CN113604502A - pAPN基因第16外显子的基因编辑系统及其应用 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及基因工程领域，具体而言，提供了一种pAPN基因第16外显子的基因编辑系统及其应用。本发明提供的基因编辑系统，sgRNA对可以引导核酸内切酶分别靶向pAPN基因第16外显子的两个目标靶位点，并且进行切割编辑，实现pAPN基因第16外显子缺失69bp，同时pAPN基因的其余氨基酸正常表达。pAPN基因编辑后，细胞可以有效抵抗TGEV感染，同时其他蛋白生理活性功能不受影响，具有适用范围广、基因编辑效率高等优点。

Description

pAPN基因第16外显子的基因编辑系统及其应用
技术领域
本发明涉及基因工程领域，具体而言，涉及一种pAPN基因第16外显子的基因编辑系统及其应用。
背景技术
猪传染性肠胃炎(transmissible gastroenteritis of pigs,TGE)是由传染性肠胃炎病毒引起的急性、高度接触性胃肠道传染病。各年龄的猪均能感染，十日龄以内的仔猪最易感染，七日龄以内的仔猪感染发病死亡率可达100％。
pAPN蛋白被认为是TGEV(transmissible gastroenteritis virus)进入细胞的关键受体。至今，已有多个单位成功制备出了pAPN基因敲除猪，且攻毒实验证实pAPN基因敲除可完全抵抗TGEV感染。但是，除了在介导TGEV入侵方面发挥着重要作用外，pAPN在小肠中还发挥水解肽、酰胺等结构中的酰胺键，从而释放不同的N-中性氨基酸的作用。同时pAPN蛋白在其他组织中还参与很多重要的生理过程，例如细胞生长、免疫调节和血压调节。因此直接对pAPN进行敲除可能影响机体的其他生理功能。
因此，开发一种既能够抵抗TGEV感染、又能保持pAPN蛋白正常生理功能的基因编辑猪尤为重要，在猪抗病育种方面具有重要的科学和实际意义。
有鉴于此，特提出本发明。
发明内容
本发明的第一目的在于提供一种pAPN基因第16外显子的基因编辑系统。
本发明的第二目的在于提供上述基因编辑系统的应用。
本发明的第三目的在于提供一种猪pAPN基因第16外显子修饰的试剂盒。
本发明的第四目的在于提供一种pAPN基因第16外显子修饰的细胞的制备方法。
本发明的第五目的在于提供上述制备方法得到的细胞。
本发明的第六目的在于提供一种用于猪pAPN基因第16外显子修饰的方法。
为了实现本发明的上述目的，特采用以下技术方案：
一种pAPN基因第16外显子的基因编辑系统，包括核酸内切酶和sgRNA对；
所述sgRNA对包括pAPN-sgRNA-1和pAPN-sgRNA-2；
编码pAPN-sgRNA-1的核苷酸序列如SEQ ID NO：1所示；
编码pAPN-sgRNA-2的核苷酸序列如SEQ ID NO：2所示。
进一步地，所述核酸内切酶和sgRNA对的编辑载体包括编辑载体1和编辑载体2；
编辑载体1表达核酸内切酶和pAPN-sgRNA-1；
编辑载体2表达核酸内切酶和pAPN-sgRNA-2。
进一步地，编辑载体1和编辑载体2的载体骨架独立地包括CRISPR质粒；
优选地，所述CRISPR质粒包括CRISPR/Cas9、CRISPR/Cas9n、CRISPR/Cpf1或CRISPR/C2c2，优选为CRISPR/Cas9；
优选地，所述CRISPR/Cas9质粒包括pX330、pX260、pX334、pX335、pX458、pX459、pX461、pX462、pX551或pX552，优选为pX458。
上述基因编辑系统在修饰pAPN基因第16外显子或制备修饰pAPN基因第16外显子的产品中的应用。
一种猪pAPN基因第16外显子修饰的试剂盒，包括上述基因编辑系统。
一种pAPN基因第16外显子修饰的细胞的制备方法，将上述基因编辑系统转入目标细胞中，得到pAPN基因第16外显子修饰的细胞。
进一步地，所述细胞包括猪成纤维细胞，优选为猪胎儿成纤维细胞；
优选地，转入方法包括电穿孔法或脂质体转染法；
优选地，在基因编辑系统转入细胞后，还包括筛选和鉴定的步骤；
优选地，所述筛选为流式分选；
优选地，所述鉴定包括测序鉴定。
上述制备方法制备得到的细胞。
一种用于猪pAPN基因第16外显子修饰的方法，将本发明的细胞移植入去核的卵母细胞，得到重组克隆胚胎，将所述重组克隆胚胎移植入母体内经妊娠，获得pAPN基因第16外显子修饰的基因编辑猪；
或者通过显微注射的方法，将含有本发明的基因编辑系统微注射到猪合子期胚胎中，得到pAPN基因修饰胚胎，将所述基因编辑胚胎移植入母体内经妊娠，获得pAPN基因第16外显子定点修饰的基因编辑猪。
进一步地，基因编辑猪出生后还包括鉴定的步骤；
优选地，所述鉴定包括测序鉴定。
与现有技术相比，本发明的有益效果为：
本发明提供的pAPN基因第16外显子的基因编辑系统，其中的sgRNA对可以引导核酸内切酶分别靶向pAPN基因第16外显子的两个目标靶位点，并且进行切割编辑，实现pAPN基因第16外显子缺失69bp，同时pAPN基因的其余氨基酸正常表达。pAPN基因编辑后，细胞可以有效抵抗TGEV感染，同时其他蛋白生理活性功能不受影响，具有适用范围广、基因编辑效率高等优点。
利用上述基因编辑系统可以实现修饰细胞或猪的制备，实现修饰细胞或猪对TGEV的有效抵抗，对生产实践具有重要意义。
附图说明
为了更清楚地说明本发明具体实施方式或现有技术中的技术方案，下面将对具体实施方式或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍，显而易见地，下面描述中的附图是本发明的一些实施方式，对于本领域普通技术人员来讲，在不付出创造性劳动的前提下，还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1为本发明实施例1提供的猪pAPN基因第16外显子缺失69bp模式图；
图2为本发明实施例2提供的pAPN基因第16外显子缺失69bp修饰猪回肠上皮细胞的测序结果图；
图3为本发明实施例2中pAPN基因第16外显子缺失69bp猪回肠上皮细胞TGEV感染的qRT-PCR检测结果图；
图4为本发明实施例2中pAPN基因第16外显子缺失69bp猪回肠上皮细胞TGEV感染的间接免疫荧光(IFA)检测结果图；
图5为本发明实施例2中pAPN基因第16外显子缺失69bp猪回肠上皮细胞TGEV感染的TCID50结果图；
图6为本发明实施例3提供的pAPN基因第16外显子缺失69bp的猪成纤维细胞的测序结果图。
具体实施方式
下面将结合实施例对本发明的实施方案进行详细描述，但是本领域技术人员将会理解，下列实施例仅用于说明本发明，而不应视为限制本发明的范围。实施例中未注明具体条件者，按照常规条件或制造商建议的条件进行。
除非另有说明，本文中所用的专业与科学术语与本领域熟练人员所熟悉的意义相同。此外，任何与所记载内容相似或均等的方法或材料也可应用于本发明中。
本发明提供的pAPN基因第16外显子的基因编辑系统包括核酸内切酶和sgRNA对，其中，sgRNA对包括pAPN-sgRNA-1和pAPN-sgRNA-2，编码pAPN-sgRNA-1的核苷酸序列如SEQID NO：1所示，编码pAPN-sgRNA-2的核苷酸序列如SEQ ID NO：2所示。
编码pAPN-sgRNA-1的序列：CTAGAAATACCTCAGGAAGC(SEQ ID NO：1)；
编码pAPN-sgRNA-2的序列：CGAGCGCCCAGAAAATCTGA(SEQ ID NO：2)。
sgRNA对可以引导核酸内切酶分别靶向pAPN基因第16外显子的两个目标靶位点，并且进行切割编辑，实现pAPN基因第16外显子缺失69bp，同时pAPN基因的其余氨基酸正常表达。pAPN基因编辑后，细胞可以有效抵抗TGEV感染，同时其他蛋白生理活性功能不受影响，具有适用范围广、基因编辑效率高等优点。
利用上述基因编辑系统可以实现修饰细胞或猪的制备，实现修饰细胞或猪对TGEV的有效抵抗，对生产实践具有重要意义。
需要说明的是，核酸内切酶可以实现在sgRNA的引导下，对sgRNA识别靶序列的有效酶切，同时引导酶切后的序列重组，对其具体种类不做限定，可实现上述功能即可，例如可以为Cas9、Cas9n、Cpf1或C2c2等。pAPN基因第16外显子缺失的69bp为SEQ ID NO：3所示。
AGCAGGTCGAACCCCTCTTCCAACATTTCGAAACTCTCACTAAAAACTGGACCGAGCGCCCAGAAAATC(SEQ ID NO：3)。
在优选的实施方式中，核酸内切酶和sgRNA对的编辑载体包括编辑载体1和编辑载体2，编辑载体1表达核酸内切酶和pAPN-sgRNA-1，编辑载体2表达核酸内切酶和pAPN-sgRNA-2。
在一些实施方式中，将序列如SEQ ID NO：4-5和SEQ ID NO：6-7所示的寡核苷酸单链退火形成双链，分别与经过酶切的含有核酸内切酶的载体骨架连接，筛选获得阳性克隆的编辑载体1和编辑载体2。
pAPN-sgRNA-1-F：caccgCTAGAAATACCTCAGGAAGC(SEQ ID NO：4)；
pAPN-sgRNA-1-R：aaacGCTTCCTGAGGTATTTCTAGc(SEQ ID NO：5)；
pAPN-sgRNA-2-F：caccgCGAGCGCCCAGAAAATCTGA(SEQ ID NO：6)；
pAPN-sgRNA-2-R：aaacTCAGATTTTCTGGGCGCTCGc(SEQ ID NO：7)。
在优选的实施方式中，编辑载体1和编辑载体2的载体骨架独立地包括CRISPR质粒；CRISPR质粒例如为CRISPR/Cas9、CRISPR/Cas9n、CRISPR/Cpf1或CRISPR/C2c2，优选为CRISPR/Cas9；CRISPR/Cas9质粒例如为pX330、pX260、pX334、pX335、pX458、pX459、pX461、pX462、pX551或pX552，优选为pX458。
CRISPR/Cas9和pX458普适性广，通用性较强，且产品成熟度较高，使用其作为基因编辑载体骨架，能够达到更高的酶切效率。
本发明还提供基因编辑系统在修饰pAPN基因第16外显子或制备修饰pAPN基因第16外显子的产品中的应用。同时提供猪pAPN基因第16外显子修饰的试剂盒。
此外，基于本发明的基因编辑系统，还可以提供pAPN基因第16外显子修饰的细胞及其制备方法，利用本发明提供的基因编辑系统对目标细胞进行编辑，实现pAPN基因第16外显子缺失69bp。其中，目标系统可以为猪成纤维细胞，优选为猪胎儿成纤维细胞；基因编辑系统导入细胞的方法可以为电穿孔法或脂质体转染法。
在优选的实施方式中，在基因编辑系统转入细胞后，还包括筛选和鉴定的步骤；筛选优选为流式分选，鉴定优选为测序鉴定。
最后，本发明提供一种基因编辑猪的制备方法，该基因编辑猪可以对TGEV有效抵抗，同时不影响其余功能：将本发明的细胞移植入去核的卵母细胞，得到重组克隆胚胎，将重组克隆胚胎移植入母体内经妊娠，获得pAPN基因第16外显子修饰的基因编辑猪；
或者通过显微注射的方法，将含有本发明的基因编辑系统微注射到猪合子期胚胎中，得到pAPN基因修饰胚胎，将所述基因编辑胚胎移植入母体内经妊娠，获得pAPN基因第16外显子定点修饰的基因编辑猪。
对于细胞或猪的鉴定可以采用如下方式：提取样本DNA，使用SEQ ID NO：8-9所示的上下游引物对提取的DNA基因组进行扩增，对扩增产物进行测序，测序结果确定是否定点修饰成功。
pAPN-TY-F2：CAAGGATTTGTGGAGGAGAA(SEQ ID NO：8)；
pAPN-TY-R2：GCTGAGCGGAGTTTGTCG(SEQ ID NO：9)。
下面通过具体的实施例进一步说明本发明，但是，应当理解为，这些实施例仅仅是用于更详细地说明之用，而不应理解为用于以任何形式限制本发明。
主要试剂：
分离猪胎儿成纤维细胞用的胶原酶type IV购自sigma；
细胞培养用的DMEM、FBS、PS、NEAA、Glutamine、Trypsase均购自Gibco；
提取细胞和耳组织DNA试剂盒购自天根生化科技有限公司；
引物由北京擎科生物科技有限公司合成；
用于PCR的KOD FX PCR酶购自TOYOBO。
主要仪器：
CO2培养箱(Thermo Scientific,3111)；荧光倒置显微镜(ZEISS,observerA1)；PCR仪(BIO-RID,C1000 Touch)；凝胶成像系统(BIO-RID,Universal HoodⅡ)；显微操作系统(Eppendorf，Celltram vario)；细胞流式分选仪(BD，Aria III)。
实施例1重组质粒pX458-pAPN-sgRNA载体的构建
1.首先锁定编码猪pAPN基因的第16外显子待编辑位点附近序列，利用sgRNA分析工具CRISPOR(crispor.tefor.net)选择一个分值较高的打靶位点，其序列如SEQ ID NO：1和SEQ ID NO：2所示。根据sgRNA序列合成如SEQ ID NO：4和SEQ ID NO：5；SEQ ID NO：6和SEQ ID NO：7所示的互补配对的寡聚核苷酸序列。猪pAPN基因第16外显子缺失69bp(SEQ IDNO：3)模式图如图1所示。
2.构建的靶向pAPN基因的第16外显子编辑位点附近序列的CRISPR/Cas9重组质粒，命名为pX458-pAPN-sgRNA-1和pX458-pAPN-sgRNA-2。将合成的寡聚核苷酸在98℃条件下处理10min，然后自然冷却至室温的条件下对其进行退火；用限制性内切酶Bbs I对含有Cas9序列的PX458骨架载体在37℃条件下酶切2h，切胶回收线性化片段后，与退火的寡聚核苷酸16℃连接1h，随后转化Top10或DH5α感受态细胞，涂布于含氨苄的LB平板生长，挑取单菌落扩大培养并测序，测序引物为SEQ ID NO：10所示的U6-FWD(U6-FWD:GAGGGCCTATTTCCCATGATT)。序列正确，进行扩大培养后，用质粒去内毒素大提试剂盒(Endo-Free Plasmid Maxi Kit)上提供的方法，提取pX458-pAPN-sgRNA-1质粒和pX458-pAPN-sgRNA-2质粒，所提的质粒用于细胞的转染。
实施例2 pAPN基因第16外显子缺失69bp猪回肠上皮细胞单克隆的建立及功能验证
1.pAPN基因第16外显子缺失69bp猪回肠上皮细胞的建立
将野生型猪回肠上皮细胞(Immortal Pig Intestinal-2I wild type,IPI-2I-WT)提前两天复苏至10cm平皿中，当细胞达到70-80％汇合度时即可进行细胞转染。将5μgpX458-pAPN-sgRNA-1质粒和5μgpX458-pAPN-sgRNA-2质粒共转染入IPI-2I-WT细胞中，转染步骤严格按照Basic Primary Nucleofector Kit(Lonza)试剂盒说明书进行操作。
电转36h后，将细胞收集起来，通过流式分选仪分选单个的阳性细胞到96孔板中并进行培养，每3天更换一次培养液。分选后的细胞大约培养10天左右，可以观察到96孔板中的细胞长满，然后将长满的单克隆细胞进行传代培养至48孔板，待48孔板细胞长满，取部分细胞用于提取基因组鉴定基因型。
对所挑取的细胞单克隆进行鉴定：以提取的细胞基因组为模板，用核苷酸序列如SEQ ID NO：8和SEQ ID NO：9所示的上下游引物对提取的DNA基因组进行扩增。扩增条件为94℃5min；98℃30s，62.6℃30s，68℃100s，34个循环；72℃，5min。2％琼脂糖凝胶电泳观察条带，PCR产物送北京擎科生物科技有限公司测序。细胞测序结果如图2所示，筛选pA PN基因第16外显子缺失69bp的IPI-2I(IPI-2I-69KO)细胞用作TGEV感染试验时的供体细胞。
2.pAPN基因第16外显子缺失69bp猪回肠上皮细胞的功能验证
将上述获得的IPI-2I-69KO细胞进行TGEV感染试验。利用qRT-PCR检测TGEV基因组在细胞中拷贝数，分别在IPI-2I-WT和IPI-2I-69KO细胞接种TGEV病毒株(MOI＝1)，Mock组为IPI-2I-WT细胞未接毒空白对照组。感染12h和24h后收集细胞，提取RNA检测细胞中TGEV病毒拷贝数。qRT-PCR结果如图3，结果表明，TGEV基因组RNA在IPI-2I-WT细胞上大量复制，与IPI-2I-WT细胞相比较，IPI-2I-69KO细胞中TGEV基因组RNA拷贝数极显著降低(***P<0.001)。
利用间接免疫荧光(IFA)检测细胞中TGEV感染情况，分别在IPI-2I-WT和IPI-2I-69KO细胞接种TGEV病毒株(MOI＝1)，Mock组为IPI-2I-WT细胞未接毒空白对照组。感染12h后进行间接免疫荧光检测，IFA结果如图4所示，结果表明，IPI-2I-WT细胞中TGEV大量感染，与IPI-2I-WT细胞相比较，IPI-2I-69KO细胞中TGEV感染量明显减少。
利用TCID50检测细胞中TGEV病毒滴度，分别在IPI-2I-WT和IPI-2I-69KO细胞分别接种TGEV病毒株(MOI＝1)，Mock组为IPI-2I-WT细胞未接毒空白对照组。感染12h和24h后收集细胞上清液，随后利用LLC-PK1细胞分别检测上清液中TGEV病毒滴度。TCID50结果如图5所示，结果表明，细胞接毒后，IPI-2I-WT细胞中TGEV病毒滴度较高，与IPI-2I-WT细胞相比，IPI-2I-69KO细胞中病毒滴度极显著降低(***P<0.001)。
综上结果表明，pAPN基因第16外显子缺失69bp猪回肠上皮细胞可以有效抵抗TGEV感染，说明pAPN基因第16外显子该69bp为TGEV感染的关键区域，pAPN基因第16外显子缺失69bp后可有效抵抗TGEV感染。
实施例3 pAPN基因第16外显子缺失69bp猪成纤维细胞单克隆的建立
1.猪胎儿成纤维细胞的制备
将猪35日龄胚胎去除头、尾、四肢、内脏和骨头，并将血液清理干净。用弯头眼科剪持续剪切胎儿30min保证充分剪碎，将剪碎的胎儿组织用剪头的蓝枪头吸取到15mL离心管中，加入5mL完全培养基，自然沉降数分钟后除去上面溶液，并在下层组织块中加入几滴胎牛血清，用尖端1cm处弯曲的15cm玻璃巴氏管吸出，平铺于两个T75培养瓶中，瓶底朝上放置，并在对侧加入15mL全培养液，于6-8h后小心翻转培养瓶，将组织块浸入培养液中，每两天换一次液，待细胞长满T75培养瓶后冻存备用。其中，猪为中国农业科学院北京畜牧兽医研究所基地猪场饲养的猪。
2.细胞转染
转染前一天将原代猪胎儿成纤维细胞复苏至10cm平皿中，当细胞达到70-80％汇合度时即可进行细胞转染。将5μg pX458-pAPN-sgRNA-1质粒和5μg pX458-pAPN-sgRNA-2质粒共转染入猪胎儿成纤维细胞中，转染步骤严格按照Basic Primary FibroblastsNucleofector Kit(Lonza)试剂盒说明书进行操作。
3.阳性单克隆细胞的筛选
电转36h后，将细胞收集起来，通过流式分选仪分选单个的阳性细胞到96孔板中并进行培养，每3天更换一次培养液。分选后的细胞大约培养10天左右，可以观察到96孔板中的细胞长满，然后将长满的单克隆细胞进行传代培养至48孔板，待48孔板细胞长满，取部分细胞用于提取基因组鉴定基因型。
4.阳性单克隆细胞的鉴定
对所挑取的细胞单克隆进行鉴定：以提取的细胞基因组为模板，用核苷酸序列如SEQ ID NO：8和SEQ ID NO：9所示的上下游引物对提取的DNA基因组进行扩增。扩增条件为94℃5min；98℃30s，62.6℃30s，68℃100s，34个循环；72℃，5min。2％琼脂糖凝胶电泳观察条带，PCR产物送北京天一辉远公司测序。根据测序，筛选pAPN基因第16外显子缺失69bp的猪成纤维细胞用作核移植时的供体细胞。
5.实验结果
测序结果显示，本实施例成功的获得了多株pAPN基因第16外显子缺失69bp的猪成纤维细胞，其效率为34.3％。阳性细胞的测序结果如图6所示。
实施例4体细胞核移植技术制备pAPN基因第16外显子缺失69bp的基因编辑猪
以实施例3获得的纯合基因编辑的阳性细胞作为核移植供体细胞，以体外成熟40h的去核后的猪卵母细胞为核移植受体细胞，将核移植供体细胞移入去核的卵母细胞，经电融合与激活，构建成重组克隆胚胎，挑选发育状态良好的克隆重组胚胎用手术法移入自然发情的经产大白母猪子宫内进行妊娠，其中手术法胚胎移植步骤为：受体母猪静脉注射舒泰(Zoletil)麻醉剂进行诱导麻醉，注射剂量为5mg/kg体重。麻醉后将受体母猪移至手术架上仰卧保定，并进行呼吸麻醉(异氟烷浓度为3％～4％)。受体母猪腹中线做一个长约10cm的手术切口，曝露卵巢、输卵管及子宫，用胚胎移植玻璃管沿输卵管伞部进入约5cm，将发育状态良好克隆重组胚胎移植到输卵管壶腹部-峡部结合处。胚胎移植后，技术人员定期观察，并用B型超声波检查受体母猪妊娠情况。
小猪出生后，剪取耳组织并提取基因组DNA，使用上述SEQ ID NO：8和SEQ ID NO：9的核苷酸序列进行PCR扩增，PCR扩增产物测序检测基因型。
尽管已用具体实施例来说明和描述了本发明，然而应意识到，在不背离本发明的精神和范围的情况下可以作出许多其它的更改和修改。因此，这意味着在所附权利要求中包括属于本发明范围内的所有这些变化和修改。
SEQUENCE LISTING
<110> 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所
<120> pAPN基因第16外显子的基因编辑系统及其应用
<160> 10
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 1
ctagaaatac ctcaggaagc 20
<210> 2
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 2
cgagcgccca gaaaatctga 20
<210> 3
<211> 69
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 3
agcaggtcga acccctcttc caacatttcg aaactctcac taaaaactgg accgagcgcc 60
cagaaaatc 69
<210> 4
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 4
caccgctaga aatacctcag gaagc 25
<210> 5
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 5
aaacgcttcc tgaggtattt ctagc 25
<210> 6
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 6
caccgcgagc gcccagaaaa tctga 25
<210> 7
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 7
aaactcagat tttctgggcg ctcgc 25
<210> 8
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 8
caaggatttg tggaggagaa 20
<210> 9
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 9
gctgagcgga gtttgtcg 18
<210> 10
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 10
gagggcctat ttcccatgat t 21

Claims (10)

1.一种pAPN基因第16外显子的基因编辑系统，其特征在于，包括核酸内切酶和sgRNA对；
所述sgRNA对包括pAPN-sgRNA-1和pAPN-sgRNA-2；
编码pAPN-sgRNA-1的核苷酸序列如SEQ ID NO：1所示；
编码pAPN-sgRNA-2的核苷酸序列如SEQ ID NO：2所示。
2.根据权利要求1所述的基因编辑系统，其特征在于，所述核酸内切酶和sgRNA对的编辑载体包括编辑载体1和编辑载体2；
编辑载体1表达核酸内切酶和pAPN-sgRNA-1；
编辑载体2表达核酸内切酶和pAPN-sgRNA-2。
3.根据权利要求2所述的基因编辑系统，其特征在于，编辑载体1和编辑载体2的载体骨架独立地包括CRISPR质粒；
优选地，所述CRISPR质粒包括CRISPR/Cas9、CRISPR/Cas9n、CRISPR/Cpf1或CRISPR/C2c2，优选为CRISPR/Cas9；
优选地，所述CRISPR/Cas9质粒包括pX330、pX260、pX334、pX335、pX458、pX459、pX461、pX462、pX551或pX552，优选为pX458。
4.权利要求1-3任一项所述的基因编辑系统在修饰pAPN基因第16外显子或制备修饰pAPN基因第16外显子的产品中的应用。
5.一种猪pAPN基因第16外显子修饰的试剂盒，其特征在于，包括权利要求1-3任一项所述的基因编辑系统。
6.一种pAPN基因第16外显子修饰的细胞的制备方法，其特征在于，将权利要求1-3任一项所述的基因编辑系统转入目标细胞中，得到pAPN基因第16外显子修饰的细胞。
7.根据权利要求6所述的细胞的制备方法，其特征在于，所述细胞包括猪成纤维细胞，优选为猪胎儿成纤维细胞；
优选地，转入方法包括电穿孔法或脂质体转染法；
优选地，在基因编辑系统转入细胞后，还包括筛选和鉴定的步骤；
优选地，所述筛选为流式分选；
优选地，所述鉴定包括测序鉴定。
8.通过权利要求6或7所述的制备方法制备得到的细胞。
9.一种用于猪pAPN基因第16外显子修饰的方法，其特征在于，将权利要求8所述的细胞移植入去核的卵母细胞，得到重组克隆胚胎，将所述重组克隆胚胎移植入母体内经妊娠，获得pAPN基因第16外显子修饰的基因编辑猪；
或者通过显微注射的方法，将含有权利要求1-3任一项所述的基因编辑系统微注射到猪合子期胚胎中，得到pAPN基因修饰胚胎，将所述基因编辑胚胎移植入母体内经妊娠，获得pAPN基因第16外显子定点修饰的基因编辑猪。
10.根据权利要求9所述的方法，其特征在于，基因编辑猪出生后还包括鉴定的步骤；
优选地，所述鉴定包括测序鉴定。
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