösung: Löse 1,170 g
-* Kaliumferricyanid und 19»5 g wasserfreies Natriumcarbonat
^ in Wasser und verdünne auf 1 Liter. Bewahre die Lösung
σ) in braunen Flaschen auf.
ο Standard-Dextrose-Lösung 0,1 mg/ml : Wiege 1,000 g reine co
w wasserfreie Dextrose und verdünne auf 100 ml. Unter
cn
Verwendung einer Pipette der Klasse A überführe 10 ml der Lösung in einen 1-Liter-Kolben und fülle bis zur
Marke auf.
Ausführung:
Ausführung:
Standardisierung: Man pipettiere aliquote Mengen ,
nämlich 0,5 , 1»0 , 1,5, 2,0 und 2,5 ml der Standard-Dextroselösung,
die 0,1 m|./ml enthält, in entsprechende 18 cm Reagensgläser. Dann wird wasser zugesetzt, so daß
das Gesamtvolumen in den entsprechenden Heagensgläsern 2,5 ml beträgt. Das Glas für den Reagens-Null-Vvert enthält
2,5 ml v"asser. Jedem Reagensglas werden 5 ml
der alkalischen Kaliumferricyanid-Lösung zugesetzt» Die
Ψ Mischung wird dann genau 5 Minuten in einem siedenden
Wasserbad erhitzt, sofort in einem Leitungswasserbad
gekühlt, auf 12,5 ml mit Wasser verdünnt und gemischt. Unter Verwendung von Wasser als Bezugslösung für Null-Absorption
wird die Absorption des Reagens-Null-Wertes
und die jeder einzelnen der Standard-Lösungen bei 373 my auf einem Beokman DU Spektralphotometer unter Benutzung
von 1 cm Küvetten bestimmt.
Analys e:
Ein aliquoter Teil der Enzym-Präparation wird eingesetzt;
er soll zwischen 1 bis 10 mg reduzierende Zucker aus 10 ml Testlösung freisetzen· Die Probe der Testlösung,
die nach dieser Methode untersucht wird, soll 50 bis 250 Gamma reduzierender Zucker enthalten·
Zur Eichkurve trage man die Absorptionswerte der Standard-Lösungen
gegen Gamm$, Dextroee pro 12,5 ml in einem linearer
Koordinationssystem auf.
109886/0335
Konversion von partiell hydrolysierter Stärke In der gewerblichen Produktion von üirupen mit hohem
Maltosegehalt wird die Konversion im allgemeinen bei relativ hohen Trockensubstanz-Gehalten ausgeführt,
meistens innerhalb eines Bereiches von 15 bis etwa 4096, um die Anforderungen an Tankgrössen und Verdampfe**·
kosten zu reduzieren, sowie bei relativ hohen !Temperaturen, wie zum Beispiel ungefähr 500O bis 60 C, um mikrobiellen
Verderb der Konversionssäfte zu verzögern oder zu verhindern. Viele Enzyme werden durch hohe Substratkonzentrationen
und bei hohen Temperaturen, wie zum Beispiel den oben genannten, gehemmt· Um so überraschender ist
es jedoch, dass Pullulanase, die in Übereinstimmung mit dem oben ausgeführten hergestellt wurde, durchaus
geeignet ist zum Einsatz unter Bedingungen, wie sie zur erfolgreichen und wirtschaftlichen industriellen Herstellung
von Stärke-Konversionsprodukten mit hohem Maltosegehalt erforderlich sind.
Das bevorzugte Verfahren zur kombinierten Anwendung eines maltogenen Enzyms und Pullulanase schließt die
Herstellung innerhalb der Substrat-Bedingungen und der Konversions-Temperaturbereiche, wie oben erwähnt, ein,
obwohl die Enzyme zur Konversion bei höheren oder niederen Substrat-Konzentrationen irgendwo zwischen den
Temperaturgrenzen von etwa 30 0 bis 70 0 eingesetzt werden können, falls das wünschenswert ist. Die Konversionen
können innerhalb eines pH-Bereiches von etwa 4,5 bis 8,0 durchgeführt werden, wobei der bevorzugte Bereich
zwischen 5»0 und 6,5 liegt. Die zur Erzielung eines Stärke-Konversionsproduktes mit hohem Maltosegehalt
109886/0335
erforderliche Konversionszeit hängt ab von der angewendeten Enzym-Dosierung und dem gewünschten Konversionsgrad
Stärke-Konversionsprodukte mit wünschenswert hohem
Maltosegehalt können "bequem mit vernünftigen Enzymdosierungen bei 24 bis 48 Stunden Konversionszeit
erhalten werden.
Die Konversion der partiell hydrolysierten Stärke kann durch gleichzeitigen Einsatz von maltogenem Enzym
und Pullulanase herbeigeführt werden} es kann aber auch die Pullulanase vor oder nach dem Einsatz des
maltogenen Enzyms eingesetzt werden. Wie in den folgenden
Beispielen gezeigt werden wird, ist da» bevorzugte Verfahren die gleichzeitige Anwendung von maltogenem
Enzym und Pullulanase.
Die Stärke-Konversionsprodukte können konzentriert und/oder raffiniert werden, um Sirupe mit hohem Maltosegehalt
zu liefern· Diese Sirupe sind im wesentlichen nicht-kristallisierend und besitzen nicht-hygroskopische
Eigenschaften. 2ur Herstellung dieser Sirupe werden die Stärke-Konversionsprodukte zu einem ^eststoffgehalt
von mehr als 50$ konzentriert. Die Produkte können
mittel konventioneller Methoden, wie Kohle-Raffination, Ionenaustauscher-Behandlung und dergleichen raffiniert
werden und ergeben Sirupe, welche im wesentlichen nicht kristallisieren und Maltosegehalte zwischen etwa
50 und etwa 90$, bezogen auf Trockensubstanz, haben.
In den folgenden Ausführungsbeispielen, die die -1^fIndung
erläutern, sind alle Prozentangaben auf Gewicht und Trockensubstanz bezogen; alle Temperaturen sind in
Oelsiusgraden angegeben,
109886/0335
109886/0335
gehalt
Dieses Beispiel erläutert den gleichzeitigen Einsatz von einem maltogenem Enzym und Pullulanase zur Herstellung
von Stärke-Konversionsprodukten mit hohem Maltosegehalt aus partiell mittels Enzymen hydrolysierter Stärkee Dies
Beispiel erläutert auch verschiedene Dosierungen von Pullulanase und Malz Diastase in Kombination zur Erzielung
von Konversionsprodukten mit hohem Gehalt an Maltose und Fermentierbarem«
Eine 30 Gew<>$ Suspension von Mäis-Stärke wurde enzymatisch
bei 910O und pH 5,5 verflüssigt, wobei HOMQOO
(ein Bakterien-alpha-Amylase-Präparat, hergestellt und
verkauft von Miles Chemical Co·) mit einer Dosierung von 0,05 #, bezogen auf Trockensubstanz, eingesetzt wurde*
Die verflüssigende Wirkung des Enzyms wurde durch 5-minutiges
Erhitzen der verflüssigten Stärke auf 1210G
gestoppt, nachdem die partiell hydrolysierte Stärke einen DE-Wert zwischen 2 und 5 erreicht hat«, Die partiell hydrolysierte
Stärke wurde auf 550G abgekühlt und der pH-Wert
auf 5,8 korrigiert. Die partiell hydrolysierte Stärke wurde dann mit den entsprechenden Dosierungen von maltogenem
Enzym und Pullulanase versehen, wie in Tabelle I gezeigt wird« Tabelle I demonstriert auch die erzielten
DE-Werte sowie die Kohlenhydrat-Zusammensetzungen sowohl nach 24 als auch nach 4β Stunden Konverslonazeit·
- 16 ~
109 8 8 6/0335
•H
RS13
■Ρ ·
* 8
O CQ
O 09
u ca H
-ρ «α
ir-
5g
S3
JtHOH VO ΟΛΟ (Π h-ΐΛΓ^νθ Jt H 0\*t
1»->-^-00 TOOO ChCA 00Ö\O\O>
N. ΙΛΓΟΟΟΛ H
f*l< HHH . H
! COOSfOO IS-VOVOCVI
OVs*
■ι
09
HHcJcvi (ncrW*r nOOA AOAO
iHHHH HHHH HHHH HHHH
ΟΙΛ0ΜΛ
ΙΛ0Ο
OiHdOVO OOHfT) HCVJCJCO
VOVOVÖVO t-h-t-h- KhNt
VOb-OlVO
ooJtncvi
oojhh
moQo mooo
AOQQ moQo ooo ma<
\CyirtO.O W CfSO Ο CVIIAOO CV)IAi
, . HCVJ Η« HCVl . .f
0000 RRRÄ 8888 888:
original inspected 109868/0336
B« ja; ~q
3>*
O I ·
Kh O · W
<-> -P OH
tt
η χ«
: IS-
I CQ
If4*
» · Q H <rf O
H ·*-
•β
CQ
incvjvoo
istco
σ\%θΛ
ir\co-=f ο
η o\o coo\
VOOVOOO CF\f-VOVO
CU CUHH
ο α\ονοοο
LAVOj* PO LAVO IAOO
HH. HHHH HHHH HHHH
ΟΟΟΙΛ
Ht t— H CUIfMTtLTV ITtVO t*-t— VOVO tl·
VOVOVÖN-Ϊ N-l>-l-t~ t-f-b-b- t—t—t—t»-
HPO-SfPO
IAOtCOtA CU IA-St t—
HHCUPO HHCVJPO
Ηθ\ IACOt«-CU OVpOCIt«- C0j*POCy\
POt-HH HCU^tVD CU J* J* LA CUCUJ*-*
IAlA LALAlAlA IAlA1IAlA IAIAIAIA
IAO O Q
OJiAOO
HCU
IAO O
CUlAOO
HCU
IAO Q
CULAOO
HCU
IAOOO
CULAOO
HCU
O O OO
8888
ft
CUCUCUCU
to
•Η
•rf
4>
4» δ
«s
• ·
«
Si
Tabelle II unten ist eine andere Anordnung eines Teiles
der Werte aus der vorangegangenen Tabelle, um zu demonstrieren, daß verminderte Anforderungen oder Mengen an
maltogenem Enzym erforderlich sind, um eine vorgegebene
DE zu erreichen, sofern Pullulanase zusätzlich zum Malz Enzym im Laufe der Herstellung Konversionsprodukte mit
hohem Gehalt an Maltose und Fermentierbarem eingesetzt
wird·
Vergleich der DE-Werte | Malz Diastase | von Konversionssäften | 24 Stunden | 48 Stunden |
Pullulanase | Bosierung | DB | 42,3 | 43,5 |
Dosierung | (E/100 TS) | 45,5 | 47,6 | |
(E/100 TS) | 25 | 47,3 | 51,1 | |
0 | fO | 49,4 | 51,9 | |
0 | 100 | 42,3 | 43,5 | |
0 | 200 | 48,6 | 51,5 | |
0 | 25 | 49,7 | 52,9 | |
0 | 25 | 50,5 | 52,8 | |
50 | 25 | |||
100 | 25 | |||
200 |
Tabelle III zeigt dieZueaamensetzung von representation
Hydrolysat-Säften und demonstriert, daß verhinderte Dosierungen yon maltogenem Enzym Sirupe mit höherem Gehalt
an Maltose und Patentierbarem ergeben, als wenn höhere
° Dosierungen an maltogene« Emya allein eingesetzt wurden,
^ vorausgesetzt, daß das »altogene Enzym in Kombination mit
^. Pullulanase angewandt wurde· Die Ergebnisse zeigen auoh,
**> daß bei gegebenem DB-Wert durch die kombinierte Anwendung .
*" von Pullulanase und «altogenem Enzym höhere Maltosegehalte
erreicht werden, als durch den Einsatz von maltogenem Enzym
ORIGINAL
TABELLE III
Zusammensetzung der Hydrolysat-Säfte
Pullulan**·
Dosierung E/100 g TS |
Malz Diastase
Dosierung E/100 g TS |
D E | 5 3 4 |
Dextrose
% TS |
Maltose
% TS |
64.5" 67.0 71.1 |
Malto-
triose % TS |
DPl und
hoher % TS |
Fermentier
bares % TS |
1
7 5 |
Zk Stunden | 72 !θ 75.4 76.0 |
|||||||
OOO |
50
100 200 |
45. 49. |
2.7 3.2 3.6 |
61.5 63.5 66.5 |
11.9
12.3 12.0 |
23.9 21.0 . 17.9 |
76.1 79.0 82.I |
||
0
50 100 200 |
25 25 25 25 |
42. 48. 49. 50. |
6 1 9 |
0.6 0.9 1.7 0.5 |
60.0 . 70.0 . 71.5 74.0 |
11.8 13.7 15.5 15.9 |
27.6 15.4 11.3 9.6 |
72.4 64.6 88.7 90.4 |
|
5
5 § |
48 Stund·* | ||||||||
ooo |
50
' 100 200 |
47. 51. 51. |
"3.3 4.0 3.8 |
11.6 12.5 11.7 |
20.6 ' 16.5 13.5 |
79.4 | |||
oooo IAOO HCU |
25 25 25 25 |
43. . 51. 52. • 52. |
1.9 4.1 1.5 1.2 |
9.8 14.4 15.9 |
26.7 9.5 7.2 6.9 |
73*3 90.5 92.8 93.1 |
|||
Herstellung yon, Konversionsprodukten mil; hohem Maltosegehall; aus partiell mit Enzymen hydrolvsierter waohaiger
MiIo-Stärke»
Dieses Beispiel demonstriert den verstärkenden Effekt der Pullulanase beim Einsatz mit Malz-Diastase zusammen
bei der Konversion von wachsigen Stärken zu Konversioneprodukten mit hohem Gehalt an Maltose und fermentierbare»*
Wachsige MiIo-Stärke wurde enzymatisch auf 5 DE verflüssigt,
wie im Beispiel 1 dargelegt wurde, auf 5O0O gekühlt auf pH 5,7 eingestellt und mit Pullulanase und Malz-Diastase-Enzymen
gleichzeitig versetzt, wie in Tabelle IV gezeigt wird· In Tabelle I? werden auch die Analysen der
Konversionssäfte nach 46 und 70 Stunden Konversionszeit dargelegt·
109Ö86/033S
«
•et
•et
cn οι
ChOV
4»
03
1 ·
•rf
δ I
β O (Q
O +> H
«ο
« -3
PQ H
4»
« ■
WtI _
H · τ-
ί to
^8
νο
j*-
cnovcn
GQ VO VO r-lr4.
OVOOV
ΙΛΟ IA. IAO if
cncn ο coir
lt^ VOtC
IA
oicnH
ooo
OJCVJOi
OIO1V0 oi
^tHlCX H
COH CVJ
t-lAO
cn HOlH
mvoOY t—.sf
cot^oo
r*r4
mm
■°88--°88
HOl HOJ
cncn ^- HOiH
ooo
Ol Ol Ol
ο mvo
O Ol OO
mt--o oo
lAvo O OJ^t O
cncn
mm
O OO
°88 °88
H OJ H OJ
109886/0335
cc
Wie im Beispiel 1 gezeigt»ist der verstärkende Effekt,
ausgelöst durch Pullulanaae bei kombiniertem Einsatz mit maltogenen Enzymen, nieder augenscheinlich«
Herstellung von Konversionsprodukten mit hohem Maltoseffehalt aus Maisstärke und maltogenen Enzymen aus anderen
Quellen als Malz
Dies Beispiel verdeutlicht den verstärkenden Effekt von
Pullulanase bei der Herstellung von Eonversionsprodukten mit hohem Gehalt an Maltose und Fermentierbarem durch
gleichzeitige Anwendung von Pullulanase und maltogenen Enzymen, und zwar anderen als jenen, die aus Malz gewonnen
we'rden, zum Beispiel aus Bacillus polymyxa·
Ein Beispiel eines geeigneten maltogenen Enzyms hi ist
das mikrobielle Enzym, welches vom Bakterium Bacillus polyayxa gebildet wird· Es kann von B·polymyxa AICÖ 8523
gewonnen werden; die Aktivität des gewonnenen Enzympräparats wird gemäß folgender Vorschrift ermittelt·
Das Enzym-Präparat, welches als Bacillus polymyxa-Amylase
identifiziert ist, wird durch Wachsenlassen von Bacillus polymyxa auf geeignetem Substrat in Submers-Kultur, ruhenden
Kulturen oder Oberflächenkulturen bei Temperaturen zwischen 20 und 400O während 24 bis 144 Stunden gewonnen·
Ein befriedigendes Medium enthält passende Mengen organischer oder anorganischer Stickstoffquellen, wie ζ·Β·
Maisquellwasser, Hefe-Extrakt, Trocken-Hefe, Rind-Extrakt,
Pepton, Baumwoll- oder Sojabohnen-Mehl sowie anorganische
Ammonium-Salze. Ale Kohlenstoff-Quelle eignen sich Stärke,
1Q98S6/0335
BAD ORIGINAfoi'.rrrvj; r. \<i
modifizierte Stärke, Stärkehydrolysate und ähnliches j
ferner anorganische Salze*
Eine Herstellungsmethode für das Enzym wird im folgenden,
beschrieben«
Aus einer Platten-Kultur von B«polymyxa AU)OC 8523 wurden
Zellen in einen 500 ml Erlenmeyer-Kolben tiberimpft, der
ein steriles lährmedium aus 4,0 g gemahlenem Gelbmais, 0,4 g Hefe-Extrakt, 0,5 g Calciumoarbonat und auf 100 ml
aufgefülltes destilliertes Wasser enthält. Der beimpfte
Kolben wird 48 Stunden bei 32GC in einem rotierenden
Schüttelaggregat bebrütet. Eine 10 ml Portion der Kultur aus diesem Kolben wurde aseptisch in einen 1000 ml Erlennfyer-Kolben
überführt, der das sterile Produktionsmedium enthält, das wie folgt zusammengesetzt ist« 6,0 g Pepton,
1,0 g Hefe-Extrakt, 1,0 g Rind-Extrakt, 16 g Kartoffelstärke,
0,2 g Dikaliumphosphat und auf 200 ml aufgefülltes destilliertes Wasser. Der pH-Wert wurde auf 7»2 eingestellt.
Die Produktionskolben wurden auf einer rotierenden Schüttelmaschine bei 320G inkubiert, während das Enzym
gebildet und in das Kulturmedium abgegeben wurde. Der Inhalt der Kolben wurde nach 7-tagiger Fermentation filtriert
und das maltogene Enzym, welches in einer Menge vorhanden ist, die 0,2 Einheiten pro Milliliter äquivalent
ist, wie unten beschrieben, als Piltrat gewonnen· Dieses Enzym wurde in der Form des Filtrates zur Konversion
von Stärkehydrolysaten in Produkte mit hohem Maltosegehalt eingesetzt*
Die Menge der in B.polymyxa Fermentations-iösung vorhandenen
Enzym-Aktivität oder Enzym-Konzentration wurde
Das Substrat für das Enzym bestand aus einer 10bigen
wässrigen Lösung von sprühgetrocknetem Säurehydrolysat aus
Mais-Stärke mit 43 DE. Genau 50 ml der lösung wurden in
einen 100 ml Meßkolben pipettiert. Dem Kolben wurden 5,0 ml eines 1,0 molaren Phosphat-Puffers von pH 6,5
zugesatsto Dar Kolben wurde in ein Wasserbad von 400C
gestellte Nach 10 Minuten wurde eine Enzym-Menge zugesetzt, welche 0,2 bis 0,4 Aktivitätseinheiten enthielt,
wie nachstehend beschrieben» Genau 60 Minuten nach der Enzym-Zugabe wurde die Reaktion durch Einstellen der
Lösung auf den Umsch^lgspunkt von Phenolphtalein mittels
1 molarer Natriumhydroxyd-Lösung gestoppt« Die Lösung
wurde dann auf Zimmertemperatur gekühlt und auf Volumen aufgefüllt. Der Wert für reduzierende Zucker, berechnet
als Dextrose, wurde in der verdünnten Lösung bestimmt j ein Kontrollversuch ohne Enzym wurde hinzugefügt· Die
Aktivität an maltogenem Enzym wurde wie folgt berechnet!
S-B
E
E
A = Maltogene Enzym-Aktivität in Einheiten pro ml
Enzym-Präparat
S = Reduzierende Zucker im enzym-konvertierten Muster in g/100 ml
S = Reduzierende Zucker im enzym-konvertierten Muster in g/100 ml
B « Reduzierende Zuoker im Kontrollversuch in g/100 ml E β Menge des eingesetzten Enzympräparates in ml.
Die Bacillus polymyxa Amylase, die gemäß obiger Vorschrift hergestellt wurde, wurde zur Konversion einer Maisstärke-Dispersion
in Wasser mit 30 i» Trockensubstanz eingesetzt,
naohdem diese partiell^M^tel-s Enzym gemäß Vorschrift in
109886/033S.
~ 25 -
Beispiel 1 hydrolysiert worden war. Die Konversionen wurden bei 6O0O bei einem pH von 6,2 durchgeführt, wobei
Enzymmengen verwendet wurden, wie sie in Tabelle 5 beschrieben werdeno
Genau wie mit den maltogenen Enzymen pflanzlichen Ursprungs
wurden mittels Kombination von Pullulanase und mikrobiellem maltogenem Enzym höhere Gehalt an Maltose
und fermentierbarem erhalten als mit dem mikrobiellen
maltogenen Enzym allein,. Genau/ so sind, bei vorgegebener
DE, höhere Maltosegehalte erreichbar duroh Kombination von Pullulanase und maltogenem Enzym als mit maltogenem
Enzym allein. Der Betrag an maltogenem Enzym," der notwendig ist, um einen vorgegebenen DE-Wert zu erreichen,
wird wesentlich reduziert, wenn das maltogene Enzym
in Kombination mit Pullulanase angewendet wird·
BAD ORIGINAL
LI
ν 4
COVO H H
t—E-- 00 OS
σ\Ν cScn.
4 H VO4
coo NGO HOO
co cn
vo cn
coo*
coo*
POOO COVO
t-o
COCTV
oco vom H.CO
4VQ CTNCVI
cucu
coco
moo vo cn
H CU H
con.ocvi con
Oh
H H
-3-VO
HH
HH
-3- CO HH
co cn cnvo moo
cn.=*· Nm
η cn
WH.
ι cn oovo
HH
-if CO
HH
HH
voco
co* vo
co* vo
vo co
cu cn
-=fcn
Hvo
cm co μ cnvo 4 cn
OCO
OH
O4
cuvo
ho
vo cn
VOVO
cn cn om
co m 4O*»
OVO | O | 4 | NVO | OVO | nm | 4cn | cnvo | coco | cnco |
OH | O | O | OH | OCO | Nh | cucu | com | 4m | CU4 |
in Cu | VO | CU | 4O | OO | mm | moo | cn <M | con | IAN |
COVO | vo 4 |
CU m |
coco 4-in |
VOO | nm mm |
O CVi mm |
cuvo mm |
mm | |
4CU 4 CU 4CU 4 CU 4CVI 4 (M 4 CU 4 CVI 4 CU
CUN CUN CUN WN CUN CVIN CUN CUN CUN
CUCU CU CU
rit-i · rit-i
cucu mm mm mm ο ο oo ο ο Hri cucu cucu cucu mm mm mm
OO
OO
mm
OO
oo
H H
oo
mm oo
OQ
oo
oo
mm
mm
oo ο ο
H H
ft
Pullulanaae | B.polymyxa | TABELLE | V | DE | (Fortsetzung) | Maltose | ^altotriose | DP .und | irmentierbare | |
Dosierung | Rnzym-Dosia | Hydrolysendauer | 52.6 54.7 |
fo T.S. | Höhere ll< | % T.S. | ||||
E/iOOg T.S. | E/iOog T.S. | 55.2 58.3 |
Dextrose | 69.1 73.3 |
4.2 0.8 |
% T.S, | 79.6 80.9 |
|||
o · O |
100 100 |
Stunden | 55.7 " 58.5 |
ψΐ. S. | 75.9 76.7 |
8.7 5.6 |
20.4 19.1 |
90.4 91.4 |
||
50 50 |
100 , 100 ' |
24 72 |
6.3 6.8 |
75.2 79.4· |
9.3 4.9 |
9.6 8.6 " |
92.1 91.5 |
|||
• 100 100 |
• 100 100 |
24 72 |
5.8 9.1 |
|||||||
Ö | 24 72 |
7.6 7.2 |
||||||||
40k | ||||||||||
Eine 30-Grewichtsprozent-lösung eines Maisstärke-Säure-Hydrolysates
von 16 DE, das auf konventionellem Wege m',Hil%
Säurehydrolyse hergestellt wurde, wurde bei 550O und pH 6,0 72 Stunden mit dem Betrag an Pullulanase und MaIz-Enfcymen
konvertiert, der in der folgenden Tabelle angegeben wird· Die Ergebnisse der Konversion werden ebenfalls
dargelegt«
Pullulanase Dosis (E/100 g TS) |
Mals Dosis (E/100 g |
Konversionsergebnisse DE Maltosegehalt TS> * TS |
4,1 | hohem Maltosegehalt |
keine | keine | 16,1 | 56,6 | |
keine | 25 | 45,7 | 55,8 | |
keine | 50 | 47,4 | 61,5 | |
50 | 25 | 49,6 | 64,0 | |
50 | 50 | 52,0 | 67,3 | |
100 | 25 | 51,0 | 66,6 | |
100 | 50 | 52,4 | ||
Beispiel 5 | Anwendung von | |||
Aufeinander folgende und | gleichzeitige | Pullulanase und maltogenem Enzym zur Herstellung von | ||
Konversionsprodukten mit |
Während es vom Standpunkt der Wirksamkeit und der Bequemlichkeit höchst wünschenswert ist, maltogene Enzyme
und Pullulanase gleichzeitig zuzusetzen, um die partiell hydrolysierte Stärke zu Produkten mit hohem Maltosegehalt
zu konvertieren, wird der günstige Effekt der Pullulanase sogar erhalten, wenn dies Enzym vor der Zugabe des
maltogenen Enzyms eingesetzt wird. Dies wird in diesem Beispiel erläutert· 109886/0335
Bine 30 $ige Suspension von weißer Milo-Stärke wurde
mittels Enzym verflüssigt, gemäß Yorsoiarift, wie in
Beispiel 2 erläuterte Sie wurde bei 55°0 bei einem pH von 6,0 unter Verwendung von Pullulanase und Malz—
Enzym-Dosierungen, die unten in labelle YII aufgeführt
werden, konvertiert*
103886/033$
TABELLE VII
Wirkumg von Pu^lulaaas· zusajuaen mit Konrereiona-Säftea zu verschiedenen Zeiten
Zeit
iaagesaat
Pullula&ase
Doaieruag 1/100 g TS
Malz-Dosierung E/100 g TS
DE
Konveraioa
%
TS
DPi,. und
DP-, DP- DP7 höher
Fementierbarea % TS
24 Stunden τογ 1O° 2^
,3 Mit Mal* «tisa». 100
24 Stunden nach- 1PO
(Kontrolle)
a) Gesamtbetrag an DP.,DP„ und DP,
50.2
53.2 41.1
35.5
•2.,8 72.1 17.0
5.1 67.2 14.0 13.7
8.1
54.8 14.2 29.4
2.0 50.4 9.5 38.1
86.3
91.9 70.6
61.9
Wie man sieht, bewirkt die gleichzeitige Zugabe der zwei Enzyme die wirksamste Hydrolyse, jedoch ist der
steigernde Effekt durch die Pullulanase sichthar, wenn
das Enzym vor, gleichzeitig mit oder nach den maltogenen
Enzymen zugesetzt wird«
Die Torteile der Erfindung, welche aus der obigen Be-*
Schreibung und den Beispielen sichtbar werden, beinhalten»
1e Herstellung von Konversionsprodukten.mi* höheren
Gehalten an Maltose und Fermentierbarem durch gleichzeitige Anwendung von Pullulanase mit einem maltogenen Enzym zur Konversion einer partiell hydrolysierten
Stärke·
2ο Eine wirksamere Hydrolyse, welche einen Rückgang in
der Menge nicht-konvertierter Stärke zur Folge hat,
durch Anwendung von Pullulanase Enzym in Verbindung mit maltogenem Enzym zur Gewinnung von Stärkekonversionsprodukten mit hohem Maltosegehalt aus partiell^
hydrolysierter Stärke«
3ο Die erforderliche Menge an maltogenem Enzym wird beträchtlich
verringert, wenn es gleichzeitig mit Pullulanase angewendet wird zur Erzielung einer vorgegebenen
DE bei Konversion einer partiell hydrolysierten Stärke·
4· Wegen der wirksameren Konversion der Stärke zu Produkten mit hohem Maltosegehalt und hohem Gehalt an
Fermentierbarem besitzen die resultierenden Konversionssäfte geringere Schwankungen und sind daher
besser brauchbar als Basis-Komponenten, mit welchen
Dextrose zu eßbaren Mischsirupen verschnitten werden
kann«
109888/033S
Obwohl die Erfindung im Zusammenhang mit "bestimmten
ihr innewohnenden Bestandteilen "beschrieben wurde, wird unterstellt, daß sie weiteren Modifikationen zugänglich
iste Daher hat diese Anmeldung den Sinn, jedwede Variationen, Anwendungen oder Anpassungen der Erfindung zu
umfassen, sofern sie den generellen Prinzipien der Erfindung entsprechen, die hier vorgebracht werden, ein**
schließlich solcher Abweichungen von der vorliegenden Offenbarung, die zur bekannten oder gewohnten Praxis des
Gebietes gehören, auf welohe sich die vorliegende Erfindung bezieht, einschließlich von Anwendungen wesentlicher
Oharakteristika, die bereits oben beschrieben wurden, soweit sie in den Bereich dieser Erfindung und innerhalb
der Grenzen der angehängten Schutzansprüche fallen*
109886/0335
Claims (5)
- - 33 Pat entansprüohe1β Verfahren zur Herstellung von Produkten mit hohem Maltosegehalt, dadurch gekennzeichne t, daß man partiell hydrolysierte Stärke mit einer DE nicht über 20 der Konversion mit einem maltogenen Enzym-Präparat und einem Pullulanase-Enzym-Präparat unterwirft, s'odaß man ein Konversionsprodukt mit einer DE von mindestens 45 und einem Maltosegehalt von mindestens 50 $ sowie einen Gehalt von durch Hefe Ferment!erbarem von mindestens 80 # erhält*
- 2. Verfahren naoh Anspruch 1,dadurch ge-, kennzeichnet, daß die partiell hydrolysierte Stärke eine mit Säure hydrolysierte Stärke ist*
- 3« Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß die mit Säure hydrolysierte Stärke einen DE-Bereich von etwa 10 bis etwa 20 hate
- 4. Verfahren nach Anspruch 1,dadurch g e kennzeiohnet, daß die partiell hydrolysierte Stärke eine mittels Enzym hydrolysierte Stärke ist»
- 5. Verfahren nach Anspruch 4,dadurch gekennzeichnet, daß die partiell hydrolysierte Stärke eine DE zwischen etwa 2 und etwa 20 besitzt*6· Verfahren nach den vorhergehenden Ansprüchen, d a duroh gekennzeichnet, daß die partiell hydrolysierte Stärke einen !Feststoffgehalt von etwa 15 bis etwa 40 $ hat*109886/.03367« Verfahren nach den vorhergehenden Ansprüchen, dadurch gekennzeichnet, daß die Konversion mit dem Enzym bei einer Temperatur im Bereich von etwa 5O0C bis etwa 6O0O ausgeführt wird«8« Verfahren nach den vorhergehenden Ansprüchen, dadurch gekennzeichnet, daß das Konversionsprodukt zwischen etwa 50 ?£ und etwa 90 $> Maltose enthält, bezogen auf Trockensubstanz*9· Verfahren nach den vorhergehenden Ansprüchen, dadurch gekennzeichnet, daß die Pullu-und das maltogeneEnzym dem Konvereions-Reaktionsgemisch gleichzeitig zugesetzt werden«10» Verfahren nach den Ansprüchen 1-8,dadurch gekennzeichnet, daß die Pullulanyse dem
Konversions-Reaktionsgemisch vor dem Zusatz des maltogenen Enzyms zugesetzt wird·11· Verfahren nach den Ansprüchen 1-8,dadurch gekennzeichnet» daß das maltogene Enzym
vor der Pullulai&e dem Konversions-Reaktionsgemisch zugesetzt wird»12« Verfahren nach den vorhergehenden Ansprüchen, d a ~ durch gekennzeichnet, daß das maltogene Enzym Bacillus polymyxa Amyläse ist«13« Verfahren nach den Ansprüchen 1-11,dadur α gekennzeichnet, daß das maltogene Enzyn
Malz-Diastase ist«109886/0335*- 35 **14· Verfahren nach Anspruch 1 zur Herstellung von Sirup mit hohem Maltosegehalt, dadurch gekennzeichnet, daß ein gemäß den Ansprüchen 1-13 hergestelltes Konversionsprodukt mit hohem Maltosegehalt so weit konzentriert wird, daß der Sirup einen Feststoff~ gehalt von über 50 $> hat, in welchem die Maltose mindestens ufer 50 # an Gewicht der ϊϋίΐΜΜ&ϊΧΑ3δϊ ausmacht, bezogen auf Iroekensubstanz«15· Verfahren nach Anspruch 1 zur Herstellung eines festen Stärke-Konversionsproduktes mit hohem Maltosegehalt, dadurclagekennzeiohnet , daß ein Konversionsprodukt mit hohem Maltogegehalt, das nach den Verfahren von irgendeinem der Ansprüche 1 - °13 hergestellt wurde, oder ein Sirup mit hohem Maltosegehalt, der nach dem Verfahren nach Anspruch 14 hergestellt wurde, zur Trockne eingedampft wird und ein festes Produkt ergibt*16« Ein Konversionsprodukt mit hohem Maltosegehalt, sofern es nach Verfahren der Ansprüche 1-13 hergestellt wurde«17· Ein Sirup mit hohem Maltosegehalt, sofern er nach dem Verfahren des Anspruchs 14 hergestellt wurde«18· Ein festes Stärke-Konversionsprodukt mit hohem Maltosegehalt, sofern es nach dem Verfahren des Anspruchs hergestellt wurde»109886/0335
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US60455966A | 1966-12-27 | 1966-12-27 |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE1567331A1 true DE1567331A1 (de) | 1972-02-03 |
DE1567331B2 DE1567331B2 (de) | 1978-07-27 |
DE1567331C3 DE1567331C3 (de) | 1979-03-29 |
Family
ID=24420095
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE1567331A Expired DE1567331C3 (de) | 1966-12-27 | 1967-12-27 | Verfahren zur Herstellung von Produkten mit hohem Maltosegehalt |
Country Status (9)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US3565765A (de) |
BE (1) | BE708404A (de) |
BR (1) | BR6795746D0 (de) |
DE (1) | DE1567331C3 (de) |
ES (1) | ES348590A1 (de) |
FR (1) | FR1553166A (de) |
GB (1) | GB1144950A (de) |
IT (1) | IT1043771B (de) |
NL (1) | NL6717560A (de) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE2625283A1 (de) * | 1975-06-06 | 1976-12-09 | Inst Nationale De La Rech Agro | Bienenfutter |
Families Citing this family (27)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3708396A (en) * | 1968-01-23 | 1973-01-02 | Hayashibara Co | Process for producing maltitol |
US4016038A (en) * | 1968-04-01 | 1977-04-05 | Hayashibara Company | Process for preparing maltoses from starches |
JPS5235745B1 (de) * | 1968-07-08 | 1977-09-10 | ||
FR2027545A1 (de) * | 1968-11-22 | 1970-10-02 | Hayashibara Co | |
JPS529739B1 (de) * | 1969-04-09 | 1977-03-18 | ||
US3791865A (en) * | 1969-05-12 | 1974-02-12 | Staley Mfg Co A E | High maltose syrups |
US3956519A (en) * | 1973-12-13 | 1976-05-11 | Thomas J. Lipton, Inc. | Process for aggregating protein |
AU520395B2 (en) * | 1978-01-12 | 1982-01-28 | Cpc International Inc. | Obtaining crystals of maltose froma starch hydrolyzate |
JPS57174089A (en) * | 1981-04-20 | 1982-10-26 | Novo Industri As | Chain dividing enzyme product |
JPS5823799A (ja) * | 1981-08-03 | 1983-02-12 | 株式会社林原生物化学研究所 | 高純度マルト−スの製造方法 |
US4487198A (en) * | 1982-07-28 | 1984-12-11 | Kabushiki Kaisha Hayashibara Seibutsu Kagaku Kenkyujo | Process for producing a high-purity maltose |
US4734364A (en) * | 1983-05-20 | 1988-03-29 | Miller Brewing Company | Production of dextrose and maltose syrups using an enzyme derived from rice |
US4671967A (en) * | 1984-05-18 | 1987-06-09 | Wm. Wrigley Jr. Company | Carbohydrate syrups and methods of preparation |
US4671961A (en) * | 1984-05-18 | 1987-06-09 | Wm. Wrigley Jr. Company | Chewing gum compositions and methods of preparation |
JPS6158540A (ja) * | 1984-08-29 | 1986-03-25 | Ajinomoto Co Inc | 低カロリ−キヤンデイ− |
US4628028A (en) * | 1985-05-23 | 1986-12-09 | Cpc International Inc. | Novel thermostable pullulanase enzyme and method for its production |
GB8609288D0 (en) * | 1986-04-16 | 1986-05-21 | Ici Plc | Debranching enzyme |
US5194284A (en) * | 1988-10-14 | 1993-03-16 | National Starch And Chemical Investment Holding Corporation | Foods opacified with debranched starch |
US5089171A (en) * | 1988-10-14 | 1992-02-18 | National Starch And Chemical Investment Holding Corporation | Partially debranched starch clouds |
US5711986A (en) * | 1988-10-14 | 1998-01-27 | National Starch And Chemical Investment Holding Corporation | Method of replacing fats with short chain amylose |
US4971723A (en) * | 1988-10-14 | 1990-11-20 | National Starch And Chemical Investment Holding Corporation | Partially debranched starches and enzymatic process for preparing the starches |
US4937091A (en) * | 1988-10-14 | 1990-06-26 | National Starch And Chemical Investment Holding Corporation | Imitation cheeses containing enzymatically debranched starches in lieu of caseinates |
US4886678A (en) * | 1988-11-04 | 1989-12-12 | National Starch And Chemical Corporation | Method for manufacture of jelly gum confections |
JPH05236959A (ja) * | 1992-02-28 | 1993-09-17 | Yoshiyuki Takasaki | プルラナーゼ、その製造法及び該酵素を用いる澱粉の 糖化法 |
US5356808A (en) * | 1993-04-02 | 1994-10-18 | A.E. Staley Manufacturing Company | Highly fermentable, high maltose, non-crystallizing starch conversion syrup |
US6511694B2 (en) | 2001-04-06 | 2003-01-28 | The Pillsbury Company | Stable soft frozen desserts |
CN110982861A (zh) * | 2019-12-24 | 2020-04-10 | 山东省鲁洲食品集团有限公司 | 一种提高结晶葡萄糖糖化液过滤速度的方法 |
-
1966
- 1966-12-27 US US604559A patent/US3565765A/en not_active Expired - Lifetime
-
1967
- 1967-12-21 BR BR195746/67A patent/BR6795746D0/pt unknown
- 1967-12-22 NL NL6717560A patent/NL6717560A/xx unknown
- 1967-12-22 IT IT24277/67A patent/IT1043771B/it active
- 1967-12-22 BE BE708404D patent/BE708404A/xx not_active IP Right Cessation
- 1967-12-22 GB GB58544/67A patent/GB1144950A/en not_active Expired
- 1967-12-23 ES ES348590A patent/ES348590A1/es not_active Expired
- 1967-12-26 FR FR1553166D patent/FR1553166A/fr not_active Expired
- 1967-12-27 DE DE1567331A patent/DE1567331C3/de not_active Expired
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE2625283A1 (de) * | 1975-06-06 | 1976-12-09 | Inst Nationale De La Rech Agro | Bienenfutter |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
IT1043771B (it) | 1980-02-29 |
ES348590A1 (es) | 1969-06-16 |
DE1567331C3 (de) | 1979-03-29 |
DE1567331B2 (de) | 1978-07-27 |
NL6717560A (de) | 1968-06-28 |
BE708404A (de) | 1968-06-24 |
US3565765A (en) | 1971-02-23 |
BR6795746D0 (pt) | 1973-06-12 |
GB1144950A (en) | 1969-03-12 |
FR1553166A (de) | 1969-01-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE1567331A1 (de) | Verfahren zur Herstellung von Produkten mit hohem Maltosegehalt und die dadurch hergestellten Produkte | |
DE3587623T2 (de) | Enzymatische Hydrolyse von körniger Stärke direkt bis zu Glukose. | |
DE2541960C3 (de) | Herstellung von Alkohol aus Cellulose | |
DE2061371C3 (de) | Verfahren zur Herstellung eines immobilisierten Glucoseisomeraseenzymkomplexes und dessen Verwendung | |
DE2935315A1 (de) | Hoch waermebestaendige glucoamylase und verfahren zu ihrer herstellung | |
DE2308596A1 (de) | Enzyme und verfahren zu ihrer herstellung | |
DE2417639B2 (de) | Verfahren zur Umwandlung von kerniger Stärke ta ein lislickes Hydrolysat | |
DE2249836C3 (de) | Verfahren zum Herstellen von Pullulan | |
DE2507787C2 (de) | Verfahren zur Herstellung von Pullulanase und deren Verwendung zur Stärkehydrolyse | |
DE2532005A1 (de) | Verfahren zur herstellung von verzuckerten staerkeprodukten | |
DE2424833C3 (de) | Verfahren zur Herstellung von Maltose | |
DE3788291T2 (de) | Beta-Amylase-Enzym-Produkt, Herstellung und Verwendung. | |
DE3779522T2 (de) | Ein neuer amylasetyp. | |
DE1442060A1 (de) | Verfahren zur Herstellung und Verwendung von Amyloglucosidase | |
DE2153232A1 (de) | Verfahren zur Herstellung und Verwendung von Amylase | |
DE2500597C2 (de) | Verfahren zur gleichzeitigen Herstellung von beta-Amylase und alpha-1,6-Glucosidase | |
AT394730B (de) | Verfahren zur herstellung exo- und endocellulasefreier xylanase | |
DE2717333C2 (de) | Hitze- und säurebeständige alpha-Amylase | |
DE2928881A1 (de) | Neutrale glucoamylase, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung | |
DE2435247C2 (de) | &beta;-Amylase, ihre Herstellung und Verwendung | |
DE68908253T2 (de) | Verfahren zur Herstellung von Itaconsäure. | |
DE2431297C3 (de) | Biochemisches Verfahren zur Herstellung einer extrazellulären ß- Galactosidase, welche säureaktiv und säurestabil ist | |
DE2519566C3 (de) | Verfahren zur Umwandlung von Stärke in Fructose | |
DE1957416C (de) | Verfahren zur Herstellung von Pullulanaseenzym | |
DE2554850C2 (de) | Verfahren zur Herstellung von Glucamylase und Nährmedium zur Durchführung dieses Verfahrens |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C3 | Grant after two publication steps (3rd publication) |