CN1376397A - 灵芝茶及其制作方法 - Google Patents

Abstract

本发明涉及一种灵芝茶及其制作方法,它采用灵芝粉、破壁孢子粉、枸杞、甘草、蛋白糖、茶叶、干菊花、炒槐米、炒大枣、蜂蜜和灵芝多糖为原料,制成的颗粒状保健食品,该灵芝茶经实验证实具有调节免疫的保健作用,有清肝、疏风降火功效,治疗高血压也有一定功效,可降血脂、软化血管、防止心脑血管动脉硬化,起到抗衰老、延年益寿的作用。

Description

灵芝茶及其制作方法

技术领域

本发明涉及一种灵芝茶，属保健食品领域。

本发明还涉及该灵芝茶的制作方法。

背景技术

目前，市场上灵芝保健茶种类较多，多数可调节人体的免疫功能，但效果不显著，尤其是由于免疫功能低下所引起的频繁感冒或者是长期失眠的人群饮用，其效果更加不明显。

发明内容

本发明的目的正是为了弥补上述已有技术的不足，而提供一种对频繁感冒或者是长期失眠的人群饮用的灵芝茶，从而增加了灵芝茶的品种，又可提高此类人群的免疫功能，减少疾病的发生，提高健康水平，更好的工作、学习和生活。

本发明还提供该灵芝茶的制作方法。

本发明的目的是通过下列技术方案实现的：

一种灵芝茶，其特征在于它是由下述重量配比的原料制成的颗粒状茶，

灵芝粉40-60份，破壁孢子粉5-15份，枸杞5-15份，甘草3-8份，蛋白糖3-8份，茶叶2-6份，干菊花2-5份，炒槐米1-5份，炒大枣1-5份，蜂蜜1-3份，灵芝多糖0.5-1.0份。

所述的破壁孢子粉是用微粉机在20-30℃，速度700-900转/每分制成的。

所述的灵芝茶的制作方法，其特征在于它按下述步骤进行：

a)将灵芝子实体在80℃温度下烘干2-3小时然后粉碎至120目制成灵芝粉；

b)将灵芝按常规方法水煎煮提取液进行浓缩喷雾制粉，即制成灵芝多糖；

c)将1-5份炒槐米、3-8份甘草、2-6份茶叶和2-5份干菊花混合粉碎至120目制成混合粉料；

d)将1-5份炒大枣和5-15份枸杞加5-6倍的水，蒸煮2-3小时，去渣得到混合浆料；

e)取(a)项的灵芝粉40-60份，(b)项的灵芝多糖0.5-1.0份与(c)项的混合粉料、(d)项的混合浆料，再加入破壁孢子粉5-15份，蛋白糖3-8份，蜂蜜1-3份加入混料机制团，再按常规方法制成颗粒状；

f)然后在80℃温度进行烘干4-6小时，即为灵芝茶产品。

本发明的灵芝茶选择灵芝原料，是根据灵芝的药用价值，据记载灵芝性味苦、干、无毒、益心气、安神、补中、增智慧、坚筋骨，近代研究人员对灵芝的研究结果表明，灵芝的有效成分非常丰富，对人体有保健作用的有灵芝多糖、灵芝酸、腺苷、赤芝孢子内脂，灵芝纤维等有效成分，菊花、槐米和茶叶有清肝疏风降火功效，治疗高血压有一定功效，现代医学证明，槐米含亚油酸达53％可降血脂、软化血管、防止心脑血管动脉硬化，起到抗衰老、延年益寿的作用，灵芝加甘草有助于迁延性肝炎，灵芝加绿茶可补中益气、增强筋骨、美顔等功效，菊花所含有的黄酮类物质有扩张冠状动脉作用，并具有镇静安神、降血脂功效，槐米性味甘凉，经过炒制又用水沏味鲜美又有兴奋作用，又有营养的成分，灵芝加蜂蜜适用于脾肾两亏、头晕失眠、虚劳咳嗽、消化不良等症，破壁孢子粉和灵芝提取物具有增强单核吞噬细胞系与NK细胞的免疫功能，增强体液免疫功能，增强细胞免疫功能，促进免疫细胞因子的产生，改善衰老所致的免疫功能衰退。

本发明的灵芝茶经过免疫调节试验和毒理试验，其结果如下：

1、免疫调节实验

实验动物为健康昆明小鼠雌性，体重18-22g，

灵芝茶人体推荐量为每天6g/60kg体重，扩大10倍为中剂量即1.0g/kg，试验组上、下各设一个剂量组3.0g/kg高剂量和0.5g/kg低剂量。

用6g灵芝茶用沸水1000ml煮30min，浓缩50倍供实验用，

对照组服水，连续灌胃30天，测定各项免疫指标。实验结果：

(1)灵芝茶对小鼠迟发型变态反应(DTH)的影响

见表1

      表1  灵芝茶对小鼠迟发型变态反应(DTH)的影响

组别	剂量g/kg	动物数(只)	足趾肿胀度(mm)	P值
					对照组	0	15	0.23±0.10	/
实验组	0.5	15	0.26±0.07	＞0.05

	1.0	15
						3.0	15

由表1可见，经口给予小鼠灵芝茶30天，中、高剂量组能提高小鼠足趾肿胀度与水对照组比较有极显著差异(P＜0.01)，低剂量组与水对照组比较无显著性差异(P＞0.05)。

(2)灵芝茶对小鼠单核-巨噬细胞吞噬功能的影响

见表2

         表2  灵芝茶对小鼠单核-巨噬细胞吞噬功能的影响

组别	剂量g/kg	动物数(只)	吞噬指数(a)	P值
					对照组	0	15	4.21±0.64	/
0.5	15	4.39±0.67	＞0.05
				实验组		1.0	15	4.27±0.59	＞0.05
3.0	14	4.37±1.18	＞0.05

由表2可见，经口给予小鼠灵芝茶30天，低、中、高三个剂量组均不能提高小鼠的碳廓清吞噬指数与水对照组比较无显著性差异(P＞0.05)。

(3)灵芝茶对小鼠抗体生成细胞数的影响

见表3

          表3  灵芝茶对小鼠抗体生成细胞数的影响

组别	剂量g/kg	动物数(只)	溶血空斑数(×103/全脾)	P值
					水对照组	0	14	102.2±53.6
实验组	0.5	14	175.2±117.7	＞0.05
					1.0	14	185.6±77.9	＜0.01
	3.0	15	175.2±87.5	＜0.05

由表3可见经口给予小鼠灵芝茶30天，中、高剂量组能提高小鼠抗体生成细胞数，与水对照组比较有显著性差异(P＜0.01，P＜0.05)，低剂量组与水对照组比较无显著性差异(P＞0.05)。

(4)灵芝茶对小鼠脏器/体重比值的影响

见表4

                 表4  灵芝茶对小鼠脏器/体重比值的影响

组别	剂量g/kg	动物数(只)	脾脏/体重比值(g/100g)	P值	胸腺/体重比值	P值
							水对照组	0	15	0.66±0.11	/	0.28±0.06
实验组	0.5	15	0.73±0.12	＞0.05	0.34±0.06	＜0.05
							1.0	15	0.77±0.13	＜0.05	0.33±0.06	＜0.05
	3.0	15	0.73±0.16	＞0.05	0.39±0.05	＜0.01

由表4可见，经口给予小鼠灵芝茶30天，中剂量组小鼠的脾脏/体重比值与水对照组比较有显著性差异(P＜0.05)，低中高三剂量组胸腺/体重比值与水对照组比较有显著性差异(P＜0.05，P＜0.05，P＜0.01)。

(5)灵芝茶对小鼠体重的影响

见表5

             表5  灵芝茶对小鼠体重的影响

组别	免疫一组			免疫二组
							剂量g/kg	动物数(只)	增重(g)	P值	动物数(只)	增重(g)	P值
0.0	15	10.2±2.6		15	10.9±2.1
							0.5	15	11.0±2.5	＞0.05	15	11.0±2.8	＞0.05
1.0	15	11.2±1.9	＞0.05	15	11.2±2.1	＞0.05
							3.0	15	12.3±2.8	＜0.05	15	12.2±1.7	＞0.05

由表5可见，经口给予小鼠灵芝茶30天，免疫一组高剂量小鼠的体重增加值与小鼠的体重增加值与水对照组比较有显著性差异(P＜0.05)，其余各组小鼠的体重增加值与水对照组比较均无显著影响。

2、灵芝茶毒理学实验

实验动物为二级昆明小鼠和二级和Wistar大鼠。

按6g灵芝茶加水1000ml煮30min配制浓缩50倍供试验用。

(1)小鼠急性毒性试验

实验动物小鼠20只，雌雄各10只，体重为18-22g，每天两次灌胃小鼠，剂量为20g/kgbw、观察14d，观察动物中毒表现及死亡情况。实验结果见表6

           表6、小鼠急性毒性实验结果

动物品种	性别	途径	LD50(g/kg.bw)
				小鼠	雄	经口	＞20
小鼠	雌	经口	＞20

急性毒性试验结果，灌胃给予受试物后，两种性别的小鼠均未见明显中毒症状，14d内动物无死亡。见表6因此认为该受试物对两种性别小鼠的急性毒性LD₅₀均大于20g/kg.bw根据急性毒性分级标准，该样品属实际无毒物质。

(2)遗传毒性试验

(2.1)Ames试验

试验菌株为鼠伤寒沙门氏菌组氨酸缺陷型TA97、TA98、TA100、TA102，体外活化系统为多氯联苯诱导的大鼠肝匀浆制备的δ-9混合液，设250、500、1000、2500、5000μg/_皿5个剂量，设自发回变组、溶剂对照组。

结果见表7、8

               表7Ames试验结果(第一次)( X±S)剂量            TA97                 TA98               TA100                 TA102(μg/皿)      -S-9+S-9             -S-9+S-9           -S-9+S-9               -S-9+S-95000     139±7.1   159±12.0  23±1.4  31±4.2  147±16.9  150±11.3  242±21.2  240±19.72500     160±12.7  168±8.4   26±4.2  39±4.2  137±16.9  147±5.6   260±4.2   261±15.51000     163±4.2   175±14.8  28±1.4  33±2.8  131±16.3  138±11.3  256±18.3  270±18.3500      169±4.9   179±8.4   32±4.2  39±2.8  139±13.4  143±8.4   265±11.3  271±22.6250      166±11.3  173±12.7  34±5.6  36±4.2  144±9.8   149±12.7  276±21.2  274±12.7自发回变 130±9.8   136±10.5  30±2.8  34±4.2  136±14.8  134±14.8  278±16.9  285±29.6溶剂对照 138±2.8   147±9.8   35±4.2  38±2.8  135±12.7  139±14.1  273±25.4  282±14.1阳性对照*830(1)     907(2)     854(3)   ＞2000(2) ＞2000(4) 1194(2)    ＞2000(5)  1202(2)

               表8Ames试验结果(第二次)( X±S)剂量          TA97                  TA98              TA100                  TA102(μg/皿)      -S-9+S-9             -S-9+S-9           -S-9+S-9               -S-9+S-95000     144±15.5  161±11.3  28±1.4  32±1.4  144±15.5  159±21.2  260±31.7  260±18.32500     151±8.4   165±9.8   29±1.4  32±2.8  148±14.8  154±14.1  267±22.6  270±22.61000     167±15.5  178±10.5  33±5.6  35±4.2  147±17.6  158±9.8   268±21.2  284±25.4500      174±5.6   182±14.1  35±1.4  34±4.2  153±15.5  155±16.9  275±21.2  282±16.9250      179±8.4   187±2.8   36±2.8  37±4.2  157±9.8   159±11.3  283±24.0  291±25.4自发回变 141±10.5  150±9.1   34±5.6  37±2.8  143±12.7  141±14.1  283±18.3  298±22.6溶剂对照 140±2.8   154±9.8   33±2.8  38±4.2  140±16.9  146±15.5  280±15.5  295±15.5阳性对照*830(1)     907(2)     854(3)   ＞2000(2)＞2000(4)  1194(2)    ＞2000(5)  1202(2)(2.2)小小鼠骨髓嗜多染红细胞微核试验，选择体重25-30g小鼠50只，随机分为五组，每组10只，雌雄各半，3个实验组中受试物剂量分别为2.50、5.00、10.0g/kg.bw，另设阴性对照组和阳性对照组，(环磷酰胺，40g/kg.bw)，采用间隔24h两次经口灌胃法进行试验，末次与给受试物后6h处死动物，常规制片，每只动物镜检1000个嗜多染红细胞，记录微核细胞数，计算微核率。结果见表9

                       表9  小鼠骨髓嗜多染红细胞微核试验结果

性别	剂量(g/kg.bw)	动物数	检查细胞数	微核数	微核率(‰)
						♂	2.50	5	5×1000	9	1.8
5.00	5	5×1000	10	2.0
					10.0		5	5×1000	9	1.8
阴性对照	5	5×1000	9	1.8
					阳性对照		5	5×1000	146	29.2**
♀	2.50	5	5×1000	10							2.0
					5.00	5	5×1000	10	2.0
	10.0	5	5×1000	9						1.8
					阴性对照	5	5×1000	10	2.0
	阳性对照	5	5×1000	155						31.0**

**P＜0.01(与阴性对照组比较，Poisson分布检验)。

小鼠骨髓嗜多染红细胞微核试验结果表明：由表9可见，受试物各剂量组微核率与阴性对照组之间无显著性差异(P＞0.05)，而环磷酰氨阳性对照组与阴性对照组之间有极显著性差异(P＜0.01)，说明该样品无致小鼠骨髓嗜多染红细胞微核产生作用。

(2.3)小鼠精子畸形试验

选择25-35g雄性小鼠25只，随机分为5组，每组5只，3个试验组，剂量为2.50、5.00、10.0g/kg.bw，另设阴性对照组和阳性对照组(环磷酰氨，40g/kg.bw)，灌胃，连续5d，每只动物计数1000个结构完整的精子，畸变类型和数量，计算精子畸形率，试验结果见表8。

                        表10  小鼠精子畸形实验结果

剂量(g/kg.bw)		动物数	受检精子数	精子畸形数	精子畸形率(％)
						试验组	2.50	5	5×1000	114	2.28
5.00	5	5×1000	117	2.34
					10.0		5	5×1000	116	3.32
阴性对照		5	5×1000	127							2.54
					阳性对照		5	5×1000	292	5.84**

**P＜0.01(与阴性对照组比较，X²检验)。

小鼠精子畸形试验结果表明：由表10可见，受试物各剂量组小鼠精子畸形率与阴性对照组之间无显著性差异(P＞0.05)，而环磷酰氨阳性对照组与阴性对照组之间有极显著性差异(P＜0.01)，说明该样品无致小鼠精子畸形作用。

(2.4)小鼠睾丸染色体畸形试验：

选择体重30-35g雄性小鼠25只，随机分为5组，每组5只，剂量2.50、5.00、10.0g/kg.bw，另设阴性对照组和阳性对照组(环磷酰氨，40g/kg.bw)，连续灌胃5d，镜检100个中期分裂相，畸变类型和数量，计算染色体畸变率，

试验结果见表11

                     表11  小鼠睾丸染色体畸变试验结果

剂量(g/kg.bw)	观察细胞数	常染色体分离N     ％	性染色体分离N     ％	染色体畸变N     ％
					2.50	5×100	2     0.4	13    2.6	1     0.2
5.00	5×100	2     0.4	14    2.8	1     0.2
					10.0	5×100	3     0.6	9     1.8	1     0.2
阴性对照	5×100	3     0.6	11    2.2	1     0.2
					阳性对照	5×100	24    4.8**	33     6.6**	34    6.8**

^**P＜0.01(与阴性对照组比较，检验)。

小鼠睾丸染色体畸变试验结果表明：由表11可见，受试物各剂量组与阴性对照组之间无显著性差异(P＞0.05)，而阳性对照组与阴性对照组之间有显著性差异(P＜0.01)，说明该样品未对小鼠睾丸染色体畸变产生影响。

(2.5)大鼠30d喂养试验

选择体重40-60g断乳大鼠80只，随机分为4组，每组20只，雌雄各半，剂量为10.0、20.0、40.0g/kg.bw)经口灌胃每天两次，对照组喂基础饲料，记录大鼠进食量，体重、连续观察30d。

试验结果表12、13

                     表12、30d喂养对大鼠体重影响(g， X±S)

性别	剂量(g/kg.bw)	始重	第1周	第2周	第3周	第4周
							♂	0.00	59.70±3.47	96.00±8.76	131.00±8.23	154.53±12.8	180.00±6.67
10.0	57.50±2.66	104.5±11.7	134.00±7.38	145.50±28.7	184.50±5.99
						20.0		58.00±4.00	98.50±13.8	130.00±5.77	151.50±7.47	179.00±9.66
40.0	57.60±2.76	101.5±12..3	130.00±7.07	151.50±7.47	181.50±7.47
						♀		0.0	59.70±2.33	81.00±8.43	111.00±12.2	130.00±15.6	157.50±11.8
10.0	53.00±3.50	85.00±4.71	120.50±5.27	140.00±7.07	160.50±8.64
							20.0	54.00±5.16	88.50±7.09	125.00±6.67	144.5±5.99	166.50±7.09
40.0	54.50±4.38	89.50±6.43	123.00±8.56	139.50±11.6	162.00±11.6

                       表13、30d喂养对大鼠总食物利用率的影响(g， X±S)

性别	剂量(g/kg.bw)	体重增重(g)	进食量(g)	食物利用率(％)
					♂	0.00	119.30±8.53	426.00±20.11	28.00
10.0	126.50±6.69	445.50±23.82	28.40
				20.0		120.90±8.61	438.00±15.49	27.60
40.0	124.40±7.09	435.00±19.86	28.60
				♀		0.00	99.60±13.93	329.00±37.25	30.27
10.0	107.50±7.91	348.00±25.30	30.89
					20.0	113.50±6.26	361.50±37.79	31.39
40.0	106.50±10.01	359.50±42.39	29.62

从动物的一般表现、体重、食物利用率：实验中各实验组动物均未出现拒食现象，生长活动正常，体重和食物利用率结果分别见表12和表13，从表中看出各实验组动物体重与对照组之间无显著性差异(P＞0.05)，各实验组动物进食量、食物利用率与对照组之间亦无显著性差异(P＞0.05)。

血常规及生化指标：

结果见表14、15、16-1、16-2，

         表14、大鼠30d喂养试验血液学检查结果( X±S)

性别	剂量(g/kg.bw)	血红蛋白(g/l)	红细胞计数(×1012/L)	白细胞计数(×109/L
					♂	0.00	143.40±6.19	6.71±0.35	10.70±0.21
10.0	154.40±4.88	7.34±0.18	10.92±0.55
				20.0		153.80±5.63	7.57±0.32	11.02±1.17
40.0	150.60±6.34	7.40±0.45	10.00±0.44
				♀		0.00	140.40±9.09	6.67±0.43	10.48±0.28
10.0	143.20±2.77	6.95±0.20	10.80±0.48
					20.0	150.00±3.61	7.42±0.29	10.82±0.59
40.0	149.20±4.32	7.35±0.35	11.38±3.12

                       表15、30d喂养对大鼠白细胞的影响

性别	剂量(g/kg.bw)	中性(％)	淋巴(％)	其它(％)
					♂	0.00	17.40	81.05	1.55
10.0	14.42	83.84	1.74
				20.0		14.56	83.48	1.96
40.0	14.50	83.48	1.02
				♀		0.00	15.10	83.24	1.66
10.0	15.00	83.56	1.44
					20.0	15.64	83.12	1.24
40.0	15.10	83.80	1.26

                  表16-1、大鼠30d喂养试验末期血液生化结果( X±S)

性别	剂量(g/kg.bw	谷丙转氨酶(U/L)	谷草转氨酶(U/L)	尿素氮(mmol/L)	肌酐(umol/L)	胆固醇(mmol/L)
							♂	0.00	58.17±8.62	150.43±11.52	6.97±0.92	32.15±2.03	1.47±0.21
10.0	65.21±3.58	146.25±34.82	7.73±1.04	31.22±1.79	1.52±0.21
						20.0		57.35±4.77	134.05±12.05	7.76±0.61	29.44±1.80	1.54±0.11
40.0	58.80±5.74	151.79±37.47	7.13±0.32	27.68±1.55	1.55±0.21
						♀		0.00	57.75±15.4	184.41±18.90	7.90±1.23	34.53±4.51	1.69±0.14
10.0	49.59±6.72	184.86±19.21	7.29±0.17	33.65±1.61	1.60±0.31
							20.0	53.43±6.42	189.87±46.44	7.49±0.55	30.03±1.76	1.58±0.05
40.0	56.18±8.83	169.59±28.09	7.54±1.50	33.86±5.14	1.68±0.26

                   表16-2、大鼠30d喂养试验末期血液生化结果( X±S)

性别	剂量(g/kg.bw)	甘油三脂(mmol/L)	血糖(mmol/L)	总蛋白(g/L)	白蛋白(g/L)
						♂	0.00	0.92±0.26	7.40±0.90	68.60±2.23	43.29±1.61
10.0	0.47±0.15	7.94±0.67	74.27±2.84	46.00±1.27
					20.0		0.39±0.11	7.90±0.57	76.95±2.98	46.36±0.99
40.0	0.60±0.17	7.97±0.54	73.43±3.94	43.28±2.14
					♀		0.00	0.99±0.33	7.51±0.54	76.76±1.72	46.44±3.21
10.0	0.67±0.17	7.94±1.49	76.00±5.20	47.52±1.85
						20.0	0.59±0.25	7.29±0.88	75.47±3.64	46.61±2.18
40.0	0.95±0.45	7.49±1.19	70.26±4.93	46.64±4.33

血常规及生化指标结果见表14、15、16-1、16-2。从表中看出各实验组的血红蛋白、红细胞总数、白细胞计数及其分类、谷丙转氨酶、谷草转氨酶、尿素氮、肌酐、胆固醇、甘油三脂、血糖、总蛋白、白蛋白等指标均在正常范围之内，与阴性对照之间均无显著性差异(P＞0.05)。

4、30d脏体比较结果见表17

                  表17、大鼠30d喂养脏体比较结果( X±S)

性别	剂量(g/kg.bw)	肝/体(％)	脾/体(％)	肾/体(％)
					♂	0.00	4.75±0.96	0.34±0.04	0.98±0.02
10.0	4.26±0.19	0.32±0.01	0.94±0.01
				20.0		4.23±0.16	0.31±0.02	0.94±0.01
40.0	4.34±0.17	0.33±0.02	0.95±0.02
				♀		0.00	4.21±0.31	0.30±0.02	0.99±0.01
10.0	4.37±0.34	0.31±0.03	0.93±0.02
					20.0	4.21±0.41	0.33±0.02	0.93±0.02
40.0	4.22±0.32	0.33±0.03	0.94±0.03

大体及组织学检查：大体观察各实验组未发现异常，解剖时亦未发现膀胱、肝总管结石，脏器系数未见异常(见表17)。镜下观察对照组和实验组动物的肝、脾、肾、胃、十二指肠、睾丸或卵巢等均未见有意义的病理改变。小结：

1、小鼠急性毒性试验：根据急性毒性分级标准，该样品属无毒物质。

2、遗传毒性试验：

2.1Ames试验：结果为阴性。

2.2小鼠骨髓嗜多染红细胞微核试验：结果为阴性。

2.3小鼠精子畸形试验：结果为阴性。

2.4小鼠睾丸染色体畸变试验：结果为阴性。

3、大鼠30d喂养试验：在试验期内各试验组动物生长发育良好，体重、

食物利用率、血常规、血生化、脏器系数等各项指标均在本室正常值范围

内，与对照组之间均无显著性差异(P＞0.05)。病理组织学检查亦未见异

常，说明该样品对大鼠各项观察指标未产生明显毒性作用。

5、本发明的灵芝茶，经过检测其有效成份为多糖为23.5mg/g，理化指标为：

     水分        ≤12％，

     灰分        ≤9％，

     水浸出物    ≥30％，

     砷(以AS计)为≤1.0mg/kg，

     铅(以Pb计)为≤1.0mg/kg，

     汞(以Hg计)为≤0.3mg/kg，

      六六六      ≤0.2mg/kg，

      滴滴涕      ≤0.2mg/kg，

微生物指标：

      菌落无数    ≤1000fu/g，

      大肠菌      ≤40MPN/100g，

      霉菌        ≤25fu/g，

      酵母        ＜25fu/g，

      致病菌      不得检出

由于采取上述技术方案使本发明技术具有如下优点及效果：

a)实验证明灵芝茶具有调节免疫的保健作用，有清肝、疏风降火功效，治疗高血压也有一定的功效，可降血脂、软化血管、防止心脑血管动脉硬化起到抗衰老、延年益寿的作用；

b)配方科学合理，制备方法简单。

具体实施方式

实施例1、

首先将灵芝子实体在80℃温度下，烘干2小时，然后用粉碎机粉碎至120目，制成灵芝粉，再取灵芝按常规方法水煎煮提取液经浓缩喷雾制粉为灵芝多糖，取1kg炒槐米，甘草8kg，茶叶2kg，干菊花5kg混合用粉碎机粉碎至120目混合粉料，取1kg炒大枣，枸杞15kg，加水80kg蒸煮2小时后，去渣得到混合浆料，与上述混合粉料混合，再加入灵芝粉40kg，灵芝多糖1.0kg，用微粉机在20℃速度900转/每分制成的破壁孢子粉5kg，蛋白糖8kg，蜂蜜1kg混合用混料机制团，按常规方法制成颗粒状，然后在80℃温度下烘干4小时，即为灵芝茶。

实施例2

首先将灵芝子实体在80℃温度下，烘干3小时，然后用粉碎机粉碎至120目，制成灵芝粉，再取灵芝按常规方法水煎煮提取液经浓缩喷雾制粉为灵芝多糖，取3kg炒槐米，甘草5kg，茶叶4kg，干菊花3kg混合用粉碎机粉碎至120目混合粉料，取3kg炒大枣，枸杞10kg，加水72kg蒸煮2.5小时，去渣得到混合浆料，与上述混合粉料混合，再加入灵芝粉50kg，灵芝多糖0.8kg，用微粉机在25℃速度800转/每分制成的破壁孢子粉10kg，蛋白糖5kg，蜂蜜2kg混合用混料机制团，按常规方法制成颗粒状，然后在80℃温度下烘干5小时，即为灵芝茶。实施例3

首先将灵芝子实体在80℃温度下，烘干3小时，然后用粉碎机粉碎至120目，制成灵芝粉，再取灵芝按常规方法水煎煮提取液经浓缩喷雾制粉为灵芝多糖，取5kg炒槐米，甘草8kg，茶叶6kg，干菊花2kg混合用粉碎机粉碎至120目混合粉料，取5kg炒大枣，枸杞5kg，加水60kg蒸煮3小时，去渣得到混合浆料，与上述混合粉料混合，再加入灵芝粉60kg，灵芝多糖0.5kg，用微粉机在30℃速度700转/每分制成的破壁孢子粉15kg，蛋白糖3kg，蜂蜜3kg混合用混料机制团，然后在80℃温度下烘干6小时，即为灵芝茶。

Claims (3)

1、一种灵芝茶，其特征在于它是由下述重量配比的原料制成的颗粒状茶，

灵芝粉40-60份，破壁孢子粉5-15份，枸杞5-15份，甘草3-8份，

蛋白糖3-8份，茶叶2-6份，干菊花2-5份，炒槐米1-5份，

炒大枣1-5份，蜂蜜1-3份，灵芝多糖0.5-1.0份。

2、根据权利要求1所述的灵芝茶，其特征在于所述的破壁孢子粉是用微粉机在20-30℃，速度700-900转/每分制成的。

3、如权利要求1所述的灵芝茶的制作方法，其特征在于它按下述步骤进行：

a)将灵芝子实体在80℃温度下烘干2-3小时，然后粉碎至120目制成灵芝粉；

b)将灵芝按常规方法水煎煮提取液进行浓缩喷雾制粉，即制成灵芝多糖；

c)将1-5份炒槐米、3-8份甘草、2-6份茶叶和2-5份干菊花混合粉碎至120目制成混合粉料；

d)将1-5份炒大枣和5-15份枸杞加5-6倍的水，蒸煮2-3小时，去渣得到混合浆料；

e)取(a)项的灵芝粉40-60份，(b)项的灵芝多糖0.5-1.0份、(c)项的混合粉料、(d)项的混合浆料，再加入破壁孢子粉5-15份，蛋白糖3-8份，蜂蜜1-3份加入混料机制团，再按常规方法制成颗粒状；

f)然后在80℃温度进行烘干4-6小时，即为灵芝茶产品。