CN114146019B - 一种茯苓多糖提取物及其在抗紫外线中的应用 - Google Patents

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Abstract

本发明属于物质提取技术领域，提供了一种茯苓多糖提取物及其在抗紫外线中的应用。本发明的茯苓多糖提取物具有优异的抗紫外线性，使其能够用于抗紫外线领域中，比如防晒剂产品。同时，本发明提供的茯苓多糖提取物还具有保湿性、抗氧化性和酪氨酸酶抑制作用，即茯苓多糖提取物兼具保湿和美白的功效，有望应用于美白保湿化妆品中。进一步地，所述茯苓多糖提取物的提取方法的简单、提取周期短；且所得茯苓多糖提取物的得率高。

Description

一种茯苓多糖提取物及其在抗紫外线中的应用
技术领域
本发明涉及物质提取技术领域，尤其涉及一种茯苓多糖提取物及其在抗紫外线中的应用。
背景技术
茯苓多糖主要存在于茯苓细胞壁中，有可溶于水溶液的多糖，也有可溶于碱性溶液的多糖。近代临床及药理研究表明茯苓多糖具有很好的抗肿瘤作用，该糖具有增强巨嗜细胞和T淋巴细胞的细胞毒作用，还能增强细胞的免疫反应并激活机体对肿瘤的免疫监视系统，其机制与激活补体有关。
从茯苓中提取茯苓多糖提取物的方法包括水提法、酶解辅助法和微波辅助提取法。不同的提取方法得到的茯苓多糖提取物中含有的物质种类相差很大。现有技术中，已经研究茯苓多糖提取物的抗氧化性和保湿性，但茯苓多糖提取物的抗紫外性并未被研究。
发明内容
有鉴于此，本发明的目的在于提供一种茯苓多糖提取物及其在抗紫外线中的应用。本发明提供的茯苓多糖提取物具有优异的抗紫外性，能够用于抗紫外线领域中。
为了实现上述发明目的，本发明提供以下技术方案：
本发明提供了一种茯苓多糖提取物在抗紫外线中的应用。
优选地，所述茯苓多糖提取物的提取方法，包括以下步骤：
将茯苓和水混合，进行超声提取，得到所述茯苓多糖提取物；
所述茯苓和水的用量比为1g：(10～50)mL；
所述超声提取的温度为10～50℃；
所述超声提取的功率为150～250W；
所述超声提取的时间为5～25min。
优选地，所述茯苓和水的用量比为1g：20mL。
优选地，所述超声提取的温度为33℃。
优选地，所述超声提取的功率为208W；所述超声提取的时间为16min。
优选地，所述超声提取后，还包括将得到的超声提取料液离心，将得到的上层液体过滤，得到的滤液进行浓缩和冷冻干燥，得到所述茯苓多糖提取物。
优选地，所述离心的转速为4000r/min，时间为20min。
优选地，所述冷冻干燥的参数包括：温度为-50℃，时间为48h。
优选地，所述测定抗紫外性能的紫外线波长为280～400nm。
本发明还提供了一种茯苓多糖提取物，所述茯苓多糖提取物的提取方法，包括以下步骤：
将茯苓和水混合，进行超声提取，得到所述茯苓多糖提取物；
所述茯苓和水的用量比为1g：(10～50)mL；
所述超声提取的温度为10～50℃；
所述超声提取的功率为150～250W；
所述超声提取的时间为5～25min。
本发明提供了一种茯苓多糖提取物在抗紫外线中的应用。由于本发明的茯苓多糖提取物具有优异的抗紫外性，使其能够应用于抗紫外线中，比如防晒剂产品。
进一步地，本发明限定了所述茯苓多糖提取物的提取方法，包括以下步骤：将茯苓和水混合，进行超声提取，得到所述茯苓多糖提取物；所述茯苓和水的用量比为1g：(10～50)mL；所述超声提取的温度为10～50℃；所述超声提取的功率为150～250W；所述超声提取的时间为5～25min。利用上述提取方法得到的茯苓多糖提取物的抗紫外性强；同时，还具有抗氧化性和保湿性以及抑制酪氨酸酶活性的功能。
本发明提供了一种茯苓多糖提取物，所述茯苓多糖提取物的提取方法，包括以下步骤：将茯苓和水混合，进行超声提取，得到所述茯苓多糖提取物；所述茯苓和水的用量比为1g：(10～50)mL；所述超声提取的温度为10～50℃；所述超声提取的功率为150～250W；所述超声提取的时间为5～25min。本发明提供的茯苓多糖提取物抗紫外性强；同时，还具有优异的抗氧化性和保湿性。
附图说明
图1为葡萄糖标准曲线；
图2为超声温度对提取茯苓多糖含量的影响图；
图3为料液比对提取茯苓多糖含量的影响图；
图4为超声时间对提取茯苓多糖含量的影响图；
图5为超声功率对提取茯苓多糖含量的影响图；
图6为超声时间和功率交互作用响应曲面图和等值线图；
图7为超声功率和温度交互作用响应曲面图和等值线图；
图8为超声时间和温度交互作用响应曲面图和等值线图；
图9为DPPH自由基清除能力图；
图10为ABTS自由基清除能力图；
图11为羟自由基的清除能力图；
图12为超氧阴离子自由基的清除能力图；
图13为保湿能力图；
图14为酪氨酸酶抑制率图；
图15为抗紫外线能力测试图。
具体实施方式
本发明提供了一种茯苓多糖提取物在抗紫外线中的应用。
在本发明中，所述紫外线的波长优选为280～400nm。
在本发明中，如无特殊说明，本发明所用原料均优选为市售产品。
在本发明中，所述茯苓多糖提取物的提取方法，优选包括以下步骤：
将茯苓和水混合，进行超声提取，得到所述茯苓多糖提取物；
所述茯苓和水的用量比为1g：(10～50)mL；
所述超声提取的温度为10～50℃；
所述超声提取的功率为150～250W；
所述超声提取的时间为5～25min。
在本发明中，所述茯苓的粒径优选≤80目。
在本发明中，所述茯苓的获取方法优选包括：将茯苓原料依次进行干燥和粉碎，得到所述茯苓。在本发明中，所述干燥的温度优选为46～50℃，时间优选为48h。本发明对所述粉碎的参数不做具体限定，只要能够得到粒径≤80目的茯苓即可。
在本发明中，所述茯苓和水的用量比优选为1g：(10～50)mL，进一步优选为1g：(20～40)mL，更优选为1g：(20～30)mL。
在本发明中，所述超声提取的温度优选为10～50℃，进一步优选为20～40℃，更优选为30～35℃，最优选为33℃。
在本发明中，所述超声提取的功率优选为150～250W，进一步优选为180～220W，更优选为200～210W，最优选为208W。
在本发明中，所述超声提取的时间优选为5～25min，进一步优选为10～20min。
在本发明中，所述超声提取的参数具体优选包括：所述茯苓和水的用量比为1g：20mL，所述超声提取的温度为33℃；所述超声提取的功率为208W；所述超声提取的时间为16min。
所述超声提取后，本发明优选还包括将得到的超声提取体系离心，将得到的上层液体过滤，得到的滤液进行浓缩和冷冻干燥，得到所述茯苓多糖提取物。
在本发明中，所述离心的转速优选为4000r/min，时间优选为20min。
在本发明中，所述过滤的滤膜的孔径优选为40μm。
在本发明中，所述浓缩的倍数优选为5～40倍。本发明对所述浓缩的参数不做具体限定，只要能够浓缩至滤液体积的1/5～1/40即可。
在本发明中，所述冷冻干燥的参数优选包括：温度优选为-50℃，时间优选为48h。
本发明还提供了一种茯苓多糖提取物，所述茯苓多糖提取物的提取方法，包括以下步骤：
将茯苓和水混合，进行超声提取，得到所述茯苓多糖提取物；
所述茯苓和水的用量比为1g：(10～50)mL；
所述超声提取的温度为10～50℃；
所述超声提取的功率为150～250W；
所述超声提取的时间为5～25min。
在本发明中，所述茯苓多糖提取物的提取方法中的参数优选与上述技术方案一致，在此不再赘述，
本发明提供的茯苓多糖提取物具有优异的抗紫外性；同时，还具有保湿性、抗氧化性和酪氨酸酶抑制率。
下面结合实施例对本发明提供的茯苓多糖提取物及其在抗紫外线中的应用进行详细的说明，但是不能把它们理解为对本发明保护范围的限定。
实施例1
茯苓块在室温下于48±2℃干燥48h，使用机器研磨粉末，通过80目筛，得到粉末状茯苓。
取茯苓粉末和水按照一定的料液比均匀混合并溶解，以水浴的方法在超声提取装置中进行提取；超声完后于4000r/min的速度离心20分钟，将上层的液体进行过滤，所得滤液作为茯苓多糖提取物料液。
茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖含量的测定：
在20mL试管中移取1mL待测样品(茯苓多糖提取物料液)，向试管中加入0.5mL的5wt％苯酚溶液，充分混合，然后快速加入2.5mL浓硫酸；然后将试管放入沸水中水浴加热15min，再取出冷却至室温。调节分光光度计的波长为490nm，测吸光度，根据葡萄糖标准曲线，得到茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖的得率。
葡萄糖标准曲线的绘制
以490nm处的葡萄糖质量浓度的吸光度值为因变量，并以葡萄糖质量浓度为自变量，得到线性回归方程，线性关系为良好，如图1所示。
单因素试验
1.1超声温度对茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖提取率的影响
设定料液比为1：50g/mL，超声功率为200W，时间为15min；研究不同超声温度10℃、20℃、30℃、40℃、50℃对茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖提取率的影响，平行3次；结果如图2所示。
从图2可以看出：当超声的温度控制在10～30℃之间范围内时，随着超声温度的提高，茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖的获得率逐渐增大；当实际超声温度设定为30℃时，得到茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖最大浓度为0.131mg/mL；当实际超声温度控制30～50℃时，茯苓多糖的得率会随着实际超声持续时间的提高而逐渐减小，这很有可能是由于温度较高对茯苓多糖的结构有害，提取率降低。
1.2料液比对茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖提取率的影响
设定超声的温度为30℃，超声功率为200W，时间为15min；研究不同料液比1：10、1：20、1：30、1：40、1：50(g：mL)对茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖提取率的影响，平行3次；结果如图3所示。
从图3可以看出：茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖最大获得率的料液比为1：20(g：mL)；此时，茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖的浓度为0.100mg/mL；之后随着料液比的增加，提取的茯苓多糖浓度有所下降。茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖提取率的增大是由于提取剂体积增大，提取出的多糖含量增加；而当料液比过大时，可能由于茯苓粉含量减小，提取出的多糖浓度相对含量降低，导致得率下降。因此，料液比1：20(g：mL)为茯苓多糖的最佳提取比例。而且，从图3可以看出：不同料液比对于超声提取茯苓多糖的含量影响很小。
1.3超声时间对茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖提取率的影响
设定超声的温度为30℃，料液比为1：50(g：mL)，超声功率为200W；研究不同超声时间5min、10min、15min、20min、25min对茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖提取率的影响，平行3次；结果如图4所示。
从图4可以看出：随着恒温热水的超声时间增加，茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖的得率逐渐增大；当提取15min时，茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖的得率最大，得到茯苓多糖的最高浓度范围为0.0948mg/mL；之后再随着超声时间的增加茯苓多糖获得率减少。据图4分析，超声时间越长，解析出的茯苓多糖被分解的越来越多，造成损失，从而导致得率降低。所以，提取15min为茯苓多糖最佳超声提取时间。由图4中可知，超声时间对提取茯苓多糖含量的影响很小。可能是由于这种超声持续时间过长，影响到茯苓多糖的分子链结构，对茯苓多糖的分子结构及其功能造成了破坏，使得提取茯苓多糖含量减小。所以，超声提取的最优时间是15min。
1.4超声功率对茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖提取率的影响
设定超声的温度为30℃，料液比为1：50(g：mL)，超声时间为15min；研究不同超声功率150W、175W、200W、225W、250W对茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖提取率的影响，平行3次；结果如图5所示。
由图5可知：随着超声功率的增大，茯苓多糖得率增大，得到茯苓多糖的最大浓度为0.124mg/mL，此时在超声功率为200W时最大；随后随着超声功率的增加，茯苓多糖得率降低。分析可得，随着超声功率的增加，被溶出的茯苓多糖相对含量增加，得率增大；如果超声功率过大，则会破坏茯苓多糖结构，茯苓多糖相对含量下降，致使得率降低。因此，分析200W是茯苓多糖的最佳超声提取功率。由图5可知超声功率对茯苓多糖的得率影响显著。
1.5超声提取茯苓多糖工艺的优化响应面试验
基于1.1～1.4的测试，将茯苓多糖(Y)产量的响应值用作响应值；使用对茯苓多糖得率影响较大的三个条件作为影响因子，即超声提取的温度(A)，超声提取的功率(B)和超声提取的时间(C)，如表1所示。Box-Behnken检验旨在执行响应表面检验分析，包括3个因素和3和水平，结果如表2、图6～8所示。
表1提取工艺优化响应面试验因素与水平
Figure BDA0003442351650000071
表2优化响应面试验结果
Figure BDA0003442351650000072
Figure BDA0003442351650000081
从表2、图6～8可以看出：影响因子对茯苓多糖得率的重要影响大小的顺序分别是B>A>C，即超声提取的功率>温度>时间。茯苓多糖得率计算公式为：
茯苓多糖得率＝+1.94+0.1050×A+0.1485×B+0.0820×C-0.0260×AB-0.0280×AC+0.0280×BC-0.1958×A2-0.2548×B2-0.2118×C2。
由响应面分析结果可以知道：超声提取茯苓多糖的最佳提取工艺的条件是：超声提取的温度为33.249℃、超声提取的功率为208.243W、超声提取的时间为16.451min，上述最佳提取工艺下，茯苓多糖提取物料液中茯苓多糖的理论得率为2.002％，考虑到工艺实际操作上需要简单方便，将各种可能影响工艺因素综合修正成：工艺原则上应为：超声提取温度33℃、超声提取功率208W、超声提取时间16min。
实施例2
茯苓多糖提取物的提取方法
茯苓块在室温下于48±2℃干燥48h，使用机器研磨粉末，通过80目筛，得到粉末状茯苓。取茯苓粉末和水按照1：20(g：mL)，均匀混合并溶解以水浴的方法在超声提取装置中进行提取；其中，超声的温度为33℃，超声的功率为208W，超声的时间为16min；超声完后于4000r/min的速度离心20分钟，将上层的液体进行过滤，所得滤液浓缩至原始滤液体积的10％，得到茯苓多糖提取物。
利用实施例1的方法测定所得茯苓多糖提取物中茯苓多糖的得率为2.001％。
茯苓多糖计，采用水将茯苓多糖提取物溶解，得到浓度分别为0.5、1、2、3和4mg/mL的茯苓多糖溶液。
抗氧化性测定：
DPPH自由基清除率测定
a.称取2mg DPPH粉末于40mL体积浓度为95％的乙醇溶液中溶解，超声15min使DPPH溶液混合均匀，超声完毕后取2mL该溶液，在517nm处测其吸光度，调整DPPH溶液吸光度在1.2～1.3之间。
b.移取不同浓度茯苓多糖溶液2mL和相同浓度VC溶液2mL于试管中，将VC设为阳性对照，加入2mL DPPH溶液，混匀，黑暗处反应30min，空白对照组取2mL无水乙醇，加入2mLDPPH溶液，并且测定2mL样品，加入2mL无水乙醇。茯苓多糖溶液的DPPH自由基清除能力DPPH清除率由下式计算：
Figure BDA0003442351650000091
式中：A1为含样品的DPPH溶液的吸光度；A2为含样品的无水乙醇的吸光度；A0为含DPPH的无水乙醇的吸光度。
结果如图9所示。从图9可以看出：当茯苓多糖溶液的浓度为0.5～2mg/mL时，随着茯苓多糖溶液的浓度逐渐增大使得DPPH的清除率增加得较快，之后随着茯苓多糖溶液的浓度增大逐渐增加得更慢且趋于稳定。当茯苓多糖溶液的浓度等于4.0mg/mL时，茯苓多糖溶液清除DPPH自由基的效率最高，达到24.3％。相比较阳性对照品VC，茯苓多糖溶液清除DPPH自由基能力稍弱，具有一定抗氧化效果。
ABTS自由基清除率测定
将5mL 7.4mmol/LABTS储备溶液与88μL 2.6mmol/L K2S2O8混合，静置12～16小时以制备ABTS的工作溶液。取0.4mLABTS溶液，用PBS溶液稀释。在室温下需要734nm的吸收值。
取0.2mL的ABTS，和10μL的不同浓度茯苓多糖溶液，混合，将VC设为阳性对照，使其在黑暗中于室温放置10min。室温下，平行测量3次在734nm波长处的吸光度。茯苓多糖溶液对ABTS自由基的清除能力由以下公式计算：
ABTS自由基清除率＝(A0-A1÷A0)×100％
式中：A0为不加样品，加入ABTS的吸光度；A1为加入样品和ABTS的吸光度。
结果如图10所示。从图10可以看出：当茯苓多糖溶液的浓度在0.5～4.0mg/mL时，ABTS清除率随着多糖质量浓度的增加而增大。VC对ABTS自由基具有很强的清除能力，当VC质量浓度为0.5mg/mL时，清除效果已经达到60％。与阳性对照组VC相比，茯苓多糖溶液对ABTS自由基清除作用稍差，当茯苓多糖溶液的浓度为4.0mg/mL其清除率最高可达35.6％。所以茯苓多糖溶液对ABTS自由基清除效果小于VC，具有一定抗氧化效果。
羟自由基清除率测定
吸取不同浓度茯苓多糖溶液1mL，依次加入含3mL 2mmol/LFeSO4溶液和3mL6mmol/L水杨酸溶液的试管中，摇匀，加3mL 1mmol/L H2O2启动，加热温度37℃，时间30min，取出，调节分光光度计的波长为510nm测吸光度值；使用3mL去离子水代替3mL 1mmol/L H2O2作待测液的本底，测量的吸光度值；使用1mL的无水乙醇代替样品溶液为空白对照。以无水乙醇为参照测吸光度，茯苓多糖溶液对羟自由基的清除能力的用以下公式计算：
羟自由基清除率＝[1-(A1-A2)÷A0]×100％
式中：A0为空白对照吸光度值；A1为样液吸光度值；A2为待测液的本底吸光度值。
结果如图11所示。从图11可以看出：当茯苓多糖溶液的浓度在0.5～4.0mg/mL时，茯苓多糖溶液的羟自由基清除能力就会随茯苓多糖溶液的浓度的增加而逐渐增大。当茯苓多糖溶液的浓度等于4.0mg/mL时，对·OH的清除作用最大，为18.9％。与阳性对照物VC相比，茯苓多糖溶液对·OH的清除能力小于阳性对照组VC，具有一定抗氧化效果。
超氧阴离子自由基清除率测定
用10mmol/L HCl制备3mmol/L邻苯三酚，并用10mmol/LHCl替换的邻苯三酚溶液为空白对照。取5mLpH值为8.2的50mmol/LTris-HCl溶液，去离子水1mL和无水乙醇1mL。在25℃的条件下水浴预热20min，取出，迅速加入0.5mL加热至25℃的3mmol/L邻苯三酚，立即振摇，在波长325nm条件下测吸光度值。测量样品时，加入1mL不同浓度茯苓多糖溶液和1mL稀释水，后再加入邻苯三酚，再重复前面的操作，茯苓多糖溶液对超氧阴离子自由基的清除能力的用以下公式计算:
超氧阴离子自由基清除率＝[1-(A3-A4)/(A1-A2)]×100％
式中：A1：邻苯三酚的自氧化吸光度；A2：不含样品和邻苯三酚的吸光度；A3：含有样品和邻苯三酚的吸光度；A4：含有样品但不含邻苯三酚的吸光度。
结果如图12所示。从图12可以看出：当茯苓多糖溶液的浓度在0.5～4.0mg/mL时，随着茯苓多糖溶液的浓度的不断提大，超阴离子的自由基清除能力也随之增加。VC具有强而有效的去除超阴离子自由基反应的能力。当VC的质量浓度达到0.5mg/mL时，清除效果已经达到58.2％。当茯苓多糖溶液的浓度为4.0mg/mL时，茯苓多糖溶液对超氧阴离子自由基的清除作用最大，清除率大约为22.7％。说明：茯苓多糖溶液对超氧阴离子自由基清除效果小于VC，具有一定抗氧化效果。
保湿性测定：
配制浓度为0.1mg/mL的甘油水溶液。
分别称取0.2g(精确度为0.0001g)浓度均为0.1mg/mL的甘油水溶液和茯苓多糖溶液，将两种溶液涂在装有3M胶带的玻璃板上，记录3M胶带的玻璃板的质量m以及样品涂抹后的质量m0，放置在装有碳酸钾饱和溶液的干燥器中，相对湿度为43％，称重并记录1、2、4、8和24小时后重量m1，然后以当前的保水率计算。重复三遍并计算平均值。保湿率公式如下：
保湿率＝(m1-m)÷(m0-m)×100％
式中：m为3M胶带的玻璃板的质量；m0为样品涂抹后的质量；m1为干燥后重量。
结果如图13所示，从图13可以看出：茯苓多糖与甘油的保湿率的大小顺序为：甘油>茯苓多糖。茯苓多糖提取物及甘油在水中的保湿性能几乎是持续不断地下降，而下降趋势是慢慢减弱的。茯苓多糖提取物下降的速率略大于甘油。同时也显示茯苓多糖提取物保湿性较好，24小时后甘油保湿率64.7％，茯苓多糖保湿率57.8％。本实验中的茯苓多糖提取物与常用的化妆品保湿剂中甘油的保湿作用相比，略低于甘油。
酪氨酸酶抑制率测定：
配置pH 6.8的PBS缓冲溶液，备用。准确称取0.2g多巴，用0.1mol/L HCl溶解，再用PBS缓冲溶液定容到100mL，得到多巴溶液；准确称取5mg酪氨酸酶定容到100mL容量瓶中，得到酪氨酸酶溶液、
向试管中加入缓冲液0.6mL，不同浓度茯苓多糖溶液1mL和酪氨酸酶溶液0.4mL。在37℃下反应10分钟，加1mL多巴溶液，然后在37℃下10分钟，在475nm下吸光度并记录为A1。向试管中加入缓冲液1.6mL和酪氨酸酶溶液0.4mL。在37℃下反应10分钟，加入1mL多巴溶液，在37℃下反应10min，测定在475nm的吸光度。记为A0阳性对照。酪氨酸酶抑制率计算公式：
酪氨酸酶抑制率＝[(A0-A1)÷A0]×100％
式中：A1含样品溶液；A0含样品溶液。
结果如图14所示。从图14可以看出：当茯苓多糖溶液的浓度为0.5～4.0mg/mL时，随着茯苓多糖溶液的浓度的增加，其对酪氨酸酶的抑制强度先是增大后逐渐趋于平缓。在茯苓多糖溶液的浓度等于4.0mg/mL时，茯苓多糖溶液抑制酪氨酸酶效果最大，约为42.2％。说明：茯苓多糖溶液对酪氨酸酶的抑制作用效果比较好。
抗紫外线能力的测定
采用紫外分光光度法分别测定不同浓度茯苓多糖溶液在200～500nm波长内的透过率来评价茯苓多糖的防晒性能。
测定样品在UVB区280、290、300、310和320nm的透过率，在UVA区320、330、340、350、360、370、380、390和400nm处的透过率
紫外吸收率公式：紫外吸收率/％＝(1-透过率)×100％
结果如图15所示。从图15可以看出：茯苓多糖溶液的浓度为0.5～4.0mg/mL时，随着茯苓多糖溶液浓度的增加，其对280～400nm波长范围的吸收率逐渐增加，同一浓度的吸收率随着波数上升而下降。如图15所示，在茯苓多糖溶液的浓度等于4.0mg/mL时，茯苓多糖溶液的抗紫外线效果最好，在UVB区平均吸收率为100％，UVA区平均吸收率为88.6％。
以上所述仅是本发明的优选实施方式，应当指出，对于本技术领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明原理的前提下，还可以做出若干改进和润饰，这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。

Claims (6)

1.一种茯苓多糖提取物在制备抗紫外线组合物中的应用，所述茯苓多糖提取物的提取方法，包括以下步骤：
将茯苓和水混合，进行超声提取，得到所述茯苓多糖提取物；
所述茯苓和水的用量比为1g：20mL；
所述超声提取的温度为33℃；
所述超声提取的功率为208W；
所述超声提取的时间为16min。
2.根据权利要求1所述的应用，其特征在于，所述超声提取后，还包括将得到的超声提取料液离心，将得到的上层液体过滤，得到的滤液进行浓缩和冷冻干燥，得到所述茯苓多糖提取物。
3.根据权利要求2所述的应用，其特征在于，所述离心的转速为4000r/min，时间为20min。
4.根据权利要求2所述的应用，其特征在于，所述冷冻干燥的参数包括：温度为-50℃，时间为48h。
5.根据权利要求1～4任一项所述的应用，其特征在于，所述紫外线的波长为280～400nm。
6.一种茯苓多糖提取物，其特征在于，所述茯苓多糖提取物的提取方法，包括以下步骤：
将茯苓和水混合，进行超声提取，得到所述茯苓多糖提取物；
所述茯苓和水的用量比为1g：20mL；
所述超声提取的温度为33℃；
所述超声提取的功率为208W；
所述超声提取的时间为16min。
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