CN116355819A - 高效合成乳酰-n-四糖的工程大肠杆菌的构建方法及应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了高效合成乳酰‑N‑四糖的工程大肠杆菌的构建方法及应用,属于微生物代谢工程技术领域。通过CRISPR相关的转座酶系统(CRISPR‑associated transposases,MUCICAT))对大肠杆菌基因组进行多位点的基因编辑,实现大肠杆菌基因组不同拷贝数编码β‑1,3‑乙酰葡萄糖胺转移酶的基因整合,再引入β‑1,3‑半乳糖基转移酶,从而构建了多株生产乳酰‑N‑四糖的工程大肠杆菌,在摇瓶实验过程中,乳酰‑N‑四糖的摇瓶产量可以达到6.07g/L,为进一步工业化生产与合成其他复杂母乳寡糖奠定了基础。
Description
技术领域
本发明涉及高效合成乳酰-N-四糖的工程大肠杆菌的构建方法及应用,属于微生物代谢工程技术领域。
背景技术
母乳寡糖(Human Milk Oligosaccharides,HMOs)作为母乳中除了乳糖和脂质外的第三大固体营养成分,它们为婴幼儿健康成长提供了不可替代的益处。相关研究表明母乳寡糖在肠道健康如抗菌作用、肠道屏障等方面发挥了独特作用。
目前,乳酰-N-四糖的合成方法分为化学合成法、酶法合成法和细胞工厂法。化学合成因其过程复杂且有毒性,无法进一步大规模生产乳酰-N-四糖。酶法合成需要昂贵的核苷酸糖底物和辅因子的加入,限制了其工业化生产乳酰-N-四糖。细胞工厂法生产乳酰-N-四糖的生物合成途径涉及两个关键基因,即编码β-1,3-乙酰葡萄糖胺转移酶的基因来源于脑膜炎奈瑟菌(Neisseria meningitidis)和编码β-1,3-半乳糖基转移酶的基因来源于大肠杆菌O55:7或者P.ferrooxidans。等人在大肠杆菌W3110基因组整合编码β-1,3-乙酰葡萄糖胺转移酶的基因(lgtA)和编码β-1,3-半乳糖基转移酶的基因(wbgO),并优化培养基条件,强化UDP-半乳糖的供应,最后在分批补料过程中,乳酰-N-四糖的产量为12.72g/L。Zhu等人挖掘到新型的来源于P.ferrooxidans菌中编码β-1,3-半乳糖基转移酶的基因,实现了乳酰-N-四糖的高效生物合成,其产量达到25.49g/L。Li等人通过途径优化和辅因子再生工程,有效提升了乳酰-N-四糖的生物合成途径,其摇瓶产量达到6.16g/L,在5L发酵罐分批补料过程中,乳酰-N-四糖的产量达到了57.5g/L。目前,乳酰-N-四糖的生产过程中,涉及到两个不同的前体和多基因的调控,质粒系统能有效调节菌体内代谢通路的变化,但是质粒系统需要抗生素的维持,并且稳定性较差,存在丢失情况。因此,工程大肠杆菌基因组的多位点的基因整合是最有效的解决办法之一,保证菌株传代的稳定性。
发明内容
为了减少质粒系统的利用,本发明利用CRISPR相关的转座酶系统将编码β-1,3-乙酰葡萄糖胺转移酶的基因lgtA进行基因组多拷贝的整合,从而构建了不同拷贝数lgtA基因的工程大肠杆菌。再引入编码β-1,3-半乳糖基转移酶,构建完整的乳酰-N-四糖的生物合成途径,从而实现了乳酰-N-四糖(工程大肠杆菌生物合成乳酰-N-四糖代谢通路如图1所示)的高效稳定合成。
本发明提供了一种制备乳酰-N-三糖II的大肠杆菌基因工程菌,所述基因工程菌为,,敲除大肠杆菌基因组上的β-半乳糖苷酶lacZ、二磷酸尿核苷葡萄糖脱氢酶ugD、UDP-N-乙酰葡萄糖胺-2-差向异构酶wecB以及葡萄糖胺-6磷酸脱氨酶nagB;并在大肠杆菌的基因组上的recA位点整合来源于大肠杆菌K-12衍生菌MG1655的UDP-葡萄糖4差向异构酶基因galE,同时在大肠杆菌的基因组上的IS186位点整合了来源于脑膜炎奈瑟菌的编码β-1,3-乙酰葡萄糖胺转移酶的基因lgtA。
在本发明的一种实施方式中,所述β-半乳糖苷酶lacZ在NCBI序列号为NP_414878.1,二磷酸尿核苷葡萄糖脱氢酶ugD在NCBI序列号为ACT43781.1、UDP-N-乙酰葡萄糖胺-2-差向异构酶wecB在NCBI序列号为YP_026253.1,葡萄糖胺-6磷酸脱氨酶nagB在NCBI序列号为NP_415204.1;所述编码β-1,3-乙酰葡萄糖胺转移酶的基因lgtA核苷酸序列如SEQIDNO.1所示;所述UDP-葡萄糖4差向异构酶基因galE核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示。
在本发明的一种实施方式中,所述编码β-1,3-乙酰葡萄糖胺转移酶的基因lgtA在大肠杆菌基因组上整合的拷贝数分为单拷贝,双拷贝,三拷贝,四拷贝和五拷贝。
在本发明的一种实施方式中,所述recA位点为:NCBI号为:NP_417179.1。
在本发明的一种实施方式中,所述基因工程菌为,大肠杆菌BL21(DE3)敲除wecB,nagB,lacZ,ugD,在大肠杆菌基因组上的recA位点整合基因galE,在大肠杆菌基因组上的IS186-4位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180040)整合基因lgtA。
在本发明的一种实施方式中,所述基因工程菌为,大肠杆菌BL21(DE3)敲除wecB,nagB,lacZ,ugD,在大肠杆菌基因组上的recA位点整合基因galE,分别在大肠杆菌基因组上的IS186-2位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180306)和IS186-4位点(NCBI序列号为:GeneID:8180040)整合基因lgtA。
在本发明的一种实施方式中,所述基因工程菌为,大肠杆菌BL21(DE3)敲除wecB,nagB,lacZ,ugD,在大肠杆菌基因组上的recA位点整合基因galE,分别在大肠杆菌基因组上的IS186-2位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180306)、IS186-4位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180040)和IS186-5位点(NCBI序列号为:Gene ID:8183431)整合基因lgtA。
在本发明的一种实施方式中,所述基因工程菌为,大肠杆菌BL21(DE3)敲除wecB,nagB,lacZ,ugD,在大肠杆菌基因组上的recA位点整合基因galE,分别在大肠杆菌基因组上的IS186-1位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180773),IS186-2位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180306),IS186-3位点(NCBI序列号为:Gene ID:8181786)和IS186-4位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180040)整合基因lgtA。
在本发明的一种实施方式中,所述基因工程菌为,大肠杆菌BL21(DE3)敲除wecB,nagB,lacZ,ugD,在大肠杆菌基因组上的recA位点整合基因galE,分别在大肠杆菌基因组上的IS186-1位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180773),IS186-2位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180306),IS186-4位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180040)和IS186-5位点(NCBI序列号为:Gene ID:8183431)整合基因lgtA。
在本发明的一种实施方式中,所述基因工程菌为,大肠杆菌BL21(DE3)敲除wecB,nagB,lacZ,ugD,在大肠杆菌基因组上的recA位点整合基因galE,分别在大肠杆菌基因组上的IS186-1位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180773),IS186-2位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180306),IS186-3位点(NCBI序列号为:Gene ID:8181786),IS186-4位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180040)和IS186-5位点(NCBI序列号为:Gene ID:8183431)整合基因lgtA。
本发明提供了一种制备乳酰-N-四糖大肠杆菌基因工程菌,所述基因工程菌为,敲除大肠杆菌基因组上的β-半乳糖苷酶lacZ、二磷酸尿核苷葡萄糖脱氢酶ugD、UDP-N-乙酰葡萄糖胺-2-差向异构酶wecB以及葡萄糖胺-6磷酸脱氨酶nagB;并在大肠杆菌的基因组上的recA位点整合来源于大肠杆菌K-12衍生菌MG1655的UDP-葡萄糖4差向异构酶基因galE,同时在大肠杆菌的基因组上的IS186位点整合了来源于脑膜炎奈瑟菌的编码β-1,3-乙酰葡萄糖胺转移酶的基因lgtA,并过表达了来源于大肠杆菌O55:H7的β-1,3-半乳糖基转移酶WbgO。
在本发明的一种实施方式中,其特征在于,所述β-半乳糖苷酶lacZ在NCBI序列号为NP_414878.1,二磷酸尿核苷葡萄糖脱氢酶ugD在NCBI序列号为ACT43781.1、UDP-N-乙酰葡萄糖胺-2-差向异构酶wecB在NCBI序列号为YP_026253.1,葡萄糖胺-6磷酸脱氨酶nagB在NCBI序列号为NP_415204.1;所述编码β-1,3-乙酰葡萄糖胺转移酶的基因lgtA核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示;所述UDP-葡萄糖4差向异构酶基因galE核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示,所述编码β-1,3-半乳糖基转移酶的基因wbgO核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示。
在本发明的一种实施方式中,所述编码β-1,3-乙酰葡萄糖胺转移酶的基因lgtA在大肠杆菌基因组上整合的拷贝数分为单拷贝,双拷贝,三拷贝,四拷贝和五拷贝。
在本发明的一种实施方式中,采用pCDFDuet-1质粒表达β-1,3-半乳糖基转移酶WbgO。
在本发明的一种实施方式中,所述编码β-1,3-半乳糖基转移酶的基因(wbgO)克隆至pCDFDuet-1质粒载体多克隆位点上的NcoI位点和EcoRI位点之间。
在本发明的一种实施方式中,所述recA位点为:NCBI号为:NP_417179.1
在本发明的一种实施方式中,所述基因工程菌为,大肠杆菌BL21(DE3)敲除基因wecB,nagB,lacZ,ugD,在大肠杆菌基因组上的recA位点整合基因galE,在大肠杆菌基因组上的IS186-4位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180040)整合基因lgtA,采用pCDFDuet-1质粒表达β-1,3-半乳糖基转移酶WbgO。
在本发明的一种实施方式中,所述基因工程菌为,大肠杆菌BL21(DE3)敲除基因wecB,nagB,lacZ,ugD,在大肠杆菌基因组上的recA位点整合基因galE,分别在大肠杆菌基因组上的IS186-2位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180306)和IS186-4位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180040)整合基因lgtA,采用pCDFDuet-1质粒表达β-1,3-半乳糖基转移酶WbgO。
在本发明的一种实施方式中,所述基因工程菌为,大肠杆菌BL21(DE3)敲除基因wecB,nagB,lacZ,ugD,在大肠杆菌基因组上的recA位点整合基因galE,分别在大肠杆菌基因组上的IS186-2位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180306)、IS186-4位点(NCBI序列号为:GeneID:8180040)和IS186-5位点(NCBI序列号为:Gene ID:8183431)整合基因lgtA,采用pCDFDuet-1质粒表达β-1,3-半乳糖基转移酶WbgO。
在本发明的一种实施方式中,所述基因工程菌为,大肠杆菌BL21(DE3)敲除基因wecB,nagB,lacZ,ugD,在大肠杆菌基因组上的recA位点整合基因galE,分别在大肠杆菌基因组上的IS186-1位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180773),IS186-2位点(NCBI序列号为:GeneID:8180306),IS186-3位点(NCBI序列号为:Gene ID:8181786)和IS186-4位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180040)整合基因lgtA,采用pCDFDuet-1质粒表达β-1,3-半乳糖基转移酶wbgO。
在本发明的一种实施方式中,所述基因工程菌为,大肠杆菌BL21(DE3)敲除基因wecB,nagB,lacZ,ugD,在大肠杆菌基因组上的recA位点整合基因galE,分别在大肠杆菌基因组上的IS186-1位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180773),IS186-2位点(NCBI序列号为:GeneID:8180306),IS186-4位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180040)和IS186-5位点(NCBI序列号为:Gene ID:8183431)整合基因lgtA,采用pCDFDuet-1质粒表达β-1,3-半乳糖基转移酶WbgO。
在本发明的一种实施方式中,所述基因工程菌为,大肠杆菌BL21(DE3)敲除基因wecB,nagB,lacZ,ugD,在大肠杆菌基因组上的recA位点整合基因galE,分别在大肠杆菌基因组上的IS186-1位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180773),IS186-2位点(NCBI序列号为:GeneID:8180306),IS186-3位点(NCBI序列号为:Gene ID:8181786),IS186-4位点(NCBI序列号为:Gene ID:8180040)和IS186-5位点(NCBI序列号为:Gene ID:8183431)整合基因lgtA,采用pCDFDuet-1质粒表达β-1,3-半乳糖基转移酶WbgO。
本发明提供了一种制备乳酰-N-三糖II的方法,所述方法为,是以甘油为碳源,以乳糖为底物,采用上述制备乳酰-N-三糖II的大肠杆菌基因工程菌,生物合成乳酰-N-三糖II。
在本发明的一种实施方式中,所述碳源甘油的添加量为:20-30g/L。
在本发明的一种实施方式中,所述底物乳糖的添加量为:5-10g/L。
在本发明的一种实施方式中,所述生物合成的条件为:摇床转速为200rpm,温度由37℃降低为25℃。。
本发明提供了一种制备乳酰-N-四糖的方法,所述方法为,是以甘油为碳源,以乳糖为底物,采用上述制备乳酰-N-四糖的大肠杆菌基因工程菌,生物合成乳酰-N-四糖。
在本发明的一种实施方式中,所述碳源甘油的添加量为:20-30g/L。
在本发明的一种实施方式中,所述底物乳糖的添加量为:5-10g/L。
在本发明的一种实施方式中,所述生物合成的条件为:摇床转速为200rpm,0.2mM的IPTG诱导后,温度由37℃降低为25℃。
本发明还提供了采用上述制备乳酰-N-三糖II的大肠杆菌基因工程菌在制备含有乳酰-N-三糖II的产品中的应用。
本发明还提供了采用上述制备乳酰-N-四糖的大肠杆菌基因工程菌在制备含有乳酰-N-四糖的产品中的应用。
有益效果
本发明通过CRISPR相关的转座酶系统实现了大肠杆菌基因组上多拷贝的lgtA基因整合,得到乳酰-N-三糖II生产的底盘菌株,其摇瓶产量可达到6.93g/L,该菌株无需添加额外的诱导剂,降低了生产成本和操作流程,该底盘菌株有较好的遗传稳定性和工业应用前景。再进一步引入含有编码β-1,3-半乳糖基转移酶的基因wbgO的质粒表达系统,成功构建了多株生产乳酰-N-四糖的工程大肠杆菌,其摇瓶产量可达到6.07g/L,验证了该底盘菌株的扩展性,为进一步合成其他复杂母乳寡糖奠定了基础,具有良好的工业前景。
附图说明
图1为工程大肠杆菌生物合成乳酰-N-四糖代谢通路图。
图2为不同整合菌株发酵生产乳酰-N-三糖II的产量比较图。
图3为不同整合菌株发酵生产乳酰-N-四糖的产量比较图。
具体实施方式
下面通过具体实施例子对本发明进一步阐述。
本发明所有使用的PCR扩增酶、质粒、DNA凝胶回收试剂盒和柱式质粒抽提盒等商业化产品,具体操作均按照试剂盒说明书进行。大肠杆菌感受态制备:TAKARA试剂盒;核酸琼脂糖凝胶电泳、水浴热激转化、电击转化、感受态细胞制备、菌落PCR和细菌基因组抽提等常规分子生物学实验操作根据Molecular Cloing:ALaboratory Manua(Fourth Edition)进行。构建质粒和PCR扩增产物的测序工作均由苏州安升达公司完成。
下述实施例中所涉及的pDonor、pTnsABC、pQCascade-IS186、pCutamp质粒购自杭州宝赛生物科技有限公司。
下述实施例中所涉及的质粒pET-lgtA的构建记载于公开号为CN111979168A的中国发明专利申请文本中。
下述实施例中所涉及的培养基如下:
LB固体培养基:10g/L蛋白胨,10g/L氯化钠,5g/L酵母提取物,15g/L琼脂粉。
LB液体培养基:10g/L氯化钠,5g/L酵母提取物,10g/L蛋白胨。
发酵培养基(Defined medium,DM):20g/L甘油,1.7g/L柠檬酸,13.5g/L磷酸二氢钾,1.4g/L七水硫酸镁,4.0g/L磷酸氢二氨和10ml/L微量金属元素,再用氢氧化钠调节pH至6.8。
微量金属元素:2.25g/L七水硫酸锌,10g/L硫酸亚铁,0.35g/L一水硫酸锰,1.0g/L无水硫酸铜,0.23g/L十水硼酸钠,2.0g/L二水氯化钙,0.11g/L钼酸铵,溶于5M盐酸。
抗生素浓度:50mg/L卡那霉素,50mg/L安普霉素,50mg/L链霉素,200mg/L氨苄青霉素(固体培养基),100mg/L氨苄青霉素(液体培养基)。
诱导剂浓度:在摇瓶发酵过程中,异丙基-β-D-硫代半乳糖吡喃糖苷(IPTG)的添加终浓度为0.5mM。在CRISPR相关的转座酶系统,IPTG的添加终浓度为0.1mM和1mM(如果需要的话),鼠李糖的添加终浓度为10mM,蔗糖的添加终浓度为10g/L。
下述实施例中所涉及的菌株培养及发酵如下:
在发酵过程中,在相应的LB固体平板上,挑取菌落形态正常的单菌落至4mL试管LB培养液体中(含有对应的抗生素),培养10-12h后,将试管中的种子液以2%(v/v)的接种量转接到20mL摇瓶DM培养基中,培养条件为37℃,200rpm。当菌体生长密度达到0.6-0.8时,添加终浓度为0.5mM的IPTG和/或5g/L的乳糖,发酵温度调整至25℃。发酵时长达到96h后,取发酵液并制备样品,进行产物的检测。
下述实施例中所涉及的检测方法如下:
乳酰-N-四糖的产量检测
将所取发酵液,以12000g的离心速度离心10分钟,再将上清液稀释一定倍数,后通过0.22μm水系针筒式过滤器,将样品用高效液相色谱仪(沃特世公司)进行检测,检测条件为Rezex ROA有机酸柱和示差检测器,流动相为5mM硫酸,柱温为60℃,进样量为10μL。
下述实施例中所涉及的引物序列如表1所示。
表1:引物序列及靶向质粒信息
下述实施例中所涉及的PCR反应体系如表2所示。
表2:PCR体系
PCR反应体系条件:95℃预变性3min;95℃变性30s,56℃退火30s,72℃延伸2kb/min;32个循环,4℃保存,PCR产物进行胶回收。
下述实施例中所涉及的吉布森组装反应体系如表3所示。
表3:吉布森组装反应体系
吉布森组装反应条件:50℃,30min。
X/Y根据公式计算可得到线性化载体用量和插入片段的用量:
X=(0.02×克隆载体碱基对数/胶回收对应DNA片段浓度)ng;
Y=(0.02×插入片段碱基对数/胶回收对应DNA片段浓度)ng;
下述实施例中所涉及的重叠延伸PCR体系如表4所示。
表4:重叠延伸PCR体系
重叠延伸PCR反应体系条件:95℃预变性3min;95℃变性30s,56℃退火30s,72℃延伸2kb/min;32个循环,4℃保存,取部分的PCR产物进行核酸电泳验证,后利用去甲基化酶DPN1进行酶切去除模板质粒,再进行转化验证。
实施例1:底盘细胞的构建
(1)基因galE基因组单位点整合操作流程如下:
以公开号CN111979168A记录的重组菌株EWNL(敲除大肠杆菌E.coli BL21(DE3)中wecB,nagB,和lacZ基因得到的)为出发菌株,pTargetF和pCas9质粒保藏于实验室,使用引物对GalE-N20-F/R对pTarget-F质粒进行PCR扩增,得到靶向目标位点的pTarget质粒;
使用引物GalE-T-F/R、GalE-UP-F/R、GalE-Down-F/R和GalE-T-V-F/R通过PCR分别扩增出galE基因,即其上下游同源臂和pTarger载体片段;
将扩增出来的四个片段通过吉布森组装试剂盒进行组装,从而构建用于整合基因的质粒pTarget-galE;
通过电击转化的方式将pCas质粒转入出发宿主EWNL中,并加入30mM的阿拉伯糖以诱导λ-Red重组酶系统的表达;
将pTarget-galE质粒电转进入上述含pCas的大肠杆菌中,后涂布于含有壮观霉素和卡那霉素的LB平板上,30℃培养15~24h,对平板上的单菌落进行菌落PCR验证;
菌落PCR验证成功后,再送样测序验证相关基因组的整合基因是否完整,相关测序工作由苏州安升达公司负责;
将验证成功的单菌落转接至4mL的LB液体试管中,并添加0.1mM的IPTG,以诱导去除pTarget质粒,摇床过夜后,取部分菌液划线培养过夜,后再验证是否去除pTarget质粒;
选取去除pTarget质粒成功的单菌落接种至无抗的LB液体试管中,42℃,200rpm过夜培养,取部分菌液划线至无抗的LB固体板上,后挑取单菌落验证是否去除pCas质粒,验证成功为重组大肠杆菌EWNL/ΔrecA::Ptac-galE,即EP0。
(2)基因ugD基因组敲除操作流程如下:
敲除基因的操作流程与整合基因的操作流程相同,但构建质粒pTarget时,敲除质粒pTargrt-F是由三部分扩增DNA片段组成:线性化载体,敲除基因上游同源臂和敲除基因下游同源臂,其余实验操作参考整合基因操作流程,相关引物和靶向质粒信息见表1,即:
按照步骤(1)的方法敲除菌株EP0的ugD基因,构建得到底盘菌株EWNL/ΔugDΔrecA::Ptac-galE,命名为EP1。
实施例2:基因组多拷贝基因lgtA的工程大肠杆菌的构建
(1)使用引物pD-lgtA-V-F/R对pDonor质粒进行特异性扩增,得到质粒载体片段1;
(2)使用引物pD-lgtA-F/R对质粒载体pET-lgtA进行特异性扩增,得到质粒目的基因片段2(核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示);
(3)通过吉布森组装试剂盒将片段1和片段2进行组装,从而构建用于多拷贝基因整合的质粒pDonor-lgtA;
(4)分别将重组质粒pDonor-lgtA和pTnsABC电转化至底盘菌株EP1中,涂布于含有卡那霉素和氨苄青霉素的LB固体平板,37℃培养12-14h;
(5)挑取步骤(4)得到的阳性转化子,制备成电转感受态细胞后,继续电转化pQCascade-IS186质粒后,涂布于含有卡那霉素、氨苄青霉素和链霉素的LB固体平板,37℃培养12-14h;
(6)将步骤(5)平板上的阳性转化子用无菌LB液体进行重悬,后全部涂布至终浓度为0.1mM IPTG、卡那霉素、氨苄青霉素和链霉素的LB固体平板,IPTG用以诱导转座酶的表达,培养条件为37℃,16h;
(7)将步骤(6)平板上的阳性转化子,用无菌LB稀释一定的倍数,将稀释的菌液在终浓度为1mM IPTG、卡那霉素、氨苄青霉素和链霉素的LB固体平板进行涂布,IPTG用以诱导转座酶的表达,培养条件为37℃,24h;
(8)为了提高基因组的基因拷贝数,可以重复划线延长转座时间,将步骤(7)平板上的阳性转化子,用无菌LB液体适当稀释和重悬后,在新的含有终浓度为1mM IPTG、卡那霉素、氨苄青霉素和链霉素的LB固体平板进行划线,分离出单菌落;
(9)通过菌落PCR,对步骤(7)和步骤(8)平板上的阳性转化子进行基因拷贝数验证,从而得到不同拷贝数基因lgtA的工程大肠杆菌:
利用引物对YZ-lgtA-F与YZ-IS186-1-R/YZ-IS186-2-R/YZ-IS186-3-R/YZ-IS186-4-R/YZ-IS186-5-R,对同一颗阳性转化子进行菌落PCR验证,根据不同引物对核酸电泳条带情况,判断基因lgtA的具体整合位点情况。例如,当使用上述5对引物进行扩增后,仅有引物对YZ-lgtA-F和YZ-IS186-4-R扩增核酸电泳结果,其余引物对扩增无条带,仅显示有一条电泳条带。
结果表明,得到了在IS186-4位点整合lgtA基因的重组大肠杆菌EP1/IS186-4-lgtA,拷贝数为:1,其他不同拷贝数lgtA基因菌株的构建类似本例所述,详细整合位点和拷贝数数目见表5;
(10)步骤(9)中单菌落验证成功后,再对基因组的整合基因进行测序,相关测序工作由苏州安升达公司负责;
(11)上述系统的三个质粒pDonor、pTnsABC、pQCascade-IS186去除需要通过质粒pCutamp进行质粒去除,从而获得无质粒的大肠杆菌菌株;将上述步骤(10)制备得到的整合宿主制备成电转感受态,电转化质粒pCutamp,活化后涂布至含安普霉素和10mM鼠李糖的LB固体培养基,培养条件为37℃过夜。
(12)选取步骤(11)平板的单颗阳性转化子,分别划线于含有卡那霉素、氨苄青霉素和链霉素单一抗生素的LB固体平板上,同时划线于含有10g/L的蔗糖的LB固体平板上,筛选出无pDonor-lgtA,pTnsABC和pQCascade-IS186的单菌落,并同时去除质粒pCutamp;
(13)验证步骤(12)所得到的单菌落,划线于含安普霉素的LB固体平板,即得到无质粒的工程大肠杆菌EP1/IS186-4-lgtA(EWNL/ΔugDΔrecA::Ptac-galE-IS186-4-lgtA),拷贝数为:1,命名为EP01。
实施例3:基因工程菌EP02、EP03、EP04、EP05、EP06、EP07、EP08、EP09、EP10、EP11、EP12的构建
具体步骤如下:
1、基因工程菌EP02、EP03、EP04、EP05和EP06的构建
如上述实施例1~2所述,基因工程菌EP02、EP03、EP04、EP05和EP06的构建与基因工程菌EP01相同,根据上述5对引物对扩增的核酸电泳条带数和测序结果判断lgtA基因拷贝数目,得到不同lgtA基因拷贝数基因工程菌株。
分别制备得到EP01(EP1/IS186-4-lgtA)、EP02(EP1/IS186-4-lgtA-IS186-2-lgtA)、EP03(EP1/IS186-4-lgtA-IS186-2-lgtA-IS186-5-lgtA)、EP04(EP1/IS186-1-lgtA-IS186-2-lgtA-IS186-3-lgtA-IS186-4-lgtA)、EP05(EP1/IS186-1-lgtA-IS186-2-lgtA-IS186-4-lgtA-IS186-5-lgtA)和EP06(EP1/IS186-1-lgtA-IS186-2-lgtA-IS186-3-lgtA-IS186-4-lgtA-IS186-5-lgtA)。
2、基因工程菌EP07、EP08、EP09、EP10、EP11和EP12的构建
(1)重组质粒的构建
具体步骤如下,相关引物见表1,相关PCR体系见表2,吉布森组装体系见表3,重叠延伸PCR体系见表4:
利用引物HP-wbgO-F/R,对模板质粒pCD-wbgO-galE(构建方法公开于公开号为CN113652385A的专利中),进行重叠延伸PCR,后将所得PCR产物转化至DH5α中,涂布至对应抗性的LB平板37℃过夜培养,后挑取单菌落并抽质粒进行Sanger测序,测序成功即完成重组质粒pCD-wbgO的构建。
将重组质粒pCD-wbgO分别导入基因工程菌EP01、EP02、EP03、EP04、EP05和EP06得到相应重组菌株,其中重组质粒pCD-wbgO的构建见下述实施例3;制备得到的菌株如下表5所示。
表5:不同菌株的构建
实施例4:制备乳酰-N-三糖II
具体步骤如下:
分别将转化的单菌落EP01~EP06挑取至含有4mL LB的试管中,在37℃和200rpm摇床条件下,分别进行培养10-12h,制备得到种子液;
分别将上述种子液以2%(v/v)的接种量接种至含有20mL DM培养基的250mL三角瓶中,在37℃和200rpm摇床条件下进行培养,当菌体密度OD600达到0.6-0.8,摇床温度由37℃降低为25℃,并且添加乳糖,摇床转速为200rpm,乳糖的终浓度为5g/L,摇瓶发酵时长为96h,进行取样测量菌体OD600,不同菌株的OD600及反应结果见表6及图2所示。
表6:不同工程大肠杆菌摇瓶发酵详细信息
结果显示:随着大肠杆菌基因组上基因lgtA的拷贝数增加,乳酰-N-三糖II的产量逐渐增加,并且在拷贝数达到4时,产量达到最大值即6.93g/L,进一步增加基因lgtA的拷贝数,无法进一步提升产量,前体物质供应、底物利用和限速酶转化等因素影响了产量进一步提升,表明在IS186-1,IS186-2,IS186-4和IS186-5位点整合基因lgtA能有效实现乳酰-N-三糖II的合成。
实施例5:制备乳酰-N-四糖
具体步骤如下:
分别将转化的单菌落EP07~EP12挑取至含有4mL LB的试管中,在37℃和200rpm摇床条件下,分别进行培养10-12h,制备得到种子液;
分别将上述种子液以2%(v/v)的接种量接种至含有20mL的DM培养基的250mL三角瓶中,在37℃和200rpm摇床条件下进行培养,当菌体密度OD600达到0.6-0.8,摇床温度由37℃降低为25℃,并且添加IPTG和乳糖,摇床转速为200rpm,诱导剂IPTG终浓度为0.2mM,乳糖的终浓度为5g/L,摇瓶发酵时长为96h,进行取样测量菌体OD600,不同菌株的OD600及反应结果见表7及图3所示。
表7:不同工程大肠杆菌摇瓶发酵详细信息
结果显示:随着大肠杆菌基因组上基因lgtA的拷贝数增加,乳酰-N-四糖的产量逐渐增加,并且乳酰-N-三糖II残留量较少,并且在拷贝数达到4时,乳酰-N-四糖产量达到最大值即6.07g/L,进一步增加基因lgtA的拷贝数,无法进一步提升产量。多个前体物质供应平衡、底物利用和多步限速酶转化等多个因素影响了产量进一步提升,表明在IS186-1,IS186-2,IS186-4和IS186-5位点整合基因lgtA能有效实现乳酰-N-四糖的合成。
虽然本发明已以较佳实施例公开如上,但其并非用以限定本发明,任何熟悉此技术的人,在不脱离本发明的精神和范围内,都可做各种的改动与修饰,因此本发明的保护范围应该以权利要求书所界定的为准。
Claims (10)
1.一种制备乳酰-N-三糖II的大肠杆菌基因工程菌,其特征在于,所述基因工程菌为,敲除大肠杆菌基因组上的β-半乳糖苷酶lacZ、二磷酸尿核苷葡萄糖脱氢酶ugD、UDP-N-乙酰葡萄糖胺-2-差向异构酶wecB以及葡萄糖胺-6磷酸脱氨酶nagB;并在大肠杆菌的基因组上的recA位点整合来源于大肠杆菌K-12衍生菌MG1655的UDP-葡萄糖4差向异构酶基因galE,同时在大肠杆菌的基因组上的IS186位点整合了来源于脑膜炎奈瑟菌的编码β-1,3-乙酰葡萄糖胺转移酶的基因lgtA。
2.根据权利要求1所述的大肠杆菌基因工程菌,其特征在于,所述β-半乳糖苷酶lacZ在NCBI序列号为NP_414878.1,二磷酸尿核苷葡萄糖脱氢酶ugD在NCBI序列号为ACT43781.1、UDP-N-乙酰葡萄糖胺-2-差向异构酶wecB在NCBI序列号为YP_026253.1,葡萄糖胺-6磷酸脱氨酶nagB在NCBI序列号为NP_415204.1;所述编码β-1,3-乙酰葡萄糖胺转移酶的基因lgtA核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示;所述UDP-葡萄糖4差向异构酶基因galE核苷酸序列如SEQID NO.3所示。
3.根据权利要求2所述的大肠杆菌基因工程菌,其特征在于,所述编码β-1,3-乙酰葡萄糖胺转移酶的基因lgtA在大肠杆菌基因组上整合的拷贝数分为单拷贝,双拷贝,三拷贝,四拷贝和五拷贝。
4.一种制备乳酰-N-四糖大肠杆菌基因工程菌,其特征在于,所述基因工程菌为,敲除大肠杆菌基因组上的β-半乳糖苷酶lacZ、二磷酸尿核苷葡萄糖脱氢酶ugD、UDP-N-乙酰葡萄糖胺-2-差向异构酶wecB以及葡萄糖胺-6磷酸脱氨酶nagB;并在大肠杆菌的基因组上的recA位点整合来源于大肠杆菌K-12衍生菌MG1655的UDP-葡萄糖4差向异构酶基因galE,同时在大肠杆菌的基因组上的IS186位点整合了来源于脑膜炎奈瑟菌的编码β-1,3-乙酰葡萄糖胺转移酶的基因lgtA,并过表达了来源于大肠杆菌O55:H7的β-1,3-半乳糖基转移酶WbgO。
5.根据权利要求4所述的大肠杆菌基因工程菌,其特征在于,所述β-半乳糖苷酶lacZ在NCBI序列号为NP_414878.1,二磷酸尿核苷葡萄糖脱氢酶ugD在NCBI序列号为ACT43781.1、UDP-N-乙酰葡萄糖胺-2-差向异构酶wecB在NCBI序列号为YP_026253.1,葡萄糖胺-6磷酸脱氨酶nagB在NCBI序列号为NP_415204.1;所述编码β-1,3-乙酰葡萄糖胺转移酶的基因lgtA核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示;所述UDP-葡萄糖4差向异构酶基因galE核苷酸序列如SEQID NO.3所示,所述编码β-1,3-半乳糖基转移酶的基因wbgO核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示。
6.根据权利要求3所述的大肠杆菌基因工程菌,其特征在于,所述编码β-1,3-乙酰葡萄糖胺转移酶的基因lgtA在大肠杆菌基因组上整合的拷贝数分为单拷贝,双拷贝,三拷贝,四拷贝和五拷贝。
7.根据权利要求6所述的大肠杆菌基因工程菌,其特征在于,采用pCDFDuet-1质粒表达β-1,3-半乳糖基转移酶WbgO。
8.一种制备乳酰-N-三糖II的方法,其特征在于,是以甘油为碳源,以乳糖为底物,采用权利要求1~3任一所述的大肠杆菌基因工程菌,生物合成乳酰-N-三糖II。
9.一种制备乳酰-N-四糖的方法,其特征在于,是以甘油为碳源,以乳糖为底物,采用权利要求4~7任一所述的大肠杆菌基因工程菌,生物合成乳酰-N-四糖。
10.权利要求1~7任一所述的大肠杆菌基因工程菌在制备含有乳酰-N-三糖II或乳酰-N-四糖的产品中的应用。
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