CN112920995A - 一种间充质干细胞培养血清加油包及其应用 - Google Patents

一种间充质干细胞培养血清加油包及其应用 Download PDF

Info

Publication number
CN112920995A
CN112920995A CN202110345318.3A CN202110345318A CN112920995A CN 112920995 A CN112920995 A CN 112920995A CN 202110345318 A CN202110345318 A CN 202110345318A CN 112920995 A CN112920995 A CN 112920995A
Authority
CN
China
Prior art keywords
mesenchymal stem
stem cell
cell culture
serum
skin
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN202110345318.3A
Other languages
English (en)
Inventor
赵峻岭
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Inner Mongolia Jin Yuan Kang Biotechnology Co ltd
Original Assignee
Individual
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Individual filed Critical Individual
Priority to CN202110345318.3A priority Critical patent/CN112920995A/zh
Publication of CN112920995A publication Critical patent/CN112920995A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0652Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
    • C12N5/0662Stem cells
    • C12N5/0668Mesenchymal stem cells from other natural sources
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/02Atmosphere, e.g. low oxygen conditions
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/05Inorganic components
    • C12N2500/10Metals; Metal chelators
    • C12N2500/20Transition metals
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/05Inorganic components
    • C12N2500/10Metals; Metal chelators
    • C12N2500/20Transition metals
    • C12N2500/24Iron; Fe chelators; Transferrin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/30Organic components
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/30Organic components
    • C12N2500/38Vitamins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/70Undefined extracts
    • C12N2500/80Undefined extracts from animals
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/11Epidermal growth factor [EGF]
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/115Basic fibroblast growth factor (bFGF, FGF-2)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/15Transforming growth factor beta (TGF-β)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/30Hormones
    • C12N2501/33Insulin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/998Proteins not provided for elsewhere
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2509/00Methods for the dissociation of cells, e.g. specific use of enzymes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2509/00Methods for the dissociation of cells, e.g. specific use of enzymes
    • C12N2509/10Mechanical dissociation

Abstract

本发明公开了一种间充质干细胞培养血清加油包,属于干细胞培养技术领域。包括:重组人血清白蛋白、维生素C、丙氨酸‑谷氨酰胺二肽、碱性成纤维生长因子、TGF‑β1、表皮生长因子、重组人胰岛素、柠檬酸铁、CaCl2·2H2O、CuSO4·5H2O、FeSO4·7H2O,还提供了进一步制备皮肤间充质干细胞的应用。将间充质干细胞培养血清加油包添如入人血清制得间充质干细胞培养血清,再与基础培养及混合得间充质干细胞培养基,其可使皮肤组织逆向生成间充质干细胞,速度快、稳定性高、安全可靠,为皮肤干细胞工程或者其他临床应用打下基础。

Description

一种间充质干细胞培养血清加油包及其应用
技术领域
本发明属于干细胞培养技术领域,具体涉及一种间充质干细胞培养血清加油包及其应用。
背景技术
皮肤是人体最大的器官,参与抵御生物入侵、紫外线辐射以及防止水分丢失、调节体温维持个体外貌等方面起着十分重要的生理作用,其是人体免疫系统组成的重要的一部分,而皮肤细胞是构成这器官的基本单元,皮肤细胞基础研究领域是揭示皮肤健康、发育、预防、治疗的重要科研途径。
随着时间的增长或皮肤的使用,会导致皮肤老化。皮肤老化是指皮肤功能衰老性损伤,使皮肤对机体的防护能力,调节能力等减退,由此皮肤不能适应内外环境的变化,出现颜色、色泽、形态、质感等外观整体状况的改变。皮肤的老化分为内源性老化和外源性老化。内源性老化是指皮肤随年龄增长的自然老化。表现为皮肤变白,出现细小皱纹、弹性下降、皮肤松弛等。外源性老化的最主要原因是日晒所致的光老化。表现为皱纹、皮肤松弛、粗糙、淡黄或灰黄色的皮肤变色、毛细血管扩张、色素斑形成等。
现有对抗皮肤皱纹、皮肤松弛的方法,主要有防晒、日常护理、抗自由基、激光理疗和皮肤再生工程。防晒、日常护理、抗自由基主要是减缓老化过程,对已经老化皮肤作用不大,激光理疗是较为常用的方法,具有一定的修复效果,但存在修复效果不稳定、损伤相对大、术后恢复时间相对较长等弊端,皮肤再生工程可通过注射具有新生活性的间充质干细胞,帮助皮肤回复饱满状态,但体外培养皮肤间充质干细胞方法中使用的培养基,是由基础培养基和血清配置而成,而此类培养基具有以下缺点:
1、传代越多使细胞的原代活性越来越差,疗效显著降低,同时存在致瘤风险,每次传代时使用胰酶消化也会对细胞造成细胞表面信号丢失,传代细胞部分丧失干细胞活性,回注后效果不理想。
2、采用胰酶消化原代组织,从而分离表皮和真皮,再将真皮切碎后用胶原酶消化成单细胞,最后放入培养基中培养,该操作过程中酶会对细胞造成不可逆的损伤,使细胞得率低,同时还具有成本高、消化时间久,操作复杂等缺点。
因此,如何提供一种间充质干细胞培养血清,可添加入基础培养基使用,使皮夫组织培养速度快、安全性高、具有高效体内再生活性的干细胞是本领域亟待解决的问题。
发明内容
本发明公开了一种间充质干细胞培养血清加油包及其应用,安全性高、体内在生活性强。
为了实现上述目的,本发明采用如下技术方案:
一种间充质干细胞培养血清加油包,包括:重组人血清白蛋白5-8ml、维生素C 10-20mg/ml、丙氨酸-谷氨酰胺二肽0.1-0.2mg/ml、碱性成纤维生长因子50-70ng/ml、TGF-β10.02-0.03ug/ml、表皮生长因子0.05-0.1μg/ml、重组人胰岛素15-30μg/ml、柠檬酸铁0.1-0.2μg/ml、CaCl2·2H2O 0.3-0.5mg/ml、CuSO4·5H2O 0.25-0.4mg/ml、FeSO4·7H2O 0.2-0.3μg/ml;
血清白蛋白为50mg/ml的水溶液;,
有益效果在于,鸡胚提取物中与胎牛血清相比含有更早期的生长因子,在皮肤细胞向间充质干细胞转化过程中利于产生更多的细胞表面信号分子,更有利于激活体内的细胞全能活性;
间充质干细胞培养血清加油包的制备方法是将上述原料混匀后,无菌膜过滤,冷藏备用;
本发明还提供了间充质干细胞培养血清加油包在制备间充质干细胞培养制剂中的应用;
一种间充质干细胞培养血清,按体积计,间充质干细胞培养血清加油包∶人血清=1∶(2-3);
优选的,本发明还提供了间充质干细胞培养血清在制备间充质干细胞培养制剂中的应用;
本发明还提供了一种皮肤间充质干细胞原代培养基,按体积计,基础培养基∶间充质干细胞培养血清=10∶(4-6);
优选的,一种皮肤间充质干细胞传代培养基,按体积计,基础培养基∶间充质干细胞培养血清=10∶(2-4);
优选的,本发明还提供了皮肤间充质干细胞培养基在皮肤间充质干细胞培养中的应用;
优选的,所述人血清为IgG去除90%以上的人血清;
优选的,所述基础培养基DMEM培养基;
优选的,所述基础培养基为DMEM:F12混合培养基;
一种皮肤间充质干细胞的培养方法,包括以下步骤:
1)取皮肤组织剪碎,加入酶解液,消化后,离心,去上清,得酶解组织;
2)酶解组织加入传代培养基终止酶活,离心,去上清;
3)将酶解组织置于血清白蛋白包被的培养皿中,加入原代培养基,通入空气、CO2和N2的混合气体,37℃条件下培养;
4)当细胞丰度达到65-75%,收获原代间充质干细胞;
5)将步骤4)中原代间充质干细胞传代培养;
优选的,步骤1)中,消化温度为37℃,时间为120-240min,离心转数1000rpm,时间为8-15min;
优选的,反应时间为90min;
优选的,步骤2)中,酶解组织按1∶5加入终止血清,离心转数为1000rpm;
优选的,酶消化液为添加质量百分比0.2-0.4%I型胶原蛋白酶的原代培养基;
优选的,酶消化液中含有0.1-0.3mg/ml的青霉素和0.1-0.3mg/ml链霉素;
优选的,I型胶原蛋白酶质量百分比浓度浓度为0.3%;
有益效果在于:不同蛋白酶水解位点及键位均不同,不同类型的皮肤细胞表面蛋白种类和适用的信号活性位点均不同,I型胶原蛋白酶处理过的皮肤细胞,保留更多的间充质干细胞转化活性信号位点,更有利于向皮肤间充质干细胞转化及细胞全能性的激发;
优选的,青霉素浓度为0.2mg/ml;
优选的,链霉素0.2mg/ml;
优选的,酶消化液经的配置将酶消化液由0.2-0.4%的I型胶原蛋白酶,0.1-0.3mg/ml的青霉素,0.1-0.3mg/ml链霉素,基础培养基组成混匀后,无菌过滤,冷藏备用;
优选的,血清白蛋白为重组人血清白蛋白;
有益效果在于:重组人血清白蛋白不仅作为血液基质蛋白还具有一定信号作用,本申请使用重组人血清白蛋白更能模仿体内皮肤细胞的生长环境,利于成纤维皮肤成纤维表面蛋白分子的生长;
优选的,混合气体为空气∶N2∶CO2体积比为(67∶30∶3)-(63∶30∶7);
优选的,混合气体为空气∶N2∶CO2体积比为65∶30∶5;
有益效果在于:本申请通入的气体具有更少的氧气比例,更能还原体内皮肤细胞的氧气环境;在体内气体分子作为一种信号影响着干细胞活性,本申请的气体组成更有利于皮肤细胞向间充质干细胞转化及细胞全能性的激活。
综上所述,本发明公开了一种间充质干细胞培养血清及其制备方法,通过鸡胚提取物、重组人血清白蛋白、I型胶原蛋白酶和更低的氧气比例以及其他操作的相互配合,可以在短时间内培养出大量具有间质填充功能的皮肤间充质干细胞,回注皮肤褶皱区域后,可有效填充内部区域,使褶皱区域展平,且无排异反应,为皮肤干细胞体内再生医疗工程打下基础。
具体实施方式
下面对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例,本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明保护的范围。
药剂均购自常规试剂公司。
参考CN201911135676.0方法,将人血清做IgG、补体去除,去除率达90%以上的人血清,热灭火后,用于下列实验。
实施例1
取50mg/ml重组人血清白蛋白水溶液5ml,添加以下原料并调节终浓度为:维生素C10mg/ml、丙氨酸-谷氨酰胺二肽0.1mg/ml、碱性成纤维生长因子50ng/ml、TGF-β1 0.02ug/ml、表皮生长因子0.05μg/ml、重组人胰岛素15μg/ml、柠檬酸铁0.1μg/ml、CaCl2·2H2O0.3mg/ml、CuSO4·5H2O 0.25mg/ml、FeSO4·7H2O 0.2μg/ml,得间充质干细胞培养血清加油包。
将人血清40ml和80ml充质干细胞培养血清加油包混合,得间充质干细胞培养血清。
1)培养基及试剂的配置
原代培养基:
取DMEM培养基1000ml,加入间充质干细胞培养血清400ml,无菌过滤,得原代培养基。
传代培养基:
取DMEM培养基1000ml,加入间充质干细胞培养血清200ml,无菌过滤,传代培养基。
酶解液:
取原代培养基,加入0.2%的I型胶原蛋白酶、0.1cmg/ml的青霉素、0.1cmg/ml链霉素混匀后,无菌过滤,冷藏备用。
原代间充质干细胞培养:
超净台,取1cm2皮肤组织,剪碎,加入30ml的酶解液,37℃反应120min,1000rpm离心10min,去上清,将酶解组织按体积比1∶5加入原代培养基终止消化,1000rpm离心5min,去上清,将酶解组织加入人白蛋白包被的培养皿中,并加入原代培养基100ml,通入空气∶N2∶CO2体积比为63∶30∶7的混合气体,37℃培养;当皮肤细胞丰度生长至65%时,收获原代皮肤间充质干细胞,用于后续实验。
传代间充质干细胞培养:
超净台,将含有原代培养基的原代皮肤间充质干细胞用生理盐水冲洗3次,加入酶解液20min,1000rpm离心10min,去上清;加入5倍体积的传代培养基终止消化,1000rpm离心5min,去上清,得消化后的原代皮肤间充质干细胞;将消化后的原代皮肤间充质干细胞用传代培养基重新放入人白蛋白包被的培养容器中,通入空气∶N2∶CO2体积比为63∶30∶7的混合气体,37℃培养,每3天换一次培养液,5天左右可再次传代。
实施例2
取50mg/ml重组人血清白蛋白水溶液8ml,添加以下原料并调节终浓度为:维生素C20mg/ml、丙氨酸-谷氨酰胺二肽0.2mg/ml、碱性成纤维生长因子70ng/ml、TGF-β1 0.03ug/ml、表皮生长因子0.1μg/ml、重组人胰岛素30μg/ml、柠檬酸铁0.2μg/ml、CaCl2·2H2O0.5mg/ml、CuSO4·5H2O 0.4mg/ml、FeSO4·7H2O 0.3μg/ml,得间充质干细胞培养血清加油包。
将人血清40ml和120ml充质干细胞培养血清加油包混合,得间充质干细胞培养血清
1)培养基及试剂的配置
原代培养基:
取DMEM:F12体积比2∶1的培养基1000ml,加入间充质干细胞培养血清600ml,无菌过滤,得原代培养基。
传代培养基:
取DMEM培养基1000ml,加入间充质干细胞培养血清400ml,无菌过滤,传代培养基。
酶解液:
取原代培养基,加入0.4%的I型胶原蛋白酶、0.3mg/ml的青霉素、0.3mg/ml链霉素混匀后,无菌过滤,冷藏备用。
原代间充质干细胞培养:
超净台,取1cm2皮肤组织,剪碎,加入30ml的酶解液,37℃反应240min,1000rpm离心10min,去上清,将酶解组织按体积比1∶5加入原代培养基终止消化,1000rpm离心5min,去上清,将酶解组织加入人白蛋白包被的培养皿中,并加入原代培养基200ml,通入空气∶N2∶CO2体积比为67∶30∶3的混合气体,37℃培养;当皮肤细胞丰度生长至75%时,收获原代皮肤间充质干细胞,用于后续实验。
传代间充质干细胞培养:
超净台,将含有原代培养基的原代皮肤间充质干细胞用生理盐水冲洗3次,加入酶解液20min,1000rpm离心10min,去上清;加入5倍体积的传代培养基终止消化,1000rpm离心5min,去上清,得消化后的原皮肤代间充质干细胞;将消化后的原代皮肤间充质干细胞用传代培养基重新放入人白蛋白包被的培养容器中,通入空气∶N2∶CO2体积比为67∶30∶3的混合气体,37℃培养,每3天换一次培养液,5天左右可再次传代。
实施例3
取50mg/ml重组人血清白蛋白水溶液6ml,添加以下原料并调节终浓度为:维生素C15mg/ml、丙氨酸-谷氨酰胺二肽0.15mg/ml、碱性成纤维生长因子60ng/ml、TGF-β10.015ug/ml、表皮生长因子0.075μg/ml、重组人胰岛素20μg/ml、柠檬酸铁0.15μg/ml、CaCl2·2H2O 0.4mg/ml、CuSO4·5H2O 0.35mg/ml、FeSO4·7H2O 0.25μg/ml,得间充质干细胞培养血清加油包。
将人血清40ml和100ml充质干细胞培养血清加油包混合,得间充质干细胞培养血清
1)培养基及试剂的配置
原代培养基:
取DMEM培养基1000ml,加入间充质干细培养血清500ml,无菌过滤,得原代培养基。
传代培养基:
取DMEM:F12体积比1∶1的培养基1000ml,加入间充质干细胞培养血清300ml,无菌过滤,传代培养基。
酶解液:
取原代培养基,加入0.3%的I型胶原蛋白酶、0.2mg/ml的青霉素、0.2mg/ml链霉素混匀后,无菌过滤,冷藏备用。
原代间充质干细胞培养:
超净台,取1cm2皮肤组织,剪碎,加入30ml的酶解液,37℃反应180min,1000rpm离心10min,去上清,将酶解组织按体积比1∶5加入原代培养基终止消化,1000rpm离心5min,去上清,将酶解组织加入人白蛋白包被的培养皿中,并加入原代培养基,通入空气∶N2∶CO2体积比为65∶30∶5的混合气体,37℃培养;当皮肤细胞丰度生长至65%-75%时,收获原代皮肤间充质干细胞,用于后续实验。
传代间充质干细胞培养:
超净台,将含有原代培养基的原代皮肤间充质干细胞用生理盐水冲洗3次,加入酶解液20min,1000rpm离心10min,去上清;加入5倍体积的传代培养基终止消化,1000rpm离心5min,去上清,得消化后的原代皮肤间充质干细胞;将消化后的原代皮肤间充质干细胞用传代培养基重新放入人白蛋白包被的培养容器中,通入空气∶N2∶CO2体积比为65∶30∶5的混合气体,37℃培养,每3天换一次培养液,5天左右可再次传代。
对比例1
取50mg/ml重组人血清白蛋白水溶液5ml混匀,添加以下原料并调节终浓度为:维生素C 20mg/ml、丙氨酸-谷氨酰胺二肽0.2mg/ml、碱性成纤维生长因子70ng/ml、TGF-β10.03ug/ml、表皮生长因子0.1μg/ml、重组人胰岛素30μg/ml、柠檬酸铁0.2μg/ml、CaCl2·2H2O 0.5mg/ml、CuSO4·5H2O 0.4mg/ml、FeSO4·7H2O 0.3μg/ml,得间充质干细胞培养血清加油包1。
将人血清40ml和100ml充质干细胞培养血清加油包混合,得间充质干细胞培养血清1。
取50mg/ml重组人血清白蛋白水溶液5ml,添加以下原料并调节终浓度为:维生素C20mg/ml、丙氨酸-谷氨酰胺二肽0.2mg/ml、碱性成纤维生长因子70ng/ml、TGF-β1 0.03ug/ml、表皮生长因子0.1μg/ml、重组人胰岛素30μg/ml、柠檬酸铁0.2μg/ml、CaCl2·2H2O0.5mg/ml、CuSO4·5H2O 0.4mg/ml、FeSO4·7H2O 0.3μg/ml,得间充质干细胞培养血清加油包2。
将人血清40ml和100ml充质干细胞培养血清加油包混合,得间充质干细胞培养血清2
1)培养基及试剂的配置
原代培养基:
取DMEM培养基1000ml,加入间充质干细胞培养血清1500ml,无菌过滤,得原代培养基。
传代培养基:
取DMEM培养基1000ml,加入间充质干细胞培养血清2300ml,无菌过滤,传代培养基。
酶解液:
取原代培养基,加入0.2%的I型胶原蛋白酶、0.1cmg/ml的青霉素、0.1cmg/ml链霉素混匀后,无菌过滤,冷藏备用。
原代间充质干细胞培养:
超净台,取1cm2皮肤组织,剪碎,加入30ml的酶解液,37℃反应120min,1000rpm离心10min,去上清,将酶解组织按体积比1∶5加入原代培养基终止消化,1000rpm离心5min,去上清,将酶解组织加入人白蛋白包被的培养皿中,并加入原代培养基150ml,通入空气∶N2∶CO2体积比为65∶30∶5的混合气体,37℃培养;当皮肤细胞丰度生长至65%时,收获原代皮肤间充质干细胞,用于后续实验。
传代间充质干细胞培养:
超净台,将含有原代培养基的原代皮肤间充质干细胞用生理盐水冲洗3次,加入酶解液20min,1000rpm离心10min,去上清;加入5倍体积的传代培养基终止消化,1000rpm离心5min,去上清,得消化后的原代皮肤间充质干细胞;将消化后的原代皮肤间充质干细胞用传代培养基重新放入人白蛋白包被的培养容器中,通入空气∶N2∶CO2体积比为63∶30∶7的混合气体,37℃培养,每3天换一次培养液,5天左右可再次传代。
对比例2
取50mg/ml重组人血清白蛋白水溶液8ml,添加以下原料并调节终浓度为:维生素C8mg/ml、丙氨酸-谷氨酰胺二肽0.09mg/ml、碱性成纤维生长因子40ng/ml、TGF-β1 0.01ug/ml、表皮生长因子0.05μg/ml、重组人胰岛素12μg/ml、柠檬酸铁0.1μg/ml、CaCl2·2H2O0.3mg/ml、CuSO4·5H2O 0.25mg/ml、FeSO4·7H2O 0.2μg/ml,得间充质干细胞培养血清加油包。
将人血清40ml和100ml充质干细胞培养血清加油包混合,得间充质干细胞培养血清。
1)培养基及试剂的配置
原代培养基:
取DMEM培养基1000ml,加入间充质干细胞培养血清600ml,无菌过滤,得原代培养基。
传代培养基:
取DMEM培养基1000ml,加入间充质干细胞培养血清400ml,无菌过滤,传代培养基。
酶解液:
取原代培养基,加入3.5%的胰蛋白酶、0.1cmg/ml的青霉素、0.1cmg/ml链霉素混匀后,无菌过滤,冷藏备用。
原代间充质干细胞培养:
超净台,取1cm2皮肤组织,剪碎,加入30ml的酶解液,37℃反应60min,1000rpm离心10min,去上清,将酶解组织按体积比1∶5加入原代培养基终止消化,1000rpm离心5min,去上清,将酶解组织加入人白蛋白包被的培养皿中,并加入原代养基150ml,通入空气∶N2∶CO2体积比为63∶30∶7的混合气体,37℃培养;当皮肤细胞丰度生长至65%时,收获原代皮肤间充质干细胞,用于后续实验。
传代间充质干细胞培养:
超净台,将含有原代培养基的原代皮肤间充质干细胞用生理盐水冲洗3次,加入酶解液20min,1000rpm离心10min,去上清;加入5倍体积的传代培养基终止消化,1000rpm离心5min,去上清,得消化后的原代皮肤间充质干细胞;将消化后的原代皮肤间充质干细胞用传代培养基重新放入人白蛋白包被的培养容器中,通入空气∶N2∶CO2体积比为65∶30∶5的混合气体,37℃培养,每3天换一次培养液,5天左右可再次传代。
对比例3
取50mg/ml重组人血清白蛋白水溶液5ml,添加以下原料并调节终浓度为:维生素C25mg/ml、丙氨酸-谷氨酰胺二肽0.2mg/ml、碱性成纤维生长因子80ng/ml、TGF-β1 0.05ug/ml、表皮生长因子0.2μg/ml、重组人胰岛素30μg/ml、柠檬酸铁0.2μg/ml、CaCl2·2H2O0.5mg/ml、CuSO4·5H2O 0.4mg/ml、FeSO4·7H2O 0.3μg/ml,得间充质干细胞培养血清加油包。
将人血清40ml和80ml充质干细胞培养血清加油包混合,得间充质干细胞培养血清
1)培养基及试剂的配置
原代培养基:
取DMEM培养基1000ml,加入间充质干细胞培养血清400ml,无菌过滤,得原代培养基。
传代培养基:
取DMEM培养基1000ml,加入间充质干细胞培养血清2000ml,无菌过滤,传代培养基。
酶解液:
取原代培养基,加入0.3%的I型胶原蛋白酶、0.2mg/ml的青霉素、0.2mg/ml链霉素混匀后,无菌过滤,冷藏备用。
原代间充质干细胞培养:
超净台,取1cm2皮肤组织,剪碎,加入30ml的酶解液,37℃反应180min,1000rpm离心10min,去上清,将酶解组织按体积比1∶5加入原代培养基终止消化,1000rpm离心5min,去上清,将酶解组织加入培养皿中,并加入原代培养基150ml,通入空气∶N2∶CO2体积比为67∶30∶3的混合气体,37℃培养;当皮肤细胞丰度生长至65%-75%时,收获原代皮肤间充质干细胞,用于后续实验。
传代间充质干细胞培养:
超净台,将含有原代培养基的原代皮肤间充质干细胞用生理盐水冲洗3次,加入酶解液20min,1000rpm离心10min,去上清;加入5倍体积的传代培养基终止消化,1000rpm离心5min,去上清,得消化后的原代皮肤间充质干细胞;将消化后的原代皮肤间充质干细胞用传代培养基重新放入人白蛋白包被的培养容器中,通入空气∶N2∶CO2体积比为63∶30∶7的混合气体,37℃培养,每3天换一次培养液,5天左右可再次传代。
对比试验:
将实施例1-3和对比例1-3得到的传代细胞进行生理生化及功能性检测。
1、细胞形态观察
实施例1,细胞培养36h后95%以上细胞呈梭形,进入增殖期,第2-3天细胞开始对数生长,5天左右细胞达到80%以上的融合度,显微镜下观察极少有内皮细胞,10代以内细胞的表型和形态未有明显变化。
实施例2,细胞培养36h后90%左右细胞贴壁呈梭形,细胞第3-4天开始进入对数生长期,6天左右细胞达到80%左右融合度,10代以内细胞的表型和形态未有明显变化。
实施例3,细胞培养36h后90%左右细胞贴壁呈梭形,细胞第3-4天开始进入对数生长期,6天左右细胞达到80%左右融合度,10代以内细胞的表型和形态未有明显变化。
对比例1,细胞培养36h后细胞开始生长,梭形细胞数量较少,细胞第6-7天开始对数生长期,9-10天左右细胞达到80%左右融合度,7代以后细胞的形态由梭形开始变向扁平状态国度,增殖速度开始变慢。
对比例2,细胞培养48h后75%左右细胞贴壁呈梭形,细胞第5-6天进入对数期,8-9天左右细胞达到80%左右融合度,10代以内细胞的表型和形态未有明显变化。
对比例3,细胞培养48h后80%左右细胞贴壁呈梭形,细胞第5天开始进入对数生长期,8天左右细胞达到80%左右融合度,10代以内细胞的表型和形态未有明显变化。
2、免疫表型检测
流式细胞仪检测实施例1-3和对比例1-3的第八代传代细胞表面标记物CD90、CD73、CD105的阳性率。结果如表1,实施例1-3的传代间充质干细胞均具有纯度高原代活性强,对比例1-3活性相对较弱,但仍保持一定活性。
表1
CD90 CD73 CD105
实施例1 >99% >99% >99%
实施例2 >99% >99% >99%
实施例3 >99% >99% >99%
对比例1 >85% >87% >83%
对比例2 >89% >90% >92%
对比例3 >91% >87% >88%
本说明书中各个实施例采用递进的方式描述,每个实施例重点说明的都是与其他实施例的不同之处,各个实施例之间相同相似部分互相参见即可。
对所公开的实施例的上述说明,使本领域专业技术人员能够实现或使用本发明。对上述实施例的多种修改对本领域的专业技术人员来说将是显而易见的,本文中所定义的一般原理可以在不脱离本发明的精神或范围的情况下,在其它实施例中实现。因此,本发明将不会被限制于本文所示的这些实施例,而是要符合与本文所公开的原理和新颖特点相一致的最宽的范围。

Claims (10)

1.一种间充质干细胞培养血清加油包,其特征在于,包括:重组人血清白蛋白5-8ml、维生素C 10-20mg/ml、丙氨酸-谷氨酰胺二肽0.1-0.2mg/ml、碱性成纤维生长因子50-70ng/ml、TGF-β1 0.02-0.03ug/ml、表皮生长因子0.05-0.1μg/ml、重组人胰岛素15-30μg/ml、柠檬酸铁0.1-0.2μg/ml、CaCl2·2H2O 0.3-0.5mg/ml、CuSO4·5H2O 0.25-0.4mg/ml、FeSO4·7H2O 0.2-0.3μg/ml。
2.一种如权利要求1所述的间充质干细胞培养血清加油包在制备间充质干细胞培养制剂中的应用。
3.一种间充质干细胞培养血清,其特征在于,按体积计,间充质干细胞培养血清加油包∶人血清=1∶(2-3)。
4.一种间充质干细胞原代培养基,其特征在于,按体积计,基础培养基∶间充质干细胞培养血清=10∶(4-6)。
5.一种间充质干细胞传代培养基,其特征在于,按体积计,基础培养基∶间充质干细胞培养血清=10∶(2-4)。
6.一种皮肤间充质干细胞的培养方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)取皮肤组织剪碎,加入酶解液,消化后,离心,去上清,得酶解组织;
2)酶解组织加入传代培养基终止酶活,离心,去上清;
3)将酶解组织置于血清白蛋白包被的培养皿中,加入原代培养基,通入空气、CO2和N2的混合气体,37℃条件下培养;
4)当细胞丰度达到65-75%,收获原间充质干细胞;
5)将步骤4)中原间充质干细胞传代培养。
7.如权要求6所述的一种间充质干细胞的制备方法,其特征在于,步骤1)中,所述消化温度为37℃,消化时间为120-240min。
8.如权要求6所述的一种间充质干细胞的制备方法,其特征在于,步骤2)中酶解组织按体积比1∶5加入传代培养基。
9.如权要求6所述的一种间充质干细胞的制备方法,其特征在于,酶解液为添加质量百分比0.2-0.4%I型胶原蛋白酶的原代培养基。
10.如权要求6所述的一种间充质干细胞的制备方法,其特征在于,所述血清白蛋白为重组人血清白蛋白。
CN202110345318.3A 2021-03-31 2021-03-31 一种间充质干细胞培养血清加油包及其应用 Pending CN112920995A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202110345318.3A CN112920995A (zh) 2021-03-31 2021-03-31 一种间充质干细胞培养血清加油包及其应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202110345318.3A CN112920995A (zh) 2021-03-31 2021-03-31 一种间充质干细胞培养血清加油包及其应用

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN112920995A true CN112920995A (zh) 2021-06-08

Family

ID=76176662

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202110345318.3A Pending CN112920995A (zh) 2021-03-31 2021-03-31 一种间充质干细胞培养血清加油包及其应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN112920995A (zh)

Citations (26)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20060286668A1 (en) * 1999-04-30 2006-12-21 Invitrogen Corporation Animal-cell culture media comprising non-animal or plant-derived nutrients
WO2007002210A2 (en) * 2005-06-20 2007-01-04 Bresagen, Inc. Embryonic stem cell culture compositions and methods of use thereof
WO2007016366A2 (en) * 2005-07-29 2007-02-08 Yale University Defined culture conditions of human embryonic stem cells
US20090155900A1 (en) * 2007-12-14 2009-06-18 Life Technologies Corporation Cell culture matrices
US20100105132A1 (en) * 2007-04-23 2010-04-29 Stempeutics Research Private Limited Human Mesenchymal stem cells and preparation thereof
RU2392318C1 (ru) * 2008-11-17 2010-06-20 Федеральное государственное учреждение науки "Екатеринбургский научно-исследовательский институт вирусных инфекций" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Способ получения стабильных клеточных культур
US20100221781A1 (en) * 2007-10-12 2010-09-02 Erhard Kopetzki Cho-k1 cell line
US20130059378A1 (en) * 2010-09-13 2013-03-07 Bing Huang Human epidermis-derived mesenchymal stem cell-like pluripotent cells and preparation method thereof
CN103013912A (zh) * 2012-11-30 2013-04-03 陆华 密度梯度离心法分离培养人骨髓间充质干细胞的方法
CN103060264A (zh) * 2012-12-20 2013-04-24 上海市第十人民医院 一种干细胞培养基及其应用和干细胞培养方法
CN103243071A (zh) * 2013-05-09 2013-08-14 陈云燕 一种临床级人间充质干细胞无血清完全培养基
CN106434557A (zh) * 2016-11-25 2017-02-22 博雅干细胞科技有限公司 由脐带间充质干细胞制备cd34阳性细胞的方法
CN106834218A (zh) * 2017-01-06 2017-06-13 庞希宁 人羊膜上皮干细胞无血清培养基及其培养方法
WO2017096607A1 (zh) * 2015-12-11 2017-06-15 郭镭 一种从脐带外层羊膜组织中分离提取hUC-MSC的方法
CN107043747A (zh) * 2017-06-23 2017-08-15 王晓柯 一种人脐带间充质干细胞无血清培养基
CN107041894A (zh) * 2016-12-26 2017-08-15 湖南新起源医疗技术有限公司 一种用于抗衰老的干细胞嫩肤液制备方法
CN107058217A (zh) * 2017-01-22 2017-08-18 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 一种软骨细胞的增殖培养基及增殖培养方法
CN109234230A (zh) * 2018-09-30 2019-01-18 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 一种皮肤间充质干细胞的原代分离方法
US20190275087A1 (en) * 2018-03-01 2019-09-12 Allergan Pharmaceuticals International Limited Expansion and differentiation of stem cells
CN110438067A (zh) * 2019-08-22 2019-11-12 广东唯泰生物科技有限公司 人皮肤成纤维细胞及其制备方法
CN110699317A (zh) * 2019-10-30 2020-01-17 湖南丰晖生物科技有限公司 一种人脐带间充质干细胞无血清培养基及其制备方法与应用
CN112041430A (zh) * 2017-12-08 2020-12-04 朱诺治疗学股份有限公司 用于培养细胞的无血清培养基配制品及其使用方法
CN112048463A (zh) * 2020-08-18 2020-12-08 赵峻岭 一种细胞培养用血清替代物
CN112083158A (zh) * 2020-08-29 2020-12-15 赵峻岭 一种封闭液用牛血清的制备方法
JP2021040551A (ja) * 2019-09-11 2021-03-18 富士フイルム株式会社 培地組成物、キット、間葉系幹細胞組成物の製造方法、間葉系幹細胞組成物、間葉系幹細胞、細胞培養上清および細胞外小胞
CN113736729A (zh) * 2021-08-25 2021-12-03 生物岛实验室 组合物及含有其的干细胞无血清培养基及干细胞培养方法

Patent Citations (26)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20060286668A1 (en) * 1999-04-30 2006-12-21 Invitrogen Corporation Animal-cell culture media comprising non-animal or plant-derived nutrients
WO2007002210A2 (en) * 2005-06-20 2007-01-04 Bresagen, Inc. Embryonic stem cell culture compositions and methods of use thereof
WO2007016366A2 (en) * 2005-07-29 2007-02-08 Yale University Defined culture conditions of human embryonic stem cells
US20100105132A1 (en) * 2007-04-23 2010-04-29 Stempeutics Research Private Limited Human Mesenchymal stem cells and preparation thereof
US20100221781A1 (en) * 2007-10-12 2010-09-02 Erhard Kopetzki Cho-k1 cell line
US20090155900A1 (en) * 2007-12-14 2009-06-18 Life Technologies Corporation Cell culture matrices
RU2392318C1 (ru) * 2008-11-17 2010-06-20 Федеральное государственное учреждение науки "Екатеринбургский научно-исследовательский институт вирусных инфекций" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Способ получения стабильных клеточных культур
US20130059378A1 (en) * 2010-09-13 2013-03-07 Bing Huang Human epidermis-derived mesenchymal stem cell-like pluripotent cells and preparation method thereof
CN103013912A (zh) * 2012-11-30 2013-04-03 陆华 密度梯度离心法分离培养人骨髓间充质干细胞的方法
CN103060264A (zh) * 2012-12-20 2013-04-24 上海市第十人民医院 一种干细胞培养基及其应用和干细胞培养方法
CN103243071A (zh) * 2013-05-09 2013-08-14 陈云燕 一种临床级人间充质干细胞无血清完全培养基
WO2017096607A1 (zh) * 2015-12-11 2017-06-15 郭镭 一种从脐带外层羊膜组织中分离提取hUC-MSC的方法
CN106434557A (zh) * 2016-11-25 2017-02-22 博雅干细胞科技有限公司 由脐带间充质干细胞制备cd34阳性细胞的方法
CN107041894A (zh) * 2016-12-26 2017-08-15 湖南新起源医疗技术有限公司 一种用于抗衰老的干细胞嫩肤液制备方法
CN106834218A (zh) * 2017-01-06 2017-06-13 庞希宁 人羊膜上皮干细胞无血清培养基及其培养方法
CN107058217A (zh) * 2017-01-22 2017-08-18 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 一种软骨细胞的增殖培养基及增殖培养方法
CN107043747A (zh) * 2017-06-23 2017-08-15 王晓柯 一种人脐带间充质干细胞无血清培养基
CN112041430A (zh) * 2017-12-08 2020-12-04 朱诺治疗学股份有限公司 用于培养细胞的无血清培养基配制品及其使用方法
US20190275087A1 (en) * 2018-03-01 2019-09-12 Allergan Pharmaceuticals International Limited Expansion and differentiation of stem cells
CN109234230A (zh) * 2018-09-30 2019-01-18 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 一种皮肤间充质干细胞的原代分离方法
CN110438067A (zh) * 2019-08-22 2019-11-12 广东唯泰生物科技有限公司 人皮肤成纤维细胞及其制备方法
JP2021040551A (ja) * 2019-09-11 2021-03-18 富士フイルム株式会社 培地組成物、キット、間葉系幹細胞組成物の製造方法、間葉系幹細胞組成物、間葉系幹細胞、細胞培養上清および細胞外小胞
CN110699317A (zh) * 2019-10-30 2020-01-17 湖南丰晖生物科技有限公司 一种人脐带间充质干细胞无血清培养基及其制备方法与应用
CN112048463A (zh) * 2020-08-18 2020-12-08 赵峻岭 一种细胞培养用血清替代物
CN112083158A (zh) * 2020-08-29 2020-12-15 赵峻岭 一种封闭液用牛血清的制备方法
CN113736729A (zh) * 2021-08-25 2021-12-03 生物岛实验室 组合物及含有其的干细胞无血清培养基及干细胞培养方法

Non-Patent Citations (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
GU NA-YEON等: "Comparison of characteristics of mesenchymal stem cells from bovine", 《JOURNAL OF PREVENTIVE VETERINARY MEDICINE》 *
史春梦等: "大鼠真皮多能间充质干细胞的分离培养", 《第三军医大学学报》 *
史春梦等: "大鼠真皮间充质干细胞的体外长期培养及胶原海绵对其生长的影响", 《生物医学工程学杂志》 *
周全等: "体外诱导的人脂肪间充质干细胞源性软骨细胞体内成骨活性", 《中国组织工程研究与临床康复》 *
张晶等: "银屑病患者与正常人皮肤间充质干细胞的生物学特性", 《中国组织工程研究》 *
杨亚冬等: "应用真皮间充质干细胞促进皮肤缺损创面修复方法的实验研究", 《中国卫生检验杂志》 *
杨婧等: "胎鼠皮肤间充质干细胞体外增殖特性的研究", 《中国实验诊断学》 *
杨涛等主编: "《基因诊断与细胞治疗[》", 31 August 2018, 科学技术文献出版社 *
杨立业等: "皮肤间充质干细胞的体外培养和分化", 《生物医学工程学杂志》 *
王丙云: "家禽胚胎干细胞的研究进展", 《佛山科学技术学院学报(自然科学版)》 *
闻勤生等: "大鼠脂肪间充质干细胞的鉴定及肝内移植的研究", 《现代生物医学进展》 *
霍娜等: "皮肤真皮来源多能干细胞筛选与鉴定", 《口腔颌面修复学杂志》 *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US11369716B2 (en) Reparative cell isolation and delivery
RU2396084C1 (ru) Композиция филлера для мягких тканей для инъекции и способ ее получения
JP3962715B2 (ja) 皮膚および軟組織の欠損修復のための自己皮膚繊維芽細胞の使用
WO2016168950A9 (zh) 一种唾液腺类器官和类腺泡的体外构建方法
CN106434557B (zh) 由脐带间充质干细胞制备cd34阳性细胞的方法
AU2007265862A1 (en) Soft tissue filler composition comprising autologous dermis-derived cell culture product and hyaluronic acid
WO2010040302A1 (zh) 从人或动物胚胎提取间质性干细胞及提取其分泌物的方法
CN108184818B (zh) 一种人胎盘间充质干细胞悬液保护剂
CN106190967A (zh) 一种自体脂肪源干细胞用于美容抗衰的制备方法
CN112239746A (zh) 一种人脐带间充质干细胞外泌体提取液的制备及外泌体乳霜的制备方法
CN106635961A (zh) 一种制备人皮肤成纤维细胞膜片的细胞培养基和使用方法
CN107362391A (zh) 一种自体三联皮肤成纤维细胞制剂的制备方法
CN113041208A (zh) 胚胎干细胞外泌体在制备美白及抗衰老药物或者化妆品中的用途
CN113577366A (zh) 促进糖尿病难愈性伤口快速愈合的干膜敷料及其制备方法
CN108324993B (zh) 一种诱导毛发再生的干细胞复合体、其制备方法及应用
CN101264344B (zh) 含毛囊人工皮肤的制备方法及由其制备的人工皮肤
CN100581502C (zh) 一种注射用人体软组织填充剂及其制备方法
CN109771694A (zh) 自组装多肽纳米纤维水凝胶支架材料的制备方法及应用
CN112920995A (zh) 一种间充质干细胞培养血清加油包及其应用
CN112716976A (zh) 含脐带间充质干细胞的纳米复合水凝胶及其制备方法和应用
CN100415875C (zh) 用皮肤成纤维前体细胞制备自体成纤维细胞的方法
CN109554454A (zh) 一种通过测定细胞因子含量评价冻干粉生发作用的方法
CN1635115A (zh) 人成纤维细胞滋养的人角膜缘干细胞组织工程产品及制备
CN111888529B (zh) 基于人羊膜及羊膜间充质干细胞的仿生羊膜及方法和应用
CN110302426B (zh) 一种干细胞皮肤粘贴片及其制备方法和应用

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
TA01 Transfer of patent application right
TA01 Transfer of patent application right

Effective date of registration: 20211119

Address after: 010000 No.4, area B, East Branch Road, Yulong Industrial Park, Yuquan District, Hohhot City, Inner Mongolia Autonomous Region

Applicant after: INNER MONGOLIA JIN YUAN KANG BIOTECHNOLOGY CO.,LTD.

Address before: 010000 No.4, area B, East Branch Road, Yulong Industrial Park, Yuquan District, Hohhot City, Inner Mongolia Autonomous Region

Applicant before: Zhao Junling

CB02 Change of applicant information
CB02 Change of applicant information

Address after: 010070 No. 4, block B, East Branch Road, Yulong Industrial Park, Yuquan District, Hohhot, Inner Mongolia Autonomous Region

Applicant after: Inner Mongolia jinyuankang Bioengineering Co.,Ltd.

Address before: 010000 No.4, area B, East Branch Road, Yulong Industrial Park, Yuquan District, Hohhot City, Inner Mongolia Autonomous Region

Applicant before: INNER MONGOLIA JIN YUAN KANG BIOTECHNOLOGY CO.,LTD.

WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication
WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication

Application publication date: 20210608