具体实施方式
以下通过具体实施例对本发明做进一步地详细描述。应理解,所描述的实施例仅用于说明本发明,而非用于限定本发明的范围。
以下实施例中使用到的培养基(其中的组分含量(%)为重量百分比含量)如下:
M3G培养基:葡萄糖5%,酵母粉0.5%,(NH4)2SO4 1%,K2HPO4·3H2O 0.1048%,KH2PO4 0.136%,浓缩盐溶液(MgSO4·7H2O,FeSO4·7H2O,ZnSO4·7H2O)100mL, pH6.8。葡萄糖单独灭菌。
MS培养基:2%甘氨酸,2%热榨黄豆饼粉,2%琼脂。
LB培养基:1%蛋白胨,0.5%酵母提取物,1%氯化钠。
TSB培养基:1.5%胰蛋白胨,0.5%大豆蛋白胨,0.5%氯化钠。
以下实施例中,构建基因工程菌的步骤所使用的实验材料,如内切酶、质粒、微生物菌株等,除特别说明的外,均可通过常规市售途径获得。实验过程中所涉及的操作也均为本技术领域的常规操作,可参考例如《分子克隆》等,或者按产品说明书操作。
实施例1、基因工程菌的构建
1、p152-dCas9抑制质粒的构建
将整合质粒pSET152作为p152-dCas9抑制质粒的骨架,如图1所示,该质粒中dCas9基因的表达由组成型强启动子ermE*p驱动并由fd终止子终止;sgRNA由来自大肠杆菌的启动子j23119转录,并由T0终止子终止。所述dCas9基因从Cas9核酸酶衍生而来,分别在HNH域和RuvC域(D10A和H840A)发生点突变。
选取目的基因ε-聚赖氨酸降解酶(ε-poly-L-lysine degrading enzyme,pld)基因序列的668-688bp处作为PAM位点的N20序列,序列为:
gggctgaccgcgttgatcac(SEQ IN NO:1)。
质粒构建引物设计如下:
pld-dcas9-pam3F:
cctaggtataatactagtgggctgaccgcgttgatcacgttttagagctagaaatagcaagt(SEQ INNO:2);
dcas9-R:tatgacatgattacgaattcgg(SEQ IN NO:3)。
利用Hind III和SpeI限制性酶切位点切割质粒,用上述引物获取带PAM的目的片段后,利用ClonExpress II one step克隆试剂盒(Vazyme Biotech Co.Ltd.,Nanjing,China)将目的基因片段克隆到质粒pSET152上,得到抑制质粒p152-dCas9。
2、基因工程菌的构建
利用接合转移进行种间遗传转化:将构建的p152-dCas9抑制质粒转化至穿梭菌大肠杆菌ET12567中,利用该菌株进行与白色链霉菌的接合转移,具体步骤如下:
S1:在接合转移操作的前一天,挑取包含p152-dCas9抑制质粒的穿梭菌大肠杆菌ET12567单菌落,于含50μg/mL卡那霉素、50μg/mL氯霉素和50μg/mL安普霉素的LB液体培养基中,于37℃、220rpm摇床过夜培养;然后吸取500uL细菌培养液,转移到25mL/250mL LB液体中继续培养约4-6h,至OD值0.4-0.6,于50mL离心管, 4℃、8000rpm冷冻离心机离心,收集菌体,再用相同体积的LB液体分别洗涤两次除去抗生素,获得供体菌细胞。
S2:取长好的白色链霉菌(Streptomyces albulus)NK660新鲜斜面,接种到 50mL/250mL TSB液体培养基中,于28℃、220rpm摇床震荡培养24h,得到一级种子液;取1%的一级种子液接种到二级TSB培养基中,相同条件下继续培养24h,于 50mL离心管,4℃、8000rpm冷冻离心机离心收集菌体,再用相同体积的LB液体分别洗涤两次,获得感受态的宿主菌细胞。
S3:将含有p152-dCas9抑制质粒的供体菌(大肠杆菌ET12567)和受体菌(白色链霉菌NK660)分别用2mL LB稀释后按1:1混合,各取200uL混合液均匀地涂布到MS培养基平板上,于28℃恒温培养箱中培养18-20h,然后取出,给培养基覆盖5-10mM的Apr和萘啶酮酸钠,在30℃继续培养2-3天,待培养基上长出结合子。
3、基因工程菌的验证
接合转移操作结束后,对培养基上长出的结合子进行构建菌株的筛选验证,具体如下:
首先挑取培养基上生长出来的单菌落,在含100μg/mL安普拉霉素Apr的MS培养基上划线验证,初步筛选掉因链霉菌自身抗性原因而导致的假阳性。
经30℃培养2-3天后,待抗性板上生长出单克隆,即可进行PCR验证。利用如下引物对质粒上Apr抗性基因进行PCR,来验证质粒是否成功进入菌株内。
AprF:gtgcaatacgaatggcgaaaagc(SEQ IN NO:4);
AprR:gccaatcgactggcgagc(SEQ IN NO:5)。
PCR扩增产物通过测序验证,结果如图2所示,在1000bp位置有条带,显示 p152-dCas9抑制质粒已成功转入白色链霉菌中,获得的基因工程菌命名为白色链霉菌(Streptomyces albulus)pd9-pld3,该基因工程菌已于2021年12月7日提交中国典型培养物保藏中心保藏,保藏号为:CCTCC M 20211549。
为验证本发明获得的基因工程菌(Streptomyces albulus)pd9-pld3的传代稳定性,我们同时对传三代后的工程菌进行PCR验证,结果同样显示在图2中,可知本发明获得的基因工程菌(Streptomyces albulus)pd9-pld3具有较好的传代稳定性。
实施例2、ε-聚赖氨酸降解酶酶活测定
由于ε-聚赖氨酸降解酶位于细胞膜上,因此将实施例1的方法获得的白色链霉菌(Streptomyces albulus)pd9-pld3的发酵液菌体破碎后制成粗酶液,加入ε-聚赖氨酸作为底物,在30℃、pH=7的条件下反应60min,通过HPLC高效液相色谱测定ε-聚赖氨酸的降解量,以计算出降解速率,用降解速率来反映ε-聚赖氨酸降解酶的相对活性。
HPLC测定ε-聚赖氨酸含量方法为:
将发酵培养获得的发酵液取样,在12000rpm下离心15分钟,分离菌体,过滤得到澄清滤液;将滤液稀释适当倍数,使用高效液相色谱测定ε-聚赖氨酸产量。
HPLC的色谱柱为C18柱,流动相为8%乙腈,流速为0.4mL/min,检测波长215 nm,进样体积20μL,柱温箱温度40℃。
图3显示了粗酶液降解ε-聚赖氨酸的结果,可见随着粗酶液体积的增加,ε-聚赖氨酸的消耗量也增加,可知利用粗酶液降解ε-聚赖氨酸速率来反映ε-聚赖氨酸降解酶的相对活性的方法是可行的。
实施例3、摇瓶发酵实验的配方优化
对实施例1的方法获得的白色链霉菌(Streptomyces albulus)pd9-pld3摇瓶发酵生产ε-聚赖氨酸的摇瓶发酵配方进行优化。
大量文献表明白色链霉菌发酵过程中,ε-聚赖氨酸的产物积累与pH息息相关。在摇瓶实验中,由于无法实现对pH的精准调控,为了避免白色链霉菌由于消耗葡萄糖导致pH下降过快影响菌株的积累富集,进而影响到最终ε-聚赖氨酸的产量,我们通过在培养基中加入CaCO3来减缓摇瓶发酵过程中pH的下降速度。
利用白色链霉菌(Streptomyces albulus)pd9-pld3发酵培养基M3G作为出发培养基,将CaCO3的添加比例分别设置为0%,0.2%,0.5%,0.8%,进行对出发菌株白色链霉菌(Streptomyces albulus)NK660的96h摇瓶发酵,通过测定发酵过程中的pH和ε-聚赖氨酸的产物积累情况来判断CaCO3添加的最佳优化比例,结果如图4所示。
由图4的结果可知,CaCO3的添加比例为0.2%和0.5%时,发酵96小时后ε-聚赖氨酸的产物积累最多,说明恰当比例的CaCO3的添加有利于摇瓶发酵中的ε-聚赖氨酸积累。
实施例4、基因工程菌pd9-pld3与出发菌NK660生产ε-聚赖氨酸能力的比较
将基因工程菌(Streptomyces albulus)pd9-pld3与出发菌(Streptomycesalbulus) NK660利用优化过的摇瓶发酵培养基配方(葡萄糖5%,酵母粉0.5%,(NH4)2SO41%, K2HPO4·3H2O 0.1048%,KH2PO4 0.136%,浓缩盐溶液(MgSO4·7H2O,FeSO4·7H2O,ZnSO4·7H2O)100mL,CaCO3 0.5%)同时进行96h摇瓶发酵,分别收集0h,12h, 24h,48h,60h,72h,84h,96h的发酵液,称量同等重量的菌体进行破碎,在同样的条件下完成酶活测定实验,以进一步对出发菌(Streptomyces albulus)NK660与抑制基因工程菌(Streptomycesalbulus)pd9-pld3的ε-聚赖氨酸产量、ε-聚赖氨酸降解酶pld 酶活的测定与比较,结果分别如图5和图6所示。
图5的结果显示,在96小时的摇瓶发酵过程中,两菌株的pH变化情况差别不大,但基因工程菌(Streptomyces albulus)pd9-pld3的ε-聚赖氨酸产量明显高于出发菌(Streptomyces albulus)NK660,在96h时,基因工程菌(Streptomyces albulus)pd9-pld3的ε-聚赖氨酸产量达到0.933g/L,是出发菌(Streptomyces albulus)NK660的1.67 倍。
图6的结果显示,在96小时的摇瓶发酵过程中,基因工程菌(Streptomycesalbulus) pd9-pld3的ε-聚赖氨酸降解酶pld酶活相比出发菌(Streptomyces albulus)NK660降低了约20.7%,从而有利于产物ε-聚赖氨酸的积累。
序列表
<110> 上海清美绿色食品(集团)有限公司
<120> 白色链霉菌pd9-pld3及其在ε-聚赖氨酸生产中的应用
<130> 221061
<141> 2022-05-05
<160> 5
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
gggctgaccg cgttgatcac 20
<210> 2
<211> 62
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
cctaggtata atactagtgg gctgaccgcg ttgatcacgt tttagagcta gaaatagcaa 60
gt 62
<210> 3
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
tatgacatga ttacgaattc gg 22
<210> 4
<211> 23
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
gtgcaatacg aatggcgaaa agc 23
<210> 5
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
gccaatcgac tggcgagc 18