DE1213402B - Verfahren zur Herstellung von 16-Chlor-methylen- bzw. -Fluormethylen-steroiden - Google Patents
Verfahren zur Herstellung von 16-Chlor-methylen- bzw. -Fluormethylen-steroidenInfo
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07J—STEROIDS
- C07J5/00—Normal steroids containing carbon, hydrogen, halogen or oxygen, substituted in position 17 beta by a chain of two carbon atoms, e.g. pregnane and substituted in position 21 by only one singly bound oxygen atom, i.e. only one oxygen bound to position 21 by a single bond
-
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- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07J—STEROIDS
- C07J1/00—Normal steroids containing carbon, hydrogen, halogen or oxygen, not substituted in position 17 beta by a carbon atom, e.g. estrane, androstane
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Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Steroid Compounds (AREA)
Description
DEUTSCHES
PATENTAMT
AUSLEGESCHRIFT
Int. CL:
C07c
Deutsche Kl.: 12 ο-25/06
Nummer: 1 213 402
Aktenzeichen: M 49747 IV b/12 ο
Anmeldetag: 20. Juli 1961
Auslegetag: 31. März 1966
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung
von 16-Chlormethylen- bzw. -Fluormethylensteroiden
der allgemeinen Formel I
CH2R
R = OH oder eine O-Acylgruppe;
R2 = H, a- oder /J-OH oder =0;
X = Cl oder F;
Y = H oder CH3.
Y = H oder CH3.
Es wurde gefunden, daß man diese Substanzen herstellen kann, indem man nach an sich bekannten
Methoden ein 16-Chlormethylen- oder 16-Fluormethylen-zl4-3-keto-steroid
der allgemeinen Formel
CH2Ri
CHX
Ri = H, OH oder eine O-Acylgruppe; X und Y haben die angegebene Bedeutung;
CH2Ri
Verfahren zur Herstellung von 16-Chlormethylen- bzw. -Fluormethylen-steroiden
Anmelder:
E. Merck Aktiengesellschaft,
Darmstadt, Frankfurter Str. 250
Als Erfinder benannt:
Dipl.-Chem. Dr. Karl-Heinz Bork,
Griesheim bei Darmstadt;
Dipl.-Chem. Dr. Klaus Brückner,
Dr. Harald Metz,
Dipl.-Chem. Dr. Fritz von Werder, Darmstadt
in lla- oder 11/S-Stellung fermentativ hydroxyliert,
das erhaltene 1 l-Hydroxy-steroid gegebenenfalls mit einem milden Oxydationsmittel zu dem entsprechenden
ll-Keto-steroid oxydiert und daß man auf einer beliebigen Verfahrensstufe ein für Ri stehendes
Wasserstoffatom nach an sich bekannten chemischen Methoden in eine O-Acyl- bzw. OH-Gruppe überführt,
gegebenenfalls nach an sich bekannten chemischen oder mikrobiologischen Methoden in 1(2)-Stellung
eine Doppelbindung einführt und gegebenenfalls nach an sich bekannten Methoden eine in der
erhaltenen Verbindung vorhandene 21-O-Acylgruppe
alkalisch verseift bzw. einen etwa erhaltenen 21-Alkohol
verestert oder in ein Estersalz überführt.
Die Grundstufen des erfindungsgemäßen Verfahrens lassen sich durch folgendes Reaktionsschema
charakterisieren:
CH2Ri
CHX
CH2R
CHX
CHX
609 540/430
R, Ri, X und Y haben die angegebene Bedeutung. Die punktierte Linie in 1(2)-Stellung soll zum Ausdruck
bringen, daß dieselbe Reaktion auch mit den 1-Dehydroderivaten erfolgen kann.
Zur Einführung einer Ha- oder llß-ständigen
Hydroxylgruppe in das als Ausgangsmaterial verwendete 11-Desoxy-steroid sind z. B. folgende Mikroorganismen
geeignet:
11/S-Hydroxylierung
Arten aus folgenden Gattungen: Absidia, Acrothecium, Botrytis, Cephalothecium, Chaetomella,
Colletotrichum, Coniothyrium, Corticium, Cunninghamella, Curvularia, Dothichiza, Epicoccum, Mucor,
Pycnosporium, Rhodoseptoria, Spondylocladium, Stachylidium, Streptomyces, Thamnidium, Trichothecium.
1 la-Hydroxylierung
Arten aus folgenden Gattungen: Absidia, Aspergillus, Cephalothecium, Cercospora, Coryneum, Cunninghamella,
Dactylium, Delacroixia, Eurotium, Fusarium, Gloeosporium, Glomerella, Helicostylum,
Metarrhizium, Mucor (und andere Gattungen der Ordnung Mucorales), Neurospora, Penicillium, Pestalotia,
Rhizopus, Sporotrichium, Trichoderma, Trichothecium, Bacillus.
Die Fermentation wird nach den üblichen Methoden durchgeführt und benötigt je nachdem, welches
Ausgangsmaterial benutzt wurde und welcher Mikroorganismus zur Anwendung kommt, etwa 10 bis
48 Stunden. Das anfallende H-Hydroxy-steroid wird aus dem Reaktionsgemisch durch Extraktion mit
einem geeigneten Lösungsmittel, beispielsweise mit Chloroform oder Methylenchlorid, extrahiert.
Zur Oxydation des erhaltenen 11-Hydroxy-steroids in das entsprechende 11-Keto-steroid werden milde
Oxydationsmittel benutzt. Beispielsweise kann man dafür Chromsäureanhydrid in Eisessig oder ein
Gemisch aus Chromsäureanhydrid und Pyridin oder Chromschwefelsäure in Aceton oder unterchloride
bzw. unterbromige Säure verwenden. Die so hergestellten 11-Keto-steroide können in üblicher
Weise aus dem Reaktionsgemisch isoliert werden, beispielsweise durch Extraktion oder durch Ausfällung
mit Wasser.
Nach dem Verfahren der Erfindung wird, falls Ri
im Ausgangssteroid ein Wasserstoffatom bedeutet, auf einer beliebigen Verfahrensstufe dieses für Ri
stehende Wasserstoffatom durch an sich bekannte chemische Methoden in eine O-Acyl- bzw. OH-Gruppe
umgewandelt. Zu diesem Zweck wird das betreffende Steroid, das in 21-Stellung keine Sauerstoffunktion
enthält, mit einer alkalischen Jodlösung, vorzugsweise mit einem Gemisch aus Jod und Calciumoxyd,
behandelt und danach das dabei erhaltene 21-Jodsteroid durch Umsetzung mit einem Alkaliacylat,
vorzugsweise Kaliumacetat, in das entsprechende 21-O-Acyl-steroid übergeführt. Durch übliche alkalische
Verseifung der erhaltenen 21-O-Acylverbindung,
beispielsweise mit Natriumhydrogencarbonat, erhält man die freien 21-AlkohoTe.
Eine Eventualstufe des erfindungsgemäßen Verfahrens ist die Einführung einer l(2)-ständigen
Doppelbindung auf einer beliebigen Verfahrensstufe. Diese Dehydrierung kann nach an sich bekannten
chemischen oder mikrobiologischen Methoden durchgeführt werden. Als chemisches Dehydrierungsmittel
kann man z. B. Selendioxyd verwenden. Dabei arbeitet man z. B. in tert.-butanolischer Lösung und
setzt geringe Mengen Essigsäure zu. Die Umsetzung führt man zweckmäßigerweise durch Kochen des.
Reaktionsgemisches unter Rückfluß durch. Das ausgefallene Selen wird abgetrennt. Im Filtrat ist das
gebildete 1(2)-Dehydrierungsprodukt enthalten.
Für die chemische 1(2)-Dehydrierung ist ferner 2,3-Dichlor-5,6-dicyan-p-benzochinon geeignet. Dabei
arbeitet man vorteilhaft in Benzol- oder Dioxanlösung. ι.
Zur Einführung einer l(2)-ständigen Doppelbindung auf mikrobiologischem Wege können z. B.
Arten folgender Gattungen verwendet werden: Alternaria,
Didymella, Calonectria, Colletotrichum, Cylindrocarpon, Fusarium, Ophiobolus, Septomyxa, Vermicularia;
Acetobacter, Aerobacter, Alcaligenes, Bacillus (besonders Bacillus sphaericus), Corynebacterium
(besonders Corynebacterium simplex), Erysipelothrix, Listeria, Micromonospora, Mycobacterium,
Nocardia, Protaminobacter, Pseudomonas, Streptomyces.
Die Fermentation benötigt etwa 4 bis 14 Stunden, je nachdem, welcher Mikroorganismus verwendet
wird. Besonders geeignet sind Kulturen von Bacillus sphaericus var. fusiformis und Corynebacterium
simplex.
In die geschilderten mikrobiologischen Prozesse können die in Frage stehenden Steroide auch in
Form ihrer 21-O-Acylverbindungen eingesetzt werden.
Dabei ist es möglich, daß der Mikroorganismus gleichzeitig die 21-O-Acylgruppe in eine 21-OH-Gruppe
umwandelt.
Falls erwünscht, kann anschließend die 21-OH-Gruppe nach an sich bekannten und üblichen Methoden wieder verestert werden. Als Veresterungsmittel sind alle diejenigen Säuren bzw. deren zur Veresterung geeigneten Derivate verwendbar, die physiologisch verträgliche Ester, ergeben. Zum Beispiel können die folgenden Säuren oder deren zur Veresterung geeignete Derivate verwendet werden: Carbonsäuren, wie Essigsäure, Propionsäure, Buttersäure, Trimethylessigsäure, tertButylessigsäure, Cyclopentylpropionsäure, Phenylpropionsäure, Phenylessigsäure, Capronsäure, Caprylsäure, Palmitinsäure, Undecylensäure, aber auch Benzoesäure oder Hexahydrobenzoesäure, sowie Halogencarbonsäuren, wie Chloressigsäure. Gegebenenfalls kann man auch zwecks Herstellung wasserlöslicher Derivate die 21-Hydroxylgruppe mit Dicarbonsäuren, Amino- oder Alkylaminocarbonsäuren oder mit Phosphor- oder Schwefelsäure verestern. Auf diese Art lassen sich z.B. herstellen: Succinate, Oxalate oder die Säureadditionssalze von Aminocarbonsäureestern, z. B.
Falls erwünscht, kann anschließend die 21-OH-Gruppe nach an sich bekannten und üblichen Methoden wieder verestert werden. Als Veresterungsmittel sind alle diejenigen Säuren bzw. deren zur Veresterung geeigneten Derivate verwendbar, die physiologisch verträgliche Ester, ergeben. Zum Beispiel können die folgenden Säuren oder deren zur Veresterung geeignete Derivate verwendet werden: Carbonsäuren, wie Essigsäure, Propionsäure, Buttersäure, Trimethylessigsäure, tertButylessigsäure, Cyclopentylpropionsäure, Phenylpropionsäure, Phenylessigsäure, Capronsäure, Caprylsäure, Palmitinsäure, Undecylensäure, aber auch Benzoesäure oder Hexahydrobenzoesäure, sowie Halogencarbonsäuren, wie Chloressigsäure. Gegebenenfalls kann man auch zwecks Herstellung wasserlöslicher Derivate die 21-Hydroxylgruppe mit Dicarbonsäuren, Amino- oder Alkylaminocarbonsäuren oder mit Phosphor- oder Schwefelsäure verestern. Auf diese Art lassen sich z.B. herstellen: Succinate, Oxalate oder die Säureadditionssalze von Aminocarbonsäureestern, z. B.
von Asparaginsäure- oder Diäthylaminoessigsäureestern.
Nach dem Verfahren der Erfindung werden beispielsweise die folgenden Verbindungen erhalten:
. Die 16-Chlormethylen- und 16-Fluormethylenderivate
des Hydrocortisons, Cortisons, Prednisolone und Prednisons sowie deren 21-O-Acylverbindungen und
die 6a-Methylderivate aller dieser Verbindungen. Als bevorzugte 21-O-Acylverbindungen, die nach
dem Verfahren der Erfindung als Endprodukte erhalten werden, seien beispielsweise die' folgenden
genannt: lo-Chlormethylen-prednisolon^l-acetat,
16 - Chlormethylen - prednison -21 - acetat, 16 -Fluormethylen-prednisolon-21-acetat,
16-Fluormethylen-
prednison - 21 - acetat, 16- Fluormethylen - 6α - methyl prednisolon-21
-acetat, 16-Fluormethylen-prednisolon-21
-diäthylaminoacetathydrochlorid.
Die als Ausgangsmaterial benötigten 11-Desoxysteroide
können erhalten werden durch Behandlung der zugrunde liegenden loc^na-Oxido-loß-chlormethyl-
bzw. -16^-fluormethyI-steroide mit Bromwasserstoffsäure
in ätherischer Lösung. Für die Herstellung der verfahrensgemäß eingesetzten Ausgangssteroide
wird im Rahmen der vorliegenden Erfindung Schutz nicht begehrt.
Die neuen, verfahrensgemäß erhaltenen Verbindungen besitzen eine gegenüber den in 16-Stellung
nicht substituierten Derivaten erhöhte corticoide Wirkung. Sie lassen sich zu allen für pharmazeutische
Zwecke geeigneten Zubereitungsformen, wie beispielsweise Pillen, Tabletten, Dragees, Suspensionen,
Lösungen, Injektionslösungen, Sprays, Salben, Gelees usw., verarbeiten. ·
Zum Nachweis der Überlegenheit der Verfahrensprodukte wurde die antiphlogistische Wirkung von
16-Fluormethylen-prednisolon und 16-Fluormethylen-6a-methyl-prednisolon
im Vergleich zu Prednisolon und 16-Methylen-prednisolon im Granulombeuteltest
an Ratten nach der in Archives Internationales de Pharmacodynamie et de Therapie, Bd. Ill, S. 420
bis 436 (1957), beschriebenen Methode bestimmt. Dabei ergaben sich die folgenden Wirkungsrelationen:
| Präparat | Antiphlogistische Wirkungsrelation |
| Prednisolon 16-Methylen-prednisolon 16-Fluormethylen-prednisolon 1 o-Fluormethylen-oa-methyl- prednisolon |
1 4,5 10 25 |
Wie aus der Tabelle ersichtlich, sind die verfahrensgemäß hergestellten Verbindungen 10- bzw.
25mal wirksamer als Prednisolon und etwa 2,2- bzw. 5,5mal so wirksam wie 16-Methylen-prednisolon.
Im Vergleich zu dem bekannten, an sich stärker antiphlogistisch wirksamen Dexamethason zeichnen
sich die Verfahrensprodukte dadurch aus, daß sie die bekannten Nebenwirkungen dieser Verbindung
(z. B^ verstärkte metabolische Einwirkungen, erhöhte
Natriumretention) nicht oder nur in untergeordnetem Maße aufweisen.
Beispiel 1
a) 21-Acetoxylierung
a) 21-Acetoxylierung
Eine Suspension von 6,5 g 16-Chlormethylen-4-pregnen-17a-ol-3,20-dion
in 98 ecm Tetrahydrofuran und 59 ecm Methanol wird innerhalb 3 Stunden
portionsweise mit 9,8 g Jod und 9,8 g Calciumoxyd versetzt. Danach wird das Reaktionsgemisch in 2 1
Eiswasser, das 32 ecm Eisessig enthält, eingegossen,
der Niederschlag abgesaugt und getrocknet.
Die so erhaltenen 11g rohes 21-Jodid werden in
550 ecm Aceton gelöst und zusammen mit 33 g Kaliumacetat 20 Stunden unter Rückfluß gekocht.
Danach wird das Aceton zurh Teil unter vermindertem Druck abgezogen, das Gemisch mit Wasser
verdünnt, der Niederschlag abgesaugt. Er wird noch feucht in einem Gemisch aus 130 ecm Methanol,
3,25 g Natriumpyrosulfit und 48,5 ecm Wasser 2 Stunden unter Rückfluß gekocht. Nach Abkühlen wird
das Reaktionsgemisch mit Wasser verdünnt, der entstandene Niederschlag abgesaugt und getrocknet.
Durch Umkristallisation aus Methanol erhält man daslo-Chlor-methylen-'i-pregnen-lTa^l-diol-S^O-dion-21-acetat.
Schmp. 156 bis 1570C; Xma,x 240ηΐμ;
E1 1* 434 (Äthanol); £ = 18 900; [a}%4 = +10,5°
(Chloroform). '
b) Verseifung
12 g 16-Chlormethylen-4-pregnen-17a,21 -diol-3,20-dion-21-acetat
werden in 960 ecm Methanol gelöst und mit 480 ecm 5%iger Kaliumhydrogencarbonatlösung
versetzt. Das Ganze wird 3 Stunden am Rückfluß gekocht und kühl aufbewahrt. Es scheiden sich Kristalle von 16-Chlormethylen-Reichsteins-Substanz-S
aus, die durch Umkristallisieren aus Aceton gereinigt werden. Schmp. 205 bis 2070C;
Xmax 239 bis 240 πΐμ; EJ*m 463 (Äthanol); e = 18 200;
[a\l4 = +5° (Chloroform).
c) Mikrobiologische lla-Hydroxylierung
In einem Kleinfermenter werden 15 1 einer geeigneten Nährlösung (z. B. 5% Glukose, 0,1% Hefeextrakt,
0,05% Sojamehl, 0,3% NaNO3, 0,05% MgSO4 ■ 7 H2O, 0,1% KH2PO4, 0,05% KCl, 0,001%
FeSO4 ■ 7 H2O) mit 750 ml einer gut gewachsenen
Schüttelkultur von F.usarium sp. (Sammlung E. Merck Nr. 2083) beimpft. Die Kultur wächst unter starkem
Belüften und Rühren bei 280C und erhält nach 24 Stunden einen Zusatz von 5 g 16-Chlormethylen-Reichsteins-Substanz-S
in 40 ml Dimethylformamid.
Die Umsetzung wird papierchromatographisch verfolgt. Wenn im Chromatogramm keine Ausgangssubstanz
mehr nachweisbar ist, wird der Ansatz abgebrochen und die Kulturlösung 3mal mit 101
Chloroform extrahiert. Der vereinigte Chloroformextrakt wird eingedampft, der Rückstand mit Petroläther
digeriert und aus Aceton umkristallisiert. Man erhält reines 16-Chlormethylen-ll-epi-hydrocortison.
Imax 241 Ιϋμ.
d) 21-Acetylierung
2 g lö-Chlormethylen-ll-epi-hydrocortison werden
in 10 ml Pyridin gelöst und 0,36 g Essigsäureanhydrid zugegeben. Nach 15stündigem Stehen bei Zimmertemperatur
wird das Gemisch in Wasser eingegossen, mit Chloroform 3mal extrahiert, die Chloroformlösung
durch Schütteln mit Natriumhydrogencarbonatlösung neutralisiert, getrocknet und unter vermindertem
Druck eingedampft. Der amorphe Rückstand von 16-Chlormethylen-ll-epi-hydrocortison-21-acetat
wird direkt in die nachfolgende Oxydation eingesetzt.
ei) Oxydation
Der im Beispiel 1, d) erhaltene Rückstand von 16 - Chlormethylen -11 - epi - hydrocortison - 21 - acetat
wird in 20 ml Pyridin gelöst und zu einer Mischung aus 2 g Chromsäureanhydrid und 20 ml Pyridin
gegeben. Das alsbald tief dunkelbraungefärbte Gemisch wird nach 8stündigem Stehen bei Zimmertemperatur
in 150 ml warmen Essigester eingegossen, 5 Minuten am Rückfluß gekocht und abgenutscht.
Nach gutem Auswaschen des voluminösen Rückstandes mit warmem Essigester werden die vereinigten
Filtrate mit verdünnter Schwefelsäure neutral gewaschen, getrocknet und unter vermindertem Druck
eingedampft. Der Rückstand von rohem 16-Chlormethylen-cortison-21-acetat
wird durch Umkristallisieren aus Methanol rein erhalten. Xma,x 238 πΐμ,
Eil 372; F. 164 bis 165°C; [a]D = +133° (Dioxan).
es) Oxydation
2,7 g 16 - Chlormethylen -11 - epi - hydrocortison-21-acetat
werden in 100 ml Aceton gelöst und auf eine Temperatur zwischen 0 und 100C abgekühlt.
Unter Rühren und Kühlen werden 1,92 ml einer Lösung von wäßriger Chromschwefelsäure (1 ml
= 0,25 g C1O3) zugetropft (Temperatur maximal 10° C). Nach beendeter Zugabe wird das Gemisch
noch 30 Minuten gerührt, dann in Wasser eingegossen und mit Chloroform ausgeschüttelt. Die
Chloroformlösung wird neutral gewaschen, getrocknet und eingedampft. Der rohe Rückstand
von lo-Chlormethylen-cortison^l-acetat wird durch
Umkristallisieren aus Äther—Aceton rein erhalten.
lmax 238 m^ E}*m 372; F. 164 bis 165°C; [a]„
= +133° (Dioxan).
h) Verseifung
f) Verseifung
25
1 g lo-Chlormethylen-cortison^l-acetat wird in
25 ml Methanol zum Sieden erhitzt, sodann zu der siedenden Lösung eine heiße Lösung von 0,23 g
Natriumhydrogencarbonat in 5 ml Wasser zugegeben und das Gemisch 7 Minuten zum Sieden erhitzt.
Es wird in etwa 300 ml Wasser eingegossen und das ausgefallene rohe Verseifungsprodukt abgesaugt.
Nach Umkristallisieren aus Aceton wird reines 16-Chlormethylen-cortison erhalten. lmax 238 πΐμ,
Eil 460; F. 215 bis 216°C; [a]„ = +107° (Dioxan).
gi) 1-Dehydrierung (mikrobiologisch)
In einem Kleinfermenter von 20 1 Inhalt werden 15 1 einer Nährlösung aus 0,1% Hefeextrakt, pH 6,8,
mit 1,51 Schüttelkultur von Corynebacterium simplex (Sammlung E. Merck Nr. 1002) beimpft. Die Kultur
wächst unter ständigem Rühren und starker Belüftung bei 28° C und erhält nach etwa 4 bis 8 Stunden
einen Zusatz von 7,5 g 16-Chlormethylen-cortison,
gelöst · in 300 ml Methanol. Die Dehydrierung wird papierchromatographisch verfolgt und ist im
allgemeinen nach 10 bis 14 Stunden beendet. Die Kulturlösung wird 3mal mit dem gleichen Volumen
Chloroform extrahiert, die vereinigten Chloroformlösungen werden eingedampft.- Der Rückstand wird
aus Aceton umkristallisiert. Das so erhaltene 16-Chlormethylen-prednison ist frei von Nebenprodukten.
lmax 239 πΐμ, E\fa 400; F. 216 bis 218°C;
[a]D = +57,8° (Dioxan).
g2) 1-Dehydrierung (chemisch)
3,5 g 16-Chlormethylen-cortison-21-acetat werden in 70 ml Dioxan gelöst und mit 3,5 g 2,3-Dichlor-5,6-dicyan-p-benzochinon
versetzt. Das Reaktionsgemisch wird 6 Stunden unter Rückfluß gekocht, dann mit Chloroform verdünnt und nacheinander
mit 30 ml 1 n-Natriumhydroxydlösung und mehrfach mit Wasser gewaschen. Die Lösung wird über
Natriumsulfat getrocknet und eingedampft. Der aus 16-Chlormethylen-prednisonacetat bestehende Rückstand
wird aus Aceton—Äther umkristallisiert. λτηαχ 239 Πΐμ.
1,5 g lo-Chlormethylen-prednison^l-acetat werden
analog Beispiel 1, f) verseift unter Bildung von 16-Chlormethylen-prednison. Xma,x 239 πΐμ, EJ*m 400;
F. 216 bis 218°C; [a]„ = +57,8° (Dioxan).
Beispiel 2
a) Mikrobiologische 1 !^-Hydroxylierung
a) Mikrobiologische 1 !^-Hydroxylierung
In einem Kleinfermenter werden 15 1 einer Nährlösung aus 5% Malzextrakt, 1% Saccharose, 0,2%
Natriumnitrat, 0,1% Dikaliumphosphat, 0,05% Magnesiumsulfat, 0,05% Kaliumchlorid und 0,005%
Eisen(II)-sulfat (pH eingestellt auf 7,0) mit 800 ml einer Schüttelkultur von Curvularia lunata (Wakker)
Boadijn beimpft und unter Rühren und starker Belüftung bei 280C bebrütet. Nach 24stündigem
Wachstum werden 5 g 16-Chlormethylen-Reichsteins-Substanz-S
[hergestellt nach Beispiel 1, b)], gelöst in 40 ml Dimethylformamid, zugesetzt. Die Umsetzung
wird papierchromatographisch verfolgt. Wenn im Papierchromatogramm kein Ausgangsmaterial
mehr nachweisbar ist, wird die Kulturlösung 3mal mit dem gleichen Volumen Chloroform extrahiert.
Die vereinigten Chloroformlösungen werden eingedampft und der Rückstand zur Entfernung der Begleitprodukte
an Kieselgel chromatographiert. Das mit Chloroform—Essigester (1 : 3) erhaltene Eluat
enthält das gewünschte 16-Chlormethylen-hydrocortison,
das daraus in üblicher Weise gewonnen wird. Schmp. 228°C; lmax 241 bis 242 πΐμ; Ε}* 432
(Äthanol); ε = 17 660; \α\2έ = +40° (Dioxan).
b) Acetylierung
5 g 16-Chlormethylen-hydrocortison werden mit
30 ml Pyridin und 30 ml Essigsäureanhydrid 1 Stunde auf dem Dampfbad erwärmt. Das Gemisch wird
in Wasser eingegossen und das ausgefallene 16-Chlormethylen-hydrocortison-21-acetat
abgesaugt. Die Reinigung erfolgt durch Umkristallisieren aus Aceton. Imax 241 mm E}*m 392; F. 228 bis 23O0C; [a], = +42°
(Dioxan).
ei) 1-Dehydrierung (mikrobiologisch)
In einem Kleinfermenter werden 15 1 einer Nährlösung
aus 1% Hefeextrakt, pH 6,8, mit 0,5 1 Schüttelkultur von Bacillus sphaericus (Sammlung E. Merck
Nr. 1001) beimpft. Die Kultur wächst unter ständigem Rühren und starker Belüftung bei 280C und
erhält nach etwa 10 Stunden einen Zusatz von 7,5 g 16-Chlormethylen-hydrocortison, gelöst in 300 ml
Methanol. Die Dehydrierung wird papierchromatographisch verfolgt und ist nach 28 bis 36 Stunden
vollständig. Die Aufarbeitung erfolgt nach der im Beispiel 1, gi) angegebenen Methode. Das rohe
16-Chlormethylen-prednisolon wird durch Umkristallisieren
aus Aceton rein erhalten. Schmp. 223 bis 224°C; lmax 241 bis 242πΐμ; EJi 411 (Äthanol);
ε = 16 720; [α]ί4 = -34° (Dioxan).
ca) Chemische 1-Dehydrierung
Analog Beispiel 1, &) werden 3 g 16-Chlormethylenhydrocortison-21-acetat
dehydriert. Nach dem Umkristallisieren aus Aceton—Äther erhält man reines
lo-Chlormethylen-prednisolon^l-acetat. lmax 242 πΐμ,
Eil 358; F. 230 bis 231°C; [a]D = -31° (Dioxan),
d) Verseifung
Die Verseifung des 16-Chlormethylen-prednisolon-21-acetats
zu 16-Chlormethylen-prednisolon erfolgt
nach der gleichen Methode, wie im Beispiel 1, f) angegeben. E}· 411; F. 223 bis 224°C; [o]o = -34°
(Dioxan).
B ei sp i e1 3
Oxydation
Oxydation
2,4 g lo-Chlormethylen-prednisolon^l-acetat (hergestellt
nach Beispiel 2) werden in 24 ml Pyridin gelöst und zu einer zuvor bereiteten Mischung von
2,4 g Chromsäureanhydrid und 24 ml Pyridin gegeben. Die Mischung wird über Nacht stehengelassen
und anschließend, wie im Beispiel 1, ei) beschrieben, aufgearbeitet. Es werden 1,6 g 16-Chlormethylen-prednison-21-acetat
erhalten, identisch mit dem nach Beispie1 1, ga) erhaltenen Produkt.
Die Oxydation kann außerdem mit guten Ausbeuten nach der im Beispiel 1, e2) beschriebenen
Verfahrensweise durchgeführt werden.
Beispiel 4
a j !-Dehydrierung
a j !-Dehydrierung
25
7,5 g 16-Chlormethylen-Reichsteins-Substanz-S
[hergestellt nach Beispiel 1, b)] werden in 15 1 einer Kulturlösung von Bacillus sphaericus, wie im Beispiel
2, ei) beschrieben, dehydriert. Nach üblicher
Aufarbeitung wird durch Umkristallisieren aus Aceton reine l-Dehydro-16-chlormethylen-Reichsteins-Substanz-S
erhalten. Xmax 240 ΐημ.
b) Mikrobiologische lla-Hydroxylierung
In einem Kleinfermenter werden 15 1 einer Nährlösung aus 5% Glukose, 0,2% Hefeextrakt, 0,3%
Natriumnitrat, 0,05% Magnesiumsulfat, 0,001% Eisen(II)-sulfat und 1Z3O Mol Phosphatpuffer nach
Sörensen (pH 5,6) mit 800 ml Schüttelkultur von Penicillium sp. (Sammlung E. Merck Nr. 2168)
beimpft. Die Kultur wächst unter Rühren und starker Belüftung und erhält nach 24 Stunden einen
Zusatz von 5 g l-Dehydro-16-chlormethylen-Reichsteins-Substanz-S,
gelöst in 40 ml Dimethylformamid. Die Hydroxylierung wird papierchromatographosch
verfolgt. Nach Beendigung der Umsetzung wird aufgearbeitet entsprechend der Beschreibung
im Beispiel 1, gi). Durch Umkristallisieren aus Aceton wird reines 16-Chlormethylen-ll-epi-prednisolon erhalten.
Xmax 241 Πΐμ.
Hefeextrakt, 0,2% NaNO3, 0,1% KH2PO4, 0,05%
MgSO4 · 7 H2O, 0,01% FeSO4 · 7 H2O, pH eingestellt
auf 6,8, mit 750 ml Schüttelkultur von Penicillium sp. (Sammlung E. Merck Nr. 2168) beimpft
und unter starkem Rühren und Belüften bei 280C
bebrütet. Nach etwa 30stündigem Wachstum werden 5 g lo-Chlormethylen-na-hydroxy-progesteron, gelöst
in 300 ml Methanol, zugesetzt. Die Umsetzung wird papierchromatographisch verfolgt und ist nach
etwa 15 Stunden beendet. Die Kulturlösung wird 3mal mit dem gleichen Volumen Chloroform
extrahiert, die vereinigten Extrakte werden im Vakuum eingedampft und der Rückstand mit Petroläther
digeriert. Das ungelöste 16-Chlormethylen-4-pregnen-lla,17a-diol-3,20-dion
wird isoliert und aus Essigester umkristallisiert. Xmax 240 πΐμ.
b) Oxydation
2,3 g lo-Chlormethylen^-pregnen-llajna-diol-3,20-dion
werden in 23 ml absolutem Pyridin gelöst und bei O0C mit einem Gemisch aus 2,3 g Chromsäureanhydrid
und 23 ml Pyridin versetzt. Nach 12 Stunden wird das Reaktionsgemisch in 250 ml Essigester eingegossen, der ,Niederschlag abgesaugt
und mit Essigester gut gewaschen. Die vereinigten Essigesterlösungen werden eingeengt, wobei das
16-Chlormethylen-4-pregnen-17a-ol-3,11,20-trion auskristallisiert.
Imax 238 ΐημ.
ei) Mikrobiologische 1(2)-Dehydrierung
In einem Fermenter werden 15 1 Nährlösung aus
1% Hefeextrakt (pH 6,8) mit 0,51 Schüttelkultur von Bacillus sphaericus (Sammlung E. Merck
Nr. 1001) beimpft. Die Kultur erhält unter ständigem Rühren und Belüften bei 280C nach etwa 11 Stunden
einen Zusatz von 7,5 g lo-Chlormethylen^-pregnen-17a-ol-3,ll,20-trion,
die in 250 ml Methanol gelöst sind. Nach etwa 33 Stunden ist die Dehydrierung, die papierchromatographisch verfolgt wird, beendet.
Die Fermentationsbrühe wird mit Chloroform ausgeschüttelt, die vereinigten Extrakte werden eingedampft,
wobei das lo-Chlormethylen-l^-pregnadien-17a-ol-3,ll,20-trion
auskristallisiert. Xmax 239 ηΐμ.
C2) Chemische 1-Dehydrierung
11g 16 - Chlormethylen -A- pregnen - 17a - öl 3,11,20-trion
werden in 660 ml tert.Butanol mit 7,2 g Selendioxyd und 5,5 ml Eisessig 48 Stunden unter
Rückfluß erhitzt. Das ausgefallene Selen wird abfiltriert und das Filtrat eingeengt. Das anfallende
lo-Chlormethylen-l^-pregnadien-na-ol^ll^O-trion
wird zur Reinigungüber Kieselgel filtriert. Xmax 239 πΐμ.
c) 21-Acetylierung
Analog Beispiel 1, d) wird aus 16-Chlormethylen-11-epi-prednisolon
rdas 16-Chlormethylen-ll-epiprednisoIon-21-acetat
erhalten. Xmax 241 πΐμ.
d) Oxydation
Analog Beispiel 1, C2) wird aus 16-Chlormethylen
ll-epi-prednisolon-21-acetat das 16-Chlormethylen
prednison-21-acetat hergestellt. Xmax 239 ώμ.
Beispiel 5
a) Mikrobiologische lla-Hydroxylierung
a) Mikrobiologische lla-Hydroxylierung
, In einem Kleinfermenter werden 15 1 einer Nährlösung aus 3% Saccharose, 1% Malzextrakt, 0,1%
d) 21-Acetoxylierung
/nalog Beispiel 1, a) kann aus 16-Chlormethylen-4-pregnen-17a-ol-3,11,20-trion
das 16-Chlormethylencortison-21-acetat
hergestellt werden. Xmax 238 ηαμ,
E}*m 372; F. 164 bis 1650C; [a]D = +133° (Dioxan).
-60 Beispiel6
a) Mikrobiologische 11 ^-Hydroxylierung
In einem Kleinfermenter werden 15 1 einer Nährlösung aus 3% Saccharose, 1% Malzextrakt, 0,1%
Hefeextrakt, 0,2% NaNO3, 0,1% KH2PO4, 0,05%
MgSO4 -.7 H2O, 0,01% FeSO4-7 H2O, pH eingestellt
auf 6,8, mit 750 ml einer Submerskultur von Curvularia· lunata (Wakker) Boadijn beimpft und
609 540/430
I 213
unter starkem Rühren und Belüften bei 28 0C bebrütet.
Nach etwa 18stündigem Wachstum werden 5 g lo-Chlormethylen-na-hydroxy-progesteron, gelöst
in 300 ml Methanol, zugesetzt. Die Umsetzung wird papierchromatographisch verfolgt; nach etwa
24 Stunden ist kein Ausgangsmaterial mehr nachzuweisen. Die Kulturlösung wird 3mal mit dem
gleichen Volumen Chloroform extrahiert. Die vereinigten
Extrakte werden unter vermindertem Druck eingedampft und der Rückstand, das 16-Chlormethylen-4-pregnen-Ilftl7a-diol-3,20-dion,
nach Digerieren mit Petroläther aus Essigester umkristallisiert, λτηαχ 241 Πΐμ.
b) Mikrobiologische 1(2)-Dehydrierung
In einem Fermenter, werden 15 I einer Nährlösung
aus 1% Hefeextrakt (pH 6,8) mit 0,51 Schüttel- ■
kultur von Bacillus sphaericus (Sammlung E. Merck Nr. 1001) beimpft. Die Kultur erhält unter ständigem
Rühren und Belüften bei 28 0C nach etwa 9 Stunden einen Zusatz von 8,0 g lo-Chlormethylen^-pregnenll/S,17a-diol-3,20-dion,
die in 230 ml Methanol gelöst sind. Nach etwa 25 bis 30 Stunden ist die Dehydrierung, die papierchromatographisch verfolgt
wird, beendet. Die Fermentationsbrühe wird 3mal mit Chloroform ausgeschüttelt, die vereinigten
Extrakte werden eingedampft, wobei das 16-Chlormethylen-l,4-pregnadien-ll/?,17a-diol-3,20-dion
auskristallisiert, λτηαχ 242 Πΐμ.
c) Oxydation
Analog Beispiel 5, b) kann aus 16-Chlormethylenl,4-pregnadien-ll/S,17a-diol-3,20-dion
das 16-Chlormethylen-l,4-pregnadien-17a-ol-3,ll,20-trion
hergestellt werden, λτηαχ 239 πΐμ.
d) 21-Acetoxylierung
Analog Beispiel 1, a) kann aus 16-Chlormethylenl,4-pregnadien-17a-ol-3,ll,20-trion
das 16-Chlormethylen - prednison - 21 - acetat erhalten werden. λτηαχ 239 Πΐμ.
e) Analog Beispiel 1, a) kann aus dem nach Stufe 6 a) erhaltenen 16-Chlormethylen-4-pregnen-11β,17α-
<ίΐο1-3,20-αϊοη das 16-Chlormethylen-hydrocortison-21-acetat
hergestellt werden. Xmax 241 πΐμ,
Ei* 392; F. 228 bis 230°C; [a]D = +42° (Dioxan).
a) 21-Acetoxylierung
Analog Beispiel 1, a) wird aus 16-Fluormethylen-4-pregnen-17a-ol-3,20-dion
das 16-Fluormethylen-4-pregnen-17a,21-diol-3,20-dion-21-acetat
gewonnen. ^0* 24Om1*, EJi 428; F. 200bis2020C; [a]D =+68°
(Chloroform).
' b) Verseifung
12 g 16 - Fluormethylen - 4 - pregnen - 17a,21 - diol-3,20-dion-21-acetat
werden in 960 ecm Methanol gelöst und mit 480 ecm 5%iger Kaliumhydrogencarbonatlösung
versetzt. Das Ganze wird 3 Stunden am Rückfluß gekocht und kühl aufbewahrt. Es
scheiden sich Kristalle von *. 5-Fluormethylen-Reichsteins-Substanz-S
aus, die durch Umkristallisieren aus Aceton gereinigt werden, λτηαχ 240 πΐμ; F. 217
bis 218°C; [a]D = +52° (Chloroform).
c) Mikrobiologische lla-Hydroxylierung
In einem Kleinfermenter werden 151 einer geeigneten Nährlösung (ζ. Β. 5% Glukose, 0;l% Hefeextrakt, O,O5<Vo Sojamehl, 0,3% NaNO3, 0,05% MgSO4 · 7 H2O, 0,1% KH2PO4, 0,05% KCl, 0,001% FeSO4 · 7 H2O) mit 750 ml einer gut gewachsenen Schüttelkultur von Fusarium sp. (Sammlung E. Merck Nr. 2083) beimpft. Die Kultur wächst unter, starkem Belüften und Rühren bei 280C und erhält nach
In einem Kleinfermenter werden 151 einer geeigneten Nährlösung (ζ. Β. 5% Glukose, 0;l% Hefeextrakt, O,O5<Vo Sojamehl, 0,3% NaNO3, 0,05% MgSO4 · 7 H2O, 0,1% KH2PO4, 0,05% KCl, 0,001% FeSO4 · 7 H2O) mit 750 ml einer gut gewachsenen Schüttelkultur von Fusarium sp. (Sammlung E. Merck Nr. 2083) beimpft. Die Kultur wächst unter, starkem Belüften und Rühren bei 280C und erhält nach
24 Stunden einen Zusatz von 5 g 16-Fluormethylen-Reichsteins-Substanz-S
in 40 ml Dimethylformamid. Die Umsetzung wird papierchromatographisch verfolgt.
Wenn im Chromatogramm keine Ausgangssubstanz mehr nachweisbar ist, wird der Ansatz abgebrochen
und die Kulturlösung 3mal mit 101 Chloroform extrahiert. Der vereinigte Chloroformextrakt
wird eingedampft, der Rückstand mit Petroläther digeriert und aus Aceton umkristallisiert. Man
erhält reines 16-Fluormethylen-ll-epi-hydrocortison.
λτηαχ 241 Πΐμ.
d) 21-Acetylierung
2 g 16-Fluormethylen-ll-epi-hydrocortison werden
in 10 ml Pyridin gelöst und 0,36 g Essigsäureanhydrid zugegeben. Nach 15stündigem Stehen bei Zimmertemperatur
wird das Gemisch in Wasser eingegossen, .mit Chloroform 3mal extrahiert, die Chloroformlösung
durch Schütteln mit Natriumhydrogencarbonatlösung neutralisiert, getrocknet und unter vermindertem
Druck eingedampft. Der amorphe Rückstand von 16-Fluormethylen-ll-epi-hydrocortison-21-acetat
wird direkt in die nachfolgende Oxydation eingesetzt.
ei) Oxydation
Der im Beispiel 7, d) erhaltene Rückstand von 16 - Fluormethylen -11 - epi - hydrocortison - 21 - acetat.
wird in 20 ml Pyridin gelöst und zu einer Mischungaus 2g Chromsäureanhydrid und 20ml Pyridin
gegeben. Das alsbald tiefdunkelbraungefärbte Gemisch wird nach 8stündigem Stehen bei Zimmertemperatur
in 150 ml warmen Essigester eingegossen, 5 Minuten am Rückfluß gekocht und abgenutscht.
Nach gutem Auswaschen des voluminösen Rückstandes mit warmem Essigester werden die vereinigten
Filtrate mit verdünnter Schwefelsäure neutral gewaschen, getrocknet und im Vakuum eingedampft.
Der Rückstand von rohem lo-Fluormethylen-cortison-21-acetat
wird durch Umkristallisieren aus Methanol rein erhalten. Xmax 238 πΐμ.
eg) 2,7 g 16-Fluormethylen-ll-epi-hydrocortison-21-acetat
werden in 100 ml Aceton gelöst und auf eine Temperatur zwischen 0 und 10° C abgekühlt.
Unter Rühren und Kühlen werden 1,92 ml einer Lösung von wäßriger Chromschwefelsäure (1 ml
= 0,25 g CrOe) zugetropft (Temperatur maximal
100C). Nach beendeter Zugabe wird das Gemisch .noch 30 Minuten -^gerührt, .jdann in. Wasser eingegossen
und mit Chloroform ausgeschüttelt. Die Chloroformlösung wird neutral gewaschen, getrocknet
und eingedampft. Der rohe Rückstand von 16-Fluormethylen-cortison-21-acetat
wird durch Umkristallisieren aus Äther—Aceton rein erhalten. lma,x 238 πΐμ.
f) Verseifung
1 g lo-Fluormethylen-cortison^l-acetat ■ wird in
25 ml Methanol zum Sieden erhitzt, sodann zu der siedenden Lösung eine heiße Lösung von 0,23 g
Natriumhydrogencarbonat in 5 ml Wasser zugegeben und das Gemisch weitere 7 Minuten zum Sieden
erhitzt. Es wird in etwa 300 ml Wasser eingegossen und das ausgefallene rohe Verseifungsprodukt abgesaugt.
Nach Umkristallisieren aus Aceton wird reines 16-Fluormethylen-cortison erhalten. lmax 238 πΐμ.
gi) 1-Dehydrierung (mikrobiologisch)
In einem Kleinfermenter von 201 Inhalt werden 15 1 einer Nährlösung aus 0,1% Hefeextrakt, pH 6,8,
mit 1,5 1 Schüttelkultur von Corynebacterium simplex (Sammlung E. Merck Nr. 1002) beimpft. Die Kultur
wächst unter ständigem Rühren und starker Belüftung bei 28 0C und erhält nach etwa 4 bis 8 Stunden
einen Zusatz von 7,5 g 16-Fluormethylen-cortison, gelöst in 300 ml Methanol. Die Dehydrierung wird
papierchromatographisch verfolgt und ist im allgemeinen nach 10 bis 14 Stunden beendet. Die Kulturlösung
wird 3mal mit dem gleichen Volumen Chloroform extrahiert, die vereinigten Chloroformlösungen
werden eingedampft. Der aus 16-Fluormethylenprednison
bestehende Rückstand wird aus Aceton umkristallisiert. lma,x 239 πΐμ.
g2) 1-Dehydrierung (chemisch)
3,5 g lo-Fluormethylen-cQrtison^l-acetat werden
in 70 ml Dioxan gelöst und mit 3,5 g 2,3-Dichlor-5,6-dicyan-p-benzochinon
versetzt. Das Reaktionsgemisch wird 6 Stunden unter Rückfluß gekocht, dann mit Chloroform verdünnt und nacheinander
mit 30 ml 1 n-Natriumhydroxydlösung und mehrfach mit Wasser gewaschen. Die Lösung wird über
Natriumsulfat getrocknet und eingedampft. Der aus 16-Fluormethylen-prednison-21 -acetat bestehende
Rückstand wird aus Aceton—Äther umkristallisiert.
Xmax 239 Πΐμ, Ei*m 386.
h) Verseifung
1,5 g 16-Fluormethylen-prednison-21-acetat werden analog Beispiel 1, f) verseift unter Bildung von
16-Fluormethylen-prednison. Xmax 239 ΐημ.
Beispiel 8
a) Mikrobiologische HjS-Hydroxylierung
a) Mikrobiologische HjS-Hydroxylierung
In einem Kleinfermenter werden 15 1 einer Nährlösung aus 5% Malzextrakt, 1% Saccharose, 0,2%
Natriumnitrat, 0,1% Dikaliumphosphat, 0,05% Magnesiumsulfat, 0,05% Kaliumchlorid und 0,005%
Eisen(II)-sulfat (pH eingestellt auf 7,0) mit 800 ml einer Schüttelkultur von Curvularia lunata (Wakker)
Boadijn beimpft und unter Rühren und starker Belüftung bei 28 0C bebrütet. Nach 24stündigem
Wachstum werden 5 g 16-Fluormethylen-Reichsteins-Substanz-S
[hergestellt nach Beispiel 7, b)], gelöst in 40 ml Dimethylformamid, zugesetzt. Die Umsetzung
wird papierchromatographisch verfolgt.Wenn im Papierchromatogramm kein Ausgangsmaterial
mehr nachweisbar ist, wird die Kulturlösung 3mal mit dem gleichen Volumen Chloroform extrahiert.
Die vereinigten Chloroformlösungen werden eingedampft und der Rückstand zur Entfernung der Begleitprodukte
an Kieselgel chromatographiert. Das mit Chloroform—Essigester (1 : 3) erhaltene Eluat
enthält das gewünschte 16-Fluormethylen-hydrocortison,
das daraus in üblicher Weise gewonnen wird. lmax 241 ΐημ, E}£ 447; F.239 bis 241°C;
[a]0 = +85,4° (Dioxan).
b) Acetylierung
5 g 16-Fluormethylen-hydrocortison werden mit
30 ml Pyridin und 30 ml Essigsäureanhydrid 1 Stunde auf dem Dampfbad erwärmt. Das Gemisch wird
in Wasser eingegossen und das ausgefallene 16-Fluormethylen-hydrocortison-21-acetat
abgesaugt. Die Reinigung erfolgt durch Umkristallisieren aus Aceton. λτηαχ 241 Πΐμ.
Ci) Mikrobiologische 1-Dehydrierung
Analog Beispiel 2, ei) werden 7,5 g 16-Fluormethylen-hydrocortison
durch Einwirkung von Bacillus sphaericus zu 16-Fluormethylen-prednisolon
dehydriert. lmax 242 πΐμ, E»*m 404; F. 263 bis 264°C;
[a]o = +25° (Dioxan).
C2) Chemische 1-Dehydrierung
Analog Beispiel 2, C2) werden 3 g 16-Fluormethylen-hydrocortison-21-acetat
dehydriert.' Nach dem Umkristallisieren aus Aceton—Äther erhält man
reines lo-Fluormethylen-prednisolon^l-acetat. lmax
242 ΐημ, E}*m 368; F. 224 bis 225°C; [a]D = +38,6°
(Dioxan).
d) Verseifung
Die Verseifung des 16-Fluormethylen-prednisolon-
21-acetats zu 16-Fluormethylen-prednisolon erfolgt nach der gleichen Methode wie im Beispiel 1, f)
angegeben. E1 1I 404; F. 263 bis 264°C; [a]0 = +25°
(Dioxan).
Beispiel 9
Oxydation
Oxydation
2,4 g 16-Fluormethylen-prednisolon-21-acetat (hergestellt ' nach Beispiel 8) werden in 24 ml Pyridin
gelöst und zu einer zuvor bereiteten Mischung von 2,4 g Chromsäureanhydrid und 24 ml Pyridin gegeben.
.Die Mischung wird über Nacht stehengelassen und anschließend, wie im Beispiel 7, ei) beschrieben,
aufgearbeitet. Es werden 1,6 g 16-Fluormethylen-prednison-21-acetat
erhalten, identisch mit dem nach Beispiel 7, g2) erhaltenen Produkt.
Die Oxydation kann außerdem mit guten Ausbeuten nach dem im Beispiel 7, e2) beschriebenen
Verfahren durchgeführt werden.
Beispiel 10
a) 1-Dehydrierung
a) 1-Dehydrierung
7,5 g 16-Fluormethylen-Reichsteins-Substanz-S
[hergestellt nach Beispiel 7, b)] werden in 15 1 einer Kulturlösung von Bacillus sphaericus, wie im Beispiel
8, ei) beschrieben, dehydriert. Nach Aufarbeitung gemäß Beispiel 7, gi) wird durch Umkristallisieren
aus Aceton reine l-Dehydro-16-fluormethylen-Reichsteins-Substanz-S
erhalten, 2max 240 πΐμ.
b) Mikrobiologische lla-Hydroxylierung
In einem Kleinfermenter werden 15 1 einer Nährlösung aus 5% Glukose, 0,2% Hefeextrakt, 0,3%
Natriumnitrat, 0,05% Magnesiumsulfat, 0,001% Eisen(II)-sulfat und V30 Mol Phosphatpuffer nach
Sörensen (pH 5,6) mit 800ml Schüttelkultur von Penicillium sp. (Sammlung E. Merck Nr. 2168)
beimpft. Die Kultur wächst unter Rühren und starker Belüftung und erhält nach 24 Stunden einen
Zusatz von 5 g l-Dehydro-16-fluormethylen-Reich-
steins-Substanz-S, gelöst in 40 ml Dimethylformamid. Die Hydroxylierung wird papierchromatographisch
verfolgt. Nach Beendigung der Umsetzung wird aufgearbeitet entsprechend der Beschreibung im
Beispiel 7, gi). Durch. Umkristallisieren aus Aceton wird reines 16-Fluormethylen-ll-epi-prednisolon erhalten.
Xmax 241 ταμ.
c) 21-Acetylierung
Analog Beispiel 1, d) wird aus 16-Fluormethylen-11-epi-prednisolon
das 16-Fluormethylen-11-epiprednisolon-21-acetat
erhalten. Xmax 241 πΐμ.
d) Oxydation
Analog Beispiel 1, e2) wird aus 16-Fluormethylenll-epi-prednisolon-21-acetat
das 16-Fluormethylenprednison-21-acetat
hergestellt. Xmax 239 ταμ.
B ei spiel 11
a) Mikrobiologische lla-Hydroxylierung
a) Mikrobiologische lla-Hydroxylierung
In einem Kleinfermenter werden 15 1 einer Nährlösung
aus 3% Saccharose, 1% Malzextrakt, 0,1% Hefeextrakt, 0,2% NaNO3, 0,1% KH2PO4, 0,05%
MgSO4-7 H2O, 0,01% FeSO4-7 H2O, pH eingestellt
auf 6,8, mit 750 ml Schüttelkultur von ,Penicillium sp. (Sammlung E. Merck Nr. 2168) beimpft
und unter starkem Rühren und Belüften bei 28 0C
bebrütet. Nach etwa 30stündigem Wachstum werden 5 g lo-Fluormethylen-Ha-hydroxy-progesteron, gelöst
in 300 ml Methanol, zugesetzt. Die Umsetzung wird papierchromatographisch verfolgt und ist nach
etwa 15 Stunden beendet. Die Kulturlösung wird 3mal mit dem gleichen Volumen Chloroform extrahiert,
die vereinigten Extrakte werden im Vakuum eingedampft und der Rückstand mit Petroläther
digeriert. Das ungelöste 16-Fluormethylen-4-pregnenlla,17a-diol-3,20-dion wird isoliert und aus Essigester
umkristallisiert. Xmax 240 ηΐμ; F. 258 bis 259°C;
[a]D = +19° (Dioxan).
b) Oxydation
2,3 g 16-Fluormethylen-4-pregnen-lla,17a-diol-3,20-dion
werden in 23 ml "absolutem Pyridin gelöst und bei 00C mit einem Gemisch aus 2,3 g Chromsäureanhydrid
und 23 ml Pyridin versetzt. Nach 12 Stunden wird das Reaktionsgemisch in 250 ml Essigester eingegossen, der Niederschlag abgesaugt
und mit Essigester gut gewaschen. Die vereinigten Essigesterlösungen werden eingeengt, wobei das
lo-Fluormethylen^-pregnen-na-ol^ll^O-trionauskristallisiert.
Xmax 238 χημ.
Chemische !^Dehydrierung
11 g 16 - Fluormethylen - 4 - pregnen - 17a - ol-3,11,20-trion
werden in 660 ml tert.Butanol mit 7,2 g Selendioxyd und 5,5 ml Eisessig 48 Stunden unter
Rückfluß erhitzt. Das ausgefallene Selen wird abfiltriert und das Filtrat eingeengt. Das anfallende
16-Fluormethylen-l,4-pregnadien-17a-ol-3,ll,20-trion wird . zur Reinigung über Kieselgel filtriert.
Xmax 239 Πΐμ. - . . ·
d) 21-Acetoxylierung
Analog Beispiel 1, a) kann aus 16-Fluormethylen-
4-pregnen-17a-ol-3,ll,20-trion das 16-Fluormethylencortison-21-acetat
hergestellt werden. Xmax 238 πΐμ.
Bei sp ie I 12
a) Mikrobiologische llß-Hydroxylierung
a) Mikrobiologische llß-Hydroxylierung
In einem Kleinfermenter werden 151 einer Nährlösung
aus 3% Saccharose, 1% Malzextrakt, 0,1% Hefeextrakt, 0,2% NaNO3, 0,1% KH2PO4, 0,05%
MgSO4-7 H2O, 0,01% FeSO4-7 H2O, pH. eingestellt
auf 6,8, mit 750 ml einer Submerskultur von Curvularia lunata (Wakker) Boadijn beimpft und
unter starkem Rühren und Belüften bei 28? C bebrütet.
Nach etwa 18stündigem Wachstum werden 5 g.,16-Fluormethylen-17a-hydroxy-progesteron, gelöst
in 300 ml Methanol, zugesetzt. Die Umsetzung wird papierchromatographisch verfolgt; nach etwa
24 Stunden ist. kein Ausgangsmaterial mehr nachzuweisen. Die Kulturlösung wird 3mal mit dem
gleichen Volumen Chloroform extrahiert. Die vereinigten Extrakte werden unter vermindertem Druck
eingedampft und der aus lo-Fluormethylen^-pregnenlljS,17a-diol-3,20-dion
bestehende Rückstand nach Digerieren mit Petroläther aus Essigester umkristallisiert.
Xmax 241 Πΐμ.
ei) Mikrobiologische 1 ^^Dehydrierung'
55
In einem Fermenter werden 15 1 Nährlösung aus 1% Hefeextrakt (pH 6,8) mit 0,5 1 S.chüttelkultur
von Bacillus sphaericus (Sammlung E. Merck Nr. 1001) beimpft. Die Kultur erhält unter ständigem
Rühren und Belüften bei 28 0C nach etwa .11 Stunden einen Zusatz von 7,5 g 16-Flu"ormethylen-4-pregnen-17a-olr3,ll,20-trion,
die in 250 ml Methanol gelöst sind. Nach etwa 33 Stunden ist die Dehydrierung,
die papierchromatographisch verfolgt wird, beendet. Die. Fermentationsbrühe wird mit Chloroform ausgeschüttelt,
die vereinigten Extrakte werden einge-. , dampft, wobei das lo-Fluormethylen-l^-pregnadien-17q-ol-3,l.l,20-trion
auskristallisiert. Xmax 239 ΐημ.
b) Mikrobiologische 1(2)-Dehydrierung
in einem Fermenter werden 15 1 einer Nährlösung aus 1% Hefeextrakt (pH 6,8) mit 0,51 Schüttelkultur
von Bacillus sphaericus (Sammlung E. Merck Nr. 1001) beimpft. Die Kultur erhält unter ständigem
Rühren und Belüften bei 28° C nach etwa 9 Stunden einen Zusatz von 8,0 g 16-Fluormethylen-4-pregnen-Iij9,17a-diol-3,20-dion,
die in 230 ml Methanol gelöst sind. Nach etwa 25 bis 30 Stunden ist die Dehydrierung, die papierchromatographisch verfolgt
wird, beendet. Die Fermentationsbrühe wird 3mal mit Chloroform ausgeschüttelt, die vereinigten
Extrakte werden eingedampft, wobei das 16-Fluormethylen-l,4-pregnadien-ll/3,17a-diol-3,20-dion
auskristallisiert. Xmax 242 Πΐμ.
c) Oxydation
Analog Beispiel 11, b) kann aus 16-Fluormethylenl,4-pregnadien-ll|3,17a-diol-3,20-dion
das 16-Fluormethylen-l,4-pregnadjen-17w-ol-3,ll,20-trion
herger stellt werden. Xmax 239 ηΐμ. -:. .
'■ d)'21-Äcetoxylierung
Analog Beispiel 1, a) kann aus-16-Fluormethylenl,4-pregnadien-17a-ol-3,ll,20-trion.
das 16-Flüormethylen - prednison - 21 - acetat erhalten werden.
Xmax 239 Πΐμ. .
e) Analog Beispiel. 1, a)^ kann aus dem nach
Stufe 12, a) erhaltenen 16-Fluormethylen-4-pregnen-
ll/U7a-diol-3,20-dion das 16-Fluormethylen-hydrocortison-21-acetat
hergestellt werden. lmax 241 ηΐμ.
Beispiel 13
a) 21-Acetoxylierung
a) 21-Acetoxylierung
Analog Beispiel 1, a) erhält man aus 16-Fluormethylen-6a-methyl-4-pregnen-17a-ol-3,20-dion
das 16-Fluormethylen-6a-methyl-4-pregnen-17«,21-diol-3,20-dion-21-acetat.
F. 182 bis 183°C; [a]2 D° = +56,7°
(in Dioxan); ?.nax 241 ηΐμ, Ε}* 400.
b) Verseifung
Analog Beispiel 1, b) erhält man aus 16-Fluormethylen-oa-methyl-i-pregnen-17a,21
-diol-3,20-dion-21-acetat das freie 16-Fluormethylen-6a-methyl-4-pregnen-17a,21-diol-3,20-dion.
c) Mikrobiologische 1 !^-Hydroxylierung
Analog Beispiel 2, a) erhält man aus dem rohen 16-FIuormethylen-6a-methyl-4-pregnen-17a,21-diol-3,20-dion
das lo-Fluormethylen-öa-methyM-pregnenll/U7a,21-triol-3,20-dion.
F. 243 bis 244°C; [a]l° = +54,0° (in Dioxan); Xmax 242πΐμ, E}*m 375.
d) Mikrobiologische 1-Dehydrierung
Analog Beispiel 1, gi) erhält man aus 16-Fluormethylen
- 6a - methyl - 4 - pregnen - ίίβ,Πα,2ί - triol-3,20-dion
das lo-Fluormethylen-oa-methyl-l^-pregnadien-ll/9,17a,21-triol-3,20-dion;
F. 257 bis 258°C; [a]l° = +14,3° (in Dioxan); lmax 243 πΐμ, Ei* 395.
a) Eine Lösung von 7 g 16-Fluormethylenprednisolon
[erhalten nach Beispiel 8, Ci)] in 500 ml absolutem Dioxan wird mit 2,6 ml trockenem
Pyridin und 2,2 ml frisch destilliertem Chloracetylchlorid versetzt. Nach 16stündigem Stehen bei Raumtemperatur
wird das Gemisch in 5 1 Wasser eingerührt, die Fällung abgesaugt, gut mit Wasser gewaschen,
getrocknet und aus Chloroform umkristallisiert. Das erhaltene 16-Fluormethylen-prednisoIon-21-chloracetat
schmilzt bei 211 bis 212°; \aYS = +38° (in Dioxan); Xmax 243 ηΐμ, E}*m 337.
b) Ein Gemisch von 3,9 g 16-Fluormethylenprednisolon,
3 g Diäthylaminoacetylchloridhydrochlorid, 10 ml Pyridin, 100 ml Aceton und 5 ml
Wasser wird 1 Stunde gekocht, dann im Vakuum eingedampft und der Rückstand in Chloroform aufgenommen.
Die Chloroformlösung wird mehrfach mit Wasser gewaschen, eingeengt, im Vakuum zur
Trockne eingedampft und das erhaltene 16-FIuormethylen
- prednisolon - 21 - diäthylaminoacetat aus Essigester umkristallisiert. F. 182 bis 184°C; [a]i°
= +35° (in Dioxan). Das Hydrochlorid wird in üblicher Weise in Chloroform mit ätherischer Salzsäure
erhalten; F. 255 bis 257°C.
Claims (1)
- Patentanspruch:Verfahren zur Herstellung von 16-Chlormethylen- bzw. -Fluormethylensteroiden der allgemeinen Formel I ·CH2RCHXR = OH oder eine O-Acylgruppe;
R2 = H, α- oder /S-OH oder =O;
X = Cl oder F;
Y = H oder CH3,dadurch gekennzeichnet, daß man nach an sich bekannten Methoden ein 16-Chlormethylen- oder -Fluormethylen-i14-3-keto-steroid der allgemeinen FormelCH2RiCHXRi = H, OH oder eine O-Acylgruppe;
X und Y haben die angegebene Bedeutung,in Ha- oder Umstellung fermentativ hydroxyliert, das erhaltene 11-Hydroxy-steroid gegebenenfalls mit einem milden Oxydationsmittel zu dem entsprechenden 11-Keto-steroid oxydiert und daß man auf einer beliebigen Verfahrensstufe ein für Ri stehendes Wasserstoffatom nach an sich bekannten chemischen Methoden in eine O-Acyl- bzw. OH-Gruppe überführt, gegebenenfalls nach an sich bekannten chemischen oder mikrobiologischen Methoden in 1(2)-Stellung eine Doppelbindung einfuhrt und gegebenenfalls nach an sich bekannten Methoden eine in der erhaltenen Verbindung vorhandene 21-O-Acylgruppe alkalisch verseift bzw. einen etwa erhaltenen 21-Alkohol verestert oder in ein Estersalz überführt.
Priority Applications (6)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DEM49747A DE1213402B (de) | 1961-07-20 | 1961-07-20 | Verfahren zur Herstellung von 16-Chlor-methylen- bzw. -Fluormethylen-steroiden |
| GB2208662A GB963428A (de) | 1961-06-08 | 1962-06-07 | |
| BE618731A BE618731A (fr) | 1961-06-08 | 1962-06-08 | Nouveaux stéroïdes et méthodes pour leur préparation |
| FR900214A FR2768M (fr) | 1961-06-08 | 1962-06-08 | Nouveaux stéroides de la série du prégnane. |
| CH785862A CH404662A (de) | 1961-07-20 | 1962-06-29 | Verfahren zur Herstellung von 16-Halogenmethylen-steroiden |
| SE808662A SE306084B (de) | 1961-07-20 | 1962-07-20 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DEM49747A DE1213402B (de) | 1961-07-20 | 1961-07-20 | Verfahren zur Herstellung von 16-Chlor-methylen- bzw. -Fluormethylen-steroiden |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DE1213402B true DE1213402B (de) | 1966-03-31 |
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ID=7306609
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DEM49747A Pending DE1213402B (de) | 1961-06-08 | 1961-07-20 | Verfahren zur Herstellung von 16-Chlor-methylen- bzw. -Fluormethylen-steroiden |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| DE (1) | DE1213402B (de) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0145493A2 (de) | 1983-12-14 | 1985-06-19 | The Upjohn Company | 11-Difluormethyl- und 11-Fluormethylen-Steroide |
-
1961
- 1961-07-20 DE DEM49747A patent/DE1213402B/de active Pending
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0145493A2 (de) | 1983-12-14 | 1985-06-19 | The Upjohn Company | 11-Difluormethyl- und 11-Fluormethylen-Steroide |
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