CN112375691B - 一株产紫青霉及其作为解磷真菌的应用以及在促进玉米生长中的应用 - Google Patents

一株产紫青霉及其作为解磷真菌的应用以及在促进玉米生长中的应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一株产紫青霉及其作为解磷真菌的应用以及在促进玉米生长中的应用。本发明提供了产紫青霉(Penicillium purpurogenum)SW‑10，保藏登记号为CGMCC No.20737。本发明还保护产紫青霉SW‑10作为解磷真菌的应用。本发明还保护产紫青霉SW‑10在降解难溶磷中的应用。本发明还保护产紫青霉SW‑10在将难溶磷降解为有效磷中的应用。本发明还保护产紫青霉SW‑10在促进植物生长中的应用。所述应用中，产紫青霉SW‑10通过将环境中的难溶磷降解为有效磷促进植物生长。本发明可用于解决农田作物磷利用效率低的问题，具有良好的应用推广价值。

Description

一株产紫青霉及其作为解磷真菌的应用以及在促进玉米生长 中的应用
技术领域
本发明属于生物技术领域，涉及一株产紫青霉及其作为解磷真菌的应用以及在促进玉米生长中的应用。
背景技术
磷素作为植物需求量最大的营养元素之一，与植物的品质和产量密切相关。尽管土壤中总的磷含量很高，但能够被植物吸收利用的有效磷含量很低。如何利用解磷微生物促进植物对土壤中难溶磷的吸收、降低化学磷肥使用是需要解决的问题。难溶磷又称为难溶性磷，是指不能被植物直接吸收的磷组分，包括难溶性无机磷和难溶性有机磷。有效磷指的是可被植物吸收的磷组分，包括全部水溶性磷、部分吸附态磷及有机态磷。在化学上，有效磷定义为：能与32P进行同位素交换的或容易被某些化学试剂提取的磷。
解磷微生物能够利用自身的分泌物或与土壤中的其他类群互利共生，将土壤中难吸收状态的磷源，通过一系列的生理生化过程，矿化成容易被植物吸收利用的磷形态。解磷微生物在土壤中种类繁多，主要包括细菌、真菌和放线菌。解磷微生物在土壤中的数量非常庞大，主要存在于土壤及植物根际中，其中解磷细菌占微生物总量的1％-50％，而解磷真菌仅占0.1％-0.5％。在土壤解磷微生物中，解磷真菌虽然在数量和种类上都没有解磷细菌占优势，但其解磷能力一般是解磷细菌的几倍甚至更多，而且遗传性状更稳定。因此，从土壤中筛选解磷真菌符合可持续发展的理念，对解决目前农业生产上大量地施用化肥造成土壤和环境污染的问题具有重要意义。
发明内容
本发明的目的是提供一株产紫青霉及其作为解磷真菌的应用以及在促进玉米生长中的应用。
本发明提供了产紫青霉(Penicillium purpurogenum)SW-10。产紫青霉(Penicillium purpurogenum)SW-10，已于2020年9月29日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(简称CGMCC，地址为：北京市朝阳区北辰西路1号院3号，中国科学院微生物研究所)，保藏登记号为CGMCC No.20737。
本发明还保护产紫青霉SW-10作为解磷真菌的应用。
本发明还保护产紫青霉SW-10在降解难溶磷中的应用。
本发明还保护产紫青霉SW-10在将难溶磷降解为有效磷中的应用。
以上任一所述应用中，温度采用24℃～32℃。
以上任一所述应用中，pH采用4.0～7.0。
以上任一所述应用中，碳源采用葡萄糖和/或淀粉。
以上任一所述应用中，氮源采用硫酸铵和/或尿素和/或硝酸钾和/或氯化铵。
本发明还保护产紫青霉SW-10在促进植物生长中的应用。
所述应用中，产紫青霉SW-10通过促进植物对环境中的磷的吸收促进植物生长。
所述应用中，产紫青霉SW-10通过提高植物的含磷量促进植物生长。
所述应用中，产紫青霉SW-10通过将环境中的难溶磷降解为有效磷促进植物对环境中磷的吸收从而促进植物生长。
所述促进植物生长为促进植物苗期生长。
本发明还保护产紫青霉SW-10在提高植物含磷量中的应用。
本发明还保护产紫青霉SW-10在提高植物的磷利用率中的应用。
所述提高植物的磷利用率为提高植物对难溶磷的利用率。
以上任一所述植物为农作物。
以上任一所述植物为禾本科植物。
以上任一所述植物为玉米。
以上任一所述难溶磷为难溶无机磷或难溶有机磷。所述难溶无机磷具体可为磷酸钙。所述难溶有机磷具体可为植酸钙。
本发明提供了一株产紫青霉，即产紫青霉SW-10。产紫青霉SW-10可以有效降解以磷酸钙为代表的难溶无机磷和以植酸钙为代表的难溶有机磷，可作为解磷真菌进行应用，进一步的产紫青霉SW-10具有促进农作物利用磷从而促进农作物生长的作用。本发明可用于解决农田作物磷利用效率低的问题，具有良好的应用推广价值。
附图说明
图1为菌株SW-10的菌落照片。
图2为菌株SW-10的细胞形态照片。
图3为菌株SW-10分子鉴定中的琼脂糖凝胶电泳图。
图4为实施例2中的初始体系及终止体系的照片。
图5为实施例2中产紫青霉SW-10的解磷能力(定性试验)的照片。
图6为实施例3中的步骤5的结果图。
图7为实施例3中的步骤6的结果图。
图8为实施例3中的步骤7的结果图。
具体实施方式
下面结合具体实施方式对本发明进行进一步的详细描述，给出的实施例仅为了阐明本发明，而不是为了限制本发明的范围。以下提供的实施例可作为本技术领域普通技术人员进行进一步改进的指南，并不以任何方式构成对本发明的限制。
下述实施例中的实验方法，如无特殊说明，均为常规方法，按照本领域内的文献所描述的技术或条件或者按照产品说明书进行。下述实施例中所用的材料、试剂等，如无特殊说明，均可从商业途径得到。如无特殊说明，以下实施例中的定量试验，均设置三次重复实验，结果取平均值。
难溶性无机磷固体培养基：葡萄糖10g，(NH4)2SO4 0.5g，NaCl 0.3g，KCl 0.3g，MgSO4·7H2O 0.3g，FeSO4·7H2O 0.03g，MnSO4·H2O 0.03g，Ca3(PO4)2 2.5g，琼脂15.0g，加水至1000mL，105℃灭菌30min。如无特殊说明，pH为7.0。
难溶性有机磷固体培养基：葡萄糖10g，(NH4)2SO4 0.5g，NaCl 0.3g，KCl 0.3g，MgSO4·7H2O 0.3g，FeSO4·7H2O 0.03g，MnSO4·H2O 0.03g，植酸钙2.5g，琼脂15.0g，加水至1000mL，105℃灭菌30min。如无特殊说明，pH为7.0。
有机磷液体培养基：葡萄糖10g，(NH4)2SO4 0.5g，NaCl 0.3g，KCl 0.3g，MgSO4·7H2O 0.3g，FeSO4·7H2O 0.03g，MnSO4·H2O 0.03g，植酸钙5.0g，加水至1000mL，105℃灭菌30min。如无特殊说明，pH为7.0。
PDA液体培养基(pH7.0)：马铃薯200g，葡萄糖10g，加水至1000mL，121℃灭菌20min。
PDA固体培养基(pH7.0)：马铃薯200g，葡萄糖10g，琼脂15g，加水至1000mL，121℃灭菌20min。
培养体系中有效磷浓度的测定方法如下：
取100mL培养体系，4℃、6000rpm离心10min，收集上清液；取nμL(通常为50～500μL)上清液加入50mL容量瓶，再加入2～3滴2,6-二硝基酚指示剂，加入1mol/L的氢氧化钠水溶液至体系显微黄色，加入5mL钼锑抗显色剂，然后用水定容至50mL，即为检测体系，25℃静置30min，在880nm处比色，得到吸光值a。空白对照：用等体积对照液(对照液：葡萄糖10g，(NH4)2SO4 0.5g，NaCl 0.3g，KCl 0.3g，MgSO4·7H2O 0.3g，FeSO4·7H2O 0.03g，MnSO4·H2O0.03g，加水至1000mL，105℃灭菌30min)代替所述上清液进行上述步骤；空白对照用于调零。称取105℃烘干2h的磷酸二氢钾0.439g，用水溶解后，加入5mL浓硫酸，加水定容至1L，即为磷储备液；用磷储备液和水制备不同磷浓度的磷标准品溶液；磷标准品溶液在880nm处比色，制作磷元素浓度(μg/mL)与吸光值的标准曲线。将吸光值a代入标准曲线，计算得到检测体系中的磷元素浓度，用ρ表示，单位为μg/mL。
培养体系中有效磷浓度(mg/L)＝ρ*V*D/100mL；
V是检测体系体积，为50mL；
D是分取倍数，即100mL÷(n×10-3)mL。
培养基质中有效磷浓度的测定方法(Olsen法)如下：
取培养基质，风干，然后过1mm孔径筛，然后取5.0g，置于200mL塑料瓶中，加入0.5mol/L碳酸氢钠水溶液100mL，180rpm振荡30min，然后用无磷滤纸过滤，收集滤液；取滤液10mL于50mL容量瓶中，缓慢加入钼锑抗显色剂5mL，充分摇匀，加水定容至50mL，即为检测体系，25℃静置30min，在880nm处比色，得到吸光值a。空白对照：用等质量石英砂代替所述培养基质粉末进行上述步骤；空白对照用于调零。称取105℃烘干2h的磷酸二氢钾0.439g，用水溶解后，加入5mL浓硫酸，加水定容至1L，即为磷储备液；用磷储备液和水制备不同磷浓度的磷标准品溶液；磷标准品溶液在880nm处比色，制作磷元素浓度(μg/mL)与吸光值的标准曲线。将吸光值a代入标准曲线，计算得到检测体系中的磷元素浓度，用ρ表示，单位为μg/mL。
培养基质中有效磷浓度(mg/kg)＝ρ*V*D*1000/(m*1000)；
V是检测体系体积，为50mL；
D是分取倍数，即100mL÷10mL；
m是风干后的培养基质质量,为5.0g。
植物样本全磷含量的测定方法(钒钼黄比色法)如下：
取植物样本，烘干，研磨并过0.25mm孔径筛；称取mg(通常为0.30g～0.50g)，置于50mL开氏瓶中，先滴入少量水湿润样品，加浓硫酸5mL，摇匀，瓶口盖一弯颈小漏斗，在电炉上先缓缓加热，待浓硫酸分解冒大量白烟时再升高温度，消煮至溶液呈均匀的棕黑色时，取下开氏瓶，稍冷后提起弯颈漏斗，滴加30％H2O2 3mL，并不断摇动开氏瓶，再加热(微沸)约5min，取下，稍冷后重复滴加30％H2O2 2mL，再消煮，如此反复进行3～5次，每次添加的H2O2应逐次减少，消煮至溶液呈无色或清亮后，再加热5～10min(以赶尽剩余的H2O2)，取下开氏瓶冷却，用少量水冲洗漏斗，洗液流入开氏瓶中，用水定容至50mL，即为消煮液；取10.0mL消煮液于50mL容量瓶中，加2,6-二硝基酚指示剂2滴，用6M NaOH水溶液调pH至刚显黄色，加入钒钼酸铵试剂10.0mL，用水定容至50mL，摇匀，即为检测体系，25℃静置15min，用分光光度计在450nm处比色，得到吸光值a。
不加入植物样本，其他按照上述步骤操作，得到空白对照；空白对照用于调零。
称取105℃烘干2h的磷酸二氢钾0.439g，用水溶解后，加入5mL浓硫酸，加水定容至1L，即为磷储备液；用磷储备液和水制备不同磷浓度的磷标准品溶液；磷标准品溶液在450nm处比色，制作磷元素浓度(μg/mL)与吸光值的标准曲线。
将吸光值a代入标准曲线，计算得到检测体系中的磷元素浓度，用ρ表示，单位为μg/mL。
植物样本全磷浓度(mg/g)＝ρ·V×D×10-3/m；
V是检测体系体积，为50mL；
D是分取倍数，即50mL÷10mL。
实施例1、产紫青霉SW-10的获得、鉴定和保藏
一、菌株的获得
采集青岛市胶州市洋河镇试验田玉米根际土，采用梯度稀释涂布分离，分别在难溶性无机磷固体培养基和难溶性有机磷固体培养基上28℃培养，挑选可形成透明圈的菌落，经分离纯化后获得一株对难溶性无机磷(磷酸钙)和难溶性有机磷(植酸钙)均具有较强解磷能力的菌株，将其命名为菌株SW-10。
二、菌株的鉴定
1、菌株SW-10的菌落特征(见图1)：在PDA固体培养基中菌落菌丝成橘黄色，产孢后菌落呈深绿色，28℃培养7天菌落直径57-63mm。
2、菌株SW-10的细胞形态特征(见图2)：分生孢子梗无色、呈帚形分枝，分枝顶端着生无色瓶状小梗，小梗上产生串状、球形、无色、单胞的分生孢子。
3、菌株SW-10的生理生化特征：最适温度范围24℃～32℃，最适pH范围4.0～7.0，最适碳源为葡萄糖和淀粉，最适氮源为硫酸铵、尿素、硝酸钾和氯化铵。
(1)不同碳源的影响
培养基组成：碳源，(NH4)2SO4 0.5g，NaCl 0.3g，KCl 0.3g，MgSO4·7H2O 0.3g，FeSO4·7H2O 0.03g，MnSO4·H2O 0.03g，植酸钙5.0g，加水至1000mL，105℃灭菌30min。培养基的pH为7.0。
分别以葡萄糖、D-果糖、D(+)-麦芽糖、蔗糖、α-乳糖或可溶性淀粉作为培养基中的唯一碳源。采用葡萄糖作为唯一碳源时的加入量为10g，采用其他化合物作为唯一碳源时的加入量根据10g葡萄糖的C元素含量等量换算。
将菌株SW-10接种至培养基，菌株SW-10在体系中的初始浓度为1000cfu/mL。28℃、200rpm振荡培养4天，然后检测体系中的有效磷浓度。
结果见表1。
表1
Figure BDA0002790039040000051
Figure BDA0002790039040000061
(2)不同氮源的影响
培养基组成：葡萄糖10g，氮源，NaCl 0.3g，KCl 0.3g，MgSO4·7H2O 0.3g，FeSO4·7H2O 0.03g，MnSO4·H2O 0.03g，植酸钙5.0g，加水至1000mL，105℃灭菌30min。培养基的pH为7.0。
分别以硫酸铵、尿素、硝酸钾或氯化铵作为培养基中的唯一氮源。采用硫酸铵作为唯一氮源时的加入量为0.5g，采用其他化合物作为唯一氮源时的加入量根据0.5g硫酸铵的N元素含量等量换算。
将菌株SW-10接种至培养基，菌株SW-10在体系中的初始浓度为1000cfu/mL。28℃、200rpm振荡培养4天，然后检测体系中的有效磷浓度。
结果见表2。
表2
唯一氮源 培养4天后培养基中的有效磷浓度
硫酸铵 524.74mg·L<sup>-1</sup>
尿素 511.68mg·L<sup>-1</sup>
硝酸钾 500.26mg·L<sup>-1</sup>
氯化铵 477.93mg·L<sup>-1</sup>
(3)不同温度的影响
采用有机磷液体培养基。将菌株SW-10接种至培养基，菌株SW-10在体系中的初始浓度为1000cfu/mL。200rpm振荡培养4天，然后检测体系中的有效磷浓度。培养温度分别设置为：24℃、26℃、28℃、30℃或32℃。
结果见表3。
表3
培养温度 培养4天后培养基中的有效磷浓度
24℃ 410.20mg·L<sup>-1</sup>
26℃ 442.40mg·L<sup>-1</sup>
28℃ 507.73mg·L<sup>-1</sup>
30℃ 488.44mg·L<sup>-1</sup>
32℃ 466.04mg·L<sup>-1</sup>
(4)不同pH的影响
采用有机磷液体培养基。将菌株SW-10接种至培养基，菌株SW-10在体系中的初始浓度为1000cfu/mL。28℃、200rpm振荡培养4天，然后检测体系中的有效磷浓度。培养基pH分别设置为：4.0、5.0、6.0、7.0或8.0。
结果见表4。
表4
培养基pH 培养4天后培养基中的有效磷浓度
4.0 304.31mg·L<sup>-1</sup>
5.0 352.30mg·L<sup>-1</sup>
6.0 472.99mg·L<sup>-1</sup>
7.0 521.84mg·L<sup>-1</sup>
8.0 119.83mg·L<sup>-1</sup>
4、菌株SW-10的保守序列分析
利用PDA液体培养基培养菌株SW-10，2天后过滤菌丝体放入研钵中用液氮研磨，然后提取基因组DNA。分别利用真菌PCR通用引物ITS1/4(引物F：5′-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3′；引物R：5′-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3′)和β-tubulin引物(引物F：5′-GGTAACCAAATCGGTGCTGCTTTC-3′；引物R：5′-ACCCTCAGTGTAGTGACCCTTGGC-3′)进行PCR扩增。
PCR扩增产物进行1.5％琼脂糖凝胶电泳(电泳图见图3)。
回收PCR扩增产物并进行测序，用Blast程序与数据库中的序列进行比较分析，分析发现与Talaromyces purpurogenus相似度99.54％，属于青霉菌属。菌株SW-10的ITS序列如序列表的序列1所示，菌株SW-10的β-tubulin序列如序列表的序列2所示。
根据以上鉴定结果，菌株SW-10属于产紫青霉(Penicillium purpurogenum)，其有性态为Talaromyces purpurogenus。因此，将菌株SW-10命名为产紫青霉SW-10。
三、菌株的保藏
产紫青霉(Penicillium purpurogenum)SW-10，已于2020年9月29日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(简称CGMCC，地址为：北京市朝阳区北辰西路1号院3号，中国科学院微生物研究所)，保藏登记号为CGMCC No.20737。
实施例2、产紫青霉SW-10的解磷能力
一、产紫青霉SW-10对有机磷的降解能力(定量试验)
进行三次重复试验，每次重复试验设置5个重复处理，结果取平均值。
将产紫青霉SW-10接种至有机磷液体培养基，得到初始体系(初始体系中，产紫青霉SW-10的浓度为1000cfu/mL)；28℃、200rpm振荡培养4天，得到终止体系。分别检测初始体系和终止体系中的有效磷浓度。初始体系中，有效磷浓度为54.82mg·L-1。终止体系中，有效磷浓度为520mg·L-1。
取有机磷液体培养基，检测有效磷浓度，为52.17mg·L-1；28℃、200rpm振荡培养4天，然后检测有效磷浓度，为53.21mg·L-1。
初始体系及终止体系的照片见图4。初始体系中存在大量难溶性植酸钙，呈现浑浊状态。终止体系呈现为澄清状态，呈现为淡黄色或红色，菌丝球呈现不规则的团状。
二、产紫青霉SW-10的解磷能力(定性试验)
将产紫青霉SW-10菌饼分别接种至PDA固体培养基、难溶性有机磷固体培养基或难溶性无机磷固体培养基。28℃静置培养4天。照片见图5。可以观察到，产紫青霉SW-10可以有效降解难溶性有机磷，且可以有效降解难溶性无机磷。
实施例3、产紫青霉SW-10的促生作用
供试种子：玉米品种郑单958。
1、种子预处理：取供试种子，用10％双氧水于无光条件下浸泡30min以消毒，然后置于湿润滤纸上催芽至种子露白。
2、将0.05g植酸钙与200g蛭石混匀(一个花盆的量)，得到培养基质，将培养基质装入花盆。
3、将完成步骤1的种子播种至完成步骤2的花盆中，培养至植株两叶一心期。
4、完成步骤3后，试验组在花盆中浇入孢子悬液(每个花盆5mL孢子悬液)，对照组在花盆中浇入无菌水(每个花盆5mL无菌水)，然后培养21天。
孢子悬液的制备方法：将产紫青霉SW-10孢子悬浮于无菌水，纱布过滤后得到浓度为1×107cfu/mL的孢子悬液。
5、完成步骤4后，取植株，用蒸馏水冲洗然后用吸水纸吸干水分，分别称取地上部分和地下部分的鲜重(地下部分又称为根部)，然后105℃杀青30min并70℃烘干至恒重，分别称取地上部分和地下部分的干重。结果见图6(图6为10植株的平均值)。与对照组植株相比，试验组植株的鲜重和干重均表现出显著增加，地上部分鲜重增加34.78％、干重增加33.8％，地下部分鲜重增加41.6％、干重增加15.79％。结果表明，产紫青霉SW-10对玉米植株的促生效果较好。
6、完成步骤4后，取花盆中的培养基质，检测有效磷含量。结果见图7(图7为10植株的平均值)。与对照组相比，试验组培养基质中的有效磷含量增加了21.99％(达到6.56mg/kg)，差异达到显著水平。
7、完成步骤4后，取植株，分别检测叶片的全磷含量和叶鞘的全磷含量。结果见图8(图8为10植株的平均值)。与对照组植株相比，试验组植株的叶片全磷含量增加15.8％(达到1.49mg/g DW)，试验组植株的叶鞘全磷含量增加10.1％(达到1.52mg/g DW)。
以上对本发明进行了详述。对于本领域技术人员来说，在不脱离本发明的宗旨和范围，以及无需进行不必要的实验情况下，可在等同参数、浓度和条件下，在较宽范围内实施本发明。虽然本发明给出了特殊的实施例，应该理解为，可以对本发明作进一步的改进。总之，按本发明的原理，本申请欲包括任何变更、用途或对本发明的改进，包括脱离了本申请中已公开范围，而用本领域已知的常规技术进行的改变。按以下附带的权利要求的范围，可以进行一些基本特征的应用。
序列表
<110> 青岛农业大学
<120> 一株产紫青霉及其作为解磷真菌的应用以及在促进玉米生长中的应用
<130> GNCYX202855
<160> 2
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 557
<212> DNA
<213> Penicillium purpurogenum
<400> 1
ataaccggaa gttaggggcc tcgcggccca cctcccaccc ttgtctccaa cacctgttgc 60
ttcggcgggc ccaccggggc cacccggtcg ccgggggaca tccgtccccg ggcccgcgcc 120
cgccgaggcg ctctgtgaac cctgatgaag atgggctgtc tgagtgatat gaaaattgtc 180
aaaactttca acaatggatc tcttggttcc ggcatcgatg aagaacgcag cgaaatgcga 240
taagtaatgt gaattgcaga attccgtgaa tcatcgaatc tttgaacgca cattgcgccc 300
cctggcattc cggggggcat gcctgtccga gcgtcatttc tgccctcaag cacggcttgt 360
gtgttgggtg tggtccccct ggggacctgc ccgaaaggca gcggcgacgt ccgtctggtc 420
ctcgagcgta tggggctctg tcactcgctc gggaaaggac ctgcgggggt tggtcaccac 480
cacatctttt tacaaggttg acctcggatc aggtaggagt tacccgctga acttaagcat 540
atcaataagc ggaggaa 557
<210> 2
<211> 439
<212> DNA
<213> Penicillium purpurogenum
<400> 2
aggtgtaaga cacgctttag tcattgtcgc gacgactcgc tgactatttt caggcaaatc 60
atctctgctg agcacggtct cgatggatcc ggcgtgtaag tgttgatggg attcgaaatc 120
catctacaat tcgaccgtat ctgataatca acagttacaa tggctcctcc gacctccagt 180
tggagcgtat gaacgtttac ttcaacgagg tgcgtcgaac aaccaaccaa tagaaacaaa 240
aacaaaaact catatccaat gcttaacagg cttccggcaa caaatatgtt cctcgtgctg 300
tcctcgtcga cttggaaccc ggcaccatgg atgccgtccg cgctggtccc tttggtcagc 360
tcttccgtcc cgacaacttt gttttcggtc agtccggtgc tggtaacaac tgggccaagg 420
gtcactacac ctgagggta 439

Claims (9)

1.产紫青霉(Penicillium purpurogenum)SW-10，其保藏登记号为CGMCC No.20737。
2.权利要求1所述产紫青霉在降解植酸钙中的应用。
3.权利要求1所述产紫青霉在将植酸钙降解为有效磷中的应用。
4.权利要求1所述产紫青霉在促进植物生长中的应用；所述植物为玉米品种郑单958。
5.如权利要求4所述的应用，其特征在于：所述产紫青霉通过促进植物对环境中的磷的吸收促进植物生长。
6.如权利要求4所述的应用，其特征在于：所述产紫青霉通过提高植物的含磷量促进植物生长。
7.如权利要求4所述的应用，其特征在于：所述产紫青霉通过将环境中的难溶磷降解为有效磷促进植物对环境中磷的吸收从而促进植物生长。
8.权利要求1所述产紫青霉在提高植物含磷量中的应用；所述植物为玉米品种郑单958。
9.权利要求1所述产紫青霉在提高植物的磷利用率中的应用；所述植物为玉米品种郑单958。
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