CN112680453B - Crispr系统及其在构建stxbp1突变的癫痫性脑病克隆猪核供体细胞中的应用 - Google Patents

Crispr系统及其在构建stxbp1突变的癫痫性脑病克隆猪核供体细胞中的应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了CRISPR系统及其在构建STXBP1突变的癫痫性脑病克隆猪核供体细胞中的应用。一种用于猪STXBP1基因编辑的CRISPR/Cas9系统,包含序列如SEQ ID NO.2所示的Cas9高效表达载体pKG‑GE3和针对猪STXBP1基因的gRNA表达载体,该载体以序列如SEQ ID NO.3所示的pKG‑U6gRNA为载体骨架,表达序列如SEQ ID NO.35所示的gRNA。采用本发明筛选的gRNA联合改造的Cas9高效表达载体进行基因编辑,编辑效率比原载体有了显著的提高。

Description

CRISPR系统及其在构建STXBP1突变的癫痫性脑病克隆猪核供体细胞中的应用
技术领域
本发明属于生物技术领域,具体涉及用于STXBP1基因编辑的CRISPR/Cas9系统及其应用。
背景技术
癫痫(Epilepsy)即俗称的“羊角风”或“羊癫风”,是大脑神经元突发性异常放电导致短暂的大脑功能障碍的一种慢性疾病。由于异常放电的起始部位和传递方式的不同,癫痫发作的临床表现复杂多样,可表现为发作性运动、感觉、自主神经、意识及精神障碍等症状。癫痫患者经过正规的抗癫痫药物治疗,约70%的患者其发作是可以得到控制的,其中50%~60%的患者经2~5年的治疗可以痊愈,患者可以和正常人一样地工作和生活。癫痫的发病机制非常复杂,中枢神经系统兴奋与抑制间的不平衡导致癫痫发作,其主要与离子通道神经递质及神经胶质细胞的改变有关。
癫痫性脑病(Epileptic encephalopathies,EEs)是癫痫性异常导致进展性脑部功能障碍,是一种儿童期常见的脑部疾病,以多种严重的癫痫症候群为特征的神经系统功能紊乱性疾病。EEs是发生在婴儿和儿童的严重痉挛性疾病,首次发病多见儿童、青年时期,男性高于女性,儿童死亡率是成人的10倍,然而病因、发病机制仍不十分明确,年龄依赖性是EEs的共同特征,早发性癫痫性脑病(Early-onset epileptic encephalopathies,EOEE)包括早发性肌阵挛脑病(Early myoclonic epileptic encephalopathy,EMEE)、大田原综合征(Ohtahara syndrome,OS)、婴儿恶性游走性部分性癫痫(Malignant migratingpartial seizures in infancy,MMPSI)、West综合征、Lennox-Gastaut(LGS)综合征及Dravet综合征等。
大田原综合征是由日本学者大田原(Ohtahara)于1977年首次报道,是一种早期婴儿型癫痫性脑病,伴抑制-爆发波型脑电图改变,是年龄依赖性癫痫性脑病的一种,其主要特点为3个月以内特别是新生儿期发病,频繁的成串或单次强直痉挛发作,多数在清醒和睡眠中均可见到。患儿多有非对称性先天性脑结构异常,治疗困难,发作难以控制,据国外文献报导,约1/3的患儿在两岁内死亡,存活到学龄期的患儿多伴有严重的精神、运动发育障碍,预后极差。
突触融合蛋白结合蛋白1(STXBP1,也称为MUNC18-1)是突触前神经递质释放机制的重要组成部分,由STXBP1基因编码,在神经元中表达,调节神经元钙通道敏感性,负责突触间神经递质的释放,促进突触囊泡的沉淀与膜融合,参与突触囊泡循环。在人类中,STXBP1杂合突变导致了几种最严重的癫痫性脑病,包括大田原综合征、West综合征、Lennox-Gastaut综合征、Dravet综合征以及其他类型的早发性癫痫性脑病。此外,STXBP1是散发性智力障碍和发育障碍中最常见的突变基因之一。所有STXBP1脑病患者均表现出智力残疾,大部分为中度至重度,并且95%的患者患有癫痫病。超过90%的患者患有运动障碍,例如肌张力障碍,痉挛,共济失调,肌张力低下和震颤。已有研究结果显示STXBP1脑病主要是由单倍体不足引起的,超过60%的报道突变是缺失、无意义突变、移码或剪接位点变异,错义变体使蛋白质不稳定并引起聚集以进一步减少野生型(WT)蛋白质水平。因此,本发明基于STXBP1基因突变开发了克隆猪核移植供体细胞,后期通过体细胞核移植动物克隆技术培育出活体猪模型,体内STXBP1的部分功能丧失将为模拟STXBP1脑病和研究其发病机理提供研究工具,并为相关药物的开发及临床应用提供有效的实验数据,也为成功治疗人类相关疾病奠定基础。
基因编辑是近年来不断取得重大发展的一种生物技术,其包括从基于同源重组的基因编辑到基于核酸酶的ZFN、TALEN、CRISPR/Cas9等编辑技术,其中CRISPR/Cas9技术是当前最先进的基因编辑技术。目前,基因编辑技术被越来越多地应用到动物模型的制作上。猪作为大动物,是人类长期以来主要的肉食供应动物,其体型大小和生理功能与人类近似,易于大规模繁殖饲养,而且在伦理道德及动物保护等方面要求较低,是理想的人类疾病模型动物。
发明内容
本发明的目的是针对现有技术的不足,提供猪STXBP1基因的gRNA及其表达载体。
本发明的另一目的是提供一种用于猪STXBP1基因编辑的CRISPR/Cas9系统及其应用。
本发明的又一目的是提供一种重组细胞。
本发明的目的可通过以下技术方案实现:
猪STXBP1基因的gRNA靶点,其特征在于序列如SEQ ID NO.17所示。
猪STXBP1基因的gRNA,其特征在于序列如SEQ ID NO.35所示。
一种针对猪STXBP1基因的gRNA表达载体,该表达载体表达SEQ ID NO.35所述的gRNA。
作为本发明的一种优选,该表达载体的载体骨架为pKG-U6gRNA,质粒全序列如SEQID NO.3所示。
作为本发明的进一步优选,所述的gRNA表达载体是将SEQ ID NO.23和SEQ IDNO.24所示的单链DNA退火得到的具有粘性末端的双链DNA分子插入载体骨架pKG-U6gRNA的BbsI限制性内切酶位点所得。
一种用于猪STXBP1基因编辑的CRISPR/Cas9系统,包含本发明所述的gRNA表达载体和Cas9表达载体;所述的Cas9表达载体为pU6gRNA-eEF1a-mNLS-hSpCas9-EGFP-PURO,该质粒全序列如SEQ ID NO.2所示。
为了增加Cas9质粒的基因编辑能力,申请人在购自addgene(Plasmid#42230,fromZhang Feng lab)pX330-U6-Chimeric_BB-CBh-hSpCas9(简称PX330)载体的基础上进行改造得到pU6gRNA-eEF1a-mNLS-hSpCas9-EGFP-PURO(简称质粒pKG-GE3)。PX330的图谱如图1,改造方式如下:
1)去除原载体gRNA骨架中多余无效的序列;
2)改造启动子:将原有启动子(chickenβ-actin启动子)改造为具更高表达活性的EF1a启动子,增加Cas9基因的蛋白表达能力;
3)增加核定位信号:在Cas9的N端及C端均增加核定位信号编码序列(NLS),增加Cas9的核定位能力;
4)增加双筛选标记:原载体无任何筛选标记,不利于阳性转化细胞的筛选和富集,在Cas9的C端,插入P2A-EGFP-T2A-PURO,赋予载体荧光和抗性筛选能力;
5)插入WPRE和3’LTR等调控基因表达的序列:在基因读码框最后插入WPRE、3’LTR等序列,可增强Cas9基因的蛋白翻译能力。
改造后载体pU6gRNA-eEF1a-mNLS-hSpCas9-EGFP-PURO(简称pKG-GE3)及改造位点如图2,质粒全序列如SEQ ID NO:2所示;pKG-GE3的主要元件有:
1)gRNA表达元件:U6 gRNA scaffold;
2)启动子:EF1a启动子和CMV增强子;
3)含多个NLS的Cas9基因:含N端和C端多核定位信号(NLS)的Cas9基因;
4)筛选标记基因:荧光和抗性双筛选标记元件P2A-EGFP-T2A-PURO;
5)增强翻译的元件:WPRE和3’LTR增强Cas9及筛选标记基因的翻译效率;
6)转录终止信号:bGH polyA signal;
7)载体骨架:包括Amp抗性元件和ori复制子等。
质粒pKG-GE3中,具有特异融合基因;所述特异融合基因编码特异融合蛋白;
所述特异融合蛋白自N端至C端依次包括如下元件:两个核定位信号(NLS)、Cas9蛋白、两个核定位信号、自剪切多肽P2A、荧光报告蛋白、自裂解多肽T2A、抗性筛选标记蛋白;
质粒pKG-GE3中,由EF1a启动子启动所述特异融合基因的表达;
质粒pKG-GE3中,所述特异融合基因下游具有WPRE序列元件、3’LTR序列元件和bGHpoly(A)signal序列元件。
质粒pKG-GE3中,依次具有如下元件:CMV增强子、EF1a启动子、所述特异融合基因、WPRE序列元件、3’LTR序列元件、bGH poly(A)signal序列元件。
所述特异融合蛋白中,Cas9蛋白上游的两个核定位信号为SV40核定位信号,Cas9蛋白下游的两个核定位信号为nucleoplasmin核定位信号。
所述特异融合蛋白中,荧光报告蛋白具体可为EGFP蛋白。
所述特异融合蛋白中,抗性筛选标记蛋白具体可为Puromycin蛋白。
自剪切多肽P2A的氨基酸序列为“ATNFSLLKQAGDVEENPGP”(发生自剪切的断裂位置为C端开始第一个氨基酸残基和第二个氨基酸残基之间)。
自裂解多肽T2A的氨基酸序列为“EGRGSLLTCGDVEENPGP”(发生自裂解的断裂位置为C端开始第一个氨基酸残基和第二个氨基酸残基之间)。
特异融合基因具体如SEQ ID NO:2中第911-6706位核苷酸所示。
CMV增强子如SEQ ID NO:2中第395-680位核苷酸所示。
EF1a启动子如SEQ ID NO:2中第682-890位核苷酸所示。
WPRE序列元件如SEQ ID NO:2第6722-7310位核苷酸所示。
3’LTR序列元件如SEQ ID NO:2中第7382-7615位核苷酸所示。
bGH poly(A)signal序列元件如SEQ ID NO:2中第7647-7871位核苷酸所示。
作为本发明的一种优选,所述的gRNA表达载体和Cas9表达载体的摩尔比为1~3:1,进一步优选3:1。
本发明所述的CRISPR/Cas9系统在构建猪STXBP1基因突变的癫痫性脑病克隆猪核供体细胞中的应用。
一种重组细胞,由本发明所述的CRISPR/Cas9系统共转染猪原代成纤维细胞经验证后所得。
本发明所述的重组细胞在构建STXBP1基因突变的克隆猪中的应用。
与现有技术相比,本发明至少具有如下有益效果:
(1)本发明研究对象(猪)比其他动物(大小鼠、灵长类)具有更好的应用性。
大小鼠等啮齿类动物不论从生理、病理及体型上,均与人相差巨大,无法真实地模拟人类正常的生理、病理状态。灵长类动物扩繁速度慢、数量少、成本高,动物保护及伦理等方面的要求也较高。而猪就没有上述缺点,同时猪的克隆技术非常成熟,饲养及克隆成本较灵长类低得多。因此猪是非常适合作为人类疾病模型的动物。
(2)本发明中经过实验验证改造的pU6gRNA-eEF1a-mNLS-hSpCas9-EGFP-PURO载体相对改造前的pX330载体,更换了更强的启动子及添加了增强蛋白翻译的元件,提高了Cas9的表达,并且增加了核定位信号个数,提高了Cas9蛋白的核定位能力,具有更高的基因编辑效率。本发明还在载体中加入了荧光标记及抗性标记,使其更方便运用于载体阳性转化细胞的筛选及富集。采用本发明筛选的gRNA联合改造的Cas9高效表达载体进行基因编辑,编辑效率比原载体提高100%以上。
(3)本发明针对STXBP1基因的不同靶点gRNA设计了相应的表达载体,通过筛选获得具有较高编辑效率的gRNA及其表达载体。配合本发明改造的Cas9高效表达载体进行基因编辑,通过靶标基因PCR产物测序结果可分析出所获细胞的基因型,获得靶标基因突变的概率为40%,大大优于使用胚胎注射技术的模型制备方法(即受精卵注射基因编辑材料)中获得突变的概率。
(4)利用本发明所得到的突变型单细胞克隆株进行体细胞核移植动物克隆可直接得到含靶标基因突变的克隆猪,并且该突变可稳定遗传。
本发明采用技术难度大、挑战性高的原代细胞体外编辑并筛选阳性编辑单细胞克隆的方法,后期再通过体细胞核移植动物克隆技术直接获得相应疾病模型猪,可大大缩短模型猪制作周期并节省人力、物力、财力。
附图说明
图1为质粒pX330的结构示意图。
图2为质粒pU6gRNACas9的结构示意图。
图3为pU6gRNA-eEF1a Cas9载体的结构图谱。
图4为pU6gRNA-eEF1a Cas9+nNLS载体图谱。
图5为质粒pKG-GE3的结构示意图。
图6为质粒pKG-U6gRNA的结构示意图。
图7为将20bp左右的DNA分子(用于转录形成gRNA的靶序列结合区)插入质粒pKG-U6gRNA的示意图。
图8为实施例2中步骤2.3.3的测序峰图。
图9为实施例2中步骤2.4.3的测序峰图。
图10为实施例3中步骤3.2.3以猪的基因组DNA为模板分别采用STXBP1-E14g-F3/STXBP1-E14g-R360(组1)、STXBP1-E14g-F3/STXBP1-E14g-R423(组2)、STXBP1-E14g-F50/STXBP1-E14g-R360(组3)、STXBP1-E14g-F50/STXBP1-E14g-R423(组4)组成的引物对进行PCR扩增后的电泳图。
图11为实施例3中步骤3.2.4以18只猪的基因组DNA为模板采用STXBP1-E14g-F50/STXBP1-E14g-R360组成的引物对进行PCR扩增后的电泳图。
图12为实施例3中步骤3.6.4以基因组DNA为模板采用STXBP1-E14g-F50/STXBP1-E14g-R360组成的引物对进行PCR扩增后的电泳图。
图13为实施例4中步骤4.4.4以基因组DNA为模板采用STXBP1-E14g-F50/STXBP1-E14g-R360组成的引物对进行PCR扩增后的电泳图。
图14为实施例5中步骤5.4.4以基因组DNA为模板采用STXBP1-E14g-F50/STXBP1-E14g-R360组成的引物对进行PCR扩增后的电泳图。
图15为实施例5中步骤5.4.5判定靶基因为野生型的示例性测序峰图。
图16为实施例5中步骤5.4.5判定靶基因为双等位相同变异的纯合突变型示例性测序峰图。
图17为实施例5中步骤5.4.5判定靶基因为杂合突变型的示例性测序峰图。
图18为实施例5中步骤5.4.5判定靶基因为双等位不同变异的纯合突变型示例性测序峰图。
具体实施方式
实施例1、质粒的构建
1.1 构建质粒pU6gRNA eEF1a-mNLS-hSpCas9-EGFP-PURO(简称质粒pKG-GE3)
原始出发质粒为pX330-U6-Chimeric_BB-CBh-hSpCas9(简称质粒pX330),序列如SEQ ID NO:1所示。质粒pX330的结构示意图见图1。SEQ ID NO:1中,第440-725位核苷酸组成CMV增强子,第727-1208位核苷酸组成chickenβ-actin启动子,第1304-1324位核苷酸编码SV40核定位信号(NLS),第1325-5449位核苷酸编码Cas9蛋白,第5450-5497位核苷酸编码nucleoplasmin核定位信号(NLS)。
以pX330质粒为基础,构建质粒pU6gRNA eEF1a-mNLS-hSpCas9-EGFP-PURO(图5),简称质粒pKG-GE3,核苷酸如SEQ ID NO:2所示。与质粒pX330相比,质粒pKG-GE3主要进行了如下改造:①去除残留的gRNA骨架序列(GTTTTAGAGCTAGAAATAGCAAGTTAAAATAAGGCTAGTCCGTTTT),降低干扰;②将原有chickenβ-actin启动子改造为具更高表达活性的EF1a启动子,增加Cas9基因的蛋白表达能力;③在Cas9基因的上游和下游均增加核定位信号编码基因(NLS),增加Cas9蛋白的核定位能力;④原质粒无任何真核细胞筛选标记,不利于阳性转化细胞的筛选和富集,依次在Cas9基因的下游插入P2A-EGFP-T2A-PURO编码基因,赋予载体荧光和真核细胞抗性筛选能力;⑤插入WPRE元件和3’LTR序列元件,增强Cas9基因的蛋白翻译能力。
pKG-GE3质粒构建方法如下:
(1)去除gRNA骨架中多余无效的序列
质粒pX330用BbsI、XbaI酶切,回收载体片段(约8313bp左右),利用多片段重组法合成插入片段175bp(SEQ ID NO:4),与回收后载体片段重组得到pU6gRNACas9载体(图2)。
(2)改造启动子及增强子
对构建好的pU6gRNACas9载体,用XbaI和AgeI内切酶去除启动子(chickenβ-actin启动子)及增强子序列(CMV增强子),回收线性载体序列约7650bp,并利用多片段重组法合成554bp的包含CMV增强子及EF1a启动子的序列(SEQ ID NO:5),与酶切后载体pU6gRNACas9重组得到pU6gRNA-eEF1a Cas9载体(图3)。
(3)Cas9基因N端增加NLS序列
将构建好的载体pU6gRNA-eEF1a Cas9使用AgeI、BglII酶切,回收7786bp载体序列,并将增加了NLS的序列补充到酶切位点,即利用多片段重组法合成447bp的包括2个核定位信号及部分切除的Cas9编码序列(SEQ ID NO:6),重组得到pU6gRNA-eEF1a Cas9+nNLS载体(图4)。
(4)Cas9基因C端加入NLS、P2A-EGFP-T2A-PURO、WPRE-3’LTR-bGH polyA signal
以上构建好的载体命名为pU6gRNA-eEF1a Cas9+nNLS,使用FseI、SbfI酶切,回收载体序列7781bp,利用多片段重组法合成2727bp的包括NLS-P2A-EGFP-T2A-PURO-WPRE-3’LTR-bGH polyA signal的片段(SEQ ID NO:7),与载体片段重组得到载体pU6gRNA-eEF1a-mNLS-hSpCas9-EGFP-PURO,简称pKG-GE3,质粒图谱如图5,核苷酸序列见SEQ ID NO:2。
SEQ ID NO:2中,第395-680位核苷酸组成CMV增强子,第682-890位核苷酸组成EF1a启动子,第986-1006位核苷酸编码核定位信号(NLS),第1016-1036位核苷酸编码核定位信号(NLS),第1037-5161位核苷酸编码Cas9蛋白,第5162-5209位核苷酸编码核定位信号(NLS),第5219-5266位核苷酸编码核定位信号(NLS),第5276-5332位核苷酸编码自剪切多肽P2A(自剪切多肽P2A的氨基酸序列为“ATNFSLLKQAGDVEENPGP”,发生自剪切的断裂位置为C端开始第一个氨基酸残基和第二个氨基酸残基之间),第5333-6046位核苷酸编码EGFP蛋白,第6056-6109位核苷酸编码自裂解多肽T2A(自裂解多肽T2A的氨基酸序列为“EGRGSLLTCGDVEENPGP”,发生自裂解的断裂位置为C端开始第一个氨基酸残基和第二个氨基酸残基之间),第6110-6703位核苷酸编码Puromycin抗性蛋白(简称Puro蛋白),第6722-7310位核苷酸组成WPRE序列元件,第7382-7615位核苷酸组成3’LTR序列元件,第7647-7871位核苷酸组成bGH poly(A)signal序列元件。SEQ ID NO:2中,第911-6706形成融合基因,表达融合蛋白。由于自剪切多肽P2A和自裂解多肽T2A的存在,融合蛋白自发被裂解成三个独立的蛋白,即Cas9蛋白、EGFP蛋白和Puro抗性蛋白。
与质粒pX330相比,质粒pKG-GE3主要进行了如下改造:①去除残留的gRNA骨架序列(GTTTTAGAGCTAGAAATAGCAAGTTAAAATAAGGCTAGTCCGTTTT),降低干扰;②将原有chickenβ-actin启动子改造为具更高表达活性的EF1a启动子,增加Cas9基因的蛋白表达能力;③在Cas9基因的上游和下游均增加核定位信号编码基因(NLS),增加Cas9蛋白的核定位能力;④原质粒无任何真核细胞筛选标记,不利于阳性转化细胞的筛选和富集,依次在Cas9基因的下游插入P2A-EGFP-T2A-PURO编码基因,赋予真核细胞荧光及嘌呤霉素抗性双重筛选标记;⑤插入WPRE元件和3’LTR序列元件,增强Cas9基因的蛋白翻译能力。
1.2 构建pKG-U6gRNA载体
来源pUC57载体,通过EcoRV酶切位点,连接pKG-U6gRNA插入序列(含U6启动子、BbsI酶切位点和sgRNA骨架序列的DNA片段,序列如SEQ ID NO:8所示),反向插入到pUC57载体,得到pKG-U6gRNA载体全序列(SEQ ID NO:3),SEQ ID NO:3中,第2280-2539位核苷酸组成hU6启动子,第2558-2637位核苷酸用于转录形成gRNA骨架。使用时,将20bp左右的DNA分子(用于转录形成gRNA的靶序列结合区)(图7)插入质粒pKG-U6gRNA(图6),形成重组质粒,在细胞中重组质粒转录得到gRNA。
实施例2 质粒配比优化以及质粒pX330和质粒pKG-GE3的效果比较
2.1 靶点gRNA设计及构建
2.1.1 使用Benchling对RAG1基因进行靶点gRNA设计
RAG1-g4:AGTTATGGCAGAACTCAGTG(SEQ ID NO.9)
合成针对上述RAG1基因靶点的插入序列互补DNA Oligo如下:
RAG1-gRNA4S:caccgAGTTATGGCAGAACTCAGTG(SEQ ID NO.10)
RAG1-gRNA4A:aaacCACTGAGTTCTGCCATAACTc(SEQ ID NO.11)
RAG1-gRNA4S、RAG1-gRNA4A均为单链DNA分子。
2.1.2 设计用于扩增和检测包含RAG1 gRNA靶点片段的引物
RAG1-nF126:CCCCATCCAAAGTTTTTAAAGGA(SEQ ID NO.12)
RAG1-nR525:TGTGGCAGATGTCACAGTTTAGG(SEQ ID NO.13)
2.1.3 gRNA重组载体的构建及克隆
1)用限制性内切酶BbsI消化1ug pKG-U6gRNA质粒;
2)酶切的pKG-U6gRNA质粒跑琼脂糖凝胶(琼脂糖凝胶浓度1%,即1g琼脂糖凝胶加入到100mL电泳缓冲液中)分离,用胶回收试剂盒(Vazyme)纯化回收酶切产物;
3)将2.1.1所述靶点合成的2条互补DNA Oligo,通过以下退火程序形成与pKG-U6gRNA载体BbsI酶切后粘性末端互补的DNA双链,示意如图7:
95℃,5min然后以5℃/min的速率降至25℃;
4)按照以下体系启动连接反应:室温反应10min
Figure BDA0002917491060000091
37℃反应60min;
5)转化
按照感受态细胞(Vazyme)说明书进行操作。
2.1.4 gRNA载体鉴定
从LB平板上挑取单克隆置入加有相应抗生素的LB培养液内,37℃恒温摇床内培养12-16h后小提质粒送通用公司测序,经序列比对确认质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)构建成功,该质粒将会表达SEQ ID NO.14所示的RAG1-gRNA4。
2.2 猪原代成纤维细胞制备
2.2.1 取初生从江香猪耳组织0.5g,去除毛发及骨组织,75﹪酒精浸泡30-40s;
2.2.2 用含5%P/S(Gibco Penicillin-Streptomycin)的PBS洗涤5次,不含P/S的PBS洗一次;
其中5%P/S的PBS配方为:5%P/S(Gibco Penicillin-Streptomycin)+95%PBS,5%、95%为体积百分比。
2.2.3 用剪刀将组织剪碎,加入5mL 0.1%的胶原酶(Sigma)溶液,37℃摇床消化1h;
2.2.4 500g离心5min,去上清,将沉淀用1mL完全培养基重悬,铺入含10mL完全培养基并已用0.2%明胶(VWR)封盘的10cm细胞培养皿中。
其中,细胞完全培养基的配方为:15%胎牛血清(Gibco)+83%DMEM培养基
(Gibco)+1%P/S(Gibco Penicillin-Streptomycin)+1%HEPES(Solarbio),15%、83%、1%、1%为体积百分比。
2.2.5 置于37℃,5%CO2(体积百分比)、5%O2(体积百分比)的恒温培养箱中进行培养;
2.2.6 将细胞培养至长满皿底60%左右时使用0.25%(Gibco)的胰蛋白酶将细胞消化下来,然后加入完全培养基终止消化,将细胞悬液转入15mL离心管中,400g离心4min,弃去上清,得到细胞沉淀以备下一步的细胞转染实验。
2.3 质粒配比优化
2.3.1 共转染分组情况
第一组:将质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.44μg质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4):1.56μg质粒pKG-GE3。即质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)和质粒pKG-GE3的摩尔配比为1:1。
第二组:将质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.72μg质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4):1.28μg质粒pKG-GE3。即质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)和质粒pKG-GE3的摩尔配比为2:1。
第三组:将质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4):1.08μg质粒pKG-GE3。即质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)和质粒pKG-GE3的摩尔配比为3:1。
第四组:将质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)转染至猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:1μg质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)。
2.3.2 共转染操作方法
使用哺乳动物成纤维细胞核转染试剂盒(Neon kit)与Neon TM transfectionsystem电转仪进行转染实验。
1)按照上述分组配制电转DNA溶液,混匀过程中注意切勿产生气泡;
2)将上述2.2.6制备得到的细胞沉淀使用1ml PBS磷酸缓冲液(Solarbio)清洗,并转移到1.5ml离心管中,600g离心6min,弃去上清,使用11μL电转基本溶液Opti-MEM重悬细胞,重悬过程中要避免气泡的产生;
3)吸取10μL细胞悬液,加入至步骤1)中的电转DNA液中混匀,混匀过程中注意切勿产生气泡;
4)将试剂盒带有的电转杯放置于Neon TM transfection system电转仪杯槽内,加入3mL Buffer E;
5)用电转枪吸取10μL步骤3)得到的混合液,插入点击杯内,选择电转程序(1450V10ms3pulse),电击转染后立即在超净台内将电转枪中混合液转入到6孔板中,每孔含3mL的完全培养液(15%胎牛血清(Gibco)+83%DMEM培养基(Gibco)+1%P/S(Gibco Penicillin-Streptomycin)+1%HEPES(Solarbio));
6)混匀后放置于37℃,5%CO2、5%O2的恒温培养箱中进行培养;
7)电转后12-18h换液,36-48h用0.25%(Gibco)的胰蛋白酶消化并收集细胞于1.5mL离心管中。
2.3.3 基因编辑效率分析
提取2.3.2中收集的细胞基因组DNA,采用RAG1-nF126和RAG1-nR525组成的引物对进行PCR扩增,将产物进行测序。测序结果利用网页版Synthego ICE工具分析测序峰图得出第一组、第二组、第三组的编辑效率依次为9%、53%、66%,测序结果示例性峰图见图8。分析认定第三组的基因编辑效率最高,即确定gRNA质粒与Cas9质粒最适用量为摩尔比3:1,质粒实际用量为0.92μg:1.08μg。
2.4 质粒pX330和质粒pKG-GE3的效果比较
2.4.1 共转染分组情况
RAG1-330组:将质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)和质粒pX330共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4):1.08μg质粒pX330,其中pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)与pX330摩尔比为3:1。
RAG1-KG组:将质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)和质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4):1.08μg质粒pKG-GE3,其中pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
RAG1-B组:将质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(RAG1-gRNA4)。
2.4.2 共转染操作方法
同本实施例中2.3.2。
2.4.3 基因编辑效率分析
提取2.4.2中收集的细胞基因组DNA,采用RAG1-nF126和RAG1-nR525组成的引物对进行PCR扩增,将产物进行测序。测序结果利用网页版Synthego ICE工具分析测序峰图得出RAG1-330组、RAG1-KG组的编辑效率分别为28%、68%,测序结果示例性峰图见图9,结果表明,与采用质粒pX330相比,采用质粒pKG-GE3使得基因编辑效率显著提高。
实施例3 筛选高效的STXBP1基因靶点gRNA(第一次测试)
3.1 基因组DNA的提取
使用Vazyme公司FastPure Cell/Tissue DNA Isolation Mini Kit(VazymeCat.DC102-01)分别进行18只猪(雄性A、B、C、D、E、F、G、H雌性1、2、3、4、5、6、7、8、9、10)耳组织的基因组DNA的柱式提取,使用NanoDrop进行定量,-20℃保存备用。
3.2 STXBP1基因敲除预设靶点及邻近基因组序列保守性分析
3.2.1 猪STXBP1基因信息
突触融合蛋白结合蛋白1(syntaxin binding protein 1);位于1号染色体;GeneID为100517927,Sus scrofa。猪STXBP1基因编码的氨基酸序列如SEQ ID NO.15所示。已有研究结果表明STXBP1基因杂合缺失突变与多种严重的早发性癫痫性脑病有关,在猪基因组DNA中,STXBP1基因具有20个外显子,其中第14外显子序列(含部分第13内含子和部分第14内含子序列)如SEQ ID NO.16所示。
3.2.2 STXBP1基因敲除预设靶点外显子及邻近基因组序列PCR扩增引物设计
根据查到的猪STXBP1基因组序列
(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/NC_010443.5?report=genbank& from=268116124&to=268205805),设计引物扩增前述18只猪基因组样品STXBP1基因外显子14的位点。
使用Oligo7软件进行引物设计,设计结果如下:
STXBP1-E14g-F50:CCACGCTACAAATCCCAGACAT
STXBP1-E14g-R360:TCTCTCTTTCCCAGCTGCCTCASTXBP1-E14g-F3:CACAGCGCTTTATGGGAGCACG
STXBP1-E14g-R423:CTGAGCCACGACGGGAACTGAG3.2.3STXBP1基因组PCR扩增引物筛选
使用猪(雌性1#)耳朵组织提取的基因组为模板,使用设计的两条上游引物和两条下游引物组合,Max酶(Vazyme公司货号:P505)进行PCR,产物进行1%琼脂糖凝胶电泳以筛选好的扩增引物,结果如图10,组1:STXBP1-E14g-F3/STXBP1-E14g-R360;组2:STXBP1-E14g-F3/STXBP1-E14g-R423;组3:STXBP1-E14g-F50/STXBP1-E14g-R360;组4:STXBP1-E14g-F50/STXBP1-E14g-R423。优选STXBP1-E14g-F50/STXBP1-E14g-R360引物对进行目的片段扩增。
3.2.4 18只猪STXBP1基因片段PCR扩增
分别以18个基因组模板(雄性A、B、C、D、E、F、G、H雌性1、2、3、4、5、6、7、8、9、10),引物STXBP1-E14g-F50/STXBP1-E14g-R360,Max酶进行STXBP1基因组片段的扩增,产物(310bp)进行1%琼脂糖凝胶电泳,结果如图11。
3.2.5 STXBP1基因序列保守性分析
以上PCR扩增产物,使用扩增引物进行测序(通用生物公司测序),将测序结果与公共数据库中的STXBP1基因序列进行比对分析。根据比对结果,扩增片段序列相对保守,所设计的引物本身无可能的突变位点。
3.3 靶点gRNA设计及构建
3.3.1 使用Benchling进行靶点gRNA设计
设计靶点已避开可能的突变位点,使用Benchling进行靶点gRNA设计:
https://benchling.com/
STXBP1基因敲除靶点设计如下:
STXBP1-E14-g1:CTTGTCGTAAGTGCTGACAT
STXBP1-E14-g2:CATTGGCATCCAGCAGAATGSTXBP1-E14-g3:AGATGTAGAGAAGGATGATG
STXBP1-E14-g4:TGGGGACGATGGCTCTCATG
合成的STXBP1基因共4个靶点的插入序列互补DNA Oligo如下:
STXBP1-E14-g1S:caccgCTTGTCGTAAGTGCTGACAT(SEQ ID NO.25)
STXBP1-E14-g1A:aaacATGTCAGCACTTACGACAAGc
STXBP1-E14-g2S:caccgCATTGGCATCCAGCAGAATG
STXBP1-E14-g2A:aaacCATTCTGCTGGATGCCAATGc
STXBP1-E14-g3S:caccgAGATGTAGAGAAGGATGATG
STXBP1-E14-g3A:aaacCATCATCCTTCTCTACATCTc
STXBP1-E14-g4S:caccgTGGGGACGATGGCTCTCATG
STXBP1-E14-g4A:aaacCATGAGAGCCATCGTCCCCAc
STXBP1-E14-g1S、STXBP1-E14-g1A、STXBP1-E14-g2S、STXBP1-E14-g2A、STXBP1-E14-g3S、STXBP1-E14-g3A、STXBP1-E14-g4S、STXBP1-E14-g4A均为单链DNA分子。
3.3.2 gRNA重组载体的构建及克隆
步骤见实施例2中2.1.3。
1)将合成的STXBP1-E14-g1S和STXBP1-E14-g1A混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g1)。该质粒将会表达STXBP1-E14-gRNA1,STXBP1-E14-gRNA1序列如下:
CUUGUCGUAAGUGCUGACAUguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu
2)将合成的STXBP1-E14-g2S和STXBP1-E14-g2A混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g2)。该质粒将会表达STXBP1-E14-gRNA2,STXBP1-E14-gRNA2序列如下:
CAUUGGCAUCCAGCAGAAUGguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu
3)将合成的STXBP1-E14-g3S和STXBP1-E14-g3A混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g3)。该质粒将会表达STXBP1-E14-gRNA3,STXBP1-E14-gRNA3序列如下:
AGAUGUAGAGAAGGAUGAUGguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu
4)将合成的STXBP1-E14-g4S和STXBP1-E14-g4A混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g4)。该质粒将会表达STXBP1-E14-gRNA4,STXBP1-E14-gRNA4序列如下:
UGGGGACGAUGGCUCUCAUGguuuuagagcuagaaauagcaaguuaaaauaaggcuaguccguuaucaacuugaaaaaguggcaccgagucggugcuuuu
3.3.3 gRNA载体鉴定
从LB平板上挑取单克隆置入加有相应抗生素的LB培养液内,37℃恒温摇床内培养12-16h后小提质粒后送通用公司测序,经序列比对确认pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g1)、pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g2)、pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g3)、pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g4)载体均构建成功。
3.4 猪原代成纤维细胞制备
同实施例2中2.2。
3.5 使用构建好的gRNA质粒、Cas9质粒(pKG-GE3)共转染猪原代成纤维细胞
3.5.1 共转染分组情况
第一组:将质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g1)、质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g1):1.08μg质粒pKG-GE3,其中pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g1)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第二组:将质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g2)、质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g2):1.08μg质粒pKG-GE3,其中pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g2)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第三组:将质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g3)、质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g3):1.08μg质粒pKG-GE3,其中pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g3)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第四组:将质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g4)、质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g4):1.08μg质粒pKG-GE3,其中pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g4)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第五组:猪原代成纤维细胞,同等电转参数不加质粒进行电转染操作。
3.5.2 共转染操作方法
同实施例2中2.3.2。
3.6 STXBP1基因不同靶点gRNA的编辑效率分析
3.6.1 分别向步骤3.5.2中所收集在1.5mL离心管中的5组细胞加入10μL KAPA2G裂解液裂解细胞,得到释放出基因组DNA的细胞裂解液。
KAPA2G裂解液配制体系如下:
10×extract Buffer        1μL
Enzyme                    0.2μL
ddH2O                     8.8μL
75℃15min—95℃5min—4℃,反应结束后细胞裂解液于-20℃保存;
3.6.2 采用前述针对STXBP1基因E14的引物对(STXBP1-E14g-F50/STXBP1-E14g-R360),并以上述细胞裂解液为DNA模板,进行PCR扩增STXBP1基因靶点区域,检测其突变情况,目的PCR产物长度为310bp;
3.6.3 使用常规PCR反应扩增STXBP1基因靶点区域;
3.6.4 将PCR反应产物进行1%琼脂糖凝胶电泳,如图12,将目的产物及其附近产物切胶回收后送测序公司进行测序,然后将测序结果利用网页版Synthego ICE工具分析测序峰图得出STXBP1-E14-g1、STXBP1-E14-g2、STXBP1-E14-g3、STXBP1-E14-g4不同靶点的编辑效率依次为7%、5%、0、6%。结果表明,4种gRNA的编辑效率均低于10%,本次未筛选到较优的高效gRNA。
实施例4 筛选高效的STXBP1基因靶点gRNA(第二次测试)
4.1 靶点gRNA设计及构建
4.1.1 使用Benchling进行靶点gRNA设计
设计靶点已避开可能的突变位点,使用Benchling进行靶点gRNA设计:
https://benchling.com/
STXBP1基因敲除靶点设计如下:
STXBP1-E14-g5:ATCCAGCAGAATGGGGACGA(SEQ ID NO.17)
STXBP1-E14-g6:TGCCGAAGGGGAGAAGATCA(SEQ ID NO.18)
STXBP1-E14-g7:CATGGGCACGGATGCCGAAG(SEQ ID NO.19)
STXBP1-E14-g8:GACATTGGCATCCAGCAGAA(SEQ ID NO.20)
STXBP1-E14-g9:ATGGGGACGATGGCTCTCAT(SEQ ID NO.21)
STXBP1-E14-g10:CCCTTCGGCATCCGTGCCCA(SEQ ID NO.22)
合成的STXBP1基因共4个靶点的插入序列互补DNA Oligo如下:
STXBP1-E14-g5S:caccgATCCAGCAGAATGGGGACGA(SEQ ID NO.23)
STXBP1-E14-g5A:aaacTCGTCCCCATTCTGCTGGATc(SEQ ID NO.24)
STXBP1-E14-g6S:caccgTGCCGAAGGGGAGAAGATCA(SEQ ID NO.25)
STXBP1-E14-g6A:aaacTGATCTTCTCCCCTTCGGCAc(SEQ ID NO.26)
STXBP1-E14-g7S:caccgCATGGGCACGGATGCCGAAG(SEQ ID NO.27)
STXBP1-E14-g7A:aaacCTTCGGCATCCGTGCCCATGc(SEQ ID NO.28)
STXBP1-E14-g8S:caccGACATTGGCATCCAGCAGAA(SEQ ID NO.29)
STXBP1-E14-g8A:aaacTTCTGCTGGATGCCAATGTC(SEQ ID NO.30)
STXBP1-E14-g9S:caccgATGGGGACGATGGCTCTCAT(SEQ ID NO.31)
STXBP1-E14-g9A:aaacATGAGAGCCATCGTCCCCATc(SEQ ID NO.32)
STXBP1-E14-g10S:caccgCCCTTCGGCATCCGTGCCCA(SEQ ID NO.33)
STXBP1-E14-g10A:aaacTGGGCACGGATGCCGAAGGGc(SEQ ID NO.34)
STXBP1-E14-g5S、STXBP1-E14-g5A、STXBP1-E14-g6S、STXBP1-E14-g6A、STXBP1-E14-g7S、STXBP1-E14-g7A、STXBP1-E14-g8S、STXBP1-E14-g8A、STXBP1-E14-g9S、STXBP1-E14-g9A、STXBP1-E14-g10S、STXBP1-E14-g10A均为单链DNA分子。
4.1.2 gRNA重组载体的构建及克隆
同实施例2中2.1.3。
4.1.3 gRNA载体构建
1)将合成的STXBP1-E14-g5S和STXBP1-E14-g5A混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g5)。质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g5)将会表达SEQ ID NO.35所示的STXBP1-E14-gRNA5。
2)将合成的STXBP1-E14-g6S和STXBP1-E14-g6A混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g6)。质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g6)将会表达SEQ ID NO.36所示的STXBP1-E14-gRNA6。
3)将合成的STXBP1-E14-g7S和STXBP1-E14-g7A混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g7)。质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g7)将会表达SEQ ID NO.37所示的STXBP1-E14-gRNA7。
4)将合成的STXBP1-E14-g8S和STXBP1-E14-g8A混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g8)。质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g8)将会表达SEQ ID NO.38所示的STXBP1-E14-gRNA8。
5)将合成的STXBP1-E14-g9S和STXBP1-E14-g9A混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g9)。质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g9)将会表达SEQ ID NO.39所示的STXBP1-E14-gRNA9。
6)将合成的STXBP1-E14-g10S和STXBP1-E14-g10A混合并进行退火,得到具有粘性末端的双链DNA分子。将具有粘性末端的双链DNA分子和载体骨架连接,得到质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g10)。质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g10)将会表达SEQ ID NO.40所示的STXBP1-E14-gRNA10。
4.1.4 gRNA载体鉴定
从LB平板上挑取单克隆置入加有相应抗生素的LB培养液内,37℃恒温摇床内培养12-16h后小提质粒后送通用公司测序,经序列比对确认pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g5)、pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g6)、pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g7)、pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g8)、pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g9)、pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g10)载体均构建成功。
4.2 猪原代成纤维细胞制备
同实施例2中2.2。
4.3 使用构建好的gRNA质粒、Cas9质粒(pKG-GE3)共转染猪原代成纤维细胞。
4.3.1 共转染分组情况
第一组:将质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g5)、质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g5):1.08μg质粒pKG-GE3,其中pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g5)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第二组:将质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g6)、质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g6):1.08μg质粒pKG-GE3,其中pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g6)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第三组:将质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g7)、质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g7):1.08μg质粒pKG-GE3,其中pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g7)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第四组:将质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g8)、质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g8):1.08μg质粒pKG-GE3,其中pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g8)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第五组:将质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g9)、质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g9):1.08μg质粒pKG-GE3,其中pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g9)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第六组:将质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g10)、质粒pKG-GE3共转染猪原代成纤维细胞。配比:约20万个猪原代成纤维细胞:0.92μg质粒pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g10):1.08μg质粒pKG-GE3,其中pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g10)与pKG-GE3摩尔比为3:1。
第七组:猪原代成纤维细胞,同等电转参数不加质粒进行电转染操作。
4.3.2 共转染操作方法
同实施例2中2.3.2。
4.4 STXBP1基因不同靶点gRNA的编辑效率分析
4.4.1 分别向步骤4.3.2中收集在1.5mL离心管中的5组细胞加入10μL KAPA2G裂解液裂解细胞,得到释放出基因组DNA的细胞裂解液。
KAPA2G裂解液配制体系如下:
10X extract Buffer         1μL
Enzyme                     0.2μL
ddH2O                      8.8μL
75℃15min—95℃5min—4℃,反应结束后细胞裂解液于-20℃保存;
4.4.2 采用前述针对STXBP1基因E14的引物对(STXBP1-E14g-F50/STXBP1-E14g-R360),并以上述细胞裂解液为DNA模板,进行PCR扩增STXBP1基因靶点区域,检测其突变情况,目的PCR产物长度为310bp;
4.4.3 使用常规PCR反应扩增STXBP1基因靶点区域;
4.4.4 将PCR反应产物进行1%琼脂糖凝胶电泳,如图13,将目的产物及其附近产物切胶回收后送测序公司进行测序,然后将测序结果利用网页版Synthego ICE工具分析测序峰图得出STXBP1-E14-g5、STXBP1-E14-g6、STXBP1-E14-g7、STXBP1-E14-g8、STXBP1-E14-g9、STXBP1-E14-g10不同靶点的编辑效率依次为21%、3%、0、3%、0、4%。结果表明,STXBP1-E14-g5编辑效率最高,优选为最优靶点。
实施例5 构建STXBP1基因敲除的从江香猪单细胞克隆
5.1 猪原代成纤维细胞制备
同实施例2中2.2。
5.2 使用构建好的pKG-U6gRNA(STXBP1-E14-g5)质粒、pKG-GE3质粒共转染猪原代成纤维细胞
同实施例2中2.3.2,但不使用0.25%(Gibco)的胰蛋白酶消化并收集细胞于1.5mL离心管中。
5.3 STXBP1基因敲除单细胞克隆株的筛选
5.3.1 将步骤5.2所得电转48h的群体细胞,使用胰蛋白酶进行消化,完全培养基中和,500g离心5min,去上清,将沉淀用200μL完全培养基重悬,并适当稀释,用口吸管挑取单细胞转移到每孔含100μL完全培养基的96孔板中,每孔放置一个细胞;
5.3.2 37℃,5%CO2、5%O2的恒温培养箱中进行培养,每2~3天换一次细胞培养基,期间用显微镜观察每孔细胞生长情况,排除无细胞及非单细胞克隆的孔;
5.3.3 待96孔板的孔中细胞长满孔底,使用胰蛋白酶消化并收集细胞,其中2/3细胞接种到含有完全培养基的6孔板中,剩余的1/3的细胞收集在1.5mL离心管中备后续基因型测定;
5.3.4 待6孔板长至80%汇合度时使用0.25%(Gibco)的胰蛋白酶消化并收集细胞,使用细胞冻存液(90%完全培养基+10%DMSO,体积比)将细胞冻存。
5.4 STXBP1基因敲除的单细胞克隆鉴定
5.4.1 向步骤5.3.3收集在1.5mL离心管中的细胞中加入10μL KAPA2G裂解液裂解细胞,得到释放出基因组DNA的细胞裂解液。
KAPA2G裂解液配制体系如下:
10X extract Buffer         1μL
Enzyme                     0.2μL
ddH2O                      8.8μL
75℃15min—95℃5min—4℃,反应结束后细胞裂解液于-20℃保存;
5.4.2 采用前述针对STXBP1基因E14的引物对(STXBP1-E14g-F50/STXBP1-E14g-R360),并以上述细胞裂解液为DNA模板,进行PCR扩增STXBP1基因靶点区域,检测单细胞克隆的靶基因突变情况,目的PCR产物长度为310bp;
5.4.3 使用PCR常规反应扩增STXBP1基因靶点区域;
5.4.4 将PCR反应产物进行电泳,电泳结果如图14,泳道编号与单细胞克隆编号一致。回收PCR扩增产物并测序。
5.4.5 将测序结果与STXBP1靶点信息进行比对,从而判断该单细胞克隆是否为STXBP1基因敲除。
编号为3、13的单细胞克隆的基因型为双等位基因相同变异的纯合突变型。编号为6的单细胞克隆的基因型为双等位基因不同变异的纯合突变型。编号为2、8、15、17、19的单细胞克隆的基因型为杂合突变型。编号为1、4、5、7、9、10、11、12、14、16、18、20的单细胞克隆的基因型为野生型。得到STXBP1基因编辑单细胞克隆的比率为40%。
示例性的测序比对结果如图15至图18,其中图15是克隆号为STXBP1-1的反向测序与已公布序列的比对结果,判定为野生型;图16是克隆号为STXBP1-2的反向测序与已公布序列的比对结果,判定为杂合突变型;图17是克隆号为STXBP1-13的反向测序与已公布序列的比对结果,判定为双等位基因相同变异的纯合突变型;图18是克隆号为STXBP1-6的反向测序与已公布序列的比对结果,判定为双等位基因不同变异的纯合突变型。
通过具体序列的分析,各单细胞克隆基因型如表1:
表1 STXBP1基因敲除单细胞克隆基因型鉴定
Figure BDA0002917491060000211
Figure BDA0002917491060000221
上述的杂合突变及纯合突变单细胞克隆株均可用来进行模型猪的克隆生产,从而模拟不同严重程度的癫痫性脑病。
以上对本发明进行了详述。对于本领域技术人员来说,在不脱离本发明的宗旨和范围,以及无需进行不必要的实验情况下,可在等同参数、浓度和条件下,在较宽范围内实施本发明。虽然本发明给出了特殊的实施例,应该理解为,可以对本发明作进一步的改进。总之,按本发明的原理,本申请欲包括任何变更、用途或对本发明的改进,包括脱离了本申请中已公开范围,而用本领域已知的常规技术进行的改变。按以下附带的权利要求的范围,可以进行一些基本特征的应用。
                         序列表
<110>  南京启真基因工程有限公司
<120>  CRISPR系统及其在构建STXBP1 突变的癫痫性脑病克隆猪核供体细胞中的应用
<160>  40
<170>  SIPOSequenceListing 1.0
<210>  1
<211>  8484
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  1
gagggcctat ttcccatgat tccttcatat ttgcatatac gatacaaggc tgttagagag 60
ataattggaa ttaatttgac tgtaaacaca aagatattag tacaaaatac gtgacgtaga 120
aagtaataat ttcttgggta gtttgcagtt ttaaaattat gttttaaaat ggactatcat 180
atgcttaccg taacttgaaa gtatttcgat ttcttggctt tatatatctt gtggaaagga 240
cgaaacaccg ggtcttcgag aagacctgtt ttagagctag aaatagcaag ttaaaataag 300
gctagtccgt tatcaacttg aaaaagtggc accgagtcgg tgcttttttg ttttagagct 360
agaaatagca agttaaaata aggctagtcc gtttttagcg cgtgcgccaa ttctgcagac 420
aaatggctct agaggtaccc gttacataac ttacggtaaa tggcccgcct ggctgaccgc 480
ccaacgaccc ccgcccattg acgtcaatag taacgccaat agggactttc cattgacgtc 540
aatgggtgga gtatttacgg taaactgccc acttggcagt acatcaagtg tatcatatgc 600
caagtacgcc ccctattgac gtcaatgacg gtaaatggcc cgcctggcat tgtgcccagt 660
acatgacctt atgggacttt cctacttggc agtacatcta cgtattagtc atcgctatta 720
ccatggtcga ggtgagcccc acgttctgct tcactctccc catctccccc ccctccccac 780
ccccaatttt gtatttattt attttttaat tattttgtgc agcgatgggg gcgggggggg 840
ggggggggcg gggcgagggg cggggcgggg cgaggcggag aggtgcggcg gcagccaatc 900
agagcggcgc gctccgaaag tttcctttta tggcgaggcg gcggcggcgg cggccctata 960
aaaagcgaag cgcgcggcgg gcgggagtcg ctgcgcgctg ccttcgcccc gtgccccgct 1020
ccgccgccgc ctcgcgccgc ccgccccggc tctgactgac cgcgttactc ccacaggtga 1080
gcgggcggga cggcccttct cctccgggct gtaattagct gagcaagagg taagggttta 1140
agggatggtt ggttggtggg gtattaatgt ttaattacct ggagcacctg cctgaaatca 1200
ctttttttca ggttggaccg gtgccaccat ggactataag gaccacgacg gagactacaa 1260
ggatcatgat attgattaca aagacgatga cgataagatg gccccaaaga agaagcggaa 1320
ggtcggtatc cacggagtcc cagcagccga caagaagtac agcatcggcc tggacatcgg 1380
caccaactct gtgggctggg ccgtgatcac cgacgagtac aaggtgccca gcaagaaatt 1440
caaggtgctg ggcaacaccg accggcacag catcaagaag aacctgatcg gagccctgct 1500
gttcgacagc ggcgaaacag ccgaggccac ccggctgaag agaaccgcca gaagaagata 1560
caccagacgg aagaaccgga tctgctatct gcaagagatc ttcagcaacg agatggccaa 1620
ggtggacgac agcttcttcc acagactgga agagtccttc ctggtggaag aggataagaa 1680
gcacgagcgg caccccatct tcggcaacat cgtggacgag gtggcctacc acgagaagta 1740
ccccaccatc taccacctga gaaagaaact ggtggacagc accgacaagg ccgacctgcg 1800
gctgatctat ctggccctgg cccacatgat caagttccgg ggccacttcc tgatcgaggg 1860
cgacctgaac cccgacaaca gcgacgtgga caagctgttc atccagctgg tgcagaccta 1920
caaccagctg ttcgaggaaa accccatcaa cgccagcggc gtggacgcca aggccatcct 1980
gtctgccaga ctgagcaaga gcagacggct ggaaaatctg atcgcccagc tgcccggcga 2040
gaagaagaat ggcctgttcg gaaacctgat tgccctgagc ctgggcctga cccccaactt 2100
caagagcaac ttcgacctgg ccgaggatgc caaactgcag ctgagcaagg acacctacga 2160
cgacgacctg gacaacctgc tggcccagat cggcgaccag tacgccgacc tgtttctggc 2220
cgccaagaac ctgtccgacg ccatcctgct gagcgacatc ctgagagtga acaccgagat 2280
caccaaggcc cccctgagcg cctctatgat caagagatac gacgagcacc accaggacct 2340
gaccctgctg aaagctctcg tgcggcagca gctgcctgag aagtacaaag agattttctt 2400
cgaccagagc aagaacggct acgccggcta cattgacggc ggagccagcc aggaagagtt 2460
ctacaagttc atcaagccca tcctggaaaa gatggacggc accgaggaac tgctcgtgaa 2520
gctgaacaga gaggacctgc tgcggaagca gcggaccttc gacaacggca gcatccccca 2580
ccagatccac ctgggagagc tgcacgccat tctgcggcgg caggaagatt tttacccatt 2640
cctgaaggac aaccgggaaa agatcgagaa gatcctgacc ttccgcatcc cctactacgt 2700
gggccctctg gccaggggaa acagcagatt cgcctggatg accagaaaga gcgaggaaac 2760
catcaccccc tggaacttcg aggaagtggt ggacaagggc gcttccgccc agagcttcat 2820
cgagcggatg accaacttcg ataagaacct gcccaacgag aaggtgctgc ccaagcacag 2880
cctgctgtac gagtacttca ccgtgtataa cgagctgacc aaagtgaaat acgtgaccga 2940
gggaatgaga aagcccgcct tcctgagcgg cgagcagaaa aaggccatcg tggacctgct 3000
gttcaagacc aaccggaaag tgaccgtgaa gcagctgaaa gaggactact tcaagaaaat 3060
cgagtgcttc gactccgtgg aaatctccgg cgtggaagat cggttcaacg cctccctggg 3120
cacataccac gatctgctga aaattatcaa ggacaaggac ttcctggaca atgaggaaaa 3180
cgaggacatt ctggaagata tcgtgctgac cctgacactg tttgaggaca gagagatgat 3240
cgaggaacgg ctgaaaacct atgcccacct gttcgacgac aaagtgatga agcagctgaa 3300
gcggcggaga tacaccggct ggggcaggct gagccggaag ctgatcaacg gcatccggga 3360
caagcagtcc ggcaagacaa tcctggattt cctgaagtcc gacggcttcg ccaacagaaa 3420
cttcatgcag ctgatccacg acgacagcct gacctttaaa gaggacatcc agaaagccca 3480
ggtgtccggc cagggcgata gcctgcacga gcacattgcc aatctggccg gcagccccgc 3540
cattaagaag ggcatcctgc agacagtgaa ggtggtggac gagctcgtga aagtgatggg 3600
ccggcacaag cccgagaaca tcgtgatcga aatggccaga gagaaccaga ccacccagaa 3660
gggacagaag aacagccgcg agagaatgaa gcggatcgaa gagggcatca aagagctggg 3720
cagccagatc ctgaaagaac accccgtgga aaacacccag ctgcagaacg agaagctgta 3780
cctgtactac ctgcagaatg ggcgggatat gtacgtggac caggaactgg acatcaaccg 3840
gctgtccgac tacgatgtgg accatatcgt gcctcagagc tttctgaagg acgactccat 3900
cgacaacaag gtgctgacca gaagcgacaa gaaccggggc aagagcgaca acgtgccctc 3960
cgaagaggtc gtgaagaaga tgaagaacta ctggcggcag ctgctgaacg ccaagctgat 4020
tacccagaga aagttcgaca atctgaccaa ggccgagaga ggcggcctga gcgaactgga 4080
taaggccggc ttcatcaaga gacagctggt ggaaacccgg cagatcacaa agcacgtggc 4140
acagatcctg gactcccgga tgaacactaa gtacgacgag aatgacaagc tgatccggga 4200
agtgaaagtg atcaccctga agtccaagct ggtgtccgat ttccggaagg atttccagtt 4260
ttacaaagtg cgcgagatca acaactacca ccacgcccac gacgcctacc tgaacgccgt 4320
cgtgggaacc gccctgatca aaaagtaccc taagctggaa agcgagttcg tgtacggcga 4380
ctacaaggtg tacgacgtgc ggaagatgat cgccaagagc gagcaggaaa tcggcaaggc 4440
taccgccaag tacttcttct acagcaacat catgaacttt ttcaagaccg agattaccct 4500
ggccaacggc gagatccgga agcggcctct gatcgagaca aacggcgaaa ccggggagat 4560
cgtgtgggat aagggccggg attttgccac cgtgcggaaa gtgctgagca tgccccaagt 4620
gaatatcgtg aaaaagaccg aggtgcagac aggcggcttc agcaaagagt ctatcctgcc 4680
caagaggaac agcgataagc tgatcgccag aaagaaggac tgggacccta agaagtacgg 4740
cggcttcgac agccccaccg tggcctattc tgtgctggtg gtggccaaag tggaaaaggg 4800
caagtccaag aaactgaaga gtgtgaaaga gctgctgggg atcaccatca tggaaagaag 4860
cagcttcgag aagaatccca tcgactttct ggaagccaag ggctacaaag aagtgaaaaa 4920
ggacctgatc atcaagctgc ctaagtactc cctgttcgag ctggaaaacg gccggaagag 4980
aatgctggcc tctgccggcg aactgcagaa gggaaacgaa ctggccctgc cctccaaata 5040
tgtgaacttc ctgtacctgg ccagccacta tgagaagctg aagggctccc ccgaggataa 5100
tgagcagaaa cagctgtttg tggaacagca caagcactac ctggacgaga tcatcgagca 5160
gatcagcgag ttctccaaga gagtgatcct ggccgacgct aatctggaca aagtgctgtc 5220
cgcctacaac aagcaccggg ataagcccat cagagagcag gccgagaata tcatccacct 5280
gtttaccctg accaatctgg gagcccctgc cgccttcaag tactttgaca ccaccatcga 5340
ccggaagagg tacaccagca ccaaagaggt gctggacgcc accctgatcc accagagcat 5400
caccggcctg tacgagacac ggatcgacct gtctcagctg ggaggcgaca aaaggccggc 5460
ggccacgaaa aaggccggcc aggcaaaaaa gaaaaagtaa gaattcctag agctcgctga 5520
tcagcctcga ctgtgccttc tagttgccag ccatctgttg tttgcccctc ccccgtgcct 5580
tccttgaccc tggaaggtgc cactcccact gtcctttcct aataaaatga ggaaattgca 5640
tcgcattgtc tgagtaggtg tcattctatt ctggggggtg gggtggggca ggacagcaag 5700
ggggaggatt gggaagagaa tagcaggcat gctggggagc ggccgcagga acccctagtg 5760
atggagttgg ccactccctc tctgcgcgct cgctcgctca ctgaggccgg gcgaccaaag 5820
gtcgcccgac gcccgggctt tgcccgggcg gcctcagtga gcgagcgagc gcgcagctgc 5880
ctgcaggggc gcctgatgcg gtattttctc cttacgcatc tgtgcggtat ttcacaccgc 5940
atacgtcaaa gcaaccatag tacgcgccct gtagcggcgc attaagcgcg gcgggtgtgg 6000
tggttacgcg cagcgtgacc gctacacttg ccagcgcctt agcgcccgct cctttcgctt 6060
tcttcccttc ctttctcgcc acgttcgccg gctttccccg tcaagctcta aatcgggggc 6120
tccctttagg gttccgattt agtgctttac ggcacctcga ccccaaaaaa cttgatttgg 6180
gtgatggttc acgtagtggg ccatcgccct gatagacggt ttttcgccct ttgacgttgg 6240
agtccacgtt ctttaatagt ggactcttgt tccaaactgg aacaacactc aactctatct 6300
cgggctattc ttttgattta taagggattt tgccgatttc ggtctattgg ttaaaaaatg 6360
agctgattta acaaaaattt aacgcgaatt ttaacaaaat attaacgttt acaattttat 6420
ggtgcactct cagtacaatc tgctctgatg ccgcatagtt aagccagccc cgacacccgc 6480
caacacccgc tgacgcgccc tgacgggctt gtctgctccc ggcatccgct tacagacaag 6540
ctgtgaccgt ctccgggagc tgcatgtgtc agaggttttc accgtcatca ccgaaacgcg 6600
cgagacgaaa gggcctcgtg atacgcctat ttttataggt taatgtcatg ataataatgg 6660
tttcttagac gtcaggtggc acttttcggg gaaatgtgcg cggaacccct atttgtttat 6720
ttttctaaat acattcaaat atgtatccgc tcatgagaca ataaccctga taaatgcttc 6780
aataatattg aaaaaggaag agtatgagta ttcaacattt ccgtgtcgcc cttattccct 6840
tttttgcggc attttgcctt cctgtttttg ctcacccaga aacgctggtg aaagtaaaag 6900
atgctgaaga tcagttgggt gcacgagtgg gttacatcga actggatctc aacagcggta 6960
agatccttga gagttttcgc cccgaagaac gttttccaat gatgagcact tttaaagttc 7020
tgctatgtgg cgcggtatta tcccgtattg acgccgggca agagcaactc ggtcgccgca 7080
tacactattc tcagaatgac ttggttgagt actcaccagt cacagaaaag catcttacgg 7140
atggcatgac agtaagagaa ttatgcagtg ctgccataac catgagtgat aacactgcgg 7200
ccaacttact tctgacaacg atcggaggac cgaaggagct aaccgctttt ttgcacaaca 7260
tgggggatca tgtaactcgc cttgatcgtt gggaaccgga gctgaatgaa gccataccaa 7320
acgacgagcg tgacaccacg atgcctgtag caatggcaac aacgttgcgc aaactattaa 7380
ctggcgaact acttactcta gcttcccggc aacaattaat agactggatg gaggcggata 7440
aagttgcagg accacttctg cgctcggccc ttccggctgg ctggtttatt gctgataaat 7500
ctggagccgg tgagcgtgga agccgcggta tcattgcagc actggggcca gatggtaagc 7560
cctcccgtat cgtagttatc tacacgacgg ggagtcaggc aactatggat gaacgaaata 7620
gacagatcgc tgagataggt gcctcactga ttaagcattg gtaactgtca gaccaagttt 7680
actcatatat actttagatt gatttaaaac ttcattttta atttaaaagg atctaggtga 7740
agatcctttt tgataatctc atgaccaaaa tcccttaacg tgagttttcg ttccactgag 7800
cgtcagaccc cgtagaaaag atcaaaggat cttcttgaga tccttttttt ctgcgcgtaa 7860
tctgctgctt gcaaacaaaa aaaccaccgc taccagcggt ggtttgtttg ccggatcaag 7920
agctaccaac tctttttccg aaggtaactg gcttcagcag agcgcagata ccaaatactg 7980
ttcttctagt gtagccgtag ttaggccacc acttcaagaa ctctgtagca ccgcctacat 8040
acctcgctct gctaatcctg ttaccagtgg ctgctgccag tggcgataag tcgtgtctta 8100
ccgggttgga ctcaagacga tagttaccgg ataaggcgca gcggtcgggc tgaacggggg 8160
gttcgtgcac acagcccagc ttggagcgaa cgacctacac cgaactgaga tacctacagc 8220
gtgagctatg agaaagcgcc acgcttcccg aagggagaaa ggcggacagg tatccggtaa 8280
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agctatgaga aagcgccacg cttcccgaag ggagaaaggc ggacaggtat ccggtaagcg 1680
gcagggtcgg aacaggagag cgcacgaggg agcttccagg gggaaacgcc tggtatcttt 1740
atagtcctgt cgggtttcgc cacctctgac ttgagcgtcg atttttgtga tgctcgtcag 1800
gggggcggag cctatggaaa aacgccagca acgcggcctt tttacggttc ctggcctttt 1860
gctggccttt tgctcacatg ttctttcctg cgttatcccc tgattctgtg gataaccgta 1920
ttaccgcctt tgagtgagct gataccgctc gccgcagccg aacgaccgag cgcagcgagt 1980
cagtgagcga ggaagcggaa gagcgcccaa tacgcaaacc gcctctcccc gcgcgttggc 2040
cgattcatta atgcagctgg cacgacaggt ttcccgactg gaaagcgggc agtgagcgca 2100
acgcaattaa tgtgagttag ctcactcatt aggcacccca ggctttacac tttatgcttc 2160
cggctcgtat gttgtgtgga attgtgagcg gataacaatt tcacacagga aacagctatg 2220
accatgatta cgccaagctt gcatgcaggc ctctgcagtc gacgggcccg ggatccgatg 2280
ataaacatgt gagggcctat ttcccatgat tccttcatat ttgcatatac gatacaaggc 2340
tgttagagag ataattggaa ttaatttgac tgtaaacaca aagatattag tacaaaatac 2400
gtgacgtaga aagtaataat ttcttgggta gtttgcagtt ttaaaattat gttttaaaat 2460
ggactatcat atgcttaccg taacttgaaa gtatttcgat ttcttggctt tatatatctt 2520
gtggaaagga cgaaacaccg ggtcttcgag aagacctgtt ttagagctag aaatagcaag 2580
ttaaaataag gctagtccgt tatcaacttg aaaaagtggc accgagtcgg tgcttttttc 2640
tagcgcgtgc gccaattctg cagacaaatg gctctagagg tacccataga tctagatgca 2700
ttcgcgaggt accgagctcg aattcactgg ccgtcgtttt acaacgtcgt gactgggaaa 2760
accctggcgt tacccaactt aatcgccttg cagcacatcc ccctttcgcc agctggcgta 2820
atagcgaaga ggcccgcacc gatcgccctt cccaacagtt gcgcagcctg aatggcgaat 2880
ggcgcctgat gcggtatttt ctccttacgc atctgtgcgg tatttcacac cgcatatggt 2940
gcactctcag tacaatctgc tctgatgccg catagttaag ccagccccga cacccgccaa 3000
cacccgctga cgcgccctga cgggcttgtc tgctcccggc atccgcttac agacaagctg 3060
tgaccgtctc cgggagctgc atgtgtcaga ggttttcacc gtcatcaccg aaacgcgcga 3120
<210>  4
<211>  175
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  4
tgtggaaagg acgaaacacc gggtcttcga gaagacctgt tttagagcta gaaatagcaa 60
gttaaaataa ggctagtccg ttatcaactt gaaaaagtgg caccgagtcg gtgctttttt 120
ctagcgcgtg cgccaattct gcagacaaat ggctctagag gtacccgtta cataa      175
<210>  5
<211>  554
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  5
tctgcagaca aatggctcta gaggtacccg ttacataact tacggtaaat ggcccgcctg 60
gctgaccgcc caacgacccc cgcccattga cgtcaatagt aacgccaata gggactttcc 120
attgacgtca atgggtggag tatttacggt aaactgccca cttggcagta catcaagtgt 180
atcatatgcc aagtacgccc cctattgacg tcaatgacgg taaatggccc gcctggcatt 240
gtgcccagta catgacctta tgggactttc ctacttggca gtacatctac gtattagtca 300
tcgctattac catgggggca gagcgcacat cgcccacagt ccccgagaag ttggggggag 360
gggtcggcaa ttgatccggt gcctagagaa ggtggcgcgg ggtaaactgg gaaagtgatg 420
tcgtgtactg gctccgcctt tttcccgagg gtgggggaga accgtatata agtgcagtag 480
tcgccgtgaa cgttcttttt cgcaacgggt ttgccgccag aacacaggtt ggaccggtgc 540
caccatggac tata                                                   554
<210>  6
<211>  447
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  6
ccagaacaca ggttggaccg gtgccaccat ggactataag gaccacgacg gagactacaa 60
ggatcatgat attgattaca aagacgatga cgataagatg gcccccaaaa agaaacgaaa 120
ggtgggtggg tccccaaaga agaagcggaa ggtcggtatc cacggagtcc cagcagccga 180
caagaagtac agcatcggcc tggacatcgg caccaactct gtgggctggg ccgtgatcac 240
cgacgagtac aaggtgccca gcaagaaatt caaggtgctg ggcaacaccg accggcacag 300
catcaagaag aacctgatcg gagccctgct gttcgacagc ggcgaaacag ccgaggccac 360
ccggctgaag agaaccgcca gaagaagata caccagacgg aagaaccgga tctgctatct 420
gcaagagatc ttcagcaacg agatggc                                     447
<210>  7
<211>  2727
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  7
cggcggccac gaaaaaggcc ggccaggcaa aaaagaaaaa gggcggctcc aagcggcctg 60
ccgcgacgaa gaaagcggga caggccaaga aaaagaaagg atccggcgca acaaacttct 120
ctctgctgaa acaagccgga gatgtcgaag agaatcctgg accggtgagc aagggcgagg 180
agctgttcac cggggtggtg cccatcctgg tcgagctgga cggcgacgta aacggccaca 240
agttcagcgt gtccggcgag ggcgagggcg atgccaccta cggcaagctg accctgaagt 300
tcatctgcac caccggcaag ctgcccgtgc cctggcccac cctcgtgacc accctgacct 360
acggcgtgca gtgcttcagc cgctaccccg accacatgaa gcagcacgac ttcttcaagt 420
ccgccatgcc cgaaggctac gtccaggagc gcaccatctt cttcaaggac gacggcaact 480
acaagacccg cgccgaggtg aagttcgagg gcgacaccct ggtgaaccgc atcgagctga 540
agggcatcga cttcaaggag gacggcaaca tcctggggca caagctggag tacaactaca 600
acagccacaa cgtctatatc atggccgaca agcagaagaa cggcatcaag gtgaacttca 660
agatccgcca caacatcgag gacggcagcg tgcagctcgc cgaccactac cagcagaaca 720
cccccatcgg cgacggcccc gtgctgctgc ccgacaacca ctacctgagc acccagtccg 780
ccctgagcaa agaccccaac gagaagcgcg atcacatggt cctgctggag ttcgtgaccg 840
ccgccgggat cactctcggc atggacgagc tgtacaaggg ctccggcgag ggcaggggaa 900
gtcttctaac atgcggggac gtggaggaaa atcccggccc aaccgagtac aagcccacgg 960
tgcgcctcgc cacccgcgac gacgtcccca gggccgtacg caccctcgcc gccgcgttcg 1020
ccgactaccc cgccacgcgc cacaccgtcg atccggaccg ccacatcgag cgggtcaccg 1080
agctgcaaga actcttcctc acgcgcgtcg ggctcgacat cggcaaggtg tgggtcgcgg 1140
acgacggcgc cgcggtggcg gtctggacca cgccggagag cgtcgaagcg ggggcggtgt 1200
tcgccgagat cggcccgcgc atggccgagt tgagcggttc ccggctggcc gcgcagcaac 1260
agatggaagg cctcctggcg ccgcaccggc ccaaggagcc cgcgtggttc ctggccaccg 1320
tcggagtctc gcccgaccac cagggcaagg gtctgggcag cgccgtcgtg ctccccggag 1380
tggaggcggc cgagcgcgcc ggggtgcccg ccttcctgga gacctccgcg ccccgcaacc 1440
tccccttcta cgagcggctc ggcttcaccg tcaccgccga cgtcgaggtg cccgaaggac 1500
cgcgcacctg gtgcatgacc cgcaagcccg gtgcctgaac gcgttaagtc gacaatcaac 1560
ctctggatta caaaatttgt gaaagattga ctggtattct taactatgtt gctcctttta 1620
cgctatgtgg atacgctgct ttaatgcctt tgtatcatgc tattgcttcc cgtatggctt 1680
tcattttctc ctccttgtat aaatcctggt tgctgtctct ttatgaggag ttgtggcccg 1740
ttgtcaggca acgtggcgtg gtgtgcactg tgtttgctga cgcaaccccc actggttggg 1800
gcattgccac cacctgtcag ctcctttccg ggactttcgc tttccccctc cctattgcca 1860
cggcggaact catcgccgcc tgccttgccc gctgctggac aggggctcgg ctgttgggca 1920
ctgacaattc cgtggtgttg tcggggaaat catcgtcctt tccttggctg ctcgcctgtg 1980
ttgccacctg gattctgcgc gggacgtcct tctgctacgt cccttcggcc ctcaatccag 2040
cggaccttcc ttcccgcggc ctgctgccgg ctctgcggcc tcttccgcgt cttcgccttc 2100
gccctcagac gagtcggatc tccctttggg ccgcctcccc gcgtcgactt taagaccaat 2160
gacttacaag gcagctgtag atcttagcca ctttttaaaa gaaaaggggg gactggaagg 2220
gctaattcac tcccaacgaa gacaagatct gctttttgct tgtactgggt ctctctggtt 2280
agaccagatc tgagcctggg agctctctgg ctaactaggg aacccactgc ttaagcctca 2340
ataaagcttg ccttgagtgc ttcaagtagt gtgtgcccgt ctgttgtgtg actctggtaa 2400
ctagagatcc ctcagaccct tttagtcagt gtggaaaatc tctagcaggg cccgtttaaa 2460
cccgctgatc agcctcgact gtgccttcta gttgccagcc atctgttgtt tgcccctccc 2520
ccgtgccttc cttgaccctg gaaggtgcca ctcccactgt cctttcctaa taaaatgagg 2580
aaattgcatc gcattgtctg agtaggtgtc attctattct ggggggtggg gtggggcagg 2640
acagcaaggg ggaggattgg gaagacaata gcaggcatgc tggggatgcg gtgggctcta 2700
tggcctgcag gggcgcctga tgcggta                                     2727
<210>  8
<211>  410
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  8
gataaacatg tgagggccta tttcccatga ttccttcata tttgcatata cgatacaagg 60
ctgttagaga gataattgga attaatttga ctgtaaacac aaagatatta gtacaaaata 120
cgtgacgtag aaagtaataa tttcttgggt agtttgcagt tttaaaatta tgttttaaaa 180
tggactatca tatgcttacc gtaacttgaa agtatttcga tttcttggct ttatatatct 240
tgtggaaagg acgaaacacc gggtcttcga gaagacctgt tttagagcta gaaatagcaa 300
gttaaaataa ggctagtccg ttatcaactt gaaaaagtgg caccgagtcg gtgctttttt 360
ctagcgcgtg cgccaattct gcagacaaat ggctctagag gtacccatag            410
<210>  9
<211>  20
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  9
agttatggca gaactcagtg                                             20
<210>  10
<211>  25
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  10
caccgagtta tggcagaact cagtg                                       25
<210>  11
<211>  25
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  11
aaaccactga gttctgccat aactc                                        25
<210>  12
<211>  23
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  12
ccccatccaa agtttttaaa gga                                          23
<210>  13
<211>  23
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  13
tgtggcagat gtcacagttt agg                                          23
<210>  14
<211>  100
<212>  RNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  14
aguuauggca gaacucagug guuuuagagc uagaaauagc aaguuaaaau aaggcuaguc  60
cguuaucaac uugaaaaagu ggcaccgagu cggugcuuuu                       100
<210>  15
<211>  603
<212>  PRT
<213>  猪(Sus scrofa)
<400>  15
Met Ala Pro Ile Gly Leu Lys Ala Val Val Gly Glu Lys Ile Met His
1               5                   10                  15
Asp Val Ile Lys Lys Val Lys Lys Lys Gly Glu Trp Lys Val Leu Val
            20                  25                  30
Val Asp Gln Leu Ser Met Arg Met Leu Ser Ser Cys Cys Lys Met Thr
        35                  40                  45
Asp Ile Met Thr Glu Gly Ile Thr Ile Val Glu Asp Ile Asn Lys Arg
    50                  55                  60
Arg Glu Pro Leu Pro Ser Leu Glu Ala Val Tyr Leu Ile Thr Pro Ser
65                  70                  75                  80
Glu Lys Ser Val His Ser Leu Ile Ser Asp Phe Lys Asp Pro Pro Thr
                85                  90                  95
Ala Lys Tyr Arg Ala Ala His Val Phe Phe Thr Asp Ser Cys Pro Asp
            100                 105                 110
Ala Leu Phe Asn Glu Leu Val Lys Ser Arg Ala Ala Lys Val Ile Lys
        115                 120                 125
Thr Leu Thr Glu Ile Asn Ile Ala Phe Leu Pro Tyr Glu Ser Gln Val
    130                 135                 140
Tyr Ser Leu Asp Ser Ala Asp Ser Phe Gln Ser Phe Tyr Ser Pro His
145                 150                 155                 160
Lys Ala Gln Met Lys Asn Pro Ile Leu Glu Arg Leu Ala Glu Gln Ile
                165                 170                 175
Ala Thr Leu Cys Ala Thr Leu Lys Glu Tyr Pro Ala Val Arg Tyr Arg
            180                 185                 190
Gly Glu Tyr Lys Asp Asn Ala Leu Leu Ala Gln Leu Ile Gln Asp Lys
        195                 200                 205
Leu Asp Ala Tyr Lys Ala Asp Asp Pro Thr Met Gly Glu Gly Pro Asp
    210                 215                 220
Lys Ala Arg Ser Gln Leu Leu Ile Leu Asp Arg Gly Phe Asp Pro Ser
225                 230                 235                 240
Ser Pro Val Leu His Glu Leu Thr Phe Gln Ala Met Ser Tyr Asp Leu
                245                 250                 255
Leu Pro Ile Glu Asn Asp Val Tyr Lys Tyr Glu Thr Ser Gly Ile Gly
            260                 265                 270
Glu Ala Arg Val Lys Glu Val Leu Leu Asp Glu Asp Asp Asp Leu Trp
        275                 280                 285
Ile Ala Leu Arg His Lys His Ile Ala Glu Val Ser Gln Glu Val Thr
    290                 295                 300
Arg Ser Leu Lys Asp Phe Ser Ser Ser Lys Arg Met Asn Thr Gly Glu
305                 310                 315                 320
Lys Thr Thr Met Arg Asp Leu Ser Gln Met Leu Lys Lys Met Pro Gln
                325                 330                 335
Tyr Gln Lys Glu Leu Ser Lys Tyr Ser Thr His Leu His Leu Ala Glu
            340                 345                 350
Asp Cys Met Lys His Tyr Gln Gly Thr Val Asp Lys Leu Cys Arg Val
        355                 360                 365
Glu Gln Asp Leu Ala Met Gly Thr Asp Ala Glu Gly Glu Lys Ile Lys
    370                 375                 380
Asp Pro Met Arg Ala Ile Val Pro Ile Leu Leu Asp Ala Asn Val Ser
385                 390                 395                 400
Thr Tyr Asp Lys Ile Arg Ile Ile Leu Leu Tyr Ile Phe Leu Lys Asn
                405                 410                 415
Gly Ile Thr Glu Glu Asn Leu Asn Lys Leu Ile Gln His Ala Gln Ile
            420                 425                 430
Pro Pro Glu Asp Ser Glu Ile Ile Thr Asn Met Ala His Leu Gly Val
        435                 440                 445
Pro Ile Val Thr Asp Ser Thr Leu Arg Arg Arg Ser Lys Leu Glu Arg
    450                 455                 460
Lys Glu Arg Ile Ser Glu Gln Thr Tyr Gln Leu Ser Arg Trp Thr Pro
465                 470                 475                 480
Ile Ile Lys Asp Ile Met Glu Asp Thr Ile Glu Asp Lys Leu Asp Thr
                485                 490                 495
Lys His Tyr Pro Tyr Ile Ser Thr Arg Ser Ser Ala Ser Phe Ser Thr
            500                 505                 510
Thr Ala Val Ser Ala Arg Tyr Gly His Trp His Lys Asn Lys Ala Pro
        515                 520                 525
Gly Glu Tyr Arg Ser Gly Pro Arg Leu Ile Ile Phe Ile Leu Gly Gly
    530                 535                 540
Val Ser Leu Asn Glu Met Arg Cys Ala Tyr Glu Val Thr Gln Ala Asn
545                 550                 555                 560
Gly Lys Trp Glu Val Leu Ile Gly Ser Thr His Ile Leu Thr Pro Thr
                565                 570                 575
Lys Phe Leu Met Asp Leu Arg His Pro Asp Phe Arg Glu Ser Ser Arg
            580                 585                 590
Val Ser Phe Glu Asp Gln Ala Pro Thr Met Glu
        595                 600
<210>  16
<211>  1100
<212>  DNA
<213>  猪(Sus scrofa)
<400>  16
agtccagcca ggcagaggct ccttaaacta tcaaggcttc tcaggtgtgg gaagtgcatc 60
ccctgaagcc ctgatccctc tgccgggctt catacctctc gaggacagac caggatcgag 120
gctttccctg aggccttggc acaggtgcac gcacctgcac ggaacagcct acaaaagatg 180
gtgaagaagg gcgctttctg gctttggaaa gcgaaaccca ggctcttgct acggccatag 240
acaccgtcac cgattacagc agtgctcatc acagcgcttt atgggagcac gagtacccgt 300
ttggaacctt cgtcacccac gctacaaatc ccagacatct ttgcacaacc ggtgttgtaa 360
cagttcccgt ctatgcagac tgtggcagaa acagagccaa cgtggtatgt cttctgcagg 420
acctggccat gggcacggat gccgaagggg agaagatcaa ggaccccatg agagccatcg 480
tccccattct gctggatgcc aatgtcagca cttacgacaa gatccgcatc atccttctct 540
acatcttttt gaagaacggt aggaaggggg gagtagagga gggcccagac cttcttgggg 600
gaaatgaggc agctgggaaa gagagagaga gagagagaga gagcagagcg gaaaacagtt 660
taaaagacaa aacgctcagt tcccgtcgtg gctcagtggt taacgaatcc gactaggaac 720
catgaggttg caggttcgat ccctggcctt gctcagtggg ttaaggatcc agcattgcca 780
tgagctatga tgtaggtcgt agacgctgct tggatcccgc attgctgtgg ctgtggtgta 840
ggctggtggc tacagctccg attagacccc tagcctggga atctccatat gccgcaggtg 900
cagccctaga aaaagacaaa caataaaaaa taaaataaaa gacaaagaaa agggaaggaa 960
aggggtgttg aagacaaaga tccaaggggc tcttcacgcc tgaggaagtg taatgcgggc 1020
agatcacttg cagctggagg ccgagtgtcc tccaccaccc tccgccccgc ccatgcttct 1080
ggaactgatc agagggacga                                             1100
<210>  17
<211>  20
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  17
atccagcaga atggggacga                                              20
<210>  18
<211>  20
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  18
tgccgaaggg gagaagatca                                              20
<210>  19
<211>  20
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  19
catgggcacg gatgccgaag                                              20
<210>  20
<211>  20
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  20
gacattggca tccagcagaa                                              20
<210>  21
<211>  20
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  21
atggggacga tggctctcat                                              20
<210>  22
<211>  20
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  22
cccttcggca tccgtgccca                                              20
<210>  23
<211>  25
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  23
caccgatcca gcagaatggg gacga                                        25
<210>  24
<211>  25
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  24
aaactcgtcc ccattctgct ggatc                                        25
<210>  25
<211>  25
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  25
caccgtgccg aaggggagaa gatca                                        25
<210>  26
<211>  25
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  26
aaactgatct tctccccttc ggcac                                        25
<210>  27
<211>  25
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  27
caccgcatgg gcacggatgc cgaag                                        25
<210>  28
<211>  25
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  28
aaaccttcgg catccgtgcc catgc                                        25
<210>  29
<211>  24
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  29
caccgacatt ggcatccagc agaa                                         24
<210>  30
<211>  24
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  30
aaacttctgc tggatgccaa tgtc                                         24
<210>  31
<211>  25
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  31
caccgatggg gacgatggct ctcat                                        25
<210>  32
<211>  25
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  32
aaacatgaga gccatcgtcc ccatc                                        25
<210>  33
<211>  25
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  33
caccgccctt cggcatccgt gccca                                        25
<210>  34
<211>  25
<212>  DNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  34
aaactgggca cggatgccga agggc                                        25
<210>  35
<211>  100
<212>  RNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  35
auccagcaga auggggacga guuuuagagc uagaaauagc aaguuaaaau aaggcuaguc  60
cguuaucaac uugaaaaagu ggcaccgagu cggugcuuuu                       100
<210>  36
<211>  100
<212>  RNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  36
ugccgaaggg gagaagauca guuuuagagc uagaaauagc aaguuaaaau aaggcuaguc  60
cguuaucaac uugaaaaagu ggcaccgagu cggugcuuuu                       100
<210>  37
<211>  100
<212>  RNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  37
caugggcacg gaugccgaag guuuuagagc uagaaauagc aaguuaaaau aaggcuaguc  60
cguuaucaac uugaaaaagu ggcaccgagu cggugcuuuu                       100
<210>  38
<211>  100
<212>  RNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  38
gacauuggca uccagcagaa guuuuagagc uagaaauagc aaguuaaaau aaggcuaguc  60
cguuaucaac uugaaaaagu ggcaccgagu cggugcuuuu                       100
<210>  39
<211>  100
<212>  RNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  39
auggggacga uggcucucau guuuuagagc uagaaauagc aaguuaaaau aaggcuaguc  60
cguuaucaac uugaaaaagu ggcaccgagu cggugcuuuu                       100
<210>  40
<211>  100
<212>  RNA
<213>  人工序列(Artificial Sequence)
<400>  40
cccuucggca uccgugccca guuuuagagc uagaaauagc aaguuaaaau aaggcuaguc  60
cguuaucaac uugaaaaagu ggcaccgagu cggugcuuuu                       100

Claims (3)

1.一种用于猪STXBP1基因编辑的CRISPR/Cas9系统,其特征在于包含针对猪STXBP1基因的gRNA表达载体和Cas9表达载体;所述的针对猪STXBP1基因的gRNA表达载体是将SEQ IDNO.23和SEQ ID NO.24所示的单链DNA退火得到的具有粘性末端的双链DNA分子插入载体骨架pKG-U6gRNA的BbsI限制性内切酶位点所得;载体骨架pKG-U6gRNA的质粒全序列如SEQ IDNO.3所示,该表达载体表达SEQ ID NO.35所示的gRNA,其靶点序列如SEQ ID NO.17 所示;所述的Cas9表达载体为pU6gRNA-eEF1a-mNLS-hSpCas9-EGFP-PURO,该质粒全序列如SEQ IDNO.2所示;所述的gRNA表达载体和Cas9表达载体的摩尔比为3:1。
2.权利要求1所述的CRISPR/Cas9系统在构建猪STXBP1基因敲除的猪重组细胞中的应用。
3.一种猪STXBP1基因敲除的猪重组细胞,其特征在于由权利要求1所述的CRISPR/Cas9系统共转染猪原代成纤维细胞经验证后所得。
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