CN112779291B - 构建瘦肉率高、生长快、繁殖力高且抗系列流行病的优质猪核移植供体细胞的方法及其应用 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了构建瘦肉率高、生长快、繁殖力高且抗系列流行病的优质猪核移植供体细胞的方法及其应用。一种用于猪MSTN、SST、INHA、CD163及pAPN五基因编辑的CRISPR/Cas9系统,包含Cas9表达载体、分别针对猪MSTN、SST、INHA、CD163、pAPN基因的gRNA表达载体;所述的Cas9表达载体质粒全序列如SEQ ID NO.2所示。本发明分别针对MSTN、SST、INHA、CD163及pAPN基因的不同靶点设计了相应的gRNA表达载体,通过筛选获得具有较高编辑效率的gRNA及其表达载体。配合本发明改造的Cas9高效表达载体进行基因编辑,编辑效率比原载体有了显著的提高。

Description

构建瘦肉率高、生长快、繁殖力高且抗系列流行病的优质猪核 移植供体细胞的方法及其应用
技术领域
本发明属于生物技术领域,具体涉及用于MSTN、SST、INHA、CD163及pAPN五基因编辑的CRISPR/Cas9系统及其在构建瘦肉率高、生长快、繁殖力高且抗蓝耳病和系列腹泻病的优质猪核移植供体细胞中的应用。
背景技术
猪是我国最早驯化的家畜之一,其在历史的长河中一直是人类重要的肉料动物。中国人爱食猪肉,与千百年来的饮食文化有关。2000年以来,猪肉在我国的肉类消费占比中都超过70%,是我国最主要的消费肉类。目前我国城市瘦肉的价格已超过肥肉价格近1倍左右,具有60%以上瘦肉率的瘦肉型猪备受青睐,而瘦肉率性状尚有进一步提升的空间。另一方面,目前国内的育肥猪出栏体重为120kg左右,猪只从出生到出栏大约需要180天,如能加快猪只的生长速度就能够降低育肥猪的出栏时间。此外,如果每头母猪平均每胎能多产一头仔猪,按照每年两胎计算,我国就可以减少饲养300-400万头母猪。另外,在生猪养殖中,流行性传染病对养猪业危害极大,有时甚至是毁灭性的。猪繁殖与呼吸综合征(蓝耳病)、传染性胃肠炎、流行性腹泻等是生猪在集约化养殖生产条件下的最常发传染性疾病,且这些疾病的致死率极高,对养猪生产造成了极大的经济损失。因此,培育瘦肉率更高、生长速度更快、繁殖力更高且抗蓝耳病和系列腹泻病的优质猪品系将能够为养猪业带来更多的经济效益。
肌抑素(Myostatin,MSTN)属TGF-β超家族,是骨骼肌生长的负调控因子,参与肌纤维增生和肥大的调控,其缺失或突变会导致双肌现象的产生。该基因的发现对于畜牧业和医学领域都有重大意义。生长抑素(Somatostatin,SST)是一种抑制垂体生长激素、促甲状腺激素、促肾上腺皮质激素等激素释放的蛋白,其能够通过抑制一系列与生长有关的激素从而抑制生长。已有研究表明,抑制MSTN的表达能够一定程度增加肌肉沉积,增加猪只的瘦肉率,而抑制SST的表达则能够一定程度加快猪只的生长速度、降低料肉比。影响猪产仔数的重要因素之一是猪的排卵数,排卵数受到促卵泡素(FSH)水平的影响,而FSH的分泌受一种性腺激素即抑制素(Inhibin)的调节。Inhibin具有强烈的抑制FSH分泌的作用,其可以反馈抑制垂体前叶FSH的释放,进而抑制卵泡的生长发育。Inhibin是一种由性腺分泌的糖蛋白激素,由一个α亚基和一个β亚基构成。β亚基有两种亚型:βA和βB,αβA构成Inhibin A,αβB构成Inhibin B。INHA基因编码Inhibinα亚基,该亚基是抑制素发挥生理功能必不可少的。已有研究证明,抑制INHA基因的表达能够促进卵泡的发育,提高排卵率。另外,在猪的靶细胞膜上,存在着一些致病病毒或细菌的受体,这些受体可介导相应的病毒或细菌感染猪细胞。CD163已被证实是猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)的受体,与PRRSV互作的主要是CD163受体SRCR5结构域中的Ligand-binding pocket(LBP),其编码区位于猪CD163的7号外显子,由于SRCR5结构域中其他部分仍具有重要生物学功能,因此仅对CD163的7号外显子进行编辑能够在破坏病毒互作区域的条件下最大限度保存CD163的生物学功能。猪氨肽酶N(pAPN)已被证实是猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)的特异性受体,同时也被证明是猪流行性腹泻病毒(PEDV)和猪德尔塔冠状病毒(PDCoV)的受体之一,其在仔猪小肠的刷状缘上大量表达。破坏pAPN基因将使其编码的受体蛋白失活,TGEV病毒无法感染活猪,PEDV和PDCoV病毒对猪的感染性也大大降低。TGEV和PEDV属于α冠状病毒属,而PDCoV属于δ冠状病毒属,pAPN为这三种冠状病毒的共同受体。
基因编辑是近年来不断取得重大发展的一种生物技术,其包括从基于同源重组的基因编辑到基于核酸酶的ZFN、TALEN、CRISPR/Cas9等编辑技术,其中CRISPR/Cas9技术是当前最先进的基因编辑技术。因此,本发明采用CRISPR/cas9技术进行了MSTN、SST、INHA、CD163及pAPN五基因的突变,并获得了五基因联合敲除的单细胞克隆,这为后期通过体细胞核移植动物克隆技术培育瘦肉率高、生长快、繁殖力高且抗蓝耳病和系列腹泻病的高生产性能优质猪种奠定了基础。MSTN、SST、INHA、CD163和pAPN的功能丧失,一方面能够有效提高猪的瘦肉率、生长速度和繁殖力,增加养猪业经济效益;另一方面将能够有效提高猪对蓝耳病和系列腹泻病的抵抗,降低生猪死亡率,减少养猪业损失。
发明内容
本发明的目的是提供一种用于猪MSTN-SST-INHA-CD163-pAPN五基因编辑的CRISPR/Cas9系统。
本发明的另一目的是提供该CRISPR/Cas9系统的应用。
本发明的又一目的是提供一种重组细胞及其应用。
本发明的目的可通过以下技术方案实现:
一种用于猪MSTN、SST、INHA、CD163及pAPN五基因编辑的CRISPR/Cas9系统,包含Cas9表达载体、针对猪MSTN基因的gRNA表达载体、针对猪SST基因的gRNA表达载体、针对猪INHA基因的gRNA表达载体、针对猪CD163基因的gRNA表达载体以及针对猪pAPN基因的gRNA表达载体;所述的Cas9表达载体质粒全序列如SEQ ID NO.2所示。
所述的Cas9载体包含编码Cas9蛋白、EGFP和Puro抗性蛋白的核苷酸序列,其中,所述的Cas9载体还包含EF1a启动子、WPRE元件和3’LTR序列元件,优选的,所述的Cas载体的核苷酸序列从5’-3’依次为:CMV增强子、EF1a启动子、核定位信号、核定位信号、编码Cas9蛋白的核苷酸序列、核定位信号,核定位信号、编码自剪切多肽P2A的核苷酸序列、编码EGFP的核苷酸序列、编码自裂解多肽T2A的核苷酸序列、编码Puro抗性蛋白的核苷酸序列、WPRE序列元件、3’LTR序列元件和polyA信号序列元件。
为了增加Cas9载体的基因编辑能力,本发明在购自addgene(Plasmid#42230,fromZhang Feng lab)pX330-U6-Chimeric_BB-CBh-hSpCas9(简称PX330)载体的基础上进行改造得到pU6gRNA-eEF1a-mNLS-hSpCas9-EGFP-PURO(即上述pKG-GE3载体)。PX330的图谱如图1,改造方式如下:
1)去除原载体gRNA骨架中多余无效的序列;
2)改造启动子:将原有启动子(chickenβ-actin启动子)改造为具更高表达活性的EF1a启动子,增加Cas9基因的蛋白表达能力;
3)增加核定位信号:在Cas9的N端及C端均增加核定位信号编码序列(NLS),增加Cas9的核定位能力;
4)增加双筛选标记:原载体无任何筛选标记,不利于阳性转化细胞的筛选和富集,在Cas9的C端,插入P2A-EGFP-T2A-PURO,赋予载体荧光和抗性筛选能力;
5)插入WPRE和3’LTR等调控基因表达的序列:在基因读码框最后插入WPRE、3’LTR等序列,可增强Cas9基因的蛋白翻译能力。
改造后载体pU6gRNA-eEF1a-mNLS-hSpCas9-EGFP-PURO(简称pKG-GE3)及改造位点如图2,质粒全序列如SEQ ID NO:2所示;pKG-GE3的主要元件有:
1)gRNA表达元件:U6 gRNA scaffold;
2)启动子:EF1a启动子和CMV增强子;
3)含多个NLS的Cas9基因:含N端和C端多核定位信号(NLS)的Cas9基因;
4)筛选标记基因:荧光和抗性双筛选标记元件P2A-EGFP-T2A-PURO;
5)增强翻译的元件:WPRE和3’LTR增强Cas9及筛选标记基因的翻译效率;
6)转录终止信号:bGHpolyA signal;
7)载体骨架:包括Amp抗性元件和ori复制子等。
质粒pKG-GE3中,具有特异融合基因;所述特异融合基因编码特异融合蛋白;
所述特异融合蛋白自N端至C端依次包括如下元件:两个核定位信号(NLS)、Cas9蛋白、两个核定位信号、自剪切多肽P2A、荧光报告蛋白、自裂解多肽T2A、抗性筛选标记蛋白;
质粒pKG-GE3中,由EF1a启动子启动所述特异融合基因的表达;
质粒pKG-GE3中,所述特异融合基因下游具有WPRE序列元件、3’LTR序列元件和bGHpoly(A)signal序列元件。
质粒pKG-GE3中,依次具有如下元件:CMV增强子、EF1a启动子、所述特异融合基因、WPRE序列元件、3’LTR序列元件、bGH poly(A)signal序列元件。
所述特异融合蛋白中,Cas9蛋白上游的两个核定位信号为SV40核定位信号,Cas9蛋白下游的两个核定位信号为nucleoplasmin核定位信号。
所述特异融合蛋白中,荧光报告蛋白具体可为EGFP蛋白。
所述特异融合蛋白中,抗性筛选标记蛋白具体可为Puromycin抗性蛋白。
自剪切多肽P2A的氨基酸序列为“ATNFSLLKQAGDVEENPGP”(发生自剪切的断裂位置为C端开始第一个氨基酸残基和第二个氨基酸残基之间)。
自裂解多肽T2A的氨基酸序列为“EGRGSLLTCGDVEENPGP”(发生自裂解的断裂位置为C端开始第一个氨基酸残基和第二个氨基酸残基之间)。
特异融合基因具体如SEQ ID NO:2中第911-6706位核苷酸所示。
CMV增强子如SEQ ID NO:2中第395-680位核苷酸所示。
EF1a启动子如SEQ ID NO:2中第682-890位核苷酸所示。
WPRE序列元件如SEQ ID NO:2第6722-7310位核苷酸所示。
3’LTR序列元件如SEQ ID NO:2中第7382-7615位核苷酸所示。
bGH poly(A)signal序列元件如SEQ ID NO:2中第7647-7871位核苷酸所示。
优选的,所述的pKG-GE3质粒为环状质粒。
作为本发明的一种优选,所述的CRISPR/Cas9系统中,针对猪MSTN基因的gRNA表达载体、针对猪SST基因的gRNA表达载体、针对猪INHA基因的gRNA表达载体、针对猪CD163基因的gRNA表达载体以及针对猪pAPN基因的gRNA表达载体的载体骨架均为pKG-U6gRNA,其质粒全序列如SEQ ID NO.3所示。
作为本发明的进一步优选,针对猪MSTN基因的gRNA表达载体表达SEQ ID NO.18所示的gRNA,其靶点如SEQ ID NO.15所示;针对猪SST基因的gRNA表达载体表达SEQ ID NO.24所示的gRNA,其靶点如SEQ ID NO.21所示;针对猪INHA基因的gRNA表达载体表达SEQ IDNO.30所示的gRNA,其靶点如SEQ ID NO.27所示;针对猪CD163基因的gRNA表达载体表达SEQID NO.36所示的gRNA,其靶点如SEQ ID NO.33所示;针对猪pAPN基因的gRNA表达载体表达SEQ ID NO.42所示的gRNA,其靶点如SEQ ID NO.39所示。
作为本发明的进一步优选,所述的针对猪MSTN基因的gRNA表达载体由SEQ IDNO.16和SEQ ID NO.17所示的单链DNA退火而成的双链插入载体骨架pKG-U6gRNA所得;所述的针对猪SST基因的gRNA表达载体由SEQ ID NO.22和SEQ ID NO.23所示的单链DNA退火而成的双链插入载体骨架pKG-U6gRNA所得;所述的针对猪INHA基因的gRNA表达载体由SEQ IDNO.28和SEQ ID NO.29所示的单链DNA退火而成的双链插入载体骨架pKG-U6gRNA所得;所述的针对猪CD163基因的gRNA表达载体由SEQ ID NO.34和SEQ ID NO.35所示的单链DNA退火而成的双链插入载体骨架pKG-U6gRNA所得;所述的针对猪pAPN基因的gRNA表达载体由SEQID NO.40和SEQ ID NO.41所示的单链DNA退火而成的双链插入载体骨架pKG-U6gRNA所得。
本发明所述的CRISPR/Cas9系统在构建MSTN、SST、INHA、CD163及pAPN五基因突变的猪重组细胞中的应用。
一种重组细胞,其特征在于由本发明所述的CRISPR/Cas9系统共转染猪原代成纤维细胞经验证后所得。
本发明所述的重组细胞在构建MSTN、SST、INHA、CD163及pAPN五基因敲除的克隆猪中的应用。
与现有技术相比,本发明至少具有如下有益效果:
(1)本发明研究对象(猪)比其他动物(大小鼠、灵长类)具有更好的应用性。
大小鼠等啮齿类动物不论从体型、器官大小、生理、病理等方面都与人相差巨大,无法真实地模拟人类正常的生理、病理状态。研究表明,95%以上在大小鼠中验证有效的药物在人类临床试验中是无效的。就大动物而言,灵长类是与人亲缘关系最近的动物,但其体型小、性成熟晚(6-7岁开始交配),且为单胎动物,群体扩繁速度极慢,饲养成本很高。另外,灵长类动物克隆效率低、难度大、成本高。
而猪作为模型动物就没有上述缺点,猪是除灵长类外与人亲缘关系最近的动物,其体型、体重、器官大小等与人相近,在解剖学、生理学、免疫学、营养代谢、疾病发病机制等方面与人类极为相似。同时,猪的性成熟早(4-6个月),繁殖力高,一胎多仔,在2-3年内即可形成一个较大群体。另外,猪的克隆技术非常成熟,克隆及饲养成本也较灵长类低得多。因此猪是非常适合作为人类疾病模型的动物。
(2)本发明中经过实验验证改造的pU6gRNA-eEF1a-mNLS-hSpCas9-EGFP-PURO载体相对改造前的pX330载体,更换了更强的启动子及添加了增强蛋白翻译的元件,提高了Cas9的表达,并且增加了核定位信号个数,提高了Cas9蛋白的核定位能力,具有更高的基因编辑效率。本发明还在载体中加入了荧光标记及抗性标记,使其更方便运用于载体阳性转化细胞的筛选及富集。采用本发明筛选的gRNA联合改造的Cas9高效表达载体进行基因编辑,编辑效率比原载体提高100%以上。
(3)本发明分别针对MSTN基因、SST基因、INHA基因、CD163基因和pAPN基因的不同靶点gRNA设计了相应的表达载体,通过筛选获得具有较高编辑效率的gRNA及其表达载体。配合本发明改造的Cas9高效表达载体进行基因编辑,通过靶标基因PCR产物测序结果可分析出所获细胞的基因型,获得单靶标基因突变的概率为10%~32%,大大优于使用胚胎注射技术的基因编辑递送方法(即受精卵注射基因编辑材料)中获得突变的概率。
(4)利用本发明所得到的突变型单细胞克隆株进行体细胞核移植动物克隆可直接得到含靶标基因突变的克隆猪,并且该突变可稳定遗传。
本发明采用技术难度大、挑战性高的原代细胞体外编辑并筛选阳性编辑单细胞克隆的方法,后期再通过体细胞核移植动物克隆技术直接获得相应的基因编辑猪,可大大缩短基因编辑猪制作周期并节省人力、物力、财力。
附图说明
图1为质粒pX330的结构示意图。
图2为质粒pU6gRNACas9的结构示意图。
图3为pU6gRNA-eEF1a Cas9载体的结构图谱。
图4为pU6gRNA-eEF1a Cas9+nNLS载体图谱。
图5为质粒pKG-GE3的结构示意图。
图6为质粒pKG-U6gRNA的结构示意图。
图7为将20bp左右的DNA分子(用于转录形成gRNA的靶序列结合区)插入质粒pKG-U6gRNA的示意图。
图8为实施例2中步骤2.3.3的测序峰图。
图9为实施例2中步骤2.4.3的测序峰图。
图10为实施例3中步骤3.1以18只猪的基因组DNA为模板采用MSTN-JDF102/MSTN-JDR429组成的引物对进行PCR扩增后的电泳图。
图11为实施例3的步骤3.4中的测序峰图。
图12为实施例4中步骤4.1以18只猪的基因组DNA为模板采用SST-JDF290/SST-JDR689组成的引物对进行PCR扩增后的电泳图。
图13为实施例4的步骤4.4中的测序峰图。
图14为实施例5中步骤5.1以18只猪的基因组DNA为模板采用INHA-E2-JDF178/INHA-E2-JDR654组成的引物对进行PCR扩增后的电泳图。
图15为实施例5的步骤5.4中的测序峰图。
图16为实施例6中步骤6.1以18只猪的基因组DNA为模板采用CD163-JDF121/CD163-JDR518组成的引物对进行PCR扩增后的电泳图。
图17为实施例6的步骤6.4中的测序峰图。
图18为实施例7中步骤7.1以18只猪的基因组DNA为模板采用APN-JDF94/APN-JDR656组成的引物对进行PCR扩增后的电泳图。
图19为实施例7的步骤7.4中的测序峰图。
图20为实施例8中步骤8.4.4以基因组DNA为模板采用MSTN-JDF102/MSTN-JDR429组成的引物对进行PCR扩增后的电泳图。
图21为实施例8中步骤8.4.4以基因组DNA为模板采用SST-JDF290/SST-JDR689组成的引物对进行PCR扩增后的电泳图。
图22为实施例8中步骤8.4.4以基因组DNA为模板采用INHA-E2-JDF178/INHA-E2-JDR654组成的引物对进行PCR扩增后的电泳图。
图23为实施例8中步骤8.4.4以基因组DNA为模板采用CD163-JDF121/CD163-JDR518组成的引物对进行PCR扩增后的电泳图。
图24为实施例8中步骤8.4.4以基因组DNA为模板采用APN-JDF94/APN-JDR656组成的引物对进行PCR扩增后的电泳图。
图25为实施例8中步骤8.4.5.1判定靶基因为野生型的示例性测序峰图。
图26为实施例8中步骤8.4.5.1判定靶基因为杂合突变型的示例性测序峰图。
图27为实施例8中步骤8.4.5.1判定靶基因为双等位相同变异的纯合突变型示例性测序峰图。
图28为实施例8中步骤8.4.5.1判定靶基因为双等位不同变异的纯合突变型示例性测序峰图。
图29为实施例8中步骤8.4.5.2判定靶基因为野生型的示例性测序峰图。
图30为实施例8中步骤8.4.5.2判定靶基因为杂合突变型的示例性测序峰图。
图31为实施例8中步骤8.4.5.2判定靶基因为双等位相同变异的纯合突变型示例性测序峰图。
图32为实施例8中步骤8.4.5.2判定靶基因为双等位不同变异的纯合突变型示例性测序峰图。
图33为实施例8中步骤8.4.5.3判定靶基因为野生型的示例性测序峰图。
图34为实施例8中步骤8.4.5.3判定靶基因为杂合突变型的示例性测序峰图。
图35为实施例8中步骤8.4.5.3判定靶基因为双等位相同变异的纯合突变型示例性测序峰图。
图36为实施例8中步骤8.4.5.3判定靶基因为双等位不同变异的纯合突变型示例性测序峰图。
图37为实施例8中步骤8.4.5.4判定靶基因为野生型的示例性测序峰图。
图38为实施例8中步骤8.4.5.4判定靶基因为杂合突变型的示例性测序峰图。
图39为实施例8中步骤8.4.5.4判定靶基因为双等位相同变异的纯合突变型示例性测序峰图。
图40为实施例8中步骤8.4.5.4判定靶基因为双等位不同变异的纯合突变型示例性测序峰图。
图41为实施例8中步骤8.4.5.5判定靶基因为野生型的示例性测序峰图。
图42为实施例8中步骤8.4.5.5判定靶基因为杂合突变型的示例性测序峰图。
图43为实施例8中步骤8.4.5.5判定靶基因为双等位相同变异的纯合突变型示例性测序峰图。
图44为实施例8中步骤8.4.5.5判定靶基因为双等位不同变异的纯合突变型示例性测序峰图。
具体实施方式
实施例1、质粒的构建
1.1 构建质粒pU6gRNA eEF1a-mNLS-hSpCas9-EGFP-PURO(简称质粒pKG-GE3)
原始质粒pX330-U6-Chimeric_BB-CBh-hSpCas9(简称质粒pX330),序列如SEQ IDNO:1所示。质粒pX330的结构示意图见图1。SEQ ID NO.1中,第440-725位核苷酸组成CMV增强子,第727-1208位核苷酸组成chickenβ-actin启动子,第1304-1324位核苷酸编码SV40核定位信号(NLS),第1325-5449位核苷酸编码Cas9蛋白,第5450-5497位核苷酸编码nucleoplasmin核定位信号(NLS)。
质粒pU6gRNA eEF1a-mNLS-hSpCas9-EGFP-PURO(图5),简称质粒pKG-GE3,核苷酸如SEQ ID NO:2所示。与质粒pX330相比,质粒pKG-GE3主要进行了如下改造:①去除残留的gRNA骨架序列(GTTTTAGAGCTAGAAATAGCAAGTTAAAATAAGGCTAGTCCGTTTT),降低干扰;②将原有chickenβ-actin启动子改造为具更高表达活性的EF1a启动子,增加Cas9基因的蛋白表达能力;③在Cas9基因的上游和下游均增加核定位信号编码基因(NLS),增加Cas9蛋白的核定位能力;④原质粒无任何真核细胞筛选标记,不利于阳性转化细胞的筛选和富集,依次在Cas9基因的下游插入P2A-EGFP-T2A-PURO编码基因,赋予载体荧光和真核细胞抗性筛选能力;⑤插入WPRE元件和3’LTR序列元件,增强Cas9基因的蛋白翻译能力。
pKG-GE3质粒构建方法如下:
(1)去除gRNA骨架中多余无效的序列
质粒pX330用BbsI、XbaI酶切,回收载体片段(约8313bp左右),利用多片段重组法合成插入片段175bp(SEQ ID NO.4),与回收后载体片段重组得到pU6gRNACas9载体(图2)。
(2)改造启动子及增强子
对构建好的pU6gRNACas9载体,用XbaI和AgeI内切酶去除启动子(chickenβ-actin启动子)及增强子序列(CMV增强子),回收线性载体序列约7650bp,并利用多片段重组法合成554bp的包含CMV增强子及EF1a启动子的序列(SEQ ID NO.5),与酶切后载体pU6gRNACas9重组得到pU6gRNA-eEF1a Cas9载体(图3)。
(3)Cas9基因N端增加NLS序列
将构建好的载体pU6gRNA-eEF1a Cas9使用AgeI、BglII酶切,回收7786bp载体序列,并将增加了NLS的序列补充到酶切位点,即利用多片段重组法合成447bp的包括2个核定位信号及部分切除的Cas9编码序列(SEQ ID NO.6),重组得到pU6gRNA-eEF1a Cas9+nNLS载体(图4)。
(4)Cas9基因C端加入NLS、P2A-EGFP-T2A-PURO、WPRE-3’LTR-bGH polyA signal
以上构建好的载体命名为pU6gRNA-eEF1a Cas9+nNLS,使用FseI、SbfI酶切,回收载体序列7781bp,利用多片段重组法合成2727bp的包括NLS-P2A-EGFP-T2A-PURO-WPRE-3’LTR-bGH polyA signal的片段(SEQ ID NO.7),与载体片段重组得到载体pU6gRNA-eEF1a-mNLS-hSpCas9-EGFP-PURO,简称pKG-GE3,质粒图谱如图5,核苷酸序列(SEQ ID NO.2)。
SEQ ID NO.2中,第395-680位核苷酸组成CMV增强子,第682-890位核苷酸组成EF1a启动子,第986-1006位核苷酸编码核定位信号(NLS),第1016-1036位核苷酸编码核定位信号(NLS),第1037-5161位核苷酸编码Cas9蛋白,第5162-5209位核苷酸编码核定位信号(NLS),第5219-5266位核苷酸编码核定位信号(NLS),第5276-5332位核苷酸编码自剪切多肽P2A(自剪切多肽P2A的氨基酸序列为“ATNFSLLKQAGDVEENPGP”,发生自剪切的断裂位置为C端开始第一个氨基酸残基和第二个氨基酸残基之间),第5333-6046位核苷酸编码EGFP蛋白,第6056-6109位核苷酸编码自裂解多肽T2A(自裂解多肽T2A的氨基酸序列为“EGRGSLLTCGDVEENPGP”,发生自裂解的断裂位置为C端开始第一个氨基酸残基和第二个氨基酸残基之间),第6110-6703位核苷酸编码Puromycin蛋白(简称Puro蛋白),第6722-7310位核苷酸组成WPRE序列元件,第7382-7615位核苷酸组成3’LTR序列元件,第7647-7871位核苷酸组成bGH poly(A)signal序列元件。SEQ ID NO:2中,第911-6706形成融合基因,表达融合蛋白。由于自剪切多肽P2A和自裂解多肽T2A的存在,融合蛋白自发形成如下三个蛋白:具有Cas9蛋白的蛋白、具有EGFP蛋白的蛋白和具有Puro蛋白的蛋白。
1.2 构建pKG-U6gRNA载体
来源pUC57载体,通过EcoRV酶切位点,连接pKG-U6gRNA插入序列(含U6启动子、BbsI酶切位点和sgRNA骨架序列的DNA片段,序列如SEQ ID NO.8所示),反向插入到pUC57载体,得到pKG-U6gRNA载体全序列(SEQ ID NO.3),SEQ ID NO.3中,第2280-2539位核苷酸组成hU6启动子,第2558-2637位核苷酸用于转录形成gRNA骨架。使用时,将20bp左右的DNA分子(用于转录形成gRNA的靶序列结合区)(图7)插入质粒pKG-U6gRNA(图6),形成重组质粒,在细胞中重组质粒转录得到gRNA。
实施例2质粒配比优化以及质粒pX330和质粒pKG-GE3的效果比较
2.1 靶点gRNA设计及构建
2.1.1 使用Benchling对RAG1基因进行靶点gRNA设计
RAG1-g4:AGTTATGGCAGAACTCAGTG(SEQ ID NO.9)
合成针对上述RAG1基因靶点的插入序列互补DNA Oligo如下:
RAG1-gRNA4S:caccgAGTTATGGCAGAACTCAGTG(SEQ ID NO.10)
RAG1-gRNA4A:aaacCACTGAGTTCTGCCATAACTc(SEQ ID NO.11)
RAG1-gRNA4S、RAG1-gRNA4A均为单链DNA分子。
2.1.2 设计用于扩增和检测包含RAG1 gRNA靶点片段的引物
RAG1-nF126:CCCCATCCAAAGTTTTTAAAGGA
RAG1-nR525:TGTGGCAGATGTCACAGTTTAGG
2.1.3 gRNA重组载体的构建及克隆
1)用限制性内切酶BbsI消化1ug pKG-U6gRNA质粒;
2)酶切的pKG-U6gRNA质粒跑琼脂糖凝胶(琼脂糖凝胶浓度1%,即1g琼脂糖凝胶加入到100mL电泳缓冲液中)分离,用胶回收试剂盒(Vazyme)纯化回收酶切产物;
3)将2.1.1所述靶点合成的2条互补DNA Oligo,通过以下退火程序形成与pKG-U6gRNA载体BbsI酶切后粘性末端互补的DNA双链,示意如图7:
95℃,5min然后以5℃/min的速率降至25℃;
4)按照以下体系启动连接反应:室温反应10min
Figure BDA0002946997620000071
/>
37℃反应60min;
5)转化
按照感受态细胞(Vazyme)说明书进行操作。
2.1.4 gRNA载体构建
1)将合成的RAG1-gRNA4S和RAG1-gRNA4A混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)。质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)将会表达SEQ ID NO.12所示的RAG1-gRNA4。
2.1.5 gRNA载体鉴定
从LB平板上挑取单克隆置入加有相应抗生素的LB培养液内,37℃恒温摇床内培养12-16h后小提质粒后送通用公司测序,经序列比对确认RAG1-gRNA4载体构建成功。
2.2 猪原代成纤维细胞制备
2.2.1 取初生从江香猪耳组织0.5g,去除毛发及骨组织,75﹪酒精浸泡30-40s;
2.2.2 用含5%P/S(Gibco Penicillin-Streptomycin)的PBS洗涤5次,不含P/S的PBS洗一次;
其中5%P/S的PBS配方为:5%P/S(Gibco Penicillin-Streptomycin)+95%PBS,5%、95%为体积百分比。
2.2.3 用剪刀将组织剪碎,加入5mL0.1%的胶原酶(Sigma)溶液,37℃摇床消化1h;
2.2.4 500g离心5min,去上清,将沉淀用1mL完全培养基重悬,铺入含10mL完全培养基并已用0.2%明胶(VWR)封盘的10cm细胞培养皿中。
其中,细胞完全培养基的配方为:15%胎牛血清(Gibco)+83%DMEM培养基
(Gibco)+1%P/S(Gibco Penicillin-Streptomycin)+1%HEPES(Solarbio),15%、83%、1%、1%为体积百分比。
2.2.5 置于37℃,5%CO2(体积百分比)、5%O2(体积百分比)的恒温培养箱中进行培养;
2.2.6 将细胞培养至长满皿底60%左右时使用0.25%(Gibco)的胰蛋白酶将细胞消化下来,然后加入完全培养基终止消化,将细胞悬液转入15mL离心管中,400g离心4min,弃去上清,得到细胞沉淀以备下一步的细胞转染实验
2.3 质粒配比优化
2.3.1 共转染分组情况
第一组:将质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.44μg质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4):1.56μg质粒pKG-GE3。即质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)和质粒pKG-GE3的摩尔配比为1:1。
第二组:将质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.72μg质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4):1.28μg质粒pKG-GE3。即质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)和质粒pKG-GE3的摩尔配比为2:1。
第三组:将质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4):1.08μg质粒pKG-GE3。即质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)和质粒pKG-GE3的摩尔配比为3:1。
第四组:将质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)转染致猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:1μg质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)。
2.3.2 共转染操作方法
使用哺乳动物成纤维细胞核转染试剂盒(Neon kit)与Neon TM transfectionsystem电转仪进行转染实验。
1)按照上述分组配制电转DNA溶液,混匀过程中注意切勿产生气泡;
2)将上述2.2.6制备得到的细胞沉淀使用1ml PBS磷酸缓冲液(Solarbio)清洗,并转移到1.5ml离心管中,600g离心6min,弃去上清,使用11μL电转基本溶液Opti-MEM重悬细胞,重悬过程中要避免气泡的产生;
3)吸取10μL细胞悬液,加入至步骤1)中的电转DNA液中混匀,混匀过程中注意切勿产生气泡;
4)将试剂盒带有的电转杯放置于Neon TM transfection system电转仪杯槽内,加入3mL Buffer E;
5)用电转枪吸取10μL步骤3)得到的混合液,插入点击杯内,选择电转程序(1450V10ms 3pulse),电击转染后立即在超净台内将电转枪中混合液转入到6孔板中,每孔含3mL的完全培养液(15%胎牛血清(Gibco)+83%DMEM培养基(Gibco)+1%P/S(GibcoPenicillin-Streptomycin)+1%HEPES(Solarbio));
6)混匀后放置于37℃,5%CO2、5%O2的恒温培养箱中进行培养;
7)电转后12-18h换液,36-48h用0.25%(Gibco)的胰蛋白酶消化并收集细胞于1.5mL离心管中。
2.3.3 基因编辑效率分析
提取2.3.2中收集的细胞基因组DNA,采用RAG1-nF126和RAG1-nR525组成的引物对进行PCR扩增,将产物进行测序。测序结果利用网页版Synthego ICE工具分析测序峰图得出第一组、第二组、第三组的编辑效率依次为9%、53%、66%,测序结果示例性峰图见图8。分析认定第三组的基因编辑效率最高,即确定gRNA质粒与Cas9质粒最适用量为摩尔比3:1,质粒实际用量为0.92μg:1.08μg。
2.4 质粒pX330和质粒pKG-GE3的效果比较
2.4.1 共转染分组情况
RAG1-330组:将质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)和质粒pX330共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4):1.08μg质粒pX330,其中pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)与pX330摩尔比为3:1。
RAG1-KG组:将质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4):1.08μg质粒pKG-GE3,其中pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
RAG1-B组:将质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)。
2.4.2 共转染操作方法
同本实施例中2.3.2。
2.4.3 基因编辑效率分析
提取2.4.2中收集的细胞基因组DNA,采用RAG1-nF126和RAG1-nR525组成的引物对进行PCR扩增,将产物进行测序。测序结果利用网页版Synthego ICE工具分析测序峰图得出RAG1-330组、RAG1-KG组的编辑效率分别为28%、68%,测序结果示例性峰图见图9,结果表明,与采用质粒pX330相比,采用质粒pKG-GE3使得基因编辑效率显著提高。
实施例3筛选高效的MSTN基因gRNA靶点
猪MSTN基因信息:编码myostatin蛋白;位于猪15号染色体;GeneID为399534,Susscrofa。猪MSTN基因编码的蛋白质如GENBANK ACCESSION NO.NP_999600.2(linear CON12-JAN-2018)所示,氨基酸序列如SEQ ID NO.13所示。基因组DNA中,猪MSTN基因具有3个外显子,其中第1外显子及其下游各200bp序列如SEQ ID NO.14所示。
3.1 MSTN基因敲除预设靶点及邻近基因组序列保守性分析
18只初生从江香猪,其中雌性10只(分别命名1、2、3、4、5、6、7、8、9、10)、雄性8只(分别命名为A、B、C、D、E、F、G、H)。
分别以18只猪的基因组DNA为模板,采用引物对(引物对的靶序列包括猪MSTN基因第1外显子)进行PCR扩增,然后进行电泳。回收PCR扩增产物并进行测序,将测序结果与公共数据库中的MSTN基因序列进行比对分析。根据比对结果,设计用于检测突变的引物(引物本身避开可能的突变位点)。设计的用于检测突变的引物为:MSTN-JDF102/MSTN-JDR429。采用MSTN-JDF102/MSTN-JDR429组成的引物对对18只猪的基因组DNA进行PCR扩增后的电泳图见图10。
MSTN-JDF102:5’-AAAAGAGGGGCTGTGTAATGC-3’;
MSTN-JDR429:5’-AAACACTGGAACAACAGTCAGC-3’。
3.2 靶点gRNA设计及构建
通过筛选NGG(避开可能的突变位点)初步筛选到若干靶点,经过预实验进一步从中筛选到4个靶点。
4个靶点分别如下:
sgRNAMSTN-E1-g1靶点:5’-TGATGATTATCACGCTACGA-3’;
sgRNAMSTN-E1-g2靶点:5’-TGATCAATCAGTTCCCGGAG-3’(SEQ ID NO.15);
sgRNAMSTN-E1-g3靶点:5’-GTGATAATCATCATCTTCCA-3’;
sgRNAMSTN-E1-g4靶点:5’-TTTCCAGGCGAAGTTTACTG-3’。
合成的MSTN基因共4个靶点的插入序列互补DNA Oligo如下:
MSTN-E1-gRNA1-S:5’-caccgTGATGATTATCACGCTACGA-3’;
MSTN-E1-gRNA1-A:5’-aaacTCGTAGCGTGATAATCATCAc-3;
MSTN-E1-gRNA2-S:5’-caccgTGATCAATCAGTTCCCGGAG-3’(SEQ ID NO.16);
MSTN-E1-gRNA2-A:5’-aaacCTCCGGGAACTGATTGATCAc-3’(SEQ ID NO.17);
MSTN-E1-gRNA3-S:5’-caccGTGATAATCATCATCTTCCA-3’;
MSTN-E1-gRNA3-A:5’-aaacTGGAAGATGATGATTATCAC-3’;
MSTN-E1-gRNA4-S:5’-caccgTTTCCAGGCGAAGTTTACTG-3’;
MSTN-E1-gRNA4-A:5’-aaacCAGTAAACTTCGCCTGGAAAc-3’。
MSTN-E1-gRNA1-S、MSTN-E1-gRNA1-A、MSTN-E1-gRNA2-S、MSTN-E1-gRNA2-A、MSTN-E1-gRNA3-S、MSTN-E1-gRNA3-A、MSTN-E1-gRNA4-S、MSTN-E1-gRNA4-A均为单链DNA分子。
3.3 制备gRNA重组质粒
取质粒pKG-U6gRNA,用限制性内切酶BbsI进行酶切,回收载体骨架(约3kb的线性大片段)。
分别合成MSTN-E1-gRNA1-S和MSTN-E1-gRNA1-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g1)。质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g1)表达sgRNAMSTN-E1-g1,sgRNAMSTN-E1-g1序列如下所示:
UGAUGAUUAUCACGCUACGAguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu。
分别合成MSTN-E1-gRNA2-S和MSTN-E1-gRNA2-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g2)。质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g2)表达SEQ ID NO.18所示的sgRNAMSTN-E1-g2
UGAUCAAUCAGUUCCCGGAGguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu(SEQ ID NO.18)。
分别合成MSTN-E1-gRNA3-S和MSTN-E1-gRNA3-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g3)。质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g3)表达sgRNAMSTN-E1-g3,sgRNAMSTN-E1-g3序列如下所示:
GUGAUAAUCAUCAUCUUCCAguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu。
分别合成MSTN-E1-gRNA4-S和MSTN-E1-gRNA4-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g4)。质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g4)表达sgRNAMSTN-E1-g4,sgRNAMSTN-E1-g4序列如下所示:
UUUCCAGGCGAAGUUUACUGguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu。
3.4 MSTN基因不同靶点gRNA的编辑效率比较
从初生从江香猪(雌性,血型AO)的耳组织制备猪原代成纤维细胞。
1、共转染
第一组:将质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g1)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g1):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g1)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第二组:将质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g2)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g2):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g1)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第三组:将质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g3)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g3):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g1)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第四组:将质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g4)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g4):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g1)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第五组:猪原代成纤维细胞,同等电转参数不加质粒进行电转染操作。
共转染采用电击转染的方式,采用哺乳动物核转染试剂盒(Neon kit,Thermofisher)与Neon TM transfection system电转仪(参数设置为:1450V、10ms、3pulse)进行转染。
2、完成步骤1后,采用完全培养液培养16-18小时,然后更换新的完全培养液进行培养。培养总时间为48小时。
3、完成步骤2后,采用胰蛋白酶消化并收集细胞,然后裂解细胞并提取基因组DNA,采用MSTN-JDF102和MSTN-JDR429组成的引物对进行PCR扩增,然后进行1%琼脂糖凝胶电泳。回收目标片段并进行测序,测序峰图见图11。利用Synthego ICE工具分析测序峰图得出不同靶点的基因编辑效率。第一组至第四组的基因编辑效率依次为3%、32%、15%、19%。第五组不发生基因编辑。结果表明,第二组编辑效率最高,sgRNAMSTN-E1-g2的靶点为最优靶点。
实施例4筛选高效的SST基因gRNA靶点
猪SST基因信息:编码somatostatin蛋白;位于猪13号染色体;GeneID为397386,Sus scrofa。猪SST基因编码的蛋白质如GENBANK ACCESSION NO.NP_001009583.1(linearCON 12-JAN-2018)所示,氨基酸序列如SEQ ID NO.19所示。基因组DNA中,猪SST基因具有2个外显子,其中第1外显子及其上下游各400bp序列如SEQ ID NO.20所示。
4.1 SST基因敲除预设靶点及邻近基因组序列保守性分析
18只初生从江香猪,其中雌性10只(分别命名1、2、3、4、5、6、7、8、9、10)、雄性8只(分别命名为A、B、C、D、E、F、G、H)。
分别以18只猪的基因组DNA为模板,采用引物对(引物对的靶序列包括猪SST基因第1外显子)进行PCR扩增,然后进行电泳。回收PCR扩增产物并进行测序,将测序结果与公共数据库中的SST基因序列进行比对分析。根据比对结果,设计用于检测突变的引物(引物本身避开可能的突变位点)。设计的用于检测突变的引物为:SST-JDF290/SST-JDR689。采用SST-JDF290/SST-JDR689组成的引物对对18只猪的基因组DNA进行PCR扩增后的电泳图见图12。
SST-JDF290:5’-CACGAGGGTAATGGTGCGTA-3’;
SST-JDR689:5’-GGTTAGGGGATTCGCGAGAG-3’。
4.2 靶点gRNA设计及构建
通过筛选NGG(避开可能的突变位点)初步筛选到若干靶点,经过预实验进一步从中筛选到4个靶点。
4个靶点分别如下:
sgRNASST-E1-g1靶点:5’-TCCATCGTCCTGGCTCTGGG-3’(SEQ ID NO.21);
sgRNASST-E1-g2靶点:5’-GGGACTTCTGCAGAAACTGA-3’;
sgRNASST-E1-g3靶点:5’-TGACGGAGTCGGGGATCCGA-3’;
sgRNASST-E1-g4靶点:5’-TGCAGAAACTGACGGAGTCG-3’。
合成的SST基因共4个靶点的插入序列互补DNAOligo如下:
SST-E1-gRNA1-S:5’-caccgTCCATCGTCCTGGCTCTGGG-3’(SEQ ID NO.22);
SST-E1-gRNA1-A:5’-aaacCCCAGAGCCAGGACGATGGAc-3’(SEQ ID NO.23);
SST-E1-gRNA2-S:5’-caccGGGACTTCTGCAGAAACTGA-3’;
SST-E1-gRNA2-A:5’-aaacTCAGTTTCTGCAGAAGTCCC-3’;
SST-E1-gRNA3-S:5’-caccgTGACGGAGTCGGGGATCCGA-3’;
SST-E1-gRNA3-A:5’-aaacTCGGATCCCCGACTCCGTCAc-3’;
SST-E1-gRNA4-S:5’-caccgTGCAGAAACTGACGGAGTCG-3’;
SST-E1-gRNA4-A:5’-aaacCGACTCCGTCAGTTTCTGCAc-3’。
SST-E1-gRNA1-S、SST-E1-gRNA1-A、SST-E1-gRNA2-S、SST-E1-gRNA2-A、SST-E1-gRNA3-S、SST-E1-gRNA3-A、SST-E1-gRNA4-S、SST-E1-gRNA4-A均为单链DNA分子。
4.3 制备gRNA重组质粒
取质粒pKG-U6gRNA,用限制性内切酶BbsI进行酶切,回收载体骨架(约3kb的线性大片段)。
分别合成SST-E1-gRNA1-S和SST-E1-gRNA1-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(SST-E1-g1)。质粒pKG-U6gRNA(SST-E1-g1)表达SEQ ID NO.24所示的sgRNASST-E1-g1
UCCAUCGUCCUGGCUCUGGGguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu(SEQ ID NO.24)。
分别合成SST-E1-gRNA2-S和SST-E1-gRNA2-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(SST-E1-g2)。质粒pKG-U6gRNA(SST-E1-g2)表达sgRNASST-E1-g2,sgRNASST-E1-g2序列如下所示:
GGGACUUCUGCAGAAACUGAguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu。
分别合成SST-E1-gRNA3-S和SST-E1-gRNA3-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(SST-E1-g3)。质粒pKG-U6gRNA(SST-E1-g3)表达sgRNASST-E1-g3,sgRNASST-E1-g3序列如下所示:
UGACGGAGUCGGGGAUCCGAguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu。
分别合成SST-E1-gRNA4-S和SST-E1-gRNA4-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(SST-E1-g4)。质粒pKG-U6gRNA(SST-E1-g4)表达sgRNASST-E1-g4,sgRNASST-E1-g4序列如下所示:
UGCAGAAACUGACGGAGUCGguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu。
4.4 SST基因不同靶点gRNA的编辑效率比较
从初生从江香猪(雌性,血型AO)的耳组织制备猪原代成纤维细胞。
1、共转染
第一组:将质粒pKG-U6gRNA(SST-E1-g1)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(SST-E1-g1):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(SST-E1-g1)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第二组:将质粒pKG-U6gRNA(SST-E1-g2)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(SST-E1-g2):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(SST-E1-g1)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第三组:将质粒pKG-U6gRNA(SST-E1-g3)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(SST-E1-g3):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(SST-E1-g1)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第四组:将质粒pKG-U6gRNA(SST-E1-g4)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(SST-E1-g4):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(SST-E1-g1)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第五组:猪原代成纤维细胞,同等电转参数不加质粒进行电转染操作。
共转染采用电击转染的方式,采用哺乳动物核转染试剂盒(Neon kit,Thermofisher)与Neon TM transfection system电转仪(参数设置为:1450V、10ms、3pulse)进行转染。
2、完成步骤1后,采用完全培养液培养16-18小时,然后更换新的完全培养液进行培养。培养总时间为48小时。
3、完成步骤2后,采用胰蛋白酶消化并收集细胞,然后裂解细胞并提取基因组DNA,采用SST-JDF290和SST-JDR689组成的引物对进行PCR扩增,然后进行1%琼脂糖凝胶电泳。回收目标片段并进行测序,测序峰图见图13。利用Synthego ICE工具分析测序峰图得出不同靶点的基因编辑效率。第一组至第四组的基因编辑效率依次为47%、26%、22%、11%。第五组不发生基因编辑。结果表明,第一组编辑效率最高,sgRNASST-E1-g1的靶点为最优靶点。
实施例5筛选高效的INHA基因gRNA靶点
猪INHA基因信息:编码inhibin subunit alpha蛋白;位于猪5号染色体;GeneID为397386,Sus scrofa。猪INHA基因编码的蛋白质如GENBANK ACCESSION NO.XP_020930352.1(linear CON 12-JAN-2018)所示,氨基酸序列如SEQ ID NO.25所示。基因组DNA中,猪INHA基因具有2个外显子,其中第2外显子及其上下游各100bp序列如SEQ ID NO.26所示。
5.1 INHA基因敲除预设靶点及邻近基因组序列保守性分析
18只初生从江香猪,其中雌性10只(分别命名1、2、3、4、5、6、7、8、9、10)、雄性8只(分别命名为A、B、C、D、E、F、G、H)。
分别以18只猪的基因组DNA为模板,采用引物对(引物对的靶序列包括猪INHA基因第2外显子)进行PCR扩增,然后进行电泳。回收PCR扩增产物并进行测序,将测序结果与公共数据库中的INHA基因序列进行比对分析。根据比对结果,设计用于检测突变的引物(引物本身避开可能的突变位点)。设计的用于检测突变的引物为:INHA-E2-JDF178/INHA-E2-JDR654。采用INHA-E2-JDF178/INHA-E2-JDR654组成的引物对对18只猪的基因组DNA进行PCR扩增后的电泳图见图14。
INHA-E2-JDF178:5’-CTGCGCTGTCCTCTCTGTTC-3’;
INHA-E2-JDR654:5’-AGTGCTGGGTGAGAAGGTTG-3’。
5.2 靶点gRNA设计及构建
通过筛选NGG(避开可能的突变位点)初步筛选到若干靶点,经过预实验进一步从中筛选到4个靶点。
4个靶点分别如下:
sgRNAINHA-E2-g1靶点:5’-CCTCTGCAGCAGGCGCAGCG-3’(SEQ ID NO.27);
sgRNAINHA-E2-g2靶点:5’-CCTGCTGCAGAGGCCCCCGG-3’;
sgRNAINHA-E2-g3靶点:5’-GTGGCAGTCGGCGTGCACAG-3’;
sgRNAINHA-E2-g4靶点:5’-AGATGTTGAGGGAAGCTCTG-3’。
合成的INHA基因共4个靶点的插入序列互补DNA Oligo如下:
INHA-E2-gRNA1-S:5’-caccgCCTCTGCAGCAGGCGCAGCG-3’(SEQ ID NO.28);
INHA-E2-gRNA1-A:5’-aaacCGCTGCGCCTGCTGCAGAGGc-3’(SEQ ID NO.29);
INHA-E2-gRNA2-S:5’-caccgCCTGCTGCAGAGGCCCCCGG-3’;
INHA-E2-gRNA2-A:5’-aaacCCGGGGGCCTCTGCAGCAGGc-3’;
INHA-E2-gRNA3-S:5’-caccGTGGCAGTCGGCGTGCACAG-3’;
INHA-E2-gRNA3-A:5’-aaacCTGTGCACGCCGACTGCCAC-3’;
INHA-E2-gRNA4-S:5’-caccgAGATGTTGAGGGAAGCTCTG-3’;
INHA-E2-gRNA4-A:5’-aaacCAGAGCTTCCCTCAACATCTc-3’。
INHA-E2-gRNA1-S、INHA-E2-gRNA1-A、INHA-E2-gRNA2-S、INHA-E2-gRNA2-A、INHA-E2-gRNA3-S、INHA-E2-gRNA3-A、INHA-E2-gRNA4-S、INHA-E2-gRNA4-A均为单链DNA分子。
5.3 制备gRNA重组质粒
取质粒pKG-U6gRNA,用限制性内切酶BbsI进行酶切,回收载体骨架(约3kb的线性大片段)。
分别合成INHA-E2-gRNA1-S和INHA-E2-gRNA1-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(INHA-E2-g1)。质粒pKG-U6gRNA(INHA-E2-g1)表达SEQ ID NO.30所示的sgRNAINHA-E2-g1:
CCUCUGCAGCAGGCGCAGCGguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu(SEQ ID NO.30)。
分别合成INHA-E2-gRNA2-S和INHA-E2-gRNA2-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(INHA-E2-g2)。质粒pKG-U6gRNA(INHA-E2-g2)表达sgRNAINHA-E2-g2,sgRNAINHA-E2-g2序列如下所示:
CCUGCUGCAGAGGCCCCCGGguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu。
分别合成INHA-E2-gRNA3-S和INHA-E2-gRNA3-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(INHA-E2-g3)。质粒pKG-U6gRNA(INHA-E2-g3)表达sgRNAINHA-E2-g3,sgRNAINHA-E2-g3序列如下所示:
GUGGCAGUCGGCGUGCACAGguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu。
分别合成INHA-E2-gRNA4-S和INHA-E2-gRNA4-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(INHA-E2-g4)。质粒pKG-U6gRNA(INHA-E2-g4)表达sgRNAINHA-E2-g4,sgRNAINHA-E2-g4序列如下所示:
AGAUGUUGAGGGAAGCUCUGguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu。
5.4 INHA基因不同靶点gRNA的编辑效率比较
从初生从江香猪(雌性,血型AO)的耳组织制备猪原代成纤维细胞。
1、共转染
第一组:将质粒pKG-U6gRNA(INHA-E2-g1)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(INHA-E2-g1):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(INHA-E2-g1)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第二组:将质粒pKG-U6gRNA(INHA-E2-g2)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(INHA-E2-g2):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(INHA-E2-g2)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第三组:将质粒pKG-U6gRNA(INHA-E2-g3)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(INHA-E2-g3):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(INHA-E2-g3)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第四组:将质粒pKG-U6gRNA(INHA-E2-g4)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(INHA-E2-g4):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(INHA-E2-g4)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第五组:猪原代成纤维细胞,同等电转参数不加质粒进行电转染操作。
共转染采用电击转染的方式,采用哺乳动物核转染试剂盒(Neon kit,Thermofisher)与Neon TM transfection system电转仪(参数设置为:1450V、10ms、3pulse)进行转染。
2、完成步骤1后,采用完全培养液培养16-18小时,然后更换新的完全培养液进行培养。培养总时间为48小时。
3、完成步骤2后,采用胰蛋白酶消化并收集细胞,然后裂解细胞并提取基因组DNA,采用INHA-E2-JDF178和INHA-E2-JDR654组成的引物对进行PCR扩增,然后进行1%琼脂糖凝胶电泳。回收目标片段并进行测序,测序峰图见图15。利用Synthego ICE工具分析测序峰图得出不同靶点的基因编辑效率。第一组至第四组的基因编辑效率依次为68%、5%、8%、1%。第五组不发生基因编辑。结果表明,第一组编辑效率最高,sgRNAINHA-E2-g1的靶点为最优靶点。
实施例6筛选高效的CD163基因gRNA靶点
猪CD163基因信息:编码CD163 molecule蛋白;位于猪5号染色体;GeneID为397031,Sus scrofa。猪CD163基因编码的蛋白质如GENBANK ACCESSION NO.XP_020946779.1(linear CON 12-JAN-2018)所示,氨基酸序列如SEQ ID NO.31所示。基因组DNA中,猪CD163基因具有18个外显子,其中第7外显子及其上下游各400bp序列如SEQ IDNO.32所示。
6.1 CD163基因敲除预设靶点及邻近基因组序列保守性分析
18只初生从江香猪,其中雌性10只(分别命名1、2、3、4、5、6、7、8、9、10)、雄性8只(分别命名为A、B、C、D、E、F、G、H)。
分别以18只猪的基因组DNA为模板,采用引物对(引物对的靶序列包括猪CD163基因第7外显子)进行PCR扩增,然后进行电泳。回收PCR扩增产物并进行测序,将测序结果与公共数据库中的CD163基因序列进行比对分析。根据比对结果,设计用于检测突变的引物(引物本身避开可能的突变位点)。设计的用于检测突变的引物为:CD163-JDF121/CD163-JDR518。采用CD163-JDF121/CD163-JDR518组成的引物对对18只猪的基因组DNA进行PCR扩增后的电泳图见图16。
CD163-JDF121:5’-GAATCGGCTAAGCCCACTGTA-3’;
CD163-JDR518:5’-ACTGGGCAGAGTGAAAGGTG-3’。
6.2 靶点gRNA设计及构建
通过筛选NGG(避开可能的突变位点)初步筛选到若干靶点,经过预实验进一步从中筛选到4个靶点。
4个靶点分别如下:
sgRNACD163-E7-g1靶点:5’-GGAACTACAGTGCGGCACTG-3’;
sgRNACD163-E7-g2靶点:5’-GGTCGTGTTGAAGTACAACA-3’(SEQ ID NO.33);
sgRNACD163-E7-g3靶点:5’-GTACAACATGGAGACACGTG-3’;
sgRNACD163-E7-g4靶点:5’-ACTGTGGTTTCCCTCCTGGG-3’。
合成的CD163基因共4个靶点的插入序列互补DNA Oligo如下:
CD163-E7-gRNA1-S:5’-caccGGAACTACAGTGCGGCACTG-3’;
CD163-E7-gRNA1-A:5’-aaacCAGTGCCGCACTGTAGTTCC-3’;
CD163-E7-gRNA2-S:5’-caccGGTCGTGTTGAAGTACAACA-3’(SEQ ID NO.34);
CD163-E7-gRNA2-A:5’-aaacTGTTGTACTTCAACACGACC-3’(SEQ ID NO.35);
CD163-E7-gRNA3-S:5’-caccGTACAACATGGAGACACGTG-3’;
CD163-E7-gRNA3-A:5’-aaacCACGTGTCTCCATGTTGTAC-3’;
CD163-E7-gRNA4-S:5’-caccgACTGTGGTTTCCCTCCTGGG-3’;
CD163-E7-gRNA4-A:5’-aaacCCCAGGAGGGAAACCACAGTc-3’。
CD163-E7-gRNA1-S、CD163-E7-gRNA1-A、CD163-E7-gRNA2-S、CD163-E7-gRNA2-A、CD163-E7-gRNA3-S、CD163-E7-gRNA3-A、CD163-E7-gRNA4-S、CD163-E7-gRNA4-A均为单链DNA分子。
6.3 制备gRNA重组质粒
取质粒pKG-U6gRNA,用限制性内切酶BbsI进行酶切,回收载体骨架(约3kb的线性大片段)。
分别合成CD163-E7-gRNA1-S和CD163-E7-gRNA1-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(CD163-E7-g1)。质粒pKG-U6gRNA(CD163-E7-g1)表达sgRNACD163-E7-g1,sgRNACD163-E7-g1序列如下所示:
GGAACUACAGUGCGGCACUGguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu。
分别合成CD163-E7-gRNA2-S和CD163-E7-gRNA2-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(CD163-E7-g2)。质粒pKG-U6gRNA(CD163-E7-g2)表达SEQ ID NO.36所示的sgRNACD163-E7-g2
GGUCGUGUUGAAGUACAACAguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu(SEQ ID NO.36)。
分别合成CD163-E7-gRNA3-S和CD163-E7-gRNA3-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(CD163-E7-g3)。质粒pKG-U6gRNA(CD163-E7-g3)表达sgRNACD163-E7-g3,sgRNACD163-E7-g3序列如下所示:
GUACAACAUGGAGACACGUGguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu。
分别合成CD163-E7-gRNA4-S和CD163-E7-gRNA4-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(CD163-E7-g4)。质粒pKG-U6gRNA(CD163-E7-g4)表达sgRNACD163-E7-g4,sgRNACD163-E7-g4序列如下所示:
ACUGUGGUUUCCCUCCUGGGguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu。
6.4 CD163基因不同靶点gRNA的编辑效率比较
从初生从江香猪(雌性,血型AO)的耳组织制备猪原代成纤维细胞。
1、共转染
第一组:将质粒pKG-U6gRNA(CD163-E7-g1)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(CD163-E7-g1):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(CD163-E7-g1)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第二组:将质粒pKG-U6gRNA(CD163-E7-g2)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(CD163-E7-g2):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(CD163-E7-g2)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第三组:将质粒pKG-U6gRNA(CD163-E7-g3)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(CD163-E7-g3):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(CD163-E7-g3)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第四组:将质粒pKG-U6gRNA(CD163-E7-g4)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(CD163-E7-g4):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(CD163-E7-g4)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第五组:猪原代成纤维细胞,同等电转参数不加质粒进行电转染操作。
共转染采用电击转染的方式,采用哺乳动物核转染试剂盒(Neon kit,Thermofisher)与Neon TM transfection system电转仪(参数设置为:1450V、10ms、3pulse)进行转染。
2、完成步骤1后,采用完全培养液培养16-18小时,然后更换新的完全培养液进行培养。培养总时间为48小时。
3、完成步骤2后,采用胰蛋白酶消化并收集细胞,然后裂解细胞并提取基因组DNA,采用CD163-JDF121和CD163-JDR518组成的引物对进行PCR扩增,然后进行1%琼脂糖凝胶电泳。回收目标片段并进行测序,测序峰图见图17。利用Synthego ICE工具分析测序峰图得出不同靶点的基因编辑效率。第一组至第四组的基因编辑效率依次为16%、34%、10%、10%。第五组不发生基因编辑。结果表明,第二组编辑效率最高,sgRNACD163-E7-g2的靶点为最优靶点。
实施例7筛选高效的pAPN基因gRNA靶点
猪APN基因信息:编码alanyl aminopeptidase,membrane蛋白;位于猪7号染色体;GeneID为397520,Sus scrofa。猪CD163基因编码的蛋白质如GENBANK ACCESSION NO.NP_999442.1(linear CON12-JAN-2018)所示,氨基酸序列如SEQ ID NO.37所示。基因组DNA中,猪APN基因具有2个外显子,其中第2外显子及其上下游各100bp序列如SEQ ID NO.38所示。
7.1 pAPN基因敲除预设靶点及邻近基因组序列保守性分析
18只初生从江香猪,其中雌性10只(分别命名1、2、3、4、5、6、7、8、9、10)、雄性8只(分别命名为A、B、C、D、E、F、G、H)。
分别以18只猪的基因组DNA为模板,采用引物对(引物对的靶序列包括猪APN基因第2外显子)进行PCR扩增,然后进行电泳。回收PCR扩增产物并进行测序,将测序结果与公共数据库中的pAPN基因序列进行比对分析。根据比对结果,设计用于检测突变的引物(引物本身避开可能的突变位点)。设计的用于检测突变的引物为:APN-JDF94/APN-JDR656。采用APN-JDF94/APN-JDR656组成的引物对对18只猪的基因组DNA进行PCR扩增后的电泳图见图18。
APN-JDF94:5’-GAACCGGAGCAGTGTCTCTA-3’;
APN-JDR656:5’-CCCCTGGGTGGTGTAGTTGA-3’。
7.2 靶点gRNA设计及构建
通过筛选NGG(避开可能的突变位点)初步筛选到若干靶点,经过预实验进一步从中筛选到4个靶点。
4个靶点分别如下:
sgRNAAPN-E2-g1靶点:5’-GAGGATGCCCAGGATGCCCA-3’(SEQ ID NO.39);
sgRNAAPN-E2-g2靶点:5’-CCTGGGCATCCTCCTCGGCG-3’;
sgRNAAPN-E2-g3靶点:5’-CACAGACAGAGCGATGATGG-3’;
sgRNAAPN-E2-g4靶点:5’-GCTCTGGTCCAAGGTGATGG-3’。
合成的APN基因共4个靶点的插入序列互补DNAOligo如下:
APN-E2-gRNA1-S:5’-caccGAGGATGCCCAGGATGCCCA-3’(SEQ ID NO.40);
APN-E2-gRNA1-A:5’-aaacTGGGCATCCTGGGCATCCTC-3’(SEQ ID NO.41);
APN-E2-gRNA2-S:5’-caccgCCTGGGCATCCTCCTCGGCG-3’;
APN-E2-gRNA2-A:5’-aaacCGCCGAGGAGGATGCCCAGGc-3’;
APN-E2-gRNA3-S:5’-caccgCACAGACAGAGCGATGATGG-3’;
APN-E2-gRNA3-A:5’-aaacCCATCATCGCTCTGTCTGTGc-3’;
APN-E2-gRNA4-S:5’-caccGCTCTGGTCCAAGGTGATGG-3’;
APN-E2-gRNA4-A:5’-aaacCCATCACCTTGGACCAGAGC-3’。
APN-E2-gRNA1-S、APN-E2-gRNA1-A、APN-E2-gRNA2-S、APN-E2-gRNA2-A、APN-E2-gRNA3-S、APN-E2-gRNA3-A、APN-E2-gRNA4-S、APN-E2-gRNA4-A均为单链DNA分子。
7.3 制备gRNA重组质粒
取质粒pKG-U6gRNA,用限制性内切酶BbsI进行酶切,回收载体骨架(约3kb的线性大片段)。
分别合成APN-E2-gRNA1-S和APN-E2-gRNA1-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(APN-E2-g1)。质粒pKG-U6gRNA(APN-E2-g1)表达SEQ ID NO.42所示的sgRNAAPN-E2-g1
GAGGAUGCCCAGGAUGCCCAguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu(SEQ ID NO.42)。
分别合成APN-E2-gRNA2-S和APN-E2-gRNA2-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(APN-E2-g2)。质粒pKG-U6gRNA(APN-E2-g2)表达sgRNAAPN-E2-g2,sgRNAAPN-E2-g2序列如下所示:
CCUGGGCAUCCUCCUCGGCGguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu。
分别合成APN-E2-gRNA3-S和APN-E2-gRNA3-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(APN-E2-g3)。质粒pKG-U6gRNA(APN-E2-g3)表达sgRNAAPN-E2-g3,sgRNAAPN-E2-g3序列如下所示:
CACAGACAGAGCGAUGAUGGguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu。
分别合成APN-E2-gRNA4-S和APN-E2-gRNA4-A,然后混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(APN-E2-g4)。质粒pKG-U6gRNA(APN-E2-g4)表达sgRNAAPN-E2-g4,sgRNAAPN-E2-g4序列如下所示:
GCUCUGGUCCAAGGUGAUGGguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu。
7.4 pAPN基因不同靶点gRNA的编辑效率比较
从初生从江香猪(雌性,血型AO)的耳组织制备猪原代成纤维细胞。
1、共转染
第一组:将质粒pKG-U6gRNA(APN-E2-g1)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(APN-E2-g1):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(APN-E2-g1)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第二组:将质粒pKG-U6gRNA(APN-E2-g2)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(APN-E2-g2):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(APN-E2-g2)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第三组:将质粒pKG-U6gRNA(APN-E2-g3)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(APN-E2-g3):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(APN-E2-g3)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第四组:将质粒pKG-U6gRNA(APN-E2-g4)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(APN-E2-g4):1.08μg质粒pKG-GE3。其中pKG-U6gRNA(APN-E2-g4)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第五组:猪原代成纤维细胞,同等电转参数不加质粒进行电转染操作。
共转染采用电击转染的方式,采用哺乳动物核转染试剂盒(Neon kit,Thermofisher)与Neon TM transfection system电转仪(参数设置为:1450V、10ms、3pulse)进行转染。
2、完成步骤1后,采用完全培养液培养16-18小时,然后更换新的完全培养液进行培养。培养总时间为48小时。
3、完成步骤2后,采用胰蛋白酶消化并收集细胞,然后裂解细胞并提取基因组DNA,采用APN-JDF94和APN-JDR656组成的引物对进行PCR扩增,然后进行1%琼脂糖凝胶电泳。回收目标片段并进行测序,测序峰图见图19。利用Synthego ICE工具分析测序峰图得出不同靶点的基因编辑效率。第一组至第四组的基因编辑效率依次为52%、15%、16%、5%。第五组不发生基因编辑。结果表明,第一组编辑效率最高,sgRNAAPN-E2-g1的靶点为最优靶点。
实施例8构建MSTN、SST、INHA、CD163及pAPN五基因联合敲除的从江香猪单细胞克隆
8.1 猪原代成纤维细胞制备
同实施例2中2.2。
8.2 分别针对5基因的gRNA质粒及pKG-GE3质粒共转染猪原代成纤维细胞
8.2.1 将质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g2)、pKG-U6gRNA(SST-E1-g1)、pKG-U6gRNA(INHA-E2-g1)、pKG-U6gRNA(CD163-E7-g2)、pKG-U6gRNA(APN-E2-g1)、pKG-GE3转染至猪原代成纤维细胞。
配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.28μg质粒pKG-U6gRNA(MSTN-E1-g2):0.28μg质粒pKG-U6gRNA(SST-E1-g1):0.28μg质粒pKG-U6gRNA(INHA-E2-g1):0.28μg pKG-U6gRNA(CD163-E7-g2):0.28μg pKG-U6gRNA(APN-E2-g1):1.60μg质粒pKG-GE3,各质粒的摩尔比为:(3/5):(3/5):(3/5):(3/5):(3/5):1,即总gRNA:pKG-GE3为3:1。。
8.2.2 共转染操作方法
同实施例2中2.3.2,但不使用0.25%(Gibco)的胰蛋白酶消化并收集细胞于1.5mL离心管中。
8.3 MSTN、SST、INHA、CD163及pAPN五基因联合敲除单细胞克隆株的筛选
8.3.1 将步骤8.2所得电转48h的群体细胞,使用胰蛋白酶进行消化,完全培养基中和,500g离心5min,去上清,将沉淀用200μL完全培养基重悬,并适当稀释,用口吸管挑取单细胞转移到每孔含100μL完全培养基的96孔板中,每孔放置一个细胞;
8.3.2 37℃,5%CO2、5%O2的恒温培养箱中进行培养,每2~3天换一次细胞培养基,期间用显微镜观察每孔细胞生长情况,排除无细胞及非单细胞克隆的孔;
8.3.3 待96孔板的孔中细胞长满孔底,使用胰蛋白酶消化并收集细胞,其中2/3细胞接种到含有完全培养基的6孔板中,剩余的1/3细胞收集在1.5mL离心管中备后续基因型测定;
8.3.4 待6孔板长至80%汇合度时使用0.25%(Gibco)的胰蛋白酶消化并收集细胞,使用细胞冻存液(90%完全培养基+10%DMSO,体积比)将细胞冻存。
8.4 MSTN、SST、INHA、CD163及pAPN五基因联合敲除的单细胞克隆鉴定
8.4.1 向步骤8.3.3收集在1.5mL离心管中的细胞中加入10μL KAPA2G裂解液裂解细胞,得到释放出基因组DNA的细胞裂解液。
KAPA2G裂解液配制体系如下:
10X extract Buffer 1μL
Enzyme 0.2μL
ddH2O 8.8μL
75℃15min—95℃5min—4℃,反应结束后细胞裂解液于-20℃保存;
8.4.2 采用前述针对MSTN基因E1的引物对(MSTN-JDF102/MSTN-JDR429)、针对SST基因E1的引物对(SST-JDF290/SST-JDR689)、针对INHA基因E2的引物对(INHA-E2-JDF178/INHA-E2-JDR654)、针对CD163基因E7的引物对(CD163-JDF121/CD163-JDR518)及针对pAPN基因E2的引物对(APN-JDF94/APN-JDR656),并以上述细胞裂解液为DNA模板,分别进行PCR扩增MSTN、SST、INHA、CD163及pAPN基因靶点区域,检测单细胞克隆的靶基因突变情况。MSTN基因的目的PCR产物长度为328bp,SST基因的目的PCR产物长度为400bp,INHA基因的目的PCR产物长度为477bp,CD163基因的目的PCR产物长度为398bp,pAPN基因的目的PCR产物长度为563bp;
8.4.3 使用PCR常规反应扩增MSTN、SST、INHA、CD163和pAPN基因靶点区域;
8.4.4 将PCR反应产物进行电泳,电泳结果分别如图20(MSTN)、图21(SST)、图22(INHA)、图23(CD163)和图24(pAPN)所示,泳道编号与单细胞克隆编号一致。回收PCR扩增产物并测序。
8.4.5 将测序结果分别与MSTN、SST、INHA、CD163及pAPN基因靶点信息进行比对,从而判断该单细胞克隆是否为MSTN、SST、INHA、CD163和pAPN五基因联合敲除。
8.4.5.1 对于MSTN基因,编号为2、17、21、62的单细胞克隆的基因型为双等位基因相同变异的纯合突变型;编号为30、43的单细胞克隆的基因型为双等位基因不同变异的纯合突变型;编号为50、69、77、81的单细胞克隆的基因型为杂合突变型;其他编号的单细胞克隆的基因型为野生型;得到MSTN基因编辑单细胞克隆的比率为10%。
示例性的测序比对结果如图25至图28,其中图25是克隆号为1的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为野生型;图26是克隆号为69的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为杂合突变型;图27是克隆号为62的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为双等位基因相同变异的纯合突变型;图28是克隆号为43的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为双等位基因不同变异的纯合突变型。
通过具体序列的分析,各单细胞克隆基因型如表1:
表1 MSTN基因敲除单细胞克隆基因型鉴定
Figure BDA0002946997620000181
/>
Figure BDA0002946997620000191
/>
Figure BDA0002946997620000201
8.4.5.2 对于SST基因,编号为2、17、22、62、66、83、91、95、97的单细胞克隆的基因型为双等位基因相同变异的纯合突变型;编号为30、50、93、99的单细胞克隆的基因型为双等位基因不同变异的纯合突变型;编号为3、19、40、46、52、81的单细胞克隆的基因型为杂合突变型;其他编号的单细胞克隆的基因型为野生型;得到SST基因编辑单细胞克隆的比率为19%。
示例性的测序比对结果如图29至图32,其中图29是克隆号为1的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为野生型;图30是克隆号为40的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为杂合突变型;图31是克隆号为22的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为双等位基因相同变异的纯合突变型;图32是克隆号为30的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为双等位基因不同变异的纯合突变型。
通过具体序列的分析,各单细胞克隆基因型如表2:
表2 SST基因敲除单细胞克隆基因型鉴定
Figure BDA0002946997620000211
/>
Figure BDA0002946997620000221
/>
Figure BDA0002946997620000231
8.4.5.3对于INHA基因,编号为2、6、8、12、17、18、30、34、37、40、46、49、62、64、80、90、92、95、97、99的单细胞克隆的基因型为双等位基因相同变异的纯合突变型;编号为83、85的单细胞克隆的基因型为双等位基因不同变异的纯合突变型;编号为4、9、14、16、21、26、27、42、56、71的单细胞克隆的基因型为杂合突变型;其他编号的单细胞克隆的基因型为野生型;得到SST基因编辑单细胞克隆的比率为32%。
示例性的测序比对结果如图33至图36,其中图33是克隆号为1的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为野生型;图34是克隆号为26的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为杂合突变型;图35是克隆号为8的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为双等位基因相同变异的纯合突变型;图36是克隆号为83的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为双等位基因不同变异的纯合突变型。
通过具体序列的分析,各单细胞克隆基因型如表3:
表3 INHA基因敲除单细胞克隆基因型鉴定
Figure BDA0002946997620000241
/>
Figure BDA0002946997620000251
/>
Figure BDA0002946997620000261
8.4.5.4 对于CD163基因,编号为2、30、41、62、83、87的单细胞克隆的基因型为双等位基因相同变异的纯合突变型;编号为28、63的单细胞克隆的基因型为双等位基因不同变异的纯合突变型;编号为7、13、46、71的单细胞克隆的基因型为杂合突变型;其他编号的单细胞克隆的基因型为野生型;得到CD163基因编辑单细胞克隆的比率为12%。
示例性的测序比对结果如图37至图40,其中图37是克隆号为3的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为野生型;图38是克隆号为7的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为杂合突变型;图39是克隆号为2的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为双等位基因相同变异的纯合突变型;图40是克隆号为28的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为双等位基因不同变异的纯合突变型。
通过具体序列的分析,各单细胞克隆基因型如表4:
表4 CD163基因敲除单细胞克隆基因型鉴定
Figure BDA0002946997620000271
/>
Figure BDA0002946997620000281
/>
Figure BDA0002946997620000291
8.4.5.5 对于pAPN基因,编号为2、17、30、32、38、42、48、54、62、68、89、96的单细胞克隆的基因型为双等位基因相同变异的纯合突变型;编号为77、79、83的单细胞克隆的基因型为双等位基因不同变异的纯合突变型;编号为60、66、72、75、92、94、100的单细胞克隆的基因型为杂合突变型;其他编号的单细胞克隆的基因型为野生型;得到pAPN基因编辑单细胞克隆的比率为22%。
示例性的测序比对结果如图41至图44,其中图41是克隆号为1的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为野生型;图42是克隆号为60的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为杂合突变型;图43是克隆号为62的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为双等位基因相同变异的纯合突变型;图44是克隆号为83的测序结果与野生型参考序列的比对结果,判定为双等位基因不同变异的纯合突变型。
通过具体序列的分析,各单细胞克隆基因型如表5:
表5 pAPN基因敲除单细胞克隆基因型鉴定
Figure BDA0002946997620000301
/>
Figure BDA0002946997620000311
/>
Figure BDA0002946997620000321
8.4.6 通过分析,编号为2、30、62的单细胞克隆为MSTN、SST、INHA、CD163及pAPN五基因均纯合敲除的单细胞克隆,五基因联合敲除纯合率为3%。
上述的杂合突变及纯合突变单细胞克隆株均可用来进行基因编辑猪的克隆生产。
以上对本发明进行了详述。对于本领域技术人员来说,在不脱离本发明的宗旨和范围,以及无需进行不必要的实验情况下,可在等同参数、浓度和条件下,在较宽范围内实施本发明。虽然本发明给出了特殊的实施例,应该理解为,可以对本发明作进一步的改进。总之,按本发明的原理,本申请欲包括任何变更、用途或对本发明的改进,包括脱离了本申请中已公开范围,而用本领域已知的常规技术进行的改变。按以下附带的权利要求的范围,可以进行一些基本特征的应用。
序列表
<110> 南京启真基因工程有限公司
<120> 构建瘦肉率高、生长快、繁殖力高且抗系列流行病的优质猪核移植供体细胞的方法及其应用
<160> 42
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 8484
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
gagggcctat ttcccatgat tccttcatat ttgcatatac gatacaaggc tgttagagag 60
ataattggaa ttaatttgac tgtaaacaca aagatattag tacaaaatac gtgacgtaga 120
aagtaataat ttcttgggta gtttgcagtt ttaaaattat gttttaaaat ggactatcat 180
atgcttaccg taacttgaaa gtatttcgat ttcttggctt tatatatctt gtggaaagga 240
cgaaacaccg ggtcttcgag aagacctgtt ttagagctag aaatagcaag ttaaaataag 300
gctagtccgt tatcaacttg aaaaagtggc accgagtcgg tgcttttttg ttttagagct 360
agaaatagca agttaaaata aggctagtcc gtttttagcg cgtgcgccaa ttctgcagac 420
aaatggctct agaggtaccc gttacataac ttacggtaaa tggcccgcct ggctgaccgc 480
ccaacgaccc ccgcccattg acgtcaatag taacgccaat agggactttc cattgacgtc 540
aatgggtgga gtatttacgg taaactgccc acttggcagt acatcaagtg tatcatatgc 600
caagtacgcc ccctattgac gtcaatgacg gtaaatggcc cgcctggcat tgtgcccagt 660
acatgacctt atgggacttt cctacttggc agtacatcta cgtattagtc atcgctatta 720
ccatggtcga ggtgagcccc acgttctgct tcactctccc catctccccc ccctccccac 780
ccccaatttt gtatttattt attttttaat tattttgtgc agcgatgggg gcgggggggg 840
ggggggggcg gggcgagggg cggggcgggg cgaggcggag aggtgcggcg gcagccaatc 900
agagcggcgc gctccgaaag tttcctttta tggcgaggcg gcggcggcgg cggccctata 960
aaaagcgaag cgcgcggcgg gcgggagtcg ctgcgcgctg ccttcgcccc gtgccccgct 1020
ccgccgccgc ctcgcgccgc ccgccccggc tctgactgac cgcgttactc ccacaggtga 1080
gcgggcggga cggcccttct cctccgggct gtaattagct gagcaagagg taagggttta 1140
agggatggtt ggttggtggg gtattaatgt ttaattacct ggagcacctg cctgaaatca 1200
ctttttttca ggttggaccg gtgccaccat ggactataag gaccacgacg gagactacaa 1260
ggatcatgat attgattaca aagacgatga cgataagatg gccccaaaga agaagcggaa 1320
ggtcggtatc cacggagtcc cagcagccga caagaagtac agcatcggcc tggacatcgg 1380
caccaactct gtgggctggg ccgtgatcac cgacgagtac aaggtgccca gcaagaaatt 1440
caaggtgctg ggcaacaccg accggcacag catcaagaag aacctgatcg gagccctgct 1500
gttcgacagc ggcgaaacag ccgaggccac ccggctgaag agaaccgcca gaagaagata 1560
caccagacgg aagaaccgga tctgctatct gcaagagatc ttcagcaacg agatggccaa 1620
ggtggacgac agcttcttcc acagactgga agagtccttc ctggtggaag aggataagaa 1680
gcacgagcgg caccccatct tcggcaacat cgtggacgag gtggcctacc acgagaagta 1740
ccccaccatc taccacctga gaaagaaact ggtggacagc accgacaagg ccgacctgcg 1800
gctgatctat ctggccctgg cccacatgat caagttccgg ggccacttcc tgatcgaggg 1860
cgacctgaac cccgacaaca gcgacgtgga caagctgttc atccagctgg tgcagaccta 1920
caaccagctg ttcgaggaaa accccatcaa cgccagcggc gtggacgcca aggccatcct 1980
gtctgccaga ctgagcaaga gcagacggct ggaaaatctg atcgcccagc tgcccggcga 2040
gaagaagaat ggcctgttcg gaaacctgat tgccctgagc ctgggcctga cccccaactt 2100
caagagcaac ttcgacctgg ccgaggatgc caaactgcag ctgagcaagg acacctacga 2160
cgacgacctg gacaacctgc tggcccagat cggcgaccag tacgccgacc tgtttctggc 2220
cgccaagaac ctgtccgacg ccatcctgct gagcgacatc ctgagagtga acaccgagat 2280
caccaaggcc cccctgagcg cctctatgat caagagatac gacgagcacc accaggacct 2340
gaccctgctg aaagctctcg tgcggcagca gctgcctgag aagtacaaag agattttctt 2400
cgaccagagc aagaacggct acgccggcta cattgacggc ggagccagcc aggaagagtt 2460
ctacaagttc atcaagccca tcctggaaaa gatggacggc accgaggaac tgctcgtgaa 2520
gctgaacaga gaggacctgc tgcggaagca gcggaccttc gacaacggca gcatccccca 2580
ccagatccac ctgggagagc tgcacgccat tctgcggcgg caggaagatt tttacccatt 2640
cctgaaggac aaccgggaaa agatcgagaa gatcctgacc ttccgcatcc cctactacgt 2700
gggccctctg gccaggggaa acagcagatt cgcctggatg accagaaaga gcgaggaaac 2760
catcaccccc tggaacttcg aggaagtggt ggacaagggc gcttccgccc agagcttcat 2820
cgagcggatg accaacttcg ataagaacct gcccaacgag aaggtgctgc ccaagcacag 2880
cctgctgtac gagtacttca ccgtgtataa cgagctgacc aaagtgaaat acgtgaccga 2940
gggaatgaga aagcccgcct tcctgagcgg cgagcagaaa aaggccatcg tggacctgct 3000
gttcaagacc aaccggaaag tgaccgtgaa gcagctgaaa gaggactact tcaagaaaat 3060
cgagtgcttc gactccgtgg aaatctccgg cgtggaagat cggttcaacg cctccctggg 3120
cacataccac gatctgctga aaattatcaa ggacaaggac ttcctggaca atgaggaaaa 3180
cgaggacatt ctggaagata tcgtgctgac cctgacactg tttgaggaca gagagatgat 3240
cgaggaacgg ctgaaaacct atgcccacct gttcgacgac aaagtgatga agcagctgaa 3300
gcggcggaga tacaccggct ggggcaggct gagccggaag ctgatcaacg gcatccggga 3360
caagcagtcc ggcaagacaa tcctggattt cctgaagtcc gacggcttcg ccaacagaaa 3420
cttcatgcag ctgatccacg acgacagcct gacctttaaa gaggacatcc agaaagccca 3480
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tttgctggcc ttttgctcac atgt 8484
<210> 2
<211> 10476
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
gagggcctat ttcccatgat tccttcatat ttgcatatac gatacaaggc tgttagagag 60
ataattggaa ttaatttgac tgtaaacaca aagatattag tacaaaatac gtgacgtaga 120
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cccgacaccc gccaacaccc gctgacgcgc cctgacgggc ttgtctgctc ccggcatccg 8520
cttacagaca agctgtgacc gtctccggga gctgcatgtg tcagaggttt tcaccgtcat 8580
caccgaaacg cgcgagacga aagggcctcg tgatacgcct atttttatag gttaatgtca 8640
tgataataat ggtttcttag acgtcaggtg gcacttttcg gggaaatgtg cgcggaaccc 8700
ctatttgttt atttttctaa atacattcaa atatgtatcc gctcatgaga caataaccct 8760
gataaatgct tcaataatat tgaaaaagga agagtatgag tattcaacat ttccgtgtcg 8820
cccttattcc cttttttgcg gcattttgcc ttcctgtttt tgctcaccca gaaacgctgg 8880
tgaaagtaaa agatgctgaa gatcagttgg gtgcacgagt gggttacatc gaactggatc 8940
tcaacagcgg taagatcctt gagagttttc gccccgaaga acgttttcca atgatgagca 9000
cttttaaagt tctgctatgt ggcgcggtat tatcccgtat tgacgccggg caagagcaac 9060
tcggtcgccg catacactat tctcagaatg acttggttga gtactcacca gtcacagaaa 9120
agcatcttac ggatggcatg acagtaagag aattatgcag tgctgccata accatgagtg 9180
ataacactgc ggccaactta cttctgacaa cgatcggagg accgaaggag ctaaccgctt 9240
ttttgcacaa catgggggat catgtaactc gccttgatcg ttgggaaccg gagctgaatg 9300
aagccatacc aaacgacgag cgtgacacca cgatgcctgt agcaatggca acaacgttgc 9360
gcaaactatt aactggcgaa ctacttactc tagcttcccg gcaacaatta atagactgga 9420
tggaggcgga taaagttgca ggaccacttc tgcgctcggc ccttccggct ggctggttta 9480
ttgctgataa atctggagcc ggtgagcgtg gaagccgcgg tatcattgca gcactggggc 9540
cagatggtaa gccctcccgt atcgtagtta tctacacgac ggggagtcag gcaactatgg 9600
atgaacgaaa tagacagatc gctgagatag gtgcctcact gattaagcat tggtaactgt 9660
cagaccaagt ttactcatat atactttaga ttgatttaaa acttcatttt taatttaaaa 9720
ggatctaggt gaagatcctt tttgataatc tcatgaccaa aatcccttaa cgtgagtttt 9780
cgttccactg agcgtcagac cccgtagaaa agatcaaagg atcttcttga gatccttttt 9840
ttctgcgcgt aatctgctgc ttgcaaacaa aaaaaccacc gctaccagcg gtggtttgtt 9900
tgccggatca agagctacca actctttttc cgaaggtaac tggcttcagc agagcgcaga 9960
taccaaatac tgttcttcta gtgtagccgt agttaggcca ccacttcaag aactctgtag 10020
caccgcctac atacctcgct ctgctaatcc tgttaccagt ggctgctgcc agtggcgata 10080
agtcgtgtct taccgggttg gactcaagac gatagttacc ggataaggcg cagcggtcgg 10140
gctgaacggg gggttcgtgc acacagccca gcttggagcg aacgacctac accgaactga 10200
gatacctaca gcgtgagcta tgagaaagcg ccacgcttcc cgaagggaga aaggcggaca 10260
ggtatccggt aagcggcagg gtcggaacag gagagcgcac gagggagctt ccagggggaa 10320
acgcctggta tctttatagt cctgtcgggt ttcgccacct ctgacttgag cgtcgatttt 10380
tgtgatgctc gtcagggggg cggagcctat ggaaaaacgc cagcaacgcg gcctttttac 10440
ggttcctggc cttttgctgg ccttttgctc acatgt 10476
<210> 3
<211> 3120
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
gacgaaaggg cctcgtgata cgcctatttt tataggttaa tgtcatgata ataatggttt 60
cttagacgtc aggtggcact tttcggggaa atgtgcgcgg aacccctatt tgtttatttt 120
tctaaataca ttcaaatatg tatccgctca tgagacaata accctgataa atgcttcaat 180
aatattgaaa aaggaagagt atgagtattc aacatttccg tgtcgccctt attccctttt 240
ttgcggcatt ttgccttcct gtttttgctc acccagaaac gctggtgaaa gtaaaagatg 300
ctgaagatca gttgggtgca cgagtgggtt acatcgaact ggatctcaac agcggtaaga 360
tccttgagag ttttcgcccc gaagaacgtt ttccaatgat gagcactttt aaagttctgc 420
tatgtggcgc ggtattatcc cgtattgacg ccgggcaaga gcaactcggt cgccgcatac 480
actattctca gaatgacttg gttgagtact caccagtcac agaaaagcat cttacggatg 540
gcatgacagt aagagaatta tgcagtgctg ccataaccat gagtgataac actgcggcca 600
acttacttct gacaacgatc ggaggaccga aggagctaac cgcttttttg cacaacatgg 660
gggatcatgt aactcgcctt gatcgttggg aaccggagct gaatgaagcc ataccaaacg 720
acgagcgtga caccacgatg cctgtagcaa tggcaacaac gttgcgcaaa ctattaactg 780
gcgaactact tactctagct tcccggcaac aattaataga ctggatggag gcggataaag 840
ttgcaggacc acttctgcgc tcggcccttc cggctggctg gtttattgct gataaatctg 900
gagccggtga gcgtgggtct cgcggtatca ttgcagcact ggggccagat ggtaagccct 960
cccgtatcgt agttatctac acgacgggga gtcaggcaac tatggatgaa cgaaatagac 1020
agatcgctga gataggtgcc tcactgatta agcattggta actgtcagac caagtttact 1080
catatatact ttagattgat ttaaaacttc atttttaatt taaaaggatc taggtgaaga 1140
tcctttttga taatctcatg accaaaatcc cttaacgtga gttttcgttc cactgagcgt 1200
cagaccccgt agaaaagatc aaaggatctt cttgagatcc tttttttctg cgcgtaatct 1260
gctgcttgca aacaaaaaaa ccaccgctac cagcggtggt ttgtttgccg gatcaagagc 1320
taccaactct ttttccgaag gtaactggct tcagcagagc gcagatacca aatactgttc 1380
ttctagtgta gccgtagtta ggccaccact tcaagaactc tgtagcaccg cctacatacc 1440
tcgctctgct aatcctgtta ccagtggctg ctgccagtgg cgataagtcg tgtcttaccg 1500
ggttggactc aagacgatag ttaccggata aggcgcagcg gtcgggctga acggggggtt 1560
cgtgcacaca gcccagcttg gagcgaacga cctacaccga actgagatac ctacagcgtg 1620
agctatgaga aagcgccacg cttcccgaag ggagaaaggc ggacaggtat ccggtaagcg 1680
gcagggtcgg aacaggagag cgcacgaggg agcttccagg gggaaacgcc tggtatcttt 1740
atagtcctgt cgggtttcgc cacctctgac ttgagcgtcg atttttgtga tgctcgtcag 1800
gggggcggag cctatggaaa aacgccagca acgcggcctt tttacggttc ctggcctttt 1860
gctggccttt tgctcacatg ttctttcctg cgttatcccc tgattctgtg gataaccgta 1920
ttaccgcctt tgagtgagct gataccgctc gccgcagccg aacgaccgag cgcagcgagt 1980
cagtgagcga ggaagcggaa gagcgcccaa tacgcaaacc gcctctcccc gcgcgttggc 2040
cgattcatta atgcagctgg cacgacaggt ttcccgactg gaaagcgggc agtgagcgca 2100
acgcaattaa tgtgagttag ctcactcatt aggcacccca ggctttacac tttatgcttc 2160
cggctcgtat gttgtgtgga attgtgagcg gataacaatt tcacacagga aacagctatg 2220
accatgatta cgccaagctt gcatgcaggc ctctgcagtc gacgggcccg ggatccgatg 2280
ataaacatgt gagggcctat ttcccatgat tccttcatat ttgcatatac gatacaaggc 2340
tgttagagag ataattggaa ttaatttgac tgtaaacaca aagatattag tacaaaatac 2400
gtgacgtaga aagtaataat ttcttgggta gtttgcagtt ttaaaattat gttttaaaat 2460
ggactatcat atgcttaccg taacttgaaa gtatttcgat ttcttggctt tatatatctt 2520
gtggaaagga cgaaacaccg ggtcttcgag aagacctgtt ttagagctag aaatagcaag 2580
ttaaaataag gctagtccgt tatcaacttg aaaaagtggc accgagtcgg tgcttttttc 2640
tagcgcgtgc gccaattctg cagacaaatg gctctagagg tacccataga tctagatgca 2700
ttcgcgaggt accgagctcg aattcactgg ccgtcgtttt acaacgtcgt gactgggaaa 2760
accctggcgt tacccaactt aatcgccttg cagcacatcc ccctttcgcc agctggcgta 2820
atagcgaaga ggcccgcacc gatcgccctt cccaacagtt gcgcagcctg aatggcgaat 2880
ggcgcctgat gcggtatttt ctccttacgc atctgtgcgg tatttcacac cgcatatggt 2940
gcactctcag tacaatctgc tctgatgccg catagttaag ccagccccga cacccgccaa 3000
cacccgctga cgcgccctga cgggcttgtc tgctcccggc atccgcttac agacaagctg 3060
tgaccgtctc cgggagctgc atgtgtcaga ggttttcacc gtcatcaccg aaacgcgcga 3120
<210> 4
<211> 175
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
tgtggaaagg acgaaacacc gggtcttcga gaagacctgt tttagagcta gaaatagcaa 60
gttaaaataa ggctagtccg ttatcaactt gaaaaagtgg caccgagtcg gtgctttttt 120
ctagcgcgtg cgccaattct gcagacaaat ggctctagag gtacccgtta cataa 175
<210> 5
<211> 554
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
tctgcagaca aatggctcta gaggtacccg ttacataact tacggtaaat ggcccgcctg 60
gctgaccgcc caacgacccc cgcccattga cgtcaatagt aacgccaata gggactttcc 120
attgacgtca atgggtggag tatttacggt aaactgccca cttggcagta catcaagtgt 180
atcatatgcc aagtacgccc cctattgacg tcaatgacgg taaatggccc gcctggcatt 240
gtgcccagta catgacctta tgggactttc ctacttggca gtacatctac gtattagtca 300
tcgctattac catgggggca gagcgcacat cgcccacagt ccccgagaag ttggggggag 360
gggtcggcaa ttgatccggt gcctagagaa ggtggcgcgg ggtaaactgg gaaagtgatg 420
tcgtgtactg gctccgcctt tttcccgagg gtgggggaga accgtatata agtgcagtag 480
tcgccgtgaa cgttcttttt cgcaacgggt ttgccgccag aacacaggtt ggaccggtgc 540
caccatggac tata 554
<210> 6
<211> 447
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
ccagaacaca ggttggaccg gtgccaccat ggactataag gaccacgacg gagactacaa 60
ggatcatgat attgattaca aagacgatga cgataagatg gcccccaaaa agaaacgaaa 120
ggtgggtggg tccccaaaga agaagcggaa ggtcggtatc cacggagtcc cagcagccga 180
caagaagtac agcatcggcc tggacatcgg caccaactct gtgggctggg ccgtgatcac 240
cgacgagtac aaggtgccca gcaagaaatt caaggtgctg ggcaacaccg accggcacag 300
catcaagaag aacctgatcg gagccctgct gttcgacagc ggcgaaacag ccgaggccac 360
ccggctgaag agaaccgcca gaagaagata caccagacgg aagaaccgga tctgctatct 420
gcaagagatc ttcagcaacg agatggc 447
<210> 7
<211> 2727
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 7
cggcggccac gaaaaaggcc ggccaggcaa aaaagaaaaa gggcggctcc aagcggcctg 60
ccgcgacgaa gaaagcggga caggccaaga aaaagaaagg atccggcgca acaaacttct 120
ctctgctgaa acaagccgga gatgtcgaag agaatcctgg accggtgagc aagggcgagg 180
agctgttcac cggggtggtg cccatcctgg tcgagctgga cggcgacgta aacggccaca 240
agttcagcgt gtccggcgag ggcgagggcg atgccaccta cggcaagctg accctgaagt 300
tcatctgcac caccggcaag ctgcccgtgc cctggcccac cctcgtgacc accctgacct 360
acggcgtgca gtgcttcagc cgctaccccg accacatgaa gcagcacgac ttcttcaagt 420
ccgccatgcc cgaaggctac gtccaggagc gcaccatctt cttcaaggac gacggcaact 480
acaagacccg cgccgaggtg aagttcgagg gcgacaccct ggtgaaccgc atcgagctga 540
agggcatcga cttcaaggag gacggcaaca tcctggggca caagctggag tacaactaca 600
acagccacaa cgtctatatc atggccgaca agcagaagaa cggcatcaag gtgaacttca 660
agatccgcca caacatcgag gacggcagcg tgcagctcgc cgaccactac cagcagaaca 720
cccccatcgg cgacggcccc gtgctgctgc ccgacaacca ctacctgagc acccagtccg 780
ccctgagcaa agaccccaac gagaagcgcg atcacatggt cctgctggag ttcgtgaccg 840
ccgccgggat cactctcggc atggacgagc tgtacaaggg ctccggcgag ggcaggggaa 900
gtcttctaac atgcggggac gtggaggaaa atcccggccc aaccgagtac aagcccacgg 960
tgcgcctcgc cacccgcgac gacgtcccca gggccgtacg caccctcgcc gccgcgttcg 1020
ccgactaccc cgccacgcgc cacaccgtcg atccggaccg ccacatcgag cgggtcaccg 1080
agctgcaaga actcttcctc acgcgcgtcg ggctcgacat cggcaaggtg tgggtcgcgg 1140
acgacggcgc cgcggtggcg gtctggacca cgccggagag cgtcgaagcg ggggcggtgt 1200
tcgccgagat cggcccgcgc atggccgagt tgagcggttc ccggctggcc gcgcagcaac 1260
agatggaagg cctcctggcg ccgcaccggc ccaaggagcc cgcgtggttc ctggccaccg 1320
tcggagtctc gcccgaccac cagggcaagg gtctgggcag cgccgtcgtg ctccccggag 1380
tggaggcggc cgagcgcgcc ggggtgcccg ccttcctgga gacctccgcg ccccgcaacc 1440
tccccttcta cgagcggctc ggcttcaccg tcaccgccga cgtcgaggtg cccgaaggac 1500
cgcgcacctg gtgcatgacc cgcaagcccg gtgcctgaac gcgttaagtc gacaatcaac 1560
ctctggatta caaaatttgt gaaagattga ctggtattct taactatgtt gctcctttta 1620
cgctatgtgg atacgctgct ttaatgcctt tgtatcatgc tattgcttcc cgtatggctt 1680
tcattttctc ctccttgtat aaatcctggt tgctgtctct ttatgaggag ttgtggcccg 1740
ttgtcaggca acgtggcgtg gtgtgcactg tgtttgctga cgcaaccccc actggttggg 1800
gcattgccac cacctgtcag ctcctttccg ggactttcgc tttccccctc cctattgcca 1860
cggcggaact catcgccgcc tgccttgccc gctgctggac aggggctcgg ctgttgggca 1920
ctgacaattc cgtggtgttg tcggggaaat catcgtcctt tccttggctg ctcgcctgtg 1980
ttgccacctg gattctgcgc gggacgtcct tctgctacgt cccttcggcc ctcaatccag 2040
cggaccttcc ttcccgcggc ctgctgccgg ctctgcggcc tcttccgcgt cttcgccttc 2100
gccctcagac gagtcggatc tccctttggg ccgcctcccc gcgtcgactt taagaccaat 2160
gacttacaag gcagctgtag atcttagcca ctttttaaaa gaaaaggggg gactggaagg 2220
gctaattcac tcccaacgaa gacaagatct gctttttgct tgtactgggt ctctctggtt 2280
agaccagatc tgagcctggg agctctctgg ctaactaggg aacccactgc ttaagcctca 2340
ataaagcttg ccttgagtgc ttcaagtagt gtgtgcccgt ctgttgtgtg actctggtaa 2400
ctagagatcc ctcagaccct tttagtcagt gtggaaaatc tctagcaggg cccgtttaaa 2460
cccgctgatc agcctcgact gtgccttcta gttgccagcc atctgttgtt tgcccctccc 2520
ccgtgccttc cttgaccctg gaaggtgcca ctcccactgt cctttcctaa taaaatgagg 2580
aaattgcatc gcattgtctg agtaggtgtc attctattct ggggggtggg gtggggcagg 2640
acagcaaggg ggaggattgg gaagacaata gcaggcatgc tggggatgcg gtgggctcta 2700
tggcctgcag gggcgcctga tgcggta 2727
<210> 8
<211> 410
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 8
gataaacatg tgagggccta tttcccatga ttccttcata tttgcatata cgatacaagg 60
ctgttagaga gataattgga attaatttga ctgtaaacac aaagatatta gtacaaaata 120
cgtgacgtag aaagtaataa tttcttgggt agtttgcagt tttaaaatta tgttttaaaa 180
tggactatca tatgcttacc gtaacttgaa agtatttcga tttcttggct ttatatatct 240
tgtggaaagg acgaaacacc gggtcttcga gaagacctgt tttagagcta gaaatagcaa 300
gttaaaataa ggctagtccg ttatcaactt gaaaaagtgg caccgagtcg gtgctttttt 360
ctagcgcgtg cgccaattct gcagacaaat ggctctagag gtacccatag 410
<210> 9
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 9
agttatggca gaactcagtg 20
<210> 10
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 10
caccgagtta tggcagaact cagtg 25
<210> 11
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 11
aaaccactga gttctgccat aactc 25
<210> 12
<211> 100
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 12
aguuauggca gaacucagug guuuuagagc uagaaauagc aaguuaaaau aaggcuaguc 60
cguuaucaac uugaaaaagu ggcaccgagu cggugcuuuu 100
<210> 13
<211> 375
<212> PRT
<213> 猪(Sus scrofa)
<400> 13
Met Gln Lys Leu Gln Ile Tyr Val Tyr Ile Tyr Leu Phe Met Leu Ile
1 5 10 15
Val Ala Gly Pro Val Asp Leu Asn Glu Asn Ser Glu Gln Lys Glu Asn
20 25 30
Val Glu Lys Glu Gly Leu Cys Asn Ala Cys Met Trp Arg Gln Asn Thr
35 40 45
Lys Ser Ser Arg Leu Glu Ala Ile Lys Ile Gln Ile Leu Ser Lys Leu
50 55 60
Arg Leu Glu Thr Ala Pro Asn Ile Ser Lys Asp Ala Ile Arg Gln Leu
65 70 75 80
Leu Pro Lys Ala Pro Pro Leu Arg Glu Leu Ile Asp Gln Tyr Asp Val
85 90 95
Gln Arg Asp Asp Ser Ser Asp Gly Ser Leu Glu Asp Asp Asp Tyr His
100 105 110
Ala Thr Thr Glu Thr Ile Ile Thr Met Pro Thr Glu Ser Asp Leu Leu
115 120 125
Met Gln Val Glu Gly Lys Pro Lys Cys Cys Phe Phe Lys Phe Ser Ser
130 135 140
Lys Ile Gln Tyr Asn Lys Val Val Lys Ala Gln Leu Trp Ile Tyr Leu
145 150 155 160
Arg Pro Val Lys Thr Pro Thr Thr Val Phe Val Gln Ile Leu Arg Leu
165 170 175
Ile Lys Pro Met Lys Asp Gly Thr Arg Tyr Thr Gly Ile Arg Ser Leu
180 185 190
Lys Leu Asp Met Asn Pro Gly Thr Gly Ile Trp Gln Ser Ile Asp Val
195 200 205
Lys Thr Val Leu Gln Asn Trp Leu Lys Gln Pro Glu Ser Asn Leu Gly
210 215 220
Ile Glu Ile Lys Ala Leu Asp Glu Asn Gly His Asp Leu Ala Val Thr
225 230 235 240
Phe Pro Gly Pro Gly Glu Asp Gly Leu Asn Pro Phe Leu Glu Val Lys
245 250 255
Val Thr Asp Thr Pro Lys Arg Ser Arg Arg Asp Phe Gly Leu Asp Cys
260 265 270
Asp Glu His Ser Thr Glu Ser Arg Cys Cys Arg Tyr Pro Leu Thr Val
275 280 285
Asp Phe Glu Ala Phe Gly Trp Asp Trp Ile Ile Ala Pro Lys Arg Tyr
290 295 300
Lys Ala Ser Tyr Cys Ser Gly Glu Cys Glu Phe Val Phe Leu Gln Lys
305 310 315 320
Tyr Pro His Thr His Leu Val His Gln Ala Asn Pro Arg Gly Ser Ala
325 330 335
Gly Pro Cys Cys Thr Pro Thr Lys Met Ser Pro Ile Asn Met Leu Tyr
340 345 350
Phe Asn Gly Lys Glu Gln Ile Ile Tyr Gly Lys Ile Pro Ala Met Val
355 360 365
Val Asp Arg Cys Gly Cys Ser
370 375
<210> 14
<211> 573
<212> DNA
<213> 猪(Sus scrofa)
<400> 14
atgcaaaaac tgcaaatcta tgtttatatt tacctgttta tgctgattgt tgctggtccc 60
gtggatctga atgagaacag cgagcaaaag gaaaatgtgg aaaaagaggg gctgtgtaat 120
gcatgtatgt ggagacaaaa cactaaatct tcaagactag aagccataaa aattcaaatc 180
ctcagtaaac ttcgcctgga aacagctcct aacattagca aagatgctat aagacaactt 240
ttgcccaaag ctcctccact ccgggaactg attgatcagt acgatgtcca gagagatgac 300
agcagtgatg gctccttgga agatgatgat tatcacgcta cgacggaaac gatcattacc 360
atgcctacag agtgtaagta gtcctattag tgtatatcaa caattctgct gactgttgtt 420
ccagtgttta tgagaaacag atctattttc aggctctttt aacaagctgt tggcttgtac 480
gtaagtagga gggaaaagag tttctttttt caagatttca tgagaaataa actaatgaga 540
ctgaaagctg ctgtattatt gttttcctta gct 573
<210> 15
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 15
tgatcaatca gttcccggag 20
<210> 16
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 16
caccgtgatc aatcagttcc cggag 25
<210> 17
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 17
aaacctccgg gaactgattg atcac 25
<210> 18
<211> 100
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 18
ugaucaauca guucccggag guuuuagagc uagaaauagc aaguuaaaau aaggcuaguc 60
cguuaucaac uugaaaaagu ggcaccgagu cggugcuuuu 100
<210> 19
<211> 116
<212> PRT
<213> 猪(Sus scrofa)
<400> 19
Met Leu Ser Cys Arg Leu Gln Cys Ala Leu Ala Ala Leu Ser Ile Val
1 5 10 15
Leu Ala Leu Gly Gly Val Thr Gly Ala Pro Ser Asp Pro Arg Leu Arg
20 25 30
Gln Phe Leu Gln Lys Ser Leu Ala Ala Ala Ala Gly Lys Gln Glu Leu
35 40 45
Ala Lys Tyr Phe Leu Ala Glu Leu Leu Ser Glu Pro Asn Gln Thr Glu
50 55 60
Asn Asp Ala Leu Glu Pro Glu Asp Leu Ser Gln Ala Ala Glu Gln Asp
65 70 75 80
Glu Met Arg Leu Glu Leu Gln Arg Ser Ala Asn Ser Asn Pro Ala Met
85 90 95
Ala Pro Arg Glu Arg Lys Ala Gly Cys Lys Asn Phe Phe Trp Lys Thr
100 105 110
Phe Thr Ser Cys
115
<210> 20
<211> 938
<212> DNA
<213> 猪(Sus scrofa)
<400> 20
taactggtgt gcacatgtgt gagtgaaatt atggaatgtg tatgtgcata gcactgagtg 60
aatataaaaa gattgtgtag atggtgtggc acgtggggga attgtgtggg cctgtgtgca 120
ggatttattt atttcttaat aagctacttt tgattgtgta gagcctcctc tcacttcggt 180
gattgatttc acgagggtaa tggtgcgtaa aagcgctggt gagatctggg ggcgcctcct 240
agtctgacgt cagagagaga gtttaaaaag ggggagacgg tggcgagcgc acaagccgct 300
tcaggagtcg cgaggttcag agccgtcgct gctgcctgca aatcgactcc tagagtttga 360
ccaaccgcgc tctagctcgg cttctctggc cgctgccgag atgctgtcct gccgcctcca 420
gtgcgcgctg gccgcgctct ccatcgtcct ggctctgggc ggtgtcactg gcgcgccctc 480
ggatccccga ctccgtcagt ttctgcagaa gtccctggct gctgccgctg ggaagcaggt 540
aaggagactc cctcgacgcc ttctttcccc tctcgcgaat cccctaacct taccttagcc 600
ttgcccctcc tcccttgggt ggacttagga ggtggtccca aagagtatcg gtgcttttct 660
gggtccctta ggcaccaaat ctctcaggaa aactttcaaa gtccagaatt cctttttacc 720
tctttgtttt ttccctcttt gatcagcgca gtaggtcaca gttcaggtga gttctttggc 780
tttcaagaaa attctaagat ctggggaact gagctcgagg ggatgatggc atctatccgc 840
ggtgctgacc atgggaggtg ctgacccagg tgctgaaagc gcggacctct gaagcttcct 900
aagcagtacc tcccacccat gcagcagggc tgggggct 938
<210> 21
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 21
tccatcgtcc tggctctggg 20
<210> 22
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 22
caccgtccat cgtcctggct ctggg 25
<210> 23
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 23
aaaccccaga gccaggacga tggac 25
<210> 24
<211> 100
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 24
uccaucgucc uggcucuggg guuuuagagc uagaaauagc aaguuaaaau aaggcuaguc 60
cguuaucaac uugaaaaagu ggcaccgagu cggugcuuuu 100
<210> 25
<211> 339
<212> PRT
<213> 猪(Sus scrofa)
<400> 25
Met Gly Arg Gly Asp Trp Gly Gly Pro Gly Gln Thr Leu Thr Glu Gly
1 5 10 15
Ala Gln Gly Trp Val Trp Val His Arg Trp Gln Gly Gln Val Ser Tyr
20 25 30
Val Ala Ser Ala Ala Pro Leu Ala Val Gly Pro Thr Glu Trp Ala Trp
35 40 45
Leu Pro Gly Pro Gly Ala Gly Pro Gly Ala Cys Pro Gly Gln Gly Ala
50 55 60
Arg Cys Gly Asp Glu Pro Ala Ala Gly Glu Leu Ala Arg Glu Ala Glu
65 70 75 80
Glu Gly Leu Phe Thr Tyr Val Phe Arg Pro Ser Gln His Thr Arg Ser
85 90 95
Arg Gln Val Thr Ser Ala Gln Leu Trp Phe His Thr Gly Leu Asp Arg
100 105 110
Gln Gly Met Ala Ala Ala Asn Ser Ser Gly Pro Leu Leu Asp Leu Leu
115 120 125
Ala Leu Ser Ser Arg Gly Pro Val Ala Val Pro Met Ser Leu Gly Gln
130 135 140
Ala Pro Pro Arg Trp Ala Val Leu His Leu Ala Ala Ser Ala Leu Pro
145 150 155 160
Leu Leu Thr His Pro Val Leu Val Leu Leu Leu Arg Cys Pro Leu Cys
165 170 175
Ser Cys Ser Ala Arg Pro Glu Ala Thr Pro Phe Leu Val Ala His Thr
180 185 190
Arg Ala Arg Pro Pro Ser Gly Gly Glu Arg Ala Arg Arg Ser Thr Ala
195 200 205
Pro Leu Pro Trp Pro Trp Ser Pro Ala Ala Leu Arg Leu Leu Gln Arg
210 215 220
Pro Pro Glu Glu Pro Ala Val His Ala Asp Cys His Arg Ala Ser Leu
225 230 235 240
Asn Ile Ser Phe Gln Glu Leu Gly Trp Asp Arg Trp Ile Val His Pro
245 250 255
Pro Ser Phe Ile Phe His Tyr Cys His Gly Gly Cys Gly Leu Pro Thr
260 265 270
Leu Pro Asn Leu Pro Leu Ser Val Pro Gly Ala Pro Pro Thr Pro Val
275 280 285
Gln Pro Leu Leu Leu Val Pro Gly Ala Gln Pro Cys Cys Ala Ala Leu
290 295 300
Pro Gly Thr Met Arg Ser Leu Arg Val Arg Thr Thr Ser Asp Gly Gly
305 310 315 320
Tyr Ser Phe Lys Tyr Glu Thr Val Pro Asn Leu Leu Thr Gln His Cys
325 330 335
Ala Cys Ile
<210> 26
<211> 1034
<212> DNA
<213> 猪(Sus scrofa)
<400> 26
gcaggctcct gagtggcagc cagatcctgc ctgttgagga ggaggggtcc caggttctgc 60
cagtcagggc tgccctctcc cttccttctg cctcctgcag gtgcccgctg tggggacgag 120
ccagctgctg gagagctggc ccgggaggct gaggagggcc tcttcacata tgtattccgg 180
ccgtcccagc acacacgcag ccgccaggtg acttcagctc agctgtggtt ccacacggga 240
ctggacagac aggggatggc agccgccaat agctctgggc ccctgctgga cctgctggca 300
ctatcatcca ggggtcctgt ggctgtgccc atgtcactgg gccaggcgcc ccctcgctgg 360
gctgtgctgc acctggccgc ctctgccctc cctttgttga cccacccagt cctggtgctg 420
ctgctgcgct gtcctctctg ttcctgctca gcccggcccg aggccacccc cttcctggtg 480
gcccacactc gggccaggcc acccagcgga gggggagagg gcccgacgct ccaccgcccc 540
tctgccctgg ccttggtccc ccgccgcgct gcgcctgctg cagaggcccc cggaggaacc 600
cgctgtgcac gccgactgcc acagagcttc cctcaacatc tccttccagg agctgggctg 660
ggaccggtgg atcgtgcacc ctcccagttt catcttccac tactgtcacg ggggctgcgg 720
gctgccgacc ctgcccaacc tgcccctgtc tgtccctggg gcccccccta cccctgtcca 780
gcccctgttg ttggtgccag gggctcagcc ctgctgcgct gctctcccgg ggaccatgag 840
gtccctacgc gttcgcacca cctcggatgg aggttactct ttcaagtacg agacagtgcc 900
caaccttctc acccagcact gtgcctgcat ctaagggtgt cccgctggtg gccaagctcc 960
cacaggcacc agcctggagg aaggcagagt tcccacctcc cctttccttc cgcctctccg 1020
cctggaggct cccc 1034
<210> 27
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 27
cctctgcagc aggcgcagcg 20
<210> 28
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 28
caccgcctct gcagcaggcg cagcg 25
<210> 29
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 29
aaaccgctgc gcctgctgca gaggc 25
<210> 30
<211> 100
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 30
ccucugcagc aggcgcagcg guuuuagagc uagaaauagc aaguuaaaau aaggcuaguc 60
cguuaucaac uugaaaaagu ggcaccgagu cggugcuuuu 100
<210> 31
<211> 1113
<212> PRT
<213> 猪(Sus scrofa)
<400> 31
Met Asp Lys Leu Arg Met Val Leu His Glu Asn Ser Gly Ser Ala Asp
1 5 10 15
Phe Arg Arg Cys Ser Ala His Leu Ser Ser Phe Thr Phe Ala Val Val
20 25 30
Ala Val Leu Ser Ala Cys Leu Val Thr Ser Ser Leu Gly Gly Lys Asp
35 40 45
Lys Glu Leu Arg Leu Thr Gly Gly Glu Asn Lys Cys Ser Gly Arg Val
50 55 60
Glu Val Lys Val Gln Glu Glu Trp Gly Thr Val Cys Asn Asn Gly Trp
65 70 75 80
Asp Met Asp Val Val Ser Val Val Cys Arg Gln Leu Gly Cys Pro Thr
85 90 95
Ala Ile Lys Ala Thr Gly Trp Ala Asn Phe Ser Ala Gly Ser Gly Arg
100 105 110
Ile Trp Met Asp His Val Ser Cys Arg Gly Asn Glu Ser Ala Leu Trp
115 120 125
Asp Cys Lys His Asp Gly Trp Gly Lys His Asn Cys Thr His Gln Gln
130 135 140
Asp Ala Gly Val Thr Cys Ser Asp Gly Ser Asp Leu Glu Met Arg Leu
145 150 155 160
Val Asn Gly Gly Asn Arg Cys Leu Gly Arg Ile Glu Val Lys Phe Gln
165 170 175
Gly Arg Trp Gly Thr Val Cys Asp Asp Asn Phe Asn Ile Asn His Ala
180 185 190
Ser Val Val Cys Lys Gln Leu Glu Cys Gly Ser Ala Val Ser Phe Ser
195 200 205
Gly Ser Ala Asn Phe Gly Glu Gly Ser Gly Pro Ile Trp Phe Asp Asp
210 215 220
Leu Val Cys Asn Gly Asn Glu Ser Ala Leu Trp Asn Cys Lys His Glu
225 230 235 240
Gly Trp Gly Lys His Asn Cys Asp His Ala Glu Asp Ala Gly Val Ile
245 250 255
Cys Leu Asn Gly Ala Asp Leu Lys Leu Arg Val Val Asp Gly Val Thr
260 265 270
Glu Cys Ser Gly Arg Leu Glu Val Lys Phe Gln Gly Glu Trp Gly Thr
275 280 285
Ile Cys Asp Asp Gly Trp Asp Ser Asp Asp Ala Ala Val Ala Cys Lys
290 295 300
Gln Leu Gly Cys Pro Thr Ala Val Thr Ala Ile Gly Arg Val Asn Ala
305 310 315 320
Ser Glu Gly Thr Gly His Ile Trp Leu Asp Ser Val Ser Cys His Gly
325 330 335
His Glu Ser Ala Leu Trp Gln Cys Arg His His Glu Trp Gly Lys His
340 345 350
Tyr Cys Asn His Asn Glu Asp Ala Gly Val Thr Cys Ser Asp Gly Ser
355 360 365
Asp Leu Glu Leu Arg Leu Lys Gly Gly Gly Ser His Cys Ala Gly Thr
370 375 380
Val Glu Val Glu Ile Gln Lys Leu Val Gly Lys Val Cys Asp Arg Ser
385 390 395 400
Trp Gly Leu Lys Glu Ala Asp Val Val Cys Arg Gln Leu Gly Cys Gly
405 410 415
Ser Ala Leu Lys Thr Ser Tyr Gln Val Tyr Ser Lys Thr Lys Ala Thr
420 425 430
Asn Thr Trp Leu Phe Val Ser Ser Cys Asn Gly Asn Glu Thr Ser Leu
435 440 445
Trp Asp Cys Lys Asn Trp Gln Trp Gly Gly Leu Ser Cys Asp His Tyr
450 455 460
Asp Glu Ala Lys Ile Thr Cys Ser Ala His Arg Lys Pro Arg Leu Val
465 470 475 480
Gly Gly Asp Ile Pro Cys Ser Gly Arg Val Glu Val Gln His Gly Asp
485 490 495
Thr Trp Gly Thr Val Cys Asp Ser Asp Phe Ser Leu Glu Ala Ala Ser
500 505 510
Val Leu Cys Arg Glu Leu Gln Cys Gly Thr Val Val Ser Leu Leu Gly
515 520 525
Gly Ala His Phe Gly Glu Gly Ser Gly Gln Ile Trp Ala Glu Glu Phe
530 535 540
Gln Cys Glu Gly His Glu Ser His Leu Ser Leu Cys Pro Val Ala Pro
545 550 555 560
Arg Pro Asp Gly Thr Cys Ser His Ser Arg Asp Val Gly Val Val Cys
565 570 575
Ser Arg Tyr Thr Gln Ile Arg Leu Val Asn Gly Lys Thr Pro Cys Glu
580 585 590
Gly Arg Val Glu Leu Asn Ile Leu Gly Ser Trp Gly Ser Leu Cys Asn
595 600 605
Ser His Trp Asp Met Glu Asp Ala His Val Leu Cys Gln Gln Leu Lys
610 615 620
Cys Gly Val Ala Leu Ser Ile Pro Gly Gly Ala Pro Phe Gly Lys Gly
625 630 635 640
Ser Glu Gln Val Trp Arg His Met Phe His Cys Thr Gly Thr Glu Lys
645 650 655
His Met Gly Asp Cys Ser Val Thr Ala Leu Gly Ala Ser Leu Cys Ser
660 665 670
Ser Gly Gln Val Ala Ser Val Ile Cys Ser Gly Asn Gln Ser Gln Thr
675 680 685
Leu Ser Pro Cys Asn Ser Ser Ser Ser Asp Pro Ser Ser Ser Ile Ile
690 695 700
Ser Glu Glu Asn Gly Val Ala Cys Ile Gly Ser Gly Gln Leu Arg Leu
705 710 715 720
Val Asp Gly Gly Gly Arg Cys Ala Gly Arg Val Glu Val Tyr His Glu
725 730 735
Gly Ser Trp Gly Thr Ile Cys Asp Asp Ser Trp Asp Leu Asn Asp Ala
740 745 750
His Val Val Cys Lys Gln Leu Ser Cys Gly Trp Ala Ile Asn Ala Thr
755 760 765
Gly Ser Ala His Phe Gly Glu Gly Thr Gly Pro Ile Trp Leu Asp Glu
770 775 780
Ile Asn Cys Asn Gly Lys Glu Ser His Ile Trp Gln Cys His Ser His
785 790 795 800
Gly Trp Gly Arg His Asn Cys Arg His Lys Glu Asp Ala Gly Val Ile
805 810 815
Cys Ser Glu Phe Met Ser Leu Arg Leu Ile Ser Glu Asn Ser Arg Glu
820 825 830
Thr Cys Ala Gly Arg Leu Glu Val Phe Tyr Asn Gly Ala Trp Gly Ser
835 840 845
Val Gly Lys Asn Ser Met Ser Pro Ala Thr Val Gly Val Val Cys Arg
850 855 860
Gln Leu Gly Cys Ala Asp Arg Gly Asp Ile Ser Pro Ala Ser Ser Asp
865 870 875 880
Lys Thr Val Ser Arg His Met Trp Val Asp Asn Val Gln Cys Pro Lys
885 890 895
Gly Pro Asp Thr Leu Trp Gln Cys Pro Ser Ser Pro Trp Lys Lys Arg
900 905 910
Leu Ala Ser Pro Ser Glu Glu Thr Trp Ile Thr Cys Ala Asn Lys Ile
915 920 925
Arg Leu Gln Glu Gly Asn Thr Asn Cys Ser Gly Arg Val Glu Ile Trp
930 935 940
Tyr Gly Gly Ser Trp Gly Thr Val Cys Asp Asp Ser Trp Asp Leu Glu
945 950 955 960
Asp Ala Gln Val Val Cys Arg Gln Leu Gly Cys Gly Ser Ala Leu Glu
965 970 975
Ala Gly Lys Glu Ala Ala Phe Gly Gln Gly Thr Gly Pro Ile Trp Leu
980 985 990
Asn Glu Val Lys Cys Lys Gly Asn Glu Thr Ser Leu Trp Asp Cys Pro
995 1000 1005
Ala Arg Ser Trp Gly His Ser Asp Cys Gly His Lys Glu Asp Ala Ala
1010 1015 1020
Val Thr Cys Ser Glu Ile Ala Lys Ser Arg Glu Ser Leu His Ala Thr
1025 1030 1035 1040
Gly Arg Ser Ser Phe Val Ala Leu Ala Ile Phe Gly Val Ile Leu Leu
1045 1050 1055
Ala Cys Leu Ile Ala Phe Leu Ile Trp Thr Gln Lys Arg Arg Gln Arg
1060 1065 1070
Gln Arg Leu Ser Val Phe Ser Gly Gly Glu Asn Ser Val His Gln Ile
1075 1080 1085
Gln Tyr Arg Glu Met Asn Ser Cys Leu Lys Ala Asp Glu Thr Asp Met
1090 1095 1100
Leu Asn Pro Ser Glu Asn Ser Asn Glu
1105 1110
<210> 32
<211> 1115
<212> DNA
<213> 猪(Sus scrofa)
<400> 32
tggcaaagat tgtctttaaa atctgagctc catgtcttct gctttatttc tggtgtgcct 60
ttgactccag attacagtaa atggaggact gagtataggg ctaaaaagta gagagaatgg 120
atgcatatta tctgtggtct ccaatgtgat gaatgaagta ggcaaatact caaaggaaag 180
agaaagcatg ctccaagaat tatgggttcc agaaggcaaa gtcccagaat tgtctccagg 240
gaaggacagg gaggtctaga atcggctaag cccactgtag gcagaaaaac caagaggcat 300
gaatggcttc cctttctcac ttttcactct ctggcttact cctatcatga aggaaaatat 360
tggaatcata ttctccctca ccgaaatgct attttttcag cccacaggaa acccaggctg 420
gttggagggg acattccctg ctctggtcgt gttgaagtac aacatggaga cacgtggggc 480
accgtctgtg attctgactt ctctctggag gcggccagcg tgctgtgcag ggaactacag 540
tgcggcactg tggtttccct cctgggggga gctcactttg gagaaggaag tggacagatc 600
tgggctgaag aattccagtg tgaggggcac gagtcccacc tttcactctg cccagtagca 660
ccccgccctg acgggacatg tagccacagc agggacgtcg gcgtagtctg ctcaagtgag 720
acccagggaa tgtgttcact ttgttcccat gccatgaaga gggtagggtt aggtagtcac 780
agacatcttt ttaaagccct gtctccttcc aggatacaca caaatccgct tggtgaatgg 840
caagacccca tgtgaaggaa gagtggagct caacattctt gggtcctggg ggtccctctg 900
caactctcac tgggacatgg aagatgccca tgttttatgc cagcagctta aatgtggagt 960
tgccctttct atcccgggag gagcaccttt tgggaaagga agtgagcagg tctggaggca 1020
catgtttcac tgcactggga ctgagaagca catgggagat tgttccgtca ctgctctggg 1080
cgcatcactc tgttcttcag ggcaagtggc ctctg 1115
<210> 33
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 33
ggtcgtgttg aagtacaaca 20
<210> 34
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 34
caccggtcgt gttgaagtac aaca 24
<210> 35
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 35
aaactgttgt acttcaacac gacc 24
<210> 36
<211> 100
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 36
ggucguguug aaguacaaca guuuuagagc uagaaauagc aaguuaaaau aaggcuaguc 60
cguuaucaac uugaaaaagu ggcaccgagu cggugcuuuu 100
<210> 37
<211> 963
<212> PRT
<213> 猪(Sus scrofa)
<400> 37
Met Ala Lys Gly Phe Tyr Ile Ser Lys Ala Leu Gly Ile Leu Gly Ile
1 5 10 15
Leu Leu Gly Val Ala Ala Val Ala Thr Ile Ile Ala Leu Ser Val Val
20 25 30
Tyr Ala Gln Glu Lys Asn Lys Asn Ala Glu His Val Pro Gln Ala Pro
35 40 45
Thr Ser Pro Thr Ile Thr Thr Thr Ala Ala Ile Thr Leu Asp Gln Ser
50 55 60
Lys Pro Trp Asn Arg Tyr Arg Leu Pro Thr Thr Leu Leu Pro Asp Ser
65 70 75 80
Tyr Phe Val Thr Leu Arg Pro Tyr Leu Thr Pro Asn Ala Asp Gly Leu
85 90 95
Tyr Ile Phe Lys Gly Lys Ser Ile Val Arg Leu Leu Cys Gln Glu Pro
100 105 110
Thr Asp Val Ile Ile Ile His Ser Lys Lys Leu Asn Tyr Thr Thr Gln
115 120 125
Gly His Met Val Val Leu Arg Gly Val Gly Asp Ser Gln Val Pro Glu
130 135 140
Ile Asp Arg Thr Glu Leu Val Glu Leu Thr Glu Tyr Leu Val Val His
145 150 155 160
Leu Lys Gly Ser Leu Gln Pro Gly His Met Tyr Glu Met Glu Ser Glu
165 170 175
Phe Gln Gly Glu Leu Ala Asp Asp Leu Ala Gly Phe Tyr Arg Ser Glu
180 185 190
Tyr Met Glu Gly Asn Val Lys Lys Val Leu Ala Thr Thr Gln Met Gln
195 200 205
Ser Thr Asp Ala Arg Lys Ser Phe Pro Cys Phe Asp Glu Pro Ala Met
210 215 220
Lys Ala Thr Phe Asn Ile Thr Leu Ile His Pro Asn Asn Leu Thr Ala
225 230 235 240
Leu Ser Asn Met Pro Pro Lys Gly Ser Ser Thr Pro Leu Ala Glu Asp
245 250 255
Pro Asn Trp Ser Val Thr Glu Phe Glu Thr Thr Pro Val Met Ser Thr
260 265 270
Tyr Leu Leu Ala Tyr Ile Val Ser Glu Phe Gln Ser Val Asn Glu Thr
275 280 285
Ala Gln Asn Gly Val Leu Ile Arg Ile Trp Ala Arg Pro Asn Ala Ile
290 295 300
Ala Glu Gly His Gly Met Tyr Ala Leu Asn Val Thr Gly Pro Ile Leu
305 310 315 320
Asn Phe Phe Ala Asn His Tyr Asn Thr Ser Tyr Pro Leu Pro Lys Ser
325 330 335
Asp Gln Ile Ala Leu Pro Asp Phe Asn Ala Gly Ala Met Glu Asn Trp
340 345 350
Gly Leu Val Thr Tyr Arg Glu Asn Ala Leu Leu Phe Asp Pro Gln Ser
355 360 365
Ser Ser Ile Ser Asn Lys Glu Arg Val Val Thr Val Ile Ala His Glu
370 375 380
Leu Ala His Gln Trp Phe Gly Asn Leu Val Thr Leu Ala Trp Trp Asn
385 390 395 400
Asp Leu Trp Leu Asn Glu Gly Phe Ala Ser Tyr Val Glu Tyr Leu Gly
405 410 415
Ala Asp His Ala Glu Pro Thr Trp Asn Leu Lys Asp Leu Ile Val Pro
420 425 430
Gly Asp Val Tyr Arg Val Met Ala Val Asp Ala Leu Ala Ser Ser His
435 440 445
Pro Leu Thr Thr Pro Ala Glu Glu Val Asn Thr Pro Ala Gln Ile Ser
450 455 460
Glu Met Phe Asp Ser Ile Ser Tyr Ser Lys Gly Ala Ser Val Ile Arg
465 470 475 480
Met Leu Ser Asn Phe Leu Thr Glu Asp Leu Phe Lys Glu Gly Leu Ala
485 490 495
Ser Tyr Leu His Ala Phe Ala Tyr Gln Asn Thr Thr Tyr Leu Asp Leu
500 505 510
Trp Glu His Leu Gln Lys Ala Val Asp Ala Gln Thr Ser Ile Arg Leu
515 520 525
Pro Asp Thr Val Arg Ala Ile Met Asp Arg Trp Thr Leu Gln Met Gly
530 535 540
Phe Pro Val Ile Thr Val Asp Thr Lys Thr Gly Asn Ile Ser Gln Lys
545 550 555 560
His Phe Leu Leu Asp Ser Glu Ser Asn Val Thr Arg Ser Ser Ala Phe
565 570 575
Asp Tyr Leu Trp Ile Val Pro Ile Ser Ser Ile Lys Asn Gly Val Met
580 585 590
Gln Asp His Tyr Trp Leu Arg Asp Val Ser Gln Ala Gln Asn Asp Leu
595 600 605
Phe Lys Thr Ala Ser Asp Asp Trp Val Leu Leu Asn Val Asn Val Thr
610 615 620
Gly Tyr Phe Gln Val Asn Tyr Asp Glu Asp Asn Trp Arg Met Ile Gln
625 630 635 640
His Gln Leu Gln Thr Asn Leu Ser Val Ile Pro Val Ile Asn Arg Ala
645 650 655
Gln Val Ile Tyr Asp Ser Phe Asn Leu Ala Thr Ala His Met Val Pro
660 665 670
Val Thr Leu Ala Leu Asp Asn Thr Leu Phe Leu Asn Gly Glu Lys Glu
675 680 685
Tyr Met Pro Trp Gln Ala Ala Leu Ser Ser Leu Ser Tyr Phe Ser Leu
690 695 700
Met Phe Asp Arg Ser Glu Val Tyr Gly Pro Met Lys Lys Tyr Leu Arg
705 710 715 720
Lys Gln Val Glu Pro Leu Phe Gln His Phe Glu Thr Leu Thr Lys Asn
725 730 735
Trp Thr Glu Arg Pro Glu Asn Leu Met Asp Gln Tyr Ser Glu Ile Asn
740 745 750
Ala Ile Ser Thr Ala Cys Ser Asn Gly Leu Pro Gln Cys Glu Asn Leu
755 760 765
Ala Lys Thr Leu Phe Asp Gln Trp Met Ser Asp Pro Glu Asn Asn Pro
770 775 780
Ile His Pro Asn Leu Arg Ser Thr Ile Tyr Cys Asn Ala Ile Ala Gln
785 790 795 800
Gly Gly Gln Asp Gln Trp Asp Phe Ala Trp Gly Gln Leu Gln Gln Ala
805 810 815
Gln Leu Val Asn Glu Ala Asp Lys Leu Arg Ser Ala Leu Ala Cys Ser
820 825 830
Asn Glu Val Trp Leu Leu Asn Arg Tyr Leu Gly Tyr Thr Leu Asn Pro
835 840 845
Asp Leu Ile Arg Lys Gln Asp Ala Thr Ser Thr Ile Asn Ser Ile Ala
850 855 860
Ser Asn Val Ile Gly Gln Pro Leu Ala Trp Asp Phe Val Gln Ser Asn
865 870 875 880
Trp Lys Lys Leu Phe Gln Asp Tyr Gly Gly Gly Ser Phe Ser Phe Ser
885 890 895
Asn Leu Ile Gln Gly Val Thr Arg Arg Phe Ser Ser Glu Phe Glu Leu
900 905 910
Gln Gln Leu Glu Gln Phe Lys Lys Asn Asn Met Asp Val Gly Phe Gly
915 920 925
Ser Gly Thr Arg Ala Leu Glu Gln Ala Leu Glu Lys Thr Lys Ala Asn
930 935 940
Ile Lys Trp Val Lys Glu Asn Lys Glu Val Val Leu Asn Trp Phe Ile
945 950 955 960
Glu His Ser
<210> 38
<211> 1203
<212> DNA
<213> 猪(Sus scrofa)
<400> 38
ctgccacctg cccttcagcc cttggtgggc tcccaggctc ctgcagcctg taaccagacc 60
ctgtttgctc ccagcaggca cccctgagcc gcactccgca cgctgttcct gaatctcccc 120
tccagaaccg gagcagtgtc tctacccagt tcagtgacct tcgtctgtct gagccctggt 180
taatttttgc ccagtctgca ggctgtgggg ctcctcccct tcagggatat aagcctggtc 240
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gccgagcatg tcccccaggc ccccacgtcg cccaccatca ccaccacagc cgccatcacc 480
ttggaccaga gcaagccgtg gaaccggtac cgcctaccca caacgctgtt gcctgattcc 540
tacaacgtga cgctgagacc ctacctcact cccaacgcgg atggcctgta catcttcaag 600
ggcaaaagca tcgtccgctt catctgccag gagcccaccg atgtcatcat catccatagc 660
aagaagctca actacaccac ccaggggcac atggtggtcc tgcggggcgt gggggactcc 720
caggtcccag agatcgacag gactgagctg gtagagctca ctgagtacct ggtggtccac 780
ctcaagggct cgctgcagcc cggccacatg tacgagatgg agagtgaatt ccagggggaa 840
cttgccgacg acctggcagg cttctaccgc agcgagtaca tggagggcaa cgtcaaaaag 900
taagtcaggt gggggcacac cctagatgct gaggcagagc tggatcctgg gggccaagga 960
agggcttgga ttcgggacct tggaaccttc tggagacttt ggctggcccg tcgctccatc 1020
cgcagctctg gtagagaagc tatctagaca atcagccctt tcccggagag cccccctaac 1080
cttagggagt caggggtgag tgatccaagt gcccccttgg gtagaaagga aaacaggctc 1140
tgaggacaga aatttgccca aggtctccca gctaattcag gggtggagcc tgcccggact 1200
ttg 1203
<210> 39
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 39
gaggatgccc aggatgccca 20
<210> 40
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 40
caccgaggat gcccaggatg ccca 24
<210> 41
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 41
aaactgggca tcctgggcat cctc 24
<210> 42
<211> 100
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 42
gaggaugccc aggaugccca guuuuagagc uagaaauagc aaguuaaaau aaggcuaguc 60
cguuaucaac uugaaaaagu ggcaccgagu cggugcuuuu 100

Claims (4)

1.一种用于猪MSTN、SST、INHA、CD163及pAPN五基因编辑的CRISPR/Cas9系统,其特征在于,包含Cas9表达载体、针对猪MSTN基因的gRNA表达载体、针对猪SST基因的gRNA表达载体、针对猪INHA基因的gRNA表达载体、针对猪CD163基因的gRNA表达载体以及针对猪pAPN基因的gRNA表达载体;所述的Cas9表达载体的质粒全序列如SEQ ID NO.2所示;所述的针对猪MSTN基因的gRNA表达载体表达 SEQ ID NO.18 所示的 gRNA,其靶点如 SEQ ID NO. 15 所示,该表达载体由SEQ ID NO.16和SEQ ID NO.17所示的单链DNA退火而成的双链插入载体骨架pKG-U6gRNA所得;所述的针对猪SST基因的gRNA表达载体表达 SEQ ID NO.24 所示的gRNA,其靶点如 SEQ ID NO.21 所示,该表达载体由SEQ ID NO.22和SEQ ID NO.23所示的单链DNA退火而成的双链插入载体骨架pKG-U6gRNA所得;所述的针对猪INHA基因的gRNA表达载体表达 SEQ ID NO.30 所示的 gRNA,其靶点如 SEQ ID NO.27所示,该表达载体由SEQID NO.28和SEQ ID NO.29所示的单链DNA退火而成的双链插入载体骨架pKG-U6gRNA所得;所述的针对猪CD163基因的gRNA表达载体表达 SEQ ID NO.36 所示的 gRNA,其靶点如 SEQID NO.33 所示,该表达载体由SEQ ID NO.34和SEQ ID NO.35所示的单链DNA退火而成的双链插入载体骨架pKG-U6gRNA所得;所述的针对猪pAPN基因的gRNA表达载体表达 SEQ IDNO.42 所示的 gRNA,其靶点如 SEQ ID NO.39 所示,该表达载体由SEQ ID NO.40和SEQ IDNO.41所示的单链DNA退火而成的双链插入载体骨架pKG-U6gRNA所得; 所述的载体骨架pKG-U6gRNA,其质粒全序列如SEQ ID NO.3所示。
2.权利要求1所述的CRISPR/Cas9系统在构建MSTN、SST、INHA、CD163及pAPN五基因敲除的猪重组细胞中的应用。
3.一种敲除MSTN、SST、INHA、CD163及pAPN基因的猪重组细胞,其特征在于由权利要求1所述的CRISPR/Cas9系统共转染猪原代成纤维细胞经验证后所得。
4.权利要求3所述的重组细胞在构建MSTN、SST、INHA、CD163及pAPN五基因敲除的克隆猪中的应用。
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