CN115298304A - 控制三维组织体的杨氏模量的方法、三维组织体的制造方法以及三维组织体 - Google Patents

控制三维组织体的杨氏模量的方法、三维组织体的制造方法以及三维组织体 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种在包含细胞和细胞外基质的三维组织体的制造中，通过调整片段化细胞外基质的平均直径来控制该三维组织体的杨氏模量的方法。

Description

控制三维组织体的杨氏模量的方法、三维组织体的制造方法 以及三维组织体
技术领域
本发明涉及控制三维组织体的杨氏模量的方法、三维组织体的制造方法以及三维组织体。
背景技术
近年来开发了在生物体外构建细胞的三维组织体的技术。在制作模仿了生物组织的组织体时，优选使用生物相容性高的支架材料。本发明者们至今为止提出了下述方法等：一种制造三维组织体的方法，其包含三维地配置由含有胶原的被膜被覆的细胞而形成三维组织体的工序(专利文献1)；一种三维组织体的制造方法，其包含：形成在细胞的表面形成有被膜的包覆细胞的工序；以及将包覆细胞三维地配置的工序；其中，包覆细胞的形成包含：使细胞浸渍于含有被膜成分的液体中的工序、以及利用透液性膜将经浸渍的细胞和含有被膜成分的液体分离的工序(专利文献2)。另外，本发明者们还提出了使用了经均质化的胶原的、胶原浓度比以往高的三维组织体的制作方法(专利文献3)。
现有技术文献
专利文献
专利文献1：国际公开第2015/072164号
专利文献2：国际公开第2016/027853号
专利文献3：国际公开第2018/143286号
发明内容
发明所要解决的课题
然而，已知在实际的生物体内的组织中，生物体内的部位、或每个病变的组织的“硬度”不同。例如，已知癌组织具有比正常组织硬的倾向。由于该组织的硬度可能是产生脏器、病理状态的特征的一个原因，因此在制作模仿了生物组织的组织体时，再现其本来的硬度也很重要。
然而，至今为止，还没有有关参照所要再现的目标组织，将使用生物相容性高的支架材料制造的组织体的硬度调整为所希望的硬度的方法的报告。例如，已知有通过在聚丙烯酰胺凝胶中培养细胞来将细胞的生长环境控制得较硬的方法(R.W.Tilghman et al.,PLoS One,5(9)e12905(2010).)，但由于聚丙烯酰胺凝胶不是生物体中存在的物质，因此从生物组织的模仿的观点出发并不优选。
因此，本发明的一个方面的目的在于，提供一种在使用生物相容性高的支架材料制造的三维组织体中控制三维组织体的杨氏模量的方法。本发明的另一方面的目的在于，提供具有所期望的杨氏模量的三维组织体的制造方法。另外，本发明的另一方面的目的还在于，提供一种杨氏模量为20kPa以上的三维组织体。
用于解决课题的手段
本发明者们发现了，当对在水性介质中以相同浓度含有平均直径小的细胞外基质和平均直径大的细胞外基质的组合物进行比较时，含有平均直径小的细胞外基质的组合物显示出更高的杨氏模量。
因此，本发明涉及例如以下的各发明。
〔1〕一种方法，其通过调整细胞外基质的平均直径来控制包含细胞和细胞外基质的三维组织体的杨氏模量。
〔2〕根据〔1〕所述的方法，其中，上述细胞外基质为具有RGD序列的多肽。
〔3〕根据〔2〕所述的方法，其中，上述细胞外基质为与生物体内存在的分子为相同分子的生物亲和性材料。
〔4〕根据〔1〕～〔3〕中任一项所述的方法，其中，上述细胞外基质包含外源性的片段化细胞外基质。
〔5〕根据〔1〕～〔4〕中任一项所述的方法，其中，上述细胞外基质包含胶原。
〔6〕根据〔1〕～〔5〕中任一项所述的方法，其中，包含将上述细胞外基质的平均直径调整为20nm以上且1000nm以下的工序。
〔7〕根据〔1〕～〔6〕中任一项所述的方法，其中，包含将三维组织体调整为包含不同平均直径的片段化细胞外基质的工序。
〔8〕根据〔7〕所述的方法，其中，包含调整为平均直径为20nm以上且1000nm以下的细胞外基质和平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的细胞外基质的工序。
〔9〕根据〔8〕所述的方法，其中，以重量换算计，以1：100～100：1的比率使用平均直径为20nm以上且1000nm以下的细胞外基质和平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的细胞外基质。
〔10〕根据〔9〕所述的方法，其中，以重量换算计，与平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的细胞外基质相比，更多地使用平均直径为20nm以上且1000nm以下的细胞外基质。
〔11〕根据〔1〕～〔10〕中任一项所述的方法，其中，三维组织体的杨氏模量为20kPa～250kPa。
〔12〕一种三维组织体的制造方法，其包含：
准备参照三维组织体所希望的杨氏模量调整了平均直径的细胞外基质的工序，
在水性介质中将上述细胞外基质与细胞混合，得到细胞悬浮液的工序，以及
对上述细胞悬浮液进行孵育的工序。
〔13〕根据〔12〕所述的方法，其中，上述细胞外基质为具有RGD序列的多肽。
〔14〕根据〔13〕所述的方法，其中，上述细胞外基质为与生物体内存在的分子为相同分子的生物亲和性材料。
〔15〕根据〔12〕～〔14〕中任一项所述的方法，其中，上述细胞外基质包含外源性的片段化细胞外基质。
〔16〕根据〔12〕～〔15〕中任一项所述的方法，其中，上述细胞外基质包含胶原。
〔17〕根据〔12〕～〔16〕中任一项所述的方法，其中，上述调整了平均直径的细胞外基质包含平均直径为20nm以上且1000nm以下的细胞外基质。
〔18〕根据〔12〕～〔17〕中任一项所述的方法，其中，准备上述片段化细胞外基质的工序包含调整为三维组织体包含不同平均直径的片段化细胞外基质的工序。
〔19〕根据〔18〕所述的方法，其中，包含调整为三维组织体包含平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质和平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的片段化细胞外基质的工序。
〔20〕根据〔12〕～〔19〕中任一项所述的方法，其在得到上述细胞悬浮液的工序和对上述细胞悬浮液进行孵育的工序之间，进一步包含对上述细胞悬浮液施加外力而将上述细胞和上述细胞外基质聚集的工序。
〔21〕根据〔12〕～〔20〕中任一项所述的方法，其中，三维组织体的杨氏模量为20kPa～250kPa。
〔22〕一种三维组织体，其包含细胞和平均直径为20nm以上且1000nm以下的细胞外基质，
其中，在上述细胞之间配置有上述片段化细胞外基质，
上述细胞外基质为与生物体内存在的分子为相同分子的生物亲和性材料，
所述三维组织体的杨氏模量为20kPa以上。
〔23〕根据〔22〕所述的三维组织体，其中，上述细胞外基质为具有RGD序列的多肽。
〔24〕根据〔22〕或〔23〕所述的三维组织体，其中，上述细胞外基质包含外源性的片段化细胞外基质。
〔25〕根据〔19〕～〔24〕中任一项所述的三维组织体，其中，以三维组织体的总重量为基准计，平均直径为20nm以上且1000nm以下的细胞外基质的含有率为5重量％以上且90重量％以下。
〔26〕根据〔19〕～〔25〕中任一项所述的三维组织体，其中，进一步包含平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的细胞外基质。
〔27〕一种三维组织体形成剂，其包含平均直径为20nm以上且1000nm以下的细胞外基质及水性介质，其中，三维组织体的杨氏模量为20kPa以上。
另外，本发明还涉及例如以下的各发明。
〔1〕一种方法，其在包含细胞和细胞外基质的三维组织体的制造中，通过调整片段化细胞外基质的平均直径来控制上述三维组织体的杨氏模量。
〔2〕根据〔1〕所述的方法，其进一步包含调整上述片段化细胞外基质的含量的工序。
〔3〕根据〔1〕或〔2〕所述的方法，其中，上述片段化细胞外基质为具有RGD序列的多肽。
〔4〕根据〔3〕所述的方法，其中，上述片段化细胞外基质为与生物体内存在的分子为相同分子的生物亲和性材料。
〔5〕根据〔1〕～〔4〕中任一项所述的方法，其中，上述片段化细胞外基质包含胶原。
〔6〕根据〔1〕～〔5〕中任一项所述的方法，其中，包含将上述片段化细胞外基质的平均直径调整为20nm以上且1000nm以下的工序。
〔7〕根据〔1〕～〔5〕中任一项所述的方法，其中，调整上述片段化细胞外基质的平均直径的工序包含调整为三维组织体包含不同平均直径的片段化细胞外基质的步骤。
〔8〕根据〔7〕所述的方法，其进一步包含调整上述三维组织体中的上述不同平均直径的片段化细胞外基质的含量的工序。
〔9〕根据[8]所述的方法，其中，调整为上述三维组织体包含不同平均直径的片段化细胞外基质的工序、和调整上述三维组织体中的上述不同平均直径的片段化细胞外基质的含量的工序包含：
通过增加平均直径小的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量，使三维组织体的杨氏模量上升的工序、或者，
通过减少平均直径小的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量，使三维组织体的杨氏模量降低的工序。
〔10〕根据〔7〕～〔9〕中任一项所述的方法，其中，上述不同平均直径的片段化细胞外基质包含平均直径为1000nm以下的片段化细胞外基质和平均直径超过1000nm的片段化细胞外基质。
〔11〕根据〔7〕～〔9〕中任一项所述的方法，其中，上述不同平均直径的片段化细胞外基质包含平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质和平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的片段化细胞外基质。
〔12〕根据〔8〕～〔11〕中任一项所述的方法，其中，以重量换算计，以1：100～100：1的比率使用平均直径较小的片段化细胞外基质和平均直径较大的片段化细胞外基质。
〔13〕根据〔1〕～〔12〕中任一项所述的方法，其中，三维组织体的杨氏模量为20kPa～250kPa。
〔14〕一种三维组织体的制造方法，其包含：
准备参照三维组织体所希望的杨氏模量调整了平均直径的片段化细胞外基质的工序，
在水性介质中将上述细胞外基质与细胞混合，得到细胞悬浮液的工序，以及
对上述细胞悬浮液进行孵育的工序。
〔15〕根据〔14〕所述的方法，其中，准备上述片段化细胞外基质的工序是准备参照三维组织体所希望的杨氏模量调整了平均直径及含量的片段化细胞外基质的工序。
〔16〕根据〔14〕或〔15〕所述的方法，其中，上述片段化细胞外基质为具有RGD序列的多肽。
〔17〕根据〔16〕所述的方法，其中，上述片段化细胞外基质为与生物体内存在的分子为相同分子的生物亲和性材料。
〔18〕根据〔14〕～〔17〕中任一项所述的方法，其中，上述片段化细胞外基质包含胶原。
〔19〕根据〔14〕～〔18〕中任一项所述的方法，其中，上述调整了平均直径的片段化细胞外基质包含平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质。
〔20〕根据〔14〕～〔19〕中任一项所述的方法，其中，准备上述片段化细胞外基质的工序包含调整为三维组织体包含不同平均直径的片段化细胞外基质的工序。
〔21〕根据〔20〕所述的方法，其进一步包含调整上述三维组织体中的上述不同平均直径的片段化细胞外基质的含量的工序。
〔22〕根据〔21〕所述的方法，其中，调整为上述三维组织体包含不同平均直径的片段化细胞外基质的工序、和调整上述三维组织体中的上述不同平均直径的片段化细胞外基质的含量的工序包含：
通过增加平均直径小的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量，使三维组织体的杨氏模量上升的工序、或者，
通过减少平均直径小的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量，使三维组织体的杨氏模量降低的工序。
〔23〕根据〔20〕～〔22〕中任一项所述的方法，其中，上述不同平均直径的片段化细胞外基质包含平均直径为1000nm以下的片段化细胞外基质和平均直径超过1000nm的片段化细胞外基质。
〔24〕根据〔20〕～〔23〕中任一项所述的方法，其中，上述不同平均直径的片段化细胞外基质包含平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质和平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的片段化细胞外基质。
〔25〕根据〔21〕～〔24〕中任一项所述的方法，其中，以重量换算计，以1：100～100：1的比率使用平均直径较小的片段化细胞外基质和平均直径较大的片段化细胞外基质。
〔26〕根据〔14〕～〔25〕中任一项所述的方法，其中，三维组织体的杨氏模量为20kPa～250kPa。
〔27〕一种三维组织体，其包含细胞和平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质，
其中，在上述细胞之间配置有上述片段化细胞外基质，
上述片段化细胞外基质为与生物体内存在的分子为相同分子的生物亲和性材料，
所述三维组织体的杨氏模量为20kPa以上。
〔28〕根据〔27〕所述的三维组织体，其中，上述片段化细胞外基质为具有RGD序列的多肽。
〔29〕根据〔27〕或〔28〕所述的三维组织体，其中，以三维组织体的总重量为基准计，平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质的含有率为5重量％以上且90重量％以下。
〔30〕根据〔27〕～〔29〕中任一项所述的三维组织体，其进一步包含平均直径超过1000nm的片段化细胞外基质。
〔31〕根据〔27〕～〔29〕中任一项所述的三维组织体，其进一步包含平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的片段化细胞外基质。
〔32〕根据〔27〕～〔31〕中任一项所述的三维组织体，其中，以重量换算计，平均直径较小的片段化细胞外基质和平均直径较大的片段化细胞外基质在三维组织体中的比率为1：100～100：1。
〔33〕根据〔27〕～〔32〕中任一项所述的三维组织体，其中，所述三维组织体的杨氏模量为20kPa～250kPa。
发明效果
根据本发明，能够提供一种在使用生物相容性高的支架材料制造的三维组织体中，控制三维组织体的杨氏模量的方法。另外，由此能够提供具有所期望的杨氏模量的三维组织体的制造方法。另外，根据本发明，能够提供杨氏模量为20kPa以上的三维组织体。
根据本发明，能够得到具有所期望的杨氏模量的三维组织体，因此能够制作与生物体的杨氏模量接近的各种组织模型，并用于药剂的评价及筛选等。另外，根据本发明，还能够使用生物相容性高的支架材料得到以往难以制造的杨氏模量高的三维组织体，因此能够制作生物体的杨氏模量高的癌组织模型，并用于药剂的评价及筛选等。
附图说明
图1是表示实施例2的胶原分散液中的片段化胶原的纤维直径分布的图表。
图2是表示实施例2的胶原溶液中的片段化胶原的纤维直径分布的图表。
图3是表示实施例3中的CNF凝胶的杨氏模量相对于CNF浓度的变化的图表。
图4是表示将实施例4中的CNF凝胶与CMF凝胶的杨氏模量进行比较的结果的图表。
图5是表示将实施例5中的三维组织体的杨氏模量进行比较的结果的图表。
具体实施方式
以下，对用于实施本发明的方式详细地进行说明。但是，本发明并不限定于以下的实施方式。
<控制三维组织体的杨氏模量的方法>
本实施方式的方法通过调整细胞外基质的平均直径，控制包含细胞和细胞外基质的三维组织体的杨氏模量。
在本说明书中，“三维组织体”是指细胞介由细胞外基质三维地配置的细胞的集合体，是指通过细胞培养人工制作的集合体。因此，三维组织体包含细胞和细胞外基质。可以在至少一部分细胞间配置细胞外基质。在三维组织体中，也可以存在细胞彼此直接接触的部分。三维组织体优选细胞和细胞外基质三维地分布且在细胞间配置有细胞外基质，更优选细胞和细胞外基质三维地均匀分布且在细胞间配置有细胞外基质。三维组织体的形状没有特别限制，例如可举出片状、球体状、大致球体状、椭圆体状、大致椭圆体状、半球状、大致半球状、半圆状、大致半圆状、长方体状、大致长方体等。在此，生物组织包含血管、汗腺、淋巴管、脂腺等，构成比三维组织体复杂。因此，三维组织体与生物组织可容易地区别。另外，三维组织体可以在与支撑体粘附的状态下集合成块状，也可以在不与支撑体粘附的状态下集合成块状。
细胞可以是体细胞或生殖细胞。此外，细胞可以是干细胞，另外也可以是原代培养细胞、传代培养细胞及细胞株细胞等培养细胞。在本说明书中，“干细胞”是指具有自我复制能力和多分化能力的细胞。干细胞包括具有分化为任意的细胞种的能力的多能干细胞、和具有分化为特定的细胞种的能力的组织干细胞(也称为体干细胞)。作为多能干细胞，例如可举出胚胎干细胞(ES细胞)、体细胞来源的ES细胞(ntES细胞)及人工多能干细胞(iPS细胞)。作为组织干细胞，例如可举出间充质干细胞(例如骨髓来源的干细胞)、造血干细胞及神经干细胞。
构成三维组织体的细胞可以包含一种或多种细胞。作为细胞，例如可举出成纤维细胞(例如人皮肤来源的成纤维细胞(NHDF)、人心脏成纤维细胞(NHCF)和人牙龈成纤维细胞(HGF))、软骨细胞、成骨细胞等间充质细胞、血管内皮细胞(例如人脐带静脉来源的血管内皮细胞(HUVEC))、大肠癌细胞(例如人大肠癌细胞(HT29))、肝癌细胞等癌细胞、心肌细胞(例如人iPS细胞来源的心肌细胞(iPS-CM))、上皮细胞(例如人牙龈上皮细胞)、角化细胞、淋巴管内皮细胞、神经细胞、肝细胞、组织干细胞、胚胎干细胞、人工多能干细胞、黏附性细胞(例如免疫细胞)、平滑肌细胞(例如主动脉平滑肌细胞(Arota-SMC))等。
构成本实施方式的三维组织体的细胞的总数没有特别限定，可以考虑要构建的三维组织体的厚度、形状、构建中使用的细胞培养容器的大小等来适当确定。
细胞外基质是在三维组织体中填埋至少一部分细胞间的间隙的材料。细胞外基质可以是由多个细胞外基质分子形成的细胞外基质分子的集合体。细胞外基质分子可以是生物中存在于细胞外的物质。细胞外基质优选为与生物体内存在的分子为相同分子的生物亲和性材料。作为细胞外基质分子，只要不对细胞的生长及细胞集合体的形成造成不良影响，就可以使用任意的物质。作为细胞外基质分子，可举出胶原、层粘连蛋白、纤连蛋白、波连蛋白、弹性蛋白、细胞粘合素、巢蛋白、原纤蛋白、及蛋白聚糖等，但并不限定于这些。细胞外基质可以单独使用1种，也可以将它们组合使用。细胞外基质例如可以含有胶原，也可以为胶原。在细胞外基质为胶原的情况下，胶原作为细胞粘附的支架发挥功能，可进一步促进三维的细胞结构体的形成。本实施方式中的细胞外基质优选为存在于动物细胞外的物质、即动物的细胞外基质。需要说明的是，只要不对细胞的生长及细胞集合体的形成造成不良影响，细胞外基质分子可以是上述的细胞外基质分子的修饰体及突变体，也可以是化学合成肽等多肽。
细胞外基质可以具有胶原特征性的由Gly-X-Y表示的序列的重复。在此，Gly表示甘氨酸残基，X和Y各自独立地表示任意的氨基酸残基。多个Gly-X-Y分别可以相同也可以不同。通过具有由Gly-X-Y表示的序列的重复，对分子链的构型的束缚少，作为支架材料的功能更为优异。在具有由Gly-X-Y表示的序列的重复的细胞外基质中，由Gly-X-Y表示的序列的比例在全部氨基酸序列中可以为80％以上，优选为95％以上。另外，细胞外基质可以是具有RGD序列的多肽。RGD序列是指由Arg-Gly-Asp(精氨酸残基-甘氨酸残基-天冬氨酸残基)表示的序列。在细胞外基质具有RGD序列的情况下，进一步促进细胞粘附，作为支架材料更为合适。包含由Gly-X-Y表示的序列和RGD序列的细胞外基质包括胶原、纤连蛋白、波连蛋白、层粘连蛋白、钙黏着蛋白等。
作为胶原，例如可举出纤维性胶原及非纤维性胶原。纤维性胶原是指成为胶原纤维的主成分的胶原，具体而言，可举出I型胶原、II型胶原、III型胶原等。作为非纤维性胶原，例如可举出IV型胶原。
作为蛋白聚糖，可举出硫酸软骨素蛋白聚糖、硫酸肝素蛋白聚糖、硫酸角质素蛋白聚糖、硫酸皮肤素蛋白聚糖，但并不限定于这些。
细胞外基质可以含有选自由胶原、层粘连蛋白和纤连蛋白组成的组中的至少1种，优选含有胶原。胶原优选为纤维性胶原，更优选为I型胶原。作为纤维性胶原，可以使用市售的胶原，作为其具体例，可举出日本Ham株式会社制的猪皮来源的I型胶原、该株式会社制的猪皮来源的I型和III型胶原。在胶原使用如I型和III型胶原那样多个类型的混合胶原的情况下，也可以通过精制分离为单一类型的胶原来使用。例如，通过在含有多个类型的混合胶原的溶液中添加盐，进行离心分离来分离多个类型的胶原，回收沉淀物或上清液，能够得到仅目标类型的胶原。所得到的目标类型的胶原还可以进一步通过透析除去盐，在透析后进一步进行冷冻干燥。
细胞外基质可以是动物来源的细胞外基质。作为成为细胞外基质的来源的动物种，例如可举出人、猪、牛等，但并不限定于这些。细胞外基质可以使用一种动物来源的成分，也可以并用多种动物来源的成分。成为细胞外基质的来源的动物种与进行三维组织化的细胞的来源可以相同也可以不同。
作为细胞外基质的形状，例如可举出纤维状。纤维状是指由丝状的细胞外基质构成的形状、或者丝状的细胞外基质在分子间交联而构成的形状。细胞外基质的至少一部分可以为纤维状。细胞外基质的形状是在显微镜观察时观察到的聚集的细胞外基质(细胞外基质的集合体)的形状，细胞外基质优选具有后述的平均直径和/或平均长度的大小。纤维状的细胞外基质包括多个丝状细胞外基质分子集合而形成的细丝状物(细纤维)、细纤维进一步集合而形成的丝状物、将这些丝状物解纤而得到的纤维等。当包含形状为纤维状的细胞外基质时，在纤维状的细胞外基质中RGD序列不会被破坏地保留，能够作为用于细胞粘附的支架材料更有效地发挥功能。
“片段化”是指使细胞外基质的集合体成为更小的尺寸。经片段化的细胞外基质(也称为“片段化细胞外基质”)可以包含经解纤的细胞外基质。经解纤的细胞外基质是通过对上述的细胞外基质施加物理性的力进行解纤而得到的。例如，解纤是在不切断细胞外基质分子内的键的条件下进行的。
片段化细胞外基质可以至少一部分包含经解纤的细胞外基质。另外，片段化细胞外基质也可以仅由经解纤的细胞外基质构成。即，片段化细胞外基质可以是经解纤的细胞外基质。经解纤的细胞外基质优选包含经解纤的胶原(解纤胶原)。解纤胶原优选维持着胶原来源的三重螺旋结构。解纤胶原可以是部分地维持着胶原来源的三重螺旋结构的成分。片段化胶原通过分散在水性介质中，变得在水性介质中容易与细胞接触，能够促进三维组织体的形成。
片段化细胞外基质的平均长度可以为100nm以上且400μm以下，也可以为100nm以上且200μm以下。在一个实施方式中，从容易形成厚的组织的观点出发，片段化细胞外基质的平均长度可以为5μm以上且400μm以下，可以为10μm以上且400μm以下，可以为22μm以上且400μm以下，也可以为100μm以上且400μm以下。在另一实施方式中，从组织形成容易变得稳定的观点和再分散性更进一步优异的观点出发，片段化细胞外基质的平均长度可以为100μm以下，可以为50μm以下，可以为30μm以下，可以为15μm以下，可以为10μm以下，也可以为1μm以下，且可以为100nm以上。片段化细胞外基质整体中，优选大部分的片段化细胞外基质的平均长度在上述数值范围内。具体而言，优选片段化细胞外基质整体中的95％的片段化细胞外基质的平均长度在上述数值范围内。片段化细胞外基质优选为平均长度在上述范围内的片段化胶原，更优选平均长度在上述范围内的解纤胶原。
片段化细胞外基质的平均直径例如可以为20nm以上且30μm以下，也可以为20nm以上且10μm以下。在本实施方式的方法中，通过减小三维组织体中包含的片段化细胞外基质的平均直径，能够增加三维组织体的杨氏模量，相反，通过增大平均直径，能够降低三维组织体的杨氏模量。因此，本实施方式的方法也可以包含将上述细胞外基质的平均直径调整为以下例示的平均直径的工序。
将平均直径为纳米级(1000nm以下)的片段化细胞外基质也称为纳米纤维(NF)。纳米纤维的平均直径例如可以为20nm以上且1000nm以下，可以为20nm以上且500nm以下，可以为20nm以上且200nm以下，可以为40nm以上且130nm以下，也可以为20nm以上且100nm以下。另一方面，将平均直径为微米级(超过1000nm)的片段化细胞外基质也称为微纤维(MF)。微纤维的平均直径例如可以为超过1μm且30μm以下，可以为超过1μm且30μm以下，可以为超过1μm且10μm以下，可以为1.5μm以上且8.5μm以下，也可以为2μm以上且8.5μm以下。在本实施方式中，纳米纤维和微纤维的形状只要是上述的片段化细胞外基质，也可以不是纤维状。
本实施方式的方法也可以包含将三维组织体中包含的片段化细胞外基质全部调整为纳米纤维或微纤维的工序。另外，本实施方式的方法也可以包含调整为三维组织体包含不同平均直径的片段化细胞外基质的工序。例如，可以调整为三维组织体包含上述纳米纤维和微纤维这两者，具体而言，例如可以调整为三维组织体包含20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质和平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的片段化细胞外基质。另外，也可以调整为包含不同平均直径的纳米纤维，具体而言，例如可以调整为包含20nm以上且100nm以下的片段化细胞外基质及超过100nm且200nm以下的片段化细胞外基质。对于不同平均直径的片段化细胞外基质，通过调整各自的以重量换算计的比率，能够制成所期望的杨氏模量的三维组织体。例如，以重量换算计，可以以1：100～100：1的比率使用平均直径较小的片段化细胞外基质(例如纳米纤维)和平均直径较大的片段化细胞外基质(例如微纤维)，可以以1：10～10：1的比率使用，可以以1：3～3：1的比率使用，也可以以1：2～2：1的比率使用。具体而言，例如可以以重量换算计，以1：100～100：1的比率使用平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质和平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的片段化细胞外基质。另外，也可以以重量换算计，与平均直径较大的片段化细胞外基质(例如微纤维)相比，更多地使用平均直径较小的片段化细胞外基质(例如纳米纤维)。具体而言，例如可以以重量换算计，与平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的片段化细胞外基质相比，更多地使用平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质。
以片段化细胞外基质和细胞的总质量为基准计，三维组织体中的总片段化细胞外基质的含有率例如可以为0.33质量％以上、0.5质量％以上、1质量％以上、2质量％以上、或5重量％以上。以经片段化的细胞外基质和细胞的总质量为基准计，三维组织体中的片段化细胞外基质的含量例如可以为90质量％以下、80质量％以下、70质量％以下、60质量％以下、50质量％以下、40质量％以下、30质量％以下、20质量％以下、15质量％以下、10质量％以下、5质量％以下、或1质量％以下。以片段化的细胞外基质和细胞的总质量为基准计，三维组织体中的片段化细胞外基质的含量例如可以为0.33质量％以上且90质量％以下，可以为0.5质量％以上且90质量％以下，可以为1.0质量％以上且90质量％以下，可以为5重量％以上且90重量％以下，可以为5重量％以上且40重量％以下。在本实施方式的方法中，也可以通过调整片段化细胞外基质的平均直径和含有率来控制三维组织体的杨氏模量。因此，本实施方式的方法可以进一步包含调整三维组织体中的不同平均直径的片段化细胞外基质的含量的工序。例如，通过使平均直径小的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量增加或使平均直径大的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量减少，能够使三维组织体的杨氏模量上升。相反，通过使平均直径小的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量减少或使平均直径大的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量增加，能够使三维组织体的杨氏模量降低。即，调整为三维组织体包含不同平均直径的片段化细胞外基质的工序以及调整三维组织体中的上述不同平均直径的片段化细胞外基质的含量的工序可以包含：通过增加平均直径小的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量(或者减少平均直径大的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量)，使三维组织体的杨氏模量上升的工序、或者，通过减少平均直径小的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量(或者增加平均直径大的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量)，使三维组织体的杨氏模量降低的工序。
上述的平均长度和平均直径的范围从组织形成的观点出发是最合适的，因此优选在用于组织形成的阶段内收敛于上述的平均长度或平均直径的范围内。
片段化细胞外基质的平均长度及平均直径可通过利用光学显微镜测定各个片段化细胞外基质并进行图像解析来求出。在本说明书中，“平均长度”是指所测定的试样的长度方向的长度的平均值，“平均直径”是指与所测定的试样的长度方向正交的方向的长度的平均值。
将细胞外基质片段化的方法没有特别限制，可以通过施加物理性的力进行片段化。通过施加物理性的力而片段化的细胞外基质与酶处理不同，通常分子结构与进行片段化之前相比没有变化(分子结构得以维持)。将细胞外基质片段化的方法例如可以是将块状的细胞外基质细细切碎的方法。细胞外基质可以以固相进行片段化，也可以在水性介质中进行片段化。例如，可以通过超声波式均化器、搅拌式均化器、及高压式均化器等施加物理性的力来将细胞外基质片段化。在使用搅拌式均化器的情况下，可以将细胞外基质直接均质化，也可以在生理盐水等水性介质中均质化。另外，通过调整进行均质化的时间、次数等，可以调整片段化细胞外基质的平均直径。特别是，作为用于制作平均直径小的纳米级(1000nm以下)的片段化细胞外基质的方法，例如可举出将分散于包含细胞外基质(例如胶原)的水性介质中的分散液均质化的方法及任意地在水性介质中在10℃以下(例如4℃±1℃)下进行孵育的方法。作为进行均质化的例子，可举出使用均化器进行均质化、进行搅拌、施加压力等，也可以使用搅拌器进行搅拌。水性介质可以是纯水，也可以是如含有磷酸的水溶液(例如PBS缓冲液)那样的水溶液。另外，在进行了均质化后在10℃以下(例如，4℃±1℃)进行孵育的时间例如可以为6小时以上、12小时以上、24小时以上、48小时以上、或72小时以上。进行均质化时的水性介质(第一水性介质)和进行孵育时的水性介质(第二水性介质)可以相同也可以不同。另外，水性介质可以含有盐也可以不含有盐。
在将细胞外基质在水性介质中进行片段化的情况下，经片段化的细胞外基质例如可以通过包含下述工序的方法来制造：将细胞外基质在水性介质中进行片段化的工序、和从含有经片段化的细胞外基质和水性介质的液体中除去水性介质的工序(除去工序)。除去工序例如可以通过冷冻干燥法来实施。“除去水性介质”并不是指在经片段化的细胞外基质成分中没有附着任何水分，而是指未附着有通过上述常规的干燥方法常识性地能够达到的程度的水分。
片段化细胞外基质的至少一部分可以在分子间或分子内交联。经片段化的细胞外基质可以在构成经片段化的细胞外基质的分子内交联，也可以在构成经片段化的细胞外基质的分子间交联。
作为进行交联的方法，例如可举出通过施加热、紫外线、放射线等进行的物理交联、通过交联剂、酶反应等进行的化学交联等方法，但其方法并没有特别限定。交联(物理交联和化学交联)可以是介由共价键的交联。
在片段化胶原中，交联可以在胶原分子(三重螺旋结构)之间形成，也可以在由胶原分子形成的胶原细纤维之间形成。交联可以是通过热进行的交联(热交联)。热交联例如可以通过使用真空泵在减压下进行加热处理来实施。在进行胶原分子的热交联的情况下，解纤胶原可以通过胶原分子的氨基与同一或其他胶原分子的羧基形成肽键(-NH-CO)来交联。
通过使用交联剂也可以使片段化细胞外基质交联。交联剂例如可以为能够使羧基与氨基交联的交联剂、或者为能够使氨基彼此交联的交联剂。作为交联剂，例如从经济性、安全性及操作性的观点出发，优选醛类、碳二亚胺类、环氧化物类和咪唑类交联剂，具体而言，可举出戊二醛、1-乙基-3-(3-二甲基氨基丙基)碳二亚胺盐酸盐、1-环己基-3-(2-吗啉基-4-乙基)碳二亚胺磺酸盐等水溶性碳二亚胺。
交联度的定量可以根据片段化细胞外基质的种类、进行交联的手段等适当选择。交联度可以为1％以上、2％以上、4％以上、8％以上、或12％以上，也可以为30％以下、20％以下、或15％以下。
在细胞外基质分子中的氨基用于交联的情况下，交联度可以基于非专利文献2等中记载的TNBS法进行定量。基于TNBS法的交联度可以在上述的范围内。基于TNBS法的交联度是细胞外基质所具有的氨基中被用于交联的氨基的比例。
交联度可以通过对羧基进行定量来算出。例如，在水不溶性的细胞外基质的情况下，可以通过TBO(甲苯胺蓝O)法进行定量。基于TBO法的交联度也可以在上述的范围内。
三维组织体中的细胞外基质的含量以三维组织体的干燥重量为基准计，可以为0.01质量％以上、0.05质量％以上、0.1质量％以上、0.5质量％以上、1质量％以上、2质量％以上、3质量％以上、4质量％以上、5质量％以上、6质量％以上、7质量％以上、8质量％以上、9质量％以上、10质量％、15质量％以上、20质量％以上、25质量％以上、或30质量％以上，且可以为90质量％以下、80质量％以下、70质量％以下、60质量％以下、50质量％以下、30质量％以下、20质量％以下、或15质量％以下。三维组织体中的细胞外基质的含量以三维组织体的干燥重量为基准计，可以为0.01～90质量％、可以为10～90质量％、10～80质量％、10～70质量％、10～60质量％、1～50质量％、10～50质量％、10～30质量％、或20～30质量％。
在此，“三维组织体中的细胞外基质”是指构成三维组织体的细胞外基质，可以来源于内源性细胞外基质，也可以来源于外源性细胞外基质。
“内源性的细胞外基质”是指由细胞外基质产生细胞产生的细胞外基质。作为细胞外基质产生细胞，例如可举出上述的成纤维细胞、软骨细胞、成骨细胞等间充质细胞。内源性细胞外基质可以为纤维性，也可以为非纤维性。
“外源性的细胞外基质”是指从外部供给的细胞外基质。本实施方式的三维组织体包含作为外源性的细胞外基质的经片段化的细胞外基质。外源性的细胞外基质的作为来源的动物种与内源性的细胞外基质可以相同也可以不同。关于作为来源的动物种，例如可举出人、猪、牛等。另外，外源性的细胞外基质也可以是人工的细胞外基质。
在细胞外基质为胶原的情况下，外源性的细胞外基质也被称为“外源性胶原，”表示从外部供给的胶原的“外源性胶原”是由多个胶原分子形成的胶原分子的集合体，具体而言，可举出纤维性胶原、非纤维性胶原等。外源性胶原优选为纤维性胶原。上述纤维性胶原是指作为胶原纤维的主成分的胶原，例如可举出I型胶原、II型胶原、III型胶原。上述纤维性胶原可以使用市售的胶原，作为其具体例，可举出日本Ham株式会社制的猪皮来源的I型胶原。作为外源性的非纤维性胶原，例如可举出IV型胶原。
在外源性的细胞外基质中，所来源的动物种可以与细胞不同。另外，在细胞包含细胞外基质产生细胞的情况下，在外源性的细胞外基质中，所来源的动物种可以与细胞外基质产生细胞不同。即，外源性的细胞外基质可以是异种细胞外基质。
即，在三维组织体包含内源性细胞外基质及经片段化的细胞外基质的情况下，构成上述三维组织体的细胞外基质含有率是指内源性细胞外基质及经片段化的细胞外基质的总量。上述细胞外基质含有率可以根据所得到的三维组织体的体积和脱细胞化后的三维组织体的质量来算出。
例如，在三维组织体中所含的细胞外基质为胶原的情况下，作为对三维组织体中的胶原量进行定量的方法，例如可举出以下那样的对羟基脯氨酸进行定量的方法。在溶解有三维组织体的溶解液中混合盐酸(HCl)，在高温下孵育规定的时间后恢复至室温，将离心分离得到的上清液稀释至规定的浓度，由此制备样品。将羟基脯氨酸标准品溶液与样品同样地进行处理后，阶段性地进行稀释而制备标准品。对样品和标准品分别用羟基脯氨酸分析缓冲液和检测试剂进行规定的处理，测定570nm的吸光度。通过将样品的吸光度与标准品进行比较来算出胶原量。需要说明的是，也可以将三维组织体直接悬浮于高浓度的盐酸中，将溶解得到的溶解液离心分离并回收上清液，用于胶原成分定量。另外，进行溶解的三维组织体可以直接为从培养液回收的状态，也可以在回收后进行干燥处理，在除去了液体成分的状态下使其溶解。但是，在将直接从培养液回收的状态的三维组织体溶解而进行胶原成分定量的情况下，由于三维组织体所吸收的培养基成分和因实验手法的问题导致的残留培养基的影响，可以预想到三维组织体重量的测量值会发生偏差，因此从稳定地测量组织体的重量和每单位重量中所占的胶原量的观点出发，优选以干燥后的重量为基准。
作为对胶原量进行定量的方法，更具体而言，例如可举出以下方法。
(样品的制备)
将进行了冷冻干燥处理的三维组织体的总量与6mol/L HCl混合，用加热块在95℃下孵育20小时以上，然后恢复至室温。以13000g离心分离10分钟后，回收样品溶液的上清液。在后述的测定中，以结果收束在标准曲线的范围内的方式用6mol/L HCl进行适当稀释后，用100μL的超纯水进行稀释200μL，由此制备样品。样品使用35μL。
(标准品的制备)
在螺口试管中加入125μL的标准品溶液(1200μg/mL的醋酸溶液)和125μL的12mol/l HCl进行混合，用加热块在95℃下孵育20小时后，恢复至室温。以13000g离心分离10分钟后，用超纯水稀释上清液，制作300μg/mL的S1，将S1阶段性地稀释，制作S2(200μg/mL)、S3(100μg/mL)、S4(50μg/mL)、S5(25μg/mL)、S6(12.5μg/mL)、S7(6.25μg/mL)。还准备仅有4mol/L HCl 90μL的S8(0μg/mL)。
(分析)
将35μL的标准品和样品分别加入到平板(QuickZyme Total Collagen Assay试剂盒附带、QuickZyme Biosciences公司)中。将75μL的分析缓冲液(上述试剂盒附带)加入到各孔中。用密封件将平板封闭，摇动20分钟，同时在室温下孵育。将密封件剥离，将75μL的检测试剂(试剂A：B＝30μL：45μL，上述试剂盒附带)加入到各孔中。用密封件将平板封闭，通过摇动混合溶液，在60℃下孵育60分钟。在冰上充分冷却，剥离密封件，测定570nm的吸光度。通过将样品的吸光度与标准品比较来算出胶原量。
三维组织体中所占的胶原可以利用其面积比或体积比规定。“利用面积比或体积比规定”是指，例如在使三维组织体中的胶原成为能够通过已知的染色方法(例如使用抗胶原抗体的免疫染色、或马松三色染色)等与其他组织构成物区别的状态的基础上，使用肉眼观察、各种显微镜和图像解析软件等算出胶原的存在区域在三维组织体整体中所占的比率。在利用面积比规定的情况下，采用三维组织体中的怎样的截面或表面来规定面积比，没有限定，例如在三维组织体为球状体等的情况下，可以采用从其大致中心部通过的截面图来规定。
例如，在利用面积比规定三维组织体中的胶原的情况下，其面积的比例以上述三维组织体的整体的面积为基准计，为0.01～99％，优选为1～99％，优选为5～90％，优选为7～90％，优选为20～90％，更优选为50～90％。“三维组织体中的胶原”如上所述。构成三维组织体的胶原的面积的比例是指内源性胶原及外源性胶原的合计的面积的比例。胶原的面积比例例如可以将所得到的三维组织体用马松三色染色，以蓝色染色的胶原的面积相对于从三维组织体的大致中心部通过的截面的整体面积的比例来计算。
三维组织体在胰蛋白酶的浓度为0.25％、温度为37℃、pH为7.4、反应时间为15分钟的条件下进行胰蛋白酶处理后的残留率优选为70％以上，更优选为80％以上，进一步优选为90％以上。这样的三维组织体在培养中或培养后不易发生由酶引起的分解，是稳定的。上述残留率例如可以根据胰蛋白酶处理前后的三维组织体的质量来计算。
上述三维组织体在胶原酶的浓度为0.25％、温度为37℃、pH为7.4、反应时间为15分钟的条件下进行胶原酶处理后的残留率可以为70％以上，更优选为80％以上，进一步更优选为90％以上。这样的三维组织体不易在培养中或培养后发生由酶引起的分解，是稳定的。
上述三维组织体的厚度优选为10μm以上，更优选为100μm以上，进一步优选为1000μm以上。这样的三维组织体为更接近生物组织的结构，适合作为实验动物的替代品和移植材料。三维组织体的厚度的上限没有特别限制，例如可以为10mm以下，也可以为3mm以下，可以为2mm以下，可以为1.5mm以下，也可以为1mm以下。
在此，“三维组织体的厚度”在三维组织体为片状或长方体状的情况下，是指与主面垂直的方向上的两端的距离。在上述主面存在凹凸的情况下，厚度是指上述主面最薄的部分的距离。
另外，在三维组织体为球体状或大致球体状的情况下，厚度是指其直径。此外，在三维组织体为椭圆体状或大致椭圆体状的情况下，厚度是指其短径。在三维组织体为大致球体状或大致椭圆体状、且表面存在凹凸的情况下，厚度是指从三维组织体的重心通过的直线与上述表面交叉的2点间的距离，是最短的距离。
三维组织体的杨氏模量可以为10℃～45℃下的杨氏模量，优选为15℃～40℃下的杨氏模量，更优选为20℃～37℃下的杨氏模量，进一步优选为25℃(±1℃)下的杨氏模量。
根据本实施方式的方法，可以得到所期望的杨氏模量的三维组织体，因此三维组织体的杨氏模量没有特别限制，例如可以为20kPa～300kPa，可以为20kPa～250kPa，可以为30kPa～150kPa，可以为40kPa～100kPa，可以为50kPa～80kPa，可以为50kPa～70kPa。另外，三维组织体的杨氏模量没有特别限制，例如可以为150kPa以上，可以为200kPa以上，也可以为250kPa以上。
三维组织体的杨氏模量可以使用小型台式试验机EZ-test(岛津制作所制)进行测定。具体而言，利用设置于试验机的测力传感器的棒状的夹具(前端面积：11mm2)，在温度为25℃、压缩速度为1.0mm/min的速度下，对搭载于通常的培养容器的凝胶(或三维组织体)进行压缩，得到应力应变曲线(Stress-Strain曲线)。根据所得到的应力应变曲线中的应力上升初期的弹性变形区域的斜率，可以算出杨氏模量(kPa)。
<三维组织体的制造方法>
本实施方式的三维组织体的制造方法包含：准备参照三维组织体所希望的杨氏模量调整了平均直径的细胞外基质的工序；在水性介质中将上述细胞外基质与细胞混合，得到细胞悬浮液的工序；以及对上述细胞悬浮液进行孵育的工序。
(准备片段化细胞外基质的工序)
本实施方式的制造方法包含准备参照三维组织体所期望的杨氏模量调整了平均直径的片段化细胞外基质的工序。
关于三维组织体、杨氏模量、片段化细胞外基质及其平均直径的调整方法等，如上所述。本实施方式的制造方法也可以包含调整片段化细胞外基质的平均直径的工序。
片段化细胞外基质的平均直径例如可以为20nm以上且30μm以下，也可以为20nm以上且10μm以下。在本实施方式的制造方法中，通过减小三维组织体中所含的片段化细胞外基质的平均直径，能够增加三维组织体的杨氏模量，相反，通过增大平均直径，能够降低三维组织体的杨氏模量。因此，本实施方式的制造方法中的调整了平均直径的片段化细胞外基质可包含调整为以下例示的平均直径的片段化细胞外基质。
调整了平均直径的片段化细胞外基质可以是纳米纤维。纳米纤维的平均直径例如可以为20nm以上且1000nm以下，可以为20nm以上且500nm以下，可以为20nm以上且200nm以下，可以为40nm以上且130nm以下，也可以为20nm以上且100nm以下。另外，调整了平均直径的片段化细胞外基质也可以是微纤维。微纤维的平均直径例如可以为超过1μm且30μm以下，可以为超过1μm且30μm以下，可以为超过1μm且10μm以下，可以为1.5μm以上且8.5μm以下，也可以为2μm以上且8.5μm以下。
在本实施方式的制造方法中，调整了平均直径的片段化细胞外基质可以全部为纳米纤维或微纤维。另外，调整了平均直径的片段化细胞外基质可以包含不同平均直径的片段化细胞外基质。例如，也可以包含上述纳米纤维和微纤维这两者，具体而言，例如可以包含20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质和平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的片段化细胞外基质。另外，也可以包含不同平均直径的纳米纤维，具体而言，例如可以包含20nm以上且100nm以下的片段化细胞外基质和超过100nm且200n m以下的片段化细胞外基质。对于不同平均直径的片段化细胞外基质，通过调整各自的以重量换算计的比率，能够制成所期望的杨氏模量的三维组织体。例如，以重量换算计，可以以1：100～100：1的比率使用平均直径较小的片段化细胞外基质(例如纳米纤维)和平均直径较大的片段化细胞外基质(例如微纤维)，可以以1：10～10：1的比率使用，可以以1：3～3：1的比率使用，也可以以1：2～2：1的比率使用。具体而言，例如可以以重量换算计，以1：100～100：1的比率使用平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质和平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的片段化细胞外基质。另外，也可以以重量换算计，与平均直径较大的片段化细胞外基质(例如微纤维)相比，更多地使用平均直径较小的片段化细胞外基质(例如纳米纤维)。具体而言，例如也可以以重量换算计，与平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的片段化细胞外基质相比，更多地使用平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质。
在本实施方式的制造方法中，可以通过调整片段化细胞外基质的平均直径和含有率，控制三维组织体的杨氏模量。因此，在本实施方式的制造方法中，准备片段化细胞外基质的工序可以是准备参照三维组织体所期望的杨氏模量调整了平均直径和含量的片段化细胞外基质的工序。例如，通过增加平均直径小的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量或减少平均直径大的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量，使三维组织体的杨氏模量上升。相反，通过减少平均直径小的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量或增加平均直径大的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量，使三维组织体的杨氏模量降低。即，调整为三维组织体包含不同平均直径的片段化细胞外基质的工序、和调整上述三维组织体中的上述不同平均直径的片段化细胞外基质的含量的工序包含：通过增加平均直径小的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量，使三维组织体的杨氏模量上升的工序、或者，通过减少平均直径小的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量，使三维组织体的杨氏模量降低的工序。另外，本实施方式的制造方法还可以进一步包含将所准备的不同平均直径的片段化细胞外基质混合的工序。细胞可以在将不同平均直径的片段化细胞外基质混合后添加，也可以与不同平均直径的片段化细胞外基质一起混合。
本实施方式的制造方法中使用的片段化细胞外基质的含有率例如以片段化细胞外基质的细胞的总质量为基准计，可以为0.33质量％以上、0.5质量％以上、1质量％以上、2质量％以上、或5重量％以上。三维组织体中的片段化细胞外基质的含量例如以经片段化的细胞外基质和细胞的总质量为基准计，可以为90质量％以下、80质量％以下、70质量％以下、60质量％以下、50质量％以下、40质量％以下、30质量％以下、20质量％以下、15质量％以下、10质量％以下、5质量％以下、或1质量％以下。三维组织体中的片段化细胞外基质的含量例如以经片段化的细胞外基质和细胞的总质量为基准计，可以为0.33质量％以上且90质量％以下，可以为0.5质量％以上且90质量％以下，可以为1.0质量％以上且90质量％以下，可以为5重量％以上且90重量％以下，可以为5重量％以上且40重量％以下。
经片段化的细胞外基质可通过上述方法得到。经片段化的细胞外基质可以通过将细胞外基质在水性介质中进行片段化来得到。即，本实施方式的制造方法在准备片段化细胞外基质的工序中，可以具备将细胞外基质在水性介质中进行片段化的工序(片段化工序)。
经片段化的细胞外基质可以是上述例示的细胞外基质，也可以包含经片段化的胶原。
本实施方式的制造方法可以进一步具备在片段化工序前对细胞外基质进行加热，使细胞外基质的至少一部分交联的工序，也可以具备在片段化工序后且得到细胞悬浮液的工序前，对细胞外基质进行加热，使细胞外基质的至少一部分交联的工序。在对细胞外基质的至少一部分进行交联的工序中，可以对细胞外基质的冷冻干燥物进行加热。
在进行交联的工序中，加热细胞外基质时的温度(加热温度)和时间(加热时间)可以适当确定。加热温度例如可以为100℃以上，且可以为200℃以下，也可以为220℃以下。加热温度具体而言，例如可以为100℃、110℃、120℃、130℃、140℃、150℃、160℃、170℃、180℃、190℃、200℃、220℃等。加热时间(在上述加热温度下保持的时间)可以根据加热温度适当设定。例如在100℃～200℃下进行加热的情况下，加热时间可以为6小时以上且72小时以下，更优选为24小时以上且48小时以下。在进行交联的工序中，可以在不存在溶剂的条件下进行加热，另外也可以在减压条件下进行加热。
本实施方式的制造方法可以具备在片段化工序后将经片段化的细胞外基质干燥的干燥工序。
干燥工序中，对经解纤的细胞外基质进行干燥。干燥例如可以通过冷冻干燥法实施。通过在解纤工序后进行干燥工序，从含有片段化细胞外基质成分和水性介质的液体中除去水性介质。除去水性介质并不是指在经片段化的细胞外基质中没有附着任何水分，而是指未附着有通过上述的通常的干燥方法常识性地能够达到的程度的水分。
(获得细胞悬浮液的工序)
本实施方式的制造方法包含在水性介质中将上述片段化细胞外基质与细胞混合而得到细胞悬浮液的工序。
片段化细胞外基质通过分散在水性介质中，变得在水性介质中容易与细胞接触，能够促进三维组织体的形成。
在水性介质中，作为将片段化细胞外基质与细胞混合的方法，可举出将含有片段化细胞外基质的水性介质与含有细胞的水性介质混合的方法、在含有片段化细胞外基质的水性介质中添加细胞的方法、在含有细胞的培养液中加入含有细胞外基质的水性介质的方法、在含有片段化细胞外基质的水性介质中加入细胞的方法、在预先准备的水性介质中分别加入细胞外基质和细胞的方法等方法，但不限于这些。另外，在水性介质中，也可以通过移液器等对片段化细胞外基质和细胞进行搅拌。
在含有片段化细胞外基质的水性介质中添加细胞的方法中，含有片段化细胞外基质的水性介质可以通过使片段化细胞外基质分散于水性介质中来制作。细胞培养组合物的水性介质与将上述细胞外基质与细胞混合时的水性介质可以相同，也可以不同。在水性介质相同的情况下，也可以通过在含有片段化细胞外基质的水性介质中混合细胞而得到细胞悬浮液。在水性介质不同的情况下，可以将含有片段化细胞外基质的水性介质中的水性介质称为第一水性介质，将与细胞混合时的水性介质称为第二水性介质。
通过片段化细胞外基质和细胞分散在水性介质中，可得到细胞悬浮液。水性介质可以是培养基。培养基没有特别限制，可以根据要培养的细胞的种类选择合适的培养基。作为培养基，例如可举出Eagle’s MEM培养基、DMEM、Modified Eagle培养基(MEM)、MinimumEssential培养基、RPMI、及GlutaMax培养基等。培养基可以是添加了血清的培养基，也可以是无血清培养基。培养基可以是混合两种培养基而成的混合培养基。
得到细胞悬浮液的工序中的细胞外基质的浓度可以根据目标三维组织体的杨氏模量、形状、厚度、培养器的尺寸等适当确定。例如，得到细胞悬浮液的工序中的水性介质中的细胞外基质的浓度可以为0.1～90质量％，也可以为1～30质量％。
得到细胞悬浮液的工序中的片段化细胞外基质的量例如相对于1.0×106cells的细胞，可以为0.1～100mg、0.5～50mg、0.8～25mg、1.0～10mg、1.0～5.0mg、1.0～2.0mg、或1.0～1.8mg，可以为0.7mg以上、1.1mg以上、1.2mg以上、1.3mg以上或1.4mg以上，且可以为7.0mg以下、3.0mg以下、2.3mg以下、1.8mg以下、1.7mg以下、1.6mg以下或1.5mg以下。
在得到细胞悬浮液的工序中，片段化细胞外基质与细胞的质量比(片段化细胞外基质/细胞)优选为1/1～1000/1，更优选为9/1～900/1，进一步优选为10/1～500/1。
可以包含得到细胞悬浮液的工序、或在得到细胞悬浮液的工序后且孵育工序前添加纤维蛋白原和/或凝血酶的工序。在添加纤维蛋白原和凝血酶这两者的情况下，例如可以同时添加纤维蛋白原和凝血酶，也可以在先添加纤维蛋白原后添加凝血酶。添加纤维蛋白原和/或凝血酶的时机没有特别限制，例如可以添加到含有细胞和片段化细胞外基质的水性介质中，也可以在含有细胞和细胞外基质的水性介质中添加纤维蛋白原后添加脂肪细胞，然后添加凝血酶。通过添加纤维蛋白原和/或凝血酶，能够抑制在后述的孵育工序中可能产生的皱缩，容易控制三维组织体的形状和大小。另外，由于能够使细胞与片段化细胞外基质的悬浮液凝胶化，因此在将该悬浮液滴加到培养器(支撑体)后，能够容易地从培养器剥离。另外，在细胞包含成熟的脂肪细胞的情况下，由于成熟的脂肪细胞内部的脂肪滴的影响，脂肪细胞浮游，脂肪细胞和其他细胞有可能在不均匀的状态下被培养，但通过将悬浮液凝胶化，维持各细胞和细胞外基质均匀混合的状态，变得容易维持细胞与细胞外基质接近的状态。
本实施方式的制造方法可以包含如下工序：在得到细胞悬浮液的工序后且在孵育细胞悬浮液的工序前，对细胞悬浮液施加外力，将细胞和片段化细胞外基质聚集。通过进行这样的工序，三维组织体中的片段化细胞外基质和细胞的分布变得更均匀。作为具体的方法，没有特别限制，例如可举出对包含细胞外基质和细胞的细胞悬浮液进行离心操作的方法。
(对细胞悬浮液进行孵育的工序)
本实施方式的制造方法包含对细胞悬浮液进行孵育的工序。
在本实施方式的制造方法中，孵育工序是对经片段化的细胞外基质所接触的细胞进行孵育的工序。通过进行孵育，能够对片段化细胞外基质所接触的细胞进行培养。因此，以下有时也将本工序称为“培养工序”。
孵育的方法没有特别限制，可以根据细胞的种类通过适当的方法进行。例如，孵育温度可以为20℃～40℃，也可以为30℃～37℃。细胞悬浮液的pH可以为6～8、也可以为7.2～7.4。孵育时间可以为1天～2周，也可以为1周～2周。
孵育细胞悬浮液时使用的培养器(支撑体)没有特别限制，例如可以是孔插件、低粘附平板、具有U字、V字等底面形状的平板。可以在使上述细胞与支撑体粘附的状态下进行培养，可以不使上述细胞与支撑体粘附地进行培养，也可以在培养的中途从支撑体分离地进行培养。在不使上述细胞与支撑体粘附地进行培养的情况下、或在培养的中途从支撑体分离地进行培养的情况下，优选使用阻碍细胞向支撑体粘附的具有U字、V字等底面形状的平板、低吸附平板。
培养工序中的培养基中的细胞密度可以根据目标三维组织体的形状、厚度、培养箱的尺寸等适当确定。例如，培养工序中的培养基中的细胞密度可以为1～108cells/mL，也可以为103～107cells/mL。另外，培养工序中的培养基中的细胞密度也可以与接触工序中的水性介质中的细胞密度相同。
通过本实施方式的制造方法制造的三维组织体在培养中的收缩率优选为20％以下，更优选为15％以下，进一步优选为10％以下。上述收缩率例如可以通过以下的式子算出。式中L1表示培养后第1天的三维组织体的最长部分的长度，L3表示培养后第3天的三维组织体中的对应部分的长度。
收缩率(％)＝{(L1-L3)/L1}×100
在上述的例子中，是根据培养后第1天的三维组织体和培养第3天的细胞组织体计算收缩率，但也可以根据包括培养的结束时间点在内的培养期间的任意时间点的三维组织体计算收缩率。例如，可以根据培养后第1天的三维组织体和第2天的三维组织体计算，可以根据培养后第1天的三维组织体和第5天的三维组织体计算，也可以根据培养后第1天的三维组织体和第8天的三维组织体计算。
上述培养工序(以下也表示为“第一培养工序”)。另外，将最初的接触工序也表示为“第一接触工序”。)之后可以包含进一步使细胞接触的工序(第二接触工序)、培养细胞的工序(第二培养工序)。第二接触工序及第二培养工序中的上述细胞与第一接触工序及第一培养工序中使用的细胞可以为相同种类，也可以为不同种类。通过第二接触工序及第二培养工序，能够制作双层结构的三维组织体。另外，通过进一步反复包含接触工序和培养工序，可以制作多层的三维组织体，还可以制作更接近复杂的生物体的组织。
上述培养工序也可以包含在不粘附于支撑体的状态下对上述经片段化的细胞外基质所接触的细胞进行培养的工序。由此，可以制造在未粘附于支撑体的状态下集合成块状的三维组织体。在上述经片段化的细胞外基质所接触的细胞粘附于支撑体的情况下，上述培养工序可以包含将上述经片段化的细胞外基质所接触的细胞从支撑体分离的工序。在上述培养工序中，通过对上述经片段化的细胞外基质所接触的细胞从最初在未粘附于支撑体的情况下直接进行培养，可以制造在未粘附于支撑体的状态下集合成块状的三维组织体。
将上述经片段化的细胞外基质所接触的细胞从支撑体分离的方法没有特别限制，例如可以使用低粘附性的支撑体，通过追加培养液而将细胞从支撑体分离，可以利用器具等直接将细胞从支撑体分离，可以通过给予振动而将细胞从支撑体分离，也可以使用在表面涂布有通过对热和光等刺激的反应而将支撑体与细胞的结合分开的功能性材料的支撑体，通过给予刺激而将细胞从支撑体分离。对于通过追加培养液而将细胞从支撑体分离的情况下的培养液，可以使用上述例示的培养基等。
在培养工序中，作为从最初在未粘附于支撑体的状态下对上述经片段化的细胞外基质所接触的细胞进行培养的方法，例如可举出如下方法：使包含上述经片段化的细胞外基质所接触的细胞的悬浮液凝胶化、轻轻地滴加到培养液中进行培养的方法；以及将在高粘度的溶剂中将上述经片段化的细胞外基质所接触的细胞的形状一定程度地固定后，仅除去溶剂并转移至培养容器的方法。
在上述培养工序中，将上述经片段化的细胞外基质所接触的细胞从支撑体分离的时机没有特别限制，例如可以从培养开始起的1天～7天中进行，可以在1小时～24小时中进行，可以在1分钟～60分钟中进行，可以在5分钟～30分钟中进行，也可以在10分钟～20分钟中进行。
将上述经片段化的细胞外基质所接触的细胞从支撑体分离后的培养期间没有特别限制，可以为1天以上，可以为1天～21天，可以为3天～14天，也可以为7天～14天。
通过本实施方式的制造方法制作的三维组织体的杨氏模量可以为10℃～45℃下的杨氏模量，优选为15℃～40℃下的杨氏模量，更优选为20℃～37℃下的杨氏模量，进一步优选为25℃(±1℃)下的杨氏模量。
通过本实施方式的制造方法，能够得到所期望的杨氏模量的三维组织体，因此三维组织体的杨氏模量没有特别限制，例如可以为1kPa以上，可以为5kPa以上，可以为10kPa以上，可以为20kPa以上，可以为40kPa以上，可以为50kPa以上，可以为75kPa以上，可以为100kPa以上，可以为150kPa以上，可以为20kPa～250kPa，可以为30kPa～150kPa，可以为40kPa～100kPa，可以为50kPa～80kPa，也可以为50kPa～70kPa。
本实施方式的制造方法中的具体方式等可以没有限制地应用上述的具体方式等。
<三维组织体>
本发明的一个实施方式可以提供一种三维组织体，其包含细胞和平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质，片段化细胞外基质配置在至少一部分细胞之间，片段化细胞外基质为与生物体内存在的分子为相同分子的生物亲和性材料、且杨氏模量为20kPa以上。
片段化细胞外基质、杨氏模量的测定等如上所述。
本实施方式的三维组织体的杨氏模量为20kPa以上，可以为40kPa以上、50kPa以上、75kPa以上、100kPa以上、150kPa以上、200kPa以上、或250kPa以上。另外，杨氏模量可以为10kPa～300kPa，可以为10kPa～250kPa，可以为20kPa～150kPa，也可以为30kPa～100kPa。
片段化细胞外基质的含有率例如以三维组织体的总质量为基准计，可以为0.33质量％以上且90质量％以下，可以为0.5质量％以上且90质量％以下，可以为1.0质量％以上且90质量％以下，可以为5重量％以上且90重量％以下，也可以为5重量％以上且40重量％以下。
本实施方式的三维组织体还可以进一步包含平均直径超过1000nm的片段化细胞外基质、例如平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的片段化细胞外基质。在包含平均直径超过1000nm的片段化细胞外基质(例如平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的片段化细胞外基质)的情况下，以重量换算计，可以以1：100～100：1的比率使用平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质和平均直径超过1000nm的片段化细胞外基质(例如平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的片段化细胞外基质)。
本实施方式的三维组织体中的具体方式等可以没有限制地应用上述的具体方式等。
<三维组织体组织体形成剂>
本发明的一个实施方式可以提供一种三维组织体形成剂，其包含平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质和水性介质，其中，三维组织体的杨氏模量为20kPa以上。
关于三维组织体、片段化细胞外基质、水性介质、杨氏模量的测定等，如上所述。
本实施方式中的三维组织体形成剂可以用于形成杨氏模量为20kPa以上的三维组织体。可以将该三维组织体形成剂与细胞混合而得到细胞悬浮液，通过对细胞悬浮液进行孵育来制造三维组织体。
三维组织体的杨氏模量可以为1kPa以上、5kPa以上、10kPa以上、20kPa以上、40kPa以上、50kPa以上、75kPa以上、100kPa以上、150kPa以上、200kPa以上、或250kPa以上。另外，杨氏模量也可以为10kPa～300kPa，可以为10kPa～250kPa，可以为20kPa～150kPa，也可以为30kPa～100kPa。
本实施方式中的三维组织体形成剂的杨氏模量可以与三维组织体同样地进行测定，可以为20kPa以上、40kPa以上、50kPa以上、75kPa以上、100kPa以上、200kPa以上、或250kPa以上。另外，杨氏模量可以为10kPa～300kPa，可以为10kPa～200kPa，可以为20kPa～150kPa，也可以为30kPa～100kPa。另外，杨氏模量可以为10℃～45℃下的杨氏模量，优选为15℃～40℃下的杨氏模量，更优选为20℃～37℃下的杨氏模量，进一步优选为25℃(±1℃)下的杨氏模量。
通过含有上述平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质和水性介质，可以制作25℃(±1℃)下的杨氏模量为20kPa以上的细胞培养组合物。准备平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质的方法如上所述。
片段化细胞外基质的含有率例如以三维组织体形成剂的总质量为基准计，可以为0.33质量％以上且90质量％以下，可以为0.5质量％以上且90质量％以下，可以为1.0质量％以上且90质量％以下，可以为5重量％以上且90重量％以下，可以为5重量％以上且40重量％以下。
本实施方式的形成剂中的具体方式等可以没有限制地应用上述的具体方式等。
实施例
[实施例1：I型胶原精制]
向500mL的超纯水中添加1g的日本Ham株式会社制的猪皮来源的I型和III型混合胶原，在4℃下孵育12小时，制作0.2重量％的胶原溶液。然后，向胶原溶液中添加0.45MNaCl和5mM Tris-HCl，在4℃下孵育12小时后，添加1.2M NaCl，进一步在4℃下孵育12小时。孵育后，以10000rpm离心分离15分钟，回收上清液，得到精制I型胶原溶液。
将得到的I型胶原溶液用超纯水进行7天透析(截留分子量(MWCO)：15kDa)，然后冷冻干燥3天，得到精制I型胶原。
[实施例2：胶原微纤维及胶原纳米纤维的制备和纤维直径评价]
将实施例1中得到的精制I型胶原50mg悬浮于1×PBS(pH＝7.4)5mL中，使用搅拌式均化器在室温下进行均质化6分钟，由此得到含有片段化胶原的分散液。图1是表示该分散液中的片段化胶原的纤维直径分布的图表。得到的片段化胶原的平均直径为5.03±3.11μm(样品数：25)。以下，也将这些片段化胶原称为胶原微纤维(CMF)。
另外，将实施例1中得到的精制I型胶原50mg悬浮于1×PBS(pH＝7.4)5mL中，使用搅拌式均化器在室温下进行均质化6分钟，然后进一步在4℃下孵育3天，由此片段化胶原进一步变细。图2是表示该溶液中的片段化胶原的纤维直径分布的图表。得到的片段化胶原的平均直径为84.4±43.0nm(样品数：25)。以下，也将这些片段化胶原称为胶原纳米纤维(CNF)。
[实施例3：使用了胶原纳米纤维的凝胶的制作和杨氏模量评价]
通过与实施例2同样的方法，将以规定的浓度(0.1～3.0重量％)制作的含有CNF的液体以300μL/孔依次滴加到24孔Transwell中，进一步在37℃下孵育3小时进行凝胶化，得到8～9mm左右厚度的CNF凝胶。
为了进行比较，使用株式会社Nippi制的猪皮来源的I型胶原酸溶液，基于制造商提供的流程，制作0.1重量％胶原凝胶(Nippi凝胶)。
各凝胶的杨氏模量在25℃下如下测定。
使用小型台式试验机EZ-test(岛津制作所制)进行测定。具体而言，利用设置于试验机的测力传感器的棒状的夹具(前端面积：11mm2)，在温度为25℃、压缩速度为1.0mm/min的速度下，对搭载于24孔插件(Corning制)的凝胶进行压缩，得到应力应变曲线(Stress-Strain曲线)。根据得到的应力应变曲线中的应力上升初期的弹性变形区域的斜率计算杨氏模量(kPa)。
将结果示于图3。显示了通过增加CNF的浓度(重量％)，可以提高CNF的杨氏模量。也可以制作具有市售的Nippi凝胶的160倍的杨氏模量的凝胶。
[实施例4：使用了胶原微纤维的凝胶的制作与杨氏模量的比较]
通过与实施例2同样的方法，将以规定的浓度(0.2～2.0重量％)制作的含有CMF的液体以300μL/孔依次滴加到24孔Transwell中，进一步在37℃下孵育3小时进行凝胶化，得到8～9mm左右厚度的CMF凝胶。将该CMF凝胶在25℃下的杨氏模量与实施例3中制作的CNF凝胶的杨氏模量进行比较。
将结果示于图4。CNF凝胶与CMF凝胶相比，相同的浓度下显示出更高的杨氏模量。另外，1重量％的CNF凝胶的透射率(500nm)为0.12(％)，与相同浓度的CMF凝胶的透射率(500nm)0.03(％)相比更高。
[实施例5：使用了胶原微纤维的三维组织体的制作与杨氏模量的比较]
使用实施例2中制作的胶原微纤维(CMF)和胶原纳米纤维(CNF)，如下制作三维组织体。
首先，使CMF和/或CNF分散于DMEM，准备2wt％CNF分散液、1wt％CNF分散液、0.5％CNF分散液、1.33wt％CNF+0.66％CMF分散液、以及0.66wt％CNF+1.33％CMF分散液。
通过常规方法将在10cm培养皿内经传代培养的人结肠直肠腺癌细胞株(HT29)(ATCC号：CCL-247)从10cm培养皿中剥离回收。将HT29以每400μL达到1×106个的方式悬浮于上述各分散液中，得到细胞悬浮液。
在深孔板(EVERGREEN制#222-8636-010)中接种细胞悬浮液400μL。在37℃下进行孵育，与实施例3及4同样地测定从接种起1天后的各三维组织体在25℃下的杨氏模量。
将结果示于图5。图5中的(总计2mg)、(总计4mg)和(总计8mg)的记载表示分别形成的三维组织体中所含的片段化胶原(CMF和/或CNF)的总量。需要说明的是，细胞悬浮液的比重以每1μL为1mg进行计算。在图5的图表中，从左起第1～3个表示按照CNF的最终浓度分别达到2wt％、1wt％和0.5wt％的方式将CNF分散液和HT29混合、对得到的细胞悬浮液进行培养的结果。左起第4个表示将2wt％CNF分散液和2wt％CMF分散液依次以66.6％和33.3％的容量比例混合。即，表示对以66.6：33.3(约1.3wt％：约0.7wt％)的比例含有CNF和CMF的细胞悬浮液进行培养的结果。左起第5个表示将2wt％CNF分散液和2wt％CMF分散液依次以33.3％和66.6％的容量比例混合。即，表示对以33.3：66.6(约0.7wt％：约1.3wt％)的比例含有CNF和CMF的细胞悬浮液进行培养的结果。
由此，即使片段化胶原的总量相同，通过混合纤维直径不同的片段化胶原，根据其混合比率而制作的三维组织体的硬度(杨氏模量)也不同。具体而言可知，在制作含有CNF和CMF的三维组织体的情况下，即使片段化胶原的总量相同，通过增加纤维直径小的CNF的比率，杨氏模量也提高，相反，通过增加纤维直径大的CMF的比率，杨氏模量也降低(图5的左起第1、第4及第5个的比较)。另外，还显示了通过含有2wt％以上的CNF，能够制作200kPa以上的杨氏模量的三维组织体(图5的左起第1个)，通过含有约1.3wt％以上的CNF，能够制作100kPa以上的杨氏模量的三维组织体(图5的左起第4个)。此外，所制作的三维组织体为胶原三维地配置在细胞间、细胞和胶原均匀地分布的三维组织体。

Claims (32)

1.一种方法，其在包含细胞和细胞外基质的三维组织体的制造中，通过调整片段化细胞外基质的平均直径来控制所述三维组织体的杨氏模量。
2.根据权利要求1所述的方法，其进一步包含调整所述片段化细胞外基质的含量的工序。
3.根据权利要求1或2所述的方法，其中，所述片段化细胞外基质为具有RGD序列的多肽。
4.根据权利要求3所述的方法，其中，所述片段化细胞外基质为与生物体内存在的分子为相同分子的生物亲和性材料。
5.根据权利要求1～4中任一项所述的方法，其中，所述片段化细胞外基质包含胶原。
6.根据权利要求1～5中任一项所述的方法，其中，包含将所述片段化细胞外基质的平均直径调整为20nm以上且1000nm以下的工序。
7.根据权利要求1～5中任一项所述的方法，其中，调整所述片段化细胞外基质的平均直径的工序包含调整为三维组织体包含不同平均直径的片段化细胞外基质的工序。
8.根据权利要求7所述的方法，其进一步包含调整所述三维组织体中的所述不同平均直径的片段化细胞外基质的含量的工序。
9.根据权利要求8所述的方法，其中，调整为所述三维组织体包含不同平均直径的片段化细胞外基质的工序、和调整所述三维组织体中的所述不同平均直径的片段化细胞外基质的含量的工序包含：
通过增加平均直径小的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量，使三维组织体的杨氏模量上升的工序、或者，
通过减少平均直径小的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量，使三维组织体的杨氏模量降低的工序。
10.根据权利要求7～9中任一项所述的方法，其中，所述不同平均直径的片段化细胞外基质包含平均直径为1000nm以下的片段化细胞外基质和平均直径超过1000nm的片段化细胞外基质。
11.根据权利要求7～9中任一项所述的方法，其中，所述不同平均直径的片段化细胞外基质包含平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质和平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的片段化细胞外基质。
12.根据权利要求8～11中任一项所述的方法，其中，以重量换算计，以1：100～100：1的比率使用平均直径较小的片段化细胞外基质和平均直径较大的片段化细胞外基质。
13.根据权利要求1～12中任一项所述的方法，其中，三维组织体的杨氏模量为20kPa～250kPa。
14.一种三维组织体的制造方法，其包含：
准备参照三维组织体所希望的杨氏模量调整了平均直径的片段化细胞外基质的工序，
在水性介质中将所述细胞外基质与细胞混合，得到细胞悬浮液的工序，以及
对所述细胞悬浮液进行孵育的工序。
15.根据权利要求14所述的方法，其中，准备所述片段化细胞外基质的工序是准备参照三维组织体所希望的杨氏模量调整了平均直径及含量的片段化细胞外基质的工序。
16.根据权利要求14或15所述的方法，其中，所述片段化细胞外基质为具有RGD序列的多肽。
17.根据权利要求16所述的方法，其中，所述片段化细胞外基质为与生物体内存在的分子为相同分子的生物亲和性材料。
18.根据权利要求14～17中任一项所述的方法，其中，所述片段化细胞外基质包含胶原。
19.根据权利要求14～18中任一项所述的方法，其中，所述调整了平均直径的片段化细胞外基质包含平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质。
20.根据权利要求14～19中任一项所述的方法，其中，准备所述片段化细胞外基质的工序包含调整为三维组织体包含不同平均直径的片段化细胞外基质的工序。
21.根据权利要求20所述的方法，其进一步包含调整所述三维组织体中的所述不同平均直径的片段化细胞外基质的含量的工序。
22.根据权利要求21所述的方法，其中，调整为所述三维组织体包含不同平均直径的片段化细胞外基质的工序、和调整所述三维组织体中的所述不同平均直径的片段化细胞外基质的含量的工序包含：
通过增加平均直径小的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量，使三维组织体的杨氏模量上升的工序、或者，
通过减少平均直径小的片段化细胞外基质在三维组织体中的含量，使三维组织体的杨氏模量降低的工序。
23.根据权利要求20～22中任一项所述的方法，其中，所述不同平均直径的片段化细胞外基质包含平均直径为1000nm以下的片段化细胞外基质和平均直径超过1000nm的片段化细胞外基质。
24.根据权利要求20～23中任一项所述的方法，其中，所述不同平均直径的片段化细胞外基质包含平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质和平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的片段化细胞外基质。
25.根据权利要求21～24中任一项所述的方法，其中，以重量换算计，以1：100～100：1的比率使用平均直径较小的片段化细胞外基质和平均直径较大的片段化细胞外基质。
26.根据权利要求14～25中任一项所述的方法，其中，三维组织体的杨氏模量为20kPa～250kPa。
27.一种三维组织体，其包含细胞和平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质，
其中，在所述细胞之间配置有所述片段化细胞外基质，
所述片段化细胞外基质为与生物体内存在的分子为相同分子的生物亲和性材料，
所述三维组织体的杨氏模量为20kPa以上。
28.根据权利要求27所述的三维组织体，其中，所述片段化细胞外基质为具有RGD序列的多肽。
29.根据权利要求27或28所述的三维组织体，其中，以三维组织体的总重量为基准计，平均直径为20nm以上且1000nm以下的片段化细胞外基质的含有率为5重量％以上且90重量％以下。
30.根据权利要求27～29中任一项所述的三维组织体，其进一步包含平均直径超过1000nm的片段化细胞外基质。
31.根据权利要求27～29中任一项所述的三维组织体，其进一步包含平均直径为1.5μm以上且8.5μm以下的片段化细胞外基质。
32.根据权利要求27～31中任一项所述的三维组织体，其中，以重量换算计，平均直径较小的片段化细胞外基质和平均直径较大的片段化细胞外基质在三维组织体中的比率为1：100～100：1。
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